RU2138163C1 - Среда для консервации роговицы донора - Google Patents
Среда для консервации роговицы донора Download PDFInfo
- Publication number
- RU2138163C1 RU2138163C1 RU97110540A RU97110540A RU2138163C1 RU 2138163 C1 RU2138163 C1 RU 2138163C1 RU 97110540 A RU97110540 A RU 97110540A RU 97110540 A RU97110540 A RU 97110540A RU 2138163 C1 RU2138163 C1 RU 2138163C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- medium
- cornea
- donor
- chloride
- anhydrous
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области медицины, а именно - к офтальмологии, и может найти применение при создании банка роговиц. В используемой жидкой питательной среде подобраны оптимальные соотношения составляющих компонентов для переживания донорского корнеосклерального лоскута, что способствует сохранению адекватной плотности заднего эпителия роговицы в процессе ее консервирования и обеспечивает поддержание нормальной толщины и прозрачности роговицы у больных с пересаженными трансплантатами из среды с адгелоном. Технический результат - повышение качества консервированного трансплантата для сквозной кератопластики за счет стимулирования адгелоном регенерации поврежденного эндотелия роговицы донора. 2 ил.
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к офтальмологии, и может найти применение при создании банка роговиц.
Известен способ консервации донорских роговиц в жидких питательных средах, позволяющий создать запас высококачественной, жизнеспособной донорской ткани для осуществления успешной сквозной кератопластики (СКП) (Cornealsurgery. Theory, Technique and Tissue. Ed. F.S. Brightbill, M.D. The C.N. Mosby, Company. S.T. Louis-Washington, D.C.-Toronto, 1986, 775 p.).
Консервация донорских роговиц в жидких питательных средах была начата Mc Carey B.E. и Kaufman H.E. в 1974 году (Invest. Ophthalmol., - 1974, - 13, - 165 - 173). Созданная этими исследователями среда М-К представляла собой смесь среды Е-199, декстрана, бикарбонатного буфера, пенициллина и стрептомицина. Позднее ряд исследователей представили данные об использовании питательной среды для консервации роговиц в комплексе с хондроитин сульфатом (среда K-Sol) /Stein R.M., Bourne W.M., Campbell R.J./Arch. Ophthalmol., - 1986, - vol. 104, - p.p. 1358 - 1361/. Консервация роговиц в среде K-Sol дала наиболее хорошие результаты по сравнению со средой М-К (в ней значительно менее выражен отек роговицы). Недостатком этого способа являются неизбежные механические повреждения эндотелия роговицы в процессе оценки, стерилизации, выкраивания корнеосклерального лоскута из донорских глаз при создании глазного банка, а также ограничение сроков хранения в этих средах пригодных для СКП трансплантатов до 4 - 5 суток.
Сравнительный анализ переживания донорских роговиц в средах М-К, K-Sol и среде с адгелоном показал, что роговицы, хранившиеся в среде с адгелоном характеризовались более высоким уровнем поддержания структурной и функциональной целостности: при сроках хранения до 7 суток включительно целостность эндотелиального монослоя была сохранена. Послеоперационный подсчет эндотелиальных клеток (ЭК) и пахиметрия в зеркальном микроскопе у больных с пересаженными трансплантатами из среды с адгелоном также показали лучшую сохранность роговичной ткани и ее функции, по сравнению с трансплантатами, хранившимися в среде М-К и K-Sol.
Технический результат, достигаемый изобретением, - возможность стимулировать репаративную регенерацию поврежденных элементов роговицы, неизбежных при ручных и инструментальных манипуляциях с донорскими глазами при заготовке корнеосклеральных трансплантатов, благодаря чему восстанавливается структурная организация клеточных элементов, в частности заднего эпителия роговицы (ЗЭР). Сохранение адекватной плотности ЗЭР в процессе консервирования донорского материала обеспечивает поддержание нормальной толщины и прозрачности роговицы, т.е. значительно улучшает качество трансплантата для СКП.
Сущность изобретения заключается в достижении упомянутого технического результата благодаря использованию среды для среднепродолжительной консервации роговицы донора, содержащей питательную среду культуры тканей Т-199, HEPES-буфер для стабилизации pH среды до 7,3, декстран-40, смесь антибиотиков, витамины, электролиты, глюкозу и адгелон с возможным разбросом ингредиентов на 1 л среды 199 в пределах:
HEPES-буфер (IM) - 15 мМ - 20 мМ - 25 мМ
декстран (мол.вес 40000) - 25 г - 30 г - 50 г (2,5% - 3,5% - 5%)
ампициллин - 100 мг - 150 мг
глицин (2,0 мг/л) - 1 мл
биотин - 0,05 мг - 0,1 мг - 0,5 мг
фолиевая к-та - 0,5 мг - 1,0 мг
хлорид кальция - 166,0 мг - 332 мг
сульфат магния - 120,0 мг - 180 мг
фосфат калия - 80 мг - 160 мг - 170 мг
глюкоза - 100 г - 450 г
адгелон - 10-13 М/мл р-ра - 5 мл
Оптимальное соотношение составляющих веществ в используемой среде указано в методике приготовления среды.
