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TW201004647A - Novel dual targeting antitumoural conjugates - Google Patents

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TW201004647A
TW201004647A TW098114716A TW98114716A TW201004647A TW 201004647 A TW201004647 A TW 201004647A TW 098114716 A TW098114716 A TW 098114716A TW 98114716 A TW98114716 A TW 98114716A TW 201004647 A TW201004647 A TW 201004647A
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TW
Taiwan
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formula
compound
cyclic peptide
mmol
same
Prior art date
Application number
TW098114716A
Other languages
English (en)
Inventor
Pozzo Alma Dal
Claudio Pisano
Massimo Castorina
Loredana Vesci
Sergio Penco
Minghong Ni
Emiliano Esposito
Original Assignee
Sigma Tau Ind Farmaceuti
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Filing date
Publication date
Application filed by Sigma Tau Ind Farmaceuti filed Critical Sigma Tau Ind Farmaceuti
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Description

201004647 六、發明說明: 【發明所屬之技術領域】 本發明關於雙重靶向性細胞毒性衍生物類及彼等之製 備。所描述之化合物類擁有腫瘤特異性作用,其倂有3個 功能性單元:腫瘤識別部分和腫瘤選擇性酶催化作用受質 序列。設計此等共軛物以保證血清安定性及同時於腫瘤細 胞內因酶催化作用可剪切性所造成之所欲作用。 【先前技術】 傳統之癌症化學治療係基於假設迅速增生之癌細胞比 生理組織之靜止細胞更有可能被殺死。實際上,細胞毒性 劑具有極差之特異性,其引起嚴重之不良作用。於過去30 年內,業已探究各種不同之系統以於彼等之作用位置選擇 性地投遞藥物。近來對癌細胞增生期間過度表現之典型受 體的瞭解之進展容許選擇性配體之開發,該選擇性配體當 與細胞毒性劑共軛時能優先差別地將該細胞毒性劑導向腫 瘤處。不同於一般前藥,該配體與藥物間之連接子必須於 循環中安定且於整個共軛物內化至癌細胞後應能藉由化學 機轉或酶催化作用機轉易於被剪切以使該細胞毒性劑再生 〇 近來腫瘤靶向性藥物共軛物之進展需要單株抗體、多 不飽和脂肪酸、玻糖醛酸及作爲與腫瘤有關之受體的配體 之寡狀。 現今,數種免疫共軛物正在進行臨床試驗:美泰素( -5- 201004647
Maytansin ; Liu C., et al_, Proc. Natl. Acad. Sci., 1 996, 93, 8 6 1 8 )、艾黴素(doxorubicin ; Saleh M.N., et al., J. Clin. Oncol., 2000, 1 8,LL, 2282 )、賀癌平(herceptin ; Baselga J., et a 1., J. Clin. Oncol., 1996,14,73 7 )、力口里 刹黴素(calicheamicin ; Bross P.F., et al., Clin. Cancer Res., 2001, 7, 1 4 9 0; Chan S.Y., et al., Cancer Immunol. Immunother·, 2003,52, 243)。關於後者,滅髓瘤(
Mylotarg,即與CD33抗體連接之加里剎黴素)已於西元 2000年經美國食品藥物管理局(FDA)核准上市以供治療 急性白血病(Hammann P . R ., et a 1., Bioconjugate C h e m ., 2002, 13, L, 47)。 免疫共軛物之實際使用僅適於高度有效之藥物,因爲 有限量之抗原在腫瘤細胞之表面上被過度表現,且在未降 低結合親和性及增加免疫原性之情況下,每個單株抗體( mAb )上僅可負載有限數量之分子。 近來,業已硏究細胞毒性劑與導向被腫瘤細胞過度表 現之不同受體的寡肽之許多共軛物作爲可能之選擇性抗腫 瘤化學治療劑。於許多寡狀中,最有希望者似乎是促生長 素抑制素(somatostatin ; Poliak M_N.,et al·, Proc. Soc.
Exp. Biol. Med., 1 998, 2 1 7, 1 43; Fuselier J. A., et al.,
Bioorg. Med. Chem. Lett·,2003,13,799)、鈴蟾肽( bombesin; Moody T.W., et al., J. Biol. Chem., 2004, 279, 2 3 5 8 0 )、整合蛋白(integrin ) 中介之RGD肽類 ( WO2001 17563, Ruoslahti E., Nature reviews Cancer, 2002, 201004647 2, 83; Dickerson E.B., et al., Mol. Cancer Res., 2004, 2, 12., 663 ; de Groot F.M., et al., Mol. Cancer Ther., 2002, 1, 90 1 ; Chen X·,et al., J. Med. Chem., 200 5, 48, 1 098 ) 。通常被實驗之介於腫瘤識別部分與抗癌藥物間之化學連 接子含括腙、二硫化物及溶酶體酶之肽受質。 連接子之本性係決定共軛物之活體內命運、安定性、 溶解性及生物可利用性之必要條件。 本發明之腫瘤靶向性共軛物係由藉由間隔子(連接子 )連接在一起之3個功能性單元(腫瘤識別部分和抗癌藥 物)所製成。 以本案申請人之名提出申請之W005111064描述呈現 RGD單元且擁有抗整合蛋白活性之環肽類。以本案申請人 之名提出申請之W Ο 0 5 1 1 1 0 6 3報導經由間隔子與識別整合 蛋白之環肽類共軛之7-亞胺基喜樹鹼衍生物類。 以本案申請人之名提出申請之WO0511 04 87報導於位 置20上與整合蛋白拮抗劑共軛之喜樹鹼衍生物類。 【發明內容】 本發明之目標係硏發含有藉由新穎之分子橋連與細胞 毒性藥物連接之整合蛋白α V β 3和α V β 5識別部分的腫瘤革巴向 性共軛物,該分子橋連含有3個單元。後者(即該分子橋 連)係由間隔子、可被與腫瘤有關之酶興切的肽及自我犧 牲功能性單元所構成。 所選擇之間隔子係由含有功能上作爲剛性部分之親水 -7- 201004647 性胺基酸或雜環結構的小撓性乙二醇替代物所製造’該間 隔子賦與整個共軛物溶解性且未妨礙與受體之結合。此等 特定之間隔子係優於被廣泛使用之高分子量乙二醇’該等 高分子量乙二醇雖具有極佳之溶解性質’但是因傾向形成 阻礙結合區之環而係不適當的。 業已揭示作爲組織蛋白酶B之受質的許多含有連接子 之肽類’例如 Phe-Lys、Val-Cit ( Dubowchick G. Μ., e t al, Bioconjugate Chem., 2002, 13, 4_, 855 ) ; Gly-Phe-Leu-
Gly ( Rejmanova P., e t a 1, Biomaterials, 1985, 6,L, 45) ;D-Ala-Phe-Lys ( de Groot et al., Mol. Cancer.
