TW200936148A - Methods for co-culturing cord blood derived cells with menstrual stem cells - Google Patents
Methods for co-culturing cord blood derived cells with menstrual stem cells Download PDFInfo
- Publication number
- TW200936148A TW200936148A TW097142288A TW97142288A TW200936148A TW 200936148 A TW200936148 A TW 200936148A TW 097142288 A TW097142288 A TW 097142288A TW 97142288 A TW97142288 A TW 97142288A TW 200936148 A TW200936148 A TW 200936148A
- Authority
- TW
- Taiwan
- Prior art keywords
- cells
- blood cells
- cord blood
- cell
- umbilical cord
- Prior art date
Links
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 595
- 210000004700 fetal blood Anatomy 0.000 title claims abstract description 157
- 230000002175 menstrual effect Effects 0.000 title claims abstract description 139
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 96
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 64
- 238000012258 culturing Methods 0.000 title abstract description 10
- 102100031573 Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Human genes 0.000 claims abstract description 80
- 101000777663 Homo sapiens Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Proteins 0.000 claims abstract description 80
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 51
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 51
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 33
- 210000003714 granulocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 31
- 210000002540 macrophage Anatomy 0.000 claims abstract description 26
- 238000003501 co-culture Methods 0.000 claims abstract description 23
- 230000001332 colony forming effect Effects 0.000 claims abstract description 17
- 210000003593 megakaryocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 16
- 239000002243 precursor Substances 0.000 claims abstract description 15
- 210000002360 granulocyte-macrophage progenitor cell Anatomy 0.000 claims abstract description 9
- 210000002960 bfu-e Anatomy 0.000 claims abstract 7
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 124
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 claims description 101
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 claims description 87
- 230000002338 cryopreservative effect Effects 0.000 claims description 18
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 claims description 18
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 17
- 230000001747 exhibiting effect Effects 0.000 claims description 10
- 238000001802 infusion Methods 0.000 claims description 10
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 claims description 9
- 206010036790 Productive cough Diseases 0.000 claims description 7
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 claims description 7
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 7
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims description 7
- 208000024794 sputum Diseases 0.000 claims description 7
- 241000282412 Homo Species 0.000 claims description 6
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 6
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 6
- 210000003802 sputum Anatomy 0.000 claims description 6
- 238000005422 blasting Methods 0.000 claims description 5
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 claims description 5
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 claims description 3
- 210000003643 myeloid progenitor cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 claims description 2
- 210000003423 ankle Anatomy 0.000 claims 1
- 230000003190 augmentative effect Effects 0.000 claims 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 claims 1
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000010931 gold Substances 0.000 claims 1
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 claims 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims 1
- 210000001539 phagocyte Anatomy 0.000 claims 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 abstract description 10
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 abstract 1
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 42
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 29
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 25
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 25
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 24
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 23
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 22
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 22
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 22
- 238000005138 cryopreservation Methods 0.000 description 19
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 19
- OZFAFGSSMRRTDW-UHFFFAOYSA-N (2,4-dichlorophenyl) benzenesulfonate Chemical compound ClC1=CC(Cl)=CC=C1OS(=O)(=O)C1=CC=CC=C1 OZFAFGSSMRRTDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 18
- 239000012591 Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Substances 0.000 description 18
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 16
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 16
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 15
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 14
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 13
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 12
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 12
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 12
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 12
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 11
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 10
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 10
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 9
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 9
- 208000011580 syndromic disease Diseases 0.000 description 9
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 8
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 8
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 7
- 238000011773 genetically engineered mouse model Methods 0.000 description 7
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 7
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 7
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000011325 microbead Substances 0.000 description 7
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonia chloride Chemical compound [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 6
- 230000005906 menstruation Effects 0.000 description 6
- 238000007747 plating Methods 0.000 description 6
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 6
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 6
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 5
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 5
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 5
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 5
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 5
- 238000002660 stem cell treatment Methods 0.000 description 5
- 102100022749 Aminopeptidase N Human genes 0.000 description 4
- 102100032912 CD44 antigen Human genes 0.000 description 4
- 102100022002 CD59 glycoprotein Human genes 0.000 description 4
- 102100027221 CD81 antigen Human genes 0.000 description 4
- 102100037904 CD9 antigen Human genes 0.000 description 4
- 206010010356 Congenital anomaly Diseases 0.000 description 4
- 102000016911 Deoxyribonucleases Human genes 0.000 description 4
- 108010053770 Deoxyribonucleases Proteins 0.000 description 4
- 108010054147 Hemoglobins Proteins 0.000 description 4
- 102000001554 Hemoglobins Human genes 0.000 description 4
- 101000757160 Homo sapiens Aminopeptidase N Proteins 0.000 description 4
- 101100220044 Homo sapiens CD34 gene Proteins 0.000 description 4
- 101000868273 Homo sapiens CD44 antigen Proteins 0.000 description 4
- 101000897400 Homo sapiens CD59 glycoprotein Proteins 0.000 description 4
- 101000914479 Homo sapiens CD81 antigen Proteins 0.000 description 4
- 101000994369 Homo sapiens Integrin alpha-5 Proteins 0.000 description 4
- 101000994365 Homo sapiens Integrin alpha-6 Proteins 0.000 description 4
- 101000935043 Homo sapiens Integrin beta-1 Proteins 0.000 description 4
- 102100032817 Integrin alpha-5 Human genes 0.000 description 4
- 102100032816 Integrin alpha-6 Human genes 0.000 description 4
- 102100025304 Integrin beta-1 Human genes 0.000 description 4
- 102000003729 Neprilysin Human genes 0.000 description 4
- 108090000028 Neprilysin Proteins 0.000 description 4
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 4
- 210000001766 X chromosome Anatomy 0.000 description 4
- 208000007502 anemia Diseases 0.000 description 4
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 4
- 239000002771 cell marker Substances 0.000 description 4
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 4
- 239000002360 explosive Substances 0.000 description 4
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 4
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 229920000609 methyl cellulose Polymers 0.000 description 4
- 239000001923 methylcellulose Substances 0.000 description 4
- 210000001616 monocyte Anatomy 0.000 description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 4
- 102100031585 ADP-ribosyl cyclase/cyclic ADP-ribose hydrolase 1 Human genes 0.000 description 3
