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KR0178385B1 - IL-2 수용체의 p55 TAC 단백질에 대해 특이적인 키메릭 면역글로불린 - Google Patents

IL-2 수용체의 p55 TAC 단백질에 대해 특이적인 키메릭 면역글로불린 Download PDF

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KR0178385B1
KR0178385B1 KR1019900701939A KR900701939A KR0178385B1 KR 0178385 B1 KR0178385 B1 KR 0178385B1 KR 1019900701939 A KR1019900701939 A KR 1019900701939A KR 900701939 A KR900701939 A KR 900701939A KR 0178385 B1 KR0178385 B1 KR 0178385B1
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South Korea
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humanized
amino acid
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KR1019900701939A
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KR910700350A (ko
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엘. 퀸 캐리
에드윈 셀리크 해롤드
Original Assignee
캐리 퀸
프로테인 디자인 랩스, 인코오포레이티드
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Abstract

내용없음.

Description

[발명의 명칭]
IL-2 수용체의 p55 TAC 단백질에 대해 특이적인 키메릭 면역글로불린
[발명의 분야]
본 발명은 일반적으로 신규의 치료제 개발을 위한 재조합 DNA 및 모노클로날 항체기술의 조합 특히, 비-면역원성 항체의 생산 및 이들의 용도에 관한 것이다.
[발명의 배경]
포유동물에서, 면역반응은 외래물질, 즉 항원과 특이적으로 작용하는 2가지 형태의 세포에 의해 조절된다. 이들 세포형태중 하나인 B-세포는 항체생성에 관여한다. 두 번째 세포부류인 T-세포는 생체내에서 B-세포와 T-세포를 포함하는 여러 가지 형태의 다른 조혈세포의 기능을 조절하는 다양한 세포 서브세트를 포함한다.
T-세포가 이 조절을 발휘하는 하나의 방식은, 처음엔 T-세포 성장인자로 불렸지만 인터루킨-2(IL-2)로 공지되어 있는 림포킨의 생성을 통하는 방식이다. IL-2의 주요 기능은 T-세포를 자극하고 유지하는 것으로 알려졌다. 사실, 일부 면역학자들은 IL-2가 전체 면역 반응의 중심에 존재할 것이라고 믿고 있다[참조:Farrar, J., 등., Immunol. Rev. 63:129-166(1982), 본 명세서에 참조 문헌으로 인용]
이의 생물학적 효과를 나타내기 위해서, IL-2는 특이적 고-친화성 막 수용체와 상호 작용한다[참조:Greene, W., 등., Progress in Hematology XIV, E. Brown, Ed., Grune and Statton, New York(1986), at pages 283 ff]. 인간 IL-2 수용체는 하나의 쇄가 크기 약 55KD인 Tac 펩타이드로서 공지된 복합다쇄 당단백질이다[참조:Leonard. W., 등., J. Biol. Chem. 260:1872(1985), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]. 이 단백질을 암호화하는 유전자가 분리되어졌으며, 유전자는 21 아미노산 시그널 펩타이드를 포함하는 272 아미노산 펩타이드를 예측한다[참조:Leonard, W., 등., Nature 311:626(1984)]. p55 Tac 단백질의 219 NH2-말단 아미노산은 명백하게 세포외 영역을 포함하고 있다[참조:Leonard, W., 등., Science, 230:633-639(1985), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
인간의 IL-2 수용체의 구조 및 기능이 많이 밝혀지게 된 것은 특이적 반응성의 모노클로날 항체 개발에 기인한 것이다. 특히, 안티-Tac 로 공지된 한 마우스 모노클로날 항체[참조:Uchiyama, 등., J. Immunol. 126:1393(1981)]는 IL-2 수용체가 T-세포뿐만 아니라 단핵구-대식 세포족의 세포, 간의 쿠퍼(Kupffer) 세포, 피부의 랑게르한스 세포 및, 활성화된 T-세포상에서도 검출될 수 있다는 것을 보여준다. 중요한 것은, 휴지기 T-세포, B-세포 또는 순환 대식 세포는 전형적으로 IL-2 수용체를 나타내지 않는다는 것이다[참조:Herrmann, 등., J. Exp. Med. 162:1111(1985)].
안티-Tac 모노클로날 항체는 또한 IL-2 상호 작용을 요구하는 임파구 기능을 정의하는데 사용되었으며, 세포 배양물에서 세포 독성 및 서프레서(suppressor) T 임파구의 생성을 포함하는 여러가지 T-세포 기능을 억제하는 것으로 알려졌다. 또한, 안티-Tac 및 다른 항체를 사용한 연구결과 여러 가지 장애가 T-세포에 의한 부적절한 IL-2 수용체 발현, 특히 성인의 T-세포 백혈병과 관련이 있음을 알게 되었다.
더욱 최근에는, IL-2 수용체는 T-세포가 조정하는 질병을 치료하는데 있어서 새로운 치료접근방식의 이상적인 표적인 것으로 알려졌다. 안티-Tac 모노클로날 항체와 같은 IL-2 수용체 특이성 항체는 IL-2 수용체 함유 세포를 효과적으로 제거하기 위해 단독으로 또는 면역 결합체(예를 들면, 리신(Ricin) A, 동위원소 등과 함께)로서 사용될 수 있는 것으로 제시되어 왔다. 이들 제제는 예를 들면 이론적으로는 IL-2 수용체-발현 백혈병 세포, 특정의 B-세포, 또는 질병 상태와 관련되어 있는 활성화된 T-세포를 제거하지만, 필요한 정상적인 T-세포 면역 반응을 갖출수 있는 능력을 보장하기 위해 성숙 정상 T-세포 및 이들의 전구체의 보유를 허용할 수 있다. 일반적으로, 대부분의 다른 T-세포 특이성 제제는 거의 모든 말초 T-세포를 파괴할 수 있기 때문에 제제의 치료효능을 제한한다. 일반적으로, IL-2 수용체에 대해 특이적인 적절한 모노클로날 항체를 사용하면 자가 면역 질병, 기관 이식 및 활성화된 T-세포에 의한 원치 않는 임의의 반응에 대해 치료 능력을 가질 수 있다. 사실, 임상적 시도는 예를 들면 안티-Tac 항체를 사용하여 개시되었다[참조:일반적으로 Waldman, T., 등., Cancer Res. 45:625(1985) 및 Waldman, T., Science 232:727-732(1986), 이들 둘다 본 명세서에 참조 문헌으로 인용].
불행하게도, 안티-Tac 및 다른 비-인간 모노클로날 항체의 사용은 하기에 설명하는 바와 같이 반복된 치료 요법에서 특히 결점을 갖는다. 예를 들면 마우스의 모노클로날 항체는 인간의 모체를 잘 고정시키지 않으며, 인간에 사용하는 경우 다른 중요한 면역글로부린 기능적인 특징이 부족하다.
아마도 더욱 중요하게는, 안티-Tac 및 다른 비-인간 모노클로날 항체는 환자에 주입되는 경우 면역원성이 될 아미노산 서열을 상당 부분 함유한다는 것이다. 수많은 연구결과 외래 항체 주입후에 항체에 대해 환자가 유발한 면역 반응은 상당히 강하여, 초기 치료후에 항체의 치료 능력을 실질적으로는 거의 제거할 수 있다는 것을 알았다. 또한, 이 연구는 여러 가지 다양한 마우스나 다른 항원성의 (인간에 대해) 모노클로날 항체수의 증가가 여러 가지 질병의 치료제를 개발할 수 있을 것으로 기대했지만, 어떠한 종류의 비-인간 항체를 사용한 첫 번째 및 두 번째의 치료, 심지어는 질병과 무관한 요법의 치료도 그 자체가 비효과적이거나 위험할 수 있는 것으로 나타났다.
소위 키메릭 항체(chimeric antibodies)[예를 들면, 인간의 정상부(constant region)에 결합된 마우스 가변부(variable region)]의 생성이 다소 성공적이라고 입증되었지만, 이에는 상당한 면역원성 문제가 남아 있다. 일반적으로, 전형적인 인간 모노클로날 항체 생산기술을 사용하여 인간 IL-2 수용체와 반응하는 인간 면역글로불린을 생성하는 것은 많은 인간 항원에서처럼 극히 어려웠다. 이와 유사하게, 소위 인간화된(humanized) 항체[참조:예들 들면 EPO 공보 제0239400호]를 생산하기 위해 재조합 DNA 기술을 이용할 경우 불확실한 결과가 산출되는데 이는 부분적으로는 예측 불가능한 결합 친화도에 기인한다.
따라서, 치료제 및 다른 용도에 적합한 방식으로 용이하고 경제적으로 생성되며 실제적으로 인간에서 비-면역원성인, 인간 IL-2 수용체에 대해 특이적인 것들과 같은, 인간-형(human-like) 면역글로불린의 개선된 형태가 요구되고 있는 바, 본 발명은 이들 및 기타 요구를 충족시킨다.
[발명의 개요]
본 발명은 예를 들면 T-세포가 이끄는 인간 질환 치료에 유용한 신규 조성물을 제공하는 것에 관한 것으로, 이 조성물은 즉, 인간형 면역글로불린을 함유하는데, 이 글로불린은 인간의 IL-2 수용체상의 p55 Tac 단백질에 결합할 수 있거나 그 수용체에 인간의 IL-2가 결합하는 것을 차단할 수 있는 것이다. 면역글로불린은 두쌍의 경쇄/중쇄 복합물을 함유할 수 있으며, 전형적으로 적어도 한쌍은 인간 골격부 단편에 기능적으로 연결된 마우스의 보족성 결정 영역을 포함하는 쇄를 지닌다. 예를 들면, 자연적으로 연결된 부가의 마우스 아미노산 잔기를 함유하거나 함유하지 않은 마우스 보족성 결정 영역은 약 108M-1보다 더 강한 친화도 수준에서 인간 IL-2 수용체에 결합할 수 있는 인간-형 항체의 생성에 사용될 수 있다.
본 발명의 결합 단편 및 이의 다른 유도체를 포함하는 면역글로불린은 형질 감염된 세포, 바람직하게는 무한 증식능의 진핵 세포, 예를 들면 골수종 세포 또는 하이브리도마 세포에서의 궁극적인 형질 발현과 함께 여러 가지 재조합 DNA 기술에 의해 용이하게 생성될 수 있다. 인간-형 면역글로불린 골격부를 암호하는 제1서열 및 목적하는 면역글로불린 보족성 결정 영역을 암호하는 제2서열 세트를 포함하는 폴리뉴클레오티드는 합성적으로 생성되거나 또는 적절한 cDNA 및 게놈 DNA 절편을 조합하여 생성될 수 있다.
