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WO2020012781A1 - 植物病原性真菌の検出装置、並びに、それを用いた検出方法および農薬濃度の選択方法 - Google Patents

植物病原性真菌の検出装置、並びに、それを用いた検出方法および農薬濃度の選択方法 Download PDF

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WO2020012781A1
WO2020012781A1 PCT/JP2019/019998 JP2019019998W WO2020012781A1 WO 2020012781 A1 WO2020012781 A1 WO 2020012781A1 JP 2019019998 W JP2019019998 W JP 2019019998W WO 2020012781 A1 WO2020012781 A1 WO 2020012781A1
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WO
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pesticide
detection device
cell wall
fungus
layer
Prior art date
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Application number
PCT/JP2019/019998
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English (en)
French (fr)
Inventor
佳織 山口
志希保 河合
太郎 石堂
慶文 狩集
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Panasonic Intellectual Property Management Co Ltd
Original Assignee
Panasonic Intellectual Property Management Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to JP2020530011A priority patent/JP7289112B2/ja
Priority to SG11202011106RA priority patent/SG11202011106RA/en
Publication of WO2020012781A1 publication Critical patent/WO2020012781A1/ja
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    • G01N2333/37—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from fungi

Definitions

  • the present invention relates to an apparatus for detecting a phytopathogenic fungus having a pesticide concentration selection function, a method for detecting a pathogenic fungus using the same, and a method for selecting a pesticide concentration.
  • phytopathogenic fungi as a property related to plant invasion, after forming and attaching an appressorium on the plant surface, pores such as stoma tissue are searched and hyphae are extended into the plant from there, or plant cell walls from hyphae. It has features such as secretion of decomposing enzymes (cellulase, pectinase).
  • Patent Literature 1 discloses a fungal weighing method using a microporous membrane support.
  • Non-Patent Document 1 pseudohyphae of Phytophthora sojae, which is a kind of phytopathogenic oomycetes, are trying to dive below the horizontal growth, and PET (polyethylene terephthalate) having a pore of 3 ⁇ m. It discloses piercing the membrane.
  • Patent Document 2 a method for determining phytopathogenic oomycetes
  • Patent Document 3 a technique has been reported in which the propagation of bacteria is observed at a time by scanning using a plate having a plurality of wells, and a fixation test of bacteria or fungi and a drug susceptibility test are performed.
  • Patent Documents 1 and 2 and Non-Patent Document 1 enable selective detection of phytopathogenic fungi. It is necessary to suppress or eliminate the growth of pathogenic fungi by dosing.
  • the pathogen is presumed from the symptoms and administration is performed, or the administration is performed after separating and identifying the pathogen, and the spread cannot be prevented The situation happens.
  • measures such as excessive pre-medication of pesticides may be taken on the premise of the onset, which has led to heavy labor in farm management work. This overdose is believed to have further led to the emergence of resistant bacteria, and even with efforts, the disease could not be suppressed, resulting in reduced yields and crop abandonment. is there.
  • the present invention has been made in view of such circumstances, and its purpose is to selectively determine whether a test sample contains a phytopathogenic fungus, and to provide an effective pesticide against the phytopathogenic fungus and
  • An object of the present invention is to provide a detection device, a detection method, and a method for selecting an effective pesticide concentration, which can present the effective pesticide concentration before the onset of a fungal disease.
  • a detection device includes an artificial cell wall, a test sample input unit provided at an upper portion of the artificial cell wall, a device including a medium layer provided at a lower portion of the artificial cell wall, It is provided with an observation unit for observing the layer from the lateral direction, that the medium layer contains a different pesticide drug substance, and, in the medium layer, contains a reference amount and a concentration of a pesticide diluted from the reference amount.
  • the method is characterized in that a plurality of layers are laminated in order from a layer having a high concentration from the bottom to the top, and a layer containing no pesticide is provided as a top layer.
  • an apparatus and a method capable of easily and safely selectively detecting phytopathogenic fungi.
  • an effective pesticide and pesticide concentration can be selected before the onset of a fungal disease.
  • FIG. 1 is a schematic sectional view showing a part of a detection device according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a schematic cross-sectional view illustrating an example of an artificial cell wall provided in a device in the detection device of the present embodiment.
  • FIG. 3 is a top view (top) and a cross-sectional view (bottom) showing an example of the detection device of the present embodiment.
  • FIG. 4 is a cross-sectional view (top) and a top view (bottom) illustrating an example of a detection device according to a further embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is a schematic diagram showing an example of the detection operation of the detection device of the present embodiment shown in FIG.
  • FIG. 6 is a schematic diagram illustrating an example of a detection operation of the detection device of the present embodiment illustrated in FIG.
  • FIG. 7 is a micrograph showing the result of the example.
  • the apparatus for detecting a phytopathogenic fungus includes an artificial cell wall 2, a test sample input unit 3 provided above the artificial cell wall 2, and an artificial cell wall 2.
  • the device 1 includes a culture layer 6 provided at a lower portion.
  • the device 1 in this embodiment can be paraphrased as an incubator.
  • the apparatus of the present embodiment has an optical observation unit 7 for detecting hyphal growth in each device as shown in FIGS. 5 and 6 described below.
  • the culture medium layer 6 contains different pesticidal active ingredients, and is composed of a plurality of layers laminated on the culture medium container 4. That is, in the medium layer, a plurality of layers containing a reference amount and a concentration of the pesticide diluted from the reference amount are stacked in order from a layer having a higher concentration from bottom to top, and further include a pesticide as a top layer. There are no layers. For example, in FIG. 1, there is a pesticide-free solid medium 61 at the top, and a medium 62 containing 1/50 of the reference amount of pesticide and a 1/5 amount of the reference amount of pesticide below this. And a medium 62 containing a reference amount of a pesticide.
  • the test sample input unit 3 is a container for inputting the test sample 5, and the bottom surface of the test sample input unit 3 is formed by the artificial cell wall 2.
  • the artificial cell wall 2 preferably includes at least a substrate 21 having a through hole 22 and a cellulose membrane 23 provided on one surface of the substrate 21.
  • the through-hole 22 penetrates from the front surface to the rear surface of the substrate 21, and the through hole preferably has a hole diameter of 2 to 7 ⁇ m (cross-sectional area of 4.5 to 38.5 ⁇ m 2 ).
  • the pore size is within the above range, the target pathogenic fungus can be more reliably and selectively detected.
  • the thickness of the cellulose membrane 23 is preferably 0.5 to 2 ⁇ m.
  • the non-phytopathogenic fungi that do not penetrate the cellulose membrane 23 may be reduced.
  • the pathogenic fungus targeted in the present embodiment selectively appears on the back surface of the cellulose membrane 23, and thus it is considered that the non-plant pathogenic fungus can be selectively detected.
  • the thickness of the substrate 21 is not particularly limited, but is preferably, for example, about 5 to 150 ⁇ m.