Ther.,2002,1 , 901 )。某些與抗體連接之該等肽已被成功 地應用,該抗體基於本身龐大性可保護該等肽免遭血漿肽 酶之作用。然而,當吾人對應用於含有小配體之共軛物的 此等肽序列(如爲寡肽者)進行實驗時,發現該等肽序列 立即被剪切而釋出細胞毒性劑至循環中,此結果係與其他 作者所描述者相反。特別地,含有Phe-Lys連接子之肽( S T3 2 8 0 )於所進行之各種測定中皆顯現高度不安定性。前 揭引述之Dubowchick文獻處理組織蛋白酶B不安定之二肽 配體。該等相同之作者亦於4年前發表另一有關當Cit胺基 酸於P!位置上時於P2位置上之胺基酸的影響之硏究,其結 論爲基於組織蛋白酶B之結合部位內的疏水性交互作用, 於該P2位置上之最佳胺基酸係 Val ( Dubowchick G. Μ ., et al, Bioorg. Med. Chem,,1998,8,3341),同時含有替代 Val之Ala的類似物成爲顯著緩慢艾黴素釋出之因素,此結 201004647 果係明確地與該硏究之目的相反。 令人驚訝地,現今已發現:意想不到地於鼠科動物之 血液中顯現安定且於腫瘤細胞內可被剪切之Ala-C it或D-Ala-Cit係特別適合作爲使細胞毒性模體基序(m〇tif )於 作用部位上釋出之工具。 爲提高內肽酶之作用,自我犧牲基團之存在亦係必要 的(Carl P.L., et al, J. Med. Chem., 1981, 24, 1, 479; S ham i s M.L., et al., J. Am. Chem. Soc., 2004, 126, 6_, 1 726 )。此等新穎之連接子更佳地保證相關共軛物所需之 藥理性質(諸如代謝安定性和於細胞內內化後細胞毒性劑 之進一步釋出)及最適溶解性和生物可利用性。再者,該 等連接子已經設計以具有適合靶向性裝置與受體結合之大 小和構型。 該等新穎之連接子係易變之分子橋,其可應用於各種 不同之配體和不同之抗腫瘤藥物。 本發明包含通式I化合物
[(L-D)„E]m-F-D-PI-SI-CT 式I 其中 L係識別α-整合蛋白受體之式Π環肽 c(R! - Arg-Gly-Asp-R2)
式II R1 係 Amp、Lys 或 Aad; R2係呈R構型之Phe、Tyr或Amp ; 201004647 D於每次出現時可爲相同或不同且係不存在或式 價基
-SP^A^SP^A^SP3-式III SP1係不存在或係R3-(CH2)q-(〇CH2-CH2)q-〇-(CH2)ci-R4 ’ R3和R4係相同或不同且係不存在或係_c〇_、_c〇〇_、 -ΝΗ-、-Ο-或式IV、式VIII或式IX之二價基 0
式IV
q於每次出現時可爲相同或不同且係獨立地〇至6之整 數; A 1係不存在或含有親水性側鏈之天然或非天然(L ) 或(D )胺基酸; SP2係不存在或係與SP1者相同; A2係不存在或係與A1者相同; SP3係不存在或係與SP1者相同; m = 1 或 2 ; 1 或 2 ; E於每次出現時可爲相同或不同且係Glu、LyS或不存 在; F係與E相同或係不存在或式X之組胺酸類似物; -10- 201004647
其中該三唑環係與D-PI-SI-CT部分連接,該羰基部分係與 含有L之部分連接且SP1係如上述所定義者; PI係由選自Ala或Cit之(L)或(D)胺基酸所構成的 天然或非天然之寡肽; SI係二價基對胺基苄氧羰基; CT代表細胞毒性基團; 彼等之互變異構體、幾何異構體、光學活性型式(諸 如鏡像異構物、非鏡像異構物及彼等之消旋型式)及前述 彼等之藥學上可接受之鹽; 唯其= 至少一個D應存在;且 當E存在且係Lys時’ E係經由其胺基部分與含有L基之 部分連接’或當E存在且係Glu時’ E係經由其羧基部分與 含有L基之部分連接。 本發明之一較佳體系係式1化合物,其中07代表喜樹 鹼衍生物。 本發明之另一較佳體系係式1化合物’其*CT代表喜 樹鹼衍生物’ R1係Amp且R2係 本發明之另一較佳體系係式1化合物’其中PI代表包 -11 - 201004647 含2或3個胺基酸殘基之寡肽。 本發明之另一較佳體系係式I化合物,其中m=l且n=l 〇 本發明之另一更佳體系係式I化合物,其中m=l且n = 2 〇 利用熟習此技藝之人士習知之標準偶合方法可製得式 I化合物。應當瞭解的是除非另有說明,在給與典型或較 佳之實驗條件(即反應溫度、時間、反應試劑之莫耳數、 溶劑等)下,亦可使用其他之實驗條件。最適之反應條件 可能會依據所使用之特定反應物或溶劑而有所變化,但是 該等條件可被熟習此技藝之人士藉由慣用之最適化過程加 以決定。 本發明進一步提供一種製備通式1化合物之方法’其 係例如藉由令下式V化合物之PI片段的自由胺基 (CT-SI-PI)-NH2 (式 V) (其中CT、SI及PI係如上所述者) 與式VI之含有疊氮化物的衍生物 L-CSP^A'-SP^A^SP^-Ns (式 V1) (其中L、SP1、A1、SP2、A2及SP3係如上所述者且11係 CO)反應。 可替代地,如述於文獻R〇stovtsev ν·ν·,et al’ Angew’ Chem., 2002, 4 1,2596,製備式I化合物可藉由令式VH化 合物 (CT-SI-PI)-CO-C^CH (式 VII) -12- 201004647 (其中CT、si及PI係如上所述者) 與式VI化合物(其中該式VI化合物中之L、SP1、A1、 SP2、A2及SP3係如上所述者’唯其r4係不存在)反應。 亦可藉由令式XI化合物 (CT-SI-PI)-D-NHCH2-C = CH (式 XI) (其中CT、SI、PI及D係如上所述者) 與式XII化合物 [(L-D)„E]m-COCH2-N3 (式 XII) (其中L、D及E係如上所述者)反應以製得式I化合物。 可替代地,可藉由令式X111化合物 (CT-SI-PI)-D-N3 (式 XIII) (其中CT、SI、PI及D係如上所述者) 與式XIV化合物 [(L-D)„E]m-CO-CH(NHD)CH2-C = CH (式 XIV) (其中L、D及E係如上所述者)反應以製得式I化合物。 含有親水性側鏈之胺基酸係指選自精胺酸、天冬醯胺 、天冬胺酸、瓜胺酸、半胱胺酸、谷胺酸、谷胺醯胺、組 胺酸、離胺酸、絲胺酸、蘇胺酸或酪胺酸之胺基酸。 喜樹鹼衍生物或細胞毒性基團係指喜樹鹼,諸如以本 案申請人之名提出申請之woo〇/5 3607和WOO 4/0 83214中所 描述之衍生物類。 本發明之另一目標係一種治療哺乳動物罹患未受控制 之細胞生長、侵襲及/或轉移指徵之方法,其包含投服治 療上有效量之上述式(I )化合物。本發明所使用之“治療 -13- 201004647 上有效量”一詞係指供治療或減輕標的疾病或指徵或顯現 可被偵測之治療功效所需之治療劑的量。 對任一化合物’起初可藉由細胞培養測定或動物(通 常爲小鼠、大鼠、天竺鼠、兔、狗或豬)模式以估計治療 上有效劑量。亦可使用該動物模式以決定適當之濃度範圍 和投藥途徑。該等資訊隨後可用於決定用於人體之有效劑 量和投藥途徑。於計算人體相當劑量(HED )時,建議使 用文獻〇111(131106€〇1"111(11151^丫311(1116乂16'\¥613( 2002,11.8· Food and Drug Administration, Rockville, Maryland, USA )所提供之換算表。 用於人個體之精確有效劑量將取決於疾病狀態之嚴重 性、該個體之一般健康狀態、年齡、體重及性別、飲食、 投藥時間和頻率、藥物組合、反應敏感性及對治療之耐受 性/反應等。此劑量可由慣用之實驗方法決定且係由臨床 醫師判斷。通常’有效劑量將介於0.01至100 mg/kg (較佳 地0.05至50 mg/kg )。