DE1926072A1 - Verfahren zur Herstellung von cyclischem Adenosin-3',5'-monophosphat auf mikrobiologischem Wege - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von cyclischem Adenosin-3',5'-monophosphat auf mikrobiologischem WegeInfo
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Description
DR. ELISABETH JUNG, UR. VOLKER VOSSlUS, DIPL.-ING. GERHARD COLDEWEY
Patentanwälte 1 Q O Cs Π 7
2 2. MA11969
u.Z.! E 362 (Mü/Vo/we)
POS - 17 641
KIKKOMAN SHOYU CO., LTD.
Noda, Japan
n Verfahren zur Herstellung von cyclischen Adenosin-31,5'
monophosphat auf mikrobiologischem Wege "
Priorität: 9. August 1968, Japan, Nr. 56 138/68
8. Oktober 1968, Japan, Nr. 72 863/68
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von cyclischem Adenosin-3',5'-monophosphat, nachstehend kürzer mit 3'»5'-cyclischer Adenylsäure oder A-3»5-MP bezeichnet, auf mikrobiologischem Wege durch Züchtung von Mikroorganismen, die zu den
Gattungen Corynebacterium, Arthrobacter und Microbacterium gehören und die genannte Säure aus Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5-*Amino-4-lmidazolcarboxamid» 5**Ainino-4-imidazolcarboxamid-ribosid, Sucoinyladenosin oder Suooinyladenin in einem
Nährmedium erzeugen können, das mindestens eine der genannten Verbindungen sowie übliche Nährstoffquellen enthält.
009809/0999 A-3,5-KP ist bekannt für seine Teilnahme an verschiedenen chemi-
P08TtCHECKK0NT0: MOWGHEN SOIJS ■ BANKKONTO: DEUTSCHE BANK A. G. MÖNCHEN. LEOPOLDSTR. 71. KTO. NR. 60/36794
sehen Reaktionen in lebenden Zellen und für seine aktive Rolle
bei der Bildung verschiedener Hormone. Deshalb wird es als biochemisches
Reagenz hoch geschätzt. Die Herstellung dieser Säure auf chemischem Wege verläuft über viele komplizierte Synthesestufen
und konnte bisher nicht durch ein einfacheres Verfahren abgelöst werden. Überraschenderweise wurde erfindungsgemäß festgestellt,
daß Stämme der Mikroorganismen Corynebacterium murisepticum,
Nr. 7, eine neue Art von Arthrobacter, Hr. 11, und eine neue Art von Microbacterium, Nr. 205» bei ihrer Züchtung
A-3,5-MP erzeugen können.
Gegenstand der Erfindung ist somit ein neues Verfahren zur Herstellung
von cyclischen! Adenosin-31 , 5'-nionopho8phat, das dadurch
gekennzeichnet ist, daß man einen KikrοOrganismus, der
fähig ist, cyclisches Adenosin-3',S'-monophoaphat aus Adenosin,
Adenin, Inosin, Hypoxanthin, S-Anino^-iaidazolcarboxamid-ribosid,
S-Amino^-inidazolcarboxaraid, Succinyladenosin oder Succinyladeriin
in einem Kohlenstoff- und Stiokstoffquellen, anorganische
Nährsalze und Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5-Amino-4-imidazolcarboxamid-rlbosid,
5-Amino-4-iraidazolcarboxamid, Succinyladenosin oder Succinyladenin enthaltenden llährmedium
bei einem pH-Wert im Bereich von 5 bis 9 und bei einer Temperatur von 20 bis 400C unter aeroben Bedingungen züchtet, bis cyclisches
Adeno8in-3f,5'-monophosphat im Nährnedium angereichert
ist, und dieses aus dem Nährnedium gewinnt.
Aus den folgenden gehen die raykologischen Eigenschaften der
obengenannten Stämme hervor:
0098Ü9/Q999 ~—
COPY
I. Morphologische Eigenschaften: (Züchtung in Nähragar und
NährbrUhe bei 37° bzw. 3O0C)
Microbacterium Kr. 205 (A.T.C.C. 21376)
Form und Anordnung: keulenförraige oder geschwungene Zellen wurden
im Gesichtafeid des Mikroskops beobachtet; gelegentlich wurden eckige und palisadenähnliche
Anordnungen beobachtet, die durch Zerreißteilung entstanden.
Zellengröße (Alter: 16 Std., 300C):
0,4 - 0,7 x 1,5 - 3 Mikron
- Gram-Pärbung: +
Sporenfärbung: (Sporenbildung)
Geißeln: .