  • the test sample 5 is supplied into the test sample input unit 3.
  • the test sample 5 contains a phytopathogenic fungus
  • the phytopathogenic fungus exists on the front surface of the substrate 21.
  • the test sample 5 is a solid, liquid, or gas.
  • the test sample 5 is desirably a solid or a liquid.
  • solid test samples 5 are soil or crushed plants.
  • Other examples are agricultural materials such as vermiculite, rock wool, or urethane.
  • liquid test sample 5 are used to wash agricultural water, solutions used for hydroponics, liquids used to wash plants, liquids extracted from plants, agricultural materials. Liquid after cleaning, or liquid used for washing clothes or shoes of an operator.
  • a pathogenic fungus harming the plant is pre-cultured, and the culture solution is used as a test sample 5. It can also be used.
  • the phytopathogenic fungi targeted by the detection device of the present embodiment include, for example, tomato pathogenic fungi and fungi belonging to the genera Fusarium, Pyricularia, or Colletotrichum.
  • tomato pathogenic fungi include tomato gray mold (Botrytis cinerea), tomato soot mold (Pseudocercospora fuligena), and tomato leaf mold (Passalora ul fulva).
  • phytopathogenic fungi include Fusarium @ oxysporum, Pyricularia @ grisea, or Colletotrichum @ gloeosporoides. These phytopathogenic fungi cause root rot disease, blast, anthrax, gray mold, and the like. These phytopathogenic fungi kill plants. Examples of non-phytopathogenic fungi are Saccharomyces cerevisiae, Penicillium chysogeum, or Aspergillus oryzae.
  • the target plant is preferably a tomato, and as the phytopathogenic fungi, tomato gray mold (Botrytis cinerea), tomato soybean mold (Pseudocercospora @ fuligena), and tomato leaf mold (Passalora) fulva).
  • plant pathogenicity means having plant pathogenicity.
  • plant non-pathogenic means not pathogenic to plants. If the fungus is pathogenic, but not pathogenic to the plant, then the fungus is "plant non-pathogenic”. In other words, a fungus is "plant non-pathogenic” if it does not adversely affect the plant.
  • the prefix "non” included in the term “plant non-pathogenic” does not modify "plant” and the prefix "non” modifies "pathogenic”.
  • the culture medium layer 6 provided below the artificial cell wall 2 is composed of a plurality of layers stacked in the culture medium container 4 as described above.
  • the medium used as the medium layer 6 is not particularly limited as long as it is a culture solution in which fungi can be cultured, and a general medium or culture solution can be used.
  • a culture solution may be added not only to the medium layer 6 but also to the test sample 5.
  • the medium container 4 is preferably a container made of glass or a transparent resin for easy observation.
  • the shape is not particularly limited, and may be cylindrical or rectangular.
  • the pesticidal drug substance is put into the medium layer 6 together with the medium.
  • the pesticide bulk is different for each device.
  • any pesticidal active ingredient can be used without any particular limitation as long as it is a pesticide that is desired to be examined for an effective pesticide for a desired plant.
  • kasugamycin Koreanuyujieiemuwaishiainhydrochloridemonohydrate
  • Mepapiniumu Mepapiniumu
  • penthiopyrad penthiopyrad
  • triflumizole triflumizole
  • difenoconazole Difenoconazole
  • Fenpirazamin Fenpyrazamine
  • iprodione Iprodione
  • fludioxonil Fludioxonil
  • TPN tetrachloroisophthalonitrile
  • TPN iminoctadine albesilate
  • Iminoctadinealbesilate captan
  • Captan thiophanate-methyl
  • Tiophanete-methyl benomyl
  • Dienomyl dietofencarb
  • azoxystrobin Azoxystrobin
  • the medium layer 6 is composed of a plurality of layers, each of which contains a different concentration of the pesticide active ingredient.
  • the number of layers contained in the culture medium layer 6 is four in FIG. 1, but is not particularly limited, and can be appropriately set as necessary.
  • the concentration of the pesticide contained in each layer the lowermost layer is set as a reference amount, and a plurality of layers containing a concentration of the pesticide diluted from the reference amount are stacked in order from the bottom to the top with the higher concentration, and the uppermost layer As long as a layer containing no pesticide is included, the concentration of the pesticide in the intermediate layer can be appropriately set.
  • the detection device of the present embodiment after a certain culture period, by observing whether or not phytopathogenic fungi have appeared in the culture medium layer in contact with the back surface of the cellulose membrane 23 of the artificial cell wall 2, the presence in the sample is improved.
  • the presence or absence of a phytopathogenic fungus can be detected, the presence or absence of the fungus can be used to determine whether the pesticide drug substance contained in the device is effective, and the hypha of the fungus can grow to any medium layer.
  • the effective concentration of the pesticide can be determined.
  • the detection apparatus of the present embodiment includes an optical observation unit 7 as shown in FIGS.
  • an optical microscope or the like can be used as the optical observation unit 7 as shown in FIGS.
  • the fungal culture period is not particularly limited, and varies depending on the number of laminated pesticide culture media and the thickness of each layer, but is usually preferably 72 hours or more. Further, the culture temperature is preferably about 20 to 28 ° C.
  • the detection apparatus of the present embodiment includes a plurality of devices 1 at least composed of the test sample input unit 3, the artificial cell wall 2 and the medium layer 6 as shown in FIG.
  • the arrangement and arrangement of the plurality of devices 1 may be, for example, arranged on a circumference as shown in FIG. 3 or in series as shown in FIG.
  • the arrangement of the device 1 is not particularly limited as long as the optical observation unit is arranged so that the medium layer can be observed from the side.
  • FIG. 3 is a top view (top) and a cross-sectional view (bottom) when the device 1 of the present embodiment is arranged on a circumference.
  • FIG. 4 is a cross-sectional view (top) and a top view (bottom) when the devices 1 of the present embodiment are arranged in series.
  • the detection device of the present embodiment preferably has a plurality of devices as described above, and among the plurality of devices, the medium layer of at least one device does not contain the pesticide active ingredient. Is preferred.
  • the device shown as "blank" in FIGS. 5 and 6 described below does not contain the pesticide drug substance.
  • One or more blank devices can be provided. It is preferable that the position of the blank device be grasped and determined.
  • the detection device of the present embodiment when a plurality of devices are arranged on a circumference, as shown in FIG. 5, the devices arranged on the circumference rotate in the horizontal direction, and The optical observation unit 7 is fixed to a specific place, and when each device 1 reaches the optical observation unit 7 by rotation, it is determined whether bacteria have appeared on the culture medium layer 6 from the lateral direction of the device. It is preferable to observe.
  • the device may be observed by moving the optical observation unit 7 instead of the device to the left and right. .
  • optical observation unit 7 As described above, in any case, only one optical observation unit 7 needs to be installed, and after that, the device is rotated or the optical observation unit 7 is moved to determine whether or not the fungus exists in the medium layer 6. Can be detected.
