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WO1997016541A1 - Alkaline protease, process for the production thereof, use thereof, and microorganism producing the same - Google Patents

Alkaline protease, process for the production thereof, use thereof, and microorganism producing the same Download PDF

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WO1997016541A1
WO1997016541A1 PCT/JP1996/003216 JP9603216W WO9716541A1 WO 1997016541 A1 WO1997016541 A1 WO 1997016541A1 JP 9603216 W JP9603216 W JP 9603216W WO 9716541 A1 WO9716541 A1 WO 9716541A1
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WO
WIPO (PCT)
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protease
minutes
bacillus
strain
atkins
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP1996/003216
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Yoshiaki Miyota
Shiro Fukuyama
Tadashi Yoneda
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Novo Nordisk AS
Original Assignee
Novo Nordisk AS
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Filing date
Publication date
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Priority to AT96935529T priority patent/ATE280222T1/de
Priority to EP96935529A priority patent/EP0859050B1/en
Priority to DE69633676T priority patent/DE69633676T2/de
Priority to AU73395/96A priority patent/AU7339596A/en
Publication of WO1997016541A1 publication Critical patent/WO1997016541A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • C11ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11DDETERGENT COMPOSITIONS; USE OF SINGLE SUBSTANCES AS DETERGENTS; SOAP OR SOAP-MAKING; RESIN SOAPS; RECOVERY OF GLYCEROL
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    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/52Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea
    • C12N9/54Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea bacteria being Bacillus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/07Bacillus

Definitions

  • the present invention relates to a novel alkaline protease. More specifically, the present invention relates to an alkali protease having excellent stability to a surfactant and heat, a method for producing the same, use of the same as a detergent, and a microorganism producing the alkali protease.
  • Background art
  • proteases account for 10 to 40% of organic dirt adhering to clothing, and as a cleaning component to efficiently decompose protein dirt that cannot be removed by conventional detergent components alone, and to increase detergency. Has become indispensable.
  • proteases for detergents there are many known proteases derived from microorganisms that are active in the alkaline range. Kazusase (Showa Denko KK), Sapinase (NOVO), Maxacal (GIST) Co., Ltd.), Alcalase (NOVO), BioSum (Showa Denko KK), etc. are used. Also, with the spread of automatic dishwashers, there is a need for enzymes that can be added to detergents for automatic dishwashers. Protease is effective against protein-based dish stains such as egg yolk and dairy products. However, In addition, when enzymes are used in high-temperature water, their deactivation is promoted, so that excellent stability is required.
  • an object of the present invention is to provide a more stable alkaline protease in the presence of a surfactant, a method for producing the alkaline protease, a use of a detergent composition containing the protease, and the like, and a method for producing such a protease. It is to provide things to do. Disclosure of the invention
  • the present inventors have conducted intensive studies, and as a result, the protease API-126 produced by Bacillus sp. (Bacillus sp.) SD114 strain, which is one strain of the genus Bacillus, has excellent stability. They have found that they have excellent detergency, and have completed the present invention.
  • the present invention provides the following novel alkaline protease, its production method, its use, and a microorganism that produces the protease.
  • the optimal pH is around 12 when casein is used as a substrate and reacted at 30 ° C for 10 minutes;
  • Isoelectric point The isoelectric point by polyacrylamide gel electrophoresis is 10.1 ⁇ 0.5.
  • alkaline protease according to any one of 1) to 2), which is produced by a microorganism belonging to the genus Bacillus.
  • a method comprising culturing a substance belonging to the genus Bacillus or a mutant thereof having the protease-producing ability according to any one of the above 1) to 5), and collecting the protease from the culture.
  • a method for producing a ribose mouth thease.
  • Bacillus sp. Bacillus sp. (Bacillus sp.) SD 114 strain (Accession number FERM BP-5736) and its mutation
  • FIG. 1 is a graph showing the optimal pH range of the enzyme of the present invention.
  • FIG. 2 is a graph showing the stable pH range of the enzyme of the present invention.
  • FIG. 3 is a graph showing the optimal temperature range of the enzyme of the present invention.
  • FIG. 4 is a graph showing the stability of the enzyme of the present invention and the known enzyme at a temperature of 55 ° C.
  • FIG. 5 is a graph showing the stability of the enzyme of the present invention and a known enzyme in a commercial detergent Ultra Ariel at 55 ° C.
  • FIG. 6 is a graph showing the stability of the enzyme of the present invention and a known enzyme in a commercial detergent Super Chia at 55 ° C.
  • FIG. 7 is a graph showing the stability at 40 ° C. of the enzyme of the present invention and the known commercial detergent Tide-Grease-Releasing. Detailed description of the invention
  • Bacillus sp Bacillus sp
  • Bacillus sp Bacillus sp. SD114 strain is determined to be a strain closely related to Bacillus firmus based on the bacteriological properties as described below. It was clearly linked to other known strains in that nature and was identified as a new strain.
  • the Bacillus sp. (Bacillus sp.) SD114 strain according to the present invention comprises: Shows the indicated mycological properties.
  • the Bacillus sp. (Bacillus sp.) SD114 strain according to the present invention did not show the typical properties of Bacillus firmus in the production of acid from sugar and growth in 50 50.
  • the known strain SD521 produces acid from glucose, reduces nitrate, does not grow at pH 6.8, and does not grow at 50 ° C.
  • NC IB 10309 produces acids from glucose, arabinose and mannitol.
  • PB92 can make acid from glucose and xylose and can use propionate.
  • this strain SDl14 is a mesophilic bacterium, and is determined to be Bacillus sp. (Bacillus sp.) Closely related to Bacillus firmus.
  • this strain was recognized as a new strain belonging to the genus Bacillus. This strain was sent to the Institute of Biotechnology and Industrial Technology, Institute of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry of Japan (address: 1-3-1 Higashi, Tsukuba, Ibaraki, Japan) on October 2, 1995. No. -15214 and transferred to the International Depositary under the Budapest Treaty on October 30, 1996 as SD 114 strain (Accession No. FEBM BP-5736).
  • a mutant strain having improved protease productivity of the above-mentioned strain can be obtained by natural or induced mutation, and used as a protease-producing bacterium according to the present invention.
  • Methods for preparing these mutants include conventional methods known in the art, such as irradiating the original strain with ultraviolet light or using an agent such as N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG). Mutation treatment is applied and spread on an agar medium containing skim milk, etc., and a clear zone formed around the colony is selected from the growing strains. A method can be used.
  • a protease gene having the property of producing the enzyme of the present invention is ligated to an appropriate self-replicating DNA, and an appropriate host cell is transformed with the ligated DNA to improve productivity by the gene amplification effect. You can also.
  • the medium used for producing the protease of the present invention may be any medium as long as the protease-producing bacterium of the present invention can grow and produce the protease.
  • the culture is performed under aerobic conditions, for example, by aeration and agitation or shaking culture.
  • the cultivation temperature may be in the range of 20 to 40 ° C, but is preferably 30 to 37 ° C, which provides the best growth.
  • the initial pH is preferably 9 to 10 and the pH during culture is preferably 8.5 to 10 respectively.
  • the cultivation time is about 16 to 60 hours, and it is desirable to terminate the cultivation when the protease activity reaches the maximum. Purification of the desired protease from the culture solution obtained in this way. Production can be carried out according to the separation and purification of ⁇ 3 ⁇ 4.
  • the protease of the present invention is obtained by adding a soluble salt or a hydrophilic organic solvent to these separated liquids to precipitate a protein by a salting out method, a solvent precipitation method, a spray drying method, a freeze drying method, or the like.
  • purification can be performed by combining purification methods such as ion-exchange chromatography and gel filtration chromatography.
  • the protease of the present invention thus obtained was named A ⁇ I-26.
  • the activity of AP I-26 is measured by the following method.
  • Action and substrate specificity Decomposes proteins and peptides, such as casein, hemoglobin, alpin, meat protein, fish protein, soy protein, and the like.