- 102100024222 B-lymphocyte antigen CD19 Human genes 0.000 description 3
- 102100025222 CD63 antigen Human genes 0.000 description 3
- 239000012981 Hank's balanced salt solution Substances 0.000 description 3
- 101000777636 Homo sapiens ADP-ribosyl cyclase/cyclic ADP-ribose hydrolase 1 Proteins 0.000 description 3
- 101000980825 Homo sapiens B-lymphocyte antigen CD19 Proteins 0.000 description 3
- 101000934368 Homo sapiens CD63 antigen Proteins 0.000 description 3
- 101001078143 Homo sapiens Integrin alpha-IIb Proteins 0.000 description 3
- 101000599852 Homo sapiens Intercellular adhesion molecule 1 Proteins 0.000 description 3
- 101000946889 Homo sapiens Monocyte differentiation antigen CD14 Proteins 0.000 description 3
- 101000581981 Homo sapiens Neural cell adhesion molecule 1 Proteins 0.000 description 3
- 101000738771 Homo sapiens Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Proteins 0.000 description 3
- 101000800116 Homo sapiens Thy-1 membrane glycoprotein Proteins 0.000 description 3
- 102100025306 Integrin alpha-IIb Human genes 0.000 description 3
- 102100037877 Intercellular adhesion molecule 1 Human genes 0.000 description 3
- 102100035877 Monocyte differentiation antigen CD14 Human genes 0.000 description 3
- 102100027347 Neural cell adhesion molecule 1 Human genes 0.000 description 3
- DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N Propylene glycol Chemical compound CC(O)CO DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102100037422 Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Human genes 0.000 description 3
- 102100033523 Thy-1 membrane glycoprotein Human genes 0.000 description 3
- GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J Trypan blue Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Na+].C1=C(S([O-])(=O)=O)C=C2C=C(S([O-])(=O)=O)C(/N=N/C3=CC=C(C=C3C)C=3C=C(C(=CC=3)\N=N\C=3C(=CC4=CC(=CC(N)=C4C=3O)S([O-])(=O)=O)S([O-])(=O)=O)C)=C(O)C2=C1N GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J 0.000 description 3
- 208000005980 beta thalassemia Diseases 0.000 description 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 3
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 3
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 3
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 3
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 3
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 description 3
- 238000002826 magnetic-activated cell sorting Methods 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 3
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- 208000019838 Blood disease Diseases 0.000 description 2
- 102100024210 CD166 antigen Human genes 0.000 description 2
- 206010053138 Congenital aplastic anaemia Diseases 0.000 description 2
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 2
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 2
- 206010058314 Dysplasia Diseases 0.000 description 2
- 102100037241 Endoglin Human genes 0.000 description 2
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 101000980840 Homo sapiens CD166 antigen Proteins 0.000 description 2
- 101000881679 Homo sapiens Endoglin Proteins 0.000 description 2
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 2
- 208000029462 Immunodeficiency disease Diseases 0.000 description 2
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N Iron Chemical group [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- UQSXHKLRYXJYBZ-UHFFFAOYSA-N Iron oxide Chemical compound [Fe]=O UQSXHKLRYXJYBZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 2
- -1 L-glutamine amine Chemical class 0.000 description 2
- 206010056886 Mucopolysaccharidosis I Diseases 0.000 description 2
- 201000003793 Myelodysplastic syndrome Diseases 0.000 description 2
- 208000037538 Myelomonocytic Juvenile Leukemia Diseases 0.000 description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 2
- 239000006146 Roswell Park Memorial Institute medium Substances 0.000 description 2
- 208000002903 Thalassemia Diseases 0.000 description 2
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 2
- 210000001789 adipocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000000735 allogeneic effect Effects 0.000 description 2
- 239000003708 ampul Substances 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 2
- 210000004413 cardiac myocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 230000002648 chondrogenic effect Effects 0.000 description 2
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 208000014951 hematologic disease Diseases 0.000 description 2
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 2
- 208000018706 hematopoietic system disease Diseases 0.000 description 2
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000008938 immune dysregulation Effects 0.000 description 2
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 201000005992 juvenile myelomonocytic leukemia Diseases 0.000 description 2
- 210000002510 keratinocyte Anatomy 0.000 description 2
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 2
- 208000036546 leukodystrophy Diseases 0.000 description 2
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 230000001114 myogenic effect Effects 0.000 description 2
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 2
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 2
- 210000002826 placenta Anatomy 0.000 description 2
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 2
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 2
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 2
- 206010043554 thrombocytopenia Diseases 0.000 description 2
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 2
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WEEMDRWIKYCTQM-UHFFFAOYSA-N 2,6-dimethoxybenzenecarbothioamide Chemical compound COC1=CC=CC(OC)=C1C(N)=S WEEMDRWIKYCTQM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000010543 22q11.2 deletion syndrome Diseases 0.000 description 1
- 102100033051 40S ribosomal protein S19 Human genes 0.000 description 1
- YXHLJMWYDTXDHS-IRFLANFNSA-N 7-aminoactinomycin D Chemical compound C[C@H]1OC(=O)[C@H](C(C)C)N(C)C(=O)CN(C)C(=O)[C@@H]2CCCN2C(=O)[C@@H](C(C)C)NC(=O)[C@H]1NC(=O)C1=C(N)C(=O)C(C)=C2OC(C(C)=C(N)C=C3C(=O)N[C@@H]4C(=O)N[C@@H](C(N5CCC[C@H]5C(=O)N(C)CC(=O)N(C)[C@@H](C(C)C)C(=O)O[C@@H]4C)=O)C(C)C)=C3N=C21 YXHLJMWYDTXDHS-IRFLANFNSA-N 0.000 description 1
- 108700012813 7-aminoactinomycin D Proteins 0.000 description 1
- 208000031277 Amaurotic familial idiocy Diseases 0.000 description 1
- 206010002412 Angiocentric lymphomas Diseases 0.000 description 1
- 206010003591 Ataxia Diseases 0.000 description 1
- 206010055128 Autoimmune neutropenia Diseases 0.000 description 1
- 208000033932 Blackfan-Diamond anemia Diseases 0.000 description 1
- 208000018240 Bone Marrow Failure disease Diseases 0.000 description 1
- 206010065553 Bone marrow failure Diseases 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 208000011691 Burkitt lymphomas Diseases 0.000 description 1
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 1
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 1
- 206010010099 Combined immunodeficiency Diseases 0.000 description 1
- 208000034958 Congenital erythropoietic porphyria Diseases 0.000 description 1
- 208000028702 Congenital thrombocyte disease Diseases 0.000 description 1
- 208000000398 DiGeorge Syndrome Diseases 0.000 description 1
- 201000004449 Diamond-Blackfan anemia Diseases 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000017701 Endocrine disease Diseases 0.000 description 1
- 208000007209 Erythropoietic Porphyria Diseases 0.000 description 1
- 201000004939 Fanconi anemia Diseases 0.000 description 1
- 229920001917 Ficoll Polymers 0.000 description 1
- 208000015872 Gaucher disease Diseases 0.000 description 1
- 208000010055 Globoid Cell Leukodystrophy Diseases 0.000 description 1
- 208000009329 Graft vs Host Disease Diseases 0.000 description 1
- 208000006933 Hermanski-Pudlak Syndrome Diseases 0.000 description 1
- 206010071775 Hermansky-Pudlak syndrome Diseases 0.000 description 1
- 208000017604 Hodgkin disease Diseases 0.000 description 1
- 208000021519 Hodgkin lymphoma Diseases 0.000 description 1
- 208000010747 Hodgkins lymphoma Diseases 0.000 description 1
- 101000738354 Homo sapiens CD9 antigen Proteins 0.000 description 1
- 101001091385 Homo sapiens Kallikrein-6 Proteins 0.000 description 1
- 208000015178 Hurler syndrome Diseases 0.000 description 1
- 208000015204 Hurler-Scheie syndrome Diseases 0.000 description 1
- 229920001612 Hydroxyethyl starch Polymers 0.000 description 1
- 208000019758 Hypergammaglobulinemia Diseases 0.000 description 1
- 206010020649 Hyperkeratosis Diseases 0.000 description 1
- 102000001284 I-kappa-B kinase Human genes 0.000 description 1
- 108060006678 I-kappa-B kinase Proteins 0.000 description 1
- 206010061598 Immunodeficiency Diseases 0.000 description 1
- 206010052210 Infantile genetic agranulocytosis Diseases 0.000 description 1
- 102100023915 Insulin Human genes 0.000 description 1
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 1
- 102100034866 Kallikrein-6 Human genes 0.000 description 1
- 208000001126 Keratosis Diseases 0.000 description 1
- 208000028226 Krabbe disease Diseases 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- 201000005099 Langerhans cell histiocytosis Diseases 0.000 description 1