  • detection starts with a blank (no pesticide drug substance) device.
  • the blank is first observed, and if no hyphal growth is observed, the test sample can be determined to be free of pathogenic fungi and further detection can be stopped. Only when the growth of hyphae is recognized in the blank, it is possible to sequentially detect whether each pesticidal drug substance is effective or not, so that the cost can also be reduced efficiently.
  • kasugamycin, mepanipyrim, penthiopyrad, azoxystrobin, polyoxin, triflumizole, diphenoconazole, iprodione, thiophanate methyl, benomyl, and dietofencarb are preferably arranged in this order.
  • the number of pesticidal drug substances differs depending on the target pathogenic fungus. For example, when only tomato soybean mold fungus (Pseudocercospora @ fuligena) is to be detected, the number of pesticide drug substance can be reduced to five. .
  • an effective pesticide and an effective concentration of the pesticide can be presented based on the growth status of the fungus in the device. It is also considered that the type of pathogenic fungus can be specified from the effect pattern of the pesticide. Furthermore, by accumulating and organizing the data of the detection results, it is thought that the emergence of resistant strains in fungi can be suggested.
  • the present invention includes a method for detecting a phytopathogenic fungus, comprising selectively detecting a phytopathogenic fungus using the above-described detection device.
  • the method for detecting a phytopathogenic fungus of the present embodiment is not particularly limited in other steps as long as the above-described detection device is used.
  • a step of loading a test sample into the test sample loading section 3 of the detection device A step of allowing the test sample to stand in the detection device (culturing step); a step of observing the lower portion of the artificial cell wall 2 (cellulose membrane 23) of the detection device after standing; When a fungal hypha is observed in the medium layer 6, it is determined that the test sample contains a phytopathogenic fungus.
  • the present invention includes a method for selecting a pesticide concentration by selecting an effective pesticide active ingredient and a pesticide concentration using the above-described detection device.
  • the method for selecting the pesticide concentration of the present embodiment is not particularly limited with respect to the other steps as long as the above-described detection device is used.
  • a step of introducing a different pesticidal active ingredient into a layer other than the top layer of the medium layer 6 of a plurality of devices other than the blank at a reference amount and a concentration diluted from the reference amount A step of introducing the test sample 5 into the test sample input section 3 of the blank device, a step of allowing the test sample 5 to stand in the detector (culturing step), and after standing, observe the medium layer 6 of the detector.
  • a fungus is observed in the medium layer 6, it is determined that the test sample 5 contains phytopathogenic fungi, the device is moved, and in the medium layer 6 in the device containing the next agrochemical substance, The process of observing to which layer the fungus is growing mycelia, It is preferable to include at least a step of determining that the concentration of the pesticide in the layer where the growth of the mycelium has stopped in the medium layer 6 is an effective concentration of the pesticide for the fungus.
  • An apparatus for detecting a phytopathogenic fungus includes an artificial cell wall, a test sample input unit provided at an upper part of the artificial cell wall, and a culture medium layer provided at a lower part of the artificial cell wall.
  • the device comprising an observation unit for observing the culture medium layer from the lateral direction, that the culture medium layer contains a different pesticide drug substance, and, in the culture medium layer, diluted from a reference amount and a reference amount
  • a plurality of layers containing a pesticide at a high concentration are stacked in order from the bottom to the top with a high concentration, and a layer containing no pesticide is provided as an uppermost layer.
  • the artificial cell wall has a through-hole having a pore diameter of 2 to 7 ⁇ m, a substrate having a thickness of 5 to 150 ⁇ m, and a cellulose membrane having a thickness of 0.5 to 2 ⁇ m provided on one surface of the substrate. It is preferable to provide at least. Thereby, it is considered that the above-described effects can be obtained more reliably.
  • a plurality of the devices are arranged on a circumference or in series. This makes it easier to observe the culture layer of each device from the lateral direction.
  • the culture medium layer of at least one device does not contain the pesticidal drug substance.
  • the device move, and that the observation unit is fixed, and that the observation unit observes each device from a lateral direction. Thereby, it is considered that the above-described effects can be obtained more efficiently.
  • the target plant is tomato
  • the detection target is tomato gray mold (Botrytis cinerea), tomato soybean mold (Pseudocercospora fuligena), and tomato leaf mold (Passalora fulva). It is preferably at least one selected from Thereby, it is considered that the above-described effects can be further exhibited.
  • the pesticide drug substance contained in the culture medium layer may be kasugamycin hydrochloride monohydrate, mepapinium (Mepanipyrim), penthiopyrad (Penthipopyrad), triflumizole (Triflumezol), difenozol (difenozol), difenozol (c).
  • a method for detecting a phytopathogenic fungus according to another aspect of the present invention includes selectively detecting a phytopathogenic fungus using the above-described detection device.
  • a method for selecting a pesticide according to still another aspect of the present invention includes selecting an effective pesticide concentration using the detection device described above.
  • Botrytis cinerea a kind of plant pathogen and a fungus of tomato gray mold, was inoculated into potato dextrose agar medium (Difco® Potato Dextrose Agar). The medium was then left for 1 week at a temperature of 25 degrees Celsius. Botrytis cinerea was given by Associate Professor Shimizu of Gifu University Faculty of Applied Biological Sciences. Next, a potato dextrose agar medium cultured with Botrytis cinerea, in which mycelia had sufficiently grown, was allowed to stand under black light irradiation for 4 days or more, and then allowed to stand at room temperature for 2 weeks or more to promote spore formation.
  • Captan (manufactured by Tokyo Kasei Kogyo Co., Ltd. (TCI)) was added at different input amounts (concentrations), and three layers of the original medium were prepared.
  • Captan was prepared as a DMSO (SIGMA-ALDRICH) solution having a concentration 100 times higher than the standard working concentration, and 0, 2, and 10 ml were added and mixed per 1 L of a potato dextrose agar medium to obtain a captan concentration of 0 (no compound).
  • Three levels of medium were made, one-fifth of the reference usage, the reference usage.
  • the potato dextrose agar medium containing the above three levels of captan was laminated from the bottom in the order of a captan reference amount medium, a one-fifth medium, and a captan-free medium, and formed into a cylindrical or square glass.
  • the device was cut out by a member to obtain a device of the example.
  • the above tests show that according to the present invention, it is possible to selectively determine whether a test sample contains a phytopathogenic fungus and to present an effective pesticide concentration for the phytopathogenic fungus.
  • the results can show the possibility of reducing the amount of pesticides.
  • the device for detecting a phytopathogenic fungus having a pesticide selection function of the present disclosure selectively determines whether or not a test sample contains a phytopathogenic fungus, and determines the effective pesticide concentration for the phytopathogenic fungus, Can be presented before disease onset. For this reason, the detection device of the present disclosure can be suitably used in various technical fields such as agriculture.

