下面是描述衍生下式肽方法的实施例。
H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-OH
A)、制备Boc-Phe-Gly-oBzl
向搅拌下的10.7g(40ml)Boc-Phe-OH和4.8ml(40.1mmol)N-甲基吗啉在50ml冷却至-15℃下二甲基甲酰胺的溶液中加入5.6g(40.1mmol)氯甲酸异丁酯(Isobutyl inchloro-formate)。2分钟后,将甘氨酸对甲苯磺酸苄基酯在50ml二甲基甲酰胺中的冷溶液加到该冷却的混合物中。将该反应混合物在-15OC下搅拌30分钟,在室温下搅拌2小时。减压蒸馏二甲基甲酰胺。将残渣加到100ml乙酸乙酯中并用50ml 2%的硫酸溶液洗涤两次,然后用80ml饱和碳酸氢钠溶液冲洗两次,再用水洗涤至反应物呈中性,然后用硫酸镁干燥。真空蒸馏乙酸乙酯层。将残渣在加入乙醚和己烷的乙酸乙酯中重结晶。产率为16.4g(98.2%),Mp为135.2℃,Rf=0.71(洗脱剂为氯仿,乙酸乙酯。甲醇=3∶6∶1)。Rf=0.62(洗脱剂为乙酸乙酯,己烷=1∶1)。
B)、制备Boc-D-Ala-Phe-Gly-oBzl
将16.4g(39.8mmol)Boc-Phe-Gly-oBzl溶解在80ml 50%三氟乙酸的氯仿液中。1小时后,真空蒸发溶剂直至为固体油状物。将150ml乙醚加到该残渣中然后重结晶。将残渣过滤,用乙醚洗涤并干燥。产率为16.2g(99.8%),Mp TFA H-Phe-Gly-oBzl=135℃,Rf=0.34(氯仿,甲醇=9∶1)。
将7.5g(39.7mmol)Boc-D-Ala-OH和4.6mg(40.0mmol)N-甲基吗啉在50ml二甲基甲酰胺的混合物冷却至-15℃,同时将溶液混合并加入5.6g(40.3mmol)氯甲酸异丁酯。2分钟后,加入16.2g(40.0mmol)H-Phe-Gly-oBzl三氟乙酸盐和4.6ml(40.0mmol)N-甲基吗啉在50ml二甲基甲酰胺中的冷却混合物。将反应混合物在-30℃下搅拌30分钟并在室温下搅拌2小时。真空除掉二甲基甲酰胺并向残渣中加入100ml乙酸乙酯,然后用2%的硫酸溶液洗涤两次(每次50mg),用富含混合物的碳酸氢钠洗涤两次,每次80mg,然后用水洗涤至反应物呈中性,用无水硫酸钠干燥。真空蒸发乙酸乙酯层,将残渣在乙醚中重结晶。产率为14.5g(75.9%),mp为140℃,Rf=0.79(氯仿,乙酸乙酯,甲醇=6∶3∶1),Rf=0.55(氯仿,甲醇=9∶1)。
C)、制备Boc-Try-(Boc)-D-Ala-Phe-Gly-oBzl:
将14.4g(29.8mmol)Boc-D-Ala-Phe-Gly-oBzl溶解在80ml 50%三氟乙酸的氯仿液。1小时后,将溶剂蒸发直至得到油状物。将残渣溶解在50ml二甲基甲酰胺中并向其中加入3.4mg(29.8mmol)N-甲基吗啉。将11.4g(30.0mmol)Boc-Tyr-(Boc)-OH-和3.45ml(30.0mmol)N-甲基吗啉在50ml二氯甲烷中的混合物冷却至-15℃同时混合并加入4.27g(30.0mmol)氯甲酸异丁酯。2分钟后,向该混合物中加入14.3g(mmol)三肽的苄基酯:H-D-Ala-Phe-Gly-oBzl。将该反应混合物在-15℃下混合30分钟,在室温下混合2小时。真空除掉二甲基甲酰胺,将残渣加到100ml乙酸乙酯中并用2%硫酸溶液洗涤两次,每次50ml,然后用富含碳酸氢钠的混合物洗涤两次,每次80mg,将残渣用水洗涤两次。得到中性反应物,然后用硫酸钠干燥。真空除掉乙酸乙酯层。将残渣重结晶。产率为:18.5g(83.4%),mp133.5℃,Rf=0.62(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇=6∶3∶1),Rf=0.57(氯仿∶甲醇=9∶1)。
D)、制备Boc-Arg(NO2)-Try-D-Ala-Phe-Gly-oBzl。
将9.8g(13.1mmol)Boc-Try-(Boc)-D-Ala-Phe-Gly-oBzl溶解在80ml50%三氟乙酸的氯仿液中。1小时后,将溶剂蒸发直至得到油状物。将残渣在乙醚中重结晶。产率:9.68g(100%)。
