JP2019511911A - Tgfベータ2抗体 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出され、ここに参照により完全に組み込まれる配列表を含む。前記ASCIIコピーは、2017年2月13日に作製され、PAT057206−WO−PCT_SL.TXTと名付けられ、サイズは162,071バイトである。
1.TGF−βアイソフォーム1、2および3を中和する完全ヒトモノクローナル抗体GC1008(フレソリムマブ)、
2.TGF−β1を中和する抗体LY2382770、
3.TGF−β1を中和する抗体CAT−192(メテリムマブ)、および
4.抗体CAT−152(レルデリムマブ、6B1としても知られる)は、TGF−β2に高い親和性を、およびTGF−β3と交差反応性を有する(上の全ては、Growth Factors. 2011 Aug;29(4):140-52で総論されている)。
1.ヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2を中和し、ヒトアイソフォームTGF−β3を中和しない、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片。
2.ヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2を中和し、ヒトアイソフォームTGF−β3およびTGF−β1を中和しない、態様1による抗体またはその機能的断片。
3.中和はSmad依存性リポーター遺伝子アッセイによって測定される、態様1または2によるヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片。
4.Smad依存性リポーター遺伝子アッセイによって測定される場合、250pM未満の最大半減抑制濃度(IC50)でヒトTGF−β2を中和し、100nMを超える最大半減抑制濃度(IC50)でヒトTGF−β1および/またはTGF−β3を中和する、前記態様のいずれかによる抗体またはその機能的断片。
5.TGF−β1またはTGF−β3に関するその解離定数の少なくとも70分の1の解離定数で、ヒトアイソフォームTGF−β1およびTGF−β3より優先的にヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2に結合し、ヒトTGF−β2を中和する、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片。
6.1pM以下のKDでヒトTGF−β2に結合する、前記態様のいずれかによる抗体またはその機能的断片。
7.配列番号1、21、41、61、81、101または4、24、44、64、84、104または124〜129からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変CDR1領域;配列番号2、22、42、62、82、102または5、25、45、65、85、105からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変CDR2領域;配列番号3、23、43、63、83、103または6、26、46、66、86、106からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変CDR3領域;配列番号11、31、51、71、91、111または14、34、54、74、94、114からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変CDR1領域;配列番号12、32、52、72、92、112または15、35、55、75、95、115からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変CDR2領域;および、配列番号13、33、53、73、93、113または16、36、56、76、96、116からなる群から選択される配列に少なくとも95%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変CDR3領域を含む、態様1〜6のいずれかによる抗体または機能的断片。
8.配列番号7、27、47、67、87または107のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域ポリペプチド配列を含む、態様1〜7のいずれかによる抗体または機能的断片。
9.配列番号17、37、57、77、97または117のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域ポリペプチド配列を含む、態様1〜8のいずれかによる抗体または機能的断片。
10.配列番号7、27、47、67、87または107のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域ポリペプチド配列、および配列番号17、37、57、77、97または117のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域ポリペプチド配列を含む、態様1〜9のいずれかによる抗体または機能的断片。
11.配列番号1、21、41、61、81、101または4、24、44、64、84、104または124〜129からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR1;配列番号2、22、42、62、82、102または5、25、45、65、85、105からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR2;配列番号3、23、43、63、83、103または6、26、46、66、86、106からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR3;配列番号11、31、51、71、91、111または14、34、54、74、94、114からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR1;配列番号12、32、52、72、92、112または15、35、55、75、95、115からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR2;配列番号13、33、53、73、93、113または16、36、56、76、96、116からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR3を含む、態様1〜10のいずれかによる抗体またはその機能的断片。
12.(a)配列番号1の重鎖可変領域CDR1;配列番号2の重鎖可変領域CDR2;配列番号3の重鎖可変領域CDR3;配列番号11の軽鎖可変領域CDR1;配列番号12の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号13の軽鎖可変領域CDR3;
(b)配列番号21の重鎖可変領域CDR1;配列番号22の重鎖可変領域CDR2;配列番号23の重鎖可変領域CDR3;配列番号31の軽鎖可変領域CDR1;配列番号32の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号33の軽鎖可変領域CDR3;
(c)配列番号41の重鎖可変領域CDR1;配列番号42の重鎖可変領域CDR2;配列番号43の重鎖可変領域CDR3;配列番号51の軽鎖可変領域CDR1;配列番号52の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号53の軽鎖可変領域CDR3;
(d)配列番号61の重鎖可変領域CDR1;配列番号62の重鎖可変領域CDR2;配列番号63の重鎖可変領域CDR3;配列番号71の軽鎖可変領域CDR1;配列番号72の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号73の軽鎖可変領域CDR3;
(e)配列番号81の重鎖可変領域CDR1;配列番号82の重鎖可変領域CDR2;配列番号83の重鎖可変領域CDR3;配列番号91の軽鎖可変領域CDR1;配列番号92の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号93の軽鎖可変領域CDR3;または
(f)配列番号101の重鎖可変領域CDR1;配列番号102の重鎖可変領域CDR2;配列番号103の重鎖可変領域CDR3;配列番号111の軽鎖可変領域CDR1;配列番号112の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号113の軽鎖可変領域CDR3
を含む、態様1〜11のいずれか1つによるヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体または機能的断片。
13.配列番号9、29、49、69、89、109からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長重鎖アミノ酸配列を含む、態様1〜12のいずれかによる抗体または機能的断片。
14.配列番号19、39、59、79、99、119からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長軽鎖アミノ酸配列を含む、態様1〜13のいずれかによる抗体または機能的断片。
15.配列番号9、29、49、69、89、109からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長重鎖アミノ酸配列、および配列番号19、39、59、79、99、119からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長軽鎖アミノ酸配列を含む、態様1〜14のいずれかによる抗体または機能的断片。
16.(a)配列番号7の可変重鎖配列および配列番号17の可変軽鎖配列;
(b)配列番号27の可変重鎖配列および配列番号37の可変軽鎖配列;
(c)配列番号47の可変重鎖配列および配列番号57の可変軽鎖配列;
(d)配列番号67の可変重鎖配列および配列番号77の可変軽鎖配列;
(e)配列番号87の可変重鎖配列および配列番号97の可変軽鎖配列;または
(f)配列番号107の可変重鎖配列および配列番号117の可変軽鎖配列
を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。
17.(a)配列番号9の重鎖配列および配列番号19の軽鎖配列;
(b)配列番号29の重鎖配列および配列番号39の軽鎖配列;
(c)配列番号49の重鎖配列および配列番号59の軽鎖配列;
(d)配列番号69の重鎖配列および配列番号79の軽鎖配列;
(e)配列番号89の重鎖配列および配列番号99の軽鎖配列;または
(f)配列番号109の重鎖配列および配列番号119の軽鎖配列
を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。
18.IgG1アイソタイプである、前記態様のいずれかによる抗TGF−β2抗体。
19.Fc領域の突然変異により変更されたエフェクター機能を有する、前記態様のいずれかによるヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。
20.前記態様のいずれかによる抗体または機能的断片をコードする、単離されたポリヌクレオチド配列。
21.配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118または120の1つまたは複数を含む、態様20による単離されたポリヌクレオチド配列。
22.態様20または21による1つまたは複数の単離されたポリヌクレオチド配列を含む、クローニングまたは発現ベクター。
23.少なくとも1つのCDR領域をコードする、配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118もしくは120、またはその断片の1つまたは複数を含む、態様22によるベクター。
24.態様22または23による1つまたは複数のベクターを含む宿主細胞。
25.態様1〜19のいずれか1つの抗体またはその機能的断片の生成のための方法であって、態様24の宿主細胞を培養することおよび前記抗体または機能的断片を単離することを含む方法。
26.態様1〜19のいずれか1つによる抗体またはその機能的断片を含む医薬組成物。
27.療法において使用するための態様12、15、16、17または26のいずれかの抗体またはその機能的断片を含む医薬組成物。
28.医薬として使用するための態様12、15、16、17または26のいずれかの抗体またはその機能的断片を含む医薬組成物。
29.薬学的に許容される希釈剤または担体をさらに含む、態様26〜28による医薬組成物。
30.1つまたは複数のさらなる活性薬剤をさらに含む、態様26〜29による医薬組成物。
31.デュピュイトラン病の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
32.ロイス−ディーツ症候群の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
33.マルファン関連状態またはマルファン病の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
34.表皮水疱症の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
35.線維柱帯切除術の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
36.皮膚全身性硬化症の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
37.筋骨格疾患または障害の処置で使用するための態様26〜30の医薬組成物。
