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TWI509072B - 生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法 - Google Patents

生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法 Download PDF

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TWI509072B
TWI509072B TW099131435A TW99131435A TWI509072B TW I509072 B TWI509072 B TW I509072B TW 099131435 A TW099131435 A TW 099131435A TW 99131435 A TW99131435 A TW 99131435A TW I509072 B TWI509072 B TW I509072B
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Takashi Morishige
Hitoshi Takahashi
Nozomi Takebayashi
Mitsufumi Wada
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Mitsui Chemicals Inc
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Description

生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法
本發明係關於生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法。
丙烯係聚丙烯等合成樹脂或石化製品的重要基礎原料，廣泛使用於汽車用減震器或食品容器、薄膜、醫療設備等。
由植物來源原料製造的異丙醇，可經脱水步驟而變換為丙烯，因此，有希望作為碳中性的丙烯的原料。依照京都議定書，先進國家有義務在2008年至2012年間將二氧化碳排出量比起1990年降低5%，現在，碳中性的丙烯由於其泛用性，在地球環境上極為重要。
將植物來源原料同化(anabolize)而生產異丙醇的細菌為已知。例如國際公開2009/008377號，揭示經改變成能以葡萄糖作為原料而高量生產異丙醇的細菌，並記載作為異丙醇的工業生產用生物體觸媒為優異。
大腸菌已知無法將蔗糖同化，但是若能利用植物來源材料當中為廉價的蔗糖，則對於工業上為有利。
依照以往的見解，微生物將蔗糖同化的機制，可大別為蔗糖PTS(Phosphoenolpyruvate: Carbohydrate Phosphotransferase System)與蔗糖非PTS(例如，日本特開2001-346578號公報)。蔗糖非PTS，已知係由cscB(進行蔗糖攝入)、cscA(在微生物內部進行蔗糖分解)、cscK(進行果糖的磷酸化)及cscR(控制cscB、A、K的表現)4個因子構成。於Biotechnolohy Letters,Vol.27,pp.1891-1896(2005)，記載將此等4個因子的基因使用質體導入的生產D-乳酸的大腸菌，並由蔗糖生產D-乳酸。
又，蔗糖PTS，已知係由scrA(進行蔗糖攝入)、scrY(進行蔗糖的磷酸化)、scrB(於微生物內部進行蔗糖分解)、scrR(控制scrA、Y、B的表現)及scrK(進行果糖的磷酸化)5個因子構成。
一般而言，將菌未保有的機能導入微生物時，係探討將表現該機能的基因導入。於蔗糖同化能力的情形，上述各因子的DNA為900~1500bp的長度，又，為了高量生產異丙醇所需要的4種酵素(硫解酶、輔酶A轉移酶、乙醯乙酸去羧酶及異丙醇去氫酶)的基因表現，需要的DNA長度約4800bp。即，若欲將蔗糖同化能力與生產IPA的能力兩者賦予給大腸菌時，大約需導入9300bp長度的DNA。
但是，若將此等同時導入大腸菌，由於超過基因導入使用的質體DNA長度的上限，因此非常困難。即使使用2種質體載體，將各質體DNA長度壓抑在10000bp以下，通常將2種質體導入大腸菌時，在反複增殖時，常會有其中之一或兩者質體脱落的現象。為了避免此現象，必需事先隨時使大腸菌暴露於對應於選擇標記的昂貴的抗生素，不利於工業生產。
因此，將蔗糖同化能力與異丙醇高生產能力同時對大腸菌賦予有所困難。
另一方面，Can.J.Microbiol.，Vol.45，pp.18-422(1999)揭示：僅是藉由在大腸菌導入蔗糖水解酵素(cscA)，便能以蔗糖為原料使大腸菌增殖。但是，該論文同時也揭示，以基因重組技術使cscA基因大量表現時，cscA幾乎全部存在細胞內，cscA(轉化酶)不在細胞外而是在細胞內作用，無法預想cscA在細胞外將蔗糖分解。
使用無法將蔗糖同化的大腸菌，由蔗糖生產物質的例子，例如以蔗糖為原料的色胺酸的生產(例如日本特開2001-346578號公報)。但是，該例中揭示，為了對大腸菌賦予由蔗糖生產胺基酸的能力，至少需要導入cscA及cscB及cscK的基因群。
如上述，欲對於無法將蔗糖同化大腸菌同時賦予蔗糖同化能力及異丙醇高生產能力，由於待導入的DNA的長度過大，因此非常困難。
本發明的目的在於提供一種由廉價且於工業上利用價值高的蔗糖以良好效率生產異丙醇為有用的生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法。
本發明提供以下的生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法。
[1]　一種生產異丙醇的大腸菌，至少包含屬於蔗糖非PTS基因群的蔗糖水解酵素基因，且經賦予或經強化異丙醇生產系。
[2]　如[1]之生產異丙醇的大腸菌，其中屬於蔗糖非PTS基因群的基因當中，僅含有前述蔗糖水解酵素基因。
[3]　如[1]或[2]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述生產異丙醇的大腸菌，係經賦予乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、輔酶A轉移酶活性、及硫解酶活性的大腸菌。
[4]　如[3]的生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係分別利用導入選自於由芽孢梭菌屬細菌、芽孢桿菌屬細菌及大腸桿菌屬細菌構成之群組中至少1種來源的各酵素的編碼基因而獲得者。
[5]　如[3]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶活性及異丙醇去氫酶活性，係利用導入芽孢梭菌屬細菌來源的各酵素的編碼基因而獲得，前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係利用導入大腸桿菌屬細菌來源的酵素的編碼基因而獲得。
[6]　如[3]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶活性，係利用導入丙酮丁醇梭孢桿菌來源的酵素的編碼基因而獲得者，前述異丙醇去氫酶活性，係利用導入拜氏梭菌來源的酵素的編碼基因而獲得，前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係利用導入大腸桿菌來源的各酵素的編碼基因而獲得。
