[go: up one dir, main page]

DE2003595A1 - Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe - Google Patents

Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe

Info

Publication number
DE2003595A1
DE2003595A1 DE19702003595 DE2003595A DE2003595A1 DE 2003595 A1 DE2003595 A1 DE 2003595A1 DE 19702003595 DE19702003595 DE 19702003595 DE 2003595 A DE2003595 A DE 2003595A DE 2003595 A1 DE2003595 A1 DE 2003595A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
medium
rhodotorula
protease
yeast
acidic protease
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
DE19702003595
Other languages
English (en)
Inventor
Yoshisuke Hasegawa
Koji Mitsugi
Takashi Nakase
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Ajinomoto Co Inc
Original Assignee
Ajinomoto Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ajinomoto Co Inc filed Critical Ajinomoto Co Inc
Publication of DE2003595A1 publication Critical patent/DE2003595A1/de
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/58Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from fungi
    • C12N9/60Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from fungi from yeast
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

ANNASTRASSE 19 FERNSPtECHERi (0611) 555061 TELEGRAMMEi LOMOSAPATENT LANDESZENTRALBANK 4/951 DRESDNER BANK FFM., Nr. 5547« POSTSCHECK-KONTO FFM. 1667
Ajinomoto Go., Ine«
Noβ 7* 1-chome, Takara-cho, Chuo~ku,
Tokyo, Japan©
Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Mikroorganismen«
Es ist bekannt, daß verschiedene Schimmelpilze Protease produzieren, und alkalische Protease von Candida lipolytica ist die einzige bekannte Hefeprotease (japanische Auslegeschrift 41— 10194).
Es wurde gefunden, daß Hefe, die zu Rhodotorula gehört, große Mengen saurer Protease extrazellular in einem Kulturmedium pro« duziert. Saure Protease findet in der Medizin, in der Nahrunga« mittelindustrie und bei der Hydrolyse von Protein, z.B. der Hydrolyse von Sojabohnenprotein, Anwendung»
Mikroorganismen, die gemäß Erfindung benutzt werden können, sind Hefestämme, die zum Genus Rhodotorula gehören. Beispiele hierfür Bind die Mikroorganismen Ehodotorula glutinis AJ-5193 (NRRL Y~ 7220) sowie Rhodotorula attrauti»oa AJ~3145 (NRRL Y~7219). Rhodotorula glutinis AJ-5193 wurde aus dem Boden von Osaka, Japan, isoliert. Er weist die folgenden mikrobiellen Eigenschaften auf ι
009841/1627
Wachstum in Hefe-Mais-Brühe bei 25°C für 3 Taget
Die Zellen sind rund, kurz-oval bis oval, bisweilen lang-oval, 2,5 bis 5*3 bis 7»5 ρ und treten einzeln oder in Paaren auf· Es wird eine unvollständiger Ring d Sedimente gebildet.
Wachstum auf Hefe-Malz-Agar bei 25°C für 10 Tagei
Eine Streifenkultur ist leicht rötlich-orange bis rosa* glatt, veich, glänzend und hat einen vollständigen Rand»
Sporenbildung! fehlt
Bildung von Pseudomycel und echtem Myceli fehlt Fermentation! fehlt
Assimilierung von Kohlenstoffverbindungen!
D—Glucose, D—Galactose, Saccharose, Maltose, L—Sorbose (latent), Cellobiose, Trehalose, Raffinose, Melecitose, D-Xylose, L-Arabinose, D-Arabinose, D-Ribose, Glycerin (latent), Adonit, Dulceeit (latent), D-Mannit, D-Sorbit, ^-Methyl-D-glucosi* (latent), Salicin, Kaliumgluconat, Bernsteinsäure und Citronensäure werden assimiliert.
Lactose, Melibiose, Inulin, lösliche Stärke, L-Rhamnose, Äthanol, Erythrit, Calcium-2—ketogluconat, DL—Milchsäure und Inosit werden nicht assimiliert»
