BE1001760A5 - Supports de médicaments. - Google Patents

Abstract

Support de médicament sous la forme d'une émulsion de graisse, qui contient un médicament et a un diamètre de particules moyen inférieur à 200 nm.

Description

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   SUPPORTS DE MEDICAMENTS
La présente invention concerne un support de médicament amé]ioré pour améJiorer] a Jibération d'un médicament qui y est contenu du courant sanguin ou d'un site d'appJication dans un tissu lésionnel. 



   Diverses études ont été effectuées jusqu'à présent sur des supports de medicaments destinés à améliorer- la liberation d'un medicament qui y est contenu courant sanguin ou d'un site d'application dans un tissu 
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 lésionnel.. Par exemple, il existe un procédé d'utilisation d'un Mposome préparé par incorporation de phospholipide ("Drug Carriers in Biology and Medicine" (1979), édité par G. Gregoriadis, Academic Press). 



   Cependant, ce procédé présente es inconvénients suivants: (1) le liposome enveloppant une phase aqueuse avec une bi-couche   Jipidique   pose de nombreux   problemes   de stabilité au stockage, (2) dans le cas d'une administration dans Je sang Ja quasi-totalité des liposomes sont fixés dans un tissu ayant un système réticulo-endothélial (RES) développé tel que foie, rate, etc. de sorte qu'ils sont difficiles à répartir dans 

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 d'autres   cellules   ou tissus, etc.   0n   pense que ceci provient de ce que Je liposome a une structure dans   laquelle les   phases aqueuses interne et externe sont séparées l'une de l'autre par une bi-couche de phospholipide, et que Je   liposoms   est ainsi instable à diverses forces.

   Une augmentation du diamètre des particules due à une aggregation est également connue comme un défaut au cours de son stockage. 



   Conformément à des études effectuées ces dernières années, on connaît une technique dans laquelle divers médicaments sont dissous dans une émulsion de graisse ayant un diamètre de particules de   0,   2   pm,     composee d'huiJe   de soja et de lécithine jaune d'oeuf,   uti3ise jusqu'a present   en cJinique comme   complement   fluide en vue d'apporter un complément d'éléments nutritifs et a solution est utilisée; de bons résuJtats sont obtenus par ce moyen dans l'application décrite cidessus (SAISHIN IGAKU (Latest Medicine), 40,1806-1813 (1980)). Ce support est caractérisé en ce qu'il ne possède pas de phase aqueuse à l'intérieur et en ce qu'il peut être stocke   d'une maniere extremement staMe   par comparaison avec les liposomes. 



   Cependant, le support a]. a propriété d'être aisément fixé dans Je   Systeme   réticulo-endothélial précité tel que foie, etc. Un métabolisme aussi rapide etait désiré comme complement de fluide a haute teneur en calorie, mais il posait des   problemes   de mauvaise répartition du médicament dans d'autres tissus en tant que support de médicament convenant pour   J'objectif decrit   cidessus, etc. et n'était pas nécessairement approprié. 



   En outre, une technique d'utilisation d'une   emulsion   de graisse dans laquelle 90% de cette   emulsion   ont 100 ¯ 30 nm comme support pour des produits pharmaceutiques est décrite dans le JP-A-63/500456. 



  Cependant, cette technique est également caractérisäe par 
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 ]'accumulation dans un Systeme reticuJo-endotheJia] tel 

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 que le foie et Ja rate, et comme iJ a déjà été décrit, ceci pose un problème pour Ja liberation du médicament dans d'autres tissus. 



   Comme moyens pour résoudre   les problemes   qui précèdent, on connaît une technique d'application de lipoprotéines sériques composées d'un lipide simple (y compris des stérols, comme dans] a présente description),   d'un lipide complexe   et d'une   apoJipoproteine comme   support de médicament   (JP-A-60-163824).   Cependant, ce support introduit un médicament dans des cellules par reconnaissance physiologique et spécifique de a lipoprotéine. Par   consequent. Je   support est rapidement transféré dans le tissu en passant par son récepteur, de sorte que sa disparition du sang est relativement rapide. 



   Pour cette raison, 3e transfert dans un tissu ayant une faible activité des récepteurs n'est pas toujours suffisant. En outre, l'apolipoprotéine est indispensable comme constituant de celui-ci de sorte que Ja technique présente un inconvénient comme technique industrielle qui conduit à des coûts de production élevée. 



   En outre, on connaît un essai de preparation d'une émulsion de graisse d'une taille de particules inférieure   a   200 nm (voir JP-A-62/29511). Cependant, dans   cette technique, la J. ecithine   de jaune d'oeuf est utilisée en petite quantité et en conséquence,] es microparticules obtenues se recoagulent avec le temps de sorte qu'iJ existe un problème d'instabilit. En outre, il existe un inconvénient en ce qui concerne Ja stabilité in vivo, de sorte que cette technique ne convient pas pour Ja libération dans d'autres tissus. 



   (Problèmes que J'invention permet de résoudre). 



   En général, un médicament administré se dépJace et se répartit dans J'organisme en raison des propriétés intrinsèques de sa   moJ. ecule. Puis, Je médicament   atteint son site d'action où il présente ses effets pharmacologiques. Dans ce cas, il est souhaitable que Je   me-   

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 dicament ne soit concentré que sur   J'empJacement neces-   saire pour présenter ces effets pharmacologiques, mais Je medicament est généraJement réparti dans l'organisme entier, et Je medicament se déplace également dans Jes em- placements qui n'exigent pas de médicament. Ceci est par- fois une cause d'effets secondaires. Par conséquent, il devient important et nécessaire d'améliorer la distribution des medicaments dans 3'organisme. 



   Compte-tenu de ce qui   precede,   Ja demanderes- se a poursuivi J'étude de nouveaux supports de médicaments (1) n'affectant pas les activités pharmacoJogiques intrin-   sèques   des médicaments, (2) capables de libérer efficacement d'un medicament dans Je tissu vise, (3) capa- bJes de réduire Ja fixation par le système réticulo-endothélial, (4) capable de maintenir Ja concentration d'un medicament dans Je sang et (5) capables de réduire a dose de médicament nécessaire.   A]   a suite de ces études, elle a finalement réussi à accomplir la présente invention. 



   (Moyens pour résoudre les   problemes).   



   Les caractéristiques de la présente invention sont Jes suivantes : (1) le support de médicament est une émutsion de graisse constituée à Ja fois d'une substance lipo-   philo comme   noyau et d'une   substance lipophile recouvrant   sa surface, et elle n'est pas sous Ja même forme que dans le liposome, où la phase aqueuse est   presente a     J'Interieur ;   (2) dans   J. e   support de médicament, un médicament est présent à l'état de dispersion, dissolution, micelles, mélangées ou liaison chimique avec le Jiquide ; et (3) Je diamètre de particules est dans J'intervalle non inférieur à 5 nm à moins de 200 nm. 



   Ces points seront décrits en détail ci-après. 



   Le support de medicament de Ja présente invention revêt Ja forme d'une   emulsion   de graisse stable. 

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I] est souhaitable que son diamètre de particules soit dans un   intervaJJe   non inférieur à 5 nm à moins de 200 nm, pour éviter Ja fixation dans   Je Systeme reticuJo-   endothélial. En divisant Je support de médicament d'une manière superfine, sa concentration dans Je sang peut être maintenue à un niveau plus élevé que pour une émulsion de graisse ayant un diamètre d'environ 0, 2 pm. On préfère   particuJièrement   un diamètre de 100 nm ou moins. Ceci provient de ce que Je support de médicament peut aisément exsuder des vaisseaux sanguins dans une région dans JaqueJJe Ja vasoperméabiJité est accentuée. 



   IJ est connu que diverses regions appelées systèmes de pores (comprenant un système de pores de petites dimensions ayant un diamètre jusqu'à 9 nm et un système de pores de grandes dimensions ayant un diamètre de 25 à 70 nm et iJ est connu   que J. a vasopermeabiJite   est encore accrue dans diverses régions visées parmi lesquelles les vaisseaux   neo-formes)   ou d'autres interstices entre Jes   celJuJes   sont présents dans les vaisseaux sanguins et que   Ja vasopermeabiJite   est accentuée dans diverses régions visées parmi   lesquelles inflammation, tumeur   et athérosclérose. Dans une telle région, le support de médicament de   Ja presente invention   exsude seJectivement du vaisseau sanguin en grandes quantités et est transféré dans Je tissu visé.

   En même temps, Je medicament contenu dans Je support de médicament est   éga]ement   Jibéré dans la lesion. De ce fait, Je médicament peut aisément être libéré de manière sélective dans la région visée, de telle sorte que Ja concentration du médicament dans Ja région visée augmente et que son effet peut être amélioré. En outre, en   utilisant te   support de médicament de Ja présente invention, on peut administrer un médicament en 
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 même temps que Je Jipide de teJJe sorte qu'on peut améliorer J'aptitude à Ja libération prolongée d'un medicament et Jes propriétés lymphotropes d'un médicament. 



  Le support de medicament de Ja présente invention présente 

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 A également des propriétés d'aptitude à Ja phagocytose. 



   La caractéristique de la présente invention réside dans l'utilisation d'un Jipide super-finement divise comme support de médicament. Grâce aux   particuJes   divisées de manière superfine,   Jes problèmes décrits   cidessus consistant en ce que non   seulement les   effets qui précèdent sont présentés, mais égalemtn la fixation par le système réticulo-endothélial est empechee,   etc.,   peuvent être résolus simultanément. Grâce à celle-ci, on peut aussi obtenir un effet de maintien de la concentration des médicaments   dans le   sang. 



   Le support de médicament conforme à Ja présente invention est caractérisé en ce qu'on utilise des quantités plus importantes de] a couche de surface (par exemple, un Jipide complexe) par rapport au noyau (par exemple un lipide simple), par comparaison avec Je comptément fluide riche en calories classique, comprenant de 
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 J'huile de soja et de Ja Jécithine de jaune d'oeuf, on ré- alise des   particu. les divisees   de manière superfine. 