[7]　如[3]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶之編碼基因、異丙醇去氫酶之編碼基因及蔗糖水解酵素之編碼基因，係由質體導入，前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係由宿主大腸菌內之基因體基因而獲得。
[8]　如[3]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶之編碼基因、異丙醇去氫酶之編碼基因及蔗糖水解酵素之編碼基因，係由質體導入，前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係由宿主大腸菌內之基因體基因而獲得。
[9]　如[3]之生產異丙醇的大腸菌，其中前述乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，均係利用導入芽孢梭菌屬細菌來源的各酵素的編碼基因而獲得。
[10]　一種生產異丙醇的方法，包含使用如[1]~[9]中任一項之生產異丙醇的大腸菌，從含有蔗糖之植物來源原料生產異丙醇。
[實施發明之形態]
本發明之生產異丙醇的大腸菌，係至少含有屬於蔗糖非PTS基因群之蔗糖水解酵素基因，且經賦予或經強化異丙醇生產系之生產異丙醇的大腸菌。
本發明之生產異丙醇的方法，包含使用上述生產異丙醇的大腸菌，而由含有蔗糖的植物來源原料生產異丙醇。
本發明之生產異丙醇的大腸菌，為了將蔗糖同化，至少包含構成蔗糖非PTS基因群之蔗糖水解酵素基因，且包含異丙醇生產系，因此，於無法將蔗糖同化的大腸菌中，可同時發揮將蔗糖同化之能力與生產異丙醇的能力，能從蔗糖以良好效率生產異丙醇。於不具有蔗糖同化能力的大腸菌中導入蔗糖非PTS基因群，且使以蔗糖作為碳源生產異丙醇的例子，至今為止完全沒有人報告過。
本發明發現：藉由至少將屬於構成非PTS基因群之基因群的蔗糖水解酵素基因導入於生產異丙醇的大腸菌，即使於高生產異丙醇的大腸菌，也能將蔗糖高效率地同化。其結果，為了賦予蔗糖同化能力所需導入的DNA的長度可大幅縮減，可在1個質體載體同時連結賦予蔗糖同化能力的DNA與賦予異丙醇生產能力的DNA。藉此，能對於無法將蔗糖同化的大腸菌，同時賦予將蔗糖同化的能力與生產異丙醇的能力，可由源自甘蔗或甜菜且可廉價地大量供給的蔗糖，以良好效率地獲得異丙醇。
尤其，本發明之生產異丙醇的大腸菌，能將蔗糖的分解產物即葡萄糖與果糖幾乎同時同化而生產異丙醇，因此更為有效率。
一般而言，已知大腸菌中，通常葡萄糖的攝入會優先於果糖，於葡萄糖存在下，果糖不會充分代謝。因此，不受葡萄糖所致代謝抑制(代謝物阻遏)的影響，而能以良好效率生產異丙醇，應是令人驚訝的。
又，本發明中，「宿主」係指接受從菌體外導入1個以上的基因，而結果成為本發明之生產異丙醇的大腸菌的該大腸菌。
本說明書中，「步驟」不僅指獨立的步驟，於無法與其他步驟明確區別的情形，只要可達成本步驟所期待的作用，則包含於本用語。
又，本說明書中，使用「~」表示的數值範圍，代表包含「~」的前後記載的數值分別為最小值及最大值的範圍。
以下說明本發明。
本發明中蔗糖非PTS基因群，係指涉及微生物的蔗糖同化路徑當中非PTS系的4個基因群。詳言之，係以抑制子蛋白質(cscR)、蔗糖水解酵素(cscA)、果糖激酶(cscK)、蔗糖透過酵素(cscB)構成的基因群。本發明中，只要在當中至少含有cscA的1種以上即可，例如，僅有cscA，cscA及cscK的組合、cscA及cscB的組合、cscA及cscR的組合、cscA、cscR及cscK的組合、cscA、cscR及cscB的組合等。其中，從以更良好效率生產異丙醇的觀點，較佳者為僅具有編碼cscA的基因，而不含其他基因。
本發明中，蔗糖水解酵素(轉化酶、CscA)，係指分類為依據國際生化學協會(I.U.B.)酵素委員會報告的酵素號碼3.2.1.26，催化從蔗糖生成D-葡萄糖與D-果糖的反應的酵素的總稱。
該酵素，係K12株及B株等大腸菌原本未保有的酵素，為含有質子共輸送體、轉化酶、果糖激酶及蔗糖專一性的抑制子的非PTS代謝路徑中的1個酵素(參照Canadian Journal of Microbiology,(1991) vol.45,pp418-422)。本發明中，藉由賦予該CscA，尤其僅賦予cscA，在菌體外將蔗糖於細胞膜上分解為葡萄糖及果糖並放出到細胞外，並經由葡萄糖PTS及果糖PTS在細胞質內磷酸化並攝入。其結果，能將果糖在細菌中對於果糖代謝系供給，而可進行利用解糖系的同化。
導入於本發明之宿主細菌之蔗糖水解酵素(轉化酶、CscA)的基因，可利用從具備該酵素的生物獲得的具有蔗糖水解酵素(轉化酶、CscA)之編碼基因的鹼基序列的DNA，或依據其公知的鹼基序列而合成的合成DNA序列。適當者，例如：伊文氏桿菌屬菌(Erwinia)、變形桿菌屬菌(Proteus)、弧菌屬菌(Vibrio)、農桿菌屬菌(Agrobacterium)、根瘤菌屬菌(Rhizobium)、葡萄球菌屬菌(Staphylococcus)，雙叉桿菌屬菌(Bifidobacterium)、大腸桿菌屬菌(Escherichia)來源者，例如具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。尤佳者，具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。又，在cscA中，宜附加用以使cscA移動到菌體的胞外質(periplasm)的訊號序列。
導入本發明之宿主細菌的抑制子蛋白質(CscR)的基因，可利用從保有該酵素的生物獲得的具有抑制子蛋白質(CscR)的編碼基因的鹼基序列的DNA，或依據其公知之鹼基序列合成的合成DNA序列。適當者，例如伊文氏桿菌屬菌(Erwinia)、變形桿菌屬菌(Proteus)、弧菌屬菌(Vibrio)、農桿菌屬菌(Agrobacterium)、根瘤菌屬菌(Rhizobium)、葡萄球菌屬菌(Staphylococcus)、雙叉桿菌屬菌(Bifidobacterium)、大腸桿菌屬菌(Escherichia)來源者，例如具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。尤佳為，具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。
導入於本發明之宿主細菌的果糖激酶(CscK)的基因，可利用從保有該酵素的生物獲得的具有果糖激酶(CscK)的編碼基因的鹼基序列的DNA，或依據其公知之鹼基序列合成之合成DNA序列。適當者，例如：伊文氏桿菌屬菌(Erwinia)、變形桿菌屬菌(Proteus)、弧菌屬菌(Vibrio)、農桿菌屬菌(Agrobacterium)、根瘤菌屬菌(Rhizobium)、葡萄球菌屬菌(Staphylococcus)，雙叉桿菌屬菌(Bifidobacterium)、大腸桿菌屬菌(Escherichia)來源者，例如具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。尤佳為，具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。
本發明之導入於宿主細菌的蔗糖透過酵素(CscB)的基因，可利用具有從保有該酵素的生物獲得的蔗糖透過酵素(CscB)的編碼基因的鹼基序列的DNA，或依據其公知的鹼基序列合成的合成DNA序列。適當者，例如：伊文氏桿菌屬菌(Erwinia)、變形桿菌屬菌(Proteus)、弧菌屬菌(Vibrio)、農桿菌屬菌(Agrobacterium)、根瘤菌屬菌(Rhizobium)、葡萄球菌屬菌(Staphylococcus)，雙叉桿菌屬菌(Bifidobacterium)、大腸桿菌屬菌(Escherichia)來源者，例如具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。尤佳為，具有大腸桿菌O157株來源的基因的鹼基序列的DNA。