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Abstract

本開示は、試験試料が植物病原性真菌を含有するかどうかを選択的に判定するとともに、当該植物病原性真菌に対する有効農薬および有効農薬濃度を、真菌性病害発症前に提示できる、植物病原真菌検出装置、並びに、植物病原性真菌の検出方法及び有効農薬濃度の選択方法を提供する。本開示による検出装置は、人工細胞壁と、前記人工細胞壁の上部に設けられた試験試料投入部と、前記人工細胞壁の下部に設けられた培地層を備えるデバイスと、前記培地層を横方向から観察する観察部を備えており、前記培地層にそれぞれ異なる農薬原体が含まれていること、並びに、前記培地層において、基準量及び基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が、下から上に向けて濃度の高い層から順に積層されており、さらに最上層として農薬を含まない層が備えられていることを特徴とする。

Description

植物病原性真菌の検出装置、並びに、それを用いた検出方法および農薬濃度の選択方法
　本発明は、農薬濃度選択機能を有する植物病原性真菌の検出装置、並びに、それを用いた病原性真菌の検出方法および農薬濃度の選択方法に関する。
　植物病原性真菌については、植物侵入性に係る性質として、植物表面に付着器を形成して付着後、気孔組織等細孔を探してそこから菌糸を植物体中に伸ばす、あるいは菌糸から植物細胞壁分解酵素（セルラーゼ、ペクチナーゼ）を分泌するなどの特徴がある。
　これらを利用して、例えば、特許文献１では、微多孔膜支持体を用いた真菌計量方法を開示している。また、非特許文献１では、植物病原性卵菌の１種であるＰｈｙｔｏｐｈｔｈｏｒａ　ｓｏｊａｅの偽菌糸が、水平に成長するより下方向にあたかも潜ろうとすること、及び３μｍの孔を有するＰＥＴ（ポリエチレンテレフタレート）膜を貫通することを開示している。
　また、この性質に着目し、本発明者らは既に、植物病原性卵菌類の判定方法を提案している（特許文献２）。
　さらに、複数のウェルを有するプレートを用いてスキャニングすることによって、菌繁殖を一度に観察し、細菌または真菌の固定検査や薬剤感受性検査を行うという技術も報告されている（特許文献３）。
特開２００５－２８７３３７号公報 特許第６１６７３０９号 特開２０１５－１７７７６８号公報
　背景技術で示した技術（特許文献１～２および非特許文献１）は、植物病原性真菌の選択的検知を可能にするが、植物栽培現場においては、病原性真菌検知後の対応、即ち農薬投薬による病原性真菌の成長抑制、排除が必要とされる。この点、これまでに知られている従来技術では、病原性真菌によって発症した後にその症状から病原菌を推定し投薬を行う、あるいは病原菌を分離・同定後に投薬を行うことになり、蔓延が防げない状況が起こってしまう。あるいは、発症を前提に農薬の過剰な事前投薬を行うなどの対応が取られることもあり、農場管理作業の重労働化をもたらしている。この過剰投薬は、さらに、耐性菌の出現を促す結果に繋がっていると見られ、労力をかけても病気を抑えられず、収穫減・作物放棄に陥る例が見られているのが現状である。
　また、特許文献３の技術では、有効な農薬や農薬濃度の選択について検討されてはおらず、さらに検知方法が水平となっているため、農薬濃度を選択する場合などは効率的であるとは言えない。
　本発明は、このような実情に鑑みてなされたものであり、その目的は、試験試料が植物病原性真菌を含有するかどうかを選択的に判定するとともに、当該植物病原性真菌に対する有効農薬および有効農薬濃度を、真菌性病害発症前に提示できる、検出装置、並びに、検出方法及び有効農薬濃度の選択方法を提供することである。
　本発明者等は、鋭意検討した結果、下記構成の検出装置によって上記課題を解消し得ることを見出し、かかる知見に基づいて更に検討を重ねることによって本発明を完成した。
　すなわち、本発明の一つの局面に関する検出装置は、人工細胞壁と、前記人工細胞壁の上部に設けられた試験試料投入部と、前記人工細胞壁の下部に設けられた培地層を備えるデバイスと、前記培地層を横方向から観察する観察部を備えており、前記培地層にそれぞ
れ異なる農薬原体が含まれていること、並びに、前記培地層において、基準量及び基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が、下から上に向けて濃度の高い層から順に積層されており、さらに最上層として農薬を含まない層が備えられていることを特徴とする。
　本発明によれば、簡易かつ安全に、植物病原性真菌を選択的に検出できる装置および方法を提供することができる。また、本発明によって、真菌性病害の発症前に有効な農薬及び農薬濃度を選択することができる。それにより、無駄な農薬を散布する労力や過剰投薬などを抑えることに加え、不必要に高濃度の農薬を散布することを防げ、農薬量を削減できる可能性があり、残留農薬の抑制などに有効である。
図１は、本発明の一実施形態に関する検出装置の一部を示す概略断面図である。 図２は、本実施形態の検出装置におけるデバイスが備える人工細胞壁の一例を示す概略断面図である。 図３は、本実施形態の検出装置の一例を示す上面図（上）および断面図（下）である。 図４は、本発明のさらなる実施態様に係る検出装置の一例を示す断面図（上）及び上面図（下）である。 図５は、図３に示す本実施形態の検出装置の検出動作の一例を示す概略図である。 図６は、図４に示す本実施形態の検出装置の検出動作の一例を示す概略図である。 図７は、実施例の結果を示す顕微鏡写真である。
　以下、本発明に係る実施形態について具体的に説明するが、本発明は、これらに限定されるものではない。
　（検出装置）
　本実施形態に係る、植物病原性真菌を検出する装置は、図１に示すように、人工細胞壁２と、前記人工細胞壁２の上部に設けられた試験試料投入部３と、前記人工細胞壁２の下部に設けられた培養層６とを有するデバイス１を有している。本実施形態におけるデバイス１は、培養器と言い換えられることができる。さらに、本実施形態の装置は、後述の図５および図６に示されるような、各デバイス内での菌糸生長を検出する光学的観察部７を有している。
　前記培地層６はそれぞれ異なる農薬原体が含まれており、培地容器４に積層された複数の層からなる。すなわち、前記培地層においては、基準量及び基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が、下から上に向けて濃度の高い層から順に積層されており、さらに最上層として農薬を含まない層が備えられている。例えば、図１では、一番上には無農薬固体培地６１があり、その下に順に、基準量の１／５０量の農薬を配合した培地６２、基準量の１／５量の農薬を配合した培地６３、および基準量の農薬を配合した培地６２が積層されている。
　試験試料投入部３は試験試料５を投入するための容器であり、試験試料投入部３の底面は、人工細胞壁２で形成されている。
