JPH0525001A - 血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法 - Google Patents
血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法Info
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Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】角膜の移植を受ける際に、角膜を提供者から摘
出してから患者に移植するまでの低温状態の保存期間中
に、正常な生理代謝と角膜の脱腫張を維持することによ
り角膜組織の生存力を強化すると共に、角膜組織を新鮮
な組織状態で維持期間を延長することを目的とする。 【構成】提供者からの移植角膜組織の摘出から患者への
移植に至るまでの期間、低温状態でヒト角膜組織を保存
し、且つ劣化を防止するための血清不含有医療用溶液お
よび眼組織の品質を高める方法であり、該血清不含有医
療用溶液は、水性栄養素および電解液、グリコサミノグ
リカン、脱腫張剤、緩衝剤、エネルギ源、抗酸化剤成長
因子からなり、少なくとも一種類以上の成長因子を含有
する。
出してから患者に移植するまでの低温状態の保存期間中
に、正常な生理代謝と角膜の脱腫張を維持することによ
り角膜組織の生存力を強化すると共に、角膜組織を新鮮
な組織状態で維持期間を延長することを目的とする。 【構成】提供者からの移植角膜組織の摘出から患者への
移植に至るまでの期間、低温状態でヒト角膜組織を保存
し、且つ劣化を防止するための血清不含有医療用溶液お
よび眼組織の品質を高める方法であり、該血清不含有医
療用溶液は、水性栄養素および電解液、グリコサミノグ
リカン、脱腫張剤、緩衝剤、エネルギ源、抗酸化剤成長
因子からなり、少なくとも一種類以上の成長因子を含有
する。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、医療用栄養水溶液中で
の眼組織の保存に関し、一層詳細には、提供者からの移
植角膜組織の摘出から移植に至るまでの期間、ヒト角膜
組織を保存し、且つ劣化を防止するための血清不含有医
療用溶液および眼組織の品質を高める方法に関する。
の眼組織の保存に関し、一層詳細には、提供者からの移
植角膜組織の摘出から移植に至るまでの期間、ヒト角膜
組織を保存し、且つ劣化を防止するための血清不含有医
療用溶液および眼組織の品質を高める方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】多くの角膜疾患の患者にとって、角膜移
植は視力回復に有効な方法である。この方法は広く受け
入れられているが、疾患の治癒率は、移植角膜組織の有
効性不適合によって例外なく著しく妨げられている。こ
の問題は、保存溶液の緊急開発を促し、ＭＫTM−保存媒
体および硫酸コンドロイチン含有媒体の開発がなされ、
移植角膜組織の品質の有効性に良好な影響を与えた。
植は視力回復に有効な方法である。この方法は広く受け
入れられているが、疾患の治癒率は、移植角膜組織の有
効性不適合によって例外なく著しく妨げられている。こ
の問題は、保存溶液の緊急開発を促し、ＭＫTM−保存媒
体および硫酸コンドロイチン含有媒体の開発がなされ、
移植角膜組織の品質の有効性に良好な影響を与えた。
【０００３】この分野では、提供された角膜の保存時間
を延長し、移植の成功の大きな要因となる生存内皮を保
存するという観点のもとに研究が続行されている。今日
の技術では、通常の室温では、角膜組織を２〜３日以上
適性な状態で保存することはできないが、４℃では、１
４日未満までの角膜保存が報告されている。角膜基質の
腫張が増加することによって理解されるように、角膜を
９６時間以上保存すると上皮破壊および角膜の透明度の
喪失が起こる。この基質浮腫は角膜内皮（角膜基質を裏
打ちする特別な細胞層）の障害物ポンプ機能の維持が低
下するためである。
を延長し、移植の成功の大きな要因となる生存内皮を保
存するという観点のもとに研究が続行されている。今日
の技術では、通常の室温では、角膜組織を２〜３日以上
適性な状態で保存することはできないが、４℃では、１
４日未満までの角膜保存が報告されている。角膜基質の
腫張が増加することによって理解されるように、角膜を
９６時間以上保存すると上皮破壊および角膜の透明度の
喪失が起こる。この基質浮腫は角膜内皮（角膜基質を裏
打ちする特別な細胞層）の障害物ポンプ機能の維持が低
下するためである。
【０００４】角膜保存後の浮腫と維持された角膜の脱腫
張の機能的状態は臨床的に非常に重要であり、そして外
科手術の結果の正否に直接影響を与える。角膜の透明度
を維持するためには、相対的に脱水状態を維持すること
が角膜の有効性にとって重要である。角膜の脱腫張は、
基本的に内皮細胞によって行われるエネルギ依存現象で
ある。角膜を生存状態にしておくには、高レベルのＡＴ
Ｐによって維持されたエネルギ依存機能を保持するため
に種々の酵素反応を行う必要がある。
張の機能的状態は臨床的に非常に重要であり、そして外
科手術の結果の正否に直接影響を与える。角膜の透明度
を維持するためには、相対的に脱水状態を維持すること
が角膜の有効性にとって重要である。角膜の脱腫張は、
基本的に内皮細胞によって行われるエネルギ依存現象で
ある。角膜を生存状態にしておくには、高レベルのＡＴ
Ｐによって維持されたエネルギ依存機能を保持するため
に種々の酵素反応を行う必要がある。
【０００５】角膜の４℃保存法では、低温のもたらす作
用により角膜の代謝速度を遅延化するものの、この遅延
化を実現するために、保存用媒体は角膜の基本的要求を
満たすものでなければならない。従って、角膜保存媒体
は、均衡のとれた塩、アミノ酸、エネルギ源、抗酸化
剤、緩衝剤、膜安定剤、グリコサミノグリカン、脱腫張
剤および抗生物質の複雑な混合物となる。温度を低下さ
せることは膜脂質、蛋白質および水の構造を変化させ
る。なお、それぞれのものは、能動拡散、担体−気体相
互作用およびカップリング関係の容易性を妨げることに
よって能動輸送機構を変えることができる。このように
形態学的および生科学的変化と膜機能の障害は、低代謝
速度と非常に大きな因果関係があると考えられる。従っ
て、イオンおよびアミノ酸組成、炭酸水素塩平衡、利用
可能なエネルギ源、溶解酸素レベル、浸透圧モル濃度お
よびｐＨ等の生理学的パラメータのしっかりした評価を
各保存媒体について行う必要がある。角膜の４℃保存法
に関するパラメータは、保存中に受ける細胞劣化の回復
力について定義される。
用により角膜の代謝速度を遅延化するものの、この遅延
化を実現するために、保存用媒体は角膜の基本的要求を
満たすものでなければならない。従って、角膜保存媒体
は、均衡のとれた塩、アミノ酸、エネルギ源、抗酸化
剤、緩衝剤、膜安定剤、グリコサミノグリカン、脱腫張
剤および抗生物質の複雑な混合物となる。温度を低下さ
せることは膜脂質、蛋白質および水の構造を変化させ
る。なお、それぞれのものは、能動拡散、担体−気体相
互作用およびカップリング関係の容易性を妨げることに
よって能動輸送機構を変えることができる。このように
形態学的および生科学的変化と膜機能の障害は、低代謝
速度と非常に大きな因果関係があると考えられる。従っ
て、イオンおよびアミノ酸組成、炭酸水素塩平衡、利用
可能なエネルギ源、溶解酸素レベル、浸透圧モル濃度お
よびｐＨ等の生理学的パラメータのしっかりした評価を
各保存媒体について行う必要がある。角膜の４℃保存法
に関するパラメータは、保存中に受ける細胞劣化の回復
力について定義される。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】ところで、ヒト角膜内
皮の再生力には限度があり、有糸分裂像はｉｎ ｖｉｖ
ｏでは滅多に観察されない。ｉｎ ｖｉｖｏでのヒト角
膜内皮は、通常、細胞移動によって損傷部位へ移動して
外傷に対応する。しかしながら、ｉｎ ｖｉｖｏにおけ
る内皮細胞有糸分裂は、ウナギ、ネコおよび霊長類で示
されている。細胞培養では、有糸分裂はヒト角膜内皮で
観察されている。Ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける角膜の寒冷
損傷および機械損傷後のオートラジオブラフィーチミジ
ン摂取に関する研究は単相内皮での有糸分裂像の存在を
証明している。外科手術による外傷および疾患は内皮細
胞の損失を促進し、さらに角膜を傷つける。このように
角膜内皮の長期保存および強化は眼組織のアイバンクで
の保存のために非常に重要な点である。
皮の再生力には限度があり、有糸分裂像はｉｎ ｖｉｖ
ｏでは滅多に観察されない。ｉｎ ｖｉｖｏでのヒト角
膜内皮は、通常、細胞移動によって損傷部位へ移動して
外傷に対応する。しかしながら、ｉｎ ｖｉｖｏにおけ
る内皮細胞有糸分裂は、ウナギ、ネコおよび霊長類で示
されている。細胞培養では、有糸分裂はヒト角膜内皮で
観察されている。Ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける角膜の寒冷
損傷および機械損傷後のオートラジオブラフィーチミジ
ン摂取に関する研究は単相内皮での有糸分裂像の存在を
証明している。外科手術による外傷および疾患は内皮細
胞の損失を促進し、さらに角膜を傷つける。このように
角膜内皮の長期保存および強化は眼組織のアイバンクで
の保存のために非常に重要な点である。
【０００７】角膜組織の保存および取り扱いに係る組織
概論は、Corneal Surgery 、１−４章、１−１２８頁
［医学博士 フェデリック Ｓ．ブライトビル(Federic
k Ｓ.Brightbill, Ｍ. Ｄ. 編集）、Ｃ. Ｖ. モスビー
社（Ｃ. Ｖ. Mosby Company ）、ミズーリ州セントルイ
ス市、１９８６年］に記載されている。種々の保存媒体
および方法が提案され、そして最近の研究は、ドナーか
ら組織を摘出して移植するまでの間ドナー組織の品質を
維持し且つ劣化を阻止することにより角膜組織の保存期
間を延長する方法が用いられている。
概論は、Corneal Surgery 、１−４章、１−１２８頁
［医学博士 フェデリック Ｓ．ブライトビル(Federic
k Ｓ.Brightbill, Ｍ. Ｄ. 編集）、Ｃ. Ｖ. モスビー
社（Ｃ. Ｖ. Mosby Company ）、ミズーリ州セントルイ
ス市、１９８６年］に記載されている。種々の保存媒体
および方法が提案され、そして最近の研究は、ドナーか
ら組織を摘出して移植するまでの間ドナー組織の品質を
維持し且つ劣化を阻止することにより角膜組織の保存期
間を延長する方法が用いられている。
【０００８】従って、本発明は、移植前の角膜の保存中
に、視覚組織、特に角膜組織の劣化を防ぐ物質または方
法を提供することを目的とする。
に、視覚組織、特に角膜組織の劣化を防ぐ物質または方
法を提供することを目的とする。
【０００９】また、本発明は、低温保存中、正常な生理
代謝と角膜の脱腫張を維持することによって角膜組織の
生存力を強化することを目的とする。
代謝と角膜の脱腫張を維持することによって角膜組織の
生存力を強化することを目的とする。
【００１０】さらに、本発明は、眼組織、特に角膜組織
が新鮮な組織の特徴を維持できる期間を延長することを
目的とする。
が新鮮な組織の特徴を維持できる期間を延長することを
目的とする。
【００１１】
【課題を解決するための手段】前記の目的を達成するた
めに、本発明は、 １．水性栄養素および電解液 ２．グリコサミノグリカン ３．脱腫張剤 ４．緩衝剤 ５．エネルギ源 ６．抗酸化剤 ７．成長因子 からなり、少なくとも一種類以上の成長因子を含有する
ことを特徴とする。
めに、本発明は、 １．水性栄養素および電解液 ２．グリコサミノグリカン ３．脱腫張剤 ４．緩衝剤 ５．エネルギ源 ６．抗酸化剤 ７．成長因子 からなり、少なくとも一種類以上の成長因子を含有する
ことを特徴とする。
【００１２】また、本発明は、
１．水性栄養素および電解液
２．グリコサミノグリカン
３．脱腫張剤
４．緩衝剤
５．エネルギ源
６．抗酸化剤
７．抗生物質および／または抗真菌剤
８．成長因子
からなり、生理的ｐＨが６．８から７．８で、２℃から
１５℃の低温で保存される角膜組織を含む眼組織の保存
を維持し強化する成分を有し、且つ少なくとも一種類以
上の成長因子を含有することを特徴とする。
１５℃の低温で保存される角膜組織を含む眼組織の保存
を維持し強化する成分を有し、且つ少なくとも一種類以
上の成長因子を含有することを特徴とする。
【００１３】また、本発明は、
Ａ．１．イーグル最少必須培地（ＭＥＭ）
２．ＴＣ１９９培地
３．イーグル最少必須培地（ＭＥＭ）とＴＣ１９９培地
の混合培地 からなる群から選ばれる水性栄養素および電解液と、 Ｂ．１．硫酸コンドロイチン ２．硫酸デルマタン ３．硫酸ヘパリン ４．硫酸ケラチン ５．ヒアルロン酸 からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌのグリコサミノグリカンと、 Ｃ．１．デキストラン ２．硫酸デキストラン ３．ポリビニルピロリドン ４．硫酸ポリビニル ５．ヒトロキシプロピルメチルセルロース ６．カルボキシプロピルメチルセルロース からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌの脱腫張剤と、 Ｄ．１．炭酸水素塩緩衝液 ２．ＨＥＰＥＳ緩衝液 からなる群から選ばれる０．１ｍＭから１００ｍＭの緩