   Pour   faciJiter ]'obtention   de particules superfinement divisées dans Je support de médicament de Ja présente invention, iJ est souhaitable que Ja teneur de Ja couche superficielle (par exemple du   lipide complexe) soit   dans ]'interva]Je de 15 à 70%. Ceci parce que la surface spécifique du noyau du support de médicament est augmentée par a division superfine de telle sorte qu'iJ. est nécessaire d'augmenter Ja quantité du Jipide complexe pour recouvrir Je noyau en tant que couche de surface et 
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 stabiJiser l'émulsion.

   Dans Je cas où on utiJise moins de 15% de Jipide compJexe, il est inévitable d'entremêler des particules ayant un diamètre de   0, 2 sium   ou davantage ; dans le cas où l'on   utilise plus   de 70% du lipide complexe, il est   inevitable   d'entremêler des particules de liposome. 



  Grâce à cette constitution, on peut obtenir une   emulsion     stabJ.   e d'émulsion de Jipide superfinement divisé et l'uti-   Jiser comme   un excellent support de médicament, ce qui a 

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 été établi pour la première fois par Ja presente invention.

   
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 C'est-à-dire que J'on considere que Je support de médicament de Ja présente invention serait sous la forme d'une émulsion de graisse composée   d'une   substan- ce comme noyau et d'une substance comme couche superficiel Je, dans   laquelle     (l)   Ja substance constituant
Je noyau de J'emulsion de graisse est un lipide simpJe, un liquide transformé en dérivé, Je médicament lui-même ou un   melange   de ceux-ci, et Ja proportion de cette substance dans Je support de medicament est de 30 à   85% ;

     (2) Ja substance constituant Ja couche superficielle de l'émulsion de graisse est un lipide   compJexe,   un lipide transformé en dérivé,   le médicament Jui-même   ou un   met. ange   de ceux-ci, et Ja proportion de cette substance dans Je support de médicament est de 15 à   70% ;   et s'il possède simultanément les propriétés (1) et   (2),   on peut obtenir un support de medicament contenant un médicament ayant un diamètre moyen de particules inférieur   a   200 nm. 



   Dans Ja présente invention, il est nécessaire que Je médicament soit introduit par dispersion ou dissolution dans Je support de médicament, formation d'une micelle mélangée avec un ou plusieurs constituants du support de médicament ou une liaison chimique avec un ou plusieurs constituant du support de médicament, de tel Je sorte que Je médicament administré ne soit pas aisément libéré du support de médicament. 



   Comme   lipide utilise   dans le support de médicament de Ja présente invention, on peut citer un lipide simple, un lipide transformé en dérivé ou un lipide complexe d'origine animale, végétale ou minérale ou   un me-   lange de ceux-ci. Des exemples comprennent un lipie sim-   ple,   un lipide transformé en dérivé ou un lipide complexe obtenu à partir de jaune d'oeuf, de soja, de coton, de I. in, de mais, de sésame, d'arachide, de carthame, de tissu   Ze   bovin, de tissu de porc, de tissu de mouton, etc. ou un 

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 lipide simple, un Jipide transforme en dérivé ou un lipide complexe, préparé par voie purement synthétique. 



   Des exempJes du Jipide simple comprennent des lipides neutres tels que l'huiJe de soja raffinée, J.'huiJe de graine de coton, J'huile de   Jin,   l'huile de sésame, l'huile de mais,   l'huile   d'arachide,   1. huile   de   carthame,   
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 la trioeine, 1e triJinoJeine, Ja tripaJmitine, Ja tristéarine, Ja trimyristine, la triarachidonine, etc. Le lipide simple comprend aussi des dérivés du cholestdroi tels que l'oléate de choestéryLe, J. e linoleate de cholestéry- 
Je, le myristate de   choJestéryle,   Je paJmitate de chloles- téryle, l'arachidonate de   cholestérye,   etc.

   Ceci provient de ce que   J. es lipides   neutres sont décomposés de manière   reJativement aisée   par diverses lipases présentes dans J'endothélium des vaisseaux sanguins, etc., tandis que les dérivés du   cholesterol   ne sont décomposés que difficilement par ces enzymes. 



   Comme lipide transformé en dérivé, on peut citer par   exemple, J. e cholestérol,   des acides gras tels que J'acide stéarique, J'acide palmitique,   l'acide o]él-   que, l'acide linoléique, l'acide linolénique, l'acide éicosapentaénoïque, etc. et des dérivés de ceux-ci, Je squalène, etc. On peut aussi les utiliser comme adjuvants d'émulsification. En outre, on peut citer   ä   titre d'exemples des composes huileux tels que l'azone, etc. 



   Comme   lipide compJexe,   on peut citer par exemple, des phospholipides obtenus à partir du jaune d'oeuf, du soja, du tissu de bovin, du tissu de porc, etc. ou des phospholipides et glycolipides préparés de manière purement synthétique. Des exemples de phospholipides com- 
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 prennent J. a phosphatidyJcholine, la phosphatidyethanolamine, Ja phosphatidylsérine, le phosphatidyJinositol, etc., tels que la phosphatidylcholine de jaune d'oeuf, Ja phosphatidylcho-line de soja, Ja dipal. mitoylphosphatidyl- choline, Ja dimyristoylphosphatidylcholine, la distéaroyl-   phosphatidylcholine, la dioléoylphosphatidylcholine, le   

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 dipalmitoylphosphatidylinositol, etc. On peut également utiliser des produits obtenus par hydrogénation de ces phospholipides.

   Parmi ceux-ci, un exemple représentatif préféré est la phosphatidylcholine de jaune d'oeuf. Comme glycolipide, on peut   citer te cerebroside,   etc. On peut égarement citer des   stérylgucosides,   par   exemple lez   sitostéryl-ss-D-glucoside, etc. En outre, on peut égale- 
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 ment utiliser des-lipides ayant une charge tel Je que Ja stearyJamine, Je phosphate de dicétyle, 3'acide phosphatdique, etc., pour conférer au support de médicament une charge superficielle. 



   Le médicament auquel Ja présente invention est applicable peut être n'importe   queJ   médicament pour autant qu'il est pharmaceutiquement   acceptable, mais. il.   n'est pas particulièrement limité. On peut également utiliser un médicament qui est insoluble ou peu soluble. Dans la présente invention, le médicament forme aisément un complexe avec Je support. 



   Dans un médicament   soluble   dans l'eau, Je support de médicament de Ja présente invention peut être formé en utilisant Je médicament chimiquement lie aux 
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 constituants (par exemple le lipide, etc.) du support. 



  Même si un medicament est instabJe dans 3'organisme, et n'est par conséquent pas susceptible d'être administré jusqu'à présent, un tel médicament peut lui aussi être administré aisément en utilisant le support de medicament de a présente invention. Le médicament contenu dans Je support de médicament de la présente invention est présent dans les gouttelettes d'huile de lipides dans un état tel qu'i] est protégé de l'environnement de tel Je sorte qu'une decomposition enzymatique ou non enzymatique peut être évitée. 



   Le médicament auquel le support de médicament de 3a présente invention est   applicable   n'est pas particuJièrement limite, comme il a été décrit ci-dessus. Des exemples comprennent un agent anti-inflammatoire, un anaJ- 

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 gesique, un agent anti-aJJergique, un antibiotique, un agent chimiothérapique, un agent anti-cancéreux, un agent antiviral, un agent anti-anti-athérosclérose, un agent normo-   lipemiant,   un agent anti-ulcère, un immunoreguJateur, un vaccin, un fixateur de radicaux, un brochodiJatateur, un hypnotique, un   tranquillisant,   un anesthésique local, un agent diagnostique etc.

   Des exemples particuliers de ces médicaments sont des agents anti-cancéreux teJs que J'Ancitabine, Je   fluorouracile, Ja   mitomycine C, Ja mitomycine C   farnésyJamine,   Ja mitomycine C amide   farnesyJacetique,   Je Carmofur, Je palmitat de   Futraf   Je myristate de 5- 
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 fluorouracile, ]'Adriamycine, Ja Daunomycine, J'AcJarubicine, J.

   a MacJarubicine, Ja VinbJastine, Ja Vincristine, Jes esters d'acides gras de la Cytarabine, le Mitotane, l'Estramustine, etc., des agents antiviraux tels que le Dichloroflavane, etc., des stéroïdes (par exemple Je   paJ.-   mitate de Dexaméthasone, Je   paJmitate   d'hydrocortisone, Je paJmitate de PrednisoJone, Je stéarate de Dexaméthasone, la   methyJprednisoJone,   Ja   Paramethasone,   J'acétamide de FJuocinolone, Je propionate de Vectaméthasone, des esters d'acides gras de 1'hydrocortisone,   J'AJdosterone,   Ja Spi-   ronolactone, etc.

   ) et des agents non-steroidiens (par   exemple ]'Ibuprofène, J'acide   FJufenamique,   Je Kétoprofène, la Phénacétine, l'Antipyrine, l'Aminopyrine, l'indoléacetate de Phénylbutazone, les dérivés de J'acide biphény- 
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 JyJpropionique, J'Indometacine, J'ester ethoxycarbonyJme- thyJique de l'Indométacine, l'ester stéarylique de   J'indo-   métacine, l'ester cétylique de l'aurothiomalate de sodium, le DicJofénac, J'acide acétylsalicylique et ses dérivés,   etc. ).

   Des agents anti-allergisants tels que le   Tranylast, la Kétotifène, l'Azélastine, etc. peuvent égaZement etre   utilises.   Comme antibiotiques et agents chi- 
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 miothérapiques, on peut citer par exemple Jes tetracycJines, l'Erythromycine, Ja Midécamycine, J'Amphotéricine, J'acide Nalidixique, Ja GriseofuJvine, Ja MinocycJine, etc. Comme exemples de prostaglandines, on peut utiliser 

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 Ja PGE1, Ja PGAl, les esters alkyJiques de Ja PGA1, Jes esters aJkyJiques de Ja PGEl, Jes dérivés de Ja PGEl, Jes dérivés de Ja PGI2, les dérivés de la PGD2, etc. On peut citer des agents antihistaminiques tels que Ja Diphenhydramine, J'Orphénadirine, Ja ChJorphenoxamine, Ja ChJor- phéniramine, Ja Prométhazine la Mécridine, la Cyproheptadine,   J'acetate   de Loxatidine, etc.