38.前記筋骨格疾患または障害が、筋萎縮症、例えばミオパシー、例えばミオトニー、先天性ミオパシー、例えばネマリンミオパシー、多重/ミニコアミオパシーおよび管状筋(中心核)ミオパシーによって引き起こされるもの、ミトコンドリアミオパシー、家族性周期性四肢麻痺、炎症性ミオパシー、代謝ミオパシー、例えば、グリコーゲンまたは脂質貯蔵病、皮膚筋炎、多発筋炎、封入体筋肉炎、骨化性筋炎、横紋筋融解およびミオグロビン尿症によって引き起こされるもの;筋ジストロフィー、例えば、デュシェンヌ、ベッカー、筋緊張性、筋膜肩甲上腕部、エメリー−ドライフス、眼球咽頭、肩甲上腕部、四肢肢帯、フクヤマ、先天性筋ジストロフィーまたは遺伝性末梢筋障害;骨粗しょう症;骨折;低い背丈;小人症;長期ベッド療養;随意不活動性;または不随意の不活動性である、態様37の医薬組成物。
39.デュピュイトラン病を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
40.マルファン関連状態またはマルファン病を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
41.表皮水疱症を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
42.線維柱帯切除術を受ける患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
43.皮膚全身性硬化症を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
44.ロイス−ディーツ症候群を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
45.筋骨格疾患または障害を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
46.前記筋骨格疾患または障害が、筋萎縮症、例えばミオパシー、例えばミオトニー、先天性ミオパシー、例えばネマリンミオパシー、多重/ミニコアミオパシーおよび管状筋(中心核)ミオパシーによって引き起こされるもの、ミトコンドリアミオパシー、家族性周期性四肢麻痺、炎症性ミオパシー、代謝ミオパシー、例えば、グリコーゲンまたは脂質貯蔵病、皮膚筋炎、多発筋炎、封入体筋肉炎、骨化性筋炎、横紋筋融解およびミオグロビン尿症によって引き起こされるもの;筋ジストロフィー、例えば、デュシェンヌ、ベッカー、筋緊張性、筋膜肩甲上腕部、エメリー−ドライフス、眼球咽頭、肩甲上腕部、四肢肢帯、フクヤマ、先天性筋ジストロフィーまたは遺伝性末梢筋障害;骨粗しょう症;骨折;低い背丈;小人症;長期ベッド療養;随意不活動性;または不随意の不活動性である、態様45による方法。
47.デュピュイトラン病、マルファン関連状態もしくはマルファン病、表皮水疱症、線維柱帯切除術、ロイス−ディーツ症候群、皮膚全身性硬化症または筋骨格疾患もしくは障害の処置のための医薬の製造における、態様1〜19のいずれか1つによる抗体もしくは機能的断片、態様20もしくは21によるポリヌクレオチド配列、または態様26〜30のいずれか1つによる医薬組成物の使用。
48.前記筋骨格疾患または障害が、筋萎縮症、例えばミオパシー、例えばミオトニー、先天性ミオパシー、例えばネマリンミオパシー、多重/ミニコアミオパシーおよび管状筋(中心核)ミオパシーによって引き起こされるもの、ミトコンドリアミオパシー、家族性周期性四肢麻痺、炎症性ミオパシー、代謝ミオパシー、例えば、グリコーゲンまたは脂質貯蔵病、皮膚筋炎、多発筋炎、封入体筋肉炎、骨化性筋炎、横紋筋融解およびミオグロビン尿症によって引き起こされるもの;ジストロフィー、例えば、デュシェンヌ、ベッカー、筋緊張性、筋膜肩甲上腕部、エメリー−ドライフス、眼球咽頭、肩甲上腕部、四肢肢帯、フクヤマ、先天性筋ジストロフィーまたは遺伝性末梢筋障害;骨粗しょう症;骨折;低い背丈;小人症;長期ベッド療養;随意不活動性;または不随意の不活動性である、態様47の使用。
49.態様17の少なくとも1つの抗体によってTGFβ−2への結合を交差ブロックするかまたは交差ブロックされる、抗体またはその機能的断片。
本発明がより容易に理解されるように、特定の用語を先ず定義する。さらなる定義は、詳細な説明全体で示される。
ヒトモノクローナル抗体による異なる機能と関連するいくつかの高度に相同的な標的の1つの特異的中和は、主要な課題のままである。この課題は、他の相同的標的との交差反応性を有害なまたは望ましくない事象と関連付けることができるとき、治療場面でより明白である。相同的アイソフォームTGF−β1およびTGF−β3の存在のために、ヒトモノクローナル抗体でTGF−β2を標的にするときにこれらの問題が生じることがある。これらのTGF−βアイソフォームは、ノックアウトマウスからの実験データによると異なる機能と関連する。さらに、TGF−β1の阻害は、有害事象の高いリスクと関連することが知られている。さらに、本明細書では、発明者は、動物モデルにおいてTGF−β3およびTGF−β2の同時阻害が弁膜症、心臓弁の重大な障害と関連するとの認識されていない問題を開示する。これは、TGF−β2を特異的に中和するが、TGF−β3を、またはTGF−β3およびTGF−β1を中和しないモノクローナル治療抗体を提供する、これまで未解決の必要性を発生させる。より具体的には、臨床場面で有効になるために、非常に低いピコモルの解離定数を示す中和抗TGF−β2抗体の必要性がある。さらに、有害事象と関連する可能性のある他の経路に対する干渉を引き起こしそうにないより低い用量でそれらを投与する必要があるので、高い結合親和性を有する中和抗TGF−β2抗体は、強化された効力および安全性と関連する。さらに、モノクローナル抗TGF−β2抗体のより低い用量の投与は、より低い費用とも関連する。これらの問題は、本発明によって解決される。
(i)配列番号1〜3、11〜13、21〜23、31〜33、41〜43、51〜53、61〜63、71〜73、81〜83、91〜93、101〜103もしくは111〜113に列挙されるKabatのCDR、または
(ii)配列番号4〜6、14〜16、24〜26、34〜36、44〜46、54〜56、64〜66、74〜76、84〜86、94〜96、104〜106もしくは114〜116に列挙されるChothiaのCDR、または、
(iii)配列番号124〜129に列挙されるKabat/ChothiaのCDR。
(a)配列番号7の可変重鎖配列および配列番号17の可変軽鎖配列;(b)配列番号27の可変重鎖配列および配列番号37の可変軽鎖配列;(c)配列番号47の可変重鎖配列および配列番号57の可変軽鎖配列;(d)配列番号67の可変重鎖配列および配列番号77の可変軽鎖配列;(e)配列番号87の可変重鎖配列および配列番号97の可変軽鎖配列;または(f)配列番号107の可変重鎖配列および配列番号117の可変軽鎖配列を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片をさらに提供する。
(a)配列番号9の重鎖配列および配列番号19の軽鎖配列;
(b)配列番号29の重鎖配列および配列番号39の軽鎖配列;
(c)配列番号49の重鎖配列および配列番号59の軽鎖配列;
(d)配列番号69の重鎖配列および配列番号79の軽鎖配列;
(e)配列番号89の重鎖配列および配列番号99の軽鎖配列;または
(f)配列番号109の重鎖配列および配列番号119の軽鎖配列
を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体を提供する。
別の実施形態では、本発明は、本明細書に記載される本発明の様々な特異的抗TGF−β2抗体と同じエピトープに結合する抗体を提供する。したがって、本発明は、配列番号67の重鎖可変ドメインおよび配列番号77の軽鎖可変ドメインを含む抗体によって認識されるエピトープに結合する、抗体またはその機能的断片を提供する。したがって、本発明は、抗体MOR14797によって認識されるエピトープに結合する抗体またはその機能的断片を提供する。結晶化および構造決定の後、本発明の好ましい抗体の結合性領域がより明らかに規定された。したがって、本発明は、ヒトTGFβ−2タンパク質の鎖Aのアミノ酸LEU304、ASN316、PRO351、TYR352、LEU353、TRP354、SER355、SER356、GLN359、ARG362、VAL363、LEU366、THR369およびILE370ならびにヒトTGFβ−2タンパク質の鎖BのLYS327、GLY331、TRP332、LYS333、TRP334、TYR392、ILE394、LYS399、GLU401およびLEU403を含むヒトTGFβ−2タンパク質のエピトープに結合する抗体を提供する。
本発明の抗体は、改変された抗体を工学的に操作するための出発材料として、本明細書に示すVHおよび/またはVL配列の1つまたは複数を有する抗体を使用してさらに調製することができ、この改変された抗体は、出発抗体から変更された特性を有することができる。一方または両方の可変領域(すなわちVHおよび/またはVL)の中の、例えば、1つまたは複数のCDR領域の中および/または1つまたは複数のフレームワーク領域の中の1つまたは複数の残基を改変することによって、抗体を工学的に操作することができる。さらに、または代わりに、例えば抗体のエフェクター機能を変更するために、定常領域の中の残基を改変することによって、抗体を工学的に操作することができる。実行することができる可変領域工学操作の1つのタイプは、抗体結合性領域/パラトープまたはCDR移植である。パラトープ配列は抗体抗原相互作用の役割を担うので、異なる特性を有する異なる抗体からのフレームワーク配列の上に接がれた特異的な天然に存在する抗体からのCDR/パラトープ配列を含む発現ベクターを構築することによって、特異的な天然に存在する抗体の特性を模倣した組換え抗体を発現させることが可能である(例えば、Riechmann, L. et al., 1998 Nature 332:323-327;Jones, P. et al., 1986 Nature 321:522-525;Queen, C. et al., 1989 Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 86:10029-10033;Winterへの米国特許第5,225,539号、および米国特許第5,530,101号;第5,585,089号;Queenらへの第5,693,762号および第6,180,370号を参照)。
結果として生じるポリペプチドがTGFβ−2に特異的に結合する少なくとも1つの結合性領域を含む限り、多種多様の抗体/免疫グロブリンフレームワークまたは足場を用いることができる。そのようなフレームワークまたは足場には、ヒト免疫グロブリンの5つの主なイディオタイプまたはその断片(本明細書の他の場所で開示されるものなど)が含まれ、ヒト化態様を好ましくは有する、他の動物種の免疫グロブリンが含まれる。この点に関しては、ラクダ科の動物で同定されたものなどの単一重鎖抗体が特に興味がある。当業者によって、新規のフレームワーク、足場および断片が継続して発見され、開発されている。
ラマ種(ラマ・パッコス(Lama paccos)、ラマ・グラマ(Lama glama)およびラマ・ビキューナ(Lama vicugna))などの新世界の種を含むラクダおよびヒトコブラクダ科のメンバー(カメルス・バクトリアヌス(Camelus bactrianus)およびカメルス・ドロマデリウス(Camelus dromaderius))から得た抗体タンパク質が、サイズ、構造的複雑性およびヒト対象への抗原性に関して特徴付けられている。天然に見出されるこの科の哺乳動物からのある特定のIgG抗体は軽鎖を欠き、したがって、2つの重鎖および2つの軽鎖を有する、他の動物からの抗体の一般的な4つの鎖の四次構造と構造的に異なる(国際公開第94/04678を参照)。VHHと同定された小さい単一の可変ドメインであるラクダ科の動物の抗体の領域を遺伝子操作によって得、標的に高い親和性を有する小さいタンパク質を生成し、「ラクダ科の動物のナノボディ」として知られる低分子量抗体誘導タンパク質をもたらすことができる(米国特許第5,759,808号;Stijlemans, B. et al., 2004 J Biol Chem 279: 1256-1261;Dumoulin, M. et al., 2003 Nature 424: 783-788;Pleschberger, M. et al. 2003 Bioconjugate Chem 14: 440-448;Cortez-Retamozo, V. et al. 2002 Int J Cancer 89: 456-62;およびLauwereys, M. et al. 1998 EMBO J 17: 3512-3520を参照)。ラクダ科の動物の抗体および抗体断片の工学操作ライブラリーは、例えば、Ablynx、Ghent、Belgiumから市販されている。非ヒト起源の他の抗体と同様に、ラクダ科の動物の抗体のアミノ酸配列を組換えで変更してヒト配列により緊密に類似する配列を得ることができ、すなわち、ナノボディを「ヒト化」することができる。したがって、ヒトに対するラクダ科の動物の抗体の天然の低い抗原性は、さらに低減させることができる。ラクダ科の動物のナノボディは、ヒトIgG分子のそれの概ね1/10の分子量を有し、このタンパク質はわずか数ナノメートルの物理的直径を有する。小さいサイズの1つの結果は、より大きな抗体タンパク質に機能的に不可視である抗原性部位に結合するラクダ科の動物のナノボディの能力であり、すなわち、ラクダ科の動物のナノボディは、さもなければ古典的な免疫学的技術を用いると潜在性である抗原を検出する試薬として、および可能性がある治療剤として有益である。したがって、小さいサイズのさらに別の結果は、ラクダ科の動物のナノボディが、標的タンパク質の溝または狭い裂け目の中の特異的部位に結合する結果として阻害することができ、したがって、古典的な抗体のそれより古典的な低分子量薬物の機能により緊密に類似する能力で役目を果たすことができるということである。低分子量およびコンパクトなサイズは、極めて耐熱性で、極端なpHおよびタンパク分解に安定であり、抗原性に劣るラクダ科の動物のナノボディをさらにもたらす。別の結果は、ラクダ科の動物のナノボディが循環系から組織に容易に移動し、さらに脳血液関門を通過して、神経組織に影響する障害を処置することができるということである。ナノボディは脳血液関門を越える薬物輸送をさらに促進することができる(米国特許出願公開第2004/0161738号を参照)。ヒトへの低い抗原性と組み合わさったこれらの特徴は、大きな治療的潜在能力を示す。さらに、これらの分子は大腸菌(E. coli)などの原核細胞で完全に発現させることができ、バクテリオファージとの融合タンパク質として発現され、機能的である。したがって、本発明の特徴は、例えば国際公開第94/04678号に記載されるように、本発明のヒト抗体の重鎖または軽鎖のCDR配列をナノボディまたは単一ドメイン抗体フレームワーク配列に移植することによって得られる、ラクダ科の動物の抗体である。