Kaliumnitrat wird als einziger Stickstofflieferant benutzt« Urease! positiv
Thiamin wird bei 25°C benötigt«
Gelatine wird nicht verflüssigt (pH 6,2, 25°C)
Bei einem Vergleich der weiter oben angegebenen Eigenschaften mit "The Yeasty a Taxonomio Study» 1952, Seiten 469-470, von JoLodder und Kreger van Rij und "Journal of General and Applied Microbiology» Band 26, Seiten 207-208 1960, wurde AJ~5193 (NRRL-Y-7220)als Rhodotorula glutinis identifiziert·
Das Kulturmedium enthält einen assimilierbaren Kohlenstofflie— feranten, einen assimilierbaren Stickstofflieferanten, anorganische Salze und organische Nährstoffe, Beispiele fUr Kohlenstofflieferanten sind Kohlenhydrate, wie Glucose, oder Stärkehydrolysat, Kohlenwasserstoffe, wie η-Paraffin, und organische Säuren, wie Essigsäure oder Gluconsäure« Beispiele für assimilierbare Stiokst'jfflieferanten sind Ammoniumalfat, Harnstoff oder Ammoniumphosphat, für organische Nährstoffe Maisquell··
0 0 9 8 A1A16 2 7
wasser, Hefeextrakte, Sojabohnen- oder Caseinhydrolysat, Casaminosäure, Fleischextrakte oder verschiedene Vitamine.
Die Kultivierung sollte bei einem pH zwischen 1,5 und 4 durchgeführt werden· Tabelle 1 zeigt, daß saure Protease in neutralem pH-Bereich nicht gebildet wird, obgleich unter den Bedingungen ein reichliches Wachstum erzielt wird«
Tabelle 1
Kultivie« Anfangs-pH 3*0. Wachstum Aktivität
(E/ccm)
Anfangs-pH ' Wachs
tum
7.0
rungsdaua·
(Tage)
End-pH 0,860 41,2 End-pH 0,730 Aktivi
tät
(E/ccm)
2 2,05 0,820 62,8 6,2 0,850 3,2
3 1,9 0,750 73,2 6,3 0,766 0,8
4 1,9 0,750 74,2 6,7 2,0
5 H9 »4
Rhodotorula glutinis AJ-5193 (NRRL Y-7220) wurde auf einem Medium kultiviert, das
5 g/100 ecm Glucose
1 g/100 ecm Hefeextrakte
0,5 g/100 ecm KH2PO.
0,04 g/100 ecm MgSO^ · 7 H2O
2 ppm Fe- und Mn-Ionen
und den in der Tabelle weiter oben angegebenen pH aufwies. Das Wachstum wurde durch Messung des Lichtabsorptionsvermögens bei 560 mu des kultivierten Mediums nach Verdünnung auf das 26-fache seines Anfangavolumens bestimmt·
Es wurde eine 1,5#ige Lösung von Milchcasein in 1/10 M Milchsäure-Natriumlactat-Pufferlösung vom pH 3,0 hergestellt, 1 ecm der verdünnten Proteaselösung, die zuvor 6 Minuten auf 370C erwärmt worden war, zu 3 ecm der Caseinlösung »«gegeben und die Mischung 10 Minuten bei 37°0 der Inkubation unterworfen. Die erhaltene Mischung versetzte man mit 4 ecm 0,4 M Trichlor« eseigsäure, ließ sie weitere 25 Minuten stehen und filtriert· ausgefallenen Niederschlag ab. 1 ecm des Piltrats mischte man mit 5 ecm 0,4 M Na2CO, und 1 com Folin»s Reagens. Die Menge der
00 9 8 Λ 1/1627
bei 370G in 10 Minuten in Trichloressigsäure lösliche Fraktion freigesetzten Arylsäure wurde aus dem Lichtabsorptionsvermögen der Mischung bei 660 πψ. bestimmt. Eine Proteaseeinheit ((f) entspricht der Proteaseaktivität, die 1 ug Tyrosin in Trichloressigsäure lösliche Fraktion pro Minute freisetzt.
Zur Isolierung der sauren Protease aus dem kultivierten Medium können die konventionellen Methoden für die Isolierung saurer Protease angewandt werden, z.B» Fällung, Aussalzen, Fällung mit organischem Lösungsmittel und/oder Chromatographie.
Die gemäß Erfindung produzierte saure Protease hat folgende Eigenschafteni
optimaler pH-Wert gegen Milchcaseinsubstrati 2,0 -2,5 optimale Temperatur! 60 - 65° C bei pH 2,5
Inaktivierung konnte beim Erhitzen auf 5O0C für 2 Stunden bei pH 1,5 - 6,0 nicht festgestellt werden.
