JP2017036290A - ウシの種における免疫応答の増強 - Google Patents
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Abstract
【課題】ウシの種のメンバーにおいて非抗原特異的免疫応答を誘起するのに有効な免疫活性化方法。
【解決手段】陽イオン性リポソーム送達媒体及び遺伝子挿入のない単離された細菌由来の非コードDNAベクターである核酸分子を含む免疫調節性組成物。リポソーム送達媒体は、ポリカチオン性脂質組成物及びコレステロールなど。畜牛をマンヘミア・ヘモリチカに起因するウシ呼吸器病等の感染性疾患から保護するのに、感染性疾患に罹患した動物を処置するのに、特に有効。
【選択図】なし
【解決手段】陽イオン性リポソーム送達媒体及び遺伝子挿入のない単離された細菌由来の非コードDNAベクターである核酸分子を含む免疫調節性組成物。リポソーム送達媒体は、ポリカチオン性脂質組成物及びコレステロールなど。畜牛をマンヘミア・ヘモリチカに起因するウシ呼吸器病等の感染性疾患から保護するのに、感染性疾患に罹患した動物を処置するのに、特に有効。
【選択図】なし
Description
発明の分野
本発明は、ウシの種のメンバーにおける免疫活性化方法に関する。特に、本発明は、全身的、非特異的および抗原特異的免疫応答を誘起する方法を含み、それは、動物の投与および感染性疾患に対する保護に有用である。
本発明は、ウシの種のメンバーにおける免疫活性化方法に関する。特に、本発明は、全身的、非特異的および抗原特異的免疫応答を誘起する方法を含み、それは、動物の投与および感染性疾患に対する保護に有用である。
発明の背景
畜牛は、多くのタイプのウイルス、細菌および寄生生物の感染の第一の標的である。離乳、畜牛の出荷、過酷な天候および牛肉および乳製品における栄養学的な要望などの現代的な生産実務も、疾患の発生率を高めるリスク要因となり得る。ウシ呼吸器病(BRD)、または、しばしば呼ばれるように、ウシ呼吸器病症候群は、乳牛および肉牛の両方で起こり、世界中で、畜牛の産業における経済的損失の主原因の一つである。これらの損失は、罹病率、死亡率、体重増加の減少、処置および予防の費用、乳生産の損失および屠体の特徴に対する負の影響が含まれる。
畜牛は、多くのタイプのウイルス、細菌および寄生生物の感染の第一の標的である。離乳、畜牛の出荷、過酷な天候および牛肉および乳製品における栄養学的な要望などの現代的な生産実務も、疾患の発生率を高めるリスク要因となり得る。ウシ呼吸器病(BRD)、または、しばしば呼ばれるように、ウシ呼吸器病症候群は、乳牛および肉牛の両方で起こり、世界中で、畜牛の産業における経済的損失の主原因の一つである。これらの損失は、罹病率、死亡率、体重増加の減少、処置および予防の費用、乳生産の損失および屠体の特徴に対する負の影響が含まれる。
BRDの病因は、上記の多数の環境的および生理学的ストレス要因と、感染性物質との組み合わせから生じると考えられる。マンヘミア(パスツレラ)・ヘモリチカ(Mannheimia (Pasteurella) haemolytica)、パスツレラ・マルトシダ(Pasteurella multocida)およびヒストフィラス・ソムニ(Histophilus somni)(以前は、ヘモフィルス・ソムナス(Haemophilus somnus))は、ウシの上気道の正常な菌叢の一部であると考えられる。逆に、下気道は、微生物の侵入の防止を目的とする多数の免疫学的経路により維持される、比較的無菌な環境である。畜牛が環境的および生理学的ストレス要因にさらされると、動物の自然および獲得免疫機能が損なわれ、それにより、上述の生物が増殖し、その後、下気道でコロニー形成することが可能になる。感染性ウシ鼻気管炎ウイルス(IBRV、IBRまたはBHV1)、ウシウイルス性下痢ウイルス(BVDV)、ウシ呼吸器多核体ウイルス(BRSV)およびパラインフルエンザ3型ウイルス(PI3)などの様々なウシウイルスが、肺における免疫抑制作用を有することが知られている。しかしながら、マンヘミア・ヘモリチカは、BRDの症例において、断然最も蔓延している細菌の病原体である。
現在のBRDの予防および処置は、肥育場へ到着した際の畜牛集団への抗生物質の投与(即ち、メタ予防(metaphylaxis))、病気の畜牛への抗生物質治療、および、M.ヘモリチカを含むBRDウイルスおよび細菌に対する予防接種からなる。
現在の予防接種のプログラムおよび医薬的治療が、今日の畜牛におけるBRDの制御に最適ではない様々な理由がある。第一に、畜牛における感染性疾患との闘病において、宿主の防御系が主要な役割を果たす。従来の処置は、細菌感染を処置または制御するのに、抗生物質の投与を含む。しかしながら、ウイルス感染に利用できる承認された医薬的処置はない。BRDでは、ほとんどの場合、細菌感染があるだけではなく、ウイルス感染もある。第二に、予防接種の時期は、しばしば、最適には及ばない。呼吸器ワクチンが最適に有効であるためには、製品は、ストレスまたは出荷の2−4週間前に投与されるべきであり、これは、典型的には、商業的な畜牛の生産において実行可能ではない。ワクチンの投与は、最適に有効であるには、早すぎるか、または、遅すぎる。
従って、疾患を引き起こす生物を減らすか、または排除するために、免疫系を刺激し、攻撃的応答を打ち立てる方法に対する要望が存在する。この方法は、投与が容易であり、単独で、もしくはワクチンと組み合わせて効くか、または、そのようなワクチンをより効果的にするのを助け、より長い作用時間を有するか、または、免疫を最大にするための追加の注射を必要としないことが重要である。本発明は、ウシの種において、非抗原特異的免疫応答を誘起する方法を提供し、それは、投与が容易であり、単独で、もしくはワクチンと組み合わせて効き、1種またはそれ以上の感染性物質に対して、保護的応答を誘導する。
図面の簡単な説明
図1.1は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、平均直腸温度のデータをグラフで示す。
図1.2は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、毎日の体重増加の平均のデータをグラフで示す。
図1.3は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図2.1は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、平均直腸温度のデータをグラフで示す。
図2.2は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、毎日の体重増加の平均のデータをグラフで示す。
図2.3は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図3.1は、実施例3に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図3.2は、実施例3に記載の通り、免疫調節剤の投与日に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図4.1は、実施例4に記載の通り、処置群により保護された動物の%をグラフで示す。
図4.2は、実施例4に記載の通り、処置群により保護された動物(<1%肺病変および肺病変なし)のパーセントをグラフで示す。
図5.1は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.2は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.3は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.4は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.5は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.6は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.7は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.8は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.9は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.10は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.11は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.12は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.13は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.14は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.15は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.16は、実施例5に記載の通り、モデルに適合させた毎日の体重増加の平均の結果をグラフで示す。
図6.1は、実施例6に記載の通り、処置群について、BHV1 SNT力価をグラフで示す。
図1.1は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、平均直腸温度のデータをグラフで示す。
図1.2は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、毎日の体重増加の平均のデータをグラフで示す。
図1.3は、実施例1に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図2.1は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、平均直腸温度のデータをグラフで示す。
図2.2は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量による、毎日の体重増加の平均のデータをグラフで示す。
図2.3は、実施例2に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図3.1は、実施例3に記載の通り、投与された免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図3.2は、実施例3に記載の通り、免疫調節剤の投与日に関して、モデルに適合させた肺病変スコアをグラフで示す。
図4.1は、実施例4に記載の通り、処置群により保護された動物の%をグラフで示す。
図4.2は、実施例4に記載の通り、処置群により保護された動物(<1%肺病変および肺病変なし)のパーセントをグラフで示す。