  • the effect of various inhibitors on the enzyme was examined under the following conditions and methods.
  • the enzyme was prepared to a concentration of about 2 Onkatal / m 1 in 5 OmM borate buffer (pH 10), and EDTA, p-mercuribenzoate was prepared.
  • Acid (PCMV) and phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) were added at the concentrations shown in Table 4, and 3 (incubated for 30 minutes at TC and the activity was measured. The results are shown in Table 4. As is clear from Table 4, this enzyme is significantly inhibited by PMSF, indicating that it is a serine protease.
  • Table 4 Inhibitor concentration Activity No addition 100
  • the molecular weight of this enzyme was calculated to be 29,000 ⁇ 2,000.
  • Isoelectric point The isoelectric point obtained by polyacrylamide gel electrophoresis is 10.1 ⁇ 0.5.
  • the protease of the present invention preferably shows a cross-reactivity with an anti-API-126 antibody under the following measurement conditions.
  • the antigen, API-26 is adjusted to 2 mg / m 1 and mixed with an equal amount of Freund's complete adjuvant to make it completely water-in-oil. Two female egrets are injected with 1 ml of this sample at intervals of days 0, 21, 42 and 63. On day 70, collect whole blood and prepare serum containing antibody.
  • the cross-reactivity was determined by the Ouchterlony method (Acta. Med. Scan. 133,
  • Peptides and amino acids can be produced by allowing the protease of the present invention to act on proteins and peptides. Further, it can be used for processing of a target substance by acting on the target substance containing proteins and peptides as components.
  • a method in which the protease of the present invention is used in place of the conventional enzyme in the conventionally used method can be adopted. Furthermore, it can be used even under severe conditions in which the conventional enzyme is inactivated, as long as the protease of the present invention retains its activity. For example, in the presence of LAS of 50 pm or more and 5 O Op pm or less
  • LAS at 5 OOP pmh. However, it is preferably used at 300 ppm or less, more preferably at 300 ppm or less. It can be used at temperatures as high as 48 ° C or more. However, it is preferably used at 75 ° C. or lower, more preferably at 70 ° C. or lower.
  • the AL force reprotease of the present invention has higher stability in various commercially available detergent solutions and in the presence of a surfactant than the existing AL force reprotease. It is also stable against heat and efficiently decomposes protein stains in warm water used for washing and washing dishes, so it can be added to detergents to enhance the detergency.
  • a detergent composition containing an alkaline protease having the above properties containing an alkaline protease having the above properties.
  • the amount of the alkaline protease to be added to the cleaning composition of the present invention it is appropriate to add an amount corresponding to 10 to 100 Onkatal per liter of the washing solution. If the amount is too small, a sufficient improvement in washing results cannot be obtained, and if the amount is too large, the washing effect is not much improved as compared with the amount of enzyme, which is not preferable in terms of economy.
  • the allergic protease of the present invention can be blended without any change of other components of a conventionally known arbitrary detergent composition.
  • detergent #Essential products include 10 to 50% by weight of a surfactant, 0 to 50% by weight of a builder, and 1 to 50% by weight of a detergent composition. 50% by weight of alkaline agent or inorganic electrolyte, 0.1 to 5% by weight of re-contamination inhibitor, enzyme, bleaching agent, fluorescent dye, caking inhibitor and antioxidant And a detergent composition comprising the following components.
  • surfactant examples include rocks, such as linear or branched alkyl or alkenyl sulfates, amide sulfates, linear or branched alkyl or alkenyl groups, ethylene oxide, propylene oxide, and the like.
  • butylene oxide is an aliphatic sulfate such as an alkyl or alkenyl ether sulfate to which multiple components are added, alkyl sulfonate, amide sulfonate, dialkyl sulfosuccinate, -olefin Aliphatic sulfonates such as vinylidene-type and internal-olefin sulfonates, aromatic sulfonates such as linear or branched alkylbenzene sulfonates, linear or branched alkyls Group or alkenyl group, ethylene oxide, propylene oxide and Alkyl or alkenyl ether carboxylate or amide to which one or more components of butylene oxide are added, a sulfo fatty acid salt or ester, amino acid surfactant, alkyl or alkenyl acid phosphate, alkyl or alkenyl Phosphate ester surfactants such as phosphates,
  • a detergent composition such as surfactant Any surfactant can be used.
  • a counter ion is preferably a sodium ion or a lithium ion.
  • phosphates such as orthophosphate, pyrophosphate, tripolyphosphate, metaphosphate, hexamesphosphate, phytate, ethane-1,1-diphosphonate Acid, ethane-1,1,2-triphosphonic acid, ethane-1-hydroxy-1,1, diphosphonic acid and derivatives thereof, ethanehydroxy-1,1,2-triphosphonic acid, ethane-1,2-dicarboxy-1,2- Phosphonates such as diphosphonic acid and methane hydroxyphosphonic acid; phosphonocarboxylic acids such as 2-phosphonobutane-1,2-dicarboxylic acid, 1-1phosphonobutane-1,2,3,4-tricarboxylic acid and ⁇ -methylphosphonosuccinic acid Salts, aspartic acid, dalminic acid, etc., amino salts such as triacetate, ethylenediaminetetraacetate, diethylenetriacetate Non-dissociate Acid, ethane-1,1,2-triphosphonic acid
  • Inorganic salts such as nokate, carbonate, sesquicarbonate, sulfate and metasilicate can be used as alkali metal salts.
  • organic substances such as starch and urea and inorganic compounds such as sodium chloride and bentonite can be used.
  • triethanolamine, diethanolamine, monoethanolamine, and triisopropanol are used as organic alcohol agents. Min or the like can be used.
  • the detergent composition of the present invention contains a surfactant, an alkaline protease of the present invention, an alkaline agent or an inorganic electrolyte as an essential component, and if necessary, an amphoteric surfactant.
  • Bleaching agents such as sodium percarbonate and sodium perborate, bleach activators, dyes and builders; anti-recontamination agents such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, and ruboxymethyl cellulose;
  • Other enzymes such as antioxidants, corrosion inhibitors, optical brighteners, foam enhancers, and lipases can be included as needed.
  • the method of incorporating the enzyme into the detergent composition of the present invention There is no particular limitation on the method of incorporating the enzyme into the detergent composition of the present invention.
  • ⁇ ] It is not preferable, and it is preferable to shape it in a solution state or in a form that suppresses dust in advance. This shaping may be performed by any of the commonly used malm granulation, extrusion granulation, flow granulation, centrifugal flow granulation and other methods, and is added to the cleaning composition of the present invention.
  • the shape of the enzyme is not particularly limited to those shaped by these methods. Since the alkali protease of the present invention has high stability, it can be usually formed at a temperature higher than the temperature at which the enzyme is prepared (formed), for example, at 50 ° C. or higher.
  • detergent composition of the present invention include detergents, such as laundry detergents and detergents for automatic dishwashers, to which the ALPHA lipoproteinase of the present invention is added.
  • Example 1 Culture method of Bacillus sp.
  • the supernatant of the culture broth obtained in Example 1 was treated with a sterilizing membrane, and then the enzyme was concentrated using an ultrafiltration membrane.
  • the concentrated solution was subjected to ammonium sulfate precipitation at a saturation of 30 to 60%.
  • the resulting precipitate was dissolved in 25 mM Tris-HCl buffer pH 7.5 containing ImM CaCl 2 and dialyzed against the same buffer.
  • the solution was adsorbed to a CM-cellulofine C-500 column (manufactured by Seikagaku Corporation) at ⁇ 7.5, and eluted by a 0-1 M KC 1 J3 ⁇ 4 gradient method containing ImM CaC, and the specific activity was measured.
  • the enzyme fraction which was increased about 8 times before the ion exchange chromatography was recovered. When SDS polyacrylamide electrophoresis was performed using this sample, a single band was obtained.
