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WO2024090488A1 - 放射性医薬組成物 - Google Patents

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WO2024090488A1
WO2024090488A1 PCT/JP2023/038580 JP2023038580W WO2024090488A1 WO 2024090488 A1 WO2024090488 A1 WO 2024090488A1 JP 2023038580 W JP2023038580 W JP 2023038580W WO 2024090488 A1 WO2024090488 A1 WO 2024090488A1
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WO
WIPO (PCT)
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antibody
pharmaceutical composition
less
mmol
muc5ac
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2023/038580
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English (en)
French (fr)
Inventor
英晃 竹森
侑紀 奥村
文章 竹中
豪太 殿谷
恵理子 河村
昌平 堀内
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Nihon Medi Physics Co Ltd
Sumitomo Pharma Co Ltd
Original Assignee
Nihon Medi Physics Co Ltd
Sumitomo Pharmaceuticals Co Ltd
Sumitomo Pharma Co Ltd
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Publication date
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Priority to EP23882692.9A priority patent/EP4609881A1/en
Priority to KR1020257016669A priority patent/KR20250093372A/ko
Priority to AU2023367497A priority patent/AU2023367497A1/en
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    • C07K2317/20—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin
    • C07K2317/24—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin containing regions, domains or residues from different species, e.g. chimeric, humanized or veneered

Definitions

  • the present invention relates to a liquid radiopharmaceutical composition, in particular a liquid pharmaceutical composition containing as an active ingredient a complex of a radionuclide and an antibody that specifically binds to mucin subtype 5AC.
  • Mucin is the main component of mucus secreted by epithelial cells of animals, and is a glycoprotein with a molecular weight of 1 to 10 million that contains a large amount of sugar.
  • mucin secretory mucin, which is produced by epithelial cells
  • membrane-bound mucin which has a hydrophobic membrane-spanning site and exists bound to the cell membrane.
  • Mucin core proteins are collectively called MUC, and at least 20 types of genes that code for core proteins are known.
  • MUC5AC mucin subtype 5AC
  • MUC5AC is expressed in normal tissues such as the stomach and trachea, but its overexpression in pancreatic cancer has been reported, as well as in thyroid cancer, liver cancer, colon cancer, gastric cancer, urothelial cancer, breast cancer, cervical cancer, ovarian cancer, endometrial cancer, and bile duct cancer.
  • Non-Patent Document 1 mouse antibodies produced using pancreatic cancer mucin fractions purified from xenografts of human pancreatic cancer cell line SW1990 as antigens, chimeric antibodies (Patent Documents 1, 2, Non-Patent Documents 2, 3), and humanized antibodies (Patent Documents 3, 4) produced based on the antibodies.
  • radionuclide-labeled antibodies in which humanized antibodies against MUC5AC are labeled with 225 Ac or 89 Zr have been reported (Patent Document 5).
  • Non-Patent Document 4 discloses a method of producing panitumumab bound to 89Zr and deferoxamine, a type of ligand compound, and storing it in 0.9% physiological saline.
  • Patent Document 6 discloses the use of a surfactant alone or in combination with salts such as NaCl, KCl, NaCl2 , and MgCl2 to suppress the radiolysis of peptides and proteins labeled with radioactive nuclides.
  • salts such as NaCl, KCl, NaCl2 , and MgCl2
  • 5,399,663 discloses that arginine may serve as an initial stabilizing agent in liquid interleukin-2 (IL-2) pharmaceutical formulations to reduce aggregation and deamidation of IL-2 during long-term storage.
  • IL-2 liquid interleukin-2
  • U.S. Patent No. 5,399,663 also discloses that the inclusion of polysorbate 80 in the formulation, while recognized as undesirable solely based on its effect on protein aggregation, is advantageous during processing of liquid formulations containing this protein, having a stabilizing effect against severe protein damage associated with freeze-thawing and mechanical shear.
  • the present inventors have investigated the formulation of an antibody (hereinafter also referred to as "radioactive anti-MUC5AC specific antibody") that specifically binds to mucin subtype 5AC and is labeled with a radioactive nuclide, and have found that the radioactive anti-MUC5AC specific antibody can be stabilized by using a specific amino acid.
  • the present inventors have found a new problem of radioactivity adsorption to a storage container. It is believed that the radioactivity adsorption to a storage container is caused by one or both of the antibody and the radioactive nuclide, which are components of the radioactive anti-MUC5AC specific antibody.
  • the radioactive anti-MUC5AC specific antibody may be adsorbed to the storage container as a monomer, or that the radioactive anti-MUC5AC specific antibody may aggregate with itself, or that the anti-MUC5AC specific antibody, which is a foreign substance mixed in during production, and the radioactive anti-MUC5AC specific antibody, which is an active ingredient, may aggregate and adsorb to the storage container.
  • the foreign anti-MUC5AC-specific antibody may be an aggregate of the anti-MUC5AC-specific antibody, a fragmented anti-MUC5AC-specific antibody, or an isomer with an altered sugar chain structure.
  • a radioactive anti-MUC5AC-specific antibody is contained in a very small amount in the formulation, and therefore, adsorption of radioactivity to the storage container may affect the efficacy of the formulation.
  • adsorption of radioactivity to the storage container may affect the efficacy of the formulation.
  • the problem of radioactivity adsorption to storage containers is not recognized.
  • the present invention relates to a formulation of a pharmaceutical composition containing a radioactive anti-MUC5AC specific antibody as an active ingredient, and aims to provide a liquid pharmaceutical composition with reduced radioactive adsorption to storage containers.
  • the inventors conducted intensive research in light of the above problems and discovered that a liquid pharmaceutical composition prepared using a formula containing L-arginine, L-histidine, and a surfactant in the presence of a specific concentration of anti-MUC5AC specific antibody reduces radioactive adsorption to a storage container, leading to the completion of the present invention.
  • One aspect of the present invention is a liquid pharmaceutical composition
  • a liquid pharmaceutical composition comprising as an active ingredient a complex of a radioactive nuclide and an antibody, wherein the antibody specifically binds to mucin subtype 5AC, the concentration of the antibody in the composition is 0.1 mg/mL or more and 5 mg/mL or less, and the pharmaceutical composition also comprises a stabilizer, a buffer, and a surfactant.
  • the concentration of antibody in the composition in this embodiment refers to the total concentration of antibody conjugated to a radionuclide and antibody not conjugated to a radionuclide.
  • the present invention suppresses radioactivity adsorption to the storage container of a radioactive liquid pharmaceutical composition, making it possible to provide a formulation of stable quality.
  • FIG. 2 is a schematic diagram for explaining the antibody concentration in the liquid pharmaceutical composition of the present invention.
  • 1 shows the results of investigating the effect of adding a surfactant (polysorbate 80) on reducing adsorption of a radioactive anti-MUC5AC specific antibody to a storage container, where the vertical axis indicates the degree of antibody adsorption to the storage container, and the horizontal axis indicates the number of days since the production of the pharmaceutical composition.
  • FIG. 1 shows flow imaging results after the formulation was transported by road under refrigerated storage.
  • the present invention provides a liquid pharmaceutical composition (hereinafter also referred to as the liquid pharmaceutical composition of the present invention) containing a conjugate of a radionuclide and an antibody (hereinafter also referred to as the conjugate of the present invention) as an active ingredient.
  • the antibody contained in the liquid pharmaceutical composition of the present invention and the complex of the present invention is an antibody that specifically binds to mucin subtype 5AC (MUC5AC) (hereinafter, also referred to as the anti-MUC5AC specific antibody of the present invention).
  • MUC5AC mucin subtype 5AC
  • the antibody when the antibody is radiolabeled, it is distinguished from the above by being labeled as "radioactive".
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention is characterized in that it contains, in addition to the complex of the present invention as an active ingredient, L-arginine and L-histidine, and further contains a surfactant.
  • the antibody and the radionuclide may be directly linked.
  • the antibody and the radionuclide may be linked via a linker.
  • the radionuclide may be a radioactive metal nuclide, and this radioactive metal nuclide may form a chelate (complex) with a chelating agent, and the antibody and the chelating agent may be linked via a linker or not.
  • the link may be preferably a covalent link.
  • Radioactive nuclide contained in the complex of the present invention is a radioactive nuclide that emits ⁇ particles, positrons, ⁇ rays, or ⁇ rays.
  • radioactive nuclides that emit ⁇ particles include Bi-212, Bi-213, At-211, Ac-225, and Th-227.
  • radioactive nuclides that emit positrons include F-18, Cu-64, Ga-68, Y-86, and Zr-89.
  • Examples of radioactive nuclides that emit ⁇ rays include Cu-64, Y-90, I-131, or Lu-177.
  • radioactive nuclides that emit ⁇ rays include I-123, Tc-99m, or In-111.
  • the radioactive nuclide contained in the radioconjugate of the present invention, and therefore in the liquid pharmaceutical composition of the present invention is Zr-89, Y-90, Lu-177 or Ac-225.
  • These radionuclides can be produced by a predetermined nuclear reaction, or can be obtained as commercial products from Eckert & Ziegler, Thermo Fisher Scientific, Institute of Isotopes, POLATOM, Oak Ridge National Laboratory, Rosatom, etc.
  • the radionuclides thus produced or obtained can be subjected to a chemical treatment such as chelation to make them in a chemical form suitable for binding to an antibody, and can then be used to form a complex with the antibody.
  • the anti-MUC5AC specific antibody contained in the complex of the present invention is an immunoglobulin that specifically binds to mucin subtype 5AC.
  • the anti-MUC5AC specific antibody used in the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody, but is preferably a monoclonal antibody.
  • the origin of the antibody is not particularly limited, and examples thereof include antibodies of non-human animals, antibodies of non-human mammals, and human antibodies, and preferably, antibodies of humans, rats, mice, and rabbits.
  • the antibody used in the present invention may be a chimeric antibody, a humanized antibody, or a human antibody.
  • the antibody used in the present invention may be, for example, IgG, and may be, for example, IgG1, IgG2 (e.g., IgG2a and IgG2b), IgG3, or IgG4.
  • the antibody is a humanized antibody capable of specifically binding to MUC5AC, has stable physical properties, and has excellent tumor accumulation.
  • the antibody may be used as an antigen-binding fragment thereof, and such an embodiment is also included in the present invention.
  • the antibody contains a specific heavy chain variable region and a light chain variable region described below, and optionally has an appropriate heavy chain constant region and a light chain constant region.
  • the term "antigen-binding fragment” refers to an antibody fragment consisting of a part of the humanized antibody used in the present invention, and has the ability to bind to MUC5AC. As long as it has the ability to bind to MUC5AC, the number of amino acids contained in the polypeptide constituting the antigen-binding fragment is not particularly limited.
  • Heavy chain variable region 1 (H01), heavy chain variable region 2 (H02), heavy chain variable region 3 (H03), and heavy chain variable region 4 (H04) correspond to SEQ ID NOs: 1 to 4, respectively, in the sequence table attached to this specification.
  • the underlined regions are CDR regions.
  • Light chain variable region 1 (L01), light chain variable region 2 (L02), light chain variable region 3 (L03), and light chain variable region 4 (L04) correspond to SEQ ID NOs: 5 to 8, respectively, in the sequence table attached to this specification.
  • the underlined regions are CDR regions.
  • the heavy chain variable region of the MUC5AC-specific antibody preferred in the present invention consists of an amino acid sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 1 to 4, and the light chain variable region consists of an amino acid sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 5 to 8.
  • the MUC5AC-specific antibody used in the present invention consists of a combination of any one of the four heavy chain variable regions (H01 to H04) and any one of the four light chain variable regions (L01 to L04) described above.
  • the preferred anti-MUC5AC specific antibody is a humanized antibody whose heavy chain variable region is H01, H03 or H04 and whose light chain variable region is any one of L01 to L04.
  • the most suitable anti-MUC5AC specific antibody of the present invention is an antibody whose heavy chain variable region is H01 and whose light chain variable region is L03.
  • the heavy chain variable region of the anti-MUC5AC-specific antibody is not limited to that defined by the amino acid sequences shown in SEQ ID NO:1 to SEQ ID NO:4, and also includes mutants that retain their functions.
  • a mutated heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence that has a sequence identity of 90% or more, preferably 95% or more, 96% or more, or 97% or more, more preferably 98% or more, and most preferably 99% or more with the amino acid sequences shown in SEQ ID NO:1 to SEQ ID NO:4 can also be used as the heavy chain variable region of the anti-MUC5AC-specific antibody used in the present invention, as long as it has the ability to bind to MUC5AC when combined with the light chain variable region of the present invention.
  • amino acid sequence identity refers to the identity of amino acid sequences between two target proteins, and is expressed as the percentage (%) of matching amino acid residues in an optimal alignment of amino acid sequences created using a mathematical algorithm known in the art.
  • Amino acid sequence identity can be determined by visual inspection and mathematical calculation, and can be calculated using homology search programs (e.g., BLAST, FASTA) or sequence alignment programs (e.g., ClustalW) well known to those skilled in the art, or genetic information processing software (e.g., GENETYX [registered trademark]).
  • a mutated heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence in which 10 or less, preferably 8 or less, more preferably 5 or less, and most preferably 3 or less (3, 2, or 1) amino acids are deleted, substituted, or added in the amino acid sequences shown in SEQ ID NO:1 to SEQ ID NO:4 can also be used as the heavy chain variable region of the anti-MUC5AC-specific antibody used in the present invention, so long as it has the ability to bind to MUC5AC when combined with the light chain variable region of the present invention.
  • the light chain variable region of the anti-MUC5AC-specific antibody used in the present invention is not limited to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:5 to SEQ ID NO:8, and also includes mutants that retain function.
  • a mutated light chain variable region consisting of an amino acid sequence that has 90% or more, preferably 95% or more, 96% or more, or 97% or more, more preferably 98% or more, and most preferably 99% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:5 to SEQ ID NO:8 can also be used as the light chain variable region of the anti-MUC5AC-specific antibody used in the present invention, as long as it has the ability to bind to MUC5AC when combined with the heavy chain variable region of the present invention.
  • a mutated light chain variable region consisting of an amino acid sequence in which 10 or less, preferably 8 or less, more preferably 5 or less, and most preferably 3 or less (3, 2 or 1) amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:5 to SEQ ID NO:8 can also be used as the light chain variable region of the MUC5AC-specific antibody used in the present invention, so long as it has the ability to bind to MUC5AC when combined with the heavy chain variable region of the present invention.
  • the anti-MUC5AC specific antibody used in the present invention can be produced by a method commonly used in the art or a method equivalent thereto. Specifically, it can be produced by the procedures described in WO 2021/075544 and WO 2021/075545.
  • the chelating agent is not particularly limited as long as it has a site to which a radionuclide is coordinated in its structure.
  • the chelating agent has a chelating moiety, which is the site to which a radionuclide is coordinated, and a substituent that enables the chelating agent to be conjugated to an antibody.
  • Examples of the chelating moiety include CB-TE2A (1,4,8,11-Tetraazabicyclo[6.6.2]hexadecane-4,11-diacetic acid), CDTA (Cyclohexane-trans-1,2-diamine tetra-acetic acid), CDTPA (4-cyano-4-[[(dodecylthio)thioxomethyl]thio]-Pentanoic acid), DOTA (1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid), and DOTMA ((1R,4R,7R,10R)- ⁇ , ⁇ ', ⁇ ”, ⁇ '”-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid).
  • CB-TE2A (1,4,8,11-Tetraazabicyclo[6.6.2]hexadecane-4,11-diacetic
  • DOTAM 1,4,7,10-tetrakis(carbamoylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane
  • DOTA-GA ⁇ -(2-Carboxyethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid
  • DOTA-GA-NHS DOTP (((1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrayl)tetrakis(methylene))tetraphosphonic acid)
  • DOTPA (1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrapropionic acid), 1,4,7,10-tetrakis(pyridin-2-ylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane(L py ), p-SCN-Bn-DOTA (S-2-(4-
  • H6phospa N,N'-(methylenephosphonate)-N,N'-[6-(methoxycarbonyl)pyridin-2-yl]-methyl-1,2-diaminoethane
  • HP-D03A Hydrophiletraazacyclododecanetriacetic acid
  • porphyrin DO3A (1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7-triacetic acid trisodium salt
  • DO3A-NHS (1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid mono-N-hydroxysuccinimide ester
  • the compound has a structure derived from the compound represented by the following formula (A).
  • R 11 , R 13 and R 14 each independently represent a group consisting of -(CH 2 ) p COOH, -(CH 2 ) p C 5 H 4 N, -(CH 2 ) p PO 3 H 2 , -(CH 2 ) p CONH 2 or -(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH; one of R 12 and R 15 is a hydrogen atom, a carboxyl group or a carboxyalkyl group having 2 or 3 carbon atoms, and the other is a substituent for conjugating with the antibody; p is an integer of 0 to 3; when R 12 is a substituent for conjugating with the antibody, R 15 is a hydrogen atom; and when R 12 is not a substituent for conjugating with the antibody, R 15 is a substituent for conjugating with the antibody.)
  • formula (A) Specific examples include structures derived from compounds represented by the following formulas (A-1) to (A-12).
  • the linking site between the chelating moiety and the substituent that enables conjugation with the antibody is preferably an amide bond or a thiourea bond, with an amide bond being more preferred from the viewpoint of stability.
  • An amide bond is formed, for example, by the reaction of the N-hydroxysuccinimide ester (NHS) group of the above formula (A-10) or (A-11) or the 2,6-dioxotetrahydro-2H-pyranyl group of the above formula (A-12) with a primary amine.
  • a thiourea bond is formed by the reaction of the isothiocyanate group of the compounds shown in the above formula (A-2) or (A-3) with a primary amine or a maleimide group.
  • the complex of the present invention is a complex of an antibody and a chelating agent having a chelated radionuclide
  • at least one molecule of the chelating agent may be provided per antibody molecule, but it is preferable to provide 1 to 8 molecules of the chelating agent.
  • the chelating agent may be connected to the antibody via a linker, such as a substituted or unsubstituted alkyl group, a substituted or unsubstituted heteroalkyl group, a polyethylene glycol (PEG) group, a peptide, a sugar chain, a disulfide group, or a combination thereof.
  • a linker such as a substituted or unsubstituted alkyl group, a substituted or unsubstituted heteroalkyl group, a polyethylene glycol (PEG) group, a peptide, a sugar chain, a disulfide group, or a combination thereof.
  • PEG polyethylene glycol
  • the chelating agent modifies the antibody site-specifically, more preferably in the Fc region, via a linker.
  • the linker can be one that contains a peptide consisting of 13 to 17 amino acid residues (hereinafter also referred to as "antibody-modified peptide") represented by the following formula (i) and is formed by a crosslinking reaction between the antibody-modified peptide modified with a crosslinking agent and the antibody.
  • antibody-modified peptide represented by the following formula (i) and is formed by a crosslinking reaction between the antibody-modified peptide modified with a crosslinking agent and the antibody.
  • the left side of the amino acid sequence on the paper indicates the N-terminus side
  • the right side of the amino acid sequence on the paper indicates the C-terminus side.
  • the position at which the chelating agent and the antibody-modified peptide are linked is not particularly limited, but can be linked directly or indirectly to, for example, the N-terminus or C-terminus of the antibody-modified peptide, preferably the N-terminus.
  • the C-terminus of the antibody-modified peptide may be modified, such as by amidation, to improve its stability.
  • Xa, Xb, Xc, and Xd respectively represent a number of consecutive Xs, b number of consecutive Xs, c number of consecutive Xs, and d number of consecutive Xs;
  • X is an amino acid residue having neither a thiol group nor a haloacetyl group in the side chain, a , b, c and d each independently represent an integer of 1 to 5, providing that a+b+c+d ⁇ 14 ; represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in the side chain, or one represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in the side chain, the other represents an amino acid residue derived from an amino acid having a haloacetyl group in the side chain, Xaa1 and
  • Amino acid residues that may be included in X in the above formula (i) include, for example, those derived from amino acids such as glycine, alanine, phenylalanine, proline, asparagine, aspartic acid, glutamic acid, arginine, histidine, serine, threonine, tyrosine, and methionine, and X may be amino acid residues consisting of the same type of amino acid, or may be amino acid residues consisting of different types of amino acids.
  • amino acids such as glycine, alanine, phenylalanine, proline, asparagine, aspartic acid, glutamic acid, arginine, histidine, serine, threonine, tyrosine, and methionine
  • X may be amino acid residues consisting of the same type of amino acid, or may be amino acid residues consisting of different types of amino acids.
  • a, b, c, and d are not particularly limited as long as they are within the above-mentioned ranges, but from the viewpoint of the binding stability between the peptide and the antibody, a is preferably an integer between 1 and 3, b is preferably an integer between 1 and 3, c is preferably an integer between 3 and 5, and d is preferably an integer between 1 and 3, provided that a+b+c+d ⁇ 14.
  • Xaa1 and Xaa3 are amino acid residues derived from amino acids having a thiol group in the side chain, and the amino acids may be the same or different.
  • amino acids having a thiol group in the side chain include cysteine and homocysteine.
  • Such amino acid residues are preferably bonded by a disulfide bond, or the sulfide group is bonded via a linker shown in the following formula (4).
  • the wavy line portion indicates the bond portion with the sulfide group.
  • Xaa1 and Xaa3 may be an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in a side chain, and the other may be an amino acid residue derived from an amino acid having a haloacetyl group in a side chain. These are bonded via a thioether bond.
  • the haloacetyl group has its end substituted with a halogen such as iodine, and the halogen is eliminated by reaction with the thiol group in the other side chain to form a thioether bond.
  • Specific amino acid sequences of the antibody-modified peptide represented by formula (i) include, for example, the peptides described in WO 2016/186206, WO 2017/217347, and WO 2018/230257, and these can also be used.
  • the antibody-modified peptide preferably has any one of the following sequences (1) to (14) as its amino acid sequence, and more preferably has the following sequence (1), (2), (13) or (14).
  • (Xaa 2 ) represents a lysine residue, a cysteine residue, an aspartic acid residue, a glutamic acid residue, 2-aminosuberic acid, or a diaminopropionic acid residue
  • (Xaa 1 ) and (Xaa 3 ) both represent homocysteine residues.
  • amino acids other than (Xaa 1 ), (Xaa 2 ), and (Xaa 3 ) are represented by single-letter abbreviations.
  • the anti-MUC5AC specific antibodies of the present invention may be maintained in a buffer.
  • the conjugate of the present invention can be prepared, for example, by introducing radioactive iodine ( 123I , 131I ) as a radioactive nuclide into the tyrosine residue of the anti-MUC5AC specific antibody.Also, the conjugate can be prepared by introducing a substituent to which a radioactive halogen nuclide can stably bind into the anti-MUC5AC specific antibody of the present invention, and reacting the resulting antibody with a radioactive halogen ion.
  • the method for producing the conjugate of the present invention can include two steps: a conjugation step of conjugating the chelating agent with the antibody, and a complex formation step of forming a complex between the radionuclide and the chelating agent (a step for producing a chelating agent having a chelated radionuclide).
  • the conjugation step may be performed before or after the complex formation step.
  • the radionuclide is chelated (complexed) with the chelating agent.
  • the radionuclide used here is preferably used in an ionizable form, more preferably in an ionic form, from the viewpoint of increasing the efficiency of complex formation.
  • the order of adding the radionuclide to the chelating agent does not matter as long as the complex can be formed with the radionuclide.