　人工細胞壁２は、図２に示すように、貫通孔２２を有する基板２１と、前記基板２１の片面に設けられたセルロース膜２３とを少なくとも備えていることが好ましい。このような人工細胞壁を使用することによって、標的とする植物病原性真菌を選択的に検出することがより容易になる。
　前記貫通孔２２は、基板２１の表側の面から裏側の面まで貫通しており、当該貫通孔の孔径は２～７μｍ（断面積４．５～３８．５μｍ２）であることが好ましい。孔径が前記範囲であることによって、標的の病原性真菌をより確実に選択的に検出することができる。
　また、標的の病原性真菌をより確実に選択的に検出するためには、セルロース膜２３の厚みも調整することが好ましい。具体的には、セルロース膜２３の厚みは、０．５～２μｍであることが好ましい。
　本実施形態の人工細胞壁２において、基板２１の貫通孔２２の孔径およびセルロース膜２３の膜厚を上記範囲のように調整することによって、植物非病原性真菌は、セルロース膜２３を貫通しないものが多いのに対し、本実施形態で標的とする病原性真菌は選択的にセルロース膜２３の裏面に現れるため、植物非病原性真菌を選択的に検出できると考えられる。
　また、前記基板２１の厚みは特に限定されないが、一例として５～１５０μｍ程度であることが好ましい。
　図１に示されるように、試験試料投入部３の内部に、試験試料５が供給される。このようにして、試験試料５が植物病原性真菌を含有している場合、基板２１の表側の面上に植物病原性真菌が存在することになる。
　本実施形態において、試験試料５は、固体、液体、または気体である。試験試料５は、固体または液体であることが望ましい。固体の試験試料５の例は、土壌または破砕された植物等である。他の例は、バーミキュライト、ロックウール、またはウレタンのような農業資材等である。液体の試験試料５の例は、農業用水、水耕栽培のために用いられた溶液、植物を洗浄するために使用した後の液体、植物から抽出された液体、農業資材を洗浄するために使用した後の液体、または作業者の衣類あるいは靴を洗浄するために使用した後の液体等である。
　あるいは、どの農薬が有効であるかを調べて、特定の植物について有効農薬を選択したい場合には、その植物に害をなす病原性真菌をあらかじめ培養しておき、その培養液を試験試料５として用いることもできる。
　本実施形態の検出装置が標的とする植物病原性真菌は、例えば、トマト病原性真菌や、その他、Ｆｕｓａｒｉｕｍ属、Ｐｙｒｉｃｕｌａｒｉａ属、またはＣｏｌｌｅｔｏｔｒｉｃｈｕｍ属に属する真菌などが挙げられる。トマト病原性真菌としては、トマト灰色カビ病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ）、トマトすすカビ病菌（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ　ｆｕｌｉｇｅｎａ）、トマト葉カビ病菌（Ｐａｓｓａｌｏｒａ　ｆｕｌｖａ）等が挙げられる。
　その他、植物病原性真菌の例は、Ｆｕｓａｒｉｕｍ　ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ、Ｐｙｒｉｃｕｌａｒｉａ　ｇｒｉｓｅａ、またはＣｏｌｌｅｔｏｔｒｉｃｈｕｍ　ｇｌｏｅｏｓｐｏｒｉｏｉｄｅｓ等である。これらの植物病原性真菌は、根腐れ病（Ｒｏｏｔ　ｒｏｔ　ｄｉｓｅａｓｅ）、いもち病（ｂｌａｓｔ）、炭疽病（Ａｎｔｈｒａｘ）、灰色かび病（Ｇｒａｙ　ｍｏｌｄ）などを引き起こす。これらの植物病原性真菌は、植物を枯らす。植物非病原性真菌の例は、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｃｈｙｓｏｇｅｕｍ、またはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｏｒｙｚａｅである。
　本実施形態において、標的とする植物はトマトであることが好ましく、ひいては、植物病原性真菌としては、トマト灰色カビ病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ）、トマトすすカビ病菌（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ　ｆｕｌｉｇｅｎａ）、トマト葉カビ病菌（Ｐａｓｓａｌｏｒａ　ｆｕｌｖａ）から選択される少なくとも一つであることが好ましい。
　なお、本明細書において、用語「植物病原性」とは、植物に対して病原性を有していることを意味する。用語「植物非病原性」とは、植物に対して病原性を有していないことを意味する。真菌が病原性を有しているとしても、植物に対して病原性を有していないのであれば、その真菌は「植物非病原性」である。言い換えれば、真菌が植物に対して悪影響を与えないのであれば、その真菌は「植物非病原性」である。用語「植物非病原性」に含まれる接頭語「非」は、「植物」を修飾せず、接頭語「非」は「病原性」を修飾する。
　本実施形態の検出装置において、前記人工細胞壁２の下部に設けられた培地層６は、上述したように培地容器４内に積層された複数の層からなる。培地層６として使用される培地としては、真菌が培養できる培養液であれば特に限定はされず、一般的な培地や培養液を使用できる。例えば、ポテトデキストロース寒天培地、サブローデキストロース寒天培地等が使用可能であるが、複数の層を積層するために、固形であることが望ましい。なお、真菌の培養を加速するために、培地層６だけでなく、前記試験試料５にも培養液を添加してもよい。
　前記培地容器４は、観察をしやすくするため、ガラス製または透明な樹脂などで構成された容器であることが好ましい。形状は特に限定されず、円筒型や方形などであってもよい。
　本実施形態では、この培地層６に培地と共に農薬原体を投入する。農薬原体は、装置が有するデバイスを複数個有している場合は、各デバイスでそれぞれ異なるものを投入する。農薬原体としては、所望の植物に有効な農薬であるかどうか調べたい農薬原体であれば特に限定なく使用することができる。
　例えば、カスガマイシン（Ｋａｓｕｇａｍｙｃｉｎｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅｍｏｎｏｈｙｄｒａｔｅ）、メパピニウム（Ｍｅｐａｎｉｐｙｒｉｍ）、ペンチオピラド（Ｐｅｎｔｈｉｏｐｙｒａｄ）、トリフルミゾール（Ｔｒｉｆｌｕｍｉｚｏｌｅ）、ジフェノコナゾール（Ｄｉｆｅｎｏｃｏｎａｚｏｌｅ）、フェンピラザミン（Ｆｅｎｐｙｒａｚａｍｉｎｅ）、イプロジオン（Ｉｐｒｏｄｉｏｎｅ）、フルジオキソニル（Ｆｌｕｄｉｏｘｏｎｉｌ）、テトラクロロイソフタロニトリル（ＴＰＮ）、イミノクタジンアルベシル酸（Ｉｍｉｎｏｃｔａｄｉｎｅａｌｂｅｓｉｌａｔｅ）、カプタン（Ｃａｐｔａｎ）、チオファネートメチル（Ｔｉｏｐｈａｎｅｔｅ－ｍｅｔｈｙｌ）、ベノミル（Ｂｅｎｏｍｙｌ）、ジエトフェンカルブ（Ｄｉｅｔｈｏｆｅｎｃａｒｂ）、アゾキシストロビン（Ａｚｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ）、ポリオキシン（Ｐｏｌｉｏｘｉｎ）等を使用することができる。