인간-형 면역글로불린은 실질적으로 순수한 형태로 단독으로 이용되거나 또는 세포 독성 제제, 예를 들면 레디오뉴클리드(radionuclide), 리보솜 억제 단백질 또는 세포 표면에 활성인 세포 독성 제제와 혼합하여 사용될 수 있다. 이들 화합물 모두는 T-세포가 유도하는 질환 치료에 특히 유용하다. 인간-형 면역글로불린 또는 이들의 복합체는 투여 방식에 따라 약제학적으로 허용되는 용량 형태로 제조될 수 있다.
본 발명은 공여체 면역글로부린으로부터의 하나 이상의 보족성 결정 영역(Complementary Determining Region's, CDR'S) 및 인간 면역글로불린으로부터의 골격부를 갖는 인간-형 면역글로부린 쇄를 고안하는 신규의 방법을 제공하는 데, 그 방법은 먼저 공여체 면역글로부린의 골격 또는 가변부 아미노산 서열을 인간 면역글로부린 쇄 수집물 중의 상응하는 서열과 비교한 다음, 인간 수집물로부터 더욱 동종성인 서열 하나를 인간 면역글로불린으로서 선택하는 것을 포함한다. 인간 면역글로불린 또는 수용체 면역글로불린 서열은 전형적으로 적어도 10 내지 20개의 면역글로불린 쇄 서열들의 수집물로부터 선택되며, 통상적으로 수집물중에 존재할 특정 서열의 공여체 면역글로불린 서열에 가장 가까운 동종성을 가질 것이다. 인간 면역글로불린 골격 서열은 전형적으로 공여체 면역글로불린 골격 서열에 대해 약 65 내지 70%이상의 동종성을 가질 것이다. 공여체 면역글로불린은 중쇄 또는 경쇄(또는 둘다)일 수 있으며, 인간 수집물은 동일 종의 쇄를 함유할 것이다. 인간화된 경쇄 및 중쇄는 부분-길이 또는 전체-길이의 인간 정상부 및 다른 단백질을 함유 또는 비함유하는 두 개의 경쇄-중쇄 쌍을 갖는 완전한 인간화된 면역글로불린 또는 항체를 형성하는데 사용될 수 있다.
본 발명의 또다른 구체화에 있어서, 상기 비교 단계와 관련지어서 또는, 무관하게, 수용체 면역글로불린 쇄 중의 부가의 아미노산은 CDR-공여체 면역글로불린 쇄로부터 유래된 아미노산으로 대체될 수 있다. 더욱 구체적으로, 수용체 면역 글로불린의 인간 골격 아미노산의 공여체 면역글로불린 유래의 상응하는 아미노산으로의 임의 치환이 면역글로불린 중의 하기의 위치에서 행해질 것이다:(a) 수용체 면역글로불린의 인간 골격부 중의 상기 아미노산은 그 위치에서는 거의 볼 수 없는 반면 공여체 면역글로불린 중의 상응하는 아미노산은 인간 면역글로불린 서열의 그 위치에서 흔히 볼 수 있는 위치, (b) 상기 아미노산이 CDR 중 하나에 바로 인접한 위치; 또는 (c) 상기 아미노산이 3차원 면역글로불린 모델에서 CDR 약 3Å내에 존재하고, 항원 또는 인간화된 면역글로불린의 CDR과 상호 작용할 수 있을 것이라고 예측되는 위치.
인간화된 면역글로불린 쇄는 전형적으로 CDR 외에 공여체 면역글로불린으로부터의 적어도 약 3개의 아미노산을 포함하는데, 통상적으로 이들중 적어도 하나는 공여체 면역글로불린 중의 CDR에 바로 인접해 있다. 중쇄 및 경쇄는 각각 위치 기준중 어느 하나 또는 세 개 모두를 사용하여 고안될 수 있다.
완전한 항체로 조합되는 경우, 본 발명의 인간화된 경쇄 및 중쇄는 실질적으로 인간에게 비-면역원성이며 항원(예를 들면 단백질 또는 에피토프 함유한 다른 화합물)에 대해 공여체 면역글로불린과 실질적으로 동일한 친화도를 보유한다. 이들 친화도 수준은 약 108M-1또는 그보다 높게 변화될 수 있으며, 항원에 대한 공여체 면역글로불린의 원래의 친화도의 약 4배 범위내로 존재할 수 있다.
[도면의 간단한 설명]
제1도, 안티-Tac 중쇄(상부 선) 및 Eu 중쇄(하부 선)의 서열 비교.
아미노산에 대하여 1 문자 코드가 사용된다. 각 선상의 첫 번째 아미노산은 왼쪽부터 번호를 매긴다. 2개 서열 중의 동일한 아미노산은 선으로 연결된다. 3개의 CDR에 밑줄을 긋는다. 인간화된 안티-Tac 중쇄에 Eu 아미노산대신 안티-Tac 아미노산이 사용되는 다른 아미노산의 위치를 *로 표기하였다.
제2도, 안티-Tac 경쇄(상부선) 및 Eu 경쇄(하부선)의 서열 비교.
아미노산에 대하여 1-문자 코드가 사용된다. 각 선상의 첫 번째 아미노산은 왼쪽부터 번호를 매긴다. 2개 서열 중의 동일한 아미노산은 선으로 연결된다. 3개의 CDR에 밑줄을 긋는다. Eu 아미노산대신 안티-Tac 아미노산이 인간화된 안티-Tac 중쇄에 사용되는 다른 아미노산의 위치를 *로 표기하였다.
제3도, 인간화된 안티-Tac 중쇄 가변부 유전자에 대한 유전자의 뉴클레오티드 서열.
단백질을 암호화하는 유전자 부분에 대해 해독된 아미노산 서열이 뉴클레오티드 서열 아래에 나타났다. 유전자의 개시 및 말단에서의 뉴클레오티드 TCTAGA는 Xba I 부위이다. 성숙한 중쇄 서열은 아미노산 #20 Q 로 시작한다.
제4도, 인간화된 안티-Tac 경쇄 가변부 유전자에 대한 유전자의 뉴클레오티드 서열.
단백질을 암호화 하는 유전자 부분에 대해 해독된 아미노산 서열이 뉴클레오티드 서열 아래에 나타났다. 유전자의 개시 및 말단에서의 뉴클레오티드 TCTAGA는 Xba I 부위이다. 성숙한 경쇄 서열은 아미노산 #21 D로 시작한다.
제5도, (a) 5'로부터 3'로 인쇄된 인간화된 안티-Tac 중쇄 유전자를 합성하는데 사용되는 4개의 올리고 뉴클레오티드의 서열.
(b) 올리고 뉴클레오티드의 상대적 위치.
화살표는 각각의 올리고 뉴클레오티드에 대해 3' 방향을 향한다.
제6도, (a) 5'로부터 3'로 인쇄된 인간화된 안티-Tac 경쇄 유전자를 합성하는데 사용되는 4개의 올리고 뉴클레오타이드의 서열.
(b) 올리고 뉴클레오티드의 상대적 위치.
화살표는 각각의 올리고 뉴클레오티드에 대해 3' 방향을 향한다. JFD2 및 JFD3의 중첩부분에서의 Hind III 부위의 위치가 나타나 있다.
제7도, 인간화된 안티-Tac 중쇄를 발현하는데 사용되는 플라스미드 pHuGTAC1의 도시적 다이아그램.
관련된 제한 부위가 도시되어 있고, 중쇄의 암호화 영역이 박스로서 나타나져 있다. 면역글로부린(Ig) 프로모터로부터의 전사 방향은 화살표로 나타났다. EH= 중쇄 인핸서(enhancer), Hyg = 하이그로마이신 내성 유전자.
제8도, 인간화된 안티-Tac 경쇄를 발현하는데 사용되는 플라스미드 pHuLTAC 의 도식적 다이아그램.
관련된 제한 부위를 나타내었고, 경쇄의 암호화 영역은 박스로서 나타났다. Ig 프로모터로부터의 전사 방향은 화살표로 나타났다.
제9도, 안티-Tac 항체 또는 인간화된 안티-Tac 항체 및 이어서 각각 표지 대로 플루어레신-결합된 염소 안티-마우스 항체 또는 염소 안티-인간 Ig 항체로 염색된 HUT-102 및 Jurkat 세포의 형광세포계수법.
각 패널에서, 점선곡선은 첫 번째 항체를 생략한 경우의 결과를 나타낸 것이고 실선 곡선은 첫 번째 및 두 번째(결합된) 항체를 설명한 바대로 포함하는 경우의 결과를 나타낸 것이다.
제10도, (a)지시한 바대로 안티-Tac 0-40ng, 이어서 비오티닐화된 안티-Tac 및 이어서 피코에리트린-결합된 아비딘으로 염색된 HUT-102 세포의 형광세포계수법.
(b) 지시된 항체, 이어서 비오티닐화된 안티-Tac 및 이어서 피코에리트린-결합된 아비딘으로 염색된 HUT-102 세포의 형광세포계수법.
[발명의 상세한 설명]
본 발명의 한 양태에 따르면, 예를 들면 인간 T-세포상의 IL-2 수용체상의 것과 같은, 목적 에피토프와 특이적으로 반응하는 인간-형 면역글로불린이 제공된다. 적어도 약 108M-1및 바람직하게는 109M-1내지 1010M-1또는 그 이상의 결합 친화도를 갖는 이들 면역글로불린은 예를 들면 인간 IL-2 수용체에 대한 IL-2의 결합을 차단할 수 있다. 인간-형 면역글로불린은 인간-형 골격을 가질 것이며, p55 Tac 단백질상의 에피토프와 특이적으로 반응하는 면역글로불린, 일반적으로는 마우스 면역글로불린으로부터의 보족성 결정 영역(CDR's)들을 가질 수 있다. 다량을 경제적으로 생산할 수 있는 본 발명의 면역글로불린은, 예를 들면, 여러 가지 기술로 환자 인간에서 T-세포 매개된 질병 치료로서의 용도를 가진다.
