JP2012530088A - 二重特異性抗原結合タンパク質 - Google Patents

Abstract

二重特異性抗原結合タンパク質、それらの製造方法、該抗体を含有してなる薬学的組成物、及びその使用に関する。

Description

本発明は、二重特異性抗原結合タンパク質、それらの製造のための方法、該抗体を含有する薬学的組成物、及び使用に関する。

例えば、２つ以上の抗原に結合することが可能である二重又は多重特異性抗体等の操作されたタンパク質が、当技術分野で知られている。このような多重特異性結合タンパク質は、細胞融合、化学的結合、又は組換えＤＮＡ技術を使用して生成されることが可能である。

幅広い種類の組換え多重特異性抗体のフォーマットが近年開発されて来ており、例えば、ＩｇＧ抗体フォーマット及び単鎖ドメインの融合による四価二重特異性抗体等である（例えば、Coloma, M.J.等, Nature Biotech. 15 (1997) 159-163；国際公開第２００１／０７７３４２号; 及びMorrison, S.L., Nature Biotech. 25 (2007) 1233-1234を参照）。

また、抗体のコア構造（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、又はＩｇＭ）がもはや保たれていない、二以上の抗原に結合することが可能である例えばダイア、トリア、又はテトラボディ、ミニボディ、幾つかの単鎖フォーマット（ｓｃＦｖ、Ｂｉｓ-ｓｃＦｖ）等の幾つかの他の新しいフォーマットが開発されて来た（Holliger, P.等, Nature Biotech. 23 (2005) 1126-1136; Fischer, N., and Leger, O., Pathobiology 74 (2007) 3-14; Shen, J.等, J. Immunol. Methods 318 (2007) 65-74; Wu, C.等, Nature Biotech. 25 (2007) 1290-1297）。

全てのこのようなフォーマットは、抗体コア（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、又はＩｇＭ）を更なる結合タンパク質（例えば、ｓｃＦｖ）に融合させるか、又は例えば２つのＦａｂ断片又はｓｃＦｖを融合するためにリンカーを使用する（Fischer, N., and Leger, O., Pathobiology 74 (2007) 3-14）。リンカーが、二重特異性抗体の操作に利点を有するのは明らかである一方、それらは治療設定に問題も引き起こす。実際、これらの外来ペプチドは、リンカー自体又はタンパク質とリンカーとの間の接合部に対して免疫反応を誘発し得る。更には、これらのペプチドの可動性がそれらにタンパク質切断をより起こさせ易くさせ、潜在的に、乏しい抗体の安定性、凝集、及び増加された免疫原性へと導く。更に、例えば、自然に生じる抗体に対して高度の類似性を保つことによりＦｃ部に仲介される、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）又は抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）等のエフェクター機能を保持したい場合もあり得る。

従って、理想では、ヒト配列から最小の逸脱である、自然に生じる抗体（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、又はＩｇＭ等）に一般的な構造が非常に類似した二重特異性抗体を開発することを目的とする。

一アプローチでは、天然の抗体に非常に類似する二重特異性抗体は、二重特異性抗体の所望する特異性を有するネズミモノクローナル抗体を発現する２種の異なったハイブリドーマ細胞株の体細胞融合に基づいて、クアドローマ技術（Milstein, C, and Cuello, A.C., Nature 305 (1983) 537-40を参照のこと）を用いて生成されて来た。得られるハイブリッド-ハイブリドーマ（又はクアドローマ）内の２種の異なった抗体重及び軽鎖のランダム対合のために、１０種までの異なった抗体種（そのうち１つのみが所望の機能的二重特異性抗体である）が生成される。誤って対合された副産物の存在及び有意に低められた生成収率のために、高度な精製方法が必要とされる（Morrison, S. L., Nature Biotech 25 (2007) 1233-1234を参照のこと）。一般的に、誤って対合された副産物の同じ問題が、組換え発現技法が使用される場合、残存する。

「ノブ-インツゥ-ホール（knobs-into-holes）」として知られている、誤って対合された副産物の問題を回避するためのアプローチは、ＣＨ３ドメイン中に変異を導入し接合面を変性することにより、２種の異なった抗体重鎖の対合を強制することを目的とする。１つの鎖上の嵩のあるアミノ酸が、「ホール」を作るために、短い側鎖を有するアミノ酸により置換された。反対に、大きな側鎖を有するアミノ酸が、「ノブ」を創造するために、他のＣＨ３ドメイン中に導入された。それらの２種の重鎖（及び両重鎖のために適切であるべきである２種の同一の軽鎖）を同時発現することにより、高い収率のヘテロ二量体の形成（「ノブ-インツゥ-ホール」）対ホモ二量体形成（「ホール-ホール」又は「ノブ-ノブ」）が観察された（Ridgway, J.B.等, Protein Eng. 9 (1996) 617-621;及び国際公開第９６／０２７０１１号）。ヘテロ二量体の割合は、ファージ表示アプローチを用いて２種のＣＨ３ドメインの相互作用表面の改造、及びヘテロ二量体を安定化するためのジスルフィド架橋の導入により、さらに高められ得た（Merchant, A.M.等, Nature Biotech. 16 (1998) 677-681; Atwell, S.等, J. Mol. Biol. 270 (1997) 26-35）。ノブ-インツゥ-ホール技法のための新しいアプローチは例えば、欧州特許出願公開第１ ８７０ ４５９ Ａ１号に記載されている。この形は非常に魅力的であるように思われるが、クリニックへの進行を記載するデータは現在入手できない。この方法の１つの重要な制限は、誤対合及び不活性分子の形成を防止するために２種の親抗体の軽鎖が同一でならなければならないことである。従って、この技法は、これらの抗体の重鎖及び／又は同一の軽鎖が最適化されなければならないため、第一及び第二抗原に対する２つの抗体から始まる２つの抗原に対する組み換え二重特異性抗体を容易に開発するために適切ではない。

二重特異性抗体の調製における誤対合副生成物の問題を避けるための他の手法は、例えば国際公開２００１／０７７３４２に記載されるように、第一の抗原に特異的に結合し、第二の抗原に特異的に結合するその重鎖Ｎ末端２融合Ｆａｂフラグメントに融合させた完全長抗体を用いて、ヘテロ二量体からホモダイマーへ変換することである。この方策のある重要な不利益点は、ＦａｂフラグメントのＣＨ１−ＶＨドメインと完全長抗体の軽鎖との誤対合による、そして、完全長抗体のＣＨ１−ＶＨドメインとＦａｂフラグメント軽鎖との誤対合による望まれていない不活性な副生成物の形成である。

国際公開第２００６／０９３７９４号は、ヘテロ二量体タンパク質結合組成物に関する。国際公開第９９／３７７９１号は、多目的抗体誘導体を記載する。Morrison, S.L.等, J. Immunol. 160 (1998) 2802-2808は、ＩｇＧの機能的特性に対する可変領域ドメインの交換の影響に言及している。

本発明は、二重特異性抗原結合タンパク質であって、
ａ）第一の抗原に特異的に結合し、２つのＦａｂフラグメントを含む、抗体の２つの軽鎖及び２つの重鎖、と、
ｂ）第二の抗原に特異的に結合し、ａ）の重鎖又は軽鎖のＣ又はＮ末端にペプチドコネクターを介して両方が融合している、抗体の２つの更なるＦａｂフラグメントであって、このとき、このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている２つの更なるＦａｂフラグメント、
ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメント又はｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、又は、
ｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、
とを含んでなる、二重特異性抗原結合タンパク質を含む。

本発明の更なる実施態様は、本発明による抗原結合タンパク質の調製方法において、
ａ）本発明による二重特異性抗原結合タンパク質をコードする核酸分子を含んでなるベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程、
ｂ）前記抗体分子の合成を可能にする条件下で宿主細胞を培養する工程；及び
ｃ）前記培養物から前記抗体分子を回収する工程
を含んでなる方法である。
本発明の更なる実施態様は、本発明に係る抗原結合タンパク質をコードする核酸分子を含むベクターを含んでなる宿主細胞である。

本発明の更なる実施態様は、本発明に係る抗原結合タンパク質及び少なくとも一の薬学的に許容可能な賦形剤を含有する薬学的組成物である。

本発明の更なる実施態様は、治療上有効な量の本発明に係る抗原結合タンパク質を患者に投与することを特徴とする、治療を必要としている患者の治療方法である。

本発明によると、所望されない副生産物に対する所望の二重特異性抗原結合タンパク質の割合は、第一の抗原に特異的に結合する完全長抗体のＦａｂフラグメントにおける所定のドメインａ）及び／又は２つの更なる融合したＦａｂフラグメントにおけるｂ）の置換によって改善することができる。このようにして、間違ったＣＨ１−ＶＨドメインを有する軽鎖の所望されない誤対合を低減することができる。

典型的な順序の可変及び定常ドメインを含む２対の重鎖及び軽鎖を有する、第一の抗原１に特異的に結合するＣＨ４ドメインを持たない完全長抗体の模式的構造図。 ＣＨ１−ＶＨ鎖のＣ末端にペプチドコネクターを有する、第二の抗原２に特異的に結合する典型的な無修飾Ｆａｂフラグメントの模式的構造図。 ＣＨ１−ＶＨ鎖のＮ末端にペプチドコネクターを有する、第二の抗原２に特異的に結合する典型的な無修飾Ｆａｂフラグメントの模式的構造図。 第二の抗原２に特異的に結合するその重鎖２無修飾ＦａｂフラグメントのＮ末端に融合した、第一の抗原１に特異的に結合する完全長抗体の模式的構造図。 誤対合により望ましくない副生成物に特異的に結合するその重鎖２無修飾ＦａｂフラグメントのＮ末端に融合した、第一の抗原１に特異的に結合する完全長抗体の模式的構造図。 誤対合により望ましくない副生成物に特異的に結合するその重鎖２無修飾ＦａｂフラグメントのＮ末端に融合した、第一の抗原１に特異的に結合する完全長抗体の模式的構造図。 第一の抗原１に特異的に結合する完全長抗体のＦａｂフラグメントの所定のドメインａ）及び／又は第二の抗原２に特異的に結合する２つの更なる融合したＦａｂフラグメント抗体のｂ）の置換によって誤対合が低減されている本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質の模式的構造図。図４ａは、二重特異性抗原結合タンパク質を示す。 図４ｂ及び４ｃは、誤対合が低減されている本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質を生じる、完全長Ｆａｂフラグメント及び更なるＦａｂフラグメント内のＶＨ／ＶＬ及び／又はＣＨ１／ＣＬドメイン交換のすべての組み合わせを示す。 図４ｂ及び４ｃは、誤対合が低減されている本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質を生じる、完全長Ｆａｂフラグメント及び更なるＦａｂフラグメント内のＶＨ／ＶＬ及び／又はＣＨ１／ＣＬドメイン交換のすべての組み合わせを示す。 Ａｎｇ−２及びＶＥＧＦを認識する、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質の模式的構造図（実施例１）。 Ａｎｇ−２及びＶＥＧＦを認識する、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質の模式的構造図（実施例２）。 Ａｎｇ−２及びＶＥＧＦを認識する、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質の模式的構造図（実施例３）。

（本発明の詳細な説明）
本発明は、二重特異性抗原結合タンパク質であって、
ａ）第一の抗原に特異的に結合し、２つのＦａｂフラグメントを含む、抗体の２つの軽鎖及び２つの重鎖、と、
ｂ）第二の抗原に特異的に結合し、ａ）の重鎖のＣ又はＮ末端にペプチドコネクターを介して両方が融合している、抗体の２つの更なるＦａｂフラグメントであって、このとき、このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている２つの更なるＦａｂフラグメント、
ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメント又はｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
ｉｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、又は、
ｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、
とを含んでなる、二重特異性抗原結合タンパク質を含む。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、前記更なるＦａｂフラグメントがペプチドコネクターを介して、ａ）の重鎖のＣ末端又はａ）の重鎖のＮ末端に双方が融合しているという特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、前記更なるＦａｂフラグメントがペプチドコネクターを介して、ａ）の重鎖のＣ末端に双方が融合しているという特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、前記更なるＦａｂフラグメントがペプチドコネクターを介して、ａ）の重鎖のＮ末端に双方が融合しているという特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、
このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメント又はｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
という特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、
このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
という特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、
このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
という特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、
このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
ｉ）ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
という特徴がある。

本発明の一実施態様では、本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質は、
このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
ｉ）ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
という特徴がある。

本発明によると、所望されない副生産物（軽鎖と間違ったＣＨ１−ＶＨドメインとの誤対合による）に対する、所望の二重特異性抗原結合タンパク質の比率は、第一の抗原に特異的に結合する完全長抗体のＦａｂフラグメントにおける所定のドメインａ）及び／又は２つの更なる融合したＦａｂフラグメントにおけるｂ）の置換によって改善することができる。この連結における誤対合とは、ｉ）ａ）の完全長抗体の軽鎖とｂ）のＦａｂフラグメントのＣＨ１−ＶＨドメインとの結合、又はｉｉ）ｂ）のＦａｂフラグメントの軽鎖とａ）の完全長抗体のＣＨ１−ＶＨドメインとの結合（図３を参照）であって、望ましくない不活性又は完全には機能しない副生成物を生じるものを意味する。

