JP2000511063A

JP2000511063A - ポリケチド類及びそれらの合成

Info

Publication number: JP2000511063A
Application number: JP10504933A
Authority: JP
Inventors: フランシスリードレイ，ピーター; スタウントン，ジェームズ; コルテス，ジュサス
Original assignee: バイオティカテクノロジーリミティド
Priority date: 1996-07-05
Filing date: 1997-07-04
Publication date: 2000-08-29
Also published as: EE9900014A; CA2259463A1; WO1998001571A2; CA2259420A1; SK182498A3; DE69733416T2; BR9710209A; AP9901444A0; EE03976B1; JP4173551B2; AP1029A; NO990012L; EA001744B1; DK0910633T3; AU3450997A; EP0909327A2; SI0910633T1; AU731654B2; CN1179046C; NZ333861A

Abstract

(57)【要約】スターターモジュール及び多くの異種延長モジュールを典型的には含むハイブリッドタイプＩポリケチドシンターゼ遺伝子が、新規のポリケチドを合成するために使用される。それは、好ましくは、タイプIIポリケチドシンターゼプロモーター、たとえばＳ．コエリカラーのactＩの制御下にある。

Description

【発明の詳細な説明】ポリケチド類及びそれらの合成本発明は、新規ポリケチド(plyketide)類及びそれらを組換え合成により調製するための方法及び手段に関する。異なったポリケチド生合成遺伝子クラスターに由来する、ポリケチド生合成遺伝子類又はそれらの一部は、予測される構造の特定の新規ハイブリッドポリケチドの生成を可能にするために操作され得る。本発明はまた、天然及び非天然のポリケチドの両者のインビボ及びインビトロの両者での高められたレベルの生成を可能にする新規宿主−ベクターシステムにも関する。ポリケチド類は、抗生物質又は他の薬理学的性質を有する多くの化合物、たとえばエリスロマイシン、テトラサイクリン、ラパマイシン、アビルメクチン及び FK506を包含する多くの及び構造的に異なった種類の天然の生成物である。特に、ポリケチド類は、ストレプトミセス（Streptomyces）及び関連する放線菌により多量に生成される。それらは、脂肪酸生合成の態様に類似する態様で、アシルチオエステルの反復した段階的縮合により合成される。天然のポリケチド間に見出される高い構造的な多様性が、“開始剤（starter）”又は“連鎖延長剤（ext ender）”単位としての（通常）アセテート又はプロピオネートの選択から；及び個々の縮合の後に観察される□β−ケト基の異なった程度の処理から生じる。処理段階の例は、□β−ヒドロキシアシル−への還元、還元に続く、２−エノイル−への脱水、及び飽和アシルチオエステルへの完全な還元を包含する。それらの処理段階の立体化学的成果がまた、個々のサイクルの鎖延長のためにも特定されている。ポリケチド類の生合成は、ポリケチドシンターゼとして知られる一群の鎖−形成酵素類により開始される。２種類のポリケチドシンターゼ(PKS)が、放線菌において説明されている。１つの種類、すなわちマクロライドエリスロマイシン、アベルメクチン及びラパマイシンのためのPKSにより表わされるタイプＩ PKS（図１）は、個々のサイクルのポリケチド鎖延長のための異なった組又は“モジュール”の酵素から成る（図２）(Cortes，J．など．Nature（1990）348：176-178 ；Donadio，S．など．Science（1991）252：675-679；MacNeil，D．J．など．Ge ne（1992）115：119-125；Schurecke，T．など．Proc．Natl．Acad．Sci．USA（ 1995）92：7839-7843)。注：用語“天然のモジュール”とは、本明細書において使用される場合、１つのサイクルのポリケチド鎖延長を達成する、β−ケトアシル−ACPシンターゼ（“KS”）遺伝子からアシルキャリヤータンパク質（“ACP” ）遺伝子までの隣接したドメインの組を言及する。用語“組合せモジュール”とは、第１の天然のモジュールにおける第１の点から第２の天然のモジュールにおける第２の同等の点まで延長する隣接したドメイン（及びドメイン部分）のいづれかのグループを言及するために使用される。前記第１及び第２点は、一般的に、すべてのモジュールに、すなわち代表的なKS，AT（アシルトランスフェラーゼ）又はACPドメインの同等の点で存在するコアドメインであろう。形成されるポリケチドの長さは、エリトロマイシン生合成の場合、鎖−開放チオエステラーゼ／サイクラーゼ活性を含むエリトロマイシン−生成PKSの酵素ドメインの遺伝子工学を用いての特異的転移により変更される（Cortes，J.など．Science（1995 ）268：1487-1489；Kao，C．M．など．J．Am．Chem．Soc．（1995）117：9105-9 106）。エリスロマイシン−生成PKS（また、６−デオキシエリトロノリドＢシンターゼ、DEBSとしても知られている）のモジュール５におけるケトレダクターゼドメインの部分をコードするDNAのイン−フレーム欠失は、エリスロマイシン類似体５，６−ジデオキシ−３−α−ミカロシル−５−オキソエリスロノリドＢ、５，６−ジデオキシ−５−オキソエリトロノリドＢ、及び５，６−ジデオキシ−６，６□−エポキシ−５−オキソエリスロノリドＢの形成を導びくことが示されている(Donadio，S．など．Science，（1991）252：675-679)。同様に、対応するPKS−コードのDNAの遺伝子工学及びサッカロポリスポラエリソスエ (Saccharopolyspora erythraea)中へのその導入による、DEBSにおけるモジュール４のエノイルレダクターゼドメインの活性部位残基の変更が、６，７−アンヒドロリリスロマイシンＣの生成を導びいた（Donadio S.など．Proc．Natl．Acad ．Sci．USA（1993）90：7119-7123）。国際特許出願番号WO93/13663号は、変更されたポリケチドを生成することができるDEBS遺伝子のさらなるタイプの遺伝子操作を記載する。しかしながら、多くのそのような試みは、非生産的であることが報告されており（Hutchinson C．R．and Fujii，I．Annu．Rev．Microbiol．（1995）49：201-238，p231）、そして変更されたポリケチドのさらなる例は報告されていない。高分子環状免疫抑制ポリケチドラパマイシンの生合成を支配するモジュラータイプＩ PKSをコードする、ストレプトミセスヒグロスコピカスからの遺伝子の完全なDNA配列が開示されている（Schwecke，T.など．（1995）P roc．Natl．Acad．Sci．USA 92：7839-7843）（図３）。そのDNA配列は、受託番号Ｘ86780としてEMBL／Genbank Databaseに寄託されている。第２種類のPKS、すなわちタイプII PKSは、芳香族化合物のためのシンターゼにより表わされる。タイプII PKSは、鎖延長のための一組の酵素活性のみを含み、そしてそれらは連続的なサイクルにおいて適切に再使用される(Bibb，M．J．など．EMBO J．（1989）8：2727-2736；S herman，D．H．など．EMBO J．（1989）8：2717-2725；Fernandez‐Moreno，M． A.など．J．Biol．Chem．（1992）267：19278-19290)。タイプII PKSのための“ 連鎖延長体”単位は通常、アセテート単位であり、そして特異的サイクラーゼの存在が芳香族生成物への完結された鎖の環状化のための好ましい経路を検出する (Hutchinson，C．R．and Fujii，I．Annu．Rev．Microbiol．（1995）49：201-2 38)。ハイブリッドポリケチドは、クローン化されたタイプII PKS遺伝子含有DNA の、異なったタイプII PKS遺伝子クラスターを含む他の株中への導入により、たとえばアクチノルホジン（actinorhodin）、すなわちストレプトミセスコエリカラー(Streptomyces coelicolor)からの青色着色されたポリケチドのための遺伝子クラスターに由来するDNAの、ストレプトミセスガリレウス(Streptomyces gal ileus)のアントラキノンポリケチド産生株中への導入により得られて来た（Barr el，P．L．など．J．Bacteriol．（1990）172：4816-4826）。国際特許出願番号WO95/08548号は、ハイブリッドポリケチドを得るために、他のタイプII PKSクラスターからの非相同DNAによるアクチノルホジンPKS遺伝子の置換を記載する。その同じ国際特許出願番号WO95/08548号は、アクチノルホジンのための生来の遺伝子クラスターを実質的に欠いているストレプトミセスコエリカラーの株の構成、及びストレプトミセスコエリカラーから単離された低コピー数のプラスミドベクターSCP２^*に由来するプラスミドベクターpRM5の前記株への使用を記載し（Bibb，M．J．and Hopwood，D．A．J．Gen．Microbiol．（1981） 126：427）を記載し、そしてここで、非相同PKS−含有DNAがアクチノルホジン遺伝子クラスターの分岐ActＩ／ActIIIプロモーター領域の制御下で発現され得る( Fern andez‐Moreno，M．A．など．J．Biol．Chem．（1992）267：19278-19290)。プラスミドpRM5はまた、特異的活性化因子タンパク質、すなわちActII−orf４のための遺伝子をコードするアクチノルホジン生合成遺伝子クラスターからのDNAも含む。前記ActII−orf４タンパク質は、ActＩ／ActII二方向性プロモーターの制御下で配置される遺伝子の転写のために必要とされ、そして生長する菌子体における定常期への増殖からの変化の間、発現を活性化する（Hallam，S．E．など． Gene（1988）74：305-320）。ストレプトミセスにおけるタイプIIPKSクラスターは、経路特異的活性化因子遺伝子により活性化されることが知られており（Narva，K．E．and Feitelson， J．S．J．Bacteriol．（1990）172：326-333；Stutzman‐Engwall，K．J.など． J．Bacteriol（1992）174：144-154；Fernandez‐Moreno，M.など．Cell（1991 ）66：769-780；Takeno，E．など．Mol．Microbiol．（1992）7：837-845；Taka no，E．など．Mol．Microbiol．（1992）6：2797-2804）、その遺伝子生成物が特異的プロモーターからの転写のために必要とされる。前記活性化因子遺伝子の遺伝子生成物は、その活性化因子遺伝子が位置するPKS遺伝子クラスターのプロモーターにおける特異的DNA配列に結合することによって作用することが推定される（Stutzman‐Eagwall，K．J．など．J．Bacteriol（1992）174：144-154；T akano，E.など．Mol．Microbiol．（1992）7：837-845）。DnrＩ遺伝子生成物は、Ｓ．コエリカラーのActII−orf４遺伝子における突然変異を補足し、このことは、DnrＩ及びActII−ｏrf４タンパク質が類似する標的物に対して作用することを意味する。マクロライドポリケチドスピラマイシンのためのタイプＩ PKS遺伝子クラスター近くに位置する遺伝子（srmR）が記載されており（EPO 524 832 A2 ）、この遺伝子はマクロライドポリケチドスピラマイシンの生成を特異的に活性化するが、しかしそのような遺伝子の他の例は見出されていない。また、タイプＩ PKS遺伝子に対して作用する活性化因子のActII −orf４／DnrＩ／RedDファミリーの相同体も記載されていない。多数の治療的に重要なポリケチドが同定されているが、増強された性質を有し、又は完全に新規の生物活性を有する新規ポリケチドを得る必要性が残っている。モジューラータイプＩ PKSにより生成される複合体ポリケチドは、それらが抗駆虫剤、殺昆虫剤、免疫抑制剤、抗菌剤、又は抗細菌剤としての既知の利用性を有する化合物を包含することにおいて、特に価値ある。それらの構造的な複雑さのために、そのようなポリケチドは、全体的な化学合成により、又は既知のポリケチドの化学的変性により容易に得ることはできない。構成され、生存性であり、そして所望するポリケチド生成物を生成するハイブリッドPKS遺伝子のすべて又は大きな画分が得られるよう、実際的に個々のモジュールを開発する信頼でき且つ特異的な手段を開発する必要性がある。これは、多数の個々のPKS遺伝子組を、そのPKS遺伝子組のすべてのメンバーの分析が実施できない場合、タイプＩモジュラーPKS遺伝子を組合して用いて創造することが所望される場合、特に真実である。そのようなポリケチドのライブラリーは、価値ある生物活性性質を有する新規のポリケチドの発見のために、土壌サンプルのランダムスクリーニングに代わるひじょうに魅力ある変法を提供する。同様に、ストレプトミセスリビデンス（Streptomyces lividans）66及びストレプトミセスコエリカラーのために記載されるような添加されるチオストレプトンによる誘発を用いて(Takano，E．など．Gene（1995）166：133-137)、及び国際特許出願番号WO95/0 8548号におけるストレプトミセスコエリカラーに関して、分化の開始で栄養シグナルを用いることによって、一定のストレプトミセスにおいて異種遺伝子の制御された発現を可能にする特定の宿主ーベクター組合せが報告されているが、ストレプトミセス又は関連する糸状菌の構築された株において、実質的に価値ある二次代謝物、たとえば複合体ポリケチドの１つの生合成を支配する、１つの構造遺伝子又は一組の構造遺伝子の発現を制御し、そしてさらに増強するための一般的な方法の開発のための重要な必要性が残っている。本発明の１つの観点は、PKS遺伝子アセンブリー（特にタイプＩの）が負荷モジュール（続く延長モジュール）をコードする本発明者の認識から発生する。従って、図２は、DEBS遺伝子の構成を示す。第１の読取り枠は、次の３種のモジュール：負荷モジュール(ery−負荷）及び２種の延長モジュール（モジュール１及び２）から成る第１の、多−酵素又はカセット（DEBS１）をコードする。負荷モジュールは、アシルトランスフェラーゼ及びアシルキャリヤータンパク質を含んで成る。これは、WO93/13663（上記で言及された）の図１と比較され得る。これは、わずか２種のモジュールから成る０ RF１を示し、それらの第１のモジュールは、実際、負荷モジュール及び第１の延長モジュールの両者である。１つの観点において、本発明は、第１のタイプＩ PKSの少なくとも１つのドメインをコードする第１の核酸部分（又は複数の部分）を、前記第１のPKSに対して非相同である少なくとも１つのタイプＩ PKSドメインをコードする第２の核酸部分（又は複数の部分）と共に一緒にアセンブルすることによって、負荷モジュール、及び少なくとも１つの、及び好ましくは多くの延長モジュールを含んで成るハイブリッドPKS遺伝子アセンブリーの生成に関する。一般的に、前記核酸はDNAである。前記第１及び第２の部分は、それぞれ異なったPKSのドメインをそれぞれコードすることができる。好ましくは、ハイブリッドPKSは、いづれか与えられたカセット内の負荷モジュール及び１〜６の延長モジュールをコードする。より好ましくは、少なくとも２つの延長モジュールが存在する。NB：６以上のモジュールに起因する生成物は、シンターゼ（たとえば、ラパマイシン）のアセンブリーに起因する。前記第１の部分は負荷モジュールをコードするが、ところが第２の部分は、１又は複数の延長モジュールをコードする。他方では、前記第１の部分は負荷モジュールのすべて又は一部、前記第１の２種の延長モジュール、及びたとえばエリスロマイシンPKSの連鎖停止酵素（一般的には、チオエステラーゼ）をコード、そして前記第２の部分は異なったPKSの１又は複数のドメイン及び／又はモジュールに対応する。負荷モジュールが延長モジュールに対して非相同であり、そして変更されたスターター単位を有するポリケチドを誘導するハイブリッドPKS遺伝子アセンブリーを供給することが特に有用である。NB：これは、負荷モジュールの存在を認識しないので、従来技術には、まったく知られていない概念である。WO93/13663は、単一の機能（すなわち、単一の酵素）を不活性化することによる、又は“完全なモジュール”をその欠失、挿入又は置換により影響することによるPKS遺伝子の変更を言及する。しかし、それらの用語においては、負荷アセンブリーはモジュールではない。負荷モジュールが多くの異なったカルボン酸単位を受容するモジュールである場合、ハイブリッド遺伝子アセンブリーが多くの異なったポリケチドを生成するために使用され得る。たとえば、ハイブリッド遺伝子アセンブリーは、ery延長モジュールと共にavr負荷モジュールをコードする核酸を用いることができる。負荷モジュールは異常な酸単位を許容することができる。他方では又はさらに、本発明者は、遺伝子アセンブリーの末端を変更することができる。従って、PKSの正常な連鎖停止酵素（通常、チオエステラーゼ）は、異なったタイプの生成物を誘導する酵素により置換され得る。従って、アミノ酸鎖にポリケチド鎖を連結するラパマイシンシステムからの酵素を使用することができる。これは、たとえば□β−ラクタム誘導体を生成するためのポリペプチド／ポリケチドの組合せを合成するために使用され得る。もちろん、異なった酸化状態で及び／又は異なった立体化学を伴って、ケチド単位を付与するモジュールにより延長モジュールを置換することによって、生成物ポリケチド内を変更することができる。NB：ポリケチド鎖におけるメチル基の立体化学がアシルトランスフェラーゼにより決定されることが一般的に仮定されている。しかし、それは実際、PKSの他のドメインの特徴であり、そして従って、それぞれ、それらのドメインの置換により、又はモジュール置換によってのみ変動に開放的である。メチル及び他の置換基は、アシルトランスフェラーゼドメイン置換又は全体のモジュール置換により付加され又は除去され得る。本発明のこの観点は、酵素システム及び従って、所望するタイプのポリケチド生成物を構成するために使用され得るビルディングブロックとしてのPKS遺伝子モジュールの処理に大きく関係している。これは一般的に、モジュール及び複− モジュール群の切除及びアセンブリーを包含する。モジュラー間連結を製造し、そして破壊するための正しい位置はモジュール間の連結領域に存在すると思われ、ここで制限されたタンパク質分解を用いる本発明者の前に報告された実験がタンパク質の表面上に存在するそれらのリンカーを示している（Aparicio，J．F．など．（1994）J．Biol．Chem．269：85 24-8528；Staunton，J.など．（1996）Nature Structural Biol．3：188-192）。しかしながら、本発明者は、ドメインの端に隣接する酵素コード部分内で切断し、そして連結することが好ましいことを見出した。DNAは、すべてのモジュラーPKS間で、ここに高く保存され、そしてこれが転写され得るハイブリッドの構成を助けることができる。それはまた、重要である、コードされる酵素の活性部位の空間の維持を助ける。たとえば、avr負荷モジュールによりery負荷モジュールを置換することによってハイブリッド遺伝子を生成することにおいて、本発明者は、少量の続くケトシンターゼ（KS）ドメインと一緒にeryモジュールを除去した。KSドメイン（活性部位から十分に間隔が開いている）の開始は、高く保存されており、そして従って、負荷モジュールとKSドメインとの間のリンカー領域における明白な部位に他のスプライシング部位を供給する。次に、切除されたer yモジュールが、avr負荷モジュールにより置換された。実際、負荷モジュールを置換する場合、負荷モジュールドメイン（一般的にアシルトランスフェラーゼ（AT）及びアシルキャリヤータンパク質(ACP)）のみならず、また続く延長モジュールの開始でのKSを置換することが所望される。典型的には、切除された負荷モジュールは、プロピオネートスターターを提供し、そしてその置換は、１又は複数の異なったスターターを提供するよう意図される。しかし、プロピオネートは宿主細胞におけるプロピオネートプールから延長モジュールのKSまでを供給し、所望する生成物の希釈を導びく。これは、KSドメインのすべて又はほとんどを包含する延長された負荷モジュールを置換することによって十分に妨げられ得る。（スプライス部位は、KS遺伝子の末端領域に、又は続くAT遺伝子の始めに、又はKSとATドメインとの間のリンカー領域に存在することができる。） “モジュール”を置換する場合、本発明者は、“天然の”モジュールに制限されない。たとえば、切断され、そして／又は置換され、そして／又は挿入されるべき“組合せモジュール”は、天然型モジュールのその対応するドメインから、たとえば１つのモジュールのATから次のモジュールのATまで、又はKSからKSまで延長することができる。スプライス部位は、その対応する保存された端の領域に、又は制限されたタンパク質分解のための既知の部位近くのドメイン間のリンカー領域に存在するであろう。組合せモジュールはまた、同時に複数のモジュールを付加するために、“二重”又はそれ以上の複数で存在することができる。本発明はさらに、そのような遺伝子アセンブリー、そのような遺伝子アセンブリーを含むベクター、及びそれらを発現することができる形質転換生物を提供する。形質転換生物は、組換えプラスミドを含むことができ、又はプラスミドが組込むことができる。int配列を有するプラスミドは、宿主の染色体の特異的結合部位(at 1)中に組込むであろう。形質転換生物は、たとえばエリスロマイシン（図２Ｂに示されるような）及び／又は他のポリケチドの生成において通常な生合成修飾のすべて又はいくつかを実施することによって、初期生成物を修飾することができる。１又は複数の“天然”のヒドロキシ基又は糖基を有さない生成物を生成するために、通常の経路のいくつかが阻止されるような変異体生物を利用することができる。本発明はさらに、形質転換体生物により直接的に又は間接的に生成できるような新規のポリケチドを供給する。（これは、生物において酵素的修飾を受けており、そして／又は単離され、そして化学的修飾にゆだねられているポリケチドを包含する。）第２の観点においては、本発明は、天然においては、連結されず、そして好ましくはその特異的な同起源活性化因子遺伝子に連結されるタイプII PKSのものであるプロモーターに操作可能的に連結される構造遺伝子成分を含んで成るハイブリッド遺伝子アセンブリーを供給する。Ｓ．コエリカラー以外の宿主（通常、他のアクチノミセス、特に他のストレプトミセス）における発現のために、Ｓ．コエリカラーからのactＩプロモーター及びActII−orf４活性化因子遺伝子を使用することが、特に好ましい。構造遺伝子成分は、タイプＩ PKS遺伝子システムのものであり得る。本発明は、その第２の観点において、そのような遺伝子アセンブリーを含むベクター、及びそれを発現することができる形質転換体生物をさらに供給する。ハイブリッドタイプＩ遺伝子がタイプIIプロモーターの制御下で発現されるよう、本発明の前記２つの観点を組合すことが可能である。さらなる観点において、本発明は前記観点により得ることができる新規ポリケチドを供給する。それらは次のものを包含する：（ｉ）Ｃ−13がエチル以外の側鎖、一般的には、□−枝分れＣ₂−Ｃ₅アルキル基、Ｃ₃−Ｃ₈シクロアルキル又はシクロアルケニル基（任意には、たとえば１又は複数のヒドロキシ、Ｃ_1-4アルキル又はアルコキシ基、もしくはハロゲン原子により置換されている）、又は置換され、又は十分に又は部分的に不飽和の、任意には置換された、Ｏ又はＳを含む３〜６員の複素環（シクロアルキルに関しては）を担持するエリスロマイシン類似体（14−員環を有するマクロライド化合物である）。Ｃ−13置換基Ｒのための好ましい候補体は、avrスターターモジュール又はラパマイシンスターター変異体による基質として使用できるカルボキシレート単位Ｒ・CO．Ｏ−の基である。好ましい基質は、イソブチレート（Ｒ＝ｉ＝ Pr）及び２−メチルブチレート（Ｒ＝１−メチルプロピル）を包含する。他の可能性は、ｎ−ブチレート、シクロヘキシルカルボキシレート、シクロヘプタニルカルボキシレート、シクロヘキセニルカルボキシレート、シクロヘプテニルカルボキシレート、及び環状カルボキシレートの環メチル化された変異体を包含する。エリスロマイシン類似体は、PKSの初期生成物（６−デオキシエリスロノリド）、又は１又は初数の通常の生合成段階の後の生成物に対応する。図２Ｂに示されるように、それらは、６−ヒドロキシル化；３−Ｏ−グリコシル化；５− Ｏ−グリコシル化；12−ヒドロキシル化；及び特異的糖メチル化を含んで成る。従って、前記類似体は、６−デオキシエリスロノリドＢ、エリスロマイシンＡ、及び図２Ｂに示されるような種々の中間体及び代用物に対応する類似体を包含する。さらに、又は他方では、化学的変性が存在する。たとえば、１又は複数のヒドロキシ基が、酸化され得（たとえば、３−ケト誘導体を生成するために）、又は排除され得る（たとえば、10−エン誘導体を生成するために）。本発明に適用できる化学的変性のいくつかの例は、アジスロマイシン、ロキシスロマイシン、クラリスロマイシン、及びいくつかのフラス特許(Roussel Uclaf)第2697523号、第2697524号及び第2702480号に開示されるものを生ぜしめる化学的変性の例である。（ii）１又は複数のケチド単位の酸化状態（すなわち、基−CO−，−CH（OH） −，＝CH−及び−CH₂−からの代用物の選択）においてその対応する“天然の” 化合物（図２ａ）とは異なるエリスロマイシン類似体。いづれかの−CH（OH）−の立体化学がまた、独立して選択できる。 (iii)“天然の”メチル側鎖の不在下でのその対応する“天然の”化合物とは異なるエリスロマイシン類似体。（これは、変異体AT の使用により達成できる）。通常の延長モジュールは、メチル化されていない及びメチル化されたケチド単位を供給するためにＣ₂又はＣ₃単位のいづれかを用いる。本発明者は、メチル化された単位が天然である場合、メチル化されていない単位を供給し（そして、天然において、メチル化されていない単位が存在するシステムにおいて、逆もまた同じである）、そしてまた、エチル置換基を供給するために、大きな単位、たとえばＣ₄を供給することができる。（iv）“天然の”メチルの立体化学におけるその対応する“天然の”化合物とは異るエリスロマイシン類似体；及び／又はメチル以外の環置換基。（ｖ）（ｉ）〜（iv）の複数の選択の特徴を有するエリスロマイシン類似体。（vi）下記構造式：で表わされるトリケチドラクトン（“TKL”）。Ｒ³は、スターター単位に由来する側鎖であり、そして上記（ｉ）に記載されるＣ−13側鎖について記載される変動を受けやすい。Ｒ¹及びＲ²は、“天然の”メチルであるが、しかしそれらのいづれか又は両者は水素又はエチルにより置換され得る（ブチレート用いる連鎖延長単位を使用する）。天然の立体化学は、下記構造式：により表わされ、ここでＲ¹，Ｒ²，Ｒ³及びOHのいづれか１つ又は２つ、又はすべては反対の立体化学を有することができる。一般的に、TKL類似体は、上記（ｉ）〜（ｖ）においてエリスロマイシンについて記載されるような変動性を有することができる。（vii）エリスロマイシン以外の型のポリケチド、たとえばセクション（ｉ）〜（ｖ）に記載される変性に対応する変性を有するラパマイシン又はアベルメクチン。たとえば、本発明者は、下記構造式で表わされる化合物を、添加されるスターター酸として用いてラパマイシン変異体を生成した。（viii）ポリケチド鎖の切断された又は延長された下記型：ａ）ジケチドＲ¹−CHOH-CHR²−CO₂H ｂ）トリケチドＲ¹−CHOH-CHR²−CHOH−CHR³−CO₂H ｃ）テトラケチドＲ¹−CHOH−CHR²−CHOH−CHR³−CHOH−CHR⁴−CO₂H ｄ）五−、六−、七−、及びより大きなケチド鎖。前記鎖は、（ｉ）〜（iv）に記載されるような変異体を有することができる。（ix）ケチド／非ケチド融合体。ラパマイシンは、ポリケチド／ペプチド融合体の天然の例である。手段、たとえばペプチド組込み酵素が、１又は複数のアミノ酸に融合されるポリケチドを創造するために使用され得る。（ｘ）ラクトン、ヘミケタール、ケタール、ラクタム又はラクトールの形成により環化されるポリケチド（又は融合体）。（xi）非PKS酵素による追加の処理、たとえば１又は複数のヒドロキシル化、エポキシ化、グリコシル化及びメチル化を受けた、上記のいづれかの誘導体。本発明は、新規の複合体ポリケチドを得るための方法；及び新規及び既知の両者のポリケチドの生成を高めるための新規方法を提供する。従って、本発明の１つの態様においては、天然のタイプＩ PKS(“ドナー”PKS)内の個々のモジュール又はドメインをコードするDNAの１又は複数のセグメントが、もう１つの天然のタイプＩ PKS(“受容体”PKS)の個々のモジュール又はドメインをそれぞれコードするDNAを置換するために使用されて来た。ハイブリッドPKSにアセンブルされる延長モジュールの合計数は固定されていないが、しかしいづれか１つの多酵素又はカセットにおけるそのようなモジュールの好ましい数は、最小の可能な機能的PKSを創造する１〜天然のタイプＩ PKS、すなわちストレプトミセスヒグロスコピカスのrap PKSの単一の多酵素に収容されることが見出された連続モジュールの最大数に等しい６の範囲である。ハイブリッドPKS遺伝子が生存性であり且つ生産性であろうことを定義するための特に好ましい態様においては、受容体PKS DNAは、適切なプラスミドベクターに収容される、ery PKS)又は他の、好ましくは天然のタイプＩ PKSの、負荷モジュール、第１の２種の延長モジュール及び連鎖停止チオエステラーゼから成るか、又はそれらを含んで成る。１又は複数の個々のドメイン、又は１又は複数の個々のモジュールのいづれかが、類似するドメイン又はモジュールをコードし、そして異なった天然のタイプＩ PKS(“ドナー”PKS)に由来するDNAにより特異的に置換される。変更されたDNA配列が、適切な微生物中に導入され、そして遺伝子的に構築された微生物がポリケチド生成のために適切な条件下で培養される。