   En outre, comme anesthésiques Jocaux, on peut citer Ja Lidocalne, Ja Benzocalne, Je Dantrolène, la cocaïne, la Tétracaïne, la 
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 Piperocalne, Ja Mepyracalne, et leurs déri vés, ete. 0n peut égarement citer des agents correcteurs des troubles hépatiques (par exemple Je Marotirate, J'acide   GJ. ycyrreti-   nique, l'acétylglycyrrétinate d'éthyle, le glycyrrétinate   de méthyle, etc. ) des agents nanti-ulcère (par exemple le Farnésol, le géraniol, le Géfarnate, la Téprenone, le     P. 1aunotoJ, le   Sofarcon, etc.).

   On peut citer aussi des agents agissant sur Je système nerveux central (par 
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 exempJe Je PhénobarbitaJ, Je MéthaquaJon, J'héroine, Je Diazépam, Je Medazepam, Je Frazépam, Je Clotiazépam, J'EtizoJan), Ja Mécridine, le Bucridine, J'Adiphenine, Ja Méthamphétamine, J'Imipramine, Ja ChJorimipramine, J'Amitriptyline, Ja Miansérine, Ja Trimethadione, Je Phénsuxi- mide, le Tétrabenzamide, Je Benzquinamide, Je camphre, Ja Dimorphoramine, la strychnine, la Chlorpromazine, la Pro-   méthazine, la Prochlorpérazine, la Méquitazine, la Triflu-     promazine.   la Lévomépromazine, le Difénidol, etc. et des dérivés de ceux-ci). On peut également citer des dilatateurs   cerebrovascuJaires   (par   exempJe Ja Cinnarizine,   etc.).

   Comme bronchodilatateurs, on peut citer Ja Vestphylline et d'autres dérivés de   Ja théophyJJine, Ja méthy-   léphédrine, etc. Des agents antichoJinergiques (par exempJe   1a   Benztropine, Ja Physostigmine, J'Atropine, la Scopol amine, etc. des bloquants parasympathiques (par exempJe, J'OxyphéncJimine, Ja Pirenzémine, l'Etomidrine,   etc.),   des   bJoquants   du calcium (par exemple Je Diltiazem,   Ja Nifédipine, Je VérapamiJ, etc. ), des &alpha;

  -bloquants (par   

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   exempte la Dibenzamine, Ja Phenoxybenzamine, etc. ), des   agents anti-tussifs, (par   exempJe   Ja Noscapine, Je Dextro- 
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 méthorphan, Ja Pentoxyvérine, Ja Benpropérine, etc.), des agents pour traiter l'hypertophie prostatique (par exemple   le Gastron, l'Oxendelone, etc. ), des agents pour traiter le glaucome (par exemple, le Pilocarpine, etc. ), des   agents agissant sur   le muscie Jisse   (par exemple la Spar- 
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 teine, Ja Papavérine, etc.), des agents pour traiter J'hyperJipemie (par exempJe le ChJorfibrate, Je Cimfibrate, Je Probucol, etc.) etc.

   On peut citer en outre par exemple des aminoacides, des vitamines, Je DiJazep, J'Ubidécarénone, Je FJ. avoxate, Ja CycJosporine, des vaccins pour l'influenza, etc., Ja Dibenzthione, Ja DiphényJpyraJ. ine, Je PhenovaJinium, la Métadione, Je Tofisopam, Je limonène, etc.). 



  Des anti-oxydants (par exemple Je tocophéroJ, Jes derives de Ja flavone, Jes dérivés de J'acide gaJJ. ique, Jes dérivés des acides du cafe. Je GoshipoJ, le Sézamol, des oxyacides gras, le camphéne, le CinéoJ., Je RosmanoJ, J'eugéno], Ja FiJozurucine, etc., ]es catéchoJs, des homologues du Jignane, J'acide p-coumarique, des   stérols, des terpènes, Je bromophenoJ, etc. ) peuvent éga-   Jement être un des constituants du support de medicament de la présente invention. 



   En outre,   Je guaiazuJene   des médicaments bruts du type huile essentielle (par exemple l'essence de noyau d'abricot, J'essence du fenouil, l'essence de thym, 
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 J'essence de thérébentine, J'essence d'eucalyptus, J'essence de paJme, J'essence de graine d'oeiJJette,   1'es-   sence de tsubaki, l'essence de menthe poivrée, l'essence de clou de girofle, l'essence de menthe, 1'essence de sauge et d'autres constituants pour medicaments bruts   parfumés, etc. ), etc. peuvent également entrer dans la   constitution du support de médicament de Ja présente invention. 



   Comme agents diagnostiques, on peut citer par 

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 exemple un composé marque par un radioisotope, un médicament radioactif ou des esters d'acides gras de l'huile d'oeillette iodés comme agents de contraste pour les rayons X, etc. 



   Le médicament auquel Je support de médicament de Ja présente invention est   appl. icable n'est   pas particu-
Jièrement linmité, comme il a été indiqué ci-dessus, mais, compte-tenu des caractéristiques intrinsèques du support de médicament, on souhaite en généraJ des médicaments agissant   sur J'infJammation, les   tumeurs, Jes vaisseaux sanguins ou Je système immunitaire ou lymphoïde. 



   La concentration du medicament dans Je support de médicament de Ja présente invention peut adéquatement varier dans un intervalle ne dépassant pas
85% du support de medicament, suivant J'activité biologique du médicament. En outre, on peut faire varier adéquatement Ja concentration du support de medicament de la présente invention dans les préparations médicales obtenues en utiJisant le support de médicament de Ja présente invention, et   ceJJe-ci   est facuJtative. 



   Pour Ja preparation du support de médicament de Ja présente invention et des préparations médicales   l'utiJisant,   on peut faire appeJ   a   divers procédés de préparation des émulsions appliqués jusqu'à présent. Par exemple, on peut les préparer par un procédé qui comprend une division suffisamment fine de tous J. es constituants, y compris Je medicament, au moyen d'un homogénéiseur du type Manton-Gaurin, d'un microfJuidiseur, d'un homogénéiseur uJtrasonore, etc.

   On peut aussi Jes préparer par un procédé qui comprend Ja solubilisation des constituants en utiJisant un agent tensio-actif (par exemple un acide   biJ. iaire),   un solvant soluble dans J'eau (par exemple   1'6ethanol,   Je   poJyethyJenegJycoJ),   etc. puis   J'élimination   de J'agent tensio-actif ou du solvant soluble dans   1'eau,   etc. par dialyse ou filtration sur   geJ,   etc.

   Des acides gras ou leurs dérivés, etc. peuvent aussi être ajoutes 

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 comme adjuvants   d'emuJsification.   En outre, Je support du medicament et ses préparations medical. es peuvent aussi être obtenus en ajoutant un medicament à une   emulsion   de graisse exemple de particules ayant un diamètre de 200   nm   
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 ou davantage, preaJabJement preparee par] es procedes précités. 



   La forme et Je diamètre de particules du support de médicament de la présente invention peuvent aisément être confirmés au moyen d'un microscope   eectronique, d'un   analyseur de diamètre de particules du type   a   dispersion de la lumière, par filtration à travers un filtre à membrane, etc. Comme constituants facuJtatifs pour les préparations médicales utilisant le support de medicament de Ja présente invention, on peut citer les additifs et les substances   auxiJiaires utiJisés pour Jes   injections ordinaires etc. Des exemples de ceux-ci sont un anti-oxydant, un conservateur, un stabilisant, un agent isotonique, un tampon, etc. Les quantités necessaires et optimales de ces additifs, des substances auxiJiaires etc. peuvent varier en fonction de leurs objectifs. 



   Le support de médicament de Ja présente invention obtenu comme il a été décrit ci-dessus peut être stérilisé (par exempJe par filtration ou avec de la vapeur sous haute pression dans un autoclave), si nécessaire, et scellé dans une ampoule avec   de J'azote   gazeux. Si nécessaire   également, Ze   support de medicament peut aussi etre lyophilisé. Le support de médicament lyophilisé de   Ja presente   invention peut être reconstitue en lui ajoutant une solution appropriée. 



   Le support de médicament de la présente invention est généralement administré à l'homme et aux animaux par voie intraveineuse, mais si nécessaire, iJ peut aussi être administré par voie   intra-arterieJJe,     intra-muscuJaire, sous-cutanée,   etc. 



   En outre, Je support de médicament de la présente invention peut aussi être utilisé comme collyre, 

 <Desc/Clms Page number 15> 

 comme gouttes   nasaJes,   comme agent oral, suppositoire etc. 



  Dans ce cas, des additifs tels que des bases, excipients etc. pharmaceutiquement acceptabJes peuvent être donnés 
 EMI15.1 
 comme exempJes de constituants facuJtatifs. 



  (Effets) Conformément à J'invention, Ja disponibiJité du medicament peut etre améliorée d'une manière marquée. Les effets du support de médicament de Ja présente invention peuvent etre résumés en ce que les problèmes de la technique antérieure sont résolus   (l)   Ja libération 
 EMI15.2 
 d'un medicament dans Ja lésion visée est améliorée (2) Ja fixation par Je système réticulo-endothélial est évitée, (3) on peut   maintenir J. a   concentration dans le sang du médicament qui y est contenu,   (4)   Ja stabilité au cours du stockage est assurée, (5) les couts de production sont réduits, etc. Ces effets ont été obtenus pour Ja première fois par Ja présente invention. 



   11 est également caractéristique que Jes constituants principaux du support de médicament de Ja présente invention sont des lipides   therapeutiquement   acceptabJes, cJ. assiquement utiJisés pour Je traitement dans Je domaine cJinique, de   tel. le   sorte   qu'iJs   peuvent être utilisés d'une manière extrêmement sûre. 



   (EXEMPLES) 
 EMI15.3 
 La presente invention sera expliquée ci-après de manière pJus détaiJJ. ee en se référant à des exemples relatifs à Ja préparation du support de médicament de Ja présente invention, mais   elle   ne doit pas être considérée comme limitée à ceux-ci. 