Beweglichkeit: -
Beweglichkeit: -
Corynebacterium murisepticum Kr. 7 (A.T.C.C. 21374)
Form und Anordnung: Ruten, zuerst längliche Zellen, verzweigte
Zellen und V-förmige Zellen wurden beobachtet; nach 2 oder 3 Tagen zeigten die
Kulturen kokkoide Formen.
0,5 - 0,8 χ 1,5 - 4 Mikron
Gram-Färbung: + Sporenfärbung: (Sporenbildung)
Geißeln:
Beweglichkeit: Säurefeetigkeit: -
009809/0999
copyI
Arthrobacta.r, Wr. 11 (A.T9C.C. 21^75)
Form und Ar-ordmragi Rur;«n; stieret 1. anglicise Zsllesi, v@
Ztilenf Y-förmlge Zellen "«uriaii beobachtet,
Nach 3 'Jöer 4 Tagen zeigten die Kulturen
kökkolaB Formen.
Zellengröße (Alten 16 Std.)s
0,5 - 0,8 χ 2 - 5 Mikron
(iram-F'ärbung; verschieden
Sporfciifärbung ι {Sporenbildung)
Geißeln ι
Beweglichkeit:
Säurefestigkeit: -
Beweglichkeit:
Säurefestigkeit: -
II, Züchtungseigenschaftenj
1. schräggestelltes Agar-Kährmediums (echräggestelltes
Bouillon-Agar, 300C, 4B Std.)
Ur. 205 Nr. 7 Nr. 11 Wachstum: mäßig mäßig mäßig
Form: stachelig fadenförmig fadenförmig
Glanz: glänzend und glänzend und glänzend und feucht feucht feucht
Farbe: gelb milchweiß milchweiß Konsistenz: butterartig butterartig butterartig
2. Agar Kolonien: (Bouillon-Agar, 300G, 48 Std.)
009809/0999
| - 5 - | Kr. 7 | 1926072 | |
| Nr. 205 | rund | Hr. 11 | |
| Form: | rund | glatt | rund |
| Oberfläche t | glatt | ganz | glatt |
| Hand: | ganz | kissen- förmig |
ganz |
| Oberflächenprofil: | konvex | undurch sichtig |
kissen- förmig |
| optische Eigen schaften: |
undurch sichtig |
undurch sichtig |
|
3. Nährbrilhes (Bouillon-Brühe» 3O0C, 7 Sage)
Hr.
Hr. 11
| Oberflächen*» | ringförmig | ringförmig | ringförmig |
| Trübungs | raäBig trüb | leicht trüb | leicht trüb |
| Wachstums- menge s |
mäßig | mäßig | mäßig |
| Sediment s | spärlich» klebrig |
klebrig | klebrig |
4« Schräggestelltsr Kartoffel-Agar: (3O0C, 3 Tage)
Hr. 205 Hr. 7 Hr. 11
Wa©hs tiäffii
Farbe:
mäSig
gelb
gelb
mäßig
milchweiß
milchweiß
kein Wachs« turn
5· Optimale Wachstuestemparaturi
370C
Hr.
370C
370C
Hr. 11 370C
6. Thermische Widerstandsfähigkeit bei Erwärmen In 10 ?i-iger
009809/09 99
Magermilch, 15 Min. bei 720C und 30 Min. bei 7O0C:
Nr. Nr. 7
Hr. 11
III. Physiologische Eigenschaften:
Nr. Nr. 7
Nr. 11
1. Katalase-Reaktlon: (30 C, schrägge-
stellte Bouillon)
2. Reduktion von Nitrat: (Züchtung bei 300C)
3. Indol-Bildung:
(O, 5 Tage)
4. Schwefelwasserstoff« Bildung:
(300C, 5 Tage)
5. Verwertung von Citrat:
6. Voges-Proskau9r~Re~ aktion:
5 Tage)
7. Methylrot-Test:
8. Verflüssigung von Gelatine:
(30°C, 5 Tage) +
9. Zersetzung von Cellulose: -
10. Urease-Reaktion:
11. Reduktion von Methylenblau : +
12. Wirkung auf Lackmus-Milch: wird reduziert, sauer und peptonisiert
wird redu- wird reduziert, al- ziert, alkalisch und kaiisch
peptoniaiert und peptonisiert
13. Pigment-Bildung: gelbes Pigment
009809/0999
. PatUogetiität s
15o Verflüssigung
Stärke:
16o Verwertung von Zuckernϊ
Nr.