将9.6g(13.0mmol)TFA-Try-D-Ala-Phe-Gly-oBzl溶解在150ml二甲基甲酰胺中并加入1.5ml(13.0mmol)N-甲基吗啉,5.2g(14.6mmol)Boc-Arg(NO2)-OH-1/2TFH,1.97g(14-6mmol)羟苯并三唑。将反应混合物冷却至-10℃同时混合,并加入3.0g(14.0mmol)二环己基碳二亚胺。在室温下,将混合物搅拌72小时。滤掉二环己基脲,真空蒸发溶剂并向残渣中加入100ml乙酸乙酯,将残渣用2%硫酸洗涤两次,每次50ml,然后将混合物用80ml碳酸氢钠混合物洗涤两次,再用水冲洗,得到中性反应物,用无水硫酸钠干燥。真空蒸发乙酸乙酯层。将残渣重结晶。产率为:9.6g(87.2%),mp=176.7℃,Rf=0.70(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇∶乙酸=6∶3∶1∶0.5),Rf=0.23(氯仿∶甲醇,9∶1)。
E)、制备H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-oH:
将9.6g(13.6mmol)Boc-Arg(NO2)-Try-D-Ala-Phe-Gly-oBzl溶解在60ml甲酸,1.0g钯催化剂中并加入氢6小时。将催化剂过滤,将甲酸真空蒸发,用100ml水洗涤。将残渣加到乙醚中。将残渣过滤,用乙醚冲洗并干燥。产率:6.9g(100%),Rf=0.44(丁醇∶乙酸∶水=3∶1∶1)。
用离子交换柱层析,进一步纯化该肽,该柱装有吸着剂交联葡聚糖G-25梯度0.1M-1.0M的吡啶乙酸(pyidinacetat)缓冲混合物。
根据理化研究的结果,该肽H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-OH:具有分子量为612.6的线性结构并且具有略带黄色的白色粉末形态,它溶于水,不能很好地溶于乙醇并且不溶于氯仿。
在250-300mm范围的uV光谱显示,在275+/-mm具有吸收,在282+/-2mm具有肩峰,0.1%水混合物的PH=5.0-0.7。
实施例2
该实施例描述了制备式H-Arg-Tyr-D-Orn-Phe-D-Ala-OH肽的方法。
a)、制备Z-Phe-D-Ala-OH
将9.68g(20.0mmol)Z-Phe-OPfp溶解在20ml四氢呋喃中并加入2.3g(25.6mmol)H-D-Ala-OH(溶解在5ml水中,PH=8.5)。在室温下,将反应混合物搅拌24小时。真空蒸发溶剂,加入70ml乙酸乙酯并加入70ml2%硫酸直至PH=2-3。用70ml乙酸乙酯提取该肽两次,用饱和氯化钠洗涤直至得到中性反应物,然后用无水硫酸钠干燥并真空蒸发除掉溶剂直至得到油状产物。用乙醚和己烷将最终产物重结晶。产量为7.6g(97.7%),Rf=0.40(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇∶乙酸=6∶3∶1∶0.1),Rf=0.53(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1),Rf=0.58(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶9∶1),mp=153-154℃,(α)20+/-3.2(c=1甲醇)。
b)、制备Boc-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH
将6.5g(18.0mmol)Z-Phe-D-Ala-OH溶解在15ml甲醇和2ml甲酸中,加入0.2g披钯碳并通入氢气3小时。滤掉催化剂并真空蒸发溶剂。将残渣中加入乙醚。过滤残渣,用乙醚洗涤并干燥。产量:H-Phe-D-Ala-OH:4.3g(98.1%)Rf=0.01(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇∶乙酸=6∶3∶1∶0.1),Rf=0.45(乙酸∶氯仿∶甲醇=1∶3∶2)。
将8.0g(15.0mmol)五氟苯基的酯(Boc-D-Orn(Z)-OPfp)溶解在15ml二恶烷中并在混合过程中加入4.3g(17.7mmol)H-Phe-D-Ala-OH(溶解在水中,PH=8.5)。在室温下,将反应混合物搅拌24小时。真空蒸发掉溶剂并按(a)段相同的方法进行。将所得混合物用乙酸乙酯,乙醚和己烷重结晶。产量:6.92g(74.4%),Rf=0.44(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1),Rf=0.32(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇=6∶3∶1),mp=145℃。