   EXEMPLE 1
A 27 mg de   trioJeine, on ajoute   38 mg de   J. lecithine   de jaune d'oeuf et 10 mg de guaiazulène (agent anti-inflammatoire), et on ajoute au   melange   10 ml de sér um physioJ. ogique. En utilisant un homogénéiseur iltrasonore du type à sonde (Branson Sonifier ModèJe 185), on soumet le mélange à un traitement ultrasonore pendant 

 <Desc/Clms Page number 16> 

 
60 minutes en refroidissant à la glace. Le support de   medicament forme,   contenant du   guaiazulene,   est bleu et limpide. Le diamètre moyen de particules du support de médicament est de 26, 4 nm Jorsqu'on le mesure au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de 1 Jumière.

   En outre,   a   3'examen au microscope électronique, Je support de médicament 5'avère constitue des particules uniformes, sphériques, divisées de   manière uJtrafine. 0n   n'observe aucune membrane lipidique a deux couches comme dans e liposome. On observe aussi que Je support de médicament traverse   a   100% une membrane fiJtrante de   0, 2 um   et ne contient pas de particules de 0, 2 pm ou davantage. 



   EXEMPLE 2 
 EMI16.1 
 On meJange de] a Jecithine de jaune d'oeuf, 
2, 5 mg et 10 mg de guaiazulène et on ajoute au mélange
10 ml de sérum physiologique. En utiJisant un homgénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson
Sonifier modèle 185), on soumet Je mélange à un traitement ultrasonore pendant 60 minutes en refroidissant à Ja glace. Le support de médicament forme, contenant du guaiazulène, a un diamètre de particules moyen, mesure avec un appareil pour] a mesure des particules dispersant la lumière, de 48, 4 nm. On constate également que le support de médicament traverse à 100% une membrane filtrante de 0, 2 pm et ne contient pas de particules de 0,2  m ou davantage. 



   EXEMPLE 3
A 100 mg de   trioJeine, on ajoute   100 mg de Jécithine de jaune d'oeuf et 4 mg d'un composé (palmitate de dexaméthasone) obtenu en Jiant chimiquement un acide gras avec   a Déxaméthasone   (agent anti-inflammatoire), et on ajoute au mélange 10   ml   d'une solution aqueuse de glycérol 0,24 M. En utilisant un homogénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson Sonifier modèle 185), on soumet le mélange à un traitement ultrasonore pendant 

 <Desc/Clms Page number 17> 

 
60 minutes en refroidissant à   a glace.   Le support de médicament forme, contenant du palmitate de Dexaméthasone, est d'un   bJanc Jegèrement bleuâtre   et Jimpide.

   Le diamètre moyen de particules du support de médicament mesure au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre des particules par dispersion de la lumière, est de 29, 9 nm. 



   On constate aussi que Je support de médicament traverse une membrane filtrante de 0, 2 rm et ne contient pas de particules de 0, 2 pm ou davantage. 



   EXEMPLE 4
A 80 mg de   trioJéine,   on ajoute 20 mg de linoléate de cholestéryle, 100 mg de   lecithine   de jaune d'oeuf et 4 mg de palmitate de Dexaméthasone. Puis on ajoute au   melange   10 ml de solution aqueuse de glycérol 0, 24 M. En utilisant un homogénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson Sonifier modèle 185), on soumet le   melange a   un traitement ultrasonore pendant 60 minutes en refroidissant a Ja glace. Le support de médicament forme, contenant du pa]mitate de Dexaméthasone est d'un blanc légèrement bleuâtre et limpide. Le diamètre moyen de particules du support de médicament, mesuré au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de la lumière est de 30, 6 nm.

   On constate aussi que Je support de médicament traverse à 100% une membrane filtrante de cm et ne contient pas de particules de 0, 2 um ou davantage. 



   EXEMPLE 5 
 EMI17.1 
 A 100 mg de lino]éate de cholesteryJe on ajoute 100 mg de lecithine de jaune d'oeuf et 4 mg de palmitate de Dexaméthasone. Puis on ajoute au méJange 10 ml d'une solution aqueuse de glycérol 0, 24 M. En atilisant un homogénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson Sonifier modèle 185), on soumet le mélange à un traitement ultrasonore pendant 60 minutes, en refroidissant à Ja glace. Le support de médicament forme, contenant du palmitate de Dexaméthasone, est d'un blanc 

 <Desc/Clms Page number 18> 

 légèrement bleuâtre et limpide. Le diamètre moyen de particules du support de médicament, mesure au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre particules par dispersion de   Ja lumiere,   est de 22,7 nm.

   On constate également que le support de médicament traverse à 100% une membrane filtrante de 0, 2 pm et ne contient pas de particules de 0,2  m ou davantage. 



   EXEMPLE 6
A 100 mg de   trioéine,   on ajoute 100 mg de lécithine de jaune d'oeuf et 10 mg de Diphénhydramine (agent anti-histaminique). Puis on ajoute au mélange 10 ml d'une solution aqueuse de   glycerol   0, 24 M. En utilisant un homogénéiseur ultrasonore du type   a   sonde (Branson Sonifier mode. le 185), on soumet le méJange à un traitement ultrasonore pendant 60 minutes en refroidissant 
 EMI18.1 
 à la glace. Le support de médicament forme, contenant de Ja diphénhydramine, est d'un bJanc Jégerement Meuâtre et Jimpide. Le diamètre moyen de particules du support de médicament, mesure au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de Ja Jumière, est de 31, 6 nm.

   On constate aussi que Je support de médicament traverse   a   100% une membrane filtrante de 0, 2 pm et ne contient pas de particules de 0, 2 um ou davantage. 



   EXEMPLE 7
A 100 mg de trioléine, on ajoute 100 mg de lécithine de jaune d'oeuf. Puis on ajoute au mélange 10   mJ   d'une solution aqueuse de   glycerol   0, 24 M. En utilisant un homogénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson Sonifier modèle 185), on soumet le mélange à un traitement uJtrasonore pendant 60 minutes en refroidissant à Ja glace. Le support de médicament, formé est d'un   Manc Jegerement Meuätre   et limpide. Le diamètre moyen de particules du support de medicament, mesuré au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de la lumière, est de 47, 2 nm.

   On constate 

 <Desc/Clms Page number 19> 

 aussi que Je support de médicament traverse   a   100% une membrane fiJtrante de   0, 2 um   et ne contient pas de particules de 0, 2 pm ou davantage. 



   Un composé (Je paJmitate de Vinblastine), 
 EMI19.1 
 500 pg, obtenu en Jiant chimiquement un acide gras avec Ja Vinblastine (agent anti-cancéreux) est ajouté au support de médicament obtenu ci-dessus. On malaxe doucement Je mélange et on J'agite pendant 7 heures pour fixer Je médicament sur le support de médicament. On obtient ainsi
Je support de médicament contenant Je médicament. 



   Un composé, (le palmitate de 5-   fJuorouracil e), 500 pg,   obtenu en   Jiant   chimiquement un acide gras avec du 5-fluorouracile (agent anti-cancéreux) est ajouté au support de medicament obtenu ci-dessus. On malaxe doucement le mélange et on J'agite pendant 6 heures pour fixer Je médicament dans Je support de médicament. On obtient ainsi un support de médicament contenant Je medicament. 



   Un composé (Je lévulinate de Cytarabine), 500 pg, obtenu en Jiant chimiquement un acide gras avec Ja Cytarabine (agent anti-cancéreux) est ajouté au support de medicament obtenu ci-dessus. On malaxe doucement le mélange et on J'agite pendant 6 heures pour fixer le médicament dans Je support de médicament. On obtient ainsi un support de médicament contenant Je medicament. 



   EXEMPLE 8
A 80 mg de   trio) 6ine,   on ajoute 20 mg de linoléate de cholestéryle et 100 mg de lécithine de jaune d'oeuf. Puis on ajoute au mélange 10 mJ d'une solution aqueuse de glycérol 0, 24 M. En utilisant un homogénéiser ultrasonore du type à sonde (Branson   Sonifier modèle   185), on soumet le mélange à un traitement ultrasonore pendant 60 minutes en refroidissant à Ja glace. Le support de medicament formé est d'un bJanc légèrement bleuâtre et limpide. Le diamètre de particules moyen du support de médicament, mesure au moyen d'un dispositif de mesure du 

 <Desc/Clms Page number 20> 

 diamètre de particules par dispersion de la lumière, est de 19, 1 nm. Les   resultats anaJ. yti. ques   sont donnés   dans 3. a   figure 1.

   On constate également que Je support de medicament traverse à 100% une membrane fiJtrante de 0,2  m et ne contient pas de   particuJes   de   0, 2 ym   ou davantage. 



   EXEMPLE 9
A 20 mg d'huile de soja raffinée, on ajoute
20 mg de lécithine de jaune d'oeuf. Puis on ajoute au   melange   10 ml d'une solution aqueuse de glycerol 0, 24 M. 



  En utilisant un homogénéiseur ultrasonore du type à sonde (Branson Sonifier modèle 185), on soumet Je mélange à un traitement ultrasonore pendant 60 minutes en refroidissant à Ja glace. Le support de medicament formé est d'un blanc légèrement bleuâtre et limpide. Le diamètre moyen de particules du support de médicament, mesuré au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de la Jumière, est de 16, 1 nm. On constate aussi que Je support de médicament traverse à 100% une membrane fiJtrante de 0, 2 pm et ne contient pas de particules de 0, 2 pm ou davantage. 



   En outre, on prépare un support de médicament de la même manière que ci-dessus, excepte qu'on utilise 40 mg d'huile de soja raffinée. Le support de médicament formé est d'un   bJanc légerement bJeuatre   et limpide. Le diamètre de particules du support de médicament, mesure au moyen d'un dispositif de mesure du diamètre de particules par dispersion de Ja Jumière, est de 37, 7 nm. On constate aussi que Je support de médicament traverse à 100% une membrane fiJtrante de 0,2  m et ne contient pas de particules de   0,   2 um ou davantage. 