기본 항체 구조 단위는 테트라머를 포함하는 것으로 알려졌다. 각 테트라머는 각각 하나의 경쇄(약 25KD) 및 하나의 중쇄(약50 내지 70KD)를 갖는 2개의 동일한 쌍의 폴리펩타이드 쇄로 이루어진다. 각 쇄의 NH2-말단은 항원 인식에 주로 관여하는 약 100 내지 110 이상의 아미노산의 가변부를 시작한다. 각 쇄의 COOH 말단은 주작동인자(effector)기능에 주로 관여하는 정상부를 정의한다.
경쇄는 카파 또는 람다로서 분류된다. 중쇄는 감마, 뮤, 알파, 델타 또는 엡실론으로 분류(및 아분류)되고, 이는 각각 IgG, IgM, IgA, IgD 및 IgE로서 항체의 이소타입을 정의한다. 경쇄 및 중쇄내에, 가변부 및 정상부는 약 12개 이상의 아미노산의 J영역에 의해 결합되며, 중쇄는 또한 약 12개 이상의 아미노산의 D영역을 포함한다[참조:Fundamental Immunology, Paul, W., Ed., Chapter7, pgs. 131-166. Raven Press, N.Y. (1994), 본 명세서에 참조 문헌으로 인용].
각 경쇄/중쇄쌍의 가변부는 항체 결합 부위를 형성한다. 그 쇄 모두는 CDR's로 명명되는 3개의 고가변부에 의해 연결된 상대적으로 보존된 골격부(framework region)의 동일한 일반 구조를 나타낸다[참조:Sequences of Proteins of Immunological Interest.Kabat, E., 등.,U.S.Department of Health and Human Services, (1983); 및 Cholthia and Lesk, J. Mol. Biol., 196:901-917(1987), 본 명세서에서 참조문헌으로 인용]. 각 쌍의 2개의 쇄로부터의 CDR's은 골격부에 의해 정렬되어 특이성 에피토프에 결합할 수 있게 한다.
본 명세서에 사용되는, 용어면역글로불린은 실질적으로 면역글로불린 유전자에 의해 암호화되는 하나 이상의 폴리펩타이드로 이루어진 단백질을 의미한다. 인식된 면역글로불린 유전자는 카파, 람다, 알파, 감마, 델타, 엡실론 및 뮤 정상부 유전자뿐만 아니라 무수한 면역글로불린 가변부 유전자를 포함한다. 면역글로불린은 항체외에 여러 가지 형태, 예를 들면 Fv, Fab 및 F(ab)2, 뿐만 아니라 단일 쇄로 존재할 수 있다[참조:Huston, 등., Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A., 85:5879-5883(1988) 및 Bird, 등.,Science, 242:423-426(1988), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용], [일반적으로, Hood,등., Immunology, Benjamin, N.Y., 2nd ed.(1984) 및 Hunkapiller 와 Hood, Nature, 323:15-16(1986). 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
키메릭 항체는 경쇄 및 중쇄 유전자가 전형적으로는 유전공학에 의해 상이한 종에 속하는 면역글로불린 유전자 단편으로부터 작제된 항체이다. 예를 들면, 마우스 모노크로날 항체로부터의 유전자의 가변성(V) 단편은 γ1및 γ3와 같은 인간정상(C) 단편에 결합될 수 있다. 따라서 전형적인 치료 키메릭 항체는 다른 포유동물종도 사용될 수 있지만, 마우스 항체로부터의 V 또는 항원-결합 영역 및 인간항체로부터의 C 또는 작동인자 영역으로 이루어진 하이브리드 단백질이다(예를 들면, A.T.C.C. 기탁번호 CRL 9688은 안티-Tac 키메릭 항체를 분비한다).
본 명세서에 사용되는 용어골격부(framework region)는 카뱃(Kabat)등의 상기 문헌에서 정의된 바와 같이, 단일종의 상이한 면역글로불린중에서 상대적으로 보존된(즉, CDR's 이외의 것) 면역글로불린 경쇄 및 중쇄 가변부의 일부를 의미한다. 본 명세서에 사용되는 바와 같이, 인간-형 골격부는 각 존재 쇄중에 인간 면역글로불린에서의 것과 동일한 적어도 약 70 또는 그 이상의 아미노산 잔기, 전형적으로 75 내지 85 또는 그 이상의 잔기를 포함하는 골격부이다.
본 명세서에 사용되는 용어인간-형 면역글로불린은 인간-형 골격을 포함하며 존재하는 정상부가 인간 면역글로불린 정상부와 실질적으로 상동인, 즉 적어도 약 85 내지 90%, 바람직하게는 약 95% 동일한 면역글로불린을 칭한다. 따라서, 가능한 CDR's를 제외하고, 인간-형 면역글로불린의 모든 부분은 하나 이상의 고유 인간 면역글로불린 서열의 상응하는 부분과 실질적으로 상동이다. 예를 들면, 인간-형 면역글로불린은 키메릭 마우스 가변부/인간 정상부 항체를 포함하지 않는다.
본 발명의 또다른 일반적인 양상에 따르면, 인간화된 면역글로불린 쇄를 포함하는 항체의 친화도를 증가시키기 위해, 수용체 Ig 중에서보다 공여체 Ig중의 상기 위치에서의 아미노산과 동일하도록 인간-형 또는 인간화된 면역글로불린 쇄의 골격에서 제한된 수의 아미노산이 선택되는 기준이 포함된다.
본 발명의 이 양상은 인간화된 항체를 생산하는 선행 수단(예를 들면 CDR's의 공급원으로서 마우스 항체를 사용)에서 친화도의 손실에 기여하는 2가지 요인이 하기와 같다는 모델에 부분적으로 기초한다.
(1) 마우스 CDR's이 인간 골격과 조합되는 경우, CDR's에 인접한 골격중의 아미노산은 마우스 대신 인간이 된다. 이론에 구애됨이 없이, 이들 변화된 아미노산은 이들이 공여체 마우스 항체에서와는 상이한 정전기 또는 소수성 힘을 생성학 때문에 CDR's을 약간 일그러뜨릴 수 있으며, 비틀린 CDR's는 공여체 항체에서 CDR이 행한 것과 같은 항원과의 효과적인 접촉을 못할 수도 있다.
(2) 또한, CDR's에 인접하지만 구성일부는 아닌 원래의 마우스 항체 중의 아미노산(즉, 여전히 골격 일부분)이 친화도에 기여하는 항원과 접촉할 수 있다. 모든 골격 아미노산은 인간화되므로 이들 아미노산은 항체가 인간화되는 경우 상실된다.
이들 문제를 피하고 목적 항원에 대해 매우 강한 친화도를 갖는 인간화된 항체를 생산하기 위하여, 본 발명은 인간화된 면역글로불린을 고안하기 위한 하기의 네가지 기준을 사용한다. 이들 기준은 단독으로 또는 필요한 경우 조합하여 사용되어 목적하는 친화도 또는 다른 특성을 성취할 수 있다.
기준 I:수용체로서, 인간화될 공여체 면역글로불린과 비통상적으로 상동인 특정 인간 면역글로부린으로부터의 골격의 사용 또는 많은 인간 항체로부터의 일치하는(consensus) 골격의 사용. 예를 들면, 데이터 뱅크(예를 들면 the National Biomedical Research Foundation Protein Identification Resource)에서 인간 중쇄(또는 경쇄) 가변부에 대한 마우스 중쇄(또는 경쇄) 가변부의 서열 비교는 상이한 인간 영역에 대한 상동의 정도가 전형적으로 약 40%에서부터 약 60 내지 70%까지 크게 변화한다는 것을 보여준다. 수용체 면역글로불린으로서 공여체 면역글로불린의 중쇄(각각 경쇄) 가변부에 대해 가장 상동인 인간 중쇄(각각 경쇄) 가변부중 하나를 선택함에 의해, 공여체 면역글로불린으로부터 인간화된 면역글로부린으로의 진행에서 더 적은 아미노산이 변화될 것이다. 따라서, 이론에 구애됨이 없이, 이들의 구조를 흐트러뜨리는 CDR's 근처의 아미노산을 변화시키는 기회는 더 적다고 믿어진다. 더욱이, 인간화된 면역글로불린 쇄를 포함하는 인간화된 항체의 정확한 전체적인 모양은 공여체 항체의 모형에 더욱 근접하게 유사하여 CDR's의 비틀림 기회를 감소시킬 수 있다.
전형적으로, 적어도 약 10 내지 20개의 다른 인간 중쇄의 대표적인 수집물에서 3 내지 5개의 가장 상동인 중쇄 가변부 서열중 하나가 중쇄 골격을 제공하는 수용체로서 선택될 것이며 경쇄의 경우도 유사하다. 바람직하게는, 1내지 3개의 가장 상동인 가변부 중의 하나가 사용될 것이다. 선택될 수용체 면역글로불린 쇄는 가장 바람직하게는 골격부에서 공여체 면역글로불린에 대해 적어도 약 65% 상동성을 가질 것이다.
어떻게 수용체 면역글로불린을 선택하느냐에 상관없이, 인간화된 면역글로불린 쇄의 골격 중의 소수의 아미노산이 수용체에서보다는 공여체 중의 그러한 위치에서의 아미노산과 동일하도록 선택됨으로써 더 높은 친화도가 성취될 수 있다. 하기 기준은 어떤 아미노산이 그렇게 선택될 수 있는지를 정의한 것이다. 바람직하게는, 이들 기준중 하나를 만족시키는 대부분의 또는 모든 아미노산 위치에서 실제적으로 공여체 아미노산이 선택될 것이다.
기준 II:인간 수용체 면역글로불린의 골격 중의 아미노산은 통상적이지 않고 (즉, 희귀한, 이것은 본 명세서에서는 대표적인 데이터 뱅크에서 약 10%의 인간중쇄(각각 경쇄) V 영역 서열 정도의 위치에서 발생하는 아미노산을 의미한다) 그위치의 공여체 아미노산이 인간 서열에 대해 전형적인(즉,통상적인,이것은 본 명세서에서는 대표적인 데이터뱅크에서 적어도 약 25%의 서열에서 발생하는 아미노산을 의미한다) 경우, 수용체보다 공여체 아미노산이 선택될 것이다. 이 기준을 사용함으로써 얻는 것은 인간 골격 중의 비전형적인 아미노산이 항체 구조를 파괴하지 않는다는 것을 보장해주는 것이다. 더욱이, 비통상적인 아미노산을 인간 항체에 대해 전형적으로 발생하는 공여체 항체로부터의 아미노산으로 대체함에 의해, 인간화된 항체의 면역원성을 감소시킬 수 있다.