　培地層６は、複数の層からなり、それぞれの層には異なる濃度の農薬原体が含まれる。このように農薬濃度のグラデーションを作製し、一番上の層に無農薬培地を配置することによって、試験試料に病原性真菌が含まれている場合、前記人工細胞壁を貫通した真菌が無農薬培地からさらに下に菌糸を伸ばしてくる。この菌糸の生長が止まった層における農薬濃度が、当該真菌に対する有効な農薬濃度であると判定できる。なお、当該真菌が最下層の基準量の農薬を含む培地まで菌糸を生長させている場合、その農薬原体は当該真菌に対して有効ではないと判断される。
　培地層６に含まれる層の数は、図１では４層としているが特に限定はなく、必要に応じて適宜設定できる。また、各層に含まれる農薬濃度についても、最下層を基準量としておき、基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が下から上に向けて濃度の高い層から順に積層され、最上層として農薬を含まない層が含まれている限り、中間層における農薬濃度は適宜設定可能である。
　本実施形態の検出装置では、一定の培養期間を経た後、前記人工細胞壁２のセルロース膜２３の裏面に接する培地層に、植物病原性真菌が現れているかどうかを観察することによって、試料中における植物病原性真菌の存否を検出でき、また、真菌が現れているかどうかでそのデバイスに含まれている農薬原体が有効であるかどうかを確認でき、さらに当該真菌の菌糸がどの培地層まで生長しているかを観察することによって、前記農薬の有効濃度を判定することができる。
　その観察を行うために、本実施形態の検出装置は、図５および図６に示すような光学的観察部７を、デバイス１の横（前）に備えている。光学的観察部７としては、光学顕微鏡などを使用することができる。
　真菌の培養期間は特に限定はされず積層される農薬培地の数や、各層の厚さによって変わるが、通常は、７２時間以上であることが好ましい。また、培養温度については、２０～２８℃程度とすることが好ましい。
　本実施形態の検出装置では、図１に示すような試験試料投入部３、人工細胞壁２および培地層６で少なくとも構成されているデバイス１を複数個備えている。複数のデバイス１の配置・配列については、例えば、図３に示すように円周上に配置してもよいし、図４に示すように直列に配置することもできる。デバイス１の配置については、光学的観察部が横から培地層を観察できるような配置である限り、特には限定されない。
　図３は本実施形態のデバイス１を円周上に配置した場合の上面図（上）および断面図（下）である。また、図４は、本実施形態のデバイス１を直列に配置した場合の断面図（上）および上面図（下）である。
　本実施形態の検出装置は、上述したようなデバイスを複数個有していることが好ましく、その複数個のデバイスのうち、少なくとも一つのデバイスの培地層には農薬原体が含まれていないことが好ましい。例えば、後述の図５および６において「ブランク」と示されているデバイスには農薬原体は含まれていない。ブランクのデバイスは、一つまたは複数設けることができる。ブランクのデバイスの位置については把握し、判別できるようにしておくことが好ましい。
　本実施形態の検出装置は、複数個の各デバイスが円周上に配置されている場合、図５に示すように、円周上に配置された前記デバイスが水平方向に回転すること、並びに、前記光学的観察部７が特定の場所に固定されており、回転によって当該光学的観察部７に各デバイス１が到達した時に、デバイスの横方向から、培地層６に菌が現れているかどうかを観察することが好ましい。
　また、複数個の各デバイスが直列に配置されている場合には、図６に示すように、デバイスではなく光学的観察部７の方を左右に移動させて各デバイスの観察を行ってもよい。
　このように、いずれの場合であっても、光学的観察部７は一つ設置するだけでよく、あとはデバイスを回転させるか、光学的観察部７を移動させて培地層６における真菌の存否を検出することができる。
　検出（光学的観察）は、ブランク（農薬原体が含まれていない）のデバイスから始めることが好ましい。ブランクをまず観察し、そこで菌糸の成長が認められない時は、その試験試料には病原性真菌類が存在しないと判断してそれ以降の検出を停止することができる。前記ブランクにおいて菌糸の成長が認められた場合にのみ、それ以降、順番に各農薬原体が有効であるかと検出していくことができるため、効率的でコストを抑えることもできる。
　各農薬原体の配置順は特に限定はされないが、耐性リスクが低いとされる農薬原体から準備配置していくことが好ましい。具体的には、例えば、トマトの病原性真菌を検出する場合、ＴＰＮ、キャプタン、イミノクタジンアルベシル酸、フェンピラザミン、フルジオキソニル、をこの順に配置することが好ましい。その後で、耐性リスクが中～高（＝耐性菌が出現しやすい）の農薬原体を配置することが望ましい。具体的には、例えば、カスガマイシン、メパニピリム、ペンチオピラド、アゾキシストロビン、ポリオキシン、トリフルミゾール、ジフェノコナゾール、イプロジオン、チオファネートメチル、ベノミル、ジエトフェンカルブ、をこの順に配置することが好ましい。
　農薬原体の数は、対象とする病原性真菌によっても異なり、例えば、トマトすすカビ病菌（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ　ｆｕｌｉｇｅｎａ）だけを検出対象にする場合は、農薬原体の数を５種類にまで減らすことができる。
　以上、説明したような本実施形態の検出装置によれば、デバイスにおける真菌の生育状況から効果のある農薬および当該農薬の有効濃度を提示することができる。また、農薬の効果パターンから病原性真菌の種類を特定することも可能になると考えられる。さらには、検出結果のデータを蓄積して整理することによって、真菌の中で抵抗性株の出現も示唆することができると考えられる。
　（病原性真菌の検出方法）
　さらに、本発明には、上述したような検出装置を用いて、植物病原性真菌を選択的に検出することを含む、植物病原性真菌の検出方法が包含される。
　本実施形態の植物病原性真菌の検出方法は、上述した検出装置を用いる限り、その他の工程については特に限定はされないが、例えば、前記検出装置の試験試料投入部３に試験試料を投入する工程、試験試料を検出装置内で静置する工程（培養する工程）、静置後、前記検出装置の人工細胞壁２（セルロース膜２３）の下部を観察する工程、および、前記セルロース膜２３の下部や培地層６に真菌の菌糸が観察された場合、前記試験試料は植物病原性真菌を含んでいると判定する工程を含む。
　（農薬及び有効農薬濃度の選択方法）
　また、本発明には、上述したような検出装置を用いて、有効な農薬原体および農薬濃度を選択する、農薬濃度の選択方法が包含される。
　本実施形態の農薬濃度の選択方法は、上述した検出装置を用いる限り、その他の工程については特に限定はされないが、例えば、
・ブランク以外の複数のデバイスの培地層６の最上層以外の層にそれぞれ異なる農薬原体
を基準量および基準量から希釈した濃度で投入する工程、
・ブランクのデバイスの試験試料投入部３に試験試料５を投入する工程、試験試料５を検
出装置内で静置する工程（培養する工程）、静置後、前記検出装置の培地層６を観察する
工程、
・前記培地層６に真菌が観察された場合、前記試験試料５は植物病原性真菌を含んでいる