c)、制备Boc-Tyr-(Bxl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH
将3.3g(5.6mmol)的Boc-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH溶解在10ml50%三氟乙酸的氯仿液中。1小时后,真空蒸发掉溶剂并向该残渣中加入乙醚。过滤产物,用乙醚洗涤并干燥。产量:3g(100%)。
将3.0g(5.4 mmol)Boc-Tyr-(Bzl)-OPfp溶解在10ml二甲基甲酰胺中,加入3.0g(5.8mmol)TFA-H-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH和0.25ml(5.7mmol)的二乙基异丙基胺。在室温下将反应混合物搅拌24小时。24小时后,真空蒸发除掉溶剂,加入70ml乙酸乙酯和70ml2%硫酸至PH=2-3。用70ml乙酸乙酯aciolified肽并用饱和氯化钠混合物洗涤直至得到中性反应物,用无水硫酸钠干燥,真空除掉溶剂直至形成油状物。然后用乙酸乙酯和乙醚重结晶残渣。产量:4.1g(82%),Rf=0.47(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1),Rf=0.35(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1)。
d)、制备Z3-Arg-Tyr-(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH
将0.9g(1.1mmol)Boc-Tyr-(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH溶解在5ml50%三氟乙酸的氯仿液中。1小时后,真空蒸发掉溶剂并向该残渣中加入乙醚。过滤产物,用乙醚洗涤并干燥。产量:0.8g(100%)。
将0.65g(1.1mmol)Z3-Arg-OPfp溶解在5ml二恶烷和1.5ml二甲基甲酰胺中,加入0.8g(1.0mmol)TFA-H-Tyr(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH和0.12ml(1.0mmol)的二乙基异丙基胺。在室温下将反应混合物搅拌24小时。真空蒸发除掉溶剂,加入乙酸乙酯并将得到的残渣过滤。用乙酸乙酯重结晶残渣。产量:1.88g(92.0%),Rf=0.51(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1),Rf=0.34(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇∶乙酸=653∶1∶0.1);Rf=0.53(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶9∶1),mp=138-143℃。
e)、制备H-Arg-Tyr-D-Orn-Phe-D-Ala-OH
将0.5g(0.39mmol)Z3-Arg-Tyr-(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Ala-OH溶解在3ml乙酸和2ml甲酸中,加入0.62g的披钯碳并通入氢气3小时。然后滤掉催化剂,真空蒸发溶剂。将所得化合物溶于水中,用反相液相色谱法在1.6×25cm用吸着剂“silasorb C-8”(10mkm)填充的柱上纯化,用乙腈-0.01M三乙胺醋酸铵(pH=6.0)洗脱。产率:0.20克(80.8%)。实施例3
本实施例描述了用下式制备肽的方法:H-Arg-Tyr-D-Arg-Phe-D-Ala-OH。
将0.9克(0.14毫摩尔)H-Arg-Tyr-D-Arg-Phe-D-Ala-OH胍溶于5毫升1N氢氧化钠溶剂中。室温下将反应混合物搅拌7昼夜,用反相液相色谱在1.6×25cm用吸着剂“silasorb C-8”(10mkm)填充的柱上进行分离,用乙腈-0.05%三氟乙酸梯度洗脱。产率:0.087克(76.9%)。实施例4
本实施例描述了用下式制备肽的方法:H-Tyr-D-Orn-Phe-D-Glu-OH。a)BOC-Phe-D-Glu(oBzl)2的制备