Die gemäß Erfindung erhaltene saure Protease wurde durch Natriumlaurylsulfat nicht inaktiviert, im Gegensatz zu der Inaktivierung der durch bekannte Schimmelpilze produzierten sauren Protease.
Die spezifische Aktivität pro Mengeneinheit Protein gemäß der Erfindung beträgt das 4fache der von Pepsin des Handels und das 2,5-fache der von "Molsine" (Handelename für saure Protease von Schimmelpilzen)«
Beispiel 1
Es wurde ein Kulturmedium hergestellt, das 5 g/100 ocm Glucose
0,3 g/100 ecm KH2PO4
Of04 g/100 ecm MgSO4 .7H2O
2 ppm Fe- und Mn-Ionen und 1 g/100 ocm Hefeextrakte
enthielt, der pH des Mediums auf 3#0 eingestellt und je 50 ecm von dem Medium in 500 ccm-SchUttelkolben gegeben. Nach Sterilisation bei 1150C für 10 Minuten wurde dae Medium mit Rhodotorula glutinis AJ-5193 (NRRL Y-7220) beimpft, der zuvor auf einer Schrägschnitte derselben Zusammensetzung wie oben
0 0 9 8 4 1/162 7
20035S5
kultiviert wo.rden war und die Kultivierung bei 31°C 4 Tage unter Schütteln durchgetihrt. Das kultivierte Medium enthielt, wie gefunden wurde, 120 E/ccm saure Protease·
Die Hefezellen zentrifugierte man aus 1,5 1 des Kulturmediums ab, kühlte das erhaltene Filtrat und versetzte es mit 55 fi (Volumenteilen) Aceton, um die Verunreinigungen zu fallen, die man dann abzentrifugierte. Zu der üoerstehenden Flüssigkeit gab man Aceton bis zu einer 75$igen Acetunkonzentration, um die saure Protease zu ictllen, die man abzentrifugierte und im Vakuum trocknete» Man erhielt 1,45 g rohes Enzympulver· 1 g des Enzympulvers löste man in 200 ecm Citronensäure-HOl-Puiferlösung von pH 4t0, führte die Enzymlösung durch eta Kolonne, gapackt mit Sephadex G-200 (Handelsname) von 8x200 cm, das zuvor mit einer Pufferlösung behandelt worden war, und sammelte die Fraktionen mit saurer Proteaseaktivitat· Die vereinigten Fraktionen versetzte man nanh und nach mit Aceton, kühlte die Mischung über Nacht in einer Eisbox, wobei rohe farblose Kristalle ausfielen, die man isolierte· Die .Rohkristalle kristallisierte man wiederholt aus Aceton um, wobei man 0,62 g kristalline saure Protease erhielt· Das Enzympräparat zeigte folgende Charakteristiken Λmax 280 ία und Amjn 230 ma
?8Ω
und Efg/ * 1ο,ο· Die spezifische saure Proteaseaktivitat des Enzympräparats betrug das 5t24-fache der von kristallinem Pepsin der Sigma Chemical Co., USA, dessen E w « 12,4 war«
.Beispiel 2
Ein Kulturmedium, das
5 g/100 ecm Glucose,
0,3 g/100 oom KH2PO4,
0,04 g/100 com MgSO4 . 7 H3O,
1 g/100 oom Uasaminosäure,
50 ug/100 oem Vitamin B1 und
2 ppm Fe- und Mn-ionen
enthielt und pH 2,5 aufwies, wurde mit Hhodotorula glutinia AJ-* 5193 (NRRL Y-7220) üeimpft und die Kultivierung 4 Tage bei 25*0 unter Sohütteln durohgettführt· Das kultivierte Medium enthielt, wie gefunden wurde, 190 E/oom saure Protease. 3»5 1 des Kulturmediums wurden in der in Beispiel 1 angegebenen Weise
009841/1627
weiter aufgearbeitet, wobei man 5»35 g rohes Enzympulver erhielt»
Beispiel 3
Ein Kulturmedium mit
9,0 g/100 ecm Glucose,
O93 g/100 ecm KH2PO.,
0,04 g/100 oem MgSO4 · 7 H2O,
2 ppm Pe- und Mn-Ionen und 1 g/100 ecm Sojabohnenproteinextrakte
von pH 3f0 wurde mit Rhodotorula aurantiaca AJ-4860 (NRRL Y—7219) beimpft und die Kultivierung 4 Tage bei 31,50C durchgeführt* Das kultivierte Medium enthielt - wie gefunden wurde 100 E/ccm saure Protease»
009841/1627