- 208000035809 Lymphohistiocytosis Diseases 0.000 description 1
- 208000030289 Lymphoproliferative disease Diseases 0.000 description 1
- 208000008955 Mucolipidoses Diseases 0.000 description 1
- 208000025915 Mucopolysaccharidosis type 6 Diseases 0.000 description 1
- QMYMCAZUEQJSED-HVDRVSQOSA-N N1C=CC2=CC=CC=C12.N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)O Chemical compound N1C=CC2=CC=CC=C12.N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)O QMYMCAZUEQJSED-HVDRVSQOSA-N 0.000 description 1
- 229920002274 Nalgene Polymers 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 208000002537 Neuronal Ceroid-Lipofuscinoses Diseases 0.000 description 1
- 208000015914 Non-Hodgkin lymphomas Diseases 0.000 description 1
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 1
- 239000004107 Penicillin G sodium Substances 0.000 description 1
- 101100263989 Saccharomyces cerevisiae (strain ATCC 204508 / S288c) MTC5 gene Proteins 0.000 description 1
- 108010016797 Sickle Hemoglobin Proteins 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- 208000022292 Tay-Sachs disease Diseases 0.000 description 1
- 102000004338 Transferrin Human genes 0.000 description 1
- 108090000901 Transferrin Proteins 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 201000009628 adenosine deaminase deficiency Diseases 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 230000001919 adrenal effect Effects 0.000 description 1
- 201000006288 alpha thalassemia Diseases 0.000 description 1
- 235000019270 ammonium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 208000036556 autosomal recessive T cell-negative B cell-negative NK cell-negative due to adenosine deaminase deficiency severe combined immunodeficiency Diseases 0.000 description 1
- 150000001540 azides Chemical class 0.000 description 1
- 239000007640 basal medium Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 230000000747 cardiac effect Effects 0.000 description 1
- 230000024245 cell differentiation Effects 0.000 description 1
- 230000006037 cell lysis Effects 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 239000002458 cell surface marker Substances 0.000 description 1
- 238000003570 cell viability assay Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 201000010902 chronic myelomonocytic leukemia Diseases 0.000 description 1
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 1
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 1
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 1
- 230000005757 colony formation Effects 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000003636 conditioned culture medium Substances 0.000 description 1
- 238000012364 cultivation method Methods 0.000 description 1
- 201000008230 cutaneous porphyria Diseases 0.000 description 1
- 201000001546 cyclic hematopoiesis Diseases 0.000 description 1
- 230000000093 cytochemical effect Effects 0.000 description 1
- 238000004163 cytometry Methods 0.000 description 1
- 201000001981 dermatomyositis Diseases 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 208000035475 disorder Diseases 0.000 description 1
- 238000007688 edging Methods 0.000 description 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 208000030172 endocrine system disease Diseases 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 description 1
- 230000000913 erythropoietic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N fluorescein-5-isothiocyanate Chemical compound O1C(=O)C2=CC(N=C=S)=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012595 freezing medium Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000003349 gelling agent Substances 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 1
- 208000024908 graft versus host disease Diseases 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 229940050526 hydroxyethylstarch Drugs 0.000 description 1
- 230000007813 immunodeficiency Effects 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 238000000099 in vitro assay Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 208000000509 infertility Diseases 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 208000021267 infertility disease Diseases 0.000 description 1
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 1
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 description 1
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 1
- 208000017476 juvenile neuronal ceroid lipofuscinosis Diseases 0.000 description 1
- 238000002350 laparotomy Methods 0.000 description 1
- 208000032839 leukemia Diseases 0.000 description 1
- 210000003041 ligament Anatomy 0.000 description 1
- 230000003520 lipogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 1
- 239000012705 liquid precursor Substances 0.000 description 1
- 208000006116 lymphomatoid granulomatosis Diseases 0.000 description 1
- 238000007885 magnetic separation Methods 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- MIKKOBKEXMRYFQ-WZTVWXICSA-N meglumine amidotrizoate Chemical compound C[NH2+]C[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO.CC(=O)NC1=C(I)C(NC(C)=O)=C(I)C(C([O-])=O)=C1I MIKKOBKEXMRYFQ-WZTVWXICSA-N 0.000 description 1
- 208000030159 metabolic disease Diseases 0.000 description 1
- 230000003458 metachromatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000004005 microsphere Substances 0.000 description 1
- 210000005087 mononuclear cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 201000002273 mucopolysaccharidosis II Diseases 0.000 description 1
- 208000005340 mucopolysaccharidosis III Diseases 0.000 description 1
- 208000000690 mucopolysaccharidosis VI Diseases 0.000 description 1
- 208000022018 mucopolysaccharidosis type 2 Diseases 0.000 description 1
- 208000011045 mucopolysaccharidosis type 3 Diseases 0.000 description 1
- 210000000653 nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 201000007607 neuronal ceroid lipofuscinosis 3 Diseases 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 1
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 1
- 235000019369 penicillin G sodium Nutrition 0.000 description 1
- 229940056360 penicillin g Drugs 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 210000001995 reticulocyte Anatomy 0.000 description 1
- 229910001112 rose gold Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000002020 sage Nutrition 0.000 description 1
- 239000001296 salvia officinalis l. Substances 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 208000002491 severe combined immunodeficiency Diseases 0.000 description 1
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 description 1
- 208000007056 sickle cell anemia Diseases 0.000 description 1
- 208000018019 sickle cell-hemoglobin c disease syndrome Diseases 0.000 description 1
- 210000001082 somatic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 1
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000010025 steaming Methods 0.000 description 1
- 238000011476 stem cell transplantation Methods 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 229960002385 streptomycin sulfate Drugs 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 201000005990 thymic dysplasia Diseases 0.000 description 1
- 239000012581 transferrin Substances 0.000 description 1
- 210000001113 umbilicus Anatomy 0.000 description 1
- 238000009736 wetting Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
- C12N5/0647—Haematopoietic stem cells; Uncommitted or multipotent progenitors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/13—Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
- C12N2502/1352—Mesenchymal stem cells
- C12N2502/137—Blood-borne mesenchymal stem cells, e.g. Msc from umbilical cord blood
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/13—Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
- C12N2502/1352—Mesenchymal stem cells
- C12N2502/1388—Mesenchymal stem cells from other natural sources
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/24—Genital tract cells, non-germinal cells from gonads
- C12N2502/243—Cells of the female genital tract, non-germinal ovarian cells
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