本發明中，生產異丙醇的大腸菌係指利用基因重組導入或改變過的保有異丙醇生產能力的大腸菌。藉此，與上述CscA活性組合，即使原本不具有蔗糖同化能力的大腸菌，也能有效地從蔗糖生產異丙醇。
又，本發明中「利用基因重組」的用語，係指對於生來的基因的鹼基序列，只要是利用插入其他DNA，或將基因的某部分取代、缺失或此等的的組合，在鹼基序列上產生變更者均包含，例如也可為獲得產生突變之結果者。
本發明中，蔗糖同化係指將蔗糖維持原狀態、低分子化或高分子化，較佳為低分子化而攝入到生物體內的能力，或以代謝地變換為其他物質的能力。又，本發明中，同化包含將蔗糖更加低分子化的分解。詳言之，包含將蔗糖分解成D-葡萄糖與D-果糖。
本發明中，異丙醇生產系只要是使成為對象的大腸菌生產異丙醇者的任一系均可。
本發明中，經賦予或經強化的異丙醇生產系，係指利用基因重組導入或改變使發揮異丙醇生產能力的構造。如此的異丙醇生產系，只要是使成為對象的大腸菌中原本的異丙醇生產量增加者均可。較佳為，例如涉及異丙醇生產活性的酵素活性的失活、減低化或增強或此等的組合。藉此，與上述CscA活性組合，即使原本不具有蔗糖同化能力的大腸菌，也能從蔗糖有效地生產異丙醇。
較佳為，例如對於涉及異丙醇生產的酵素賦予增強的酵素活性。更佳為例如增強硫解酶、輔酶A轉移酶、乙醯乙酸去羧酶、異丙醇去氫酶之酵素活性。即，本發明中，生產異丙醇的大腸菌，較佳為賦予乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性4種酵素活性。
本發明中，活性的「賦予」，係指將酵素的編碼基因從宿主細菌的菌體外導入菌體內，除此以外，也包含將宿主細菌在基因體上保有的酵素基因的啟動子活性強化，或藉由取代為其他啟動子而使酵素基因強表現。
本發明中，乙醯乙酸去羧酶，係指分類為依據國際生化學協會(I.U.B.)酵素委員會報告之酵素號碼4.1.1.4，催化從乙醯乙酸生成丙酮之反應的酵素的總稱。
如此的酵素，例如：丙酮丁醇梭孢桿菌(Clostridium acetobutylicum)、拜氏梭孢菌(Clostridium beijerinckii)等芽孢梭菌屬細菌、多黏桿菌(Bacillus polymyxa)等芽孢桿菌屬細菌來源者。
導入於本發明之宿主細菌之乙醯乙酸去羧酶的基因，可利用從上述各來源生物獲得之具有乙醯乙酸去羧酶的編碼基因的鹼基序列的DNA或依據其公知之鹼基序列合成的合成DNA序列。適當者，例如芽孢梭菌屬細菌或芽孢桿菌屬細菌來源者，例如具有丙酮丁醇梭孢桿菌、多黏桿菌來源的基因的鹼基序列的DNA。尤佳為，具有丙酮丁醇梭孢桿菌來源的基因的鹼基序列的DNA。
本發明中，異丙醇去氫酶係指分類為依據國際生化學協會(I.U.B.)酵素委員會報告之酵素號碼1.1.1.80，催化由丙酮生成異丙醇之反應的酵素的總稱。
如此之酵素，例如拜氏梭菌(Clostridium beijerinckii)等芽孢梭菌屬細菌來源者。
導入於本發明之宿主細菌的異丙醇去氫酶的基因，可利用由上述各來源生物獲得的具有異丙醇去氫酶的編碼基因的鹼基序列的DNA或依據其公知的鹼基序列合成的合成DNA序列。適當者，例如芽孢梭菌屬細菌來源者，例如具有拜氏梭菌來源之基因之鹼基序列的DNA。
本發明中，輔酶A轉移酶係指分類為依據國際生化學協會(I.U.B.)酵素委員會報告之酵素號碼2.8.3.8，催化由乙醯基乙醯輔酶A生成乙醯乙酸之反應的酵素的總稱。
如此的酵素，例如：丙酮丁醇梭孢桿菌(Clostridium acetobutylicum)、拜氏梭菌(Clostridium beijerinckii)等芽孢梭菌屬細菌、Roseburia intestinalis等Roseburia屬細菌、Faecalibacterium prausnitzii(Faecalibacterium prausnitzii)等Faecalibacterium屬細菌、糞球菌(Coprococcus)屬細菌、布氏錐蟲(Trypanosoma brucei)等錐蟲屬、大腸桿菌(Escherichia coli：大腸菌)等大腸桿菌屬細菌來源者。
導入本發明之宿主細菌之輔酶A轉移酶的基因，可利用由上述各來源生物獲得之具有輔酶A轉移酶的編碼基因的鹼基序列的DNA或依據其公知之鹼基序列合成之合成DNA序列。較佳者，例如具有丙酮丁醇梭孢桿菌等芽孢梭菌屬細菌、Roseburia intestinalis等Roseburia屬細菌、Faecalibacterium prausnitzii等Faecalibacterium屬細菌、糞球菌屬屬細菌、布氏錐蟲等錐蟲屬、大腸桿菌等大腸桿菌屬細菌來源的基因的鹼基序列的DNA。更佳為，例如芽孢梭菌屬細菌或大腸桿菌屬細菌來源者，尤佳為具有丙酮丁醇梭孢桿菌或大腸桿菌來源的基因的鹼基序列的DNA。
本發明中，硫解酶係指分類為依照國際生化學協會(I.U.B.)酵素委員會報告之酵素號碼2.3.1.9，催化從乙醯基輔酶A生成乙醯基乙醯輔酶A的反應的酵素的總稱。
如此的酵素，例如丙酮丁醇梭孢桿菌(Clostridium acetobutylicum)、拜氏梭菌(Clostridium beijerinckii)等芽孢梭菌屬細菌、大腸桿菌(Escherichia coli)等大腸桿菌屬細菌、親鹽桿菌種(Halobacterium sp.)細菌、生枝動膠桿菌(Zoogloea ramigera)等菌膠團屬細菌、原雞(Gallus gallus)等原雞屬、根瘤菌種(Rhizobium sp.)細菌、日本慢生根瘤菌(Bradyrhizobium japonicum)等慢生型根瘤菌屬細菌、溝鼠(Rattus norvegicus)等大鼠屬細菌、熱帶念珠菌(Candida tropicalis)等念珠菌屬細菌、野豬(Sus scrofa)等豬屬細菌、新月柄桿菌(Caulobacter crescentus)等柄桿菌屬細菌、Streptomyces collinus(Streptomyces collinus)等鏈黴菌屬細菌、Helianthus annuus(Helianthus annuus)等向日葵屬細菌、Bos taurus(Bos taurus)等Bos屬細菌、糞腸球菌(Enterococcus faecalis)等腸球菌屬細菌來源者。
導入本發明之宿主細菌之硫解酶之基因，可利用具有從上述各來源生物獲得之硫解酶的編碼基因的鹼基序列的DNA或依據其公知之鹼基序列合成的合成DNA序列。較佳者，例如具有丙酮丁醇梭孢桿菌、拜氏梭菌等芽孢梭菌屬細菌、大腸桿菌等大腸桿菌屬細菌、親鹽桿菌種細菌、生枝動膠桿菌等菌膠團屬細菌、原雞等原雞屬、根瘤菌種細菌、日本慢生根瘤菌等慢生型根瘤菌屬細菌、溝鼠等大鼠屬細菌、熱帶念珠菌等念珠菌屬細菌、野豬等豬屬細菌、新月柄桿菌等柄桿菌屬細菌、Streptomyces collinus等鏈黴菌屬細菌、Helianthus annuus等向日葵屬細菌、Bos taurus等Bos屬細菌、糞腸球菌等腸球菌屬細菌來源的基因的鹼基序列的DNA。更佳為，例如芽孢梭菌屬細菌或大腸桿菌屬細菌來源者，尤佳為，具有丙酮丁醇梭孢桿菌或大腸桿菌來源的基因的鹼基序列的DNA。
其中，上述4種酵素分別為選自由芽孢梭菌屬細菌、芽孢桿菌屬細菌及大腸桿菌屬細菌構成之群組中至少1種來源者，於酵素活性之觀點為較佳，其中又以乙醯乙酸去羧酶及異丙醇去氫酶為芽孢梭菌屬細菌來源，輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性為大腸桿菌屬細菌來源的情形，與該等4種酵素均為芽孢梭菌屬細菌來源之情形更佳。