Säure-Bild
Glucose Glycerin Xylose Seccharose
Stärke Fructose Galactose Mannose Arabinose Maltose Trehalose
Raffinose Mannit Dextrin Inulin Lactose
Gas-Bild Säure- Gas-Bild Bild
ür. 11
Säure-Bild
Gas-Bild
17c Verwertung von Hitraten:
18. Verwertung von Ammoniumsalzen:
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Hr. 205 Kr. 7 Hr. 11
-β- 1826072
Fach Bsrgfij's ;feri.<:a*· of "bte^isei^.:-, SicrSesiiäQgf<, ?
aiiid di·: chenbeaührlebenen Outest
poßltiVe aersb und nie);·: fc^srxiteMcsacl i£s.ä 4gs*i2öff@ffi iQs
Kiaeae ^ubacstsrialea* Tfe? Deiters3? fct©rs&3ki.mg dte ©iao®
nen St&mae äteilte- r>ich iwraus, laß 3ta? Stosua ίί^Ρ 2©5 in HO f
igftr Magermilon bi8 ku ein%? fespe^atwr iföa 72^0 fSi? 15
und bei 7O°ö für 30 MJ
von allen Gattungen !»ieterisj i-.^ysipslstSiffiSj, C
Arthrobecter und Coryn
^ aceae, unterscheidet; er ge&ort at^r- zur Gattimg H
^ aceae, unterscheidet; er ge&ort at^r- zur Gattimg H
dieser Familie β Will τπαη ibn :iedöö!i «äli j
det man, daß dieser Stamm au keiner krt dieses G-attm-ig im Manual
(Handbuch) und zu keiner anderen bisher bekennten Art gehört*
Deshalb wird dieser Stamm als neue Art betrachtet,'_
, Der Stamm Kr. 11 sollte zur Gattung Artlrrobaeter gehören, da
seine Gram-Reaktion unterschiedlich ists Zn dieser Gattung gehörende
Organismen werden gemäß ihrer Fähigkeit, Kitrate, amrnoniakalischen
Stickstoff und Citrate zu verwerten, im wesentlichen in zwei Gruppen eingeteilt; dieser Stamm jedoch verwertet
Nitrate und amnpniakalischen Stickstoff, aber keine Citrate und gehört deshalb keiner der beiden vorgenannten Gruppen an· Infolgedessen
wird der Stamm als neue Art der Gattung Arthrobacter betrachtet.
Stamm Kr. 7 ist katalasepositiv, nicht beweglich, unfähig Oellulose
zu verwerten, gram-ipositiv und weist in 10 $-iger Magermilch
keine Hitzebeständigkeit auf; also gehört er sur Gattung Coryne-
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bacterium« Außerdem ist der Stamm nicht beweglich, bildet Nitrit
aus Nitrat und erzeugt Säure aus G-lu,ooset. L&Qtose» Saccharose
und Mannit· Deshalb wird ®r als Cosinebaoteritua isuriseptieum
eingeordnet.
Andere Stämme von Mikroorganismen als die ob@sibesohriebenen( die
A~3,5~MP aus Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5-Amino-4-
piboslä ϋ 5-Amira©™4-irdde3©l©arb0xamid, Suoci-
oder Sueslnyladenin erzeugen könsien« kSnnsa für das
der Irfinäimg W2?w@Rd®t wer-desi.
vesi A«3j5«=»MP weMen Adenosln,
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len» Sfeielsateffgiiellsm isii ©Ji©ggaaigela@s Phsssphat und gegebenenQlie
Sals© imä B@stemdt©il© ©atMlt. Der
Iu &®m läfcxmediEia b©i einem pH-Wert zwi-
«ad 9 bei 20 bia 40*J0 so lang® ge stelltet» bis man die
g Ausbaut© ©a Α-3·5-ΚΡ erhält, s»B» 10 bis 80 Stunden
laag;0 toösrnfalls ^±sü eins. ®^fimäimg©g®iBä8 Y@jr«®sideter Stamm
von Kikroü^ganisnion suerst &&m Medium eingeimpft waä in diesem
Medium bei einem pE-Me^t iia Bsreieh iron 5 bis 9 bei 20 bis 400C
für eine geeignete Zeitdauer» ss.B. 10 bis 40 3ttmden( gezüchtet.
Nach der Züchtung werden Adenosin* Adenin. Imesin$ Hypoxanthin,
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5-Amino-4-imidazolcarboxamid»riboaidt 5-Amlno-4-imlda2soloarhoxamid,
Sucoinyladenosin oder Succinyladenin oder ein Gemisch dieser Verbindungen der Gärmaische in einem Betrag von 0,1 bis 3s?0
Gew.-$ (Gew./Vol.), bezogen auf das Gesamtvolumen des Kediraae,
augesetzt. Die Züchtung wird weiter durchgeführt, bis die Meng©
der im Nährmedium gebildeten Substanz ein Maximum, ss.Be nach 10
bis 80 Stunden, erreicht.