驚くべき事には及び思いがけなく、それらの遺伝子的に構築された微生物は、適切な条件下で培養される場合、天然の受容体PKSのポリケチド生成物の非天然類似体を生成することが見出されており、そして適切な場合、その生成物は天然のポリケチドと同じ処理を受けることが見出されている。本発明のこの観点において、前記プラスミドベクターは、ストレプトミセス及び関連するグラム陰性細菌におけるクローニングのために有用であることが十分に知られているプラスミドベクターの列挙から選択されたいづれかのものであり得る。ストレプトミセスコエリカラーＭ110のSCP２^*プラスミドに基づいて広い宿主範囲を有する低いコピー数のプラスミドベクターを選択することが特に有用であることが見出された。この目的のために特に適切な２種のSCP２^*−由来のプラスミドの構成は本明細書に記載されている。複製のストレプトミセス放線菌起点を欠いているが、しかし同じ特徴を有するそれらの２種のプラスミドの１つの構成における前駆体プラスミドがまた、特に適切である。相同組換えによる組込みが、Ｅ．コリ及び放線菌において活性的な複製の起点を単に有するそのようないわゆる自殺ベクターを用いて達成され得ることは当業界において良く知られている（ery CI遺伝子を包含する染色体DNAフラグメントのＳ．エリスラエアの染色体中への組込みによるエリスロマイシン生成の刺激、Hanel，F．など．Biotechnology Letters（1993 ） 15：105-110；ストレプトミセスグリセオフスカスの染色体中へのプラスミドの挿入、Larson，J．L．and Hershberger，C．L．Plasmid（1990）23：252-256 ；また、環状又は線状DNAの変性がストレプトミセスコエリカラーＡ３（２）のインテグラティブ形質転換を促進する：他の生物への可能な関連性、Oh，S．H． and Charter，K．F．（1997）J．Bacteriol．179 ：122-127も参照のこと）。“受容体”PKSのトリケチドラクトンシンターゼは、負荷モジュール、延長モジュール、及びいづれか天然の又は非天然のタイプＩ P KSからの連鎖停止活性体から構成され得るが、しかし、この目的のために特に適切なものは、エリスロマイシン、ラパマイシン、アベルメチクン、テトロナシン、オレアンドマイシン、モネンシン、アンホテリシン及びリファマイシンの生合成のためのタイプＩ PKSの成分であり、それらのすべてに関して、遺伝子及びモジュラー構成は少なくとも部分的に、遺伝子配列分析を通して知られている。ドナーPKSの負荷モジュールの特に好ましい例は、ゆるめられた特異性を示すそれらの負荷モジュール、たとえばストレプトミセスアベルミチリス（Streptomyc es avermitilis）のアベルメクチン(avr)−産生PKSの負荷モジュール；又は異常な特異性を有するそれらの負荷モジュール、たとえばラパマイシン−、FK506− 及びアスコマイシン−産生PKS（それらのすべては、天然において、シキメート由来のスターター単位を受容する）の負荷モジュールである。ハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子の発現のために適切な遺伝子的に構築された細胞は、自律形又は組込まれた形のいづれかで、ベクターを維持することができるいづれかの放線菌から選択され得る。特に効果的な宿主は、サッカロポリスポラエリスラエア(Saccharopolyspora erythraea)、ストレプトミセスコエリカラー、ストレプトミセスアベルミチリス、ストレプトミセスグリセオフスカス（Streptamyces griseofuscus）、ストレプトミセスシンナモネンシス（S treptomyces cinnamonensis）、ミクロモノスポラグリセオルビダ(Micromonos pora griseorubida)、ストレプトミセスヒグロスコピカス、ストレプトミセスフラジアエ（Streptomyces fradiae）、ストレプトミセスロンジスポロフラバス(Strept omyces longisporoflavus)、ストレプトミセスラサリエンシス（Streptomyces lasaliensis）、ストレプトミセスツクバエンシス(Sterptomyces tsukubaens is)、ストレプトミセスグリセウス（Sterptomyces griseus）、ストレプトミセスリビダンス、ストレプトミセスリモサス（Streptomyces rimosus)及びストレプトミセスアルバス（Streptomyces albus）である。それらは、SCP２^* −由来のプラスミドベクターが自律的に複製することが知られている宿主、たとえばＳ．コエリカラー、Ｓ．アベルミチリス及びＳ．グリセオフスカス、及びSC P２^*−由来のプラスミドがプラスミド挿入体上の配列と染色体上の配列との間の相同組換えを通して染色体中に組込まれるようになる他宿主、たとえばサッカロポリスポラエリスラエア；及び自殺プラスミドベクターにより完全に形質転換されるすべての宿主を包含する。本発明のさらなる観点においては、ドナー“PKS DNAを含むプラスミドが、ハイブリッドPKSを創造するために、前記プラスミドが相同組換えにより細菌染色体上の受容体PKS遺伝子中に組込まれるようになる条件下で宿主細胞中に導入される。好ましい態様は、ドナーPKS DNAが負荷モジュールをコードするセグメントを含む場合であり、そのような場合、この負荷モジュールは染色体上の受容体PKS遺伝子に連結されるようになる。そのようなハイブリッドPKSは、本明細書に記載されるような適切な条件下で培養される場合、価値あり且つ新規のハイブリッドポリケチド生成物を生成する。特に、受容体PK Sの負荷モジュールがアベルメクチン−産生（avr）PKSの負荷モジュールにより置換される場合、そのハイブリッドポリケチド生成物は、avr PKSにより使用される生成物に代表的なスターター単位を含む。従って、ery PKSの負荷モジュールがavr負荷モジュールにより置換される場合、そのようなハイブリッドPKSを含むサッカロポリスポラエリスラエア株は、avr PKSにより典型的に使用されるスターター単位を含む14−員のマクロライドを生成することが見出される。Ｓ．エリスラエアのそのような組換え細胞により生成される14−員のマクロライドポリケチドがコリ又はマイシンＡの誘導体を含むことが見出されることは、ひじょうに驚くべき且つ意外なことであり、このことは、新規の及び治療的に価値あるエリスロマイシンＡ誘導体へのハイブリッドPKSの生成物の形質転換のために必要とされるいくつかの処理段階が正しく実施されることを示す。本発明のさらなる観点は、ハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子（この構成は本明細書に記載される）の形質転換が、ハイブリッド遺伝子がプロモーターのための特異的活性化因子遺伝子に連結されるタイプII PKS遺伝子のためのプロモーターの制御下に配置される場合、特異的に高められる意外で且つ驚くべき発見である。そのような制御下でのハイブリッドタイプＩ遺伝子を含む遺伝子的に構築された細胞がポリケチド生成のために適切な条件下で培養される場合、有意に高められたレベルのハイブリッドポリケチドが生成されることは、特に注目すべきである。価値あるポリケチド生成物の収量におけるそのような特異的上昇はまた、タイプII PKS プロモーター及び活性化因子遺伝子の制御下塗り層に配置されるタイプＩ PKSにより生成される天然のポリケチドに関しても見られる。好ましい態様においては、SCP２^*−由来のプラスミド、又は複製のストレプトミセス放線菌起点のみを欠いている前駆体プラスミド上に存在するタイプＩ PKS遺伝子が、ストレプトミセスコエリカラーのアクチノルホジン生合成遺伝子クラスターに由来するactＩプロモーターの制御下に配置され、そしてここで、ベクターはまた、特異的活性化因子タンパク質ActII−orf４をコードする構造遺伝子を含む。組換えプラスミドは、ストレプトミセス及び関連する属から選択されたストレプトミセスコエリカラー以外の細菌宿主中に、その導入されるPKS遺伝子、又は宿主株にすでに存在するPKS遺伝子のいづれかがactＩプロモーターの制御下で発現される条件下で導入される。組換え菌株は所望する特異的ポリケチド生成物を生成し、そして活性化因子遺伝子は、プロモーターからの転写効率を増強するために、特定のプロモーターの存在のみを必要とする。これは、ActII−orf４ファミリーの活性化因子がDNA結合タンパク質の認識される種類に属さないことにおいて特に驚くべきことである。従って、追加のタンパク質又は他の制御要素が、アクチノルホジン又は関連するイソクロマンキノン色素を生成することが知られていない異種宿主における活性化を可能にするために必要とされることが予測される。組換え株が、同じPKS 遺伝子が天然のプロモーターの制御下にある場合よりも10倍以上までの特異的ポリケチド生成物を生成し、そしてその特異的ポリケチド生成物がまた、増殖期から定常期への転移の間でのみよりもむしろ、増殖する培養物において早熟して生成されることはまた驚くべきことである。そのようなポリケチドは、抗生物質、抗癌剤、免疫抑制剤として、及びヒト及び獣医学における多くの他の目的のために有用である。遺伝子的に構築された細胞がサッカロポリスポラエリスラエアである場合、その活性化因子及びプロモーターは、アクチノルホジンPKS遺伝子クラスターに由来し、そしてactＩ／actII−orf４−調節されたPKS遺伝子クラスターは、プラスミドベクターの部位特異的組込みに従って、染色体に収容され、適切な条件下でのそれらの細胞の培養はそのような異種制御下でなくても、相当する菌株においてよりも合計10倍以上までの14−員のマクロライド生成物を生成する。Ｓ．エリスラエアのそのような遺伝子的に構築された細胞において、この異種制御下でのPKS遺伝子がその構成が本明細書に記載されるハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子である場合、再び、10倍以上までのハイブリッドポリケチド生成物が、そのような制御下にない同じハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子に比較して、得られる。特に、ハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子が、負荷モジュールがavr負荷モジュールにより置換されているery PKS遺伝子である場合、10倍の上昇が、本明細書に記載されるような適切な条件下で培養される場合、遺伝子的に構築された細胞により生成される新規の14−員のマクロライドの合計量に見出される。細胞フリーのシステムにおいてモジュラーポリケチドシンターゼが機能する能力が、サッカロポリスポラエリスラエアのDEBS１ −TEシステムに関して（Leadlay，P．F．Lecture to 9th International Sympos ium on the Biology of Actinomycetes，Moscow，July 10-15（1994）S7-2；Wie smann，K．E．など．Poster Presentation P2-02，P154，Abstracts of the 9th International Symposium on the Biology of Actinomycetes，Moscow，July 1 0-15（1994）；Wiesmann，K．E.など．（1995）Chem．and Biol．2：583-589）、及びDEBSI，DEBS２及びDEBS３による６−デオキシエリスロノリドＢの生成に関して(Pieperなど．（1995）Nature 378：263-266)、開示されている。従って、Ｓ．エリスラエラにおいてactＩプロモーターを活性化し、そしてその生来の宿主株においてよりもより効果的に活性化するactII−orf４遺伝子の驚くべき且つ意外な能力は、本明細書に記載されるような組換えＳ．エリスラエア株により生成される活性DEBS酵素の量の対応する印象的且つ価値ある上昇を導びく。遺伝子的に構築された細胞を増殖する適切且つ好ましい手段、及び天然及びハイブリッドポリケチドの両者を単離する好ましい手段は、例に十分に記載されている。本発明のいくつかの態様が添付図面により記載されるであろう。図１は、３種の既知のポリケチドの化学式を付与し；図２Ａは、６−デオキシエリスロノリドシンターゼＢ（DEBS）、PKS産生６− デオキシエリスロノリドＢ(６−DEB)、エリスロマイシンＡの前駆体の機能を示す図であり；図２Ｂは、エリスロマイシンＡへの６−DEBの転換を包含するエリスロマイシンの後−PKS生合成を示し；図３は、ラパマイシンの生合成を示す図であり；図４は、プラスミドpDEL702の構成を示す図であり；図５は、プラスミドpJC3の構成を示す図であり；図６は、プラスミドpCJRJ01、及び現在、pCJR24と改名されている前駆体プラスミドp20.5の構成を示す図であり；図７は、現在、プラスミドpCJR29と改名されているプラスミドpCJR110の構成を示す図であり；図８は、プラスミドpNTEP2の構成を示す図であり；図９は、プラスミドpRMTE及びpCJRTEの構成を示す図であり；後者のプラスミドは現在、pCJR30と改名されており；図10ａ及びｂは、プラスミドpIG1の構成を示す図であり；図11は、プラスミドpND20の構成を示す図であり；図12は、プラスミドpKW15の構成を示す図であり；これは負荷モジュール、第１の延長モジュール、及びモジュールを受けることができる連鎖−停止チオエステラーゼをコードするDNAを包含し；図13は、プラスミドpAR33の構成を示す図であり；図14は、プラスミドpAR8の構成を示す図であり；図15は、プラスミドpE1A2TEの構成を示す図であり；図16は、プラスミドpKS22の構成を示す図であり；図17ａは、プラスミドpIB018の構成を示す図であり；図17ｂは、プラスミドpIB017の構成を示す図であり；図18は、プラスミドpIB015及びプラスミドpIB016の構成を示す図であり；図19は、プラスミドpJLK15の構成を示す図であり；図20は、プラスミドpJLK18の構成を示す図であり；図21は、プラスミドpJLK21の構成を示す図であり；図22は、プラスミドpKR1-0の構成を示す図であり；図23は、プラスミドpKET0の構成を示す図であり；図24は、プラスミドpM07の構成を示す図であり；図25は、プラスミドpCJR26の構成を示す図であり；図26は、プラスミドpC-ATXの構成を示す図であり；図27は、プラスミドpC-AT12の構成を示す図であり；図28は、プラスミドpCJR49の構成を示す図であり；図29は、プラスミドpCART11の構成を示す図であり；図30は、プラスミドpARE24の構成を示す図であり；図31は、プラスミドpARL3の構成を示す図であり；図32は、プラスミドpAVLDの構成を示す図であり；図33は、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のゲノム中へのpAVLDの組込みを示し；そして図34は、Ｓ．エリスラエアTER43のゲノム中へのpAVLDの組込みを示す。本発明が現在、例により例示されるが、それらは本発明を制限するものではない。次の培地及び溶液が使用された。スクロース−スクシネート限定の培地スクロース 69ｇ KNO₃ 10ｇ琥珀酸 2.36g KH₂PO₄ 2.7g MgSO₄ ・７H₂O 1.2ｇ ZnCl₂ 10mg MnCl₂ ・４H₂O 6.2ｇ CuCl₂ ・２H₂O 0.53mg CoCl₂ 0.55mg FeSO₄ ・７H₂O 2.5mg CaCl₂ ・２H₂O 38mg Mill−Ｑ水全体を１ｌにするまでの量 KOH pH６〜6.4にするまでの量YEME 水道水培地スクロース 340ｇグルコース 5ｇ酵母抽出物 3ｇトリプトン 5ｇペプトン 5ｇ酵母抽出物 2.5ｇ麦芽抽出物 3ｇ EDTA 36mg グルコース 10ｇ水道水全体を１ｌにするまでの量 KOH pH7.1にするまでの量殺菌後：2.5ＭのMgCl₂ 2ml微量元素溶液：ZnCl₂，40mg／ｌ；FeCl₃・６H₂O，200mg／ｌ；CuCl₂・２H₂O，10 mg／ｌ；MnCl₂・４H₂O，10mg／ｌ；Na₂B₄O₇・10H₂O，10mg／ｌ；(NH₄)₆MO₇O₂₄・４H₂O，10mg／ｌ。BW １培地 CaCO₃ 2ｇ Difcoトリプトン 2.5ｇダイズ粉末 5ｇ Difco酵母抽出物 5ｇ可溶性スターチ（Sigma） 20ｇ pH7.2 K₂HPO₄・７H₂O 1.2ｇ MgSO₄ ・７H₂O 1.2ｇ FeSO₄ ・７H₂O 0.012ｇ MnSO₄ 0.0012ｇ ZnSO₄ ・７H₂O 0.0012 水道水全体を１ｌにするまでの量 BW ２培地 CaCO₃ 7ｇダイズ粉末 5ｇ Difco酵母抽出物 5ｇ可溶性スターチ（Sigma） 80ｇ K₂HPO₄ 1ｇ MgSO₄ ・７H₂O 1ｇ 10mlの微量元素溶液蒸留水により全体を１ｌにする。 pH7.2 例１サッカロポリスポラエリスラエアJC２株の構成連鎖停止チオエステラーゼをコードするeryAIII DNAの領域を除く、エリスロマイシン産生タイプＩ PKSをコードする生来のeryA遺伝子のすべてを除去するよう遺伝子的に構築されたＳ．エリスラエア宿主細胞を、Ｓ．エリスラエアNRRL2338から出発して、相同組換えにより構成した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338は、Northern Regional Research Laboratories，Peoria，Ill inois，USAから得られた野生型エリスロマイシン産生株である。eryクラスターを、グリコシル化、ヒドロキシル化及びメチル化に関与する段階を包含するエリスロマイシン生合成の後期段階に包含される他の遺伝子を端に有するPKS遺伝子から製造した。プラスミドpDELを次の通りにして構成した（図４）。eryAＩの開始コドンを含む1.4kbpのSmaＩセグメントをpUC18中にクローン化し、p612SLを得、そのセグメントを、pUC18の複数のクローニング部位を用いてBamHＩ−SacＩフラグメントとして切出し、そしてBglII−Sacフラグメントが切除されたDEBS３のＣ−末端をコードするeryAIIIのSacＩ／KpnＩフラグメントを含むプラスミドpT ７−18（Roberts，G．A.など．Eur．J．Biochem．（1993）214：305-311)）の誘導体中にサブクローン化した。プラスミドpDELの本体を制限分析により確認した。プラスミドpDELをBamH１により消化し、そしてウシ小腸アルカリホスファターゼにより処理し、そして、BglIIにより線状化されたプラスミドpIJ702(Katz，E. など．J．Gen．Microbiol．（1983）129：2703-2714)に連結した。その得られる混合物は、所望するプラスミドpDEL702を含む（図４）。Ｓ．エリスラエアNRRL2338（Yamamoto，H.など．J．Antibiot．（1986）39：1 304-1313）のプロトプラストを10μｇのpDEL702により形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーを選択し、そして非選択性液体培地（トリプシンタイズブイヨン）において４度、継代培養し、続いてプロトプラストを調製し、そして再生した。チオストレプトン感受性コロニーを単離し、そして制限分析及びサザンハイブリダイゼーションにより特徴づけた。１つのそのようなコロニーを、JC２と命名した。Ｓ．エリスラエア株JC２を、NCIMB 40802として、National Collection of Industrial and Marine Bact eria，23 st Machar Drive，Aberdeen，Scotland AB2 1RYに寄託した。例２サッカロポリスポラエリスラエアJC３株の構成相同及び非相同遺伝子の発現のために有用な染色体に組込まれるpCJR29の誘導体プラスミドを含む、遺伝子的に構築されたＳ．エリスラエア宿主細胞を、Ｓ．エリスラエアJC２から出発して、相同組換により構成した（図５）。プラスミドpCJR29Kを次の通りにして構成した（図５）。プラスミドpIJ6021(T akano，E．など．Gene（1995）166：133-137)からのカナマイシン耐性遺伝子を含む1.4kbpのSacＩ−SphＩ制限フラグメントを、SacＩ−SphＩ消化されたpUC18 中にクローン化し、pKANを生成し、このプラスミドをPvuIIにより消化し、そしてカナマイシン耐性遺伝子を含む1.7kbのフラグメントを、EcoRＶ消化されたpCJ R29中にクローン化し、プラスミドpCJR29Kを生成した。プラスミドpJC3を次の通りにして構成した（図５）。pNCO62（Gaisser，5．など．Mol．Gen．Genet．（1997）in Press）からの6.2kbpのSpeＩ−XbaＩ制限フラグメントを、XbaＩ消化されたpCJR29K中にクローン化し、pJC3を生成した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338に関して記載されるようにして調製されたＳ．エリスラエアJC２のプロトプラストを、10μｇのpJC3により形質転換し、そして安定したカナマイシン（100μｇ／ml）耐性コロニーを単離した。個々のコロニーを単離し、そして制限分析及びサザンハイブリダイゼーションにより特徴づけた。１つのそのようなコロニーを、Ｓ．エリスラエアJC３と命名した。例３Ｓ．エリスラエアJC103（NRRL2338／pNHE）株の構成 DEBS１，DEBS２及びDEBS３を過剰発現するＳ．エリスラエア株を得るために、中間体プラスミドの構成を次の通りに実施した。 pARLDの構成ヌクレオチド１〜1680からのエリスロマイシンポリケチドシンターゼの負荷ドメインをコードする1.6kbpのDNAセグメントを、プライマーとして下記２種のオリゴヌクレオチド： C-3'及び及び鋳型としてプラスミドpNTEP2のDNAを用いて、CloneAmp方法（Raschtian，A ．など．Anal．Biochem．（1992）91：91-97を用いてのPCRにより増幅した。約3 0〜60ngのPCR生成物（1.6kbp）を、25ngのpAMP18ベクターDNA（Gibco BRL）の存在下で37℃で30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてＥ．コリTG1rec0を形質転換するために使用し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有率について調べた。所望するプラスミドを、その制限地図により同定し、そしてpARLDと命名する。 pNHEの構成プラスミドpARLDの1.6kbpフラグメントを、PacＩ及びNheＩを用いて切出し、ゲル電気泳動により精製し、そしてPacＩ及びXbaＩにより切断されているプラスミドpCJR24に連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10B（Gibco BRL）を形質転換し、そしてアンピシリン(100μｇ／ml)の存在下で増殖された個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドをその制限地図により同定し、そしてpNHEと命名する。Ｓ．エリスラエアエJC103（NRRL2338／pNHE)の構成Ｅ．コリ、DH10B(pNHE)から単離された約５μｇのpNHEを用いて、Ｓ．エリスラエアエNRRL2338プロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを選択した。このコロニーの１つを選択し、そして全DNAをサザンハイブリダイゼーションのために調製し、プラスミドが、Ｎ−末端負荷ドメインをコードする領域におけるeryAＩ遺伝子の染色体コピー中に特異的に組込まれたことを確める。この株を、Ｓ．エリスラエアJC103（NRRL2338／pNHE）と命名する。例４組換えベクターpCJR101の構成 pCJR1O1（図６）は、放線菌におけるPKS遺伝子の発現のために使用されるよう構成されたシャトルプラスミドである。それは、Ｅ．コリにおいてその複製を可能にするためのCo1EＩレプリコン、SCP２^*低コピー数ストレプトミセスレプリコン（Bibb，M．J．and Hopwood，D．A．J．Gen．Microbiol．（1981）126：427）、及び増殖性糸状菌における増殖相から定常期までの間、actプロモーターからの転写を活性化するactクラスターからのactII−orf４活性化因子遺伝子を含む。それを次の通りにして構成する：pMF1015（actII−orf４活性化因子遺伝子を含む）（Fernandez−Moreno，M．A．など．Cell（1991）66：769-780）からの約 970bpのDNAフラグメントを、プライマーとして、下記合成オリゴヌクレオチド： 5'-ACT AGT CCA CTG CCT CTC GGT AAA ATC CAG C-3’及び5'-CTT AAG AGG GGC T CC ACC GCG TTC ACG GAC-3’（また、フランキングSpeＩ及びAflII制限部位を導入する）を用いて、PCRにより増幅する。このフラグメントを、プラスミドpUC19の末端修復されたAatII部位中に導入し、プラスミドp18. 14（pCJR18と改名された）を生成する。約215bpのDNAフラグメントを、プライマーとして、次の合成オリゴヌクレオチド：5'-ACA TTC TCT ACG CCT AAG TGT TCC CCT CCC TGC CTC-3’及び5'-GTG ATG TAT GCT CAT ATG TGT（また、フランキングNdeＩ及びAflIII部位を導入する）を用いて、二方向性プロモーター対PactIII ／PactＩを含むpMV400(Parro，V．など．Nucl．Acid Res．（1991）19：2623-26 27)から増幅する。前記PCR生成物をNdeＩ及びAflIIにより消化し、そしてNdeＩ及びAflIIにより前もって切断されたプラスミドp18.14（pCJR18）により連結し、プラスミドp19.4（pCJR19と改名される）を生成する。チオストレプトンに対する耐性を付与するtsr遺伝子を含む1.1kbpのHindIII−SphＩフラグメントを、プライマーとして次のオリゴヌクレオチド：5'-TGA ACA CCA AGC TTG CCA GAG A GC GAC GAC TTC CCC-3’及び5'-GAC AGA TTG CAT GCC CTT CGA GGA GTG CCC GCC CGG-3’（また、フランキングHindIII及びSphＩ部位を導入する）を用いて、鋳型としてのプラスミドpIJ922（Lydiate，D．J.など．Gene（1985）35：223-235 ）から、PCRにより得た。PCR生成物をHindIII及びSphＩにより消化し、そしHind III及びSphＩにより切断されたプラスミドp19.4(pCJR19)により連結し、プラスミドp20.5(pCJR24)を得る。プラスミドpIJ922をBamHＩ及びSstＩにより消化し、そして稔性遺伝子座の一部及び複製の起点を含むフラグメント（Lydiate，D．J. など．Gene（1985）35：223-235）を、BamHＩ及びSstＩにより消化されたpUC19 中に連結し、二官能性プラスミドp16／2.2（pCJR16と改名された）(14.7kbp)を生成する。プラスミドp20.5(pCJR24)をSalＩ及びSphＩにより消化し、その消化物からの２つの大きなフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてXhoＩ及びSphＩにより消化されたプラスミド16／2.2(pCJR16)と共に４−成分連結において組合す。その連結混合物を用いて、ストレプトミセスリビダンスを形質転換し、そしてコロニーをチオストレプトンの存在下で選択する。１つのそのようなコロニーを、その制限パターンにより同定することにより、所望するpCJR101 (約12.4kbp)を含むことを示す。例５プラスミドpCJR29（pCJR110から改名された）の構成プラスミドpCJR29(pCJR110)の構成は、図７に例示される。チオストレプトンに対する耐性を付与するtsr遺伝子を含む1.1kbpのHindIII−XhoＩフラグメントを、プライマーとして、次のオリゴヌクレオチド：5'-TGA ACA CCA AGC TTG CCA GAG AGC GAC GAC TTC CCC-3’及び5'-GAC AGA TTC TCG AGC CTT CGA GGA GTG C CC GCC CGG-3’（また、フランキングHindIII及びXhoＩ部位を導入する）を用いて、鋳型としてのプラスミドpIJ922から、PCRにより得る。PCR生成物をHindIII 及びXhoＩにより消化し、そしてHindIII及びXhoＩにより消化されたプラスミド1 6／2.2(pCJR16)により連結し、プラスミド22.1（pCJR25）を生成する。プラスミドp22.1(pCJR25)をHindIII及びSphＩにより消化し、そしてHindIII及びSphＩにより消化されたプラスミドp19.4(pCJR19)により連結し、その制限パターンにより同定される所望するプラスミドpCJR29（pCJR110）(約12.4kbp)を生成する。プラスミドpCJR29(pCJR11O)は、複数のSCP２^*−由来の起点に関して、tsr遺伝子、 actII−orf４遺伝子及びactＩ／actIIIプロモーターの配向において、pCJR101と異なる。例６プラスミドpRM52の構成プラスミドpRM52は、プラスミドpRM5(McDaniel，R.など．Science，（1993）2 62：1546-1550)の誘導体である。pRM5をまず、NdeＩによる消化により線状化し、末端−修復し、そして次に、再連結し、pRM51を生成した。pRM51をPacＩ及びN siＩにより切断し、そして大きなPacＩ−NsiＩフラグメントを単離し、そしてNd eｌ部位を含み、そして一緒にアニーリングされた合成オリゴヌクレオチド5'-TA AGGAGGACACATATGCA-3’及び5'-TAATTCCTCCTGTGTAT-3’から構成された短い二本鎖オリゴヌクレオチドリンカーに連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリ TGIrec0を形質転換し、そして単離されたコロニーを、それらのプラスミド含有率についてスクリーンした。