図5.1は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.2は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.3は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.4は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるCD25EI発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.5は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.6は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.7は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.8は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるIFNγ発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.9は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.10は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BRSVに感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.11は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.12は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞におけるIL−4発現指数(y軸)の測定をグラフで示す。
図5.13は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV1型に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.14は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BVDV2型に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.15は、実施例5に記載の通り、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、BHV−1に感染した細胞における、モデルに適合させた血清抗体力価の評価(y軸)をグラフで示す。
図5.16は、実施例5に記載の通り、モデルに適合させた毎日の体重増加の平均の結果をグラフで示す。
図6.1は、実施例6に記載の通り、処置群について、BHV1 SNT力価をグラフで示す。
発明の詳細な説明
本発明のウシの種のメンバーにおける免疫応答を誘起する方法は、有効量の免疫調節性組成物をウシの種のメンバーに投与し、免疫応答を誘起することを含む。免疫調節性組成物は、リポソーム送達媒体および少なくとも1種の核酸分子を含む。加えて、免疫調節剤は、単独で有効である非抗原特異的免疫応答を誘起するか、または、ワクチンなどの少なくとも1種の生物学的物質の作用を、そのようなワクチンに先だって投与されるか、そのようなワクチンと共に投与されるか、ワクチン接種後に投与されるか、または、ワクチンと混合されると、増強する。
本発明のウシの種のメンバーにおける免疫応答を誘起する方法は、有効量の免疫調節性組成物をウシの種のメンバーに投与し、免疫応答を誘起することを含む。免疫調節性組成物は、リポソーム送達媒体および少なくとも1種の核酸分子を含む。加えて、免疫調節剤は、単独で有効である非抗原特異的免疫応答を誘起するか、または、ワクチンなどの少なくとも1種の生物学的物質の作用を、そのようなワクチンに先だって投与されるか、そのようなワクチンと共に投与されるか、ワクチン接種後に投与されるか、または、ワクチンと混合されると、増強する。
本方法は、ウシの種を感染症から保護し、感染性疾患を有する集団を処置するために、新しい処置戦略を提供する。最後に、本発明の方法は、この免疫調節剤がワクチンと組み合わせて使用されるときに、より迅速、長期かつ良好な、疾患に対する保護を提供する。
1.組成物
a.免疫調節剤
本発明のある実施態様では、免疫調節性組成物は、リポソーム送達媒体および少なくとも1種の核酸分子を含む(出典明示により本明細書の一部とする米国特許第6,693,086号に記載の通り)。
a.免疫調節剤
本発明のある実施態様では、免疫調節性組成物は、リポソーム送達媒体および少なくとも1種の核酸分子を含む(出典明示により本明細書の一部とする米国特許第6,693,086号に記載の通り)。
適するリポソーム送達媒体は、核酸分子を処置対象の組織に送達できる脂質組成物を含む。リポソーム送達媒体は、好ましくは、核酸分子および/または生物学的物質を送達するのに十分な時間にわたり、対象において安定に留まることができる。ある実施態様では、リポソーム送達媒体は、受容対象において、少なくとも約5分間安定である。他の実施態様では、リポソーム送達媒体は、受容対象において、少なくとも約1時間安定である。また他の実施態様では、リポソーム送達媒体は、受容対象において、少なくとも約24時間安定である。
本発明のリポソーム送達媒体は、核酸分子を細胞内に送達するために、細胞の細胞膜と融合できる脂質組成物を含む。ある実施態様では、本発明の核酸:リポソーム複合体は、送達されると、少なくとも約1ピコグラム(pg)の発現されたタンパク質/総組織タンパク質1ミリグラム(mg)/送達された核酸1マイクログラム(μg)である。他の実施態様では、核酸:リポソーム複合体の形質移入効率は、少なくとも約10pgの発現されたタンパク質/総組織タンパク質1mg/送達された核酸1μgであり;また他の実施態様では、少なくとも約50pgの発現されたタンパク質/総組織タンパク質1mg/送達された核酸1μgである。複合体の形質移入効率は、1フェムトグラム(fg)の発現されたタンパク質/総組織タンパク質1mg/送達された核酸1μgの程度に低くてもよいが、上記の量がより好ましい。
本発明の好ましいリポソーム送達媒体は、直径で約100ないし500ナノメートル(nm)、他の実施態様では、約150ないし450nm、また他の実施態様では、約200ないし400nmである。
適するリポソームには、一般的に使用されるものなどの任意のリポソーム、例えば、当業者に知られている遺伝子送達方法が含まれる。好ましいリポソーム送達媒体は、多層状小胞(multilamellar vesicle)(MLV)脂質および突出した脂質(extruded lipid)を含む。MLVの製造方法は、当分野で周知である。より好ましいリポソーム送達媒体は、ポリカチオン性脂質組成物(即ち、陽イオン性リポソーム)を有するリポソームおよび/またはポリエチレングリコールに結合したコレステロール骨格を有するリポソームを含む。例示的な陽イオン性リポソーム組成物には、N−[1−(2,3−ジオレイルオキシ)プロピル]−N,N,N−トリメチル塩化アンモニウム(DOTMA)およびコレステロール、N−[1−(2,3−ジオレイルオキシ)プロピル]−N,N,N−トリメチル塩化アンモニウム(DOTAP)およびコレステロール、1−[2−(オレオイルオキシ)エチル]−2−オレイル−3−(2−ヒドロキシエチル)イミダゾリニウムクロライド(DOTIM)およびコレステロール、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロマイド(DDAB)およびコレステロール、およびこれらの組み合わせが含まれるが、これらに限定されない。送達媒体として使用するのに最も好ましいリポソーム組成物には、DOTIMおよびコレステロールが含まれる。
適する核酸分子には、コードまたは非コード配列およびDNAまたはRNAなどの任意の核酸配列が含まれる。コード核酸配列は、タンパク質またはペプチドの少なくとも一部をコードし、一方、非コード配列は、タンパク質またはペプチドのどの部分もコードしない。本発明によると、「非コード」核酸は、プロモーター領域などの、転写ユニットの調節領域を含み得る。用語「空ベクター」は、用語「非コード」と互換的に使用でき、特に、遺伝子挿入のないプラスミドベクターなどの、タンパク質コード部分のない核酸配列を表す。核酸分子にコードされるタンパク質の発現は、非抗原特異的免疫応答の誘起に必要とされない;従って、核酸分子は、転写制御配列に、必ずしも作動可能に連結している必要は無い。しかしながら、免疫原および/またはサイトカインをコードする核酸配列(DNAまたはRNA)を組成物に含めることにより、さらなる利点を獲得し得る(即ち、抗原特異的かつ増強された免疫)。
リポソームを核酸分子と複合体化することは、当分野で標準的な方法を使用して、または、出典明示により本明細書の一部とする米国特許第6,693,086号に記載の通り、達成し得る。リポソームに添加するのに適する核酸分子の濃度には、全身の免疫応答が誘起されるように、十分な量の核酸分子を対象に送達するのに有効な濃度が含まれる。ある実施態様では、約0.1μgないし約10μgの核酸分子を、約8nmolのリポソームと組み合わせ、他の実施態様では、約0.5μgないし約5μgの核酸分子を、約8nmolのリポソームと組み合わせ、また他の実施態様では、約1.0μgの核酸分子を約8nmolのリポソームと組み合わせる。ある実施態様では、組成物中の核酸の脂質に対する比(μg核酸:nmol脂質)は、重量で少なくとも約1:1核酸:脂質(即ち、1μg核酸:1nmol脂質)、他の実施態様では、少なくとも約1:5、また他の実施態様では、少なくとも約1:10、さらなる実施態様では、少なくとも約1:20である。ここで表される比は、組成物中の脂質の総量ではなく、組成物中の陽イオン性脂質の量に基づく。他の実施態様では、本発明の組成物中の核酸の脂質に対する比は、重量で約1:1ないし約1:80核酸:脂質であり;他の実施態様では、重量で約1:2ないし約1:40核酸:脂質であり;さらなる実施態様では、重量で約1:3ないし約1:30核酸:脂質であり;また他の実施態様では、重量で約1:6ないし約1:15核酸:脂質である。
b.生物学的物質
本発明の他の実施態様では、免疫調節剤には、リポソーム送達媒体、核酸分子および少なくとも1種の生物学的物質が含まれる。
本発明の他の実施態様では、免疫調節剤には、リポソーム送達媒体、核酸分子および少なくとも1種の生物学的物質が含まれる。