衝剤と、 Ｅ．１．グルコース ２．ピルベート ３．フルクトース ４．デキストロース（Ｄ−グルコース） からなる群から選ばれる０．５ｍＭから１０ｍＭのエネ
ルギ源と、 Ｆ．１．アスコルビン酸 ２．２−メルカプトエタノール ３．グルタチオン ４．α−トコフェロール からなる群から選ばれる０．００１ｍＭから１０ｍＭの
抗酸化剤と、 Ｇ．１．ビタミンＡ ２．ビタミンＢ ３．レチン酸 ４．エタノールアミン ５．ホスホエタノールアミン ６．セレン ７．トランスフェリン からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから５００
ｍｇ／ｍｌの膜安定剤と、 Ｈ．１．ゲンタマイシン ２．ファジソン からなる群から選ばれる０．１μｇ／ｍｌから１ｍｇ／
ｍｌの抗生物質および／または抗菌剤と、 Ｉ．１．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ３．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ４．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ５．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ６．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ７．血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ） ８．インスリン からなる群から選ばれる０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの成長因子と、からなる生理的ｐＨ、低温（２
℃から１５℃）で、ヒト角膜組織を含む眼組織の保存を
維持および強化する成分を含有することを特徴とする。
の混合培地 からなる群から選ばれる水性栄養素および電解液と、 Ｂ．１．硫酸コンドロイチン ２．硫酸デルマタン ３．硫酸ヘパリン ４．硫酸ケラチン ５．ヒアルロン酸 からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌのグリコサミノグリカンと、 Ｃ．１．デキストラン ２．硫酸デキストラン ３．ポリビニルピロリドン ４．硫酸ポリビニル ５．ヒトロキシプロピルメチルセルロース ６．カルボキシプロピルメチルセルロース からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌの脱腫張剤と、 Ｄ．１．炭酸水素塩緩衝液 ２．ＨＥＰＥＳ緩衝液 からなる群から選ばれる０．１ｍＭから１００ｍＭの緩
衝剤と、 Ｅ．１．グルコース ２．ピルベート ３．フルクトース ４．デキストロース（Ｄ−グルコース） からなる群から選ばれる０．５ｍＭから１０ｍＭのエネ
ルギ源と、 Ｆ．１．アスコルビン酸 ２．２−メルカプトエタノール ３．グルタチオン ４．α−トコフェロール からなる群から選ばれる０．００１ｍＭから１０ｍＭの
抗酸化剤と、 Ｇ．１．ビタミンＡ ２．ビタミンＢ ３．レチン酸 ４．エタノールアミン ５．ホスホエタノールアミン ６．セレン ７．トランスフェリン からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから５００
ｍｇ／ｍｌの膜安定剤と、 Ｈ．１．ゲンタマイシン ２．ファジソン からなる群から選ばれる０．１μｇ／ｍｌから１ｍｇ／
ｍｌの抗生物質および／または抗菌剤と、 Ｉ．１．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ３．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ４．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ５．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ６．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ７．血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ） ８．インスリン からなる群から選ばれる０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの成長因子と、からなる生理的ｐＨ、低温（２
℃から１５℃）で、ヒト角膜組織を含む眼組織の保存を
維持および強化する成分を含有することを特徴とする。
【００１４】また、本発明は、角膜移植のために、眼組
織を少なくとも一種類以上の成長因子を含有する血清不
含有医療用溶液中で、約２℃から１５℃で保存し、移植
に際して３４℃まで昇温することを特徴とする。
織を少なくとも一種類以上の成長因子を含有する血清不
含有医療用溶液中で、約２℃から１５℃で保存し、移植
に際して３４℃まで昇温することを特徴とする。
【００１５】また、本発明は、角膜移植のために、眼組
織を少なくとも一種類以上の成長因子を含有する血清不
含有医療用溶液中で、約２℃から１５℃で保存し、移植
に際して３４℃まで昇温することを特徴とする。
織を少なくとも一種類以上の成長因子を含有する血清不
含有医療用溶液中で、約２℃から１５℃で保存し、移植
に際して３４℃まで昇温することを特徴とする。
【００１６】さらに、本発明は、ドナー角膜組織を切除
し、該組織を保存し、次いで該組織受容者である患者に
角膜を移植することかくなる浸透角膜移植法において、
該組織の保存を血清不含有医療用溶液中で、２℃から１
５℃で行うことを特徴とする。
し、該組織を保存し、次いで該組織受容者である患者に
角膜を移植することかくなる浸透角膜移植法において、
該組織の保存を血清不含有医療用溶液中で、２℃から１
５℃で行うことを特徴とする。
【００１７】
【構成の具体的説明】４℃での角膜保存の中間時点で
は、眼内の機能状態を維持し得る組織保存が提供される
べきである。ヒトおよび動物の眼組織、特に角膜は規定
の血清不含有の栄養素補給保存エネルギ中に低温でアイ
バンクにおける保存中に劣化することなく、しかも実際
に強化されることが実験で証明された。血清不含有医療
用溶液中で保存した場合の好ましくない特徴は回避さ
れ、しかも、低温保存中、正常な生理代謝および角膜脱
腫張を保持する角膜内皮細胞のポテンシャルは増加す
る。
は、眼内の機能状態を維持し得る組織保存が提供される
べきである。ヒトおよび動物の眼組織、特に角膜は規定
の血清不含有の栄養素補給保存エネルギ中に低温でアイ
バンクにおける保存中に劣化することなく、しかも実際
に強化されることが実験で証明された。血清不含有医療
用溶液中で保存した場合の好ましくない特徴は回避さ
れ、しかも、低温保存中、正常な生理代謝および角膜脱
腫張を保持する角膜内皮細胞のポテンシャルは増加す
る。
【００１８】本発明の構成物質並びに本発明に係る方法
に用いられている成長因子（ＧＦ）は、ポリペプタイ
ド、若しくは角膜の損傷を治癒し、復元し、または、正
常の代謝により喪失される内皮組織を排出する能力を高
める物質、または、それらの眼科細胞の疾患に適用する
ことにより有糸分裂の可能性を活性化する物質を含有す
る。成長因子は、ある範囲において、活性状態を選択
し、反応するタイプの細胞と反応を引き起こすことが可
能であると共に、組織に特殊な治療を施すことが可能で
ある。例えば、内皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細
胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子（ＰＤＧＦ）、
形質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−α）、形質転換成
長因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インスリン類似成長因子
Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ）、インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧ
Ｆ−ＩＩ）、およびインスリンは、全て分裂と成熟を活
性化する能力を有する担体群である。これらの活性化さ
れた蛋白質の各々は、等級の変化と、それらから誘導さ
れる他のタイプの細胞よりも活性を強化する。
に用いられている成長因子（ＧＦ）は、ポリペプタイ
ド、若しくは角膜の損傷を治癒し、復元し、または、正
常の代謝により喪失される内皮組織を排出する能力を高
める物質、または、それらの眼科細胞の疾患に適用する
ことにより有糸分裂の可能性を活性化する物質を含有す
る。成長因子は、ある範囲において、活性状態を選択
し、反応するタイプの細胞と反応を引き起こすことが可
能であると共に、組織に特殊な治療を施すことが可能で
ある。例えば、内皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細
胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子（ＰＤＧＦ）、
形質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−α）、形質転換成
長因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インスリン類似成長因子
Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ）、インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧ
Ｆ−ＩＩ）、およびインスリンは、全て分裂と成熟を活
性化する能力を有する担体群である。これらの活性化さ
れた蛋白質の各々は、等級の変化と、それらから誘導さ
れる他のタイプの細胞よりも活性を強化する。
【００１９】４℃において、ヒトの角膜の内皮細胞は、
低温環境下の角膜貯蔵場所での代謝活性の低下に伴う有
糸分裂は行われない。
低温環境下の角膜貯蔵場所での代謝活性の低下に伴う有
糸分裂は行われない。
【００２０】本発明によれば、内皮細胞成長因子（ＥＧ
Ｆ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子
（ＰＤＧＦ）、形質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−
α）、形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インス
リンおよびインスリン類似物質のような少なくとも一つ
以上の成長因子を含有する保存溶液では、２℃から１５
℃の低温領域のアイバンクで用いられた時に、優れた角
膜組織の保存がなされることが見出された。そのよう
な、低温下では、内皮細胞の有糸分裂は行われない。成
長補助因子を含有する保存溶液中では、角膜は、４℃に
保持され、そして、体温の３４℃から３７℃に温められ
ながら、ＤＮＡ合成（有糸分裂が示す）が活性され、そ
の結果、眼組織が強化される。さらに、スポンジのよう
な挙動を示す角膜は、角膜の細胞間質へ成長因子を含有
する溶液を徐々に吸収する。移植後、角膜から保存溶
液、細胞間質に吸収されていた成長因子、および、患者
の眼の前眼房へと流入した周辺組織が排除される。成長
因子は、ヒトの眼細胞を、低温の貯蔵場所において有糸
分裂を活性化することによって、強化するために必要十
分な溶液が供給される。たとえ、成長因子を含有する規
定医療溶液であっても、ヒトの眼細胞には十分な効果が
得られた。
Ｆ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子
（ＰＤＧＦ）、形質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−
α）、形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インス
リンおよびインスリン類似物質のような少なくとも一つ
以上の成長因子を含有する保存溶液では、２℃から１５
℃の低温領域のアイバンクで用いられた時に、優れた角
膜組織の保存がなされることが見出された。そのよう
な、低温下では、内皮細胞の有糸分裂は行われない。成
長補助因子を含有する保存溶液中では、角膜は、４℃に
保持され、そして、体温の３４℃から３７℃に温められ
ながら、ＤＮＡ合成（有糸分裂が示す）が活性され、そ
の結果、眼組織が強化される。さらに、スポンジのよう
な挙動を示す角膜は、角膜の細胞間質へ成長因子を含有
する溶液を徐々に吸収する。移植後、角膜から保存溶
液、細胞間質に吸収されていた成長因子、および、患者
の眼の前眼房へと流入した周辺組織が排除される。成長
因子は、ヒトの眼細胞を、低温の貯蔵場所において有糸
分裂を活性化することによって、強化するために必要十
分な溶液が供給される。たとえ、成長因子を含有する規