公知の非免疫グロブリンフレームワークまたは足場には、アドネクチン(フィブロネクチン)(Compound Therapeutics,Inc.、Waltham、MA)、アンキリン(Molecular Partners AG、Zurich、Switzerland)、ドメイン抗体(Domantis,Ltd(Cambridge、MA)およびAblynx nv(Zwijnaarde、Belgium))、リポカリン(アンチカリン)(Pieris Proteolab AG、Freising、Germany)、小モジュール式の免疫医薬(Trubion Pharmaceuticals Inc.、Seattle、WA)、マキシボディ(Avidia,Inc.(Mountain View、CA))、プロテインA(Affibody AG、Sweden)およびアフィリン(ガンマ−クリスタリンまたはユビキチン)(Scil Proteins GmbH、Halle、Germany)、タンパク質エピトープ模倣体(Polyphor Ltd、Allschwil、Switzerland)が限定されずに含まれる。
フィブロネクチン足場は、好ましくはフィブロネクチンタイプIIIドメイン(例えば、フィブロネクチンタイプIIIの第10モジュール(10Fn3ドメイン))に基づく。フィブロネクチンタイプIIIドメインは、それ自身互いに対してパックされてタンパク質のコアを形成し、β鎖を互いと接続して、溶媒に曝露されるループ(CDRに類似している)をさらに含有している、2つのβシートの間に分配される7つまたは8つのβ鎖を有する。ベータシートサンドイッチの各エッジに少なくとも3つのそのようなループがあり、そこでは、エッジはベータ鎖の方向に直角であるタンパク質の境界である(米国特許第6,818,418号)。これらのフィブロネクチンをベースとした足場は免疫グロブリンでないが、全体の折重なりは、ラクダおよびラマのIgGでの全体の抗原認識単位を含む最も小さな機能的抗体断片、重鎖の可変領域のそれに緊密に関係する。この構造のため、非免疫グロブリン抗体は、性質および親和性が抗体のそれらに類似する抗原結合特性を模倣する。これらの足場は、in vivoでの抗体の親和性成熟の過程に類似する、in vitroでのループランダム化およびシャフリング戦略で使用することができる。これらのフィブロネクチンをベースとした分子は足場として使用することができ、そこでは、標準のクローニング技術を使用して分子のループ領域を本発明のCDRで置き換えることができる。
本発明の工学操作抗体には、例えば抗体の特性を改善するために、VHおよび/またはVLの中のフレームワーク残基に改変が加えられたものが含まれる。一般的に、そのようなフレームワーク改変は、抗体の免疫原性を減少させるために加えられる。例えば、1つのアプローチは、1つまたは複数のフレームワーク残基を対応する生殖細胞系配列に「復帰突然変異」させることである。より具体的には、体細胞突然変異を経た抗体は、その抗体が由来する生殖細胞系配列と異なるフレームワーク残基を含有することができる。抗体のフレームワーク配列を抗体が由来する生殖細胞系配列と比較することによって、そのような残基を同定することができる。それらの生殖細胞系構成にフレームワーク領域配列を戻すために、体細胞突然変異を、例えば部位特異的突然変異誘発またはPCR媒介突然変異誘発によって生殖細胞系配列に「復帰突然変異」させることができる。そのような「復帰突然変異」した抗体も、本発明に包含されるものである。フレームワーク改変の別のタイプは、T細胞エピトープを除去し、それによって抗体の潜在的な免疫原性を低減するために、フレームワーク領域の中で、または1つもしくは複数のCDR領域の中でさえも1つまたは複数の残基を突然変異させることを含む。このアプローチは「脱免疫化」とも呼ばれ、米国特許出願公開第2003/0153043号にさらに詳細に記載されている。フレームワークまたはCDR領域に加えられる改変に加えて、またはその代替で、抗体の1つまたは複数の機能的特性、例えば血清中半減期、補体結合、Fc受容体結合および/または抗原依存性細胞傷害活性を一般的に変化させるために、本発明の抗体は、Fc領域中の改変を含むように工学操作することができる。さらに、同じく抗体の1つまたは複数の機能的特性を変化させるために、本発明の抗体は、化学的に改変する(例えば、1つまたは複数の化学部分を抗体に付着することができる)か、またはそのグリコシル化を変化させるように改変することができる。一実施形態では、CH1のヒンジ領域は、ヒンジ領域のシステイン残基の数が変化するように、例えば増加または減少するように改変される。このアプローチは、米国特許第5,677,425号においてさらに記載される。CH1のヒンジ領域のシステイン残基の数は、例えば軽鎖および重鎖のアセンブリーを促進するか、または抗体の安定性を増減するために変更される。別の実施形態では、抗体は、その生物学的半減期を増加させるために改変される。様々なアプローチが可能である。例えば、米国特許第6,277,375号に記載されているように、以下の突然変異の1つまたは複数を導入することができる:T252L、T254S、T256F。あるいは、生物学的半減期を増加させるために、米国特許第5,869,046号および米国特許第6,121,022号に記載の通り、IgGのFc領域のCH2ドメインの2つのループからとられるサルベージ受容体結合性エピトープを含有するように、抗体をCH1またはCL領域の中で変化させることができる。さらに他の実施形態では、抗体のエフェクター機能を変化させるために、少なくとも1つのアミノ酸残基を異なるアミノ酸残基で置き換えることによって、Fc領域を変化させる。例えば、抗体がエフェクターリガンドに対して変化した親和性を有するが、親抗体の抗原結合能力を保持するように、1つまたは複数のアミノ酸を異なるアミノ酸残基で置き換えることができる。それに対する親和性が変化させられるエフェクターリガンドは、例えば、Fc受容体または補体のC1成分であってもよい。このアプローチは、両方ともWinterらによる、米国特許第5,624,821号および米国特許第5,648,260号にさらに詳細に記載される。特に、残基234および235を突然変異させることができる。特に、これらの突然変異は、アラニンへのものであってよい。したがって、一実施形態では、本発明の抗体は、Fc領域中のアミノ酸234および235の一方または両方の突然変異を有する。別の実施形態では、アミノ酸234および235の一方または両方をアラニンに置換することができる。アラニンへのアミノ酸234および235の両方の置換は、低下したADCC活性をもたらす。さらに別の実施形態では、1つまたは複数のアミノ酸を改変することによって抗体依存性細胞傷害(ADCC)を媒介する抗体の能力を増加させるために、および/またはFcγ受容体への抗体の親和性を増加させるために、Fc領域を改変する。このアプローチは、国際公開第00/42072号においてさらに記載される。さらに、FcγRl、FcγRII、FcγRIIIおよびFcRnに関するヒトIgG1の上の結合部位がマッピングされ、向上した結合を有する変異体が記載された(Shields, R.L. et al., 2001 J. Biol. Chen. 276:6591-6604を参照)。さらに別の実施形態では、抗体のグリコシル化が改変される。例えば、無グリコシル化抗体を作製することができる(すなわち、抗体はグリコシル化を欠く)。例えば抗原への抗体の親和性を増加させるために、グリコシル化を変化させることができる。そのような炭水化物改変は、例えば、抗体配列内のグリコシル化の1つまたは複数の部位を変化させることによって達成することができる。例えば、1つまたは複数の可変領域フレームワークグリコシル化部位の消去をもたらし、それによってその部位のグリコシル化を消去する、1つまたは複数のアミノ酸置換を加えることができる。そのような無グリコシル化は、抗原への抗体の親和性を増加させることができる。そのようなアプローチは、Coらによる米国特許第5,714,350号および第6,350,861号にさらに詳細に記載される。さらに、または代わりに、変化したタイプのグリコシル化を有する抗体、例えば低減された量のフコシル残基を有する低フコシル化抗体、または増加した二分GlcNac構造を有する抗体を作製することができる。そのような変化したグリコシル化パターンは、抗体のADCC能力を増加させることが実証されている。そのような炭水化物改変は、例えば変化したグリコシル化機構を有する宿主細胞で抗体を発現させることによって達成することができる。変化したグリコシル化機構を有する細胞は当技術分野で記載されており、本発明の組換え抗体を発現させ、それによって変化したグリコシル化を有する抗体を生成するための宿主細胞として使用することができる。例えば、Hangらによる欧州特許第1,176,195号は、そのような細胞系で発現される抗体が低フコシル化を示すように、機能的に破壊された、フコシル転移酵素をコードするFUT8遺伝子を有する細胞系を記載する。したがって、一実施形態では、本発明の抗体は低フコシル化パターンを示す細胞系、例えばフコシル基転移酵素をコードするFUT8遺伝子の欠損発現を有する哺乳動物細胞系での組換え発現によって生成される。国際公開第03/035835号は、フコースをAsn(297)連結炭水化物に付着させる能力が低下し、その宿主細胞で発現される抗体の低フコシル化をももたらす変異体CHO細胞系、Lecl3細胞を記載する(Shields, R.L. et al., 2002 J. Biol. Chem. 277:26733-26740も参照する)。国際公開第99/54342号は、工学操作された細胞系で発現される抗体が、抗体のADCC活性の増加をもたらす二分化GlcNac構造の増加を示すように、糖タンパク質改変グリコシルトランスフェラーゼ(例えば、ベータ(1,4)−Nアセチルグルコサミン転移酵素III(GnTIII))を発現するように工学操作された細胞系を記載する(Umana et al., 1999 Nat. Biotech. 17:176-180も参照する)。あるいは、本発明の抗体は、哺乳動物様グリコシル化パターンのために操作され、グリコシル化パターンとしてフコースを欠く抗体を生成することが可能である、酵母または糸状菌で生成することができる(例えば、欧州特許第1297172号明細書を参照)。
用語「核酸」または「ポリヌクレオチド」は、一本鎖または二本鎖の形のデオキシリボ核酸(DNA)またはリボ核酸(RNA)およびそのポリマーを指す。特に限定されない限り、この用語は、参照核酸に類似した結合特性を有し、天然に存在するヌクレオチドに類似の方法で代謝される、天然ヌクレオチドの公知の類似体を含有する核酸を包含する。具体的には、変性コドン置換は、1つまたは複数の選択される(または全ての)コドンの第3位が混合基および/またはデオキシイノシン残基で置換される配列を生成することによって達成することができる(Batzer et al., Nucleic Acid Res. 19:5081 (1991);Ohtsuka et al., J. Biol. Chem. 260:2605-2608 (1985);およびRossolini et al., Mol. Cell. Probes 8:91-98 (1994))。本発明の別の態様は、本発明の抗体をコードする核酸分子に関する。完全長軽鎖ヌクレオチド配列の例は、配列番号20、40、60、80、100または120に示す。完全長重鎖ヌクレオチド配列の例は、配列番号10、30、50、70、90または110に示す。核酸は、完全細胞、細胞溶解物に存在することができるか、または部分的に精製されたか実質的に純粋な形の核酸であってもよい。アルカリ/SDS処理、CsClバンディング、カラムクロマトグラフィー、アガロースゲル電気泳動および当技術分野で周知である他を含む標準の技術によって、他の細胞構成成分または他の汚染物質、例えば他の細胞性核酸またはタンパク質から精製されるとき、核酸は「単離される」または「実質的に純粋にされる」。F. Ausubel, et al., ed. 1987 Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing and Wiley Interscience, New Yorkを参照。本発明の核酸は、例えばDNAまたはRNAであってもよく、イントロン配列を含有しても含有しなくてもよい。一実施形態では、核酸はcDNA分子である。核酸は、ファージディスプレイベクターまたは組換えプラスミドベクターなどのベクターに存在してもよい。本発明の核酸は、標準の分子生物学技術を用いて得ることができる。ハイブリドーマ(例えば、さらに下で記載されるヒト免疫グロブリン遺伝子を運ぶトランスジェニックマウスから調製されるハイブリドーマ)によって発現される抗体については、ハイブリドーマによって作製される抗体の軽鎖および重鎖をコードするcDNAは、標準のPCR増幅またはcDNAクローニング技術によって得ることができる。免疫グロブリン遺伝子ライブラリーから(例えば、ファージディスプレイ技術を使用して)得られる抗体については、抗体をコードする核酸は、ライブラリーのメンバーである様々なファージクローンから回収することができる。1つまたは複数の欠失、付加または置換を含む変異核酸配列も、本発明の範囲内に含まれる。一実施形態では、本発明は、配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118または120の1つまたは複数を含む。遺伝子コードの同義性のために、アミノ酸は、1つより多いコドンによってコードすることができる。したがって、翻訳されるアミノ酸配列が同じままで、ヌクレオチド配列を修正することが可能である。