ここで使用する「抗体」なる用語は、２つの重鎖及び２つの軽鎖から成る完全長抗体を意味する（図１を参照）。完全長抗体の重鎖は、抗体のＮ末端からＣ末端への方向で、ＶＨ-ＣＨ１-ＨＲ-ＣＨ２-ＣＨ３として省略される、重鎖可変ドメイン（ＶＨ）、抗体定常重鎖ドメイン１（ＣＨ１）、抗体ヒンジ領域（ＨＲ）、抗体重鎖定常ドメイン２（ＣＨ２）、及び抗体重鎖定常ドメイン３（ＣＨ３）；及び場合によっては、サブクラスＩｇＥの抗体の場合に抗体重鎖定常ドメイン４（ＣＨ４）から成る。好ましくは、完全長抗体の重鎖は、Ｎ末端からＣ末端への方向で、ＶＨ、ＣＨ１、ＨＲ、ＣＨ２、及びＣＨ３から成るポリペプチドである。完全長抗体の軽鎖は、抗体のＮ末端からＣ末端への方向で、ＶＬ-ＣＬとして省略される、軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）、及び抗体軽鎖定常ドメイン（ＣＬ）から成るポリペプチドである。抗体軽鎖定常ドメイン（ＣＬ）は、κ（カッパ）又はλ（ラムダ）が可能である。抗体鎖は、ＣＬドメイン及びＣＨ１ドメイン間（つまり、軽及び重鎖間）、及び完全長抗体重鎖のヒンジ領域間の、ポリペプチド間ジスルフィド結合によって共につながれている。典型的な完全長抗体の例は、ＩｇＧ（例えばＩｇＧ１及びＩｇＧ２）、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、及びＩｇＥの様な天然の抗体である。本発明による抗体は、例えばヒト等の単一の種からであり得、又はキメラ化又はヒト化抗体であり得る。本発明による完全長抗体は、一対のＶＨ及びＶＬによって各々形成される２つの抗原結合部位を含み、両者は同じ（第一）抗原に特異的に結合する。前記完全長抗体の重又は軽鎖のＣ末端は、前記重又は軽鎖のＣ末端の最後のアミノ酸を意味する。前記抗体は、重鎖のＶＨ及びＣＨ１ドメインと軽鎖のＶＬ及びＣＬドメインから成る２つの同一なＦａｂフラグメントを含む（図１及び２を参照）。

第二の抗原に特異的に結合する抗体の「更なるＦａｂフラグメント」（図２参照）とは、前記第二抗体の重鎖のＶＨ及びＣＨ１ドメインと軽鎖のＶＬ及びＣＬドメインから成る更なるＦａｂフラグメントを指す。更なるＦａｂフラグメントは、非修飾型（図３参照）で、重鎖部分（ＣＨ１又はＶＨドメイン）を介して、第一の抗原に特異的に結合する抗体の重鎖又は軽鎖のＣ又はＮ-末端に融合している。

本発明内で使用される「ペプチドコネクター」なる用語は、好ましくは合成起点（synthetic origin）の、アミノ酸配列を有するペプチドを意味する。本発明によるこれらのペプチドコネクターは、抗原結合ペプチドを完全長及び／又は修飾完全長抗体鎖のＣ又はＮ末端に融合し、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質を形成するために使用される。好ましくは、ｃ）における前記ペプチドコネクターは、少なくとも５アミノ酸の長さ、好ましくは５から１００の長さ、より好ましくは１０から５０アミノ酸であるアミノ酸配列を有するペプチドである。一実施態様では、前記ペプチドコネクターは、（ＧｘＳ）ｎ又は（ＧｘＳ）ｎＧｍであり、Ｇ＝グリシン、Ｓ＝セリン、及び（ｘ＝３、ｎ＝３、４、５、又は６、及びｍ＝０、１、２、又は３）又は（ｘ＝４、ｎ＝２、３、４、又は５、及びｍ＝０、１、２、又は３）、好ましくはｘ＝４及びｎ＝２又は３、より好ましくはｘ＝４、ｎ＝２である。一実施態様では、前記ペプチドコネクターは（Ｇ_４Ｓ）_２である。

ここで使用される「結合部位」又は「抗原結合部位」なる用語は、リガンド（例えば、抗原又はその抗原断片）が実際結合し、且つ抗体分子又はその断片（例えば、Ｆａｂフラグメント）から得られる本発明に係る抗原結合タンパク質の領域を意味する。本発明に係る抗原結合部位は、抗体重鎖可変ドメイン（ＶＨ）及び抗体軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）を含む。

所望の抗原に特異的に結合する抗原結合部位（すなわち、ＶＨ／ＶＬの対）は、ａ）該抗原に対する既知の抗体から、又はｂ）特に抗原タンパク質又は核酸又はその断片の何れかを使用したデノボ免疫法によって、又はファージディスプレイによって得られる新規な抗体又は抗体断片から得られる。

本発明の抗原結合タンパク質の抗原結合部位は、６つの相補決定領域（ＣＤＲ）を含み、これらは抗原に対する結合部位の親和性の程度の変化に貢献する。３つの重鎖可変ドメインＣＤＲ（ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、及びＣＤＲＨ３）及び３つの軽鎖可変ドメインＣＤＲ（ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、及びＣＤＲＬ３）がある。ＣＤＲ及びフレームワーク領域（ＦＲ）の範囲は、配列での多様性によって該領域が決定されたアミノ酸配列の蓄積データベースと比較することによって決定される。

抗体特異性は、抗原の特定のエピトープに対する抗体又は抗原結合タンパク質の選択的認識を意味する。天然抗体は、例えば単一特異性である。二重特異性抗体は、２つの異なる抗原結合特異性を有する抗体である。抗体が一を超える特異性を有する場合は、認識されるエピトープは、単一抗原又は一を超える抗原に関連し得る。

ここで使用される「単一特異性」抗体又は抗原結合タンパク質なる用語は、各々が同じ抗原の同じエピトープに結合する一又は複数の結合部位を有する抗原結合タンパク質を意味する。

本出願内で使用される「価」なる用語は、抗体分子における特定の数の結合部位の存在を意味する。例として天然抗体又は本発明による完全長抗体は、２つの結合部位を有し２価である。「３価」なる用語は、抗原結合タンパク質において４つの結合部位の存在を意味する。ここで使用される「３価、３特異性」なる用語は、２つが別の抗原（又は抗原の別のエピトープ）に結合する４つの抗原結合部位を有する、本発明に係る抗原結合タンパク質を意味する。本発明の抗原結合タンパク質は、４つの結合部位を有し、四価である。

本発明の完全長抗体は、一又は複数の免疫グロブリンクラスの、免疫グロブリン定常領域を含む。免疫グロブリンクラスは、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、及びＩｇＥアイソタイプ、及びＩｇＧ及びＩｇＡの場合はそれらのサブタイプを含む。好ましい実施態様では、本発明の完全長抗体は、ＩｇＧ型抗体の定常ドメイン構造を有する。

ここで使用される「モノクローナル抗体」又は「モノクローナル抗体組成物」なる用語は、単一のアミノ酸組成物の抗体又は抗体又は抗原結合タンパク質分子の調製物を意味する。

「キメラ抗体」なる用語は、１つの源又は種からの可変領域、すなわち結合領域と、異なる源又は種に由来する定常領域の少なくとも一部とを含んでなる抗体を意味し、通常組換えＤＮＡ法により調製される。ネズミ可変領域及びヒト定常領域を含んで成るキメラ抗体が好ましい。本発明により包含される他の形の「キメラ抗体」は、定常領域が、本発明の性質を生成するために修飾されているか又は元の抗体のその領域から変更されているものであって、特にはＣ１ｑ結合及び／又はＦｃ受容体（ＦｃＲ）結合に関する。そのようなキメラ抗体はまた、「クラス-スイッチ抗体」とも称される。キメラ抗体は、免疫グロブリン可変領域をコードするＤＮＡセグメント、及び免疫グロブリン定常領域をコードするＤＮＡセグメントを含んで成る、発現された免疫グロブリン遺伝子の生産物である。キメラ抗体を生成するための方法は一般的な組換えＤＮＡを含み、遺伝子トランスフェクション技術は当該分野において良く知られている。例えば、Morrison, S.L.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81 (1984) 6851-6855、米国特許第５２０２２３８号及び米国特許第５２０４２４４号を参照のこと。

「ヒト化抗体」なる用語は、そのフレームワーク又は「相補性決定領域」（ＣＤＲ）が、親免疫グロブリンのＣＤＲに比較して、異なった特異性の免疫グロブリンのＣＤＲを含んで成るよう修飾されている抗体を意味する。好ましい態様においては、ネズミＣＤＲは、「ヒト化抗体」を調製するために、ヒト抗体のフレームワーク領域中に移植される。例えば、Riechmann, L.等, Nature 332 (1988) 323-327；及びNeuberger, M.S.等, Nature 314 (1985) 268-270を参照のこと。特に好ましいＣＤＲは、キメラ抗体について上記の抗原を認識する配列を表すものに対応する。本発明により包含される他の形の「キメラ抗体」は、定常領域が、本発明の性質を生成するために修飾されているか又は元の抗体のその領域から変更されているものであって、特にはＣ１ｑ結合及び／又はＦｃ受容体（ＦｃＲ）結合に関する。

「ヒト抗体」なる用語は、本明細書において使用される場合、ヒト生殖系免疫グロブリン配列に由来する可変及び定常領域を有する抗体を包含することを意図する。ヒト抗体は当技術分野の水準において周知である（van Dijk, M.A., and van de Winkel, J.G., Curr. Opin. Chem. Biol. 5 (2001) 368-374）。ヒト抗体はまた、トランスジェニック（遺伝子導入）動物（例えば、マウス）においても生成され得り、これは、内因性免疫グロブリンを生産することなく、免疫化に基づいてヒト抗体の完全なレパートリー又はセレクションを生産することが可能である。そのような生殖系変異体マウスにおけるヒト生殖系免疫グロブリン遺伝子アレイのトランスファーは、抗原チャレンジおいてヒト抗体の生成をもたらすであろう（例えば、Jakobovits, A.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 (1993) 2551-2555; Jakobovits, A.等, Nature 362 (1993) 255-258; Bruggemann, M.等, Year Immunol. 7 (1993) 33-40を参照のこと）。ヒト抗体はまた、ファージディスプレイライブラリーにおいても生成され得る（Hoogenboom, H.R., and Winter, G., J. Mol. Biol. 227 (1992) 381-388; Marks, J.D.等, J. Mol. Biol. 222 (1991) 581-597）。Cole等及びBoerner等の技法はまた、ヒトモノクローナル抗体の調製のためにも利用できる（Cole, S., P., C.等, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, p. 77-96 (1985); 及び Boerner, P.等, J. Immunol. 147 (1991)86-95）。本発明のキメラ及びヒト化抗体についてすでに言及されたように、用語「ヒト抗体」とは、本明細書において使用される場合、本発明による特性を生成するために定常領域において修飾されたこのような抗体を含み、特にＣ１ｑ結合及び／又はＦｃＲ結合に関し、例えば「クラススイッチ」つまりＦｃ部の変化又は変異による（例えば、ＩｇＧ１からＩｇＧ４及び／又はＩｇＧ１／ＩｇＧ４変異）。

「組換えヒト抗体」なる用語は、本明細書において使用される場合、組換え手段によって調製、発現、製造、又は単離される全てのヒト抗体を含むことを意図し、例えば、ＮＳ０又はＣＨＯ細胞等の宿主細胞から又はヒト免疫グロブリン遺伝子トランスジェニックである動物（例えば、マウス）から単離された抗体、又は宿主細胞中にトランスフェクトされた組換え発現ベクターを用いて発現された抗体等である。このような組換えヒト抗体は、再配列された形で可変及び定常領域を有する。本発明の組換えヒト抗体は、インビボで体細胞超変異に課された。従って、組換え抗体のＶＨ及びＶＬ領域のアミノ酸配列は、ヒト生殖系ＶＨ及びＶＬ領域に由来しその配列に関連するが、インビボでヒト抗体生殖系レパートリー内に自然に存在することはないだろう。

「可変ドメイン」（軽鎖の可変ドメイン（ＶＬ）、重鎖の可変領域（ＶＨ））は、本明細書において使用される場合、抗原への抗体の結合において直接関与する軽鎖及び重鎖の対の個々を示す。ヒト可変軽及び重鎖のドメインは、同じ一般構造を有し、そして個々のドメインは４つのフレームワーク（ＦＲ）領域を含んで成り、それらの配列は広く保存され、３つの「高頻度可変領域」（又は相補性決定領域、ＣＤＲ）により結合される。フレームワーク領域は、βシートコンホメーションを採用し、そしてＣＤＲはβシート構造体を結合するループを形成することができる。個々の鎖におけるＣＤＲは、フレームワーク領域によりそれらの３次元構造を保持され、そして他の鎖からのＣＤＲと共に抗原結合部位を形成する。抗体重及び軽鎖ＣＤＲ３領域は、本発明の抗体の結合特異性／親和性において特に重要な役割を演じ、そして従って、本発明のさらなる目的を提供する。