として、デバイスを移動させ、次の農薬原体を含むデバイスにおける培地層６において、
真菌がどの層にまで菌糸を生長させているか観察する工程、
・前記培地層６において菌糸の生長が止まった層における農薬濃度が、当該真菌に対する
有効な農薬濃度であると判定する工程を、少なくとも含むことが好ましい。
　本明細書は、上述したように様々な態様の技術を開示しているが、そのうち主な技術を以下に纏める。
　本発明の一つの局面に係る、植物病原性真菌の検出装置は、人工細胞壁と、前記人工細胞壁の上部に設けられた試験試料投入部と、前記人工細胞壁の下部に設けられた培地層を備えるデバイスと、前記培地層を横方向から観察する観察部を備えており、前記培地層にそれぞれ異なる農薬原体が含まれていること、並びに、前記培地層において、基準量及び基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が、下から上に向けて濃度の高い層から順に積層されており、さらに最上層として農薬を含まない層が備えられていることを特徴とする。
　このような構成により、簡易かつ安全に、植物病原性真菌を選択的に検出できる装置および方法を提供することができる。また、真菌性病害の発症前に有効な農薬及び農薬濃度を選択することができる。それにより、無駄な農薬を散布する労力や過剰投薬などを抑えることに加え、不必要に高濃度の農薬を散布することを防げ、農薬量を削減できる可能性があり、残留農薬の抑制などに有効である。
　また、前記検出装置において、前記人工細胞壁が、孔径２～７μｍの貫通孔を有し、かつ厚み５～１５０μｍの基板と、当該基板の片面に設けられた厚み０．５～２μｍのセルロース膜とを少なくとも備えることが好ましい。これにより、上述した効果をより確実に得ることができると考えられる。
　また、前記検出装置において、複数個の前記デバイスが円周上または直列に配置されていることが好ましい。それにより、各デバイスの培地層を横方向から観察することがより容易となる。
　また、前記検出装置において、複数個のデバイスのうち、少なくとも一つのデバイスの培地層には農薬原体が含まれていないことが好ましい。このような構成により、試験試料に病原性真菌が含まれていない場合にそれを早期に判定することができ、それ以降の無駄な検査を割愛できるという利点がある。
　さらに、前記検出装置において、前記デバイスが移動すること、並びに、前記観察部が固定されており、当該観察部にて各デバイスを横方向から観察することが好ましい。それにより、より効率良く上述した効果を得ることができると考えられる。
　さらには、前記検出装置において、対象とする植物がトマトであること、また、検出対象が、トマト灰色カビ病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ）、トマトすすカビ病菌（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ　ｆｕｌｉｇｅｎａ）、トマト葉カビ病菌（Ｐａｓｓａｌｏｒａ　ｆｕｌｖａ）から選択される少なくとも一つであることが好ましい。それにより、上述したような効果をより発揮することができると考えられる。
　また、前記培地層に含まれる農薬原体が、カスガマイシン（Ｋａｓｕｇａｍｙｃｉｎｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅｍｏｎｏｈｙｄｒａｔｅ）、メパピニウム（Ｍｅｐａｎｉｐｙｒｉｍ）、ペンチオピラド（Ｐｅｎｔｈｉｏｐｙｒａｄ）、トリフルミゾール（Ｔｒｉｆｌｕｍｉｚｏｌｅ）、ジフェノコナゾール（Ｄｉｆｅｎｏｃｏｎａｚｏｌｅ）、フェンピラザミン（Ｆｅｎｐｙｒａｚａｍｉｎｅ）、イプロジオン（Ｉｐｒｏｄｉｏｎｅ）、フルジオキソニル（Ｆｌｕｄｉｏｘｏｎｉｌ）、テトラクロロイソフタロニトリル（ＴＰＮ）、イミノクタジンアルベシル酸（Ｉｍｉｎｏｃｔａｄｉｎｅａｌｂｅｓｉｌａｔｅ）、カプタン（Ｃａｐｔａｎ）、チオファネートメチル（Ｔｉｏｐｈａｎｅｔｅ－ｍｅｔｈｙｌ）、ベノミル（Ｂｅｎｏｍｙｌ）、ジエトフェンカルブ（Ｄｉｅｔｈｏｆｅｎｃａｒｂ）、アゾキシストロビン（Ａｚｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ）、ポリオキシン（Ｐｏｌｉｏｘｉｎ）からなる群より選択される１種以上であることが好ましい。それにより、上述したような効果をより発揮することができると考えられる。
　また、本発明の他の局面に係る植物病原性真菌の検出方法は、上述した検出装置を用いて、植物病原性真菌を選択的に検出することを含むことを特徴とする。
　本発明のさらに他の局面に係る農薬の選択方法は、上述した検出装置を用いて、有効な農薬濃度を選択することを含むことを特徴とする。
　以下に、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
　（実施例）
　（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａの培養）
　植物病原菌の一種で、トマト灰色カビ病の病原真菌であるＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａが、ポテトデキストロース寒天培地（Ｄｉｆｃｏ（登録商標）　Ｐｏｔａｔｏ　Ｄｅｘｔｒｏｓｅ　Ａｇａｒ）に接種された。次いで、培地は摂氏２５度の温度下で１週間静置された。Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａは岐阜大学応用生物科学部に所属する清水准教授より与えられた。次いで、十分に菌糸が生育したＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ培養ポテトデキストロース寒天培地をブラックライト照射下に４日間以上放置後、室温環境に２週間以上放置し、胞子形成を促した。前記処理を行ったＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ培養ポテトデキストロース寒天培地に滅菌純水を数ｍｌ滴下し、白金耳、筆等で菌糸表面を擦り、破砕菌糸・胞子混合懸濁液を得た。以下、この水溶液を、「植物病原性真菌水溶液」と称す。
　（農薬濃度三水準積層培地の用意）
　ポテトデキストロース寒天培地に農薬主成分試薬カプタン（Ｃａｐｔａｎ）（東京化成工業株式会社（ＴＣＩ）製）を、投入量（濃度）を変えて添加して、元になる培地を３層作製した。カプタンは基準使用濃度の１００倍濃度のＤＭＳＯ（ＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ社製）溶液として調製し、ポテトデキストロース寒天培地１Ｌ当たり、０、２、１０ｍｌずつ投入混合して、カプタン濃度が０（無配合）、基準使用量の５分の１、基準使用量、という三水準の培地を作った。本実施例では、前記の三水準のカプタンを含むポテトデキストロース寒天培地を、下からカプタン基準量培地、その５分の１培地、カプタン無配合培地の順に積層し、ガラスの円筒形又は方形の成型部材で刳り抜き、実施例のデバイスとした。