  • the enzyme of the present invention (AP I 26) and the subtilisin glutamine 9 (enzyme produced by NCIB10309) are adjusted to a concentration of about 2 Onkatal / ml in 5 OmM Atkins-Pantin borate buffer at pH 10 containing EDTA. ), PB92 (S ⁇ produced by Bacillus strain PB92) and SD521 (enzyme produced by Bacillus strain SD521), and incubate at 55 ° C. Samples were taken over time, and the residual activity was measured at 30 ° C. Table 5 shows the residual activity at each time when the activity without heat treatment is set to 100.
  • Subtilisin 10309, PB92, and SD521 were prepared by the methods described in JP-B-51-8401, JP-A-51-125407, and JP-A-3-197811, respectively.
  • API 26 has excellent temperature stability.
  • Table 5 Temperature stability (55 ° C) Time (min) 0 7.5 15 22.5 30
  • Subtilisin 10309 100 0 0 0 0 0 0
  • Subtilisin 10309 100 0 0 0 0 0 0
  • the supernatant of the culture solution obtained in the same manner as in Example 1 was treated with a sterilizing membrane, and the enzyme was concentrated using an ultrafiltration membrane. Then, a crude enzyme was prepared by a spray drying method. Using this crude enzyme, the cleaning effect when added to a commercially available liquid detergent Tide (P & G) was examined.
  • the crude enzyme was added to the tide to 10 OnkatalZm 1 to prepare a detergent containing this enzyme, which was stored at 40 ° C for 4 weeks.
  • To 1 liter of water with a calcium ion (Ca ⁇ ) concentration of 4 Op pm add 2 g of the detergent stored for 4 weeks, wash the stained cloth, measure the whiteness, and determine the washing efficiency defined by the following equation. I asked.
  • Example 7 Detergency test of detergent for automatic dishwasher containing AP I-26 enzyme Using AP I-26 crude enzyme described in Example 6, the washing effect of automatic dishwasher was examined. .
  • a commercially available detergent (trade name: Hi-Posh S; NSC Co., Ltd .; components are polyethylene alkylene ether, sodium percarbonate, carbonate, sulfate, organic acid salt) and API-26 crude enzyme in a weight ratio of 20: 1.
  • the mixture was mixed to prepare an enzyme-containing automatic dishwasher detergent, which was used at 0.21% at the time of washing to test the washing property under the following conditions.
  • Model used Automatic dishwasher manufactured by Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. (a type in which an aqueous solution of NP-600 cleaning agent is sprayed from a rotating nozzle to wash the dishes installed on the upper surface of the spray track).
  • Washing Gradually increase to 5 ° C to 55 ° C.
  • Water used Water with a hardness of 3.5 ° DH,
  • Circulating water volume during washing 2.5 liters
  • Preparation of a contaminated dish apply 1 g of egg yolk to a magnetic dish with a diameter of 25 cm and wind all day and night Two dried ones are subjected to the test.
  • the purple area (P 1 ) on the dish was measured by photo judgment using Amidschnitz reaction on the washed dish, and the washing rate was calculated from the contaminated area by the following formula.
  • the washing rate (%) ⁇ (P 0 -P 1 ) / P 0 ⁇ x 00
  • Table 12 shows the determined cleaning rates. SD521 was also tested as a control. From this result, the sample containing this enzyme has a strong cleaning effect, and works effectively even on the specially set strong dirt, showing a 100% cleaning rate. You can see that it has greatly contributed to the improvement of
  • the Algaric reprotease of the present invention has higher stability in various detergent solutions and in the presence of a surfactant than existing Algaric reproteases, and is also stable to heat, and can be used for washing and dishwashing. since decompose stains proteins efficiently in, that force to achieve enhanced detergency formulated into detergent 'can c also allowed to act on protein Ya downy peptide prepare other peptides Ya Amino acid At the same time, its stability makes an economic process possible. (Bacillus sp.) SD114 strain and its mutant strain of the present invention are mesophilic bacteria which are easy to handle, and are useful for production of the alkaline protease of the present invention.