「高頻度可変領域」又は「抗体の抗原結合部分」なる用語は、本明細書において使用される場合、抗原結合に関与する抗体のアミノ酸残基を言及する。高頻度可変領域は「相補性決定領域」又は「ＣＤＲ」からのアミノ酸残基を含んで成る。「フレームワーク」又は「ＦＲ」領域は、本明細書において定義されるように高頻度可変領域残基以外のそれらの可変ドメイン領域である。従って、抗体の軽鎖及び重鎖は、Ｎ-末端からＣ-末端の方に、ドメインＦＲｌ、ＣＤＲｌ、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３及びＦＲ４を含む。個々の鎖上のＣＤＲはそのようなフレームワークアミノ酸により分離される。特に、重鎖のＣＤＲ３は、最も抗原結合に寄与する領域である。ＣＤＲ及びＦＲ領域は、Kabat等, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)の標準の定義に従って決定される。

本明細書において使用される場合、「結合する」又は「特異的に結合する」なる用語は、インビトロアッセイでの抗原のエピトープに対する抗体の結合を意味し、好ましくは精製された野生型の抗原を用いたプラズモン共鳴アッセイ（BIAcore, GE-Healthcare Uppsala, Sweden）における。結合の親和性は、用語ｋ_ａ（抗体／抗原複合体からの抗体（又は抗体又は抗原結合タンパク質）の結合に対する速度定数）、ｋ_Ｄ（解離定数）、及びＫ_Ｄ（ｋ_Ｄ／ｋａ）によって定義される。結合する又は特異的に結合するとは、１０^-８ｍｏｌ／ｌ以下、好ましくは１０^-９Ｍから１０^-１３ｍｏｌ／ｌの結合親和性（Ｋ_Ｄ）を意味する。したがって、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、各抗原に対して１０^-８ｍｏｌ／ｌ以下、好ましくは１０^-９Ｍから１０^-１３ｍｏｌ／ｌの結合親和性（Ｋ_Ｄ）で特異的に結合する。

ＦｃγＲＩＩＩ に対する抗体の結合は、ＢＩＡｃｏｒｅアッセイ（GE-Healthcare Uppsala, Sweden）によって調べることが出来る。結合の親和性は、用語ｋａ（抗体／抗原複合体からの抗体の結合に対する比率定数）、ｋ_Ｄ（解離定数）、及びＫ_Ｄ（ｋ_Ｄ／ｋａ）によって定義される。

「エピトープ」なる用語は、抗体に特異的に結合できるあらゆるポリペプチド決定基を包含する。ある実施態様においては、エピートープ決定基は、例えばアミノ酸、糖側鎖、ホスホリル又はスルホニル等の分子の化学的活性表面群を包含し、ある実施態様においては、特定の三次元構造特性及び／又は特定の電荷特性を有し得る。エピトープは、抗体によって結合される抗原の領域である。

ある実施態様では、抗体は、タンパク質及び／又は高分子の複合混合物においてその標的抗原を優先的に認識する場合、抗原を特異的に結合すると言われる。

更なる実施態様では、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、前記完全長抗体が、ヒトＩｇＧ１サブクラス、又は変異Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを有するヒトＩｇＧ１サブクラスのものであることを特徴とする。

更なる実施態様では、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質体は、前記完全長抗体が、ヒトＩｇＧ２サブクラスのものであることを特徴とする。

更なる実施態様では、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、前記完全長抗体が、ヒトＩｇＧ３サブクラスのものであることを特徴とする。

更なる実施態様では、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、前記完全長抗体が、ヒトＩｇＧ４サブクラス、又は追加変異Ｓ２２８Ｐを有するヒトＩｇＧ４サブクラスのものであることを特徴とする。

好ましくは、本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、前記完全長抗体が、ヒトＩｇＧ１サブクラス、追加変異Ｓ２２８Ｐを有するヒトＩｇＧ４サブクラスのものであることを特徴とする。

本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、例えば生物学的又は薬物学的活性、薬物動態特性、又は毒性等の改善された特性を持つことが現在分かっている。これらは、例えば癌などの疾病の治療のため等に使用されることが可能である。

本出願内で使用される「定常領域」なる用語は、可変領域以外の抗体のドメインの合計を意味する。定常領域は、抗原の結合に直接は関与しないが、様々なエフェクター機能を示す。それらの重鎖の定常領域のアミノ酸配列によって、抗体はクラス：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、及びＩｇＭに分けられ、これらの内幾つかは、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、及びＩｇＧ４、ＩｇＡ１及びＩｇＡ２等のサブクラスに更に分けられる。抗体の異なるクラスに対応する重鎖定常領域は、それぞれα、δ、ε、γ、及びμと呼ばれる。全５抗体クラスに見られる軽鎖定常領域（ＣＬ）はκ（カッパ）及びλ（ラムダ)と呼ばれる。

本出願で使用される「ヒト由来の定常領域」なる用語は、サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、及びＩｇＧ４のヒト抗体の定常重鎖領域、及び／又は定常軽鎖カッパ又はラムダ領域を意味する。このような定常領域は、現状の当技術分野でよく知られており、また例えばKabat, E.A., (例えばJohnson, G.及びWu, T.T., Nucleic Acids Res. 28 (2000) 214-218；Kabat, E.A.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 72 (1975) 2785-2788を参照)によって記載されている。

ＩｇＧ４サブクラスの抗体は、低減されたＦｃ受容体（ＦｃγＲＩＩＩａ）結合を示すが、他のＩｇＧサブクラスの抗体は強い結合を示す。しかしながら、Ｐｒｏ２３８、Ａｓｐ２６５、Ａｓｐ２７０、Ａｓｎ２９７（Ｆｃ炭水化物の損失）、Ｐｒｏ３２９、Ｌｅｕ２３４、Ｌｅｕ２３５、Ｇｌｙ２３６、Ｇｌｙ２３７、Ｉｌｅ２５３、Ｓｅｒ２５４、Ｌｙｓ２８８、Ｔｈｒ３０７、Ｇｌｎ３１１、Ａｓｎ４３４、及びＨｉｓ４３５は、変更されれば、同様に低減されたＦｃ受容体結合を提供する残基である（Shields, R.L.等, J. Biol. Chem. 276 (2001) 6591-6604；Lund, J.等, FASEB J. 9 (1995) 115-119；Morgan, A.等, Immunology 86 (1995) 319-324；欧州特許第０３０７４３４号）。

一実施態様では、本発明による抗原結合タンパク質は、ＩｇＧ１抗体と比較して低減されたＦｃＲ結合を持ち、完全長親抗体は、ＦｃＲ結合においては、ＩｇＧ４サブクラスのもの、又はＳ２２８、Ｌ２３４、Ｌ２３５及び／又はＤ２６５に変異を有するＩｇＧ１又はＩｇＧ２のものであり、及び／又はＰＶＡ２３６変異を有する。一実施態様では、完全長親抗体の変異は、Ｓ２２８Ｐ、Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ、Ｌ２３５Ｅ、及び／又はＰＶＡ２３６である。別の実施態様では、完全長親抗体の変異は、ＩｇＧ４ Ｓ２２８Ｐ、及びＩｇＧ１ Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａにある。

抗体の定常領域は、ＡＤＣＣ（抗体依存性細胞傷害）及びＣＤＣ（補体依存性細胞傷害）に直接関与する。補体活性（ＣＤＣ）は、ほとんどのＩｇＧ抗体サブクラスの、定常領域への補体因子Ｃｌｑの結合によって開始される。抗体へのＣｌｑの結合は、いわゆる結合部位での所定のタンパク質-タンパク質相互作用によって引き起こされる。このような定常領域結合部位は、現在の当該技術分野で周知であり、例えばLukas, T.J.等, J. Immunol. 127 (1981) 2555-2560; Bunkhouse, R.及びCobra, J.J., Mol. Immunol. 16 (1979) 907-917; Burton, D.R.等, Nature 288 (1980) 338-344; Thomason, J.E.等, Mol. Immunol. 37 (2000) 995-1004; Idiocies, E.E.等, J. Immunol. 164 (2000) 4178-4184; Hearer, M.等, J. Virol. 75 (2001) 12161-12168；Morgan, A.等, Immunology 86 (1995)319-324；及び欧州特許出願公開第０３０７４３４号等に記載されている。このような定常領域結合部位は、例えばアミノ酸Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ｅ３１８、Ｋ３２０、Ｋ３２２、Ｐ３３１、及びＰ３２９（番号付けはカバットのＥＵインデックスに従う）によって特徴付けられる。

「抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）」なる用語は、エフェクター細胞の存在下における、本発明の抗原結合タンパク質によるヒト標的細胞の溶解を意味する。ＡＤＣＣは、エフェクター細胞、例えば、新鮮に単離されたＰＢＭＣ、又は単球もしくはナチュラルキラー（ＮＫ）細胞または持続的に増殖するＮＫ細胞株のような、バフィーコートから精製されたエフェクター細胞等の存在下で、抗原発現細胞の調製物を本発明による抗原結合タンパク質で処理することによって測定される。

「補体依存性傷害（ＣＤＣ）」なる用語は、ほとんどのＩｇＧ抗体サブクラスの、Ｆｃ部への補体因子Ｃ１ｑの結合によって開始される過程を意味する。抗体へのＣ１ｑの結合は、いわゆる結合部位での、規定のタンパク質-タンパク質相互作用によって引き起こされる。このようなＦｃ部結合部位は、現在の当該技術分野で知られている（上記参照）。このようなＦｃ結合部位は、例えば、アミノ酸Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ｅ３１８、Ｋ３２０、Ｋ３２２、Ｐ３３１、及びＰ３２９によって特徴づけられる（番号付けはカバットのＥＵインデックスに従う）。サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２、及びＩｇＧ３の抗体は通常Ｃ１ｑ及びＣ３結合を含む補体活性を示すが、ＩｇＧ４は、補体系を活性化せず、Ｃ１ｑ及び／又はＣ３を結合しない。

モノクローナル抗体の細胞媒介エフェクターの機能は、Umana, P.等, Nature Biotechnol. 17 (1999) 176-180；及び米国特許第６６０２６８４号に記載されるように、それらのオリゴ糖成分を操作することにより強化されることが出来る。最も一般的に使用される治療抗体であるＩｇＧ１型抗体は、各ＣＨ２ドメインのＡｓｎ２９７に、保存されたＮ結合型グリコシル化部位を有する糖タンパク質である。Ａｓｎ２９７に結合した２つの複合二分岐型オリゴ糖はＣＨ２ドメインの間に埋め込まれ、ポリペプチド骨格との広範な接触を形成し、またそれらの存在は抗体が抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ)等のエフェクター機能を仲介するために必須である(Lifely, M., R.等, Glycobiology 5 (1995) 813-822; Jefferis, R.等, Immunol. Rev. 163 (1998) 59-76; Wright, A., and Morrison, S.L., Trends Biotechnol. 15 (1997) 26-32). Umana, P.等, Nature Biotechnol. 17 (1999) 176-180及び国際公開第９９／５４３４２号は、チャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)細胞におけるβ(１、４)-Ｎ-アセチルグルコサミン転移酵素ＩＩＩ(ＧｎＴＩＩＩ)(バイセクト化オリゴ糖の形成を触媒するグリコシル転移酵素)の過剰発現が、インビトロでの抗体のＡＤＣＣ活性を顕著に上昇させることを示した。また、Ｎ２９７における糖質の構成の変更又はその除去は、ＦｃγＲ及びＣ１ｑとの結合に影響する(Umana, P.等, Nature Biotechnol. 17 (1999) 176-180; Davies, J.等, Biotechnol. Bioeng. 74 (2001) 288-294; Mimura, Y.等, J. Biol. Chem. 276 (2001) 45539-45547; Radaev, S.等, J. Biol. Chem. 276 (2001) 16478-16483; Shields, R.L.等, J. Biol. Chem. 276 (2001) 6591-6604; Shields, R.L.等, J. Biol. Chem. 277 (2002) 26733-26740; Simmons, L.C.等, J. Immunol. Methods 263 (2002) 133-147)。

モノクローナル抗体の細胞媒介エフェクター機能を増強させる方法は、例えば、国際公開第２００５／０１８５７２号、国際公開第２００６／１１６２６０号、国際公開第２００６／１１４７００号、国際公開第２００４／０６５５４０号、国際公開第２００５／０１１７３５号、国際公開第２００５／０２７９６６号、国際公開第１９９７／０２８２６７号、米国特許第２００６／０１３４７０９号、米国特許第２００５／００５４０４８号、米国特許第２００５／０１５２８９４号、国際公開第２００３／０３５８３５号、国際公開第２０００／０６１７３９号に報告されている。