  • a solution in which radionuclide ions are dissolved in a solvent mainly composed of water can be used as the radionuclide.
  • the resulting complex may be purified using a filtration filter, a membrane filter, a column filled with various packing materials, chromatography, or the like.
  • the conjugation step is preferably carried out after the complex formation step.
  • a complex is formed between a radioactive nuclide and a chelating agent having a first atomic group capable of click reaction as a substituent for enabling conjugation with an antibody.
  • step (B) a click reaction is carried out between the peptide-modified antibody, the Fc region of which has been site-specifically modified, and the chelating agent complexed in step (A) using the antibody-modified peptide shown in (i) above and an antibody-modified linker having a second atomic group capable of click reaction, to obtain the chelate complex of the present invention.
  • Steps (A) and (B) will be described in detail below.
  • the first atomic group and the second atomic group capable of a click reaction an appropriate one is selected according to the type of click reaction, and examples thereof include a combination of an alkyne and an azide, and a combination of 1,2,4,5-tetrazine and an alkene.
  • These atomic groups may be such that the first atomic group has one of the above combinations of atomic groups, and the second atomic group has one of the above combinations of atomic groups that is different from the first atomic group.
  • the chelating linker is an alkyne and the antibody-modifying linker is an azide, or that the chelating linker is 1,2,4,5-tetrazine and the antibody-modifying linker is an alkene.
  • click reactions using such combinations of atomic groups include the Huisgen cycloaddition reaction and the inverse electron demand Diels-Alder reaction.
  • combinations of atomic groups capable of a click reaction include, as shown in the formula below, a combination of an atomic group containing dibenzylcyclooctyne (DBCO) as the alkyne of the first atomic group (formula (1a)) and an atomic group containing an azide group as the azide of the second atomic group (formula (2a)), or a combination of an atomic group containing 1,2,4,5-tetrazine as the first atomic group (formula (1b)) and an atomic group containing trans-cyclooctene (TCO) as the alkene of the second atomic group (formula (2b)).
  • DBCO dibenzylcyclooctyne
  • TCO trans-cyclooctene
  • R1 represents a linking site with a chelating agent
  • R2 represents a linking site with an antibody-modifying peptide in an antibody.
  • one of R3 and R4 represents a linking site to either a chelating agent or an antibody-modifying peptide in the antibody, the other represents a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group, or a pyridyl group, and R5 represents a linking site to either a chelating agent or an antibody-modifying peptide in the antibody depending on R3 or R4 .
  • DBCO dibenzylcyclooctyne
  • various DBCO reagents available commercially can be used. Specifically, for example, DBCO-C6-Acid, Dibenzylcyclooctyne-Amine, Dibenzylcyclooctyne Maleimide, DBCO-PEG acid, DBCO-PEG-NHS ester, DBCO-PEG-Alcohol, DBCO-PEG-amine, DBCO-PEG-NH-Boc, Carboxyrhodamine-PEG-DBCO, Sulforhodamine-PEG-DBCO, TAMRA-PEG-DBCO, DBCO-PEG-Biotin, DBCO-PEG-DBCO, DBCO-PEG-Maleimide, TCO-PEG-DBCO, DBCO-mPEG, etc.
  • a chelating agent having a structure represented by the following formula (ii): A-B-C...
  • A is a chelating moiety represented by the following formula (iia):
  • Ra, Rb and Rc are independently a group consisting of -(CH 2 ) p COOH, -(CH 2 ) p C 5 H 4 N, -(CH 2 ) p PO 3 H 2 , -(CH 2 ) p CONH 2 or -(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, p is an integer of 0 to 3, either Rd or Re is a bonding site with B (* in formula (iib) below), and the other is a hydrogen atom, or -(CH 2 ) p COOH, -(CH 2 ) p C 5 H 4 N, -(CH 2 ) p PO 3 H 2 , -(CH 2 ) p CONH 2 or -(CHCOOH)(CH 2 ) p It is a group consisting of COOH, and p is an integer of 0 or more and 3 or less.
  • B is represented by the following formula (iib).
  • La and Lb are independently a bonding linker having 1 to 50 carbon atoms containing at least an amide bond or a thiourea bond, t is an integer of 0 to 30, s is 0 or 1, * is a bonding site with A, and ** is a bonding site with C.
  • C is either an alkyne derivative represented by the following formula (iic) or a tetrazine derivative represented by the following formula (iid).
  • X is CHRk-** or N-**
  • Rk is independently a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 5 carbon atoms
  • the Rk moieties may be combined to form a cycloalkyl group
  • Rf, Rg, Rh and Ri are independently a hydrogen atom, a halogen atom or an alkyl group having 1 to 5 carbon atoms
  • Rf and Rg may be combined together or Rh and Ri may be combined to form a hydrocarbon ring
  • ** indicates a bonding site with B
  • ** indicates a bonding site with B
  • Rj indicates a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group or a pyridyl group.
  • A is the DOTA derivative
  • B is a linker having 1 to 50 carbon atoms and including a thiourea bond
  • La is 0 or 1
  • t is an integer of 0 to 30
  • Lb is a linker having 1 to 50 carbon atoms and including an amide bond or a thiourea bond
  • C is an alkyne derivative represented by formula (iic), in which X is N-**, Y is CHRk, Rk is a hydrogen atom, and Rf and Rg together form a benzene ring.
  • DOTA-PEGt-DBCO derivatives in which Rh and Ri together form a benzene ring, and ** is the bonding site with B; or B is even more preferably a DOTA-PEGt-Tz derivative, in which La is a bonding linker having 1 to 50 carbon atoms and including a thiourea bond, s is 0 or 1, and when s is 1, t is an integer of 0 to 30, Lb is a bonding linker having 1 to 50 carbon atoms and including an amide bond or a thiourea bond, and C is a tetrazine derivative represented by formula (iid).
  • B is even more preferably a DO3A-PEGt-DBCO derivative in which La is a bond linker having 1 to 50 carbon atoms and including an amide bond or a thiourea bond, s is 0 or 1, and when s is 1, t is an integer between 0 and 30, and Lb is a bond linker having 1 to 50 carbon atoms and including an amide bond, and C is an alkyne derivative represented by formula (iic), in which X is N-**, Y is CHRk, Rk is a hydrogen atom, Rf and Rg are taken together to form a benzene ring, Rh and Ri are taken together to form a benzene ring, and ** is a bond site with B.
  • B is even more preferably a DOTA-GA-PEGt-DBCO derivative in which La is a bond linker having 1 to 50 carbon atoms and containing an amide bond or a thiourea bond, s is 0 or 1, and when s is 1, t is an integer of 0 to 30, Lb is a bond linker having 1 to 50 carbon atoms and containing an amide bond or a thiourea bond, and C is an alkyne derivative represented by formula (iic), in which X is N-**, Y is CHRk, Rk is a hydrogen atom, Rf and Rg are taken together to form a benzene ring, Rh and Ri are taken together to form a benzene ring, and ** is a bond site with B.
  • the molar ratio of the chelating agent to the radionuclide is preferably 10/1 or more at the lower limit, more preferably 100/1 or more, and even more preferably 500/1 or more at the upper limit, preferably 10,000/1 or less, more preferably 8,000/1 or less, and even more preferably 7,000/1 or less, for example, in the range of 100/1 or more and 7,000/1 or less, and more preferably 500/1 or more and 7,000/1 or less.
  • the complex formation reaction is preferably carried out in a solvent.
  • the solvent that can be used include water, saline, or buffer solutions such as sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate-buffered saline, trishydroxymethylaminomethane buffer (Tris buffer), 4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid buffer (HEPES buffer), and tetramethylammonium acetate buffer.
  • the amount of the solvent is not particularly limited, but from the viewpoint of practicality in the manufacturing process, at the start of step (A), the lower limit is 0.01 mL or more, preferably 0.1 mL or more, more preferably 1.0 mL or more, even more preferably 10 mL or more, and even more preferably 100 mL or more, and the upper limit is preferably 1000 mL or less, more preferably 100 mL or less, even more preferably 10 mL or less, and even more preferably 1.0 mL or less, for example, in the range of 0.01 mL or more and 100 mL or less.
  • the concentration of the chelating agent in the reaction solution of the complex formation reaction is, independently from the viewpoint of the yield of the desired chelating agent, at the start of step (A), preferably at a lower limit of 0.001 ⁇ mol/L or more, more preferably at a lower limit of 0.01 ⁇ mol/L or more, even more preferably at a higher limit of 0.1 ⁇ mol/L or more, and even more preferably at a higher limit of 1 ⁇ mol/L, and preferably at an upper limit of 1000 ⁇ mol/L or less, more preferably at a lower limit of 100 ⁇ mol/L or less, and even more preferably at a lower limit of 10 ⁇ mol/L, for example, in the range of 1 ⁇ mol/L or more and 100 ⁇ mol/L or less.
  • the temperature of the complex formation reaction may be, for example, room temperature (25°C) or under heated conditions, but from the viewpoint of simultaneously suppressing the decomposition of the chelating agent and improving the efficiency of complex formation, the lower limit is preferably 20°C or higher, more preferably 30°C or higher, even more preferably 35°C or higher, even more preferably 37°C or higher, and particularly preferably 45°C or higher, and the upper limit is preferably 150°C or lower, more preferably 120°C or lower, even more preferably 100°C or lower, and even more preferably 90°C or lower, for example, a range of 30°C or higher and 100°C or lower is preferred, and a range of 35°C or higher and 90°C or lower is more preferred.
  • the lower limit of the reaction time is preferably 5 minutes or more, more preferably 10 minutes or more, even more preferably 20 minutes or more, even more preferably 30 minutes or more, and particularly preferably 45 minutes or more
  • the upper limit is preferably 180 minutes or less, more preferably 150 minutes or less, even more preferably 120 minutes or less, even more preferably 90 minutes or less, and particularly preferably 60 minutes or less, for example, a range of 10 minutes or more to 150 minutes or less is preferred, and a range of 10 minutes or more to 60 minutes or less is more preferred.
  • the antibody used in step (B) is a peptide-modified antibody in which the Fc region (constant region) of the humanized antibody described in detail in the above section "(1-2) Antibody” has been site-specifically modified using the antibody-modified peptide shown in (i) above and an antibody-modified linker having a click-reactive second atomic group.
  • Antibody-modified peptides can be produced by combining amino acids, both natural and unnatural, and subjecting them to peptide synthesis methods such as liquid phase synthesis, solid phase synthesis, automated peptide synthesis, recombinant gene synthesis, and phage display.
  • peptide synthesis methods such as liquid phase synthesis, solid phase synthesis, automated peptide synthesis, recombinant gene synthesis, and phage display.
  • the functional groups of the amino acids used may be protected as necessary. These can be carried out, for example, in accordance with the methods described in WO 2017/217347 and WO 2018/230257.
  • the antibody-modified linker may be an antibody-modified peptide bound to a linker represented by the following formula (S1). *-(( L1 ) m -Z) k - L2 - AG2 ...(S1) (In the formula, * indicates a binding site to the N-terminus or C-terminus of the peptide, L1 is a polyethylene glycol (PEG) linker moiety; m is an integer of 1 to 50, Z is a second linker moiety connecting (L 1 ) m and L 2 ; k is 0 or 1; L2 is a second PEG linker moiety; AG 2 is the second atomic group.
  • S1 is a polyethylene glycol (PEG) linker moiety
  • m is an integer of 1 to 50
  • Z is a second linker moiety connecting (L 1 ) m and L 2
  • k is 0 or 1
  • L2 is a second PEG linker moiety
  • AG 2 is the second atomic group.
  • the structure of Z is not particularly limited as long as it is a linker structure that bonds (L 1 ) m and L 2 to each other, and may include, for example, an amino acid sequence consisting of 1 to 5 amino acid residues.
  • the amino acid sequence included in Z preferably includes a cysteine residue, and more preferably is bonded to L 2 via a thioether group formed by bonding a thiol group of the cysteine residue with a maleimide group.
  • the PEG linker portion constituting L2 preferably has a structure represented by the following formula (P2):
  • n is an integer, preferably 1 to 50, more preferably 1 to 20, even more preferably 2 to 10, and still more preferably 2 to 6.
  • One end of the PEG linker structure may be modified with a structure derived from a commercially available PEGylation reagent or a structure derived from a reagent commonly used for PEGylation, and examples include, but are not limited to, structures derived from diglycolic acid or its derivatives, and maleimide or its derivatives.
  • the second atomic group can be introduced into the antibody-modified linker by, for example, obtaining an antibody-modified peptide having the desired amino acid sequence by the above-mentioned method, dissolving the peptide in a solution containing a solubilizing agent, a reducing agent, and, if necessary, an acid, adding an organic solvent solution of an atomic group containing an azide group or trans-cyclooctene (TCO) as the second atomic group to the solution, and stirring at room temperature.
  • TCO trans-cyclooctene
  • the azide group When introducing an atomic group containing an azide group as the second atomic group, the azide group can be introduced directly to the N-terminus or C-terminus of the peptide in the usual manner using a commercially available azide group introduction reagent, or the atomic group containing an azide group can be introduced via the linker structure described above.
  • azide group introduction reagents that can be used include silyl azide, phosphoric acid azide, alkyl ammonium azide, inorganic azide, sulfonyl azide, and PEG azide.
  • TCO when introducing an atomic group containing TCO as the second atomic group, TCO can be introduced directly to the N-terminus or C-terminus of the peptide using a commercially available click chemistry reagent containing TCO according to standard methods, or the atomic group containing TCO can be introduced via the linker structure described above.
  • the method of obtaining a peptide-modified antibody by binding an antibody-modified peptide to an antibody can be carried out, for example, by using a crosslinking agent.
  • the crosslinking agent is a chemical substance for covalently linking an antibody-modified peptide to an antibody, and examples thereof include crosslinking agents containing preferably two or more succinimidyl groups, such as disuccinimidyl glutarate (DSG) and disuccinimidyl suberate (DSS), crosslinking agents consisting of a compound or a salt thereof containing preferably two or more imido acid moieties, such as dimethyl adipimidate, and compounds having disulfide bonds, such as dimethyl 3,3'-dithiobispropionimidate and dithiobissuccinimidyl propionic acid, or a salt thereof.
  • DSG disuccinimidyl glutarate
  • DSS disuccinimidyl suberate
  • crosslinking agents consisting of a
  • a crosslinking reaction can be caused between the amino acid residue Xaa 2 in the antibody-modified peptide and the antibody.
  • the crosslinking reaction in the antibody occurs site-specifically between the amino acid residue Xaa 2 and the Lys246 or Lys248 residue according to the Eu numbering in the humanized antibody of the present invention. These Lys residues are present in the Fc region in the humanized antibodies of the present invention.
  • the antibody-modified peptide can be bound to the antibody by, for example, dispersing the above-mentioned antibody-modified peptide, the antibody, the crosslinker, and, if necessary, the catalyst in an appropriate buffer solution at a temperature of 10°C to 30°C.
  • the reaction time can be about 10 minutes to 2 hours.
  • the molar ratio of the peptide to the antibody during the reaction, as antibody/peptide is preferably 1/5 or more, more preferably 1/3 or more, and even more preferably 1/1.5 or more, and preferably 20/1 or less, more preferably 10/1 or less, even more preferably 5/1 or less, even more preferably 1/1 or less, and especially preferably 1/1.7 or less, and is preferably in the range of, for example, 1/5 to 20/1, and more preferably 1/1.5 to 1/1.7.
  • the peptide-modified antibody obtained through the above steps is a mixture containing an arbitrary ratio of an antibody in which one antibody molecule is bound to one antibody-modified peptide molecule (hereinafter referred to as a "monovalent antibody”) and an antibody in which two antibody-modified peptide molecules are bound to one antibody molecule (hereinafter referred to as a "bivalent antibody”), and this may be subjected to the subsequent steps as is, or the unmodified antibody, the monovalent antibody, and the bivalent antibody may be separated and purified using a filtration filter, a membrane filter, a column filled with various packing materials, various types of chromatography, or other methods, and then only the antibody of one of the valencies may be subjected to the subsequent steps.
  • the mixture containing them may be subjected to the subsequent steps.
  • any of the purification methods described above may be used.
  • Packing materials suitable for the separation and purification of proteins such as antibodies are not particularly limited as long as they are immobilized on a carrier made of a water-insoluble base material and an immunoglobulin-binding protein that specifically binds to the antibody is immobilized on the carrier.
  • immunoglobulin-binding proteins include protein A, protein G, and protein L. These immunoglobulin-binding proteins may be recombinant proteins that have been genetically engineered, and examples of recombinant immunoglobulin-binding proteins include genetically modified protein A, genetically modified protein G, and fusion proteins of a protein A domain and a protein G domain.
  • protein A is more preferable as a packing material suitable for the separation and purification of at least monovalent antibodies and bivalent antibodies, and genetically modified protein A is even more preferable.
  • protein A and protein G are protein molecules that can specifically bind to IgG, which is an antibody molecule, and are classified as protein A (Staphylococcus aureus) or protein G (Streptococcus) depending on the origin of the microorganisms isolated.
  • Genetically modified protein A is protein A in which at least one amino acid mutation has been introduced into an amino acid residue in any of the IgG binding domains (E, D, A, B, and C domains) of protein A.
  • genetically modified protein A in which a domain in which at least one amino acid mutation has been introduced is multimerized is preferred, more preferably a multimer of the A, B, or C domain of protein A in which at least one amino acid mutation has been introduced, and even more preferably a multimer of a dimer to a pentamer.
  • the amino acid mutation may be derived from any mutation, such as substitution, deletion, or insertion, of the amino acid sequence or the base sequence encoding the amino acid during the transcription and translation process of the gene.
  • Examples of genetically modified protein A include, but are not limited to, those described in WO 2003/080655 and WO 2011/118699.
  • Water-insoluble substrates onto which immunoglobulin-binding proteins can be immobilized include inorganic carriers such as glass beads and silica gel, synthetic polymers such as cross-linked polyvinyl alcohol, cross-linked polyacrylate, cross-linked polyacrylamide, and cross-linked polystyrene, and organic carriers made of polysaccharides such as crystalline cellulose, cross-linked cellulose, cross-linked agarose, and cross-linked dextran, as well as composite carriers such as organic-organic and organic-inorganic obtained by combining these.
  • inorganic carriers such as glass beads and silica gel
  • synthetic polymers such as cross-linked polyvinyl alcohol, cross-linked polyacrylate, cross-linked polyacrylamide, and cross-linked polystyrene
  • organic carriers made of polysaccharides such as crystalline cellulose, cross-linked cellulose, cross-linked agarose, and cross-linked dextran, as well as composite carriers such as organic-organic and organic-inorganic obtained by combining these.
  • the following describes an example of separating and purifying a peptide-modified antibody to be used in the click reaction in step (B).
  • the peptide-modified antibody is subjected to a click reaction in step (B) through an antibody modification step of site-specifically modifying the Fc region of an antibody with a linker (antibody-modifying linker) comprising an antibody-modifying peptide to obtain the modified antibody, and an antibody purification step of purifying the modified antibody using a carrier on which the above-mentioned immunoglobulin-binding protein is immobilized.
  • the antibody purification step further includes a retention step of retaining the modified antibody retained on the carrier on the carrier, a washing step of washing the modified antibody not retained on the carrier, and an elution step of eluting the modified antibody retained on the carrier in the retention step.
  • modified antibodies are obtained as a mixture containing unmodified antibodies not modified with the antibody-modifying linker, monovalent antibodies, and divalent antibodies
  • a first antibody composition relatively rich in unmodified antibodies and monovalent antibodies and a second antibody composition relatively rich in divalent antibodies are eluted by utilizing the differences in the interactions of the unmodified antibodies, monovalent antibodies, and divalent antibodies with immunoglobulin-binding proteins.
  • a second antibody composition relatively rich in peptide-modified antibodies (divalent antibodies) that have a low level of interaction with immunoglobulin-binding proteins is eluted
  • a first antibody composition relatively rich in peptide-modified antibodies (unmodified antibodies and monovalent antibodies) that have a high level of interaction with immunoglobulin-binding proteins is eluted.
  • containing a relatively large amount of unmodified antibodies and monovalent antibodies means that the total amount of unmodified antibodies and monovalent antibodies contained in the first antibody composition is greater than the divalent antibodies contained in the antibody composition, and preferably means that the total amount of unmodified antibodies and monovalent antibodies is 55% or more, 63% or more, 70% or more, 80% or more, or 90% or more relative to the total amount (100%) of unmodified antibodies and modified antibodies contained in the antibody composition; and "containing a relatively large amount of divalent antibodies” means that the amount of divalent antibodies contained in the second antibody composition is greater than the monovalent antibodies contained in the antibody composition, and preferably means that the amount of divalent antibodies is 55% or more, 63% or more, 70% or more, 80% or more, or 90% or more relative to the total amount (100%) of unmodified antibodies and modified antibodies contained in the antibody composition.
  • a solution containing a mixture of unmodified antibodies, monovalent antibodies, and divalent antibodies obtained in the antibody modification step is added to the column, and the unmodified antibodies and monovalent antibodies retained on the carrier are retained on the column, while the divalent antibodies not retained on the carrier are allowed to pass through.
  • the solution passed through in the retention step constitutes a part of the second antibody composition.
  • the dilution solvent is not particularly limited as long as it dissolves the peptide-modified antibodies and is unlikely to aggregate or denature in the solvent, and water, saline, or buffers such as sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline, 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol (Tris) buffer, 2-[4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazinyl]-ethanesulfonic acid (HEPES) buffer, etc. can be used, and it is preferable to use any of the buffers described above, and it is more preferable to use sodium acetate buffer.
  • buffers such as sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline, 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol (Tris) buffer, 2-[4-(2-hydroxyethyl)-1-
  • the concentration of the buffer is 10 mmol/L or more, preferably 15 mmol/L or more, more preferably 20 mmol/L or more, and 1000 mmol/L or less, preferably 500 mmol/L or less, more preferably 100 mmol/L or less.
  • the elution solvent may contain an additive such as sodium chloride or potassium chloride. The concentration of the additive contained in the elution solvent is not particularly limited, but for example, 0.15 mol/L can be used.
  • the modified antibody remaining in the column is eluted from the column using a washing solvent. Since the solution passed through the column in the above-mentioned retention step and the solution eluted from the column in the washing step contain relatively large amounts of bivalent antibodies, they can be used together as the second antibody composition.
  • the washing solvent is not particularly limited as long as it is a buffer solution in which the peptide-modified antibody dissolves, is unlikely to aggregate or denature in the solvent, and has an appropriate pH buffering ability, and can be, for example, a sodium acetate buffer solution, an ammonium acetate buffer solution, a phosphate buffered saline solution, a 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol (Tris) buffer solution, a 2-[4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazinyl]-ethanesulfonic acid (HEPES) buffer solution, or the like.
  • a sodium acetate buffer solution an ammonium acetate buffer solution
  • a phosphate buffered saline solution a 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol (Tris) buffer solution
  • Tris 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol
  • the concentration of the buffer used in the washing solvent is, as a lower limit, 20 mmol/L or more, preferably 30 mmol/L or more, and, as an upper limit, 200 mmol/L or less, preferably 70 mmol/L or less.
  • the pH of the washing solvent is, as a lower limit, 4.0 or more, preferably 4.5 or more, more preferably 4.8 or more, and, as an upper limit, 7.4 or less, preferably 6.0 or less, more preferably 5.2 or less.