  • the alkaline protease of the present invention can be efficiently produced by the method for producing the protease of the present invention, which comprises culturing a microorganism belonging to the genus Bacillus or a mutant thereof.

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Description

明細書 アルカリプロテアーゼ、 その製造方法、 その用途、 及びそのプロテア -ゼを生産する微生物 技術分野
本発明は、 新規なアルカリプロテアーゼに関する。 さらに詳しく言え ば、 界面活性剤と熱に対する安定性に優れたアルカリプロテアーゼ、 そ の製造方法、 その洗浄剤等への用途、及びそのアルカリプロテアーゼを 生産する微生物に関する。 背景技術
近年、 環境汚染が問題となり、 洗剤成分としてのリン酸塩の使用が規 制されるに伴って、 を洗剤に配合して、 洗浄力を高めることが行な われている。 現在では、 プロテアーゼ、 アミラーゼ、 セルラーゼ、 リパ —ゼ等を配合した酵素入り洗剤が上市されている。 中でもプロテアーゼ は、衣類に付着する有機汚垢の 1 0〜4 0 %を占め、 従来の洗剤成分だ けでは除去しきれないタンパク質汚れを効率よく分解し、 洗浄力を高め るための洗浄成分として不可欠になっている。
洗剤用プロテアーゼとしては、 アルカリ域で活性を示す微生物由来の 力、 従来数多く知られており、 カズサーゼ (昭和電工 (株) ) 、 サ ピナーゼ (ノヴォ(NOVO)社製)、マキサカル (ギスト(GIST)社製)、ァ ルカラーゼ (ノヴォ(NOVO)社製)、バイオサム (昭和電工 (株) ) 等が 用いられている。 また、 自動食器洗浄機の普及に伴って、 自動食器洗浄 機用洗剤に配合可能な酵素が求められている。 卵黄、 乳製品等のタンパ ク質性の食器汚れに対して、 プロテアーゼが有効である。 ただし、 に酵素は高温水中で使用すると失活が促進されるので優れた安定性が要 求される。 現在この目的にはエスペラーゼ (ノヴォ(NOVO)社製) 等が用 いられている力 十分な活性、 安定性を兼ね備えているとは言えない。 これまでに知られているプロテアーゼの中で界面活性剤に対して最も安 定性の高いのは、 バチルス SD 521株の産するプロテアーゼ (特開平 3 - 191781号) であるが、 更に安定性の高いプロテアーゼが望まれている。 従って、 本発明の目的は、 界面活性剤存在下においてより安定性の高 いアルカリプロテアーゼ、 そのアルカリプロテアーゼの製造方法、 その プロテア一ゼを含む洗剤組成物等の用途、 及びそのようなプロテアーゼ を生産する 物を提供することにある。 発明の開示
本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、 バチルス属の 1菌株である、 バ チルス s p. (Bacillus sp. ) S D 114株が^するプロテアーゼ A P I一 26が優れた安定性を有し、 また洗浄性にも優れていることを見出 し、 本発明を完成するに至った。
すなわち、 本発明は以下の新規アルカリプロテアーゼ、 その製造方法、 その用途、 及びそのプロテアーゼを生産する微生物を提供する。
1) 以下の (a) 〜(c) の少なくとも 1つの条件を充たすアルカリ プロテアーゼ:
(a) 界面活性剤溶液(5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10)、 O.lmM エチレンジァミン四酢酸 (EDT A) 、 直鎖アルキ ルベンゼンスルホン酸ナトリウム (LAS) 500 p pm) 中、 40°C で 30分後に 60 %以上の残存活性を有する;
(b)緩衝液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pHl 0)、 O.lmM EDTA) 中、 55 °Cで 15分後に 40 %以上の残存活性を 有する;
(c)界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10) 、 0. ImM EDTA、 LAS500ppm) 中、 55。Cで 15 分後に 20%R の残存活性を有する。
2) 以下の性質を有する前記 1) に記載のアルカリプロテアーゼ:
(1) 作用
夕ンパク質及びべプチドを加水分解する;
(2) 至適 pH
カゼインを基質とし 30°Cにて 10分間反応させたとき至適 pHは 1 2付近にある;
(3)安定 pH域
30°Cで 24時間インキュベートしたとき、 pH5〜l 1で安定であ る;
(4) 至適温度
カゼインを基質とし、 pHl 0で 10分間反応させたとき、 至適 M¾ が 60て付近にある;
(5) 分子量
S D Sポリアクリルアミ ドゲル電気泳動により測定した分子量は 2900 0 ±2000である;
(6) 等電点
等電点ポリアクリルァミ ドゲル電気泳動法による等電点は 10.1±0.5 ある。
3) バチルス (Bacillus)属に属する微生物が生産する前記 1 ) 乃至 2) のいずれかに記載のアルカリプロテアーゼ。
4) バチルス (Bacillus)属に属する!^物がバチルス s p. (Bacill us sp.)D 114株 (受託番号 FEKM BP-5736) である前記 3) に記載の アル力リプロテアーゼ。
5) 前記 4に記載のプロテアーゼと免疫学的交差性を示し、 以下の (a)〜(c) の少なくとも 1つの条件を充たすアルカリプロテアーゼ
(a) 界面活性剤溶液 (50mM Atkins-Pantinほう酸緩衝液 (pH 10) 、 0. ImM EDTA、 LAS500ppm) 中、 40°Cで 30 分後に 60%以上の残存活性を有する;
(b)緩衝液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (p H 10)、 O.lmM EDTA) 中、 55°Cで 15分後に 40 %以上の残存活性を 有する;
(c) 界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins-Pantinほう酸緩衝液 (pH 10) 、 O.lmM EDTA、 LAS500p m) 中、 55。Cで 15 分後に 20%以上の残存活性を有する。
6) 前記 1)乃至 5) のいずれかに記載のプロテアーゼの生産能を有 するバチルス (Bacillus) 属に属する 物またはその変異株を培養し、 その培養物から該プロテアーゼを採取することを特徴とするアル力リブ 口テアーゼの製造方法。
7) バチルス (Bacillus)属に属する 物がバチルス s p. (Bacill us sp.) D 114株 (受託番号 FEBM BP- 5736) である前記 6) に記載の アル力リプロテアーゼの製造方法。
8) バチルス s p . (Bacillus sp. ) S D 114株 (受託番号 FERM BP- 5736)及びその変異
9) 前記 1) 乃至 5) のいずれかに記載のプロテア一ゼを含む洗浄剤 繊物。
10) 前記 1) 乃至 5) のいずれかに記載のプロテアーゼを含む洗剤 c
11) 前記 1) 乃至 5)のいずれかに記載のプロテアーゼを含む自動 食器洗浄機用洗剤。 12) 前記 1) 乃至 5) のいずれかに記載のプロテアーゼを蛋白質ま たはべプチドに作用させることを特徴とするぺプチドまたはアミノ酸の 製造方法。 図面の簡単な説明
図 1は本発明酵素の至適 p H範囲を示すグラフである。
図 2は本発明酵素の安定 p H域範囲を示すグラフである。
図 3は本発明酵素の至適温度範囲を示すグラフである。
図 4は本発明酵素及び公知酵素の 55°Cの温度における安定性を示す グラフである。
図 5は本発明酵素及び公知酵素の市販洗剤ウルトラァリエル中 55 °C における安定性を示すグラフである。
図 6は本発明酵素及び公知酵素の市販洗剤スーパーチア一中 55°Cに おける安定性を示すグラフである。
図 7は本発明酵素及び公知 の市販洗剤タイド ·グリィース · リリ 一シング中 40°Cにおける安定性を示すグラフである。 発明の詳細な説明
以下本発明を詳細に説明する。