200936148 九、發明說明: 【發明所屬之技術領域】 本發明大體而言係關於人類細胞培養及經由共同培養來 增強經分離細胞群體之方法。更特定言之,本發明係關於 共同培養臍帶jk衍生細胞與月經血幹細胞以獲得經擴增之 ' 表現CD3 4之臍帶jk衍生細胞的改良細胞群體。 本申請案主張2007年10月31曰申請之標題為"Methods for Co-Culturing Cord Blood Derived Cells with Menstrual ❹ Stem Cells"的美國臨時專利申請案第61/001,456號之優先 權,該案之全文係以引用的方式併入本文中。 【先前技術】 臍帶血為具有治療人體多種病症之能力的幹細胞之公認 來源。臍帶血為包括含有CD34細胞之單核細胞的造血祖 細胞之豐富來源。因為在兒童或家族成員有醫學需要之情 況下’具有經儲存之幹細胞的豐富來源存在潛在益處,所 以家族可決定收集臍帶血。 © 臍帶血(Cord blood,亦稱為umbilical cord blood)為在出 生之時保留於臍帶及胎盤中之血液。此血液為幹細胞之豐 - 富來源,可將其收集、處理且低溫保藏以用於潛在之未來 用途。臍帶血幹細胞為有益的,因為其具有高植入率,較 能耐受組織失配,具有較低比率之嚴重移植物抗宿主疾病 (在幹細胞移植中之主要併發症)且極少經潛伏性病毒污 染。 可以臍帶血治療之人類缺乏症之數目在過去十年中已顯 135827.doc 200936148 著增長。舉例而言,已使用臍帶血細胞來治療各種形式之 癌症、與骨髓衰竭(bone marrow failure)相關之症候群、血 液病症、代謝病症、免疫缺乏病症及其他疾病病況中之至 少70種形式。舉例而言,已使用臍帶血細胞來治療以下疾 病:急性淋巴母細胞白企病(ALL)、急性骨髓白血·病 (AML)、伯基特氏淋巴瘤(Burkitt's lymphoma)、慢性骨髓 - 白血病(CML)、青少年骨髓單核細胞性白血病(JMML)、噬 血細胞淋巴組織細胞增生症(Hemophagocy ti c ❿ lymphohistiocytosis)、非霍奇金氏淋巴瘤(Non-Hodgkin’s lymphoma)、霍奇金氏淋巴瘤、郎格罕細胞(Langerhan's cell)組織細胞增生症、淋巴瘤樣肉芽腫病、骨髓發育不良 症候群(MDS)、慢性骨髓單核細胞性白血病(CMML)、無 巨核細胞性血小板減少症 (Amegarakyocytic thrombocytopenia)、自體免疫嗜中性球減少症(嚴重)、先 天性紅細胞生成不良性貧血、週期性嗜中性球減少症、戴 布二氏(Diamond-Blackfan)貧血、埃文氏症候群(Evan's ❹ syndrome)、範可尼貧血(Fanconi anemia)、格蘭茨曼疾病 (Glanzmann’s disease)、青少年皮肌炎、科命特曼症候群 - (Kostmann's syndrome)、紅血球發育不全、斯沃奇曼症候 . 群(Schwachman syndrome)、嚴重再生不全性貧血、先天 性含鐵胚血球貧血、橈骨缺失性血小板減少症(TAR症候 群)、先天性角化不全、鐮狀細胞性貧血(血色素SS)、 HbSC疾病、鐮狀β -地中海貧血、嚴重α-地中海貧血(胎兒 水腫)、嚴重β-地中海貧jk (庫利氏貧血(Cooley's 135827.doc 200936148 anemia))、中間型β-地中海貧血、Ε-β地中海貧血、Ε-β +地 中海貧血、腎上腺腦白質營養不良、高雪氏病(Gaucher's disease)(嬰兒)、異染性腦白質營養不良、克拉貝疾病 (Krabbe disease)(球狀細胞腦白質營養不良)、貢特爾疾病 (Gunther disease)、哈布二氏症候群(Hermansky-Pudlak syndrome)、胡爾勒症候群(Hurler syndrome)、胡沙二氏症 • 候群(Hurler-Scheie syndrome)、亨特症候群(Hunter syndrome) > 山菲立普症候群(Sanfilippo syndrome)、馬拉 〇 二氏症候群(Maroteaux-Lamy syndrome)、II型、III型黏脂 質症(Mucolipidosis)、α甘露糖症(Alpha mannosidosis)、A 型及B型紐匹二氏症候群(Neumann Pick Syndrome)、山朵 夫症候群(Sandoff Syndrome)、泰薩二氏疾病(Tay Sachs Disease)、巴滕疾病(Batten disease)(遺傳性神經性類蝶脂 褐質病)、萊·萘二氏疾病(Lesch-Nyhan disease)、共濟失調 性毛細企管擴張症(Ataxia telangectasia)、慢性肉芽腫病、 迪喬治症候群(DiGeorge syndrome)、IKK γ缺乏症、免疫 ® 調節異常多内分泌病X染色體相關(Immune dysregulation polyendocrineopathy X-linked)、II型黏脂質症、先天性資 - 趙粒細胞缺乏症(Myelokathesis)、X染色體相關之免疫缺 . 乏、嚴重聯合免疫缺乏、腺苷去胺酶缺乏症、維-奥二氏 症候群、X染色體相關之無γ球蛋白血症、X染色體相關之 淋巴增生性疾病、歐曼症候群(Omenn's syndrome)、網狀 細胞發育異常(Reticular dysplasia)、胸腺發育異常(Thymic dysplasia)、白血球黏著性缺乏症及骨石化病。 135827.doc 200936148 存在關於臍帶血細胞收集及在人類病症治療中 π τ <用途的 限制。首先’臍帶血細胞僅可在出生之後立即收集。此對 臍帶血之可收集次數造成顯著限制。其次,以含有有限量 之幹細胞的小體積收集臍帶血。某些病症需要輸注或移植 大量幹細胞。少量可收集之臍帶血細胞使得將此等細胞用 於需要大量細胞之療法並不可行。 正進行研究來發展進步以克服臍帶血細胞之限制。已開 發了組合多個臍帶血單位或在移植之前在單一臍帶血單位 中擴增幹細胞之技術。開發此等技術以解決因具有過少幹 細胞群體而無法治療病症之問題。即使存在發展,亦證明 臍帶血幹細胞在細胞培養物中難以擴增。豐富但受限之幹 細胞來源對病症治療而言仍具有限制。 已開發活體外檢定系統以對紅血球、粒細胞、單核細 胞-巨噬細胞及巨核細胞骨髓細胞系之多潛能祖細胞及系 受限祖細胞定量。當在合適半固體基質中培養時,稱為群 落形成細胞(CFC)之個別祖細胞增殖以形成離散細胞簇或 群落。藉由將細胞懸浮液置於半固體培養基(諸如補充有 營養素及細胞活素之曱基纖維素或膠原蛋白)中、接著培 月來進行CFC檢定。接著,基於群落内之一或多類造血系 細胞之形態學識別來對CFC分類且計數。可藉由光顯微術 或藉由採集個別群落且接著使用細胞化學及免疫細胞化學 方法將細胞染色來當場進行群落評估及計數。 已將包括曱基纖維素之各種膠凝劑用於CFc檢定。甲基 纖維素為形成具有良好光學透明度之穩定凝膠的相對惰性 135827.doc 200936148 之聚合物。其通常用於補充有包括胎牛血清(FBS)、牛血 清白蛋白(BSA)、2-酼基乙醇、胰島素、運鐵蛋白及重組 細胞活素之化合物的培養基中或作為群落刺激因子來源之 改良性培養基(conditioned medium)中。與其他類型之半固 體基質相比,基於曱基纖維素之培養基允許紅血球系細胞 之較佳生長,因此允許在相同培養物内檢定紅金球、粒細 • 胞、單核細胞及多潛能CFC。此培養基允許偵測人類群落 形成單位-紅血球(CFU-E)、爆式形成單位-紅血球(BFU-φ E)、CFU-粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)及CFU-粒細胞、紅血 球、巨噬細胞、巨核細胞(CFUGEMM)且對其計數。 儘管已產生進步,但仍需要改良臍帶幹細胞擴增以製造 較多用於治療人類病症之幹細胞的方法。本發明係關於滿 足此需要。 【發明内容】 本發明係基於以下發現,即來自臍帶血之幹細胞在與月 經血細胞群體共同培養時以足夠大之數目增殖。該發現已 ® 展示月經血幹細胞在具有臍帶血幹細胞之培養物中提供支 持功能以增強臍帶血細胞增殖。根據用於收集、極冷保藏 - (cryopreservation)及儲存之目前行業標準來收集臍帶血細 . 胞。可根據美國專利公開案第20080241113號之教示來收 集用於與臍帶血幹細胞共同培養之月經血幹細胞。臍帶血 細胞與月經血細胞之共同培養產生促進表現CD34、SSEA4 及HLA-II之細胞擴增之培養環境。 美國專利公開案第20080241113號之教示提供多種用於 135827.doc -10- 200936148 收集適用於本發明中之月經血幹細胞群體的方法。用於共 同培養之月經血幹細胞可自新鮮或經極冷保藏之月經血幹 細胞獲得。月經血幹細胞可關於CD117或其他細胞表面標 圮經分離且亦可經由細胞培養來擴增。月經血幹細胞亦可 關於某些細胞標記經分離且接著經培養以便擴增。美國專 利公開案第20080241113號中所述之月經血幹細胞的任何 ' 群體均可用於本發明之共同培養方法中。 因此’本發明提供共同培養臍帶血細胞與月經血細胞以 ® 改良臍帶也細胞之增殖的方法。 在一相關態樣中,本發明提供表現CD34之人類細胞的 群體,其係獲自人類臍帶血細胞在具有促進人類膪帶血細 胞群體倍增之人類月經血細胞的合適培養條件中之擴增。 細胞之群體表現SSEA4及HLA-II。 本發明之細胞的群體可懸浮於冷凍保藏劑、培養基、生 長培養基或分化培養基之任一者中。 本發明之表現CD34之人類細胞的群體係由於至少兩次 ® 或兩次以上群體倍增而產生的。 本發明之細胞的群體能夠產生以下任一者:群落形成單 - 位、群落形成單位粒細胞(CFU-GM)巨噬細胞、爆式形成 • 單位紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨嗤細 胞巨核細胞(CFU-GEMM)血液系前驅體細胞。 在另一態樣中’本發明亦提供藉由以下方法獲得的表現 CD3 4之人類腾帶血細胞的群體’該方法包含在適用於臍 帶血細胞擴增之條件下共同培養足量臍帶血幹細胞與足量 135827.doc 200936148 月經血幹細胞,且接著經由至少兩次群體倍增使足量臍帶 血細胞在培養物中增殖。使足量腾帶血細胞在培養物中增 殖之步驟包含使臍帶血細胞生長以產生以下任一者:群落 形成單位、群落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆 式形成單位紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球 ' 巨噬細胞巨核細胞血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。 • 在一實施例中,本發明之方法可包含使足量臍帶血細胞 在培養物中生長以產生以下任一者之步驟:群落形成單位 ❹ (CFU)、群落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形 成單位紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬 細胞巨核細胞血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。 在又一實施例中,本發明之方法可包含在使足量臍帶企 細胞在培養物中增殖之後分離表現CD34之臍帶血細胞的 步驟。 . 在另一實施例中,本發明之方法可包含在使足量臍帶血 細胞在培養物中增殖之後極冷保藏表現CD34之人類臍帶 ❹ 血細胞之群體的步驟。 藉由本發明之方法獲得的表現CD34之人類臍帶血細胞 • 的群體在使足量臍帶血細胞在合適培養條件下增殖之後亦 可表現CD34、SSEA4及HLA-II中之至少一者。 在又一態樣中,本發明提供獲得經擴增之表現CD34之 人類臍帶血細胞的方法。本發明之方法包含以下步驟:在 適於促進臍帶血細胞擴增之共同培養條件下以足量月經血 細胞接種足量臍帶血細胞,且在支持臍帶血細胞的至少兩 135827.doc -12· 200936148 次或兩次以上群體倍增之培養條件下共同培養臍帶血細胞 與月經血細胞。 在一實施例中,共同培養表現CD34之人類臍帶血細胞 包含擴增臍帶血細胞以表現SSEA4及HLA-II中之至少一或 多者。 ' 在另一實施例中,本發明之經擴增人類臍帶血細胞表現 高含量之CD34。另外,本發明之臍帶血細胞之共同培養 包含擴增臍帶血細胞以產生以下任一者:群落形成單位、 φ 群落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位 紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬細胞巨 核細胞血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。 在替代性實施例中,本發明之方法可包含以下其他步驟 中之至少一者:關於CD34免疫選擇經擴增人類臍帶血細 胞,自培養物分離經擴增人類臍帶血細胞以便輸注於人類 中,極冷保藏經擴增人類臍帶血細胞或使經擴增臍帶血細 胞分化為細胞系。 ® 在又一實施例中,本發明之方法包含使經擴增人類臍帶 血細胞生長以產生以下任一者之步驟:群落形成單位、群 • 落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位紅 血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核 細胞(CFU-GEMM)血液系前驅體細胞。 【實施方式】 參考圖1-6,本發明提供共同培養臍帶血細胞與月經血 細胞以擴增表現CD34之細胞之數目的方法。亦提供藉由 135827.doc •13- 200936148 本發明之方法獲得的經擴增之表現CD34之人類細胞的組 合物。 全臍=血為包括含有CD34+細胞之單核細胞的造血祖細 胞之豐田來源。臍帶企幹細胞包含包括細胞之單核 細胞。臍帶血幹細胞係獲自在分娩嬰兒後但一般在已分挽 胎盤之前自臍帶立即提取之全臍帶血。錢之時刻為收集 新生兒幹細胞之唯—機會° ^收集對於陰道分挽及剖腹 刀娩均為女全的。為收集臍帶血,將臍帶血自臍帶吸取至 血液收集袋中。將臍帶血封裝於運送材料中且運送至實驗 至中以便在收集之36至48小時内加以處理。 在嬰兒出生之後,在夾掉臍帶後自臍帶收集全血。全臍 帶血之體積可為約110 mle在行業標準下將所收集之臍帶 血樣品運送至實驗室以進行處理。 在無菌條件下使用密度梯度分離(Ficoll/Hypaque)來處理 腾帶A以分離含有表現CD34之細胞群體的單核細胞。將 臍帶血等分至無菌50 ml管中。在470 g下將管離心約15分 鐘。在離心之後,壓緊細胞(packe(j ceii)應在每體積i :3比 率下。可在離心之後自管移除血漿,或可將DpBS添加至 管中以達成1:3之壓緊細胞與體積之比率。各管應具有不 大於約35 ml之體積。各管下方置放有1〇 ml LSM。將各管 在400 g下離心約30分鐘。移除血漿頂層。移除含有單核 細胞及血漿之下一層且將其轉移至另一 50 ml管中。 應使用含有L-麩胺醯胺之RPMI01640 IX使50 ml管中之 細胞懸浮直至約45 ml之體積,其中RPMI與細胞混合物之 135827.doc • 14· 200936148 比率為約1:2。可在470 g下將具有細胞懸浮液之管離心約 15分鐘。在離心之後,移除上清液。添加少量rpmi以使 小球再懸浮。將細胞懸浮液轉移至15 ml管中。在15 ml管 中將細胞懸浮液在400 g下離心約15分鐘。傾析上清液且 使用RPMI使小球再懸浮直至5 ml。逐滴添加5 ml DMSO/ 自體血漿(1 ml DMSO及4 ml自體血漿)。在控制速率冷凍 器中將DMSO/自體血漿中之細胞懸浮液的溫度降至約 _85°C。將管置於在約_185°C或-185。(:以下之液氮槽中》 ® 參考根據美國專利公開案第20080241113號之任一方法 自月經收集之細胞來使用短語"月經血細胞"。月經血細胞 包含表現包括(但不限於)CD9、CD10、CD13、CD29、 CD44、CD49e、CD49f、CD59、CD81、CD105、CD166及 I類HLA之細胞標記或細胞内標記中的至少一者,同時以 低含量表現或不表現CD3及MHC II的細胞《儘管將細胞之 上述特徵提供為例示性特徵,但在美國專利公開案第 ❹ 200 8 0241113號之整個揭示案中提供月經血細胞之額外及 替代性細胞表面特徵,包括(但不限於)其中任何表及圖中 所k供的特徵(在極冷保藏之前及之後、在CD u 7選擇之前 及之後、在細胞培養之前及之後)或美國專利公開案第 • 20080241113號中所揭示之任何組合。另外,美國專利公 開案第20080241113號係以全文引用的方式併入本文中, 且提供關於本發明之月經血細胞的其他揭示内容。根據美 國專利公開案第20080241113號之教示,用於與臍帶血幹 細胞共同培養之月經血細胞可自月經收集,濃縮且極冷保 135827.doc -15· 200936148 藏,且稍後根據本發明之方法來解來。或者,美國專利公 開案第20〇8〇241113號之教示提供獲得適用於本發明中: 月經血細胞的多種方法。. 儘管術語"細胞"在本申請案中可以單數含義使肖,但術 語••細胞"亦可用以指用於本發明之一個以上細胞。 認識到由於某些細胞分化為多種獨特細胞類型之能力, • 該等細胞在本質上為多能的。多能細胞具有分化為多種不 同哺乳動物細胞類型之能力。舉例而言,用於本發明中之 ^ 月經血細胞展示分化為各種細胞系之潛力,該等細胞系諸 如神經系、心臟生成系、軟骨生成系、脂肪生成系及成骨 系。 本發明之方法及組合物 出於多種原因,將經擴增CD34細胞用於治療用途可為 有益的》詳言之,經擴增CD34細胞(a)與其他臍帶血細胞 擴增方法相比需要使用較少臍帶血細胞來增殖,(b)在與月 經血細胞之共同培養中增殖’(c)能夠自體應用,(d)能夠 同種異體應用,及(e)可用作定製之再生保健溶液之來源。 本發明提供表現CD34之人類細胞的群體,其係獲自人 類臍帶血細胞在具有促進人類臍帶血細胞群體倍增之人類 ,月經血細胞之合適培養條件中之擴增。細胞之群體亦表現 SSEA4及 HLA-II。 本發明之細胞的群體可懸浮於冷凍保藏劑、培養基、生 長培養基或分化培養基之任一者中。 本發明之表現CD34之人類細胞的群體係由於至少兩次 135827.doc -16- 200936148 或兩次以上群體倍增而產生的。 本發明之細胞的群體能夠產生以下任一者:群落形成單 位、群落形成單位粒細胞(CFU-GM)巨噬細胞、爆式形成 單位紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨嗤細 胞巨核細胞(CFU-GEMM)血液系前驅體細胞。 ' 本發明亦提供藉由以下方法獲得的表現CD34之人類臍 帶血細胞的群體,該方法包含在適用於臍帶血細胞擴增之 條件下共同培養足量臍帶血幹細胞與足量月經血細胞,且 〇 接著經由至少兩次群體倍增使足量臍帶血細胞在培養物中 增殖。使足量臍帶企細胞在培養物中增殖之步驟包含使臍 帶血細胞生長以產生以下任一者:群落形成單位、群落形 成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位紅血球 (BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核細胞 血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。 本發明之方法可包含使足量臍帶血細胞在培養物中生長 以產生以下任一者之步驟:群落形成單位(CFU)、群落形 ® 成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位紅血球 (BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核細胞 血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。 本發明之方法可包含在使足量臍帶血細胞在培養物中增 殖之後分離表現CD34之臍帶血細胞的步驟。 本發明之方法可包含在使足量臍帶血細胞在培養物中增 殖之後極冷保藏表現CD34之人類臍帶血細胞之群體的步 驟。 135827.doc -17· 200936148 藉由本發明之方法獲得的表現CD34之人類臍帶血細胞 的群體在足量臍帶血細胞在合適培養條件下增殖之後亦可 表現CD34、SSEA4及HLA-II中之至少一者。 本發明提供獲得經擴增之表現CD34之人類臍帶血細胞 的方法。本發明之方法包含以下步驟:在適於促進臍帶血 ' 細胞擴增之共同培養條件下以足量月經血細胞接種足量臍 • 帶企細胞,且在支持腾帶血細胞的至少兩次或兩次以上群 體倍增之培養條件下共同培養臍帶血細胞與月經血細胞。 〇 共同培養表現CD34之人類臍帶血細胞包含擴增臍帶血 細胞以表現SSEA4及HLA-II中之至少一或多者。本發明之 經擴增人類臍帶血細胞表現高含量之CD34。 本發明之臍帶血細胞之共同培養包含擴增臍帶血細胞以 產生以下任一者:群落形成單位、群落形成單位粒細胞巨 噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位紅血球(BFU-E)及群落形 成單位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核細胞血液系前驅體細胞 (CFU-GEMM)。 ® 本發明之方法可包含以下其他步驟中之至少一者:關於 CD34免疫選擇經擴增人類臍帶血細胞,自培養物分離經 擴增人類臍帶血細胞以輸注於人類中,極冷保藏經擴增人 類腾帶血細胞,或使經擴增臍帶血細胞分化為細胞系。 本發明之方法包含使經擴增人類臍帶血細胞生長以產生 以下任一者之步驟:群落形成單位、群落形成單位粒細胞 巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單位紅血球(BFU-E)及群落 形成單位粒細胞紅血球巨嗤細胞巨核細胞(CFU-GEMM)血· 135827.doc -18- 200936148 液系前驅體細胞。 製備用於培養之細跑 臍帶血細胞樣品及月經血細胞樣品可在儲存中經極冷保 藏。或者,臍帶血細胞樣品及月經血細胞樣品中任一者或 兩者在自所收集之原始血液樣品處理之後可為新鮮的。在 極冷保藏臍帶血細胞樣品及月經血細胞樣品中任一者或兩 者之情況下’必須使經極冷保藏之臍帶血細胞及/或月經 血細胞解凍以為培養作準備。在臍帶血細胞樣品及月經血 細胞樣品中任一者或兩者新鮮之情況下,可製備細胞以進 行培養。 使經極冷保藏之細胞解凍的方法包含使經極冷保藏之細 胞解凍且接著經由離心來洗滌該等細胞之步驟。自極冷保 藏移除一小瓶細胞且在約37-4(TC水浴中攪拌該小瓶直至 剩餘幾片冷束樣品’藉此使經極冷保藏之細胞解束。經極 冷保藏之細胞不應完全解凍。將部分解凍之細胞轉移至具 有DNase(每1〇〇 ml 10滴)之冷凍chang氏完全培養基中且藉 由倒置使其輕微混合。Chang氏完全培養基應以5:1之比率 與部分解凍細胞混合。舉例而言,使25 ml Chang氏完全培 養基與5 ml解凍細胞組合。此時,可移除約1〇〇_2〇〇以之 Chang氏完全培養基及解柬細胞樣品以用於下文進一步詳 細描述之流式細胞儀分析。 懸浮解凍細胞之Chang氏完全培養基溶液可接著經受在 約環境溫度下在約120 g下離心約5分鐘之第一步。一旦離 心元成’即移除上清液且藉由溫和倒置使細胞小球及可能 135827.doc •19· 200936148 存在之其他碎片再懸浮於無DNase之Chang氏完全培養基 中。懸浮於Chang氏完全培養基中之細胞可接著經受在約 環境溫度下在約120 g下離心約5分鐘之第二步。一旦第二 離心步驟完成,即移除上清液且使細胞小球再懸浮於7 ml 之15% FBS Chang氏生長培養基中。