可將組成物各別地投服至病患體內 或可將組成物與其他藥劑、藥物或激素一倂投服。 爲投服治療劑,該藥物亦可含有藥學上可接受之載體 。該等載體包括抗體和其他多肽、基因及其他治療劑(諸 如脂質體)’唯其該等載體本身不會誘發產生對接受該組 成物之個體有害的抗體且可無過度毒性地被投服。 適當之載體可爲緩慢被代謝之巨大分子,諸如蛋白質 、多糖、聚乳酸、聚羥乙酸、聚胺基酸、胺基酸共聚物及 失活病毒粒子。 -14 - 201004647 藥學上可接受之載體的完全討論係見於文獻 Remington’s Pharmaceutical Sciences ( Mack Pub. Co., N. J. 1991)。 治療性組成物中的藥學上可接受之載體可額外地含有 液體,諸如水、鹽水、甘油及乙醇。另外,該等組成物中 可存有輔助物質,諸如濕潤劑或乳化劑、pH緩衝物及類似 者。爲供病患攝取,該等載體可使該等醫藥組成物經調製 成藥片、九、糖衣錠、膠囊、液體、凝膠、糖漿、漿泥、 懸浮液及類似者。 一旦經調製後,本發明之組成物可被直接投服至個體 體內。欲被治療之個體可爲動物;特別地,可供治療人體 〇 本發明之藥物可經許多途徑投服,該等途徑包括但不 限於口服、靜脈內、肌內、動脈內、脊髓內、椎管內、心 室內、經皮施用、皮下、腹膜內、鼻內、腸內、局部、舌 下、陰道內、經直腸途徑或於外科手術後局部施用於受病 害之組織上。 劑量治療可爲單一劑量療程或多重劑量療程。 本發明之另一目標係含有作爲活性成分之至少一種式 (I)化合物的醫藥組成物’其中該式(I)化合物之量係 諸如產生顯著治療功效者。本發明所含括之組成物係完全 爲慣用者且係藉由使用製藥工業之一般實務方法所製得。 依據所採取之投藥途徑’該等組成物係呈固體或液體型式 且係適於口服、非經腸或靜脈內投藥。本發明之組成物含 -15- 201004647 有該活性成分和至少一種藥學上可接受之載體或賦形劑。 下述供說明之實施例絕非係本發明欲保護者之無遺漏 列示。 【實施方式】 簡稱:
Aad :胺基己二酸
Alloc :烯丙氧羰基
Amp :對胺基甲基苯基苯胺
Boc :特丁氧羯基
Cit :瓜胺酸 CPT :喜樹鹼 D C Μ :二氯甲烷 DIPEA :二異丙基乙胺 DMF:二甲基甲醯胺 equiv.:當量
Et20 :二乙醚
Fmoc : 9H-芴基甲氧羰基 HCTU : ( 2- ( 6-氯-1H-苯並三唑-1-基)-1,1,3,3-四甲 基銨六氟磷酸鹽) HOAt : 1 -羥基-7-氮雜苯並三唑 HOBt : 1-羥基苯並三唑 M A L D I :介質輔助雷射脫附離子化 MeOH :甲醇 -16- 201004647 Ν Μ P : N -甲基吡咯啶酮 PABA : 4-胺基苄醇 PABC :對胺基苄氧羰基
Pmc: 2,2,5,7,8-五甲基-色滿-6-磺醯基 RP-HPLC:逆相高效液相層析 RT :室溫 rt :滯留時間 SPPS :固相肽合成 TBTU : Ο-(苯並三哩-卜基)-N,N,N’,N’-四甲基脲鐵 四氟硼酸鹽 TEA ··三乙胺 TFA :三氟乙酸 Tof :飛行時間 一般註釋:4光譜係於所指之DMSO-D6、CDC13或 D2〇溶液中且於300 MHz下經Bruker儀器記錄。化學位移値 係以ppm表示且偶合常數係以Hz表示。閃爍管柱層析係利 用矽膠(Merck 23 0-400篩孔)實施。 實施例1 合成ST3 8 3 3 將溶解於DMF (2 ml)中之片段2(1當量)加入至含 有片段1(於原位製備,〇·32毫莫耳)和DIPEA(1當量) 之〇1^(71111)溶液中。利用〇1?£人將?11調整至約7.5並於 室溫和黑暗下攪拌該反應混合物。經2小時後,加入另一 -17- 201004647 當量之片段1,再次調整pH並令該反應混合物經隔夜攪拌 〇 經製備性HPLC (管柱,Discovery Bio Wide pore C18, Supelco, 250 x 2 1.2 mm, 10 μηι;流動相:29% CH3CN 水溶 液+0.1% TFA,λ = 220 nM )純化和冷凍乾燥後,得到 ST3 833 ( 365 mg, 97.6%純度)。產率 60% ° 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C18, 250 X 4.6 m m, 5 μ m ;流動相:3 4 % C Η 3 C N 水溶液 + 0.1 % T F A , λ = 2 2 0 nm )。該共軛物於滯留時間7.9 6和1 0.4 3分鐘下顯現兩個 峰,其係基於原始細胞毒性分子之E/Z異構物的混合物。 Maldi-Tof質量·· 1 650.7 1 [M + H]+。 *H-NMR ( DMSO-D6 ),主要位移,δ : 9.28,8.57, 8.28, 8 .22, 8.14, 8 .07, 7.93, 7, .88, 7.75, 7.65, 7.55, 7.45, 7.36, 7 24, 7.15, 7 • 11, 7.03, 7. .02, 6.42, 5.95, 5.42, 4.94, 4.60, 4 .41, 4.28, 4. .09, 3.95, 3 . 89, 3.57, 3.48, 3.18, 3.00- 2.31,1.9 1, 1.75, 1.60- 1.3 0, 1.25, 0.90 ° 實施例2 (供比較用) 合成ST3280 在除去alloc保護基之前,依循實施例1所描述之方法 進行片段1與片段3之偶合反應。 將 Bu3SnH ( 0.172 毫莫耳)、AcOH ( 0.375 毫莫耳)及
Pd(PPh3 )4 ( 0.0 0 3 毫莫耳)加入至[A11oc-ST3280] ( 0.078 毫莫耳)之DMF (3 ml)溶液中。於室溫和氬氣下攪拌該 -18- 201004647 反應混合物1小時。於減壓下經蒸發溶劑後,令殘餘物經 製備性 HPLC (管柱,Alltima,Alltech,RP18, 10 μηι,250 X 22 mm;流動相:3 4% CH3 CN水溶液+ 0 . 1 % TF A )純化。經 冷凍乾燥後,得到共軛物(9 9.9 %純度)。產率5 5 %。 分析級Η P L C ( Gemini, Phenomenex, C18,2 5 0 x 4.6 mm, 5 μηι;流動相:3 5 % C H 3 CN水溶液 + 0.1 % TF A; λ = 3 6 0 11111)。£/2異構物之滯留時間:7.24和9.61分鐘。£81質量 :1 696[M + H]+。 1H-NMR ( DMS〇-D6),主要位移,δ : 8.57, 8.28, 8.22, 8.14, 8.07-7.50, 7.36, 7.24, 7.20-6.90, 6.42, 5.42, 4.94, 4.60, 4.41, 4.28, 4.18-4.00, 3.95, 3.90, 3.57, 3.48, 3.12-2.25, 1,91, 1.55, 1.38, 0.90 。 實施例3 合成ST4 1 67 將抗壞血酸鈉(0.08 9毫莫耳)和CuS04_5H20 ( 0.009 毫莫耳)之水(5〇0 μΐ)溶液加入至片段4(0.09毫莫耳) 和片段5 (88 mg, 0.09毫莫耳)之DMF (2 ml)溶液中。 藉由加入NaOH將pH調整至pH 6並於室溫下令該懸浮液經 隔夜攪拌。於減壓下經蒸發溶劑後,令殘餘物經製備性 HPLC(管柱,Alltima C18,10 μιη, Alltech;流動相:33% CH3CN水溶液+0.1% TFA,λ = 220 nm)純化。經冷凍乾燥 後,得到所欲之加成物(72 mg,97%純度)。產率44%。 分析級 HPLC (管柱,Gemini C18,250 X 4.6 mm,5 μιη; -19- 201004647 流動相:34% CH3CN水溶液+〇· 1% TFA,λ = 220 nm )。