モノクローナル抗体(mAb)は、従来のモノクローナル抗体方法論、例えばKohler and Milstein (1975 Nature 256: 495)の標準体細胞ハイブリダイゼーション技術を含む、様々な技術によって生成することができる。モノクローナル抗体を生成するための多くの技術、例えばBリンパ球のウイルス性または腫瘍形成性の形質転換を用いることができる。ハイブリドーマを調製するための動物系は、マウス系である。マウスにおけるハイブリドーマ生成は、確立された手順である。融合のための免疫化脾細胞の単離のための免疫化プロトコールおよび技術は、当技術分野で公知である。融合パートナー(例えば、マウス骨髄腫細胞)および融合手順も公知である。
本発明のヒトモノクローナル抗体を生成するハイブリドーマを生成するために、免疫化されたマウスから脾細胞および/またはリンパ節細胞を単離して、マウス骨髄腫細胞系などの適当な不死化細胞系に融合することができる。結果として生じるハイブリドーマは、抗原特異的抗体の生成についてスクリーニングすることができる。例えば、免疫化されたマウスからの脾臓リンパ球の単一細胞懸濁液を、50%PEGでP3X63−Ag8.653非分泌性マウス骨髄腫細胞(ATCC、CRL 1580)の数の1/6に融合することができる。平底マイクロタイタープレートに細胞を概ね2×145で平板培養し、続いて、20%胎児クローン血清、18%「653」馴化培地、5%オリゲン(IGEN)、4mMのL−グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、5mMのHEPES、0:055mMの2−メルカプトエタノール、50単位/mlのペニシリン、50mg/mlのストレプトマイシン、50mg/mlのゲンタマイシン、および1×HAT(Sigma;HATは、融合の24時間後に加えられる)を含有する選択培地に2週間インキュベートする。概ね2週後、HATがHTで置き換えられた培地で細胞を培養することができる。次に、ヒトモノクローナルIgMおよびIgG抗体について個々のウェルをELISAでスクリーニングすることができる。広範なハイブリドーマ増殖が起こると、通常10〜14日後に培地を観察することができる。抗体分泌ハイブリドーマを再び平板培養し、再びスクリーニングし、ヒトIgGに関してなお陽性であるならば、限界希釈によってモノクローナル抗体を少なくとも2回サブクローニングすることができる。次に特徴付けのために組織培養培地で少量の抗体を生成するために、安定したサブクローンをin vitroで培養することができる。ヒトモノクローナル抗体を精製するために、モノクローナル抗体精製のための2リットルのスピナーフラスコにおいて選択されたハイブリドーマを増殖させることができる。上清を濾過、濃縮してから、プロテインA−セファロース(Pharmacia)で親和性クロマトグラフィーを行うことができる。純度を確認するために、溶出したIgGをゲル電気泳動および高速液体クロマトグラフィーによって検査することができる。緩衝溶液をPBSに交換して、1.43の吸光係数を使用してOD280によって濃度を測定することができる。モノクローナル抗体を小分けして、−80℃で保存することができる。
本発明の抗体は、例えば当技術分野で周知である(例えば、Morrison, S. (1985) Science 229:1202)組換えDNA技術および遺伝子トランスフェクション方法の組合せを使用して、宿主細胞トランスフェクトーマで生成することもできる。例えば、抗体またはその抗体断片を発現させるには、標準の分子生物学技術(例えば、目的の抗体を発現するハイブリドーマを使用するPCR増幅またはcDNAクローニング)によって、部分的または完全長の軽鎖および重鎖をコードするDNAを得ることができ、遺伝子が転写および翻訳制御配列に作動可能に連結されるように、このDNAを発現ベクターに挿入することができる。この関係で、用語「作動可能に連結する」は、ベクターの中の転写および翻訳制御配列が抗体遺伝子の転写および翻訳を調節するそれらの意図された機能を果たすように、抗体遺伝子がベクターの中にライゲーションされることを意味するものである。発現ベクターおよび発現制御配列は、使用する発現宿主細胞に適合するように選択される。抗体軽鎖遺伝子および抗体重鎖遺伝子を別々のベクターに挿入することができるか、より一般的には、両方の遺伝子は同じ発現ベクターに挿入される。抗体遺伝子は、標準の方法によって発現ベクターに挿入される(例えば、抗体遺伝子断片の上の相補的制限部位およびベクターのライゲーション、または制限部位が存在しない場合は平滑末端ライゲーション)。本明細書に記載される抗体の軽鎖および重鎖可変領域は、VHセグメントがベクター中のCHセグメントに作動可能に連結され、VLセグメントがベクター中のCLセグメントに作動可能に連結されるように、所望のアイソタイプの重鎖定常領域および軽鎖定常領域を既にコードしている発現ベクターにそれらを挿入することによって、任意の抗体アイソタイプの完全長抗体遺伝子を作製するために使用することができる。さらに、または代わりに、組換え発現ベクターは、宿主細胞からの抗体鎖の分泌を促進するシグナルペプチドをコードすることができる。シグナルペプチドが抗体鎖遺伝子のアミノ末端にインフレームで連結されるように、抗体鎖遺伝子をベクターにクローニングすることができる。シグナルペプチドは、免疫グロブリンシグナルペプチドであってもよく、または異種シグナルペプチド(すなわち、免疫グロブリン以外のタンパク質からのシグナルペプチド)であってもよい。抗体鎖遺伝子に加えて、本発明の組換え発現ベクターは、宿主細胞で抗体鎖遺伝子の発現を制御する調節配列を運ぶ。用語「調節配列」は、抗体鎖遺伝子の転写または翻訳を制御するプロモーター、エンハンサーおよび他の発現制御エレメント(例えば、ポリアデニル化シグナル)を含むものである。そのような調節配列は、例えば、Goeddel(Gene Expression Technology. Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, CA 1990)に記載されている。調節配列の選択を含む発現ベクターの設計は、形質転換する宿主細胞の選択、所望のタンパク質の発現レベル等の因子によって決めることができることは、当業者に理解される。哺乳動物宿主細胞での発現のための調節配列には、哺乳動物細胞での高レベルのタンパク質発現を誘導するウイルスエレメント、例えばサイトメガロウイルス(CMV)、シミアンウイルス40(SV40)、アデノウイルス(例えば、アデノウイルス主後期プロモーター(AdMLP))およびポリオーマに由来するプロモーターおよび/またはエンハンサーが含まれる。あるいは、ユビキチンプロモーターまたはP−グロビンプロモーターなどの、非ウイルス調節配列を使用することができる。さらに、調節エレメントは、SV40初期プロモーターからの配列および1型ヒトT細胞白血病ウイルスの長い末端反復配列を含有するSRaプロモーター系などの、異なる供給源からの配列で構成された(Takebe, Y. et al., 1988 Mol. Cell. Biol. 8:466-472)。抗体鎖遺伝子および調節配列に加えて、本発明の組換え発現ベクターは、宿主細胞でのベクターの複製を調節する配列(例えば、複製開始点)および選択マーカー遺伝子などの、追加の配列を運ぶことができる。選択マーカー遺伝子は、ベクターが導入された宿主細胞の選択を容易にする(例えば、米国特許第4,399,216号、第4,634,665号および第5,179,017号を参照)。例えば、一般的に、選択マーカー遺伝子は、ベクターが導入された宿主細胞に、G418、ハイグロマイシンまたはメトトレキセートなどの薬物への耐性を付与する。選択マーカー遺伝子には、ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)遺伝子(dhfr−宿主細胞でメトトレキセート選択/増幅で使用するため)およびネオ遺伝子(G418選択のため)が含まれる。したがって、別の実施形態では、本発明は、少なくとも1つのCDR領域をコードする、配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118もしくは120、またはその断片の1つまたは複数を含む、上記のクローニングまたは発現ベクターに関する。軽鎖および重鎖の発現のために、重鎖および軽鎖をコードする発現ベクターが、標準の技術によって宿主細胞にトランスフェクトされる。用語「トランスフェクション」の様々な形態は、原核生物または真核生物の宿主細胞への外因性DNAの導入のために一般的に使用される各種の技術、例えば、エレクトロポレーション、リン酸カルシウム沈殿、DEAE−デキストラントランスフェクションなどを包含するものである。原核生物または真核生物の宿主細胞で本発明の抗体を発現させることは、理論的に可能である。真核生物の細胞、特に哺乳動物の宿主細胞での抗体の発現が議論されるが、その理由は、そのような真核生物の細胞、特に哺乳動物細胞は、適切に折り畳まれて免疫学的に活性な抗体を組み立て、分泌する可能性が原核細胞より高いからである。原核生物による抗体遺伝子の発現は、活性抗体の高収率生成のために有効でないことが報告されている(Boss, M. A. and Wood, C. R., 1985 Immunology Today 6:12-13)。本発明の組換え抗体を発現させるための哺乳動物宿主細胞には、チャイニーズハムスター卵巣(CHO細胞)(DH FR選択マーカー、例えばR.J. Kaufman and P.A. Sharp, 1982 Mol. Biol. 159:601-621に記載されているものと一緒に使用された、Urlaub and Chasin, 1980 Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:4216-4220に記載されているdhfr−CHO細胞を含む)、NSO骨髄腫細胞、COS細胞およびSP2細胞が含まれる。一実施形態では、宿主細胞は、CHO K1PD細胞である。特に、NSO骨髄腫細胞での使用のために、別の発現システムは、国際公開第87/04462号、国際公開第89/01036号および欧州特許第338,841号に示されるGS遺伝子発現システムである。一実施形態では、本発明の組換え抗体を発現させるための哺乳動物宿主細胞には、FUT8遺伝子発現が欠損した哺乳動物細胞系、例えば米国特許第6,946,292号に記載のものが含まれる。したがって、一態様では、本発明は、上記のまたは本明細書に開示されるベクターの1つまたは複数を含む宿主細胞を提供する。
別の態様では、本発明は、本開示のTGFβ−2抗体またはその機能的断片を含有する組成物、例えば医薬組成物を提供する。一実施形態では、組成物は、薬学的に許容される担体と一緒に製剤化される。本発明の医薬組成物は、併用療法で投与すること、すなわち他の薬剤と組み合わせることもできる。例えば、TGFβ−2抗体またはその機能的断片は、少なくとも1つの筋肉質量/力増強剤、例えばIGF−1もしくはIGF−1の変異体、抗ミオスタチン抗体、抗アクチビン抗体、ミオスタチンプロペプチド、ActRIIBに結合するがそれを活性化しないミオスタチンデコイタンパク質、ActRIIBデコイ受容体、β2アゴニスト、グレリンアゴニスト、SARM、GHアゴニスト/模倣体またはフォリスタチンと組み合わせることができる。本発明のTGFβ−2抗体またはその機能的断片による処置は、コルチコステロイド、免疫抑制剤、抗サイトカイン剤、抗がん薬;増殖因子、例えばエリスロポイエチン、G−CSF、GM−CSFまたは他;糖尿病の処置のために使用される薬物(インスリンおよび経口血糖降下剤を含む)、抗結核薬および抗生物質と組み合わせることができる。組合せは、小分子および生体分子の薬剤を含むことができる。
提案された処置から恩恵を受けることができる患者には、集中治療または長期入院(1週を超える)を必要とする急性または重大な病気から回復している患者;サルコペニアを有する虚弱な高齢患者;重度の外傷、例えば自動車事故、重度のやけど、戦闘負傷および他の外傷性損傷から回復している若年成人;上記のような、悪液質を引き起こすことが知られている慢性疾患を有する患者;ならびに、上記のような筋肉疾患を有する患者が含まれる。筋肉の損耗は、重度または長期にわたるほとんどの病気に一般的な合併症であるので、筋肉消耗からの復帰が、この損耗の根源に関係なく筋肉損耗を経験する患者の機能の回復および復活を速くすることが予期される。さらに、病的状態、例えば、デュピュイトラン病(手のひらと指の間で強い線維組織を形成し、微細な動作能力を恒久的に阻害する、細胞外マトリックス(ECM)タンパク質の過剰な生成によって特徴付けられる、手の良性線維増殖性疾患)線維形成、瘢痕化、がん、特定の状態、例えば、マルファン関連の状態、表皮水疱症、特に栄養障害型表皮水疱症または接合部表皮水疱症、線維柱帯切除術および皮膚の全身性硬化症を有する患者は、提案された処置の恩恵を受けることができる。