其中，本發明之4種酵素，分別為丙酮丁醇梭孢桿菌、拜氏梭菌或大腸桿菌其中之一來源者，於酵素活性的觀點較佳，乙醯乙酸去羧酶為丙酮丁醇梭孢桿菌來源的酵素，輔酶A轉移酶及硫解酶各為丙酮丁醇梭孢桿菌或大腸桿菌來源之酵素，異丙醇去氫酶為拜氏梭菌來源之酵素更佳，上述4種酵素，由酵素活性之觀點，乙醯乙酸去羧酶活性為丙酮丁醇梭孢桿菌來源，且前述異丙醇去氫酶活性為拜氏梭菌來源，且輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性為大腸桿菌來源尤佳。
又，由異丙醇生產能力之觀點，較佳者為當輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性之來源為大腸桿菌時，前述乙醯乙酸去羧酶之編碼基因、異丙醇去氫酶之編碼基因及蔗糖水解酵素之編碼基因由質體導入，前述輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性為由宿主大腸菌內之基因體基因而獲得。
本發明中，涉及異丙醇生產的酵素活性增強之生產異丙醇之大腸菌之例子，例如於WO2009/008377號記載之pIPA/B株或pIaaa/B株。
本發明中，基因的啟動子，只要是可控制上述任一基因之表現即可，但持續在微生物內作用的強力啟動子且即使於葡萄糖存在下表現也不易受抑制的啟動子，具體而言，例如甘油醛3-磷酸去氫酶(以下有時稱為GAPDH)之啟動子或絲胺酸羥甲基轉移酶之啟動子。
本發明中，啟動子係指具有sigma因子的RNA聚合酶結合並開始轉錄的部位。例如，大腸桿菌來源的GAPDH啟動子，在GenBank accession number X02662的鹼基序列資訊記載於鹼基號碼397-440。
大腸菌來源的輔酶A轉移酶基因(atoD及atoA)與硫解酶基因(atoB)以atoD、atoA、atoB的順序在大腸菌基因體上形成操縱組(Journal of Baceteriology Vol.169 pp 42-52 Lauren Sallus Jenkins等人)，因此藉由改變atoD的啟動子，可同時控制輔酶A轉移酶基因與硫解酶基因的表現。
由此點，輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性為由宿主大腸菌之基因體基因獲得者時，由獲得充分的異丙醇生產能力的觀點，較佳為將擔任兩酵素基因的表現的啟動子取代為其他啟動子等而藉此強化兩酵素基因的表現。為了強化輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性而使用的啟動子，例如前述大腸桿菌來源的GAPDH啟動子等。
本發明中，該等酵素的活性，可藉由將從菌體外導入菌體內者或將宿主細菌在基因體上保有的酵素基因的啟動子活性強化或以其他啟動子取代而藉此使酵素基因強表現。
酵素活性的導入，例如可利用將此等4種酵素的編碼基因使用基因重組技術，從宿主細菌的菌體外導入菌體內而進行。此時，導入的酵素基因，對於宿主細胞可為同種或異種其中之一。將基因從菌體外導入菌體內時，需要的基因體DNA的製備、DNA的切斷及連結、轉形、聚合酶連鎖反應(PCR，Polymerase Chain Reaction)、作為引子的寡核苷酸的設計、合成等方法，可利用該技術領域之人士熟知的通常方法進行。該等方法，記載於Sambrook,J.,et.al.,”Molecular Cloning A Laboratory Manual,Second Edition”,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(1989)等。
本發明中能力的「賦予」或「強化」，除了將酵素的編碼基因從宿主細菌的菌體外導入菌體內以外，尚包含藉由將宿主細菌在基因體上保有的酵素基因的啟動子活性強化或取代為其他啟動子而使酵素基因強表現者。
本發明中，已賦予酵素活性的大腸菌，係指以某個方法已將該酵素活性從菌體外對於菌體內提供的大腸菌。該等大腸菌，例如可將該酵素及蛋白質的編碼基因，使用與上述同樣的基因重組技術從菌體外導入菌體內等的方法製作。
本發明中，酵素活性已強化的大腸菌，係指以某方法已將該酵素活性強化的大腸菌。該等大腸菌，例如可將該酵素及蛋白質的編碼基因，使用與前述同樣的基因重組技術從菌體外使用質體導入菌體內，或將宿主大腸菌在基因體上保有的酵素基因的啟動子活性強化或取代為其他啟動子，而使酵素基因強表現等方法製作。
本發明中，大腸菌係指不論原本是否具備從植物來源原料生產異丙醇的能力，而使用某手法而具有從植物來源原料生產異丙醇之能力的大腸菌。
在此，成為上述各基因之導入對象的大腸菌，即使不具異丙醇生產能力也無妨，只要能夠導入及變更上述各基因，可為任何大腸菌。
更佳為能預先賦予異丙醇生產能力的大腸菌，藉此能以更良好效率生產異丙醇。尤其，依照本發明，可對於原本不具備蔗糖同化能力的大腸菌賦予蔗糖同化能力，且從蔗糖以良好效率生產異丙醇。如此的原本不具有蔗糖同化能力的大腸菌，例如K12株、B株、C株及其來源株等。
如此的生產異丙醇的大腸菌，例如記載於國際公開2009/008377號小冊的經賦予乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、輔酶A轉移酶活性、及硫解酶活性，能從植物來源原料生成異丙醇的異丙醇生成細菌等。
本發明之生產異丙醇的方法，包含使用上述生產異丙醇的大腸菌而從含有蔗糖的植物來源原料生產異丙醇，亦即，包含使上述生產異丙醇的大腸菌與含有蔗糖的植物來源原料接觸並培養的步驟，及將利用接觸得到的異丙醇回收的回收步驟。
上述生產異丙醇的方法使用的植物來源原料，係從植物獲得的碳源，只要是含蔗糖的植物來源原料即不特別限制。本發明中，係指根、莖、幹、枝、葉、花、種子等器官、含此等的植物體、此等植物器官的分解產物，又，植物體、植物器官、或由此等的分解產物獲得的碳源當中在微生物培養可作為碳源利用者，也包含在植物來源原料。
包含在如此的植物來源原料中的碳源，除了蔗糖以外，一般例如澱粉、葡萄糖、果糖、木糖、阿拉伯糖等糖類，或含有多量該等成分的草木質分解產物、纖維素水解物等或該等的組合，又，植物油來源的甘油或脂肪酸在本發明中也可包含在碳源。
本發明中，植物來源原料，較佳者例如：穀物等農作物、玉米、米、小麥、大豆、甘蔗、甜菜、棉等，或該等的組合，其作為原料的使用形態，為未加工品、搾汁、粉碎物等，不特別限定。又，也可僅為上述碳源的形態。
培養步驟中，生產異丙醇的大腸菌與植物來源原料的接觸，一般而言，藉由以含有植物來源原料的培養基培養生產異丙醇的大腸菌而進行。
植物來源原料與生產異丙醇的大腸菌的接觸密度，視生產異丙醇的大腸菌的活性而有所不同，一般而言，培養基中的植物來源原料的濃度，可定為以葡萄糖換算，初始的糖濃度相對於混合物總質量為20質量%以下，從大腸菌的耐糖性的觀點，較佳為將初始的糖濃度定在15質量%以下。其他各成分，以對於微生物的培養基通常添加的量添加即可，無特別限制。
又，培養基中之生產異丙醇的大腸菌的含量，視大腸菌的種類及活性而異，但一般而言，於培養開始時投入的前培養的菌液的量，相對於培養液為0.1質量%~30質量%，由培養條件控制的觀點，較佳為定在1質量%~10質量%。
生產異丙醇的大腸菌的培養可使用的培養基，只要是含有碳源、氮源、無機離子、及微生物為了生產異丙醇所要求的有機微量元素、核酸、微生素類等的培養基即可，無特別限制。