Das genannte Medium enthält Kohlenhydrate, wie Glucose, Stärkehydrolysate
oder Glycerin als Kohlenstoff quellen, AisiaoniTOSiilf at D
Amrconiumchlorid, Harnstoffs Aminosäuren, Protein- odar Peptid=
hydrolysate und Zellextrakte» S6B, M&isquellwasser und Befeex»
trakt, als Stickstoff quellen, KsliuisSrLhydrogenpiiosphat o䮣>
Ia= triumdihydrogenphosphat, Dikaliiisihydr^ganphospiiat oder Bii
umhydragenphosphat oder ABinmii^phosplisya als ajaasrgaaiSQlie
phatquellen, sowie gegebenenfalls aMe^e asorgseilseö,® Sals®8
Magnesiumsulfat, Magnesiumchlorid, Eise2i(IH)-SmIfat oder" Ei
(Il)-sulfat, Eisen(III)-ohloria oäar Elsöa(II)-s!il@ifM, Zinks«!
fat oder Sinkchlorid, Kobaltsulfat oder
tung wird nach irgendeiner geeignete» Methode, s.B, wa.tez
teln, unter Rühren, aerob durchgeführt»
Wenn die Bildung von A-3,5-MP im Nährmedium ihr Plaximüm erreicht,
wird die Züchtung beendet und die Säurs aus der Q'äxmm,±B&h.e isoliert und gereinigt. Bei der Isolierung und Heinigimg der Säure
können Aktivkohle, ein AnionenharzauBtauscher und ein A-595*-M?
nicht lösendes Lösungsmittel verwendet werden. Z.B. wird die Gärmaische nach Entfernung der Zellen mit Aktivkohle zur Adsorp-
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tion des in der Brülle enthaltenen Α~3eIH^P läshaffidsit-s worauf
Aktivkohle mit AuLmoKiak/ltliasiol--Ijl5siisBg eä©s?- ltim@n±®k/A®&tQn~
sung but Eliation der genannten. Säm;i gsMaseSiSii wiri« Bas erhaltene
Eluat i^/ird unter vermindertem 3?iaek elngeöarapft, vm überschüssiges Ammoniak wia Xthanol mn entf@Es,@ns umä mit cJnera
Anionenau3tauGcherh&z?2e wie Doimii 1 (Ghioridfona) ©cliiff Bowsx I
(Fo2?!iiiatforin) weiter behandelt und mit einem geeigaeten Löaungsmitt@le
seBe mit ^erätinater Salfssäur-e od©r ©alei'öMehler-icllmltiger
verdünnter Salzsäure für Doues: I (öhlordifox-a) bsös mit verdünnter
Ameisensäure oder Natriumf@rmi@t enthaltender verdtlraiter
Ameisensäure für Dowex I (FormiatforBi)8 sisr Eint ion öee A
gewaeehen» Das Eluat wird wieder an Aktivkohle adsorbiertt
Amra&aiak/Äthanol-Iiösung oder Ammoniak/Aeeton~Lös\ing -gewasoben,
unter vermindertem Druck eingedampft, mn überschüssiges Ammoniak
und Äthanol zu entfernen» an einem Kationenaustausoherharz, z.B.
Hövieiz 50, in der H^-Porm adsorbiert und schließlich mit verdünnter
Salzsäure eluiert. Das so erhaltene Eluat wird unter vermindertem
Druck eingedampft, in der Kälte stehengelassen oder mit einem Lösungsmittel, wie Äthanol oder Aceton, welche A-3*5-MP
nicht lösen, versetzt, wodurch man die Säure in kristalliner Pokern erhalte
Gemäß einer anderen Verfahrensweise wird das in der Gärmaische
gebildete A-3»5-KP nach Entfernung der Zellen aus der Brühe an
Aktivkohle adsorbiert und mit Ammoniak/i?thanol-Lösung oder Amnoniak/Aceton~Lösung
eluiert. Das Eluat wird naoh Entfernung von überschüssigem Ammoniak und ithanol^ soBe durch Eindampfen unter
vermindertem Druck, mit Salzsäure angesäuert und mit einem orga-
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nieohen Lösungsmittel, wie Alkohol oder Aoetösa» vsrs©tstf
durch man rohes A-3,5-föF erhält. Das so erhaltene roh© A-395-MP
kann mittels eines Anionenaustauoclierliarsee oder eines Kationeaaustauseherharzes,
wie erwähnt, gereinigt werden. Das erhaltene rohe A-3.5-MP wird in Wasser gelöst, mit Salzsäure oder Phosphorsäure
angesäuert, mit einera Austauacherhars, z.B. Duolite S-30ff
entfärbt und nit Äthanol, Aceton oder anderen das A-3,5-KP nicht
lösenden Lösungsmitteln vereetst, wodurch man A~3,5-MP in kristalliner
Form erhält.