滯留 時間:7_7 和 9_9 分鐘。ESI 質量:1 745.7 [M + H]+。 H-NMRCDMSO-De + Da),主要位移,δ: 8.90, 8.44, 8.33, 8.18, 8.03-7.84, 7.8-7.69, 7.45, 7.39, 7.2-6.94, 5.48-5.30, 5.19, 4.89, 4.69, 4.6-4.24, 4.20, 4.13,4.02, 3.89-3.52, 3.5-3.37, 3.24, 3.10-2.62, 2.40-2.30, 1.93-1.25, 0.85。 實施例4 合成ST4215 依循實施例3所描述之方法進行片段4與片段6之偶合 反應。 令自環加成反應所得之粗反應產物經製備性HPLC ( 管柱,Alltima, C18, 10 μιη, Alltech;流動相:30% CH3CN 水溶液+ 〇 · 1 % T F A )純化。經冷凍乾燥後,得到所欲之加 成物(52 mg,98.6%純度)。產率41%。 分析級 HPLC ( Gemini,Phenomenex, C18,250 X 4.6 m m,5 μ m ;流動相:3 0 % C Η 3 C N 水溶液 + 〇 · 1 % τ F A, λ = 2 2 0 nm )。滯留時間:11·23和15.43分鐘。ESI質量: 2 1 06[M + H]+。 'H-NMR ( DMSO-D6 ),主要位移,δ : 9.79, 9.13 8.42, 8.15, 7.95, 7.86, 7.80-7.69, 7.45-7.39, 7.18-6.70, 5.47-5.24, 4.85, 4.60-4.30, 4.28-3.65, 3.64-3.31, 3 30- 2.61, 2.43-2.30, 1.91-1.38, 1.33, 0.84° -20- 201004647 實施例5 合成 ST5 54 8TF1 依循實施例3所描述之方法進行片段4與片段7之環加 成反應。經製備性HPLC純化後,得到所欲之加成物( 1 0 0 %純度)。產率4 5 %。 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex,C18, 250 X 4.6 m m,5 μ m ;流動相:2 9 % C Η 3 C N 水溶液 + 0 · 1 % T F A , λ = 2 2 0 nm)。滯留時間:10.84和15.22分鐘。1^1(1丨質量: 2 1 20.89[M + H]+。 i-NMRCDMSO-Dj 主要位移,δ: 9.94, 9.28,9.04, 8.58, 8.52, 8.27-8.17, 8.03, 7.93-7.73, 7.55, 7.37, 7.25, 7.11-7.07, 6.82, 6.56, 6.41, 5.90, 5.42-5.29, 4.95, 4.60-4.53, 4.46, 4.37, 4.25, 4.16, 4.01-3.96, 3.84, 3.65-3.37, 3.17, 3.10, 3.01-2.88, 2.42-2.36, 1.90-1.86, 1.75-1-71, 1.61-1.58, 1.50-1.30, 0.89° 實施例6 合成 ST5546TF1 依循實施例3所描述之方法進行片段4與片段8之偶合 反應。令自環加成反應所得之粗反應產物經製備性HPLC (Alltima, Alltech, RP1 8, 250 x 22 mm, l〇 μιη;流動相: 28% CH3CN水溶液+0_1% TFA,λ = 220 nm)純化。經冷凍 乾燥後’得到ST5546TF1 ( 100%純度)。產率38%。 -21 - 201004647 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C 1 8, 2 5 0 x 4.6 mm,5 μιη;流動相:28% CH3CN水溶液 +0.1% TFA, λ = 220 n m )。滯留時間:1 1 . 3 8和1 6 .1 6分鐘。M a 1 d i質量: 24 8 0 [M + H]+。 iH-NMRCDzO)主要位移,δ: 8.73,8_52,7.83-7.74, 7.62, 7.39, 7.19, 7.05, 6.93, 6.87, 6.63, 5.58-5.49, 4.91, 4.68-4.26, 4.04, 3.85-3.42, 3.24-3.12, 2.93-2.87, 2.77, 2.65-2.60, 2_11, 1.93, 1.82, 1_72, 1_63, 1.58-1.49, 1.12。 實施例7 合成 ST5744TF1 將抗壞血酸鈉(0.014毫莫耳)和CuS04 5H20 ( 0.00 1 4毫莫耳)之水溶液(Μ μΐ )加入至含有片段9 ( 15 mg, 0.014毫莫耳)和片段10 (34 mg,0.016毫莫耳)之( DMF/H20: 1/1, 2 ml)溶液中。室溫下擾拌所生成之反應 混合物1 .5小時。隨後於減壓下除去溶劑。經通過HPLC ( 管柱,Alltima, Alltech, C18, 10 μιη, 250 X 22 mm;流動相 :30% CH3CN水溶液+0.1% TFA)純化後,得到所欲之加 成物。產率3 7 %。 分析級HPLC (管柱Gemini,流動相2 9 % C H 3 C N水溶 液 +0.1% TFA)。滯留時間:9.2和 12.6分鐘。Maldi-TOF :[M + H]+ 298 8.78。 iH-NMRCDMSO-De + DjO)主要位移,δ: 9.3 0, 8.5 6, 8.40, 8.22, 8.19, 8.01, 7.92-7.85, 7.83, 7.78-7.69, 7.53, -22- 201004647 7.37, 7.23, 7.08, 6.68, 5.42-5.3, 5.21, 5.10, 4.93, 4,74, 4.37-4.34, 4.23, 4.20-4.03, 3.89, 3.85, 3.61, 3.56-3.36, 3.29-3.16, 3.07, 3.00-2.73, 2.38, 2.10, 1_85, 1.72, 1.55, 1.40- 1.3 0,1 _23,〇_87。 實施例8 合成 ST5 745TF1 將抗壞血酸鈉(0.016毫莫耳)和CuS〇4 + 5H2〇( 0.0016毫莫耳)之水溶液(16 μ1)加入至含有片段11 ( 33.2 mg,0.032毫莫耳)和片段12 ( 84 mg,0·031毫莫耳) 之(DMF/H2〇: 4/3,3.5 ml)溶液中。令所生成之溶液經 微波(90W )照射2分鐘。觀察到最大溫度達120°C °經通 過 HPLC (管柱,Alltima, Alltech, C18, 10 μιη, 25 0 χ 22 mm;流動相:32% CH3CN水溶液+0.1% TFA)純化後,得 到所欲之加成物(97 %純度)。產率42%。 分析級HPLC (管柱Gemini,流動相29% CH3CN水溶 液+0.1% TFA)。滞留時間:10.2和12.5分鐘。Maldi質量 :[M + H]+ 3723。 h-NMRCDMSO-Ds + DaO)主要位移,5:9.05,8.34-8.09, 7.82-7.71, 7.42-7.24, 7.06-6.99, 6.66, 5.49, 5.55-5.11, 4.79, 4.57, 4.37-3.97, 3.70-3.38, 3.16, 3.01-2.87, 2.34-2.32, 2.00-1.55, 1.42-1.28, 1.19, 0.84。 