Chang氏完全培養基包含MEM α培養基、Chang B、 Chang C、盤尼西林/鏈黴素(Penicillin/Streptomycin)、L-麩胺醯胺及ES-FBS。藉由組合650 ml MEM α培養基、180 ❿ ml Chang Β(基礎培養基)(1 8% ν/ν)、20 ml Chang C(2% v/v)、10 ml盤尼西林/鏈黴素(10,000單位/ml盤尼西林G鈉 及10,000 pg/ml鏈黴素硫酸鹽)、10 ml L-麩胺醯胺200 mM (10〇χ)及 150 ml ES-FBS(19% ν/ν)來製備 Chang 氏完全培養 基。 可使用解凍及洗滌經極冷保藏之細胞之方法來製備經極 冷保藏之臍帶企細胞及月經血細胞以進行培養。 經由在燒瓶中培養來擴增細胞 ❹ 將經解凍或新鮮月經血細胞塗鋪於經解凍或新鮮臍帶血 細胞上以在燒瓶中共同培養細胞。可在T-25非經組織培養 物處理之燒瓶中共同培養臍帶血細胞與月經血細胞。細胞 . 不應超過每個燒瓶約10,000,000個細胞。將足夠數目之臍 帶血細胞與足夠數目之月經血細胞在燒瓶中共同培養。在 一實施例中,臍帶血細胞可介於約1,〇〇〇個細胞至約1 〇,〇〇〇 個細胞之範圍内,而月經血細胞可介於約10,000個細胞至 約50,000個細胞之範圍内。其他量之臍帶血細胞及月經血 135827.doc -20- 200936148 細胞亦可為足夠的,只要月經血細胞提供促進臍帶血細胞 擴增之支持功能即可。 先刖培養之臍帶血細胞及月經血細胞可以約2,〇〇〇個/cm2 經塗鋪,具有約48小時之繼代時間。若塗鋪更多細胞,則 細胞可在約24小時内經歷繼代。臍帶血細胞及月經血細胞 可塗鋪於分別具有約7 m卜約15 ml及約30 ml Chang氏完 全培養基之T-25、T-75及T-175非經組織培養物處理之燒瓶 中。 〇 臍帶企細胞與月經血細胞之共同培養可在C02培育箱中 在約36 C至約38°C下培育,直至細胞以約7〇_8〇%融合。 可藉由胰蛋白酶化(trypsinizing)步驟使臍帶血細胞與月 經血細胞之共同培養物與燒瓶分離。當顯而易見共同培養 之濟帶血與月經血細胞準備分離時,應吸出燒瓶中之培養 基且接著以對於T-25燒瓶而言體積為約5 ml、對於T-75燒 瓶而言體積為約10 ml或對於T-157燒瓶而言體積為約25 ml 之無鈣或鎂之DPB S洗滌非組織培養燒瓶。在洗滌之後, 翁 可以TrypLE酶在約36。(:至約38°C下對於T-25燒瓶而言以約 1.5 ml之體積、對於T-75燒瓶而言以約3 ml之體積且對於 175燒瓶而言以約6 ml之體積來塗佈細胞。TrypLE酶可與 細胞一起在C〇2培育箱中在約36°C至約38。(:下培育約5分 鐘。在培育之後’可移出細胞且可以相同體積之首先用於 塗佈細胞之TrypLE酶來稀釋燒瓶之内容物。接著,可將含 有懸浮細胞内容物之TrypLE酶之溶液轉移至50 ml離心管 中。可使用無鈣或鎂之DPBS來洗滌燒瓶之内容物,對於 135827.doc •21 - 200936148 T-25燒瓶而言以約5 ml之體積、對於T-75燒瓶而言以約10 ml之體積且對於Τ-175燒瓶而言以約25 ml之體積進行洗 滌。用於本發明實踐中之燒瓶可為非經組織培養物處理之 燒瓶。可將約50 ml DPBS添加至含有TrypLE酶及懸浮細胞 内容物之50 ml離心管中。 ' 可將50 ml離心管在環境溫度下在約120 g下離心約5分 鐘。可移除小球之少量等分試樣(諸如20 μΐ)以用血球計手 動地或用自動化裝置進行細胞計數。在離心之後,移除且 〇 丟棄上清液,且使剩餘小球懸浮於約7 ml Chang氏完全培 養基中。 懸浮於Chang氏完全培養基中之經共同培養且經擴增之 細胞可為極冷保藏而作準備,經受關於CD34細胞之免疫 選擇,為輸注於人類中而作準備或為沿任何數目之細胞路 徑進行細胞分化而作準備。 在細胞培養之過程期間,可獲得共同培養資訊。每隔約 3天或3天以上可更換培養基。若共同培養物含有 ® 10,000,000個以上細胞,則可移除共同培養物中之細胞以 在相同培養條件下繼代培養或者根據本申請案中所述之極 - 冷保藏方法進行極冷保藏。 經由在培養盤上培養來擴增細胞 可在無菌條件下使用塗鋪技術來共同培養細胞。用於本 發明之方法中的培養基可為含有118〇?、11〇]^-08?、1111^ 3、hG-CSF、hEPO 之 Methocult 4034 以偵測 CB tiBFU-E、CFU-GM、CFU-GEMM。在約2-8°C下或在室溫下,使 135827.doc -22- 200936148 儲存在-80°C下之培養基(Meth〇Cult #4〇34)解凍。在塗鋪之 前將用於共同培養之經解凍培養基及細胞置於冰上歷時約 15分鐘。將約0_3 ml細胞懸浮液添加至含有培養基之管 中,渦動且使其在冰上培育約30分鐘。使用注射器將培養 基均勻分布於四孔培養盤之三個孔中,每孔約丨ml。將約 1 ml DPBS添加至培養盤之第四孔中。應在無菌條件下在 - 約37C下將培養盤培育約μ至約21天。 流式細胞儀分析 〇 可为析經共同培養之臍帶血細胞及月經血細胞之任何樣 品(無論是否經擴增)的總細胞計數、細胞生存力(藉由錐蟲 藍’經由染料排除)及細胞表面標記之表現。 經擴增之共同培養的臍帶血細胞及月經血細胞的總細胞 a十數及細胞生存力可藉由用血球計進行之手動計數、流式 細胞儀或其他適用於獲得細胞計數之構件(諸如 ViCell(Beckman Coulter)或適於計數顯示於顯微影像上之 細胞的軟體)來定量。 經擴增之共同培養的臍帶血細胞及月經血細胞可藉由流 式細胞儀來進行分析。可根據StemKit藉由將約36 ml蒸館 " 水及4 ml 1 溶解溶液添加至50 ml管中來製備lx NH4CL· 溶解溶液。可將約50 μΐ細胞樣品添加至兩個管中以進行分 析。一個管用於CD34+/生存力分析且第二個管用於等純系 對照(isoclonic control)。可將約10 pL 7_AAD生存力染料 添加至各管中。可將約1〇 CD45-FITC/CD34-PE添加至 第一個管中。可將約10 CD45_fitc/Ctrl-PE添加至第 135827.doc •23· 200936148 二個管中。可將混合物渦動且接著在約15它至約3(rc下培 月至少20分鐘,同時使其避光。接著,可將約1 ml lx NH4CL溶解溶液添加至各管中且渦動。可將混合物在約 15°C至約30。(:下培育約20分鐘。可將約100 之幹細胞計 數螢光球(Stem-Count Fluorosphere)添加至各管中且渴 動。接著’應使樣品在流式細胞儀上運行以進行分析。 經擴增之共同培養的臍帶血細胞及月經血細胞亦可藉由 流式細胞儀來進行分析以分析細胞表面標記、細胞生存力 ® 及其他細胞特徵。在細胞溶解之後亦可根據以下方案來分 析細胞之新鮮樣品。 可在約2000 rpm下將經擴增之共同培養的臍帶血細胞及 月經血細胞之樣品離心約7分鐘。可移除上清液且使細胞 再懸浮於約100 μΐ洗滌培養基(25% HSA、DNAse、肝素及 HBSS w/Ca+及 Mg+)中。接著’可在 B1〇〇d Bank Ser〇fuge 中將再懸浮細胞離心約1分鐘。可傾析上清液且使細胞再 懸浮於約1.2 ml鞘液(Sheath fluid)中且渦動。 ® 可分析鞘液中之細胞的任何數目之細胞表面標記。舉例 而5,且並非為限制,可將鞘液中的細胞之約丨〇〇 y樣品 添加至含有以下試劑(在各管中每個試劑之體積為10…或 20 μ1)之各管中且接著將管渦動以混合如表a中所述之試劑 與樣品。 135827.doc •24· 200936148 表A:流式細胞儀負載概略
管 FITC PE ECD PC5 1 IgG IgG IgG IgG 2 HLA-I CD133 HLA-II 7AAD 3 CD9 CD54 CD45 CD10 4 CD59 CD63 CD34 CD13 5 CD49e CD81 無 CD49f 6 CD44 CD117 無 CD38 7 CD29 CD 105 CD41 CD3 8 CD19 CD 166 無 CD90 9 NANOG SSEA3 無 7AAD 10 CD14 SSEA4 無 7AAD 11 無 CD56 無 7AAD 在室溫下(15-30°C)培育20分鐘。使其避光。若運行含有 RBC之新鮮樣品,則添加500 μΐ溶解溶液且在室溫下再培 育10分鐘且使其避光。若運行密度梯度或解凍樣品,則不 溶解。若樣品未溶解,則在20分鐘培育之後以1 ml洗滌培 養基洗滌。離心1分鐘且接著傾析上清液。若樣品溶解, 則將樣品離心1分鐘且傾析溶解液。添加1 ml洗滌培養 基,渦動,再次離心,且接著再次傾析。將500 pL鞘液添 A 加至各管中,渦動且在FC500流式細胞儀上運行。 ❿ 在細胞標記分析之前,可對細胞樣品進行總細胞計數。 可設置任何數目之正對照以使用Kasumi-3對照細胞或其他 對照細胞進行流式細胞儀分析。 ' 用於細胞計數及細胞生存力分析之材料包括(但不限於) 流式細胞儀、Isoflow賴液、Coulter Clenz清潔劑及包括 (但不限於)以下各物之試劑:CD45-FITC/CD34-PE、 CD45-FITC/等純系對照-PE、7-AAD生存力染料、幹細胞 計數螢光球、l〇x濃縮氯化銨(NH4CL)溶解溶液及22%牛白 135827.doc -25- 200936148 蛋白溶液。參見Stem Kit™ CD34+HPC計數套組封裝插頁 -03 版(PNIM2390) ; Beckman Coulter產品校正作用,CXP 2.0 及 2.1 面板中斷-3/10/06、PCA-M-D-1013 ; 14.3
StemLab,構築號200706260856,3·2·1版。用於流式細胞 儀之材料亦包括(但不限於)Isoflow勒液;Coulter Clenz清 • 潔劑;及以下試劑(使用之前在約20-25°C T):CD117-
PE、CD29-FITC、CD34-ECD、CD44-FITC、CD45-ECD、 CD90-PC5、CD105-PE、CD166-PE、IgG-FITC、IgG-PE、 〇 IgG-ECD、IgGl-PC5、HLA-I-FITC、CD133-PE、HLA-II ECD、CD9-FITC、CD54-PE、CD10-PC5、CD59-FITC、 CD63-PE ' CD13-PC5 > CD49e-FITC ' CD81-PE > CD49f-PC5、CD44-FITC、CD38-PC5、CD29-FITC、CD105-PE、 CD41-ECD、CD3-PC5、CD19-FITC、NANOG-FITC、 SSEA3-PE、SSEA4-PE、CD14-FITC、CD56-PE、7-AAD生 存力染料、l〇x濃縮氣化銨(NH4CL)溶解溶液、洗滌培養 基(包含HBSS(具有Ca+及Mg+之漢克斯HBSS)500 m卜肝 ® 素5 ml、人血清白蛋白25% 50 ml、DNASE-1安瓿)、
Kasumi-3細胞株-CD34+細胞、計時器及渦動混合器。 經擴增細胞之極冷保藏 使共同培養之經擴增細胞懸浮於自燒瓶中的組織培養獲 得之Chang氏完全培養基中以及可準備培養盤以用於極冷 保藏。可使經擴增細胞再懸浮於Chang氏完全培養基中。 在一實施例中,可使經擴增細胞與冷凍保藏劑以1:1比率 組合。舉例而言,5 ml小瓶可包含約2.5 ml細胞及2.5 ml冷 135827.doc •26- 200936148 凍保藏劑。應將經擴增細胞之懸浮液置於冰上歷時至少約 1 5分鐘,隨後添加冷凍保藏劑。 藉由以4:1之比率組合ES-FBS與DMSO(99%)來製備冷凍 保藏劑。舉例而言,可將約2 ml ES-FBS添加至0.5 ml DMSO中。可使ES-FBS在冰上冷凍至少約15分鐘,隨後添 加DMSO。一旦經冷凍,即將DMSO添加至ES-FBSt。可 •使ES-FBS及DMSO冷凍至少約15分鐘。 在一替代性實施例中’可使用其他極冷保藏培養基。舉 ® 例而言,可使用冷凍保藏劑來保持解凍後高細胞生存力結 果’諸如CryoStor CS10或CS5(Biolife)、補充有丙二醇及 蔗糖之胚胎極冷保藏培養基(Vitr〇life)或SAGE培養基(庫珀 外科(Cooper Surgical))。甘油可與諸如DMS〇之其他冷凍 保藏劑一起使用,或可以約10%之濃度單獨用於具有合適 蛋白質之培養基中。 在冰上時,可將冷凍保藏劑逐滴添加至經擴增細胞之懸 净液中。可輕微混合經擴增細胞之溶液與懸浮之經擴增細 胞。可將溶液等分至所需體積之小瓶中以為極冷保藏作準 備。小瓶可為極冷小瓶(cry〇via丨卜將小瓶保持在冰上直至 準備將其置於受控速率冷凍器中。 製備冷凍保藏劑中之經擴增細胞可經受利用受控速率冷 凍器或其他合適冷;東器系統(經監測之堆存_冷滚或冷來: 器(Nalgene))進行之若干降溫步驟以將經擴增細胞之溫产 降至約-90C之最終溫度。控制速率冷;東器之實例包括(但 不限於)Cry0med Therm〇 F〇rma受控速率冷凍器 135827.doc •27· 200936148 7454(Thermo Electron,Corp.)、平面受控速率冷凍器 Kry〇 10/16(TS Scientific)、Gordinier、Bi〇-C〇〇I-FTS 系統及 Asymptote EF600、BIOSTOR CBS 2100系列。 在受控速率冷凍器中,可使降溫步驟程式化。冷凍保藏 劑及經擴增細胞可經受受控速率降溫以為最終儲存於冷凍 器中作準備。可設計受控速率降低以保持細胞生存力。可 • 使用 Cryo-Med冷凍器(Thermo Electron Corp.)、液氮筒及 攜帶型Cryo-Med冷凍器來進行受控速率降低以為最終儲存 〇 於冷凍器中作準備。可使細胞在極冷小瓶或極冷袋中經受 受控速率降低以實現約-9(TC之溫度。 對於收集於極冷袋中之經擴增細胞之樣品而言,經擴增 細胞可經受以下受控速率降低概況:在約4〇c下等待, 1.0°(:/分鐘至_6.0°〔:(樣品)、25.0。〇/分鐘至-50.0。(:(腔室)、 10.0C/分鐘至-14.(TC (腔室)、l.trc/分鐘至·45.(Γ(:(腔室)、 10.〇°C/分鐘至-90.Ot(腔室)及終點(樣品等於或低於 -85.0〇C)。 ® 對於收集於極冷小瓶中之經擴增細胞之樣品而言,該等 細胞可經受以下受控速率降低概況:在4。〇下等待,1 〇。〇 / 分鐘至-3.0C(腔室)、1〇.〇。〇/分鐘至-20_0°C(腔室)、1_〇。〇/ 分鐘至_4〇.(TC(腔室)、10.0口分鐘至_9〇 (rc(腔室)及終 點。 一旦冷凍保藏劑與經擴增細胞之混合物等於或低於約 -85°C ’即將極冷保藏小瓶轉移至低溫儲存單元中且將其儲 存於等於或低於約_135°C2溫度下的液氮蒸氣中,或者可 135827.doc -28- 200936148 將小瓶儲存於液氮1之液相中。舉例而言,合適之低溫儲存 單元包括(但不限於)LN2冷凍器MVE 1830(Chart Industries) 〇 經擴增細胞之免疫選擇 可關於至少一種所需細胞標記來選擇經由共同培養臍帶 血細胞與月經血細胞而擴增之細胞。舉例而言,所需細胞 標記可為CD34、HLA-II或SSEA-4。亦可使細胞經受負選 擇步驟以移除非所需細胞。在整個細胞選擇過程中,可使 © 用無菌技術。細胞選擇可用於新鮮細胞或先前經極冷保藏 之解凍細胞及經共同培養之細胞。可對僅25〇萬個細胞及 至多1000萬個細胞進行細胞選擇。亦可自包含少於250萬 個細胞之樣品或包含大於1 〇〇〇萬個細胞之樣品選擇細胞。 用於細胞選擇之材料包括(但不限於)DNase、Pulm()zyme (Genentech. Inc.)-1安瓿、欲經負選擇或正選擇之任何抗細 胞表面標記(例如抗CD34抗體、山羊抗小鼠IgG微珠)及磁 場。 〇 在約4C下’將包含>=1·0χ106個經擴增之共同培養的臍 帶血細胞與月經血細胞之細胞的細胞懸浮液在約3〇〇 g下 離心約7分鐘。可在未擾亂細胞小球之情況下移除上清 液。可用約1 00 μΐ洗滌培養基使小球再懸浮。在一實施例 中,权《細胞表面體為抗C D 3 4抗體。可在冰上將溶液中 之細胞培育約20分鐘至約25分鐘。在培育之後,可將約2 ml洗滌培養基添加至細胞中且使其輕微混合。可在約4〇c 下將混合物在約300 g下離心約1 〇分鐘。在離心之後,可 135827.doc -29- 200936148 在未擾亂小球之情況下吸出上清液。可使小球再懸浮於約 80 μΐ洗滌培養基中。可將約2〇 口丨山羊抗小鼠IgG添加至細 胞懸浮液中且使其輕微混合β可在冰上將混合物培育約 分鐘。在培育之後,可藉由添加約2 ml洗滌培養基且接著 混合該溶液來洗滌細胞。可在約4〇C下將細胞在約3〇〇 g下 離心約10分鐘。 可使用管柱以自未經選擇之細胞中分離所選細胞。可藉 由在約500 μΐ工作緩衝液中潤濕管柱來製備管柱。在離心 之後,可在未擾亂小球之情況下吸出上清液。可使小球再 懸沣於約500 μΐ工作緩衝液中。為避免細胞黏著,可將額 外DNase添加至細胞中。可使用吸移管將細胞懸浮液添加 至管柱中。經抗體標記之細胞(陽性部分)應附著於經受 MACS分離器所提供之磁場的管柱上。未經標記細胞(陰性 部分)應流經管柱且經收集。 在細胞懸浮液流經管柱且作為陰性部分加以收集之後, 可使用每次洗滌500 μΐ之工作緩衝液將管柱洗滌至少3次。 各洗滌液可在下一洗滌之前完全流經管柱。可與陰性部分 一起收集各洗滌液。可移除約1〇〇 μ1陰性部分以進行分 析。可進行使用血球計之細胞計數及使用錐蟲藍之生存力 或另一方法。可使用如先前所討論之流式細胞儀或使用另 一流式細胞儀方法來進行表型分析。陰性部分可為極冷保 藏作準備或可置於培養物中以用於進一步細胞生長及擴增 及稍後處理。 在收集陰性部分且洗滌管柱之後,可將另一管置於管柱 135827.doc -30_ 200936148 下方以收集陽性部分。可將約i ml工作緩衝液添加至管柱 中且移除管柱内形成之磁場。應收集工作緩衝液及陽性部 分。可使用活塞以自陽性部分之管柱移除儘可能多之經標 記細胞。可移除約100 μ1陽性部分以使用錐蟲藍或流式細 ㈣來分析包括(但不限於)細胞計數及生存力。陽性部分 了 極冷保藏、培養或為用於治療用途作準備。 Τ根據如圖i中所示之本發明實施例而|生免疫選擇表 現所需細胞標記之細胞的步驟。詳言之,選擇可至少在共 〇 同培養臍帶血細胞與月經血細胞之步驟後發生。選擇表現 某些細胞標記之月 '經血幹細胞的步驟提供表現所選細胞標 記之富集細胞的群體,其可用於進一步細胞培養、極冷保 藏或治療用途。 在一實施例中,自細胞群體選擇經擴増之表現cD34之 細胞的步驟包含以抗人類c D 3 4抗體標記經擴增細胞且接 著以此夠與抗人類CD34抗體結合之磁標記抗體標記CD34 幹細胞-抗人類CD34抗體複合物。另外,該方法包含以抗 人類CD34抗體標記表現CD34之任何細胞且接著以能夠與 抗人類CD34抗體結合之磁標記抗體標記CD34細胞-抗人類 CD34抗體複合物。選擇表現CD34之細胞的方法可包括選 擇根據本發明實施或擴增之表現CD34之任何細胞。免疫 選擇細胞之步驟包含將包含CD34細胞、抗人類CD3 4抗體 及磁標記抗體之複合物暴露於磁場以將磁標記抗體及複合 物之其餘部分吸引至管柱’且經由管柱洗務所有其他 CD34陰性細胞以進行分析。 135827.doc -31 - 200936148 在選擇表現CD34之細胞的整個步驟中,可將細胞之細 胞懸浮液及工作緩衝液(具有DNase之MACS® Separation電 泳緩衝液,Miltenyi)保持在冷溫度下。其他磁分離套組亦 可適於使用(R&D Systems)。 可在約300 g下將細胞懸浮液離心約1〇分鐘。可使小球 懸浮於具有抗人類CD34抗體之工作緩衝液中。舉例而 言,工作緩衝液可(例如)包含PBS(在約pH 72下)、牛血清 白蛋白、EDTA及約0.09%疊氮化物(或合適溶液)(BD Biosciences) »舉例而言,可使小球懸浮於約1〇〇 μ1工作緩 衝液與約5 pg對人類CD34具有親和性之經純化抗體中。抗 體可為單株或多株抗體。抗體可為經純化IgG或能夠結合 人類CD34之其他抗體。抗體可為小鼠抗CD34抗齄。 培育包含細胞、工作緩衝液及抗CD34抗體之溶液,歷 經一個培育期。舉例而言,培育期可包含在冰上約2〇分鐘 至約25分鐘。或者,若溫度為至少約2°C至約8°C,則培育 期可縮短至少於約20分鐘,或若至少在室溫下,則培育期 可縮短至約5分鐘至約10分鐘。在培育期之後,可以工作 緩衝液洗滌具有細胞之溶液以移除未結合之抗體且接著離 心。舉例而言,離心可在約30〇 §下發生約10分鐘。在離 心之後’吸出上清液且可保留以用於分析,且使小球懸浮 於工作緩衝液中。舉例而言,卫作緩衝液之體積可為約⑼ μΐ。 將第一批附著有微珠且對抗人類CD34抗體具有親和性 的抗體添加至用以懸浮小球之工作緩衝液中。微珠可包含 135827.doc -32- 200936148 (例如)氧化鐵及多醣。微珠可為生物可降解的。可經由 Miltenyi Biotec獲得微珠。舉例而言,對於諸如山羊抗小 鼠IgG抗體之對人類CD34具有親和性之抗體而言,第二批 抗體具有特異性。抗體可為單株或多株抗體。抗體可能夠 與小鼠抗體之輕鏈及/或重鏈結合。例如,抗體可為可作 為產品130-048-401而經由Miltenyi Biotee獲得之山羊抗小 鼠收微珠共輛物。2 mH、槪之上述山羊抗小鼠邮可用於 共計約1.0X109個未分離細胞。 ❹ ❹ 培育細胞懸浮液,歷經第二培育期。舉例而言,培育期 可在約30分鐘至約35分鐘之範圍内。或者,當培育在約 沈至約代下發生時,培育期可少於約30分鐘,或當培育 在約室溫下發生時,培育期可為約5至約ι〇分鐘。在培育 期完成之彳m緩衝液(諸如約2 士作緩衝液)洗條 細胞,且接著將細胞離心。舉例而言,離心可在約3〇〇 g 下發生約1 0分鐘。可吸屮μ、、本% J及出上清液且保留以用於分析,且使 含細胞之小球懸浮於T作經你 子孓作緩衝液(諸如約500 μΐ工作緩衝 液)中。 細胞分離 可使用MS管柱自工作结你^、* . 乍緩衝液中之細胞懸浮液分離CD34 細胞以分_4幹細胞。舉例而!,可使用⑽管柱 rriBi°tee)或其他合適管柱。或者,可使用分離細 胞之其他合適方法。可將可經由臟enyi Biotec獲得之包 含一單元、多支牟、 。 s柱及微珠之MiniMACS套組用於 CD34細胞選擇。 可準備以工作緩衝液進行沖洗。 135827.doc •33- 200936148 舉例而言’用以沖洗管柱之工作緩衝液的體積可為約5〇〇 μΐ。將管柱置於可經由Miltenyi Biotec獲得之MACS分離器 或提供磁場之合適分離器的磁場中。