Gemäß einem weiteren Trenn- und Reinigungsverfahren wird die Gärmaische
nach Entfernung der Zellen direkt mit einen Anionen~
oder Kationenaustauscherharz zur Adsorption des A-3»5-KP behandelt.
Nach der Behandlung des erhaltenen Eluats mit Aktivkohle oder einem entfärbenden Harz erhält man A-3f5-MP in kristalliner
Form durch Zugabe eines nicht lösend wirkenden Lösungsmittels <
>
Das nach dem Verfahren der Erfindung hergestellte Produkt ergab in Bezug auf Elementaranalyse, Ribose- oder Phosphorgehalt und
W UV-Spektrum und IR-Spektrum die gleichen Ergebnisse wie eine
authentische Probe von A-3,5-MP.
Das Verfahren der Erfindung ist ein Einstufenverfahren. Bisher konnte Α-3,5-ΓιΡ nur in einem komplizierten Mehrstufenverfahren
auf chemischem Wege hergestellt werden.
Die Beispiele erläutern die Erfindung.
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Stamm Wr. 205 (A.T.C.G, 21376) der Gattung Kiorobaoteriuia vurde
einem sohräggestellten Nährmedium» das 0,5 $ Amaoniumsulfat,
0,5 °/ Kaiiumdihydrogenphoaphat, 0,05 f° Magnesiumsulfat, 1,0 #
Peptone aua Casein (casaiaino acid), 0,3 "ρ Hefeextrakt, 1,0 #
Glucose und 2,0 i> Agar-Agar enthielt und dessen pH~Wert mit 3 η
Kalilauge auf 7$ eingestellt wurde, ©isigeisnpft und darauf gezüchtet
0
Getrennt davon wmlen je 40 ml ©ines liäiiraeäaUias, das 0,01 tf>
Einksulfat, 5»O '/o Slueose, 0^5 '/<>
Harnstoffs 0s5 / Ammoniumsulfat,
1gö c/j Kaliuaiadihydrogexiphosphats 1,0 fi Bikalimafejdrog^nphosphat,
100 φ Poljptptoiiij Opt ml pro Liter föaisquell^assej*, 0,3 ?3 Inosia
mad 190 ?C NagnesiPjisMlfat enthielt und d@ss©a pH-Wert mit
5 a Kalilauge auf S9Q eingestellt ~wurde» in 500 ssl-Scküttelkulabgefullt»
Haeii 12-minütigem Autolclaviessn bei 115°C
die ©tesasrhaltene iänzuehtkultur diiseg· ßäsmaisohe singeisapft
vmü 32 Stußdsa unt©r S©Mtt@Iii *©@i 30@G gesticfetet· Es bil-3»1
mg pr© sal A-3,5~MP im
Dl© ©rfealtsa® GrSjsmaisoh© ^^rda sut T^ittQmmmg &.®s lallen ssentrifugiert,
Mad der tfe®rgt^i<t i^iirda mit ksas-eats'isrtes' Salzsäure
auf den pH«=l'l®rt 2a0 slngag-feeilt und flaim ©it Aktivkohle »ur Adsorption des A-»3,5-MP behandelt» Di® aa der Aktivkohle adsorbierte
Säure wurde mit einer 1,4 ?^lg©n · Aimöniak/A"thanol-tösung
eluiert und das Bluat wurde zur !Entfernung des Ammoniaks und des
Äthanols unter vermindertem Druck eingedampfte Bann wurde das
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dabei erhaltene Nährmediumfiltrat bei einem pH-Wert von 8,0 an Dowex I (X4), Pormiatform (Korngröße 0,14-0,074 mm) chromato»
graphiert, Bei der dilution mit einem Genlsch aus 0,1 η Ameisensäure
und 0,1 η Natriumforraiat wurde eine Fraktion mit A~3»5-MP
erhalten.