기준 III:인간화된 면역글로불린 쇄 중의 3CDR's에 바로 인접한 위치에서, 수용체 아미노산보다는 공여체 아미노산이 선택될 수 있다. 이들 아미노산은 특히 CDR's에서의 아미노산과 상호 작용하는 것처럼 보이며, 수용체로부터 선택되는 경우, 공여체 CDR's를 일그러뜨리고 친화도를 감소시킨다. 더욱이, 인접한 아미노산은 항원과 직접 상호 작용할 수 있으며[참조:Amit 등., Science, 233, 747-753(1986), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용], 공여체로부터 이들 아미노산의 선택은 원래 항체에서 친화도를 제공하는 모든 항원 접촉을 유지시키는데 바람직할 수 있다.
기준 IV:전형적으로 원래의 공여체 항체의 3-차원 모델은 CDR's 외부의 일부 아미노산이 CDR's에 인접하며 수소 결합, 반데르 발스 힘, 소수성 상호 작용등에 의해 CDR's 중의 아미노산과 상호 작용할 수 있는 우수한 가능성을 갖는다는 것을 보여준다. 이들 아미노산 위치에서, 수용체 면역글로불린 아미노산보다 공여체 아미노산이 선택될 수 있다. 이 기준에 따르는 아미노산은 일반적으로 CDR's 중의 일부 부위의 약 3Å단위 이내에 측쇄 원자를 가질 것이며 상기에 기술된 것과 같은 설정된 화학적 힘에 따라 CDR 원자와 상호 작용하는 원자를 함유해야만 한다. 항체와 같은 단백질의 모델을 창조하기 위한 컴퓨터 프로그램이 일반적으로 이용 가능하며 본 분야의 전문가에게는 잘 알려져 있다[참조:Loew 등., Int. J. Quant. Chem., Quant. Biol. Symp., 15:55-66(1988); Bruccoleri 등., Nature, 335, 564-568(1988); Chothia 등., Science, 233:755-758(1986), 이들 모두는 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]. 이들은 본 발명의 일부가 아니다. 사실, 모든 항체가 유사한 구조를 가지기 때문에, Brookhaven Protein Data Bank로부터 입수 가능한 공지의 항체 구조가 필요한 경우 다른 항체의 대략적인 모델로서 사용될 수 있다. 상업적으로 입수가능한 컴퓨터 프로그램은 컴퓨터 모니터상에서 이들 모델을 나타내는데, 원자 사이의 거리를 계산하는데 및 상호 작용하는 상이한 아미노산의 가능성을 추정하는데 사용될 수 있다[참조:Ferrin 등., J.Mol. Graphics, 6:13-27(1988)].
인간화된 또는 인간-형 항체는 일반적으로 인간 치료에 사용하는데 있어 마우스 항체에 대해 또는 일부 경우 키메릭 항체에 대해 적어도 3가지의 가능한 장점을 갖는다:1) 작동인자 부분이 인간이기 때문에, 인간 면역 시스템의 다른 부분과 더욱 잘 상호 작용할 수 있다(예를 들면, 보체-의존 세포 독성(CDC) 또는 항체-의존 세포의 세포 독성(ADCC)에 의해 더욱 효과적으로 표적 세포를 파괴한다).
2) 인간 면역 시스템은 인간화된 항체의 골격 또는 정상부를 외래로서 인식하지 못하며, 따라서 주입된 항체에 대한 항체 반응은 전체적으로 외래의 마우스 항체 또는 부분적으로 외래인 키메릭 항체에 대한 것보다 덜 해야만 한다.
3) 주입된 마우스 항체는 정상적인 항체의 반감기보다 훨씬 짧은 인간 순환에서의 반감기를 갖는 것으로 보고되었다[참조:D. Shaw 등., J. Immunol., 138:4534-4538(1987)]. 주입된 인간화된 항체는 대개 자연적으로 발생하는 인간 항체와 더욱 유사한 반감기를 가질 것이며, 더욱 적고 덜 빈번한 용량의 사용을 가능케 한다.
본 발명은 특히 EPA 공보 제0239400호에 기술된 것에 대해 개선된 인간화된 면역글로불린(예를 들면, 인간 IL-2 수용체를 결합시킬 수 있는)에 관한 것이다. 본 명세서에 적용되지 않는 상기 특허원은 수용체 항체의 경쇄 또는 중쇄 가변부 중의 CDR's 영역을 상이한 특이성의 항체로부터의 CDR's의 유사 부분(전형적으로 용매 접근성)으로 대체시키는 특정 면역글로불린에 대해 기술한다. 또한 상기 특허원은 특정 면역글로불린에 대해 잔기가 명백하게 특정의 골격부를 포함할 수 있는, 항원 결합 부위로부터(용매) 접근성인 이동 잔기[특히, Amit 등., Science 233:747-753(1986)에 기술된 바와 같이 항원 결합에 관련되어 있다고 알려진 잔기 또는 아마도 내부 상호 작용에 필수적인 잔기-하지만 이의 선택에 대해서는 불충분한 정보가 상기 특허원에 제공되어 있다]만의 가능성을 설명한다. 따라서, 예를 들면, 본 발명의 바람직한 양태는 전체 CDR's 및 CDR's의 하나(또는 바람직하게는 각각)에 바로 인접한 골격 아미노산의 치환을 수반한다. 일반적으로, 예를 들면 이들의 구조( 및 통상적으로는 이들의 항원 결합 특이성)를 유지하기 위해 CDR's와 접촉하는 골격 잔기는 특히 상기에 상세히 기술된 바와 같이 본 발명의 바람직한 양태내에 포함된다.
한 양태로서, 본 발명은 예를 들면 인간 IL-2 수용체(예를 들면 안티-Tac 모노크로날 항체)상의 목적하는 에피토프에 결합할 수 있는 면역글로불린으로부터의 중쇄 및/또는 경쇄 CDR's(전형적으로는 상기 기술된 바와 같은 다른 아미노산 잔기와 함께)을 암호화 하는 재조합 DNA 단편에 관한 것이다. 이들 영역을 암호화 하는 DNA 단편은 전형적으로 적절한 인간-형 골격부를 암호화 하는 DNA 단편에 결합될 것이다. 예를 들면, 발현시, 안티-Tac 중쇄 및 경쇄 고가변부(인간-형 골격부와 함께)를 포함하는 폴리펩타이드 쇄를 암호화하는 바람직한 DNA 서열을 각각 제3도 및 제4도에 나타내었다. 코돈 축퇴성 및 중요하지 않은 아미노산 치환물로 인해, 다른 DNA 서열은 하기에 상세히 기술되는 바와 같이 이들 서열에 대해 용이하게 치환될 수 있다.
DNA 단편은 전형적으로 자연적으로 연관된 또는 이종성 프로모터 영역을 포함하는 인간-형 항체 암호화 서열에 작동적으로 연결된 발현 조절 DNA 서열을 추가로 포함할 것이다. 바람직하게는, 발현 조절 서열은 진핵 숙주 세포를 형질 전환시키거나 형질 감염시킬 수 있는 벡터내의 진핵 프로모터 시스템일 수 있지만, 원핵 숙주를 위한 조절 서열 또한 사용될 수 있다. 일단 벡터를 적절한 숙주에 삽입시키면, 숙주는 뉴클레오타이드 서열의 고 수준 발현에 적합한 조건하에 유지되며, 원하는 바대로, 경쇄, 중쇄, 경쇄/중쇄 이합체 또는 본래의 항체, 결합 단편 또는 다른 면역글로불린형의 수집 및 정제를 수반할 것이다.
인간 정상부 DNA 서열을 여러 가지 인간 세포, 바람직하게는 불멸화된 B-세포로부터 공지의 방법에 따라 분리할 수 있다[참조:Kabat, 상기 문헌 참조 및 WP 87/02671]. 예를 들면 인간 카파 면역글로불린 정상부 및 J 영역 유전자 및 서열은 문헌[참조:Heiter 등., Cell 22:197-207(1980)]에 기술되어 있고 인간 면역글로불린 Cγ1유전자의 뉴클레오타이드 서열은 문헌[참조:Ellison 등., Nucl. Acid, Res. 10:4071(1982)]에 기술되어 있으며, 상기 두 문헌은 본 명세서에 참조 문헌으로 인용된다. 본 발명의 면역글로불린을 생성하기 위한 CDR's은 목적하는 항원(예를 들면, 인간 IL-2 수용체)에 결합할 수 있는 모노클로날 항체로부터 유사하게 유도될 수 있으며 마우스, 래트, 토끼, 또는 공지된 방법에 의해 항체를 생성할 수 있는 다른 척추 동물을 포함하는 편리한 포유동물 공급원에서 생성된다. DNA 서열을 위한 적합한 공급 세포 및 면역글로불린 발현 및 분비를 위한 숙주 세포는 다수의 공급원, 예를 들면 American Type Culture Collection(Catalogue of cell Lines and Hybridomas, Fifth edition(1985)Rockville, Maryland, U.S.A., 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용)으로부터 입수할 수 있다.
본 명세서에 특별히 기술된 인간-형 면역글로불린 외에, 다른 실질적으로 상동인 변형된 면역글로불린은 본 분야의 숙련가에게 공지된 여러 가지 재조합 DNA 기술을 사용하여 용이하게 고안하고 제조할 수 있다. 예를 들면, IL-2 수용체 면역블로불린에 대한 골격부는 여러 가지 아미노산 치환, 말단 및 중간 첨가 및 결실등에 의해 일차 구조 수준에서 제3도 및 제4도의 서열로부터 변화될 수 있다. 더욱이, 여러 가지 상이한 인간 골격부는 본 발명의 인간-형 면역글로불린에 대한 기본으로서 단독으로 또는 조합하여 사용될 수 있다. 일반적으로, 유전자의 변형은 여러 가지 공지된 기술, 예를 들면 부위 지시된 돌연 변이 유발(site-directed mutagenesis)[참조:Gillman and Smith, Gene 8:81-97(1979) 및 Roberts, S. 등., Nature 328:731-734(1987), 이들 둘다 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]에 의해 용이하게 달성될 수 있다. 또는, 일차 항체 구조의 일부분만을 포함하는 폴리펩타이드 단편은 단편이 하나 이상의 면역글로불린 활성(예를 들면, 보체 고정화 활성)을 소유하도록 생성될 수 있다. 또한, 유사한 많은 유전자처럼, 면역 글로불린 관련된 유전자는 각각 하나 이상의 다른 생물학적 활성을 갖는 별도의 작용 영역을 함유하고 있기 때문에, 유전자는 다른 유전자(예를 들면, 효소, 참조:1987년 12월 15일자로 출원된 통상적으로 양도된 미국 특허원 제132,387호, 이는 본 명세서에 참조 문헌으로 인용)로부터의 작용 영역에 융합되어 신규 특성을 갖는 융합 단백질(예를 들면, 면역 독소)을 생성할 수 있다.