  • the elution solvent may contain an additive such as sodium chloride, potassium chloride, etc.
  • concentration of the additive contained in the elution solvent is not particularly limited, but for example, 0.15 mol/L can be used.
  • the modified antibodies retained on the carrier are eluted from the column using an elution solvent, i.e., the first antibody composition containing relatively large amounts of unmodified antibodies and monovalent antibodies is eluted from the column using an elution solvent.
  • an elution solvent a buffer solution such as a sodium acetate buffer, an ammonium acetate buffer, a citrate buffer, etc. can be used.
  • the elution solvent may contain an additive such as sodium chloride or potassium chloride.
  • the concentration of the additive contained in the elution solvent is not particularly limited, but for example, 0.15 mol/L can be used.
  • the concentration of the buffer is, as a lower limit, 20 mmol/L or more, preferably 30 mmol/L or more, and as an upper limit, 200 mmol/L or less, preferably 70 mmol/L or less.
  • the pH of the elution solvent is preferably, as a lower limit, pH 3.0 or more, and as an upper limit, pH 4.2 or less, from the viewpoint of weakening the interaction between the unmodified antibody and the monovalent antibody and the immunoglobulin-binding protein and preventing denaturation and aggregation of the antibody.
  • the first antibody composition or the second antibody composition obtained in the antibody purification step may be used as is in the click reaction in the subsequent step (B), or the protein concentration of the peptide-modified antibody contained therein may be adjusted before being used in the click reaction in step (B).
  • the click reaction in step (B) is carried out between a first atomic group capable of click reaction possessed by the chelating agent and a second atomic group capable of click reaction possessed by the peptide-modified antibody.
  • This click reaction forms a linking group (a substituent that enables conjugation with the antibody) that links the chelating agent to the antibody.
  • the order of addition does not matter.
  • one of the complex and the peptide-modified antibody may be added to a reaction vessel containing a solvent, and then the other may be added to cause the reaction; or one of the chelating agent and the antibody may be dispersed in a solvent, and the other may be added to the dispersion and caused to react.
  • they may be added simultaneously to a reaction vessel containing a solvent and caused to react.
  • the solvent used in the click reaction in step (B) may be a solvent containing water, such as water, saline, or a buffer solution such as sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate-buffered saline, Tris buffer, HEPES buffer, or tetramethylammonium acetate buffer.
  • a buffer solution such as sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate-buffered saline, Tris buffer, HEPES buffer, or tetramethylammonium acetate buffer.
  • the pH at 25°C is preferably 4.0 to 10.0, more preferably 5.5 to 8.5, from the viewpoint of achieving both the stability of the complex and the antibody and the binding efficiency thereof.
  • the amount of reaction liquid is not particularly limited, but from the viewpoint of practicality in the manufacturing process, at the start of step (B), the lower limit is preferably 0.001 mL or more, more preferably 0.01 mL or more, even more preferably 0.1 mL or more, and even more preferably 1 mL or more, and the upper limit is preferably 1000 mL or less, more preferably 100 mL or less, even more preferably 10 mL or less, and even more preferably 1 mL or less, for example, a range of 0.001 mL or more to 1000 mL or less is preferred, and a range of 0.1 mL or more to 10 mL or less is more preferred.
  • the concentrations of the chelating agent and the antibody in the reaction solution at the start of step (B) are each independently preferably 0.001 ⁇ mol/L or more as a lower limit, more preferably 0.01 ⁇ mol/L or more, even more preferably 0.1 ⁇ mol/L or more, and even more preferably 1.0 ⁇ mol/L or more, and preferably 1000 ⁇ mol/L or less as an upper limit, and more preferably 100 ⁇ mol/L or less, for example, a range of 0.1 ⁇ mol/L or more to 1000 ⁇ mol/L or less is preferred, and a range of 1 ⁇ mol/L or more to 100 ⁇ mol/L or less is more preferred from the viewpoint of the yield of the desired chelate complex.
  • the upper limit of the reaction temperature for the click reaction in step (B) is preferably 50°C or lower, more preferably 40°C or lower.
  • the lower limit of the reaction temperature is not particularly limited as long as the reaction proceeds at that temperature, but is preferably 15°C or higher.
  • the reaction time for the click reaction is preferably 5 minutes or more, more preferably 10 minutes or more, and is preferably 24 hours or less, more preferably 20 hours or less, provided that the reaction temperature is as described above. For example, a range of 5 minutes to 24 hours is preferred, and more preferably a range of 10 minutes to 20 hours is preferred.
  • the resulting chelate complex may be used as is, or may be purified using a filtration filter, a membrane filter, a column filled with various packing materials, chromatography, etc.
  • the chelate complex produced by steps (A) and (B) is a complex in which a specific site (e.g., a lysine residue in the Fc region of the antibody) of a humanized antibody that specifically binds to MUC5AC is specifically modified with a chelating agent.
  • This chelate complex has one or two molecules of the chelating agent per molecule of the antibody.
  • the chelating agent site-specifically modifies the Fc region of the antibody of the present invention via a linker.
  • the linker is composed of a chelating linker connected to the chelating agent, a first atomic group connected to the linker, a second atomic group capable of click-reacting with the first atomic group, and an antibody-modified linker (including the antibody-modified peptide represented by the above formula (i)) connected to the second atomic group. Therefore, the linker has a chemical structure derived from the first atomic group and the second atomic group.
  • Such a chemical structure may be a triazole skeleton-containing structure represented by the following formula (10a) or (10b) or a pyridazine skeleton-containing structure represented by the following formula (10c).
  • Formula (10a) and formula (10b) are isomers and may be included in any ratio.
  • R 1A represents a bonding site with a chelating linker
  • R 2A represents a bonding site with an antibody-modifying linker
  • one of R 3A and R 4A represents a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group or a pyridyl group, the other represents a bonding site with a chelating linker
  • R 5A represents a bonding site with an antibody-modifying linker.
  • liquid pharmaceutical composition of the present invention refers to a liquid pharmaceutical composition that contains the conjugate of the present invention, i.e., a conjugate of a radioactive nuclide and an anti-MUC5AC specific antibody, and is in a form suitable for administration to a subject's living body.
  • liquid refers to a liquid or fluid state under normal conditions (e.g., in the atmosphere, at room temperature/normal temperature), and also includes a state having some viscosity. Specific examples include, but are not limited to, a solution, a suspension, a dispersion, an emulsion, and the like.
  • the liquid pharmaceutical composition can be produced, for example, by dissolving the conjugate of the present invention produced by the above-mentioned method in a solvent that is mainly composed of water and is approximately isotonic with the living body.
  • a solvent that is mainly composed of water and is approximately isotonic with the living body.
  • other pharma- ceutical acceptable components may be contained as necessary.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the liquid pharmaceutical composition of the present invention is a concentration capable of exerting the desired effect, and is 0.1 mg/mL or more, preferably 0.3 mg/mL or more, more preferably 0.4 mg/mL or more, even more preferably 0.5 mg/mL or more, and 5 mg/mL or less, preferably 3 mg/mL or less, more preferably 2 mg/mL or less, even more preferably 1.5 mg/mL or less.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody is 0.1 mg/mL or more and 5 mg/mL or less, preferably 0.3 mg/mL or more and 3 mg/mL or less, more preferably 0.4 mg/mL or more and 2 mg/mL or less, even more preferably 0.5 mg/mL or more and 1.5 mg/mL or less.
  • the complex of the present invention is a complex of a chelating agent to which a radioactive nuclide is chelated and an antibody
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody described above is the total concentration of the antibody complexed with the chelating agent and the antibody not complexed with the chelating agent.
  • A is a schematic diagram of a chelating linker
  • B is a schematic diagram of a radioactive nuclide
  • C is a schematic diagram of a radiolabeled chelator (intermediate) in which a radioactive nuclide is complexed with the chelating linker of A
  • D is a schematic diagram of an antibody-modified peptide
  • E is a schematic diagram of an unmodified anti-MUC5AC-specific antibody (zero-valent antibody)
  • F is a schematic diagram of an anti-MUC5AC-specific antibody (monovalent antibody) modified with one molecule of an antibody-modified peptide
  • G is a schematic diagram of an anti-MUC5AC-specific antibody (unlabeled monovalent antibody) in which an unlabeled chelating linker and an antibody-modified peptide are bound by a click reaction
  • H is a schematic diagram of an anti-MUC
  • the concentration of the anti-MUC5AC-specific antibody in the liquid pharmaceutical composition of the present invention is the total concentration of the zero-valent antibody (unmodified antibody), the monovalent antibody, the unlabeled monovalent antibody, and the anti-MUC5AC-specific antibody contained in the structure represented by H, which is the active ingredient.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the liquid pharmaceutical composition of the present invention was measured as a protein concentration immediately after production or after storage at 25 ⁇ 2° C. using a variable pathlength ultraviolet-visible spectrophotometer with a measurement wavelength of 280 nm set as the measurement conditions.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention is characterized by containing a stabilizer and a buffer.
  • stabilizers include amino acids, sugars, sugar alcohols, and inorganic salts.
  • amino acids as stabilizers include L-arginine or glycine.
  • sugars as stabilizers include sucrose or trehalose.
  • sugar alcohols as stabilizers include sorbitol.
  • inorganic salts as stabilizers include sodium chloride.
  • buffers include L-histidine, citric acid, and phosphoric acid. Among these, L-arginine is preferred as a stabilizer, L-histidine is preferred as a buffer, and it is more preferred to use a combination of L-arginine and L-histidine.
  • Each amino acid contained in the liquid pharmaceutical composition may be in the form of a salt.
  • the salt include acid addition salts and salts with bases, and it is preferable to select a pharmacologically acceptable salt.
  • examples of such salts include salts with inorganic acids, salts with organic acids, salts with inorganic bases, and salts with organic bases.
  • Examples of salts with inorganic acids include salts with hydrohalic acids (hydrochloric acid, hydrobromic acid, hydroiodic acid, etc.), sulfuric acid, nitric acid, phosphoric acid, etc.
  • salts with organic acids include salts with formic acid, acetic acid, propionic acid, oxalic acid, succinic acid, maleic acid, fumaric acid, citric acid, etc.
  • salts with inorganic bases include salts with alkali metals such as sodium, potassium, and lithium, salts with alkaline earth metals such as calcium and magnesium, and salts with ammonium.
  • salts with organic bases include salts with ethylenediamine, propylenediamine, ethanolamine, monoalkylethanolamine, dialkylethanolamine, diethanolamine, triethanolamine, etc.
  • the concentration of each amino acid in the liquid pharmaceutical composition is appropriately set depending on the type of amino acid used (when the amino acid is a salt, it is converted to the free form).
  • the stabilizer is L-arginine, it is preferably 10 mmol/L or more, 25 mmol/L or more, or 50 mmol/L or more, more preferably 80 mmol/L or more, even more preferably 90 mmol/L or more, and preferably 150 mmol/L or less, 140 mmol/L or less, or 130 mmol/L or less, more preferably 120 mmol/L or less, even more preferably 110 mmol/L or less.
  • the concentration of L-arginine is 10 mmol/L or more and 150 mmol/L or less, 25 mmol/L or more and 140 mmol/L or less, 50 mmol/L or more and 130 mmol/L or less, preferably 80 mmol/L or more and 120 mmol/L or less, more preferably 90 mmol/L or more and 110 mmol/L or less.
  • the concentration is preferably 1 mmol/L or more, 10 mmol/L or more, or 20 mmol/L or more, more preferably 30 mmol/L or more, even more preferably 40 mmol/L or more, and preferably 100 mmol/L or less, 90 mmol/L or less, or 80 mmol/L or less, more preferably 70 mmol/L or less, even more preferably 60 mmol/L or less.
  • the concentration of L-histidine is 1 mmol/L or more and 100 mmol/L or less, or 10 mmol/L or more and 90 mmol/L or less, or 20 mmol/L or more and 80 mmol/L or less, preferably 30 mmol/L or more and 70 mmol/L or less, more preferably 40 mmol/L or more and 60 mmol/L or less.
  • These amino acids may function as buffers.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention is characterized by containing a surfactant.
  • surfactant as used in the present invention is defined to include any surfactant having a hydrophilic region and a hydrophobic region, including nonionic, cationic, anionic and amphoteric surfactants.
  • Suitable surfactants can be selected from, for example, polysorbate 20 (polyoxyethylene sorbitan monolaurate, Tween 20, CAS number: 9005-64-5), polysorbate 60 (polyoxyethylene sorbitan monostearate, Tween 60, CAS number: 9005-67-8), polysorbate 65 (polyoxyethylene sorbitan tristearate, Tween 65, CAS number: 9005-71-4), polysorbate 80 (polyoxyethylene sorbitan oleate, Tween 80, CAS number: 9005-65-6), poloxamer (e.g., poloxamer 188), and the like. Polysorbate 80 is preferred for the liquid pharmaceutical composition of the present invention.
  • the surfactant can be present in the liquid pharmaceutical composition of the present invention at a concentration that varies depending on the type of surfactant used, but is usually 0.001 vol.% or more, preferably 0.01 vol.% or more, more preferably 0.03 vol.% or more, and even more preferably 0.05 vol.% or more, and usually 2.0 vol.% or less, preferably 1.0 vol.% or less, more preferably 0.5 vol.% or less, even more preferably 0.3 vol.% or less, and even more preferably 0.1 vol.% or less.
  • the surfactant can be present in the liquid pharmaceutical composition of the present invention at a concentration of from 0.001 vol.% to 2.0 vol.%, preferably from 0.01 vol.% to 1.0 vol.%, more preferably from 0.03 vol.% to 0.5 vol.%, even more preferably from 0.05 vol.% to 0.3 vol.%, and even more preferably from 0.05 vol.% to 0.1 vol.%.
  • the pH of the liquid pharmaceutical composition of the present invention is preferably 3 or more, more preferably 5 or more, and is preferably 9 or less, more preferably 8 or less. In one embodiment, the pH of the liquid pharmaceutical composition of the present invention is 3 or more and 9 or less, preferably 5 or more and 8 or less.
  • An effective amount of the liquid pharmaceutical composition of the present invention is administered to a living body orally or parenterally, such as intravenously, subcutaneously, intraperitoneally or intramuscularly, and is used for treating or diagnosing a disease, or detecting a lesion, etc.
  • the subjects of administration herein include, but are not limited to, humans, or animals such as mice, rats, monkeys, guinea pigs, chimpanzees, sheep, goats, dogs, cats, pigs, cows, and horses, with humans being preferred.
  • a preferred target disease is cancer.
  • cancers to be treated or diagnosed by the present invention include pancreatic cancer, thyroid cancer, liver cancer, colon cancer, gastric cancer, esophageal cancer, lung cancer, urothelial cancer, breast cancer, cervical cancer, uterine cancer, ovarian cancer, bile duct cancer, biliary tract cancer, and endometrial cancer, and the application to pancreatic cancer is particularly preferred.
  • the "effective amount” here refers to an amount that can produce a therapeutically effective effect in the subject to which it is administered.
  • the effective amount to be administered to a subject varies depending on factors such as the type of subject, the subject's weight, the dosage form (e.g., injection) and route of administration (oral administration, parenteral administration, etc.), and the severity of the disease (e.g., cancer). Physicians and veterinarians can determine an appropriate effective amount taking these factors into consideration.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention can be used for radionuclide internal therapy.
  • a radiopharmaceutical is administered intravenously or orally, the radiopharmaceutical is accumulated at a lesion site such as a primary cancer lesion or a metastatic lesion, and cancer cells at the lesion site are destroyed by radiation emitted from the radiopharmaceutical. Therefore, the liquid pharmaceutical composition of the present invention can be preferably used for radionuclide internal therapy for cancer.
  • the dosage and dose of the pharmaceutical composition are appropriately selected depending on the type of radionuclide, the effectiveness of the active ingredient, the form and route of administration, the stage of progression of the disease (especially cancer), the patient's body type, weight, and age, and the type and amount of the therapeutic drug for other diseases used in combination.
  • the dosage of the pharmaceutical composition may be expressed as a human equivalent dose (HED) calculated by converting the mouse dosage into a human dosage based on body surface area.
  • the radionuclide when the dose for a mouse weighing 20 g is used to calculate the HED for a human weighing 60 kg, if the radionuclide is iodine-131, it can usually be administered at 100 MBq/kg or less per dose. It can also be effective at a dose of 50 MBq/kg or less per dose. For example, if the radionuclide is yttrium-90, it can usually be administered at 50 MBq/kg or less per dose. It can also be effective at a dose of 30 MBq/kg or less per dose. For example, if the radionuclide is lutetium-177, it can usually be administered at 50 MBq/kg or less per dose.
  • radionuclide is iodine-131
  • the toxicity to the thyroid gland where iodine accumulates physiologically can be reduced by administering a non-radioactive iodine preparation (stable iodine preparation) in advance.
  • Potassium iodide, potassium iodate, etc. can be used as the stable iodine preparation.
  • the radiopharmaceutical composition obtained may be used for cancer diagnosis in radionuclide internal therapy for cancer.
  • the pharmaceutical composition for cancer diagnosis of the present invention may be used for diagnosis before performing radionuclide internal therapy for cancer, or for diagnosis after performing radionuclide internal therapy for cancer.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention containing a radionuclide that emits ⁇ rays.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention containing a radionuclide that emits ⁇ -rays for diagnosis after radionuclide internal therapy for cancer, it can be used to determine whether or not the radionuclide internal therapy for cancer is effective and to optimize the treatment plan, such as by increasing or decreasing the dosage.
  • the storage container for the liquid pharmaceutical composition of the present invention may be made of glass or plastic.
  • the shape of the storage container for the liquid pharmaceutical composition of the present invention may be a vial or a syringe. It may be colorless or colored.
  • the radioactive liquid pharmaceutical composition containing a radioactive anti-MUC5AC specific antibody adsorption of radioactivity to a storage container is suppressed, so that it is possible to guarantee the initial quality.
  • a storage container preferably a glass container
  • the proportion of radioactivity adsorbed to the storage container varies depending on the type of radioactive nuclide used, but is preferably 10% or less, more preferably 8% or less, and even more preferably 6% or less.
  • a liquid pharmaceutical composition comprising a complex of a radionuclide and an antibody as an active ingredient, The antibody specifically binds to mucin subtype 5AC, the concentration of the antibody in the composition is 0.1 mg/mL or more and 5 mg/mL or less; A stabilizer, a buffer, a surfactant, 13.
  • a pharmaceutical composition comprising: [2] The pharmaceutical composition according to [1], wherein the radioactive nuclide is a radioactive nuclide that emits alpha particles, positrons, beta rays or gamma rays. [3] The pharmaceutical composition according to [1] or [2], wherein the stabilizer is L-arginine.
  • [4] The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [3], wherein the buffer is L-histidine.
  • the stabilizer in the composition is L-arginine and the buffer is L-histidine, The concentration of the L-arginine is 10 mmol/L or more and 150 mmol/L or less, The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [4], wherein the concentration of the L-histidine is 1 mmol/L or more and 100 mmol/L or less.
  • the surfactant is at least one selected from the group consisting of polysorbate 20, polysorbate 60, polysorbate 65, and polysorbate 80.
  • composition In the composition, The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [6], wherein the concentration of the surfactant is 0.01% by volume or more and 2.0% by volume or less.
  • concentration of the surfactant is from 0.01% by volume to 0.5% by volume.
  • radioactive nuclide is 89 Zr.
  • the humanized antibody (1) an amino acid sequence (H01) represented by SEQ ID NO:1; (2) the amino acid sequence (H02) shown in SEQ ID NO: 2; (3) the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 (H03), or (4) the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 (H04).
  • a heavy chain variable region consisting of (5) the amino acid sequence (L01) shown in SEQ ID NO:5; (6) the amino acid sequence (L02) shown in SEQ ID NO:6; (7) the amino acid sequence (L03) shown in SEQ ID NO: 7, or (8) the amino acid sequence (L04) shown in SEQ ID NO: 8.
  • the humanized antibody (1) a heavy chain variable region consisting of the amino acid sequence (H01) shown in SEQ ID NO:1; (7) a light chain variable region consisting of the amino acid sequence (L03) shown in SEQ ID NO: 7;
  • the conjugate according to [11], which is a humanized antibody having the formula: [12] The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [11], [11-1] and [11-2], wherein the complex is a complex of an antibody and a chelating agent to which the radionuclide is chelated.
  • [12-1] The pharmaceutical composition according to [12], wherein the chelating agent site-specifically modifies the Fc region of the antibody via a linker.
  • [12-2] The pharmaceutical composition according to [12] and [12-1], wherein the linker comprises a peptide consisting of 13 to 17 amino acid residues represented by the above formula (i), and is formed by a crosslinking reaction between the peptide modified with a crosslinking agent and the antibody.
  • [12-3] The pharmaceutical composition according to [12], [12-1] or [12-2], wherein the chelating agent has a structure derived from the compound represented by the above formula (A) or a salt thereof.
  • the linker is a chelating linker connecting said chelating agent; a first atomic group attached to the chelating linker; a second atomic group capable of undergoing a Click reaction with the first atomic group; and an antibody-modifying linker connected to the second atomic group and comprising the peptide.
  • the pharmaceutical composition according to any one of [12], [12-1], [12-2] and [12-3], wherein the linker comprises any one of the chemical structures represented by formulas (10a), (10b) and (10c) above as a chemical structure derived from the first atomic group and the second atomic group.
  • [13] The pharmaceutical composition according to any one of [12], [12-1], [12-2], [12-3] and [12-4], wherein one molecule of the chelating agent is site-specifically conjugated to one molecule of the antibody.
  • [15] The pharmaceutical composition according to [14], wherein the antibody concentration in the composition is 0.4 mg/mL or more and 2.0 mg/mL or less.
  • [16] The pharmaceutical composition according to claim [14] or [15], wherein the antibody concentration in the composition is 0.5 mg/mL or more and 1.5 mg/mL or less.
  • [17] The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [16], [11-1], [11-2], [12-1], [12-2], [12-3] and [12-4], wherein the pH of the composition is 5 or higher and 8 or lower.
  • [18] The pharmaceutical composition according to any one of [1] to [17], [11-1], [11-2], [12-1], [12-2], [12-3] and [12-4], wherein the adsorption rate of the radionuclide in the composition to a container is 10% or less.
  • Production Example 1 Preparation of anti-MUC5AC humanized antibody
  • An anti-MUC5AC humanized antibody (antibody 1: H01L03) was obtained in the same manner as in Production Example 1 described in WO 2021/075544.
  • H01 is the heavy chain variable region shown in SEQ ID NO: 1
  • L03 is the light chain variable region shown in SEQ ID NO: 7.
  • the antibody used in the following examples consists of heavy chain constant region 1 (SEQ ID NO: 23) and light chain constant region 1 (SEQ ID NO: 24), and a combination of the heavy chain variable region and light chain variable region of antibody 1 described above.
  • Production Example 2 Site-specific antibody modification with a peptide linker (1) Antibody modification step In step (1) of Production Example 2 described in WO 2021/075544, a solution containing a peptide-modified antibody was obtained in the same manner as described above, except that the reaction time between the peptide and the anti-MUC5AC humanized antibody prepared in Production Example 1 was changed to 60 minutes.
  • the buffer solution of each of the collected fractions was replaced with 50 mmol/L histidine buffer (pH 6.1) containing 0.1 mol/L arginine using an ultrafiltration filter (Merck, model number: UFC903096).