碳源，除了蔗糖以外，可適當使用葡萄糖、果糖、糖蜜等糖類、富馬酸、檸檬酸、琥珀酸等有機酸、甲醇、乙醇、甘油等醇類等。氮源，可適當使用有機銨鹽、無機銨鹽、氨氣、氨水等無機體氮源、及蛋白質水解物等有機體氮源等。無機離子，可視需要適當使用鎂離子、磷酸離子、鉀離子、鐵離子、錳離子等。
有機微量成分，可適當使用微生素、胺基酸等及含有該等的酵母抽出物、蛋白腖、玉米浸液、酪蛋白分解物等。
又，也可以通常使用的量含有通常添加在微生物的培養基的其他添加成分，例如抗生素等。又，為了抑制反應時的起泡，宜適量添加消泡劑。該等成分在培養基中的含量，只要是通常大腸菌的培養可適用的範圍即可，不特別限制。
又，本發明使用的培養基，若考慮供工業化生產之點，宜為液體培養基。
本方法中，異丙醇從分離、回收率的觀點，宜以溶於培養基與植物來源原料的混合液中的態樣，或溶於捕捉液的態樣回收。捕捉液，例如甲苯或二甲基甲醯胺等有機溶劑或水等。捕捉液，其中又以容易將異丙醇生產時副生的揮發性夾雜物與異丙醇分離的水較佳。如此的回收方法，例如國際公開2009/008377號小冊記載之方法等。
能以溶解於捕捉液或混合物的態樣回收的異丙醇的生產方法可適用的裝置，例如國際公開2009/008377號小冊之圖1所示之生產裝置。
該生產裝置，係於容納含有生產異丙醇的細菌與植物來源原料的培養基的培養槽連接用於從裝置外部注入氣體的注入管，可對於培養基通氣。
又，培養槽經由連結管，連接容納有作為捕捉液的捕集液的捕集槽。此時，往捕集槽移動的氣體或液體與捕集液接觸而產生氣泡。
藉此，於培養槽利用通氣培養生成的異丙醇，利用通氣而蒸散可輕易地從培養基分離，且同時於捕集槽被捕集液捕捉。其結果，能以更為精製的形態連續且簡便地生產異丙醇。
[實施例]
以下記載本發明之實施例，但本發明不限於該等實施例。又，記載中的「%」，如無特別指明，代表質量基準。
[實施例1] ＜大腸桿菌來源之硫解酶基因、大腸桿菌來源之輔酶A轉移酶基因、芽孢梭菌屬細菌來源之乙醯乙酸去羧酶基因、芽孢梭菌屬細菌來源之異丙醇去氫酶基因、大腸桿菌0157來源之轉化酶基因表現載體及該表現載體轉形株之建構＞
大腸桿菌的硫解酶及大腸桿菌的輔酶A轉移酶的胺基酸序列與基因的鹼基序列已有人報告。亦即，硫解酶的編碼基因記載於GenBank accession number U00096的大腸桿菌MG1655株基因體序列的2324131~2325315。又，輔酶A轉移酶的編碼基因，記載於上述大腸桿菌MG1655株基因體序列的2321469~2322781。
為了使該等基因表現所必要的啟動子的鹼基序列，可使用GenBank accession number X02662的鹼基序列資訊中，記載於397-440的大腸桿菌來源的甘油醛3-磷酸去氫酶(以下有時稱為GAPDH)的啟動子序列。
為了取得GAPDH啟動子，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用cgagctacatatgcaatgattgacacgattccg(序列號碼1)、及cgcgcgcatgctatttgttagtgaataaaagg(序列號碼2)以PCR法放大，並將獲得的DNA片段以限制酶NdeI、SphI消化，藉此獲得約100bp的作為GAPDH啟動子的DNA片段。將得到的DNA片段與藉由將質體pBR322(GenBank accession number J01749)以限制酶NdeI及SphI消化獲得的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落以含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基於37℃培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認GAPDH啟動子已正確地插入，將本質體命名為pBRgapP。
為了取得異丙醇去氫酶基因，使用Clostridium beijerinckii NRRL B-593的基因體DNA作為模板，利用aatatgcatgctggtggaacatatgaaaggttttgcaatgctagg(序列號碼3)、及gcggatccggtaccttataatataactactgctttaattaagtc(序列號碼4)以PCR法放大，將獲得的DNA片段以限制酶SphI、BamHI消化，藉此獲得約1.1kbp的異丙醇去氫酶基因片段。將得到的DNA片段與將先前建構的pBRgapP以限制酶SphI及BamHI消化得到的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下以含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基培養一晚，從得到的菌體回收質體，確認已正確插入異丙醇去氫酶基因，將本質體命名為pGAP-IPAdh。
為了取得大腸桿菌來源的硫解酶基因，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用atggatccgctggtggaacatatgaaaaattgtgtcatcgtcag(序列號碼5)、及gcagaagcttgtctagattaattcaaccgttcaatcaccatc(序列號碼6)以PCR法放大，將獲得的DNA片段以限制酶BamHI、HindIII消化，藉此得到約1.2kbp的硫解酶基因片段。將得到的DNA片段與藉由將先前製作的質體pGAP-IPAdh以限制酶BamHI及HindIII得到的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入硫解酶基因，將本質體命名為pGAP-IPAdh-atoB。
為了取得大腸桿菌來源的輔酶A轉移酶α次單元基因，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用gctctagagctggtggaacatatgaaaacaaaattgatgacattacaagac(序列號碼7)、及tagcaagcttctactcgagttatttgctctcctgtgaaacg(序列號碼8)以PCR法放大，並將得到的DNA片段以限制酶XbaI、HindIII消化，藉此得到約600bp的輔酶A轉移酶α次單元基因片段。將得到的DNA片段與將先前製作成的質體pGAP-IPAdh-atoB以限制酶XbaI及HindIII消化得到的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，得到於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入輔酶A轉移酶α次單元基因，將本質體命名為pGAP-IPAdh-atoB-atoD。
又，為了得到大腸桿菌來源之輔酶A轉移酶β次單元基因，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用aagtctcgagctggtggaacatatggatgcgaaacaacgtattg(序列號碼9)、及ggccaagcttcataaatcaccccgttgc(序列號碼10)以PCR法放大，並將得到的DNA片段以限制酶XhoI、HindIII消化，藉此獲得約600bp的輔酶A轉移酶p次單元基因片段。將得到的DNA片段與將先前製作的質體pGAP-IPAdh-atoB-atoD以限制酶XhoI及HindIII獲得的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，得到於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入輔酶A轉移酶β次單元基因，將本質體命名為pGAP-IPAdh-atoB-atoD-atoA。