HEPES-буфер (IM) - 15 мМ - 20 мМ - 25 мМ
декстран (мол.вес 40000) - 25 г - 30 г - 50 г (2,5% - 3,5% - 5%)
ампициллин - 100 мг - 150 мг
глицин (2,0 мг/л) - 1 мл
биотин - 0,05 мг - 0,1 мг - 0,5 мг
фолиевая к-та - 0,5 мг - 1,0 мг
хлорид кальция - 166,0 мг - 332 мг
сульфат магния - 120,0 мг - 180 мг
фосфат калия - 80 мг - 160 мг - 170 мг
глюкоза - 100 г - 450 г
адгелон - 10-13 М/мл р-ра - 5 мл
Оптимальное соотношение составляющих веществ в используемой среде указано в методике приготовления среды.
Методика приготовления среды и консервация в ней роговицы донора осуществляется следующим образом.
В стерильном боксе (ламинарном шкафу) берется флакон с готовой средой 199 (1,0 л) фирмы Sigma (США), куда с соблюдением всех правил асептики стерильной мерной пипеткой добавляется 20 мМ HEPES-буфера (1 М) фирмы Sigma (США), отдельной стерильной пипеткой из готового флакона со 100 мл смеси антибиотиков (пенициллин-стрептомицин-неомицин) той же фирмы вливается 10 мл вышеуказанных антибиотиков в концентрации 5000 ЕД/мл, 5 мг/мл, 10 мг/мл соответственно и высыпается 100 мг ампициллина для инъекций из отдельного флакона фирмы Pharmachim (Болгария). Из готового пузырька с 25 мл смеси витаминов фирмы Bio Whittaker (США) другой пипеткой добавляется 1 мл витаминного раствора, содержащего 2,0 мг/л глицина, 0,5 мг/л никотиновой к-ты, 0,5 мг/л витамина B6, 0,5 мг/л витамина B1. Раздельные навески биотина (0,05 мг) фирмы Sigma (США) и фолиевой к-ты (0,5 мг) этой же фирмы делались в боксе на торсионных весах со стерильными чашечками, после чего высыпались во флакон со средой. Таким же образом туда добавлялись стерильные навески электролитов (332 мг хлорида кальция, 180 мг сульфата магния и 170 мг фосфата калия) фирмы Sigma. Стерильный порошок глюкозы той же фирмы отвешивался на стерильных чашках аптекарских весов (450 г), после чего высыпался в флакон со средой. Далее в полученный состав добавляли 5 мл адгелона (мол. масса 6 килодальтон) в концентрации 10-13 М/мл раствора, полученного в Институте биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН из супернатанта сыворотки крови животных и человека.
Трупные глаза забираются не позднее 12 часов с момента констатации смерти донора. Перед консервированием роговицы донорских глаз тщательно исследовались в щелевой лампе фирмы "Opton" для выявления эпителиальной и стромальной патологии. Контроль состояния ЗЭР осуществлялся с помощью зеркального энотелиального микроскопа фирмы "Keeler-Canon", который позволял провести пахиметрию и морфометрический анализ ЗЭР. Для консервации донорских роговиц отбирались лишь те, потери в плотности ЭК которых не превышали 15% и которые содержали не менее 2500 ЭК в 1 мм2. После биомикроскопического осмотра роговицы, формы и размеров зрачка, делалась адреналиновая проба (0,1% р-р солянокислого адреналина). Глаза с положительной адреналиновой пробой перед иссечением из них корнеосклерального лоскута стерилизовались в течение 5-7 минут по разработанному в нашем отделе способу в смеси раствора хлоргексидина и гентамицина соответственно 0,02% и 0,125% концентрации (А.А. Каспаров с соавт., 1990). Затем кадаверные глаза дважды ополаскивались в стерильном физиологическом р-ре, после чего из них выкраивался корнеосклеральный лоскут, который помещался в стерильный контейнер с герметически закрывающейся крышкой, содержащим 20 мл питательной среды с адгелоном.
Законсервированные роговицы хранились при тем-ре 4oC в холодильнике. Все манипуляции осуществлялись в стерильном боксе с соблюдением всех правил асептики и проведением посевов на стерильность в бактериологической лаборатории заготовленных роговиц. Полученные трансплантаты хранились в среде с адгелоном в течение 1 - 7 дней, после чего использовались для СКП больным с разнообразной патологией роговицы. За время переживания роговицы в жидкой питательной среде кровь этого донора тестировалась на гепатоциты B и C, СПИД и сифилис.