❹ 以吸移管或能夠轉移液體體積之其他器件將工作緩衝液 中之細胞懸浮液添加至管柱中。由於macs分離器之磁 场’將與連接微珠之抗體結合的以抗人類CD34抗體標記 之CD34細胞保持在管柱中。任何未經標記細胞均應連同 工作緩衝液一起流經管柱且可收集於無菌管中以用於細胞 表型化及細胞計數。可將流經管柱之未經標記細胞識別為 陰性部分。在添加細胞懸浮液之後,可以工作緩衝液洗滌 管柱。舉例而言,可將管柱洗滌至少3次或任何次數,其 使得所有或大體上所有未經標記細胞經過管柱。可收集洗 滌步驟之流出物以用於細胞表型化及計數。亦可將流出物 識別為陰性部分。 在洗條管柱之後,可自管柱收集經標記CD34細胞。藉 由將無菌管置於管柱下方且自磁場移除管柱來收集經標記 CD34細胞。一旦自磁場移除管柱,經標記CD34細胞即經 過管柱且進入無菌管中。可藉由將工作緩衝液添加至管柱 中以經由管柱洗滌細胞且視情況藉由以活塞汽提管柱以釋 放細胞來洗出管柱中之殘餘經標記CD34細胞。可將所收 集之經標記CD34細胞識別為陽性部分。為獲得經標記 CD34細胞之進一步純化群體,陽性部分可視情況在先前 所揭不之洗滌程序後至少再一次經過管柱。可將陽性部分 在約3〇〇 8下離心約10分鐘且吸出上清液。可使小球懸浮 135827.doc •34- 200936148 於約5 ml工作緩衝液中。 以血球計分析陽性部分及陰性部分以獲得活細胞之總計 數。藉由流式細胞儀來分析陰性部分以用於表型化。視情 況’可使用流式細胞儀使陽性部分表型化。 . 可製備含有表現CD34或其他所需細胞標記之細胞的陽 性部分以根據本發明之方法進行極冷保藏。將約i如人血 清白蛋白、約3 ml DPBS及約1 ml DMS0添加至約5如陽 性部分中。或者,其他培養基亦可用於製備細胞以進行極 〇 冷保藏之步驟中,諸如完全培養基、牛血清白蛋白、胎牛 血清(fetal calf serum)、胎牛血清(feul b〇vine ' 蛋 白質血漿部分或自體血清。將含有經擴增細胞之溶液混合 且在冰上冷卻約10分鐘。添加約〗ml DMS〇作為冷凍保藏 劑。或者,可將約6%HES羥乙基澱粉與約5%dms〇之約^ ml混合物用作冷凍保藏劑。將所得溶液等分至極冷小瓶 中。或者,可將所得溶液等分至任何適用於極冷保藏之容 器(諸如極冷保藏袋)中。接著,將極冷小瓶極冷保藏於根 據本發明之受控速率冷凍器方案的受控速率冷凍器 (Cryomed)中》—旦含有經擴增細胞之溶液實現約_9〇它之 目標溫度,即將極冷小瓶轉移至長期儲存冷凍器中且儲存 H135°C或·135°ε以下。或者,可將極冷小瓶或其他合 適之極冷保藏容器置於經監測之堆存冷凍器中且冷凍至 約-80〇C,且接著將其轉移至在約_135〇c或_135。〇以下的長 期儲存冷床器中之液氮之氣相中。 經擴增細胞之治療用途 135827.doc •35 ‘ 200936148 可製備藉由本發明獲得之表現CD34之經擴增細胞以用 於治療人類病症之治療用途。在一實施例中,可製備經擴 增細胞、來自經由共同培養進行之擴增的經免疫選擇 CD3 4細胞或在極冷保藏之後已解束之經擴增細胞以用於 靜脈輸注於接受者中。 靜脈輸注技術可根據可為細胞輸注於人類中所接受之規 範而存在。靜脈輸注可包括經擴增CD34細胞之自體或同 種異體輸注。 〇 經擴增細胞之分化 本發明之經擴增CD34臍帶血細胞可能夠分化為體内260 種體細胞中之任一者。舉例而言,該等細胞可能夠分化為 至少肝細胞、胰腺細胞、肌原細胞、成骨細胞、軟骨生成 細胞、脂肪細胞、上皮細胞、神經細胞、角質細胞及心肌 細胞。如在共同培養系統中所見,當與諸如肝細胞、胰腺 細胞、肌原細胞、成骨細胞、軟骨生成細胞、脂肪細胞、 上皮細胞、神經細胞、角質細胞及心肌細胞之其他易感染 w 細胞一起培養時,該等細胞亦可具有分化能力。自分化獲 得之細胞及自共同培養獲得之細胞亦可具有用於以下治療 之潛能:替代或再生療法、其他治療應用、藥妝品 (cosmeceutical)、器官排斥療法及其他應用。 可製備藉由本發明獲得之表現CD34之經擴増臍帶血細 胞以分化為特定細胞系。在一實施例中,可製備經擴增細 胞、來自經由共同培養進行之擴增的經免疫選擇CD34細 胞或在極冷保藏之後已解凍之經擴增細胞以用於細胞分 135827.doc • 36- 200936148 化。 刀化技術可根據可為人類細胞分化所接受之規範而存 在。 以說明之方式而非限制之方式提供以下實例。尤其根據 本文中引用之各種參考文獻的教示(其揭示内容係以全文 引用的方式併入),熟習此項技術者將認識到可產生實例 中所體現之本發明的變化。
實例1-培養膊帶871R ❹ 根據本申請案中所述且用於臍帶血收集行業中之方法來 收集腾帶血細胞871R。 臍帶871R細胞之臍帶血樣品在收集後約2天經處理且根 據本申請案中所述的臍帶血之處理及極冷保藏方法經極冷 保藏。使臍帶871R細胞保持極冷保藏歷時約兩年半。根據 本申請案中所述之解凍方法使臍帶871R細胞解凍。 培養-培養盤 在至/皿下使約3 ml培養基(Methocult #4〇34-半固體培養 ® 基)解凍且接著連同臍帶細胞稀釋液(5〇〇〇〇〇個細胞/mL) 一 起置於冰上歷時15分鐘。15分鐘之後’將約03 mi臍帶細 胞稀釋液接種於培養基之管中。輕微渦動該管且接著在冰 上培育約30分鐘《在培育之後,將培養基及臍帶871R細胞 等分至4孔培養盤之前3個孔中。將丨毫升DPBs添加至第四 孔中以有助於濕度且在3 7 °C下培育細胞。細胞培養之某此 結果係概括於表B中。 培養-燒瓶 135827.doc -37- 200936148 使臍帶87 1R細胞經受使經極冷保藏之細胞解凍且接著在 Chang氏完全培養基中經由本申請案中所揭示之離心來洗 滌該等細胞之步驟。使細胞小球再懸浮於約7 ml 15% Chang氏完全培養基中。 在T25非經組織處理之培養燒瓶中,以7 ml 15°/。Chang 氏完全培養基中約1,000,000個細胞來接種再懸浮之臍帶 871R細胞。在C02培育箱中在約36°C至約38°C下培育細 胞。在第一繼代不存在黏附細胞。 ❹ 表 B-M28100RM、M28100RM、M28101R、M28101R+ 871R及871R之培養盤培養 M28100RM M28100RM+ 871R M28101R M28101R+ 871R 871R 每孔10,000 個 BFU-E平均 值 2 0.67 0 0 0 CFU-GM 平 均值 0.67 3.67 0.33 0 0 CFU- GEMM平均 值 0 0 0 0 0 實例2-培養M28100RM月經血細胞 根據美國專利公開案第20080241113號之方法,收集約9 ml月經且置於不含具有鈣及鎂之抗生素的DPBS與無防腐 劑肝素之所得培養基中,並在約24小時至約48小時内運送 至處理設備,藉此收集月經血幹細胞M28100RM。將月經 樣品在抗生素中培育24小時,且隨後洗滌,經由離心來濃 縮,與10% DMSO冷凍保藏劑混合,且根據美國專利申請 135827.doc •38- 200936148 公開案第20080241113號之教示來極冷保藏。 處理M28 1 00RM月經血細胞之月經樣品且在收集之後約 2天將M28100RM月經血細胞極冷保藏。使細胞保持極冷 保藏歷時約8個月且接著根據本申請案中所述之方法解凍 以形成CFU。 培養-培養盤 -在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 三個3 ml管解凍且接著以50,000個細胞/ml、100,000個細 ⑩ 胞/ml及21,600個細胞/ml之細胞稀釋液形式置於冰上歷時 15分鐘。15分鐘之後,將約0.3 ml之各月經血細胞稀釋液 接種於Methocult #4034半固體培養基之管中。輕微渦動該 等管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培養基及 月經血幹細胞等分至4孔培養盤之前3個孔中。將1 ml DPBS添加至第四孔中以有助於濕度,且在37°C下培育細 胞。細胞培養之某些結果係概括於表B中。 培養-燒瓶 ® 使M28 100RM月經血細胞經受使經極冷保藏之細胞解凍 且接著在Chang氏完全培養基中經由本申請案中所揭示之 離心來洗滌該等細胞之步驟。使細胞小球再懸浮於約25 ml 1 5% Chang氏完全培養基中。 在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 ml 15% Chang氏完全培養基中約22 1,000個細胞來接種再懸浮之 M28100RM月經血細胞。在C02培育箱中在約36°C至約38°C 下培育細胞,直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷表C中 135827.doc -39- 200936148 所展示之若干繼代。在約三或四天之後出現包含表c中所 示之15% Chang氏完全培養基之完全改變的繼代。 表C-M28100RM月經血細胞之培養 繼代 總計數 流 極冷 培養物 天數 倍增 PD時間(hr) P1 722,656 722,656 0 P2 917,500 917,500 4 1.27 P3 1,136,000 1,136,000 2 1.24 38.77 P4 8,960,000 60,000 5 7.89 15.21 P5 1,060,000 1,060,000 6 17.67 8.15
實例3-培養M28101R 根據美國專利公開案第20080241113號之方法,收集約9 ml月經且在收集於不含具有鈣及鎂之抗生素的DPBS與無 防腐劑肝素之所得培養基中約24小時至約48小時内將其運 送至處理設備,藉此收集月經血幹細胞M28100RM。將月 經樣品在抗生素中培育24小時,且隨後洗滌,經由離心來 濃縮,與10% DMSO冷凍保藏劑混合,且根據美國專利申 請公開案第20080241113號之教示來極冷保藏。 用於M28101R月經血細胞之月經在收集之後經處理且根 據本申請案中所述之月經血幹細胞處理及極冷保藏方法在 收集之後約3天經極冷保藏。使細胞保持極冷保藏歷時約7 個月。根據本申請案中所述之解凍方法使M28 101R月經血 細胞解;東。 培養-培養盤 在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 三個3 ml管解凍且接著連同M28 10 1R月經血細胞之細胞稀 釋液(50,000個細胞/ml、100,000個細胞/1111及216,000個細 135827.doc -40- 200936148 胞/ml)—起置於冰上歷時15分鐘。15分鐘之後,將0.3 ml 之各月經血細胞稀釋液接種於培養基之管中。接著,輕微 渦動該等管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培 養基中之月經血細胞等分至4孔培養盤之前3個孔中。將1 毫升DPBS添加至第四孔中以有助於濕度且在37°C下培育 細胞。細胞培養之某些結果係概括於表B中。 培養-燒瓶 使M28101R月經血細胞經受使經極冷保藏之細胞解凍且 φ 接著在Chang氏完全培養基中經由本申請案中所揭示之離 心來洗滌該等細胞之步驟。使細胞小球再懸浮於約25 ml 15% Chang氏完全培養基中。 在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 ml 15% Chang氏完全培養基中約724,780個細胞來接種再懸浮之月 經血細胞。在C02培育箱中在約36°C至約38°C下培育細 胞,直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷表D中所展示之 若干繼代。在約三或四天之後出現包含表D中所示之15% © Chang氏完全培養基之完全改變的繼代。 表D-M28101R月經血細胞之培養 繼代 總計數 流 極冷 培養物 天數 倍增 PD時間(hr) P1 2,170,000 2,170,000 0 P2 18,200,000 17,800,000 456,000 4 4.76 20.17 P3 3,760,000 3,500,000 260,000 4 1.73 55.40 P4 1,619,940 1,619,940 5 6.23 19.26 P5 5,170,000 5,032,000 136,000 3 3.19 22.56
實例4-培養M28100RM月經血細胞及臍帶871R 根據美國專利公開案第20080241113號之方法,收集約 135827.doc 41 - 200936148 10 ml月經且在收集於不含具有鈣及鎂之抗生素的與 …、防腐劑肝素之所付培養基中約24小時至約48小時内將其 運送至處理設備,藉此收集月經血幹細胞M28100RM。將 月經樣品在抗生素中培育24小時,且隨後洗滌,經由離心 來濃縮,與10% DMSO冷凍保藏劑混合,且根據美國專利 •申請公開案第20080241 113號之教示來極冷保藏。 用於月經血幹細胞M28 100R之月經在收集之後經處理且 根據本申請案中所述之月經血幹細胞處理及極冷保藏方法 〇 在收集後約2天經極冷保藏。使細胞保持極冷保藏歷時約6 個月。根據本申請案中所述之解凍方法使M281 00R細胞解 凍。 用於濟帶8 71R細胞之膪帶血樣品在收集之後約2天經處 理且根據本申請案中所述的臍帶血之處理及極冷保藏方法 經極冷保藏。使臍帶871R細胞保持極冷保藏歷時約兩年 半。根據本申請案中所述之解凍方法使臍帶871R細胞解 凍。 ® 培養-培養盤 在室溫下使培養基(]\^111〇(:1111#4034-半固體培養基)之 三個3 ml管解凍且接著連同細胞稀釋液(5〇,〇〇〇個M28100R 細胞/ml+500,000個臍帶 871R細胞/ml ; 100,000個 M28100R 細胞/ml + 500,000個臍帶871R細胞/ml ;及216,000個 M28100R細胞/ml+500,000個臍帶871R細胞/ml)—起置於冰 上歷時15分鐘^ 15分鐘之後,將0.3 mL在培養基中之各細 胞稀釋液接種於培養基之獨立管中。接著,輕微渦動該等 135827.doc -42· 200936148 管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培養基中之 各細胞稀釋液等分至獨立4孔培養盤之前3個孔中。將1 ml DPBS添加至各培養盤之第四孔中以有助於濕度,且在 3 7°C下培育細胞。細胞培養之某些結果係概括於表B中。 培養-燒瓶 使臍帶87 1R細胞及M28 101R月經血細胞獨立地經受使經 極冷保藏之細胞解来且接著在Chang氏完全培養基中經由 本申請案中所揭示之離心來洗滌該等細胞之步驟。使細胞 〇 小球再懸浮於約7 ml 15% Chang氏完全培養基中。 在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 ml 15°/〇 Chang氏完全培養基中約221,400個細胞(具有約1,000,000 個臍帶871R細胞)來接種再懸浮之M28101R月經血細胞。 在C02培育箱中在約36°C至約38°C下培育細胞,直至細胞 以約70-80%融合。細胞經歷表E中所展示之若干繼代。在 約三或四天之後出現包含表E中所示之15 % Chang氏完全培 養基之完全改變的繼代。 ® 表E-M28101R月經血細胞及臍帶871R細胞之培養 繼代 總計數 流 極冷 培養物 天數 倍增 PD時間(hr) P1 341,028 341,028 0 P2 478,275 478,275 4 1.40 68.45 P3 718,622 718,622 4 1.50 63.89 P4 1,700,037 1,700,037 5 2.37 50.73 P5 5,080,000 4,950,000 127,000 6 84.67 1.70
實例5-培養M28101R +臍帶871R 根據美國專利公開案第20080241113號之方法,收集約9 ml月經且在收集於不含具有鈣及鎂之抗生素的DPBS與無 135827.doc -43· 200936148 防腐劑肝素之所得培養基中約2 4小時至約4 8小時内將其運 送至處理没備,藉此收集月經血幹細胞M2 8r。將月經 樣品在抗生素中培育24小時,且隨後洗滌,經由離心來濃 縮,與10% DMSO冷凍保藏劑混合,且根據美國專利申請 公開案第20080241 113號之教示來極冷保藏。 • 用於月經血幹細胞M28101R之月經在收集之後經處理且 根據本申請案中所述之月經血幹細胞處理及極冷保藏方法 在收集之後約3天經極冷保藏。使細胞保持極冷保藏歷時 ❹ 約6個月。根據本申請案中所述之解凍方法使M281 〇 1R細 胞解涞。 用於臍帶871R細胞之臍帶血樣品在收集之後約2天經處 理且根據本申請案中所述的臍帶血之處理及極冷保藏方法 經極冷保藏。使臍帶871尺細胞保持極冷保藏歷時約兩年 半。根據本申請案中所述之解凍方法使臍帶871R細胞解 凉 〇 培養-培養盤 在室溫下使培養基(MethoCuh #4034-半固體培養基)之 三個3 1111管解凍且接著連同細胞稀釋液(5〇,〇〇〇個^1281〇11?_ 細胞/ml+500,000個臍帶 871R細胞/ml ; 1〇〇,〇〇〇個 M28101R 細胞/ml+500,000個臍帶87iR細胞/mi ;及216 〇〇〇個 M28101R細胞/ml+500,000個臍帶871R細胞/ml)—起置於冰 上歷時15分鐘。15分鐘之後,將0.3 mi在培養基中之各細 胞稀釋液接種於培養基之獨立管中。接著,輕微渦動該等 管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培養基中之 135827.doc .44- 200936148 各細胞稀釋液等分至獨立4孔培養盤之前3個孔中。將1 ml DPBS添加至各培養盤之第四孔中以有助於濕度,且在 3 7°C下培育細胞。細胞培養之某些結果係概括於表B中。 培養-燒瓶 使臍帶8 71R細胞及Μ 2 8 101R月經血細胞經受使經極冷保 藏之細胞解柬且接著在Chang氏完全培養基中經由本申請 案中所揭示之離心來洗滌該等細胞之步驟。使細胞小球再 懸浮於約7 ml 15% Chang氏完全培養基中。 φ 在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 ml 15%
Chang氏完全培養基中約724,000個細胞(具有約1,000,000 個臍帶血幹細胞)來接種再懸浮之月經血細胞。在co2培育 箱中在約36°C至約38°C下培育細胞,直至細胞以約70-80% 融合。細胞經歷表F中所展示之若干繼代。在約三或四天 之後出現包含表F中所示之15% Chang氏完全培養基之完全 改變的繼代。 表F-M28101R月經血細胞+臍帶871R細胞之培養 繼代 總計數 流 極冷 接種於培養 物中 天數 倍增 PD時間(hr) P1 1,200,000 1,200,000 0 P2 18,430,000 17,800,000 576,000 4 15.36 6.25 P3 3,380,000 3,380,000 4 5.87 16.36 P4 12,430,000 12,000,000 430,000 3 36.78 1.96 P5 1,450,000 1,450,000 3 3.37 21.35
實例6-培養M2-048 根據美國專利公開案第20080241113號之方法,收集約 9.7 ml月經且在收集於不含具有鈣及鎂之抗生素的DPBS與 無防腐劑肝素之所得培養基中約24小時至約48小時内將其 135827.doc -45- 200936148 運送至處理設備,藉此收集月經血幹細胞M2_〇48。將月經 樣品在抗生素中培育24小時,且隨後洗條,經由離心來濃 縮,與10% DMSO冷凍保藏劑混合,且根據美國專利申請 公開案第20080241113號之教示來極冷保藏。 用於月經血幹細胞M2-048之月經在收集之後經處理且根 . 據本申請案中所述之月經血幹細胞處理及極冷保藏方法在 -收集之後約3天經極冷保藏。使細胞保持極冷保藏歷時約3 個月。根據本申請案中所述之解凍方法使M2_〇48細胞解 ❹ 束。 培養-培養盤 在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 二個3 ml管解凍且接著以5〇,〇〇〇個細胞/mi、1〇〇〇〇〇個細 胞/ml及216,000個細胞/mi之細胞稀釋液形式置於冰上歷時 15分鐘。15分鐘之後,將約0.3 ml之各M2細胞稀釋液接種 於Methocult #4034半固體培養基之管中。輕微渦動該等管 且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培養基及月經 ® 血幹細胞等分至4孔培養盤之前3個孔中。將1 ml DPBS添 加至第四孔中以有助於濕度,且在37°C下培育細胞。 培養-燒瓶 -使M2-048月經血細胞經受使經極冷保藏之細胞解凍且接 著在Chang氏完全培養基中經由本申請案中所揭示之離心 來洗務該等細胞之步驟。使細胞小球再懸浮於約7 m 1 1 5 % Chang氏完全培養基中。 在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 mi丨5〇/。 135827.doc •46- 200936148