所望するプラスミド(19.6kbp)を、その制限地図により同定し、そしてpRM52と命名した。例７プラスミドpNTEP2の構成プラスミドpNTEP2は、キメラDEBS１のための完全な読取り枠及びチオエステラーゼ遺伝子、並びに開始コドンでのユニークNdeＩ部位、及び停止コドンの３’ 側に隣接してユニークXbaＩ及びHindIII部位を含む。それを、次のようにして、いくつかの中間体プラスミドにより構成する（図８）。プラスミドpTENCO11の構成Ｓ．エリスラエアTED8（Cortes，J.など．Science（1995）268：1487-1489）からの全DNAのライブラリーを、ベクターDASHII（Stratagene）において構成し、そしてeryA遺伝子フラグメントによりプローブした。λ−４Ｂと称する１つの組換えバクテリオファージは、eryAＩ開始コドンの700bp上流からＳ．エリスラエアTED8における組込まれたプラスミドのチオストレプトン耐性遺伝子まで及ぶ挿入体を有した。λ−４ｂ DNAをNcoＩにより消化し、そして12kb pのNcoＩフラグメントを末端修復し、そしてSmaＩ−切断されたpUC18中に連結し、そしてＥ．コリTG1rec0を形質転換した。個々のクローンを、それらのプラスミド含有についてスクリーンし、そしてNcoＩ挿入体を担持する１つのプラスミドを選択し、そしてpTENCO11と命名した。プラスミドpNK8の構成前に決定されたような正しいeryAＩ開始コドン(Caffrey，P．など．FEBS Lett ers（1992）304：225-228)の1.4kbp上流からＳ．エリスラエアのeryAＩ遺伝子内の2.6kbpまで延長する4.0kbのKpnＩフラグメントを、プラスミドpBK25(Bevitt， D．J.など．Eur．J．Biochem．（1992）204：39-49)から切り出し、そしてpUC18 中にクローン化し、プラスミドpBK6.12を得た。このプラスミドのDNAをPCR反応のための鋳型として使用し、ユニークNdeＩ部位がeryAＩの開始コドンで創造され、そしてユニークSmaＩ部位がPCR生成物の他の端で創造されている360bpの生成物を得た。使用されるオリゴペプチドは、5'-CCC ATA TGG CGG ACC TGT CAA A GC-3’及び5'-ATT GCG CGC CCT GGC CCG GGA A-3’であった。生成物を末端修復し、そしてSmaＩ切断されたpUC18中に連結し、そしてＥ．コリTG1rec0を形質転換した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンし、そしてSma Ｉ部位がポリリンカーのKpnＩ部位に隣接するような配向で挿入体を担持する１つのプラスミドを選択し、そしてプラスミドpNDE6と命名した。プラスミドpNDE6 をSmaＩ及びKpnＩにより消化し、そしてSmaＩ及びXpnＩによるプラスミドpBK6.1 2の消化により得られるeryAＩ遺伝子の2.3kbpフラグメントにより連結した。連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンした。所望する2.6kbpのNdeＩ−KpnＩフラグメントを含むプラスミドを単離し、そしてプラスミドpNDE7と命名した。NdeＩ−KpnＩ挿入体をプラスミドpNDE7から切り出し、そして前もってNdeＩ及びKpnＩにより消化されたプラスミドpT７−18中に連結した。プラスミドpT７−18は、ポリリンカーがpUC18からポリリンカーにより置換されている、プラスミドpT７−７（Tabor，S．and Richardson，C．C．Pr oc．Natl．Acad．Sci．USA（1985）82：1074-1078）の誘導体である。連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンし、そして所望する2.6kbpのNdeＩ−KpnＩ挿入体を含む１つのプラスミドを選択し、そしてpNK8と命名した。プラスミドpNTE5の構成プラスミドpNK8を用いて、Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（199 2）111：61-68)のメチル化−不完全株を形質転換し、そしてプラスミドpNK8をこの株から単離し、そしてClaＩにより消化した。pTENCO11の消化により得られた1 1kbpのClaＩフラグメントを、前記消化されたpNK8中に連結し、そしてＥ．コリT G1rec0を形質転換した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンし、そして11kbpの挿入体がeryAＩの読取り枠を再生するよう正しく配向されている１つのプラスミドを選択し、そしてpNTE5と命名した。プラスミドpNTEP2の構成 XbaＩ及びHindIIIのためのユニーク制限部位を担持するClaＩ−EcoRＩポリリンカーを、次の相補的合成オリゴヌクレオチドから構成した：5'-AATTCATAGTC TAGAAGCTTAT-3'及び5'-CGATAAGCTTCTAGACTATG-3'。ポリリンカーを、2.3kbpのCl aＩ−EcoRＩフラグメントを除去するためにClaＩ及びEcoRＩにより消化されているプラスミド pNTE5中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンした。ポリリンカーを含む１つのプラスミドを同定し、そしてpNTEP2と命名した。例８プラスミドpRMTEの構成プラスミドpNTEP2(14kbp)をNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体をスクロースグラジエント上での沈降により精製した。精製された挿入体を、NdeＩ及びXbaＩにより消化されたプラスミドpRM52(19.6kbp)(例４)中に連結し、そしてそのベクターをスクロースグラジエント上での沈降により精製した。連結混合物を用いて、Ｅ．コリを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpRMTE（31.5kbp）を、その制限パターンにより同定する（図９）。例９プラスミドpCJRTE（また、pCJR30と称する）の構成プラスミドpNTEP2（例５）をNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体をスクロースグラジエント上での沈降により精製した。精製された挿入体を、NdeＩ及びXbaＩにより消化されているプラスミドpCJR101（12.4kbp）中に連結し、そしてスクロースグラジエント上での沈降により精製した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDHB/0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について選択した。所望するプラスミドpCJRTE（pCJR30）(24.3kbp)を、その制限パターンにより同定する（図９）。例10 Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／pCJRTE（pCJR30）の構成、及びそれによるトリケチドラクトン（“TKL”）の生成。（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpCJRTE（pCJR30）を用いて、Ｓ．アベルミチリスATCC 3 1272のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのそのようなコロニーを、それらのプラスミドDNA含有について分析する。制限地図がpCJRTE（pCJR30）と同一であることを示すプラスミドを含むコロニーを、Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／pCJRTE（pCJR30）と命名する。（ii）（Ac）−TKL及びTKLの生成Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／／pCJRTE（pCJR30）を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むBW１培地中に接種し、そして28〜30％のＣ下で４日間、増殖せしめる。この後、細胞懸濁液15mlを用いて、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む液体培地BW２ 150mlに接種し、そして６日間、増殖せしめる。この後、細胞を遠心分離により除去し、水により洗浄し、そして上清液を組合し、そして酢酸エチル(250ml)により３度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を等量の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下での蒸発により除去する。残留物のサンプルを、最少量のジエチルエーテルに取り、シリカのプラグを通して濾過し、そしてGCにより分析し、これは、（Ac）−TKL及びTKL（式II：Ｒ₁＝Ｒ₂＝Me；（Ac）−TKLに関して、Ｒ₃＝Me 、及びTKLに関して、Ｒ₃＝Et）の両者の存在、及び純粋な合成サンプルに対して同一の保持時間を示す。例11 プラスミドpIG1及びpIG101の構成プラスミドpIG1及びpIG101はそれぞれ、ery負荷モジュールの代わりのavr負荷モジュール、ery PKSの第１の２つの延長モジュール、及びery PKSのチオエステラーゼを含んで成るハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子を含むSCP２^*−由来のプラスミドから成る。それらを、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成する（図10）。プラスミドpVE3.4の構成アベルメクチン(avr)PKS遺伝子の一部を含むプラスミドpVE1446を、Ｅ．コリ株ATCC 68250（MacNeil，D．J.など．Ann．N．Y．Acad．Sci．（1994）721：123 -132）から得た。プラスミドpVE1446をBamHＩにより消化し、そして同等物32.15 及び3.40（MacNeil，D．J.など．Ann．N．Y．Acad．Sci．（1994）721：123-132 ）間の7.6kbpフラグメントを、ゲル電気泳動により精製し、そして再環化した。その混合物は、Ｅ．コリ株TG1rec0の形質転換の後に単離された所するプラスミドpVE3.4を含んだ。プラスミドpNCO12の構成プラスミドpBK25(Bevitt，D．J.など．Eur．J．Biochem．（1992）204：39-49 )を、NcoＩにより消化し、そして12kbpのフラグメントを末端−修復し、そしてS maＩにより線状化されているプラスミドpUC18中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1recOを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpNCO12を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpCRabcの構成プラスミドpCRabc（図10）を次の通りに構成した。３種の別々のPCR反応を実施した：第１に、それぞれ20ｐモルの合成オリゴヌクレオチドＡ１(5'-CTC GTC GGT GGC TTT GCG-3')及びＡ２（5'-CCCGGG AAA AAC GAA GAC TAG TGG CGC GGA C GG CCG-3')を用いて、100ngのpNC012鋳型から1.0kbpの生成物を増幅した。PCR生成物を末端−修復し、リン酸化し、そしてSmaＩ−切断されたpUC18中にクローン化し、プラスミドpCRaを得た。第２に、それぞれ20ｐモルの合成オリゴヌクレオチドＣ１ (5'-CAC GCG CAG CGC GGC GGA-3')及びＣ２(5'-CGAA CCG CTA GCG GTC GTC GCG ATG GCC T-3')を用いて、100ngのpNCO12鋳型から1.5kbpの生成物を増幅した。生成物を末端−修復し、リン酸化し、そしてSmaＩ−切断されたpUC18中にクローン化し、プラスミドpCRcを得た。第３に、それぞれ20ｐモルの合成オリゴヌクレオチド（5'-GTGGCCCGGCCGTCCGCGCCACTAGTCTTCGTTTTT-3'）及びＢ２（5'-AACAGCTAG CGGTTCGTCCGCCGCTGCCGTGCC-3'）を用いて、100ngのpVE3.4鋳型から1.4kbpの生成物を増幅した。生成物を末端−修復し、リン酸化し、そしてSmaＩ−切断されたp UC18中にクローン化し、プラスミドpCRbを得た。プラスミドpCRaをHindIII及びSpeＩにより消化し、そして1.0kbpの挿入体を、 HindIII及びSpeＩにより前もって消化されたプラスミドpCRbにより連結した。プラスミドpCRcをNheＩ及びEcoRＩにより消化し、そして1.5kbpの挿入体を、NheＩ及びEcoRＩにより前もって消化されたプラスミドpCRabにより連結し、プラスミドpCRabcを得た。プラスミドpNEWAVETEの構成プラスミドpCRabcをMfeＩ及びSfiＩにより消化し、そしてavr PKSの負荷ドメインを含むDNAフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてMfeＩ及びSfi Ｉにより消化されているプラスミドpNTEP2により連結し、そして大きな方のフラグメントをゲル電気泳動により精製した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG 1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpNEWAVETE（13.7kbp）をその制限パターンにより同定した。プラスミドpIG1の構成プラスミドpNEWAVETEをNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体をスクロースグラジエント上での沈降により精製した。精製された挿入体を、NdeＩ及びX baＩにより消化されているプラスミドpRM52（19.6kbp）中に連結し、そしてベクターをスクロースグラジエント上での沈降により精製した。連結混合物を用いて、Ｅ．コリを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有にっいて調べた。所望するプラスミドpIG1を、その制限地図により同定した。プラスミドpIG101の構成プラスミドpNEWAVETEをNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体をスクロースグラジエント上での沈降により精製する。精製された挿入体を、NdeＩ及びX baＩにより消化されているプラスミドpCJR101（例４）中に連結し、そしてゲル電気泳動により精製する。連結混合物を用いて、Ｅ．コリDHB/Oを形質転換し、個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンする。所望するプラスミドpIG101を、その制限パターンにより同定する。例12 Ｓ．コエリカラー CH999／pIG1の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリET12567(MacNeil．D．J.など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpIG1を用いて、Ｓ．コエリカラーCH999のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調らべ、そしてプラスミドpIG1の存在をその制限地図により確かめた。（ii）Ｓ．コエリカラー CH999／pIG1を用いてのTKL，（Ac）TKL，（ｉ−but）TKL及び（ｓ−pent）TKLの生成Ｓ．コエリカラーCH999／pIG1を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む100ml のYEME培地中に接種し、そして28〜30℃で５日間、増殖せしめた。この後、そのブイヨンを濾過し、菌糸体を除いた。ブイヨンを同体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除いた。残留物を酢酸エチルに取り、そしてシリカのプラグを通して濾過し、酢酸エチルを再び除去し、そして残留物をジエチルエーテルに取り、そしてジエチルエーテルにより溶出される、シリカゲルのカラム上でのフラッシュクロマトグラフィーにゆだねた。（ｓ−pent）−TKL及び( ｉ−but)−TKLを含む画分を、TKLを含む画分から分離し、そして少量の（Ac）− TKLを第３画分に分けた。化合物を、GC分析（70℃で２分間、次に、250℃に24分間にわたって高められるようプログラムされた25mmカラム）に基づいて、純粋な標準と共にそれらの同時移動により同定した。（ｓ−pent）−TKL，(ｉ−but)− TKL，TKL及び（Ac）−TKLについての保持時間はそれぞれ、14.9，13.6，12.9及び11.9であった。 GC、エレクトロスプレーMS及び¹Ｈ−NMRを用いて、主成分（5 0〜60％）がTKLであることを示した。例13 Ｓ．コエリカラーCH999／pIG101の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpIG1O1を用いて、Ｓ．コエリカラーCH999のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調らべ、そしてプラスミドpIG101の存在をその制限地図により確かめた。（ii）Ｓ．コエリカラーCH999／pIG101を用いてのTKL，（Ac）−TKL，（ｉ−but ）TKL及び（ｓ−pent）TKLの生成Ｓ．コエリカラーCH999／pIG101を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む100 mlのYEME培地中に接種し、そして28〜30℃で５日間、増殖せしめた。ブイヨンを同体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去した。残留物を例12におけるようにして処理し、そして類似する結果を得た。例14 Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／pIG1の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpIG1を用いて、Ｓ．アベルミチリスATCC 31272のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調らべ、そしてプラスミドpIG1の存在をその制限地図により確かめた。（ii）Ｓ．アベルミチリスATCC 31227／pIG1を用いてのTKL，（Ac）TKL，（ｉ− but）TKL及び（ｓ−pent）TKLの生成Ｓ．アベルミチリスATCC 31227／pIG1を、まず50μｇ／mlのチオストレプトンを含むBW１培地中に接種し、そして28〜30℃で４日間、増殖この後、ブイヨン20 mlを用いて、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むBW２培地150mlに接種した。次に、接種された生物を10日間、増殖せしめた。ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして同量の酢酸エチルにより３度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、１ｌ当たり約10ｇの粗生成物を得た。残留物を酢酸エチルに溶解し、シリカのプラグに通し、そして溶媒を除去した。残留物をジエチルエーテルに溶解し、そしてジエチルエーテルにより溶出されるシリカカラム（１cm×15cm）上でのフラッシュクロマトグラフィーにゆだね、そしてそれぞれ10mlの画分を集め、そしてGCによりアッセイした。ジエタルエーテルを蒸発し、トリケチドラクトンを含む油状残留物約10mgを得た。主成分（ 50〜60％）は、（ｓ−pent）−TKLであり、そして(ｉ−but)−TKL，TKL及び（Ac ）−TKLもまた存在した（すなわち、Ｒ₁＝Ｒ₂＝Mc、及びＲ₃＝１−メチルプロピルである式IIの化合物（（ｓ−pent）−TKL），ｉ−Pr((ｉ−but)−TKL)，Et（T KL）及びMe(（Ac）−TKL)）。例15 Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／pIG101の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpIG101を用いて、Ｓ．アベルミチリスATCC 31272のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調らべ、そしてプラスミドpIG1 01の存在をその制限パターンにより確かめる。（ii）TKL，（Ac）TKL，（ｉ−but）TKL及び（ｓ−pent）TKLのＳ．アベルミチリスATCC 31272／pIG101を用いての生成Ｓ．アベルミチリスATCC 31272／pIG1 01をまず、上記のBW１培地中に接種し、そして10〜12日間、増殖せしめた。前の例におけるような生成物の単離により、（ｓ−pent）−TKL及び(ｉ−but)−TK Lを含む画分、TKLを含む画分、及び少量の（Ac）−TKLを有する第３画分を得る。化合物を、GC分析に基づいての純粋な標準との同時移動により同定する。例16 Ｓ．エリスラエアJC２／pIG1の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpIG1を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが、相同組換えにより、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分中に特異的に組込んだことを確かめる。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pIG1を用いてのトリケチドラクトンの生成Ｓ．エリスラエアJC２／pIG1を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む水道水培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめる。この後、20mlの菌糸体を用いて、２ｌのフラスコにおける、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地500mlを、凝集を減じるために、280rpmで振盪しながら接種する。3.5〜６日後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、同体積の酢酸エチルにより３度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして蒸発により溶媒を除去する。GC及びエレクトロスプレーMSを用いての生成物混合物の分析は、合計５〜６mg／ｌのトリケチドラクトン生成物のうち、主成分は（ｓ−pent）−TKL （約1.5mg／ｌ）であり、そして存在する他の成分は(ｉ−but)−TKL，TKL及び少量の（Ac）−TKLであることを示した。例17 Ｓ．エリスラエアJC２／pIG101の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpIG101を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが、相同組換えにより、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分中に特異的に組込んだことを確かめる。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pIG101を用いてのトリケチドラクトンの生成例16（ii）におけるのと同じ方法に従った。GC及びエレクトロスプレーMSを用いての生成物混合物の分析は、合計５〜６mg／ｌのトリケチドラクトン生成物のうち、主成分は（ｓ−pent）−TKL（約1.5mg／ｌ）であり、そして存在する他の成分は(ｉ−but)−TKL，TKL及び少量の（Ac）−TKLであることを示した。例18 プラスミドpND20の構成これは次の２種の段階で達成された：（ｉ）プラスミドpHISAVEの構成プラスミドpNEWAVETEを、EcoRＩ及びHindIIIにより消化し、そしてベクターをゲル電気泳動により精製した。６−ヒスチジン標識をコードし、そしていづれかの末端でそれらの部位を有する合成オリゴヌクレオチド二本鎖挿入体（下記に示される）を、ベクターに連結した：前記連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個人のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンした。所望するプラスミドpHIS AVEを、その制限パターンにより同定した。（ii）プラスミドpND20の構成プラスミドpHISAVEをNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体を、NdeＩ及びXbaＩにより消化されたpCJR24中に連結した。その連結混合物を用いて、DH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンした。所望するプラスミドpND20を、その制限パターンにより同定した。例19 （ｉ）Ｓ．エリスラエアJC３／pND20の構成Ｅ．コリET12567から単離されたプラスミドpND20を用いて、Ｓ．エリスラエア JC３のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。（ii）TKL及び（Ac）TKLの生成Ｓ．エリスラエアJC３／pND20を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む水道水培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめる。この後、20mlの菌糸体を用いて、２ｌのフラスコにおける、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地500mlを、凝集を減じるために、280rpmで振盪しながら接種する。 3.5〜６日後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、同体積の酢酸エチルにより３度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして蒸発により溶媒を除去する。GC及びエレクトロスプレー MSを用いての生成物混合物の分析は、合計20mg／ｌのトリケチドラクトン生成物のうち、約99％がTKLから成り、そして残りはAc(TKL)であったことを示す。例20 プラスミドpKW15の構成プラスミドpKW15は、負荷モジュール、第１の延長モジュール及びery PKSのチオエステラーゼを含んで成る、ジケチドシンターゼ遺伝子の発現を得るためにSC P２^*−に基づくベクター中へのサブクローニングのために適切な、及びまた、１又は複数の損なわれていないモジュールを含む非相同DNAの挿入のためにも適切な挿入体を含むpT７−由来のベクターである。プラスミドpKW15を、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより得る（図12）。プラスミドpKW11の構成プラスミドpNTEP2（例５）をBg１IIにより消化し、その付着端をフィルインし、そして再連結し、プラスミドpKW11を生成した。プラスミドpKW11における挿入体は、負荷ジドメイン、DEBS１からのモジュール１及びモジュール２、及びDEBS ３からのチオエステラーゼを包含するキメラeryAＩ−eryAII遺伝子から成る。この“ジケチドシンターゼ”を得るための方法は、モジュール１の一部、モジュール２の全部分、及びチオエステラーゼの一部をコードするDNAを、EcoRＶ及びEco R１によるプラスミドpKW11の消化により除去し、そして次に、適切なPCR生成物の挿入により、モジュール１及びACP１のＮ−末端部分を再構成することであり、そして同様に、PCR生成物が、ACP２のＣ−末端部分及びチオエステラーゼを置換するよう企画された。前記２種のPCR生成物を、DL（アスパラギン酸、続くロイシン）に、ACP１及びACP２ドメインに見出されるようなEL（グルタミン酸、続くロイシン）からのハイブリッドACPドメインのアミノ酸配列における変更を包含する、ACPの活性部位に創造されるユニークBglII部位により連結する。機能を保持しながら、PKS活性部位での配列におけるそのような変更はこれまで試みられたことはなく、そしてそのような変更された部位が活性のまま存続すべきであることは明らかではない。プラスミドpKW12，pKW13，pKW14及びpKW15の構成モジュール１のためのDNAのPCR増幅のためには、次の合成オリゴヌクレオチドが突然変誘発プライマーとして使用され、１つはEcoRV部位を含み、そして他の１つはBglII部位を含む： PCRをPfu DNAポリメラーゼを用いて、鋳型としてのpNTEP2に基づいて、及び10％（体積／体積）ジメチルスルホキシドの存在下で、95％（１分）；55％Ｃ（１分）でのアニーリング；及び72％Ｃ（２分）での延長の30サイクル、実施した。生成物(PCR1)を末端修復し、そしてSmaI−切断されたファゲミドpUC119中にクローン化し、そして連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換した。