適する生物学的物質は、ウシの疾患の予防または処置に有効な物質である。そのような生物学的物質には、免疫増強タンパク質、免疫原、ワクチン、抗菌剤またはこれらの任意の組み合わせが含まれる。適する免疫増強タンパク質は、免疫を増強すると知られているタンパク質である。非限定的に例示すると、タンパク質のファミリーを含むサイトカインは、既知の免疫増強タンパク質ファミリーである。適する免疫原は、対象への免疫原の投与が、対象の組織内で遭遇する同一または類似のタンパク質に対して、免疫原に特異的な免疫応答を開始するように、体液性および/または細胞性免疫応答を誘起するタンパク質である。免疫原は、細菌、ウイルス、寄生生物または菌類により発現される病原性抗原を含み得る。好ましい抗原には、対象において感染性疾患を引き起こす抗原が含まれる。本発明によると、免疫原は、体液性および/または細胞性免疫応答を誘起する、天然に産生されるかまたは合成的に誘導されるタンパク質の任意の部分であり得る。そのようなものとして、抗原または免疫原のサイズは、約5−12アミノ酸の程度に小さくてもよく、全長タンパク質の程度に大きくてもよく、その間のサイズを含む。抗原は、多量体タンパク質または融合タンパク質であり得る。抗原は、天然または組み換え細胞から誘導される精製ペプチド抗原であり得る。免疫増強タンパク質および免疫原の核酸配列は、免疫原が対象の組織で発現され、それにより対象において非特異的免疫応答に加えて免疫原特異的免疫応答を誘起するように、転写制御配列に作動可能に結合している。
本発明の他の実施態様では、生物学的物質はワクチンである。ワクチンは、生の、感染性の、ウイルス、細菌または寄生生物のワクチン、または、死滅した、不活化された、ウイルス、細菌または寄生生物のワクチンを含み得る。ある実施態様では、1種またはそれ以上のワクチン(生または死滅ウイルスワクチン)を、本発明の免疫調節性組成物と組み合わせて使用し得る。適するワクチンには、畜牛の種のために当分野で知られているものが含まれる。例示的なワクチンには、限定されないが、感染性ウシ鼻気管炎ウイルス(IBR)(1型ウシヘルペスウイルス(BHV1))、パラインフルエンザウイルス3型(PI3)、ウシ呼吸器多核体ウイルス(BRSV)、ウシウイルス性下痢ウイルス(BVDV1型および2型)、ヒストフィラス・ソムニ、マイコプラズマ・ボビス(Mycoplasma bovis)および当分野で知られている他の疾患に対する保護のために当分野で使用されるものが含まれる。例示的な実施態様では、マンヘミア・ヘモリチカに対する保護のためのワクチンを、本発明の免疫調節性組成物と組み合わせて使用し得る。
本発明のまた他の実施態様では、生物学的物質は抗菌剤である。適する抗菌剤には、キノロン類、好ましくはフルオロキノロン類、β−ラクタム類およびマクロライド−ストレプトグラミン−リンコサミド(MLS)系抗生物質が含まれる。
適するキノロン類には、ベノフロキサシン(benofloxacin)、ビンフロキサシン(binfloxacin)、シノキサシン、シプロフロキサシン、クリナフロキサシン、ダノフロキサシン(danofloxacin)、ジフロキサシン(difloxacin)、エノキサシン、エンロフロキサシン(enrofloxacin)、フレロキサシン、ゲミフロキサシン、イバフロキサシン(ibafloxacin)、レボフロキサシン、ロメフロキサシン、マルボフロキサシン(marbofloxacin)、モキシフロキサシン、ノルフロキサシン、オフロキサシン、オルビフロキサシン(orbifloxacin)、パズフロキサシン、プラドフロキサシン(pradofloxacin)、ペルフロキサシン(perfloxacin)、テマフロキサシン、トスフロキサシン、サラフロキサシン(sarafloxacin)、ゲミフロキサシンおよびスパルフロキサシンが含まれる。好ましいフルオロキノロン類には、シプロフロキサシン、エンロフロキサシン、モキシフロキサシン、ダノフロキサシンおよびプラドフロキサシンが含まれる。適するナフチリドン(naphthyridone)類には、ナリジクス酸が含まれる。
適するβ−ラクタム類には、ペニシリン類、例えば、ベンザチンペニシリン、ベンジルペニシリン(ペニシリンG)、フェノキシメチルペニシリン(ペニシリンV)、プロカインペニシリン、メチシリン、オキサシリン、ナフシリン、クロキサシリン、ジクロキサシリン、フルクロキサシリン、テモシリン、アモキシシリン、アンピシリン、コ−アモキシクラブ(co-amoxiclav)(アモキシシリンおよびクラブラン酸)、アズロシリン、カルベニシリン、チカルシリン、メズロシリン、ピペラシリン;セファロスポリン類、例えば、セファロニウム(cefalonium)、セファレキシン、セファゾリン、セファプリリン(cefapririn)、セフキノム(cefquinome)、セフチオフル、セファロチン、セファクロル、セフロキシム、セファマンドール、デフォテタン(defotetan)、セフォキシチン、セフトリアキソン、セフォタキシム、セフポドキシム、セフィキシム、セフタジジム、セフェピム、セフピロム;カルバペネム類およびペネム類、例えば、イミペネム、メロペネム、エルタペネム、ファロペネム、ドリペネム、モノバクタム類、例えば、アズトレオナム(アザクタム)、チゲモナム(tigemonam)、ノカルディシンA、タブトキシニン(tabtoxinine)−β−ラクタム;およびβ−ラクタマーゼ阻害剤、例えば、クラブラン酸、タゾバクタムおよびスルバクタムが含まれる。好ましいβ−ラクタム類には、セファロスポリン類、特に、セファゾリンが含まれる。
適するMLS抗生物質には、任意のマクロライド、リンコマイシン、クリンダマイシン、ピルリマイシンが含まれる。好ましいリンコサミドは、ピルリマイシンである。
他の抗菌剤には、2−ピリドン類、テトラサイクリン類、スルホンアミド類、アミノグリコシド類、トリメトプリム、ジメトリダゾール類、エリスロマイシン、フラマイセチン、フラゾリドン、様々なプレウロムチリン類、例えば、チアムリン(tiamulin)、バルネムリン(valnemulin)、様々な、ストレプトマイシン、クロピドール、サリノマイシン(salinomycin)、モネンシン、ハロフジノン、ナラシン(narasin)、ロベニジンなどが含まれる。
2.方法
a.免疫刺激の方法
本発明のある実施態様では、免疫応答は、ウシの種のメンバーにおいて、有効量の免疫調節性組成物をウシの種のメンバーに投与することにより誘起される。有効量は、ウシの種のメンバーにおいて免疫応答を誘起するのに十分である。免疫調節剤は、リポソーム送達媒体および核酸分子を含む。
a.免疫刺激の方法
本発明のある実施態様では、免疫応答は、ウシの種のメンバーにおいて、有効量の免疫調節性組成物をウシの種のメンバーに投与することにより誘起される。有効量は、ウシの種のメンバーにおいて免疫応答を誘起するのに十分である。免疫調節剤は、リポソーム送達媒体および核酸分子を含む。
ある実施態様では、免疫調節剤の有効量は、約1マイクログラムないし約1000マイクログラム/動物である。他の実施態様では、免疫調節剤の有効量は、約5マイクログラムないし約500マイクログラム/動物である。また他の実施態様では、免疫調節剤の有効量は、約10マイクログラムないし約100マイクログラム/動物である。さらなる実施態様では、免疫調節剤の有効量は、約10マイクログラムないし約50マイクログラム/動物である。
本発明の他の実施態様では、免疫応答は、ウシの種のメンバーにおいて、リポソーム送達媒体、単離された核酸分子および生物学的物質を含む有効量の免疫調節剤を投与することにより誘起される。生物学的物質は、免疫調節剤と混合されていても、共に投与されてもよく、または、それから独立していると意図されている。独立した投与は、免疫調節剤の投与の前でも後でもよい。増強された免疫を延長するために、1回より多い免疫調節剤または生物学的物質の投与を使用し得ることも意図されている。さらに、1種より多い生物学的物質を、免疫調節剤と共に投与し得るか、免疫調節剤に先だって投与し得るか、免疫調節剤の投与の後に投与し得るか、または、同時に投与し得る。
b.疾患
本発明の方法は、対象が免疫応答の誘起に影響を受けやすい疾患から保護されるように、対象において免疫応答を誘起する。本明細書で使用するとき、語句「疾患から保護される」は、疾患の症状を低減すること;疾患の発症を低減すること、および、疾患の臨床的または病理的重篤度を低減すること、または、疾患を引き起こす病原体の排出を低減することを表す。対象を保護することは、対象に投与されたとき、疾患の発症を防止する、疾患の症状、臨床徴候、病態または原因を治癒、および/または軽減もしくは低減する、本発明の治療的組成物の能力を表し得る。BRDの臨床徴候の例には、肺の病変、体温の上昇、鬱病(例えば、摂食障害、外部刺激への反応の低下、垂れ耳)、鼻汁および呼吸器の特徴(例えば、呼吸数、呼吸努力)が含まれる。そのようなものとして、ウシの種のメンバーを疾患から保護することには、疾患の発症を防止すること(予防的処置)および疾患を有するウシの種のメンバーを処置すること(治療的処置)の両方が含まれる。特に、対象を疾患から保護することは、有益または保護的な免疫応答を誘導することによってウシの種のメンバーにおいて免疫応答を誘起することにより達成され、それは、いくつかの例では、過活性または有害な免疫応答をさらに抑制、低減、阻害または遮断し得る。用語「疾患」は、ウシの種のメンバーの正常な健康からのいかなる逸脱も表し、疾患症状が存在するときの状態、ならびに、逸脱(例えば、感染、遺伝子の突然変異、遺伝子の異常など)が起こったが、症状はまだ現れていない状態を含む。
本発明の方法は、対象が免疫応答の誘起に影響を受けやすい疾患から保護されるように、対象において免疫応答を誘起する。本明細書で使用するとき、語句「疾患から保護される」は、疾患の症状を低減すること;疾患の発症を低減すること、および、疾患の臨床的または病理的重篤度を低減すること、または、疾患を引き起こす病原体の排出を低減することを表す。対象を保護することは、対象に投与されたとき、疾患の発症を防止する、疾患の症状、臨床徴候、病態または原因を治癒、および/または軽減もしくは低減する、本発明の治療的組成物の能力を表し得る。BRDの臨床徴候の例には、肺の病変、体温の上昇、鬱病(例えば、摂食障害、外部刺激への反応の低下、垂れ耳)、鼻汁および呼吸器の特徴(例えば、呼吸数、呼吸努力)が含まれる。そのようなものとして、ウシの種のメンバーを疾患から保護することには、疾患の発症を防止すること(予防的処置)および疾患を有するウシの種のメンバーを処置すること(治療的処置)の両方が含まれる。特に、対象を疾患から保護することは、有益または保護的な免疫応答を誘導することによってウシの種のメンバーにおいて免疫応答を誘起することにより達成され、それは、いくつかの例では、過活性または有害な免疫応答をさらに抑制、低減、阻害または遮断し得る。用語「疾患」は、ウシの種のメンバーの正常な健康からのいかなる逸脱も表し、疾患症状が存在するときの状態、ならびに、逸脱(例えば、感染、遺伝子の突然変異、遺伝子の異常など)が起こったが、症状はまだ現れていない状態を含む。
本発明の方法は、疾患の予防、疾患に対するエフェクター細胞の免疫の刺激、疾患の除去、疾患の軽減および一次的疾患の発症に起因する二次的疾患の予防に使用し得る。
本発明は、また、ワクチンと共に投与されると、ワクチン単独での投与に対して、動物の獲得免疫応答を改善し得る。一般的に、一度投与されたワクチンは、獲得免疫を刺激するのに時間がかかるので、動物をすぐには保護しない。用語「改善する」は、本発明では、ワクチンが動物を保護し始めるまで動物の自然免疫応答を誘起すること、および/または、獲得免疫を介してワクチンにより与えられる保護の期間を延長することを表す。