궁극적으로 목적하는 인간-형 항체를 발현시킬 수 있는 본 발명의 핵산 서열은 여러 가지 상이한 폴리뉴클레오타이드(게놈 또는 cDNA, RAN, 합성 올리고 뉴클레오타이드 등) 및 성분(예를 들면, V, J, D 및 C 영역)으로부터 및 또한 여러 가지 상이한 기술에 의해 형성시킬 수 있다. 적절한 게놈 서열의 결합이 현재로서는 가장 통상적인 생산 방법이지만, cDNA 서열 또한 이용될 수 있다[참조:유럽 특허 공보 제0239400호 및 Reichmann, L., 등, Nature 332:323-327(1988), 이들 둘다 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
이미 설명한 바와 같이, DNA 서열은 발현 조절 서열에 작동적으로 연결된 (즉, 기능을 확실히 발휘하도록 위치된) 후에 숙주에서 발현된다. 이들 발현 벡터는 에피좀으로서 또는 숙주 염색체 DNA의 내부 부분으로서 숙주 유기체에서 전형적으로 복제된다. 통상적으로, 발현 벡터는 목적하는 DNA 서열로 형질 전환된 세포의 검출을 허용하도록 선택 표지물, 예를 들면, 테트라사이틀린 또는 네오마이신을 함유할 것이다[참조:예를 들면, 미국 특허 제4,704,362호, 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
이.콜라이는 본 발명의 DNA 서열의 클로닝에 특히 유용한 하나의 원핵 숙주이다. 사용에 적합한 다른 미생물 숙주에는 바실러스, 예를 들면 바실러스 서브틸리스 및 다른 장내 세균, 예를 들면 살모넬라, 세라티아 및 여러 가지 슈도모나스종이 포함된다. 이들 원핵 숙주에서, 전형적으로 숙주 세포와 혼화성인 발현 조절서열(예를 들면 복제원)을 함유하는 발현 벡터를 만들 수 있다. 또한 예를 들면 락토오즈 프로모터 시스템, 트립토판(trp) 프로모터 시스템, 베타-락타마제 프로모터 시스템 또는 파지 람다로부터의 프로모터 시스템과 같은 다수의 공지된 프로모터가 존재할 수 있다. 프로모터는 임의로 오퍼레이터와 함께, 통상적으로 발현을 조절할 것이며, 전사 및 해독을 개시하고 완료하기 위해 리보솜 결합 부위 서열등을 갖는다.
예를 들면, 효모와 같은 다른 미생물 또한 발현에 사용될 수 있다. 사카로마이세스는 바람직하게는 3-포스포글리세레이트 키나제 또는 다른 해당 과정 효소를 포함하는 프로모터, 복제원, 종결 서열등과 같은 발현 조절 서열을 갖는 적합한 벡터에 바람직한 숙주이다.
미생물 외에, 포유동물 조직 세포 배양물 또한 본 발명의 폴리펩타이드를 발현시키고 생성하기 위해 사용될 수 있다[참조:Winnacker, From Genes to Clones. VCH Publishers, N.Y., N.Y(1987), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]. 본래의 면역글로불린을 분비할 수 있는 다수의 적합한 숙주 세포주가 본 분야에서 개발되었으므로, 진핵 세포가 실제적으로 바람직하며, CHO 세포주, 여러 가지 COS 세포주, HeLa 세포, 골수종 세포주 등, 바람직하게는 형질전환된 B-세포 또는 하이브리도마가 포함된다. 이들 세포를 이한 발현 벡터는 발현 조절 서열, 예를 들면 복제원, 프로모터, 인핸서[참조:Queen, C., 등., Immunol, Rev. 89:49-68(1986), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용] 및 필요한 프로세싱(processing) 정보 부위, 예를 들면 리보솜 결합 부위, RNA 스플라이스(splice)부위, 폴리아데닐화 부위 및 전사 종결 서열를 포함할 수 있다. 바람직한 발현 조절 서열은 인핸서를 가진 SV40 면역글로불린 유전자, 아데노바이러스, 소의 유두종 바이러스 등에서 유래된 프로모터[참조:Mulligan and Berg, Science 209:1422-1427(1980)]이다.
당해 DNA 단편(예를 들면, 중쇄 및 경쇄 암호화 서열 및 발현 조절 서열)을 함유하는 벡터를 세포 숙주의 형태에 따라 변화하는 공지의 방법에 의해 숙주 세포에 옮길 수 있다. 예를 들면, 염화칼슘 형질 감염이 원핵 세포에 대해 통상적으로 사용되는 반면에, 인산칼슘 처리 또는 전기천공은 다른 세포 숙주에 대해 사용될 수 있다[참조:일반적으로, Maniatis, 등., Molecular Cloning:A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press(1982), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
일단 발현되면, 전체 항체, 이들의 이합체, 개개 경쇄 및 중쇄, 또는 본 발명의 다른 면역글로불린 형태는 황산 암모늄 침전, 친화성 컬럼, 컬럼 크로마토그라피, 겔 전기영동 등을 포함하는 본 분야의 표준 기술에 따라 정제할 수 있다[참조:일반적으로, Scopes, R., Protein Purification, Springer-Verlag, N.Y.(1982)]. 약제학적 용도를 위해서는 적어도 약 90 내지 95% 동종성의 실질적으로 순수한 면역글로불린이 바람직하고, 98 내지 99% 이상의 동종성이 가장 바람직하다. 일단 부분적으로 또는 목적하는 동종성으로 정제되면, 이어서 폴리펩타이드를 치료적인 방법(외용적으로 포함) 또는 검정 방법, 면역 형광 염색등의 개발 및 수행에 사용할 수 있다[참조:일반적으로, Immunological Methods, Vols. I and II, Lefkovits and Pernis, eds., Academic Press, New York, N.Y.(1979 및 1981)].
본 발명에 예시된 IL-2 수용체 특이성 항체는 전형적으로 T-세포 관련 질병 상태 치료에 개별적으로 사용할 수 있을 것이다. 일반적으로 질병 관련된 세포가 IL-2 수용체를 함유하는 것으로서 동정되는 경우, 인간 IL-2 수용체에 대한 IL-2의 결합을 차단할 수 있는 인간-형 항체가 적합하다[참조:발명의 명칭이 Treating Human Malignancies and Disorders, 인 미국 특허원 제085,707호, 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]. 예를 들면, 치료에 적합한 전형적인 질병 상태에는 숙주 질병에 대한 조직 이식 및 심장, 폐, 신장, 간 등의 기관 조직 이식을 수행한 환자에서의 이식 거부 반응이 포함된다. 다른 질병에는 자가 면역 질병, 예를 들면 타입 I 당뇨병, 다발성 경화증, 류머티스 관절염, 전신 낭창 홍반 및 그라비스 근무력증이 포함된다.
본 발명의 인간-형 항체는 또한 다른 항체, 특히 질병에 관여하는 세포상의 다른 표지물과 반응성인 인간 모노클로날 항체와 조합하여 사용할 수 있다. 예를 들면, 적합한 T-세포 표지물은 the First International Leukocyte Differentiation Workshop 에 의해 명명된 소위 Clusters of Differentiation으로 그룹지워진 것들을 포함할 수 있다[참조:Leuckocyte Typing, Bernard, 등., Eds., Springer-Verlag, N.Y.(1984), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용].
항체는 또한 화학요법 또는 면역 억제제와 함께 주어진 별도로 부여된 조성물로서 사용될 수 있다. 전형적으로, 제제에는 사이클로 스포린 A 또는 퓨린 유사체(예를 들면, 메토트렉세이트, 6-메르캅토퓨린 등)가 포함되지만, 본 분야의 숙련가에게는 잘 알려진 다수의 추가 제제(예를 들면, 사이클로포스파미드, 프레드니손 등) 또한 이용될 수 있다.
본 발명의 바람직한 약제학적 조성물은 면역 독소에 본 발명 항체의 사용을 포함한다. 면역 독소는 2개의 성분으로 특징지워지며 특히 시험관내 또는 생체내에서 선택된 세포를 사멸시키는데 유용하다. 하나의 성분은 부착되거나 흡착되는 경우 통상적으로 세포에 치명적인 세포 독성 제제이다. 전달 매체(delivery vehicle) 로서 알려진 두 번째 성분은 독성 제제를 특정 세포 형태, 예를 들면 암을 포함하는 세포에 전달하는 수단을 제공한다. 2 성분은 여러 가지 공지된 화학 방법에 의해 통상적으로 함께 화학적으로 결합된다. 예를 들면, 세포 독성제제가 단백질이고 두 번째 성분이 본래의 면역글로불린인 경우, 결합은 헤토로 이기능성 가교 결합제, 예를 들면 SPDP, 카보디이미드, 글루타르알데하이드 등에 의해 이루어질 수 있다. 여러 가지 면역 독소의 생산은 본 분야에 잘 알려져 있으며, 예를 들면 Monoclonal Antibody-Toxin Conjugates; Amining the Magic Bullet, [참조:Thorpe 등, Monoclonal Antibodies in Clinical Medicine, Academic Press, PP, 168-190(1982), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]에서 발견될 수 있다.