プラスミドDNAを個々のコロニーから調製し、そして所望のプラスミド（5.0kbp）をその制限パターンにより同定し、そしてpKW12と命名した。モジュール２及びチオエステラーゼドメインの５’端のためのDNAのPCR増幅のためには、それぞれBglII部位及びEcoRI部位を含む次のオリゴヌクレオチドを、突然変異誘発プライマーとして使用した：及び PCRを、PCR1について上記に正確に記載されるようにして、鋳型としてのpNTEP2に基づいて実施し、そして生成物(PCR2)を末端修復し、そしてSm al−切断されたファゲミドpUC119中にクローン化した。連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてプラスミドDNAを個々のコロニーから調製した。所望するプラスミド（4.1kbp）をその制限パターンにより同定し、そしてpK W13と命名した。プラスミドpKW12をEcoRV及びHindIIIにより消化し、そして1.8kbpの挿入体を末端−修復し、そして次に、EcoRVにより線状化され、そしてアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpKW11と一緒に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーのプラスミド含有を調べた。ユニークEcoRV部位が再構成されている所望するプラスミド(15.8kb p)を同定し、そしてこのプラスミドをpKW14と命名した。プラスミドpKW13をBglII及びEcoRIにより消化し、そして0.9kbpの挿入体を、B glII及びEcoRIにより消化されているプラスミドpKW14に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーのプラスミド含有を調べた。pKW13の0.9kbpのBglII−EcoRIフラグメントがpKW14の9.5kbpの BglII−EcoRIセグメントを置換している所望するプラスミド(9.32kbp)を同定し、そしてこのプラスミドをpKW15と命名した。プラスミドpKW16の構成及び使用（ｉ）構成プラスミドpKW15をNdeI及びXbaIにより消化し、そしてその挿入体を、NdeI及びXbaIによりまた消化されているプラスミドpRM52中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして単離されたコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンした。所望するプラスミドをその制限地図により同定し、そしてpKW16と命名した。（ii）Ｓ．コエリカラーCＨ999／pKW16の構成のためへのプラスミドpKW16の使用プラスミドpKW16を用いて、メチル化−欠失株Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J ．など．Gene（1992）111：61-68)を形質転換し、そしてこの株から単離された、ジメチル化されたプラスミドpKW16DNAを用いて、Ｓ．コエリカラーCH999（McD aniel，R.など．Science（1993）262：1546-1550）を形質転換した。pKW16を用いて、Ｓ．コエリカラーのプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む水道水培地寒天プレートに移した。（iii）（２Ｓ）−メチル（３Ｒ）−ヒドロキシペンタン酸及び（２Ｓ）−メチル−（３Ｒ）−ヒドロキシブタン酸の単離及び特徴化Ｓ．コエリカラーCH999／pKW16のコロニーを採取し、そして50μｇ／mlのチオストレプトンにより補充された100mlのYEMEに移し、そして30℃で増殖せしめた。４日後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、pH3.0に酸性化し、そして固体塩化ナトリウムを、その溶液が飽和されるまで添加した。ブイヨンを等体積の酢酸エチルにより５度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を、飽和塩化ナトリウム溶液による抽出により乾燥せしめ、そして蒸発により濃縮した。酢酸エチル：酢酸99：１（ｖ／ｖ）により溶出され、そして過マンガン酸カリウムにより染色された、シリカゲルプレート上での薄層クロマトグラフィー処理は、Ｓ．コエリカラーCH999のみから得られた抽出物に存在しない、（２Ｓ）−メチル− （３Ｒ）−ブタン酸の対照サンプルと同じ移動度（Rf0.55）を有する化合物の存在を示した。酢酸エチル抽出物の、負のイオンモード下でのエレクトロスプレー質量分析（ESMS）は、対照サンプルに存在しないｍ／ｅ117での主要ピークを示した。正のイオンモード及び蟻酸の存在下で、ピークはｍ／ｅ119で観察され、これは添加されたナトリウムイオンの存在下でｍ／ｅ141に移動された。ナトリウム添加物の正確な質量は、141.05171であることが決定された（２−メチル−３−ヒドロキシブタン酸のナトリウム塩は141.05248 を必要とする）。Ｓ．コエリカラーCH999／pKW16のコロニーが取られ、そして50 μｇ／mlのチオストレプトンにより補充された100mlのYEMEに移され、そして30 ℃で７日間増殖せしめられる場合、上記で調製された酢酸エチル抽出物は、ｍ／ｅ131で、負のイオンモードで作動されるESMSにおいて、追加のピークを示した。正のイオンモードで作動されるESMSにおいて、及び添加される蟻酸の存在下で、ピークはｍ／ｅ155で見出される。このピークの正確な質量は、155.06973であることが決定された（２−メチル−３−ヒドロキシペンタン酸のナトリウム塩は 155.06890を必要とする）。例22 プラスミドpAR33の構成プラスミドpAR33は、ery負荷モジュール、ery PKSの延長モジュール１，rap P KSの延長モジュール12、及びery連鎖停止チオエステラーゼを含んで成るハイブリッドタイプＩ PKSを含む。それを、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成する（図13）：プラスミドpARRAPの構成ラパマイシンPKSのモジュール12をコードするrapC遺伝子の4.7kbpのDNAセグメントを、Clone Amp方法（Raschtian，A．など．An al．Biochem．（1992）91：9 1-97）、及びプライマーとして、次の２種のオリゴヌクレオチド：及び並びに、鋳型として、クローン−λ−１Ｃ（Schwecke，T.など．Proc．Natl． Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843）のDNAを用いて、PCRにより増幅した。約30〜60ngのPCR生成物（4.7kbp）を、25ngのpAMP18ベクターDNA（Gibco BRL）の存在下で37℃で30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド（7.4kbp）を、その制限地図により同定し、そしてpARRAPと命名する。プラスミドpAR32の構成プラスミドpARRAPを、BglIIにより消化し、rapモジュール12をコードする4.7k bpのフラグメントを開放し、これをゲル電気泳動により精製し、そしてBglIIによる消化により線状化されているプラスミドpKW15中に連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドは、rapモジュール12が、ハイブリッドトリケチドラクトンシンターゼ遺伝子が生成されるよう、pKW15における挿入体の読取り枠のコード配列に対して正しい配向を有する１つである。そのようなプラスミドを、その制限パターンにより同定し、そしてpAR32と命名する。プラスミドpAR33の構成プラスミドpAR32は、NdeI及びXbaIによる消化により切り出され得る挿入体を含むが、しかしその挿入体には、切断に対して特異的に保護されるべき追加のNdeI部位が存在する。これを、RecA保護方法（Koob ，M.など．Nacl．Acids Res．（1990）20：5831-5835）を用いて行なう。合成オリゴヌクレオチド5'-GCACCCACGACGCCACCACCACATATGCCCTGCACCCTGCCCTCC-3'（ここで、NdeI部位が下線を引かれている）を、精製されたRecAタンパク質及びATP_ Sと一緒に使用し、消化からrapモジュール12における内部NdeI部位を特異的に保護する安定した三量体DNA−タンパク質複合体を形成する。保護されたプラスミドpAR32をNdeI及びXbaIにより消化し、所望する十分な長さの挿入体(13.1kbp)を生成し、そしてこれを、NdeI及びXbaIにより消化されているプラスミドpRM52（例４）により連結する。その連結混合物を用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有についてスクリーンする。所望するプラスミドpAR33を、その制限パターンにより同定する。例23 Ｓ．エリスラエアJC2／pAR33の構成及びTKL誘導体の調製（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpAR33を用いて、Ｓ．エリスラエアJC2のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを選択する。１つのそのようなコロニーからの全DNAを単離し、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分の染色体コピー中に特異的に組込んだことを確する。この株を、Ｓ．エリスラエアJC2／pAR33と命名する。（ii）Ｓ．エリスラエアJC2／pAR33による新規トリケチドラクトンの生成Ｓ．エリスラエアJC2／pAR33を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして28〜30％Ｃ下で５日間、培養する。この後、ブイヨンを濾過し、そして等体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で、蒸発により除去する。残留物のエレクトロスプレーMSは、Ac−２−ノル−３−エピ−TKL(III，Ｒ＝Me）及び２−ノル− ３−エピ−TKL(III，Ｒ＝Et）の存在を示した。例24 プラスミドpAR8の構成 ery負荷ジドメイン、及びery連鎖停止チオエステラーゼ／サイクラーゼ、及び rap PKSのモジュール11及び12を含むハイブリッドトリケチドラクトンシンダーゼの構成。この例は、５種の別々のプラスミド、標的構造体の４種の別々のハウジング要素、及びテトラサイクリンに対して耐性を付与する遺伝子を収容第５要素の初期構成を必要とする。それらのプラスミドにおける挿入体を、標準のインビトロ組換えDNA技法により連続的に組合し、プラスミドpAR5を形成する。さらなる三段階のクローニングが、最終発現プラスミドpAR8を導びく（図14）。プラスミドpARLDの構成負荷AT−ACPジドメインをコードする、ヌクレオチド１〜ヌクレオチド1673までのeryAI遺伝子のセグメントを、プライマーとして次の２種のオリゴヌクレオチド：及び鋳型としてのプラスミドpBK6.12(例５)を用いて、CloneAmp方法を使用してのPCRにより増幅し、プラスミドpARLDを生成した。プラスミドpAR11の構成 rapモジュール11をコードするDNAの５’−末端でのヌクレオチド112からヌクレオチド2095までの、Ｓ．ヒグロスコピカスのrapC遺伝子のセグメント（Schwec ke，T.など．Proc．Natl．Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843）を、プライマーとして次の２種のオリゴヌクレオチド：及び及び鋳型としての組換えバクテリオファージ＿λ−１(Schwecke，T.など.，Proc ．Natl．Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843)のDNAを用いて、CloneAmp方法を用いるPCRにより増幅する。約30〜60ngのPCR生成物（2.0kbp）を、25ngのpAMP 18ベクターDNAの存在下で37％Ｃ下で、30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてそれを用いて、Ｅ．コリTG1rec0 を形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド（4.7kbp）を、その制限地図により同定し、そしてpAR1 1と命名する。プラスミドpAR12の構成 rapモジュール12をコードするDNAの３’末端のヌクレオチド7405からヌクレオチド9396までの、Ｓ．ヒグロスコピカスのrapC遺伝子のセグメント(Schwecke，T .など.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843)を、プライマーとして次の２種のオリゴヌクレオチド：及び ’、及び鋳型としての組換えバクテリオファージλ−１Ｃ(Schwecke，T.など.， Proc．Natl．Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843)のDNAを用いて、CloneAmp 方法を用いてのPCRにより増幅する。約30〜60ngのPCR生成物（2.0kbp）を、25ng のpAMP18ベクターDNAの存在下で、37％Ｃ下で30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてそれを用いて、Ｅ．コリTG 1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド（4.7kbp）を、その制限地図により同定し、そして pAR12と命名する。 pARTEの構成 eryAIII停止コドンの３’側からKpnI部位までの132のヌクレオチド12及び、そしてDEBSのＣ−末端連鎖停止チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードする、er yAIII遺伝子の1.3kbpのセグメントを、プライマーとして次の２種のオリゴヌクレオチド：及びスミドpEXDB3(Roberts，G．A.など．Eur．J．Bioche．（1993）214：305-311)を用いて、CloneAmp方法を用いてのPCRにより増幅する。約30〜60ngのPCR生成物（ 1.3kbp）を、25ngのpAMP18ベクターDNAの存在下で、37％Ｃ下で30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてそれを用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド（4.0kbp）を、その制限地図により同定し、そしてpARTEと命名する。プラスミドpARTrの構成テトラサイクリン耐性遺伝子を含むプラスミドpBR322の1.3kbpのセグメントを、プライマーとして次の２種のオリゴヌクレオチド：及び鋳型としてのプラスミドpBR322を用いて、CloneAmp方法により増幅する。約30〜 60ngのPCR生成物（1.3kbp）を、25ngのpAMP18ベクターDNAの存在下で、37％Ｃ下で、30分間、ウラシルDNAグリコシラーゼにより消化し、その混合物を氷上で冷却し、そしてそれを用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド（4.0kbp）をその制限地図により同定し、そしてpARTrを命名する。プラスミドpAR1の構成プラスミドpARLDをNheI及びHindIIIにより消化し、そしてプラスミドpAR11から得られた2.0kbpのNheI−HindIII挿入体に連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドをその制限地図により同定し、そして pAR1と命名する。プラスミドpAR2の構成プラスミドpAR1をNsiIにより線状化し、そしてpARTrからのＮsiIフラグメントにより連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドをその制限地図により同定し、そしてpAR2と命名する。プラスミドpAR3の構成プラスミドpAR2を、SpeI及びXbaIにより消化し、そして挿入体を、SpeIにより線状化されたプラスミドpAR12により連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドを、その制限地図により同定し、そしてpAR3 と命名する。プラスミドpAR4の構成プラスミドpAR3をNsiIにより消化し、そしてそのベクターを、テトラサイクリン耐性遺伝子を含む、pARTrのNsiIフラグメントに連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン（12.5μｇ／m l）の存在下で増殖された個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミドを、その制限地図により同定し、そしてpAR4と命名する。プラスミドpAR5の構成プラスミドpAR4をNotI及びXbaIにより消化し、そしてプラスミドpARTEの消化により得られたNotI−XbaIフラグメントにより連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン（12.5μｇ／ml）の存在下で増殖された個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望のプラスミドをその制限地図により同定し、そしてpAR5と命名する。プラスミドpAR5−２の構成Ｓ．ヒグロスコピカスのrapC遺伝子の7.2kbpセグメントを、コスミド13（Schw ecke，T.など．Proc．Natl．Acad．Sci．USA（1995）92：7839-7843）から、Bst XI及びNdeIを用いて切り出し、ゲル電気泳動により精製し、そしてまたBstXI及びNdeIにより消化されているプラスミドpAR5により連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン（12.5μｇ／ml）の存在下で増殖された個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド(11.9k bp)を、その制限地図により同定し、そしてpAR5−２と命名する。プラスミドpAR5−３の構成プラスミドpAR5の3.0kbpセグメントを、NdeIによる消化により切り出し、ゲル電気泳動により精製し、そしてNdeIにより線状化されているプラスミドpAR5−２により連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン（12.5μｇ／ml）の存在下で増殖された個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べる。所望するブラスミド（14.9kbp）を、その制限地図により同定し、そしてpAR5−３と命名する。プラスミドpAR8の構成プラスミドpAR5−３の12.2kbpセグメントを、PacI及びXbaIを用いて切除し、ゲル電気泳動により精製し、そしてPacI及びXbaIにより切断されているプラスミドpRM52（例４）により連結する。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン（30.3μｇ／ml）の存在下で増殖された個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。所望するプラスミド(1 4.9kbp)を、その制限地図により同定し、そしてpAR8と命名する。Ｓ．エリスラエアJC2／pAR8の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリDH10B(pAR8)から単離された約５〜10μｇのpAR8を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２プロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを選択する。それらのコロニーの１つを選択し、そして全DNAをサザンハイブリダイゼーション分析のために調製し、前記プラスミドが、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII 遺伝子の一部の染色体コピー中に特異的に組込んだことを確かめる。この株を、Ｓ．エリスラエアJC2／pAR8と命名する。（ii）２，４−ビスノル−３−エピ−TKL及び（Ac）−２，４−ビスノル−３− エピ−TKLの生成Ｓ．エリスラエアJC2／pAR8のコロニーを採取し、そして50μｇ／mlのチオストレプトンにより補充されたスクロース−スクシネート培地に移し、そして30℃ で増殖せしめる。３日後、ブイヨンを濾過し、そして等体積の酢酸エチルにより２度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして減圧下で濃縮する。残留物のGC−MSは、２，４−ビスノル−３−エピ−TKL(IV，Ｒ＝Et）及び（Ac）−２，４−ビスノル−３−エピ−TKL(IV，Ｒ＝ Me）の存在を示す。例26 プラスミドpE1A2TEの構成プラスミドpE1A2TE(本明細書にまた記載されるプラスミドpE1A2TE−２のような）は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１の延長モジュール、次に、avr PKS の第２の延長モジュール、及びery PKSのチオエステラーゼを含んで成るハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子を含むpT7.7由来のプラスミドから成る。それを、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成する（図15）。プラスミドpIG70の構成アベルメクチンPKS遺伝子の一部を含むプラスミドpVE1446を、Ｅ．コリATCC 6 8250から得た。プラスミドpVE1446をBamHIにより消化し、そして座標6.05及び13.05間の7.0kbpフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてBamHIにより線状化されたプラスミドpUC119中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べる。BamHI挿入体の２つの可能な配向のうち、PstIにより消化される場合、約2.0及び8.6kbpのフラグメントが得られ、そしてEcoRIにより消化される場合、約5.1及び5.5kbpのフラグメントが得られるように、pIG70を選択した。プラスミドpIG71の構成アベルメクチンPKS遺伝子の一部を含むプラスミドpVE1446を、Ｅ．コリATCC 6 8250から得た。プラスミドpVE1446をBamHIにより消化し、そして座標13.05及び2 0.15間の7.1kbpフラグメントをゲル電気泳動し、そしてBamHIにより線状化されたプラスミドpUC119中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0 を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。BamHI挿入体の２つの可能な配向のうち、EcoRI及びXhoIにより消化される場合、約５kbpの２つのフラグメントが得られるように、pIG71を選択した。プラスミドpIG70 ΔPstの構成 pIG70をPst1により切断し、そして再連結した。pIG70 ΔPstを、Ｅ．コリTG1r ec0の形質転換の後、単離した。プラスミドpIG70 ΔEcoの構成 pIG70をEcoRIにより切断し、そして再連結した。pIG70 ΔEcoを、Ｅ．コリTG1 rec0の形質転換の後、単離した。プラスミドpIG71 ΔSacの構成 pIG71をSacIにより切断し、そして再連結した。pIG71 ΔSacを、Ｅ．コリTG1r ec0の形質転換の後、単離した。プラスミドpIGPCRstartの構成 BglII部位を導入している合成オリゴヌクレオチド8985(5'-GAGCAGTCGTTCCGAGA TCTCGGCTTCGATTCA-3')及び9204（5'-GGGAGGAGATCAGATCCCAGAAGT-3'）のそれぞれ 50ｐモルをPCRに使用し、60ngのpIG70 ΔEcoから300bpの生成物を増幅した。PCR 生成物を末端−修復し、リン酸化し、そしてSmaIにより線状化され、そして脱リン酸化されているpUC18中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1re c0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。pIGPCRstartの配向を、EcoRI及びBglIIによる二重制限酵素消化物により同定し、300bpフラグメントを含んでいるパターンを付与した。プラスミドpIGPCRendの構成 BglII部位を導入している合成オリゴヌクレオチド8986(5'-GAGGGAGTCGAACCGAG ATCTCGGAACGCGCGG-3')及び9205(5'-GGGGGATCCTGGGGTCGGCCGGGCAGGGCAA-3')のそれぞれ50ｐモルをPCRに使用し、60ngのpIG71 ΔSacから440bpの生成物を増幅した。PCR生成物を末端−修復し、リン酸化し、そしてSmaIにより線状化され、そして脱リン酸化されているpUC18中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。pIGPCRendの配向を、その制限酵素消化物パターンにより同定した。プラスミドpIGstart＋middleの構成プラスミドpIGPCRstartをPstIにより消化し、そして300bpのフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてPstIにより線状化され、そして脱リン酸化されているプラスミドpIG70 Δpst中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。PstI−PstI挿入体の正しい配向を含むプラスミドを、DNA配列決定により同定した。プラスミドpIGAve2Bglの構成プラスミドpIGstart＋middleを、BamHIにより消化し、そして5.0kbpのフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてBamHIにより切断され、そして脱リン酸化されているプラスミドpIGPCRend中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。BamHI−BamHI挿入体の正しい配向を含むプラスミドを、DN A配列決定により同定した。プラスミドpE1A2TEの構成プラスミドpIGAve2BglをBglIIにより消化し、そして6kbpのフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてBglIIにより線状化され、そして脱リン酸化されているプラスミドpKW15（例16）中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。Bg1II−BglII挿入体の正しい配向を含むプラスミドを、EcoRI により制限酵素消化物により同定した。例27 プラスミドpIG2の構成及び使用（ｉ）構成プラスミドpE1A2TEをNdeI及びXbaIにより消化し、そして11kbpのフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてNdeI及びXbaIにより切断されているプラスミドpRM52（例４）中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。（ii）Ｓ．コエリカラーCH999／pIG2の構成Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpIG2を用いて、Ｓ．コエリカラーC999のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べ、そしてプラスミドpIG2の存在をその制限パターンにより確かめた。例28 プラスミドpIG102の構成プラスミドpE1A2TEをNdeI及びXbaIにより消化し、そして11kbpのフラグメントをゲル電気泳動により精製し、そしてNdeI及びXbaIにより切断されたプラスミド pCJR101（例２）中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。例29 （ｉ）プラスミドpKS22の構成プラスミドpKS22は、DEBSI−TE−由来のトリケチドシンターゼ、及びKS１ドメインの代わりのKS２ドメインを含む、pNTEP2−由来のベクターである。プラスミドpKS22を、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより得る（図16）。プラスミドpM007，pM008及びpM009の構成プラスミドpM007についてのPCR増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、この１つはHindIII部位を含み、そして他はEcoRV部位を含む：プラスミドpM008についての増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、この１つはP stI部位を含み、そして他はHindIII部位を含む：プラスミドpM009についての増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、この１つはMunI部位を含み、そして他は PstI部位を含む： PCRを、Pwo DNAポリメラーゼ、及び次の１回のサイクル：96℃（１分）；50℃ （３分）でのアニーリング；及び72℃（１分）での延長；及び次の25回のサイクル：96℃（１分）；50℃（１分）でのアニーリング；及び10％（体積／体積）のジメチルスルホキシドの存在下で72℃（１分）での延長；を用いて、鋳型としてのpNTEP2に基づいて実施した。