Chang氏完全培養基中約ι,〇〇0,0〇〇個細胞來接種再懸浮之 月經血細胞。在C02培育箱中在約36°C至約38°C下培育細 胞’直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷表G中所展示之 若干繼代。在約三或四天之後出現包含表G中所示之15% Chang氏完全培養基之完全改變的繼代。 表G-M2-〇48月經血細跑之培養 繼代 總計數 流 極冷 接種以 用於下 一繼代 天數 倍增 PD時 間(hr) P7 1,100,000 1,030,000 64,500 3 P8 866,700 866,700 4 13.44 7.14 P9 6,640,000 4,180,000 2,340,000 123,000 3 7.66 9.40 P10 855,000 855,000 3 6.95 10.36 P11 12,620,000 4,780,000 7,610,000 217,500 4 14.76 6.50 P12 1,620,000 1,530,000 89,976 3 7.45 9.67 P13 110,200 110,200 4 1.22 78.38 P14 9,940,000 4,090,000 5,840,000 0 4 90.20 1.06
實例 7-培養M2-048 +混合臍帶(5006-2180舆 5013-2670) 根據美國專利公開案第200802411 13號之方法,收集月 經且在收集於不含具有鈣及鎂之抗生素的DPBS與無防腐 劑肝素之所得培養基中48小時内將其運送至處理設備,藉 此收集月經血幹細胞M2-048。將月經樣品在抗生素中培育 24小時,且隨後洗滌,經由離心來濃縮,與10% DMSO冷 凍保藏劑混合,且根據美國專利申請公開案第 20080241113號之教示來極冷保藏。 用於月經血幹細胞M2-048之月經在收集之後經處理且根 據本申請案中所述之月經血幹細胞處理及極冷保藏方法在 收集之後約3天經極冷保藏。使細胞保持極冷保藏歷時約3 個月。根據本申請案中所述之解凍方法使M2-048細胞解 135827.doc -47· 200936148 凍。 用於臍帶5006-2180細胞之臍帶血樣品在收集之後約1天 經處理且根據本申請案中所述的臍帶血之處理及極冷保藏 方法經極冷保藏。使臍帶5006-2180細胞保持極冷保藏歷 時約二年。根據本申請案中所述之解凍方法使臍帶5 〇〇6_ • 21 80細胞解凍。 用於臍帶50 13-2670細胞之臍帶血樣品在收集之後約i天 經處理且根據本申請案中所述的臍帶血之處理及極冷保藏 ® 方法經極冷保藏。使臍帶5013-2670細胞保持極冷保藏歷 時約二年《根據本申請案中所述之解凍方法使臍帶5〇〗3_ 2670細胞解凍。 培養-培養盤 在至溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 一個3 ml管解凍且接著與5〇〇〇〇個細胞/ml、i〇〇〇〇〇個細 胞/ml及216,000個細胞/mi之臍帶5〇〇6_21 8〇細胞稀釋液一 起置於冰上歷時15分鐘。15分鐘之後,將約〇 3 ml之各細 胞稀釋液接種於Methocult #4034半固體培養基之管中。輕 微渦動該等管且接著在冰上培育3〇分鐘。在培育之後,將 培養基及月經血幹細胞等分至4孔培養盤之前3個孔中。將 1 ml DPBS添加至第四孔中以有助於濕度,且在3rc下培 育細胞。 培養-燒瓶 在兩個T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 15%
Chang氏完全培養基中約2 〇〇〇 〇〇〇個細胞來接種再懸浮之 135827.doc -48 - 200936148 臍帶5006-2180細胞。在(:02培育箱中在約36°(:至約38°(:下 培育細胞,直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷若干繼 代。在約三或四天之後出現包含15% Chang氏完全培養基 之完全改變的繼代。 培養-培養盤
在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 兩個3 ml管解凍且接著與50,000個細胞/mL、100,000個細 胞/11^及216,000個細胞/111[之臍帶5013-2670細胞稀釋液一 起置於冰上歷時15分鐘。15分鐘之後,將約0.3 ml之各M2 細胞稀釋液接種於Methocult #4034半固體培養基之管中。 輕微渦動該等管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後, 將培養基及月經血幹細胞等分至4孔培養盤之前3個孔中。 將1 ml DPBS添加至第四孔中以有助於濕度,且在37°C下 培育細胞。 表I-臍帶5013-2670之培養盤培養 象限1 象限2 象限3 象限4 總計 孔 1 BFU-E 2 0 0 0 2 孔2 BFU-E 0 0 2 0 2 孔3 BFU-E 0 1 0 0 1 平均*BFU-E 1.6 孔1GM 0 0 1 0 1 孔2GM 0 0 0 0 0 孔3GM 0 0 0 0 0 平均*GM 0.3 孔 1 GEMM 5 0 1 5 11 孔 2 GEMM 0 3 3 7 13 孔 3GEMM 5 3 7 0 15 平均*GEMM 13 培養-燒瓶 135827.doc -49- 200936148 使臍帶501 3-2670細胞經受使經極冷保藏之細胞解凍且 接著在Chang氏完全培養基中經由本申請案中所揭示之離 心來洗滌該等細胞之步驟。使細胞小球再懸浮於約7 ml 15% Chang氏完全培養基中。 在兩個T25非經組織培養物處理之燒瓶中,以7 ml 15% Chang氏完全培養基中約2,000,000個細胞來接種再懸浮之 月經血細胞。在C02培育箱中在約36°C至約38°C下培育細 胞,直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷若干繼代。在約 ❹ 三或四天之後出現包含15% Chang氏完全培養基之完全改 變的繼代。 培養-培養盤 在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 三個3 ml管解凍且接著連同細胞稀釋液(10,000個M2-048月 經血細胞+250,000個臍帶5006-2180細胞/ml ; 10,000個M2-048月經血細胞+250,000個臍帶5013-2670細胞/ml ;及 10,000個M2-048月經血細胞+500,000個臍帶5013-2670細胞/ ® ml)—起置於冰上歷時15分鐘。15分鐘之後,將@0.3 ml之 各細胞稀釋液接種於Methocult #4034半固體培養基之獨立 • 管中。輕微渦動該等管且接著在冰上培育30分鐘。在培育 . 之後,將培養基及月經血幹細胞等分至4孔培養盤之前3個 孔中。將1 ml DPBS添加至第四孔中以有助於濕度,且在 3 7°C下培育細胞。 135827.doc -50- 200936148 表J-臍帶5013-2670+M2-048之培養盤培養 象限1 象限2 象限3 象限4 總計 孔 1BFU-E 1 5 1 0 7 孔 2 BFU-E 0 0 0 12 12 孔 3 BFU-E 0 0 0 0 0 平均nBFU-E 6.3 孔1GM 0 2 2 1 5 孔2GM 0 1 3 0 4 孔3GM 0 0 0 0 0 平均*GM 3 孔 1 GEMM 0 0 0 2 2 孔 2 GEMM 0 2 0 0 2 孔 3 GEMM 0 0 0 1 1 平均*GEMM 1.6 培養-燒瓶
在T25非經組織培養物處理之燒瓶中,將1,000,000個取 自第4繼代之M2-048月經血細胞及100,000個臍帶5006-2180細胞接種於7 ml 15% Chang氏完全培養基中。將 1,000,000個M2-048月經血細胞及1,000,000個臍帶5013-2670細胞接種於7 ml 15% Chang氏完全培養基中》在胰蛋 白酶化之後,將兩個細胞培養物混合為M2-048且混合臍帶 5006-21 80與臍帶5013-2670。在C02培育箱中在約36°C至 約38°C下培育細胞,直至細胞以約70-80%融合。細胞經歷 若干繼代。在約三或四天之後出現包含15% Chang氏完全 培養基之完全改變的繼代。 135827.doc 51 200936148 表K-培養:M2-048_01 P4 +混合之臍帶5006-2180與臍 帶5013-2670 繼代 總計數 流 極冷 接種以用於 下一繼代 天 數 倍增 PD時 間(hr) 7 3,420,000 3,240,000 180,000 4 8 1,260,000 1,150,000 104,970 3 7.00 10.29 9 841,000 841,000 3 8.01 8.99 10 9,830,000 4,910,000 4,740,000 175,000 4 11.69 8.21 11 1,976,000 1,976,000 4 11.26 8.53 12 5,720,000 4,420,000 1,3〇〇,〇〇〇 2 2.89 16.58 13 12,110,000 4,540,000 7,190,000 378,000 4 9.32 10.31 14 4,349,000 3,624,000 725,000 5 11.49 10.44
實例6及7之表型分析 根據本申請案中所述之方法,使包含第7繼代所收集之 M2-048、臍帶5006-2180及臍帶5013-2670之混合培養物及 M2-048月經血細胞培養物的3,240,000個細胞經受表型分 析。表型分析之結果展示於表L中。 135827.doc 52· 200936148 表L-細胞培養物之流式細胞儀分析 M2-048+ 臍帶(混 合)P7 曰期:02-05-08 M2-048+ 臍帶(混 合)Pll 曰期:02-15-08 M2-048 Pll 曰期:02-15-08 M2-048 P14 曰期:02-26-08 M2-048+ 臍帶(混 合)P19 曰期:03-21-08 %POS %POS %POS %POS %POS HLA-I 100 86.6 97.1 98.5 96.6 HLA-I CD133 0 0 0 0 0 CD133 HLA-II 18 70.8 0.2 0.4 0.7 HLA-II CD9 95 81.9 78.6 30.7 38.2 CD9 CD54 0 0 1.5 4 2.3 CD54 CD45 50 23.5 2 5.2 5.8 CD45 CD10 15 59 31.1 27.4 15.2 CD10 CD59 100 82.9 95 99.1 98.3 CD59 CD63 100 7.7 13.1 8 3.8 CD63 CD34 0 85.3 12.1 5.5 20.3 CD34 CD13 83 96.3 98.5 98.3 95.2 CD13 CD49e 88 86.5 94.4 90.4 69 CD49e CD49f 70 93 97.5 96 80.6 CD49f CD81 100 91.4 96.3 94.1 93.8 CD81 CD44 100 86.4 93.2 99.4 99 CD44 CD117 0 0 0 0 0 CD117 CD38 0 0 0 0 0 CD38 CD29 100 98.4 95 99.4 98.1 CD29 CD105 98 91.8 96.9 98.6 96.2 CD 105 CD90 98 93.1 95.6 94.1 92.4 CD90 CD166 99 91.7 97.3 98.8 98.8 CD 166 NANOG ND 1 0.1 ND 0.6 NANOG SSEA3 0 0 0 ND 0 SSEA3 SSEA4 0 43.9 44.9 ND 2.6 SSEA4 CD3 ND 0 0 0 0 CD3 CD19 ND 0 0 0 0 CD19 CD14 ND 0 0 0 0.2 CD14 CD56 ND 0 0 0 0 CD56 CD41 ND 85 97.8 98.7 95.6 CD41 實例8-培養各種濃度之M2-048月經血細胞、5006-2180 臍帶細胞及5013-2670細胞 在室溫下使培養基(MethoCult #4034-半固體培養基)之 七個3 ml管解凍且接著連同細胞稀釋液(25,000個細胞之 5006-2180臍帶細胞/ml ; 25,000個細胞之5013-2670臍帶細 135827.doc -53- 200936148 胞/ml ; 50,000個細胞之5013-2670臍帶細胞/ml ; 1,000個細 胞之M2-048/ml ; 25,000個細胞之M2-048 + l,000個細胞之 5006-2180臍帶細胞/ml ; 25,000個細胞之M2-048+l,000個 細胞之5013-2670臍帶細胞/1111;及50,000個細胞之1^2-048+1,000個細胞之5013-2670臍帶細胞/ml)—起置於冰上 歷時15分鐘。15分鐘之後,將各細胞稀釋液接種於 Methocult #4034半固體培養基之獨立管中。輕微渦動該等 管且接著在冰上培育30分鐘。在培育之後,將培養基及月 經細胞、腑帶細胞及月經血及腾帶細胞組合各自等分至 七個不同的4孔培養盤之孔中以進行培育。將1 ml DPBS添 加至七個不同的4孔培養盤各自之第四孔中以有助於濕 度,且在37°C下培育細胞。 表 M-臍帶 5006-2180 細胞、臍帶 5013-2670 細胞、M2-048 月經血細胞、M2-048月經血細胞+臍帶5006_2180細胞、 M2-048月經血細胞+臍帶5013-2670細胞及M2-048月經血 細胞+臍帶5013-2670細胞之培養盤培養 樣品ID 每孔簖帶細胞/每 孔M2細胞 BFU-E 平均值 CFU-GM 平均值 CFU-GEMM 平均值 培養天數 5006-2180 25,000 52.7 14.3 0 16 5013-2670 25,000 0.3 1.6 0.6 16 5013-2670 50,000 1.6 0.3 13 16 M2-048 P4 1,000 0 0 0 23 M2-048 P4 及5006-2180 25,000/1,000 27 11.3 2 16 M2-048 P4 及5013-2670 25,000/1,000 5.6 4.3 1.6 16 M2-048 P4 及5013-2670 50,000/1,000 6.3 3 1.6 16 儘管已展示且描述了本發明之較佳實施例,但熟習此項 135827.doc -54- 200936148 技術者顯而易見在本發明之較廣泛態樣中在不脫離本發明 的清況下了進行多種改變及修改。因此,隨附申請專利範 圍意欲涵蓋所有屬於本發明之真實精神及範疇内的此等改 變及修改。 【圖式簡單說明】 圖1展示本發明之示意性流程圖。 圖2a及2b為對於實例所述之造血群落形成細胞而 & ’在解凉·之後經塗舖且在Methocult 4053半固體曱基纖 維素培養基中培養的臍帶871R細胞之細胞培養物的相片。 臍帶871R細胞係以每孔5〇 〇〇〇個細胞塗鋪於每孔1 ml培養 基中。圖2a為在細胞培養8天後之細胞相片(2〇〇x)。圖2b為 在細胞培養9天後之細胞相片(4〇x)。圖2a及2b說明在無群 落形成單位(CFU)生長之情況下在半固體培養基中存在游 離細胞。 圖3a-31為對於實例2中所述之CFU而言,在甲基纖維素 培養基中培養之M28100RM月經血細胞的相片。圖3a為展 示BFU-E之培養物中細胞之相片(i〇〇x),其說明在每孔塗 鋪10,000個細胞且細胞培養8天之後由於血色素產生而引 起之紅色調。圖3b為對於群落形成單位而言,在培養8天 之後甲基纖維素培養基中之游離細胞的相片(100χ) «»圖3c 及3d為展示BFU-E之培養物中細胞的相片(20〇χ),其說明 在以每孔21,600個細胞塗鋪細胞且在細胞培養物中8天之 後由於血色素產生而引起之紅色調。圖3e為在以每孔 5,000個細胞塗鋪細胞且培養8天之後展示初始BFU-E產生 135827.doc •55· 200936148 之培養物中細胞的相片(4Gx)。圖3f、化及儿為展示酬_e 之培養物中細胞之相片(分別為100X、100X及4GX),其說 明在每孔塗鋪1〇,000個細胞且細胞培養9天之後由於血色 素產生而引起之紅色調。圖3卜3j及3k為展示BFU-E之細 胞。養物之相片(分別為1〇〇χ、1〇〇χ及4〇χ),其說明在每 孔塗鋪21,600個細胞且培養9天之後由於血色素產生而引 起之紅色調。圖31為在此濃度下無群落形成可能之情況 下’培養基中游離細胞之相片。 圖4a-4d為每孔塗鋪5 〇〇〇、1〇 〇〇〇及216〇〇個細胞之 M28101R月經血細胞的相片。圖钝為在以每孔1〇,〇〇〇個細 胞塗鋪M28 101R月經血細胞且細胞培養8天之後,展示 CFU-GM之培養物中細胞之相片(4〇χ)。圖仆為在以每孔 10,000個細胞塗鋪細胞且培養9天之後展示CFu_gm產生之 培養物中細胞的相片(4〇x)。圖4c為在以每孔21,6〇〇個細胞 塗鋪細胞且細胞培養數天之後展示BFU-E產生之培養物中 細胞的相片(10〇χ)。圖4d為在以每孔5,000個細胞塗鋪細胞 且細胞培養9天之後游離細胞之相片(4〇X)。 圖5a-5g為實例4中所述之M28100RM月經血細胞與臍帶 871R細胞之共同培養相片。圖5d為具有以每孔5,〇〇〇個細 胞塗鋪之月經血細胞及以每孔50,000個細胞塗鋪之臍帶血 細胞的部分CFU-GM在培養9天後之相片(4〇χ)。圖5a、5e 及5g展示以每孔10,000個細胞塗鋪之M28100RM月經血細 胞及以每孔50,000個細胞塗鋪之臍帶871R細胞在培養8天 (圖5a及5e)及培養9天(圖5g)之後的相片(100x)。圖5a及5e 135827.doc -56- 200936148 說明CFU-GM群落形成。圖5g說明BFU-Ε群落形成。圖 5b、5c及5f為以每孔21,600個細胞塗鋪之M28100RM月經 血細胞及以每孔50,000個細胞塗鋪之臍帶871R細胞在細胞 培養8天(圖5b及5c)及培養9天(圖5f)之後的相片(分別為 20〇χ 、 10〇χ及10〇χ) 〇 圖6a-6c為實例5中所述之M28101R月經血細胞與臍帶 > 871R細胞之共同培養相片。圖6a、6b及6c說明甲基纖維素 半固體造血培養基中之游離細胞。單獨培養之M28 101R月 _ 經血細胞在以不同濃度塗鋪時能夠產生CFU-GM及BFU- E。 e 135827.doc -57-
Claims (1)
- 200936148 十、申請專利範圍: 1. 一種表現CD34之人類細胞之群體,其係獲自人類臍帶血 細胞在具有促進該等人類臍帶血細胞的群體倍增之人類 月經血細胞之合適培養條件中的擴增。 2. 如請求項1之人類細胞之群體,其中該人類細胞之群體 •亦表現SSEA4。 . 3 ·如請求項1之人類細胞之群體,其中該人類細胞之群體 亦表現HLA-II。 φ 4.如請求項1之人類細胞之群體,其中使該表現CD34之人 類細胞之群體懸浮於冷凍保藏劑、培養基、生長培養基 或分化培養基之任一者中。 5. 如請求項1之人類細胞之群體,其中該表現CD34之人類 細胞之群體為至少兩次或兩次以上群體倍增之結果。 6. 如請求項1之人類細胞之群體,其中該人類細胞之群體 能夠產生以下任一者:群落形成單位(colony forming units)、群落形成單位粒細胞(CFU-GM)巨噬細胞(colony 〇 forming unit granulocyte macrophages)、爆式形成單位紅 血球(burst forming unit erythroids; BFU-E)及群落形成單 .位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核細胞血液系前驅體細胞 (colony forming unit granulocyte erythrocyte macrophage megakaryocyte blood lineage precursor cells; CFU-GEMM)。 7. —種表現CD34之人類臍帶血細胞的群體,其係藉由包含 以下之方法而獲得: 135827.doc 200936148 在適於臍帶血幹細胞擴增的條件下共同培養足量之該 等臍帶血幹細胞與足量月經血幹細胞;及 經由至少兩次群體倍增使該等足量臍帶血細胞在培養 物中增殖。 8·如請求項7之方法,其中該方法進一步包含使該等足量 臍帶jk細胞在培養物中生長以產生以下任一者之步驟: ' 群落形成單位(CFU)、群落形成單位粒細胞巨噬細胞 (CFU_GM)、爆式形成單位紅血球(BFU-E)及群落形成單 ® 位粒細胞紅血球巨噬細胞巨核細胞血液系前驅體細胞 (CFU-GEMM) 〇 9. 如請求項7之方法,其中該方法進一步包含在使該等足 篁膊帶血細胞在培養物中增殖之後分離表現Cd34之臍帶 血細胞的步驟。 10. 如請求項7之方法,其中該方法進一步包含在使該等足 量臍帶血細胞在培養物中增殖之後冷凍保藏該表現CD34 之人類臍帶血細胞的群體之步驟。 ® 11.如請求項7之方法,其中該表現CD34之人類臍帶血細胞 的群體在於合適培養條件下使該等足量臍帶血細胞增殖 之後亦表現HLA-II。 12. 如請求項7之方法,其中該表現CD34之人類臍帶血細胞 的群體在於合適培養條件下使該等足量臍帶血細胞增殖 之後亦表現SSEA4。 13. 如請求項7之方法,其中該使該等足量臍帶血細胞在培 養物中增殖包含使該等臍帶血細胞生長以產生以下任一 ° 135827.doc 200936148 者:群落形成單位、群落形成單位粒細胞巨噬細胞 (CFU-GM)、爆式形成單位紅血球(BFUE)及群落形成單 位粒細胞紅企球巨噬細胞巨核細胞血液系前驅體細胞 (CFU-GEMM)。 14. 一種獲得經擴增之表現CD34之人類臍帶血細胞的方法, " 該方法包含: ’ 在適於促進臍帶金細胞擴增之共同培養條件下以足量 月經血細胞接種足量之該等臍帶血細胞;及 ® 在支持該等濟帶血細胞的至少兩次或兩次以上群體倍 增之培養條件下共同培養該等臍帶血細胞與該等月經血 細胞。 15. 如請求項14之方法,其中該共同培養該等表現CD34之人 類臍帶血細胞包含擴增臍帶血細胞以表現ssea_4及 HLA-II中之至少一或多者。 16. 如請求項15之方法,其中該等經擴增人類臍帶血細胞表 現高含量之CD34 » ® 17·如請求項14之方法’其中該共同培養該等臍帶血細胞包 含擴增臍帶血細胞以產生以下任一者:群落形成單位、 群落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU_GM)、爆式形成單 . 位紅血球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨噬細 胞巨核細胞血液系前驅體細胞(CFU_GEMM)。 18.如叫求項14之方法,其中該方法進一步包含以下步驟中 之至少一者:關於CD34免疫選擇經擴增人類臍帶血細 胞,自培養物分離經擴增人類臍帶血細胞以用於輸注於 135827.doc , 200936148 人類中,極冷保藏經擴增人類臍帶血細胞,或將經擴增 腾帶jk細胞分化為細胞系。 19·如請求項14之方法,其中該方法包含使經擴增人類臍帶 血細胞生長以產生以下任一者的步驟:群落形成單位、 群落形成單位粒細胞巨噬細胞(CFU-GM)、爆式形成單 位紅企球(BFU-E)及群落形成單位粒細胞紅血球巨嗔細 胞巨核細胞血液系前驅體細胞(CFU-GEMM)。135827.doc