本発明の方法には、幅広い様々な病原体の感染に対して保護するために組成物を投与することが含まれる。投与される組成物は、特異的応答を誘起する特異的抗原を含んでも含まなくてもよい。本発明の方法は、ウイルス、細菌、菌類および寄生生物を非限定的に含む感染性微生物の物質に起因する疾患から、受容対象を保護することが意図されている。例示的なウイルス感染症には、非限定的に、感染性ウシ鼻気管炎(IBR)(1型ウシヘルペスウイルス(BHV1))、パラインフルエンザウイルス3型(PI3)、ウシ呼吸器多核体ウイルス(BRSV)、ウシウイルス性下痢ウイルス(BVDV1型および2型)、ウシアデノウイルス、ウシコロナウイルス(BCV)、ウシカリシウイルス、ウシパルボウイルス、BHV4、ウシレオウイルス、ウシエンテロウイルス、ウシライノウイルス、悪性カタル熱ウイルス、ウシ白血病ウイルス、狂犬病ウイルス、水疱性口内炎ウイルス(VSV)、ブルータングウイルス(オルビウイルス)、これらの組み換え体、および、当分野で知られている他のウイルスによる感染に起因するものが含まれる。例示的な細菌感染には、非限定的に、グラム陽性または陰性菌およびマイコバクテリア、例えば、大腸菌(Escherichia coli)、パスツレラ・マルトシダ(Pasteurella multocida)、ウェルシュ菌(Clostridium perfringens)、クロストリジウム・コリナム(Clostridium colinum)、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)、ボツリヌス菌(Clostridium botulinum)、クウロストリジウム・ノビイ(Clostridium novyi)、気腫疽菌(Clostridium chauveoi)、クロストリジウム・セプティカム(Clostridium septicum)、クロストリジウム・ヘモリチカム(Clostridium hemolyticum)、破傷風菌(Clostridium tetani)、マンヘミア・ヘモリチカ、ウレアプラズマ・ジベルサム(ureaplasma diversum)、マイコプラズマ・ディスパー(Mycoplasma dispar)、マイコプラズマ・ボビス(Mycoplasma bovis)、マイコプラズマ・ボビルヒニス(Mycoplasma bovirhinis)、ヒストフィラス・ソムニ、カンピロバクター・フィタス(Campylobacter fetus)、レプトスピラ属(Leptospira spp.)、アルカノバクテリウム・ピオゲネス(Arcanobacterium pyogenes)、バチルス・アントラックス(Bacillus anthrax)、フソバクテリウム・ネクロホラム(Fusobacterium necrophorum)、フソバクテリウム属(Fusobacterium spp.)、トレポネーマ属(Treponema spp.)、コリネバクテリウム(Corynebacterium)、ウシ流産菌(Brucella abortus)、パラ結核菌(Mycobacterium paratuberculosis)、マイコバクテリウム属(Mycobacterium spp.)、ヒストフィラス属(Histophilus spp.)、モラクセラ属(Moraxella spp.)、ムエレリウス属(Muellerius spp.)、マイコプラズマ属(Mycoplasma spp.)、サルモネラ属(Salmonella spp.)、炭疽菌(Bacillus anthracis)および当分野で知られている他の細菌による感染に起因するものが含まれる。例示的な菌類またはカビの感染には、非限定的に、アルカノバクテリウム属(Actinobacterim spp.)、アスペルギルス属(Aspergillus spp.)およびヒストモナス属(Histomonas spp.)および当分野で知られている他の感染性の菌類またはカビによる感染に起因するものが含まれる。例示的な寄生生物には、非限定的に、ネオスポラ属(Neospora spp.)、毛様線虫属(Trichostrongylus)、クーペリア属(Cooperia)、アナプラズマ属(Anaplasma spp)、バベシア属(Babesia spp)、コリオプテス属(Chorioptes spp)、嚢虫属(Cysticercus spp)、ダーマトフィルス属(Dermatophilus spp)、ダマリニア・ボビス(Damalinia bovis)、ディクチロカウラス(Dictylocaulus spp)、エイメリア属(Eimeria spp)、エペリスロゾーン属(Eperythrozoon spp)、ヘモンクス属(Haemonchus spp)、メロファガス属(Melophagus spp)、ムエレリウス属(Muellerius spp)、ネマトジルス属(Nematodirus spp)、オエストラス属(Oestrus spp)、オステルタギア属(Ostertagia spp)、ソロプテス属(Psoroptes spp)、サルコプテス属(Sarcoptes spp)、セルペンス属(Serpens spp)、糞線虫属(Strongyloides spp)、トキソプラズマ属(Toxoplasma spp)、鞭虫属(Trichuris spp)、白癬菌属(Trichophyton spp)およびトリトリコモナス属(Tritrichomas spp)、ファスシオロイデス属(Fascioloides spp)、アナプラズマ・マジナーレ(Anaplasma marginale)および当分野で知られている他の寄生生物が含まれる。
c.対象
本発明の方法は、家畜でも野生でも、任意の対象またはウシの種のメンバーに適用し得る。特に、それは、繁殖、食肉または乳の生産のために商業的に飼育されている対象に適用し得る。適するウシ対象には、非限定的に、アンテロープ、スイギュウ、ヤク、畜牛およびバイソンが含まれる。ある実施態様では、ウシの種のメンバーは、畜牛である。畜牛の種には、非限定的に、雌牛、雄牛、雌の去勢牛、未経産牛、雄の去勢牛、肉牛または乳牛が含まれる。当業者は、特に感染性物質への環境的暴露を受けやすいので、本発明の方法が、繁殖、食肉または乳の生産のために飼育されている畜牛に大いに有益であることを理解するであろう。
本発明の方法は、家畜でも野生でも、任意の対象またはウシの種のメンバーに適用し得る。特に、それは、繁殖、食肉または乳の生産のために商業的に飼育されている対象に適用し得る。適するウシ対象には、非限定的に、アンテロープ、スイギュウ、ヤク、畜牛およびバイソンが含まれる。ある実施態様では、ウシの種のメンバーは、畜牛である。畜牛の種には、非限定的に、雌牛、雄牛、雌の去勢牛、未経産牛、雄の去勢牛、肉牛または乳牛が含まれる。当業者は、特に感染性物質への環境的暴露を受けやすいので、本発明の方法が、繁殖、食肉または乳の生産のために飼育されている畜牛に大いに有益であることを理解するであろう。
d.投与
様々な投与経路を利用できる。選択される特定の様式は、当然、選択される特定の生物学的物質、対象の齢および全般的健康状態、処置される特定の症状および治療効力に必要とされる用量によって決まるであろう。本発明の方法は、臨床的に許容されない有害作用を引き起こさずに、有効なレベルの免疫応答をもたらす任意の投与様式を使用して実施し得る。組成物は、便利に単位用量形で与えられてもよく、当分野で周知のいかなる方法によって製造されてもよい。
様々な投与経路を利用できる。選択される特定の様式は、当然、選択される特定の生物学的物質、対象の齢および全般的健康状態、処置される特定の症状および治療効力に必要とされる用量によって決まるであろう。本発明の方法は、臨床的に許容されない有害作用を引き起こさずに、有効なレベルの免疫応答をもたらす任意の投与様式を使用して実施し得る。組成物は、便利に単位用量形で与えられてもよく、当分野で周知のいかなる方法によって製造されてもよい。
ウシの種の予防接種は、いかなる齢でも実施できる。ワクチンは、静脈内に、筋肉内に、皮内に、腹腔内に、皮下に、スプレー/エアロゾルで、経口で、眼内に、気管内に、鼻腔内に、または、当分野で知られている他の方法により、投与し得る。さらに、本発明の方法は、通例の予防接種のスケジュールに基づいて使用し得ると意図されている。免疫調節剤も、静脈内に、筋肉内に、皮下に、スプレーにより、経口で、眼内に、気管内に、経鼻的に、または、当分野で知られている他の方法により、投与し得る。ある実施態様では、免疫調節剤を皮下に投与する。他の実施態様では、免疫調節剤を筋肉内に投与する。また他の実施態様では、免疫調節剤をスプレーとして投与する。さらなる実施態様では、免疫調節剤を経口で投与する。
ある実施態様では、免疫調節剤を攻撃(または感染)に先立ち動物に単独で投与する。他の実施態様では、免疫調節剤を攻撃(または感染)後に動物に単独で投与する。また他の実施態様では、免疫調節剤を攻撃(または感染)と同時に動物に単独で投与する。さらなる実施態様では、免疫調節性組成物を、攻撃に先立つ予防接種として、同時に共に投与する。またさらなる実施態様では、免疫調節性組成物を、攻撃(または感染)と同時に、予防接種と同時に共に投与する。共に投与することには、ワクチンおよび免疫調節剤を、動物の同じ概略的位置に、隣り合う2つの異なる場所で(即ち、動物の首での隣り合う注射)、動物の同じ概略的位置の反対側で(即ち、首の各側に)、または、同じ動物の異なる位置で、投与することが含まれ得る。他の実施態様では、免疫調節性組成物を、予防接種および攻撃に先立ち投与する。さらなる実施態様では、免疫調節性組成物を予防接種後に、しかし攻撃に先立ち、投与する。さらなる実施態様では、免疫調節性組成物を、攻撃(または感染)に先立ち予防接種された動物への攻撃の後に投与する。
ある実施態様では、免疫調節剤を、攻撃の約1日ないし約14日前または攻撃の約1日ないし約14日後に投与する。他の実施態様では、免疫調節剤を、攻撃の約1日ないし約7日前または攻撃の約1日ないし約7日後に投与する。または他の実施態様では、免疫調節剤を、攻撃の1、2、3、4、5、6、7日前または攻撃の1、2、3、4、5、6、7日後に投与する。
他の送達システムには、持続放出、遅延放出または徐放の送達システムが含まれ得る。そのようなシステムは、組成物の反復投与を回避でき、従って利便性を高め得る。多くのタイプの放出の送達システムが利用でき、当業者に知られている。ポリ(ラクチド−グリコリド)、コポリオキサレート類、ポリカプロラクトン類、ポリエステルアミド類、ポリオルトエステル類、ポリヒドロキシ酪酸およびポリ酸無水物などのポリマーをベースとするシステムが含まれる。薬物を含有する上記のポリマーのマイクロカプセルは、例えば、米国特許第5,075,109号に記載されている。送達システムは、また、ステロール類、例えば、コレステロール、コレステロールエステル、および、脂肪酸または中性脂肪、例えば、モノ、ジおよびトリ−グリセリド類などを含む脂質;ヒドロゲル放出システム;シラスティック(sylastic)のシステム;ペプチドをベースとするシステム;ワックスコーティング;常套の結合剤および添加物を使用する圧縮錠;部分的に融合したインプラントなどである、非ポリマーのシステムを含み得る。特別な例には、本発明の物質がマトリックス内の形態で含有される浸食システム、例えば、米国特許第4,452,775号、第4,675,189号および第5,736,152号に記載のもの、および、活性成分が制御された速度でポリマーから浸透する拡散システム、例えば、米国特許第3,854,480号、第5,133,974号および第5,407,686号に記載のものが含まれるが、これらに限定されない。加えて、ポンプをベースとする機器の送達システムを使用でき、その中には移植に適応したものもある。