Перед СКП эндотелиальный монослой консервированной парной роговицы исследовался в световом микроскопе на плоскостных пленочных препаратах, импрегнированных азотнокислым серебром и окрашенных гематоксилином, что позволяло осуществлять качественную и количественную оценку состояния ЗЭР.
В послеоперационном периоде трансплантаты реципиентов изучались с помощью зеркального микроскопа в сроки 1 неделя и 3 месяца после СКП.
Примеры характеристик донорских роговиц, консервированных в жидкой питательной среде с адгелоном, использованных для СКП.
Пример 1. Донор - муж. 30 лет, скончался в результате механической асфиксии (повешение). Срок после смерти до аутопсии (выделения глазных яблок) - 10 часов; срок после смерти до консервации роговиц в питательной среде с адгелоном - 12 часов.
Количество ЭК в 1 мм2 при зеркальной микроскопии глаз донора перед консервацией: OD - 2900; OS - 3000. Срок консервации роговиц в питательной среде - 4 суток. Состояние ЭК на плоскостном пленочном препарате правой роговицы спустя 4 суток хранения оставалось без изменений по сравнению нормой (фиг. 1-а). На фиг. 1-б - эндотелий роговицы, хранившейся в среде М-К в течение 4-х дней: видны участки с усиленной аргирофилией ЭК (некробиотические изменения клеток).
Произведена субтотальная кератопластика реципиенту 47 лет с герпетическим кератитом, микроперфорацией роговицы, десцементоцеле. Для операции была использована роговица левого глаза донора, хранившаяся в среде с адгелоном в течение 4 суток. Операционный и послеоперационный периоды - без осложнений. Сквозной трансплантат роговицы с 1-х суток до 3-х месяцев оставался прозрачным; количество ЭК к 3-му месяцу послеоперационного периода - 2500.
Пример 2. Донор - муж. 28 лет, скончался от отравления этиловым спиртом. Срок после смерти до вскрытия - 11 часов; срок после смерти до консервации роговиц в питательной среде с адгелоном - 12 часов.
Количество ЭК в 1 мм2 при зеркальной микроскопии глаз донора перед консервацией роговицы: OD - 3100; OS - 3100. Срок консервации роговиц в питательной среде - 7 суток. В правой роговице спустя 7 суток ее хранения целостность эндотелиального монослоя была сохранена; в отдельных полях зрения можно было видеть единичные крупные моноядерные ЭК, которые свидетельствовали о регенерационных процессах и новообразовании монослоя (фиг. 2-а). На фиг. 2-б - эндотелий роговицы, хранившейся в среде K-Sol в течение 7 дней: видна деструкция ЭК (до 20%).
Произведена ургентная СКП больной 56 лет с гнойным кератоиридоциклитом, начинающимся эндофтальмитом. Для СКП была использована роговица левого глаза донора, хранившаяся в среде с адгелоном в течение 7 суток. Операционный и послеоперационный периоды без осложнений. Сквозной трансплантат роговицы в первые сутки был полупрозрачным, а через 3 месяца - прозрачный; количество ЭК к 3-му месяцу послеоперационного периода - 2210.
Изобретение поясняется микрофотографиями.
Claims (1)
- Среда для консервирования роговицы донора, содержащая питательную среду культуры ткани Т-199, HEPES-буфер для стабилизации рН среды до 7,3; декстран -40, антибиотик, отличающаяся тем, что он дополнительно содержит витамины: глицин, никотиновая кислота, пиридоксин-хлорид, тиамин-хлорид, биотин, фолиевая кислота; электролиты: хлорид кальция (безводный), сульфат магния (безводный), фосфат калия, а также смесь антибиотиков: ампициллин, пенициллин, стрептомицин, неомицин; глюкозу и адгелон при следующем соотношении компонентов на 1 л Т-199:
Глицин - 2,0 мг
Витамины:
Никотиновая кислота (0,5 мг/л), пиридоксин-хлорид (0,5 мг/л) и тиамин-хлорид (0,5 мг/л) - 1 мл
Биотин - 0,05 мг
Фолиевая кислота - 0,5 мг
Электролиты:
Хлорид кальция (безводный) (Са++) - 332 мг
Сульфат магния (безводный) (Мg++) - 180 мг
Фосфат калия (К+) - 170 мг
Смесь антибиотиков:
Ампициллин - 100 мг
Пенициллин (5000 ЕД/мл), стрептомицин (5 мг/мл) и неомицин (10 мг/мл) - 10 мл
Глюкоза (450 г, 45%) и адгелон (10-13М/мл раствора) - 5 мл
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU97110540A RU2138163C1 (ru) | 1997-06-20 | 1997-06-20 | Среда для консервации роговицы донора |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU97110540A RU2138163C1 (ru) | 1997-06-20 | 1997-06-20 | Среда для консервации роговицы донора |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU97110540A RU97110540A (ru) | 1999-07-20 |
| RU2138163C1 true RU2138163C1 (ru) | 1999-09-27 |
Family
ID=20194471