又，為了取得大腸桿菌O157株來源的cscA，使用大腸桿菌O157株的基因體DNA作為模板，利用gctggtggaacatatgacgcaatctcgattgcatg(序列號碼11)、及ttaacccagttgccagagtgc(序列號碼12)以PCR法放大，並將得到的DNA片段以T4聚核苷酸激酶進行末端磷酸化，藉此得到約1470bp的cscA片段。將該DNA片段與將先前製作的pGAP-IPAdh-atoB-atoD-atoA以限制酶HindIII消化後以T4DNA聚合酶使成平滑末端並進一步以鹼性磷解酶將末端脱磷酸化者混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，得到在含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。從得到的菌體回收質體，並確認輔酶A轉移酶β次單元基因之3’末端側與與cscA之5’末端側連結，cscA已正確插入，質體命名為pGAP-IPAdh-atoB-atoD-atoA-cscA。
又，大腸桿菌O157的基因體，可從標準物質及計量技術研究所取得。
為了取得乙醯乙酸去羧酶基因，使用Clostridium acetobutylicum ATCC824的基因體DNA作為模板，利用caggtaccgctggtggaacatatgttaaaggatgaagtaattaaacaaattagc(序列號碼13)、及gcggatccttacttaagataatcatatataacttcagc(序列號碼14)以PCR法放大，並將得到的DNA片段以限制酶KpnI、BamHI消化，藉此獲得約700bp的乙醯乙酸去羧酶基因片段。將得到的DNA片段與將先前製作的質體pGAP-IPAdh-atoB-atoD-atoA-cscA以限制酶KpnI及BamHI消化得到的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認乙醯乙酸去羧酶基因已正確插入，將本質體命名為pGAP-Iaaa-cscA。將該質體轉形到大腸桿菌B株(ATCC11303)，在37℃下於含有安皮西林50μg/ml的LB瓊脂平板上培養一晚，獲得的轉形株定名為pGAP-Iaaa-cscA/B株。
[實施例2] ＜使用3L培養槽利用大腸桿菌pGAP-Iaaa-cscA/B株從蔗糖生產異丙醇＞
本實施例中，使用WO2009/008377號小冊之圖1所示之生產裝置生產異丙醇。培養槽使用容量3公升者，捕集槽使用容量10L者。培養槽、捕集槽、注入管、連結管、排出管，均為玻璃製。於捕集槽，注入作為捕集液的水(捕集水)6L的量。又，培養槽設置廢液管，將由於糖或中和劑的流加而增量的培養液適當排出培養槽外。
將實施例1得到的pGAP-Iaaa-cscA/B株，接種於裝有含有安皮西林50μg/mL之LB液體培養基，Miller培養液(Difco244620)25mL的容量100mL的三角燒瓶，於培養溫度35℃、120rpm攪拌培養一晚，作為前培養。將前培養液全量移到裝有以下所示組成的培養基1475g的容量3L的培養槽(ABLE公司製培養裝置BMJ-01)進行培養。
培養係於大氣壓下、通氣量1.5L/min、攪拌速度550rpm、培養溫度35℃、pH7.0(以NH3 水溶液調整)進行。從培養開始至8小時後為止的期間，以5g/L/小時的流速添加40wt/wt%的蔗糖水溶液。之後，以15g/L/小時的流速添加40wt/wt%的蔗糖水溶液。從培養開始至48小時後，取樣菌體培養液，以離心操作除去菌體後，以HPLC依照定法測定得到的培養上清中的異丙醇的累積量。
＜培養基組成＞
玉米浸液(日本食品化工製)：20g/L
Fe2 SO4 ‧7H2 O：0.09g/L
K2 HPO4 ：2g/L
KH2 PO4 ：2g/L
MgSO4 ‧7H2 O：2g/L
(NH4 )2 SO4 ：2g/L
ADEKANOL LG126(旭電化工業)0.6g/L
(殘份：水)
其結果，在培養開始48小時後，確認5.9g/L的異丙醇累積。又，測定值係培養後的培養液與捕集水(6L)中的合計值。
由此結果，可知：藉由導入蔗糖非PTS基因群當中的cscA，使蔗糖分解，且為分解物的葡萄糖與果糖迅速被攝入細胞內，變換為異丙醇。
[實施例3]
將宿主大腸菌的基因體上的輔酶A轉移酶基因(atoD及atoA)與硫解酶基因(atoB)的表現強化，並於導入的質體載體僅連接乙醯乙酸去羧酶基因、異丙醇去氫酶基因及cscA而使質體全長的DNA長度減小，而嘗試從蔗糖生產異丙醇。
＜大腸桿菌B株基因體上的atoD啟動子取代為GAPDH啟動子＞
大腸桿菌MG1655株的基因體DNA的所有鹼基序列為公知(GenBank accession number U00096)，大腸桿菌MG1655株的輔酶A轉移酶α次單元的編碼基因(以下有時簡稱為atoD)的鹼基序列亦有人報告。亦即，atoD記載於GenBank accession number U00096之大腸桿菌MG1655株基因體序列的2321469~2322131。
為了使上述基因表現所需要的啟動子的鹼基序列，可使用GenBank accession number X02662的鹼基序列資訊中，記載於397-440的大腸桿菌來源的甘油醛3-磷酸去氫酶(以下有時稱為GAPDH)的啟動子序列。為了取得GAPDH啟動子，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用cgctcaattgcaatgattgacacgattccg(序列號碼15)、及acagaattcgctatttgttagtgaataaaagg(序列號碼16)以PCR法放大，將得到的DNA片段以限制酶MfeI及EcoRI消化，藉此獲得約100bp的編碼GAPDH啟動子的DNA片段。將得到的DNA片段與將質體pUC19(GenBank accession number X02514)以限制酶EcoRI消化、再經鹼性磷解酶處理過者混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落10個各以含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基於37℃培養一晚並回收質體，以限制酶EcoRI及KpnI消化時，淘選未切出GAPDH啟動子者，確認DNA序列，將正確插入GAPDH啟動子者作為pUCgapP。將得到的pUCgapP以限制酶EcoRI及KpnI消化。
又，為了取得atoD，使用大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板，利用cgaattcgctggtggaacatatgaaaacaaaattgatgacattacaagac(序列號碼17)、及gcggtaccttatttgctctcctgtgaaacg(序列號碼18)以PCR法放大，將得到的DNA片段以限制酶EcoRI及KpnI消化，藉此獲得約690bp的atoD片段。將該DNA片段與先前以限制酶EcoRI及KpnI消化的pUCgapP混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得在含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上生長的轉形株。從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入atoD，將該質體命名為pGAPatoD。