  • the conditions for the hydrophobic column chromatography are as follows: Column: BioPro HIC HT (4.6 mm x 10 cm, 2.3 ⁇ m) Detector: ultraviolet spectrophotometer (measurement wavelength: 280 nm) Mobile phase A: 50 mmol/L phosphate buffer (pH 7.0) containing 1.5 mol/L ammonium sulfate Mobile phase B: 50 mmol/L phosphate buffer (pH 7.0) Mobile phase C: water Mobile phase delivery: The mixing ratio of mobile phase A, mobile phase B and mobile phase C is changed as follows to control the concentration gradient.
  • Example 1 Preparation of 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation (1) Complex formation process The structure of the chelating moiety (DOTA-GA-DBCO) used in this example is shown in the following formula (L1-5). A 89Y target was irradiated with protons and dissolved in a 0.1 mol/L hydrochloric acid aqueous solution to prepare a 89Zr ion-containing solution (radioactivity concentration 11286 MBq/mL, liquid volume 0.140 mL), and the solvent was distilled off under heating conditions.
  • DOTA-GA-DBCO chelating moiety
  • the chelating moiety was dispersed in 195 mmol/L acetic acid-sodium acetate buffer (pH 5.5) to obtain a dispersion containing 1.0 mmol/L of the chelating moiety (chelating moiety dispersion).
  • thin layer chromatography (Agilent, model number: SGI0001, developing solvent was a mixture of acetonitrile:0.1 mmol/L EDTA solution (volume ratio 1:1)) was measured with a radio ⁇ -TLC analyzer (Raytest, MODELGITA Star PS), and the percentage of the radioactivity (counts) of the peak detected near the origin relative to the total radioactivity (counts) detected was defined as the radiochemical purity (%). In addition, the percentage of the radioactivity recovered after solvent replacement relative to the total radioactivity added at the start of the labeling process was defined as the radiochemical yield (%).
  • the polysorbate 80 concentration in the formulation was 0.07 w/v%, and 4 mL of the formulation was filled into colorless glass vials (capacity 6 mL) with rubber stoppers.
  • the radioactivity concentration in each vial immediately after production was 63.8 to 68.1 MBq/mL.
  • the formulations with a target value of 0.5 mg/mL had actual measured values of 0.43 to 0.45 mg/mL, and the formulations with a target value of 1.0 mg/mL had actual measured values of 0.66 to 0.68 mg/mL.
  • the concentration of anti-MUC5AC specific antibody in the solution was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement conditions set at a measurement wavelength of 280 nm and a molar extinction coefficient of 1.46.
  • SoloVPE variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer
  • Example 2 Preparation of 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation After carrying out steps (1) and (2) of Example 1, the following steps were carried out.
  • the radioactive concentration used in step (1) was 7512 MBq.
  • step (3) Purification step The solution containing the 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody obtained in step (2) was cooled to about room temperature, and then 4.0 mL of 20 mmol/L histidine buffer (pH 5.5) was added and passed through a column (HiTrap SP FF 5 mL) packed with a cation exchange resin to retain the 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody in the column. Then, 21 mL of 20 mmol/L histidine buffer (pH 5.5) was passed through the column to wash it.
  • the radiochemical purity and radiochemical yield of the 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • (4) Formulation Step The purified fraction obtained in the above step (3) was filtered through a polyvinylidene fluoride membrane filter having a pore size of 0.22 ⁇ m, and an appropriate amount of the purified fraction obtained in the above step (3) was added to a colorless glass vial (volume: 6 mL) equipped with a rubber stopper to prepare a formulation shown in the following formulation.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the preparation was 1.15 mg/mL immediately after production.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the solution was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement conditions set to a measurement wavelength of 280 nm and a molar extinction coefficient of 1.51.
  • SoloVPE variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer
  • 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody (after completion of production) 471MBq Polysorbate 80 2.8 mg L-arginine hydrochloride 84.3mg L-histidine 31.0 mg Water for injection Appropriate amount Hydrochloric acid (appropriate amount) Total 4.2mL
  • Example 3 Preparation of 225 Ac-labeled anti-MUC5AC specific antibody (1) Chelate modification step
  • the same chelating moiety as the chelating moiety shown in the above formula (L1-5) was used. This chelating moiety was dispersed in 0.1 mol/L acetic acid-sodium acetate buffer (pH 5.0) as a solvent to obtain a dispersion containing 0.3 mmol/L of the chelating moiety.
  • 225 Ac ion-containing solution (0.1 mol/L hydrochloric acid aqueous solution, radioactivity concentration 5.1 MBq/mL, liquid volume 0.333 mL) obtained by purifying by the method described in WO 2022/014555 was 1.7 MBq (calculated value calculated by attenuation from the radioactivity at the time of assay), 0.360 mL of this dispersion, and 0.540 mL of 0.1 mol/L acetic acid-sodium acetate buffer (pH 5.0) were mixed in a reaction solution under heating conditions to obtain a 225 Ac complex solution.
  • the molar ratio of the chelating moiety to the radioactive metal ion (chelating moiety: 225 Ac ion) was about 46,330:1, the reaction solution was heated to 70° C., and the heating time was 15 minutes.
  • step (3) The solution containing the 225 Ac-labeled anti-MUC5AC specific antibody obtained in step (2) is sent to a column packed with a cation exchange resin (Cytiva, HiTrap SP FF 5 mL). After sending 10 mL of 20 mmol/L histidine buffer (pH 5.5) to the column, 18 mL of 100 mmol/L arginine-containing 50 mmol/L histidine buffer (pH 6.1) was sent, and the purified fraction was collected in a vial to which 2 mL of 0.7 w/v% polysorbate 80-containing 240 mmol/L arginine-containing 50 mmol/L histidine buffer (pH 6.1) had been added in advance.
  • a cation exchange resin Cytiva, HiTrap SP FF 5 mL
  • the radiochemical purity of the obtained 225 Ac-labeled anti-MUC5AC specific antibody was 99%, and the radiochemical yield was about 40%.
  • the radiochemical purity and radiochemical yield of the 225 Ac-labeled anti-MUC5AC specific antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Formulation step A suitable amount of the purified fraction obtained in the above step (3) was added to a colorless glass vial (volume 6 mL) equipped with a rubber stopper to prepare a formulation.
  • the liquid pharmaceutical composition of the present invention containing the 225 Ac-labeled anti-MUC5AC specific antibody as an active ingredient had the following formulation.
  • the concentration of anti-MUC5AC specific antibody in the formulation was 0.87 mg/mL immediately after production.
  • the concentration of anti-MUC5AC specific antibody in the solution was measured by size exclusion chromatography. The measurement conditions for size exclusion chromatography are as follows.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the formulation was 1.0 mg/mL immediately after production.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the solution was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement conditions set at a measurement wavelength of 280 nm and a molar extinction coefficient of 1.46.
  • Example 4 Preparation of 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation Steps (1) and (2) of Example 1 were carried out using a radioactive concentration of 3880 MBq, and then steps (3) and (4) of Example 2 were carried out to prepare a 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation.
  • the concentration of the anti-MUC5AC specific antibody in the preparation obtained in step (4) was 0.96 mg/mL immediately after production, and was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement wavelength set to 280 nm and the molar extinction coefficient set to 1.46 as the measurement conditions.
  • the rest of the formulation is as follows: 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody (after production) 122MBq Polysorbate 80 1.4 mg L-arginine hydrochloride 42.2mg L-histidine 15.5mg Water for injection Appropriate amount Hydrochloric acid (appropriate amount) Total 2.0mL
  • Test Example 1 Evaluation of stability using anti-MUC5AC-specific antibody and unlabeled complex of the present invention Since it is not easy to evaluate the transport stability using a radioactive nuclide-labeled antibody from the viewpoint of complying with the regulations for the transportation of radioisotopes, etc., in vehicles, the transport stability (appearance, flow imaging, particle size measurement) of the unlabeled complex formulation obtained in Production Example 3 was evaluated as a preliminary test. In addition, the transport stability was similarly evaluated using an unmodified (intact) anti-MUC5AC-specific antibody formulated using the anti-MUC5AC-specific antibody obtained in Production Example 1 in place of the unlabeled complex. Each formulation is shown in Table 2.
  • PS80 is an abbreviation for polysorbate 80 (manufactured by NOF CORPORATION).
  • Formulation 1-1 is a formulation of an unlabeled complex preparation of Production Example 3, and formulations 1-2, 1-3, and 1-4 are formulations of intact anti-MUC5AC specific antibodies (unmodified antibodies of Production Example 1).
  • the concentration of the unmodified antibody in the solution was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement conditions set to a measurement wavelength of 280 nm and a molar extinction coefficient of 1.45.
  • SoloVPE variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer
  • Test Example 2 Effect of adding a surfactant to a solution containing a 89Zr-labeled anti-MUC5AC specific antibody Test samples were prepared based on the formulations shown in Table 6. Formulations 2-3, 2-5 to 2-7 are the 89Zr -labeled anti-MUC5AC humanized antibody formulated in Example 1, and formulations 2-1, 2-2, and 2-4 differ from the 89Zr - labeled anti-MUC5AC humanized antibody formulation produced in Example 1 in that they do not contain polysorbate 80.
  • the storage condition was set at 25 ⁇ 2°C, and the degree of radioactivity adsorption to the storage container (container adsorption rate) was examined at three points: immediately after production (0-1 day after production), at the midpoint (3-4 days after production), and at the final point (6-7 days after production).
  • the entire amount of sample solution was extracted from the storage container using a micropipette.
  • the liquid adhering to the rubber stopper was also removed using a micropipette.
  • the radioactivity remaining in the storage container was measured using a radioisotope dose calibrator (model: CRC-15R, manufacturer: CAPINTEC).
  • the unit of [C] is hours.
  • Example 2 The results for Formulations 2-1 to 2-4 are shown in FIG.
  • Example 2 in which the surfactant polysorbate 80 was added (formulation 2-3), the adsorption of radioactivity to the container was significantly reduced.
  • the container adsorption rates of formulations 2-5 to 2-7 were in the range of 1.7 to 2.1% throughout the storage period (Table 7).
  • Test Example 3 Container Adsorption Rate of 89Zr-Labeled Anti-MUC5AC Specific Antibody Preparation
  • the degree of radioactivity adsorption to the storage container (container adsorption rate) of the 89Zr -labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation obtained in Example 2 was investigated.
  • the measurement times were the start point (0-2 days after production), the midpoint (5-6 days after production), and the end point (8-9 days after production), and the storage conditions were 5 ⁇ 3°C, 25 ⁇ 2°C, and 40 ⁇ 2°C, and the container adsorption rate was measured in the same manner as in Test Example 2.
  • the container adsorption rate was in the range of 0.51 to 0.98% throughout the storage period (Table 8).
  • Test Example 4 Container Adsorption Rate of 225 Ac-Labeled Anti-MUC5AC Specific Antibody Preparation
  • the degree of radioactivity adsorption to the storage container of the solution prepared in Example 3 was examined. The measurement was performed 4 days after production, the storage condition was 5 ⁇ 3°C, and the entire amount of the sample solution was extracted from the storage container using a micropipettor. The liquid attached to the rubber stopper was also removed using a micropipettor. The radioactivity remaining in the storage container was measured using a gamma ray spectrometer (model: GMX10P4-70, manufacturer: ORTEC).
  • the unit of [C] is days.
  • the container adsorption rate was 5.97%.
  • Test Example 5 Evaluation of stability of 89 Zr-labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation
  • the transport stability (appearance, particle size measurement) of the 89 Zr-labeled anti-MUC5AC specific antibody preparation obtained in Example 4 was evaluated.
  • the concentration of the unmodified antibody in the solution was measured using a variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer (SoloVPE, IN-VPE-Solo5, manufactured by C Technologies) with the measurement conditions set to a measurement wavelength of 280 nm and a molar extinction coefficient of 1.46.
  • SoloVPE variable path length ultraviolet-visible spectrophotometer

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Abstract

本発明は、放射性核種と抗体との複合体を有効成分として含有する液状の医薬組成物に関する。該抗体が、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体であり、該組成物中の前記抗体の濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ以上５ｍｇ／ｍＬ以下であり、該組成物は、Ｌ－アルギニンとＬ－ヒスチジンと界面活性剤とを含むことを特徴とする。かかる医薬組成物は保存容器への放射能吸着が低減されている。

Description

放射性医薬組成物