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US145607P | 2007-10-31 | 2007-10-31 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| TW200936148A true TW200936148A (en) | 2009-09-01 |
Family
ID=40591376
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| TW097142288A TW200936148A (en) | 2007-10-31 | 2008-10-31 | Methods for co-culturing cord blood derived cells with menstrual stem cells |
Country Status (18)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US20090191628A1 (zh) |
| EP (1) | EP2212418A4 (zh) |
| JP (1) | JP2011501960A (zh) |
| KR (1) | KR20100091192A (zh) |
| CN (1) | CN101952416A (zh) |
| AR (1) | AR069156A1 (zh) |
| AU (1) | AU2008319284A1 (zh) |
| BR (1) | BRPI0818152A2 (zh) |
| CA (1) | CA2714777A1 (zh) |
| CL (1) | CL2008003282A1 (zh) |
| CR (1) | CR11409A (zh) |
| EC (1) | ECSP10010189A (zh) |
| IL (1) | IL205470A0 (zh) |
| MX (1) | MX2010004914A (zh) |
| NI (1) | NI201000077A (zh) |
| PA (1) | PA8802801A1 (zh) |
| TW (1) | TW200936148A (zh) |
| WO (1) | WO2009058365A1 (zh) |
Families Citing this family (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2010056988A2 (en) | 2008-11-13 | 2010-05-20 | University Of South Florida | Methods of treating stroke using stem cell-like menstrual blood cells |
| DE102011101054A1 (de) | 2011-05-09 | 2012-02-16 | Bernhard Hildebrandt | Geräte und Vorrichtungen für das Implantationsverfahren für Endoprothesen, welches ein Systemzentrum und eine Systemachse sowie den dazu erforderlichen Gerätekomplex aus Fixiervorrichtung, Extensionsvorrichtung, Gliedmaßenhalterung und Steuergerät als Grundlage hat. |
| WO2013025189A1 (en) * | 2011-08-12 | 2013-02-21 | Cryo-Cell International, Inc. | Methods for co-culturing cord blood cells or cord tissue cells with menstrual multipotent cells |
| KR101348093B1 (ko) * | 2012-02-15 | 2014-01-16 | 고려대학교 산학협력단 | 공동 배양된 세포를 포함하는 섬유 및 그 제조방법 |
| WO2014135924A1 (en) * | 2013-03-08 | 2014-09-12 | Cells For Cells | Menstrual stems cells for the efficient support and expansion of cd34+ cd133+ hematopoietic stem cells in vitro |
| JP6754459B2 (ja) * | 2013-08-19 | 2020-09-09 | 国立研究開発法人国立循環器病研究センター | 羊膜間葉系細胞組成物の製造方法及び凍結保存方法、並びに治療剤 |
| JP6512759B2 (ja) | 2013-08-19 | 2019-05-15 | 国立研究開発法人国立循環器病研究センター | 羊膜間葉系細胞組成物の製造方法及び凍結保存方法、並びに治療剤 |
| WO2015066076A1 (en) * | 2013-10-28 | 2015-05-07 | Biocardia, Inc. | Methods of measuring potential for therapeutic potency and defining dosages for autologous cell therapies |
| KR102676517B1 (ko) * | 2021-07-08 | 2024-06-20 | 박정원 | 생리혈로부터 줄기세포를 수득하는 방법 |
| WO2025185727A1 (en) * | 2024-03-08 | 2025-09-12 | The Chinese University Of Hong Kong | Normal saline medium prevents clotting of menstrual blood |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5192553A (en) * | 1987-11-12 | 1993-03-09 | Biocyte Corporation | Isolation and preservation of fetal and neonatal hematopoietic stem and progenitor cells of the blood and methods of therapeutic use |
| US5840580A (en) * | 1990-05-01 | 1998-11-24 | Becton Dickinson And Company | Phenotypic characterization of the hematopoietic stem cell |
| US7410773B2 (en) * | 1995-02-02 | 2008-08-12 | Ghazi Jaswinder Dhoot | Method of preparing an undifferentiated cell |
| US7560280B2 (en) * | 2000-11-03 | 2009-07-14 | Kourion Therapeutics Gmbh | Human cord blood derived unrestricted somatic stem cells (USSC) |
| WO2006078034A1 (ja) * | 2005-01-24 | 2006-07-27 | Japan Health Sciences Foundation | 心筋細胞への分化能を有する細胞 |
| WO2006088867A2 (en) * | 2005-02-15 | 2006-08-24 | Medistem Laboratories, Incorporated | Method for expansion of stem cells |
| US20070041948A1 (en) * | 2005-07-20 | 2007-02-22 | Seoul National University Industry Foundation | Method for culturing and proliferating hematopoietic stem cells and progenitor cells using human endometrial cells |
| US20080241113A1 (en) * | 2007-03-01 | 2008-10-02 | Cryo-Cell International, Inc. | Procurement, isolation and cryopreservation of endometrial/menstrual cells |
-
2008
- 2008-10-31 PA PA20088802801A patent/PA8802801A1/es unknown
- 2008-10-31 AR ARP080104795A patent/AR069156A1/es not_active Application Discontinuation
- 2008-10-31 US US12/290,551 patent/US20090191628A1/en not_active Abandoned
- 2008-10-31 CN CN200880122741XA patent/CN101952416A/zh active Pending
- 2008-10-31 EP EP08845236A patent/EP2212418A4/en not_active Withdrawn
- 2008-10-31 TW TW097142288A patent/TW200936148A/zh unknown
- 2008-10-31 AU AU2008319284A patent/AU2008319284A1/en not_active Abandoned
- 2008-10-31 BR BRPI0818152-7A2A patent/BRPI0818152A2/pt not_active IP Right Cessation
- 2008-10-31 JP JP2010532061A patent/JP2011501960A/ja not_active Abandoned
- 2008-10-31 WO PCT/US2008/012376 patent/WO2009058365A1/en not_active Ceased
- 2008-10-31 KR KR1020107011330A patent/KR20100091192A/ko not_active Withdrawn
- 2008-10-31 MX MX2010004914A patent/MX2010004914A/es not_active Application Discontinuation
- 2008-10-31 CA CA2714777A patent/CA2714777A1/en not_active Abandoned
- 2008-11-03 CL CL2008003282A patent/CL2008003282A1/es unknown
-
2010
- 2010-04-29 IL IL205470A patent/IL205470A0/en unknown
- 2010-04-30 NI NI201000077A patent/NI201000077A/es unknown
- 2010-04-30 CR CR11409A patent/CR11409A/es not_active Application Discontinuation
- 2010-05-19 EC EC2010010189A patent/ECSP10010189A/es unknown
-
2011
- 2011-08-12 US US13/209,123 patent/US20120208275A1/en not_active Abandoned
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| KR20100091192A (ko) | 2010-08-18 |
| EP2212418A4 (en) | 2010-12-08 |
| US20120208275A1 (en) | 2012-08-16 |
| MX2010004914A (es) | 2010-08-18 |
| BRPI0818152A2 (pt) | 2014-10-14 |
| ECSP10010189A (es) | 2010-06-29 |
| AU2008319284A1 (en) | 2009-05-07 |
| PA8802801A1 (es) | 2009-06-23 |
| JP2011501960A (ja) | 2011-01-20 |
| US20090191628A1 (en) | 2009-07-30 |
| IL205470A0 (en) | 2010-12-30 |
| WO2009058365A1 (en) | 2009-05-07 |
| CN101952416A (zh) | 2011-01-19 |
| AR069156A1 (es) | 2009-12-30 |
| EP2212418A1 (en) | 2010-08-04 |
| CA2714777A1 (en) | 2009-05-07 |
| NI201000077A (es) | 2010-09-07 |
| CL2008003282A1 (es) | 2010-04-09 |
| CR11409A (es) | 2010-08-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| TW200936148A (en) | Methods for co-culturing cord blood derived cells with menstrual stem cells | |
| Kögler et al. | Cytokine production and hematopoiesis supporting activity of cord blood–derived unrestricted somatic stem cells | |
| Peled et al. | Pre-clinical development of cord blood-derived progenitor cell graft expanded ex vivo with cytokines and the polyamine copper chelator tetraethylenepentamine | |
| US8877495B2 (en) | Methods of expanding myeloid cell populations and uses thereof | |
| CN103097520B (zh) | 产生自然杀伤细胞的方法 | |
| US20080118477A1 (en) | Umbilical cord mesenchymal stem cells support cord blood hematopoiesis | |
| JP2018183161A (ja) | ナチュラルキラー細胞及びその使用 | |
| Robinson et al. | Mesenchymal stem cells in ex vivo cord blood expansion | |
| US20080241107A1 (en) | Methods and Compositions For Preparing Pancreatic Insulin Secreting Cells | |
| Lo Iacono et al. | Wharton’s jelly mesenchymal stromal cells as a feeder layer for the ex vivo expansion of hematopoietic stem and progenitor cells: a review | |
| EP3325612B1 (en) | Methods and compositions for stem cell transplantation | |
| JP4268209B2 (ja) | 子宮内膜細胞を用いた造血幹細胞または前駆細胞の培養及び増殖方法 | |
| US20160151421A1 (en) | Methods and compositions for long term hematopoietic repopulation | |
| CA2219869A1 (en) | Human cd-34 hematopoietic stem cells | |
| EP4519419A1 (en) | Methods | |
| US20140154219A1 (en) | Methods and compositions for large-scale isolation of very small embryonic-like (vsel) stem cells | |
| WO2013025189A1 (en) | Methods for co-culturing cord blood cells or cord tissue cells with menstrual multipotent cells | |
| US10400211B1 (en) | Cell composition for tissue regeneration | |
| Tipnis et al. | Umbilical cord matrix derived mesenchymal stem cells can change the cord blood transplant scenario | |
| Baumert et al. | An optimization of hematopoietic stem and progenitor cell isolation for scientific and clinical purposes by the application of a new parameter determining the hematopoietic graft efficacy. | |
| KR101149007B1 (ko) | 생착능이 증가된 조혈줄기세포의 제조방법 | |
| CA2993014C (en) | Methods and compositions for stem cell transplantation | |
| HK40095871A (zh) | 干细胞移植方法和干细胞移植组合物 | |
| Kim | Culture of Umbilical Cord-and Cord Blood-Derived Stem Cells | |
| Weiss et al. | Mesenchymal Stromal Cells Derived from Wharton's Jelly |