将14.7克(10.0毫摩尔)H-D-Glu-OH溶于54毫升苄醇中,加入17.2克(10.0毫摩尔)对甲苯磺酸。然后,在Dino-Stark装置中加热至70-80℃12小时。在这12小时中,以相同速率加入苯以替代除去的水。然后用甲醇结晶该混合物,用异丙醇重结晶。产率:Tos-H-D-Glu(oBzl)2;25.96克(80.0%)。熔点116℃。
将2.2克(5.1毫摩尔)BOC-Phe-OPfp溶于5毫升二恶烷中,搅拌下加入1.9克(5.2毫摩尔)Tos-H-D-Glu(oBzl)2和0.5毫升(5.2毫摩尔)三乙胺的5毫升二氯甲烷溶液及5毫升二恶烷。室温下搅拌反应混合物24小时。24小时后,真空蒸发掉溶剂,将油溶于100毫升乙酸乙酯中,用100毫升2%硫酸溶液漂洗两次,再用100毫升5%碳酸氢钠溶液漂洗两次,然后于水中洗涤混合物直至中性,用无水硫酸钠干燥。真空下蒸发掉乙酸乙酯,用己烷结晶残余物。产率:3.2克(98.5%);Rf=0.81(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇=6∶3∶1);Rf=0.78(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1);熔点162℃。b)BOC-D-Orn(Z)-Phe-D-Glu(OBzl)2的制备
将2.1克(3.7毫摩尔)BOC-Phe-D-Glu(oBzl)2溶于20毫升50%三氟乙酸的氯仿溶液中。1小时后,真空蒸发掉溶剂。将残余油状物溶于10毫升四氢呋喃中,加入0.4毫升二乙基异丙胺和2.0克(3.8毫摩尔)BOC-D-Orn(Z)-OPfP。室温搅拌反应混合物24小时。24小时后,真空蒸发掉溶剂,将油溶于100毫升乙酸乙酯中,用100毫升2%硫酸溶液漂洗两次,再用100毫升5%碳酸氢钠溶液漂洗两次,然后于水中洗涤混合物直至中性,用无水硫酸钠干燥。真空下蒸发掉乙酸乙酯,用乙酸乙酯和己烷重结晶残余物。产率:3.0克(88.2%);Rf=0.88(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇=6∶3∶1);Rf=0.85(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶9∶1);熔点156℃。c)BOC-Tyr(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Glu(OBzl)2的制备:
将0.91克(1.1毫摩尔)BOC-D-Orn(Z)-Phe-D-Glu(OBzl)2溶于10毫升50%三氟乙酸的氯仿溶液中。1小时后,真空蒸发掉溶剂。将残余油溶于15毫升二恶烷,加入0.10毫升(1.0毫摩尔)二乙基异丙胺和0.54克(1.0毫摩尔)BOC-Tyr(Bzl)-OPfp。然后室温搅拌反应混合物24小时。24小时后,真空蒸发掉溶剂,将油溶于100毫升乙酸乙酯中,用100毫升2%硫酸溶液漂洗两次,再用100毫升5%碳酸氢钠溶液漂洗两次,然后于水中洗涤混合物直至中性,用无水硫酸钠干燥。真空下蒸发掉乙酸乙酯,用乙酸乙酯和乙醚结晶残余物。产率:1.1克(93.2%);Rf=0.89(氯仿∶乙酸乙酯∶甲醇=6∶3∶1);Rf=0.83(乙酸∶氯仿∶甲醇=0.5∶16∶1);熔点158-160℃。e)H-Tyr-Orn-Phe-D-Glu-OH的制备:
将0.16克(0.15毫摩尔)BOC-Tyr(Bzl)-D-Orn(Z)-Phe-D-Glu(OBzl)2溶于2毫升甲醇中,加入2毫升甲酸和0.2克钯碳并通入氢气4小时。滤除催化剂,真空蒸发掉溶剂。然后将油溶于5毫升70%含水三氟乙酸中。1小时后,真空蒸发掉溶剂。将残余物溶于最少量的乙醇中,用水稀释并用高效反相液相色谱在1.6×25cm用吸着剂“silasorb C-8”(10mkm)填充的柱上进行纯化,用乙腈-0.05%三氟乙酸梯度洗脱。产率:0.07克(98.8%)。
经研究,专业人员可在本发明的基础上进行其它修饰和完善。实施例5
在本实施例中,描述了评价肽阿片样活性的不同试验。