本発明の抗体は、治療的有用性を有する。例えば、これらの分子は、対象に投与することができ、疾患の処置、予防で、および疾患症状の開始を遅延させるために使用することができる。本発明は、療法において使用するための、または医薬としての、本発明のポリペプチド、核酸または医薬組成物を提供する。本発明は、病的障害の処置で使用するための、本発明のポリペプチド、核酸または医薬組成物をさらに提供する。本発明は、病的障害の処置のための医薬の製造における、本発明のポリペプチド、核酸または医薬組成物の使用をさらに提供する。本発明は、病的障害を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に本発明のポリペプチド、核酸または医薬組成物の治療的有効量を投与することを含む方法をさらに提供する。本明細書で用いるように、用語「対象」は、哺乳動物、例えば霊長類、好ましくはより高等な霊長類、例えばヒト(例えば、本明細書に記載される障害を有するまたはその危険がある患者)であってよい。一実施形態では、対象は、ヒト対象、例えば、異常なTGFβ−2機能によって特徴付けられる障害または状態を有するヒト患者である。本発明は、病的障害を患っている患者を処置する方法であって、本開示のTGFβ−2抗体またはその機能的断片の治療的有効量を投与することを含む方法を提供する。したがって、本発明は、病的障害を患っている患者を処置する方法であって、抗体MOR14799、MOR14800、MOR14809、MOR14797、MOR14805またはMOR14787の治療的有効量を投与することを含む方法を提供する。本発明は、療法において使用するための、本開示のTGFβ−2抗体またはその機能的断片も提供する。したがって、本発明は、療法において使用するための、抗体MOR14799、MOR14800、MOR14809、MOR14797、MOR14805またはMOR14787を提供する。本明細書で用いるように、「病的障害」には、限定されずに、筋骨格疾患または障害、筋萎縮症、筋ジストロフィー、デュピュイトラン病、サルコペニア、外傷性損傷、悪液質を引き起こすことが知られている慢性疾患(例えば、がん)、病的状態、例えば線維症、マルファン関連の状態、表皮水疱症、特に栄養障害型表皮水疱症または接合部表皮水疱症、線維柱帯切除術、ロイス−ディーツ症候群、皮膚全身性硬化症、過剰増殖性障害、例えば、レダーホース病、ペイロニ病、指関節背結節症、五十肩、手の背の線維腫症、手根管圧迫症候群、結節性筋膜炎、攻撃的な線維腫症、振戦、白蝋病、ムービングフィンガー、足底線維腫症およびギャロッドパッドは提案された治療の恩恵を受けることができる、変性および線維性疾患、例えば、強皮症、肥大性瘢痕化およびケロイド、特発性肺線維症、心臓線維症(線維性心筋炎も)、肝臓線維症(例えば、NASH)、肺線維症、腎臓線維症(例えば、アルポート)、嚢胞性線維症、全身性硬化症、原発性骨髄線維症、アテローム硬化症、緑内障、加齢性黄斑変性症、糖尿病性網膜症およびフックスジストロフィーが含まれる。表皮水疱症は表皮水疱症の任意の形態を指すが、特に栄養障害型表皮水疱症および接合部表皮水疱症を指す。
50.それを必要とする対象に、
(a)配列番号7の可変重鎖配列および配列番号17の可変軽鎖配列;
(b)配列番号27の可変重鎖配列および配列番号37の可変軽鎖配列;
(c)配列番号47の可変重鎖配列および配列番号57の可変軽鎖配列;
(d)配列番号67の可変重鎖配列および配列番号77の可変軽鎖配列;
(e)配列番号87の可変重鎖配列および配列番号97の可変軽鎖配列;または
(f)配列番号107の可変重鎖配列および配列番号117の可変軽鎖配列を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体、
ならびに、がんを処置するのに有効な量のヒトプログラム死−1(PD−1)タンパク質に結合することが可能な抗体分子を投与することを含み、抗体分子は、配列番号153のVHCDR1アミノ酸配列、配列番号154のVHCDR2アミノ酸配列および配列番号155のVHCDR3アミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH);および、配列番号163のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号164のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号165のVLCDR3アミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)を含む、がんを処置する方法。
一実施形態では、PD−1阻害剤は、抗PD−1抗体分子である。一実施形態では、PD−1阻害剤は、参照により完全に組み込まれている、2015年7月30日に公開された「Antibody Molecules to PD−1 and Uses Thereof」という表題の米国特許出願公開第2015/0210769号に記載される抗PD−1抗体分子である。
一実施形態では、抗PD−1抗体分子は、ニボルマブ(Bristol−Myers Squibb)、別名MDX−1106、MDX−1106−04、ONO−4538、BMS−936558またはOPDIVO(登録商標)である。ニボルマブ(クローン5C4)および他の抗PD−1抗体は、参照により完全に組み込まれる、米国特許第8,008,449号および国際出願2006/121168に開示される。一実施形態では、抗PD−1抗体分子は、配列表に開示されるニボルマブのCDR配列の1つもしくは複数(または、一括してCDR配列の全て)、重鎖もしくは軽鎖可変領域配列、または重鎖もしくは軽鎖配列を含む。
本発明の抗体が別の活性薬剤と併用投与される場合、共投与される組合せ化合物の投薬量は、用いられる共薬物のタイプ、用いられる特定薬物、処置される状態などによって当然ながら異なる。本発明のヒト抗体を含む組成物および使用説明書からなるキットも、本発明の範囲内である。キットは、少なくとも1つのさらなる試薬、または本発明の1つまたは複数のさらなる抗体をさらに含有することができる。キットは、キットの内容物の使用目的を示す表示を一般的に含む。用語表示は、キットの上にまたはそれと一緒に提供される、さもなければキットに付随する任意の書面、または記録資料を含む。キットは、患者が抗TGFβ−2抗体処置に応答する群に属するかどうかについて診断するためのツールをさらに含むことができる。そのようなキットは、凍結乾燥形の本発明の抗体、希釈剤および使用説明書を含むことができる。本発明を完全に記載したが、本発明は以下の実施例および請求項によってさらに説明され、それらは例示的であり、さらに制限するものではない。
HuCAL PLATINUM(登録商標)パニング
ファージミドライブラリーは、HuCAL(登録商標)概念(Knappik et al., J Mol Biol 296, 57-86. 2000)に基づき、ファージ表面でFabを提示するためにCysDisplay(商標)技術を用いる(国際公開第01/05950号)。
ビーズベースのパニングの前に、抗原をカルボキシビーズ(Dynabeads(登録商標)M−270カルボン酸、Invitrogen)に固定化しなければならなかった。ファージプールにつき、1×107個の抗原コートビーズを、等量のPBS/0.1%Tween20/5%ミルク粉末でブロックした。並行して、各パニングのために、HuCAL PLATINUM(登録商標)ファージ−抗体を、等量のPBS/0.05%Tween20/5%ミルク粉末/5%BSAでブロックした。ビーズ結合性ファージの除去のために、各々0.5〜1.0×107個のBSAコートビーズを使用して、ブロックされたファージ粒子の前吸着を2回実行した。次に、ブロックされた抗原コートビーズを前吸着およびブロックされたファージ粒子に加え、ローテータの上でRT(室温)において1〜2時間インキュベートした。抗原コートビーズに結合したファージ粒子を、磁気分離器で採集した。PBS/0.05%Tween20およびPBSを使用したいくつかの洗浄ステップによって、非特異的に結合したファージを洗い落とし、特異的に結合したファージは、DDTを使用して抗原コートビーズから溶出させた。DTT溶出液は次に大腸菌(E. coli)TG1に移し、ファージ感染のために37℃の水浴で45分間インキュベートした。細菌ペレットを2xYT培地に再懸濁させ、LB/Cam寒天プレートの上で平板培養し、o/nでインキュベートした。コロニーをプレートから削り取り、ファージ奪還、選択されたクローンのポリクローナル増幅およびファージ生成のために使用した。精製されたファージで、次の回のパニングを開始した。第2および第3回のビーズベースのパニングは、よりストリンジェントな洗浄条件が適用されたこと以外は、1回目のプロトコールに従って実行した。
溶液パニングの必要条件は、抗原のビオチン化およびビオチン化抗原の保持された活性の確認であった。溶液パニングの間、Fab提示ファージおよびビオチン化抗原は、ファージによる抗原のアクセス性を促進した溶液にインキュベートした。
ファージプールにつき、4mgのストレプトアビジンビーズ(Dynabeads(登録商標)M−280ストレプトアビジン、Invitrogen)を、1×Chemiblocker中でブロックした。並行して、各パニングのために、HuCAL PLATINUM(登録商標)ファージ−抗体を、Chemiblocker/0.1%Tween20でブロックした。その後、ストレプトアビジンまたはビーズ結合性ファージの除去のために、各々ストレプトアビジンビーズを使用して、ブロックされたファージ粒子の前吸着を2回実行した。次に、100nMのビオチン化抗原TGF−β2を前吸着およびブロックされたファージ粒子に加え、ローテータの上で室温において1〜2時間インキュベートした。ファージ−抗原複合体は2mgのブロックされたストレプトアビジンビーズを使用して捕捉し、ストレプトアビジンビーズに結合したファージ粒子は磁気分離器で採取した。PBS/0.05%Tween20およびPBSを使用したいくつかの洗浄ステップによって、非特異的に結合したファージを洗い落とした。特異的に結合したファージは、DDTを使用してストレプトアビジンビーズから溶出させた。DTT溶出液は次に大腸菌(E. coli)TG1に移し、TG1およびDTT溶出液の混合液をファージ感染のためにインキュベートした。細菌ペレットを2xYT培地に再懸濁させ、LB/Cam寒天プレートの上で平板培養し、o/nでインキュベートした。コロニーをプレートから削り取り、ファージ奪還、選択されたクローンのポリクローナル増幅およびファージ生成のために使用した。精製されたファージで、次の回のパニングを開始した。第2および第3回の溶液パニングは、低減された抗原の量およびよりストリンジェントな洗浄条件以外は、1回目のプロトコールに従って実行した。
増加した親和性を有する特異的抗体を得るために、RapMAT(登録商標)パニングを実行した(Prassler et al., Immunotherapy 1, 571-583. 2009)。この目的のために、2回のビーズベースのまたは溶液パニングを上記の抗原TGF−β2で実行した。
a)LCDR3 RapMAT(登録商標)のために:第2回のパニングの後、ファージ由来のpMORPH30(登録商標)ベクターDNAのFabコード断片を酵素的に消化し、TRIM(商標)LCDR3成熟カセットを酵素的ライゲーション(Virnekas et al., 1994)によって挿入し、LCDR3を多様化した。
b)HCDR2 RapMAT(登録商標)のために:第2回のパニングの後、ファージ由来のpMORPH(登録商標)30ベクターDNAのFabコード断片を酵素的に消化し、TRIM(商標)HCDR2成熟カセット(Virnekas et al., Nucleic Acids Res 22, 5600-5607. 1994)を酵素的ライゲーションによって挿入し、HCDR2を多様化した。
可溶性Fabの迅速な発現を促進するために、選択されたHuCAL PLATINUM(登録商標)ファージのFabコード挿入断片を、pMORPH(登録商標)30ディスプレイベクターからpMORPH(登録商標)x11発現ベクターpMORPH(登録商標)x11_Fab_FHにサブクローニングした。大腸菌(E. coli)TG1−F’の形質転換の後、HuCAL(登録商標)−Fab断片を含有するペリプラズム抽出物の単一クローン発現および調製を、以前に記載される通りに実行した(Rauchenberger et al., J Biol Chem 278, 38194-38205. 2003)。
2xYT−CG(34μg/mlクロラムフェニコール(Cam);0.1%グルコース)培地を予充填した無菌の384ウェルマイクロタイタープレートのウェルに、クロラムフェニコール耐性単独クローンを選んで入れ、37℃でo/nで増殖させた。翌朝、グリセロールを含有する無菌の2xYT培地を、マスタープレートの各ウェルに加え、プレートをアルミ箔で密封し、−80℃で保存した。以下の2つの章は、それぞれ384および96ウェルフォーマットにおけるFab発現大腸菌(E. coli)からの溶菌液の調製を記載する。これらの発現プレートは、スクリーニングアプローチのために後に使用される。
各o/n培養の5μlを、ウェルにつき40μlの2xYT−CG培地(34μg/mlクロラムフェニコール(Cam);0.1%グルコース)を予充填した無菌の384ウェルマイクロタイタープレートに移した。培養がわずかに濁るまで、プレートを37℃でインキュベートし、CamおよびIPTGを含有する2xYT培地を各ウェルに加えた。一晩のインキュベーションの後、BEL緩衝液(2.5mg/mlリゾチーム、4mM EDTA、10U/μlベンゾナーゼ)を加え、プレートを1時間インキュベートした。
各o/n培養の5μlを、ウェルにつき100μlの2xYT−CG培地(34μg/mlのCam;0.1%グルコース)を予充填した無菌の96ウェルマイクロタイタープレートに移した。培養がわずかに濁るまで、プレートを22℃でインキュベートし、CAMおよびIPTGを含有する2xYT培地を各ウェルに加えた。翌朝、遠心分離によって細菌を遠沈させ、上清を破棄し、BEL緩衝液(2.5mg/mlリゾチーム、完全(w/o EDTA;Roche)、20U/mlベンゾナーゼ)を各ウェルに加えた。プレートを2ハンド(hand)間インキュベートし、BEL−溶菌液(BEL緩衝液を使用して生成した溶菌液)を遠心分離して細菌細胞デブリを遠沈させた。Fab含有上清は、スクリーニング目的(例えば、pSMAD3 SureFire(登録商標)アッセイ)のために使用した。