   EXEMPLE 10
A 10 9 d'huiJe de soja, on ajoute 10 g de   lecithine   de jaune d'oeuf. Puis on ajoute au mélange 1 litre d'une   soJution   aqueuse de   glycerol   0, 24 M. En utilisant un microfluidiseur, on émuJsionne Je mélange. On 

 <Desc/Clms Page number 21> 

   constate que le support de médicament formé traverse à 100% une membrane filtrante de 0, 2) um et ne contient pas de particules de 0, 2 pm ou davantage. 



  (Essai de stabilité du support de médicament de la présente invention). 



  EXEMPLE D'ESSAI 1-1 On scelle l'échantillon obtenu dans]'Exemple 1 dans une ampoule de verre ambré d'un volume de 1 m] en même temps que de J'azote gazeux. On effectue un essai de dégradation forcée à 60 C pendant 4 semaines de Ja manière classique. Le taux résidue] de quaiazulène est de 98, 3%, et il est confirmé que e support de medicament de Ja présente invention a des effets sur Ja stabilité du médicament. 



  EXEMPLE D'ESSAI 1-2 On sceJJe respectivement Jes échantillons obtenus dans les Exemples 1, 3 et 4 ci-dessus dans une ampoule de verre ambré d'un volume de 1 ml, en même temps que de J'azote gazeux. Après un traitement de Sterilisation des ampou3es par Ja vapeur sous haute pression en autoclave, on mesure Je diamètre de particules de chaque échantillon au moyen d'un dispositif de mesure des diamètres de particules par dispersion à Ja jaumière. 



  I] n'y a pas de différence significative entre le diamètre avant et après Je traitement. On n'observe ni agrégation ni augmentation du diamètre des particules. Puis on stocke les échantillons à 4 C pendant 6 mois mais on n'observe aucune modification telle qu'sgrégation, etc. 



  EXEMPLE D'ESSAI 1-3 On lyophilise de la manière classique l.'échantiJJon obtenu dans J'ExempJe 3 décrit ci-dessus. 



  Puis on ajoute à l'échantillon de l'eau distillée pour injection, après quoi on agite pour Je reconstituer. Puis @n mesure Je diamètre de particules de l'échantillon au noyen d'un dispositif de mesure des diamètres de particules par dispersion de Ja lumière. Le diamètre   

 <Desc/Clms Page number 22> 

 moyen de particules est de 28, 3 nm.   U   ne se produit ni agrégation significative ni augmentation du diamètre de particuJes mais l'échantillon est uniformément dispersé. 



   (Essai sur l'utilité de Ja présente invention). 



   EXEMPLE D'ESSAI 2-1
On utiJise comme   échantiJJon   d'essai Je support de médicament de Ja présente invention contenant du paJmitate de Dexaméthasone prepare comme   dans J'ExempJe  
3, marqué par    du 3H.   Comme échantillon comparatif, on utilise une émulsion de graisse ayant un diamètre de
0, 2 um comme dans Ja technique antérieure. Cet   échantiJJon   comparatif est obtenu en ajoutant 10   mJ   d'une solution aqueuse de glycérol 0, 24 M à 4 mg de palmitate de
Dexaméthasone marqué par du 3H, 100 mg d'huiJe de soja raffinée et 12 mg de lécithine de jaune   d'oeuf.   



   On administre à des rats, par voie intraveineuse,   J'echantiJJon   d'essai et J'échantillon comparatif. Puis on examine les modifications de Ja concentration dans Je sang. 



   La modification de Ja radioactivité totale du   pJasma Jorsque J'échantilJon d'essai   et   J'echantiJJon   comparatif sont administrés par voie intraveineuse dans Ja veine caudale de rats mâles de souche SD (pesant environ 210 g) à une dose de 0, 05 mg/kg,   calculée   en Dexaméthasone, est indiquée dans Ja figure 2. 



    L'échantiJJon comparatif disparatt rapidement   du plasma, mais sa disparition   de J'échantilJon d'essai   est modérée. 



  Les durées de demi-vie dans Jes phases de répartition sont de 10, 5 minutes et 5, 5 minutes, respectivement. 



   EXEMPLES D'ESSAI 2-2
On compare la libération du médicament dans une région inflammatoire provoquée par un oedème à Ja carragénine entre l'échantillon d'essai et l'échantillon comparatif, en utilisant un support de médicament de a 
 EMI22.1 
 présente invention, Je paJmitate de Dexaméthasone marqué par du 3H, préparé d'une manière simiJaire à J'ExempJe 4 

 <Desc/Clms Page number 23> 

 
 EMI23.1 
 t t comme echantillon d'essai, et le meme echantillon comparatif que dans l'Exemple d'essai E-1. 



   TABLEAU 1
Libération de médicament dans la région enflammée par Ja carragénine 
 EMI23.2 
 
<tb> 
<tb> Echantillon <SEP> Echantillon
<tb> d'essai <SEP> témoin
<tb> Patte <SEP> avec <SEP> inflammation <SEP> (ng) <SEP> 475 <SEP> ¯175 <SEP> 154 <SEP> ¯ <SEP> 17
<tb> (ng/g) <SEP> 204 <SEP> ¯ <SEP> 53 <SEP> 64 <SEP> ¯ <SEP> 8
<tb> Patte <SEP> témoin <SEP> (ng) <SEP> 164 <SEP> ¯ <SEP> 19 <SEP> 89 <SEP> ¯ <SEP> 24
<tb> (ng/g <SEP> 94 <SEP> ¯ <SEP> 8 <SEP> 52 <SEP> ¯ <SEP> 14
<tb> Région <SEP> de <SEP> J'oedème <SEP> (ng/g <SEP> 538 <SEP> ¯142 <SEP> 94 <SEP> ¯ <SEP> 42
<tb> PJasma <SEP> (ng/gl <SEP> 448 <SEP> 38 <SEP> 122 <SEP> 12
<tb> (moyenne-ecart-type)
<tb> 
 
L'oedème à la carragénine a été provoqué par administration sous-cutanée de   0, 1 m3 de J\-carragénine à     0,

   5% à   des rats mâles de souche SD (pesant environ 195   g)   au talon d'une patte. Deux heures après ]'administration 
 EMI23.3 
 de carcagenine, on administre par voie intraveineuse J'échanti]lon d'essai et 'echantH] on comparatif dans Ja veine caudale,   à Za   dose de 0, 5 mg/kg, calculée en Dexaméthasone. Soixante minutes après l'administration intraveineuse, on recueille du sang de   l'aorte de   l'abdomen pour obtenir du plasma. En même temps, on coupe la patte portant l'inflammation et la patte opposée (patte témoin) au joint de la cheville. La radio-activité de chacune est mesuree après traitement par un composé oxydant pour Jes échantillons. 



   Dans le Tablau 1, en ce qui concerne l'échantillon d'essai, des quantités importantes du medicament sont transférées dans Ja région inflammatoire (région de   l'oedème)   et   J'on   observe une forte 
 EMI23.4 
 n m Ill n F i on o , on; on ; nf l mmms F n; r n ro:o r rom rwn r n i con 

 <Desc/Clms Page number 24> 

 avec   1'échantiJ Jon comparatif.   On note une concentration de   medicament 5, 7   fois   plus élevée   que   celle   de l'échantillon comparatif dans Ja region de J'oedème provoquée par l'inflammation. 



   EXEMPLE D'ESSAI 2-3
Le TabJeau 2 indique les résultats d'une   comparaison de Ja Jibération d'un médicament   dans 
 EMI24.1 
 J'hydrothorax et Jes principaux organes de rats souffrant d'une pleurésie expérimentale, en utiJ isant Je même échantiJJon d'essai et Je même échanti. Uon comparatif que dans J'ExempJe d'essai 2-2 décrit ci-dessus. 



  De Ja )-carragénine à 2%, 0, 1 ml, est administrée à des rats mâles de souche SD (pesant environ 300 g) dans Ja cavité thoracique. Deux heures et demie après l'administration de la carragénine, on administre par voie intraveineuse   J'échantiJJon   d'essai et l'échantillon comparatif dans Ja veine caudale à la dose de 1, 25 mg/kg, calculée en Dexaméthasone. Trente minutes après J'administration intraveineuse, on recueiJJe du sang de l'aorte abdominale et on élimine par   lavage le fluide   présent dans Ja cavité thoracique avec une solution   saline   physiologique pour faire 10 mJ. On détermine sa radioactivité. En même temps, on   prélève ases   principaux organes.

   On mesure chaque radioactivité après traitement par un composé oxydant pour Jes échantillons. 

 <Desc/Clms Page number 25> 

 



  5 
 EMI25.1 
 10 15 20 25 30 35 
TABLEAU 2 Transfert dans la région inflammatoire et   Jes principaux tissus   
 EMI25.2 
 
<tb> 
<tb> Echantillon <SEP> Echantillon
<tb> d'essai <SEP> comparatif
<tb> Fluide <SEP> de <SEP> a <SEP> cavité
<tb> thoracique <SEP> (pg) <SEP> 2, <SEP> 65 <SEP> 0, <SEP> 68
<tb> Diaphragme <SEP> ( g/g) <SEP> 1, <SEP> 06 <SEP> 0, <SEP> 68
<tb> Rate <SEP> (g/g) <SEP> 3, <SEP> 05 <SEP> 27, <SEP> 34
<tb> Foie <SEP> (pg/g) <SEP> 7, <SEP> 71 <SEP> 17, <SEP> 84
<tb> Coeur <SEP> (pg/g) <SEP> 1, <SEP> 53 <SEP> 1, <SEP> 53
<tb> Poumon <SEP> (pg/g) <SEP> 2, <SEP> 36 <SEP> 1, <SEP> 93
<tb> Rein <SEP> (pg/g) <SEP> 2, <SEP> 66 <SEP> 1, <SEP> 37
<tb> Plasma <SEP> ( g/ml) <SEP> 10, <SEP> 07 <SEP> 2, <SEP> 37
<tb> (Valeur <SEP> moyenne <SEP> convertie <SEP> en <SEP> Dexaméthasone)
<tb> 
 
Dans Je Tab] eau 2,

   en ce qui concerne   ]'échanti].lon   d'essai, de grandes quantités du médicament sont libérées dans Ja région inflammatoire (région hycrothoracique)   et l'on   observe une forte accumulation sur Ja région inflammatoire par comparaison avec   J'échantillon   comparatif. Une concentration en médicament 3, 9 fois supérieure à   cerne   de   J'exempJe comparatif   est observée dans Je fluide de la cavité thoracique. En ce qui concerne   la rgpartition dans] es   organes principaux, l'échantillon d'essai montre un transfert extrêmement   faiMe dans 3. es   organes ayant un système réticuleendothélial développé comme Je foie et la rate. 