在传统的分离器官中进行体外阿片样活性研究:-GPI试验(GuangT.A.Kosterlitz H.W Agonist and antagonist action of morphine like drugson the guinea pigs isolated ileum//Br.J.Pharmac.Chmother-1966-V.27N3.P.514-527)。MVD试验(Hughs J.Kosterlitz H.W Lwslie F.M Effectof morphine on adrenergic transmission in the mouse was different.Assessment of agonist and Antagonist potencies of narcotic.//Br.J.Pharmacol-1975-V.53 N3.P.371-381)。以及在体外热板试验中确定阿片样活性的试验(Aukier S.I.new hot plate tests to qualify antinjiceptive andnarcotic antagonist activities//Eur.J.Pharmacol-174-V.27 Nip.1-4)。还有大鼠上的“Tail flick”(D′amour F.E.Smith D.L a method fordetermining loss Exp.Ther.-1974-V.27 Ni-p.74-79)。
用“尾部闪烁”方法在大鼠上进行试验,测试肽链的镇痛活性,以0.005mg/kg的剂量静脉内注射给大鼠。242单位的真正镇痛效应是肽H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-OH的特征。表2列出了肽链的阿片样活性的研究结果。
表2
IC
J0 |
肽 |
GPI |
MVD |
|
H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-OH |
6.1 |
<5 |
|
H-Arg-Tyr-D-Lys-Phe-Gly-OH |
6.6 |
5.0 |
|
H-Arg-Tyr-D-Orn-Phe-Gly-OH |
5.4 |
<5 |
|
H-Arg-Tyr-D-Ala-Phe-D-Ala-OH |
6.1 |
5.6 |
|
H-Arg-Tyr-D-Orn-Phe-D-Ala-OH |
6.1 |
<5 |
|
H-Arg-Tyr-D-Arg-Phe-D-Ala-OH |
6.8 |
5.8 |
|
H-Arg-Tyr-D-Arg-Phe-D-Ala-NH2 |
6.7 |
<5 |
|
H-D-Arg-Tyr-D-Arg-Phe-D-Ala-NH2 |
5.0 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Har-Phe-Gly-OH |
6.5 |
- |
|
H-Tyr-D-Orn-Phe-Gly-OH |
6.4 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Arg-Phe-Gly-OH |
7.5 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Orn-Phe-D-Glu-OH |
4.7 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Arg-Phe-D-Glu-OH |
<5 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Orn-Phe-D-ala-NH2 |
5.4 |
<5 |
|
H-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-NH2 |
1.6 |
0.03 |
|
H-Tyr-D-Ala-Phe-Gly-OH |
2.8 |
2.0 |
|
H-Tyr-D-Met-Phe-Gly-NH2 |
0.1 |
0.2 |
|
H-Tyr-D-Ala-Phe-B-Ala-OH |
0.6 |
0.9 |
|
H-Tyr-D-Ala-Phe-B-Ala-NH2 |
3.0 |
4.5 |
从表中可看出,引起任何生物效应的最小肽剂量为1-10mkg/kg。
在小鼠、大鼠、貂、鸟、鱼、小牛和猪中进行该肽以及其衍生物的生物活性实验。
实施例6
本实施例描述了肽对年幼大鼠和小鼠体重增加的影响。
a)本实验是在4组1周大的大鼠中进行的。将0.1毫升生理盐水溶液注射给对照组1。将肽以每公斤体重0.1、0.5和1.0mkg剂量静脉内注射给对照组2、3和4。每5天将4个组的大鼠称重,同时监测其食物的摄取。实验进行35天。准确度<0.05的结果如表3所示。
表3
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重增加百分数 |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