實施例9 -23- 201004647 合成片段1 c{Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp[CO-CH2-(〇-CH2-CH2)2-〇-CH2-CO-N3]} 環肽醯基醯肼之微波輔助固相合成 令Fmoc-Gly-SASRIN® ( 2.53 g,2毫莫耳)懸浮於含有 2 0 %哌啶之D M F ( 4 0 m 1 )溶液中並經照射(2 5 W ) 3分鐘 。經過濾並沖洗該樹脂後,加入含有下一個胺基酸(2當 量)之溶液,隨後再加入含有2當量之HOBT和TBTU的 DMF ( 36 ml )溶液。最後,加入溶解於NMP ( 5 ml )中之 DIPEA ( 4當量)並於30W下照射該懸浮液5分鐘。經過濾 並經Fmoc去保護後,以相同之方式進行下一次偶合反應直 至該肽完成。胺基酸之加入順序係Fmoc-Arg(Pmc)-OH、 Fmoc-Amp構築團(參閱圖3a之合成)、Fmoc-D-Phe-OH及 Fmoc-Asp(OtBu)-OH。 經最終之Fmoc去保護並經沖洗後’藉由1 % TFA之 D C Μ ( 6 0 ml )溶液處理1 5分鐘以自該樹脂進行剪切。經 過濾後,重複相同之操作5次。藉由加入吡啶以中和結合 之濾液並達至乾燥狀態。將HOBT和TBTU ( 3當量)及1% DIPEA加入至溶解於CH3CN( 1 5 00 ml)之殘餘物中並於室 溫下攪拌該反應混合物1小時。隨後於減壓下蒸發溶劑。 經閃爍層析(DCM/MeOH:94/6 — 92/8)純化後,得到所欲 之經保護的環肽(50%產率)。 令後者溶解於TFA/H20:9 5/5中並於室溫下經攪拌1小 時。隨後於減壓下蒸發溶劑並藉由自TFA/Et2〇沉澱純化後 -24- 201004647 ,得到該環肽(98%產率)。 分析級 HPLC (管柱,Purosphere STAR® Merck, RP18, 25〇乂4 1111:1,5 0111;流動相:2〇%(^3〇^水溶液+〇.1% TFA; λ = 220 nm)。滯留時間 9 _ 1 4 分鐘。Μ a 1 d i - Τ ο f 質量: 8 70.1 3 [M + H]+。 令該去保護之醯基醯肼(〇·32毫莫耳)和HO AT (1.91 毫莫耳)溶解於DMF (7 ml)中並加入亞硝酸特丁酯( 0.38毫莫耳)。攪拌該反應混合物30分鐘。該醯基疊氮化 物係未經分離且未經任何純化而用於下一個步驟中。 實施例1 0 合成片段2
HCl.Ala-Cit-PABC-CPT 歩驟1 室溫下隔夜攪拌Boc-Cit-OH ( 1 g, 3·63毫莫耳)、 PABA ( 1 .3 g, 1 0.9毫莫耳)、Η O A T ( 0 · 7 4 g, 5 · 4 5 毫莫耳 )、DIPEA ( 0.93 ml, 5.45毫莫耳)及 DCC ( 1.12 g, 5.45 毫莫耳)之DMF ( 65 ml )溶液。經減壓下蒸發溶劑後, 令殘餘物經閃爍層析(DCM/MeOH: 90/10 —85/15)純化。 藉由令先前之中間產物與TFA/DCM: 1/1反應以進行B〇c去 保護,隨後於減壓下經除去溶劑後,生成TFA.Cit-PABA( 520 mg)。產率 73%。 步驟2 -25- 201004647 將 TFA.Cit-PABA 加入至於 0°C 下 Alloc-Ala-OH ( 472 mg, 2.68 毫莫耳)、DCC(272 mg,1.34 毫莫耳)及 DIPEA (460 μΐ,2.68 毫莫耳)之 DCM/DMF ( v/v=l/l,20 ml)混 合溶液中並攪拌該溶液6小時。減壓下除去溶劑並令殘餘 物於pH 2下溶解於水中。令所生成之溶液經Et〇Ac萃取2次 。藉由加入NaHC03以中和水相並於減壓下除去水。藉由 閃燦層析(EtOAc/MeOH = 85/15 )純化’生成 Alloc-Ala-Cit-PABA ( 3 9 8 mg )。產率 69 %。 步驟3 將溶解於D C Μ ( 2 0 m 1 )和吡啶(1 5 0 μ 1 )中之4 -硝 基-苯基氯甲酸酯( 3 6 3 mg,1.8毫莫耳)加入至後者(392 mg, 0.9毫莫耳)之乾燥DMF( 5 ml)溶液中並攪拌該反應 混合物1小時。減壓下除去溶劑並令殘餘物經冰冷Et20碾 製數次。 步驟4 將7-(2-胺基乙氧基亞胺)-甲基-喜樹鹼.HC1(423.5 mg, 0.90毫莫耳)和TEA ( 150 μΐ,1.1毫莫耳)加入至先前 加成物之DMF ( 25 ml )溶液中並攪拌該反應混合物5小時 。減壓下除去溶劑並令殘餘物經水碾製數次以除去過量之 TEA。經閃爍層析(DCM/MeOH:90/10)純化後,得到被 保護之片段2 ( 320 mg, 0.36毫莫耳)。產率40% ( 2步驟) -26- 201004647 步驟5 將 Bu3SnH( 220 μΐ,〇·8 毫莫耳)之 DCM(3·8 ml)溶 液、水(40 μΐ)及最後 Pd[(PPh)3]4 ( 17 mg,0.014 毫莫耳 )加入至上述所得到之被保護之片段2的DMF ( 3 ·8 ml )溶 液中並攪拌所生成之反應混合物1 5分鐘。減壓下除去溶劑 以生成固體,其係被置入PH 3下之水(65 ml )中。令水 層經Et2〇( 25 ml X 3)萃取’隨後經濃縮以生成氨氣化物 鹽之純片段2。產率9 3 %。 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C 1 8, 25 0 x 4.6 mm, 5 μ m ;流動相:2 8 % C H 3 C N 水溶液 + 〇 · 1 % T F A,λ = 2 2 0 n m ) 。滯留時間:8.9和12.3分鐘。1^1心質量:83 4 [!^ + :^]+。 實施例1 1 合成片段3
TFA.Phe-Lys(Alloc)-PABC-CPT 依循實施例1〇所描述之方法,起始自B〇C-Lys(All〇C)-OH以替代Boc-Cit-OH且於第2步驟中使用Boc-Phe-ΟΗ以替 代All〇c-Ala-OH,得到標的化合物。 分析級 HPLC(Purosphere STAR, Merck, 5 μΐη;流動 相:35% CH3CN水溶液+0.1% TFA,λ = 220 nm)。滯留時間 :18.00 和 25_29 分鐘。Maldi 質量:965 [M + Na]+。 實施例1 2 -27- 201004647 合成片段 4 ( HCsC-CO-AIa-Cit-PABC-CPT) 將DIPEA (0.31毫莫耳)、丙炔酸(0.18毫莫耳)及 HOAT(0_18毫莫耳)加入至片段2(0.12毫莫耳)之DMF (3 ml)溶液中並令該溶液於下冷卻,隨後加入DC C ( 0.2 1毫莫耳)。室溫下攪拌該反應混合物1 · 5小時。經減壓 下除去溶劑後,令殘餘物經閃爍層析(DCM/MeOH: 9 / 1 — 8 / 2 )純化。產率 7 2 %。 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C 1 8, 2 5 0 x 4.6 mm,5 μιη;流動相:31% CH3CN水溶液 +0.1% TFA,λ = 220 nm )。滯留時間:1 1.46和1 6.1 4分鐘。Maldi質量: 863·8[Μ + Η] +和 885.8[M + Na] +。 實施例1 3 合成片段 5 c{Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-[CO-(CH2)2-(〇- CH2-CH2)2_〇_(CH2)2-N3] } 依循實施例9所描述之方法,於SPPS之第2步驟中倂入 構築團 Fmoc-Amp[CO-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2-N3] 以合成標的環肽。 