Die erhaltene Fraktion wurde wieder an Aktivkohle adsorbiert;
die Aktivkohle wurde mit i'asser gewaschen und mit einer 1,4 i->-igen
Ammoniak/Äthanol-Lösung nach der oben beschriebenen Methode
eluierb. Das ^luat wurde unter vermindertem Druck eingeengt *
Die erhaltene Lösung wurde mit verdünnter Salseäure auf eimn -pH-Wert
von 2,0 eingestellt und an Dowss-SO (X^)H"1" (Korngröße
O,14'»O,O74 mm) ohroiaatographiert. Bai des llution mit 0,1 m
Salzsäure erhielt man eine Fraktion mit A-3,5-KP. BIe Fraktion wurde
unter vermindertem Druck e-iagearigt uziü üqt Rileästaad In
einem Kühlraum bsi 2° odsr 30C stehengelassene Man erhielt aus
500 ml Gärraaische 920 mg kristallines A-3,5-MPo
Corynsbacterium murieepticuni Nr3 7 (A0TeC8C 21374) wird® ©iaom
schräggestellten Nährmedium, aas 0,5 CU ÄmiaoiiiuEsulfat» O9 5 /'
Kaliumdiiijdroge.nphosphatg 0,005 $ MagnesiumsulfatB 1 f "casaraiao
acid", 0,3 f Hefeextrakt, 1,0 jfi CJlucose und 2,0 f Agar-Agar enthielt und mit 3 η Kalilauge auf den pH-Wert von 7,0 eingestellt .
wurde, eingeimpft und darauf gezüchtet.
Getrennt davon wurden je 30 ml eines Nährmediume, das 5ff0 f-Glucose,
0,5 $> Ammoniumchlorid, 1,0 ^ Bikaliumhydrogenphosphat,
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1,0 e/>
Kaliumdiliydrogesiphosphat, 1,0 $ Polypepton, 0,5 i>
Hefe» extrakt imd 0f 0027 ί>
Sinksulfat enthielt und dessen pK-Wert mit
3 η Kalilauge auf 8,0 eingestellt wurde, in 500 läl-SehUttelkulturflaschen
abgefüllt. Nach 1O-ninütigen Autoklavieren dieses
Nährmediums bei 115°C und nach Zusatz von 3 # getrennt sterilisiertem
Calciunicarbonat wurde die Anzuchtkultur dieser Gärmaische
eingeimpft und 10 Stunden unter Schütteln bei 30°C gezüchtet. Dann wurden 60 Mg Inosin zugesetzt, und die Züchtung wurde bei
derselben Temperatur unter Schütteln 70 Stünden fortgesetzt, wobei
A-3»5-MP in einer Menge von 21 mg/ml gebildet wurde.
Die erhaltene Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert,
der Überstand wurde mit 3 η Salzsäure auf den pH-Wert 4,0 eingestellt und zur Adsorption des darin enthaltenen A~3,5-MP
mit Aktivkohle behandelt» Die an der Aktivkohle adsorbierte Säure wurde mit einer 1,4 $~igen Ammoniak/A"thanol«Lösung eluiert«
Das Eluat wurde zur Entfernung überschüssigen Ammoniaks an Amberlite IRC-fjO (H4') chromatographiert und dann unter vermindertem
Druck eingedampft. Kach Zusatz von Alkohol zum Rückstand erhielt man 830 mg kristallines A-3.5-MP aus 500 ml Gärmaische.
Stamm Nr. 205 (A.T.C.C. 21376) der Gattung Microbacterium wurde
einem schräggeotellten Hährmedium, das 0,5 /'· Ammoniurasulfat,
0,5 i° Kaliumdihydrogenphosphat, 0,05 *! Kagnesiunsulfat, 1,0 i>
"Casamino acid", 0P3 5' Hefeextrakt, 1,0 $ Glucose und 2,0 #
Agar-Agar enthielt und dessen pH-Wert mit 3 η Kalilauge auf 7,0
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eingestellt wurde, eingeimpft und darauf gezüchtet«»
Getrennt davon wurden je 40 ml eines Nährmediitms, das 4»0 / Glycerin,
0,5 $ Ammoniumsulfat, O8 5 1Z* Kaliumdihydrogenphosphat,
0,5 'ß> Harnstoff, 0,5 # Dikaliumhydrogenphosphat, 1,0 # Polypepton,
1,0 # Magnesiumsulfat, 0,5 ?' Hefeextrakt, 0,2 ?6 Hypoxanthin
und 0,0027 # Zinksulfat enthielt und dessen pH-Wert mit 3 η Kalilauge
auf 7,0 eingestellt wurde, in 500 ml-Schüttelkulturflaschen
abgefüllt. Nach 10-minütigem Autoklavieren des Nährmediums
bei 1150C und Zusats von 3 r getrennt sterilisiertem
Calciumcarbonat wurde die oben erhaltene Anzuchtkultur durch
Sucpenaion eingeimpft und unter Schütteln 30 Stunden bei 300C
gezüchtet, wobei A-3,5-MP in einer Menge von 1,5 mg/ml gebildet wurde·
Die erhaltene Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert
und auf dieselbe Weise, wie im Beispiel 1 beschrieben, behandelt. Man erhielt 350 mg A-3,5-KP aus 500 ml Gärmaische„
Beiapiel 4
Stamm Nr. 11 (A.T0C,C. 21375) der Gattung Arthrobaoter wurde
auf einem schräggestellten Nährmedium der gleichen Zusammensetzung wie im Beispiel 2 bei 300C 24 Stunden gezüchtet. Die
erhaltene Anzuchtkultur wurde in 500 ml-Schüttelkulturflaechen
in je 40 ml Nährmedium eingeimpft, das 5,0 $>
Glucose, 0,5 $ Ammoniumsulfat, 1,0 # Dikaliumhydrogenphosphat, 0,5 i° Harnstoff,
1,0 '/S Kaliumdihydrogenphosphat, 1,0 ?ί Polypepton, 1,0 5έ Magnesiumsulfat,
0,5 /■' Hefeextrakt, 0,2 $ 5-Amino-4~imidazolcarl}OX-
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said-ribosid und 0,001 f* Kobaltsulfat enthielt, dessen pH-Wert
mit 3 η Kalilauge auf 7,0 eingestellt wurde, das 12 Kinuten bei
1150C autoklaviert und mit 3 f° getrennt sterilisiertem Calciumcarbonat
versetzt worden war. Man züchtete 40 Stunden unter Schütteln und erhielt 1,8 mg/ml A-3,5-MP#
Die erhaltene Gärmalsohe wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert und auf die gleiche Weise, wie im Beispiel 1 beschrieben, behandelt. Man erhielt 415 mg A-3,5-MP aus 500 ml Gärmai-
sehe«,
Stamm Nr. 11 (A.T8CG. 21375) äer Gattung Arthrobaater wurde in
©ines? actoäggeetailten Nährmediium. dar gleich©^ I
tn Beispiel 2 bei 300C 24 Stunden au.g©gS©litate Bi@ erhaltene
wris la 500 ial~ScMtt©ll£Mlturflaseli.©a in je 40 ml
äa® 5 *& Gl^o©s©» O1S f Aas©aiM3iaulfatf
BaKaliuioliGrdrogeiipliosphat, 0^5 °fi Harnstoff^ 1 f>
laliumdihy-' $ 0,5 %
it 3 21 Kalilauge aisf d®2ä pH-Wert 7,0
si^elSL'S isrnd aw^@klavies?t ward®, imd Ijti 30®S 12 Stunden unt©s
S©Mtt@ln g©3?l@M@t. is bildeten ®i@& 194 ng/iol A-3,5-MP
la Nätes©&i?!sa9 Bi® Särmalseh© t^iffd® &m£ die gl®£©h© Weise, wie
in Beispiel 1 beeohxieben* behandelt» üan e^hi@lt 332 mg A-3,5-
ΨΪΒ aus 500 ml Gärmaisoha«,
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Corynebacterlum murlsepticura Hr. 7 (A.T.C.C 21374) wurde auf
die gleiche Weise wie in Beispiel 5 in einen Anzuchtnährmedium
angezüchtet und in ein Nährmedium eingeimpft, das die gleiche
Zusammensetzung wie in Beispiel 4 hatte» mit einer Ausnahme,
daß anstelle von S-Araino^-lmidazolcarboxanid 0,2 $>
Succinyladenosin zugesetzt wurden. Bei 300C wurde 40 Stunden unter
Schütteln gazüchtet. Es bildeten sich 1,2 rag/ml A-3,5~MP. Die
Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert und wie in Beispiel 1 behandelt; man erhielt 180 mg A-3»5~MP aus
500 ml Gärinaische.
Stamm Hr, 205 (A.T.C.C, 2ι37β) der Gattung Hicrobactarium wurde
nach dem gleichen Anzuchtver-fahren wie in Beispiel 4 anganiiolitst
und in ein Nährmedium eingeimpft, das di© gleiche Zusammeasst=
zung wie in Beispiel 5 hat ta, mit einer Ausnahme, claS anstells
von 5"Aininö-'4"-imidazolcariboxamia 0s2 i°
wurden. Nach 70-stündigem Züchten unter Schütteln bei 30 G wur
den 0,7 mg/ml A~3»5-HP erzeugt. Die GäCTiaisclis wurde zur Entfernung"
dar Zellen zentrifugiert imd wia in Beispiel 1
deltj man erhielt 121 mg A«3,5-MP aus 500 ml Särmaische*
Stamm Nr. 205 (A9T.CO. 21376) der Gattung Mlorobaoterium
in demselben Anzuchtmedium wie in Beispiel 5 angezliohtet, in
ein Nährmedium eingeimpft, das dieselben Bestandteile wie In
009809/0999
Beispiel 6 hatüe, mit der Ausnahme, daS anstelle von 5-Amino-4-imidaaolcai-boxamid
0,2 "/■- Adencmin zugeaetat wurden, und unter
Schütteln 40 Stunden bei 3O°C gezüchtet. Man erhielt 2,0 mg/ml
Λ 5,5 HPo Die Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen sentrijfu.giert
und wie in Beispiel 2 behandelt; man erhielt 750 mg A--3, 5-ΙΊΡ au« 500 ml Gärmaische.