ELISAスクリーニング
ELISAスクリーニングを使用して、標的抗原ヒトTGF−β2タンパク質への結合に関するパニングアウトプットから単一のFabクローンが同定される。上記のFab含有粗大腸菌(E. coli)溶菌液を使用して、Fabを試験する。
このアプローチは、SETの前に一部のRapMAT(登録商標)パニングのスクリーニングのために使用された。Maxisorp(商標)384ウェルプレートを、PBSにそれぞれ5μg/mlまたは1μg/mlの濃度のマウスTGF−β2でコーティングした。PBS中の5%スキムミルクによるプレートのブロッキングの後、Fab含有大腸菌(E. coli)溶菌液を加えた。Attophos蛍光基質(Roche、#11681982001)を使用して、アルカリ性ホスファターゼ(Jackson Immuno Research、#109−055−097)(1:5000に希釈)にコンジュゲートしたF(ab)2特異的ヤギ抗ヒトIgGによって、Fabの結合性を検出した。535nmの蛍光発光を、430nmでの励起で記録した。
ヒトTGF−β2およびマウスTGF−β2に対する抗TGF−β2 Fab抗体の特異性ならびにラットTGF−β3、ヒトTGF−β1への交差反応性をELISAのセッティングで評価した。
・標準のパニングのFab捕捉ELISAベースのスクリーニングのための1μg/mlのビオチン化ヒトTGF−β2/ビオチン化トランスフェリン(無関係なビオチン化タンパク質でのカウンタースクリーニングのため);
・SETの前の一部のRapMAT(登録商標)パニングのFab捕捉ELISAベースのスクリーニングのための0.01μg/mlのビオチン化ヒトTGF−β2;
抗TGF−β2 Fab抗体結合ビオチン化抗原は、アルカリ性ホスファターゼ(ホスファターゼ(Invitrogen(Zymed)、#43−4322))にコンジュゲートしたストレプトアビジンとのインキュベーションと、続くAttoPhos蛍光基質(Roche、#11681982001)の添加によって検出した。535nmの蛍光発光を、430nmでの励起で記録した。
FMAT(蛍光定量的微量アッセイテクノロジー)スクリーニングを使用して、ビーズに固定化された標的抗原への結合に関するパニングアウトプットから単一のFabクローンを同定する(上記のように、カルボキシビーズの上に抗原またはBSAが固定化された)。Fab含有粗大腸菌(E. coli)溶菌液(上記のように調製された)を使用して、Fabを試験する。
親和性のランク付けは、原則として上記の通りに実行した。(Haenel et al., Anal Biochem 339, 182-184 2005)に記載される原理に基づく溶液平衡滴定による成熟結合剤のランク付けのために、一定量の希釈されたBEL抽出物(BEL緩衝液:2.5mg/mlリゾチーム、4mM EDTA、10U/μlベンゾナーゼを使用して生成された溶菌液)を、抗原の異なる濃度で一晩平衡させた。
大腸菌(E. coli)におけるHisタグ付きHuCAL(登録商標)Fab断片の微発現および微精製
0.1%グルコース、34μg/mlクロラムフェニコールおよび0.1mM IPTG(イソプロピル−β−D−チオガラクト−ピラノシド)を加えた25mlの2xYT培地を使用して、大腸菌(E. coli)TG1 F’細胞におけるpMORPH(登録商標)x11_Fab_FHによってコードされるFab断片の発現を、50mlファルコンにおいて実行した。培養は、30℃で18時間振盪させた。細胞を収集し、リゾチームおよびバグバスタータンパク質抽出試薬(Novagen、Germany)の組合せを使用して破壊した。His6タグ付きFab断片(配列番号204として開示される「His6」)を、IMAC(Qiagen、Germany)によって単離した。D−Tube96(商標)透析器(MWCO 6〜8kDa、Novagen、Germany)を使用して、1×ダルベッコのPBS(pH7.2)への緩衝液交換を実行した。紫外分光光度法によって、タンパク質濃度を測定した。代表として選択された試料の純度を、変性、還元性15%SDS−PAGEで分析した。
0.1%グルコースおよび34μg/mlクロラムフェニコールを加えた500mlの2xYT培地を使用して、大腸菌(E. coli)TG1 F’細胞におけるpMORPH(登録商標)x11_Fab_FHによってコードされるFab断片の発現を、振盪フラスコ培養において実行した。OD600が0.5の値に到達するまで、培養を30℃で振盪した。0.75mMの最終濃度でIPTG(イソプロピル−β−D−チオガラクトピラノシド)を加え、さらに30℃で20時間の培養によってFab発現を誘導した。細胞を収集し、リゾチームを使用して破壊した。His6タグ付きFab断片(配列番号204として開示される「His6」)を、IMAC(Bio−Rad、Germany)によって単離し、イミダゾールを使用して溶出した。PD10カラム(GE Healthcare、Germany)を使用して、1×ダルベッコのPBS(pH7.2)への緩衝液交換を実行した。試料を滅菌濾過した(0.2μm)。紫外分光光度法によって、タンパク質濃度を測定した。試料の純度は、変性、還元性15%SDS−PAGEで分析した。較正標準によるサイズ排除クロマトグラフィー(HP−SEC)によって、Fab調製物の均一性を自然状態で測定した。
リポーター遺伝子アッセイ(RGA)
HEK293T/17細胞系の培養
10%FBS(ウシ胎児血清)、2mM L−グルタミン、ペニシリン(50IE/ml)およびストレプトマイシン(50μg/ml)を含有するDMEM(ダルベッコの改変イーグル培地)で、HEK293T/17細胞を維持した。細胞を37℃および5%CO2のインキュベーター内で増殖させ、3〜4日おきに継代培養した。Accutase(商標)を使用して細胞を切り離し、新鮮培地を含有する新しいフラスコに次に移した。CAGA−12 lucで安定してトランスフェクトさせたHEK293T/17細胞を、親のHEK293T/17細胞のために上に記載の通りに培養したが、細胞増殖培地には、FBS、ペニシリンおよびストレプトマイシンに加えて4mMのL−グルタミンおよび3μg/mlのブラストサイジンを加えた。
TGF−β2誘導シグナル伝達および他のTGF−β1、TGF−β3、ミオスタチン、アクチビンおよびGDF−11に対する特異性を阻害する抗TGF−β2抗体の能力を測定するために、安定したリポーター細胞系HEK293T/17 CAGA−12 lucを使用したリポーター遺伝子アッセイを実行した。CAGA−12ルシフェラーゼリポーター構築物は、最小限のプロモーターの下流のルシフェラーゼ遺伝子ならびにリン酸化Smad−2およびSmad−3に特異的である複数のCAGAボックスを有する。精製された組換えTGF−β2(さらに、TGF−β3、TGF−β1、ミオスタチン、GDF−11およびアクチビン)の追加は、Smad−2およびSmad−3のリン酸化を、したがってCAGA−12リポーターへの結合性を誘導し、ルシフェラーゼ遺伝子発現につながる。HEK293T/17 CAGA−12 luc細胞の90%の集密度で、accutaseを使用して細胞を切り離し、細胞数2.5×105/mlの濃度までアッセイ培地(2%FBSおよび2mM Lグルタミンを加えたDMEM)で希釈した。その後、ウェルにつき100μlの細胞を白色平底96ウェルプレート(BD Falcon、#353296)に播種し、37℃および5%CO2で一晩インキュベートした。翌日、所望の濃度のTGF−β2抗体(FabまたはIgG)およびTGF−βタンパク質をPBS中で混合した。混合物中の抗原の最終濃度は、このアッセイにおけるそれらのそれぞれの約EC80濃度に対応し、以下の通りである:TGF−β1/2/3タンパク質−12pM(活性ダイマー)、アクチビンA、GDF−8、GDF−11−1nM(活性ダイマー)およびアクチビンΒ、アクチビンAB−100pM(活性ダイマー)。抗原および抗体は、室温で30分の間インキュベートした。アッセイ培地を細胞から除去し、播種した細胞に混合物を加えた。一晩のインキュベーションの後、アッセイ培地を除去し、70μlのPBSを(CaCl2およびMgCl2と一緒に)各ウェルに加えた。室温に適応させた後、50μlの新たに調製したBriteLite Plus試薬(PerkinElmer、#6016761)を各ウェルに加えた。5分間のインキュベーション時間の後、発光を照度計(GeniosPro、Tecan)で読み取った。それぞれの抗体の完全滴定の後、プリズムソフトウェア(GraphPad Software)を使用して最大半減抑制濃度(IC50値)を計算した。
阻害性FabがヒトTGF−βRIII/FcのTGF−β2結合部位をブロックすることにより作用するかどうかについて評価するために、TGF−β受容体−TGF−β相互作用ELISAを実行した。
これのために、Maxisorp(商標)384ウェルプレートを、2μg/ml(約22nM)のTGF−βRIII(R&D Systems、#LF1309051)により、4℃で一晩コーティングした。1.25μg/ml(約100nM)のビオチン化ヒトTGF−β2を、異なるFab/IgG濃度と30分間インキュベートし、次にChemiblockerでブロックしたコーティングされたウェルに加えた。結合したビオチン化ヒトTGF−β2は、アルカリ性ホスファターゼ(Invitrogen(Zymed)、#43−4322)にコンジュゲートしたストレプトアビジンとのインキュベーションと、続くAttoPhos蛍光基質(Roche、#11681982001)の添加によって検出した。535nmの蛍光発光を、430nmでの励起で記録した。
この機能性スクリーニングのために、特製のFab含有細菌溶菌液(BEL緩衝液)を使用して、ホスホSMAD3(Ser423/425)キット(PerkinElmer#TGRSM3S10K)およびAlphaScreen(登録商標)IgG(ProteinA)検出キット(#6760617C)のためのAlphaScreen(登録商標)SureFire(登録商標)によりHEK293T細胞におけるTGF−β誘導Smad3リン酸化を測定した。BEL溶菌液(BEL緩衝液を使用することにより生成した溶菌液)のTGF−β2/3の中和能力を測定するために、各ウェルにつきリポーター細胞系HEK293T(CAGA−12ルシフェラーゼ)からの8,000個の細胞を、アッセイ培地(2%FBSおよび2mM L−グルタミンを追加したDMEM)中のコラーゲンコートproxiplate(商標)に播種し、37℃および5%CO2で一晩培養した。その翌日、0.3ng/mlのTGF−β2または3をそれぞれ加えた、25μlのBEL溶菌液および75μlの無血清アッセイ培地を含有するマスタープレートを調製した。ペーパータオルの上でプレートを払い落とし、タブをつけること(tabbing)によって、アッセイ培地を細胞から除去した。次に、マスタープレートから15μlをHEK293T細胞に移し、37℃および5%CO2で1時間刺激した。培地を除去し、4μlの1×溶解緩衝液を各ウェルに加えた。分析まで、プレートを−80℃で保存した。分析のために、5μlの「アクセプタービーズミックス」を2時間加え、その後2μlの「ドナービーズミックス」を追加し、さらに2時間の間インキュベートした。AlphaScreenセッティングを使用して、AlphaScreenプレートリーダーでプレートを読み取った。
20%FCS(PAA)を加えた骨格筋基礎培地(skBM;Lonza)からなる増殖培地(GM)を使用して、96ウェルプレートでヒト骨格筋細胞(HsKMC;Lonza)を培養した(7500個の細胞/ウェル)。skBMからなる無血清分化培地(DM)に変更することによって、播種の24〜48時間後に分化が開始された。分化の開始時に0.3ng/mlのTGF−β2およびそれぞれのIgG1を7つの異なる濃度(最高3μg/ml)で加え、細胞を最高120時間管状筋細胞に分化させることによって、HuSKMCs分化に及ぼす効果を評価した。細胞をPBSで3回洗浄し、次にリポーター溶解緩衝液(Promega)で溶解し、測定まで−80℃で保存した。CK活性は、CK(IFCC)試薬(Thermo Electron)を使用して測定した。CK試薬は、製造業者の指示に従って調製した。室温(RT)への調整のために、測定の少なくとも90分前にアッセイプレートを−80℃のフリーザーから取り出した。75μlのCK試薬を各ウェルに加えた後に(プレート設計を参照)、アッセイプレートをELISAリーダーに直ちに移し、1分間の読取り間隔で吸光度を340nmで20分間読み取った。CK活性を計算するために、ウサギの筋肉からのCK(#10127566001;Roche Diagnostics)を使用して、リポーター溶解緩衝液で標準曲線(0.02〜40μg/ml)を新たに作成した。
表面プラズモン共鳴(Biacore)を使用した親和性測定
直接抗原固定化のために、標準のEDC−NHSアミンカップリング化学を使用した。CM5チップ(Biacore、Sweden)を、10mM酢酸緩衝液pH4.5中の適当な共鳴単位(RU)のヒト−またはマウス−TGFβ−2/Fc(抗原の活性による)でコーティングした。参照フローセルのために、HSAのそれぞれの量を使用した。5μlの10mMグリシン/HCl緩衝液pH1.5で、再生を実行した。あるいは、抗原を直接的に固定化せずに、抗ヒトFc抗体で改変した(Fc捕捉キット、GE Healthcare/Biacore)CM5チップの上に捕捉した。参照フローセルの上では、捕捉抗体は固定化されたが、抗原は捕捉されなかった。再生は、5μLの3M MgCl2の2回の注射を使用して達成された。動態測定は、Fab試料の段階希釈列を使用して、ダルベッコのPBSにおいて20μl/分の流量で実行した。Fab濃度は、15.6から500nMの範囲内だった。各濃度の注射時間は、1分であった。解離時間は、少なくとも2分(または、測定された親和性によってそれより長く)に設定した。二重参照のために、ランニングバッファーのブランク注射を使用した。BIA評価ソフトウェア3.2(Biacore、Sweden)を使用して、全てのセンサーグラムを全般的にあてはめた。