生成物を、末端修復し、そしてSmaIにより消化されたpUC18中にクローン化し、そしてその連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。プラスミドDNAを個々のコロニーから調製した。pM007(3.8kbp)， pM008(3.9kbp)及びpM009(4.3kbp)のための所望するプラスミドを、それらの制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpM008をHindIIIにより消化し、そして1.2kbpの挿入体を、HindIII により消化されたpM007中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（5.0kbp）を、その制限パターンにより同定し、そしてpM010と命名した。プラスミドpM009をPstIにより消化し、そして1.6kbpの挿入体を、PstIにより消化されているpM010中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリD H10Bを形質転換した。所望するプラスミド（6.6kbp）を、その制限パターンにより同定し、そしてpM011と命名した。プラスミドpM011を、MunI及びEcoRVにより消化し、そして3.9kbpのフラグメントを、MunI及びEcoRVにより消化されているpNTEPH（下記を参照のこと）中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド(13kbp)を、その制限パターンにより同定し、そしてpKS22と命名した。プラスミドpNTEPHを、HindIII部位を除去することによってpNTEP2から得た。p NTEP2をHindIIIにより消化し、５’オーバーハングをクレノウフラグメントDNA ポリメラーゼＩによりフィルインし、そして再連結した。所望するプラスミド(1 3.6kbp)を、その制限パターンにより同定した。例30 （ｉ）プラスミドpIB018の構成プラスミドpIB018は、KS２の代わりのKS１と共に、DEBS1TE−由来のトリケチドシンターゼを含むpCJR24−由来のベクターである。プラスミドpIB018を、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドを通して得た（図17Ａ）。プラスミドpKSA，pKSB及びpKSCの構成プラスミドpKSAについてのPCR増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、１つはPstI部位を含み、そして他はHi ndIII部位を含む：プラスミドpKSBについてのPCR増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、１つはEsp I部位を含み、そして他はPstI部位を含むプラスミドpKSCについてのPCR増幅に関しては、次の合成オリゴヌクレオチドを突然変異誘発プライマーとして使用し、１つはHindIII部位を含み、そして他はBspEI部位を含む： PCRを、Pwo DNAポリメラーゼ、及び次の１回のサイクル：96℃（１分）；50℃ （３分）でのアニーリング；及び72℃（１分）での延長；及び次の25回のサイクル：96℃（１分）；50℃（１分）でのアニーリング；及び10％（体積／体積）のジメチルスルホキシドの存在下で72℃（１分）での延長；を用いて、鋳型としてのpNTEP2に基づいて実施した。生成物を末端−修復し、そしてSmaｌにより消化されたpUC18中にクローン化し、そしてその連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10B を形質転換した。プラスミドDNAを、個々のコロニーから調製した。pKSA(4.0kbp )，pKSB(4.2kbp)及びpKSC（3.2kbp）のための所望するプラスミドを、それらの制限パターンにより同定した。プラスミドpKSAをPstIにより消化し、そして1.2kbpの挿入体を、PstIにより消化されているpKSB中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10 Bを形質転換した。所望するプラスミド（5.5kbp）をその制限パターンにより同定し、そしてpKSDと命名した。プラスミドpKSCをHindIIIにより消化し、そして0.5kbpの挿入体を、HindIIIにより消化されているpKSC中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（6.0kbp）を、その制限パターンにより同定し、そしてpKSEと命名した。プラスミドpKSEをEspI及びEspeEIにより消化し、そして3.3kbpのフラグメントを、EspI及びBspeEIにより消化されているpUCTE中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド(13.9kbp) を、その制限パターンにより同定し、そしてpIB004と命名した。プラスミドpIB004をNdeI及びXbaIにより消化し、そして11.2kbpの挿入体を、N deI及びXbaIにより消化されているpCJR24中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド(15.9kbp)を、制限パターンにより同定し、そしてpIB018と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIB018の構成のためへのプラスミドpIB018の使用約５μｇのプラスミドpIB018を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAIのモジュール２の末端中に組込んだことを確認した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIB018を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめた。この種子培養物20mlを用いて、凝集を減じるために、300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培養物400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH４に調節し、そして等体長の酢酸エチルにより３度抽出した。溶媒を蒸発により除去した。トリケチドラクトン生成物（10mg／ｌ）を、GC−MS及びNMRにより同定した。主成分は、（２Ｒ，３Ｓ，４Ｓ，５Ｒ）−２，４−ジメチル−３，５− ジヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δラクトンであり；（２Ｒ，３Ｓ，４Ｓ，５Ｒ） −２，４−ジメチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ペプタン酸δラクトンもまた見出された（それらの化学式は下記の通りである）：次のマクロライドが、HPLC／MSにより同定された：例31 （ｉ）プラスミドpIB017の構成プラスミドpIB017は、KSIの代わりのKS2、及びKS2の代わりにKSIと共に、DEBS 1TE−由来のトリケチドシンターゼを含むpCJR24−由来のベクターである。プラスミドpIB017を、次の通りにして、いくつかの中間体プラスミドにより得る（図 17Ｂ）。プラスミドpIB004をEcoRV及びEcoRIにより消化し、そして7.2kbpのフラグメントを、EcoRV及びEcoRIにより消化されているpKS22中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10B を形質転換した。所望するプラスミド(13.6kbp)を、その制限パターンにより固定し、そしてpIB009と命名した。プラスミドpIB009を、NdeI及びXbaIにより消化し、そして11.2kbpの挿入体を、NdeI及びXbaIにより消化されているpCJR24中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド(15.9kbp)をその制限パターンにより同定し、そしてpIB017と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIB017の構成約５μｇのプラスミドpIB017を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAIのモジュール２の末端中に組込んだことを確する。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIB017を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子20mlを用いて、凝集を減じるために、300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地400m lを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH４に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出した。溶媒を蒸発により除去した。トリケチドラクトン(0 .4mg／ｌ）の分析をGC−MS、光学回転及びNMRにより行なった。単離された化合物は、下記式で表わされる（２Ｒ，３Ｓ，４Ｓ，５Ｓ）−２，４−ジメチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δラクトン；及び（２Ｒ，３Ｓ，４Ｓ，５Ｓ）−２，４−ジメチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ヘプタン酸δラクトンであることが見出された：次のマクロライドが、HPLC／MSにより同定された：例32 （ｉ）プラスミドpIB015の構成プラスミドpIB015は、LD，KS１，AT２，KR２，ACP２／６及びTEと共にジケチドシンターゼを含むpCJR24−由来のベクターである。プラスミドpIB015を、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより得る（図18）。プラスミドpIB009をPstIにより消化し、4.4kbpのフラグメントを除去し、そして再連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリ DH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（9.2kbp）を、その制限パターンにより固定し、そしてpIB011と命名した。プラスミドpIB011を、NdeI及びXbaIにより消化し、そして6.8kbpの挿入体を、 NdeI及びXbaIにより消化されているpCJR24中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（9.2kbp）を、その制限パターンにより同定し、そしてpIB015と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pIB015の構成のためへのプラスミドpIB015の使用約５μｇのプラスミドpIB015を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがTE中に組込んだことを確認する。Ｓ．エリスラエアJC２／pIB015を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を減じるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトン、0.1mg／mlの４−ペンチン酸及び0.1mg／ml の３−テトラデシルスルファニル−プロピオン酸を含むスクロース−スクシネート培地400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH3に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出した。溶媒を蒸発により除去した。ジケチド酸の分析を、標準としてジケチド酸のすべて４種の合成立体異性体を用いて、キラルカラム（Hydrodex−β−PM，25ｍ×0.25mm ID（Machery‐Nagel GmbH & CokG，G ermany））を備えたGC−MSにより行なった。生成される化合物を、（２Ｒ，３Ｓ）−２−メチル−３−ヒドロキシペンタン酸として同定した。（iii）Ｓ．エリスラエアORF５／pIB015の構成のためへのプラスミドpIB015の使用約５μｇのプラスミドpIB015を用いて、Ｓ．エリスラエアORF５のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAIのモジュール２中に組込んだことを確認する。Ｓ．エリスラエアORF５／pIB015を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日問、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地400m lを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒をESMSにより分析する。次の化合物が検出された例33 （ｉ）プラスミドpIB016の構成プラスミドpIB010は、LD，KS２，AT２，KR２，ACP２／６及びTEと共にジケチドシンターゼを含むpCJR24−由来のベクターである。プラスミドpIB016を、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより得る（図 18）。プラスミドpIB009をHindIIIにより消化し、4.4kbpのフラグメントを除去し、そして再連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（9.2kbp）を、その制限パターンにより固定し、そしてpIB012と命名した。プラスミドpIB012を、NdeI及びXbaIにより消化し、そして6.8kbpの挿入体を、 NdeI及びXbaIにより消化されているpCJR24中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換した。所望するプラスミド（9.2kbp）を、その制限パターンにより同定し、そしてpIB016と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアORF５／pIB016の構成のためへのプラスミドpIB016の使用約５μｇのプラスミドpIB016を用いて、Ｓ．エリスラエアORF５のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAIのモジュール２中に組込んだことを確認する。Ｓ．エリスラエアORF５／pIB016を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地400m lを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒をESMSにより分析する。次の化合物が検出された例34 プラスミドpJLK15の構成プラスミドpJLK15は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含む、pCJR24 に基づくプラスミドであるが、但し、アシルトランスフェラーゼの末端と第２er y延長モジュールのACPの開始との間のDNAセグメントがrap PKSのモジュール13の同等のセグメントにより置換されている。それを次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図19）。プラスミドpJLK01の構成Ｓ．エリスラエアのeryAI遺伝子の約0.46kbpのDNAフラグメントを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド：り増幅した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaIによる消化により線状化されたプラスミドpUC18により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK01をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpJLK08の構成Ｓ．エリスラエアのeryAI遺伝子の約1.47kbpのDNAフラグメントを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド：及び鋳型としてのプラスミドpNTEPHを用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaIによる消化により線状化されたプラスミドpUC18により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK08をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpJLK09の構成Ｓ．エリスラエアのeryAI遺伝子の約1.12kbpのDNAフラグメントを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド：及び鋳型としてのプラスミドpNTEPHを用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaIによる消化により線状化されたプラスミドpUC18により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK08をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpJLK10の構成プラスミドpJLK08を、PstI及びBsu36Iにより消化し、そして PstI及びBsu36Iにより消化されているプラスミドpJLK09により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK10をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK11の構成プラスミドpJLK01を、PstI及びAvrIIにより消化し、そしてPstI及びAvrIIにより消化されているプラスミドpJLK10により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK11をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK12の構成プラスミドpJLK11を、ScaIにより消化し、そしてScaIにより消化されているプラスミドpCJR34により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK12をその制限パターンにより同定した。pCJR34を次の手段により構成した。pNTEP2をNdeI及びXbaIにより消化し、そしてNdeI及びXbaIにより前もって消化されているpUC19中にクローン化した。所望するプラスミドpCJ R34をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK13の構成プラスミドpJLK12を、NdeI及びXbaIにより消化し、そしてNdeI及びXbaIにより消化されているプラスミドpCJR24により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK13をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK14の構成モジュール13の還元ループをコードするＳ．ヒグロスコピカスのrapC遺伝子の約3.3kbpのDNAを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド：スミドcos31（Schwecke，T．など．（1995）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 92：7 839-7843）を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaIによる消化により線状化されたプラスミドpUC18により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK14をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpJLK15の構成プラスミドpJLK14を、AvrII及びNheIにより消化し、そしてAvrII及びNheIにより消化されているプラスミドpJLK13により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK15をその制限パターンにより同定した。例35 JC２／pJLK15の構成のためのプラスミドpJLK15の使用約５μｇのプラスミドpJLK15を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがTE中に組込んだことを確かめる。JC２／pJLK15を、50μ ｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース− スクシネート培養物400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH３に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒を蒸発により除去し、そして残留物をメタノール（５ml）に溶解し、そしてエレクトロスプレー質量分析法により分析する。主生成物を、（２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル− ５−ヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δ−ラクトン(Ｃ₈Ｈ₁₄Ｏ₂；MH⁺：計算値：143. 1072、実測値：143.110；MNa⁺：計算値：165.0891；実測値：165.093)として、及び（２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル−５−ヒドロキシ−ｎ−ヘプタン酸δ−ラクトン（Ｃ₉Ｈ₁₆Ｏ₂；MH⁺：計算値：156.1150；実測値：156.118；MNa⁺ ：計算値：178.0970；実測値：178.099）として同定した。例36 プラスミドpJLK18の構成プラスミドpJLK18は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含む、pCJR24 に基づくプラスミドであるが、但し、アシルトランスフェラーゼの末端と第２er y延長モジュールのACPの開始との間のDNAセグメントがrap PKSのモジュール４の同等のセグメントにより置換されている。それを次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図20）。プラスミドpJLK16の構成モジュール４の還元ループをコードするＳ．ヒグロスコピカスのrapA遺伝子の約2.8kbpのDNAを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド： cos25（Schwecke，T．など．（1995）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 92：7839-78 43）を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaIによる消化により線状化されたプラスミドpUC1 8により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK16をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpJLK17の構成プラスミドpJLK16を、AvrII及びBsu36Iにより消化し、そして2.8kbpのフラグメントを、AvrII 及びBsu36Iにより消化されているプラスミドpJLK12により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK17 をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK18の構成プラスミドpJLK17を、NdeI及びXbaIにより消化し、そして11.2kbpのフラグメントを、NdeI及びXbaIにより消化されているプラスミドpCJR24により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK18をその制限パターンにより同定した。例37 JC２／pJLK18の構成のためへのプラスミドpJLK18の使用約５μｇのプラスミドpJLK18を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがTE中に組込んだことを確かめる。Ｓ．エリスラエアJC２／pJLK18を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトン、0.1mg／mlの４−ペンチン酸及び0.1mg／mlの３−テトラデシルスルファニル−プロピオン酸を含むスクロース−スクシネート培養物400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH３に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒を蒸発により除去し、そして残留物をメタノール（５ml）に溶解し、そしてエレクトロスプレー質量分析法により分析する。主生成物を、（Ｅ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル−５−ヒドロキシ−ｎ−２−ヘキサン酸 (Ｃ₈Ｈ₂₄Ｏ₃；MH⁺：計算値：159.1021、実測値：159.098；MNa⁺：計算値：181.0 841；実測値：181.079)として、及び（Ｅ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル− ５−ヒドロキシ−ｎ−２−ヘプテン酸(Ｃ₉Ｈ₁₆Ｏ₂；MH⁺：計算値：173.1178；実測値：173.118；MNa⁺：計算値：195.0997；実測値：195.104)として同定した。例38 プラスミドpJLK21の構成（図21）プラスミドpJLK19の構成プラスミドpJLK19についての約1.3kbpのDNAフラグメントのPCR増幅のためには、次の合成オリゴヌクレオチド：して使用した。PCRを、鋳型としてpNTEPHを用いて実施した。PCR生成物をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼにより処理し、そして次に、SmaＩによる消化により線状化されているプラスミドpUC18により連結し、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK19をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK20の構成プラスミドpIB011を、HindIII及びNdeIにより消化し、そして2.9kbpのフラグメントを、HindIII及びNdeIにより消化されているプラスミドpJLK19中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJ KL20をその制限パターンにより同定した。プラスミドpJLK21の構成プラスミドpJLK20を、AvrII及びNdeIにより消化し、そしてAvrII及びNdeIにより消化されているプラスミドpJLK15中にクローン化した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJKL21をその制限パターンにより同定した。例39 JC２／pJLK21の構成のためへのプラスミドpJLK21の使用約５μｇのプラスミドpJLK21を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがチオエステラーゼ中に組込んだことを確かめる。JC２／pJLK21を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトン、0.1mg／mlの４−ペンチン酸及び0.1mg／mlの３−テトラデシルスルファニル−プロピオン酸を含むスクロース−スクシネート培養物400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH３に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒を蒸発により除去し、そして残留物をメタノール（５ml）に溶解し、そしてエレクトロスプレー質量分析法により分析する。主生成物を、（２Ｒ）−２−メチル−ブタン酸(Ｃ₆Ｈ₁₀ Ｏ₂；MH⁺：計算値：103.0759；実測値：103.071；MNa⁺：計算値：125.0578；実測値：125.052)として、及び（２Ｒ）−２−メチル−ペンタン酸として同定した。プラスミドpJLK22の構成プラスミドpJLK20を、AvrII及びNdeIにより消化し、そしてAvrII及びNdeIにより消化されているプラスミドpJLK18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpJLK22をその制限パターンにより同定した。