　本発明は、液状の放射性医薬組成物、特に放射性核種とムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体との複合体を有効成分として含有する液状の医薬組成物に関する。
　ムチンは動物の上皮細胞などから分泌される粘液の主成分であり分子量１００万～１０００万の糖を多量に含む糖タンパク質である。ムチンには上皮細胞などが産生する分泌型ムチンと、疎水性の膜貫通部位を持ち細胞膜に結合した状態で存在する膜結合型ムチンがある。ムチンのコアタンパクは総称してＭＵＣと呼ばれており、コアタンパクをコードする遺伝子は少なくとも２０種類あることがわかっている。その内の１種であるムチンサブタイプ５ＡＣ（ＭＵＣ５ＡＣ）は分泌型ムチンに属する。
　ＭＵＣ５ＡＣは、正常組織では胃や気管において発現しているが、膵がんでの過剰発現が報告されており、その他にも甲状腺がん、肝臓がん、大腸がん、胃がん、尿路上皮がん、乳がん、子宮頸がん、卵巣がん、子宮内膜がん、胆管がんでも過剰発現が報告されている。ＭＵＣ５ＡＣに対する抗体については、ヒト膵がん細胞株ＳＷ１９９０のｘｅｎｏｇｒａｆｔより精製した膵がんムチン分画を抗原として作製したマウス抗体（非特許文献１）や、それを元に作製されたキメラ抗体（特許文献１、２、非特許文献２、３）、ヒト化抗体（特許文献３、４）の報告がある。また、ＭＵＣ５ＡＣに対するヒト化抗体に２２５Ａｃや８９Ｚｒを標識した放射性核種標識抗体が報告されている（特許文献５）。
　放射性核種標識抗体の製剤化においては、非特許文献４に８９Ｚｒと配位子化合物の一種であるデフェロキサミンが結合したパニツムマブを製造して、０．９％生理食塩水で保存する方法が開示されている。また、特許文献６には、放射性核種で標識されたペプチドやタンパク質の放射線分解を抑制する為に、界面活性剤を単独、または、ＮａＣｌ、ＫＣｌ、ＮａＣｌ２およびＭｇＣｌ２といった塩と組み合わせて用いることが開示されている。
　特許文献７は、放射性核種標識抗体の製剤化に関するものではないが、アルギニンが、長期間の保存の間のインターロイキン－２（ＩＬ－２）の凝集および脱アミド化を減少させるために、液体ＩＬ－２薬学的処方物における初期安定化剤として役立ち得ることを開示する。また、特許文献７では、処方物中にポリソルベート８０を含有することは、タンパク質凝集に対するその効果に基づき単独では望ましくないとして認識されるが、このタンパク質を含有する液体処方物の加工の間に有利であり、凍結融解および機械剪断に関連する激しいタンパク質損傷に対して安定化する効果を有することが開示されている。
特開平７－２０３９７４号公報 特開平１１－５７４９号公報 国際公開第２０１３／１５７１０２号 国際公開第２０１３／１５７１０５号 国際公開第２０２１／０７５５４４号 特表平９－５１０４５４号公報 特表２００３－５１０３６８号公報
Japanese Journal of Cancer Research, 87, 977-984, 1996 日本臨牀64巻, 増刊号1, 2006, 274-278 Japanese Journal of Cancer Research, 90, 1179-1186, 1999 J Labelled Comp Radiopharm. 57, 25-35, 2014
　本発明者らは、放射性核種で標識された、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体（以下、「放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体」とも称する）の製剤化を検討し、特定のアミノ酸を用いることで、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体が安定化されることを見出した。しかしながら、保存容器への放射能吸着が新たな課題として本発明者らにより知見された。保存容器への放射能吸着は、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の構成要素のうち、抗体と放射性核種の一方または両方に起因すると考えられた。抗体に起因する場合、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体が単量体として保存容器に吸着する場合と、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体同士、または、製造上混入した異物の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体と有効成分の放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体とが凝集して保存容器に吸着する場合があることが考えられた。ここで、異物の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体とは、抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の凝集体、断片化した抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体及び糖鎖構造が変化した異性化体が考えられる。放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は、インタクト抗体や非放射性の薬物を抗体に付加した抗体薬物複合体を有効成分とする一般的な抗体医薬とは異なり、製剤中に含まれる物質量としてはごく微量であるため、保存容器への放射能吸着は製剤の薬効に影響を及ぼすおそれがある。
　非特許文献４及び特許文献６に記載された放射性核種標識抗体の製剤化においては、こうした保存容器に対する放射能吸着の課題は認識されていない。
　本発明は、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を有効成分として含有する医薬組成物の処方に関し、保存容器への放射能吸着を低減させた液状の医薬組成物を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討を行った結果、所定濃度の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体存在下に、Ｌ－アルギニンと、Ｌ－ヒスチジンと、界面活性剤とを含む処方により調製された液状医薬組成物では、保存容器への放射能吸着が低減されることを見出し、本発明を完成するに至った。
　本発明の一態様は、放射性核種と抗体との複合体を有効成分として含有する液状の医薬組成物であって、当該抗体が、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体であり、当該組成物中の前記抗体の濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ以上５ｍｇ／ｍＬ以下であり、安定剤と、緩衝剤と、界面活性剤と、を含む、医薬組成物である。
　なお、この態様における当該組成物中の抗体の濃度とは、放射性核種と複合化された抗体と、放射性核種で複合化されていない抗体との総濃度である。
　本発明によれば放射性液状医薬組成物中の保存容器への放射能吸着が抑制されているので、安定した品質の製剤を提供することが可能となる。
本発明の液状医薬組成物中の抗体濃度を説明する為の模式図である。 界面活性剤（ポリソルベート８０）添加による、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の保存容器への吸着低減効果を調べた結果を表す図である。縦軸は保存容器への抗体の吸着の程度を、横軸は、医薬組成物を製造してからの経過日数を示す。 製剤を冷蔵保存で陸路輸送した後の、フローイメージングの結果を示す図である。
　本明細書で使用する用語は、特に言及しない限り、当該技術分野で通常用いられる意味で用いることができる。
（１）医薬組成物
　本発明は、放射性核種と抗体との複合体（以下、本発明の複合体とも称する）を有効成分として含有する液状の医薬組成物（以下、本発明の液状医薬組成物とも称する）を提供する。
　ここで、本発明の液状医薬組成物及び本発明の複合体に含まれる抗体は、ムチンサブタイプ５ＡＣ（ＭＵＣ５ＡＣ）に特異的に結合する抗体（以下、本発明の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体とも称する）である。尚、本明細書では、該抗体が放射標識された場合は、「放射性」と区別して標記する。
　本発明の液状医薬組成物は、有効成分としての本発明の複合体に加え、Ｌ－アルギニンおよびＬ－ヒスチジンを含み、さらに界面活性剤を含むことを特徴とする。
　本発明の放射性核種と抗体との複合体では、抗体と放射性核種とが直接連結していてもよい。また、本発明の抗体と放射性核種との複合体では、抗体と放射性核種とがリンカーを介して連結していてもよい。この場合、放射性核種を放射性金属核種とし、この放射性金属核種が、キレート剤とキレート（錯体）を形成していてもよく、抗体とキレート剤とが、リンカーを介して、またはリンカーを介さずに連結していてもよい。ここで、連結は、好ましくは、共有結合による連結であり得る。
（１－１）放射性核種
　本発明の複合体に含まれる放射性核種は、α粒子、ポジトロン、β線又はγ線を放出する放射性核種である。α粒子を放出する放射性核種として、Ｂｉ－２１２、Ｂｉ－２１３、Ａｔ－２１１、Ａｃ－２２５、Ｔｈ－２２７が例示される。また、ポジトロンを放出する放射性核種として、Ｆ－１８、Ｃｕ－６４、Ｇａ－６８、Ｙ－８６、Ｚｒ－８９が例示される。また、β線を放出する放射性核種として、Ｃｕ－６４、Ｙ－９０、Ｉ－１３１又は、Ｌｕ－１７７が例示される。また、γ線を放出する放射性核種として、Ｉ－１２３、Ｔｃ－９９ｍ又はＩｎ－１１１が例示される。本発明の複合体に含まれる放射性複合体、ひいては本発明の液状医薬組成物に含まれる放射性核種は、Ｚｒ－８９、Ｙ－９０、Ｌｕ－１７７又はＡｃ－２２５であることが、より好ましい。
　これらの放射性核種は、所定の核反応により製造することもできるし、Eckert & Ziegler社、Thermo Fisher Scientific社、Institute of Isotopes社、POLATOM、Oak Ridge National Laboratory、Rosatom等から市販されている製品を入手することもできる。このようにして製造又は入手した放射性核種をキレート化等の化学処理を加えて抗体との結合に適した化学形とすることで、抗体との複合体形成に使用することができる。
（１－２）抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体
　本発明の複合体に含まれる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する免疫グロブリンである。本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は、ポリクローナル抗体であってもよいし、モノクローナル抗体であってもよいが、モノクローナル抗体が好ましい。抗体の由来は、特に限定されないが、例えば、非ヒト動物の抗体、非ヒト哺乳動物の抗体、およびヒト抗体が挙げられ、好ましくは、ヒト、ラット、マウス及びウサギの抗体を例示できる。抗体がヒト以外の種に由来する場合は、周知の技術を用いて、キメラ化又はヒト化することが好ましいが、本発明に用いられる抗体は、キメラ抗体、ヒト化抗体、またはヒト抗体であってもよい。本発明で用いられる抗体は、例えば、ＩｇＧであり、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２（例えば、ＩｇＧ２ａおよびＩｇＧ２ｂ）、ＩｇＧ３、またはＩｇＧ４であり得る。
　好ましくは、該抗体は、ＭＵＣ５ＡＣに特異的に結合する能力を有するヒト化抗体であり、安定な物性を有し且つ腫瘍集積性に優れている。該抗体はその抗原結合断片として用いられてもよく、かかる態様も本願発明に包含される。具体的には後述する特定の重鎖可変領域と軽鎖可変領域とを含み、所望により適切な重鎖定常領域と軽鎖定常領域を有する。本明細書において「抗原結合断片」とは本発明で用いられるヒト化抗体の一部からなる抗体断片であって、且つＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有するものを意味する。ＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有する限り、抗原結合断片を構成するポリペプチドに含まれるアミノ酸の数は特に限定されるものではない。
　下記に本発明で用いられるヒト化抗体の重鎖可変領域として好ましいアミノ酸配列を示す。重鎖可変領域１（Ｈ０１）、重鎖可変領域２（Ｈ０２）、重鎖可変領域３（Ｈ０３）、及び重鎖可変領域４（Ｈ０４）は、本明細書に添付した配列表の配列番号１～４に、それぞれ相当する。下線を付した部位はＣＤＲ部位である。
　下記に本発明においてヒト化抗体の軽鎖可変領域として好ましいアミノ酸配列を示す。軽鎖可変領域１（Ｌ０１）、軽鎖可変領域２（Ｌ０２）、軽鎖可変領域３（Ｌ０３）、及び軽鎖可変領域４（Ｌ０４）は、本明細書に添付した配列表の配列番号５～８に、それぞれ相当する。下線を付した部位はＣＤＲ部位である。
　言い換えれば、本発明において好ましいＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の重鎖可変領域は配列番号１から配列番号４のいずれか１つで示されるアミノ酸配列からなり、軽鎖可変領域は配列番号５から配列番号８のいずれか１つで示されるアミノ酸配列からなる。すなわち本発明で用いられるＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は、上記で述べた４つの重鎖可変領域（Ｈ０１～Ｈ０４）のいずれか１つと４つの軽鎖可変領域（Ｌ０１～Ｌ０４）のいずれか１つとの組み合わせからなる。
　本発明において好適な抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は重鎖可変領域がＨ０１、Ｈ０３又はＨ０４であり、かつ軽鎖可変領域がＬ０１～Ｌ０４のいずれか１つであるヒト化抗体である。
　本発明において最も好適な抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は重鎖可変領域がＨ０１であり軽鎖可変領域がＬ０３である抗体である。
　本発明において抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の重鎖可変領域は、配列番号１から配列番号４で示されるアミノ酸配列によって規定されるものに限定されず、機能を保持している変異体も含む。すなわち配列番号１から配列番号４で示されるアミノ酸配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、９６％以上もしくは９７％以上、更に好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなる変異した重鎖可変領域も、本発明の軽鎖可変領域と組み合わされたときにＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有する限り本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の重鎖可変領域として用いることができる。
　本明細書においてアミノ酸配列の同一性とは、対象とする２つのタンパク質間のアミノ酸配列の同一性をいい、当該技術分野において公知の数学的アルゴリズムを用いて作成されたアミノ酸配列の最適なアラインメントにおいて一致するアミノ酸残基の割合（％）によって表される。アミノ酸配列の同一性は、視覚的検査及び数学的計算により決定することができ、当業者に周知のホモロジー検索プログラム（例えば、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡ）や配列整列プログラム（例えば、ＣｌｕｓｔａｌＷ））、あるいは遺伝情報処理ソフトウェア（例えば、ＧＥＮＥＴＹＸ［登録商標］）などを用いて算出することができる。本明細書におけるアミノ酸配列の同一性は、具体的には、ＤＤＢＪ（DNA DataBank of Japan）のウェブサイトで公開されている系統解析プログラムＣｌｕｓｔａｌＷ（http://clustalw.ddbj.nig.ac.jp/index.php?lang=ja）を用い、初期設定の条件（Version2.1、Alignment type:slow、DNA Weight Matrix: Gonnet、GAP OPEN: 10、GAP EXTENSION: 0.1）で求めることができる。
　加えて、本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の重鎖可変領域として、配列番号１から配列番号４で示されるアミノ酸配列において、１０個以下、好ましくは８個以下、更に好ましくは５個以下、最も好ましくは３個以下（３個、２個もしくは１個）のアミノ酸が欠失、置換、または付加したアミノ酸配列からなる変異した重鎖可変領域も、本発明の軽鎖可変領域と組み合わされたときにＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有する限り、本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の重鎖可変領域として用いることができる。
　本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の軽鎖可変領域は、配列番号５から配列番号８で示されるアミノ酸配列に限定されず、機能を保持している変異体も含む。すなわち配列番号５から配列番号８で示されるアミノ酸配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、９６％以上もしくは９７％以上、更に好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなる変異した軽鎖可変領域も、本発明の重鎖可変領域と組み合わされたときにＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有する限り本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の軽鎖可変領域として用いられる。
　加えて、本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の軽鎖可変領域として、配列番号５から配列番号８で示されるアミノ酸配列において１０個以下、好ましくは８個以下、更に好ましくは５個以下、最も好ましくは３個以下（３個、２個もしくは１個）のアミノ酸が欠失、置換、または付加したアミノ酸配列からなる変異した軽鎖可変領域も、本発明の重鎖可変領域と組み合わされたときにＭＵＣ５ＡＣとの結合能を有する限り、本発明で用いられるＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の軽鎖可変領域として用いられる。
　本発明で用いられる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は本技術分野で一般的に実施されている方法又はそれに準じた方法によって製造することができる。具体的には、国際公開第２０２１／０７５５４４号及び国際公開第２０２１／０７５５４５号に記載される手順で行うことができる。
（１－３）キレート剤
　本発明においてキレート剤は、放射性核種が配位する部位を構造中に有するものであれば特に限定されないが、好ましくは、放射性核種が配位する部位であるキレート部と抗体との複合化を可能とするための置換基とを有する。キレート部として、例えば、CB-TE2A（1,4,8,11-Tetraazabicyclo[6.6.2]hexadecane-4,11-diacetic acid）、CDTA（Cyclohexane-trans-1,2-diamine tetra-acetic acid）、CDTPA（4-cyano-4-[[(dodecylthio)thioxomethyl]thio]-Pentanoic acid）、DOTA(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTMA((1R,4R,7R,10R)-α,α’,α”,α’”-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTAM（1,4,7,10-tetrakis(carbamoylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane）、DOTA-GA(α-(2-Carboxyethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTA-GA-NHS、DOTP(((1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrayl)tetrakis(methylene))tetraphosphonic acid)、DOTPA(1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrapropionic acid), 1,4,7,10-tetrakis(pyridin-2-ylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane(Lpy)、ｐ-SCN-Bn-DOTA（S-2-(4-Isothiocyanatobenzyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane tetraacetic acid）、MeO-DOTA-NCS（1-[(2-methoxy-5-isothiocyanatophenyl)-carboxymethyl]-4,7,10-triscarboxy 5 methyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane）、EuK-106、DOTMP(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(methylenephosphonic acid))、DOTA-4AMP(1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(acetamidomethylenephosphonic acid)、D02P(Tetraazacyclododecane dimethanephosphonic acid)、Deferoxamine (DFO)、DTPA(Glycine, N,N-bis[2-[bis(carboxymethyl)amino]ethyl]-)、DTPA-BMA(5,8-Bis(carboxymethyl)-11-[2-(methylamino)-2-oxoethyl]-3-oxo-2,5,8,11-tetraazatridecan-13-oic acid)、EDTA(2,2’,2”,2’”-(ethane-1,2-diylbis(azanetriyl))tetraacetic acid)、NOTA(1,4,7-Triazacyclononane-1,4,7-triacetic acid)、NOTP(1,4,7-Triazacyclononane-1,4,7-triyltris(methylenephosphonic acid)、TETPA(1,4,8,11-tetraazacyclotetradecane-1,4,8,11-tetrapropionic acid)、TETA(1,4,8,11-Tetraazacyclotetradecane-N,N’,N”,N’”-tetraacetic acid)、TTHA(3,6,9,12-Tetrakis(carboxymethyl)-3,6,9,12-tetraazatetradecanedioic acid)、HEHA(1,2,7,10,13-hexaazacyclooctadecane-1,4,7,10,13,16-hexaacetic acid)、1,2-HOPO(N,N’,N”,N’”-tetra(1,2-dihydro-1-hydroxy-2-oxopyridine-6-carbonyl)-1,5,10,14-tetraazatetradecane)、PEPA(1,4,7,10,13-pentaazacyclopentadecane-N,N’,N”,N’”,N””-penta-acetic acid)、H4octapa(N,N’-bis(6-carboxy-2-pyridylmethyl)-ethylenediamine-N,N’-diacetic acid)、H2bispa2(6,6’-({9-hydroxy-1,5-bis(methoxycarbonyl)-2,4-di(pyridine-2-yl)-3,7-diazabicyclo[3.3.1]nonane-3,7-diyl}bis(-methylene))dipicolinic acid)、H2dedpa(1,2-[{6-(carboxy)-pyridin-2-yl}-methylamino]ethane)、H2macropa(6-(1,4,10,13-tetraoxa-7,16-diazacyclooctadecan-N,N’-methyl)picolinic acid)、H5decapa(N,N”-bis(6-carboxy-2-pyridylmethyl)-diethylenetriamine-N,N’,N”-triacetic acid)、H6phospa(N,N’-(methylenephosphonate)-N,N’-[6-(methoxycarbonyl)pyridin-2-yl]-methyl-1,2-diaminoethane)、HP-D03A(Hydroxypropyltetraazacyclododecanetriacetic acid)、porphyrin、DO3A（1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7-triacetic acid trisodium salt）、DO3A-NHS（1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid mono-N-hydroxysuccinimide ester）といったものが挙げられるが、下記式（Ａ）で表される化合物に由来する構造を有することが好ましい。
（式（Ａ）中、Ｒ１１、Ｒ１３及びＲ１４は、それぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ４Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）(ＣＨ２)ｐＣＯＯＨからなる基であり、Ｒ１２又はＲ１５の一方が、水素原子、カルボキシル基、又は、炭素数２若しくは３のカルボキシアルキル基であり、他方が、前記抗体と複合化するための置換基であり、ｐが０以上３以下の整数であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基であるときＲ１５は水素原子であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基でないときＲ１５は前記抗体と複合化するための置換基である。）
　式（Ａ）で表される具体的な構造としては、以下の式（Ａ－１）～（Ａ－１２）で表される化合物に由来する構造が挙げられる。
　キレート部と、抗体と複合化を可能とするための置換基との連結部位は、アミド結合か、チオウレア結合であることが好ましいが、安定性の観点からはアミド結合がより好ましい。
　アミド結合は、例えば、上記式（Ａ－１０）や（Ａ－１１）のＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＮＨＳ）基、又は、上記（Ａ－１２）の２，６－ジオキソテトラヒドロ－２Ｈ－ピラニル基と、第１級アミンとの反応により形成される。また、チオウレア結合は、上記式（Ａ－２）、（Ａ－３）で示す化合物のイソチオシアネート基と、第１級アミン又はマレイミド基との反応により形成される。
　本発明の複合体が、放射性核種がキレートしたキレート剤と抗体との複合体である場合、キレート剤は、抗体１分子に対し、少なくとも１分子以上備えていればよいが、１分子以上８分子以下備えることが好ましい。ただし、抗体そのものの活性（抗原認識作用、中和作用、補体活性化作用及び／又はオプソニン作用）を維持する観点から、抗体のＦｃ領域（定常領域）に部位特異的にキレート剤が導入されることが好ましく、本発明において、キレート剤は、抗体１分子に対して1分子又は２分子備えていることがより好ましい。より好ましくは、キレート剤は、抗体１分子に対して１分子備えている。
　本発明の複合体において、キレート剤は、リンカーを介して抗体と接続されていてもよい。リンカーとしては、置換又は無置換のアルキル基、置換又は無置換のヘテロアルキル基、ポリエチレングリコール（PEG）基、ペプチド、糖鎖、ジスルフィド基及びこれらの組み合わせなどが挙げられる。
　好ましくは、キレート剤は、リンカーを介して、抗体を部位特異的に、より好ましくはＦｃ領域に修飾している。この場合、リンカーは、下記式（ｉ）で表される、１３以上１７以下のアミノ酸残基からなるペプチド（以下、「抗体修飾ペプチド」ともいう。）を含み、かつ架橋剤で修飾された抗体修飾ペプチドと抗体との架橋反応によって形成されているものを用いることができる。なお、式（ｉ）において、アミノ酸配列の紙面左側がＮ末端側を示し、アミノ酸配列の紙面右側がＣ末端側を示すものとして説明する。キレート剤がリンカーとして抗体修飾ペプチドを介して抗体と接続される場合、キレート剤と抗体修飾ペプチドが連結する位置は特に限定しないが、例えば抗体修飾ペプチドのN末端又はC末端、好ましくはN末端に直接又は間接的に連結することができる。また、抗体修飾ペプチドのC末端はその安定性の向上等のためにアミド化等の修飾を受けていてもよい。
　(Xa)-Xaa1-(Xb)-Xaa2-(Xc)-Xaa3-(Xd)・・・（ｉ）
式（ｉ）中、Ｘａ、Ｘｂ、Ｘｃ及びＸｄは、それぞれ、連続するａ個のＸ、連続するｂ個のＸ、連続するｃ個のＸ、及び連続するｄ個のＸを表し、
Ｘは、側鎖にチオール基及びハロアセチル基のいずれも有しないアミノ酸残基であり、
ａ、ｂ、ｃ及びｄはそれぞれ独立に１以上５以下の整数で、かつａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を満たし
Ｘａａ１及びＸａａ３は、それぞれ独立に、
側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、又は、
一方が、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、他方が、側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、Ｘａａ１とＸａａ３とが連結しており、
Ｘａａ２は、リシン残基、アルギニン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸であり、架橋剤で修飾されている。