本発明の範囲から離れずに上記の組成物、製品および方法に様々な変更を成し得るので、上記の説明および下記の実施例に含まれる全事項は、限定的な意味ではなく、例示と解釈されることが意図されている。
定義
用語「有効量」は、所望の生物学的効果を実現するのに必要または十分な量を表す。例えば、感染性疾患を処置または予防するための免疫調節剤の有効量は、微生物に暴露された際に免疫応答の展開を引き起こし、かくして、対象内の微生物の量の減少を、好ましくは微生物の撲滅まで、引き起こすのに必要な量である。特定の適用についての有効量は、処置されている疾患または状態、対象の大きさまたは疾患もしくは状態の重篤度などの要因に応じて変動し得る。当業者は、免疫調節剤の有効量を、過度の実験を必要とせずに、経験的に決定できる。
用語「有効量」は、所望の生物学的効果を実現するのに必要または十分な量を表す。例えば、感染性疾患を処置または予防するための免疫調節剤の有効量は、微生物に暴露された際に免疫応答の展開を引き起こし、かくして、対象内の微生物の量の減少を、好ましくは微生物の撲滅まで、引き起こすのに必要な量である。特定の適用についての有効量は、処置されている疾患または状態、対象の大きさまたは疾患もしくは状態の重篤度などの要因に応じて変動し得る。当業者は、免疫調節剤の有効量を、過度の実験を必要とせずに、経験的に決定できる。
用語「サイトカイン」は、免疫を増強するタンパク質のファミリーを表す。サイトカインファミリーは、造血性増殖因子、インターロイキン類、インターフェロン類、免疫グロブリンスーパーファミリーの分子、腫瘍壊死因子ファミリーの分子およびケモカイン類(即ち、細胞、特に貪食細胞の遊走と活性化を調節するタンパク質)を含む。例示的なサイトカイン類には、非限定的に、インターロイキン−2(IL−2)、インターロイキン−12(IL12)、インターロイキン−15(IL−15)、インターロイキン−18(IL−18)、インターフェロン−α(IFNα)およびインターフェロン−γ(IFNγ)が含まれる。
用語「誘起する」は、活性化する、刺激する、生成する、または、上方調節するという用語と、互換的に使用できる。
用語「免疫応答を誘起すること」は、対象において、免疫応答の活性を特異的に制御するか、またはそれに影響を与えることを表し、免疫応答を活性化すること、免疫応答を上方調節すること、免疫応答を増強すること、および/または、免疫応答を変更すること(例えば、ある種の免疫応答を誘起することにより、今度はそれが、対象において優勢な種類の免疫応答を、有害または無効なものから、有益または保護的なものに変更する)を含み得る。
用語「作動可能に連結」は、核酸分子を転写制御配列に、宿主細胞に形質移入(即ち、形質転換、形質導入または形質移入)されたときにその分子が発現され得るような方法で連結することを表す。転写制御配列は、転写の開始、伸長および停止を制御する配列である。特に重要な転写制御配列は、プロモーター、エンハンサー、オペレーターおよびリプレッサー配列などの、転写開始を制御するものである。様々なそのような転写制御配列が当業者に知られている。好ましい転写制御配列には、鳥類、魚類、哺乳動物、細菌、植物および昆虫細胞で機能するものが含まれる。いかなる転写制御配列も本発明で使用し得るが、それらの配列は、免疫原または免疫を刺激するタンパク質をコードする配列と天然に付随する天然産生の転写制御配列を含み得る。
用語「核酸分子」および「核酸配列」は、互換的に使用でき、DNA、RNAまたはDNAもしくはRNAの誘導体を含む。これらの用語は、オリゴヌクレオチド、並びに、タンパク質またはそのフラグメントをコードする核酸分子、および、調節領域、イントロンまたは他の非コードDNAまたはRNAを含む核酸分子の両方を含む、より大きい配列も含む。典型的には、オリゴヌクレオチドは、約1ないし約500ヌクレオチドの核酸配列を有し、より典型的には、少なくとも約5ヌクレオチドの長さである。核酸分子は、哺乳動物、魚類、細菌、昆虫、ウイルス、植物または合成の供給源を含む、いかなる供給源に由来してもよい。核酸分子は、組み換えDNA技術(例えば、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、増幅、クローニング)または化学合成などの、当分野で一般的に知られている方法により産生できる。核酸分子には、天然の核酸分子およびそれらのホモログが含まれ、それには、天然の対立遺伝子多型、および、改変された核酸分子が含まれるがこれらに限定されず、そこでは、そのような改変が、核酸分子が本発明の方法に有用な免疫原または免疫を刺激するタンパク質をコードする能力を実質的に妨害しない方法で、ヌクレオチドが挿入、欠失、置換または逆転している。核酸ホモログは、当分野で知られている数々の方法を使用して産生し得る(例えば、出典明示により本明細書の一部とする、Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Labs Press, 1989 参照)。病原体抗原の免疫原性またはサイトカイン活性などの免疫原性をスクリーニングする技法は、当業者に知られており、様々なインビトロおよびインビボアッセイを含む。
実施例
以下の実施例は、本発明の様々な実施態様を例示説明する。
以下の実施例は、本発明の様々な実施態様を例示説明する。
実施例1.自然のウシ呼吸器病を発症する前または後にDNA免疫調節剤を受容する畜牛の評価
この研究の目的は、BRDの自然症例を発症する前および後に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
この研究の目的は、BRDの自然症例を発症する前および後に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、陽イオン性脂質および非コードDNAを含む組成物であった。合成免疫調節剤脂質成分[1−[2−[9−(Z)−オクタデセノイルオキシ]]−2−[8](Z)−ヘプタデセニル]−3−[ヒドロキシエチル]イミダゾリニウムクロライド(DOTIM)および合成中性脂質コレステロールを製剤化し、直径約200nmのリポソームを産生した(米国特許第6,693,086号参照)。DNA成分は、負に荷電されており、正に荷電した(陽イオン性)リポソームと結合する、大腸菌で産生した4242塩基対の非コードDNAプラスミドであった(米国特許第6,693,086号参照)。
この研究で使用した免疫調節剤は、陽イオン性脂質および非コードDNAを含む組成物であった。合成免疫調節剤脂質成分[1−[2−[9−(Z)−オクタデセノイルオキシ]]−2−[8](Z)−ヘプタデセニル]−3−[ヒドロキシエチル]イミダゾリニウムクロライド(DOTIM)および合成中性脂質コレステロールを製剤化し、直径約200nmのリポソームを産生した(米国特許第6,693,086号参照)。DNA成分は、負に荷電されており、正に荷電した(陽イオン性)リポソームと結合する、大腸菌で産生した4242塩基対の非コードDNAプラスミドであった(米国特許第6,693,086号参照)。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、84頭の離乳期のホルスタインの雄の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。84頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる7個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。
呼吸器疾患の現病歴がない、84頭の離乳期のホルスタインの雄の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。84頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる7個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。
処置群に、様々な用量の上記のDNA免疫調節剤を、処置日に、下記の表1.1に示す通りに投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを、表1.2に提供する。DNA免疫調節剤を、筋肉内に、子牛の頭蓋から左肩へ、腹部から項靱帯へ、そして尾背部(caudo-dorsal)から頸溝へ、投与した。
後述の通り、処置−1日目は、子牛を評価し、研究に適すると判定した最初の選択後の、研究の開始日を表す。処置0日目は、−1日目の1日後である、など。
子牛の大部分が、0日目の朝に様々なレベルのBRDを経験していると観察された。5日目までに、研究集団にいるすべての子牛は、BRD罹病の症例の定義に合致すると観察された。重篤なBRDのために安楽死が指示された場合のみ、畜牛を研究集団からはずした。他の感染症/非感染症は観察されず、それによりこの研究から除くことを必要としなかった。
評価
研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。例えば、各子牛について、研究期間中1日ごとに、直腸温度および平均の毎日の体重を測定した。動物を各日ほぼ同じ時刻に(+/−3時間)、1日目から5日目まで評価した。図1.1および1.2は、投与した免疫調節剤の用量に従って、直腸温度の平均および毎日の体重増加の平均を示す。
研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。例えば、各子牛について、研究期間中1日ごとに、直腸温度および平均の毎日の体重を測定した。動物を各日ほぼ同じ時刻に(+/−3時間)、1日目から5日目まで評価した。図1.1および1.2は、投与した免疫調節剤の用量に従って、直腸温度の平均および毎日の体重増加の平均を示す。
研究の5日目に、すべての子牛を安楽死させ、剖検した。個々の子牛について、剖検時に肺病変スコアを決定した(目視検査および手による触診により評価した肺硬化の程度に基づく)。
図1.3は、投与した免疫調節剤の用量に関して、肺病変スコアを示す。投与各日の全体的な肺病変スコアは、−1日目および0日目で、各々約11%おおび14%であった。肺病変スコア11.2%、9.0%、10.8%および19.9%が、500、200、50および負の対照群について各々示された。対照群と処置群(200μg)の最大の差異は、約11%の減少であった。
図1.3のモデルに適合させた評価は、すべての統計モデル共変数(即ち、用量、日および用量x日)に、そして研究中に子牛を飼育した囲いに適合させた、未処理の平均値を反映する。従って、モデルに適合させた評価は、未加工の平均値と比較した差異を表し得る。