260 |
0 |
|
2 |
0.1 |
270 |
3.8 |
|
3 |
0.5 |
275 |
5.7 |
|
4 |
1.0 |
310 |
19.0 |
在第4组观察到最大的体重增加,该组接受了1.0mkg/kg肽的剂量。下表4列出了大鼠的总食物摄取。
表4
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
食物量g/天/动物 |
|
1 |
- |
14.5 |
|
2 |
0.1 |
15.5 |
|
3 |
0.5 |
14.5 |
|
4 |
1.0 |
16.0 |
仔细观察各组食物的消耗量并无差异,这表明该肽是同化性活性。b)本实验是在7组一个月大的NMRI系小鼠中进行的。不限制这些小鼠的食物和水。将0.1毫升生理盐水注射给第1组,第2、3和4组分别给予1.0、10.0和100.0mkg/kg的肽和水。第5、6和7组分别每日给予0.1、0.5和1.0mkg/kg的肽水溶液共30天。在这30天的实验中,每周将小鼠称重,同时监测每日的食物摄取量。
体重增加结果如下表5所示。
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重增加百分数 |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
68 |
0 |
|
2 |
1.0* |
142 |
108 |
|
3 |
10.0* |
105 |
54 |
|
4 |
100.0* |
90 |
32 |
|
5 |
0.1** |
80 |
18 |
|
6 |
0.5** |
70 |
3 |
|
7 |
1.0* |
65 |
-0.4 |
*-口服给药
**-静脉内给药肽最有效的给药方法是每日以1mkg/kg的剂量以水溶液形式给药。以下是每24小时测得的每组平均食物消耗量。
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
食物量g/天/动物 |
|
1 |
- |
5.6 |
|
2 |
1.0* |
7.0 |
|
3 |
10.0* |
5.0 |
|
4 |
100.0* |
5.5 |
|
5 |
0.1** |
5.3 |
|
6 |
0.5** |
5.2 |
结果表明,在接受最多食物并以1.0mkg/kg的剂量每日口服肽水溶液的动物组中观察到了最多的体重增加。
注意到,摄取肽后,测试动物体重增加并且食物摄取量也增加。摄取1克食物而观察到的体重增加是该肽商业性应用的指标。结果如表7所示。
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
100 |
|
2 |
1.0* |
128.1 |
|
3 |
10.0* |
136.5 |
|
4 |
100.0* |
127 |
|
5 |
0.1** |
110.4 |
|
6 |
0.5** |
115.3 |
|
7 |
1.0** |
97 |
观察到摄取1克食物时以10.0mkg/kg剂量给予肽水溶液得到了最大的体重增加,测试组的体重净增加百分数比对照组体重增加百分数高36.5%。
实施例7
本实验描述了肽类对皮肤形态学改变和头发生长的影响。
本实验是在4组NMRI系小鼠中进行的。第1组是阳性对照,其它组接受下列剂量的肽:第2组1.0,第3组10.0,第4组100.0mkg/kg。
活检后,从动物的嵴部取下5×5mm的皮肤样品,按照“lili”方法测试48小时。用乙醇处理皮肤并染色24小时。然后用棉胶处理。用“Rehard”公司生产的手术刀制备组织标本,将这些标本按照轴序排列,切缘用常规的曙红法染色。
在研究10mkm厚度的组织标本时,研究表皮和真皮的性质。按照“Aftondilov”法对测试组和对照组动物计数每毫米的发囊数。
观察到给予100.0、10.0和1.0mkg/kg肽的小鼠发囊与对照组相比分别增长了14%、19%和22%。
各动物组的皮肤标本表明,给予100.0mkg/kg肽的第4测试组的表皮角化区表皮层增厚。给予10.0mgk/kg肽的第3组动物与第4组的变化类似。也观察到了表皮的增厚。同样观察到了第2测试组动物的上皮生长区的活性以及皮下脂肪组织的良好状态。
标记测试组嵴部的毛发都增长。将每组动物的10根毛发以1微米的精度测量,计算每个测试组的平均值。结果如表8所示。
表8
|
测试组 |
肽剂量mkg/kg |
长度增长mm |
净增长百分数 |
|
1 |