定医療溶液であっても、ヒトの眼細胞には十分な効果が
得られた。
【００２１】多くの細胞は、末期状態で変異をきたし、
さらには、有糸分裂を停止する。
さらには、有糸分裂を停止する。
【００２２】しかしながら、適切な有糸分裂の時期に、
通常、ある特定な成長因子を供給すると、細胞の分裂周
期を回復する能力を保持する変異した多くの細胞が存在
する。
通常、ある特定な成長因子を供給すると、細胞の分裂周
期を回復する能力を保持する変異した多くの細胞が存在
する。
【００２３】外科手術と外傷による内皮細胞の損傷は、
移植の成否を左右し、また、良好な状態の内皮細胞は、
成長因子の活性化を可能とする。
移植の成否を左右し、また、良好な状態の内皮細胞は、
成長因子の活性化を可能とする。
【００２４】成長因子は、活性化を開始するために時間
を必要とする。たとえそれらが一本鎖ＤＮＡの遺伝子の
転写に変わったとしても、そのようなわずかな活性化
は、通常のＤＮＡ合成においては惹起されず、好適であ
る。成長因子は、活性状態に到達するまで、数時間を要
する。前記の時間は、すなわち周期の延長は活性化経路
の高機能化を意味する。活性状態の延長の必要性は、多
数の成長因子間の２つ以上の器官に共に作用する相互関
連作用の成分によりなされる。成長因子が細胞表面のレ
セプターと接合する時、それらの順序の周期を決定する
因子は、ＤＮＡ合成に入る細胞を徐々に確定する。従っ
て、期間経過後、角膜からゆっくりと放出される成長因
子は、これらの内皮細胞に十分な細胞分裂を惹起するた
めに必要な活性状態を絶え間なく供給する。
を必要とする。たとえそれらが一本鎖ＤＮＡの遺伝子の
転写に変わったとしても、そのようなわずかな活性化
は、通常のＤＮＡ合成においては惹起されず、好適であ
る。成長因子は、活性状態に到達するまで、数時間を要
する。前記の時間は、すなわち周期の延長は活性化経路
の高機能化を意味する。活性状態の延長の必要性は、多
数の成長因子間の２つ以上の器官に共に作用する相互関
連作用の成分によりなされる。成長因子が細胞表面のレ
セプターと接合する時、それらの順序の周期を決定する
因子は、ＤＮＡ合成に入る細胞を徐々に確定する。従っ
て、期間経過後、角膜からゆっくりと放出される成長因
子は、これらの内皮細胞に十分な細胞分裂を惹起するた
めに必要な活性状態を絶え間なく供給する。
【００２５】新規な栄養素含有溶液は、血清不含有であ
る。血清補給溶液は、組織培養中ヒト角膜内皮細胞の制
限された有糸分裂を活性化することができるが、ヒトの
移植用の組織に使用するための製品中に血清が存在する
と疾病を感染させる媒介となり得る。ヒト由来でない血
清では、免疫反応を誘発し得る各種の物質を含有し、全
ての血清は、エンドトキシン等の物質や成長因子を含有
し、それらは、実際に細胞の有史分裂を阻止する。これ
らの問題は、本発明の血清不含有医療用溶液によって回
避される。
る。血清補給溶液は、組織培養中ヒト角膜内皮細胞の制
限された有糸分裂を活性化することができるが、ヒトの
移植用の組織に使用するための製品中に血清が存在する
と疾病を感染させる媒介となり得る。ヒト由来でない血
清では、免疫反応を誘発し得る各種の物質を含有し、全
ての血清は、エンドトキシン等の物質や成長因子を含有
し、それらは、実際に細胞の有史分裂を阻止する。これ
らの問題は、本発明の血清不含有医療用溶液によって回
避される。
【００２６】成長因子である蛋白質を産生するためのＤ
ＮＡ組み換え方法は、組織を強化し、貯蔵する比較評価
のための角膜保護溶液の成長因子補助物質を化学的に特
定することができる。
ＮＡ組み換え方法は、組織を強化し、貯蔵する比較評価
のための角膜保護溶液の成長因子補助物質を化学的に特
定することができる。
【００２７】成長因子が選択される間に、先天的な生物
学的情報によって決定される成長因子には、本発明が役
立てられる。
学的情報によって決定される成長因子には、本発明が役
立てられる。
【００２８】内皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞
成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子（ＰＤＧＦ）、形
質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−α）、形質転換成長
因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インスリンおよびインスリ
ン類似物質は、特性値と、生物学的活性によって顕著に
特徴づけられる蛋白質として知られている。これらの成
長因子のペプタイドを以下に記述する。その例として、
キリシスの最近出版された報文、１９８５年２月発行の
「Biotecnology」誌の１３５頁から１４０頁の記載並び
に「Hormonal ProteinPeptides 」の記載、成長因子学
会誌（１９８４）の１２巻のチョウハン リーによる記
載等がある。
成長因子（ＦＧＦ）、血小板成長因子（ＰＤＧＦ）、形
質転換成長因子アルフア（ＴＧＦ−α）、形質転換成長
因子ベータ（ＴＧＦ−β）、インスリンおよびインスリ
ン類似物質は、特性値と、生物学的活性によって顕著に
特徴づけられる蛋白質として知られている。これらの成
長因子のペプタイドを以下に記述する。その例として、
キリシスの最近出版された報文、１９８５年２月発行の
「Biotecnology」誌の１３５頁から１４０頁の記載並び
に「Hormonal ProteinPeptides 」の記載、成長因子学
会誌（１９８４）の１２巻のチョウハン リーによる記
載等がある。
【００２９】内皮細胞成長因子は、分子量が小さく（６
０４０ｍｗ）、バイオケミストリ誌にサベージとコーエ
ン Ｊ．が記載した方法によれば、唾液線から単離され
た蛋白質である。欧州特許庁公開１１７，９１５号に、
大腸菌の合成遺伝子を用いた形質転換によるヒトの内皮
細胞の遺伝子組み換えの効果が開示されている。
０４０ｍｗ）、バイオケミストリ誌にサベージとコーエ
ン Ｊ．が記載した方法によれば、唾液線から単離され
た蛋白質である。欧州特許庁公開１１７，９１５号に、
大腸菌の合成遺伝子を用いた形質転換によるヒトの内皮
細胞の遺伝子組み換えの効果が開示されている。
【００３０】線維芽細胞成長因子は、ナチュラルソース
（naturalsources ）（１９８６年発行の「Anal Bioche
m」誌１５４：１−４のＲ．ロブ、Ｊ．Ｗ．ハーパー、
Ｊ．Ｗ．ファット記載のヘパリン添加成長因子の単離に
よる）より単離、精製される。
（naturalsources ）（１９８６年発行の「Anal Bioche
m」誌１５４：１−４のＲ．ロブ、Ｊ．Ｗ．ハーパー、
Ｊ．Ｗ．ファット記載のヘパリン添加成長因子の単離に
よる）より単離、精製される。
【００３１】線維芽細胞成長因子の遺伝子組み換えによ
る効果は、欧州特許出願２４８，８１９号に開示されて
いる。
る効果は、欧州特許出願２４８，８１９号に開示されて
いる。
【００３２】欧州特許庁出願２００, ３４１号には、媒
介生物を有する真菌生物の細胞の形質転換による形質転
換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β）の効果が記載されてい
る。
介生物を有する真菌生物の細胞の形質転換による形質転
換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β）の効果が記載されてい
る。
【００３３】形質転換成長因子を得る方法は、１９７８
年発行の「ProNetl Sci ＵＳＡ」誌７５：４００１に
Ｊ．Ｅ．デラルコ、Ｇ．Ｅ．トオダロヲによって記載さ
れたカルコマウイルスを形質転換したねずみから抽出し
た成長因子に掲載されている。
年発行の「ProNetl Sci ＵＳＡ」誌７５：４００１に
Ｊ．Ｅ．デラルコ、Ｇ．Ｅ．トオダロヲによって記載さ
れたカルコマウイルスを形質転換したねずみから抽出し
た成長因子に掲載されている。
【００３４】欧州特許２１９, ８１４号には、インスリ
ン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ）の遺伝子組み換えによ
る効果が記載されている。
ン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ）の遺伝子組み換えによ
る効果が記載されている。
【００３５】角膜保存溶液は、よく知られている。本発
明は、一般的には、水性栄養素および電解溶液、グリコ
サミノグリカン、脱腫張剤、エネルギ源、緩衝剤、抗酸
化剤、膜安定成分、抗生物質、ＡＴＰ前駆物質および細
胞栄養補助剤を含む。栄養素および電解溶液は、組織培
養の該分野で定義される。このような溶液は、細胞維持
および細胞成長に必要な最少濃度で必須栄養素と電解質
を含む。溶液の実際の組成は、非常に多様である。一般
的には、無機塩類（カルシウム、マグネシウム、鉄、炭
酸、硝酸、燐酸のナトリウム塩、カリウム塩、塩化ナト
リウム）、必須アミノ酸および非必須アミノ酸、ビタミ
ンおよびその他の必須栄養素を含有する。
明は、一般的には、水性栄養素および電解溶液、グリコ
サミノグリカン、脱腫張剤、エネルギ源、緩衝剤、抗酸
化剤、膜安定成分、抗生物質、ＡＴＰ前駆物質および細
胞栄養補助剤を含む。栄養素および電解溶液は、組織培
養の該分野で定義される。このような溶液は、細胞維持
および細胞成長に必要な最少濃度で必須栄養素と電解質
を含む。溶液の実際の組成は、非常に多様である。一般
的には、無機塩類（カルシウム、マグネシウム、鉄、炭
酸、硝酸、燐酸のナトリウム塩、カリウム塩、塩化ナト
リウム）、必須アミノ酸および非必須アミノ酸、ビタミ
ンおよびその他の必須栄養素を含有する。
【００３６】化学的に規定された基本的な栄養媒体は、
商業的に入手可能なものである。例えば、ギブコ ラボ
ラトリ（Gibco Laboratry ）〔郵便番号１４０７３ ニ
ューヨーク州 グランドアイランド市 スタンレーロー
ド３１７５〕およびマイクロバイオロジカルアソシエー
ト（メリーランド州、ウォーカーヒル市 ブリッグフォ
ールドロード私書箱１２７〕からイーグル必須培地（Ｍ
ＥＭ）およびＴＣ１９９の名称で市販されている。角膜
保存溶液は、これらの栄養媒体の応用である。本発明
は、ＭＥＭおよびＴＣ１９９にＡＴＰ前駆物質、ビタミ
ン、アミノ酸および成長促進補助剤を添加した成分から
なる。
商業的に入手可能なものである。例えば、ギブコ ラボ
ラトリ（Gibco Laboratry ）〔郵便番号１４０７３ ニ
ューヨーク州 グランドアイランド市 スタンレーロー
ド３１７５〕およびマイクロバイオロジカルアソシエー
ト（メリーランド州、ウォーカーヒル市 ブリッグフォ
ールドロード私書箱１２７〕からイーグル必須培地（Ｍ
ＥＭ）およびＴＣ１９９の名称で市販されている。角膜
保存溶液は、これらの栄養媒体の応用である。本発明
は、ＭＥＭおよびＴＣ１９９にＡＴＰ前駆物質、ビタミ
ン、アミノ酸および成長促進補助剤を添加した成分から
なる。
【００３７】本発明に係る血清不含有医療用溶液は、市
販の角膜保存培地ＣＳＭTH〔医学博士Ｒ．Ｌ．リンダス
トローム、理学士デブラ Ｌ．スケルニックの開発、シ
ロンアルサルマイクス社（カリフォルニア州 アービン
市から市販〕およびＴＣ１９９〔ギブコ ラボラトリ
（ニューヨーク州 グランドアイランド市）から市販〕
と比較した。
販の角膜保存培地ＣＳＭTH〔医学博士Ｒ．Ｌ．リンダス
トローム、理学士デブラ Ｌ．スケルニックの開発、シ
ロンアルサルマイクス社（カリフォルニア州 アービン
市から市販〕およびＴＣ１９９〔ギブコ ラボラトリ
（ニューヨーク州 グランドアイランド市）から市販〕
と比較した。
【００３８】本発明の血清不含有医療用溶液は、ＭＥＭ
およびＴＣ１９９にＡＴＰ前駆物質、ビタミン、アミノ
酸および成長促進補助剤を添加した成分からなる。
およびＴＣ１９９にＡＴＰ前駆物質、ビタミン、アミノ
酸および成長促進補助剤を添加した成分からなる。
【００３９】本発明の組成物および方法に使用する好適
な血清不含有医療用溶液は、水性電解液（例えば、イー
グル最小必須培地および／またはＴＣ１９９）、０．０
１ｍｇ／ｍｌから１００ｍｇ／ｍｌのグリコサミノグリ
カン（例えば、標準または精製高または低分子量硫酸コ
ンドロイチン（Ａ、ＢまたはＣ異性体）、硫酸デルマタ
ン、硫酸デルマチン、硫酸ヘバリン、硫酸ヘバラン、硫
酸ケラチン、硫酸ケラタンおよび／またはヒアルロン
酸）、０．０１ｍｇ／ｍｌから１００ｍｇ／ｍｌの脱腫
脹剤（例えば、デキストラン、硫酸デキストラン、ポリ
ビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、酢酸ポリ
ビニル、ヒドロキシメチルプロピルメチルセルロース、
カルボキシプロピルメチルセルロース等の低または高分
子量多糖類）、０．０５ｍＭから１０ｍＭのエネルギ源
および炭素源（例えば、グルコース、ピルベート、シュ
ークロース、フルクトース、デキストロース）、０．１
ｍＭから１００ｍＭの緩衝剤（例えば、炭酸水素緩衝液
およびヒドロキシエチルピペリゼンエタンスルホン酸緩
衝液（ＨＥＰＥＳ））、生理的ｐＨ（好ましくは、６．
８〜７．６）を維持するために０．００１ｍＭから１０
ｍＭの抗酸化剤（例えば、アスコルビン酸、２−メルカ
プトエタノール、グルタチオン、α−トコフェロー