続いて、細菌学(肺培養)およびウイルス学(鼻の拭き取り検体)も実施した。5日目に安楽死させた、残っていた子牛(69)のうち、11.6%がウシヘルペスウイルス1型(BHV−1)を鼻の分泌液中に排出していると判明した。研究した動物のすべての肺培養に関して、41%がMh陽性であり、31.3%がパスツレラ・マルトシダ(Pm)に培養陽性であり、10.8%がMhおよびPmの両方に培養陽性であり、研究集団中にヒストフィラス・ソムニは単離されなかった。マイコプラズマ・ボビスの培養は、この研究では実施しなかった。
結果
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち500μg、200μgおよび50μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアの有意な低下に近づいた(P=0.1284;図1.3参照)。しかしながら、DNA免疫調節剤投与の日(即ち、−1または0日目)は、肺病変スコアと有意に関連しなかった。DNA免疫調節剤の用量のグループ内では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。直腸温度は、DNA免疫調節剤の用量に有意に関連する傾向があったが(P=0.1190)、投与の日とは関連しなかった。毎日の体重増加の平均に関して、DNA免疫調節剤の用量と負の対照の間に明白な差異は観察されなかった。
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち500μg、200μgおよび50μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアの有意な低下に近づいた(P=0.1284;図1.3参照)。しかしながら、DNA免疫調節剤投与の日(即ち、−1または0日目)は、肺病変スコアと有意に関連しなかった。DNA免疫調節剤の用量のグループ内では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。直腸温度は、DNA免疫調節剤の用量に有意に関連する傾向があったが(P=0.1190)、投与の日とは関連しなかった。毎日の体重増加の平均に関して、DNA免疫調節剤の用量と負の対照の間に明白な差異は観察されなかった。
DNA免疫調節剤が負の対照と比較して肺病変を減少させる強い傾向があったので、この製品がBRDの大流行中に肺組織を保護する可能性を有する証拠が提供された。この研究では、処置投与の日は肺病変と関連しなかったので、畜牛がDNA免疫調節剤をBRDに伴う臨床徴候の開始の1日前に受容しても同日に受容しても、問題ではないことが示された。BRD病原体への暴露のタイミングは典型的な生産システムにおいて一般的には不明であり、畜牛が一連の生産工程で経験する様々なストレス要因の影響によりさらに複雑であるので、この結果は重要である。従って、BRDの開始に対する投与のタイミングの柔軟性を与える製品を生産者に提供することは、牛肉および乳製品の産業において、極めて価値がある。
実施例2.マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃と同時または1日後にDNA免疫調節剤を受容する畜牛の評価
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃と同時または1日後に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を決定することであった。
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃と同時または1日後に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を決定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、84頭の離乳期の平均約300lbs(136kg)の体重のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。84頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる7個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。処置群に、様々な用量のDNA免疫調節剤を、処置日に、下記の表2.1に示す通りに投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを、表2.2に提供する。DNA免疫調節剤を、筋肉内に、子牛の頭蓋から左肩へ、腹部から項靱帯へ、そして尾背部から頸溝へ、投与した。
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、84頭の離乳期の平均約300lbs(136kg)の体重のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。84頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる7個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。処置群に、様々な用量のDNA免疫調節剤を、処置日に、下記の表2.1に示す通りに投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを、表2.2に提供する。DNA免疫調節剤を、筋肉内に、子牛の頭蓋から左肩へ、腹部から項靱帯へ、そして尾背部から頸溝へ、投与した。
後述の通り、処置0日目は、子牛を評価し、良好な健康状態にあると判定した最初の選択後の、研究の開始日を表す。処置1日目は、0日目の1日後である、など。
実験的攻撃
0日目に、全部で3.12x107のコロニー形成率(CFU)のマンヘミア・ヘモリチカで子牛を攻撃した。呼吸管を通して接種菌液を投与した。3日目までに、研究集団のすべての子牛は、BRD罹病の症例の定義に合致すると観察された。発症日の中央値は、1日であった。
0日目に、全部で3.12x107のコロニー形成率(CFU)のマンヘミア・ヘモリチカで子牛を攻撃した。呼吸管を通して接種菌液を投与した。3日目までに、研究集団のすべての子牛は、BRD罹病の症例の定義に合致すると観察された。発症日の中央値は、1日であった。
評価
先の実施例と同様に、研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。各子牛について、研究期間中1日ごとに、直腸温度および平均の毎日の体重を測定した。動物を各日ほぼ同じ時刻に評価した。図2.1および2.2は、投与した免疫調節剤の用量に関して、直腸温度の平均および毎日の体重増加の平均を示す。
先の実施例と同様に、研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。各子牛について、研究期間中1日ごとに、直腸温度および平均の毎日の体重を測定した。動物を各日ほぼ同じ時刻に評価した。図2.1および2.2は、投与した免疫調節剤の用量に関して、直腸温度の平均および毎日の体重増加の平均を示す。
研究の5日目に、すべての子牛を安楽死させ、剖検した。個々の子牛について、剖検時に、実施例1に記載の形式に従って肺病変スコアを決定した。
図2.3は、投与した免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアを示す。
図2.3は、投与した免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアを示す。
結果
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち500μg、200μgおよび50μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアを有意に低下させた。しかしながら、低用量(200μgおよび50μg)は、肺病変の減少において、500μgの用量を凌いだ。DNA免疫調節剤投与の日(即ち、0または1日目)は、肺病変スコアと有意に関連しなかった。DNA免疫調節剤の用量のグループ内では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。直腸温度は、負の対照群と比較して、DNA免疫調節剤を投与された子牛で有意に低かったが、用量とは関連しなかった。毎日の体重増加の平均に関して、DNA免疫調節剤の用量と負の対照の間に明白な差異は観察されなかった。
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち500μg、200μgおよび50μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアを有意に低下させた。しかしながら、低用量(200μgおよび50μg)は、肺病変の減少において、500μgの用量を凌いだ。DNA免疫調節剤投与の日(即ち、0または1日目)は、肺病変スコアと有意に関連しなかった。DNA免疫調節剤の用量のグループ内では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。直腸温度は、負の対照群と比較して、DNA免疫調節剤を投与された子牛で有意に低かったが、用量とは関連しなかった。毎日の体重増加の平均に関して、DNA免疫調節剤の用量と負の対照の間に明白な差異は観察されなかった。
DNA免疫調節剤が負の対照と比較して肺病変を減少させる強い傾向があったので、この製品がBRDの大流行中に肺組織を保護する可能性を有する証拠が提供された。この研究では、処置投与の日は肺病変と関連しなかったので、畜牛がDNA免疫調節剤をBRDに伴う臨床徴候の開始の1日前に受容しても同日に受容しても、問題ではないことが示された。BRD病原体への暴露のタイミングは典型的な生産システムにおいて一般的には不明であり、畜牛が一連の生産工程で経験する様々なストレス要因の影響によりさらに複雑であるで、この結果は重要である。従って、BRDの開始に対する投与のタイミングの柔軟性を与える製品を生産者に提供することは、牛肉および乳製品の産業において、極めて価値がある。
実施例3.マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃の2日前または同時にDNA免疫調節剤を受容する畜牛の評価
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃の2日前または同時に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃の2日前または同時に子牛に投与されたDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、96頭の平均約800−1000lbs(363−454kg)の体重のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。96頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる8個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。処置群に、様々な用量のDNA免疫調節剤を、処置日に、下記の表3.1に示す通りに投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを、表3.2に提供する。DNA免疫調節剤を、筋肉内に、子牛の頭蓋から左肩へ、腹部から項靱帯へ、そして尾背部から頸溝へ、投与した。