分析級 HPLC( Gemini, Phenomenex, C18, 250 X 4.6 mm, 5 μιη;流動相:30% CH3CN水溶液 + 0.1% TFA, λ = 220 nm)。滞留時間 8.3 分鐘。Maldi 質量·· 881[Μ + Η]+。 實施例1 4 合成片段 6 c{Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-[CO-(CH2)2-(〇-CH2 -28- 201004647 -CH2)2-〇-(CH2)2-NH-Cit-C0-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0- (CH2)2-N3]} 依循實施例9所描述之方法,於SPPS之第2步驟中倂入 構築團 Fmoc-Amp-[CO-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2-NH-Cit-C0-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2-N3]}以替代 Fmoc-Amp[C0-CH2-(O-CH2-CH2)2-O-CH2-CO-N3],合成該環肽 〇 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C 1 8, 2 5 0 x 4.6 mm, 5 μιη;流動相:2 5 % C H 3 C N 水溶液 + 0 · 1 % T F A )。滯 留時間 10.79 分鐘。Maldi-Tof 質量:1241[M + H]+。 實施例1 5 合成片段7 c{Arg-Gly-Asp-D-Tyr-Amp[CO-(CH2)2-(〇-CH2-CH2)2-0- (CH2)2-NH-Cit-C〇-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2-N3]} 依循實施例14所描述之方法,於SPPS之第3步驟中倂 入Fmoc-D-Tyr-(t-Bu)-〇H以合成標的環肽。 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex,C18,250 X 4.6 mm,5 μιη;流動相:22 % CΗ3 CN水溶液 + 0.1 % ΤF A , λ = 220 nm)。滯留時間8.87分鐘。\1&1以質量:1 2 5 6.9 6 [ M +Η ]+。 H-NMRCDjO)主要位移,δ: 7.43,7.29,7.19,6.94, 4.93, 4.59, 4.53-4.37, 4.01-3.65, 3.57, 3.35, 3.27, 3.14-3.07, 2.95-2.87, 2.79-2.72, 2.03-1.60 。 -29- 201004647 實施例1 6 合成片段8 c{Arg-Gly-Asp-D-Tyr-Amp[CO-(CH2)2-(〇-CH2-CH2)2-〇- (CH2)2NH-Cit]2-CO-(CH2)2-(〇-CH2-CH2)2-0-(CH2)2N3} 依循實施例15所描述之方法,於SPPS之第2步驟中倂 入 Fmoc-Amp-[CO-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2NH-Cit]2 -c〇-(ch2)2-(o-ch2-ch2)2-o-(ch2)2n3以合成標的環肽。 分析級 HPLC ( Gemini, Phenomenex, C 1 8, 2 5 0 x 4.6 mm, 5 μιη;流動相:21% CH3CN, λ = 220 nm)。滯留時間 11.62 分鐘。Maldi 質量:1617.31[M + H]+。 1H-NMR(D20),主要位移,δ: 7.23,7.10, 7.05, 6.73, 4.58, 4.40, 4.33-4.17, 3.82-3.47, 3.40, 3.38, 3.16-3.05, 2.96-2.82, 2.75, 2.69, 2.58, 1.84-1.40° 實施例1 7 合成片段9 步驟1 將DCC(97.2 mg, 0_47毫莫耳)、對硝基酚(437 mg, 0.31毫莫耳)、丁£八(1.311111,9.43毫莫耳)及〇1\/1八?(7.7 mg,〇.〇6毫莫耳)加入至於〇°C下之無水3,6,9 -三氧雜--- 碳烷二酸(2.1 g, 9.43毫莫耳)的DCM (63 ml)懸浮液中 。經30分鐘後,令該反應混合物經水、0.1 N HC1及水沖洗 並置於硫酸鈉上乾燥,隨後經濃縮爲小體積且置入冰箱1 小時後再經過濾。對該濾液加入炔丙基胺氫氯化物(1 4 4 -30- 201004647 mg, 1_57毫莫耳)和ΤΕΑ(262 μΐ,1.88毫莫耳)並經數分 鐘後減壓下除去溶劑。令所生成之殘餘物溶解於水(20 ml)中並經通過Dowex 50 W X8過濾。令母液經DCM萃取2 次以除去殘餘之硝基酚並經濃縮後生成白色固體之所欲 炔-PEG-C02H。產率 72%。 步驟2 將 DCC ( 25 mg, 0.1 2毫莫耳)加入至 Ala-Cit-P ABC-CPT (片段 2,56 mg, 0.06毫莫耳)、炔-Peg-C02H ( 22 mg,0.08 5 毫莫耳)、HOAT ( 16 mg, 0· 12 毫莫耳)及 DIPEA ( 41 μΐ,0.24 毫莫耳)之 DMF(1.5 ml)的冰冷( )溶液中。隨後於室溫下隔夜攪拌該反應混合物。經 過濾後,濃縮濾液至乾燥狀態並令所生成之殘餘物經閃爍 層析(DCM/MeOH: 85/15 )純化以最終得到黃色固體之所 欲加成物(40 mg)。產率63.5 %。 分析級 HPLC (管柱 Gemini Phenomenex C18; 2 5 0 χ 4_6 mm, 5 μιη; 32% CH3CN水溶液+0.1% TFA )。滯留時間 11.6和 16.3分鐘。ESI質量:[M + H]+ 1053.42。 實施例1 8 合成片段10 (參閱圖3e) 步驟1 將DCC ( 84 mg, 0_41毫莫耳)加入至L-谷胺酸二特丁 酯氫氯化物(1〇〇 nxg,0.34毫莫耳)、疊氮基乙酸(41 -31 - 201004647 mg, 0.41 毫莫耳)、HOAT ( 0.41 毫莫耳)及 DIPEA ( 127 ml, 0.74毫莫耳)之DCM(4.6 ml)的冰冷(0t)溶液中 。室溫下攪拌該反應混合物2 _ 5小時。經過濾後’令該有 機溶液經DCM稀釋至30 ml並經水、IN HC1、5% NaHC03 及水沖洗。減壓下除去溶劑並令所生成之殘餘物溶解於 TFA ( 3 ml )中且經攪拌1小時。隨後於減壓下除去TFA以 生成2- (2-疊氮基·乙醯胺基)-戊二酸。 步驟2 令2-(2-疊氮基-乙醯胺基)-戊二酸溶解於0€]^1/01^? (8/1,45 ml)混合液中。與特丁基-12-胺基-4,7,10-三氧 雜十二碳烷酸酯(281 mg,1.01毫莫耳)、HOAT(137 mg, 1_〇1 毫莫耳)、DIPEA ( 174 μΐ )及 DCC ( 209 mg, 1 .0 1 4毫莫耳)進行標準偶合反應得到粗產物,其係經閃 爍層析(DCM/MeOH__ 95/5 )純化以生成所欲之雙羧酸酯 中間產物固體產物(175 mg)。產率68.4%。 ^-NMR ( CDC13 ) δ : 7.54, 7.23, 6.74, 4.42, 4.0 1, 3.70, 3.61,3.41, 2.50,2_35,2.08,1.44。 