ル）、０．０１ｍｇ／ｍｌから５００ｍｇ／ｍｌの膜安
定剤（例えば、ビタミンＡおよびＢ、レチン酸および／
または補因子、エタノールアミンおよびホスホエタノー
ルアミン、セレンおよびトランスフェリン）、０．００
１ｍＭから１０ｍＭの構成物質および／または抗真菌剤
（例えば、アンホテリシン−Ｂ、硫酸ゲンタマイシン、
硫酸カナマイシン、硫酸ネオマイシン、ナイスタチン、
ペニシリン、トブラマイシン、硫酸ストレプトマイシ
ン）、０．００１ｍＭから１０ｍＭのＡＴＰ前駆物質、
および０．００１ｍＭから１０ｍＭの細胞栄養補助剤
（例えば、コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、
ｄ−ビオチン、カルシフェロール、ナイアシン、ｐ−ア
ミノ安息香酸、塩酸ピリドキシン、ビタミンＢ12、Ｆe
(ＮＯ3)3 、非必須アミノ酸）を含む。
な血清不含有医療用溶液は、水性電解液（例えば、イー
グル最小必須培地および／またはＴＣ１９９）、０．０
１ｍｇ／ｍｌから１００ｍｇ／ｍｌのグリコサミノグリ
カン（例えば、標準または精製高または低分子量硫酸コ
ンドロイチン（Ａ、ＢまたはＣ異性体）、硫酸デルマタ
ン、硫酸デルマチン、硫酸ヘバリン、硫酸ヘバラン、硫
酸ケラチン、硫酸ケラタンおよび／またはヒアルロン
酸）、０．０１ｍｇ／ｍｌから１００ｍｇ／ｍｌの脱腫
脹剤（例えば、デキストラン、硫酸デキストラン、ポリ
ビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、酢酸ポリ
ビニル、ヒドロキシメチルプロピルメチルセルロース、
カルボキシプロピルメチルセルロース等の低または高分
子量多糖類）、０．０５ｍＭから１０ｍＭのエネルギ源
および炭素源（例えば、グルコース、ピルベート、シュ
ークロース、フルクトース、デキストロース）、０．１
ｍＭから１００ｍＭの緩衝剤（例えば、炭酸水素緩衝液
およびヒドロキシエチルピペリゼンエタンスルホン酸緩
衝液（ＨＥＰＥＳ））、生理的ｐＨ（好ましくは、６．
８〜７．６）を維持するために０．００１ｍＭから１０
ｍＭの抗酸化剤（例えば、アスコルビン酸、２−メルカ
プトエタノール、グルタチオン、α−トコフェロー
ル）、０．０１ｍｇ／ｍｌから５００ｍｇ／ｍｌの膜安
定剤（例えば、ビタミンＡおよびＢ、レチン酸および／
または補因子、エタノールアミンおよびホスホエタノー
ルアミン、セレンおよびトランスフェリン）、０．００
１ｍＭから１０ｍＭの構成物質および／または抗真菌剤
（例えば、アンホテリシン−Ｂ、硫酸ゲンタマイシン、
硫酸カナマイシン、硫酸ネオマイシン、ナイスタチン、
ペニシリン、トブラマイシン、硫酸ストレプトマイシ
ン）、０．００１ｍＭから１０ｍＭのＡＴＰ前駆物質、
および０．００１ｍＭから１０ｍＭの細胞栄養補助剤
（例えば、コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、
ｄ−ビオチン、カルシフェロール、ナイアシン、ｐ−ア
ミノ安息香酸、塩酸ピリドキシン、ビタミンＢ12、Ｆe
(ＮＯ3)3 、非必須アミノ酸）を含む。
【００４０】本発明の血清不含有医療用溶液は、アイバ
ンクで低温保存した後に細胞代謝、細胞生存、損傷治癒
および角膜脱腫脹を強化するために充分な量のグリコサ
ミノグリカン、脱腫脹剤、エネルギ源、緩衝剤、抗酸化
剤、膜安定剤、抗生物質、ＡＴＰ前駆物質および細胞栄
養補助剤を補った水性栄養電解液からなる。摘出角膜を
無菌状態で角膜保存溶液の容器に移し、次いで容器を密
閉する。保存および輸送のためには、角膜を低温（例え
ば、２℃〜１５℃、最適には４℃）に維持し、細菌繁殖
の危険を最少化し、角膜組織の代謝損傷を減ずる。この
ような低温において、内皮細胞は１４日まで維持できる
ことが発見された。移植時に、正常角膜の脱腫脹は手術
中および手術後も維持される。内皮細胞機能および代謝
が維持され、角膜の永続的水和、そして手術後も一定の
厚さと透明度が確保される。移植用の生存角膜の提供に
加え、損傷治癒を強化する。
ンクで低温保存した後に細胞代謝、細胞生存、損傷治癒
および角膜脱腫脹を強化するために充分な量のグリコサ
ミノグリカン、脱腫脹剤、エネルギ源、緩衝剤、抗酸化
剤、膜安定剤、抗生物質、ＡＴＰ前駆物質および細胞栄
養補助剤を補った水性栄養電解液からなる。摘出角膜を
無菌状態で角膜保存溶液の容器に移し、次いで容器を密
閉する。保存および輸送のためには、角膜を低温（例え
ば、２℃〜１５℃、最適には４℃）に維持し、細菌繁殖
の危険を最少化し、角膜組織の代謝損傷を減ずる。この
ような低温において、内皮細胞は１４日まで維持できる
ことが発見された。移植時に、正常角膜の脱腫脹は手術
中および手術後も維持される。内皮細胞機能および代謝
が維持され、角膜の永続的水和、そして手術後も一定の
厚さと透明度が確保される。移植用の生存角膜の提供に
加え、損傷治癒を強化する。
【００４１】本発明はその範囲を逸脱することなく種々
の変更が可能である。例えば、本血清不含有医療用溶液
は様々な医療に応用することができ、眼科のみに厳密に
限定されるものではない。
の変更が可能である。例えば、本血清不含有医療用溶液
は様々な医療に応用することができ、眼科のみに厳密に
限定されるものではない。
【００４２】
【実施例１】本発明を以下の実施例によりさらに詳細に
説明するが、これに限定されるものではない。血清不含有医療用溶液 ４℃での角膜保存中間期間は、内皮の機能と移植後の角
膜脱腫脹を維持する組織を保存する。ＣＳＭTMとＫ−Ｓ
ｏｌTMは４℃で保存するための標準媒体となっている。
カウフマン（Kaufman)Ｈ．Ｅ．、バーネル（Varnell)
Ｅ. Ｄ．、カウフマン（Kaufman)Ｓ．等で述べられてい
る通り、Ｋ−ＳｏｌTM角膜を保存する。Am. Ｊ．Ophtha
lmol １９８５、１００、２９９−３０４、ボルネ（Bo
urne) Ｗ．Ｍ．２．５％硫酸コンドロイチン中に４℃で
１〜１３日保存した移植ヒト角膜の内皮細胞の生存、A
m．Ｊ．Ophthalmol １９８６、１０２、３８２−６、
リンドストローム（ Lindstrom) Ｒ．Ｌ．、スケルニッ
ク(Skelnik)Ｄ．Ｌ．、マインドラップ(Mindrup) Ｅ．
Ａ．等、硫酸コンドロイチン含有媒体での角膜の４℃保
存、Invest Ophthalmol Vis Sci （Suppl) １９８７、
２８（３）、１６７、ブーグラ（Bhugra) Ｍ．Ｋ．、シ
ュガー（Suger)Ａ. 、メイヤー（Meyer)Ｒ．等、ＭＫTM
およびＫ−ＳｏｌTM保存の一組の実験結果、Invest Oph
thalmolVis Sci（Suppl)１９８８、２９、１１２、およ
びラス（Lass) Ｊ．Ｈ．、ラインハート（Reinhart)
Ｗ．Ｊ．、ブルナー（Bruner) Ｗ．Ｅ．等、ヒト角膜移
植におけるＫ−ＳｏｌTMと硫酸コンドロイチン角膜保存
媒体中での角膜保存の比較、Ophthalmology １９８９、
９６、６８８−９７に記載されている通りである。
説明するが、これに限定されるものではない。血清不含有医療用溶液 ４℃での角膜保存中間期間は、内皮の機能と移植後の角
膜脱腫脹を維持する組織を保存する。ＣＳＭTMとＫ−Ｓ
ｏｌTMは４℃で保存するための標準媒体となっている。
カウフマン（Kaufman)Ｈ．Ｅ．、バーネル（Varnell)
Ｅ. Ｄ．、カウフマン（Kaufman)Ｓ．等で述べられてい
る通り、Ｋ−ＳｏｌTM角膜を保存する。Am. Ｊ．Ophtha
lmol １９８５、１００、２９９−３０４、ボルネ（Bo
urne) Ｗ．Ｍ．２．５％硫酸コンドロイチン中に４℃で
１〜１３日保存した移植ヒト角膜の内皮細胞の生存、A
m．Ｊ．Ophthalmol １９８６、１０２、３８２−６、
リンドストローム（ Lindstrom) Ｒ．Ｌ．、スケルニッ
ク(Skelnik)Ｄ．Ｌ．、マインドラップ(Mindrup) Ｅ．
Ａ．等、硫酸コンドロイチン含有媒体での角膜の４℃保
存、Invest Ophthalmol Vis Sci （Suppl) １９８７、
２８（３）、１６７、ブーグラ（Bhugra) Ｍ．Ｋ．、シ
ュガー（Suger)Ａ. 、メイヤー（Meyer)Ｒ．等、ＭＫTM
およびＫ−ＳｏｌTM保存の一組の実験結果、Invest Oph
thalmolVis Sci（Suppl)１９８８、２９、１１２、およ
びラス（Lass) Ｊ．Ｈ．、ラインハート（Reinhart)
Ｗ．Ｊ．、ブルナー（Bruner) Ｗ．Ｅ．等、ヒト角膜移
植におけるＫ−ＳｏｌTMと硫酸コンドロイチン角膜保存
媒体中での角膜保存の比較、Ophthalmology １９８９、
９６、６８８−９７に記載されている通りである。
【００４３】角膜の厚さの増加は、ＣＳＭTM保存角膜で
もあり、手術時に明らかに再腫張が起こる。しかし、手
術して１ヶ月後に正常な角膜厚になる。角膜腫張の増加
は、４℃で長期間保存中に硫酸コンドロイチンの低分子
量部分が基質に流入するためであろう。角膜腫張を少な
くするために、血清不含有硫酸コンドロイチン含有媒体
へのデキストランの添加が角膜水和を最少化するかどう
かをみるための研究がなされた。 ＭＫTM媒体中の有効
な浸透剤であるデキストランは角膜を薄く保ち、角膜内
皮のバリア機能を有効に維持する。デキストラン含有媒
体中に保存された角膜は、デキストランのコロイド浸透
圧によって腫張が抑制される。デキストランは角膜内皮
に浸透し、基質に侵入する。このデキストランの侵入お
よび排出は、保存期間および内皮の状態に応じたデキス
トランの浸透の程度により４℃で速やかに起こる。この
ようにデキストランは、硫酸コンドロイチン含有媒体に
よる低温保存に伴う角膜腫張を減じる魅力的な試薬であ
る。
もあり、手術時に明らかに再腫張が起こる。しかし、手
術して１ヶ月後に正常な角膜厚になる。角膜腫張の増加
は、４℃で長期間保存中に硫酸コンドロイチンの低分子
量部分が基質に流入するためであろう。角膜腫張を少な
くするために、血清不含有硫酸コンドロイチン含有媒体
へのデキストランの添加が角膜水和を最少化するかどう
かをみるための研究がなされた。 ＭＫTM媒体中の有効
な浸透剤であるデキストランは角膜を薄く保ち、角膜内
皮のバリア機能を有効に維持する。デキストラン含有媒
体中に保存された角膜は、デキストランのコロイド浸透
圧によって腫張が抑制される。デキストランは角膜内皮
に浸透し、基質に侵入する。このデキストランの侵入お
よび排出は、保存期間および内皮の状態に応じたデキス
トランの浸透の程度により４℃で速やかに起こる。この
ようにデキストランは、硫酸コンドロイチン含有媒体に
よる低温保存に伴う角膜腫張を減じる魅力的な試薬であ
る。
【００４４】イーグル最少必須培地（ＭＥＭ）からなる
血清不含有医療用溶液は、アールス塩(Earle・s salt)
、炭酸水素ナトリウム、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、０．
１ｍＭ非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウ
ム、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、０．５ｍＭ ２−メルカ
プトエタノール、１．０％デキストラン、２．５％硫酸
コンドロイチンおよび１００μｇ／ｍｌゲンタマイシン
が添加されている。
血清不含有医療用溶液は、アールス塩(Earle・s salt)
、炭酸水素ナトリウム、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、０．
１ｍＭ非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウ
ム、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、０．５ｍＭ ２−メルカ
プトエタノール、１．０％デキストラン、２．５％硫酸
コンドロイチンおよび１００μｇ／ｍｌゲンタマイシン
が添加されている。
【００４５】基本媒体にはさらに以下の成分が添加され
ている。
ている。
【００４６】Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ2 Ｏ、硫酸アデニン、
コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、アスコルビ
ン酸、リン酸α−トコフェロール、Ｄ−ビオチン、カル
シフェロール、ナイアシン、ｐ−アミノ安息香酸、塩酸
ピリドキシン、アデノシン、イノシンおよびビタミンＢ
12。これらの成分は基本培地を完全に規定するために添
加され、細胞成長と細胞機能を強化する（表１Ａ乃至表
１Ｃ参照）。
コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、アスコルビ
ン酸、リン酸α−トコフェロール、Ｄ−ビオチン、カル
シフェロール、ナイアシン、ｐ−アミノ安息香酸、塩酸
ピリドキシン、アデノシン、イノシンおよびビタミンＢ
12。これらの成分は基本培地を完全に規定するために添
加され、細胞成長と細胞機能を強化する（表１Ａ乃至表
１Ｃ参照）。
【００４７】この血清不含有医療用溶液の安全性および
有効性を評価するために、４℃で１２日間保存したヒト
角膜を用いて硫酸コンドロイチン濃度の容量応答曲線を
描いた。硫酸コンドロイチン濃度は、１．５％、１．７