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、96頭の平均約800−1000lbs(363−454kg)の体重のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。個々の子牛を最初に評価し、良好な健康状態にあると判定した。96頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる8個の処置群に分けた。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、DNA免疫調節剤の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。処置群に、様々な用量のDNA免疫調節剤を、処置日に、下記の表3.1に示す通りに投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを、表3.2に提供する。DNA免疫調節剤を、筋肉内に、子牛の頭蓋から左肩へ、腹部から項靱帯へ、そして尾背部から頸溝へ、投与した。
後述の通り、処置−2日目は、処置群1−3が免疫調節剤を投与された研究の開始日を表す。処置0日目は、−2日目の2日後である、など。
実験的攻撃
0日目に、全部で1.9x1010CFUで子牛を攻撃した。呼吸管を通して接種菌液を投与した。
0日目に、全部で1.9x1010CFUで子牛を攻撃した。呼吸管を通して接種菌液を投与した。
評価
先の実施例と同様に、研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。研究の5日目に、すべての子牛を安楽死させ、剖検した。個々の子牛について、剖検時に肺病変スコアを決定した。
先の実施例と同様に、研究の1−5日目に、子牛を様々な健康の指標について評価した。研究の5日目に、すべての子牛を安楽死させ、剖検した。個々の子牛について、剖検時に肺病変スコアを決定した。
図3.1は、投与した免疫調節剤の用量に関して、モデルに適合させた肺病変スコアを示す。図3.2は、免疫調節剤投与の日に関して、モデルに適合させた肺病変スコアを示す。
結果
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち、200μg、50μgおよび25μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアを有意に低下させた。しかしながら、DNA免疫調節剤の用量の群の間では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。DNA免疫調節剤投与の日(即ち、−2日目および0日目)は、肺病変スコアと有意に関連した。免疫調節剤が0日目に投与されると、−2日目と比較して、有意な肺病変の減少が観察された。
この研究では、DNA免疫調節剤の用量(即ち、200μg、50μgおよび25μg)は、負の対照と比較して、肺病変スコアを有意に低下させた。しかしながら、DNA免疫調節剤の用量の群の間では、肺病変スコアの統計的差異は観察されなかった。DNA免疫調節剤投与の日(即ち、−2日目および0日目)は、肺病変スコアと有意に関連した。免疫調節剤が0日目に投与されると、−2日目と比較して、有意な肺病変の減少が観察された。
実施例4.免疫調節剤と死滅MhワクチンのMh攻撃共投与
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃に付された子牛に死滅Mhワクチンと共に投与されるDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
この研究の目的は、マンヘミア・ヘモリチカによる実験的攻撃に付された子牛に死滅Mhワクチンと共に投与されるDNA免疫調節剤の効力を測定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、81頭の12週齢のホルスタインの雄の子牛を群れから選択した。個々の子牛を評価し、良好な健康状態にあると判定した。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、接種菌液の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、81頭の12週齢のホルスタインの雄の子牛を群れから選択した。個々の子牛を評価し、良好な健康状態にあると判定した。マンヘミア・ヘモリチカについて予防接種されていない動物のみを研究に含めた。動物は、いずれも、接種菌液の投与前、30日以内に抗菌剤を受容していなかった。
実験的感染および攻撃
攻撃、または実験的感染は、マンヘミア・ヘモリチカの接種菌液への暴露を含んだ。この生物を、最初の接種では1.7X108/動物、2回目の接種では2.4X1010/動物の濃度で使用した。また、別の呼吸器経路で動物をスプレーで攻撃した。スプレー接種菌液中の生物の濃度は、1.9X1010/動物であった。
攻撃、または実験的感染は、マンヘミア・ヘモリチカの接種菌液への暴露を含んだ。この生物を、最初の接種では1.7X108/動物、2回目の接種では2.4X1010/動物の濃度で使用した。また、別の呼吸器経路で動物をスプレーで攻撃した。スプレー接種菌液中の生物の濃度は、1.9X1010/動物であった。
マンヘミア・ヘモリチカへの暴露に続いて子牛に投与された上記の免疫調節剤の効力を、表3に詳述する12個の処置群により測定した。
表4.3.研究の処置群
油性MH=マンヘミア・ヘモリチカワクチン(Pulmo-Guard(登録商標) PHM)
水性MH=マンヘミア・ヘモリチカワクチン(One Shot(登録商標))
NC=混合されず、スプレーで攻撃されない(バックグラウンドの肉眼所見のために)
CC=接触およびスプレーで攻撃された
SE=シーダー(Seeder)攻撃として使用した(気管内で攻撃された)
SEおよびNCを除くすべての動物は、スプレーで攻撃された
SC=注射の皮下経路
IM=注射の筋肉内経路
NA=適用不能
*群T8の動物は、鼻腔内攻撃後に処置される
表4.3.研究の処置群
水性MH=マンヘミア・ヘモリチカワクチン(One Shot(登録商標))
NC=混合されず、スプレーで攻撃されない(バックグラウンドの肉眼所見のために)
CC=接触およびスプレーで攻撃された
SE=シーダー(Seeder)攻撃として使用した(気管内で攻撃された)
SEおよびNCを除くすべての動物は、スプレーで攻撃された
SC=注射の皮下経路
IM=注射の筋肉内経路
NA=適用不能
*群T8の動物は、鼻腔内攻撃後に処置される
研究の0日目に、群T1、T2およびT12のすべての動物に、免疫調節剤を皮下投与した。免疫調節剤を、7日目に群T3、T4およびT5に皮下投与した。免疫調節剤を、13日目に、群T6に皮下投与し、T7に筋肉内投与した。免疫調節剤を15日目に群T8に皮下投与した。
ワクチンを受容するすべての動物を、標識の指示に従って予防接種した。免疫調節剤およびワクチンを、リンパ節(首)近くで接近して投与した−2本の注射(1本はワクチン、他方は免疫調節剤)。皮下経路の注射を受容するすべての動物は、肩甲下領域のリンパ節近くに注射された。
研究10日目に、すべてのT11の子牛をその場から離して家畜トレーラー内で約24時間輸送し、子牛にストレスを与えた。研究11日目に、マンヘミア・ヘモリチカを含有する接種菌液20mLをT11の全動物に経気管投与し、続いて、4時間後に接種菌液25mLを経気管投与した。研究14日目に、T9を除く全群を混合し、その場から離して家畜トレーラー内で約24時間輸送し、子牛にストレスを与えた。群NCのものを除く全動物を、研究14日目に大きい囲いの中で12ないし16時間混合し、次いで、別々の囲いに戻した(各動物は別個の囲いを有した)。研究15日目に、マンヘミア・ヘモリチカ20mLを、もう1つの呼吸器経路により、T9およびT11を除く全群に投与した。動物を研究期間中毎日、臨床的異常と死亡率について観察した。全動物は、動物の購入前のスクリーニングで、陰性または低力価であった。動物は処置前に高い力価を有し、それは、処置を受ける前に、動物が血清学的にマンヘミア・ヘモリチカに転換したことを示す。
結果
群T8の動物は、有意に少ない肺病変を有した。
この研究は、ワクチンの有無に拘わらず、早期保護(7日)の開始があることを示唆する(群T3と比較したT4およびT5)。図4.1および4.2参照。
群T8の動物は、有意に少ない肺病変を有した。
この研究は、ワクチンの有無に拘わらず、早期保護(7日)の開始があることを示唆する(群T3と比較したT4およびT5)。図4.1および4.2参照。
実施例5.DNA免疫調節剤と共投与されたときの、市販の生ワクチンで予防接種された畜牛の獲得免疫の評価
この研究の目的は、DNA免疫調節剤の共投与が、修正生ウイルス(MLV)ワクチンにより与えられる獲得免疫を増大するか否かを判定することであった。
この研究の目的は、DNA免疫調節剤の共投与が、修正生ウイルス(MLV)ワクチンにより与えられる獲得免疫を増大するか否かを判定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、72頭の離乳期のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。72頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる6個の処置群に分けた。個々の子牛を評価し、良好な健康状態にあると判定した。全子牛は、BHV−1、BVDV1型および2型並びにBRSVに対する血清抗体を持たなかった。加えて、全子牛は、PI−3に対して血清抗体陰性であると判明した。続いて、免疫組織化学により、子牛をウシウイルス性下痢ウイルスの永続性感染について陰性であると判定した。
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、72頭の離乳期のホルスタインの雌の去勢牛を群れから選択した。72頭の子牛を、各々12頭の子牛からなる6個の処置群に分けた。個々の子牛を評価し、良好な健康状態にあると判定した。全子牛は、BHV−1、BVDV1型および2型並びにBRSVに対する血清抗体を持たなかった。加えて、全子牛は、PI−3に対して血清抗体陰性であると判明した。続いて、免疫組織化学により、子牛をウシウイルス性下痢ウイルスの永続性感染について陰性であると判定した。
下記表5.1に示す処置日に、処置群にワクチンおよび様々な用量のDNA免疫調節剤を筋肉内投与した。DNA免疫調節剤の希釈スキームを表5.2に提供する。研究の0日目に、群T1−T4の全動物に免疫調節剤を投与した。ワクチンを受容するすべての動物に、標識の指示に従って予防接種した。免疫調節剤およびワクチンを、頭側から肩の前で接近して投与した−2本の注射(1本はワクチン、他方は免疫調節剤)。