　上記式（ｉ）におけるＸに含まれ得るアミノ酸残基としては、例えば、グリシン、アラニン、フェニルアラニン、プロリン、アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アルギニン、ヒスチジン、セリン、スレオニン、チロシン、メチオニン等のアミノ酸に由来するものが挙げられ、Ｘは、同一の種類のアミノ酸からなるアミノ酸残基であってもよく、それぞれ異なる種類のアミノ酸からなるアミノ酸残基であってもよい。
　式（ｉ）中のａ、ｂ、ｃ及びｄは、上述した範囲の数であれば特に制限はないが、ペプチドと抗体との結合安定性の観点から、ａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を条件として、ａは好ましくは１以上３以下の整数、ｂは好ましくは１以上３以下の整数、ｃは好ましくは３以上５以下の整数、及びｄは好ましくは１以上３以下の整数である。
　Ｘａａ１及びＸａａ３は、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であり、該アミノ酸はそれぞれ同一であってもよく、異なっていてもよい。側鎖にチオール基を有するアミノ酸としては、例えばシステイン、ホモシステインが挙げられる。このようなアミノ酸残基は、ジスルフィド結合によって結合しているか、又は以下の式（４）に示すリンカーを介して、スルフィド基が結合されていることが好ましい。式（４）中、波線部分はスルフィド基との結合部分を示す。
　Ｘａａ１及びＸａａ３は、上述した組み合わせに代えて、Ｘａａ１及びＸａａ３のうち一方が側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であり、他方が側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であってもよい。これらは、チオエーテル結合を介して結合している。ハロアセチル基は、その末端がヨウ素等のハロゲンで置換されており、他方の側鎖におけるチオール基との反応によってハロゲンが脱離して、チオエーテル結合が形成される。
　式（ｉ）で表される抗体修飾ペプチドの具体的なアミノ酸配列は、例えば国際公開第２０１６／１８６２０６号、国際公開第２０１７／２１７３４７号及び国際公開第２０１８／２３０２５７号に記載のペプチドが挙げられ、これらを用いることもできる。
　これらのうち、抗体修飾ペプチドのアミノ酸配列として、以下の配列（１）～（１４）のいずれか一つを有していることが好ましく、以下の配列（１）、（２）、（１３）又は（１４）を有していることが更に好ましい。以下のアミノ酸配列（１）～（１４）において、（Ｘａａ２）はリシン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸を示し、（Ｘａａ１）及び（Ｘａａ３）はともにホモシステイン残基を示す。また、以下のアミノ酸配列（１）～（１４）中、（Ｘａａ１）、（Ｘａａ２）及び（Ｘａａ３）以外のアミノ酸は一文字略号にて表記する。
　（１）DCAYH(Xaa2)GELVWCT　（配列番号９）
　（２）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH　（配列番号１０）
　（３）RCAYH(Xaa2)GELVWCS　（配列番号１１）
　（４）GPRCAYH(Xaa2)GELVWCSFH　（配列番号１２）
　（５）SPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH　（配列番号１３）
　（６）GDDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH　（配列番号１４）
　（７）GPSCAYH(Xaa2)GELVWCTFH　（配列番号１５）
　（８）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCSFH　（配列番号１６）
　（９）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTHH　（配列番号１７）
　（１０）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY　（配列番号１８）
　（１１）SPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY　（配列番号１９） 
　（１２）SDDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY　（配列番号２０）
　（１３）RGNCAYH(Xaa2)GQLVWCTYH　（配列番号２１） 
　（１４）G(Xaa1)DCAYH(Xaa2)GELVWCT(Xaa3)H　（配列番号２２）
（１－４）複合体の製造方法
　本発明の複合体の製造方法について説明する。
　本発明の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体は、緩衝液中で維持することができる。
　本発明の複合体は、例えば、抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体のチロシン残基に放射性核種として放射性ヨウ素（１２３Ｉ、１３１Ｉ）を導入して調製する方法があり得る。また、本発明の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体に放射性ハロゲン核種が安定に結合する置換基を導入し、放射性ハロゲンイオンと反応させ調製する方法があり得る。
　本発明の複合体が、放射性核種がキレートしたキレート剤と抗体との複合体である場合、本発明の複合体の製造方法は、キレート剤と抗体とをコンジュゲーションするコンジュゲーション工程と、放射性核種とキレート剤との錯体を形成する錯体形成工程（放射性核種がキレートしたキレート剤の製造工程）との２つの工程から製造することができる。コンジュゲーション工程は、錯体形成工程の前であってもよいし錯体形成工程の後であってもよい。
　コンジュゲーション工程においては、種々の抗体の化学修飾法が用いられる。具体的には、(ａ)～（ｆ）の方法が挙げられる。
（ａ）アミンカップリング法（N-ヒドロキシスクシミジル(NHS)基で活性化されたカルボキシル基をもつキレート剤またはキレートを用いて抗体のリシン残基のアミノ基を修飾する方法）
（ｂ）抗体のヒンジ部位にあるポリペプチド鎖間のジスルフィド結合（SS結合）を部分的に還元することによって生じるスルフヒドリル(SH)基に対して、SH基に反応性を有するマレイミド基を持つキレート剤またはリンカーで修飾する方法
（ｃ）遺伝子工学によるアミノ酸変異によって、抗体に新たに導入されたシステインに対してマレイミド基をもつキレート剤またはリンカーを修飾する方法
（ｄ）遺伝子工学によるアミノ酸変異によって、抗体に新たに導入されたアジド化リシンのアジド基に、クリック反応を利用して、アルキン（例えばDibenzylcyclooctyne: DBCO）をもつキレート剤またはリンカーを修飾する方法
（ｅ）トランスグルタミナーゼを利用して、抗体の特定の位置に導入されたグルタミンに、リシンの側鎖を有するキレート剤またはリンカーを修飾する方法
（ｆ）前述した（i）で示す抗体修飾ペプチドを有するキレート剤またはリンカーを、抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾する方法
　錯体形成工程では、キレート剤に放射性核種をキレート（錯体形成）させる。ここで使用する放射性核種は、錯体形成効率を高める観点から、電離可能な態様で用いることが好ましく、イオンの態様で用いることが更に好ましい。錯体形成工程は、放射性核種との錯体形成が可能であれば、キレート剤への放射性核種の添加順序は問わない。例えば、水を主体とする溶媒に、放射性核種イオンが溶解した溶液を放射性核種として用いることができる。
　錯体形成後、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、クロマトグラフィー等を用いて、得られた錯体を精製してもよい。
　本発明のキレート複合体の製造方法は、錯体形成工程の後にコンジュゲーション工程が実行されることが好ましい。
　より好ましい態様において、錯体形成工程（Ａ）では、放射性核種とクリック反応可能な第１の原子団を抗体と複合化を可能とするための置換基として有するキレート剤との間で錯体を形成する。次いで、コンジュゲーション工程（Ｂ）では、前述した（i）で示す抗体修飾ペプチドと、クリック反応可能な第２の原子団とを有する抗体修飾リンカーを用いて、Ｆｃ領域を部位特異的に修飾されたペプチド修飾抗体と、工程（Ａ）で得られた錯体形成されたキレート剤との間でクリック反応を実行し、本発明のキレート複合体を得る。
　以下工程（Ａ）及び（Ｂ）について、詳述する。
　クリック反応可能な第１原子団と第２原子団の組み合わせとしては、クリック反応の種類に応じて適切なものが選択され、例えば、アルキンとアジドとの組み合わせ、１，２，４，５－テトラジンとアルケンとの組み合わせ等が挙げられる。これらの原子団は、第１原子団が上記原子団の組み合わせのうち一つを有し、第２原子団が上記原子団の組み合わせのうち第１原子団と異なる一つとなる原子団を有していればよい。キレート剤及び抗体の安定性と、これらの結合効率の向上とを両立する観点から、キレートリンカーがアルキンであり且つ抗体修飾リンカーがアジドであるか、又はキレートリンカーが１，２，４，５－テトラジンであり且つ抗体修飾リンカーがアルケンであることが好ましい。このような原子団の組み合わせによるクリック反応の具体例として、ヒュスゲン環化付加反応、あるいは逆電子要請型ディールスアルダー反応等が挙げられる。
　クリック反応可能な原子団の組み合わせの具体例としては、以下の式に示すように、第１原子団のアルキンとしてジベンジルシクロオクチン（ＤＢＣＯ）を含む原子団（式（１ａ））と、第２原子団のアジドとしてアジド基を含む原子団（式（２ａ））との組み合わせ、あるいは、第１原子団が１，２，４，５－テトラジンを含む原子団（式（１ｂ））と、第２原子団のアルケンとしてｔｒａｎｓ－シクロオクテン（ＴＣＯ）を含む原子団（式（２ｂ））との組み合わせが挙げられる。好ましくは式（１ａ）と式（２ａ）との組合せである。
（式中、Ｒ１は、キレート剤との連結部位を示し、Ｒ２は、抗体における抗体修飾ペプチドとの連結部位を示す。）
（式中、Ｒ３及びＲ４のうち一方がキレート剤又は抗体における抗体修飾ペプチドのいずれか一方との連結部位を示し、他方が水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示し、Ｒ５は、Ｒ３又はＲ４に応じてキレート剤又は抗体における抗体修飾ペプチドのいずれか一方との連結部位を示す。）
　第1原子団のアルキンとして、上記式（１ａ）で表されるジベンジルシクロオクチン（ＤＢＣＯ）を含む原子団を用いる場合は、市販されている種々のＤＢＣＯ試薬が挙げられる。具体的には、例えば、DBCO-C6-Acid、Dibenzylcyclooctyne-Amine、Dibenzylcyclooctyne Maleimide、DBCO-PEG acid、DBCO-PEG-NHS ester、DBCO-PEG-Alcohol、DBCO-PEG-amine、DBCO-PEG-NH-Boc、Carboxyrhodamine-PEG-DBCO、Sulforhodamine-PEG-DBCO、TAMRA-PEG-DBCO、DBCO-PEG-Biotin、DBCO-PEG-DBCO、DBCO-PEG-Maleimide、TCO-PEG-DBCO、DBCO-mPEGなどが選択できるが、好ましくはDibenzylcyclooctyne Maleimideを用いる。
　工程（Ａ）では、より好ましくは、以下の式（ｉｉ）で表される構造を有するキレート剤を用いる。
　Ａ－Ｂ－Ｃ　・・・（ｉｉ） 
　式（ｉｉ）中、Ａは、以下の式（ｉｉａ）で表されるキレート部である。
　式（ｉｉａ）中、Ｒａ、Ｒｂ及びＲｃは、独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ４Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨからなる基であり、ｐは０以上３以下の整数であり、Ｒｄ又はＲｅのいずれか一方が、Ｂとの結合部位（以下の式（ｉｉｂ）中の＊）であり、他方が水素原子であるか、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ４Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨからなる基であり、ｐは０以上３以下の整数である。
　式（ｉｉ）中、Ｂは以下の式（ｉｉｂ）で表される。
　式（ｉｉｂ）中、Ｌａ及びＬｂは、独立して、少なくともアミド結合又はチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｔは０以上３０以下の整数であり、sは０又は１であり、＊はＡとの結合部位であり、＊＊はＣとの結合部位である。
　式（ｉｉ）中、Ｃは、以下の式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体又は式（ｉｉｄ）で表されるテトラジン誘導体のいずれかである。
（式（ｉｉｃ）中、ＸはＣＨＲｋ－＊＊又はＮ－＊＊であり、ＹはＣＨＲｋ又はＣ＝Ｏであり、Ｒｋは独立して水素原子であるか、炭素数１以上５以下のアルキル基であって、ＸがＣＨＲｋ－＊＊で、ＹがＣＨＲｋである場合は、Ｒｋ部分が一緒になってシクロアルキル基を形成してもよく、Ｒｆ、Ｒｇ、Ｒｈ及びＲｉは、独立して、水素原子、ハロゲン原子、炭素数１以上５以下のアルキル基であり、ＲｆとＲｇが一緒になって、若しくはＲｈとＲｉが一緒になって炭化水素環を形成してもよく、＊＊はＢとの結合部位を示し、式（ｉｉｄ）中、＊＊はＢとの結合部位を示し、Ｒｊは水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示す。）
　工程（Ａ）で使用されるキレート剤として、上記式（ｉｉａ）中、Ｒａ乃至Ｒｄが、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨであり、ｐが１であり、ＲｅがＢとの結合部位であるＤＯＴＡ誘導体；又はＲａ乃至Ｒｃが、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨであり、ｐが１であり、ＲｄがＢとの結合部位であり、Ｒｅが水素原子であるＤＯ３Ａ誘導体若しくはＤＯＴＡ－ＧＡ誘導体のいずれかがより好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯＴＡ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが1である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ―＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯＴＡ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体；又はＢは、Ｌａがチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが1である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｄ）で表されるテトラジン誘導体である、ＤＯＴＡ－ＰＥＧｔ－Ｔｚ誘導体が更により好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯ３Ａ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが１である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ―＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯ３Ａ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体が更により好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯＴＡ－ＧＡ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが１である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合を含む若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ－＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯＴＡ－ＧＡ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体が更により好ましい。
　キレート剤と放射性核種とのモル比率は、キレート部／放射性核種として、下限が、１０／１以上が好ましく、１００／１以上がより好ましく、５００／１以上がさらに好ましく、上限が、１００００／１以下が好ましく、８０００／１以下がより好ましく、７０００／１以下がさらに好ましく、例えば、１００／１以上７０００／１以下の範囲が好ましく、より好ましくは５００／１以上７０００／１以下の範囲である。
　錯体形成反応は、溶媒下に行うことが好ましい。溶媒としては、例えば水、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、トリスヒドロキシメチルアミノメタン緩衝液（Ｔｒｉｓ緩衝液）、４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジンエタンスルホン酸緩衝液（ＨＥＰＥＳ緩衝液）、若しくはテトラメチルアンモニウム酢酸緩衝液等の緩衝液等を用いることができる。
　溶媒の液量は特に限定されないが、製造工程における実用性の観点から、工程（Ａ）の開始時において、下限は、０．０１ｍＬ以上、好ましくは０．１ｍＬ以上、より好ましくは１．０ｍＬ以上、さらに好ましくは１０ｍＬ以上、よりさらに好ましくは１００ｍＬ以上であり、上限は、好ましくは１０００ｍＬ以下、より好ましくは１００ｍＬ以下、さらに好ましくは１０ｍＬ以下、よりさらに好ましくは１．０ｍＬ以下であり、例えば、０．０１ｍＬ以上１００ｍＬ以下の範囲である。
　錯体形成反応の反応液中のキレート剤の濃度は、目的とするキレート剤の収率の観点から、それぞれ独立して、工程（Ａ）の開始時において、下限は、好ましくは０．００１μｍｏｌ／Ｌ以上、より好ましくは０．０１μｍｏｌ／Ｌ以上、さらに好ましくは０．１μｍｏｌ／Ｌ以上、より好ましくは１μｍｏｌ／Ｌ以上であり、上限は、好ましくは１０００μｍｏｌ／Ｌ以下、より好ましくは１００μｍｏｌ／Ｌ以下、さらに好ましくは１０μｍｏｌ／Ｌ以下であり、例えば、１μｍｏｌ／Ｌ以上１００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲が挙げられる。
　錯体形成反応の温度としては、例えば室温（２５℃）であってもよく、加熱条件下であってもよいが、キレート剤の分解抑制と錯体の形成効率向上とを両立する観点から、下限は、好ましくは２０℃以上、より好ましくは３０℃以上、さらに好ましくは３５℃以上、よりさらに好ましくは３７℃以上、特に好ましくは４５℃以上であり、上限は、好ましくは１５０℃以下、より好ましくは１２０℃以下、さらに好ましくは１００℃以下、よりさらに好ましくは９０℃以下であり、例えば、３０℃以上１００℃以下の範囲が好ましく、より好ましくは３５℃以上９０℃以下の範囲である。
　反応時間は、上述の反応温度であることを条件として、下限は、好ましくは５分以上、より好ましくは１０分以上、さらに好ましくは２０分以上、よりさらに好ましくは３０分以上、特に好ましくは４５分以上であり、上限は、好ましくは１８０分以下、より好ましくは１５０分以下、さらに好ましくは１２０分以下、よりさらに好ましくは９０分以下、特に好ましくは６０分以下であり、例えば、１０分以上１５０分以下の範囲が好ましく、より好ましくは１０分以上６０分以下の範囲である。
　工程（Ｂ）で使用される抗体は、前述した（i）で示す抗体修飾ペプチドと、クリック反応可能な第２の原子団とを有する抗体修飾リンカーを用いて、上記「（１－２）抗体」の項で詳述したヒト化抗体のＦｃ領域（定常領域）が部位特異的に修飾されたペプチド修飾抗体である。
　抗体修飾ペプチドは、天然アミノ酸及び非天然アミノ酸を問わないアミノ酸を組み合わせて用いて、例えば液相合成法、固相合成法、自動ペプチド合成法、遺伝子組み換え法及びファージディスプレイ法等のペプチド合成法に供することよって製造することができる。ペプチドの合成にあたり、必要に応じて、用いられるアミノ酸の官能基の保護を行ってもよい。これらは、例えば、国際公開第２０１７／２１７３４７号及び国際公開第２０１８／２３０２５７号に記載の方法に準じて行うことができる。
　抗体修飾リンカーは、抗体修飾ペプチドと、以下の式（Ｓ１）で表されるリンカーとが結合したものであってもよい。
　　＊－（（Ｌ１）ｍ－Ｚ）ｋ－Ｌ２－ＡＧ２　・・・（Ｓ１）
（式中、＊は、ペプチドのＮ末端又はＣ末端との結合部位を示し、
　Ｌ１は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）リンカー部であり、
　ｍは、１以上５０以下の整数であり、
　Ｚは、（Ｌ１）ｍとＬ２とを結合する第２リンカー部であり、
　ｋは、０又は１であり、
　Ｌ２は、第２のＰＥＧリンカー部であり、
　ＡＧ２は第２原子団である。）
　前記式（Ｓ１）において、Ｚの構造は、（Ｌ１）ｍとＬ２とを互いに結合するリンカー構造であれば特に限定されないが、例えば１以上５以下のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を含むことができる。この場合、Ｚに含まれるアミノ酸配列は、システイン残基を含むことが好ましく、システイン残基のチオール基とマレイミド基との結合により形成されたチオエーテル基を介してＬ２と結合していることがより好ましい。
　本発明において、Ｌ２を構成するＰＥＧリンカー部は、以下の式（Ｐ２）に示す構造を有していることが好ましい。式（Ｐ２）中、ｎは整数であり、好ましくは１以上５０以下、より好ましくは１以上２０以下、さらに好ましくは２以上１０以下、一層好ましくは２以上６以下である。
　ＰＥＧリンカー部の構造の一端は、市販されているＰＥＧ化試薬に由来する構造又はＰＥＧ化する際に通常用いられる試薬に由来する構造によって修飾されていてもよく、特に限定されないが、例えばジグリコール酸又はその誘導体、マレイミド又はその誘導体に由来する構造が例示される。
　抗体修飾リンカーへの前記第２原子団の導入方法は、上述の方法によって所望のアミノ酸配列を有する抗体修飾ペプチドを得た後、該ペプチドを、溶解補助剤及び還元剤、並びに必要に応じて酸を加えた溶液に溶解し、該溶液に第２原子団として、アジド基又はｔｒａｎｓ－シクロオクテン（ＴＣＯ）を含む原子団の有機溶媒溶液を添加し、室温で攪拌することにより導入する方法が挙げられる。
　第２原子団としてアジド基を含む原子団を導入する場合には、市販のアジド基導入試薬を用いて、常法に従い、ペプチドのＮ末端又はＣ末端に直接アジド基を導入するか、又は上述したリンカー構造を介してアジド基を含む原子団を導入することができる。用いられるアジド基導入試薬としては例えば、シリルアジド、リン酸アジド、アルキルアンモニウムアジド、無機アジド、スルホニルアジド、又はＰＥＧアジド等が挙げられる。
　また、第２原子団としてＴＣＯを含む原子団を導入する場合には、ＴＣＯを含む市販のクリックケミストリー用試薬を用いて、常法に従い、ペプチドのＮ末端又はＣ末端に直接ＴＣＯを導入するか、又は上述したリンカー構造を介してＴＣＯを含む原子団を導入することができる。
　抗体修飾ペプチドと抗体とを結合させて、ペプチド修飾抗体を得る方法は、例えば架橋剤を用いて行うことができる。架橋剤とは、抗体修飾ペプチドと、抗体とを共有結合により連結させるための化学物質であり、その例として、ジスクシンイミジルグルタレート（ＤＳＧ）、ジスクシンイミジルスベレート（ＤＳＳ）等のスクシンイミジル基を好ましくは２以上含む架橋剤、アジプイミド酸ジメチル等のイミド酸部分を好ましくは２以上含む化合物又はその塩からなる架橋剤、並びに３，３’－ジチオビスプロピオンイミド酸ジメチル、ジチオビススクシンイミジルプロピオン酸等のジスルフィド結合を有する化合物又はその塩からなるもの等が挙げられる。このような架橋剤を用いることによって、抗体修飾ペプチドにおけるXaa2のアミノ酸残基と、抗体との間で架橋反応を起こすことができる。抗体における架橋反応は、例えば抗体として本発明のヒト化抗体を用いた場合、Xaa2のアミノ酸残基と、本発明のヒト化抗体におけるＥｕナンバリングに従うＬｙｓ２４６またはＬｙｓ２４８残基との間に部位特異的に生じる。これらのＬｙｓ残基は、本発明のヒト化抗体におけるＦｃ領域に存在する。
　抗体修飾ペプチドと抗体との結合方法は、例えば、上述した抗体修飾ペプチドと、抗体と、架橋剤と、必要に応じて触媒とを、適切な緩衝液中に１０℃以上３０℃以下の環境下で分散させて行うことができる。反応時間は１０分以上２時間程度以下とすることができる。ペプチドと抗体との反応時におけるモル比率は、抗体／ペプチドとして、下限は、好ましくは１／５以上、より好ましくは１／３以上、さらに好ましくは１／１．５以上であり、上限は、好ましくは２０／１以下、より好ましくは１０／１以下、さらに好ましくは５／１以下、よりさらに好ましくは１／１以下、特に好ましくは１／１．７以下であり、例えば１／５以上２０／１以下の範囲が好ましく、より好ましくは１／１．５以上１／１．７以下である。
　以上の工程を経て得られるペプチド修飾抗体は、抗体１分子に対して抗体修飾ペプチド1分子が結合した抗体（以下、「一価抗体」という）と、抗体1分子に対して抗体修飾ペプチド２分子が結合した抗体（以下、「二価抗体」という）とを任意の割合で含有する混合物であるが、これをそのままで以後の工程に供してもよく、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、各種クロマトグラフィー等の方法で、未修飾抗体と、一価抗体と、二価抗体とを分離精製したあとでいずれかの価数の抗体のみを以後の工程に供してもよい。精製の結果、未修飾抗体と他の価数の抗体との分離ができない場合には、これらを含有する混合物として以降の工程に供してもよい。
　未修飾抗体と、一価抗体と、二価抗体とを分離精製する場合は、上記のいずれの精製方法で分離精製してもよいが、種々の充填剤を充填したカラムを用いることが好ましく、抗体等のタンパク質の分離精製に適した充填剤を充填したカラムを用いることがより好ましい。
　抗体等のタンパク質の分離精製に適した充填剤としては、抗体と特異的に結合する、イムノグロブリン結合性タンパク質が水不溶性の基材からなる担体に固定化されたものであれば特に限定されない。イムノグロブリン結合性タンパク質としては、例えば、プロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬなどがあげられる。これらのイムノグロブリン結合性タンパク質は、遺伝子操作した組換え型であってもよく、組換え型のイムノグロブリン結合性タンパク質としては、遺伝子改変型プロテインＡ、遺伝子改変型プロテインＧ、又は、プロテインＡのドメインとプロテインＧのドメインとの融合型が挙げられる。本発明において、少なくとも一価抗体と二価抗体との分離精製に適した充填剤としてはプロテインＡがより好ましく、遺伝子改変型プロテインＡがさらに好ましい。ここで、プロテインＡおよびプロテインＧとは、抗体分子であるＩｇＧと特異的に結合をすることができるタンパク質分子であり、分離された微生物由来の違いにより、プロテインＡ（黄色ブドウ球菌：Staphylococcus aureus）あるいはプロテインＧ（レンサ球菌：Streptococcus属）と分類されるものである。遺伝子改変型プロテインＡとは、プロテインＡのＩｇＧ結合ドメイン（Ｅ、Ｄ、Ａ、Ｂ及びＣドメイン）のうちいずれかのドメインのアミノ酸残基に対して少なくとも１つのアミノ酸変異を導入したプロテインＡであり、本発明においては、少なくとも１つのアミノ酸変異を導入したドメインを多量体化させた遺伝子改変型プロテインＡが好ましく、プロテインＡの少なくとも１つのアミノ酸変異を導入したＡ、Ｂ又はＣドメインの多量体化させたものがより好ましく、２量体以上５量体以下に多量体化させたものがさらにより好ましい。アミノ酸変異は、遺伝子の転写翻訳工程におけるアミノ酸配列又はアミノ酸をコードする塩基配列の置換、欠失、挿入等のいずれの変異に由来するものであってもよい。特に限定されない一例として国際公開第２００３／０８０６５５号、国際公開第２０１１／１１８６９９号に記載される遺伝子改変型プロテインＡ等が挙げられる。
　イムノグロブリン結合性タンパク質が固定化される水不溶性の基材としては、ガラスビーズ、シリカゲルなどの無機担体、架橋ポリビニルアルコール、架橋ポリアクリレート、架橋ポリアクリルアミド、架橋ポリスチレンなどの合成高分子や、結晶性セルロース、架橋セルロース、架橋アガロース、架橋デキストランなどの多糖類からなる有機担体、さらにはこれらの組み合わせによって得られる有機－有機、有機－無機などの複合担体などが挙げられる。
　上述の遺伝子改変型プロテインＡを充填剤として充填したカラムとしては、例えば、株式会社カネカのKanCap（登録商標）シリーズ（KANEKA KanCapA prepacked column）、GEヘルスケア社のHiTrap（登録商標）シリーズ（HiTrap Mabselect、HiTrap Mabselect SuRe、HiTrap Mabselect Xtra）、GEヘルスケア社のHiScreenシリーズ（HiScreen MabselectSuRe）、又は東ソー株式会社のTOYOPEARL（登録商標）シリーズ（TOYOPEARL AF-rProteinA-650F）などとして、市販されている。
　工程（Ｂ）におけるクリック反応に用いるペプチド修飾抗体を分離精製する場合を例に、以下説明する。
　ペプチド修飾抗体は、抗体修飾ペプチドを備えるリンカー（抗体修飾リンカー）によって抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾して修飾抗体を得る抗体修飾工程と、上述のイムノグロブリン結合性タンパク質が固定化された担体を用いて修飾抗体を精製する抗体精製工程とを経て、工程（Ｂ）におけるクリック反応に供される。また、抗体精製工程は、担体に保持される修飾抗体を担体に保持させる保持工程と、担体に保持されない修飾抗体を洗浄する洗浄工程、保持工程で担体に保持された修飾抗体を溶出する溶出工程とを更に含む。
　より具体的には、抗体修飾工程において、抗体修飾リンカーが修飾されない未修飾抗体と、一価抗体と、二価抗体と、を含む混合物として修飾抗体を取得し、抗体精製工程において、未修飾抗体、一価抗体および二価抗体のイムノグロブリン結合性タンパク質に対するそれぞれの相互作用の違いを利用して、未修飾抗体および一価抗体を相対的に多く含む第一の抗体組成物と、二価抗体を相対的に多く含む第二の抗体組成物とをそれぞれ溶出する。すなわち、抗体精製工程のうち、保持工程および洗浄工程では、イムノグロブリン結合性タンパク質との相互作用の程度が低いペプチド修飾抗体（二価抗体）を相対的に多く含む第二の抗体組成物が溶出され、抗体精製工程のうち溶出工程では、イムノグロブリン結合性タンパク質との相互作用の程度が高いペプチド修飾抗体（未修飾抗体及び一価抗体）を相対的に多く含む第一の抗体組成物が溶出される。ここで、「未修飾抗体及び一価抗体を相対的に多く含む」とは、第一の抗体組成物に含まれる未修飾抗体及び一価抗体の合計量が、該抗体組成物に含まれる二価抗体よりも多いことを意味し、好ましくは該抗体組成物に含まれる未修飾抗体及び修飾抗体の全量（１００％）に対して、未修飾抗体及び一価抗体の合計量が５５％以上、６３％以上、７０％以上、８０％以上、又は９０％以上であることを意味し、「二価抗体を相対的に多く含む」とは、第二の抗体組成物に含まれる二価抗体の量が該抗体組成物に含まれる一価抗体より多いことを意味し、好ましくは該抗体組成物に含まれる未修飾抗体及び修飾抗体の全量（１００％）に対して、二価抗体の量が５５％以上、６３％以上、７０％以上、８０％以上、又は９０％以上であることを意味する。