여러 가지 세포 독성 제제는 면역 독소에의 사용에 적합하다. 세포 독성 제제에는 래디오뉴클리드, 예를 들면 요오드-131, 이트륨-90, 레늄-188 및 비스무트-212; 다수의 화학 요법 약물, 예를 들면 빈데신, 메토트렉세이트, 아드리아마이신 및 시스플라팀; 및 세포 독성 단백질, 예를 들면 포크위드 안티바이러스 단잭질과 같은 리보솜 억제 단백질, 슈도모나스 액소톡신 A, 리친, 디프테리아 독소, 리친 A 쇄 등, 또는 세포 표면에서 활성인 제제, 예를 들면 포스포리파제 효소(예를 들면 포스포리파제 C)가 포함될 수 있다[참조:일반적으로 1988년 12월 28일자로 출원된 통상적으로 양도된 미국 특허원 제07/290,968호, Chimieric Toxins, Olsenes and Phil, Pharmac. Ther., 25:355-381(1982), and Monoclonal Antibodies for Cancer Detection and Therapy, eds. Haldwin and Byers, PP. [59-179, 224-226, Academic Press(1985), 이들 모두는 본 명세서에 참조 문헌으로 인용].
면역 독소의 전달 성분에는 본 발명의 인간-형 면역글로불린이 포함된다. 본래의 면역글로불린 또는 이들의 결합 단편, 예를 들면 Fab가 바람직하게 사용된다. 전형적으로, 면역 독소내의 항체는 인간 IgM 또는 IgG 이소타잎의 것이지만, 다른 포유동물 정상부 또한 필요에 따라 이용될 수 있다.
본 발명의 인간-형 항체 및 이의 약제학적 조성물은 비경구 투여, 즉 피하, 근육내 또는 정맥내 투여에 특히 유용하다. 비경구 투여용 조성물은 통상적으로 항체 용액 또는 허용되는 담체, 바람직하게는 수성 담체중에 용해된 이의 칵테일을 포함한다. 다수의 수성 담체로는 예를 들면, 물, 완충수, 0.4% 염수, 0.3% 글리신등이 사용될 수 있다. 이들 용액은 멸균되어 있으며 일반적으로 미립자물질을 함유하지 않는다. 이들 조성물은 통상의 잘 알려진 멸균 기술에 의해 멸균시킬 수 있다. 조성물은 생리학적 조건에 근접시키기 위해 필요한 약제학적으로 허용되는 보조 물질, 예를 들면 pH 조절 및 완충제, 독성 조절제 등, 예를 들면 아세트산나트륨, 염화나트륨, 염화칼륨, 염화칼슘, 나트륨 락데이트 등을 함유할 수 있다. 이들 제제 중의 항체의 농도는 광범위하게, 즉 약 0.5% 미만, 통상적으로는 적어도 약 1%로부터 최대 15 또는 20 중량% 까지 변화할 수 있으며 선택된 특정 투여 양태에 따라 주로 유체 용적, 점도 등을 기준으로 하여 선택될 수 있다.
따라서, 근육내 주사를 위한 전형적인 약제학적 조성물은 1ml의 멸균 완충수 및 50mg의 항체를 함유하도록 만들 수 있다. 정맥내 주사용의 전형적인 조성물은 250ml의 멸균 링거 용액 및 150mg의 항체를 함유하도록 제조될 수 있다. 비경구 투여 조성물을 제조하는 실제적인 방법은 본 분야의 숙련가에게는 잘 알려져 있거나, 종래 기술로부터 명백히 알수 있거나, 문헌[참조:Remingtion's Pharmaceutical Science, 15th ed., Mack Publishing Company, Easton, Pennsylvania(1980), 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]에 상세히 기술되어 있다.
본 발명의 항체는 저장을 위해 동결 건조시킬 수 있으며 사용전에 적합한 담체중에서 재구성될 수 있다. 이 기술은 통상의 면역글로불린을 사용하는 경우 효과적인 것으로 알려졌으며 본 분야에 공지된 동결 건조 및 재구성 기술이 사용될 수도 있다. 본 분야의 전문가에겐 동결 건조 및 재구성이 다양한 정도의 항체 활성 손실을 야기할 수 있으며(예를 들면, 통상의 면역글로불린의 사용으로, IgM 항체는 IgG 항체보다 더 큰 항체 손실을 갖는 경향이 있다.)사용 정도는 보상하도록 조절되어야만 할 수도 있다는 것이 자명할 것이다.
본 발명의 인간-형 항체 또는 이의 칵테일을 함유하는 조성물은 예방 및/또는 치료를 위해 투여할 수 있다. 치료 용도에 있어서, 조성물은 질병으로부터 이미 고통받고 있는 환자에게 질병 및 이의 합병증을 치유 또는 적어도 부분적으로는 억제하는데 충분한 양으로 투여된다. 이것을 달성하는데 적절한 양을 치료적 유효 용량으로서 정의한다. 이 용도에 효과적인 양은 감염의 중증도 및 환자 자신의 면역 시스템의 일반적인 상태에 따라 변화하지만, 일반적으로는 환자당 5 내지 25mg의 용량으로 용량당 약 1 내지 약 200mg의 항체 범위가 가장 통상적으로 사용된다. 본 발명의 물질이 일반적으로 생명에 위험한 또는 잠재적으로 생명에 위험한 상태인 중증의 질병 상태에 사용될 수 있다는 것도 주목해야 한다. 이러한 경우, 외부 물질의 최소화 및 본 발명의 인간-형 항체에 의해 달성되는 외래 물질 거부반응의 가능성을 낮추는 관점에서, 주치의는 이들 항체를 실질직으로 과량으로 투여하는 것이 바람직하다고 느낄 가능성도 있다.
예방적 적용에서, 본 발명의 항체 또는 이의 칵테일을 함유하는 조성물을 질병에 걸리지 않은 환자에 투여하여 환자의 내성을 향상시킨다. 이러한 양은 예방적 유효 용량으로서 정의된다. 이 용도에서, 정확한 양은 환자의 건강 상태 및 일반적인 면역 수준에 따르지만, 일반적으로 용량당 0.1 내지 25mg, 특히 환자당 0.5 내지 2.5mg 범위이다. 바람직한 예방적 용도는 신장 조직 이식 거부반응을 방지하는 것이다.
조성물의 1회 또는 여러번의 투여는 주치의에 의해 선택된 용량 수준 및 패턴에 따라 수행할 수 있다. 결국, 약제학적 제형은 환자를 효과적으로 치료하는데 충분한 양의 본 발명의 항체(들)를 제공해야 한다.
본 발명의 인간-형 항체는 추가로 시험관내에서 매우 다양한 용도를 발견할 수 있다. 예로서, 예시적인 항체는 T-세포 타이핑, 특이성 IL-2 수용체 함유 세포 또는 수용체 단편 분리, 백신 제조 등을 위해 사용될 수 있다.
진단 목적을 위해, 항체는 표지하거나 표지하지 않을 수 있다. 표지 되지 않은 항체는 인간 면역글로불린 정상부에 대해 특이적인 항체와 같은, 인간-형 항체와 반응성인 다른 표지된 항체(두번째 항체)와 조합하여 사용할 수 있다. 또는, 항체는 직접 표지될 수 있다. 래디오 뉴클리드, 플루오르, 효소, 효소기질, 효소 보조인자, 효소 억제제, 리간드(특히 합텐)와 같은 매우 다양한 표지가 사용될 수 있다. 수많은 형태의 면역 검정이 이용 가능하며 이는 본 분야의 숙련가에게는 잘 알려져 있다.
키트 또한 세포 활성의 보호 또는 검출에서 본 발명 항체의 사용을 위해 또는 선택된 항원의 존재를 위해 제공될 수 있다. 따라서, 본 발명의 항체 조성물은 용기 중의 동결 건조된 형태로서, 단독으로 또는 목적하는 세포 형태에 대해 특이적인 축의 항체와 함께 제공될 수 있다. 표지 또는 독소에 결합될 수 있거나 결합되지 않은 항체는 완충제, 예를 들면 트리스(Tris), 포스페이트, 카보네이트 등, 안정화제, 살균제, 불활성 단백질, 예를 들면 혈청 알부민 등 및 사용 지시 사항과 함께 키트 내에 포함되어 있다. 일반적으로, 이들 물질은 활성 항체의 양을 기준으로 약5 중량% 미만으로 존재하며 항체 농도를 기초로 약 0.001 중량% 이상의 총량으로 존재한다. 종종, 활성 성분을 희석시키기 위해 불활성 증량제 또는 부형제를 포함시키는 것이 바람지하며, 이 경우 부형제는 전체 조성물의 약 1 내지 99 중량%로 존재할 수 있다. 키메릭 항체에 결합할 수 있는 두 번째 항체를 검정에 사용하는 경우, 이것은 통상적으로 별도 바이알에 존재할 것이다. 두 번째 항체는 전형적으로 표지에 결합되고 상기 기술된 항체 제형화와 유사한 방식으로 제형화된다.
하기 실시예는 제한없이 설명하기 위해 제공된다.
[실시예]
[인간-형 경쇄 및 중쇄를 위한 유전자의 작제]
안티-Tac의 중쇄 아미노산 서열이 the National Biomedical Foundation Protein Identification Resource에서 얻은 다른 어떤 중쇄 서열보다 인간 항체 Eu 의 중쇄에 대해 상동성이 높기 때문에, 인간 항체 Eu의 서열(Sequences of Proteins of Immunological Interest, Kabat, E., 등, U.S.Dept. of Health and Human Services, 1983)을 사용하여 인간화된 항체의 골격을 제공했다.
인간화된 중쇄 서열을 선택하기 위해, 안티-Tac 중쇄 서열[참조:통상적으로 양도된 미국 특허원 제86,862호 및 제223,037호, 본 명세서에서 참조 문헌으로 인용]을 Eu 중쇄의 서열에 일렬되게 배치했다(제1도). 각 위치가 안티-Tac 아미노산이 선택되는 경우인 하기의 어떠한 범주에도 속하지 않으면, Eu 아미노산을 각 위치에서 인간화된 서열로 선택했다.
(1) 위치가 Kabat 등의 상기 문헌에 정의된 바대로 보족성 결정 영역(CDR)내에 존재한다(아미노산 31-35, 50-66, 99-106); (2) Eu 아미노산이 그 위치에서 인간 중쇄에 대하여 비통상적인 반면에, 안티-Tac 아미노산은 그 위치에서 인간 중쇄에 대하여 전형적이었다(아미노산 27, 93, 95, 98, 107-109, 111); (3) 위치가 안티-Tac 중쇄의 아미노산 서열에서 CDR에 바로 인접해 있다(아미노산 30 및 67); (4) 안티-Tac 항체의 3-차원 모델링은 아미노산이 항원 결합 영역에 물리적으로 인접해 있다는 것을 암시한다(아미노산 48 및 68). 일부 아미노산은 이들 범주 하나 이상에 해당되지만 하나의 범주에만 기재되어 있다.