又，大腸桿菌MG1655株，可從美國菌種保存中心(American type culture collection)取得。
如上述，大腸桿菌MG1655株的基因體DNA中的atoD的鹼基序列也已有人報告。使用依照大腸桿菌MG1655株的atoD的5’附近區域的基因資訊製作的gctctagatgctgaaatccactagtcttgtc(序列號碼19)與tactgcagcgttccagcaccttatcaacc(序列號碼20)，以大腸桿菌MG1655株的基因體DNA作為模板進行PCR，藉此將約1.1kbp的DNA斷片放大。
又，使用依據大腸桿菌MG1655株的GAPDH啟動子的序列資訊製作的ggtctagagcaatgattgacacgattccg(序列號碼21)與依據大腸桿菌MG1655株的atoD的序列資訊製作的序列號碼18的引子，以先前製作的表現載體pGAPatoD為模板進行PCR，得到由GAPDH啟動子與atoD構成的約790bp的DNA片段。
將上述得到的片段，分別以限制酶PstI與XbaI、XbaI與KpnI消化，將該片段與將溫度感受性質體pTH18cs1(GenBank accession number AB019610)[Hashimoto-Gotoh,T.,Gene,241,185-191(2000)]以PstI與KpnI消化而獲得的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到DH5α株，獲得在30℃下生長於含有氯黴素10μg/ml之LB瓊脂平板上的轉形株。將得到的菌落在30℃下於含有氯黴素10μg/ml的LB液體培養基上培養一晚，從得到的菌體回收質體。將該質體轉形到大腸桿菌B株(ATCC11303)，在30℃下於含有氯黴素10μg/ml的LB瓊脂平板上培養一晚，獲得轉形株。將得到的轉形株接種於含有氯黴素10μg/ml的LB液體培養基，於30℃下培養一晚。將得到的培養菌體塗佈於含有氯黴素10μg/ml的LB瓊脂平板，於42℃下培養得到菌落。將得到的菌落以不含抗生素的LB液體培養基於30℃下培養2小時，塗佈於不含抗生素的LB瓊脂平板，得到於42℃生長的菌落。
從出現的菌落當中隨機挑取100個菌落，使其分別於不含抗生素的LB瓊脂平板與含有氯黴素10μg/ml的LB瓊脂平板上生長，選擇氯黴素感受性的選殖體。又，從該等選殖體的染色體DNA，以PCR放大含有GAPDH啟動子與atoD的約790bp斷片，選擇atoD啟動子區取代為GAPDH啟動子的菌株，將滿足以上的選殖體命名為大腸桿菌B株atoD缺失GAPpatoD基因體插入株。
又，大腸桿菌B株(ATCC11303)，可從為細胞‧微生物‧基因庫之美國菌種保存中心取得。
[實施例4] ＜芽孢梭菌屬細菌來源之乙醯乙酸去羧酶基因、芽孢梭菌屬細菌來源之異丙醇去氫酶基因表現載體及該表現載體轉形株之建構＞
芽孢梭菌屬細菌之乙醯乙酸去羧酶，係記載於GenBank accession number M55392，異丙醇去氫酶記載於GenBank accession number AF157307。
為了取得異丙醇去氫酶基因，使用Clostridium beijerinckii N RRLB-593的基因體DNA作為模板，利用AATATGCATGCTGGTGGAACATATGAAAGGTTTTGCAATGCTAGG(序列號碼3)、及gcggatccttataatataactactgctttaattaagtc(序列號碼22)以PCR法放大，並將得到的DNA片段以限制酶SphI、BamHI消化，藉此獲得約1.1kbp的異丙醇去氫酶基因片段。將得到的DNA片段與將先前製作的質體pBRgapP以限制酶SphI及BamHI消化得到的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入異丙醇去氫酶基因(IPAdh)，將該質體命名為pGAP-IPAdh。
為了取得乙醯乙酸去羧酶基因，使用Clostridium acetobutylic um ATCC824的基因體DNA作為模板，利用caggatccgctggtggaacatatgttaaaggatgaagtaattaaacaaattagc(序列號碼23)、及ggaattcggtaccttacttaagataatcatatataacttcagc(序列號碼24)以PCR法放大，將得到的DNA片段以限制酶BamHI、EcoRI消化，藉此獲得約700bp的乙醯乙酸去羧酶基因片段。將得到的DNA片段與將先前製作的質體pGAP-IPAdh以限制酶BamHI及EcoRI消化獲得的片段混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。將得到的菌落在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB液體培養基中培養一晚，從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入乙醯乙酸去羧酶基因(adc)，將該質體命名為pGAP-Ia。
將質體pGAP-Ia轉形到實施例3製作的大腸桿菌B株atoD缺失GAPpatoD基因體插入株的勝任細胞，在37℃下於含有安皮西林50μg/mL的LB瓊脂平板上培養一晚，得到大腸桿菌pGAP-Ia/GAPpatoD基因體插入株。
又，Clostridium acetobutylicum ATCC824、大腸桿菌B株，可從為細胞‧微生物‧基因庫的美國菌種保存中心取得。又，Clostridium beijerinckii NRRL B-593，可從為細胞‧微生物庫的VTT菌種保存中心取得。
[實施例5] ＜芽孢梭菌屬細菌來源之乙醯乙酸去羧酶基因、芽孢梭菌屬細菌來源之異丙醇去氫酶基因、大腸桿菌O157來源之轉化酶基因表現載體及該表現載體轉形株之建構＞
大腸桿菌O157株的基因體DNA之全部鹼基序列為公知(GenBank accession number AE005174)、大腸桿菌O157株之轉化酶的編碼基因(以下有時簡稱為cscA)的鹼基序列也有人報告。亦即，cscA記載於GenBank accession number AE005174之大腸桿菌O157株基因體序列的3274383~3275816。
為了取得cscA，使用大腸桿菌O157株的基因體DNA作為模板，利用ATGGTACCGCTGGTGGAACATATGACGCAATCTCGATTGCATG(序列號碼25)、及CGAATTCTTAACCCAGTTGCCAGAGTGC(序列號碼26)以PCR法放大，將得到的DNA片段以限制酶KpnI及EcoRI消化，獲得約1470bp的cscA片段。將該DNA片段與將先前在實施例4製作的pGAP-Ia(芽孢梭菌屬細菌來源之乙醯乙酸去羧酶基因、芽孢梭菌屬細菌來源之異丙醇去氫酶基因表現載體)以限制酶KpnI及EcoRI消化者混合，使用接合酶結合後，轉形到大腸桿菌DH5α株勝任細胞(東洋紡績(股)公司DNA-903)，獲得於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上生長的轉形株。從得到的菌體回收質體，並確認已正確插入cscA，將該質體命名為pGAP-Ia-cscA。
將該質體pGAP-Ia-cscA轉形到於實施例3製作的大腸桿菌B株atoD缺失GAPpatoD基因體插入株的勝任細胞，在37℃下於含有安皮西林50μg/mL之LB瓊脂平板上培養一晚，藉此獲得大腸桿菌pGAP-Ia-cscA/GAPpatoD基因體插入株。
又，大腸桿菌O157的基因體，可由標準物質及計量技術研究所取得。