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU97110540A RU2138163C1 (ru) | 1997-06-20 | 1997-06-20 | Среда для консервации роговицы донора |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2138163C1 (ru) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2381649C1 (ru) * | 2008-12-02 | 2010-02-20 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Способ обработки трупной роговицы человека перед кератопластикой |
| RU2450515C1 (ru) * | 2010-12-01 | 2012-05-20 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Средство для консервации донорской роговицы |
| RU2464783C1 (ru) * | 2011-06-17 | 2012-10-27 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Способ выделения и фиксации клеток ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека |
| RU2710167C1 (ru) * | 2019-04-11 | 2019-12-24 | Сергей Анатольевич Борзенок | Универсальное средство для гипотермической консервации трансплантата роговицы |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU648187A1 (ru) * | 1977-07-20 | 1979-02-25 | Ростовский государственный медицинский институт | Состав дл консервировани роговиц человека |
| RU2069951C1 (ru) * | 1993-02-26 | 1996-12-10 | Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" | Среда для консервации роговицы глаза |
-
1997
- 1997-06-20 RU RU97110540A patent/RU2138163C1/ru active
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU648187A1 (ru) * | 1977-07-20 | 1979-02-25 | Ростовский государственный медицинский институт | Состав дл консервировани роговиц человека |
| RU2069951C1 (ru) * | 1993-02-26 | 1996-12-10 | Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" | Среда для консервации роговицы глаза |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| 3. Stein R.M. Chondroitin sulfate for corneal preservation al 4 o C. Arch. Ophthalmol., 1986, v.104, p.1358-1361 * |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2381649C1 (ru) * | 2008-12-02 | 2010-02-20 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Способ обработки трупной роговицы человека перед кератопластикой |
| RU2450515C1 (ru) * | 2010-12-01 | 2012-05-20 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Средство для консервации донорской роговицы |
| RU2464783C1 (ru) * | 2011-06-17 | 2012-10-27 | Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" | Способ выделения и фиксации клеток ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека |
| RU2710167C1 (ru) * | 2019-04-11 | 2019-12-24 | Сергей Анатольевич Борзенок | Универсальное средство для гипотермической консервации трансплантата роговицы |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0517972B1 (en) | Define serum-free medical solution and use thereof | |
| US5104787A (en) | Method for apparatus for a defined serumfree medical solution useful for corneal preservation | |
| Bourne | Cellular changes in transplanted human corneas | |
| US6277557B1 (en) | Infusible grade short-term cell storage medium | |
| DE69914160T2 (de) | Definierte medizinische Lösung ohne Serum für die Augenheilkunde | |
| JP3723494B2 (ja) | 細胞保存溶液 | |
| JP2022040140A (ja) | 臨床製剤 | |
| Doughman et al. | The effects of high molecular weight dextran on the preservation of human corneas | |
| Garcin et al. | Three-month storage of human corneas in an active storage machine | |
| Bourne | Corneal endothelium—past, present, and future | |
| CN105916374B (zh) | 用于增加器官和组织保存溶液的稳定性和储存寿命的溶液 | |
| JP4927282B2 (ja) | 血小板の保存のための組成物 | |
| RU2138163C1 (ru) | Среда для консервации роговицы донора | |
| Yau et al. | A medium-term corneal preserving medium (K-Sol) | |
| Bourne et al. | Increased endothelial cell loss after transplantation of corneas preserved by a modified organ-culture technique | |
| EHLERS et al. | Post‐operative thickness and endothelial cell density in cultivated, cryopreserved human corneal grafts | |
| Lindstrom et al. | Corneal preservation at 4 degrees C with chondroitin sulfate containing medium | |
| Møller‐Pedersen et al. | Viability of human corneal keratocytes during organ culture | |
| US20070087320A1 (en) | Medium for conservation of organs, biological tissues or living cells | |
| Schultz | Laboratory evaluation of cryopreserved corneal tissue | |
| Bigar et al. | Improved corneal storage: penetrating keratoplasties in rabbits | |
| Van Horn et al. | Corneal preservation: recent advances | |
| Sperling et al. | Toxicity of dimethylsulfoxide (DMSO) to human corneal endothelium in vitro | |
| JPH057619A (ja) | 血清不含医療用規定溶液およびその溶液を用いた角膜の保存方法 | |
| JPH0525001A (ja) | 血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法 |