   EXEMPLE D'ESSAI 2-4
On administre par voie intraveineuse à des 
 EMI25.3 
 souris mal. es BALB/C (pesant environ 25 g) Je meme échantimon d'essai et Je meme échantiJJon comparatif que dans l'Exemple d'essai 2-2 décrit ci-dessus. Trente 

 <Desc/Clms Page number 26> 

 minutes après J'administration, on détermine dans Je plasma et Je foie la concentration du médicament inchangé 
 EMI26.1 
 et Ja concentration de Ja Dexaméthasone en tant que métabolite de celui-ci. La dose est ajustée à S mg/kg, calculés en Dexamethasone. 



   Le Tableau 3 montre Ja concentration du medicament inchangé (palmitate de Dexaméthasone, sa concentration est exprimée en Dexamethasone) et de son 
 EMI26.2 
 metabo] ite (Dexamethasone), determinees separement de manière quantitative. 



   Dans le cas de J'échantillon d'essai, Ja concentration dans Je plasma est élevée et Ja répartition dans Je foie est faible. En outre, l'échantillon d'essai est présent pour Ja plus grande partie dans Je plasma sous Ja forme de médicament inchangé. Dans Je cas de J'utilisation du support de médicament de Ja présente invention, on note de manière évidente le maintien de Ja concentration sanguine du médicament et un effet de prévention de Ja fixation dans Je système   réticu]o-   endothélial. 



   TABLEAU 3 
 EMI26.3 
 
<tb> 
<tb> Echantillon <SEP> Echantillon
<tb> d'essai <SEP> comparatif
<tb> (pg/ml, <SEP> g)
<tb> Médicament <SEP> inchangé <SEP> dans <SEP> 36,3 <SEP> ¯ <SEP> 2,2 <SEP> 7,7 <SEP> ¯ <SEP> 1,6
<tb> e <SEP> plasma
<tb> Dexaméthasone <SEP> dans <SEP> Je
<tb> plasma <SEP> 4, <SEP> 6 <SEP> ¯ <SEP> 0,5 <SEP> 5,2 <SEP> ¯ <SEP> 0,9
<tb> Médicament <SEP> inchangé <SEP> dans
<tb> le <SEP> foie <SEP> non <SEP> détectable <SEP> non <SEP> détectable
<tb> Dexaméthasone <SEP> dans <SEP> le <SEP> foie <SEP> 24,0 <SEP> ¯ <SEP> 1,2 <SEP> 41,0 <SEP> ¯ <SEP> 1,2
<tb> Rapport <SEP> foie/plasma <SEP> en
<tb> concentration <SEP> (quantité
<tb> totale) <SEP> 0, <SEP> 6-0, <SEP> 0 <SEP> 3, <SEP> 0-0, <SEP> 5
<tb> (Les <SEP> valeurs <SEP> indiquées <SEP> sont <SEP> des
<tb> moyennes <SEP> ¯ <SEP> écart-type)

  
<tb> 
 

 <Desc/Clms Page number 27> 

 
EXEMPLE D'ESSAI 5
Pour Je même   échantillon   d'essai et le même échantillon comparatif que   dans J'ExempJe d'essai   2-2 et une solution dans du sérum physiologique de phosphate de Dexaméthasone, on examine les effets pharmacologiques en utilisant]'inhibition de J'oedème à   1a   carragenine comme indice. 



   On administre de la   -carragénine     (0, 5%,   1 ml) par voie sous-cutanée à des rats mâles de souche SD (pesant environ 160 g) dans un talon d'une patte. Trente minutes après, on administre par voie intraveineuse dans Ja veine   caudaJe,   l'échantillon d'essai, l'échantillon 
 EMI27.1 
 comparatif et du phosphate de Dexamethasone. Pour 1e groupe témoin, on administre du sérum physiologique. On mesure Je volume de 1a patte avant. 1'administration de carragénine et 5 heures après l'administration de la manière classique, pour déterminer le rapport d'inhibition de   l'oedème.   



   La figure 3 montre Ja courbe dose-réponse 
 EMI27.2 
 (calculée sur 1a base de Ja Dexaméthasone). La figure 4 montre la dose inhibitant l'oedème à 50% (DE50). 



  IJ est cJair que J'échantiJJon d'essai a une activité anti-infJammatoire a peu près deux fois plus élevée que celle des autres échantiJJons, meme dans une inflammation de ce type qui n'était pas améliorée par l'exemple comparatif de Ja technique antérieure.   C'est-à-   dire que l'effet du support de médicament de a présente invention est confirmé comme étant un effet d'amélioration de J'effet du médicament. I] est ainsi clair que ceci provient de ce que Je médicament est libéré efficacement dans la légion visée en utilisant le support de médicament 
 EMI27.3 
 de Ja présente invention. 

 <Desc/Clms Page number 28> 

 



   TABLEAU 4 Dose inhibant J'oedème à 50% 
 EMI28.1 
 
<tb> 
<tb> DE50 <SEP> (mg/kg)
<tb> Echantillon <SEP> d'essai <SEP> 0, <SEP> 012
<tb> Echantillon <SEP> comparatif <SEP> 0, <SEP> 031
<tb> Phosphate <SEP> de <SEP> Dexamethasone <SEP> 0, <SEP> 023
<tb> (Les <SEP> vaJeurs <SEP> indiquees <SEP> sont <SEP> obtenues <SEP> par <SEP> conversion <SEP> en
<tb> Dexaméthasone)
<tb> 
 EXEMPLE D'ESSAI 2-6 
 EMI28.2 
 Pour Je même échantiJJon d'essai et le même échantiJlon comparatif que dans l'Example d'essai 2-2 et une solution dans Je sérum   physioJogique   de phosphate de Dexaméthasone, on examine Jes effets pharmacologiques par J'inhibition du   granu. lome à la carragenine   comme indice. 



  En outre, on détermine es poids du thymus et des surrénales. 
 EMI28.3 
 



  De a -carragénine (2, 0%, 4, 0 m]) est administrée par voie sous-cutanée à des rats mâJes de souche SD (pesant environ 160 g), dans Je dos. A partir du cinquième jour, chaque échantillon est administré par voie intraveineuse dans la veine caudale, une fois par jour pendant 3 jours 3 fois au total. La dose du médicament administré est ajustée à 0, 05 mg/kg/en une seule fois. Pour Je groupe témoin, on administre   du. serum   physiologique. Buit jours après, on prélève le granulome, Je thymus et Ja surrénale et on détermine leurs poids. 



   On observe dans Ja figure 5 que l'échantillon d'essai présente manifestement une forte activité d'inhibition de Ja formation de granulome par comparaison avec J'échantillon comparatif et le phosphate de Dexaméthasone, et   qu'iJ   provoque aussi moins d'atrophie que dans le thymus et   Jes surrénaJes. C'est-a-dire qu'iJ est   

 <Desc/Clms Page number 29> 

 démontré que]'échanti]lon d'essai possede un effet pharmacologique prononcé, mais moins d'effets secondaires. 



   TABLEAU 5
Poids du granuJome, du thymus et de. La surrénale 
 EMI29.1 
 
<tb> 
<tb> Granulome <SEP> Thymus <SEP> Surrénale
<tb> Témoin <SEP> 20,5¯5,4 <SEP> g <SEP> 416,0¯63,3 <SEP> mg <SEP> 55,2¯9,6 <SEP> mg
<tb> Echantillon
<tb> d'essai <SEP> 10,9¯1,4 <SEP> g <SEP> 205,0¯57,2 <SEP> mg <SEP> 44,5¯7,2 <SEP> mg
<tb> Echantillon
<tb> comparatif <SEP> 15,5¯2,6 <SEP> g <SEP> 149,8¯31,3 <SEP> mg <SEP> 39,6¯2,7 <SEP> mg
<tb> (Les <SEP> valeurs <SEP> indiquées <SEP> sont <SEP> des <SEP> moyennes <SEP> ¯ <SEP> écart-type)
<tb> 
 EXEMPLE D'ESSAI 2-7 
 EMI29.2 
 On effectue un essai pour confirmer J'aptitude a Ja libération dans a region de Ja tumeur. 



  Des ce3Ju] es de a leucemie P388, au nombre de 106, sont transplantées par voie sous-cutanée à des souris   maJ. es CDFl   (pesant environ 25 g) sur Je membre avant droit. Six jours après, on coupe Je membre avant droit et on Je soumet à l'expérience 5 jours après. Par ce traitement, on obtient un cancer métastatique expérimental dans Je haut du bras droit et J. es ganglions Jymphatiques axillaires droits.

   Comme échantiJlon d'essai, on utilise ] e support de médicament de la présente invention préparé dans 1'ExempJe 8 en utilisant du linoléate de cholestéryle marque par du   H.   Comme échantillon compparatif, on utilise une   emuJsion   de graisse ayant un diamètre de 0,2  m, composé d'huile de soja raffinée et de   Lecithine   de jaune d'oeuf connue jusqu'à présent, dans laquelle on a incorporé du linoléate de cholestéryle marqué par du 3H.

   On administre par voie intraveineuse, dans Ja veine de la queue, l'échantillon d'essai et l'échantillon comparatif et 

 <Desc/Clms Page number 30> 

 60 minutes plus tard, on prélève Je haut du bras droit et les ganglions lymphatiques axillaires droits dans lesquels une métastase de Ja tumeur a été observée, On prélève simultanément un ganglion Jymphatique non métastatique, Je haut du bras gauche et   les ganglions lymphatiques   axillaires gauches. On mesure Ja radio-activité de chacun. 