本発明の一好ましい実施態様では、二重特異性抗原結合タンパク質は、（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、又はＩｇＧ４サブクラス、好ましくはＩｇＧ１又はＩｇＧ３サブクラスのＦｃ部を含む場合は）Ａｓｎ２９７において糖鎖でグリコシル化され、これにより前記糖鎖内のフコースの量が６５％またはそれ以下である（番号付けはカバットに従う）。別の実施態様では、前記糖鎖内のフコースの量は５％から６５％の間であり、好ましくは２０％から４０％の間である。本発明による「Ａｓｎ２９７」は、Ｆｃ領域における約位置２９７に位置するアミノ酸アスパラギンを意味する。抗体の小さい配列変異に基づき、Ａｓｎ２９７は、位置２９７の数アミノ酸（通常は多くて±３アミノ酸）上流又は下流、つまり位置２９４と３００の間に位置してもよい。一実施態様では、本発明によるグリコシル化抗原結合タンパク質は、ＩｇＧサブクラスは、ヒトＩｇＧ１サブクラス、変異Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを有するヒトＩｇＧ１サブクラス、又はＩｇＧ３サブクラスのものである。更なる実施態様では、前記糖鎖内の、Ｎ-グリコリルノイラミン酸（ＮＧＮＡ）の量は１％もしくはそれ以下であり及び／又はＮ末端α-1,3-ガラクトースの量は１％もしくはそれ以下である。糖鎖は好ましくは、ＣＨＯ細胞において組換えによって発現させた抗体のＡｓｎ２９７に結合したＮ結合型グリカンの特徴を示す。

「糖鎖は、ＣＨＯ細胞において組換えによって発現させた抗体のＡｓｎ２９７に結合したＮ結合型グリカンの特徴を示す」という用語は、本発明による完全長親抗体のＡｓｎ２９７における糖鎖が、フコース残基以外は、未改変ＣＨＯ細胞において発現させた同じ抗体のもの、例えば国際公開第２００６／１０３１００号に報告されるものと同じ構造および糖残基配列を有するということを意味する。

「ＮＧＮＡ」なる用語は、本出願内で使用される場合、糖残基Ｎ-グリコリルノイラミン酸を意味する。

ヒトＩｇＧ１またはＩｇＧ３のグリコシル化は、フコシル化二分岐複合型コアオリゴ糖としてＡｓｎ２９７で発生し、その際、グリコシル化は最高２個のＧａｌ残基で終結する。ＩｇＧ１又はＩｇＧ３サブクラスのヒト定常重鎖領域は、Kabat, E., A.等, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD. (1991), and by Bruggemann, M.等, J. Exp. Med. 166 (1987) 1351-1361; Love, T., W.等, Methods Enzymol. 178 (1989) 515-527によって詳細に報告されている。これらの構造物は、末端Ｇａｌ残基の量に応じて、Ｇ０、Ｇ１（α-１,６-もしくはα-１,３-)、又はＧ２グリカン残基と名付けられている(Raju, T., S., Bioprocess Int. 1 (2003) 44-53)。抗体Ｆｃ部分のＣＨＯ型グリコシル化は、例えば、Routier, F. H., Glycoconjugate J. 14 (1997) 201-207によって説明されている。糖改変していない(non-glycomodified)CHO宿主細胞において組換えによって発現される抗体は、通常、少なくとも８５％の量がＡｓｎ２９７においてフコシル化されている。完全長親抗体の修飾されたオリゴ糖は、ハイブリッド又は複合体であり得る。好ましくは、分岐型、還元／非グリコシル化オリゴ糖は、ハイブリッドである。別の実施態様では、分岐型、還元／非グリコシル化オリゴ糖は、複合体である。

本発明によれば、「フコースの量」とはＡｓｎ２９７での糖鎖内の前記糖の量を意味し、Ａｓｎ２９７に付着した全ての糖鎖構造物（例えば、複合体構造物、ハイブリッド構造物、及び高マンノース構造物等)の合計に関連し、ＭＡＬＤＩ-ＴＯＦ質量分析法によって測定され、平均値として算出される。フコースの相対量は、ＭＡＬＤＩ-ＴＯＦによる、Ｎ-グリコシダーゼＦで処理された試料において同定された全糖鎖構造物(例えば、それぞれ複合体構造物、ハイブリッド構造物、ならびにオリゴマンノース構造物、および高マンノース構造物)に関連するフコース含有構造物の割合である。

本発明による抗原結合タンパク質は組換え手段によって生産される。このように、本発明の一態様は、本発明による抗原結合タンパク質をコードする核酸であり、更なる態様は、本発明による抗原結合タンパク質をコードする前記核酸を含んでなる細胞である。組換え生産の方法は当技術分野の水準（state of the art）において広く知られており、原核及び真核細胞におけるタンパク質の発現と続く抗原結合タンパク質の単離及び通常は薬物学的に許容可能な純度までの精製を含む。宿主細胞における前述した抗体の発現のために、それぞれ修飾された軽及び重鎖をコードする核酸が標準的な方法によって発現ベクターに挿入される。ＣＨＯ細胞、ＮＳ０細胞、ＳＰ２／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＯＳ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、酵母、又は大腸菌細胞等の適切な原核又は真核宿主細胞において発現が実施され、細胞(上清又は溶解後の細胞)から抗原結合タンパク質が回収される。抗体の組換え生産のための一般的な方法は当技術分野の水準において周知であり、例えば、Makrides, S.C., Protein Expr. Purif. 17 (1999) 183-202; Geisse, S.等, Protein Expr. Purif. 8 (1996) 271-282; Kaufman, R.J., Mol. Biotechnol. 16 (2000) 151-161; Werner, R.G., Drug Res. 48 (1998) 870-880といった総説論文に記載されている。

本発明による二重特異性抗原結合タンパク質は、一般的な免疫グロブリン精製手順、例えば、プロテインＡ-セファロース、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、またはアフィニティークロマトグラフィーなどによって、培地から適宜分離される。モノクローナル抗体をコードするＤＮＡ又はＲＮＡは、一般的な手順を用いて容易に単離され配列決定される。ハイブリドーマ細胞は、このようなＤＮＡおよびＲＮＡの供給源として機能することができる。一度単離されると、ＤＮＡは発現ベクターに挿入され得、次いで他には免疫グロブリンタンパク質を生産さいない例えばＨＥＫ２９３細胞、ＣＨＯ細胞、メラノーマ細胞等の宿主細胞にトランスフェクトされ、宿主細胞において組換えモノクローナル抗体の合成が得られる。

二重特異性抗原結合タンパク質のアミノ酸配列変異体（又は変異）は、抗原結合タンパク質ＤＮＡに適切なヌクレオチド変化を導入することによって、又はヌクレオチド合成によって調製される。このような修飾は実施されることが可能であるが、しかしながら、例えば上述のような非常に限定された範囲においてのみである。例えば、修飾は、ＩｇＧアイソタイプ及び抗原結合等の上述の抗体特性を変更しないが、組換え生産の収率、タンパク質安定を改善し得、又は精製を容易にし得る。

本出願において使用される「宿主細胞」なる用語は、本発明による抗体を生成するよう操作されることが可能である細胞系の何れかの種を意味する。一実施態様では、ＨＥＫ２９３細胞及びＣＨＯ細胞が宿主細胞として使用される。ここで使用される場合、「細胞」、「細胞株」、及び「細胞培養物」なる表現は互換的に使用され、全てのこのような指定は子孫を含む。従って、「形質転換体」及び「形質転換された細胞」なる用語は転換の数に関係無く、一次対象細胞及びそれら由来の培養物を含む。また、全ての子孫細胞が、故意の又は偶発的な変異のためにＤＮＡ内容において正確に同一ではないかもしれないことが理解される。本来形質転換された細胞のためにスクリーニングされたものと同じ機能又は生物学的活性を持つ変異体子孫細胞が含まれる。

ＮＳ０細胞における発現は、例えばBarnes, L.M.等, Cytotechnology 32 (2000) 109-123; Barnes, L.M.等, Biotech. Bioeng. 73 (2001) 261-270によって記載されている。一過性発現は、Durocher, Y.等, Nucl. Acids. Res. 30 (2002) E9によって記載されている。可変ドメインのクローニングは、Orlandi, R.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1989) 3833-3837; Carter, P.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89 (1992) 4285-4289; and Norderhaug, L.等, J. Immunol. Methods 204 (1997) 77-87によって記載されている。好ましい一過性発現システム（ＨＥＫ ２９３）は、Schlaeger, E.-J., 及びChristensen, K., in Cytotechnology 30 (1999) 71-83及びSchlaeger, E.-J., J. Immunol. Methods 194 (1996) 191-199によって記載されている。

原核細胞に適した制御配列には、例えば、プロモーター、場合によってはオペレーター配列、及びリボソーム結合部位が含まれる。真核細胞は、プロモーター、エンハンサー、及びポリアデニル化シグナルを使用することが知られている。

核酸は、別の核酸配列と機能的関係で配置されている場合、「作用可能に連結」されている。例えば、プレ配列または分泌リーダーのＤＮＡは、ポリペプチドの分泌に関与するプレタンパク質として発現される場合、そのポリペプチドのＤＮＡに機能的に連結されており；プロモーターまたはエンハンサーは、コード配列の転写に影響を及ぼす場合、そのコード配列に機能的に連結されており；又は、リボソーム結合部位は、翻訳を促進するように配置されている場合、コード配列に機能的に連結されている。一般に、「作用可能に連結される」とは、連結されるＤＮＡ配列が近接していていること、分泌リーダーの場合は、近接し、且つリーディングフレーム中にあることを意味する。しかしながら、エンハンサーは近接していなくてもよい。連結は、簡便な制限部位におけるライゲーションによって達成される。このような部位が存在しない場合には、合成オリゴヌクレオチドアダプター又はリンカーが、一般的な手法に従って使用される。

抗体の精製は、細胞成分又は他の混入物、例えば他の細胞核酸又はタンパク質等を除去するために実施され、アルカリ／ＳＤＳ法、ＣｓＣｌ分染法（CsCl banding）、カラムクロマトグラフィー、アガロースゲル電気泳動、及び当該技術で周知の他の方法を含む標準技術によって実施される。例えばAusubel, F.等編 Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing and Wiley Interscience, New York (1987)を参照のこと。タンパク質精製のための異なる方法が確立されまた広く使用されており、例えば、微生物タンパク質を用いたアフィニティークロマトグラフィー（例えばタンパク質Ａ又はタンパク質Ｇアフィニティークロマトグラフィー）、イオン交換クロマトグラフィー（例えば陽イオン交換（カルボキシメチル樹脂、陰イオン交換（アミノエチル樹脂）、及び混床式（mixed-mode）交換）、チオール基吸着（thiophilic adsorption）（例えばβメルカプトエタノール及び他のＳＨリガンドを用いて）、疎水性相互作用又は芳香族吸着クロマトグラフィー（例えば、フェニル-セファロース、アザ-アレノフィリック樹脂、又はｍ-アミノフェニルボロン酸を用いて）、金属キレートアフィニティークロマトグラフィー（例えば、Ｎｉ（ＩＩ)-及びＣｕ（ＩＩ）-アフィニティー材料を用いる）、サイズ排除クロマトグラフィー、及び電気泳動法（ゲル電気泳動、キャピラリー泳動等）（Vijayalakshmi, M.A., Appl. Biochem. Biotech. 75 (1998) 93-102）等である。

本発明の一態様は、本発明による抗原結合タンパク質を含む薬学的組成物である。本発明の別の態様は、薬学的組成物を製造するための、本発明による抗原結合タンパク質の使用である。本発明の更なる態様は、本発明による抗原結合タンパク質を含有する薬学的組成物を製造するための方法である。別の態様では、本発明は、薬学的担体と合わせて製剤化された本発明に係る抗原結合タンパク質を含む組成物、例えば、薬学的組成物を提供する。

本発明の別の態様は、癌の治療のための前記薬学的組成物である。

本発明の一実施態様は、癌の治療のための本発明に係る二重特異性抗原結合タンパク質である。

本発明の別の態様は、癌の治療のための医薬の製造のための本発明に係る抗原結合タンパク質の使用である。

本発明の別の態様は、癌を患っている患者の治療の方法であって、このような治療を必要とする患者に本発明に係る抗原結合タンパク質を投与する方法である。

ここで使用される場合、「薬学的担体」は、生理学的に適合性のある、ありとあらゆる溶剤、分散媒、コーティング、抗菌及び抗真菌剤、等張及び吸収遅延剤、及び同様なもの含む。好ましくは、担体は、静脈内、筋肉内、皮下、非経口、脊髄又は表皮投与（例えば、注射又は注入による）に適したものである。

本発明の組成物は当該技術知られる様々な様式によって投与されることができる。当業者によって理解されるように、投与のルート及び／又は方法は所望される結果によって様々であろう。投与の特定のルートによって本発明の化合物を投与するために、その不活性化を防止するための物質で化合物をコーティング、又は化合物と共に同時投与される必要があり得る。例えば、化合物はリポソーム又は希釈剤等の適切な担体において投与され得る。薬物学的に許容可能な希釈剤は、生理食塩水及び緩衝水溶液を含む。薬物学的担体は、滅菌水溶液又は分散系、及び滅菌注射用溶液又は分散系の即時調製のための滅菌パウダーを含む。薬物学的に活性な物質のためのこのような媒体及び薬剤の使用は当技術分野で公知である。