　（農薬無添加積層培地の用意）
　さらに比較のため、農薬無添加培地のみからなる培地層を有するデバイス（ブランク）として、カプタン無添加のポテトデキストロース寒天培地を三層重ねたものを上記と同様に成型して用いた。
　（デバイスへの植物病原性真菌水溶液添加と培養）
　上記で作られた、内部に農薬濃度三水準積層培地を収納するデバイス（実施例１）及び農薬無添加積層培地を収納するデバイス（ブランク）の最上部、即ち農薬濃度三水準積層培地においてはカプタン無添加のポテトデキストロース寒天培地上に、２００個のＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａの菌糸片と胞子を含む、植物病原菌水溶液２００マイクロリットルがそれぞれ添加された。
　植物病原菌水溶液を添加された各デバイスは、摂氏２５度の温度で７日間静置し培養した。
　（結果・考察）
　培養後、実施例のデバイス及びブランクのデバイスを、それぞれの透明部材の側面から積層寒天培地を顕微鏡で観察した。その顕微鏡写真を図７に示す。左側がブランクのデバイスの結果で、右側が実施例のデバイスの結果である。
　図７で示されるように、一番上にあるＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ菌糸集塊５から菌糸がそれぞれのデバイスにおける積層寒天培地内部に侵入し成長している様子が光学顕微鏡を介した目視により捉えられた。
　ブランクのデバイスの写真では、積層されたポテトデキストロース寒天培地の内部、三層目までＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａの菌糸の到達が見られるのに対し、実施例のデバイスでは、表層のカプタン無配合層６１では旺盛なＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａの菌糸の侵入・培地内部での菌糸の繁殖が見られるのに対し、二層目のカプタンの基準使用量の１／５配合層６３では、培地内部にＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａの菌糸は認められず、透明なままであった。その下のカプタン基準量配合層６４にも菌糸は認められなかった。これは、農薬成分カプタンが、基準使用量の５分の１の量でＢｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａに対し効果を示したことを示している。
　以上の試験により、本発明によれば、試験試料が植物病原性真菌を含有するかどうかを選択的に判定するとともに、当該植物病原性真菌に対する有効農薬濃度を提示できることが示された。その結果によって、農薬量の削減可能性を示すことができる。
　本開示の農薬選択機能を有する植物病原性真菌の検出装置は、試験試料が植物病原性真菌を含有するかどうかを選択的に判定するとともに、当該植物病原性真菌に対する有効農薬濃度を、真菌性病害発症前に提示できる。このため、本開示の検出装置は、各種農業等の技術分野において好適に利用できる。
　　１　デバイス
　　２　人工細胞壁
　　３　試験試料投入部
　　４　培地容器
　　５　試験試料
　　６　培地層
　　７　光学的観察部
　２１　基板
　２２　貫通孔
　２３　セルロース膜
　６１　無農薬培地層
　６２　基準量の１／５０農薬配合培地層
　６３　基準量の１／５農薬配合培地層
　６４　基準量農薬配合培地層

Claims (11)

  1. 　人工細胞壁と
    、前記人工細胞壁の上部に設けられた試験試料投入部と、前記人工細胞壁の下部に設けられた培地層を備えるデバイスと、
    　前記培地層を横方向から観察する観察部を備えており、
    　前記培地層にそれぞれ異なる農薬原体が含まれていること、並びに、
    　前記培地層において、基準量及び基準量から希釈した濃度の農薬を含む複数の層が、下から上に向けて濃度の高い層から順に積層されており、さらに最上層として農薬を含まない層が備えられていることを特徴とする、植物病原性真菌の検出装置。
  2. 　前記人工細胞壁が、孔径２～７μｍの貫通孔を有し、かつ厚み５～１５０μｍの基板と、当該基板の片面に設けられた厚み０．５～２μｍのセルロース膜とを少なくとも備える、請求項１に記載の検出装置。
  3. 　複数個の前記デバイスが円周上に配置されている、請求項１または２に記載の検出装置。
  4. 　複数個の前記デバイスが直列に配置されている、請求項１または２に記載の検出装置。
  5. 　複数個の前記デバイスのうち、少なくとも一つのデバイスの培地層には農薬原体が含まれていない、請求項３または４に記載の検出装置。
  6. 　前記デバイスが移動すること、並びに、
    　前記観察部が固定されており、当該観察部にて各デバイスを横方向から観察することを特徴とする、請求項１～５のいずれかに記載の検出装置。
  7. 　対象とする植物がトマトである、請求項１～６のいずれかに記載の検出装置。
  8. 　検出対象が、トマト灰色カビ病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ）、トマトすすカビ病菌（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ　ｆｕｌｉｇｅｎａ）、トマト葉カビ病菌（Ｐａｓｓａｌｏｒａ　ｆｕｌｖａ）から選択される少なくとも一つである、請求項７に
    記載の検出装置。
  9. 　前記培地層に含まれる農薬原体が、カスガマイシン（Ｋａｓｕｇａｍｙｃｉｎｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅｍｏｎｏｈｙｄｒａｔｅ）、メパピニウム（Ｍｅｐａｎｉｐｙｒｉｍ）、ペンチオピラド（Ｐｅｎｔｈｉｏｐｙｒａｄ）、トリフルミゾール（Ｔｒｉｆｌｕｍｉｚｏｌｅ）、ジフェノコナゾール（Ｄｉｆｅｎｏｃｏｎａｚｏｌｅ）、フェンピラザミン（Ｆｅｎｐｙｒａｚａｍｉｎｅ）、イプロジオン（Ｉｐｒｏｄｉｏｎｅ）、フルジオキソニル（Ｆｌｕｄｉｏｘｏｎｉｌ）、テトラクロロイソフタロニトリル（ＴＰＮ）、イミノクタジンアルベシル酸（Ｉｍｉｎｏｃｔａｄｉｎｅａｌｂｅｓｉｌａｔｅ）、カプタン（Ｃａｐｔａｎ）、チオファネートメチル（Ｔｉｏｐｈａｎｅｔｅ－ｍｅｔｈｙｌ）、ベノミル（Ｂｅｎｏｍｙｌ）、ジエトフェンカルブ（Ｄｉｅｔｈｏｆｅｎｃａｒｂ）、アゾキシストロビン（Ａｚｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ）、ポリオキシン（Ｐｏｌｉｏｘｉｎ）からなる群より選択される１種以上である、請求項１～８のいずれかに記載の検出装置。
  10. 　請求項１～９のいずれかに記載の検出装置を用いて、植物病原性真菌を選択的に検出することを含む、検出方法。
  11. 　請求項１～９のいずれかに記載の検出装置を用いて、有効な農薬濃度を選択することを含む、農薬濃度の選択方法。
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