[酵素生産菌]
本発明の酵素を生産する菌株の 1つであるバチルス s p, (Bacillus sp.) SD 114株は以下に述べる如く、 菌学的性質からは Bacillus firmusに近縁の菌株と判断されるが、 いくつかの性質において他の公 知の菌株と明らかに相連し、 新規な菌と認定された。
菌学的性質:
本発明に係るバチルス s p. (Bacillus sp. ) S D 114株は、 以下に 示す菌学的性質を示す。
(a)形態:桿菌、
(b)グラム染色性:十、
(c)胞子形成能:十、
(d)胞子形態:楕円形、
(e)運動性: 十、
(f)酸素に対する態度:好気性、
(g)カタラーゼ生産:十、
(h)嫌気下での生育:―、
(i) V P反応:一、
(]') ?ブロスの ^1: 6. 2 、
00酸の生成:
グルコース 一
ァラビノース 一
キシロース 一
マンニトール 一
(1)グルコースからのガスの生成:一、
(m)ゼラチンの液化:十、
(n)デンプンの分解:十、
(0)クェン酸^の利用:一、
(P)プロピオン酸塩の利用:―、
(q)フエ二ルァラニンデァミネーシヨン:一、
(r)卵黄反応:一、
(s)硝酸塩の還元:―、
(t) p H6. 8 での生育:十、
(u) p H5. での生育: +、 (v) 5%塩ィ匕ナトリゥム存在下での生育: 十、
(w) 7%塩ィ匕ナトリゥム存在下での生育:十、
(x)l 0°Cでの生育:十、
(y)30°Cでの生育:十、
(z)55°Cでの生育:十、
(aa)菌体内 DNAの GC^» (モル%) : 45%。
上記の菌学的性質を有する本菌の分類学上の性質を "バージーズ ·マ 二ユアル*ォブ ·システマチック ·パクテリォロジ一" VOL.2(1986) William & Wilkinsを参考にして他の菌株と比較すると以下の通りであ る。
本発明に係るバチルス s p. (Bacillus sp. ) S D 114株は糖からの 酸の生成や、 50^での生育においてバチルス ·ファーマス (Bacillus firmus) の典型的な性状を示さなかった。 一方、 公知の菌株である S D521株はグルコースから酸を生成し、 硝酸塩を還元し、 PH6.8で 生育せず、 50°Cで生育しない。 NC I B 10309はグルコース、 ァ ラビノース、 マンニトールから酸を生成する。 PB92はグルコース、 キシロースから酸を し、 プロピオン酸塩を利用出来る。 以上の菌学 的性質から明らかなように本菌株 SDl 14株は中温菌であり、 バチル ス ·ファーマス (Bacillus firmus) と近縁のバチルス s p. (Bacillus sp.)と判断され、 他の公知菌株とも相違する。 従って、 本菌株はバチル ス (Bacillus)属に属する新菌株と認められた。本菌株は日本国通商産 業省工業技術院生命工学工業技術研究所 (宛名: 日本国茨城県つくば市 東 1丁目 1番 3号) に、 平成 7年 (1995年) 10月 2日に P-15214号と して寄託され、 ブタペスト条約に基づき平成 8年 (1996年) 10月 30 日に SD 114株 (受託番号 FEBM BP-5736) として国際寄託に移管され ている。 上記 S D 1 1 4株を元菌株として自然または誘発突然変異により、 上 記菌株が有するプロテア一ゼ生産性を向上させた変異株を得て、 本発明 によるプロテアーゼの生産菌として用いることが出来る。 これらの変異 株を調製する方法としては、 従来知られている慣用の方法、 例えば元菌 株を紫外線照射あるいは N—メチルー N' —二トロー N—ニトロソグァ 二ジン (N T G) 等の薬剤による Λ 突然変異処理を施して、 スキムミ ルク等を含む寒天培地に広げ、 生育してくる菌株の中からコロニーのま わりに形成されるクリアゾーンが、 より大きいコロニーを選抜し、 性の優れた菌株を選別する方法を用いることが出来る。 また本発明の酵 素を生産する性質を有するプロテア一ゼ遺伝子を適当な自己複製する D N Aと連結し、 これを用いて適当な宿^胞を形質転換し、 遺伝子増幅 効果によって生産性を向上させることもできる。
[プロテアーゼの製造方法]
本発明のプロテアーゼを製造するに際して使用される培地は、 本発明 のプロテアーゼ生産菌が増殖し、 プロテアーゼを生産し得るものならば 任意のものでよい。
例えば、 炭素源としてはグルコース、 マルトース、 シュ一クロース、 可溶性デンプン等が用いられ、 窒素源としては、 大豆かす、 ごまかす、 ふすまかす、 コーンスティープリカ一等の有機窒素源カ佣いられる。 ま た、 この他にリン酸塩、 力リゥム塩、 マグネシゥム塩等の無機塩類が添 加される。 本発明においては、 培養は好気的条件下で、 例えば通気撹拌 法や振とう培養法で行う。 培養温度は 2 0〜4 0 °Cの範囲で良いが、生 育の最も良好な 3 0〜3 7 °Cが望ましい。 初発 p Hは 9〜1 0、 培養中 の p Hは 8. 5〜1 0がそれぞれ好ましい。 培養時間は 1 6〜6 0時間程 度であり、 プロテアーゼ活性力最高に達した時に培養を終了するのが望 ましい。 このように得られる培養液からの目的とするプロテア一ゼの精 製は ~¾の の分離精製に準じて行うことが出来る。
すなわち、 遠心分離、 またはろ過等によって菌体、 培地固形物を除去 し、 上清またはろ液を得ることが出来る。 これらの分離液に可溶性塩類、 親水性有機溶媒を添加し、 蛋白質を沈殿させる塩析法、溶媒沈殿法、 噴 霧乾燥法、 凍結乾燥法等により本発明のプロテアーゼを得る。 さらにィ ォン交換ク口マトグラフィ一及びゲルろ過ク口マトグラフィ一等の精製 法を組み合わせ、 精製することが出来る。 かくして得られる本発明のプ 口テアーゼを A Ρ I—26と命名した。 AP I—26の活性は以下に示 す方法にて測定される。
[酵素活性測定法]
pH 10の 5 OmM Atkins-Pant inのほう酸緩衝液 500 1に、 適当に希釈した酵素液 50 1を加え、 30°Cで 3〜5分プレインキュ ペートする。 この溶液に p H 10の 2%ハマースティンカゼィン溶液 δ θ 1を加え、 10分後トリクロ口酢酸 (TCA) 溶液 (0.132M TCA:酢酸緩衝液で ρΗ4に調整) 2m 1を加えて反応を停止させ る。 30°C10分以上放置後、 No.2のフィルターペーパー (東洋ろ紙) を用いてろ過する。 ろ液 lmlに 0.4 M炭酸ソーダ 5ml、 水で 6倍希 釈のフエノール試薬 lm 1を添加し、 30°Cで 20分間放置して発色さ せた後、 660 nmにおける吸光度を測定する。 酵素単位は 30°C、 p HI 0でカゼインを基質として反応させたとき、 TCA画分中に 1秒間 にチロシン 1モル相当の 660 nmの発色を示す分解物を生成するプロ テア一ゼ活性を 1力タール (lkatal) とする。
[プロテアーゼの性質]
次に本発明で得られるプロテアーゼ (AP 1-26) の理化学的性質 について述べる。
(1)作用及び基質特異性 タンパク質及びペプチド、 例えばカゼイン、 ヘモグロビン、 アルプミ ン、 肉タンパク、魚肉タンパク、 大豆タンパクなどを分解する。
(2)至適 pH
至適 pHの測定法:
緩衝液として Britton-Bobinsonの広域緩衝液を使用した。 また至適 p
Hを調べるに当たっては、 1%カゼインを含む各 PH緩衝液中に、 を約 2 Onkatal/m 1とるように加え、 30°Cで 10分間反応させ活性 を測定し、 PH11.7での活性を 100とし表 1及び図 1に示した。 本酵 素は p H 12付近に至適 p Hを有することが分かる。
(3)安定 pH域
安定 pH域の測定法:
各 p Hの緩衝液に を約 20 nkatal/m 1となるように加え、 30 °Cで 24時間ィンキュベートした後の活性を測定した。 インキュベート 前の活性を 100として、各 pHでの残存活性を表 2及び図 2に示した c 本酵素の安定 pH域は 30°Cで 5〜11であることが分かる。
PH 7.1 7.9 9.0 9.9 10.6 11.2 11.7 12.1 活性 19 35 46 64 79 86 100 94 表 2
PH 4 5 6 7 8 9 10 11 12 残存活性 0 100 100 100 100 100 100 100 0
0 (4)至適温度
至適温度の測定法:
基質として 1%のカゼイン及び 2mM EDTA (ethylenedia ine tetraacetic acid、 エチレンジアミン四酔酸) を含む p H 10の 25 mM Atkins- Pantinほう酸緩衝液を 5分間各 でプレインキュペート した後、 酵素を添加し 10分間各^で反応させた。 60°Cでの活性を 100として各温度での相対活性を表 3及び図 3に示す。 本酵素は 60 °C付近に至適温度を有することが分かる。 表 3 温度 (°C) 30 40 50 60 70
活性 13 25 49 100 35
(5)阻害剤の影響