例41 JC２／pJLK22の構成のためへのプラスミドpJLK22の使用約５μｇのプラスミドpJLK22を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがチオエステラーゼ中に組込んだことを確かめる。JC２／pJLK22を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間、増殖せしめる。この種子培養物20mlを用いて、凝集を低めるために300rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／mlのチオストレプトン、0.1mg／mlの４ −ペンチン酸及び0.1mg／mlの３−テトラデシルスルファニル−プロピオン酸を含むスクロース−スクシネート培養物400mlを接種する。６日後、ブイヨンを濾過し、pH３に調節し、そして等体積の酢酸エチルにより３度抽出する。溶媒を蒸発により除去し、そして残留物をメタノール（５ml）に溶解し、そしてエレクトロスプレー質量分析法により分析する。主生成物を、（Ｅ）−２−メチル−ブテン酸(Ｃ₅Ｈ₈Ｏ₂；MH⁺：計算値：101.0602；実測値：101.062；MNa⁺：計算値：12 3.0422；実測値：123.043)及び（Ｅ）−２−メチル−ペンテン酸(Ｃ₆Ｈ₁₀Ｏ₂；M H⁺：計算値：115.0759；実測値：115.077；MNa⁺；計算値：137.0578；実測値：1 37.058)として同定した。例42 プラスミドpKR1−０、すなわちケトラクトンシンターゼをコードするpCJR24の誘導体の構成のために、いくつかの中間体プラスミドを構成した（図22）。プラスミドp37の構成ヌクレオチド9838〜11214(DEBS１−TEのアミノ酸3279〜末端までをコードする )を含むプラスミドpNTEP2の1.4kbpセグメントを、プライマーとして下記２種の合成オリゴヌクレオチド：ミドpNTEP2を用いてPCRにより増幅する。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そしてアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。SpeI部位がこのフラグメントの５’末端で導入されている所望するプラスミドp37を、その制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドp37Nの構成プラスミドp37を、EcoRI及びKpnIにより消化し、そして1.4kbpのフラグメントを、EcoRI及びKpnIにより前もって消化されたpNTEP2に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するp37Nをその制限パターンにより同定した。プラスミドpSCA7の構成ヌクレオチド8202からヌクレオチド9306まで延長するＳ．エリスラエアのeryA I遺伝子の1.1kbpのDNAセグメントを、プライマーとして下記合成オリゴヌクレオチド：及び鋳型としてプラスミドpNTEP2を用いてPCRにより増幅した。PCR生成物を末端 −修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そして次にアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。SpeI部位がこのPCR生成物の３’末端で導入されている所望するプラスミドpSCA7をその制限パターン及びDNA配列決定により同定した。プラスミドpSHの構成プラスミドp37NをSpeI及びHindIIIにより消化し、そして1.4kbpのフラグメントを、SpeI及びHindIIIにより前もって消化されたプラスミドpSCA7により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpSHをその制限パターンにより同定した。プラスミドpUCTEの構成プラスミドpNTEP2をBglII及びHindIIIにより消化し、そして11.2kbpの挿入体を、BamHI及びHindIIIにより消化されたプラスミドpUC18に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpUCTEをその制限パターンにより同定した。プラスミドpUC1−０の構成 pUCTEの3.9kbpのScaI制限フラグメントと、pSHの3.4kbpのＳcaI制限フラグメントとを置換した。所望するプラスミドpUC1−０をその制限パターンにより同定した。プラスミドpKR1−０の構成 pUC1−０の10.7kbpのNdeI及びXbaI制限フラグメントを、NdeI及びXbaIにより消化されたpCJR24に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpKR1−０をその制限パターンにより同定した。例43 Ｓ．エリスラエアJC２／pKR1−０の構成及び使用（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpKR1−０を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがＣ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分中に相同組換えにより特異的に組込んだことを確めた。１つのそのようなクローンを選択し、そしてＳ．エリスラエアJC２／pKR1−０と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pKR1−０を用いてのトリケチドラクトンの生成Ｓ．エリスラエアJC２／pKR1−０を、10μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、酢酸エチルにより２度抽出した。組合された酢酸エチル抽出物をガスクロマトグラフィー、質量検出及びNMRにより分析し、そして主生成物はそれぞれ20mg／ｌの合計収率での（２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル−３−ケト−５−ヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δ−ラクトン及び（２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−２，４−ジメチル−３−ケト−５ −ヒドロキシ−ｎ−ヘプタン酸δ−ラクトンであることが見出される。例44 ケトライドを生成するＳ．エリスラエア株の構成のためには、プラスミドpKET 0の構成が次の中間体プラスミドの構成を必要とする（図23）。 p1−０の構成ヌクレオチド8715〜10645のpUC1−０の1.9kbpセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド：０のDNAを用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そしてアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。p1− ０と命名された所望するプラスミドを、制限分析及びDNA配列決定により同定した。 pX3の構成ヌクレオチド7006〜7066のeryAIIIの60bpセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド： (Roberts，G．A.，など．（1993）Eur．J．Biochem．214：305-311)を用いて、P CRにより増幅した。PCR生成物を、末端−修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そして次にアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpU C18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。pD3Pと命名された所望するプラスミドを、制限分析及びDNA配列決定により同定した。 pT3の構成 pX3からの0.1kbpのEcoRI及びPstI制限フラグメントを、EcoRI及びPstIにより消化されたpT７−18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10B を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。pT3と命名された所望するプラスミドを、制限分析により同定した。 pT31−０の構成 p1−０からの1.9kbpのPstIフラグメントを、PstIにより消化されたpT3に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。pT31−０と命名された所望するプラスミドを制限分析により同定した。 pD31−０の構成 pEXDB3(Roberts，G．A.，など．（1993）Eur．J．Biochem．214：305-311)からの3.3kbpのXmnI制限フラグメントと、pT31−０の2.7kbpのXmnI制限フラグメントとを置換した。所望するプラスミドpD31−０を制限分析により同定した。 pKET0の構成プラスミドpD31−０をBglIIにより消化し、そして11.3kbpのフラグメントを、 BglIIによる消化により線状化されたpIJ702に連結した。その連結混合物を用いてＥ．コリDH10Bを形質転換し、そして個々のコロニーをプラスミド含有について調べた。pKET0と命名された所望するプラスミドを、制限分析により同定した。例45 （ｉ）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pKET0の構成Ｅ．コリDH10Bから単離された約５μｇのプラスミドpKET0を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが相同組換えによりeryAIII遺伝子中に特異的に組込んだことを確かめた。１つのそのようなクローンを選択し、そしてＳ．エリスラエアNRRL2338／pKET0と命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pKET0を用いてのケトライドの生成Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pKET0を、10μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、その上清液をpH9.5に調節し、そして次に、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。組合された酢酸エチル抽出物を蒸発乾燥せしめ、残留物をメタノール（５ml）に採取し、そして次にHPLC 及びエレクトロスプレーMSにより分析した。主生成物は、約10mg／ｌの収率での予測される３−ケトライドであることが見出された。エレクトロスプレー質量スペクトルの分析は、この化合物のためのプロトンアダクトが、正確な質量分析により確かめられる、558.4のMH⁺質量を示し；MH⁺は558.36418のＣ₂₉Ｈ₅₂Ｏ₉Ｎ（5 56.36427の実測）を要する。 ΔKR６によるケトライドの合成Ｃ₂₉Ｈ₅₂Ｏ₉Ｎは558.36418を要し；556.36427が実測される例47 プラスミドpMO7の構成プラスミドpMO7（本明細書においてまた記載されるプラスミドpMO107のような）は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖−停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むSCP２^*−に基づくプラスミドであるが、但し、前記第１ery延長モジュール内のメチルマロニル−CoA： ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAセグメントが、rap PKSのモジュール13のマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAにより特異的に置換されている。それを、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図24）。プラスミドpMO1の構成 eryAI（Donadio，S．など．Science（1991）252：675-679）のヌクレオチド19 48から3273に及ぶＳ．エリスラエアのeryAI遺伝子の約1.3kbpのDNAセグメントを、プライマーとして、次の合成オリゴヌクレオチド：ドpNTEP2（例５）を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。挿入体と接するStuI部位がポリリンカーにおけるHindIII部位に隣接している所望するプラスミドpMO1（3.9kbp）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO2の構成 rapAのヌクレオチド1643からヌクレオチド2486まで延長する、Ｓ．ヒグルスコピカスのrapA遺伝子の約0.85kbpのDNAセグメントを、プライマーとして次のオリゴヌクレオチド：クテリオファージ−１Ｅ（Schwecke，T.など．Proc．Natl．Acad．Sci．USA（19 95）92：7839-7843）を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18/2より連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO2（3.5kbp）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO3の構成 eryAIのヌクレオチド4128〜ヌクレオチド5928の、Ｓ．エリスラエアのeryAI遺伝子の約1.7kbpのDNAセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド： pNTEP2を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaIによる消化により線状化され、そして次にアルカリホスファターゼにより処理されたプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0 を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。BalI及びAvrII部位がポリリンカーのHindIII部位に隣接している所望するプラスミドpMO3（4.4kbp）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO4の構成プラスミドpMO1を、HindIII及びBalIにより消化し、そして1.3kbpの挿入体を、HindIII及びBalIにより消化されているプラスミドpMO3により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO4（5.6kbp）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO5の構成プラスミドpMO4を、StuIにより消化し、そして3.0kbpの挿入体を、StuIにより消化され、そしてベクターが3.8kbpの挿入体を除去するためにゲル電気泳動により精製されているプラスミドpNTEP2により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO5(12.8kbp)を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO6の構成プラスミドpMO2を、BalI及びAvrIIにより消化し、そして挿入体を、BalI及びA vrIIにより消化されているプラスミドpMO5により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO6(13.5kbp)を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO7の構成プラスミドpMO6を、NdeI及びXbaIにより消化し、そして挿入体を、NdeI及びXb aIにより、消化され、そしてゲル電気泳動により精製されているプラスミドpRM5 2（例４）により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO7（また、pRMAT2とも称する）を、その制限パターンにより同定した。例48 Ｓ．コエリカラーCH999／pMO7の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成Ｅ．コリET12567(MacNeil，D．J．など．Gene（1992）111：61-68)から単離されたプラスミドpMO7を用いて、Ｓ．コエリカラーCH999のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。個々のコロニーをそれらのプラスミド含有にっいて調べ、そしてプラスミドpMO7の存在をその制限パターンにより確認した。（ii）Ｓ．コエリカラーCH999／pMO7を用いての４−ノル−TKL及び（Ac）４−ノル−TKLの生成及び単離Ｓ．コエリカラーCH999／pMO7を、50mg／mlのチオストレプトンを含むYEME培地中に接種し、そして28〜30％Ｃ下で５日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そしてpHを３に調節した。ブイヨンを等体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を等体積の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、約200mgの粗生成物を得た。これを２mlのメタノールにより消化し、そして0.5ｇの乾燥シリカゲルと共に混合し、そして次に、同じ材料のカラム（１cm×15cm）上でのフラッシュクロマトグラフィーにゆだねた。カラムをジエチルエーテルにより溶出し、そしてそれぞれ10mlの画分を集めた。画分４〜８をプールし、そしてジエチルエーテルを蒸発し、興味ある化合物を含む油状残留物約10mgを得た。それらをまず、水／メタノール（75：25；体積／体積）の混合物により、次に上昇するメタノールの線状グラジエント（30分後、水／メタノール55／45（体積／体積）に達する）により２ml／分の流速で溶出されるオクタデシルシリカ逆相カラム（10mm×25cm）上でのHPLCによりさらに精製した。約11分後、マイナー成分として、（Ac）４−ノル−TKL（Ｒ₁＝Me，Ｒ₂＝Ｈ，Ｒ₃＝Me）を含む画分を集め、そして約18分後、主成分として、４−ノル−TKL（Ｒ₁＝Me，Ｒ₂＝Ｈ，Ｒ₃＝Et）を含む画分を集めた。４−ノル−TKLの¹Ｈスペクトルを、Brnker AM−400 NMR分光計を用いて決定した。実測：Ｈ（400MHz，CDCl₃)4.18（１Ｈ，dtd，11.8，6.1， 2.９Hz，Ｈ−５），3.75（１Ｈ，ddd，11.0，10.0，4.0Hz,Ｈ−３），2.35（１Ｈ，dq，10.0，7.0Hz，Ｈ−２），2.20（１Ｈ，ddd，13.3，4.0，2.９Hz，Ｈ− ４eq），1.6−1.88（３Ｈ，ｍ，２xH−６，Ｈ−４ax），1.41（１Ｈ，ｄ，7.0Hz ，CH３−３’），1.01（１Ｈ，ｔ，7.5Hz，CH３−７）ppm。４−ノル−TKLの¹³Ｃ NMRスペクトルをまた決定した（100MHz，CDCl₃）：173. 3（Ｃ−１），77.7（Ｃ−５），70.4（Ｃ−３），45.1（Ｃ−２），37.7（Ｃ− ４），28.8（Ｃ−６），13.5（Ｃ−３’），9.1（Ｃ−７）。例49 プラスミドpMO107の構成及びTKL誘導体の生成（ｉ）構成プラスミドpMO6をNdeI及びXbaIにより消化し、そして挿入体を、NdeI及びXbaI により消化されたプラスミドpCJR101（例２）により連結し、そしてゲル電気泳動により精製した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO7107を、その制限パターンにより同定した。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pMO107を用いての４−ノル−TKL及び（Ac）４− ノル−TKLの生成及び単離Ｓ．エリスラエアJC２／pMO107を標準技法（たとえば、例26（ｉ））により調製し、そして50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして28〜30％Ｃ下で35日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そしてpHを３に調節した。ブイヨンを等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を等体積の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、約10mg／ｌの粗生成物を得た。これを２mlのメタノールにより消化し、そして0.5ｇの乾燥シリカゲルと共に混合し、そして次に、同じ材料のカラム（１cm×15cm）上でのフラッシュクロマトグラフィーにゆだねた。カラムをジエチルエーテルにより溶出し、そしてそれぞれ10mlの画分を集めた。画分４〜８をプールし、そしてジエチルエーテルを蒸発し、興味ある化合物を含む油状残留物約15mgを得た。それらをまず、水／メタノール（75：25；体積／体積）の混合物により、次に上昇するメタノールの線状グラジエント（30分後、水／メタノール55／45（体積／体積）に達する）により２ml／分の流速で溶出されるオクタデシルシリカ逆相カラム（10mm×25cm)上でのHPLCによりさらに精製した。約11分後、マイナー成分として、（Ac）４−ノル−TKLを含む画分を集め、そして約18分後、主成分として、４−ノル−TKLを含む画分を集めた。精製された４−ノル−TKL及び（Ac）４−ノル−TKLの¹Ｈ及び¹³Ｃスペクトルは、純粋な材料について得られたスペクトルと同一であった。例50 プラスミドpCJR26の構成プラスミドpCJR26は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖−停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むSCP２^* に基づくプラスミドであるが、但し前記第１延長モジュール内のメチルマロニル −CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAセグメントがrap PKSのモジュール２のマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAにより特異的に置換されている。それを次の通りに構成した（図25）：プラスミドpMO6をNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体を、NdeＩ及びX baＩにより消化されたプラスミドpCJR24により連結し、そしてゲル電気泳動により精製した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミド pCJR26をその制限パターンにより同定した。例51 Ｓ．エリスラエアJC２／pCJR26の構成及びTKL誘導体の生成プラスミドpCJR26を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換した。チオストレプトン耐性コロニーを、10μｇ／mlのチオストレプトンを含むR2T20培地上で選択した。いくつかのクローンを、DIG−ラベルされたDEBS１− TE遺伝子とそれらのゲノムDNAとのサザンブロットハイブリダイゼーションにより、染色体中に組込まれるpCJR26の存在について試験した。pCJR26の組込まれたコピーを有するクローンを、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むSSM培地において増殖し、そして28〜30℃で７日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そしてpHを３に調節した。ブイヨンを２体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を等体積の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、約500mgの粗生成物を得た。生成物は、下記式で表わされる（A c）４−ノル−TKL及び４−ノル−TKLであることが示された：例52 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJR26の構成及び14−員のマクロライドの生成へのその使用約５μｇのpCJR49のDNAを用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、プラスミドが染色体中に組込まれている菌株を得た。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAＩのモジュール２に組込んだことを確かめ、新規マクロライド生合成経路を得た。さらなる組込みが生じ、反復されたプラスミド配列を得た。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJR49を、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間インキュベートした。この種子培養物100mlを用いて、分散を助けるために２つのバネを有し、そして300rpmで振盪された、それぞれ500mlの培地を含む５×２ｌのフラスコにおける５μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地を接種した。さらなる５日間の増殖の後、培養物を遠心分離し、そして上清液のpHを９に調節した。次に、上清液を等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして蒸発により溶媒を除去した。生成物をHPLC／MSにより分析し、そして下記２つのマクロライドをエリスロマイシン類似体として同定した：例53 プラスミドpC−ATXの構成プラスミドpC−ATXは、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖−停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むSCP ２^*に基づくプラスミドであるが、但し、前記第１延長モジュール内のメチルマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAセグメントが、ストレプトミセスシンナモネンシスATCC 14513（ポリエーテルポリケチドモネンジンの生成体）からクローン化された推定上のタイプＩ PKS遺伝子クラスターからのマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAにより特異的に置換されている。それを次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図26）。コスミドpSCINO2の単離ストレプトミセスシンナモネンシスATCC 14513（モネンジンの生成体）のゲノムライブラリーを、BamHＩ−線状化され、そしてアルカリホスファターゼ処理されたコスミドベクターpWE15中に連結された染色体DNAのサイズ分別された35〜45 kbpのSan3Aフラグメントから構成した。連結混合物を、Gigapuckパッケージング抽出物を用いてλ−粒子中にパッケージし、そしてＥ．コリNM1blue中にトランスフェクトした。前記ライブラリーの約600のコロニーを、ナイロン膜の表面上で増殖せしめ、溶解し、そしてそれらのDNAをUV照射により膜に架橋せしめた。続いて、前記膜を、スクリーニング方法のために使用した。DEBSのモジュール２からのケトシンターゼドメインを含んで成るpMO8の挿入体を、³²ＰαATPの存在下でのランダムプライミングによりラベルし、そしてDNAハイブリダイゼーションのためのプローブとして使用した。プローブを、0.4×SSC緩衝液において68℃ で16時間ハイブリダイズし、そして続いて、0 .8×SSC緩衝液において68℃で１時間、洗浄した。３個の陽性クローンを単離した。すべての３個のクローンの挿入体のDNAを、ベクターpWE15に存在するＴ３及びＴ４プライミング部位から末端配列決定した。タイプＩケトシンターゼ及びマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼドメインに対して相同の領域が、鋳型としてクローン２（pSCINO2と命名される）を用いてＴ７プライミング部位からのDNA配列において発見された。マロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼドメイン（ATXと称する）の部分DNA配列決定は、前述のマロネート−又はメチルマロネート特異的CoA：ACPアシルトランスフェラーゼとは実質的に異なるドメインの推定上の基質認識部分に異常な配列型を示した（Haydock，S．F.など.，F EBS（1995）374：246-248）。プラスミドpMO38の構成 ATXドメインの約0.9kbpのDNAセグメントを、プライマーとして次のオリゴヌクレオチド：スミドpSCINO2からのDNAを用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaＩによる消化により線状化され、そしてアルカリホスファターゼにより処理されたプライマーpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO33(3.5kbp)を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpM034は構成プラスミドpMO34は、挿入されたD1−AT2遺伝子の停止コドンの後に挿入されるポリクローニング部位を有するpMO6の誘導体である。