Stamm Hr. ?.O5 (A.T.C.0. 21376) der Gattung Kicrobacterium wurde
im gleichen Anssuehtnährmedium wie in Beispiel 4 gesüohtet,
in ein Nährmediuin eingeimpft, das die gleiche Zusammensetzung
vjie in Beispiel 5 hatte, mit der Ausnahme, daß anstelle von
5 Amino 4-imidazolcartioxaniid 0,1 % Adenin zugesetzt wurde, und
-fcer Schütteln 70 Stunden bei 300G gezüchtet. Man erhielt
1,2 ing/ml A"3,5-HP. Die Gärmaische wurde zur Entfernung der
Zellen zentrifugiert und auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1 behandelt. Man erhielt 230 mg A-3,5-MP aus 500 ml Gärmaische,
BAD ORIGINAL 009809/0999
Claims (1)
- Ansprüche1. Verfahren zur Herstellung von cyclischera Adenoein-3'5*-ssono~· phosphat, dadurch gekennzeichnet, daß man einen Mikroorganismus, der fähig iet, cyolisches Adenosin-31,5f-monopho8phat aus Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5-Aminc-4-iraidazolcarboxamid-ribosid, 5-Amino-4~iraidazolcarboxanid, Suecinyladenosin oder Succinyladenin in einem Kohlenetoff- und Stickstoffquellen, anorganische Nährsalze und Adenosin, Adenin* Inosin, Hypoxanthinf 5-Amino-4-iraidazolcarboxamid~ribosid, S-Amino^-imidazolcarboxaraid, Succinyladenosin oder Succinyladenin enthaltenden Nährmedium bei einem pH-Wert im Bereich von 5 bis 9 und bei einer Temperatur von 20° bis 400C unter aeroben Bedingungen züchtet, bis cyclisches Adenosin-3%5fmoBOphosphat im Kährmedium angereichert ist, und dieses aus dem »ährmedium gewinnt.2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß nan. «inen Mikroorganismus der Gattungen Coryne bacterium, Ar throbaoter oder Microbacterium verwendet.3« terfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet» daß man als Mikroorganismus Coryne bacterium murisepticum Nr. 7, A.f.C.C. 21374, Arthrobacter Nr. 11, A.T,C.C. 21375 oder Miorobacterium Nr. 205» A.T.C.C. 21376 verwendete4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Züchtung unter Schütteln, Rühren oder Belüftung durch-009809/0999führt.5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Züchtung 10 bis 80 Stunden durchführt.6. Verfahren naoh Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dafl nan ein Nährmedium mit 0,1 bis 2,0 # Gewicht pro Volumen Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, S-Araino^-imidazolcarboxaaidrib~isid, 5-Araino-4-imidazolcarboxaraid, Sucoinyladenosin oder Succinyladenin, berechnet auf das Gesamtvolumen dee Nährmediums, verwendet.7. Verfahren naoh Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daO man den Mikroorganismus direkt in das Nährmedium einimpft·8. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man den Mikroorganismus in einem Nährmedium, das Kohlenstoff- und Stickstoffquellen und anorganische Nährsalze tnthält» bei einem pH-Wert im Bereich von 5-9 und bei einer Temperatur von 20 bis 400C züchtet, Adenosin» Adenin, Inosin» Hypoxanthin, 5-Amino-4-lmldazolcarboxamid-ribosid» 5-Amlno-4-imidazoloarboxamid, Suocinyladenosin oder Suooinyladenin den angezüchteten Nährmedium zusetzt und die Züohtung bei einem pH-Wert im Bereich von 5-9 bei einer Temperatur von 20 bis 400C weiterführt.9· Verfahren naoh Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet» dafl man das mit cyolischem Adenoain-31,S'-monophosphat angereicherte009809/0999Nährmedium mit Aktivkohle, einem Anionenaustauscherharz, einem Kationenaustauscherharz oder entfärbendem Harz behandelt, unter vermindertem Druck eindampft oder mit einem Lösungsmittel behandelt, das das cyclische Adenosin-3',5'-monophosphat nicht009809/0999
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1969
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