以下の条件及び方法により本酵素に対する各種阻害剤の影響を調べた 5 OmMほう酸緩衝液 (pH 10) で、 本酵素を約 2 Onkatal/m 1 になるように調製し、 EDTA、 p—メルクリ安息香酸 (PCMV)、 フエニルメタンスルホニルフルオリ ド (PMSF) を表 4に示した濃度 で添加し、 3 (TC30分間インキュベート後活性を測定した。 阻害剤無 添加のものを 100%とした相対活性で表した結果を表 4に示す。 表 4 から明らかなように本酵素は PMSFにより著しく阻害されることから、 セリンプロテアーゼであることがわかる。 表 4 阻害剤 濃 度 活 性 無添加 100
PCMV ImM 100
PMS F 1 OmM 0.7
EDTA 5 mM 99
(6)分子量
S D Sポリアクリルアミ ドゲル電気泳動を行つた結果、 本酵素の分子 量は、 29000±2000と算出された。
(7)等電点
等電点ポリアクリルアミ ドゲル電気泳動法により得られた等電点は 10. 1±0.5ある。
(8)安定性
以下に示す条件のうち少なくとも 1っを充たす。
(a)界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins- Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10)、 0. ImM EDTA、 直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリ ゥム (LAS) 500 p pm) 中、 40 で 30分後に 60 %以上の残 存活性を有する。
(b)緩衝液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (p H 10)、 0. ImM EDTA) 中、 55 °Cで 15分後に 40%以上の残存活性を 有する。
(c) 界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10) 、 0.1 mM E D T A、 L A S 500 p p m) 中、 55 °Cで 15 分後に 20%以上の残存活性を有する。
2 [抗 AP I 26抗体との交差性]
本発明のプロテアーゼは、 以下の測定条件で、 好ましくは抗 A P I一 26抗体と交差反応を示す。
交差反応測定条件:
抗原である AP I— 26を 2mg/m 1に調整し、 等量のフロイント 完全アジュバンド (Freund' s complete adjuvant) と混合し、 完全に油 中水滴状 (Water in oil) にする。 2羽の雌ゥサギにこの試料 1 m 1を 0日目、 21日目、 42日目、 63日目の間隔で注射する。 70日目に 全採血し、 抗体を含む血清を調製する。
交差反応はオーク夕ロニー (Ouchterlony) 法 (Acta. Med. Scan.133,
76-79(1950)) によって評価する。 すなわち、 中央の穴に lmgZm 1 の AP I 26または同濃度の他プロテアーゼ 10 1添加し、 周りの穴 に 2の n乗系列 (n = l, 2, 3, 4, 5, 6, 7) で希釈した抗血清 を添加し、 湿潤箱に入れて 37 °Cで一晩放置し沈降線を観察する。 AP I 26に対して沈降線を形成する限界の濃度の少なくとも 4倍以上の濃 度で沈降線を形成する場合、 抗 AP I— 26抗体と交差性を有すると判 断^る o
[プロテアーゼ作用方法]
本発明のプロテアーゼをタンパク質やべプチドに作用させることによ りペプチドやアミノ酸を製造することが出来る。 また、 タンパク質やべ プチドを成分に含む目的物質に作用させることにより目的物質の加工に 使用することが出来る。 その方法としては、 従来用いられてきた方法に おいて、 従来酵素の代わりに本発明のプロテアーゼを使用する形態をと ることが出来る。 さらに、 従来酵素が失活してしまうような過酷な条件 においても、 本発明のプロテアーゼが活性を保持する限りは使用可能で ある。 例えば 50 pm以上 5 O Op p m以下の L A S存在下は勿論の
3 こと、 5 O O P p m hの L A S存在下においても使用可能である。 た だし、 好ましくは 3 0 0 0 p p m以下、 より好ましくは 3 0 0 p p m以 下で使用する。 また、温度に関しては 4 8 °C以上の高温においても使用 可能である。 ただし、好ましくは 7 5 C以下、 より好ましくは 7 0 °C以 下にて使用する。
[用途]
本発明のアル力リプロテアーゼは、 各種市販洗浄剤溶液中や界面活性 剤存在下で既存のアル力リプロテア一ゼに比べて高い安定性を有する。 また熱に対しても安定であり、 洗濯や食器洗浄で使用される温水中にお いてタンパク質の汚れを効率的に分解するので、 洗剤に配合して洗浄力 の増強を図ることが出来る。
その他の用途としては、 例えば、飼料加工、 食品加工 (魚油加工、 食 肉加工等) 、繊維加工、 耗加工、皮革加工、 コンタクトレンズ洗浄、 配管洗浄等があり、 また入浴剤や脱毛剤に配合することも出来る。
[洗浄剤組成物]
本発明により、 前記の性質を有するアルカリプロテアーゼを配合した 洗浄剤組成物が提供される。 本発明の洗浄剤組成物に配合されるアル力 リプロテアーゼの量には特に限定はないが、洗浄液 1リットル当たり、 1 0〜1 0 0 Onkatalに相当する量を配合するのが適当である。 配合量 が少なすぎると十分な洗^果の向上が得られず、 また逆に多過ぎる塲 合には酵素配合量に比して洗浄効果の向上が大きくなく、経済性の点で 好ましくない。
本発明のアル力リプロテアーゼは、 従来公知の任意の洗浄剤組成物の 他の成分を何等変更することなく配合することができる。
そのような洗浄剤#誠物の代表例をあげれば、 洗浄剤組成物重量当た り 1 0〜5 0重量%の界面活性剤、 0〜5 0重量%のビルダー、 1〜 5 0重量%のアルカリ剤あるいは無機電解質、 0. 1〜5重量%の再汚染 防止剤、酵素、 漂白剤、蛍光染料、 ケーキング防止剤及び酸化防止剤か らなる群より選ばれる少なくとも 1種以上の配合成分からなる洗浄剤組 成物が挙げられる。
界面活性剤としては石鎮、 例えば直鎖または分岐アルキルあるいはァ ルケニル硫酸塩、 アミ ド硫酸塩、 直鎖または分岐鎖のアルキル基または アルケニル基を有し、 エチレンォキサイ ド、 プロピレンォキサイド及び ブチレンオキサイ ドのうちの単独ある t、は複数成分が付加したアルキル またはアルケニルェ一テル硫酸塩のような脂肪族硫酸化物、 アルキルス ルホン酸塩、 アミ ドスルホン酸塩、 ジアルキルスルホコハク酸塩、 - ォレフィ ン、 ビニリデン型ォレフィン及び内部ォレフィンの各スルホン 酸塩のような脂肪族スルホン酸塩、 直鎖または分岐鎖のアルキルべンゼ ンスルホン酸塩のような芳香族スルホン酸塩、 直鎖または分岐鎖のアル キル基またはアルケニル基を有し、 エチレンォキサイ ド、 プロピレンォ キサイド及びブチレンォキサイ ドのうちの単独あるいは複数成分が付加 したアルキルまたはアルケニルエーテルカルボン酸塩またはアミ ド、 a 一スルホ脂肪酸塩またはエステル、 アミノ酸型界面活性剤、 アルキルま たはアルケニル酸性リン酸エステル、 アルキルまたはアルケニルリン酸 塩の如きリン酸エステル系界面活性剤、 スルホン酸型両性界面活性剤、 ベタイン型両性界面活性剤、 直鎖または分岐鎖のアルキル基またはアル ケニル基を有し、 エチレンォキサイド、 プロピレンォキサイ ド及びプチ レンォキサイドのうちの単独あるいは複数成分が付加したアルキルまた はアルケニルエーテルあるいはアルコール、 直鎖または分岐鎖のアルキ ル基を有し、 エチレンォキサイ ド、 プロピレンォキサイド及びプチレン ォキサイ ドのうちの単独あるいは複数成分が付加したポリオキシェチレ ンアルキルフエニルエーテル、 高級脂肪酸アル力ノールアミ ドまたはそ
5 のアルキレンォキサイド付加物、 ショ糖脂肪酸エステル、 脂肪酸グリセ リンモノエステル、 アルキルまたはアルケニルァミンォキサイ ド、 テト ラアルキルァンモニゥム 力チォン界面活性剤など洗剤組成物として 通常配合される界面活性剤であればいずれも使用可能であり、 陰イオン 性界面活性剤の場合の対ィオンとしてはナトリウムイオンまたは力リウ ムイオンであることが好ましい。 これらの界面活性剤は、 単独または 2 種以上の混合物として使用される。