步驟3 利用TF Α於標準條件下使上述所得之化合物去保護。 一旦所有起始物消失,於減壓下除去TFA以得到雙羧酸中 間產物,其係未經任何進一步純化而用於下一個步驟中。 -32- 201004647 步驟4 於〇°C下將N-羥基琥珀醯亞胺(63 mg,0.55毫莫耳) 之DMF溶液加入至上述所得中間產物之溶液中,隨後加入 〇(:(:(115 11^,0.5 5毫莫耳)。室溫下隔夜攪拌該反應混 合物。經標準操作後得到粗所欲之產物,其係未經任何進 一步純化而用於下一個步驟中。 步驟5 令上述所得中間產物溶解於DCM ( 2 ml )中並於室溫 下且於DIPEA(153 μΐ,0.93毫莫耳)之存在下與溶解於 DMF ( 3 · 5 ml )中之環肽 c(Arg(Pmc)-Gly-Asp(OtBu)-D-TvrrtBu)-Amp I ( 725 mg, 0.69 毫莫耳)反應 1.5小時。該環 肽 ciArgrPmc)-Glv-AsD(OtBu、-D-Tyr(tBu)-Amp}係依據實 施例15所描述之方法藉由SPPS且使用Fm〇c-Amp(CbZ)-OH 替代 Fmoc-Amp-[CO-(CH2)2-(〇-CH2-CH2)2-〇-(CH2)2_NH-Cit-C0-(CH2)2-(0-CH2-CH2)2-0-(CH2)2-N3]加以製備。該 粗殘餘物係經製備性HPLC (管柱Alltima, Cl 8 Alltech; 10 μιη,250 x 22 mm; 69% CH3CN水溶液+0.1% TFA)純化。 產率4 8 %。 步驟6 於DCM (1 ml)中藉由利用TFA( 540當量)和苯硫基 甲烷(110當量)進行最終之去保護反應以生成粗產物’ 其係經由於冰冷Et2 Ο中數次連續沉澱而加以純化。得到白 -33- 201004647 色固體之所欲片段10。產率69%。 分析級 HPLC (管柱 Gemini Phenomenex C1 8; 25 0 X 4.6 mm,5 μιη; 22% CH3CN水溶液 +〇. 1 % TFA )。滯留時間 10.9分鐘。MALDI質量:[M + H]+ 1 93 5.22。 實施例1 9 合成片段1 1 將溶解於DCM( 0.5 ml)中之琥珀醯亞胺衍生物(圖 3c,3 7 mg, 0.11毫莫耳,得自片段5之構築團的合成期間之 步驟Π )加入至片段2 ( 80 mg, 0.094毫莫耳)和DIPEA ( 19 μΐ,0.11毫莫耳)之DMF(1 ml)溶液中。室溫下攪拌 該反應混合物5小時。於減壓下經蒸發溶劑後,令殘餘物 經製備性 HPLC (管柱 Alltima, 10 μιη,250 X 22 mm;流動 相:37% CH3CN水溶液+0· 1 % TFA )純化。滯留時間9.7和 12.4分鐘。產率 76.3%。ESI質量:[M + H]+ 1041.42。 實施例2 0 合成片段1 2 步驟1 將抗壞血酸鈉(90 μΐ)和 0.5M CuS04 + 5H20 ( 45 μΐ) 之2.5Μ水溶液加入至(1,3-二-丙-2-炔基胺甲醯基-丙基)-胺甲酸苄酯(72.5 mg, 0.20 毫莫耳)和 C{Arg(PinC)-Gly-Asp(OtBu)-D-Tyr(tBu)-Amp-[CO-(CH2)2-(〇-CH2-CH2)2-〇-(CH2)2-N3]} ( 5 72 mg,0.45毫莫耳)之 DMF/水(7/5,12 -34- 201004647 ml )溶液中。上述環肽係依據實施例1 3所描述之方法且使 用 Fmoc-D-Tyr-(t-Bu)-OH替代 Fmoc-D-Phe-OH而加以合成 。令所生成之反應混合物經微波(90W)照射2分鐘。觀 察到最大溫度1 2 1 °C。重複該照射3次直至起始物完全消失 ,該等起始物係藉由HPLC (管柱Gemini, 250 X 4.6 mm, 5 μ m ;流動相:3 5 % C Η 3 C N水溶液+ 〇 · 1 % T F A )加以監測。 減壓下除去溶劑並令粗反應混合物經閃爍層析(DCM/ MeOH梯度:93/7 —90/ 1 0 — 80/20 )純化以生成所欲之產物 (417 mg )。產率 71 %。ESI 質量:1453.6 (m/z 2+), 969.4 (m/z 3+)。 步驟2 令溶解於DMF ( 3 ml)和MeOH ( 5 ml)混合液中之上 述所得產物(406 mg)藉由甲酸銨(44 mg, 0.70毫莫耳) 和Pd/C( 200 mg)之作用而被去保護以除去該苄氧羰基保 護基。攪拌該懸浮液3小時並隨後經過濾。減壓下除去溶 劑且所生成之產物係未經任何進一步純化而用於下一個步 驟中。 步驟3 將上述所得產物之DMF( 3 ml)溶液加入至自炔两基 甘胺酸和甲基- (PEG) 12-NHS(l〇2 mg, 0.15毫莫耳)之 標準偶合反應所得的中間產物之D C Μ ( 4 · 5 m I )溶液中, 隨後加入 HCTU(62 mg, 0.15 毫莫耳)和 〇ΙΡΕΑ(51 μΐ, -35- 201004647 0.3 0毫莫耳)。室溫下攪拌所生成之溶液2小時。經減壓 下除去溶劑後,令殘餘物溶解於DCM ( 3 00 ml )中並經水 沖洗。隨後蒸發有機相以生成所欲之加成物(3 1 2 mg )。 產率67%。£81質量:1741(111/2 2+),1168(111/2 3+)。 步驟4 藉由使用TFA/DCM/苯硫基甲烷(1/1/0.3 )之混合物 使上述所得之中間產物完全去保護。藉由於冰冷Et20中沉 澱以純化該化合物,生成所欲之片段1 2 ( 245 mg )。產率 92%。發現 MALDI質量:2679.79。 生物測試結果 共軛物與整合蛋白受體ανβ3和〜卩5之固相結合測定 如文獻 Orlando R.A., et al·,J. Biol. Chem. 1991, 266, 1 9543所描述般進行受體結合測定。〇^卩3和〇^卩5分別於塗覆 緩衝液(20 mM Tris, pH 7.4,150 mM NaCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2, 1 mM MnCl2)中被稀釋爲 500 ng/ml 和 1 μ§/πΠ,且將其部分(100 μΐ )加入至96孔槽微滴量盤中並 於4°C下經隔夜培育。令該盤經阻斷/結合緩衝液(50 mM Tris, pH 7.4, 100 mM NaCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2, 1 mM MnC 12 , 1 %牛血清白蛋白)沖洗1次並隨後於室溫下再 經培育2小時。令該盤經相同之緩衝液輕洗2次並於室溫下 且於競爭性抑制劑之存在下與經放射線標記之配體 [1 251]Echi statin ( Amersh am Pharmacia Biotech, 0.05 nM ; -36- 201004647 對αν β 5爲0 · 1 nM )培育3小時。經該培育後,沖洗孔槽並利 用γ計數器(Packard )測量放射活性。利用莫耳過量(200 nM )之冰冷配體echi statin測定配體之非專一性結合。 計算表1和2所示之IC5Q値爲抑制配體echi statin結合達 50%所需之化合物濃度且係由Prism GraphPad程式估算。 依據 Cheng-Prusoff方程式(Cheng Y.C.,et al_,Biochem. Pharmacol., 1 973, 22,3 099 )計算競爭性配體之Ki値。該 等値係由兩個獨立之實驗經三重複測定之平均値±l〇g標準 誤差。 該等共軛物之大多數於低奈莫耳範圍下顯現有效之抑 制活性。値得注重的是由ST3 2 80所證實之活體外活性主要 係基於因該化合物本身之不安定性所導致之分解產物的內 在活性。 