인간화된 경쇄의 서열을 선택하기 위해, 안티-Tac 경쇄 서열을 Eu 경쇄의 서열에 일렬되게 배치했다(제2도). 위치가 다시 범주(1)-(4)중의 하나에 해당되지 않으면, (범주 정의에서의 경쇄 대체 중쇄로), Eu 아미노산을 각 위치에서 선택했다:(1)CDRs(아미노산 24-34, 50-56, 89-97).
(2) Eu 보다 더욱 전형적인 안티-Tac 아미노산(아미노산 48 및 63).
(3) CDRs에 인접(아미노산 없음; Eu 및 안티-Tac는 이미 이들 모든 위치에서 동일하다).
(4) 결합 영역에 대한 가능한 3-차원적 인접성(아미노산 60).
중쇄(제3도) 및 경쇄(제4도) 유전자의 실제적인 뉴클레오타이드 서열은 다음과 같이 선택되었다:(1) 뉴클레오타이드 서열은 상기 기술된 바와 같이 선택된 아미노산 서열을 암호화 한다.
(2) 이들 암호 서열의 5'인 뉴클레오타이드 서열은 리더(시그널) 서열, 즉 항체 MOPC 63의 경쇄의 리더 및 항체 PCH 108A의 중쇄의 리더를 암호화한다(Kabat 등의 상기 문헌). 이들 리더 서열은 항체의 전형으로서 선택된다.
(3) 암호화 서열의 3'인 뉴클레오타이드 서열은 안티-Tac 서열의 부분인, 마우스 경쇄 J5 단편 및 마우스 중쇄 J2 단편에 수반되는 서열이다. 이들 서열은 이들이 스플라이스 공여체 시그널을 함유하기 때문에 포함된다.
(4) 서열의 각 말단에는 Xba I 부위에서의 절단을 허용하고 벡터의 Xba I 부위로의 클로닝을 허용하는 Xba I 부위가 있다.
[인간화된 경쇄 및 중쇄 유전자의 작제]
중쇄를 합성하기 위하여, 4개의 올리고 뉴클레오타이드 HES 12, HES 13, HES 14, HES 15(제5a도)를 Applied Biosystems 380 B DNA 합성기를 사용하여 합성했다. 올리고 뉴클레오타이드중 2개는 중쇄의 각 본쇄의 부분이고, 각 올리고 뉴클레오타이드는 다음 올리고 뉴클레오타이드와 약 20 뉴클레오타이드에 의해 중첩되어 어닐링(annealing)을 허용한다(제5b도). 이와 함께, 올리고 뉴클레오타이드는 각 말단에서 몇 개의 여분의 뉴클레오타이드로 전체 인간화된 중쇄를 커버하여(제3도) Xba I 부위에서의 절단을 허용한다. 올리고 뉴클레오타이드를 폴리아크릴 아미드 겔로부터 정제했다.
각 올리고 뉴클레오타이드를 표준 방법[참조:Maniatis, 상기 문헌]에 의해 ATP 및 T4폴리뉴클레오타이드 키나제를 사용하여 포스포릴화 했다. 포스포릴화된 올리고 뉴클레오타이드를 어닐링 하기 위해, 이들을 각각 약 3.75μM의 농도로 40㎕ TA(33mM 트리스 아세테이트, pH7.9. 66mM 칼륨 아세테이트, 10mM 마그네슘 아세테이트) 중에 함께 현탁시키고, 4분 동안 95°로 가열한 다음 4°까지 서서히 냉각시켰다. 각 올리고 뉴클레오타이드의 반대 본쇄를 합성함에 의해 올리고 뉴클레오타이드로부터 완전한 유전자를 합성하기 위하여, 하기 성분들을 첨가하여 최종 부피를 100㎕로 만들었다:
10㎕ 어닐링된 올리고 뉴클레오타이드
각 0.16mM 데옥시리보뉴클레오타이드
0.5mM ATP
0.5mM DTT
100㎍/㎖ BSA
3.5㎍/㎖ T4 g43 단백질(DNA 폴리머라제)
25㎍/㎖ T4 g44/62 단백질(DNA 폴리머라제 보조 단백질)
25㎍/㎖ 45 단백질(폴리머라제 보조 단백질)
혼합물을 37℃에서 30분 동안 배양했다. 이어서 10u의 T4 DNA 리가제를 첨가하고 37℃에서 30분 동안 다시 배양했다. 70℃에서 15분 동안 반응물을 배양시킴에 의해 폴리머라제 및 리가제를 실활시켰다. 유전자를 Xba I으로 분해시키기 위해, 반응물에 BSA 200㎍/㎖ 및 DTT 1mM을 함유하는 2×TA 50㎕, 물 43㎕ 및 5㎕중의 Xba I 50u를 첨가했다. 반응물을 37℃에서 3시간 동안 배양하고, 겔상에서 러닝시켰다. 431 bp Xba I 단편을 겔로부터 정제하고 표준 방법에 의해 플라스미드 pUC 19의 Xba I 부위로 클로닝시켰다. 4개의 플라스미드 분리물을 정제하고 디데옥시 방법을 사용하여 서열을 결정했다. 이들중 하나는 정확한 서열을 가졌다(제3도).
경쇄를 합성하기 위해, 4개의 올리고 뉴클레오타이드 JFD1, JFD2, JFD3, JFD4(제6a도)를 합성했다. 올리고 뉴클레오타이드중 2개는 경쇄의 각 본쇄의 부분이고, 각 올리고 뉴클레오타이드는 약 20 뉴클레오타이드에 의해 다음 올리고 뉴클레오타이드에 중첩되어 어닐링을 허용한다(제6b도). 함께, 올리고 뉴클레오타이드는 각 말단에서 몇 개의 여분의 뉴클레오타이드로 전체 인간화된 경쇄를 커버하여(제4도) Xba I 부위에서의 절단을 허용한다. 올리고 뉴클레오타이드를 폴리아크릴 아미드 겔로부터 정제했다.
경쇄 유전자를 이들 뉴클레오타이드로부터 2부분으로 합성했다. JFD1 및 JFD2 각 0.5㎍을 20㎕의 시쿼나제(sequenase) 완충액(40mM 트리스-HCI, pH 7.5, 20mM 염화 마그네슘, 50mM 염화나트륨)에서 혼합하여, 70℃에서 3분 동안 가열하고 올리고 뉴클레오타이드를 어닐링시키기 위해 23℃까지 서서히 냉각시켰다. JFD3 및 JFD4도 동일한 방식으로 처리했다. 각 반응물을 DTT 10mM 및 각 데옥시리보뉴클레오타이드 0.5mM로 만들고 시쿼나제(US Biochemicals) 6.5u를 가하여 최종 부피가 24㎕가 되도록 하고 37℃에서 1시간 동안 배양하여 올리고 뉴클레오타이드의 반대 본쇄를 합성했다. Xba I 및 Hind III를 각 반응물에 첨가하여 DNA를 분해시켰다(JFD2 및 JFD3가 중첩되는 영역에 Hind III가 있으며 따라서 합성된 DNAs 각각에 Hind III 부위가 존재한다; 제6b도). 반응물을 폴리아크릴 아미드 겔상에서 러닝시키고, Xba I-Hind III 단편을 정제하여 표준 방법에 의해 pUC18내로 클로닝시켰다. 각 단편에 대한 여러 개의 플라스미드 분리물을 디데옥시 방법에 의해 서열화하고, 정확한 것을 선택했다.
[인간화된 경쇄 및 중쇄를 발현시키기 위한 플리스미드의 작제]
중쇄 Xba I 단편을 이것이 삽입되어 있는 pUC 19 플라스미드로부터 분리한 다음 표준 방법에 의해 정확한 배향으로 벡터 pVγ1[참조:통상적으로 양도된 미국 특허원 제223,037호]의 Xba I 부위에 삽입하여 플라스미드 pHuGTAC1를 제조했다(제7도). 이 플라스미드는 적절한 숙주 세포내로 형질 감염되는 경우 완전한 중쇄를 높은 양으로 발현한다.
2개의 경쇄 Xba I-Hind III 단편을 이들이 삽입되어 있는 pUC18 플라스미드로부터 분리했다. 벡터 플라스미드 pVк1[참조:통상적으로 양도된 미국 특허원 제223,037호]을 Xba I으로 절단하고, 디포스포릴화한 다음 표준 방법에 의해 2개의 단편으로 연결시킨다. 목적하는 반응 생성물은 원형(circular form)을 갖는다:벡터-Xba I-단편 1-Hind III-단편 2-IXba I-벡터. 여러 가지 플라스미드 분리물을 제한지도 작성 및 서열화에 의해 분석하고, 이 형태를 갖는 것을 선택했다. 그러므로, 이 플라스미드인 pHuLTAC(제8도)는 완전한 인간화된 경쇄를 함유하며(제4도) 적절한 숙주 세포내로 형질 감염되는 경우 경쇄를 고수준으로 발현한다.
[인간화된 항체의 합성 및 친화도]
플라스미드 pHuGTAC 1 및 pHuLTAC를 마우스 Sp2/0 세포내로 형질 감염시키고, 플라스미드가 이입된 세포를 표준 방법에 의해 플라스미드 상의 gpt 및 hyg 유전자에 의해 부여된 마이코페놀산 및/또는 하이그로마이신 B에 대한 내성을 기준으로 선택했다(제7도, 제8도). 이들 세포가 IL-2 수용체에 결합하는 항체를 분비하는 것을 입증하기 위해, 세포로부터의 상청액을 IL-2 수용체를 발현시킨다고 알려진 HUT-102 세포와 함께 배양했다. 세척한 후, 세포를 플로어레신-결함된 염소 안티-인간 항체와 함께 배양하고, 세척한 다음, FACSCAN 사이토플루오로미터상에서 형광에 대해 분석했다. 결과(제9a도)는 인간화된 항체가 이들 세포에는 결합하지만, IL-2 수용체를 발현시키지 않는 Jurkat T-세포에는 결합하지 않는다(제9d도)는 것을 명백하게 보여준다. 대조로서, 원래의 마우스 안티-Tac 항체를 사용하여 이들 세포를 염색하여(제9b도, 제9c도), 유사한 결과를 수득했다.