「非経口投与」および「非経口的に投与される」という語句は、本明細書において使用される場合、経腸及び局所の投与以外の投与様式を意味し、通常は注射によって、及び静脈内、筋肉内、動脈内、くも膜下腔内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、被膜下、くも膜下、脊髄内、硬膜外、及び胸骨内の注射および注入を含むが、これに限定されるものではない。

癌なる用語は、ここで使用される場合、増殖性疾病を意味し、例えばリンパ腫、リンパ球性白血病、肺癌、非小細胞肺（ＮＳＣＬ）癌、細気管支肺胞（bronchioloalviolar）細胞肺癌、骨癌、膵癌、皮膚癌、頭部又は頸部癌、皮膚又は眼内黒色腫、子宮癌、卵巣癌、直腸癌、肛門部癌、胃癌（stomach cancer）、胃癌（gastric cancer）、大腸癌、乳癌、子宮癌、卵管の癌、子宮内膜の癌、頸部の癌、膣の癌、外陰部の癌、ホジキン病、食道癌、小腸癌、内分泌系癌、甲状腺癌、上皮小体癌、副腎癌、軟部組織の肉腫、尿道癌、陰茎癌、前立腺癌、膀胱癌、腎臓又は尿管癌、腎臓細胞癌、腎盂の癌、中皮腫、肝細胞性癌、胆道癌、中枢神経系（ＣＮＳ）の新生物、脊髄軸腫瘍、脳幹神経膠腫、多形神経膠芽腫、星状細胞腫、神経鞘腫、上衣腫（ependymonas）、髄芽細胞腫、髄膜腫、扁平上皮癌、下垂体性腺腫及びユーイング肉腫等であり、上記の癌の何れかの難治性のもの、又は上記の癌の一又は複数のの組合せを含む。

本発明による組成物はまた、保存剤、湿潤剤、乳化剤、及び分散剤などの補助剤も含んでよい。微生物の存在の防止は、上記の滅菌手順、及び例えばパラベン、クロロブタノール、フェノール、及びソルビン酸等の様々な抗菌及び抗真菌剤の含有両方によって徹底することが出来る。また、糖、塩化ナトリウム、及び同様なもの等張化剤を組成物中に含めることが望ましい場合もあり得る。更に、注射可能な薬剤形態の長期にわたる吸収は、モノステアリン酸アルミニウム及びゼラチン等の吸収を遅延させる薬剤の含有によって実現され得る。

選択された投与ルートに関わらず、適切な水和型で使用され得る本発明の化合物、及び／又は本発明の薬学的組成物は、当業者に公知である一般的な方法によって薬学的に許容可能な剤形に製剤化される。

本発明の薬学的組成物中の活性成分の実際の投薬量レベルは、患者に毒性とならずに、個々の患者、組成物、及び投与様式にとって望ましい治療応答を達成するのに有効である活性成分の量を得るように変更することができる。選択される投薬量レベルは、使用される本発明の特定の組成物の活性、投与経路、投与時間、使用される特定の化合物の排出速度、治療の継続期間、使用される特定の組成物と組み合わせて使用される他の薬物、化合物、及び／又は材料、治療される患者の年齢、性別、体重、状態、全体的健康状態、及び以前の病歴、並びに医薬分野で周知である同様な要因を含む様々な薬物動態学的要因に依存すると考えられる。

該組成物は、無菌であり、且つ、注射器によって組成物を送達可能である程度に流動性でなければならない。水に加えて、担体は好ましくは等張性の緩衝生理食塩水である。

適切な流動性は、例えば、レシチンのようなコーティング剤の使用、分散系の場合には必要な粒径の維持、及び界面活性剤の使用によって維持することができる。多くの場合、等張化剤、例えば糖、マンニトール又はソルビトール等の多価アルコール、及び塩化ナトリウムを組成物中に含むことが好ましい。

ここで使用される場合、「細胞」、「細胞株」及び「細胞培養物」なる表現は互換的に使用され、全てのこのような指定は子孫を含む。従って、「形質転換体」及び「形質転換された細胞」なる用語は転換の数に関係無く、一次対象細胞及びそれら由来の培養物を含む。また、全ての子孫細胞が、故意の又は偶発的な変異のためにＤＮＡ内容において正確に同一ではないかもしれないことが理解される。本来形質転換された細胞のためにスクリーニングされたものと同じ機能又は生物学的活性を持つ変異体子孫細胞が含まれる。異なる指定が意図される場合は、文脈から明らかとなるであろう。

「形質転換」なる用語は、本明細書において使用される場合、宿主細胞中へのベクター／核酸のトランスファー工程を言及する。強い細胞壁バリヤーを有さない細胞が宿主細胞として使用される場合、トランスフェクションが、例えばGraham, F., L.及びVan der Eb, A., J., Virology 52 (1973) 456-467により記載されるようなリン酸カルシウム沈殿方法等により実施される。しかしながら、核注入又はプロトプラスト融合等による細胞中へのＤＮＡの導入のための他の方法がまた使用され得る。原核細胞、又は実質的な細胞壁構成を含む細胞が使用される場合、１つのトランスフェクション方法は、Cohen, S., N.等, PNAS 69 (1972) 2110-2114により記載されるような、塩化カルシウムを用いるカルシウム処理法である。

本明細書において使用される場合、「発現」とは、核酸がｍＲＮＡに転写される過程、及び／又は転写されたｍＲＮＡ（また、転写物としても言及される）がその後ペプチド、ポリペプチド又はタンパク質に翻訳される過程を言及する。転写物及びコードされたポリペプチドは、集合的には、遺伝子生成物として言及される。ポリヌクレオチドがゲノムＤＮＡに由来する場合、真核細胞における発現は、ｍＲＮＡのスプライシングを包含し得る。

「ベクター」とは、挿入される核酸分子を、宿主細胞中に及び／又は宿主細胞間にトランスファーする、核酸分子、特に自己複製する核酸分子である。この用語は、ＤＮＡ又はＲＮＡの細胞中への挿入（例えば、染色体組込み）のために主に機能するベクター、ＤＮＡ又はＲＮＡの複製のために主に機能するベクターの複製、及びＤＮＡ又はＲＮＡの転写及び／又は翻訳のために機能する発現ベクターを包含する。一以上の記載されるような機能を提供するベクターもまた包含される。

「発現ベクター」とは、適切な宿主細胞中に導入される場合、転写され、そしてポリペプチドに翻訳され得るポリヌクレオチドである。「発現系」とは、所望する発現生成物を生成するために機能することができる発現ベクターから構成される適切な宿主細胞を通常言及する。

以下の実施例、配列リスト、及び図は本発明の理解を補助するために提供され、真の範囲は添付の請求の範囲に記載されている。発明の意図することから逸脱することなく、記載される手順において変更がなされてもよいことが理解される。

配列表の説明
配列番号：１ 修飾したＦａｂフラグメント（ＣＨ１−ＣＬ置換）のＶＨ−ＣＬドメイン＜ＶＥＧＦ＞がＣ末端融合した非修飾重鎖＜Ａｎｇ-２＞
配列番号：２ 修飾したＦａｂフラグメント（ＣＨ１−ＣＬ置換）のＶＬ−ＣＨ１ドメイン＜ＶＥＧＦ＞
配列番号：３ 非修飾軽鎖＜Ａｎｇ-２＞
配列番号：４ 修飾したＦａｂフラグメント（ＣＨ１−ＣＬ置換）のＶＨ−ＣＬドメイン＜ＶＥＧＦ＞がＮ末端融合した非修飾重鎖＜Ａｎｇ-２＞
配列番号：５ 非修飾ＦａｂフラグメントのＶＨ−ＣＨ１ドメイン＜Ａｎｇ-２＞がＣ末端融合した修飾した重鎖（ＣＨ１−ＣＬ置換）＜ＶＥＧＦ＞

材料及び一般方法
ヒト免疫グロブリン軽及び重鎖のヌクレオチド配列に関する一般情報は、Kabat, E.A.等, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5版, Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)に与えられている。抗体鎖のアミノ酸はＥＵ番号付けに従って、番号付けされまた言及される（Edelman, G.M.等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 63 (1969) 78-85；Kabat, E.A.等, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)）。

組換えＤＮＡ技法
標準的な方法がＤＮＡを操作するために使用され、Sambrook, J.等, Molecular Cloning: A laboratory manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989に記載される。分子生物学的試薬が、製造業者の指示に従い使用される。

遺伝子合成
所望する遺伝子セグメントを、化学合成により製造されたオリゴヌクレオチドから調製する。単一の制限エンドヌクレアーゼ切断部位を両端に有する、遺伝子セグメントを、ＰＣＲ増幅を包含するオリゴヌクレオチドのアニーリング及びライゲーションによりアセンブリーし、続いて、例えばＫｐｎＩ／ＳａｃＩ又はＡｘＩ／ＰａｃＩ等の示された制限部位によって、ｐＰＣＲスクリプト（Stratagene）に基づくｐＧＡ４クローニングベクター中にクローン化する。サブクローン化された遺伝子断片のＤＮＡ配列を、ＤＮＡ配列決定により確かめる。遺伝子合成断片を、Geneart (Regensburg, Germany)での得られる規格に従ってオーダーする。

ＤＮＡ配列決定
ＤＮＡ配列を、MediGenomix GmbH(Martinsried, Germany) 又はSequiserve GmbH(Vaterstetten, Germany)で実施される二本鎖配列決定により決定する。

ＤＮＡ及びタンパク質配列分析及び配列データ管理
GCG (Genetics Computer Group, Madison, Wisconsin)のsoftware package version 10.2及びInfomax'のVector NTl Advance suite version 8.0を、配列作製、マッピング、分析、アノテーション及び図解のために使用する。

発現ベクター
所望の二重特異性四価抗体の発現のために、ＣＭＶ-イントロンＡプロモーター有り又は無しのｃＤＮＡ構成又はＣＭＶプロモーター有りのゲノム構成の何れかに基づく一過性発現（例えば、ＨＥＫ２９３ ＥＢＮＡ又はＨＥＫ２９３-Ｆ）細胞に対する発現プラスミドの変異体が適用される。
抗体発現カセットの他に、ベクターは次のものを含んだ：
−大腸菌においてこのプラスミドの複製を可能にする複製の起点、及び
−大腸菌においてアンピシリン耐性を付与するβ-ラクタマーゼ遺伝子。

抗体遺伝子の転写ユニットは次の要素から構成される：
−５’末端のユニーク制限部位、
−ヒトサイトメガロウィルスからの最初期エンハンサー及びプロモーター、
−ｃＤＮＡ構成の場合、続くイントロンＡ配列、
−ヒト抗体遺伝子の５’-非翻訳領域、
−免疫グロブリン重鎖シグナル配列、
−ｃＤＮＡとしての又は免疫グロブリンエキソン-イントロン構成を有するゲノム構成としてのヒト二重特異性四価抗体鎖（野生型、又はドメイン交換を有する）、
−ポリアデニル化シグナル配列を有する３’未翻訳領域、及び
−３’末端のユニーク制限部位。

下記に記載される所望の抗体鎖を含んで成る融合遺伝子を、ＰＣＲ及び／又は遺伝子合成により生成し、例えばそれぞれのベクターにおける固有の制限部位を用いて、核酸セグメントの結合により、既知組換え方法及び技法によりアセンブリーした。サブクローン化された核酸配列を、ＤＮＡ配列決定により確証する。一過性トランスフェクションのために、多量のプラスミドを、形質転換された大腸菌培養物（Nucleobond AX, Macherey-Nagel）からのプラスミド調製物により調製する。

細胞培養技法
標準の細胞培養技法を、Current Protocols in Cell Biology (2000), Bonifacino, J.S., Dasso, M., Harford, J.B., Lippincott-Schwartz, J.及びYamada, K.M. (編), John Wiley & Sons, Incに記載されるように使用する。
二重特異性四価抗体を、接着的に増殖するＨＥＫ２９３-ＥＢＮＡにおける、又は下記のような懸濁液において増殖するＨＥＫ２９-Ｆ細胞における、それぞれ３つの発現プラスミドの一過性同時トランスフェクションにより発現させる。