KD測定のために、抗体タンパク質のモノマー分画を使用した(少なくとも90%のモノマー含有量、Fabのためには分析的SEC;Superdex75(Amersham Pharmacia)によって、またはIgGのためにはTosoh G3000SWXL(Tosoh Bioscience)によってそれぞれ分析した)。溶液での親和性測定は、基本的には文献に記載されている通りに実施した(Friquet et al., J Immnunol Meth 77, 305-319. 1985)。SET方法の感度および精度を向上させるために、それは古典的ELISAからECLに基づくテクノロジーに変えられた(Haenel et al., Anal Biochem 339, 182-184. 2005)。1mg/mlのヤギ抗ヒト(Fab)2断片特異的抗体(Dianova)を、製造業者の指示に従ってMSD−Sulfo−TAG(商標)NHS−エステル(Meso Scale Discovery、Gaithersburg、MD、USA)で標識した。ポリプロピレンマイクロタイタープレートおよびアッセイ緩衝液として0.5%BSAおよび0.02%Tween−20を含有するPBS pH7.4で実験を実行した。予想されるKDより少なくとも10倍高い濃度から出発して、非標識の抗原を2n系列で希釈した。Bmax値を測定するために、抗原なしのウェルを使用し、バックグラウンドを測定するために、アッセイ緩衝剤だけを含むウェルを使用した。適当な量の結合剤(予想されるKDに類似のまたはそれ未満の抗体濃度、60μlの最終量)の添加の後、混合物を室温で一晩インキュベートした。MSDプレートを、抗原(1ウェルにつき30μl)でコーティングした。0.02%Tween−20を含むPBSでプレートを洗浄した後に、平衡させた試料をそれらのプレートに移し(1ウェルにつき30μl)、20分の間インキュベートした。洗浄の後、1ウェルにつき30μlのMSD−Silfo−Tag標識検出抗体(抗ヒト(Fab)2、最終希釈は一般的に1:2,000)をMSDプレートに加え、エッペンドルフ振盪機(700rpm)の上において室温で30分間インキュベートした。MSDプレートを洗浄して、界面活性剤と一緒に30μl/ウェルのMSD Read Buffer Tを加えた後、Sector Imager 6000(Meso Scale Discovery、Gaithersburg、MD、USA)を使用して電気化学発光シグナルを検出した。
x:適用された全体の可溶性抗原濃度(結合部位)
Bmax:抗原なしのFabの最大シグナル
KD:親和性
抗TGF−β2 FabのKD測定は、基本的に以下の通りに実行した:全ての希釈溶液のために、ヒトTGF−β2を4mMのHClで100μg/mLまで前希釈した。コーティングのために、抗原をPBSで0.05μg/ml(TGF−β2)までさらに希釈し、標準のMSDプレートの上で4℃においてo/nでコーティングした。その後、PBS中の3%BSAにより、MSDプレートを室温で1時間ブロックした。
TGF−β1、TGF−β3および反標的(ミオスタチン、GDF−11、アクチビンA、アクチビンBおよびアクチビンAB)への結合のSETをベースとした分析のために、特異抗原、それぞれヒトTGF−β1またはTGF−β3を記載の通りコーティングした。試験するタンパク質を滴定のために使用し、2n系列で希釈した。出発濃度は、それぞれ、TGF−β1の場合2μM、TGF−β3の場合0.05μg/ml、または全ての反標的の場合100nMであった。
PBSに希釈した2.5μg/mlのTGF−β2特異的Fabにより、Maxisorp(商標)384ウェルプレートを4℃で一晩コーティングした。ビオチン化TGF−β2タンパク質を0.1μg/ml(約8nM)の定常TGF−β2濃度の溶液中のFabと室温で1時間インキュベートし、Fabの滴定はTGF−β2タンパク質と比較して12.5モル過剰のFab(5μg/ml(100nM))から開始された。Fab−TGF−β2複合体を、BSAで30分間ブロックされたFabをコートしたウェルに次に加えた。結合したビオチン化TGF−β2は、アルカリ性ホスファターゼ(Invitrogen(Zymed)、#43−4322)にコンジュゲートしたストレプトアビジンとのインキュベーションと、続くAttoPhos蛍光基質(Roche、#11681982001)の添加によって検出した。535nmの蛍光発光を、430nmでの励起で記録した。
完全長IgGを発現させるために、重鎖(VH)および軽鎖(VL)の可変ドメイン断片を、Fab発現ベクターからヒトIgG1f_LALAのためのpMorph(登録商標)4_hIg1f_LALA_カッパまたはpMorph(登録商標)4_hIg1f_LALA_ラムダベクターにサブクローニングした。
pMORPH(登録商標)4ベクター系を使用したヒトIgGの一過性の試験的発現および精製。IgGの重鎖および軽鎖の両方をコードするpMORPH(登録商標)4発現ベクターDNAにより、真核生物のHKB11細胞をトランスフェクトした。トランスフェクションから3日または7日目に細胞培養上清を収集し、標準のプロテインA親和性クロマトグラフィー(MabSelect SURE、GE Healthcare)に付した。特記されない限り、1×ダルベッコのPBS(pH7.2、Invitrogen)への緩衝液交換を実行し、試料を濾過滅菌(0.2μmの孔径)した。IgGの純度は、Labchipシステム(Caliper Life Sciences、USAまたはAgilent、USA)を使用した変性、還元性および非還元性条件の下で、またはSDS−PAGEで分析した。タンパク質濃度を紫外分光光度法によって測定し、自然状態のIgG調製物を分析するためにHP−SECを実行した。
抗体変異体タンパク質の供与源として市販されているファージディスプレイライブラリー、MorphoSys HuCAL PLATINUM(登録商標)ライブラリーを使用して、高い結合親和性を有するクローンの選択によって、抗原TGF−β2タンパク質の生物学的活性を中和する治療的抗体を生成した。HuCAL PLATINUM(登録商標)ファージミドライブラリーは、HuCAL(登録商標)概念(Knappik et al., J Mol Biol 296, 57-86, 2000)に基づき、ファージ表面でFabを提示するためにCysDisplay(登録商標)テクノロジーを用いる(国際公開第01/05950号)。
− 90個のHCDR3ファミリー;
− 89個のカッパおよび101個のラムダ抗体。
116個のIgGを真核生物のHKB11細胞で発現させ、精製した。90/116個の発現させたIgGは品質管理に合格し、ヒトTGF−β2、マウスTGF−β2、ヒトTGF−β3およびヒトTGF−β1の阻害についてRGAにおいて特徴付けられた。高い割合の抗体が、凝集傾向のために高いか中等度の発展性リスクを有することが見出された。延長されたs−DAS分析の中で、疎水性分析も実行した。結果は、高い割合の、非常に疎水性の抗体を明らかにした。高い疎水性は、抗体の凝集傾向と相関することが見出された。低い発展性リスクを有すると明記された抗体と比較して高いか中等度の発展性リスクを有すると明記された抗体の間で、より高い割合の高/中等度の疎水性を有する抗体が見出された。
s−DASに合格した56個の抗体は、RGAにおいて親和性および効力を示した。RGAおよびCKアッセイおよび延長されたs−DASデータ(s−DAS+疎水性評価)における活性に基づく。in vivo特徴付けおよびPTM除去/生殖系列化のために、6つの抗TGF−β2抗体を選択した。これらの6つの選択された抗体(MOR12773、MOR13436、MOR13438、MOR12413、MOR13416、MOR13426)を、下に要約される様々なアッセイで特徴付けた。
抗体抗原相互作用のKD値は、上記の原理および条件に従ってSETを使用して測定した。TGF−β2特異的Ab MOR13436、および選択されたTGF−β2抗体に関するKD値は、表1に要約する。このプロジェクトのKD成功基準は、ヒトTGF−β2については200pM未満に設定した。全ての選択されたTGF−β2特異的抗体候補は、この基準を満たした。TGF−β2特異的は、好ましくは5倍の緩い基準でマウスTGF−β2に結合すると予想される。6つの選択されたTGF−β2特異的抗体のうちの4つは、この基準を満たした。
TGF−β1および5つの反標的(ミオスタチン、GDF−11、アクチビンA、アクチビンBおよびアクチビンAB)への最終抗体の結合(PTM除去および生殖系列化の前)を、上記の原理および条件に従ってSETを使用して分析した。全ての選択されたTGF−β2特異的Abは、成功基準を満たした。
最終抗体の活性(PTM除去および生殖系列化の前)を、上記の条件を使用したRGAにおいてhTGF−β2、mTGF−β2、TGF−β3およびTGF−β1の阻害について分析した。MOR13436に関するRGA活性データの一つの例を、図3に示す。このプロジェクトのRGA成功基準のIC50は、ヒトTGF−β2については200pM未満に設定した。全ての選択されたTGF−β2特異的抗体候補は、この基準を満たした。
最終抗体の活性(PTM除去および生殖系列化の前)を、上記の条件を使用したCKアッセイで分析した。CKアッセイデータはRGAデータとよく相関したが、CKアッセイで一般的により低い効力であった。このプロジェクトのCKアッセイ成功基準のIC50は、ヒトTGF−β2およびTGF−β3抗体のそれぞれについて1000pM未満に設定した。MOR13436の濃度−応答曲線の例を、図5に提供する。
TGF−β2−TGFβRIII結合を阻害する最終抗体の能力(PTM除去および生殖系列化の前)を、上記の条件を使用した受容体−リガンド相互作用アッセイで分析した。
最終抗体の活性(PTM除去および生殖系列化の後)を、上記の条件を使用したRGAにおいてhTGF−β2、mTGF−β2、TGF−β3およびTGF−β1の阻害について分析した。データは、表4に要約する。
最終抗体の活性(PTM除去および生殖系列化の後)を、上記の条件を使用したCKアッセイで分析した。CKアッセイデータは、表4に要約する。
TGF−β3および5つの反標的(ミオスタチン、GDF−11、アクチビンA、アクチビンBおよびアクチビンAB)への最終抗体の交差反応性(PTM除去および生殖系列化の後)を、上記の条件を使用したRGAで分析し、図4に示す。
結果は、平均+/−SEMで表す。統計分析は、一元配置分散分析法に従って、ダネットの多重比較検定を使用して実行した。確率値が<0.05であったとき、処置(抗TGF−β2抗体MOR14797、MOR14799、MOR14800、MOR14805、MOR14809およびMOR14787を対照抗体との差について試験した)および差は有意であると考えた:*:P<0.05、**:P<0.01、NS:IgG対照に対して有意性なし。統計分析は、GraphPad Prismバージョン5.0(GraphPad Software,Inc)によって実行した。0日目の体重を引き算することによって体重を計算し、筋肉重は0日目の体重(初期体重)によって正規化した。
免疫組織化学およびmRNAによって線維症マーカーを測定する、その抗線維症活性を測定するためのデュピュイトランの拘縮疾患の最近記載された三次元ex vivo培養システム(Karkampouna et al. 2014, Molecular Therapy - Nucleic Acids, (2014) 3, e142)で、TGF−β2特異的Ab MOR14797を試験し、汎TGF−βAb 1D11と比較した。結果は、図7および8に示す。ex vivoモデルは、Karkampouna et al. 2014に記載されている通りに実行した。患者組織をスライスし、3μg/mlの抗体の存在下で7日間、ニトロセルラー膜の上で培養した。7日目に、組織スライスをmRNA単離のために収集したか、または免疫組織化学分析のために使用されるならば、低温包埋のために固定し、処理した。
mRNAによって線維症マーカーを測定する、その抗線維症活性を測定するための、片側性尿管閉塞(UUO)マウス腎臓線維症モデルにおけるTGF−β2特異的Ab MOR13436。結果を、図9に示す。ex vivoモデルは、Kitamoto et al. 2009(J Pharmacol Sci, 111, 285-292)に記載されている通りに実行した。簡潔には、左尿管の完全なライゲーションによってUUOを実行し、5mg/kgのTGF−β2特異的AB MOR14346で14日間処置した。mRNA単離のために、腎臓を回収した。RNA分析のために、全RNAを単離し、定量的PCR(qPCR)を実行した。結果は、ハウスキーピング遺伝子の発現に正規化したmRNA発現で表す。
MOR14797のFab断片(配列番号69(部分配列)および79、表5)に結合したヒトTGFβ−2(残基303〜414、配列番号122)の結晶構造を測定した。下で詳述されるように、複合体の個々の構成成分は、別個の発現系を使用して生成され、精製された複合体を生成するために組み合わせた。MOR14797 Fabに結合したTGFβ−2に関する回折データを生成するために、X線結晶学を次に用い、抗原結合部位を解明した。
IgGのパパイン切断からのFab生成:MOR14797 Fabは、固定化されたパパイン(Thermo Scientific Pierce)による完全長MOR14797 IgGの切断によって生成された。20mMリン酸ナトリウム(pH7.0)、10mM EDTA中の20mg/mlのMOR14797 IgGを、80:1の重量比で固定化されたパパインと混合し、混合物は、37℃で一晩、回転プラットホームの上でインキュベートした。次に、重力流動カラムを使用して、FabおよびFc断片を固定化されたパパインから分離した。次に、あらゆるFc断片を除去するために、収集したフロースルーをHiTrap MabSelect SUREカラム(GE Healthcare Life Sciences)に加えた。Fab含有フロースルーを次に濃縮し、20mM HEPES(pH7.5)、150mM NaClで平衡させたHiLoad 16/600 Superdex200カラム(GE Healthcare Life Sciences)に加えた。ピーク分画はSDS−PAGEによる分析にかけ、組み合わせた分画はTGFβ−2と複合体を形成するために次に使用した。