ビルダー及びアル力リ剤あるいは無機電解質としてはオルソリン酸塩、 ピロリン酸塩、 トリポリ酸塩、 メタリン酸塩、 へキサメ夕リン酸塩、 フ イチン酸塩などのリン酸塩、 エタンー 1 , 1—ジホスホン酸、 ェタン一 1 , 1 , 2—トリホスホン酸、 ェタン一 1ーヒドロキシー 1 , 1ージホ スホン酸及びその誘導体、 エタンヒドロキシー 1 , 1 , 2—トリホスホ ン酸、 エタンー 1, 2—ジカルボキシー1, 2—ジホスホン酸、 メタン ヒドロキシホスホン酸などのホスホン酸塩、 2—ホスホノブタン一 1 , 2—ジカルボン酸、 1一ホスホノブタン一 2, 3, 4—トリカルボン酸、 α—メチルホスホノコハク酸などのホスホノカルボン酸塩、 ァスパラギ ン酸、 ダル夕ミン酸などのァミノ酸塩、 二トリ口三酢酸塩、 エチレンジ ァミン四酢酸塩、 ジエチレントリアミン五酢酸塩などのアミノポリ酔酸 塩、 ポリアクリル酸、 ポリイタコン酸、 ポリマレイン酸、 無水マレイン 酸共重合体、 カルボキンメチルセルロース塩などの高分子電解質、 ポリ エチレングリコール、 ポリビニルアルコールなどの非解離高分子、 ジグ リコール酸、 ォキシジコハク酸、 カルボキシメチルォキシコハク酸、 ク ェン酸、 乳酸、酒石酸、 ショ糖、 ラク トースなどのカルボキシメチル化 物、 ペンタエリスリ トールのカルボキシメチル化物、 ダルコン酸のカル ボキシメチルイ匕物、 ベンゼンポリカルボン酸、 シユウ酸、 リンゴ酸、 ォ キシジコハク酸、 ダルコン酸などの有機酸塩、 ゼォライトなどのアルミ
6 ノケィ酸塩、 炭酸塩、 セスキ炭酸塩、 硫酸塩、 メタケイ酸塩などの無機 塩をアルカリ金属塩として用いることができる。 また、 デンプン、 尿素 などの有機物質及び塩化ナトリウム、 ベントナイトなどの無機化合物を 用いることができ、 更には有機アル力リ剤としでトリエタノールァミン、 ジエタノールァミン、 モノエタノールァミン、 トリイソプロパノールァ ミ ンなどを用いることができる。
本発明の洗浄剤組成物は、 前述の如く、 界面活性剤、本発明のアル力 リプロテアーゼ、 アル力リ剤または無機電解質を必須の構成成分として 含むが、 その他必要に応じて両性界面活性剤、 例えば過炭酸ソーダ、 過 ホウ酸ソーダなどの漂白剤、 漂白活性剤、 色素、 ビルダー、 例えばポリ ェチレングリコール、 ポリビニルアルコール、 ポリビニルピロリ ドン、 力ルボキシメチルセルロースなどの再汚染防止剤、 ケーキング防止剤、 酸化防止剤、耐食剤、蛍光増白剤、起泡増進剤、 リパーゼなどのその他 の酵素を必要に応じて含ませることができる。
本発明の洗浄剤組成物に酵素を配合する方法については特に制限はな いが、 微粉末状で配合することは、 洗剤取扱い時の発塵による洗剤使用 者や洗剤工業における作業者の安全衛^]:好ましいことではなく、 溶液 状態あるいはあらかじめ発塵性をおさえた形状に賦形しておくことが好 ましい。 この賦形は通常良く用いられるマルメ造粒、 押し出し造粒、 流 動造粒、 遠心流動造粒やその他の方法のいずれによるものであってもよ く、 本発明の洗浄剤組成物に配合する酵素の形状は特にこれらの方法に よって賦形されたものに限定されるものではない。 なお、 本発明のアル カリプロテアーゼは安定性が高いため、通常、酵素の製剤 (賦形) が行 われる温度以上の温度、 例えば 5 0°C以上での賦形も可能である。
本発明の洗浄剤組成物の具体例としては、 本発明のアル力リプロテア ーゼを添加した洗濯用洗剤や自動食器洗浄機用洗剤等の洗剤が挙げられ
7 る。 発明を実施するための最良の形態 次に実施例を挙げて説明するが、 本発明は下記の実施例に限定される ものではない。
なお、 実施例に記載の市販洗剤はすべて、 予めそれに含まれる酵素粒 剤を選別除去する等して実質的に酵素を含まないものを調製して使用し
実施例 1 :バチルス s p. (Bacillus sp. ) S D 114株の培養法
カゼイン 1%、 肉エキス 1%及びポリペプトン 1%を含有し、 かつ炭 酸ナトリウムで pH 7.5に調整した培地300 1中で35で、 66時 間振とう培養し、 培養液中に酵素を分泌生産させた。 この培養液を、 4 C、 1000Gで遠心分離し、上清をとり、 活性を沏|定したところ、 約 50 nkatal/m 1であつた。 実施例 2 : AP I—26酵素精製法
実施例 1で得られた 物培養液の上清を除菌膜処理し、 ついで限外 ろ過膜により酵素を濃縮した。 この濃縮液を 30〜 60%飽和の硫安塩 析を行った。 さらに得られた沈殿を ImM CaC l2 を含む 25mM トリス—塩酸緩衝液 PH 7.5に溶解し、 同緩衝液で透析した。 続いて該 溶液を ρΗ 7.5で CMセル口ファイン (CM-cellulofine) C— 500 カラム (生化学工業製) に吸着させ、 ImM CaC を含む 0〜1 M KC 1 J¾勾配法により溶出し、比活性がイオン交換クロマトダラ フィ一前の約 8倍に上昇した酵素画分を回収した。 このサンプルを用い て SDSポリアクリルアミ ド電気泳動を行ったところ単一バンドとして
8 検出された c 実施例 3 :温度安定性
O.lmM EDTAを含む pH 10の 5 OmM Atkins- Pantin ほう 酸緩衝液に約 2 Onkatal/ml濃度になるように本発明の酵素 (AP I 2 6)、 Subtilisin膽 9 (NCIB10309株の産する酵素) 、 PB92 (バチ ルス PB 92株の産する S^)、 SD521 (バチルス SD521株の 産する酵素) を加え、 55°Cでインキュベートする。 経時的にサンプリ ングし、 残存活性を 30°Cで測定した。 熱処理なしの活性を 100とし たときの各時間での残存活性を表 5に示す。 但し、 Subtilisin 10309、 PB92、 SD521はそれぞれ特公昭 51-8401号、 特開昭 51-125407 号、 特開平 3- 191781号に記載の方法で調製した。 表 5及び図 4から分か るように A P I 26は優れた温度安定性を有する。 表 5:温度安定性 (55°C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 70 43 25 30
Subtilisin 10309 100 4 3 3 3
PB 92 100 5 3 4 3
SD 521 100 20 13 10 8 実施例 4 :界面活性剤安定性
本酵素の界面活性剤に対する安定性を調べた。
測定法:
0. ImM EDTAを含む 5 OmM Atkins-Pantinほう酸緩衝液 p H 10に LASを 500 p pmとなるように溶解する。 この溶液に約 20 nkatal/m 1濃度になるように酵素 (AP I 26、 Subtilisin 10309、 PB92、 SD521) を加え、 40°C及び 55°Cでインキュベートし 残存活性を 30 °Cで経時的に測定した。 時間 0での活性を 100とした ときの各時間での残存活性を表 6 (40°C)及び表 7 (55°C) に示す c AP I 26は従来の酵素に比べて格段に優れた界面活性剤安定性を有す ることが分かる。 表 6 :界面活性剤存在下での安定性 (40°C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 100 100 99 97
Subtilisin 10309 100 0 0 0 0
P B 92 100 0 0 0 0
SD 521 100 7 5 0 0 表 7 :界面活性剤存在下での安定性 (55°C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 65 40 20 15
Subtilisin 10309 100 0 0 0 0
P B 92 100 0 0 0 0
SD521 100 3 0 0 0 実施例 5 : AP I -26酵素の洗剤溶液中での安定性
以下の条件及び方法により市販洗剤ウルトラァリエル (Ultra Ariel) (P&G社製)、 スーパーチア一 (Super Cheer) (P&G社製) 、 夕 イド ·グリィース ·リリーシング (Tide Grease Releasing) (P&G 社製) 溶液中での本酵素の安定性を調べた。 50mM Atkins- Pantinほ う酸緩衝液 PHI 0 50 ppm C a +洗剤濃度 ΙΟΟΟρ p mの溶液で 本酵素 A P I 26及び他歸 Subtilisin 10309、 PB92、 SD I 52 1を約 2 Onkatal/m 1になるように加え、 55°Cまたは 40°Cでイン キュベートし、 残存活性を 30°Cで経時的に測定した。 時間 0での活性 を 100とした時の各時間での残存活性を表 8〜 10及び図 5〜図 7に 示す。 この結果から A P I 26は他の酵素と比較して著しく洗剤溶液中 で安定性が高いことが分かる。 表 8 : ウルトラァリエル (Ultra Ariel) ( 55 °C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 90 82 75 65
Subtil isin 10309 100 75 48 35 22
P B 92 100 73 46 33 21
SD521 100 81 53 44 31 表 9 :スーパ'一チア一 (Super Cheer) (55°C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 90 80 71 63