表5.1.免疫調節剤およびワクチンの投与スケジュール
MLV=マンヘミア・ヘモリチカワクチン(Bovi-shield(登録商標))−修正生4方向(4-way)ウイルス性呼吸器ワクチン
IM=注射の筋肉内経路
IM=注射の筋肉内経路
評価
0、13、28、27、34および41日目に子牛から回収した適当な血液学的試料からのサンプルに、免疫学的試験を実施した。各試料について細胞性免疫(CMI)の測定を行った。この研究の標的病原体は、BHV−1、BVDV1および2、並びにBRSVであった。実験室は、過去に特定された標的病原体にふさわしい標準的な手法および方法を使用した。
0、13、28、27、34および41日目に子牛から回収した適当な血液学的試料からのサンプルに、免疫学的試験を実施した。各試料について細胞性免疫(CMI)の測定を行った。この研究の標的病原体は、BHV−1、BVDV1および2、並びにBRSVであった。実験室は、過去に特定された標的病原体にふさわしい標準的な手法および方法を使用した。
結果
全処置群で、サンプル回収の各日のCMIの結果について、モデルに適合させたデータを決定した。すべての処置群、細胞のタイプおよび抗原にわたり、DNA免疫調節剤処置群−MLVワクチンの組み合わせを、MLVワクチンのみを受容した畜牛と比較すると、統計的差異は検出されなかった(P>0.10)(図5.1−5.12参照)。特に、図5.1−5.4は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、CD25EI発現指数(y軸)の測定を示す。図5.5−5.8は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、IFNγ発現指数(y軸)の測定を示す。図5.9−5.12は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、IL−4発現指数(y軸)の測定を示す。各グラフに示される4種のBRDウイルス性病原体の各々について、評価を行った。これらの統計的評価について、すべての比較は「MLVのみ」の処置群に対して行った。
全処置群で、サンプル回収の各日のCMIの結果について、モデルに適合させたデータを決定した。すべての処置群、細胞のタイプおよび抗原にわたり、DNA免疫調節剤処置群−MLVワクチンの組み合わせを、MLVワクチンのみを受容した畜牛と比較すると、統計的差異は検出されなかった(P>0.10)(図5.1−5.12参照)。特に、図5.1−5.4は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、CD25EI発現指数(y軸)の測定を示す。図5.5−5.8は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、IFNγ発現指数(y軸)の測定を示す。図5.9−5.12は、6個の処置群(x軸)の各々について、全5種類の細胞タイプにわたり、IL−4発現指数(y軸)の測定を示す。各グラフに示される4種のBRDウイルス性病原体の各々について、評価を行った。これらの統計的評価について、すべての比較は「MLVのみ」の処置群に対して行った。
統計的に有意な(P<0.10)処置x日の相互作用は、BVDV1(28および35日目)およびBVDV2(42日目)に検出された。列挙した時点のいずれでも、BHV−1には有意な知見(P>0.10)は検出されなかった。これらの知見のグラフ的表示を、図.5.13−5.15に表示する。負の対照処置群内に抗体陽転が観察されたため、BRSVのデータは分析から除いた。すべての統計的評価について、すべての比較は「MLVのみ」の処置群に対して行ったことに留意されたい。
研究中に、個々の動物の体重も集めた。モデルに適合させた毎日の体重増加の平均の結果のグラフ表示を、図5.16に示す。MLVのみの群と比較して、処置群にわたり、有意な知見(P>0.10)は検出されなかった。
要約すると、DNA免疫調節剤は、MLVワクチンと共に投与されたとき、MLVワクチンの単独投与と比較して、CMIを増強しなかった。しかしながら、DNA免疫調節剤500μgは、MLVワクチン(特にBVDV)と共に投与されたとき、体液性免疫を増強し得る。にもかかわらず、獲得免疫に一貫した改善がなくても、用量500μg、200μg、100μgおよび50μgでのDNA免疫調節剤の共投与は、MLVワクチンにより誘導される正の免疫的効果を損なわなかったことに留意すべきである。加えて、性能(例えばADG)は、DNA免疫調節剤の投与により負の影響を受けなかった。
実施例6.DNA免疫調節剤と共に投与されたときの、市販のワクチンで予防接種された畜牛の獲得免疫の評価
この研究の目的は、DNA免疫調節剤の共投与が、不活化抗原を含有するワクチンにより与えられる獲得免疫を増大するか否かを判定することであった。
この研究の目的は、DNA免疫調節剤の共投与が、不活化抗原を含有するワクチンにより与えられる獲得免疫を増大するか否かを判定することであった。
免疫調節剤
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、48頭の3−5ヶ月齢のホルスタインの雌の畜牛を群れから選択した。48頭の畜牛を、各々8頭の動物からなる6個の処置群に分けた。個々の動物を評価し、良好な健康状態にあると判定した。全動物は、BHV−1、BVDV1型および2型に対する血清抗体を持たなかった。また、動物をウシウイルス性下痢ウイルスの永続性感染について陰性であるとPCRにより判定した。動物は、BRSウイルスおよびPI3ウイルスに対するSNT力価によって選択されなかった。
この研究で使用した免疫調節剤は、上記の実施例1の組成物であった。
研究の動物
呼吸器疾患の現病歴がない、48頭の3−5ヶ月齢のホルスタインの雌の畜牛を群れから選択した。48頭の畜牛を、各々8頭の動物からなる6個の処置群に分けた。個々の動物を評価し、良好な健康状態にあると判定した。全動物は、BHV−1、BVDV1型および2型に対する血清抗体を持たなかった。また、動物をウシウイルス性下痢ウイルスの永続性感染について陰性であるとPCRにより判定した。動物は、BRSウイルスおよびPI3ウイルスに対するSNT力価によって選択されなかった。
下記表5.1に示す処置日に、処置群にワクチンおよび様々な用量のDNA免疫調節剤を筋肉内投与した。ワクチンは、BHV1およびBVDV1型および2型を不活化抗原として、そして、修正された生PI3ウイルスおよびBRSウイルスを含有した。免疫調節剤およびワクチンは、動物の同じ側で、頭側から肩の前で別々に与えられるか、または、同じ領域で動物の反対側に別々に与えられるか、または、1本のシリンジ中で混合されていた。DNA免疫調節剤の希釈スキームを表5.2に提供する。
評価
0、3、5、7、9、11、14、17、20、23および27日目に畜牛から回収した適当な血液学的試料からのサンプルに、免疫学的試験を実施した。この研究の標的病原体は、BHV−1、BVDV1および2であった。参考のために、BRSウイルスおよびPI3ウイルスに対する抗体力価も測定した。実験室は、過去に特定された標的病原体のための手法として、血清中和試験(SNT)を使用した。
0、3、5、7、9、11、14、17、20、23および27日目に畜牛から回収した適当な血液学的試料からのサンプルに、免疫学的試験を実施した。この研究の標的病原体は、BHV−1、BVDV1および2であった。参考のために、BRSウイルスおよびPI3ウイルスに対する抗体力価も測定した。実験室は、過去に特定された標的病原体のための手法として、血清中和試験(SNT)を使用した。
結果
統計的に有意な(P<0.010)処置x日の相互作用は、BHV1(27日目)に検出された。列挙した時点のいずれでも、BHV1並びにBVDV1型および2型には、すべての他の時点について有意な知見(P>0.10)は検出されなかった。動物が研究開始時に血清学的に陰性ではなかったので、BRSVおよびPI3の力価の結果はさらに評価しなかった。従って、処置の効果は証明できなかった。これらの知見のグラフ的表示を図6.1に示す。すべての統計的評価について、すべての比較は「ワクチンおよびデキストロース5%」の処置群に対して行ったことに留意されたい。
統計的に有意な(P<0.010)処置x日の相互作用は、BHV1(27日目)に検出された。列挙した時点のいずれでも、BHV1並びにBVDV1型および2型には、すべての他の時点について有意な知見(P>0.10)は検出されなかった。動物が研究開始時に血清学的に陰性ではなかったので、BRSVおよびPI3の力価の結果はさらに評価しなかった。従って、処置の効果は証明できなかった。これらの知見のグラフ的表示を図6.1に示す。すべての統計的評価について、すべての比較は「ワクチンおよびデキストロース5%」の処置群に対して行ったことに留意されたい。
Claims (11)
- a.陽イオン性リポソーム送達媒体;および
b.核酸分子
を含む、畜牛のウシ呼吸器病を処置するための免疫調節性組成物。 - リポソーム送達媒体が、多層状小胞脂質および突出した脂質からなる群から選択される脂質を含む、請求項1に記載の組成物。
- リポソーム送達媒体が、DTMAおよびコレステロール;DOTAPおよびコレステロール;DOTIMおよびコレステロール並びにDDABおよびコレステロールからなる群から選択される脂質の対を含む、請求項1または請求項2に記載の組成物。
- 核酸分子が、遺伝子挿入のない単離された細菌由来の核酸ベクターまたはその断片である、請求項1ないし請求項3のいずれかに記載の組成物。
- 静脈内、筋肉内、皮内、腹腔内、皮下、スプレー/エアロゾル、経口、眼内、気管内および鼻腔内からなる群から選択される投与のための、請求項1ないし請求項4のいずれかに記載の組成物。
- 生物学的物質が、免疫増強タンパク質、免疫原、ワクチン、抗菌剤またはこれらの組合せからなる群から選択される、請求項1ないし請求項5のいずれかに記載の組成物。
- ウシ呼吸器病が、ウイルス感染および/または細菌感染に起因する、請求項1に記載の組成物。
- 免疫調節性組成物を含み、該免疫調節性組成物が、
a.DOTIMおよびコレステロール脂質の組合せ;および、
b.遺伝子挿入のない単離された細菌由来の核酸ベクターまたはその断片である核酸分子
を含む、畜牛におけるマンヘミア・ヘモリチカに起因する臨床徴候を低減するための、請求項1ないし請求項7のいずれかに記載の組成物。 - 生物学的物質をさらに含む、請求項8に記載の組成物。
- 免疫調節性組成物を含み、免疫調節性組成物が、
a.DOTIMおよびコレステロール脂質の組合せ;および、
b.遺伝子挿入のない単離された細菌由来の核酸ベクターまたはその断片である核酸分子
を含む、ワクチンを投与されている動物の獲得免疫応答を改善するための、請求項1ないし請求項9のいずれかに記載の組成物。 - 免疫調節性組成物が、ワクチンと共投与されるか、ワクチンの後または前に投与されるか、または、ワクチンと混合されている、請求項10に記載の組成物。
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