   Comme Je montre Je TabJeau 6, Je support de médicament de   Ja presente   invention a été transféré dans la région de Ja tumeur   a   une concentration jusqu'à deux fois supérieure ou davantage. Dans   J'echantiJJon   comparatif, une telle libération sélective à une concentration élevée n'a pas été observée. 



   TABLEAU 6
Libération dans une tumeur de ganglion Jymphatique métastatique 
 EMI30.1 
 
<tb> 
<tb> Echantillon <SEP> Echantillon
<tb> d'essai <SEP> comparatif
<tb> Ganglions <SEP> Jymphatiques
<tb> métastatiques <SEP> 2,60 <SEP> ¯ <SEP> 0,87 <SEP> 0,91 <SEP> ¯ <SEP> 0,27
<tb> Ganglions <SEP> Jymphatiques
<tb> non <SEP> métastatiques <SEP> 1,04 <SEP> ¯ <SEP> 0,27 <SEP> 0,86 <SEP> ¯ <SEP> 0,39
<tb> (Les <SEP> valeurs <SEP> indiquées <SEP> sont <SEP> des <SEP> % <SEP> de <SEP> Ja <SEP> dose/g,
<tb> moyennes <SEP> ¯ <SEP> écart-type)
<tb> 
 
EXEMPLE D'ESSAI 2-7a
On a effectué un essai confirmant un transfert dans Ja région d'une tumeur. 



   Des cellules tumorales S - 180 (1 x 106) ont été inoculées par voie sous-cutanée dans Ja peau de 
 EMI30.2 
 abdomen de souris de souche ddY (poids corporel : environ 25 g). Au bout de 6 jours, Je diamètre de J. a tumeur est devenu de 1 cm environ, et el. le a été soumise   a   un essai. 



   Comme   échanti]Jon,   on a utilisé Je support 

 <Desc/Clms Page number 31> 

 pharmaceutique de J'invention, prepare   dans J'exemple 8 à   partir de linoléate de cholestéryle marqué au 3H. Comme témoin, on a incorporé du linoléate de choJestéryle marqué au   3H   à une émulsion de graisse comprenant de Ja 1écithine de jaune d'oeuf et de J'huile de soja, d'un diamètre de   0,2 micromètre,   et on a utilisé Je produit. 



   L'échantillon et Je témoin ont été administrés tous deux dans a veine caudale, puis   1a   tumeur a été prélevée au bout de 15 minutes, 1 heure et 24 heures, et Ja radioactivité a été déterminée. 



   Comme Je montre Je Tableau 6a, le support de   Ja presente invention   a été transféré, à chacun des temps essayés, dans Ja région de Ja tumeur, à une concentration à peu près 3 fois plus élevée que pour le témoin. 



   Tableau 6a
Transfert à une tumeur solide 
 EMI31.1 
 
<tb> 
<tb> Temps <SEP> Echantillon <SEP> essayé <SEP> Témoin
<tb> 0,25 <SEP> h <SEP> 1,37¯0,34 <SEP> 0,35¯0,14
<tb> 1 <SEP> 1,64¯0,21 <SEP> 0,54¯0,13
<tb> 24 <SEP> 6,59¯0,38 <SEP> 2,96¯1,22
<tb> Les <SEP> valeurs <SEP> sont <SEP> en <SEP> % <SEP> de <SEP> a <SEP> dose/g, <SEP> moyenne-ecart-type
<tb> 
 
EXEMPLE D'ESSAI 2-8
En vue de confirmer la stabilité dans l'organisme du support de médicament de   Ja presente   invention dans lequel le linoléate de cholestéryle est le noyau, le support de médicament de la présente invention obtenu dans   I'Exemple   5 a été utilisé comme   échantiJ. lon   d'essai, et Je support de médicament de   1a   présente invention obtenu dans l'Exemple 4 comme échantillon comparatif.

   Ces   échanti]]ons   ont été respectivement administrés à des rats par voie intraveineuse. On a déterminé Ja modification de Ja concentration sanguine. 

 <Desc/Clms Page number 32> 

 
Des échantillons préparés en utilisant du palmitate de
Déxaméthasone marque par Je   3H   sont utilisés comme échantillons respectifs. 



   La modification de la radioactivité totale dans Je plasma lorsque l'échantillon d'essai et l'échantillon comparatif sont administrés par voie intraveineuse à des rats mâles SD (pesant environ 250 g) dans la veine caudale, à Ja dose de 0,05 mg/kg, calculé en dexaméthasone, est indiquée dans a figure 4. 



     L'échantiUon   d'essai disparaït du plasma plus   Jentement   que 3'échantillon comparatif. Les demi-vies pour Ja disparition dans Ja phase de répartition sont de 21, 6 minutes et de 11, 5 minutes, respectivement. 



   EXEMPLE D'ESSAI 2-9
On mélange les échantillons d'essai obtenus dans les Exemples 3,4 et 5 et l'échantillon comparatif   ut   dans l'Essai 2-1 avec du plasma de rat, respectivement, pour examiner Ja stabilité. La concentration de l'échantillon dans le plasma est ajustée   ci   23  g/ml   caJcuJes en Déxaméthasone.   Comme Je montre le Tableau 7, la quantité du médicament inchangé (palmitat de Dexaméthasone) restant après incubation à 37 C pendant 90 minutes, c'est-à-dire la stabilité dans Je plasma, est manifestement plus élevée pour Je support de médicament de la présente invention que pour l'échantillon comparatif,
En outre,

     iJ   est également confirmé que J'utiJisation de linoléate de cholestéryle comme noyau du support de médicament de Ja presente invention augmente Ja stabilité en fonction de sa teneur. 

 <Desc/Clms Page number 33> 

 



   TABLEAU 7 Stabilitédansleplasma 
 EMI33.1 
 
<tb> 
<tb> Quantité <SEP> de <SEP> médicament
<tb> inchangé <SEP> restante
<tb> Echantillon <SEP> d'essai <SEP> obtenu <SEP> dans
<tb> l'Exemple <SEP> 3 <SEP> 39, <SEP> 8%
<tb> EchantiJJon <SEP> d'essai <SEP> obtenu <SEP> dans
<tb> l'Exemple <SEP> 4 <SEP> 47, <SEP> 5%
<tb> Echantillon <SEP> d'essai <SEP> obtenu <SEP> dans
<tb> J'Exemple <SEP> 5 <SEP> 68, <SEP> 1%
<tb> EchantilJon <SEP> comparatif <SEP> de
<tb> l'Exemple <SEP> d'essai <SEP> 2-1 <SEP> 20, <SEP> 1%
<tb> 
 
EXEMPLE D'ESSAI 2-10
Après avoir appliqué un collyre de la préparation d'essai dans l'oeil de souris ddY (pesant environ 30 g), sous anesthésie au pentobarbital, on mesure Ja con- : entration du médicament dans le globe oculaire et   3'apt-     : ude a 3a liberation   du médicament dans le globe oculaire. 



   Les préparations d'essai   sont-l. es   quatre dé- : rites ci-dessous. 



   Echantillons d'essai - (1) support de médica- ment de la présen- te invention con- tenant un anti-   inflammatoire, le   guaiazulene obtenu   dans l'Exemple 1  
Echantillons d'essai - (2) support de médica- ment de] a présen- te invention con- tenant un anti- inflammatoire, Je 

 <Desc/Clms Page number 34> 

 Echantillon   comparatif - (1)   guaiazulène obtenu   dans l'Exemple 2   EmuJsion de graisse ayant un diamètre de 0, 2 um, composée d'huile de soja et de 
 EMI34.1 
 lecithine de jaune d'oeuf comme technique antérieure, dans aquel.

   du guaiazulene a été incorpore   ExempJe   comparatif- (2) EmuJsion de graisse ayant un diamètre de 0, 2 um, composée d'huiJe de soja et de lécithine de jaune d'oeuf comme technique antérieure, dans Ja- 
 EMI34.2 
 quelle du guaiazulene-   3-suJfonate   de sodium comme dérivé du guaia-   zu. lene soJuble   dans J'eau a été mélangé et dissous. 



   La dose a été ajustée à 5   ug/oeil,   calculés en guaiazulène. Après application à l'oeil, le globe ocu-   laire   a été prélevé au bout d'un temps défini. Après J'avoir lavé immédiatement avec du sérum physiologique, on homogénéise   le globe oculaire   et on dose le médicament par chromatographie liquide à hautes performances. 



   La modification de Ja concentration du médicament dans le   globe oculaire   est indiquée dans Ja figure 5. Les échantillons d'essai ont tous présenté une meilleure aptitude à Ja libération dans Je   gJobe   oculaire 

 <Desc/Clms Page number 35> 

 que Jes échantillons comparatifs. 11 est evident que Ja libération du médicament dans Je globe oculaire est   amé]iorée   dans le cas de l'utilisation des supports de médicaments de la présente invention. 



   EXEMPLE D'ESSAI 2-11
En utilisant le support de médicament contenant du guaiazulène obtenu dans l'Exemple 1 comme échantillon d'essai et un dérivé du guaiazulène soluble 
 EMI35.1 
 dans J'eau,] e guaiazu. lene-3-sufonate de sodium comme échantillon comparatif, on a administré ces échantillons dans   1'oeil   de lapins blancs japonais (pesant environ 
 EMI35.2 
 3 kg) pour examiner 7'aptitude à la libération du médicament dans]'humeur aqueuse. Trente minutes après ]'administration dans 3'oeil, 3'humeur aqueuse a été recueillie et a concentration du médicament a été mesurée. Les résultats sont donnés dans le Tableau 8. 



  C'est seulement dans le cas de 3'utilisation du support de médicament de la présente invention que   J'on   a observé Ja libération du médicament   dans. t'humeur   aqueuse. 