추가의 실험을 위해, 인간화된 항체를 생성하는 세포를 마우스에 주입하고, 생성된 복수를 수거했다. 인간화된 항체를 표준 기술에 따르는 Affigel-10 지지체(Bio-Rad Laboratories, Inc., Richmond, CA)상에 제조된, 염소 안티-인간 면역글로불린 항체의 친화성 컬럼에 통과시킴에 의해 복수로부터 실질적인 동종성을 갖도록 정제했다. 원래의 안티-Tac 항체에 대한 인간화된 항체의 친화도를 측정하기 위해, 경쟁적 결합 실험을 수행했다. 약 5×105HUT-102 세포를 공지량(10 내지 40ng)의 안티-Tac 항체 및 인간화된 안티-Tac 항체와 함께 4℃에서 10분 동안 배양했다. 이어서 100ng의 비오틴화된 안티-Tac를 세포에 첨가하고 4℃에서 30분 동안 배양했다. 이 양의 안티-Tac는 세포상에서 결합 부위를 포화시키는데 충분하며, 과량은 아니라는 것이 이미 측정되었다. 이어서 세포를 0.1% 소듐 아지드를 함유하는 포스페이트 완충 염수(PBS) 2㎖로 2회 세척했다. 이어서 세포를 세포에 이미 결합된 비오틴화된 안티-Tac 에 결합된 피코에리트린-결합된 아비딘 250ng과 함께 4℃에서 30분 동안 배양했다. 세포를 상기와 같이 다시 세척하고, 1% 파라포름알데하이드를 함유하는 PBS 중에서 고정시킨 다음, FACSCAN 사이토플루오로미터상에서 형광에 대해 분석했다.
첫 번째 단계에서 경쟁상대로서 안티-Tac 항체증가량(10 내지 40ng)을 사용하면 두 번째 단계에서 세포에 결합하는 비오틴화된 안티-Tac의 양이 감소하며, 따라서 마지막 단계에서 결합하는 피코에리트린-결합된 아비딘의 양도 감소하고, 따라서 형광도 감소했다(제10a도). 동량(20㎍)의 안티-Tac 및 경쟁 상대로서 사용된 인간화된 안티-Tac는 형광을 거의 동일 정도로 감소시켰다(제10b도). 이것은 이들 항체가 거의 동일한 친화도를 가지며(3 내지 4배이내), 하나가 훨씬 더 많은 친화도를 갖는 경우, 이것은 비오틴화된 안티-Tac와 더욱 효과적으로 경쟁하여, 형광을 더 많이 감소시킨다는 것을 나타낸다.
[인간화된 항체의 생물학적 특성]
인간 질병 치료시 최적 사용을 위해, 인간화된 항체는 IL-2 수용체를 발현시키는 인간에서 T-세포를 파괴할 수 있어야만 한다. 항체가 표적 세포를 파괴할 수 있는 하나의 메카니즘은 항체-의존 세포가 조정하는 세포 독성(약어로 ADCC)이며 [참조:Fundamental Immunology, Paul, W., Ed., Raven Press, New York(1984), pg. 681], 여기에서 항체는 표적 세포와 표적을 용해시킬 수 있는 대식 세포와 같은 작동인자 세포 사이에 브릿지를 형성한다. 인간화된 항체 및 원래의 마우스 안티-Tac 항체가 ADCC를 매개할 수 있는지를 측정하기 위해, 크로뮴 방출 분석을 표준 방법에 의해 수행했다. 특히, IL-2 수용체를 발현시키는 인간 백혈병 HUT-102 세포를51Cr과 함께 배양하여 이들이 이 래디오뉴클리드를 흡착하도록 했다. 이어서 HUT-102 세포를 과량의 안티-Tac 또는 인간화된 안티-Tac 항체와 함께 배양했다. HUT-102 세포를, 인간 재조합 IL-2와 함께 약 20시간 동안 배양함에 의해 정상적인 정제된 인간 말초 혈 단핵 세포인 작동인자 세포와 30:1 또는 100:1의 비율로 4시간 동안 배양했다. 표적 HUT-102 세포의 용해를 나타내는51Cr의 방출을 측정하고 백그라운드를 공제했다(표 1). 결과는 어떤 비의 작동인자 세포에서도, 안티-Tac는 상당한 수의 표적 세포를 용해하지 않은 반면(5% 미만), 인간화된 항체는 용해한다(20% 이상)는 것을 보여준다. 따라서, 인간화된 항체가 T-세포 백혈병 또는 다른 T-세포가 조정하는 질병의 치료에서 원래의 마우스 항체보다 훨씬 효과적인 것으로 믿어진다.
상기로부터, 본 발명의 인간-형 면역글로불린이 다른 항체의 수많은 잇점을 제공한다는 것을 명백하게 알 수 있다. 예를 들면, 안티-Tac 마우스 모노클로날 항체와의 비교에서, 본 발명의 인간-형 IL-2 수용체 면역글로불린은 좀더 경제적으로 생성되며 실질적으로 더 적은 외래 아미노산 서열을 함유한다. 환자 인간에 주입한 후의 이러한 감소된 항원성은 상기 기준에 따라 고안된 면역글로불린에 대해 상당한 치료적 개선을 나타낸다.
본 발명을 명백히 하고 잘 이해할 수 있는 목적으로 설명 및 실시예를 들어 본 발명을 상세히 기술하였지만, 첨부된 특허청구의 범위내에서 어떠한 변화 및 변형도 실시될 수 있다는 것은 명백할 것이다.

Claims (18)

  1. 보족성 결정 영역(CDR's)밖[Chothia et al(Chothia and Lesk, J. Mol. Biol., 196:901-917(1987))과 Kabat et al.(Sequences of Proteins of Immunological Interest, Kabat, E., et al., US Department of Health and Human Services, (1983)에 의해 정의됨]에서의 하나 이상의 아미노산 치환을 이용하여 인간화된 면역글로불린을 제조하는 방법으로서, 상기 아미노산 치환은 비-인간 공여체 면역글로불린의 비-CDR 가변부에서 유래되며 상기 인간화된 면역글로불린에서 CDR's 외의 가변부 아미노산 서열은 수용체 인간 면역글로불린 가변부 아미노산 서열과 동일한 아미노산 잔기 70개 이상을 포함하며 CDR's은 상기 비-인간 공여체 면역글로불린의 가변부에서 유래되는 것인 방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 인간화된 면역글로불린이 p55 Tac 단백질에 특이적으로 반응하고 인간 인터루킨-2(IL-2)가 인간 IL-2 수용체에 결합하는 것을 억제할 수 있거나 인간 IL-2 수용체에 결합할 수 있는 것인 방법.
  3. 제24항에 있어서, 상기 인간화된 면역글로불린이 인간 IL-2 수용체에 대해 약 108M-1또는 그 이상의 결합 친화도를 나타내는 것인 방법.
  4. 제2항 또는 제3항에 있어서, 상기 인간화된 면역글로불린의 성숙 경쇄와 중쇄 가변부 단백질 서열이 제3도과 제4도의 성숙 단백질 서열과 상동인 방법.
  5. 제1항 내지 제4항중 어느 한 항에 있어서, 상기 인간화된 면역글로불린이 IgG1면역글로불린 이소타입인 방법.
  6. 제1항 내지 제5항중 어느 한항에 있어서, 상기 치환이 CDR에 바로 이웃하는 것인 방법.
  7. 인간 수용체 면역글로불린에서 유래한 골격부와 항원에 결합할 수 있는 공여체 면역글로불린에서 유래한 보족성 결정 영역(CDR's)을 갖는 인간화된 면역글로불린을 생성하는 방법으로서, 수용체 면역글로불린의 비-CDR 골격 아미노산 하나 이상을 공여체 면역글로불린에서 유래한 상응하는 아미노산으로 면역글로불린내의 하기의 위치에서 치환하는 것을 포함하는 방법:(a) 수용체 면역글로불린의 인간 골격부의 아미노산은 그 위치에서 드물고 공여체 면역글로불린내의 상응하는 아미노산이 인간 면역글로불린 서열내의 그 위치에서 일반적인 위치; (b) 아미노산이 상기 CDR's중의 하나에 바로 이웃한 위치; (c) 아미노산이 항원 또는 인간화된 면역글로불린의 CDR's과 상호작용할 수 있는 측쇄 원자를 가질 것으로 예상되는 위치.
  8. 제7항에 있어서, 기준(a),(b),(c)에 의해 선택된 공여체 면역글로불린의 아미노산에 의해 치환된 상기 비-CDR 골격 아미노산이 세 개 이상인 방법.
  9. 제8항에 있어서, 공여체로부터 치환된 하나 이상의 아미노산이 CDR에 바로 이웃한 방법.
  10. 제7항 내지 제9항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 인간화된 면역글로불린의 성숙 경쇄와 중쇄 가변부 단백질 서열이 제3도와 제4도의 성숙 단백질 서열에 상동성이거나 동일한 방법.
  11. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 의해 얻을 수 있는 인간화된 면역글로불린 쇄.
  12. 제7항 내지 제10항 중 어느 한 항에 따른 방법에 의해 얻어질 수 있는 인간화된 면역글로불린 쇄.
  13. 중쇄와 경쇄가 제11항 또는 제12항에 따른 쇄인 인간화된 면역글로불린.
  14. 인간-형 면역글로불린 비-CDR 골격부를 암호화하는 첫 번째 서열과 하나 또는 그 이상의 CDR's을 암호화하는 두 번째 서열을 포함하는 폴리뉴클레오티드로서 발현시 제11항 또는 제12항의 면역글로불린 쇄를 암호화하는 폴리뉴클레오티드.
  15. 제14항에 있어서, 발현시 제35항의 면역글로불린을 구성하는 쇄를 암호화하는 폴리뉴클레오티드.
  16. 제14항 또는 제15항의 폴리뉴클레오티드 또는 폴리뉴클레오티드들로 형질 감염된 세포주.
  17. 제13항에서 정의된 인간화된 면역글로불린을 제조하는 방법에 있어서, 제16항에 정의된 세포주를 배양하고 세포 배양 배지로부터 인간화된 면역글로불린을 분리하는 것을 포함하는 방법.
  18. T-세포 매개 질병 치료를 위한, 약학적으로 허용가능한 형태로 제제화된 제17항에 따른 인간화된 면역글로불린을 함유하는 약학 제제.
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