プラスミドpMO6をEcoRＩ及びHindIIIにより消化し、そしてポリクローニング部位の二本鎖領域を形成する下記２種のオリゴヌクレオチドによりアニーリングした：し、そしてそれを用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換した。個々のコロニーを、それらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO34（13.5kbp ）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO35の構成プラスミドpMO35は、TKLS−AT2遺伝子、及びストレプトミセスコリナスからの一時的に結合されたクロトニル−CoA−レダクターゼ遺伝子（Wallaceなど.，E． J．Biochem．（1995）233：954-962）を含むpMO34の誘導体である。クロトニル −CoA−レダクターゼ遺伝子をプラスミドpZYB3（Prof．K．Reynoldsの贈与物）からNdeＩ−BamHＩフラグメントとして切出し、これをヤエナリヌクレアーゼにより処理し、ブラント末端化し、そしてSpeＩにより前もって切断され、そして同様にヤエナリヌクレアーゼを用いてブラント末端化されたpMO34中に連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。クロトニル−CoA−ケトレダクターゼ遺伝子の正しい配向を有する所望するプラスミドpMO35（14.2kbp）を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO36の構成プラスミドpMO33を、BalＩ及びAvrIIにより消化し、そして挿入体を、BalＩ及びAvrIIにより消化されているプラスミドpMO35により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO36（13.5kbp）を、その制限パターンにより同定した。例54 プラスミドpC−ATXの構成プラスミドpMO36を、NdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体を、NdeＩ及びXbaＩにより消化され、そしてゲル電気泳動により精製されたプラスミドpCJR2 9により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpC−ATXをその制限パターンにより同定した。例55 Ｓ．エリスラエアJC２／pC−ATXの構成及びTKL誘導体の生成プラスミドpC−ATXを用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換した。チオストレプトン耐性コロニーを、10μｇ／mlのチオストレプトンを含むR2T20培地上で選択した。いくつかのクローンを、DIG-ラベルされたDEBS１ −TE遺伝子コードのDNAとそれらのゲノムDNAとのサザンブロットハイブリダイゼーションにより、染色体中に組込まれるpC−ATXの存在について試験した。pC−A TXの組込まれたコピーを有するクローンを、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むSSM培地において増殖し、そして28〜30℃で７日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そしてpHを３に調節した。ブイヨンを２体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を等体積の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、約500mgの粗生成物を得た。生成物をガスクロマトグラフィー、質量分析法及びNMRにより特徴づけ、そして（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｒ）−２−メチル−４−エチル−３，５ −ジヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δ−ラクトン及び（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｒ） −２−メチル−４−エチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ヘプタン酸δ−ラクトンであることを示した：例56 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pC−ATXの構成及び14−員のマクロライドの生成へのその使用約５μｇのpC−ATXのDNAを用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、プラスミドが染色体中に組込まれている菌株を得た。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAＩのモジュール２に組込んだことを確かめ、新規マクロライド生合成経路を得た。さらなる組込みが生じ、反復されたプラスミド配列を得た。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pC−ATXを、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間インキュベートした。この種子培養物100mlを用いて、分散を助けるために２つのバネを有し、そして300rpmで振盪された、それぞれ500mlの培地を含む５×２ｌのフラスコにおける５μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地を接種した。さらなる５日間の増殖の後、培養物を遠心分離し、そして上清液のpHを９に調節した。次に、上清液を等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして蒸発により溶媒を除去した。生成物をHPLC／MSにより分析し、そして下記２つのマクロライド生成物を同定した：例57ａプラスミドpC−AT12の構成プラスミドpC−AT12は、ery負荷モジュール、ery PKSの第１及び第２延長モジュール、及びery連鎖−停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むSCP ２^*に基づくプラスミドであるが、但し、前記第２延長モジュール内のメチルマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNA配列がrap PKSのモジュール２のマロニル−CoA：ACPアシルトランスフェラーゼをコードするDNAにより特異的に置換されている。それを次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図27）。プラスミドpMO25の構成 eryAＩ（Donadio，S．など.，Science（1991）252，675-679）のヌクレオチド 6696からヌクレオチド7707まで及ぶＳ．エリスラエアのeryAＩ遺伝子の約1.0kbp のDNAセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド：ラスミドpNTEp2を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、そしてSmaＩによる消化により線状化され、そして次にアルカリホスファターゼにより処理されているプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。挿入体に接しているStuＩ部位がポリメラーゼにおけるHindIII部位に隣接している所望するプラスミドpMO25(3 .6kbp)を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO26の構成 eryAＩのヌクレオチド8660からヌクレオチド9258まで延長するＳ．エリスラエアのeryAＩ遺伝子の約0.6kbpのDNAセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド：スミドpNTEP2を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、SmaＩによる消化により線状化され、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理されているプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。AvrIII部位がポリリンカーのHindIII部位に隣接している所望するプラスミドpMO26(3.2kbp)を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpMO27の構成プラスミドpMO25を、EcoRＩ及びBalＩにより消化し、そして1.Okbpの挿入体を、EcoRＩ及びBalＩにより消化されているプラスミドpMO2により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO27(4.4kbp)をその制限パターンにより同定した。プラスミドpMO32の構成プラスミドpMO26を、AvrII及びHindIIIにより消化し、そして0.6kbpの挿入体を、AvrII及びHindIIIにより消化されているプラスミドpMO27により連結した。その連結混合物を用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpMO32(5.lkbp) をその制限パターンにより同定した。プラスミドpMO33の構成プラスミドpMO32をBspEＩ及びSexAＩにより消化し、そして2.7kbpの挿入体を、前記同じ酵素により消化され、そしてゲル電気泳動により精製され、2.8kbpの挿入体が除去されているプラスミドpNTEP2により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。プラスミドpMO33（12.8kbp）を、その制限パターンにより同定した。例57ｂプラスミドpC−AT12の構成プラスミドpMO33を、NdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして挿入体を、NdeＩ及びXbaＩにより消化され、そしてゲル電気泳動により精製されているプラスミドp CJR29により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpC−AT12をその制限パターンにより同定した。例58ａＳ．エリスラエアJC２／pC−AT12の構成及びTKL誘導体の生成プラスミドpC−AT12を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換した。チオストレプトン耐性コロニーを、10μｇ／mlのチオストレプトンを含むR2T20培地上で選択した。いくつかのクローンを、DIG−ラベルされたDEBS１−TE遺伝子コードのDNAとそれらのゲノムDNAとのサザンブロットハイブリダイゼーションにより、染色体中に組込まれるpC−AT12の存在について試験した。pC−AT12の組込まれたコピーを有するクローンを、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むSSM培地において増殖し、そして2 8〜30℃で７日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そしてpHを３に調節した。ブイヨンを２体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を等体積の飽和塩化ナトリウムにより洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして酢酸エチルを減圧下で除去し、約 500mgの粗生成物を得た。生成物は、（３Ｒ，４Ｓ，５Ｒ）−４−メチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ヘキサン酸δ−ラクトン及び（３Ｒ，４Ｓ，５Ｒ）−４ −メチル−３，５−ジヒドロキシ−ｎ−ヘプタン酸δ−ラクトンであることが示された：例58ｂＳ．エリスラエアNRRL2338／pC−AT12の構成及び14−員マクロライドの生成へのその使用約５μｇのpC−AT12のDNAを用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、プラスミドが染色体中に組込まれている菌株を得た。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAＩのモジュール２の３’側に組込んだことを確かめ、新規マクロライド生合成経路を得た。さらなる組込みが生じ、反復されたプラスミド配列を得た。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pC−AT12を、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間インキュベートした。この種子培養物100mlを用いて、分散を助けるために２つのバネを有し、そして300rpmで振盪された、それぞれ500mlの培地を含む５×２ｌのフラスコにおける５μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地を接種した。さらなる５日間の増殖の後、培養物を遠心分離し、そして上清液のpHを９に調節した。次に、上清液を等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして蒸発により溶媒を除去した。生成物をHPLC／MSにより分析し、そして下記２つのマクロライドを同定した：例59 プラスミドpCJR49の構成 pCJR49は、モジュール２にケトレダクターゼを有さず、そしてモジュール２におけるATドメインが第２モジュールにおけるメチルマロニル延長体の代わりにマロニル延長体を組込むようにRAPS，AT2により置換されている変異体DEBS１−TE 遺伝子を含むpCJR24に基づくプラスミドである（図28）。 pMO32をBspEＩ及びSexAＩにより消化し、そしてRAPモジュールからのATを含むフラグメントを、BspEＩ及びSexAＩにより前もって消化されているpUC1−０中にクローン化し、プラスミドpCJR43を生成した。pCJR 43をNdeＩ及びXbaＩにより消化し、そして変異体DEBS１−TE遺伝子を含むフラグメントを、NdeＩ及びXbaＩにより前もって消化されているpCJR24中にクローン化し、プラスミドpCJR49を生成した。pCJR49を制限酵素マッピングにより確かめた。例60 Ｓ．エリスラエアJC２／pCJR49の構成及びTKL誘導体の生成約５μｇのpCJR49のDNAを用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、プラスミドが染色体中に組込まれている菌株を得た。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryTE中に組込んだことを確かめた。Ｓ．エリスラエアJC２／pCJR4 9を５μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間インキュベートした。この種子培養物100mlを用いて、分散を助けるために２つのバネを有し、そして300rpmで振盪された、それぞれ500m lの培地を含む５×２ｌのフラスコにおける５μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地を接種した。さらなる５日間の増殖の後、培養物を遠心分離し、そして上清液のpHを９に調節した。次に、上清液を等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして蒸発により溶媒を除去した。生成物をメタノールに溶解し、そしてFinnegan−MAT GCQ System上でGCMSにより分析した。この分析は、合成標準との比較により、２種の新規ラクトンが存在することを示した。それらの生成物は、下記（４Ｓ，５Ｒ）−４−メチル−３−ケト−５−ヒドロキシヘキサン酸δラクトン及び（４Ｓ，５Ｒ）−４−メチル−３−ケト−５−ヒドロキシヘプタン酸δラクトンであった：例61 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJR49の構成及び14−員マクロライドの生成へのその使用５μｇのpCJR49のDNAを用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、プラスミドが染色体中に組込まれている菌株を得た。いくつかのコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドがeryAＩのモジュール２に組込んだことを確かめ、新規マクロライド生合成経路を得た。さらなる組込みが生じ、反復されたプラスミド配列を得た。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJR49を、５μｇ／mlのチオストレプトンを含むトリプシン性大豆ブイヨン中に接種し、そして30℃で３日間インキュベートした。この種子培養物100mlを用いて、分散を助けるために２つのバネを有し、そして300rpmで振盪された、それぞれ500mlの培地を含む５×２ｌのフラスコにおける５μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地を接種した。さらなる５日間の増殖の後、培養物を遠心分離し、そして上清液のpHを９に調節した。次に、上清液を等体積の酢酸エチルにより３度抽出し、そして蒸発により溶媒を除去した。生成物をHPLC／MSにより分析し、そして下記２つのマクロライドを同定した：例62：プラスミドの構成（図29Ａ−Ｆ）プラスミドpCART11は、アベルメクチン負荷モジュール、ery PKSのモジュール５及び６、及びery連鎖−停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むpR M52に基づくプラスミドである。それを、次の通りに、いくつかの中間体プラスミドにより構成した。プラスミドpCAR1の構成プラスミドpARLDをBamHＩ及びBglIIにより消化し、そして1.70kbpの挿入体を、BamHＩ及びBglIIにより消化されているプラスミドpEXD3により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpCAR1をその制限パターンにより同定した。プラスミドpCAR5の構成 eryAIIIのヌクレオチド4807からヌクレオチド5052まで延長するＳ．エリスラエアのeryAIII遺伝子の250bpのDNAセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド：3を用いて、PCRにより増幅した。PCR生成物を末端−修復し、SmaにＩよる消化により線状化され、そして次に、アルカリホスファターゼにより処理されているプラスミドpUC18により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。NheＩ部位がポリリンカーのEcoRＩ部位に隣接している所望するプラスミドpCAR5を、その制限パターン及び配列分析により同定した。プラスミドpCAR2の構成プラスミドpCAR5を、NheＩ及びBalＩにより消化し、そして250bpの挿入体を、 NheＩ及びBa1IIにより消化されているプラスミドpCAR1より連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpCAR2をその制限パターンにより同定した。プラスミドpCAR21の構成プラスミドpARTrを、XbaＩにより消化し、そして1.2kbpのテトラサイクリン遺伝子を、XbaＩにより消化されているプラスミドpCAR2により連結した。その連結混合物を用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpCAR21をその制限パターンにより同定した。プラスミドpCART3の構成プラスミドpCAR21をPacＩ及びPstＩにより消化し、そして13.0kbpの挿入体を、PacＩ及びNsiＩにより消化されているプラスミドpRM52により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1recOを形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpCART3をその制限パターンにより同定した。プラスミドpIGletの構成プラスミドpARTrをXbaＩにより消化し、そして1.20kbpのテトラサイクリン遺伝子を、XbaＩにより消化されているプラスミドpIGIにより連結した。その連結混合物を用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpIGletをその制限パターンにより同定した。プラスミドpCART11の構成プラスミドpCAR21を、NheＩにより消化し、そして12.0kbpの挿入体を、NheＩにより消化されているプラスミドpIGletにより連結した。その連結混合物を用いてＥ．コリTG1rec0を形質転換し、そしてテトラサイクリン活性に対して耐性の個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミド pCART11をその制限パターンにより同定した。例63 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCART11の構成及びトリケチドラクトンの生成のためへのその使用 TG1rec0から単離された約５〜10μｇのpCART11を用いて、Ｓ．エリスラエアNR RL2338を形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCART11の５ml発酵を、TSB培地において実施し、そして30℃での２日後、菌糸体を用いて、チオストレプトン（50μｇ／ml）を含む50mlのスクロースースクシネート培地を接種した。30℃で４日間の増殖の後、全ブイヨンを、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。溶媒を濃縮し、そしてその混合物をGC−MS上で分析した。次の化合物が同定された：例64 プラスミドpARE24の構成プラスミドpARE24は、ery負荷モジュール、ery PKSのモジュール５及び６、及びery連鎖停止チオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むpCJR24に基づくプラスミドである。それを次の通りにして構成した（図30）。プラスミドpCJR24の構成プラスミドpCJR21をPacＩ及びXbaＩにより消化し、そして13.0kbpの挿入体を、PacＩ及びXbaＩにより消化されているプラスミドpCJR24により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTGlrec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpCJR24を、その制限パターンにより同定した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pARE24の構成及びトリケチドラクトンの生成のためへのその使用 TG1rec0から単離された約５〜10μｇのpARE24を用いて、Ｓ．エリスラエアNRR L2338を形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pARE24の５ml発酵を、TSB培地において実施し、そして30℃での２日後、菌糸体を用いて、チオストレプトン（50μｇ／ml）を含む50mlのスクロース−スクシネート培地を接種した。30℃で４日間の増殖の後、全ブイヨンを、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。溶媒を濃縮し、そしてその混合物をGC−MS上で分析した。次の化合物が同定された：例65 プラスミドpARA24の構成（図30）プラスミドpIG1は、PacＩ及びNheＩにより消化し、そして1.70kbpの挿入体を、PacＩ及びNheＩにより消化されているプラスミドpARE24により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpARA24を、その制限パターンにより同定した。例66 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pARA24の構成 TG1rec0から単離された約５〜10μｇのpARA24を用いて、Ｓ．エリスラエアNRR L2338を形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pARA24の５ml発酵を、TSB培地において実施し、そして30℃での２日後、菌糸体を用いて、チオストレプトン（50μｇ／ml）を含む50mlのスクロース−スクシネート培地を接種した。30℃で４日間の増殖の後、全ブイヨンを、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。溶媒を濃縮し、そしてその混合物をGC−MS上で分析した。次の化合物が同定された：例67 プラスミドpARL3の構成プラスミドpARL3は、ery負荷モジュール、ery PKSのモジュール５及び６、及びeryチオエステラーゼを含んで成るPKS遺伝子を含むpCJR24に基づくプラスミドである。前記負荷モジュールとKS5ドメインとの間の連結がKS5の最Ｎ−末端縁で行なわれる。それを次の通りにして、いくつかの中間体プラスミドにより構成した（図31）。プラスミドpARL1の構成 eryAＩのヌクレオチド１からヌクレオチド10631まで延長するeryAＩ遺伝子の4 50bpのDNAセグメントを、プライマーとして次の合成オリゴヌクレオチド（太文字での塩基は、制限酵素部位を示す）を用いて、PCRにより増幅した：プラスミドpARE24を鋳型として使用した。PCR生成物を末端修復し、そしてSmaＩによる消化により線状化され、そして次にアルカリホスファターゼにより処理されたpUCl8により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。NheＩ部位がポリリンカーのEcoRＩ部位に隣接している所望のプラスミドpARL1をその制限パターン及び配列分析により同定した。プラスミドpARL2の構成プラスミドpARL2をNheＩ及びSphＩにより消化し、そして450bpの挿入体を、Nh eＩ及びSphＩにより消化されているプラスミドpARE24により連結した。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpARL2を、その制限パターンにより同定した。プラスミドpARL3の構成次の相補的合成オリゴヌクレオチドが、アニールされる場合、それらが、それぞれHpaＩ及びNheＩの作用により生成される５’及び３’末端で、必要なパターンを有するよう合成された：合成オリゴヌクレオチドをアニールし、NheＩ及びHpaＩにより消化されたプラスミドpARL2に連結された二本鎖DNAを得た。その連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG 1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミドpARL3を、その制限パターンにより同定した。例68 Ｓ．エリスラエアJC２−pARL3の構成及びトリケチドラクトンの生成のためへのその使用 TG1rec0から単離された約５〜10μｇのpARL3を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２を形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。Ｓ．エリスラエアJC２−pARL3の５ml発酵を、TSB培地において実施し、そして30℃での２日後、菌糸体を用いて、チオストレプトン（50μｇ／ml）を含む50mlのスクロース−スクシネート培地を接種した。30℃で４日間の増殖の後、全ブイヨンを、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。溶媒を濃縮し、そしてその混合物をGC−MS上で分析した。次の化合物が同定された：例69 avr負荷ドメインがＳ．エリスラエアNRRL2338のery負荷ジドメインにより置換されているハイブリッドPKS遺伝子を担持するＳ．エリスラエアERMD１の構成（ｉ）プラスミドpAVLDの構成プラスミドpCRabc（例９）をBamHＩにより線状化し、そしてBglIIにより前もって消化されたpIJ702に連結した。その混合物は、所望するプラスミドpAVLD(図 32)を含んだ。前記連結混合物を用いて、Ｅ．コリTG1rec0を形質転換し、そして個々のコロニーをそれらのプラスミド含有について調べた。所望するプラスミド pAVLDを、その制限パターンにより同定した（図32）。 (ii)Ｓ．エリスラエアERM D1の構成Ｅ．コリTG1rec0（pAVLD）から単離された約５〜10μｇのpAVLDを用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338を形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。それらのコロニーの１つを選択し、そして全DNAをPstＩにより消化し、そしてケトシンターゼドメインKS1をコードするeryAＩ遺伝子のフラグメントを含むプラスミドpCRcからの挿入体をプローブとして用いて、サザンハイブリダイゼーションにより分析した。その分析は、8.5kbp，4.8kbp及び33kb pの陽性ハイブリダイズPstＩフラグメントを示し、これらがpAVLDの２つのタンデムに組込まれたコピーの存在を示す（図33）。