Subtil isin 10309 100 25 7 5 3
P B 92 100 26 8 5 4
SD 521 100 41 25 10 9
2 表 10:タイド*グリィース * リリーシング
(Tide Grease Releasing) (40。C) 時間 (分) 0 7.5 15 22.5 30
AP I 26 100 98 92 84 81
Subtil isin 10309 100 65 40 30 21
PB 92 100 66 41 28 20
SD521 100 72 66 52 39 実施例 6 : AP I -26 S ^含有液体洗剤洗^ 試験
実施例 1と同様にして得られた培養液の上清を除菌膜処理し、 ついで 限外ろ過膜により酵素を濃縮した後、 喷霧乾燥法により粗酵素を調製し た。 この粗酵素を用いて、市販の液体洗剤タイド (Tide) (P&G) に 添加した際の洗浄効果を調べた。 タイドに粗酵素を 10 OnkatalZm 1 となるように加え、 本酵素を配合した洗剤を調製し、 それを 40°Cで 4 週間保存した。 カルシウムイオン (Ca^) 濃度が 4 Op pmの水 1リ ットルに対し、 この 4週間保存した洗剤を 2 g添加し汚染布を洗浄後、 白度を測定し、 以下の式によって定義する洗浄効率を求めた。 なお、 汚 染布は EMP A— 116 5 cmx 5 cmのものを各 10枚用いた。 洗浄効率 ( ) = (洗濯後の布の白度—汚染布の白度) / (非汚染布 の白度一汚染布の白度) X 100
対照として SD521も同時に試験した。 結果を表 11に示す。 この 結果から液体洗剤中に AP I 26を添加することは有効であることが分 力、る。 表 11 酵素 洗浄効率 (%)
AP I 26 62
Subtilisin 10309 55
PB92 54
SD521 58
無添加 52 実施例 7 : AP I-26酵素含有自動食器洗浄機用洗剤の洗浄性試験 実施例 6に記載の AP I—26粗酵素を用いて、 自動食器洗浄機での 洗浄効果を調べた。
まず、 市販洗剤 (商品名ハイゥォッシュ S;株式会社ェヌシーシ一; 成分はポリエチレンアルキレンエーテル、 過炭酸ナトリウム、 炭酸塩、 硫酸塩、 有機酸塩) と A P I— 26粗酵素を重量比 20: 1の割合で混 合して酵素含有自動食器洗浄機用洗剤を調製し、 これを洗浄時 0.21%と なるように使用して以下の条件により洗浄性を試験した。
洗浄条件
使用機種:松下電器 (株) 製自動食器洗い機 (N P— 600洗浄剤水溶 液が回転ノズルから噴射され、 その噴射軌道上面に設置された食器類を 洗浄する形式のもの) 。
洗浄 : 5°C〜55°Cまで徐々に上昇させる。
使用水:硬度 3.5° DHの水、
0. οι%、
洗浄時の循環水量: 2.5リットル、
汚染皿の調製:卵黄 1 gを直径 25 cmの磁性の皿に塗布し、 一昼夜風 乾したもの 2枚を試験に供する。
[洗浄力評価法]
洗浄後の皿にアミ ドシュニッツ^応により、 皿上の紫色面積 (P1 ) を写真判定によつて測り、 汚染面積から下記の式によつて洗浄率を求め 洗浄率 (%) = { (P0 -P1 ) /P0 } x 00
但し、 P0 :皿の瞧
求めた洗浄率を表 12に示す。 対照として SD521も同時に試験した。 この結果より、 本酵素を含むサンプルは洗浄作用が強く、 今回特別に設 定した強固な汚れに対しても効果的に作用して 100%の洗浄率を示し、 自動洗浄機用洗剤の洗浄力の改善に大きく寄与していることことが分か る。
表 12 洗浄率 (%)
AP I 26 100
SD521 98
酵素無添加 80 産業上の利用の可能性
本発明のアル力リプロテアーゼは既存のアル力リプロテアーゼに比べ て各種市販洗剤溶液中や界面活性剤存在下で高い安定性を有し、 また熱 に対しても安定であり、 洗濯や食器洗浄においてタンパク質の汚れを効 率的に分解するので、洗剤に配合して洗浄力の増強を図ること力、 '出来る c また、 蛋白質やべプチドに作用させて他のぺプチドゃァミノ酸を製造 する際、 その安定性か^いために経済的なプロセスが可能となる。 本発明のバチルス s p . (Bacillus sp. ) S D 1 1 4株及びその変異株 は、 取扱い易い中温菌であり、 本発明のアルカリプロテアーゼの生産等 において有用である。
また、 バチルス (Bacil lus) 属に属する微生物またはその変異株を培 養する本発明のプロテアーゼの製造方法により本発明のアルカリプロテ ァ一ゼを効率良く生産することが出来る。

Claims

請求の範囲
1. 以下の (a)〜(c) の少なくとも 1つの条件を充たすアルカリ プロテアーゼ:
(a)界面活性剤溶液 ( 50 m M Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 ( p H
10)、 0.1 mM EDTA、 L AS 500 p pm) 中、 40°Cで 30 分後に 60%以上の残存活性を有する;
(b)緩衝液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10) ; 0.1 mM E D T A) 中、 55でで 15分後に 40 %以上の残存活性を 有する;
(c)界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins-Pantinほう酸緩衝液 (pHl
0)、 0.1 mM EDTA、 L AS 500 p pm) 中、 55°Cで 15分 後に 20%以上の残存活性を有する。 2. 以下の性質を有する請求の範囲第 1項に記載のアル力リプロテア
—ゼ:
(1)作用
タンパク質及びべプチドを加水分解する;
(2) 至適 pH
カゼインを基質とし 30°Cにて 10分間反応させたとき至適 pHは 1
2付近にある;
(3)安定 pH域
30°Cで 24時間インキュベートしたとき、 pH5〜l 1で安定であ る;
(4)至適温度
カゼインを基質とし、 pH 10で 10分間反応させたとき、 至適 が 60°C付近にある;
(5)分子量
S D Sポリアクリルアミ ドゲル電気泳動により測定した分子量は 2900 0 ±2000である;
(6)等電点
等電点ポリアクリルァミ ドゲル電気腿法による等電点は 10.1±0.5 乙、 'あ
3. バチルス (Bacillus)属に属する 物が生産する請求の範囲第 1項または第 2項のいずれかに記載のアルカリプロテア一ゼ。
4. バチルス (Bacillus) 属に属する微生物がバチルス s p . (Bacill us sp.) SD 114株 (受託番号 FEBM BP- 5736) である請求の範囲第 3 項に記載のアル力リプロテアーゼ。
5. 請求の範囲第 4項に記載のプロテアーゼと免疫学的交差性を示し、 以下の (a)〜 (c) の少なくとも 1つの条件を充たすアルカリプロテ ァーゼ:
(a)界面活性剤溶液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10) 、 0.1 mM E D T A、 L A S 500 p p m) 中、 40°Cで 30 分後に 60%以上の残存活性を有する;
(b)緩衝液 (5 OmM Atkins-Pantin ほう酸緩衝液 (pH 10)、 0.1 mM EDTA) 中、 55 °Cで 15分後に 40%以上の残存活性を 有する;
(c)界面活性剤溶液 ( 50 mM Atkins-Pant inほう酸緩衝液 (pHl
0) .0.1 mM EDTA、 LAS500ppm) 中、 55°Cで 15分 後に 2 0 %以上の残存活性を有する。
6. 請求の範囲第 1項乃至第 5項の L、ずれかに記載のプロテアーゼの 生産能を有するバチルス (Bacil lus) 属に属する 物またはその変異 株を培養し、 その培養物から該プロテアーゼを採取することを特徴とす るアル力リプロテアーゼの製造方法。
7. バチルス (Bacillus) 属に属する微生物がバチルス s p . (Bacil lH§ sp. ) S D 1 1 4株 (受託番号 FERM BP- 5736) である請求の範囲第 6 項に記載のアル力リプロテアーゼの製造方法。
8. バチルス s p . (Bacil lus sp. ) S D 1 1 4株 (受託番号 FERM BP- 5736) 及びその変異株。
9. 請求の範囲第 1項乃至第 5項の L、ずれかに記載のプロテアーゼを 含む洗浄剤組成物。
1 0. 請求の範囲第 1項乃至第 5項のいずれかに記載のプロテアーゼ を含む洗剤。
1 1. 請求の範囲第 1項乃至第 5項のいずれかに記載のプロテアーゼ を含む自動食器洗浄機用洗剤。
1 2. 請求の範囲第 1項乃至第 5項のいずれかに記載のプロテアーゼ を蛋白質またはべプチドに作用させることを特徴とするぺプチドまたは アミノ酸の製造方法。
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