５％、２．０％および２．５％であった。角膜厚の測定
は、４℃保存で０日、１日、７日および１２日行った。
有効性を評価するために、４℃で１２日間保存したヒト
角膜を用いて硫酸コンドロイチン濃度の容量応答曲線を
描いた。硫酸コンドロイチン濃度は、１．５％、１．７
５％、２．０％および２．５％であった。角膜厚の測定
は、４℃保存で０日、１日、７日および１２日行った。
【００４８】さらに、我々の研究室で開発した単離技術
が、自然の内皮の特徴を残しているヒト角膜内皮の第一
次、そして続く継代培養の確立を可能にした。Ｉｎ ｖ
ｉｔｒｏで条件をこれらのヒト角膜内皮細胞を増殖状態
に維持し、活発に有糸分裂を行わせる。［ 3Ｈ］−チミ
ジン取り込みによって測定するようにＤＮＡ合成の刺激
と阻害における種々の試験媒体の効果を評価するために
定量的バイオアッセイが開発された。次に、臨床試験を
行い、血清不含有医療用溶液（配合Ａ）中に保存し、次
いで患者に移植した角膜の厚さおよび生存内皮を評価し
た。材料および方法 ヒト角膜における硫酸コンドロイチン用量応答曲線 ヒトドナー眼球を生理食塩水（normal sallne ）中、
１．０％ヨウ化ポビドン中に３分間浸し、次に生理食塩
水中に１分間浸した。次に、１８−ゲージ針装着用シリ
ンジを用いて生理食塩水１２ｃｃで洗浄した。年齢また
は死因のために移植には不適当な１６対の提供者からの
角膜を死から平均１２時間後に認証アイバンクで摘出
し、１・５％、１．７５％、２．０％および２．５％硫
酸コンドロイチンを添加した医療用溶液２０ｍｌ中に放
置した。コントロール媒体は市販のＤｅｘｓｏｌTM（シ
ロン アフサルマイクス社、カリフォルニア州 アービ
ン）を用いた。角膜を媒体中に入れる前に、成分補充媒
体を室温に暖め、角膜厚を測定した。角膜厚の測定は、
マイクロメーターで調整したロイツ型顕微鏡を用いて行
った。マイクロメーターダイヤル指示器をステージ上に
ダイヤル指示器脚部直下ステージを貫通する調整ねじで
顕微鏡スタンドに取り付けた。角膜厚の測定は内皮にピ
ントを合わせ、調整ねじをダイヤルが“０”になるよう
に調整し、上皮が焦点にくるようにステージを上げ、ダ
イヤル指示器の目盛りを読み取ることにより行う。次い
で、角膜を４℃に冷却し、１２日間保存した。角膜を保
存媒体から取り出し、２ｍＭ Ｌ−グルタミンおよび１
００μｇ／ｍｌゲンタマインシを添加したＭＥＭ１５ｍ
ｌ中に入れた。次に、角膜を３４℃に２時間暖め、角膜
の中央部厚の測定を加温開始後３０分、６０分および１
２０分時に行った。角膜内皮は、最後の角膜厚測定を行
った後、０．１％トリパンブルーおよびアリザリンレッ
ドＳで染色して評価した。ヒト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込み １４種の媒質成分を以下のようにして試験した。
が、自然の内皮の特徴を残しているヒト角膜内皮の第一
次、そして続く継代培養の確立を可能にした。Ｉｎ ｖ
ｉｔｒｏで条件をこれらのヒト角膜内皮細胞を増殖状態
に維持し、活発に有糸分裂を行わせる。［ 3Ｈ］−チミ
ジン取り込みによって測定するようにＤＮＡ合成の刺激
と阻害における種々の試験媒体の効果を評価するために
定量的バイオアッセイが開発された。次に、臨床試験を
行い、血清不含有医療用溶液（配合Ａ）中に保存し、次
いで患者に移植した角膜の厚さおよび生存内皮を評価し
た。材料および方法 ヒト角膜における硫酸コンドロイチン用量応答曲線 ヒトドナー眼球を生理食塩水（normal sallne ）中、
１．０％ヨウ化ポビドン中に３分間浸し、次に生理食塩
水中に１分間浸した。次に、１８−ゲージ針装着用シリ
ンジを用いて生理食塩水１２ｃｃで洗浄した。年齢また
は死因のために移植には不適当な１６対の提供者からの
角膜を死から平均１２時間後に認証アイバンクで摘出
し、１・５％、１．７５％、２．０％および２．５％硫
酸コンドロイチンを添加した医療用溶液２０ｍｌ中に放
置した。コントロール媒体は市販のＤｅｘｓｏｌTM（シ
ロン アフサルマイクス社、カリフォルニア州 アービ
ン）を用いた。角膜を媒体中に入れる前に、成分補充媒
体を室温に暖め、角膜厚を測定した。角膜厚の測定は、
マイクロメーターで調整したロイツ型顕微鏡を用いて行
った。マイクロメーターダイヤル指示器をステージ上に
ダイヤル指示器脚部直下ステージを貫通する調整ねじで
顕微鏡スタンドに取り付けた。角膜厚の測定は内皮にピ
ントを合わせ、調整ねじをダイヤルが“０”になるよう
に調整し、上皮が焦点にくるようにステージを上げ、ダ
イヤル指示器の目盛りを読み取ることにより行う。次い
で、角膜を４℃に冷却し、１２日間保存した。角膜を保
存媒体から取り出し、２ｍＭ Ｌ−グルタミンおよび１
００μｇ／ｍｌゲンタマインシを添加したＭＥＭ１５ｍ
ｌ中に入れた。次に、角膜を３４℃に２時間暖め、角膜
の中央部厚の測定を加温開始後３０分、６０分および１
２０分時に行った。角膜内皮は、最後の角膜厚測定を行
った後、０．１％トリパンブルーおよびアリザリンレッ
ドＳで染色して評価した。ヒト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込み １４種の媒質成分を以下のようにして試験した。
【００４９】Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ2 Ｏ、硫酸アデニン、
コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、アスコルビ
ン酸、リン酸α−トコフェロール、Ｄ−ビオチン、カル
シフェロール、ナイアシン、ｐ−アミノ安息香酸、塩酸
ピリドキシン、アデノシン、イノシンおよびビタミンＢ
12。成分は別々に、あるいは一緒に、アールス塩、炭酸
水素ナトリウム、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、０．１ｍＭ
非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム、２ｍ
Ｍ Ｌ−グルタミン、０．５ｍＭ ２−メルカプトエタ
ノール、２．５％硫酸コンドロイチンおよび１００μｇ
／ｍｌゲンタマイシンを添加したイーグル最少必須培地
（ＭＥＭ）からなる基本媒体に添加した。１．７５％お
よび２．０％の硫酸コンドロイチンも試験した。コント
ロール媒体は１０％ウシ胎児血清を添加した市販のＤｅ
ｘｓｏｌTM（シロン アフサルマイクス社、カリフォル
ニア州 アービン）およびＣＳＭTMからなる。全ての試
験媒体サンプルは実験時に新たに調整され、室温に暖め
られた。定量的バイオアッセイ 定量的バイオアッセイは血清不含有または含有媒体中で
インキュベートされたヒト角膜内皮細胞のＤＮＡの［ 3
Ｈ］−チミジンの取り込みに基づく。
コレステロール、Ｌ−ヒドロキシプロリン、アスコルビ
ン酸、リン酸α−トコフェロール、Ｄ−ビオチン、カル
シフェロール、ナイアシン、ｐ−アミノ安息香酸、塩酸
ピリドキシン、アデノシン、イノシンおよびビタミンＢ
12。成分は別々に、あるいは一緒に、アールス塩、炭酸
水素ナトリウム、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、０．１ｍＭ
非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム、２ｍ
Ｍ Ｌ−グルタミン、０．５ｍＭ ２−メルカプトエタ
ノール、２．５％硫酸コンドロイチンおよび１００μｇ
／ｍｌゲンタマイシンを添加したイーグル最少必須培地
（ＭＥＭ）からなる基本媒体に添加した。１．７５％お
よび２．０％の硫酸コンドロイチンも試験した。コント
ロール媒体は１０％ウシ胎児血清を添加した市販のＤｅ
ｘｓｏｌTM（シロン アフサルマイクス社、カリフォル
ニア州 アービン）およびＣＳＭTMからなる。全ての試
験媒体サンプルは実験時に新たに調整され、室温に暖め
られた。定量的バイオアッセイ 定量的バイオアッセイは血清不含有または含有媒体中で
インキュベートされたヒト角膜内皮細胞のＤＮＡの［ 3
Ｈ］−チミジンの取り込みに基づく。
【００５０】コスター（Coctar）９６ウエル組織培養プ
レートの指定された媒体最終容量２００μｌ中に３×１
０3 接種した。４代継代したヒト角膜内皮細胞を９５％
空気、５％ＣＯ2 中、３５．５℃で加湿インキュベータ
中に保存した。１０％ウシ胎児血清を添加したＣＳＭTM
中で２４時間インキュベーション後、媒体を除去し、各
ウエルをアールス塩および２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ含有血
清不含有最少必須培地で一度洗浄した。次に細胞を洗浄
し、適当な試験溶液でインキュベートした。次にヒト角
膜内皮細胞を１microcuvie／ウエルの［ 3Ｈ］−チミジ
ンの存在下でさらに７２時間インキュベートした。摂取
を放射性媒体の吸引によって終結させ、細胞を血清不含
有最少必須培地で２回洗浄した。ヒト角膜内皮細胞を
０．５％トリプシンで剥離し、液体シンチレーション計
数用に調整した。［3Ｈ］−チミジンカウントは酸不溶
カウントを表す。一元変動分析（One-way analysis of
variance）とニューマン−ケウルス マルチプルレンジ
テスト（Newman-Keuls multiple range test）を用いて
統計的有意差（ｐ＜０．０５）を評価した。臨床試験 アイバンク法 ヒトドナー眼球を１．０％ヨウ化ホビドン生理食塩水に
３分間浸し、次に生理食塩水中に１分間浸した。次に、
１８ゲージ針装着シリンジを用いて生理食塩水１２ｃｃ
で洗浄した。適性な提供者からの角膜を平均死後８．６
時間にアイバンクで摘出し、血清不含有医療用溶液（配
合Ａ）中に入れた。角膜を溶液中に入れる前に該溶液を
室温に戻した。次いで角膜を４℃に冷却し、平均４．３
日間保存した（平均１〜７日）。被移植者の基準 以下の被移植者の診断結果を用いた。
レートの指定された媒体最終容量２００μｌ中に３×１
０3 接種した。４代継代したヒト角膜内皮細胞を９５％
空気、５％ＣＯ2 中、３５．５℃で加湿インキュベータ
中に保存した。１０％ウシ胎児血清を添加したＣＳＭTM
中で２４時間インキュベーション後、媒体を除去し、各
ウエルをアールス塩および２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ含有血
清不含有最少必須培地で一度洗浄した。次に細胞を洗浄
し、適当な試験溶液でインキュベートした。次にヒト角
膜内皮細胞を１microcuvie／ウエルの［ 3Ｈ］−チミジ
ンの存在下でさらに７２時間インキュベートした。摂取
を放射性媒体の吸引によって終結させ、細胞を血清不含
有最少必須培地で２回洗浄した。ヒト角膜内皮細胞を
０．５％トリプシンで剥離し、液体シンチレーション計
数用に調整した。［3Ｈ］−チミジンカウントは酸不溶
カウントを表す。一元変動分析（One-way analysis of
variance）とニューマン−ケウルス マルチプルレンジ
テスト（Newman-Keuls multiple range test）を用いて
統計的有意差（ｐ＜０．０５）を評価した。臨床試験 アイバンク法 ヒトドナー眼球を１．０％ヨウ化ホビドン生理食塩水に
３分間浸し、次に生理食塩水中に１分間浸した。次に、
１８ゲージ針装着シリンジを用いて生理食塩水１２ｃｃ
で洗浄した。適性な提供者からの角膜を平均死後８．６
時間にアイバンクで摘出し、血清不含有医療用溶液（配
合Ａ）中に入れた。角膜を溶液中に入れる前に該溶液を
室温に戻した。次いで角膜を４℃に冷却し、平均４．３
日間保存した（平均１〜７日）。被移植者の基準 以下の被移植者の診断結果を用いた。
【００５１】無水晶体水疱性角膜症、フックスジストロ
フィー、偽水晶体水疱性角膜症、角膜瘢痕、円錐角膜お
よび移植の失敗。手術前の試験は細孔強制視力、眼内
圧、細隙灯および検眼鏡試験からなる。The United Sta
tes of Health and Human Servicesのガイドラインに準
拠し、臨床試験の全関係者から同意を得た。この任意的
臨床試験は Institutional Review Board の同意とモニ
タを得て行われた。手術法 移植時に角膜を室温に戻した。提供者の角膜を角トレフ
ィンプレスを用いて内皮側から切断した。ヒアルロン酸
ナトリウム（Healon）またはヒアルロン酸ナトリウム−
硫酸コンドロイチン（Viscoat ）を全てのケースで用い
た。手術中および手術後の治療は全例で略同様である。
縫合術は１２インタラプテッド１０−０縫合とランニン
グ１１−０縫合［ナイロンまたはメルシレン（mersilen
e)］の組み合わせからなる。各施術の最後にゲンタマイ
シン、ベタメサゾンおよびアンセフ（Ancef)を結膜下に
注射した。手術後の処置 手術後全ての患者は最初の１ヶ月１日４回ネオマイシン
またはゲンタマインシ点滴を受けた。必要な場合には代
表的なステロイドを塗布した。手術後最初の２ヶ月間、
患者の合併症、拒絶反応、角膜の欠陥新生、感染症、傷
漏れ（wound leak）、創傷離開、上皮欠損の存続および
全体的な角膜状態を観察した。角膜の超音波膜厚測定
は、手術前、手術後１日、１週間、１ヶ月および２ヶ月
で行った。この研究を行った患者総数は１５人である。
角膜膜厚のグループ間差を分析し、対ｔ−テストを用い