- |
4.2 |
0 |
|
2 |
1 |
4.4 |
4.5 |
|
3 |
10 |
4.9 |
16.7 |
|
4 |
100 |
4.5 |
17.9 |
很明显,给予10和100mkg/kg剂量的肽对小鼠毛发的生长有刺激效应。
这些实验中的肽没有表现出任何毒性征兆。该肽表明可刺激上皮的生长活性,刺激增加表皮层,刺激发囊密度和数量的增长以及增加活组织的容积。
实施例8
在本实施例中,描述了肽对鱼尾鳍的再生影响。
实验是在小鲤鱼和鲑鱼中进行的。
将鱼在浓度为1.0mg/l的肽溶液中饲养2个月。
实验过程中过程尾鳍的再生(通过修剪尾鳍将测试组和对照组标记区分)。测量对照组尾鳍时,观察到再生部分的长度为183+/-23,测试组为268+/-26,其至少为对照组测量值的1.5倍。测试组鲤鱼的再生速度也比对照组鲤鱼高1.5倍。
很明显,该肽具有生长刺激作用,可以用于愈合。
在子实体鱼血和肽血清中处理兔红细胞凝集素效价一周后,发现效价增加1.95倍。
根据试验结果所得的结论为,肽影响下的鱼更能抵抗原生动物及细菌的感染并且可更好地处理外部物质。
实施例9
本实施例描述了肽对貂和北极狐体重增加的影响。
本实验使用两个月大的北极狐和貂。每种动物有三组测试组和一组对照组。
将肽以10mkg/kg的剂量以食物供给方式给予第一个测试组。
10天后,将肽以10mkg/kg的剂量给予第二个测试组10天。
将肽以20mkg/kg的剂量按照与第一个测试组相同的方式给予第三个测试组。
一个月后,将动物称重。结果表明与对照组相比,测试组的雄性与雌性之间有差异。本实验结果如表9所示。该结果是学生计算平均值偏差的一个平均数。
|
测试组号和动物类型 |
肽剂量mkg/kg |
增加的体重kg雌性 雄性 |
体重净增加百分数雌性 雄性 |
|
貂 | | | |
|
1 |
- |
0.419 0.611 |
100 100 |
|
2 |
10 |
0.375 0.728 |
90 119 |
|
3 |
10 |
0.381 0.726 |
91 119 |
|
4 |
20 |
0.443 0.771 |
106 126 |
|
北极狐 | | | |
|
1 |
- |
0.700 0.580 |
100 100 |
|
2 |
10 |
1.780 0.830 |
105 116 |
|
3 |
10 |
1.740 1.890 |
102 120 |
结果表明两类动物的第三测试组的雌性体重增加了6%,其接受的是20mkg/kg剂量的肽。雄貂体重增加了26%,雄北极狐体重增加了21%。
实施例10
本实验描述了肽对貂和北极狐皮毛质量改善的影响。
本实验的条件和方法与实施例9相同。
当将动物放倒后,测量皮毛区并评定皮毛的质量。与对照组相比,所有测试组的皮毛区都增长,同时总质量保持在高水平。貂测试组的增加率为:第二组平均为105%,第3组平均为108%,第4组平均为108%。北极狐组的结果为:第2组112%,第3组107%,第4组106%。
实施例11
本实施例描述了肽对小猪体重增加的影响。在本实验中,使用7组断奶小猪。小猪为4至5个月大。一组小猪用作对照组,另外六组为测试组。将肽分别以1.0mkg/kg、5.0mkg/kg、10.0mkg/kg的剂量以食物供给形式给予第二、第三和第四测试组。每个月给药20天,另10天停药。将肽以0.01%水溶液的形式注射给予另外三组,每月给药5天,25天停药。第5、6和7组分别给予0.1、0.5和1.0mkg/kg。实验持续100天。实验结果如表10所示。
表10
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重增加kg |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
52+-3.9 |
100 |
|
2 |
1.0* |
60+-5.1 |
115 |
|
3 |
5.0* |
56+-4.8 |
108 |
|
4 |
10.0* |
68+-4.9 |
130 |
|
5 |
0.1** |
57+-3.7 |
109 |
|
6 |
0.5** |
59+-4.1 |
114 |
|
7 |
1.0* |
62+-1.2 |
118 |
*-口服
**-注射给药
本实验结果表明,当给予动物高剂量时得到最好的结果。以10.0mkg/kg的剂量口服肽的第三组与对照组相比体重增加高于30%。以1.0mkg/kg的剂量注射给予肽的第六组与对照组相比体重增加高于18%。