ＨＥＫ２９３-ＥＢＮＡシステムにおける一過性トランスフェクション
二重特異性四価抗体を、１０％極低（Ultra Low）ＩｇＧ ＦＣＳ（ウシ胎児血清, Gibco（登録商標）)、２ｍＭＬ-グルタミン (Gibco（登録商標）)及び２５０μｇ／ｍｌジェネティシン(Gibco（登録商標）)が補足されたＤＭＥＭ（ダルベッコ変性イーグル培地（Dulbecco’s modified Eagle’s medium）、Gibco（登録商標））において培養された、付着的に増殖するＨＥＫ２９３-ＥＢＮＡ細胞（エプスタイン-バールウィルス核抗原を発現するヒト胎児腎臓細胞系２９３；ＡＴＣＣ（American type culture collection）寄託番号ＣＲＬ-１０８５２、ロット９５９２１８）におけるそれぞれ３つの発現プラスミド（例えば、Ｈ鎖及び修飾されたＨ鎖、及びその対応するＬ鎖及び修飾されたＬ鎖をコードする）の一過性同時トランスフェクションにより発現させる。トランスフェクションのために、ＦｕＧＥＮＥ^ＴＭ６トランスフェクション 試薬 (Roche Molecular Biochemicals)を、４：１（３：１〜６：１の範囲）のＦｕＧＥＮＥ^ＴＭ試薬（μｌ）：ＤＮＡ（μｇ）の比率で使用する。タンパク質を、それぞれ、１：１：１（等モル）（１：１：２〜２：２：１の範囲）のモル比の（修飾された及び野生型）Ｌ鎖コードのプラスミド：Ｈ鎖コードのプラスミドを用いて、それぞれのプラスミドから発現させる。細胞は、３日目に、Ｌグルタミン（４ｍＭ）、グルコース（Sigma）及びＮＡＡ（Gibco（登録商標））を供給する。二重特異性四価抗体含有細胞培養上清液を、遠心分離により、トランスフェクションの５〜１１日後、収穫し、そして−２０℃で貯蔵した。例えばＨＥＫ２９３細胞におけるヒト免疫グロブリンの組換え発現に関する一般情報は、Meissner, P.等, Biotechnol. Bioeng. 75 (2001) 197-203に与えられる。

ＨＥＫ２９３-Ｆシステムにおける一過性トランスフェクション
他方では、二重特異性四価抗体を、ＨＥＫ２９３-Ｆシステム（Invitrogen）を用いて、その製造業者の指示に従って、それぞれのプラスミド（例えば、Ｈ鎖及び修飾されたＨ鎖、及びその対応するＬ鎖及び修飾されたＬ鎖をコードする）の一過性トランスフェクションにより生成する。手短に言及すると、血清を有さないＦｒｅｅＳｔｙｌｅ^ＴＭ２９３発現培地（Invitrogen）を含む、振盪フラスコ又は撹拌された発酵器において増殖するＨＥＫ２９３-Ｆ細胞（Invitrogen）を、上記３つの発現プラスミド及び２９３フェクチン^ＴＭ又はフェクチン（Invitrogen）の混合物によりトランスフェクトした。２Ｌの振盪フラスコ（Corning）に関しては、ＨＥＫ２９３-Ｆ細胞を、６００ｍｌにおいて１．０Ｅ^＊６個の細胞／ｍｌの密度で播き、そして１２０ｒｐｍ、８％ＣＯ２下でインキュベートする。この後、細胞を、Ａ）修飾された重鎖、対応する軽鎖、及びその対応する修飾された軽鎖を等モル比でコードする全プラスミドＤＮＡ（１μｇ／ｍｌ）６００μｇを含むＯｐｔｉ-ＭＥＭ（Invitrogen）２０ｍｌ、及びＢ）２０ｍｌのＯｐｔｉ-ＭＥＭ＋１．２ｍｌの２９３フェクチン又はフェクチン（２μｌ／ｍｌ）の混合物（約４２ｍｌ）により、約１．５×Ｅ^＊６個の細胞／ｍｌの細胞密度でトランスフェクトする。グルコース消費に従って、グルコース溶液を、発酵の間、添加する。分泌された抗体を含む上清液を、５〜１０日後、収穫し、そして抗体を上清液から直接的に精製するか、又は上清液を凍結し、そして貯蔵する。

タンパク質決定
精製された二重特異性四価抗体及び誘導体のタンパク質濃度を、Pace,C.,N.等, Protein Science, 1995, 4, 2411-1423に従うアミノ酸配列に基づいて計算されたモル消衰係数を用いて、２８０ｎｍでの光学密度（ＯＤ）を決定することにより決定する。

上清における抗体濃度決定
細胞培養上清液における二重特異性四価抗体の濃度を、プロテインＡアガロースビーズ（Roche）による免疫沈澱法により推定する。６０μｌのプロテインＡアガロースビーズを、ＴＢＳ-ＮＰ４０（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、ｐＨ７．５、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１％ Ｎｏｎｉｄｅｔ-Ｐ４０）により３度、洗浄する。続いて、１〜１５ｍｌの細胞培養上清液を、ＴＢＳ-ＮＰ４０において予備-平衡化されたプロテインAアガロースビーズに適用する。室温での１時間のインキュベーションの後、ビーズを、Ultrafree-MC-filterカラム(Amicon)上で、０．５ｍｌのＴＢＳ-ＮＰ４０により１度、０．５ｍｌの２×リン酸緩衝溶液（２×ＰＢＳ、Roche）により、２度、及び０．５ｍｌの1００ｍＭのクエン酸ナトリウム（ｐＨ５．０）により、すばやく４度、洗浄する。結合された抗体は、３５μｌのＮｕＰＡＧＥ（商標）ＬＤＳ サンプル緩衝液 (Invitrogen)の添加により溶出する。サンプルの半分を、それぞれＮｕＰＡＧＥ（商標）サンプル還元剤と共に組合すか、又は末還元のままにし、そして７０℃で１０分間、加熱する。続いて、５−３０μｌを、４−１２％ ＮｕＰＡＧＥ（商標）Ｂｉｓ-Ｔｒｉｓ ＳＤＳ-ＰＡＧＥ(Invitrogen)（還元されていないＳＤＳ-ＰＡＧＥのためにはＭＯＰＳ緩衝液、及び還元されたＳＤＳ-ＰＡＧＥのためには、ＮｕＰＡＧＥ（商標） 抗酸化ランニング緩衝液添加剤（Invitrogen）と共にＭＥＳ緩衝液を用いる）に適用し、そしてクーマシーブルーにより染色した。

細胞培養上清液における二重特異性四価抗体の濃度を、親和性ＨＰＬＣクロマトグラフィーにより定量的に測定する。手短に言及すると、プロテインＡに結合する抗体及び誘導体を含む細胞培養上清液を、２００ｍＭのＫＨ２ＰＯ４、１００ｍＭのクエン酸ナトリウム（ｐＨ７．４）を含むApplied Biosystems Poros A/20カラムに適用し、そしてAgilent HPLC1100システム上で、２００ｍＭのＮａＣｌ、１００ｍＭのクエン酸（ｐＨ２．５）によりマトリックスから溶出する。溶出されたタンパク質を、ＵＶ吸光度及びピーク領域の積分により定量化する。精製された標準のＩｇＧ１抗体が、標準として作用した。

他方では、細胞培養上清液における二重特異性四価抗体の濃度を、Sandwich-IgG-ELISAにより測定する。手短に言及すれば、StreptaWell High Bind Strepatavidin A-96 ウエルマイクロタイタープレート (Roche)を、１００μｌ／ウェルのビオチニル化された抗ヒトＩｇＧ捕獲分子Ｆ（ａｂ’）２＜ｈ-Ｆｃγ＞ＢＩ(Dianova)により、０．１μｇ／ｍｌで室温で１時間、又は他方では、４℃で一晩、被覆し、そして続いて、２００μｌ／ウェルのＰＢＳ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ（ＰＢＳＴ、Sigma）により３度、洗浄する。それぞれの抗体含有細胞培養上清液のＰＢＳ（Sigma）中、希釈溶液シリーズ１００μｌを、ウェル当たり添加し、そして室温でマイクロタイタープレートシェーカー上で１〜２時間インキュベートする。ウェルを、２００μｌ／ウェルのＰＢＳＴにより３度、洗浄し、そして結合された抗体を、室温でマイクロタイタープレートシェーカー上で１〜２時間、検出抗体として、０．１μｇ／ｍｌでの１００μｌのＦ（ａｂ’）２＜ｈＦｃγ＞ＰＯＤ(Dianova)により検出する。結合されなかった検出抗体を、２００μｌ／ウェルのＰＢＳＴにより３度、洗浄し、そして結合された検出抗体を、１００μｌのＡＢＴＳ／ウェルの添加により検出する。吸光度の決定を、４０５ｎｍの測定波長（４９２ｎｍの参照波長）でTecan Fluor分光計上で実施する。

タンパク質精製
タンパク質を、標準プロトコールに従って、濾過された細胞培養上清液から精製する。手短に言及すると、二重特異性四価抗体を、プロテインＡセファロースカラム（GE healthcare）に適用し、そしてＰＢＳにより洗浄する。二重特異性四価抗体の溶出を、ｐＨ２．８で達成し、続いてすぐに、サンプルを中和する。凝集されたタンパク質を、ＰＢＳ又は２０ｍＭのヒスチジン、１５０ｍＭのＮａＣｌ（ｐＨ６．０）中、サイズ排除クロマトグラフィー（Superdex 200, GE Healthcare）により、モノマー抗体から分離する。モノマー画分をプールし、必要なら、例えばMILLIPORE Amicon Ultra (30 MWCO)遠心分離濃縮機を用いて濃縮し、凍結し、そして−２０℃〜−８０℃で貯蔵する。サンプルの一部を、例えばＳＤＳ-ＰＡＧＥ、サイズ排除クロマトグラフィー又は質量分光法による、続くタンパク質の分析及び分析特徴化に用いる。

ＳＤＳ-ＰＡＧＥ
ＮｕＰＡＧＥ（登録商標）Ｐｒｅ-Ｃａｓｔゲルシステム(Invitrogen)を、その製造業者の指示に従って使用する。特に、１０％又は４〜１２％のＮｕＰＡＧＥ（登録商標）Ｎｏｖｅｘ（登録商標）Ｂｉｓ-ＴＲＩＳ Ｐｒｅ-Ｃａｓｔゲル（ｐＨ６．４）及びＮｕＰＡＧＥ（登録商標）ＭＥＳ（ＮｕＰＡＧＥ（登録商標）抗酸化剤ランニング緩衝液添加剤により還元されたゲル）又はＭＯＰＳ（還元されていないゲル）ランニング緩衝液を使用する。

分析用サイズ排除クロマトグラフィー
二重特異性四価抗体の凝集及びオリゴマー状態の決定のためのサイズ排除クロマトグラフィーを、ＨＰＬＣクロマトグラフィーにより実施する。手短に言及すると、プロテインＡ精製された抗体を、Agilent HPLC 1100システム上、３００ｍＭのＮａＣｌ、５０ｍＭのＫＨ２ＰＯ４／Ｋ２ＨＰＯ４（ｐＨ７．５）中、Tosoh TSKgel G3000SWカラムに、又はDionex HPLC-システム上、２×ＰＢＳ中、Superdex 200 カラム (GE Healthcare)に適用する。溶出されたタンパク質を、ＵＶ吸光度及びピーク領域の積分により定量化する。BioRad Gel Filtration Standard 151-1901を標準とした。

質量分光法
二重特異性四価抗体の全体の脱グリコシル化された質量を、電子噴霧イオン化質量分析（ＥＳＩ-ＭＳ）により、決定し、そして確かめる。手短に言及すると、１００μｇの精製された抗体を、１００ｍＭのＫＨ２ＰＯ４／Ｋ２ＨＰＯ４（ｐＨ７）中、５０ｍＵのN-Glycosidase F (PNGaseF, ProZyme)により、３７℃で１２〜２４時間、２ｍｇ／ｍｌまでのタンパク質濃度で脱グリコシル化し、そして続いてSephadex G25カラム(GE Healthcare)上、ＨＰＬＣにより脱塩する。それぞれの修飾した重鎖、軽鎖及び修飾した軽鎖の質量を、脱グリコシル化及び還元の後、ＥＳＩ-ＭＳにより決定する。手短に言及すると、１１５μｌ中、５０μｇの二重特異性四価抗体を、６０μｌの１ＭのＴＣＥＰ及び５０μｌの８Ｍのグアニジン塩酸塩と共にインキュベートし、続いて脱塩する。還元されたＨ及びＬ鎖の合計質量及び質量を、NanoMate源を備えたQ-Star Elite MSシステム上でＥＳＩ-ＭＳにより決定する。

ＶＥＧＦ結合ＥＬＩＳＡ
二重特異性四価抗体の結合性質を、完全長ＶＥＧＦ１６５-Ｈｉｓタンパク質(R&D Systems)によるＥＬＩＳＡアッセイにおいて評価する。このために、ファルコンポリスチレン透明増強マイクロタイタープレートを、１００μｌのＰＢＳ中２μｇ／ｍＬ組換えヒトＶＥＧＦ１６５(R&D Systems)にて室温で２時間又は４℃で終夜かけてコートする。ウェルを３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、２００μｌの２％ＢＳＡ ０．１%ツイーン２０にて室温で３０分かけてブロックし、その後３００μｌのＰＢＳＴにて３回洗浄する。１００μＬ／ウェルの精製した二重特異性四価抗体のＰＢＳでの希釈物(Sigma)をウェルに加え、マイクロタイタープレート振とう器上で室温で１時間インキュベートする。ウェルは３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、結合した抗体は、１００μＬ／ウェルの０．１μｇ／ｍｌ Ｆ(ａｂ')<ｈＦｃｇａｍｍａ>ＰＯＤ (Immuno research)を含む２％ＢＳＡ ０．１%ツイーン２０を検出抗体として用いて、マイクロタイタープレート振とう器上で室温で１時間かけて検出する。結合していない検出抗体は３００μＬ／ウェルのＰＢＳＴにて３回洗い流し、結合した検出抗体は１００μＬのＡＢＴＳ／ウェルを添加して検出する。吸光度の測定は、４０５ｎｍ(対照波長４９２ｎｍ)の測定値波長のＴｅｃａｎＦｌｕｏｒ分光計にて実行する。