[實施例6] ＜使用3L培養槽利用大腸桿菌pGAP-Ia-cscA/GAPpatoD基因體插入株從蔗糖生產異丙醇＞
使用實施例5得到的大腸桿菌pGAP-Ia-cscA/GAPpatoD基因體插入株，與實施例2同樣探討異丙醇生產。
又，測定培養槽中的蔗糖、葡萄糖、果糖的累積量，結果如表1所示。
其結果，培養開始48後小時確認有31.4g/L的異丙醇累積。又，測定值係培養後的培養液與捕集水中的合計值。
由該結果可知，藉由以乙醯乙酸去羧酶活性及異丙醇去氫酶活性為芽孢梭菌屬細菌來源的基因，並僅將該等基因與蔗糖非PTS基因群當中的cscA導入，可使蔗糖分解，並快速地將分解物葡萄糖與果糖攝入細胞內，變換為異丙醇。又，本結果中可確認：由蔗糖分解雖應該生成等莫耳的葡萄糖與果糖，但果糖未在培養基中累積，且不受葡萄糖所致之代謝抑制(代謝物阻遏)的影響，能以良好效率進行異丙醇生產。
[實施例7] ＜使用1L培養槽利用大腸桿菌pGAP-Ia-cscA/GAPpatoD基因體插入株從糖蜜生產異丙醇＞
與實施例6同樣地探討異丙醇生產。惟，40wt/wt%的蔗糖水溶液改為使用80wt/wt%的糖蜜(大日本明治精糖製)進行。培養開始48後小時，確認有29.4g/L的異丙醇累積。又，測定值係培養後的培養液與捕集水中的合計值。
[比較例1] ＜使用3L培養槽利用大腸桿菌pGAP-Ia/GAPpatoD基因體插入株生產異丙醇＞
與實施例2以同樣條件，對於實施例4製作的pGAP-Ia/GAP patoD基因體插入株進行異丙醇培養探討。其結果，即使於48小時後，也未確認到異丙醇生產，添加的蔗糖幾乎同量地殘留在培養上清。
此現象表示即使賦予異丙醇生產能力，若未導入CscA，則無法生產異丙醇。
[比較例2] ＜使用3L培養槽利用大腸桿菌pGAP-Ia-cscA/B株生產異丙醇＞
將實施例5製作的質體pGAP-Ia-cscA轉形到大腸桿菌B株(ATCC11303)，在37℃下於含有安皮西林50μg/ml的LB瓊脂平板上培養一晚，並將得到的轉形株定名為pGAP-Ia-cscA/B株。對於製作的pGAP-Ia-cscA/B株，與實施例2以同樣條件進行異丙醇培養探討。於48小時未確認到異丙醇生產。
此現象表示，若未賦予異丙醇生產能力，則即使僅將CscA導入大腸桿菌B株，也無法生產異丙醇。
[比較例3] ＜大腸菌B株中由於葡萄糖所致之代謝抑制(代謝物阻遏)的確認＞
本發明之生產異丙醇的大腸菌的宿主B株，經確認為原本會受到葡萄糖所致之代謝抑制(代謝物阻遏)的影響的大腸菌。
將大腸菌B株(ATCC11303)接種於裝有LB液體培養基，Miller培養液(Difco244620)5mL的容量14mL的塑膠管(FALCON公司製2057)，於培養溫度37℃、120rpm攪拌培養一晚，作為前培養。將前培養液0.3mL，移到裝有表2所示1~4的組成的培養基30mL的容量100mL的附擋板的燒瓶進行培養。培養於攪拌速度120rpm、培養溫度37℃進行。
從培養開始起0、2、4、6、8、10小時後，取樣菌體培養液，以離心操作將菌體除去後，以F-套組(F-kit)葡萄糖/果糖(J.K.International產品號碼139106)測定得到的培養上澄液中的葡萄糖與果糖的含量。結果如圖1所示。在圖1中，黑圓點代表葡萄糖的減少量，白圓點代表果糖的減少量。又，計算從培養第0小時起於各培養時間之葡萄糖或果糖的減少量。各培養基中，10小時後的葡萄糖減少量如表2所示。
【0099】
【表2】
如表2所示，比較10小時後的果糖葡萄糖減少量，結果顯示僅含果糖作為糖源的培養基No.4為3.4g/L，相對於此，以含有葡萄糖與果糖兩者為糖源的培養基No.2，顯示果糖的攝取受抑制。由此可確認，B株於單獨以果糖為糖源時，與葡萄糖同樣地攝取果糖，但是當葡萄糖與果糖共存時，果糖的攝入受抑制。
如此依照本發明，能夠提供從廉價且工業上利用價值高的蔗糖以良好效率生產異丙醇的生產異丙醇的大腸菌及生產異丙醇的方法。
2009年9月16日提申的日本專利申請案第2009-214694號的揭露，全部納入本說明書作為參考。
本說明書記載的所有文獻、專利申請案，及技術規格，各文獻、專利申請案、及技術規格利用參照納入係與具體且個別記載的情形同程度地在本說明書中援用並納入。
圖1顯示將大腸桿菌B株以葡萄糖及果糖作為糖源培養10小時後，培養上澄液中之糖減少量。在圖1中，黑圓點代表葡萄糖的減少量，白圓點代表果糖的減少量。
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Claims (9)

  1. 一種生產異丙醇的大腸菌，至少包含屬於蔗糖非PTS基因群的蔗糖水解酵素基因，且經賦予或經強化異丙醇生產系；該生產異丙醇的大腸菌，係經賦予乙醯乙酸去羧酶(acetoacetate decarboxylase)活性、異丙醇去氫酶(isopropyl alcohol dehydrogenase)活性、輔酶A轉移酶(CoA transferase)活性、及硫解酶(thiolase)活性的大腸菌。
  2. 如申請專利範圍第1項之生產異丙醇的大腸菌，其中屬於蔗糖非PTS基因群的基因當中，僅含該蔗糖水解酵素基因。
  3. 如申請專利範圍第2項之生產異丙醇的大腸菌，其中該乙醯乙酸去羧酶活性、異丙醇去氫酶活性、輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係各藉由導入選自於由芽孢梭菌屬細菌(Clostridium)、芽孢桿菌屬細菌(Bacillus)及大腸桿菌屬細菌(Escherichia)所構成之群組中至少1種來源的各酵素的編碼基因而獲得者。
  4. 如申請專利範圍第2項之生產異丙醇的大腸菌，其中該乙醯乙酸去羧酶活性及異丙醇去氫酶活性，係藉由導入芽孢梭菌屬細菌來源的各酵素的編碼基因而獲得者，該輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性係藉由導入大腸桿菌屬細菌來源的酵素的編碼基因而獲得者。
  5. 如申請專利範圍第2項之生產異丙醇的大腸菌，其中該乙醯乙酸去羧酶活性係藉由導入丙酮丁醇梭孢桿菌(Clostridium acetobutylicum)來源之酵素的編碼基因而獲得者，該異丙醇去氫酶活性係藉由導入拜氏梭孢桿菌(Clostridium beijerinckii)來源之酵素的編碼基因而獲得者，該輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係藉由導入大腸菌來源之各酵素的編碼基因而獲得者。
  6. 如申請專利範圍第2項之生產異丙醇的大腸菌，其中該乙醯乙酸去羧酶之編碼基因、異丙醇去氫酶之編碼基因及蔗糖水解酵素之編碼基因係由質體導入，該輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，係由宿主大腸菌內的基因體基因而獲得。
  7. 如申請專利範圍第6項之生產異丙醇的大腸菌，其中用於 表現該輔酶A轉移酶之編碼基因及硫解酶之編碼基因的啟動子，係甘油醛3-磷酸去氫酶啟動子及絲胺酸羥甲基轉移酶(serine hydroxymethyl transferase)啟動子當中至少其中之一。
  8. 如申請專利範圍第2項之生產異丙醇的大腸菌，其中該乙醯乙酸去羧酶活性、該異丙醇去氫酶活性、該輔酶A轉移酶活性及硫解酶活性，均係藉由導入芽孢梭菌屬細菌來源之各酵素的編碼基因而獲得。
  9. 一種生產異丙醇的方法，包含使用如申請專利範圍第1至8項中任一項之生產異丙醇的大腸菌，從含有蔗糖之植物來源原料生產異丙醇。
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