本实验表明,使用肽不会引起任何副作用或偏离测试动物血液生化指标正常值。该肽确实具有增加测试动物肌肉的作用。
实施例12
本实验描述了肽对公鸡体重增加的影响。
本实验是在产肉公鸡“P-46”中进行的。公鸡年龄为24小时。将测试公鸡分为5组,每组13只。第1组作为对照组,其它4组为测试组。将肽混在食物中分别以8、12、16和20mkg/kg的量给予测试组2、3、4和5组。
饲养公鸡直至达10周龄,这种肉鸡推荐混合饲料。
所有测试组和对照组的公鸡在本实验中都存活。肉眼观察表明测试组都主动消耗食物,并且与对照组相比外观没有差别。表11表明了本实验的细节。
表11
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重增加g |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
10.2 |
100 |
|
2 |
8 |
10.4 |
102 |
|
3 |
12 |
12.5 |
122.6 |
|
4 |
16 |
11.8 |
115.7 |
|
5 |
20 |
11.6 |
113.7 |
测试组3-5平均增加的体重比对照组高13-23%,同时食物量以相同的百分数减少。测试组2-5的食物消耗量与对照组相比分别低2.4%、17.1%、14.9%和14.4%。
测试组公鸡的肉质量无论在颜色、气味、一致性和味道上与对照组公鸡肉都没有差别。
实施例13
本实施例描述了肽对小公牛体重增加的影响。
本实验使用2月大的7组小公牛,每个测试组12只。第一组为对照组,其它六组为测试组。将肽以水溶液的形式并分别以1.0、5.0和10.0mkg/kg的速率空腹口服给予第一、第二和第三测试组。将肽以0.01水溶液形式并分别以0.1、0.5和1.0mkg/kg的剂量注射给第四、第五和第六组。
在临床和生理学观察中,所有的测试组都没有表现出任何从正常值偏离的迹象。
表12所示的结果证实了当口服及静脉内给药时,该肽对大鼠的生长以及牛体重的增加都有正性影响。
表12
|
试验组号 |
肽剂量mkg/kg |
体重增加kg |
体重净增加百分数 |
|
1 |
- |
24.6 |
100 |
|
2 |
1.0* |
27.2 |
110 |
|
3 |
5.0* |
26.1 |
106 |
|
4 |
10.0* |
34.6 |
142 |
|
5 |
0.1** |
30.3 |
123 |
|
6 |
0.5** |
29.7 |
121 |
|
7 |
1.0* |
37.6 |
153 |
*-口服
**-静脉内注射
当给予最高剂量时得到最大的正性结果。
当将肽以水溶液形式并以10mkg/kg的剂量口服给药时,24小时内体重增加平均值为583克,其比60天测量的对照组高172克。当以水溶液形式注射(剂量为1mkg/kg)给药时,结果更高。24小时平均增加体重627克,比对照组高217克。
实施例14
本实施例描述了肽对鱼体重增加的影响。
a)将10条鲤鱼置于已含有肽溶液2小时的鱼池中(浓度0.25mg/l)。将鲤鱼分别标记,在放进循环鱼池前称重。鲤鱼每日接受3%肽剂量的干食物。
20天后,取出鲤鱼并称重。结果如表13所示。
表13
|
项目 |
对照组g |
测试组g |
|
鱼数目 |
10 |
10 |
|
试验开始的平均重量,g |
31.6+-3.9 |
33.0+-4.9 |
|
试验最后的平均重量,g |
33.0+-4.7 |
40.6+-5.6 |
|
与对照组相比% |
100 |
123.0 |
用肽处理鲤鱼体重平均增加23.0%,个体偏差为18.9至31.0%。
b)本实验用重量为0.5克的小鲑鱼进行。将鱼放在肽浓度为1.0mk/l的溶液中2个月。结果表明对照组鱼的平均重量为2.83克,测试组为3.86克。因此,测试组与对照组相比以36.4%的速率生长。
实施例15
基于生物活性成分(按照实施例1所得)的药物组合物是用0.001至0.1%的肽制备的,该含量的最优选值为0.001至0.01%。
将碳水化合物和其它载体用于组合物中,这种组合物用于动物的食物补给和水中。
通过混合肽粉和水或饲料制备食物补给。加到混合物中的食物量取决于所需的一致性或者实验的条件。a)在用鱼做的实验中,将鱼放在浓度为1.0mg/l的肽水溶液中。b)基于生物活性成分的药物组合物按照实施例1获得,其是用含量为0.001%的肽混合到牛饮用水中而制备的。c)基于生物活性成分的药物组合物按照实施例1获得,其是用含量为0.001%的肽混合到小猪饮用水中而制备的。混合剂是水。