ＶＥＧＦ結合：表面プラスモン共鳴(Ｂｉａｃｏｒｅ)による３７℃のＶＥＧＦ結合の動態学的特徴づけ
ＥＬＩＳＡの所見を更に確認するために、ＶＥＧＦに対する二重特異性四価抗体の結合を、以下のプロトコールに従ってＢｉａｃｏｒｅＴ１００機器による表面プラズモン共鳴技術を用いて定量的に分析し、Ｔ１００ソフトウェアパッケージを用いて分析する。手短に言及すると、二重特異性四価抗体は、ヤギ抗ヒトＩｇＧ(ＪＩＲ１０９−００５−０９８)へ結合させてＣＭ5-チップに捕捉する。捕捉抗体は、以下の通りに標準的なアミノカップリングを使用したアミノカップリングによって固定される。ＨＢＳ-Ｎバッファをランニングバッファとして用い、７００ＲＵのリガンド密度となるようにＥＤＣ／ＮＨＳを混合して活性化する。捕捉-抗体はカップリングバッファＮａＡｃ、ｐＨ５．０、ｃ＝２μｇ／ｍＬにて希釈し、最後に、また活性化されているカルボキシル基は１Ｍエタノールアミンを注入して遮断する。二重特異性四価<ＶＥＧＦ>抗体の捕捉は、ランニングバッファ＋１ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡにて希釈し、５μＬ／分及びｃ＝１０ｎＭの流量で行う。およそ３０ＲＵの捕捉レベルになるようにする。ｒｈＶＥＧＦ(ｒｈＶＥＧＦ、R&D-Systems Cat.-No, 293-VE)を被分析物として用いる。二重特異性四価<ＶＥＧＦ>抗体に対するＶＥＧＦ結合の動態学的特徴づけは、ＰＢＳ＋０．００５％(ｖ／ｖ)ツイーン２０をランニングバッファとして２５℃又は３７℃で実行する。試料は、５０μＬ／分の流量、８０秒の会合時間、１２００秒の解離時間で、及び３００− ０．２９ｎＭのｒｈＶＥＧＦの濃度シリーズを注入する。遊離捕捉抗体表面の再生は、各々の被分析物サイクルの後に１０ｍＭグリシンｐＨ１．５および６０秒の接触時間にて実施する。反応速度定数は、標準的なダブルレファレンス法を用いて算出する(コントロール対照：捕捉分子ヤギ抗ヒトＩｇＧへのｒｈＶＥＧＦの結合、測定フローセル上のブランク、ｒｈＶＥＧＦ濃度「０」、モデル：ラングミュア結合１：１(Ｒｍａｘは捕捉分子結合のために局所に合わせる)。

Ａｎｇ-２結合ＥＬＩＳＡ
二重特異性四価抗体の結合性質を、完全長Ａｎｇ-２-Ｈｉｓタンパク質(R&D Systems)を用いたＥＬＩＳＡアッセイにおいて評価する。このために、ファルコンポリスチレン透明増強マイクロタイタープレートを、１００μｌのＰＢＳ中１μｇ／ｍＬ組換えヒトＡｎｇ−２(R&D Systems、キャリアフリー)にて室温で２時間又は４℃で終夜かけてコートする。ウェルを３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、２００μｌの２％ＢＳＡ ０．１%ツイーン２０にて室温で３０分かけてブロックし、その後３００μｌのＰＢＳＴにて３回洗浄する。１００μＬ／ウェルの精製した二重特異性四価抗体のＰＢＳでの希釈物(Sigma)をウェルに加え、マイクロタイタープレート振とう器上で室温で１時間インキュベートする。ウェルは３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、結合した抗体は、１００μＬ／ウェルの０．１μｇ／ｍｌ Ｆ(ａｂ')<ｈｋ>ＰＯＤ (Biozol Cat.No. 206005)を含む２％ＢＳＡ ０．１%ツイーン２０を検出抗体として用いて、マイクロタイタープレート振とう器上で室温で１時間かけて検出する。結合していない検出抗体は３００μＬ／ウェルのＰＢＳＴにて３回洗い流し、結合した検出抗体は１００μＬのＡＢＴＳ／ウェルを添加して検出する。吸光度の測定は、４０５ｎｍ(対照波長４９２ｎｍ)の測定値波長のＴｅｃａｎＦｌｕｏｒ分光計にて実行する。

Ａｎｇ-２結合ＢＩＡＣＯＲＥ
ヒトＡｎｇ-２に対する二重特異性四価抗体の結合は、ＢＩＡＣＯＲＥ Ｔ１００機器(GE Healthcare Biosciences AB, Uppsala, Sweden)を使用した表面プラスモン共鳴によって調査する。手短に言及すると、親和性の測定のために、ヤギ<ｈＩｇＧ-Ｆｃ>ポリクローナル抗体を、ヒトＡｎｇ-２に対する二重特異性四価抗体の提示のためにアミンカップリングによりＣＭ５チップに固定する。ＨＢＳバッファ（ＨＢＳ−Ｐ（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．００５％ツイーン２０、ｐＨ７．４）中、２５℃で、結合を測定した。様々な濃度の精製したＡｎｇ-２-Ｈｉｓ(R&D systems又はインハウス精製)を溶液に加える。会合は３分のＡｎｇ-２-注入によって測定し、解離は、ＨＢＳバッファにてチップ表面を３分間洗浄することによって測定し、ＫＤ値は１:１ラングミュア結合モデルを用いて推定する。Ａｎｇ-２調製物が不均質であるため、１：１結合が観察されないこともある。ゆえに、ＫＤ値は単に相対的な評価である。ネガティブコントロールデータ(例えばバッファ曲線)は、系の内因性の基線変動の補正、及び、ノイズシグナルを低減するために試料曲線から減算する。ＢｉａｃｏｒｅＴ１００評価バージョン１.１.１を、センサーグラムの分析、及び、親和性データの計算のために用いる。別法として、Ａｎｇ-２は、アミンカップリング(ＢＳＡフリー)によりＣＭ５チップに固定されているペンタＨｉｓ抗体(ペンタＨｉｓ-Ａｂ ＢＳＡフリー、Qiagen No. 34660)により、２０００−１７００ＲＵの捕捉レベルで捕えることができる(下記参照)。

Ａｎｇ-２-ＶＥＧＦブリッジングＥＬＩＳＡ
二重特異性四価抗体の結合性質を、結合した二重特異性抗体の検出のために固定した完全長ＶＥＧＦ１６５-Ｈｉｓタンパク質(R&D Systems)およびヒトＡｎｇ-２-Ｈｉｓタンパク質(R&D Systems)を用いたＥＬＩＳＡアッセイにおいて評価する。二重特異性四価<ＶＥＧＦ-Ａｎｇ-２>抗体のみがＶＥＧＦおよびＡｎｇ-２に同時に結合し２つの抗原を架橋することができるが、単一特異性「標準」ＩｇＧ１抗体はＶＥＧＦおよびＡｎｇ-２に同時に結合することができない(図７)。
このために、ファルコンポリスチレン透明増強マイクロタイタープレートを、１００μｌのＰＢＳ中２μｇ／ｍＬ組換えヒトＶＥＧＦ１６５(R&D Systems)にて室温で２時間又は４℃で終夜かけてコートする。ウェルを３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、２００μｌの２％ＢＳＡ ０．１%ツイーン２０にて室温で３０分かけてブロックし、その後３００μｌのＰＢＳＴにて３回洗浄する。１００μＬ／ウェルの精製した二重特異性四価抗体のＰＢＳでの希釈物(Sigma)をウェルに加え、マイクロタイタープレート振とう器上で室温で１時間インキュベートする。ウェルは３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、結合した抗体は、１００μｌの０．５μｇ／ｍｌ ヒトＡｎｇ-２-Ｈｉｓ(R&D Systems)を含むＰＢＳを加えて検出する。ウェルは３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗浄し、結合したＡｎｇ-２は、１００μｌの０．５μｇ／ｍｌ ＜Ａｎｇ-２＞ｍＩｇＧ１-ビオチン抗体(BAM0981, R&D Systems)にて室温で１時間かけて検出する。結合していない検出抗体は、３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３回洗い流し、結合した抗体は、ブロッキングバッファにて１：４に希釈した１００μｌの１:２０００ストレプトアビジン-ＰＯＤコンジュゲート(Roche Diagnostics GmbH, Cat. No.11089153)を添加して室温で１時間かけて検出する。結合していないストレプトアビジン-ＰＯＤコンジュゲートは３００μｌのＰＢＳＴ(０．２%ツイーン２０)にて３−６回洗い流し、結合したストレプトアビジン-ＰＯＤコンジュゲートは１００μＬのＡＢＴＳ／ウェルを添加して検出する。吸光度の測定は、４０５ｎｍ(対照波長４９２ｎｍ)の測定値波長のＴｅｃａｎＦｌｕｏｒ分光計にて実行する。

ＶＥＧＦ−Ａ及びＡｎｇ-２に対する二重特異性四価抗体<ＶＥＧＦ-Ａｎｇ-２>の同時結合のＢｉａｃｏｒｅによる証明
ブリッジングＥＬＩＳＡのデータを更に確認するために、以下のプロトコールに従ってＢｉａｃｏｒｅＴ１００機器による表面プラズモン共鳴技術を用いてＶＥＧＦ及びＡｎｇ-２への同時結合を確認するために更なるアッセイを確立し、Ｔ１００ソフトウェアパッケージ(Ｔ１００コントロール、バージョン２.０１、Ｔ１００評価、バージョン２.０１、Ｔ１００動態概要、バージョン１.０１)を用いて分析する。Ａｎｇ-２は、アミンカップリング(ＢＳＡフリー)によりＣＭ５チップに固定されているペンタＨｉｓ抗体(ペンタＨｉｓ-Ａｂ ＢＳＡフリー、Qiagen No. 34660)により、ＰＢＳ, ０.００５％(ｖ/ｖ)ツイーン２０ランニングバッファ中２０００−１７００ＲＵの捕捉レベルで捕えることができる。カップリングの間ＨＢＳ-Ｎバッファをランニングバッファとして用い、ＥＤＣ／ＮＨＳを混合して活性化する。ペンタＨｉｓ-Ａｂ ＢＳＡフリー捕捉-抗体はカップリングバッファＮａＡｃ、ｐＨ４．５、ｃ＝３０μｇ／ｍＬにて希釈し、最後に、また活性化されているカルボキシル基は１Ｍエタノールアミンを注入して遮断する。５０００及び１７０００ＲＵのリガンド密度を試験する。５００ｎＭの濃度のＡｎｇ-２は、ランニングバッファ＋１ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡにて希釈した５μＬ／分の流量で、ペンタＨｉｓ-Ａｂにて捕える。その後、Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦに対する<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>二重特異性四価抗体の結合は、ｒｈＶＥＧＦとともにインキュベートし、サンドイッチ複合体の形成によって示される。この目的のために、二重特異性四価の<ＶＥＧＦ-Ａｎｇ-２>抗体は、ランニングバッファ＋１ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡにて希釈し、５０μＬ／分の流量および１００ｎＭの濃度でＡｎｇ-２に結合させ、同時結合は、ＰＢＳ＋０.００５％(ｖ/ｖ)ツイーン２０ランニングバッファ中でＶＥＧＦ (ｒｈＶＥＧＦ, R&D-Systems Cat.-No, 293-VE)とともにインキュベートし、５０μＬ／分の流量および１５０ｎＭのＶＥＧＦ濃度によって検出する。会合時間１２０秒、解離時間１２００秒。再生は、各サイクルの後に、２×１０ｍＭグリシンｐＨ２．０および６０秒の接触時間にて５０μＬ／分の流量で実施する。センサーグラムは、標準的なダブルレファレンス法を用いて補正する(コントロール対照：捕捉分子ペンタＨｉｓＡｂに対する二重特異性抗体およびｒｈＶＥＧＦの結合)。各Ａｂのためのブランクは、ｒｈＶＥＧＦ濃度「０」によって測定する。

ＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２細胞株の生成
Ａｎｇ-２刺激性Ｔｉｅ２リン酸化及び細胞上のＴｉｅ２へのＡｎｇ-２の結合による二重特異性四価抗体<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>の干渉を決定するために、組換えＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ細胞株を生成した。手短に言及すると、ＣＭＶプロモータおよびネオマイシン耐性マーカーの制御下に完全長ヒトＴｉｅ２をコードするｐｃＤＮＡ３ベースのプラスミド(ＲＢ２２-ｐｃＤＮＡ３ Ｔｏｐｏ ｈＴｉｅ２)は、Ｆｕｇｅｎｅ (Roche Applied Science)を形質移入試薬として使用してＨＥＫ２９３細胞(ＡＴＣＣ)に形質移入し、耐性細胞をＤＭＥＭ １０％ ＦＣＳ、５００μｇ／ｍｌ Ｇ４１８中で選別した。個々のクローンは、クローニングシリンダにて単離し、その後ＦＡＣＳによってＴｉｅ２発現について分析した。クローン２２は、Ｇ４１８がない場合でも高く安定してＴｉｅ２を発現するクローンとして同定した(ＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２ クローン２２)。ＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２ クローン２２は、細胞性アッセイのためにその後使用する。Ａｎｇ-２は、Ｔｉｅ２リン酸化およびＡｎｇ-２細胞性リガンド結合アッセイを誘導した。

Ａｎｇ-２誘導性Ｔｉｅ２リン酸化アッセイ
<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>二重特異性四価抗体によるＡｎｇ-２誘導性Ｔｉｅ２リン酸化の阻害は、以下のアッセイ原理に従って測定される。ＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２クローン２２は、Ａｎｇ-２の有無の下で５分間Ａｎｇ-２にて刺激し、Ｐ-Ｔｉｅ２はサンドイッチＥＬＩＳＡによって定量化される。手短に言及すると、１ウェル当たり２×１０^５のＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２を、ポリ-Ｄ-リジンコート９６ウェルマイクロタイタープレート上で、１００μｌのＤＭＥＭ、１０％ＦＣＳ、５００μｇ／ｍｌジェネテシン中で生育する。その翌日、<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>二重特異性四価抗体の滴定列をマイクロタイタープレート(４倍濃縮、７５μｌ終体積／ウェル、二通り)に調製し、７５μｌのＡｎｇ-２(R&D systems # 623-AN]希釈物(４倍濃縮溶液にして３．２μｇ／ｍｌ)と混合する。抗体およびＡｎｇ-２は、室温で１５分間予めインキュベートする。１００μｌの混合物を、ＨＥＫ２９３-Ｔｉｅ２クローン２２細胞(１ｍＭのＮａＶ３Ｏ４と共に５分間予めインキュベートしたもの、Sigma #S6508)に加え、３７℃で５分間インキュベートした。その後、細胞は、１ウェル当たり２００μｌの氷温ＰＢＳ＋１ｍＭ ＮａＶ３Ｏ４にて洗浄し、１ウェル当たり１２０μｌの溶解バッファ(２０ｍＭ トリス、ｐＨ８．０、１３７ｍＭ ＮａＣｌ、１％ＮＰ-４０、１０％グリセロール、２ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ ＮａＶ３Ｏ４、１ｍＭ ＰＭＳＦ及び１０μｇ／ｍｌ アプロチニン)を加えて氷上で溶解する。細胞はマイクロタイタープレート振とう器上で４℃で３０分間溶解し、１００μｌの溶解物を、事前に遠心分離及び総タンパク質決定を行わずにｐ-Ｔｉｅ２ ＥＬＩＳＡマイクロタイタープレート(R&D Systems, R&D #DY990)に直接移す。Ｐ-Ｔｉｅ２量は製造業者の指示に従って定量化し、阻害についてのＩＣ５０値はエクセル(用量反応(Dose-response one site)、モデル２０５)のためにＸＬｆｉｔ４分析プラグインを使用して決定する。ＩＣ５０値は、一実験内で比較してもよいが、実験と実験とで変化するかもしれない。

ＶＥＧＦ誘導性ＨＵＶＥＣ増殖アッセイ
ＶＥＧＦ誘導性ＨＵＶＥＣ(ヒト臍帯静脈内皮細胞、Promocell #C-12200)増殖を選択して、<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>二重特異性四価抗体の細胞性機能を測定する。手短に言及すると、９６ウェルにつき５０００のＨＵＶＥＣ細胞(低継代数、５継代以下)を、コラーゲンＩコートBD Biocoat Collagen I ９６ウェルマイクロタイタープレート(BD #354407 / 35640)に、１００μｌの飢餓培地(ＥＢＭ-２内皮性基礎培地２、Promocell # C-22211、０．５％ＦＣＳ、ペニシリン／ストレプトマイシン)中で終夜インキュベートする。様々な濃度の<Ａｎｇ-２、ＶＥＧＦ>二重特異性四価抗体は、ｒｈＶＥＧＦ(３０ｎｇ1／ｍｌ終濃度、BD # 354107)と混合し、室温で１５分間予めインキュベートする。その後、混合物をＨＵＶＥＣ細胞に加え、３７℃、５％ＣＯ２で７２時間インキュベートする。分析の日に、プレートを、３０分間かけて室温に平衡化し、細胞生存度／増殖は、マニュアル(Promega, # G7571/2/3)に従ってＣｅｌｌＴｉｔｅｒ-Ｇｌｏ^ＴＭ発光細胞生存度アッセイキットを使用して決定する。発光は分光光度計において決定する。

実施例１ Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する二重特異性及び四価の抗体の製造、発現、精製及び特徴付け
第一の例では、Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する、個々の抗体鎖間にリンカーを持たない二重特異性四価抗体を、Ａｎｇ-２を認識する抗体の重鎖のＣ末端に、ＶＥＧＦ−Ａに対するＶＨ−ＣＬドメイン融合を、（Ｇ４Ｓ）４コネクターを介して融合させることによって生成した（配列番号１又は対応するＩｇＧ１アロタイプ）。二重特異性四価抗体を得るために、この重鎖コンストラクトを、Ａｎｇ-２抗体のそれぞれの軽鎖(配列番号３)およびＶＥＧＦ−Ａを認識するＶＬ−ＣＨ１ドメイン融合(配列番号２)をコードするプラスミドにて同時発現させた。それぞれの抗体の配置を図５に示す。
二重特異性四価抗体は、一般的な方法の項に記載のように典型的な分子生物学的技術によって生成され、上記のようにＨＥＫ２９３Ｆ細胞に過渡的に発現される。その後、プロテインＡ親和性クロマトグラフィおよびサイズ排除クロマトグラフィの組合せによって上清から精製した。得られた生成物は、質量分析法および分析的性質（例えばＳＤＳ-ＰＡＧＥによる純度、単量体内容および安定性）によって同一性について特徴付けした。

これらのデータは、二重特異性四価抗体が好収率で生産され得、安定であることを示す。
その後、Ａｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａへの結合並びに同時結合を、上記のＥＬＩＳＡ及びＢｉａｃｏｒｅアッセイによって調べ、Ｔｉｅ２リン酸化の阻害およびＶＥＧＦ誘導性ＨＵＶＥＣ増殖の阻害のような機能的特性を分析したところ、生成された二重特異性四価抗体はＡｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａに結合し、その活性を同時にブロックすることができることを示した。

実施例２ Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する二重特異性及び四価の抗体の製造、発現、精製及び特徴付け
第二の例では、Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する、個々の抗体鎖間にリンカーを持たない二重特異性四価抗体を、Ａｎｇ-２を認識する抗体の重鎖のＮ末端に、ＶＥＧＦ−Ａに対するＶＨ−ＣＬドメイン融合を、（Ｇ４Ｓ）４コネクターを介して融合させることによって生成した（配列番号４又は対応するＩｇＧ１アロタイプ）。二重特異性四価抗体を得るために、この重鎖コンストラクトを、Ａｎｇ-２抗体のそれぞれの軽鎖(配列番号３)およびＶＥＧＦ−Ａを認識するＶＬ−ＣＨ１ドメイン融合(配列番号２)をコードするプラスミドにて同時発現させた。それぞれの抗体の配置を図６に示す。
二重特異性四価抗体は、一般的な方法の項に記載のように典型的な分子生物学的技術によって生成され、上記のようにＨＥＫ２９３Ｆ細胞に過渡的に発現される。その後、プロテインＡ親和性クロマトグラフィおよびサイズ排除クロマトグラフィの組合せによって上清から精製した。得られた生成物は、質量分析法および分析的性質（例えばＳＤＳ-ＰＡＧＥによる純度、単量体内容および安定性）によって同一性について特徴付けした。

これらのデータは、二重特異性四価抗体が好収率で生産され得、安定であることを示す。
その後、Ａｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａへの結合並びに同時結合を、上記のＥＬＩＳＡ及びＢｉａｃｏｒｅアッセイによって調べ、Ｔｉｅ２リン酸化の阻害およびＶＥＧＦ誘導性ＨＵＶＥＣ増殖の阻害のような機能的特性を分析したところ、生成された二重特異性四価抗体はＡｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａに結合し、その活性を同時にブロックすることができることを示した。

実施例３ Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する二重特異性及び四価の抗体の製造、発現、精製及び特徴付け
第三の例では、Ａｎｇ-２及びＶＥＧＦ−Ａを認識する、個々の抗体鎖間にリンカーを持たない二重特異性四価抗体を、ＶＥＧＦを認識するＣＨ１−ＣＬ置換抗体の重鎖のＣ末端に、Ａｎｇ-２に対するＶＨ−ＣＨ１ Ｆａｂドメインを、（Ｇ４Ｓ）４コネクターを介して融合させることによって生成した（配列番号５又は対応するＩｇＧ１アロタイプ）。二重特異性四価抗体を得るために、この重鎖コンストラクトを、Ａｎｇ-２抗体のそれぞれの軽鎖(配列番号３)およびＶＥＧＦ−Ａを認識するＶＬ−ＣＨ１ドメイン融合(配列番号２)をコードするプラスミドにて同時発現させた。それぞれの抗体の配置を図７に示す。
二重特異性四価抗体は、一般的な方法の項に記載のように典型的な分子生物学的技術によって生成され、上記のようにＨＥＫ２９３Ｆ細胞に過渡的に発現される。その後、プロテインＡ親和性クロマトグラフィおよびサイズ排除クロマトグラフィの組合せによって上清から精製した。得られた生成物は、質量分析法および分析的性質（例えばＳＤＳ-ＰＡＧＥによる純度、単量体内容および安定性）によって同一性について特徴付けした。

これらのデータは、二重特異性四価抗体が好収率で生産され得、安定であることを示す。
その後、Ａｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａへの結合並びに同時結合を、上記のＥＬＩＳＡ及びＢｉａｃｏｒｅアッセイによって調べ、Ｔｉｅ２リン酸化の阻害およびＶＥＧＦ誘導性ＨＵＶＥＣ増殖の阻害のような機能的特性を分析したところ、生成された二重特異性四価抗体はＡｎｇ-２およびＶＥＧＦ−Ａに結合し、その活性を同時にブロックすることができることを示した。

Claims (13)

1. 二重特異性抗原結合タンパク質であって、
   ａ）第一の抗原に特異的に結合し、２つのＦａｂフラグメントを含む、抗体の２つの軽鎖及び２つの重鎖、と、
   ｂ）第二の抗原に特異的に結合し、ａ）の重鎖のＣ又はＮ末端にペプチドコネクターを介して両方が融合している、抗体の２つの更なるＦａｂフラグメントであって、このとき、このＦａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている２つの更なるＦａｂフラグメント、
   ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメント又はｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   ｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   ｉｉｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しているか、又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   ｉｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、又は、
   ｖ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換しており、かつ、ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、
   とを含んでなる、二重特異性抗原結合タンパク質。
2. 前記更なるＦａｂフラグメントがペプチドコネクターを介して、ａ）の重鎖のＣ末端、又はａ）の重鎖のＮ末端に双方が融合している、請求項１に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
3. 前記Ｆａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
   ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメント又はｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   という特徴がある、請求項１又は２に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
4. 前記Ｆａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
   ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   という特徴がある、請求項３に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
5. 前記Ｆａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
   ｉ）ａ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   という特徴がある、請求項４に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
6. 前記Ｆａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
   ｉ）ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、可変ドメインＶＬ及びＶＨが互いに置換している、及び／又は、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   という特徴がある、請求項３に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
7. 前記Ｆａｂフラグメントにおいて以下の修飾が施されている：
   ｉ）ｂ）の両Ｆａｂフラグメントにおいて、定常ドメインＣＬ及びＣＨ１が互いに置換している、
   という特徴がある、請求項６に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
8. 請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質の調製方法において、
   ａ）請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質をコードする核酸分子を含んでなるベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程、
   ｂ）該抗原結合タンパク質分子の合成を可能にする条件下で宿主細胞を培養する工程；及び
   ｃ）該培養物から該抗原結合タンパク質分子を回収する工程
   を含んでなる方法。
9. 請求項８に記載のベクターを含んでなる宿主細胞。
10. 請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質と、少なくとも一の薬学的に許容可能な賦形剤とを含有する薬学的組成物。
11. 癌の治療のための、請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質。
12. 癌の治療のための医薬の製造のための、請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質の使用。
13. 請求項１から７の何れか一に記載の二重特異性抗原結合タンパク質の治療上有効な量を患者に投与することを特徴とする、治療を必要としている患者の治療方法。

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