   TABLEAU 8 
 EMI35.3 
 Liberation d'un médicament dans 1'humeur aqueuse après application à 1'oei3 
 EMI35.4 
 
<tb> 
<tb> Echantillon <SEP> d'essai <SEP> I <SEP> 3, <SEP> 47 <SEP> 3, <SEP> 31
<tb> Echantillon <SEP> comparatif <SEP> Non <SEP> détectabJe
<tb> RésuJtat <SEP> exprimé <SEP> par <SEP> 1 <SEP> a <SEP> moyenne <SEP> ¯ <SEP> écart-type
<tb> 
 
EXEMPLE D'ESSAI 2-12
En utilisant Je support de médicament de Ja présente invention contenant un antihistaminique, la diphenhydramine obtenue dans J'Exemple 6, comme échantillon d'essai et une solution de chJorhydrate de diphénhydramine dans du sérum physiologique comme échantillon comparatif, on a étudié l'action préventive contre l'accentuation de la   asoperméabilité   provoquée par administration intracutanée 

 <Desc/Clms Page number 36> 

 d'histamine. 



   L'échantillon d'essai ou   J'échantillon   comparatif ont été administres par voie intraveineuse à des rats   mât es   de souche SD (pesant environ 300 g). Après un temps déterminé, on a administré par voie intraveineuse 10 mg de Bleu Evans et en meme temps on a injecté du 
 EMI36.1 
 chJorhydrate d'histamine (I pg/50 u) par voie intracutanée dans a peau abdominale. Au bout de 30 minutes, on a arraché Ja peau pour déterminer   quantitativement le Bleu   Evans exsudé dans   a   peau. Après avoir   solubilise   a peau avec 3 m] d'acide chlorhydrique concentré, on a ajouté 3 m] de chlorure de benzalconium à 10% à 1a solution on a titré le Bleu Evans avec 5 ml de chloroforme.

   La quantité de Bleu Evans ayant exsudé dans la peau a été déterminée par l'absorbance à 620 nm dans la couche   ch-lorotormique.   



   La figure 6 montre Ja modification en fonction du temps de. l'inhibition de la vasoperméabilité provoquée par injection intracutanée d'histamine 15,30 et 120 minutes après administration des deux échantillons, dont les doses ont été ajustées à 2 mg/kg, calculés en diphénhydramine. L'échantillon d'essai présentait déjà 1'effet maximum 15 minutes après administration. 



  L'effet se poursuivait jusqu'à 2 heures. D'autre part, dans l'échantillon comparatif, le taux d'inhibition était plus faible que pour l'échantillon d'essai.   L'échantiHon     : omparatif présentait J'effet   maximum 30 minutes après j'administration, puis J'effet diminuait. L'échantillon d'essai présentait une inhibition de   Ja vasoperméabiJité   : rois fois plus élevée ou davantage que l'échantillon : : omparatif 2 heures après l'administration. Les résultats nontrent que l'échantillon d'essai non seulement augmente es effets du médicament, mais également a un effet de orolongation de l'action du médicament. 



   La figure 7 représente une courbe dose-   @éponse montrant l'inhibition   de la vasoperméabilité ) btenue 30 minutes après J'administration des   @chantillons.   

 <Desc/Clms Page number 37> 

 
 EMI37.1 
 



  A I I] est evident que les échantiJJons d'essai ont une exceJJente action d'inhibition de Ja vasoperméabiJité par comparaison avec l'échantillon comparatif. 



  4. Brève description des dessins. 



   La figure 1 montre les résultats de a mesure du diamètre des particules du support de medicament de Ja présente invention préparé dans J'Exemple 8 avec un dispositif de mesure des diamètres des particules par 
 EMI37.2 
 dispersion de Ja Jumiere, J'axe vertica representant te nombre des particuJes et J'axe des abscisses representant Je diamètre de particules sur une   6celle   logarithmique. 



   La figure 2   représente. 1a   modification de Ja radio-activité totale dans Je plasma lorsque J'échantiJJon d'essai et   J'echantiJJon   comparatif examinés dans J'ExempJe d'essai 2-1 sont administrés par voie intraveineuse à des rats, J'axe verticaJ représentant Ja concentration du médicament, calculée en Dexaméthasone (ng/ml) et J'axe des abscisses représentant le temps (en heures) écoulé après l'administration: la courbe dont Jes points sont représentés par o et Ja courbe dont les points sont représentés par o, représentent l'échantillon d'essai et l'échantillon comparatif, respectivement. 



   La figure 3 est une courbe dose-réponse de l'activité anti-inflammatoire obtenue en utilisant le taux d'inhibition de l'oedème à Ja carragénine comme indice, lorsque l'échantillon d'essai et l'échantillon comparatif examines dans   t'Exemple   d'essai 2-2 sont administres à des rats, l'axe vertical représentant le taux d'inhibition de 
 EMI37.3 
 l'oedème à Ja carragénine en % et J'axe des abscisses représentant Ja dose du médicament caJcuJée en Dexaméthasone sur une éche.

   JJe J. ogarithmique : Ja courbe dont les points sont représentés   par., Ja   courbe dont Jes points sont représentés par   #   et Ja courbe dont les points sont représentés par o représentent respectivement   @échantillon d'essai, le   phosphate de Dexaméthasone et   @'échantillon   comparatif. 

 <Desc/Clms Page number 38> 

 



   La figure 4 représente la modification de Ja radio-activité totale dans un plasma Jorsque l'échantillon d'essai et   l'échantillon   comparatif examinés dans l'Exemple d'essai 2-8 sont administrés par voie intraveineuse à des rats, J'axe vertical représentant Ja concentration   (ng/mJ)   de Ja Dexaméthasone calculée par Ja radioactivité et J'axe des abscisses représentant Je temps (en heures) écoulé après l'administration: la courbe dont les points sont représentés par et la courbe dont Jes points sont représentés   par # représentent l'échantillon   d'essai et 3'échantillon comparatif respectivement. 



   La figure 5 représente Ja quantité du médicament Jibérée dans le globe oculaire après application des deux échantillons d'essai et des deux échantillons comparatifs examinés dans   ; Exemple   d'essai 2- 10,   J'axe vertica représentant le   concentration   (ng/m. 1,     calculée   en guaiazulène) du médicament dans le globe oculaire et   J'axe   des abscisses représentant Je temps (heures) écoulé après administration dans l'oeil:

   la courbe dont les points sont représentés par   A, Ja   courbe   dont les points   sont représentés par A Ja courbe dont les points sont représentés par N et Ja courbe dont les points sont représentés par o représentent l'échantillon d'essai (1),   3'échantillon   d'essai (2),. l'échantillon comparatif   (1)   et ]'échantillon comparatif   (2),   respectivement. 



   La figure 6 représente Jes évolutions dans Je temps de l'inhibition de la vasoperméabilité lorsque 
 EMI38.1 
 l'échantillon d'essai et J'échantiJ. Jon comparatif examinés 3ans J'ExempJe 2-12 sont administrés par voie intraveineuse i des rats, 3'axe vertical représentant 1'inhibition de Ja asopermeabiJite en % et J'axe des abscisses représentant le temps (heures) écoulé après J'administration de .'échantillon. 



   La courbe dont Jes points sont représentés   ) ar. et Ja cour be   dont les points sont représentés par o 
 EMI38.2 
 représentent respectivement J'échantillon d'essai et d'essai et 

 <Desc/Clms Page number 39> 

 l'échantillon comparatif. 



   La figure 7 représente a courbe dose-réponse 
 EMI39.1 
 dans]'inhibition de Ja vasoperméabilité orsque . 1'echanti]] on d'essai et 3'echanti. on comparatif examines dans J'Exempe d'essai 2-12 sont administres par voie intraveineuse à des rats,   3'axe verticaJ représentant   J'inhibition de Ja vasoperméabilité en % et l'axe des abscisses représentant la dose du médicament calculée en chlorhydrate de diphénhydramine sur une échelle logarithmique. 



   La courbe dont les points sont représentés par   o   et Ja courbe dont les points sont représentés par o représentent respectivement l'échantillon d'essai et   . l.'echantiJJon   comparatif. 



   La présente invention n'est pas limitée aux exemples de réaJisation qui   viennent d'être décrits, eJJe   est au contraire susceptible de modifications et de variantes qui apparaîtront à J'homme de   ]'art.  

Claims (7)

1. REVENDICATIONS 1-Vecteur de medicament sous la forme d'une Emulsion graisseuse ayant un diamètre de particules moyen de 5 A 100 nm et comprenant une substance constitutive du noyau des particules et une couche superficielle, caracatrise en ce qu'il possède simultanément les deux propriétés suivantes :

   la substance constituant le noyau des particules du vecteur de médicament est un lipide simple, un lipide transforme en dérivé, le médicament lui-même ou un mélange de ceux-ci, la proportion de cette substance dans le vecteur de médicament étant de 30 à 65 X ; et la substance constituant la couche superficielle des particules du vecteur de médicament est un lipide complexe, un lipide transformé en dérivé, le médicament lui-même ou un mélange de ceux-ci et la proportion de cette substance dans le vecteur de medicament est de 35 à 70%.
2. 2-Vecteur de médicament selon la revendication 1, caractérisé en ce que le diamètre de particules moyen de EMI40.1 l'emulsion est de 10 à 70 nm.
3. 3-Vecteur de médicament selon la revendication l, dans lequel ledit lipide simple est un lipide neutre de haute pureté obtenu par entraînement à la vapeur ou par distillation sous vide, un ester de stérol ou un mélange de ceux-ci.
4. 4-Vecteur de médicament selon la revendication 1, dans lequel ledit lipide complexe est un phospholipide, un glycolipide ou un mélange de ceux-ci.
5. 5 - Vecteur da médicament selon la revendication 1, dans lequel ledit lipide transformé en derive est un acide gras, un a1 cool supérieur, un hydrocarbure ou un melange d'au moins deux de ceux-ci.
6. 6-Vecteur de médicament selon la revendication 1, dans lequel ce médicament est introduit par dispersion ou dissolution dans le vecteur de médicament, formation d'une micelle mélangée avec un ou plusieurs constituants du vecteur de médicament ou liaison chimique avec un ou plusieurs constituants du vecteur de médicament <Desc/Clms Page number 41> EMI41.1
7. 7-Vecteur de médicament selon la revendication 1, caractérisé en ce que la concentration totale, dans l'emulsion de graisse, des substances constitutives du vecteur' de médicament est au moins égale à 10 mg/ml.