Claims (6)

Patentansprüche
1) Saure Protease folgender Eigenschaftens
1) optimaler pH gegen Milchcaseinsubstratt 2,0 "bis 2,5
2) optimal Temperatur 60 bis 65°C bei pH 2,5
3) durch Natriumlaurylsulfat keine Inaktivierung
4) beständig beim Erhitzen auf 5O0O bei pH 1,5 bis 6,0 für 2 Stunden«
2) Verfahren zur Herstellung saurer Protease gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß ein Hefestamm des Genus Rhodotorula in wäßrigem saurem Medium sonst üblicher Zusammensetzung unter aeroben Bedingungen kultiviert wird, bis das Medium extracellulare saure Proteaseaktivitat aufweist und die saure Protease aus dem Medium isoliert wird«
3) Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das verwendete Medium als Lieferanten für assimilierbaren Kohlenstoff Glucose und als Lieferanten für assimilierbaren Stickstoff Protein sowie organische Nährstoffe, die das Wachstum begünstigen, enthält»
4) Verfahren nach Anspruch 1-3» dadurch gekennzeichnet, daß als Hefestamm ein solcher der Art Rhodotorula glutihis oder Rhodotorula aurantiaca verwendet wird*
5) Verfahren nach Anspruch 4» dadurch gekennzeichnet, daß als Hefestamm Rhodotorula glutinis AJ-5193 (NRRL Y-7220) oder Rhodotorula aurantiaca AJ-4860 (NRRL Y-7219) verwendet wird.
6) Verfahren nach Anspruch 1-5» dadurch gekennzeichnet, daß die Kultivierung der Hefe in einem Medium von pH 1,5 bis 4 durchgeführt wird.
009841 / 1 527
DE19702003595 1969-01-31 1970-01-28 Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe Pending DE2003595A1 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP717569 1969-01-31

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE2003595A1 true DE2003595A1 (de) 1970-10-08

Family

ID=11658726

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19702003595 Pending DE2003595A1 (de) 1969-01-31 1970-01-28 Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe

Country Status (3)

Country Link
US (1) US3677898A (de)
DE (1) DE2003595A1 (de)
GB (1) GB1257761A (de)