　保持工程では、抗体修飾工程で得られた未修飾抗体、一価抗体および二価抗体の混合物を含有する溶液をカラムに添加して、担体に保持される未修飾抗体および一価抗体をカラムに保持させ、担体に保持されない二価抗体を通過させる。ここで、保持工程で通過した溶液は第二の抗体組成物の一部を構成する。未修飾抗体および一価抗体をカラムに保持しやすくするため、また、これらの凝集若しくは変性を防ぐために、ペプチド修飾抗体の混合溶液を適切な希釈溶媒で希釈してカラムに添加することが好ましい。希釈溶媒としては、ペプチド修飾抗体が溶解し、溶媒中で凝集又は変性しにくい溶媒であれば特に限定されず、水、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、２－アミノ－２－（ヒドロキシメチル）プロパン－１，３－ジオール（Ｔｒｉｓ）緩衝液、２－［４－（２－ヒドロキシエチル)－１－ピペラジニル]－エタンスルホン酸（ＨＥＰＥＳ）緩衝液等の緩衝液等を用いることができ、上述したいずれかの緩衝液を用いることが好ましく、酢酸ナトリウム緩衝液を用いることがより好ましい。希釈溶媒に緩衝液を用いる場合は、緩衝剤の濃度は、下限として１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好ましくは１５ｍｍｏｌ／Ｌ以上、より好ましくは２０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、上限として１０００ｍｍｏｌ／Ｌ以下、好ましくは５００ｍｍｏｌ／Ｌ以下、より好ましくは１００ｍｍｏｌ／Ｌ以下である。また、二価抗体や抗体修飾ペプチドのカラム担体への非特異的結合の低減の観点から、溶出溶媒は塩化ナトリウム、塩化カリウム等の添加剤を含有してもよい。溶出溶媒が含有する添加剤の濃度は特に限定されないが、例えば０．１５ｍｏｌ／Ｌを用いることができる。
　洗浄工程では、洗浄溶媒を用いてカラム内に残存している修飾抗体をカラムから溶出する。上述の保持工程でカラムを通過した溶液と、洗浄工程でカラムから溶出した溶液は、二価抗体を相対的に多く含むので、これらを合わせて第二の抗体組成物として用いることができる。
　洗浄溶媒としては、ペプチド修飾抗体が溶解し、溶媒中で凝集又は変性しにくく、適切なｐＨ緩衝能を持つ緩衝液であれば特に限定されず、酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、２－アミノ－２－（ヒドロキシメチル）プロパン－１，３－ジオール（Ｔｒｉｓ）緩衝液、２－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］－エタンスルホン酸（ＨＥＰＥＳ）緩衝液等の緩衝液等を用いることができ、上述したいずれかの緩衝液を用いることが好ましく、酢酸ナトリウム緩衝液を用いることがより好ましい。洗浄溶媒に用いる緩衝剤の濃度は、下限として、２０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好ましくは３０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、上限としては２００ｍｍｏｌ／Ｌ以下、好ましくは７０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である。また、洗浄溶媒のｐＨは、下限として４．０以上、好ましくは４．５以上、より好ましくは４．８以上、上限として７．４以下、好ましくは６．０以下、より好ましくは５．２以下である。さらに、二価抗体や抗体修飾ペプチドのカラム担体への非特異的結合の低減の観点から、溶出溶媒は塩化ナトリウム、塩化カリウム等の添加剤を含有してもよい。溶出溶媒が含有する添加剤の濃度は特に限定されないが、例えば０．１５ｍｏｌ／Ｌを用いることができる。
　溶出工程では、担体に保持された修飾抗体を溶出溶媒を用いてカラムから溶出する。すなわち未修飾抗体および一価抗体を相対的に多く含む第一の抗体組成物を溶出溶媒を用いてカラムから溶出する。
　溶出溶媒としては、酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、クエン酸緩衝液等の緩衝液等を用いることができる。また、抗体修飾リンカー、未修飾抗体及び修飾抗体のカラム担体への非特異的結合の低減の観点から、溶出溶媒は塩化ナトリウム、塩化カリウム等の添加剤を含有してもよい。溶出溶媒が含有する添加剤の濃度は特に限定されないが、例えば０．１５ｍｏｌ／Ｌを用いることができる。
　溶出溶媒が緩衝剤を含む場合は、緩衝剤の濃度は、下限として、２０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好ましくは３０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、上限としては２００ｍｍｏｌ／Ｌ以下、好ましくは７０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である。また、溶出溶媒のｐＨは、未修飾抗体および一価抗体と、イムノグロブリン結合性タンパク質との相互作用を弱めるため、また、抗体の変性および凝集を防ぐ観点から、下限としてｐＨ３．０以上、上限としてｐＨ４．２以下が好ましい。
　抗体精製工程で取得した第一の抗体組成物又は第二の抗体組成物は、そのまま以降の工程（Ｂ）におけるクリック反応に用いてもよく、含有するペプチド修飾抗体のタンパク質濃度を調節してから工程（Ｂ）におけるクリック反応に用いてもよい。
　工程（Ｂ）におけるクリック反応は、キレート剤が有するクリック反応可能な第１原子団と、ペプチド修飾抗体が有するクリック反応可能な第２原子団との間で実行されるものである。かかるクリック反応によりキレート剤と抗体とを連結する結合基（抗体との複合化を可能とする置換基）が形成される。
　ペプチド修飾抗体と工程（Ａ）で得られた錯体とがクリック反応可能であれば、これらの添加順序は問わず、例えば、溶媒を収容した反応容器に、該錯体及び該ペプチド修飾抗体の一方を添加し、次いで他方を添加して反応させてもよく、該キレート剤及び該抗体の一方を溶媒に分散した分散液に他方を添加して反応させてもよい。あるいは、溶媒を収容した反応容器に、これらを同時に添加して反応させてもよい。
　工程（Ｂ）のクリック反応に用いられる溶媒としては、水を含む溶媒を用いることができ、例えば、水、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、若しくはテトラメチルアンモニウム酢酸緩衝液等の緩衝液等を用いることができる。緩衝液を用いる場合、錯体及び抗体の安定性と、これらの結合効率とを両立する観点から、２５℃におけるｐＨを好ましくは４．０以上１０．０以下、更に好ましくは５．５以上８．５以下とする。
　反応液量は、特に限定されないが、製造工程における実用性の観点から、工程（Ｂ）の開始時において、下限は、０．００１ｍＬ以上が好ましく、０．０１ｍＬ以上がより好ましく、０．１ｍＬ以上がさらに好ましく、１ｍＬ以上がよりさらに好ましく、上限は、１０００ｍＬ以下が好ましく、１００ｍＬ以下がより好ましく、１０ｍＬ以下がさらに好ましく、１ｍＬ以下がよりさらに好ましく、例えば０．００１ｍＬ以上１０００ｍＬ以下の範囲が好ましく、０．１ｍＬ以上１０ｍＬ以下の範囲がより好ましい。
　また、キレート剤及び抗体の反応液中の濃度は、それぞれ独立して、工程（Ｂ）の開始時において、下限として、０．００１μｍｏｌ／Ｌ以上が好ましく、０．０１μｍｏｌ／Ｌ以上がより好ましく、０．１μｍｏｌ／Ｌ以上がさらに好ましく、１．０μｍｏｌ／Ｌ以上がよりさらに好ましく、上限として、１０００μｍｏｌ／Ｌ以下が好ましく、１００μｍｏｌ／Ｌ以下がより好ましく、例えば、０．１μｍｏｌ／Ｌ以上１０００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲が好ましく、１μｍｏｌ／Ｌ以上１００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲であることが、目的とするキレート複合体の収量の観点からより好ましい。
　抗体の意図しない変性を防ぎつつ、反応効率を高める観点から、工程（Ｂ）におけるクリック反応は、反応温度の上限は、５０℃以下が好ましく、４０℃以下がより好ましい。また、反応温度の下限は、反応が進行する温度であれば特に制限はないが、１５℃以上が好ましい。クリック反応の反応時間は、上述の反応温度であることを条件として、好ましくは５分以上、より好ましくは１０分以上であり、２４時間以下が好ましく、より好ましくは２０時間以下であり、例えば、５分以上２４時間以下の範囲が好ましく、より好ましくは１０分以上２０時間以下の範囲である。
　得られたキレート複合体は、これをそのままで用いてもよく、あるいは、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、クロマトグラフィー等を用いて精製してもよい。
　工程（Ａ）及び（Ｂ）によって製造されるキレート複合体は、ＭＵＣ５ＡＣに特異的に結合するヒト化抗体の特定の部位（例えば抗体のＦｃ領域のリシン残基）がキレート剤により特異的に修飾されたものである。このキレート複合体は、該抗体１分子に対し、前記キレート剤を１分子又は２分子備える。キレート剤は、リンカーを介して、本発明の抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している。該リンカーは、キレート剤に接続するキレートリンカー、該リンカーに接続する第１原子団、第１原子団とクリック反応し得る第２原子団、第２原子団に接続する抗体修飾リンカー（上記式（ｉ）で表される抗体修飾ペプチドを含む）で構成される。従って、該リンカーは、第１原子団と第２原子団とに由来する化学構造を有する。このような化学構造としては、下記式（１０ａ）又は（１０ｂ）で表されるトリアゾール骨格含有構造又は下記式（１０ｃ）で表されるピリダジン骨格含有構造が考えられる。式（１０ａ）と式（１０ｂ）は異性体の関係にあるため任意の割合で含まれていてもよい。
　式（１０ａ）及び式（１０ｂ）中、Ｒ１Ａはキレートリンカーとの結合部位を示し、Ｒ２Ａは抗体修飾リンカーとの結合部位を示す。式（１０ｃ）中、Ｒ３Ａ及びＲ４Ａのうち一方は水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示し、他方はキレートリンカーとの結合部位を示し、Ｒ５Ａは抗体修飾リンカーとの結合部位を示す。
（１－５）液状医薬組成物
　本発明の液状医薬組成物は、本発明の複合体、即ち放射性核種と抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体との複合体を含み、対象の生体内への投与に適した形態となっている液状の医薬組成物を指す。ここで、「液状」とは、通常の条件（例えば、大気中、室温／常温）で液体状又は流体状であることをいい、若干の粘性を有する状態も含まれる。具体的には、溶液、懸濁液、分散液、乳状液等が挙げられるがこれらに限定されない。液状医薬組成物は、例えば上述の方法で製造された本発明の複合体を、水を主体とし、且つ生体と略等張の溶媒に溶解させて製造することができる。この場合、必要に応じて、薬学的に許容される他の成分を含んでいてもよい。
　本発明の液状医薬組成物における抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、所望の効果を発揮し得る濃度であり、０．１ｍｇ／ｍＬ以上、好ましくは０．３ｍｇ／ｍＬ以上、より好ましくは０．４ｍｇ／ｍＬ以上、さらに好ましくは０．５ｍｇ／ｍＬ以上であり、５ｍｇ／ｍＬ以下、好ましくは３ｍｇ／ｍＬ以下、より好ましくは２ｍｇ／ｍＬ以下、さらに好ましくは１．５ｍｇ／ｍＬ以下である。本発明の一態様としては、抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、０．１ｍｇ／ｍＬ以上５ｍｇ／ｍＬ以下、好ましくは０．３ｍｇ／ｍＬ以上３ｍｇ／ｍＬ以下、より好ましくは０．４ｍｇ／ｍＬ以上２ｍｇ／ｍＬ以下、さらに好ましくは０．５ｍｇ／ｍＬ以上１．５ｍｇ／ｍＬ以下である。ここで、本発明の複合体が、放射性核種がキレートしたキレート剤と抗体との複合体である場合、上記した抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、キレート剤と複合化している抗体と、キレート剤と複合化していない抗体との総濃度である。図１は、本発明の液状医薬組成物における抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度を説明するための図である。Ａがキレートリンカーの模式図であり、Ｂが放射性核種の模式図であり、ＣがＡのキレートリンカーに放射性核種が錯形成した放射性標識キレーター（中間体）の模式図であり、Ｄが抗体修飾ペプチドの模式図であり、Ｅが未修飾の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（０価抗体）の模式図であり、Ｆが抗体修飾ペプチド１分子で修飾された抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（１価抗体）の模式図であり、Ｇが非標識のキレートリンカーと抗体修飾ペプチドとがクリック反応により結合した抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（非標識１価抗体）の模式図であり、Ｈが放射性核種で標識されたキレートリンカーと抗体修飾ペプチドとがクリック反応により結合した抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の模式図である。本発明の液状医薬組成物の有効成分がＨで示される構造である場合、本発明の液状医薬組成物中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、０価抗体（未修飾抗体）、１価抗体、非標識１価抗体、および、有効成分であるＨで示される構造に含まれる抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の総濃度である。
　なお、本発明の液状医薬組成物中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、製造直後または２５±２℃で保存した状態において、光路長可変型紫外可視分光光度計を用いて、測定波長２８０ｎｍを測定条件に設定して、タンパク質濃度として測定したものである。
　本発明の液状医薬組成物は、安定剤と緩衝剤とを含むことを特徴とする。安定剤としては、アミノ酸、糖、糖アルコール、無機塩が挙げられる。安定剤としてのアミノ酸は、例えば、Ｌ－アルギニンまたはグリシンである。安定剤としての糖は、例えば、スクロース又はトレハロースである。安定剤としての糖アルコールは、例えば、ソルビトールである。安定剤としての無機塩は、例えば、塩化ナトリウムである。緩衝剤としては、例えば、Ｌ－ヒスチジン、クエン酸又はリン酸が挙げられる。これらの中でも、安定剤としてＬ－アルギニンが好ましく、緩衝剤としてＬ－ヒスチジンが好ましく、Ｌ－アルギニンおよびＬ－ヒスチジンを組み合わせて用いることがより好ましい。
　液状医薬組成物中に含められる各アミノ酸は、塩の形態であってもよい。塩の形態としては、酸付加塩や塩基との塩等を挙げることができ、薬理学的に許容される塩を選択することが好ましい。そのような塩としては、例えば、無機酸との塩、有機酸との塩、無機塩基との塩、有機塩基との塩が挙げられる。無機酸との塩としては、例えば、ハロゲン化水素酸（塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸等）、硫酸、硝酸、リン酸等との塩が挙げられる。有機酸との塩としては、例えば、ギ酸、酢酸、プロピオン酸、シュウ酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、クエン酸等との塩が挙げられる。無機塩基との塩としては、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム等のアルカリ金属との塩、カルシウム、マグネシウム等のアルカリ土類金属との塩、アンモニウムとの塩等が挙げられる。有機塩基との塩としては、例えば、エチレンジアミン、プロピレンジアミン、エタノールアミン、モノアルキルエタノールアミン、ジアルキルエタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン等との塩が挙げられる。
　液状医薬組成物における各アミノ酸の濃度は、使用するアミノ酸の種類によって適宜設定される（アミノ酸が塩の場合は遊離体に換算する）。安定剤がＬ－アルギニンの場合、１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、２５ｍｍｏｌ／Ｌ以上または５０ｍｍоｌ／Ｌ以上が好ましく、より好ましくは８０ｍｍоｌ／Ｌ以上、さらに好ましくは９０ｍｍоｌ／Ｌ以上であり、好ましくは１５０ｍｍоｌ／Ｌ以下、１４０ｍｍｏｌ／Ｌ以下または１３０ｍｍｏｌ／Ｌ以下、より好ましくは１２０ｍｍоｌ／Ｌ以下、さらに好ましくは１１０ｍｍоｌ／Ｌ以下である。本発明の一態様としては、Ｌ－アルギニンの濃度は、１０ｍｍоｌ／Ｌ以上１５０ｍｍоｌ／Ｌ以下、２５ｍｍоｌ／Ｌ以上１４０ｍｍоｌ／Ｌ以下、５０ｍｍоｌ／Ｌ以上１３０ｍｍоｌ／Ｌ以下、好ましくは８０ｍｍоｌ／Ｌ以上１２０ｍｍоｌ／Ｌ以下、より好ましくは９０ｍｍоｌ／Ｌ以上１１０ｍｍоｌ／Ｌ以下である。緩衝剤がＬ－ヒスチジンの場合、好ましくは１ｍｍｏｌ／Ｌ以上、１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上または２０ｍｍоｌ／Ｌ以上、より好ましくは３０ｍｍоｌ／Ｌ以上、さらに好ましくは４０ｍｍоｌ／Ｌ以上であり、好ましくは１００ｍｍоｌ／Ｌ以下、９０ｍｍｏｌ／Ｌ以下または８０ｍｍｏｌ／Ｌ以下、より好ましくは７０ｍｍоｌ／Ｌ以下、さらに好ましくは６０ｍｍоｌ／Ｌ以下である。本発明の一態様としては、Ｌ－ヒスチジンの濃度は、１ｍｍоｌ／Ｌ以上１００ｍｍоｌ／Ｌ以下または１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上９０ｍｍｏｌ／Ｌ以下または２０ｍｍｏｌ／Ｌ以上８０ｍｍｏｌ／Ｌ以下、好ましくは３０ｍｍоｌ／Ｌ以上７０ｍｍоｌ／Ｌ以下、より好ましくは４０ｍｍоｌ／Ｌ以上６０ｍｍоｌ／Ｌ以下である。これらのアミノ酸は緩衝剤としての機能を有していてもよい。
　本発明の液状医薬組成物は、界面活性剤を含むことを特徴とする。本発明で用いられる「界面活性剤」は、親水性領域と疎水性領域を有する任意の界面活性剤を包含すると定義され、これには、非イオン性、カチオン性、アニオン性および両性界面活性剤が含まれる。好適な界面活性剤としては、例えば、ポリソルベート２０（モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、Ｔｗｅｅｎ２０、ＣＡＳ番号：９００５－６４－５）、ポリソルベート６０（モノステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、Ｔｗｅｅｎ６０、ＣＡＳ番号：９００５－６７－８）、ポリソルベート６５（トリステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、Ｔｗｅｅｎ６５、ＣＡＳ番号：９００５－７１－４）、ポリソルベート８０（オレイン酸ポリオキシエチレンソルビタン、Ｔｗｅｅｎ８０、ＣＡＳ番号：９００５－６５－６）、ポロキサマー（例としてポロキサマー１８８）等から選択することができる。ポリソルベート８０は、本発明の液状医薬組成物に好ましい。界面活性剤は、用いる界面活性剤の種類によっても異なるが、本発明の液状医薬組成物中、通常０．００１体積％以上、好ましくは、０．０１体積％以上、より好ましくは０．０３体積％以上、さらに好ましくは０．０５体積％以上であり、通常２．０体積％以下、好ましくは、１．０体積％以下、より好ましくは０．５体積％以下、さらに好ましくは０．３体積％以下、いっそう好ましくは０．１体積％以下の濃度で存在することができる。
　本発明の一態様として、界面活性剤は、本発明の液状医薬組成物中、０．００１体積％以上２．０体積％以下、好ましくは０．０１体積％以上１．０体積％以下、より好ましくは０．０３体積％以上０．５体積％以下、さらに好ましくは０．０５体積％以上０．３体積％以下、いっそう好ましくは０．０５体積％以上０．１体積％以下の濃度で存在することができる。
　本発明の液状医薬組成物のｐＨは、３以上が好ましく、５以上がより好ましく、９以下であることが好ましく、８以下であることがより好ましい。一態様として本発明の液状医薬組成物のｐＨは３以上９以下、好ましくは５以上８以下である。
　本発明の液状医薬組成物は、その有効量が、経口的に、又は静脈内、皮下、腹腔内若しくは筋肉内等の非経口的に生体に投与され、疾患の治療、疾患の診断、あるいは病巣の検出等に用いられる。
　ここで投与対象としてはヒト、またはマウス、ラット、サル、モルモット、チンパンジー、ヒツジ、ヤギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウシもしくはウマなどの動物であるが、特に限定されるものではない。好ましくはヒトである。
　好ましい対象疾患としてがんが挙げられる。本発明で治療、診断されるがんは、膵がん、甲状腺がん、肝臓がん、大腸がん、胃がん、食道がん、肺がん、尿路上皮がん、乳がん、子宮頸がん、子宮体がん、卵巣がん、胆管がん、胆道がん、または子宮内膜がんを挙げることができ、特に膵がんへの適用が好ましい。
　ここでの「有効量」とは、投与対象における治療上有効な効果を得ることができる量である。対象に投与するべき有効量は、対象の種類、対象の体重、投与する剤形（注射剤など）および経路（経口投与、非経口投与など）、および疾患（例、がん）の重篤度などにより異なる。医師や獣医師はそれらの因子を考慮して、適切な有効量を決定することができる。
　放射性核種として治療効果を有するもの、具体的にはα粒子放出核種を選択することにより、本発明の液状医薬組成物は、放射性核種内用療法に用いることができる。放射性核種内用療法は、放射性医薬を静注や経口で投与し、がん原発巣や転移巣のような病巣部位にこの放射性薬剤を集積させ、放射性薬剤から放出される放射線により、病巣部位のがん細胞を破壊するというものである。従って、本発明の液状医薬組成物はがんの放射性核種内用療法に好ましく用いることができる。この場合、当該医薬組成物の投与量、用量は、放射性核種の種類、有効成分の有効性、投与の形態・経路、疾患（特にがん）の進行ステージ、患者の体型・体重・年齢、併用する他の疾患の治療薬の種類や量に応じ、適宜選択される。
　また、当該医薬組成物の投与量、用量は、マウスの投与量をヒトに体表面積換算したヒト等価用量（ＨＥＤ；Ｈｕｍａｎ　Ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ　ｄｏｓｅ）を用いることができる。ＨＥＤは、下記式によって求められる。
ＨＥＤ＝ａｎｉｍａｌ　ｄｏｓｅ　ｉｎ　ＭＢｑ／ｋｇ　×　（ａｎｉｍａｌ　ｗｅｉｇｈｔ　ｉｎ　ｋｇ／ｈｕｍａｎ　ｗｅｉｇｈｔ　ｉｎ　ｋｇ）０．３３
　例えば、体重２０ｇのマウスの投与量を用いて、体重６０ｋｇのヒトのＨＥＤを算出すると、放射性核種がヨウ素－１３１である場合は、通常１回あたり１００ＭＢｑ／ｋｇ以下で投与され得る。１回あたり５０ＭＢｑ／ｋｇ以下の用量でも効果を発揮し得る。例えば、放射性核種がイットリウム－９０である場合は、通常１回あたり５０ＭＢｑ／ｋｇ以下で投与され得る。１回あたり３０ＭＢｑ／ｋｇ以下の用量でも効果を発揮し得る。例えば、放射性核種がルテチウム－１７７である場合は、通常１回あたり５０ＭＢｑ／ｋｇ以下で投与され得る。１回あたり４０ＭＢｑ／ｋｇ以下の用量でも効果を発揮し得る。このような投与量は本発明の一実施形態の例示であり、当業者はマウス及びヒトの体重に応じて適宜上記式で換算することができる。
　また、放射性核種がヨウ素－１３１である場合は、非放射性ヨウ素製剤（安定ヨウ素剤）を事前投与することにより、ヨウ素が生理的に集積する甲状腺への毒性を低減させることができる。安定ヨウ素剤としては、ヨウ化カリウム、ヨウ素酸カリウムなどを用いることができる。
　また、本発明の他の態様として、前述した複合体において、放射性核種として、β線放出核種からポジトロンやγ線を放出する放射性核種（６８Ｇａ、６４Ｃｕ、８６Ｙ、８９Ｚｒ、１１１Ｉｎ、１２３I、１２５I、Ａｌ１８Ｆ）を用いた場合には、得られた放射性医薬組成物は、がんの放射性核種内用療法におけるがんの診断に用いてもよい。本発明のがんの診断用医薬組成物は、がんの放射性核種内用療法を行う前の診断に用いてもよいし、がんの放射性核種内用療法を行った後の診断に用いてもよい。がんの放射性核種内用療法を行う前の診断に用いられることによって、β線を放出する放射性核種を備えた本発明の液状医薬組成物を用いたがんの放射性核種内用療法を実行するかどうかの治療選択の判断に用いることができる。また、がんの放射性核種内用療法を行った後の診断に用いられることによって、β線を放出する放射性核種を備えた本発明の液状医薬組成物を用いたがんの放射性核種内用療法の効果があるかどうかの判定や投与量の増減などの治療計画の適正化に用いることができる。
　本発明の液状医薬組成物の収容する保存容器の材質としては、ガラスであってもプラスチックであってもよい。また、本発明の液状医薬組成物の収容する保存容器の形状は、バイアルであってもシリンジであってもよい。無色であっても有色でもあってもよい。
　以上述べた本発明の実施の形態によれば、放射性抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む放射性液状医薬組成物において、保存容器への放射能吸着が抑制されているので、初期の品質を担保することが可能となる。
　本発明の液状医薬組成物を保存容器（好ましくはガラス容器）に収容したときに放射能が保存容器に吸着する割合（容器吸着率）は、使用する放射性核種の種類にもよるが、好ましくは１０％以下、より好ましくは８％以下、さらに好ましくは６％以下である。
　本発明の上記の実施形態は、以下の技術思想を包含するものである。
［１］放射性核種と抗体との複合体を有効成分として含有する液状の医薬組成物であって、
　前記抗体が、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体であり、
　前記組成物中の前記抗体の濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ以上５ｍｇ／ｍＬ以下であり、
　安定剤と、緩衝剤と、界面活性剤と、
を含む、医薬組成物。
［２］前記放射性核種が、α粒子、ポジトロン、β線またはγ線を放出する放射性核種である、［１］に記載の医薬組成物。
［３］前記安定剤がＬ－アルギニンである、［１］または［２］に記載の医薬組成物。
［４］前記緩衝剤がＬ－ヒスチジンである、［１］～［３］のいずれかに記載の医薬組成物。
［５］前記組成物中の前記安定剤がＬ－アルギニンであり、前記緩衝剤がＬ－ヒスチジンであって、
　前記Ｌ－アルギニンの濃度が、１０ｍｍоｌ／Ｌ以上１５０ｍｍоｌ／Ｌ以下であり、
　前記Ｌ－ヒスチジンの濃度が、１ｍｍоｌ／Ｌ以上１００ｍｍоｌ／Ｌ以下である、［１］～［４］のいずれかに記載の医薬組成物。
［６］前記界面活性剤が、ポリソルベート２０、ポリソルベート６０、ポリソルベート６５及びポリソルベート８０からなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［５］のいずれかに記載の医薬組成物。
［７］前記組成物中の、
　前記界面活性剤の濃度が、０．０１体積％以上２．０体積％以下である、［１］～［６］のいずれかに記載の医薬組成物。
［８］前記組成物中の、
　前記界面活性剤の濃度が、０．０１体積％以上０．５体積％以下である、［１］～［７］のいずれかに記載の医薬組成物。
［９］前記放射性核種が８９Ｚｒである、［１］～［８］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１０］前記放射性核種が２２５Ａｃである、［１］～［８］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１１］前記抗体がヒト化抗体である、［１］～［１０］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１１－１］前記ヒト化抗体が、
（１）配列番号１で示されるアミノ酸配列（Ｈ０１）、
（２）配列番号２で示されるアミノ酸配列（Ｈ０２）、
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列（Ｈ０３）、又は
（４）配列番号４で示されるアミノ酸配列（Ｈ０４）
からなる重鎖可変領域と、
（５）配列番号５で示されるアミノ酸配列（Ｌ０１）、
（６）配列番号６で示されるアミノ酸配列（Ｌ０２）、
（７）配列番号７で示されるアミノ酸配列（Ｌ０３）、又は
（８）配列番号８で示されるアミノ酸配列（Ｌ０４）
からなる軽鎖可変領域と、
を有するヒト化抗体である、［１１］に記載の医薬組成物。
［１１－２］前記ヒト化抗体が、
（１）配列番号１で示されるアミノ酸配列（Ｈ０１）からなる重鎖可変領域と、
（７）配列番号７で示されるアミノ酸配列（Ｌ０３）からなる軽鎖可変領域と、
を有するヒト化抗体である、［１１］に記載の複合体。
［１２］前記複合体が、前記放射性核種がキレートしたキレート剤と抗体との複合体である、［１］～［１１］、［１１－１］および［１１－２］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１２－１］前記キレート剤が、リンカーを介して、前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、［１２］に記載の医薬組成物。
［１２－２］前記リンカーが、上記式（ｉ）で表される、１３以上１７以下のアミノ酸残基からなるペプチドを含み、架橋剤で修飾された前記ペプチドと前記抗体の架橋反応によって形成されている、［１２］および［１２－１］に記載の医薬組成物。
［１２－３］前記キレート剤が、上記式（Ａ）で表される化合物又はその塩に由来する構造を有する、［１２］、［１２－１］および［１２－２］に記載の医薬組成物。
［１２－４］前記リンカーが、
　前記キレート剤に接続するキレートリンカー、
　該キレートリンカーに接続する第１原子団、
　前記第１原子団とクリック反応しうる第２原子団、及び
　前記第２原子団に接続し、かつ前記ペプチドを含む抗体修飾リンカー、
を有し、