例70 Ｃ−13で変更されたエリスロマイシンの単離Ｓ．エリスラエアERMD１の50ml発酵を、水道水培地上で実施し、そして30℃で４日後、菌糸体を収穫し、そしてチオストレプトン（50μｇ／ml）を含む1.5ｌのスクロース−スクシネート培地を接種するために使用した。 30℃で４日間の増殖の後、全ブイヨンを、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。組合された抽出物を減圧下で濃縮し、そしてクロロホルム／メタノール／ 0.88％アンモニア（８：２：0.01；体積による）により溶出される、シリカプレート（20×20cm）上での分離用薄層クロマトグラフィーに２度ゆだねた。生成物を、Iml／分で、メタノール／0.5％酢酸アンモニウム（70：30（体積／体積））により溶出される、Phase Sep C18塩基−不活性化された逆相カラムS5odS(オクタデシルシリカ)６(4.6mm×250mm)上でのHPLCにより分離した。画分を、３つの別々の注入から、７〜11分間集め、そしてプールされた画分を10の別々の注入により再注入した。カラムからの溶出の順序は、エリスロマイシンＢ類似体、続いて、エリスロマイシンＤ類似体及びエリスロマイシンＡ類似体であった。Ｂ及びＤ類似体は、８〜10分後に出現し、エリスロマイシンＡ類似体は３〜４分後に出現した。Ｃ−４（イソブチリル）スターター単位を含む類似体は、より早く溶出され、そしてＣ−５（２−メチルブチリル）スターター単位を有する類似体は数分後に出現し、但しＣ−４が遅く（eryA類似体）、そして早いＣ−５（エリスロマイシンＢ及びＤ類似体）はオーバーラップする。高い解像度のMSは、Ｃ−４eryA，eryB 及びeryD類似体、及びＣ−５eryA及びeryB類似体に関する結果を付与し、それらは計算された結果に密接に対応する：類似体計算された質量測定された質量Ｃ５−eryA 762.5004 762.5021 Ｃ４−eryA 748.4847 748.4820 Ｃ５−eryB 746.4898 748.5077 Ｃ４−eryB 732.4898 732.4933 それらの実験においては、天然のエリスロマイシンは低い量でか又は検出できない量でのみ存在し、そして検出できる量のeryC類似体は存在しなかった。ブイヨンの酢酸エチル抽出物のESMSにより評価されるような、発酵ブイヨンにおけるＣ −４／Ｃ−５化合物の全体の濃度比は、Ｃ−４化合物のためには４：１〜６：１であった。Ａ：Ｂ：Ｄ類似体の比は変動性であり、約15：60：25であるが、しかし発酵が進行するにつれて、Ａ類似体の割合が上昇する。エリスロマイシンの全体の収率は、約400μｇ／ｌである。例71 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEの構成及び使用（ｉ）構成Ｅ．コリTG1rec0から単離された約５μｇのプラスミドpRMTE（例６）を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。それらの１つを選択し、そしてＳ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEの命名した。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEを用いてのエリスロマイシンＡ及びエリスロノリドの増強された生成Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEを、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース及びスクシネート培地において、28〜30℃で増殖せしめた。３日後、全ブイヨンを等体積の酢酸エチルにより２度抽出し、組合された酢酸エチル抽出物を飽和塩化ナトリウム溶液により洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして減圧下で濃縮した。イソプロピルエーテル：メタノール：水酸化アンモニウム75：35：１（体積による）により溶出される、シリカプレート上での薄層クロマトグラフィーによる抽出物の試験は、いくつかの成分の存在を示した。抽出物のエレクトロスプレー質量分析は、エリスロマイシンＡ、エリスロノリドＢ（EB）及び６−デオキシエリスロノリドＢ(６−DEB)、並びに、そのナトリウムアダクトとして少量の（Ac）−６−DEB，Naアダクトとして（Ac） −EB（411.1）、及びNaアダクトとしてEB(424.1)、及びまたTKL（ｍ／ｅ 159.1 ）の混合物の存在を示した。エリスロマイシンＡ及びエリスロノリドＢの収率は培地１ｌ当たり約500mgであり、比較して、同一の条件下で発酵されるＳ．エリスラエアNRRL2338により生成される前記のものの収率は約50mg／ｌであった。３日後、発酵ブイヨンから収穫されたＳ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEの細胞を破壊し、そしてそれらのタンパク質含有を、ドデシル硫酸ナトリウム／ポリアクリルアミドゲル電気泳動により試験した。エリスロマイシンPKS多酵素サブユニットDEBS１，DEBS２及びDEBS３に対応する３種の高分子量バンドが観察され、このバンドは、同じ方法により調製されたＳ．エリスラエアNRRL2338の細胞抽出物から見出される同じタンパク質バンドよりも約10倍強かった(Caffrey，P．など．FEBS Letters（1992）304：225-228)。Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pRMTEの同一の発酵を実施したが、但し、培地が５mMのプロピオン酸カリウムにより補充された。３日後、ブイヨンを前記のようにして、酢酸エチルにより抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして濃縮した。イソプロピルエーテル：メタノール：水酸化アンモニウム75：35：１（体積による）のシステムを用いての分離用TLCは、２種の主成分を分離した。分析用TLCは、より早く移動する成分(Rf＝0.8)が純粋の６−DEBと同じ移動度を有し；そして遅く移動する材料は、TKLの純粋なサンプルと同時移動する、Rf＝0.6 3の成分とのほぼ同じ混合物であり；そしてRf＝0.60の成分はEBの純粋なサンプルと同じ移動度を有することを示した。陽性イオンモードで作動するVG BioQ質量分光計に基づくエレクトロスプレー質量分光法（ESMS）は、Rf＝0.75の成分が、６−DEBのために必要とされるように、ｍ／ｅ＝387.4を有することを示した。 Rf値＝0.60及び0.63を有する成分の混合物のESMSが、TKL及びEBの存在を確認した。例72 Ｓ．エリスラエアTER43／pRMTEの構成及び使用（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpRMTEを用いて、Ｓ．エリスラエアTER43(Cortes，J．など.，Science（1995）268：1487-1489)のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。それらの１つを選択し、そしてＳ．エリスラエアTER43／pRMTEと命名づけた。（ii）Ｓ．エリスラエアTER43／pRMTEを用いてのTKLの増強された生成Ｓ．エリスラエアTER43／pRMTEを、１ｌのスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして28〜30℃で３日間、増殖せしめた。３日後、ブイヨンを等体積の酢酸エチルにより２度抽出し、そして組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして濃縮した。エレクトロスプレー質量分光法（陽性イオンモードで作動される）による抽出物の分析は、TKL(ｍ／ｅ 173.1)及び（Ac）−TKL(ｍ／ｅ 159 .1)の存在を示した。トリケチドラクトンの組合された収率は100mg／ｌであり、比較して、10mg／ｌが同一の条件下でのＳ．エリスラエアTER43の発酵により得られた。３日後、発酵ブイヨンから収穫されたＳ．エリスラエアTER43／pRMTEの細胞を破壊し、そしてそれらのタンパク質含有率を、ドデシル硫酸ナトリウム／ポリアクリルアミドゲル電気泳動により試験した。結合されたチオエステラーゼドメインを有するエリスロマイシンPKSサブユニットDEBS１に対応する高分子量バンド(Cortes，J.など.，Science（1995）268：1487-1489)が観察され、このバンドは、同じ方法により調製されたＳ．エリスラエアの細胞抽出物から見出される同じタンパク質バンドよりも約10倍、より強かった。例73 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJRTE（pCJR30）の構成及び使用（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpCJRTE（pCJR30）を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338 のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離した。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドpCJRTE（pCJR30）に由来するac tＩプロモーターの制御下に存在のeryA遺伝子を配置するために、プラスミドが相同組換えによりeryA遺伝子中に特異的に組込み、そして入って来るプラスミドにより担持されるDEBS１−TE遺伝子が染色体eryAプロモーターの制御下に、組込み現象により配置されることを確かめた。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJRTE（pCJR30）を用いてのエリスロマイシン及びそれらの前駆体の増強された生成Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pCJRTE（pCJR30）を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、等体積の酢酸エチルにより２度抽出した。組合された酢酸エチル抽出物を質量分析法により分析し、そして、混合物が６−DEB，（Ac）−DEB，TKL及び（Ac）−TKLと共にエリスロマイシンＡを、100mg／ｌの合計量で、又は同じ条件下でＳ．エリスラエアNRRL2338を用いて得られるエリスロマイシン及びその前駆体の合計量の５倍の量で含むことが見出された。例74 Ｓ．エリスラエアJC２／pCJRTE（pCJR30）の構成及び使用（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpCJRTE（pCJR30）を用いて、Ｓ．エリスラエアJC２のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが、相同組換えにより、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分中に特異的に組込んだことを確かめる。（ii）Ｓ．エリスラエアJC２／pCJRTE（pCJR30）を用いてのトリケチドラクトンの増強された生成Ｓ．エリスラエアJC２／pCJRTE（pCJR30）を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめた。この後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、等体積の酢酸エチルにより２度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を質量分光法及びNM Rにより分析し、そして主生成物がTKLであり、そしてマイナー生成物が（Ac）TKLであり、合計収率が10mg／ｌであり、これはＳ．エリスラエアTER43を用いて得られた収率よりも10倍、高いことが見出される。例75 Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIG1の構成及び使用（ｉ）構成約５μｇのプラスミドpIG1を用いて、Ｓ．エリスラエアNRRL2338のプロトプラストを形質転換し、そして安定したチオストレプトン耐性コロニーを単離する。いくつかのそのようなコロニーから、全DNAを得、そしてサザンハイブリダイゼーションにより分析し、プラスミドが、相同組換えにより、Ｃ−末端チオエステラーゼ／サイクラーゼをコードするeryAIII遺伝子の部分中に特異的に組込んだことを確認する。（ii）Ｓ．エリスラエアNRRL2338／pIG1を用いての14−員ラクトンの生成Ｓ．エリスラエアNRRL／pIG1を、50μｇ／mlのチオストレプトンを含む水道水培地中に接種し、そして30℃で４日間、増殖せしめる。この後、菌糸体溶液20ml を用いて、凝集を減じるために280rpmで振盪された、２ｌのフラスコに50μｇ／ mlのチオストレプトンを含むスクロース−スクシネート培地500mlを接種する。3 .5〜６日後、ブイヨンを濾過し、菌糸体を除去し、そして次に、１／４体積の酢酸エチルにより３度抽出する。組合された酢酸エチル抽出物を無水硫酸ナトリウム上で乾燥せしめ、そして蒸発により溶媒を除去する。GC及びエレクトロスプレーMSを用いての生成物混合物の分析は、合計５〜６mg／ｌの14−員マイクロライド生成物のうち、主成分は（ｓ−pent）−エリスロマイシンＤ（約1.5mg／ｌ）であり、そして存在する他の成分は（ｓ−pent）−エリスロマイシンＢ及び（ｓ−pent）−エリスロマイシンＡ；(ｉ−but)−エリスロマイシンＡ，Ｂ及びＤ；及び少量の天然のエリスロマイシンＡ，Ｂ及びＤであることを示した。抽出物はまた、有意な量（11mg／ｌ）のTKL：（ｓ−pent）−TKL(５mg／ｌ)、(ｉ−but )−TKL及びTKLを含んだ。（NB，ｓ−pent及びｉ−butは、それぞれ１−メチルプロピル及びイソプロピル側鎖を示し、ｓ−２−メチルブチル及びｉ−ブタノイルスターター基質の使用に対応する。）例76 新規エリスロマイシンＡ類似体の抗生物質活性の決定バシラスサブチリス（Bacillus subtilis）ATCC 6633の一晩の培養物３mlを、栄養ブイヨン(Difco)において30％Ｃ下で増殖せしめた。46％Ｃ下での1.5％の栄養寒天(difco)200mlを、Ｓ．サブチリス培養物１mlにより接種する、そしてすぐに、ペトリ皿中に注いだ。層流フード下でプレートを15分間、乾燥せしめた後、ウェル（直径0.4mm）を、コルク穴開け器を用いて切断し、そしてエタノール中、試験化合物の溶液（５〜10mg／ｌ）20μｌを、個々のウェルに添加した。プレートを４％Ｃ下で５〜７時間維持し、化合物の拡散を可能にし、そして次に、プレートを30℃で一晩インキュベートした。増殖阻害の透明な部分が、(ｉ−but) −及び（ｓ−pent）−エリスロマイシンＡの両者に関して見られた。本発明は上記例により例示されるが、それらは本発明を限定するものではない。上記の記載は、まず、予測に反して、その特定の認識活性化因子遺伝子に結合されるタイプIIPKS遺伝子のための特定のプロモーターが、異種宿主においてタイプＩ PKS遺伝子の制御され、且つ増強された発現を達成するためにいかにして使用され得るかを示す。与えられるそれらの宿主の例は、Ｓ．エリスラエア、及びＳ．アベルミチリスであるが、しかし広範囲の放線菌からの他の宿主が発現宿主として同等に作動するであろうことは、当業者に明らかであろう。同様に、actＩプロモーター及びその認識活性化因子遺伝子actII−orf４がそれらの例に使用されて来たが、広範囲の放線菌からの異種細胞において制御され、そして増強されたタイプＩ PKS遺伝子の発現の方向づけにおいて同等に効果的である他のタイプII PKSプロモーター／活性化因子遺伝子組合せが、良く知られており、そして特徴づけられることは、当業者に明らかであろう。そのようなプロモーター／活性化因子遺伝子組合せの例は、dnr遺伝子クラスターのプロモーター及びストレプトミセスペウチセウス（Streptomyces peucetius）のダウノルビシン遺伝子からのdnrＩ活性化因子遺伝子(Madduri，K．and Hutchinson，C．R ．J．Bacteriol（1995） 177：1208-1215)、及び遺伝子redXのプロモーター及びＳ．コエリカラーのウンデシルプロジゴシン遺伝子クラスターからの活性化因子遺伝子redD（Takano，E.など．Mol．Microbiol．（1992）２：2797-2804）を包含する。第２に、上記の記載は、キラル合成中間体として又は生物活性材料、たとえば抗生物質として利用性の新規ポリケチド生成物を得るためへのハイブリッドタイプＩ PKS遺伝子の構成及びそれらの使用について最初に例示する。ハイブリッド PKS遺伝子は、負荷モジュールの置換により、又は延長モジュールにおける個々のドメインの置換により、もしくは完全なモジュールの置換により構成された。従って、avr負荷モジュールによるery負荷モジュールの置換が、新規エリスロマイシンＡ類似体又はトリケチドラクトンのいづれかを得るために本明細書に記載されている。ery負荷モジュールの他の変更が他のタイプＩ PKS遺伝子組の負荷モジュールによるその置換を通して得られることは当業者に容易に理解できるであろう。そのような変更の例は、rap PKSの負荷モジュール；及びFK506−産生PKSの負荷モジュールによる置換を包含する。そのような変更は、それらのスターター単位において特異的に変更されるポリケチドの合成を導びくであろう。 avr負荷モジュールが、発酵培地に含まれる場合、広範囲の非天然カルボン酸を代わりのスターター単位として受容することができることは、当業者に良く知られている。従って、本発明においては、Ｃ−13置換基がエチルの代わりに、本明細書に示されたイソプロピル又はsec−ブチルである新規エリスロマイシンＡ誘導体の合成の他に、多くの他の新規エリスロマイシンＡ誘導体が、ハイブリッドPKSを有する適切な菌株に、適切な非天然カルボン酸（又は発酵によりそれらに転換できる化合物）、たとえば一般式Ｒ−COOH（ここで、Ｒはα−枝分れ基であり、そして−COOH基を担持する炭素がまた、水素以外の少なくとも２つの他の原子又は基に結合されている）で表わされる非天然カルボン酸（好ましい非天然カルボン酸は、ヨーロッパ特許EP 214,731，March 18，1987，Pfizerにおいて非天然アベルメクチンの生成について記載されるものである）を供給することによって、得られることは明らかである。そのエリスロマイシンＡの得られる新規類似体は、当業界において十分に理解されている方法により、細菌感染の処理への相当の利用性を有するエリスロマイシンＡのさらなる新規半−合成誘導体、たとえばケトライド及びアザライドに転換され得る。本発明のそれらの態様は、価値ある生物活性生成物の化学合成における可能性ある利用性の新規キラル材料である。14−員マクロライドである生成物は、既知のエリスロマイシン及び既知のエリスロマイシンの半合成誘導体、たとえばフランス特許第2697523号（06／05／9 4）Roussel Uclaf；第269724号（06／05／94）Roussel Uclaf；及び第2702480号（16／09／94）Roussel Uclafに開示されるケトライドと同じ微生物標的物を有する高い価値の抗細菌剤である新規エリスロマイシンＡ類似体である。 rap PKSの負荷モジュールによるery負荷モジュールの置換がまた、新規で且つ有用なエリスロマイシンＡの類似体（ここで、天然のプロピオネートスターター単位がシクロアルキルカルボン酸スターター単位により置換されている）を導びくであろうことは、当業者に明らかであろう。そのようなハイブリッドタイプＩ PKSの形成のさらなる例は、非天然のラパマイシンの形成を誘導する、avr負荷モジュールによるストレプトミセスヒグロスコピカスにおけるrap負荷モジュールの置換；及び非天然のアベルメクチンのさらなる例の形成を誘導する、rap負荷モジュールによるストレプトミセスアベルミチリスにおけるavr負荷モジュールの置換を包含するが、但しそれらだけには限定されない。本発明はまた、例に記載される１以上の遺伝子操作が組合されている変異体も包含する。本発明においては、タイプＩ PKSの負荷モジュールの特異性の変更が、他方では、インビトロ遺伝子組換えの技法（Stemmer，W．P．Nature（1994）370：389- 391）において実施されるように、天然の負荷モジュールをコードする遺伝子の突然変異誘発、及び次に、所望する変更された特異性についての選択により達成され得ることもまた明らかであろう。上記に列挙される例はまた、適切な放線菌宿主中へのPKS遺伝子の供給のためのベクターとしての低コピー数のプラスミドベクターpCJR101の構成及び使用を教授する。プラスミドpCJR101は、受託番号NRRL 15041としてNorthern Regional Research Laboratory，Peoria，Illinois，USAに寄託されている株ストレプトミセスコエリカラーＭ110に見出されるプラスミドSCP２^*（Bibb，M．J．and Hop wood，D．A．J．Gen．Microbiol．（1977）154：155-166）に由来する。プラスミドSCP２^*は、いくつかの有用なベクター、例えばpIJ2839（Ing ram，C．など．J．Bacteriol．（1989）171：6617-6624）；プラスミドpHJL197 （Larson，J．L．and Hershberger，C．L．J．Bacteriol．（1983）157：314-31 7）及びpRM5（McDaniel，R.など．Science（1993）262：1546-1550）の構成においてこれまで使用されて来た。それらの又は他のSCP２^*に基づくプラスミドのいづれかが、本明細書に記載されるいくつかの例にプラスミドpRM5の使用により示されるように、直接的に又はPKS遺伝子に結合される適切なプロモーターを導入するためにベクターの修飾の後、pCJR101により置換され得ることは、当業者に明らかであろう。高いコピー数のベクター、例えばストレプトミセスガナエンシス(Streptomyces ghanaensis)プラスミドpGS5に由来するプラスミドpGM8(Mnth， G.など．Mol．Gen．Genet．（1989）219：341-350)はまた、インテグレイティブベクター、たとえばプラスミドpSAM2（Murakami，T．など．J．Bacteriol．（19 89）171：1459-14??）のように、pCJR101のための置換基として適切である。当業者は、放線菌における遺伝子工学のために有用なような当業界において良く知られているベクターの多くの誘導体への、本明細書に開示されるようなタイプII PKS活性化因子遺伝子及びそれらの同系プロモーターの異種使用を通して、天然又は非天然の複合体ポリケチド、たとえばマクロライド及びポリエーテルの生合成速度を早めるためのアプローチの多様性を容易に理解するであろう。ハイブリッドタイプＩ KS遺伝子の構成において、前記例は、ドナー及び受容体PKS成分をコードする構造遺伝子が、新規ポリケチドの合成をもたらすことができる機能的触媒を創造するために、いかにして一緒にスプライスされ得るかを教授する。本発明は、連結がドナーと受容体DNAとの間で創造されるであろう場合を選択する際、いわゆるリンカー領域におけるドメイン間に存在することが知られているか又は予測される位置にその選択を制限することが、驚くきことには必要でないことを示す。代わりに、連結は、配列が高く保存されるドメイン（特にKS又はAT ドメイン）の縁領域に存在することが好ましい。ハイブリッドを創造するためには、PKSモジュールが複数の天然のPKSから組合され得ることはまた明らかである。本明細書における例においては、ドナーDNAがアシルキャリヤータンパク質(AC D)ドメインにおける又はモジュールのケトシンターゼ（KS）ドメインにおける種々の位置で受容体DNA中にスプライスされるが、しかし本発明の範囲は、相同ドメイン間の連結がタイプＩ PKSモジュールのいづれかの構成部分内に存在するよう選択されるハイブリッドPKSを包含することもまた明らかである。しかしながら、ドメイン内に存在し、そしてドメインの一端に隣接して存在する個々の連結のための位置を選択することが最とも好都合であることが見出され、その結果、キメラモジュールの特異性が容易に予測され得、そしてその正しい機能の障害が最少にされるであろう。本発明においては、ハイブリッドPKSが、それぞれ、負荷モジュール、少なくとも６の数までの種々の数の延長モジュール、及び連鎖−開放チオエステラーゼドメインをコードするDNAの断片を選択し；そして前記DNAを、遺伝子生成物が作用すると思われる順序で、標準方法を用いて連鎖することによって構成され得ることは、容易に理解されるであろう。NB：６個のモジュールを有するハイブリッドPKSは、６以上の延長モジュールにより生成される生成物に誘導するシンターゼのアセンブリーの一部であり得る。モジュール−サイズ分けされたDNAフラグメントが多少、構成され得ることは、当業者にまた、容易に理解されるであろう。従って、本発明は、一本鎖ポリペプチドに次の活性を含む構造体により例示される官能ハイブリッドPK Sの構成を包含する： AT0-ACP0-KS1-[ATR1-DHR1-ERR1-KRR1-ACPR1-KSR2]-AT2-KR2- ACP2-TE ここで、四角の括弧で示される活性はrap PKSのモジュール１及び２に由来し、そして残りはDEBS１の負荷モジュール、延長モジュール１及び２、及び連鎖−停止チオエステラーゼに由来する。そのような構造体においては、個々のケトシンターゼドメインは、それ自体のモジュールの活性と共に維持されるよりもむしろ、それが由来する天然に存在するPKSにおいてその前方に存在するモジュールのA CP，AT及び還元ドメインと共に維持される。ハイブリッドPKSの構成のためのモジュールーサイズ分けされたDNA構築ブロックの他ではあるが、しかし同等の機能的配置は、当業者に容易に理解されるであろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (31)優先権主張番号９７１０９６２．３ (32)優先日平成９年５月28日(1997．5．28) (33)優先権主張国イギリス（ＧＢ） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者コルテス，ジュサスイギリス国，ケンブリッジシービー４１ピーゼット，ユニオンレーン，カーンバンクス 26

Claims

【特許請求の範囲】１．ハイブリッドポリケチドシンターゼ（“PKS”）遺伝子であって、第１のタイプＩ PKSの少なくとも１つのドメインをコードする第１の核酸部分又は複数の部分、及び前記第１のPKSに対して非相同である少なくとも１つのタイプＩ PK Sドメインをコードする第２の核酸部分又は複数の部分を含んで成るハイブリッドPKS遺伝子。２．前記第１の核酸部分が少なくとも負荷モジュールをコードし、そして前記第２の核酸部分が少なくとも１つの延長モジュールをコードする請求の範囲第１項記載のハイブリッドPKS遺伝子。３．前記負荷モジュールが、アシルトランスフェラーゼ及びアシルキャリヤータンパク質を含んで成る請求の範囲第２項記載のハイブリッドPKS遺伝子。４．前記第１の核酸部分が、相同延長モジュールのケトシンターゼ（“KS”）ドメイン（のみ）と共に負荷モジュールをコードする請求の範囲第２又は３項記載のハイブリッドPKS遺伝子。５．前記負荷モジュールが、前記延長モジュールと通常関係しているスターター単位とは異なるスターター単位を生成するために基質を負荷することができる請求の範囲第２，３又は４のいづれか１項記載のハイブリッドPKS遺伝子。６．前記負荷モジュールが、異なったスターター単位の多様性のいづれかを負荷することができる請求の範囲第２〜５のいづれか１項記載のハイブリッドPKS 遺伝子。７．前記負荷モジュールが、avr負荷モジュールである請求の範囲第６項記載のハイブリッドPKS遺伝子。８．前記核酸部分が、２種の天然のモジュールの対応するドメイン間で個々に延長する組合せモジュールをコードする請求の範囲第１〜７のいづれか１項記載のハイブリッドPKS遺伝子。９．チオエステラーゼ以外の連鎖停止酵素をコードする核酸を包含する請求の範囲第１〜８のいづれか１項記載のハイブリッドPKS遺伝子。 10．前記第２の核酸部分又は複数の部分が、酸化状態及び／又は立体化学及び／又は置換パターンにおいて天然の単位とは異なるケチド単位を導びく延長モジュールをコードする部分を含んで成る請求の範囲第１〜９のいづれか１項記載のハイブリッドPKS遺伝子。 11．PKSタイプIIプロモーターに操作可能的に結合される請求の範囲第１〜10 のいづれか１項記載の遺伝子をコードする核酸。 12．前記プロモーターが、その天然の活性化因子遺伝子により付随される請求の範囲第11項記載の核酸。 13．前記プロモーターが、Ｓ．コエリカラーのactＩである請求の範囲第11又は12項記載の核酸。 14．請求の範囲第１〜10のいづれか１項記載の遺伝子によりコードされるようなハイブリッドポリケチドシンターゼ。 15．請求の範囲第１〜13のいづれか１項記載の遺伝子又は核酸を含むベクター。 16．請求の範囲第１〜13のいづれか１項記載の遺伝子又は核酸を含み、そしてそれによりコードされるポリケチドシンターゼを発現することができる形質転換された生物。 17．請求の範囲第16項記載の生物を生成するための方法であって、“ドナー” DNAを含むプラスミドを宿主細胞に、異種染色体PKSDNAとの相同組換えが存在するような条件下で導入する段階を含んで成る方法。 18．請求の範囲第16項記載の生物を培養することによってポリケチドを製造するための方法。 19．請求の範囲第18項記載の方法により調製されるようなポリケチド。 20．異種遺伝子を制御するためへのタイプII PKSプロモーターの使用。 21．異種遺伝子に対して操作可能的に結合されるタイプII PKSプロモーターを含んで成る核酸。 22．前記プロモーターがその天然の活性化因子遺伝子により付随される請求の範囲第20又は21項記載の使用又は核酸。 23．前記プロモーターがＳ．コエリカラーのactＩである請求の範囲第20，21 又は22のいづれか１項記載の使用又は核酸。