Families Citing this family (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2528490C2 (de) * 1975-06-26 1983-04-28 Henkel KGaA, 4000 Düsseldorf Verfahren zur Herstellung saurer Protease
DE2751902C2 (de) * 1977-11-21 1986-09-11 Henkel KGaA, 4000 Düsseldorf Futtermittelmischung enthaltend Avoparcin und proteolytische Enzyme
US4225584A (en) * 1977-12-10 1980-09-30 Henkel Kommanditgesellschaft Auf Aktien Animal feeds containing a mixture of nitrovin, carbadox or olaquindox and proteolytic enzymes
US20060116330A1 (en) * 1997-07-08 2006-06-01 The Iams Company Methods of mimicking the metabolic effects of caloric restriction by administration of mannoheptulose
US8563522B2 (en) * 1997-07-08 2013-10-22 The Iams Company Method of maintaining and/or attenuating a decline in quality of life
US20020035071A1 (en) * 1997-07-08 2002-03-21 Josef Pitha Mimicking the metabolic effects of caloric restriction by administration of glucose antimetabolites
US7666459B2 (en) 2001-09-12 2010-02-23 The Procter & Gamble Company Pet food compositions
US20050100559A1 (en) * 2003-11-07 2005-05-12 The Procter & Gamble Company Stabilized compositions comprising a probiotic
US7785635B1 (en) 2003-12-19 2010-08-31 The Procter & Gamble Company Methods of use of probiotic lactobacilli for companion animals
US8877178B2 (en) 2003-12-19 2014-11-04 The Iams Company Methods of use of probiotic bifidobacteria for companion animals
US20050158294A1 (en) * 2003-12-19 2005-07-21 The Procter & Gamble Company Canine probiotic Bifidobacteria pseudolongum
US20050152884A1 (en) * 2003-12-19 2005-07-14 The Procter & Gamble Company Canine probiotic Bifidobacteria globosum
US8894991B2 (en) * 2003-12-19 2014-11-25 The Iams Company Canine probiotic Lactobacilli
US20090252834A1 (en) * 2004-05-10 2009-10-08 Michael Griffin Hayek Compositions comprising glucose anti-metabolites
WO2006130188A1 (en) * 2005-05-31 2006-12-07 The Iams Company Feline probiotic bifidobacteria
JP4938005B2 (ja) * 2005-05-31 2012-05-23 ザ・アイムス・カンパニー ネコ科動物プロバイオティックであるラクトバシラス
CN102036670A (zh) * 2007-02-01 2011-04-27 爱默思公司 用于减轻哺乳动物炎症和氧化应激反应的方法
WO2008093303A2 (en) * 2007-02-01 2008-08-07 The Iams Company Method for decreasing inflammation and stress in a mammal using glucose antimetaboltes, avocado or avocado extracts
US9771199B2 (en) 2008-07-07 2017-09-26 Mars, Incorporated Probiotic supplement, process for making, and packaging
US10104903B2 (en) 2009-07-31 2018-10-23 Mars, Incorporated Animal food and its appearance

Also Published As

Publication number Publication date
US3677898A (en) 1972-07-18
GB1257761A (de) 1971-12-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2003595A1 (de) Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe
DE69726194T2 (de) Ds11 (kctc 02311bp), neuartiger bacillus sp. stamm und neue von diesem produzierte phytase
DE1807185C3 (de) Verfahren zur Herstellung von proteolytische Enzyme enthaltenden Aufbereitungen und deren Verwendung
DE3049308C2 (de) Enzymatische Hydrolyse von Raffinose unter Verwendung dieses Enzyms
DE2167078C2 (en) Amylase prepn - for prodn of maltose from starch
US3189529A (en) High-activity lipase and method of preparation thereof
DE1767653B2 (de) Verfahren zur Erzeugung von Isoamylase
DE3806423A1 (de) Verfahren zur herstellung von pectin
DE1945413A1 (de) Neues Enzym und Verfahren zu seiner Herstellung
DE2938377C2 (de) Verfahren zur Herstellung von Coenzym Q ↓1↓↓0↓
DE1642625C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Isoamylase durch Fernmentation
DE1692783A1 (de) Verfahren zur Herstellung von 5-Nucleotide enthaltenden Wuerzstoffgemischen
DE1642637A1 (de) Milchgerinnungsenzym und Verfahren zu seiner Erzeugung
AT309661B (de) Verfahren zum enzymatischen Enthaaren von geweichten Häuten mit proteolytischen Enzymen in alkalischer Flotte
DE2408998A1 (de) Verfahren zur herstellung eines fructan abbauenden enzyms
DE2500876C3 (de) Aerobes Züchten von Hefezellen
DE2031387A1 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Histidin durch Fermentation
DE1445166C3 (de) Verfahren zur Herstellung von 5'Nucleotiden
DE2933646A1 (de) Verfahren zur gewinnung von cholesterinesterase
DE1543719B1 (de) Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von L-Threonin
DE534866C (de) Verfahren zur Herstellung hefehaltiger Naehrpraeparate
DE1965281C3 (de) Proteolytisches Enzym und Verfahren zu seiner Herstellung
DE1543719C (de) Verfahren zur mikrowellen Herstellung von 1 Threonin
DE2107276A1 (de) Verfahren zur Herstellung einer bei alkalischen pH-Werten wirksamen bakteriellen Proteinase
DE2413939C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Fructose und Sirups, die Fructose und Glucose enthalten