て有意差があるかどうか評価した。結論 ヒト角膜におけるデキストラン用量応答曲線 角膜厚についての４℃で１２日間インキュベートしたヒ
ト角膜の硫酸コンドロイチン用量応答曲線を図１に示
す。１．３５％硫酸コンドロイチン含有ＤｅｘｓｏｌTM
でインキュベートした角膜は、１日、７日および１２日
で有効な薄さであった。これらの時点での角膜厚の測定
値は、０．４２５±０．０８２ｍｍ、０．５３０±０．
０４０ｍｍおよび０．５７２±０．０４３ｍｍであっ
た。１．５％−２．０％硫酸コンドロイチン含有媒体で
インキュベートした角膜は、同時点で角膜脱腫脹が増加
し、２．５％硫酸コンドロイチンで角膜は最も薄いこと
を示した。インキュベーション後１日、７日および１２
日後の角膜厚はそれぞれ０．４０５±０．０２１ｍｍ、
０．４８０±０．０４２ｍｍ、０．４８０±０．０２８
ｍｍであった。１２日間ＤｅｘｓｏｌTM中に保存した角
膜は３４℃に暖めた後腫脹は１９．６％増加することを
示した。硫酸コンドロイチン１．５％−１．７５％に保
存した角膜の加温後の腫脹は統計的には差のない増加で
あった。２．０％および２．５％硫酸コンドロイチン中
に保存した角膜は加温後の腫脹は１５．６％および１
３．５％増加を示した（図２）。
フィー、偽水晶体水疱性角膜症、角膜瘢痕、円錐角膜お
よび移植の失敗。手術前の試験は細孔強制視力、眼内
圧、細隙灯および検眼鏡試験からなる。The United Sta
tes of Health and Human Servicesのガイドラインに準
拠し、臨床試験の全関係者から同意を得た。この任意的
臨床試験は Institutional Review Board の同意とモニ
タを得て行われた。手術法 移植時に角膜を室温に戻した。提供者の角膜を角トレフ
ィンプレスを用いて内皮側から切断した。ヒアルロン酸
ナトリウム（Healon）またはヒアルロン酸ナトリウム−
硫酸コンドロイチン（Viscoat ）を全てのケースで用い
た。手術中および手術後の治療は全例で略同様である。
縫合術は１２インタラプテッド１０−０縫合とランニン
グ１１−０縫合［ナイロンまたはメルシレン（mersilen
e)］の組み合わせからなる。各施術の最後にゲンタマイ
シン、ベタメサゾンおよびアンセフ（Ancef)を結膜下に
注射した。手術後の処置 手術後全ての患者は最初の１ヶ月１日４回ネオマイシン
またはゲンタマインシ点滴を受けた。必要な場合には代
表的なステロイドを塗布した。手術後最初の２ヶ月間、
患者の合併症、拒絶反応、角膜の欠陥新生、感染症、傷
漏れ（wound leak）、創傷離開、上皮欠損の存続および
全体的な角膜状態を観察した。角膜の超音波膜厚測定
は、手術前、手術後１日、１週間、１ヶ月および２ヶ月
で行った。この研究を行った患者総数は１５人である。
角膜膜厚のグループ間差を分析し、対ｔ−テストを用い
て有意差があるかどうか評価した。結論 ヒト角膜におけるデキストラン用量応答曲線 角膜厚についての４℃で１２日間インキュベートしたヒ
ト角膜の硫酸コンドロイチン用量応答曲線を図１に示
す。１．３５％硫酸コンドロイチン含有ＤｅｘｓｏｌTM
でインキュベートした角膜は、１日、７日および１２日
で有効な薄さであった。これらの時点での角膜厚の測定
値は、０．４２５±０．０８２ｍｍ、０．５３０±０．
０４０ｍｍおよび０．５７２±０．０４３ｍｍであっ
た。１．５％−２．０％硫酸コンドロイチン含有媒体で
インキュベートした角膜は、同時点で角膜脱腫脹が増加
し、２．５％硫酸コンドロイチンで角膜は最も薄いこと
を示した。インキュベーション後１日、７日および１２
日後の角膜厚はそれぞれ０．４０５±０．０２１ｍｍ、
０．４８０±０．０４２ｍｍ、０．４８０±０．０２８
ｍｍであった。１２日間ＤｅｘｓｏｌTM中に保存した角
膜は３４℃に暖めた後腫脹は１９．６％増加することを
示した。硫酸コンドロイチン１．５％−１．７５％に保
存した角膜の加温後の腫脹は統計的には差のない増加で
あった。２．０％および２．５％硫酸コンドロイチン中
に保存した角膜は加温後の腫脹は１５．６％および１
３．５％増加を示した（図２）。
【００５２】試験した全硫酸コンドロイチン濃度につい
て全ての単層内皮細胞は無傷で、正常な内皮細胞形態で
あった。より高い硫酸コンドロイチン濃度でインキュベ
ートした角膜は基質ひだおよびデスメー膜のアリザリン
レッドＳ染色域は殆どなかった。全てのアリザリンレッ
ドＳ染色は全角膜で最小であり、基質ひだの部分に限ら
れていた。結論として、１．３５％−２．５％硫酸コン
ドロイチン中に保存した全ての角膜は、４℃で１２日間
の保存後も無傷の角膜内皮を有していた。医療用溶液
（２．５％硫酸コンドロイチン含有）中に保存された角
膜は１２日の保存期間中、最も優れた角膜脱腫脹を維持
した。この試験グループについては３４℃に再加温後の
最小の角膜の折り畳みと腫脹も注目に値する。これらの
結果は、移植用に４℃でヒト角膜を保存するのに本発明
の血清不含有医療用溶液を使用するのを支持するもので
ある。ヒト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込み 血清不含有医療用溶液の成分を評価するためにこの研究
を行った。
て全ての単層内皮細胞は無傷で、正常な内皮細胞形態で
あった。より高い硫酸コンドロイチン濃度でインキュベ
ートした角膜は基質ひだおよびデスメー膜のアリザリン
レッドＳ染色域は殆どなかった。全てのアリザリンレッ
ドＳ染色は全角膜で最小であり、基質ひだの部分に限ら
れていた。結論として、１．３５％−２．５％硫酸コン
ドロイチン中に保存した全ての角膜は、４℃で１２日間
の保存後も無傷の角膜内皮を有していた。医療用溶液
（２．５％硫酸コンドロイチン含有）中に保存された角
膜は１２日の保存期間中、最も優れた角膜脱腫脹を維持
した。この試験グループについては３４℃に再加温後の
最小の角膜の折り畳みと腫脹も注目に値する。これらの
結果は、移植用に４℃でヒト角膜を保存するのに本発明
の血清不含有医療用溶液を使用するのを支持するもので
ある。ヒト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込み 血清不含有医療用溶液の成分を評価するためにこの研究
を行った。
【００５３】試験媒体をヒト角膜内皮細胞を用いた［ 3
Ｈ］−チミジン取り込みバイオアッセイで評価した。こ
のバイオアッセイはこれらの細胞のＤＮＡへの［ 3Ｈ］
−チミジンの取り込みを阻害または刺激するかどうかを
評価するための感度の高い方法である。１または１４成
分以上を含む試験溶液でインキュベートしたヒト角膜の
内皮細胞による［ 3Ｈ］−チミジンの取り込みを血清不
含有ＤｅｘｓｏｌTM培地と１０％ＦＢＳ添加ＣＳＭTM培
地と比較した（図３）。統計的有意差（Ｐ＜０．０５）
の評価には、一元変動分析とニューマン−ケウルス マ
ルチプルレンジテストを用いた。
Ｈ］−チミジン取り込みバイオアッセイで評価した。こ
のバイオアッセイはこれらの細胞のＤＮＡへの［ 3Ｈ］
−チミジンの取り込みを阻害または刺激するかどうかを
評価するための感度の高い方法である。１または１４成
分以上を含む試験溶液でインキュベートしたヒト角膜の
内皮細胞による［ 3Ｈ］−チミジンの取り込みを血清不
含有ＤｅｘｓｏｌTM培地と１０％ＦＢＳ添加ＣＳＭTM培
地と比較した（図３）。統計的有意差（Ｐ＜０．０５）
の評価には、一元変動分析とニューマン−ケウルス マ
ルチプルレンジテストを用いた。
【００５４】このバイオアッセイでは、細胞は増殖状態
（活発に有糸分裂をしている状態）に保った。ヒト角膜
内皮細胞ＤＮＡへの［ 3Ｈ］−チミジン取り込みの阻害
は、細胞代謝の阻害、細胞状態の悪化および細胞毒の可
能性の指標である。１０％ＦＢＳを低下したＣＳＭTM培
地でインキュベートしたヒト角膜内皮細胞は、新たに調
整したコントロールの血清不含有ＤｅｘｓｏｌTM培地と
比較すると、統計的に有意に高い［ 3Ｈ］−チミジン取
り込み率を示した。１．７５％または２．０％硫酸コン
ドロイチンでインキュベートしたＨＣＥ細胞は、血清不
含有ＤｅｘｓｏｌTMでインキュベートしたＨＣＥ細胞と
統計的に近似した［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示し
た。以下の各成分と組み合わせた２．５％硫酸コンドロ
イチンおよび１％デキストランの添加は、血清不含有Ｄ
ｅｘｓｏｌTMでインキュベーションしたＨＣＥ細胞と統
計的に近似する［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示した
（成分：Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ2 Ｏ、硫酸アデニン、Ｌ−
ヒドロキシプロリン、アスコルビン酸、リン酸α−トコ
フェロール、Ｄ−ビオチン、塩酸ピリドキシン、イノシ
ンおよびビタミンＢ12）。アデノミンまたはアデノミ
ン、アデミンおよびイノシンの組み合わせを添加した
２．５％硫酸コンドロイチンおよび１％デキストラン添
加媒体は、ＤｅｘｓｏｌTMコントロール培地でインキュ
ベートしたＨＣＥ細胞より統計的に大きい［ 3Ｈ］−チ
ミジン取り込み率を示した。全ての１４種の成分を補充
ＭＥＭ基礎培地中、２．５％硫酸コンドロイチンと組み
合わせると、ＤｅｘｓｏｌTMコントロールと比べ統計的
に大きい［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示した。試験
した全ての媒体は、７２時間のインキュベーション期間
を通して正常内皮細胞の形態を維持した。
（活発に有糸分裂をしている状態）に保った。ヒト角膜
内皮細胞ＤＮＡへの［ 3Ｈ］−チミジン取り込みの阻害
は、細胞代謝の阻害、細胞状態の悪化および細胞毒の可
能性の指標である。１０％ＦＢＳを低下したＣＳＭTM培
地でインキュベートしたヒト角膜内皮細胞は、新たに調
整したコントロールの血清不含有ＤｅｘｓｏｌTM培地と
比較すると、統計的に有意に高い［ 3Ｈ］−チミジン取
り込み率を示した。１．７５％または２．０％硫酸コン
ドロイチンでインキュベートしたＨＣＥ細胞は、血清不
含有ＤｅｘｓｏｌTMでインキュベートしたＨＣＥ細胞と
統計的に近似した［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示し
た。以下の各成分と組み合わせた２．５％硫酸コンドロ
イチンおよび１％デキストランの添加は、血清不含有Ｄ
ｅｘｓｏｌTMでインキュベーションしたＨＣＥ細胞と統
計的に近似する［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示した
（成分：Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ2 Ｏ、硫酸アデニン、Ｌ−
ヒドロキシプロリン、アスコルビン酸、リン酸α−トコ
フェロール、Ｄ−ビオチン、塩酸ピリドキシン、イノシ
ンおよびビタミンＢ12）。アデノミンまたはアデノミ
ン、アデミンおよびイノシンの組み合わせを添加した
２．５％硫酸コンドロイチンおよび１％デキストラン添
加媒体は、ＤｅｘｓｏｌTMコントロール培地でインキュ
ベートしたＨＣＥ細胞より統計的に大きい［ 3Ｈ］−チ
ミジン取り込み率を示した。全ての１４種の成分を補充
ＭＥＭ基礎培地中、２．５％硫酸コンドロイチンと組み
合わせると、ＤｅｘｓｏｌTMコントロールと比べ統計的
に大きい［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を示した。試験
した全ての媒体は、７２時間のインキュベーション期間
を通して正常内皮細胞の形態を維持した。
【００５５】ヒト角膜内皮細胞を用いた［ 3Ｈ］−チミ
ジン取り込みの研究から、結論として、２．５％硫酸コ
ンドロイチン、１％デキストラン、Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ
2 Ｏ、硫酸アデニン、コレステロール、Ｌ−ヒドロキシ
プロリン、アスコルビン酸、リン酸α−トコフェロー
ル、Ｄ−ビオチン、カルシフェロール、ナイアシン、ｐ
−アミノ安息香酸、塩酸ピリドキシン、アデノシン、イ
ノシンおよびビタミンＢ 12からなる血清不含有医療用溶
液（配合Ａ）はバイオアッセイのパラメータによって評
価すると血清不含有ＤｅｘｓｏｌTM培地より統計的に大
きく［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を活性化することが
できた。この血清不含有医療用溶液は、さらに完全な溶
液を提供することによって、コントロールＤｅｘｓｏｌ
TMよりもヒト角膜内皮細胞の有糸分裂ポテンシャルを強
化することができる。従って、この溶液は４℃保存媒体
として使用し得る。臨床試験 １５角膜を血清不含有医療用溶液（配合Ａ）を用い移植
した。一人の外科医によって全患者の手術をし、全患者
について以下の研究を行った。提供者の角膜は以下の特
徴を持っていた。
ジン取り込みの研究から、結論として、２．５％硫酸コ
ンドロイチン、１％デキストラン、Ｆe(ＮＯ3)3 ・９Ｈ
2 Ｏ、硫酸アデニン、コレステロール、Ｌ−ヒドロキシ
プロリン、アスコルビン酸、リン酸α−トコフェロー
ル、Ｄ−ビオチン、カルシフェロール、ナイアシン、ｐ
−アミノ安息香酸、塩酸ピリドキシン、アデノシン、イ
ノシンおよびビタミンＢ 12からなる血清不含有医療用溶