　前記リンカーが、前記第１原子団及び前記第２原子団に由来する化学構造として上記式（１０ａ）、（１０ｂ）又は（１０ｃ）の化学構造のいずれか１つを含む、［１２］、［１２－１］、［１２－２］および［１２－３］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１３］前記キレート剤１分子が、前記抗体１分子に対して部位特異的に複合化している、［１２］、［１２－１］、［１２－２］、［１２－３］および［１２－４］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１４］前記組成物中の前記抗体の濃度が、前記キレート剤と複合化している抗体と、前記キレート剤と複合化していない抗体との総濃度である、［１２］、［１３］、［１２－１］、［１２－２］、［１２－３］および［１２－４］のいずれかに記載の医薬組成物。
［１５］前記組成物中の前記抗体濃度が、０．４ｍｇ／ｍＬ以上２．０ｍｇ／ｍＬ以下である、［１４］に記載の医薬組成物。
［１６］前記組成物中の前記抗体濃度が、０．５ｍｇ／ｍＬ以上１．５ｍｇ／ｍＬ以下である、請求項［１４］または［１５］に記載の医薬組成物。
［１７］前記組成物中のｐＨが５以上８以下である、［１］～［１６］、［１１－１］、［１１－２］、［１２－１］、［１２－２］、［１２－３］および［１２－４］のいずれかのいずれかに記載の医薬組成物。
［１８］前記組成物中の前記放射性核種の容器への吸着率が１０％以下である、［１］～［１７］、［１１－１］、［１１－２］、［１２－１］、［１２－２］、［１２－３］および［１２－４］のいずれかのいずれかに記載の医薬組成物。
　以下、実施例により、本発明を詳しく説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
製造例１：抗ＭＵＣ５ＡＣヒト化抗体の作製
　国際公開第２０２１／０７５５４４号に記載の製造例１と同様にして、抗ＭＵＣ５ＡＣヒト化抗体（抗体１：Ｈ０１Ｌ０３）を得た。
　ここでＨ０１は、配列番号１に示す重鎖可変領域であり、Ｌ０３は、配列番号７に示す軽鎖可変領域である。以下の実施例で使用された抗体は、重鎖定常領域１（配列番号２３）と軽鎖定常領域１（配列番号２４）、及び上記の抗体１の重鎖可変領域と軽鎖可変領域との組み合わせからなる。
製造例２：ペプチドリンカーによる部位特異的抗体修飾
（１）抗体修飾工程
　国際公開第２０２１／０７５５４４号に記載の製造例２の工程（１）において、ペプチドと製造例１で作製した抗ＭＵＣ５ＡＣヒト化抗体との反応時間を６０分にした以外は同様にして、ペプチド修飾抗体を含む溶液を得た。
（２）ペプチド修飾抗体分離工程
　このペプチド修飾抗体を、２０ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．０）で希釈して，ＰｒｏｔｅｉｎＡカラム（ＧＥヘルスケア社製，ＨｉＴｒａｐ　ＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ）に添加し、０．１５ｍｏｌ／Ｌ塩化ナトリウム含有０．０５ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．７）を流し、ペプチド２分子が修飾されたペプチド修飾抗体を回収した。その後，０．１５ｍｏｌ／Ｌ塩化ナトリウム含有０．０５ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．２）を流し、予め１ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．０）を添加した容器にペプチド１分子が修飾されたペプチド修飾抗体（一価抗体）を回収した（一価抗体回収量３８．６ｍｇ，疎水カラムクロマトグラフィーで測定した未修飾抗体：一価抗体：二価抗体比＝３３．４：６６．６：０．０）。回収した各画分は、限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ９０３０９６）を用いて、０．１ｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）に緩衝液置換した。
　なお、疎水カラムクロマトグラフィーの条件は、以下の通りである。
　カラム：ＢｉｏＰｒｏ ＨＩＣ ＨＴ（４．６ｍｍ×１０ｃｍ，２．３μｍ）
　検出器：紫外吸光光度計（測定波長：２８０ｎｍ）
　移動相Ａ：１．５ｍｏｌ/Ｌ硫酸アンモニウム含有５０ｍｍｏｌ/Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）
　移動相Ｂ：５０ｍｍｏｌ/Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）
　移動相Ｃ：水
　移動相の送液：移動相Ａ，移動相Ｂ及び移動相Ｃの混合比を次のように変えて濃度勾配制御する。
実施例１： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の作製
（１）錯体形成工程
　本実施例に用いられるキレート部（ＤＯＴＡ－ＧＡ－ＤＢＣＯ）の構造を、以下の式（Ｌ１－５）に示す。８９Ｙターゲットにプロトン照射し、０．１ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液に溶解させて調製した８９Ｚｒイオン含有溶液（放射能濃度１１２８６ＭＢｑ／ｍＬ、液量０．１４０ｍＬ）を加熱条件下で、溶媒留去した。キレート部を、１９５ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸－酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に分散させて、キレート部を１．０ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液（キレート部分散液）とした。この分散液０．０２４ｍＬと、０．１ｍｏｌ／Ｌ塩酸０．０８０ｍＬと、１５０ｍｍｏｌ／Ｌゲンチジン酸溶液（１９５ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸－酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に溶解）０．０８０ｍＬと、１９５ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸－酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）０．０５６ｍＬとを，溶媒留去した放射性金属源に加え，加熱条件下で反応させて、８９Ｚｒ錯体溶液を得た。キレート部と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート部：８９Ｚｒイオン＝約２２．５：１であり、反応液の加熱温度は７０℃、加熱時間は９０分間とした。
（２）標識工程
　上述の工程（１）を経て得られた８９Ｚｒ錯体の溶液と、製造例２の工程（１）及び工程（２）を経て製造したペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液とを混合し、３７℃で１．５時間クリック反応させて、８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を得た。
（３）精製工程
　上述の工程（２）で得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む溶液を３本の限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）に分注し、それぞれ１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ５．１、６．１又は７．１）に溶媒置換して精製画分を得た。精製後の８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度は９５％であり、放射化学的収率（減衰補正なし）は５３％であった。８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度及び放射化学的収率の測定方法は以下のとおりとした。すなわち、薄層クロマトグラフィー（Ａｇｉｌｅｎｔ社製、型番：ＳＧＩ０００１、展開溶媒はアセトニトリル：０．１ｍｍｏｌ／Ｌ　ＥＤＴＡ溶液の混液（体積比１：１））をラジオγ－ＴＬＣアナライザー（ｒａｙｔｅｓｔ製、ＭＯＤＥＬＧＩＴＡ Ｓｔａｒ ＰＳ）で測定し、検出された全放射能（カウント）に対する、原点付近に検出されたピークの放射能（カウント）の百分率を放射化学的純度（％）とした。また、標識工程開始時に加えた全放射能に対して、溶媒置換後に回収した放射能の百分率を放射化学的収率（％）とした。
（４）製剤化工程
　上述の工程（３）において得られた１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液で溶媒置換した精製画分に、０．７ｗ／ｖ％ポリソルベート８０含有１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨは５．１、６．１または７．１いずれか同じものを使用）を適量ずつ加え、製剤中のポリソルベート８０の濃度が０．０７ｗ／ｖ％となるよう製剤化し、無色のガラス製ゴム栓付きバイアル（容量６ｍＬ）に４ｍＬずつ充填した。分注した各バイアルにおける製造直後の放射能濃度は６３．８～６８．１ＭＢｑ／ｍＬであった。抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度については、０．５ｍｇ／ｍＬを目標値と設定した製剤は、実測値として０．４３～０．４５ｍｇ／ｍＬであり、１．０ｍｇ／ｍＬを目標値として設定した製剤は、実測値として０．６６～０．６８ｍｇ／ｍＬであった。
　なお、溶液中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．４６を測定条件に設定して測定した。
実施例２： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の作製
　実施例１の工程（１）および工程（２）を行った後、以下の工程を行った。なお、工程（１）で使用した放射能濃度は、７５１２ＭＢｑであった。
（３）精製工程
　工程（２）で得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む溶液を室温付近まで冷却した後、２０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ５．５）４．０ｍＬを加え、陽イオン交換樹脂を充填したカラム（ＨｉＴｒａｐ　ＳＰ　ＦＦ　５ｍＬ）に通液し、８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体をカラムに保持させた。その後、２０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ５．５）２１ｍＬをカラムに通液して洗浄した。このカラムに，１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）４５ｍＬを通液し、０．７ｗ／ｖ％ポリソルベート８０を含む２４０ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）５．０ｍＬと合わせて８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の溶液（４９３８ＭＢｑ、４４ｍＬ）を得た。
　得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度は９７％であり、放射化学的収率（減衰補正なし）は６６％であった。８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度及び放射化学的収率の測定方法は実施例１と同様に行った。
（４）製剤化工程
　孔径０．２２μｍのポリフッ化ビニリデン製メンブランフィルターでろ過し、無色のガラス製のゴム栓付きバイアル（容量６ｍＬ）に、上述の工程（３）で得られた精製画分を適量加え、下記の処方で示す製剤とした。
　なお、当該製剤中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、製造直後において、１．１５ｍｇ／ｍＬであった。溶液中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．５１を測定条件に設定して測定した。
 
８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（製造終了後） ４７１ＭＢｑ
ポリソルベート８０ ２．８ｍｇ
Ｌ－アルギニン塩酸塩 ８４．３ｍｇ
Ｌ－ヒスチジン ３１．０ｍｇ
注射用水 適量
塩酸 適量　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　
合計 ４．２ｍＬ
実施例３： ２２５ Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の作製
（１）キレート修飾工程
　本実施例では上記式（Ｌ１－５）で示すキレート部と同一のキレート部を用いた。このキレート部を、溶媒として０．１ｍｏｌ／Ｌ酢酸－酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０）に分散させて、キレート部を０．３ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液とした。２２６Ｒａターゲットにプロトン照射した後、国際公開第２０２２／０１４５５５号記載の方法で精製することで得られた２２５Ａｃイオン含有溶液（０．１ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液、放射能濃度５．１ＭＢｑ／ｍＬ、液量０．３３３ｍＬ）１．７ＭＢｑ（検定日時放射能から減衰計算した計算値）と、この分散液０．３６０ｍＬと、０．１ｍｏｌ／Ｌ酢酸－酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０）０．５４０ｍＬを混合した反応液を、加熱条件下で反応させて、２２５Ａｃ錯体溶液を得た。キレート部と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート部：２２５Ａｃイオン＝約４６３３０：１であり、反応液の加熱温度は７０℃、加熱時間は１５分間とした。
（２）標識工程
　上述の工程（１）を経て得られた２２５Ａｃ錯体の溶液と、製造例２の工程（１）及び工程（２）を経て製造したペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液とを混合し、３７℃で２時間クリック反応させて、２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を得た。
（３）精製工程
　工程（２）で得られた２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む溶液を、陽イオン交換樹脂を充填したカラム（Ｃｙｔｉｖａ社製、ＨｉＴｒａｐ　ＳＰ　ＦＦ　５ｍＬ）に送液する。カラムに２０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ５．５）１０ｍＬを送液後、１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）１８ｍＬを送液して、精製画分を予め０．７ｗ／ｖ％ポリソルベート８０含有２４０ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）２ｍＬを添加したバイアルに回収した。得られた２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度は９９％であり、放射化学的収率は約４０％であった。２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の放射化学的純度及び放射化学的収率の測定方法は実施例１と同様に行った。
（４）製剤化工程
　無色のガラス製のゴム栓付きバイアル（容量６ｍＬ）に、上述の工程（３）で得られた精製画分を適量加え製剤とした。製造された２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を有効成分として含有する本発明の液状医薬組成物は下記の処方である。
　製剤中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、製造直後において０．８７ｍｇ／ｍＬであった。溶液中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、サイズ排除クロマトグラフィーにて測定した。サイズ排除クロマトグラフィーの測定条件は以下の通りである。
　カラム：ＴＳＫ ｇｅｌ ＵＰ―ＳＷ３０００（４．６×１５０ｍｍ，２．０μｍ）
　検出器：紫外吸光光度計（測定波長：２８０ｎｍ）
　移動相：０．２ｍｏｌ/Ｌアルギニン塩酸塩含有０．１ｍｏｌ/Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）
　流量：毎分０．３ｍＬ
 
２２５Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（上述の工程（２）で製造） ３７ｋＢｑ
ポリソルベート８０ ２．８ｍｇ
Ｌ－アルギニン塩酸塩 ８４．３ｍｇ
Ｌ－ヒスチジン ３１．０ｍｇ
注射用水 適量
塩酸 適量　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　
合計 ４ｍＬ
製造例３：非標識キレート修飾抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（非標識複合体）製剤の作製
（１）複合体作製工程
　実施例１の工程（１）で得られたキレート部分散液を用いて、実施例１の工程（２）と同様にペプチド修飾抗体とクリック反応することにより、標識されていない抗体（非標識複合体）を得た。
（２）精製工程
　３７℃で１．５時間反応させて得られた非標識キレート修飾抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む溶液を限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）に分注し、１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）に溶媒置換し精製画分を得た。
（３）製剤化工程
　上述の工程（２）において得られた精製画分と、１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）と、０.７ｗ／ｖ％ポリソルベート８０含有１００ｍｍｏｌ／Ｌアルギニン含有５０ｍｍｏｌ／Ｌヒスチジン緩衝液（ｐＨ６．１）を適量ずつ混合し、製剤中のポリソルベート８０の濃度が０．０７ｗ／ｖ％となるようポリソルベート８０を適量加え、メンブランフィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＳＬＧＶ０３３ＮＢ）に通液した後に、無色のガラス製のゴム栓付きバイアル（容量６ｍＬ）に４ｍＬずつ分注することで、製剤化した。
　製剤中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、製造直後において１．０ｍｇ／ｍＬであった。溶液中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．４６を測定条件に設定して測定した。
実施例４： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の作製
　放射能濃度３８８０ＭＢｑを使用して実施例１の工程（１）および工程（２）を行った後、実施例２の工程（３）および（４）を行い、８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤を作成した。工程（３）で得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の溶液（１８９０ＭＢｑ、２２ｍＬ）の放射化学的純度は９１％であり、放射化学的収率（減衰補正なし）は４９％であった。また、工程（４）で得られた製剤中の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体の濃度は、製造直後において、０．９６ｍｇ／ｍＬであり、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．４６を測定条件に設定して測定した。その他の処方は以下に示す通りである。
 
８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（製造終了後） １２２ＭＢｑ
ポリソルベート８０ １．４ｍｇ
Ｌ－アルギニン塩酸塩 ４２．２ｍｇ
Ｌ－ヒスチジン １５．５ｍｇ
注射用水 適量
塩酸 適量　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　
合計 ２．０ｍＬ
試験例１：本発明の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体及び非標識複合体を用いた安定性の評価
　放射性核種標識抗体を用いた輸送安定性を評価するには、放射性同位元素等車両運搬規則を遵守する観点から容易に行うことが出来ないため、予備試験として製造例３で得た非標識複合体製剤の輸送安定性（外観、フローイメージング、粒子径測定）を評価した。また、非標識複合体に代えて製造例１で得た抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を用いて製剤化した未修飾（インタクト）の抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を用いて、同様に輸送安定性を評価した。
　各処方を表２に示す。表２中、ＰＳ８０はポリソルベート８０（ＮＯＦ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ製）の略である。処方１－１は、製造例３の非標識複合体製剤の処方であり、処方１－２、１－３、１－４は、インタクトの抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体（製造例１の未修飾抗体）の処方である。なお、溶液中の未修飾抗体の濃度は、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．４５を測定条件に設定して測定した。
　冷蔵保存（温度範囲０．４～２１．７℃）で陸路輸送（約４８時間）後の外観試験（目視にて不溶性異物の有無を確認）の結果を表３に、フローイメージングの結果を表４及び図３に、粒子径測定の結果を表５に、それぞれ示す。
　表３、４に示すとおり、検出された粒子数は、処方１－１、処方１－３、および処方１－４でほぼ同等で、処方１－２が最も多かった。
　また、表５に示すとおり、粒子径と不均一性（％ＰＤ）について、いずれも正常の範囲内の数値であった。
試験例２： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体を含む溶液における界面活性剤添加の効果
　表６に記載の処方に基づいて、被検試料を準備した。処方２－３、２－５～２－７は、実施例１で製剤化した８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣヒト化抗体であり、処方２－１、２－２、２－４は、実施例１で製造した８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣヒト化抗体製剤に対しポリソルベート８０を含んでいない点が異なる。
　各処方について、保存条件を２５±２℃とし、製造直後（製造０～１日後），中間点（製造３～４日後）及び最終点（製造６～７日後）の各３点において、保存容器への放射能吸着の程度（容器吸着率）を調べた。保存容器から、試料溶液全量をマイクロピペッターを用いて抜き取った。ゴム栓に付着した液もマイクロピペッターを用いて除去した。保存容器に残った放射能をラジオアイソトープ・ドーズ・キャリブレーター（型式：ＣＲＣ－１５Ｒ、メーカー：ＣＡＰＩＮＴＥＣ）を用いて測定した。試料を抜き取る前の放射能［Ａ］と保存容器に残った放射能［Ｂ］から、減衰補正（［Ａ］の測定時刻－［Ｂ］の測定時刻＝［Ｃ］）をして、式（１）で示す計算式から容器吸着率を算出した。ただし、［Ｃ］の単位は時間（ｈｏｕｒ）とする。
　処方２－１～２－４の結果を図２に示す。
　界面活性剤であるポリソルベート８０を添加した実施例１において（処方２－３）、容器への放射能吸着が大きく低減された。
　また、処方２－５～２－７の容器吸着率は保存期間を通して１．７～２．１％の範囲であった（表７）。
試験例３： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の容器吸着率
　実施例２で得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の保存容器への放射能吸着の程度（容器吸着率）を調べた。開始点（製造０～２日後）、中間点（製造５～６日後）及び最終点（製造８～９日後）を測定時期とし、保管条件を５±３℃、２５±２℃、４０±２℃とし、試験例２と同様の手法で容器吸着率を測定した。
　その結果、いずれの保管条件でも，保存期間を通して容器吸着率は０．５１～０．９８％の範囲であった（表８）。
試験例４： ２２５ Ａｃ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の容器吸着率
　実施例３において作製した溶液の保存容器への放射能吸着の程度（容器吸着率）を調べた。測定時期を製造４日後、保管条件を５±３℃とし、保存容器から、試料溶液全量をマイクロピペッターを用いて抜き取った。ゴム栓に付着した液もマイクロピペッターを用いて除去した。保存容器に残った放射能をガンマ線スペクトロメータ（型式：ＧＭＸ１０Ｐ４－７０、メーカー：ＯＲＴＥＣ）を用いて測定した。試料を抜き取る前の放射能［Ａ］と保存容器に残った放射能［Ｂ］から、減衰補正（［Ａ］の測定時刻－［Ｂ］の測定時刻＝［Ｃ］）をして、下記の計算式から容器吸着率を算出した。ただし、［Ｃ］の単位は日とする。
　容器吸着率は５．９７％であった。
試験例５： ８９ Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の安定性の評価
　実施例４で得られた８９Ｚｒ標識抗ＭＵＣ５ＡＣ特異抗体製剤の輸送安定性（外観、粒子径測定）を評価した。
　溶液中の未修飾抗体の濃度は、光路長可変型紫外可視分光光度計（ＳｏｌｏＶＰＥ、ＩＮ－ＶＰＥ－Ｓｏｌｏ５、Ｃ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、測定波長２８０ｎｍ、モル吸光係数１．４６を測定条件に設定して測定した。その結果、抗体濃度は０．９６ｍｇ／ｍＬであった。
　冷蔵保存（温度範囲４．８～２４．１℃）で陸路および空路輸送（約４８時間）後の外観試験（目視にて不溶性異物の有無を確認）の結果、輸送前後で異物を認めなかった。また、粒子径と不均一性（％ＰＤ）の輸送前後の数値は、輸送前が平均粒子径：１１．０ｎｍ、％ＰＤ：０．０８８であり、輸送後が平均粒子径：１０．８ｎｍ、％ＰＤ：０．１５９であり、いずれも正常の範囲内の数値であった。
　本出願は、日本で出願された特願２０２２－１７１８３２（出願日：２０２２年１０月２６日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (17)

  1. 　放射性核種と抗体との複合体を有効成分として含有する液状の医薬組成物であって、
    　前記抗体が、ムチンサブタイプ５ＡＣに特異的に結合する抗体であり、
    　前記組成物中の前記抗体の濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ以上５ｍｇ／ｍＬ以下であり、
    　安定剤と、緩衝剤と、界面活性剤と、
    を含む、医薬組成物。
  2. 　前記放射性核種が、α粒子、ポジトロン、β線またはγ線を放出する放射性核種である、請求項１に記載の医薬組成物。
  3. 　前記安定剤がＬ－アルギニンである、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  4. 　前記緩衝剤がＬ－ヒスチジンである、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  5. 　前記組成物中の前記安定剤がＬ－アルギニンであり、前記緩衝剤がＬ－ヒスチジンであって、
    　前記Ｌ－アルギニンの濃度が、１０ｍｍоｌ／Ｌ以上１５０ｍｍоｌ／Ｌ以下であり、
    　前記Ｌ－ヒスチジンの濃度が、１ｍｍоｌ／Ｌ以上１００ｍｍоｌ／Ｌ以下である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  6. 　前記界面活性剤が、ポリソルベート２０、ポリソルベート６０、ポリソルベート６５及びポリソルベート８０からなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  7. 　前記組成物中の、
    　前記界面活性剤の濃度が、０．０１体積％以上２．０体積％以下である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  8. 　前記組成物中の、
    　前記界面活性剤の濃度が、０．０１体積％以上０．５体積％以下である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  9. 　前記放射性核種が８９Ｚｒである、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  10. 　前記放射性核種が２２５Ａｃである、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  11. 　前記抗体がヒト化抗体である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  12. 　前記複合体が、前記放射性核種がキレートしたキレート剤と抗体との複合体である、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  13. 　前記キレート剤１分子が、前記抗体１分子に対して部位特異的に複合化している、請求項１２に記載の医薬組成物。
  14. 　前記組成物中の前記抗体の濃度が、前記キレート剤と複合化している抗体と、前記キレート剤と複合化していない抗体との総濃度である、請求項１２に記載の医薬組成物。
  15. 　前記組成物中の前記抗体の濃度が、０．４ｍｇ／ｍＬ以上２ｍｇ／ｍＬ以下である、請求項１４に記載の医薬組成物。
  16. 　前記組成物中の前記抗体の濃度が、０．５ｍｇ／ｍＬ以上１．５ｍｇ／ｍＬ以下である、請求項１４に記載の医薬組成物。
  17. 　前記組成物中のｐＨが５以上８以下である、請求項１に記載の医薬組成物。
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