TGFβ−2−MOR14797複合体を20mg/mlに濃縮し、その後、結晶化スクリーニングを実施する前に20,000×gで10分間遠心分離した。シッティングドロップ蒸気拡散セットアップを使用して、結晶を20℃で成長させた。TGFβ−2−MOR14797複合体の0.1μlを、0.1MのHEPES(pH7.5)および70%(v/v)のMPDを含有するレザバー溶液の0.1μlと混合し、液滴を、45μlのレザバー溶液に対して平衡させた。液体窒素の中で結晶を直接的に瞬間冷却し、光線17−IDでの回折データの収集のために、Advanced Photon Source(Argonne National Laboratory、USA)に送った。データセットは、autoPROC(バージョン1.1.6、Global Phasing Ltd.)を使用して、格子サイズa=77.2Å、b=122.1Å、c=130.1Å、α=90°、β=90°およびγ=90°の空間群P212121において2.4Åの解像度まで処理した。複合体の構造はPhaser(バージョン2.5.5、McCoy et al., J. Appl. Cryst. 40, 658-674, 2007)を使用して分子交換によって解決し、最終モデルはCOOT(バージョン0.8.7、Emsley et al., Acta Cryst. D66, 486-501, 2010)において構築され、Phenix(バージョン1.11.1、Afonine et al., Acta Cryst. D66, 213-221, 2010)を使用して精密化された。RworkおよびRfree値は、それぞれ17.5%および23.0%である。結合の長さおよび角度のRMSD値は、0.008Åおよび1.054°であった。
TGFβ−2に結合するMOR14797のエピトープおよびパラトープを同定するために、TGFβ−2−MOR14797 Fab複合体の結晶構造を使用した。表6に詳述されるように、MOR14797 Fabと相互作用するTGFβ−2の表面は、いくつかの非連続配列によって形成される。これらの残基は、MOR14797 Fabによって認識される三次元立体配置エピトープを形成する(図1)。表6に詳述されるように、TGFβ−2と相互作用するMOR14797の表面は、いくつかの非連続配列によって形成される。これらの残基は、TGFβ−2に結合するMOR14797の三次元パラトープを形成する(図11)。
Claims (28)
- ヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2を中和し、ヒトアイソフォームTGF−β3を中和しない、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片。
- ヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2を中和し、ヒトアイソフォームTGF−β3およびTGF−β1を中和しない、請求項1に記載の抗体またはその機能的断片。
- 中和が、Smad依存性リポーター遺伝子アッセイによって測定される、請求項1または2に記載のヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片。
- Smad依存性リポーター遺伝子アッセイによって測定される場合、250pM未満の最大半減抑制濃度(IC50)でヒトTGF−β2を中和し、100nMを超える最大半減抑制濃度(IC50)でヒトTGF−β1またはTGF−β3を中和する、前記請求項のいずれか一項に記載の抗体またはその機能的断片。
- TGF−β1またはTGF−β3に関するその解離定数の少なくとも70倍小さい解離定数で、ヒトアイソフォームTGF−β1およびTGF−β3より優先的にヒトTGF−βアイソフォームTGF−β2に結合する、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体またはその機能的断片であって、前記抗体がヒトTGF−β2を中和する、前記抗体またはその機能的断片。
- 1pM以下のKDでヒトTGF−β2に結合する、前記請求項のいずれか一項に記載の抗体またはその機能的断片。
- 配列番号7、27、47、67、87または107のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有するVHポリペプチド配列、および配列番号17、37、57、77、97または117のうちの少なくとも1つに少なくとも95%の配列同一性を有するVLポリペプチド配列を含む、請求項1〜6のいずれか一項に記載の抗体または機能的断片。
- 配列番号1、21、41、61、81、101または4、24、44、64、84、104または124〜129からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR1;配列番号2、22、42、62、82、102または5、25、45、65、85、105からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR2;配列番号3、23、43、63、83、103または6、26、46、66、86、106からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域CDR3;配列番号11、31、51、71、91、111または14、34、54、74、94、114からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR1;配列番号12、32、52、72、92、112または15、35、55、75、95、115からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR2;配列番号13、33、53、73、93、113または16、36、56、76、96、116からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域CDR3を含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗体または機能的断片。
- (a)配列番号1の重鎖可変領域CDR1;配列番号2の重鎖可変領域CDR2;配列番号3の重鎖可変領域CDR3;配列番号11の軽鎖可変領域CDR1;配列番号12の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号13の軽鎖可変領域CDR3;
(b)配列番号21の重鎖可変領域CDR1;配列番号22の重鎖可変領域CDR2;配列番号23の重鎖可変領域CDR3;配列番号31の軽鎖可変領域CDR1;配列番号32の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号33の軽鎖可変領域CDR3;
(c)配列番号41の重鎖可変領域CDR1;配列番号42の重鎖可変領域CDR2;配列番号43の重鎖可変領域CDR3;配列番号51の軽鎖可変領域CDR1;配列番号52の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号53の軽鎖可変領域CDR3;
(d)配列番号61の重鎖可変領域CDR1;配列番号62の重鎖可変領域CDR2;配列番号63の重鎖可変領域CDR3;配列番号71の軽鎖可変領域CDR1;配列番号72の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号73の軽鎖可変領域CDR3;
(e)配列番号81の重鎖可変領域CDR1;配列番号82の重鎖可変領域CDR2;配列番号83の重鎖可変領域CDR3;配列番号91の軽鎖可変領域CDR1;配列番号92の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号93の軽鎖可変領域CDR3;または
(f)配列番号101の重鎖可変領域CDR1;配列番号102の重鎖可変領域CDR2;配列番号103の重鎖可変領域CDR3;配列番号111の軽鎖可変領域CDR1;配列番号112の軽鎖可変領域CDR2;および配列番号113の軽鎖可変領域CDR3
を含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載のヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体または機能的断片。 - 配列番号9、29、49、69、89、109からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長重鎖アミノ酸配列、および配列番号19、39、59、79、99、119からなる群から選択される少なくとも1つの配列に少なくとも95%の配列同一性を有する完全長軽鎖アミノ酸配列を含む、請求項1〜9のいずれか一項に記載の抗体または機能的断片。
- (a)配列番号7の可変重鎖配列および配列番号17の可変軽鎖配列;
(b)配列番号27の可変重鎖配列および配列番号37の可変軽鎖配列;
(c)配列番号47の可変重鎖配列および配列番号57の可変軽鎖配列;
(d)配列番号67の可変重鎖配列および配列番号77の可変軽鎖配列;
(e)配列番号87の可変重鎖配列および配列番号97の可変軽鎖配列;または
(f)配列番号107の可変重鎖配列および配列番号117の可変軽鎖配列
を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。 - (a)配列番号9の重鎖配列および配列番号19の軽鎖配列;
(b)配列番号29の重鎖配列および配列番号39の軽鎖配列;
(c)配列番号49の重鎖配列および配列番号59の軽鎖配列;
(d)配列番号69の重鎖配列および配列番号79の軽鎖配列;
(e)配列番号89の重鎖配列および配列番号99の軽鎖配列;または
(f)配列番号109の重鎖配列および配列番号119の軽鎖配列
を含む、ヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。 - IgG1アイソタイプのものである、前記請求項のいずれか一項に記載の抗TGF−β2抗体。
- Fc領域の突然変異により変更されたエフェクター機能を有する、前記請求項のいずれか一項に記載のヒトモノクローナル抗TGF−β2抗体。
- 前記請求項のいずれか一項に記載の抗体または機能的断片をコードする、単離されたポリヌクレオチド配列。
- 配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118または120の1つまたは複数を含む、請求項15に記載の単離されたポリヌクレオチド配列。
- 請求項15または16に記載の1つまたは複数の単離されたポリヌクレオチド配列を含む、クローニングまたは発現ベクター。
- 少なくとも1つのCDR領域をコードする、配列番号8、10、18、20、28、30、38、40、48、50、58、60、68、70、78、80、88、90、98、100、108、110、118もしくは120、またはその断片の1つまたは複数を含む、請求項17に記載のベクター。
- 請求項17または18に記載の1つまたは複数のベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1〜14のいずれか一項に記載の抗体または機能的断片の生成のための方法であって、請求項24の宿主細胞を培養し、前記抗体または機能的断片を単離することを含む方法。
- 請求項1〜14のいずれか一項に記載の抗体またはその機能的断片を含む医薬組成物。
- 療法において、または医薬として使用するための、請求項9〜14のいずれか一項に記載の抗体またはその機能的断片を含む医薬組成物。
- 薬学的に許容される希釈剤または担体をさらに含む、請求項21または22に記載の医薬組成物。
- 1つまたは複数のさらなる活性薬剤をさらに含む、請求項21〜23のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- デュピュイトラン病、マルファン関連の状態またはマルファン病、表皮水疱症、線維柱帯切除術、ロイス−ディーツ症候群、皮膚全身性硬化症および筋骨格疾患または障害からなる群から選択される疾患または病的状態の処置に使用するための、請求項21〜24のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- デュピュイトラン病、マルファン関連の状態またはマルファン病、表皮水疱症、線維柱帯切除術、ロイス−ディーツ症候群、皮膚全身性硬化症および筋骨格疾患または障害からなる群から選択される疾患または病的状態を患っている患者を処置する方法であって、前記患者に請求項21〜24のいずれか一項に記載の医薬組成物の有効用量を投与することを含む方法。
- デュピュイトラン病、マルファン関連の状態またはマルファン病、表皮水疱症、線維柱帯切除術、ロイス−ディーツ症候群、皮膚全身性硬化症または筋骨格疾患または障害の処置のための医薬の製造における、請求項1〜14のいずれか一項に記載の抗体もしくは機能的断片、請求項15もしくは請求項16に記載のポリヌクレオチド配列または請求項21〜24のいずれか一項に記載の医薬組成物の使用。
- 請求項12の少なくとも1つの抗体によってTGFβ−2への結合を交差ブロックするかまたは交差ブロックされる、抗体またはその機能的断片。
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