液（配合Ａ）はバイオアッセイのパラメータによって評
価すると血清不含有ＤｅｘｓｏｌTM培地より統計的に大
きく［ 3Ｈ］−チミジン取り込み率を活性化することが
できた。この血清不含有医療用溶液は、さらに完全な溶
液を提供することによって、コントロールＤｅｘｓｏｌ
TMよりもヒト角膜内皮細胞の有糸分裂ポテンシャルを強
化することができる。従って、この溶液は４℃保存媒体
として使用し得る。臨床試験 １５角膜を血清不含有医療用溶液（配合Ａ）を用い移植
した。一人の外科医によって全患者の手術をし、全患者
について以下の研究を行った。提供者の角膜は以下の特
徴を持っていた。
【００５６】角膜の提供者の年齢（平均５３±１９
才）、死から摘出までの時間（平均４．３±２．７時
間）および死からの保存時間（平均４．３±３．２時
間）。４℃での角膜の保存時間は４．３日であった（１
〜７日）１００％配合Ａで保存された移植角膜は２ヶ月
でも澄明であった。この患者群中では永続的な上皮欠損
はみられなかった。手術中の角膜厚は０．６２３±０．
０５４ｍｍであった。同様の条件のもとでＤｅｘｓｏｌ
TM中に保存した手術中の角膜の厚さの測定値は、０．７
８７±０．０４７ｍｍであった。配合ＡおよびＤｅｘｓ
ｏｌTM保存角膜の１週間時の厚さはそれぞれ０．６５０
±０．０８４ｍｍおよび０．７４３±０．０９３ｍｍで
あった。配合Ａ保存膜は、手術中および手術後１週間に
おいて有意に薄かった（図４）。２ヶ月の追跡期間中に
全患者の角膜は段々薄くなった（角膜厚：１ヶ月０．６
１２±０．１６７ｍｍ、２ヶ月０．５４４±０．０６２
ｍｍ）。眼内圧は全患者が正常範囲内であった。配合Ａ
保存角膜群では基本的に提供角膜に問題はなかった。
才）、死から摘出までの時間（平均４．３±２．７時
間）および死からの保存時間（平均４．３±３．２時
間）。４℃での角膜の保存時間は４．３日であった（１
〜７日）１００％配合Ａで保存された移植角膜は２ヶ月
でも澄明であった。この患者群中では永続的な上皮欠損
はみられなかった。手術中の角膜厚は０．６２３±０．
０５４ｍｍであった。同様の条件のもとでＤｅｘｓｏｌ
TM中に保存した手術中の角膜の厚さの測定値は、０．７
８７±０．０４７ｍｍであった。配合ＡおよびＤｅｘｓ
ｏｌTM保存角膜の１週間時の厚さはそれぞれ０．６５０
±０．０８４ｍｍおよび０．７４３±０．０９３ｍｍで
あった。配合Ａ保存膜は、手術中および手術後１週間に
おいて有意に薄かった（図４）。２ヶ月の追跡期間中に
全患者の角膜は段々薄くなった（角膜厚：１ヶ月０．６
１２±０．１６７ｍｍ、２ヶ月０．５４４±０．０６２
ｍｍ）。眼内圧は全患者が正常範囲内であった。配合Ａ
保存角膜群では基本的に提供角膜に問題はなかった。
【００５７】血清不含有医療用溶液（配合Ａ）は手術中
および手術後に正常角膜脱腫脹を維持するのに有効であ
った。内皮細胞機能および代謝が維持され、角膜の正常
水和を許容し、一定の角膜厚と手術後の透明性が保たれ
た。
および手術後に正常角膜脱腫脹を維持するのに有効であ
った。内皮細胞機能および代謝が維持され、角膜の正常
水和を許容し、一定の角膜厚と手術後の透明性が保たれ
た。
【００５８】
【００５９】
【００６０】
【００６１】ＴＣ−１９９、ＣＳＭTMおよび血清不含有
医療用溶液の配合である。
医療用溶液の配合である。
【図１】４℃で保存後のヒト角膜の角膜厚さ（ｍｍ）で
ある。
ある。
【図２】４℃で１２日間保存後および保存後２４℃に暖
めるまでの角膜厚さ（ｍｍ）である。
めるまでの角膜厚さ（ｍｍ）である。
【図３】血清不含有医療用溶液でインキュベートしたヒ
ト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込みである。
ト角膜内皮細胞の［ 3Ｈ］−チミジン取り込みである。
【図４】手術後の角膜厚さ（ｍｍ）である。
フロントページの続き
(51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所
Ａ６１Ｋ 31/79 8314−4Ｃ
37/24 8314−4Ｃ
37/36 8314−4Ｃ
// Ａ６１Ｋ 45/06 8415−4Ｃ
(72)発明者 リチヤード エル．リンドストローム
アメリカ合衆国、ミネソタ州 55331、エ
クセルシオール、レイクビユー アベニユ
ー 20050
(72)発明者 デブラ スケルニツク
アメリカ合衆国、ミネソタ州 55008、ケ
ンブリツジ、ルート ５、ボツクス 344
Claims (44)
- 【請求項１】１．水性栄養素および電解液 ２．グリコサミノグリカン ３．脱腫張剤 ４．緩衝剤 ５．エネルギ源 ６．抗酸化剤 ７．成長因子 からなり、少なくとも一種類以上の成長因子を含有する
ことを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２】１．水性栄養素および電解液 ２．グリコサミノグリカン ３．脱腫張剤 ４．緩衝剤 ５．エネルギ源 ６．抗酸化剤 ７．抗生物質および／または抗真菌剤 ８．成長因子 からなり、生理的ｐＨが６．８から７．８で、２℃から
１５℃の低温で保存される角膜組織を含む眼組織の保存
を維持し強化する成分を有し、且つ少なくとも一種類以
上の成長因子を含有することを特徴とする血清不含有医
療用溶液。 - 【請求項３】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、成長因子は、ポリペプタイドであることを特徴と
する血清不含有医療用溶液。 - 【請求項４】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、成長因子は、（遺伝的）組み換え体であることを
特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項５】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、成長因子は、天然の生体成分由来物質であること
を特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項６】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、成長因子は、 １．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ３．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ４．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ５．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ６．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ７．インスリン からなる群の中の一種類以上であることを特徴とする血
清不含有医療用溶液。 - 【請求項７】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、基礎培地は、イーグル最少必須培地（ＭＥＭ）か
らなることを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項８】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、基礎培地は、ＴＣ１９９培地からなることを特徴
とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項９】請求項２記載の血清不含有医療用溶液にお
いて、成長因子は、インスリンであることを特徴とする
血清不含有医療用溶液。 - 【請求項１０】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの濃度のインスリンであることを特徴とする血
清不含有医療用溶液。 - 【請求項１１】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のインス
リンであることを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項１２】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のヒト組
み換えインスリンであることを特徴とする血清不含有医
療用溶液。 - 【請求項１３】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、ＥＧＦであることを特徴とする血
清不含有医療用溶液。 - 【請求項１４】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの濃度のＥＧＦであることを特徴とする血清不
含有医療用溶液。 - 【請求項１５】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のＥＧＦ
であることを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項１６】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のヒト組
み換えＥＧＦであることを特徴とする血清不含有医療用
溶液。 - 【請求項１７】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、インスリンとＥＧＦであることを
特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項１８】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの濃度のインスリンとＥＧＦであることを特徴
とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項１９】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のインス
リンと、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のＥＧＦであることを
特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２０】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のヒト組
み換えインスリンと、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のヒト組
み換えＥＧＦであることを特徴とする血清不含有医療用
溶液。 - 【請求項２１】 Ａ．１．イーグル最少必須培地（ＭＥＭ） ２．ＴＣ１９９培地 ３．イーグル最少必須培地（ＭＥＭ）とＴＣ１９９培地
の混合培地 からなる群から選ばれる水性栄養素および電解液と、 Ｂ．１．硫酸コンドロイチン ２．硫酸デルマタン ３．硫酸ヘパリン ４．硫酸ケラチン ５．ヒアルロン酸 からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌのグリコサミノグリカンと、 Ｃ．１．デキストラン ２．硫酸デキストラン ３．ポリビニルピロリドン ４．硫酸ポリビニル ５．ヒトロキシプロピルメチルセルロース ６．カルボキシプロピルメチルセルロース からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから１００
ｍｇ／ｍｌの脱腫張剤と、 Ｄ．１．炭酸水素塩緩衝液 ２．ＨＥＰＥＳ緩衝液 からなる群から選ばれる０．１ｍＭから１００ｍＭの緩
衝剤と、 Ｅ．１．グルコース ２．ピルベート ３．フルクトース ４．デキストロース（Ｄ−グルコース） からなる群から選ばれる０．５ｍＭから１０ｍＭのエネ
ルギ源と、 Ｆ．１．アスコルビン酸 ２．２−メルカプトエタノール ３．グルタチオン ４．α−トコフェロール からなる群から選ばれる０．００１ｍＭから１０ｍＭの
抗酸化剤と、 Ｇ．１．ビタミンＡ ２．ビタミンＢ ３．レチン酸 ４．エタノールアミン ５．ホスホエタノールアミン ６．セレン ７．トランスフェリン からなる群から選ばれる０．０１ｍｇ／ｍｌから５００
ｍｇ／ｍｌの膜安定剤と、 Ｈ．１．ゲンタマイシン ２．ファジソン からなる群から選ばれる０．１μｇ／ｍｌから１ｍｇ／
ｍｌの抗生物質および／または抗菌剤と、 Ｉ．１．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ３．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ４．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ５．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ６．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ７．血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ） ８．インスリン からなる群から選ばれる０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍ
ｇ／ｍｌの成長因子と、 からなる生理的ｐＨ、低温（２℃から１５℃）で、ヒト
角膜組織を含む眼組織の保存を維持および強化する成分
を含有することを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２２】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、ポリペプタイドであることを特
徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２３】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、成長因子は、（遺伝的）組み換え体であること
を特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２４】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、天然の生体成分由来物質である
ことを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２５】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、 １．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ３．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ４．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ５．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ６．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ７．インスリン からなる群の中の一種類以上であることを特徴とする血
清不含有医療用溶液。 - 【請求項２６】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、インスリンであることを特徴と
する血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２７】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１
ｍｇ／ｍｌの濃度のインスリンであることを特徴とする
血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２８】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のイン
スリンであることを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項２９】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のヒト
組み換えインスリンであることを特徴とする血清不含有
医療用溶液。 - 【請求項３０】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、ＥＧＦであることを特徴とする
血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３１】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１
ｍｇ／ｍｌの濃度のＥＧＦであることを特徴とする血清
不含有医療用溶液。 - 【請求項３２】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のＥＧ
Ｆであることを特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３３】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のヒト
組み換えＥＧＦであることを特徴とする血清不含有医療
用溶液。 - 【請求項３４】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、インスリンとＥＧＦであること
を特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３５】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１
ｍｇ／ｍｌの濃度のインスリンとＥＧＦであることを特
徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３６】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のイン
スリンと、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のＥＧＦであること
を特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３７】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、成長因子は、約１０μｇ／ｍｌの濃度のヒト
組み換えインスリンと、約１０ｎｇ／ｍｌの濃度のヒト
組み換えＥＧＦであることを特徴とする血清不含有医療
用溶液。 - 【請求項３８】請求項２記載の血清不含有医療用溶液に
おいて、保存の過程は、約２℃から１５℃で行うことを
特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項３９】角膜移植のために、眼組織を少なくとも
一種類以上の成長因子を含有する血清不含有医療用溶液
中で、約２℃から１５℃で保存し、移植に際して３４℃
まで昇温することを特徴とする眼組織の品質を高める方
法。 - 【請求項４０】請求項３９記載の方法において、成長因
子は、 １．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ３．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ４．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ５．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ６．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ７．血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ） ８．インスリン からなる群の中の一種類以上であることを特徴とする眼
組織の品質を高める方法。 - 【請求項４１】請求項２１記載の血清不含有医療用溶液
において、保存の過程は、約２℃から１５℃で行うこと
を特徴とする血清不含有医療用溶液。 - 【請求項４２】角膜移植のために、眼組織を少なくとも
一種類以上の成長因子を含有する血清不含有医療用溶液
中で、約２℃から１５℃で保存し、移植に際して３４℃
まで昇温することを特徴とする眼組織の品質を高める方
法。 - 【請求項４３】請求項４２記載の方法において、成長因
子は、約０．００１ｎｇ／ｍｌから１ｍｇ／ｍｌで １．表皮成長因子（ＥＧＦ） ２．インスリン類似成長因子Ｉ（ＩＧＦ−Ｉ） ３．インスリン類似成長因子ＩＩ（ＩＧＦ−ＩＩ） ４．塩基性若しくは酸性の線維芽細胞成長因子（ＦＧ
Ｆ） ５．形質転換成長因子アルファ（ＴＧＦ−α） ６．形質転換成長因子ベータ（ＴＧＦ−β） ７．血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ） ８．インスリン からなる群の中の一種類以上であることを特徴とする眼
組織の品質を高める方法。 - 【請求項４４】ドナー角膜組織を切除し、該組織を保存
し、次いで該組織受容者である患者に角膜を移植するこ
とからなる浸透角膜移植法において、該組織の保存を血
清不含有医療用溶液中で、２℃から１５℃で行うことを
特徴とする眼組織の品質を高める方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3167243A JPH0525001A (ja) | 1991-07-08 | 1991-07-08 | 血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3167243A JPH0525001A (ja) | 1991-07-08 | 1991-07-08 | 血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0525001A true JPH0525001A (ja) | 1993-02-02 |
Family
ID=15846117
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3167243A Pending JPH0525001A (ja) | 1991-07-08 | 1991-07-08 | 血清不含有医療用溶液および眼組織の品質を高める方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0525001A (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5816921A (en) * | 1994-09-27 | 1998-10-06 | Sega Enterprises, Ltd. | Data transferring device and video game apparatus using the same |
| US6221846B1 (en) | 1996-06-26 | 2001-04-24 | Teruo Nishida | Ophthalmic drug compositions |
| US7232881B2 (en) | 2001-12-03 | 2007-06-19 | Santen Pharmaceutical Co., Ltd. | Peptide containing Ser-Ser-Ser-Arg |
| US7601487B2 (en) | 2005-04-12 | 2009-10-13 | Cleo Cosmetic And Pharmaceutical Co., Llc | Composition using HMW dextran and method for in vitro preservation of corneal tissues |
| JP2017522315A (ja) * | 2014-07-18 | 2017-08-10 | ユービジョン バイオテック カンパニー リミテッド | 層状角膜保存液 |
| CN114946836A (zh) * | 2022-05-25 | 2022-08-30 | 成都诺医德医学检验实验室有限公司 | 一种微组织无血清冻存液及其应用 |
-
1991
- 1991-07-08 JP JP3167243A patent/JPH0525001A/ja active Pending
Cited By (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5816921A (en) * | 1994-09-27 | 1998-10-06 | Sega Enterprises, Ltd. | Data transferring device and video game apparatus using the same |
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| US8183343B2 (en) | 2001-12-03 | 2012-05-22 | Santen Pharmaceutical Co., Ltd. | Methods for treating a skin wound |
| US7601487B2 (en) | 2005-04-12 | 2009-10-13 | Cleo Cosmetic And Pharmaceutical Co., Llc | Composition using HMW dextran and method for in vitro preservation of corneal tissues |
| JP2017522315A (ja) * | 2014-07-18 | 2017-08-10 | ユービジョン バイオテック カンパニー リミテッド | 層状角膜保存液 |
| CN114946836A (zh) * | 2022-05-25 | 2022-08-30 | 成都诺医德医学检验实验室有限公司 | 一种微组织无血清冻存液及其应用 |
| CN114946836B (zh) * | 2022-05-25 | 2024-06-04 | 成都诺医德医学检验实验室有限公司 | 一种微组织无血清冻存液及其应用 |
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