表1 抑制[125I]Echistatin與ανβ3受體結合 化合物 IC5〇±1〇^ SE(nM) Ki(nM) Echistatin 0.28 ± 0.08 0.26 ST3833 78.4士 1.5 61.0 ST3280 9.7±0.06 8.5 ST4167 11.0±0.8 8.7 ST5744TF1 3.01 ±0.11 2.4 ST5745TF1 6.21 士 0.09 4.92 -37- 201004647 表2 抑制[125I]EchiStatin與ανβ5受體結合 化合物 IC5〇 ± log SE(nM) Κΐ(ηΜ) Echistatin 0.29 ± 0.02 0.33 ST3833 · 87·8±1.21 68.2 ST3280 34·4±0.8 23.0 ST4167 18·4±0.89 13.8 ST5744TF1 3·84± 0.12 2.95 ST5745TF1 3·15±0·11 2.41 腫瘤細胞於玻連蛋白上之黏附測定 令Α2 7 80人卵巢癌和PC3前列腺癌細胞於含有1〇°/。牛胎 血清和50 pg/ml慶大黴素硫酸鹽之培養基RPMI 1 640中生 長。細胞係保持在飽和濕度及95%空氣和5% C02之氣體環 境的37°C恆溫箱中。A27 80腫瘤細胞株表現高量之ανβ5整 合蛋白,而PC3表現低量之ανβ3和ανβ5整合蛋白。 於96孔槽組織培養盤中,室溫下加入5〇 μΐ/孔槽之玻 連蛋白(5 pg/ml )溶液2小時。令該等盤倒覆以除去溶液 。室溫下加入50 μΐ/孔槽之1% BSA溶液1小時。藉由加入 100 μΐ/孔槽之不含有小牛胎血清(FCS)之培養基RPMI 1640以沖洗該等盤。重複該沖洗2次。加入介於0.039至20 μΜ之間的不同濃度之該等分子。於不含有FCS之培養基中 經1 :2之比例稀釋以製備該等溶液。於經刮刀剝離前’藉 由加入5 ml之不含有FCS和1% BSA之培養基’沖洗燒瓶內 於鹽水溶液中之腫瘤細胞。經再懸浮後計數腫瘤細胞並以 適當之細胞密度(4 0 0 0 0 _ 5 0 0 0 0細胞/孔槽)加入。令該等 盤於增濕恆溫箱(37°C,5%C〇2 )中經培育1小時。隨後’ -38- 201004647 令該等盤倒覆以除去溶液並經200 μ 1/孔槽之含有Ca2+和 Mg2+之PBS溶液沖洗1次。室溫下於〇.2M Sorensen磷酸鹽 緩衝液,pH 7.2-7.4中利用4%聚甲醛溶液(1〇〇 μΐ )固定腫 瘤細胞1 〇分鐘。令該等盤倒覆並於室溫下加入1 %甲苯胺藍 (Toluidine Blu)溶液(100 μΐ) 10分鐘。藉由浸沒於二 次蒸餾水中沖洗該等盤2次並令彼等乾燥於6(TC恆溫箱( Kottermann)中。加入1〇〇 μ1/孔槽之1% SDS。室溫下令該 等盤維持攪拌20分鐘並隨後於600 nm下經Victor 1 420多重 標記計數器(Wallac )評估。 利用“ALLFIT”電腦程式評估作爲測量該等分子對腫瘤 細胞黏附於玻連蛋白上之抑制功效的參數之IC5G値。 經發現被硏究之共軛物能以IC 5 Q値介於〇 . 3 9至4.6 μ Μ (表3)且未顯現對腫瘤細胞株過度選擇性之方式阻斷腫 瘤細胞(PC3和Α2780 )附著細胞外間質成分(諸如玻連 蛋白,即細胞表面受體整合蛋白ανβ3和ανβ5之配體)。如 所述對ανβ3受體之結合親和性,ST3 2 80對ανβ5受體之活性 係該化合物遭剪切而非該化合物本身之結果。 -39- 201004647 表3 共軛物對A 2 7 8 0卵巢癌細胞和p C 3前列腺癌細胞黏附玻連 蛋白之抗黏附功效 〔1小時處理) 化合物 PC3 A2780 IC50±SD(uM) ST3280 1_8±0_4 2_7士0.3 ST3833 2.1±0.2 0.9±0.05 ST4167 0.56±0.07 0.67±0.02 ST4215 4.6±0.8 1.7±0.2 ST5744TF1 0.39±0.09 0.45±0.02 ST5745TF1 1.0±0.05 1.0±0.01 共軛物對不同腫瘤細胞株之細胞毒性 使用硫氰酸胺13(3111口]1〇11〇<1&111丨1^8)試驗以評估化合 物對存活細胞之功效。使用P C 3人前列腺癌和A2 7 8 0人卵 巢癌細胞以測量該化合物對細胞生長之功效。於含有1 0% 牛胎血清之培養基RPMI 1 640 (GIBCO)中生長A2780和 PC3腫瘤細胞。 腫瘤細胞係於約1 0%匯合下接種於96孔槽組織培養盤 中並使其黏附且恢復達至少24小時。隨後對每個孔槽加入 不同濃度之藥物以計算彼等之IC5〇値(即抑制細胞存活達 50%之濃度)。於37 °C下培育該等盤達72小時。於該處理 結束時’藉由除去上清液並加入PBS溶液3次以沖洗該等盤 。加入?83溶液(2〇〇01)和冰冷8〇%三氯乙酸(1'€八)( 5 〇 μ 1 )。令該等盤於冰上經培育至少1小時。除去T C A並 藉由浸沒於蒸餾水中沖洗該等盤3次且於紙上和4 0。(:下經 乾燥5分鐘。隨後加入〇 · 4 %硫氰酸胺B之1 %乙酸溶液(2 0 0 μΐ)。室溫下培育該等盤30分鐘。除去硫氰酸胺B,藉由 -40- 201004647 浸沒於1 %乙酸中3次以沖洗該等盤,再於紙上和4 0。(:下經 乾燥5分鐘。隨後加入Tris(10 mM,200 μΐ)並令該等盤 於攪拌下維持2〇分鐘。藉由光學密度且利用Multiskan螢 光分光光度計(波長5 4 0 n m )測量細胞存活。計算被殺死 之細胞數量爲與對照組培養相比較之硫氰酸胺B結合降低 %。 該等1〇5()値係利用“ALLFIT”程式加以計算。 藉由兩種人腫瘤細胞株(即表現高量整合蛋白之 A 2 7 8 0卵巢腫瘤細胞和表現低量整合蛋白之p C 3前列腺腫 瘤細胞)比較3種共軛物之抗增生活性。如示於表4,該等 分子對腫瘤細胞顯現IC5〇値爲8 nM之顯著細胞毒性功效。 所有該等共軛物對表現低量整合蛋白之PC3腫瘤細胞顯現 極小之作用(IC5G値係介於1至4.6 μΜ )。特別地,該3種 化合物對Α2 7 80腫瘤細胞比對PC3腫瘤細胞顯現較爲專一 之抗增生功效(表4)且對Α2 7 80腫瘤細胞之功效約略呈大 於100倍。 表4 共軛物對Α27 80卵巢癌細胞和PC3前列腺癌細胞之細胞毒 性(72小時處理) 化合物 PC3 A2780 IC50±SD, μΜ ST3280 0.2 士 0.03 0.0084±0.0006 ST3833 4.6±0.8 0.095±0.02 ST4167 1.0±0.1 0.030±0.003 ST4215 2_5±0·7 0.009±0.0007 ST5744TF1 1·0±0_02 0.008±0.0005 ST5745TF1 1.0±0.01 0.008±0.0001 -41 - 201004647 活體內評估共軛物ST3833對CD1裸鼠體內異種移植之卵巢 癌的腫瘤生長之抗腫瘤活性 將腫瘤細胞株(3 X 1 〇6 )經皮下注射至C D 1裸鼠( Harlan)之右肋腹。每個實驗組包括1〇隻小鼠。於第〇天 移植腫瘤且腫瘤生長後每二週一次地利用V erni er彎腳規測 量腫瘤大小。依據公式TV ( mm3 ) =d2 X D/2計算腫瘤體積 ,其中d和D分別係最短直徑和最長直徑。腫瘤接種後第3 天,當腫瘤恰好可被測量時,開始藥物治療。於體積1 0 ml/kg之不同劑量下,依據療程qd X 5/w X 2w經皮下投遞 藥物達兩週。對照組小鼠係經載體(10% DMSO )處理。 藉由下述之方式評估藥物功效。 a )藥物治療小鼠對對照組小鼠之TVI係以下述方式表 示:TVI ( % ) =100 -(經治療小鼠之平均TV値/對照組小 鼠之平均TV値)X 100。經最後治療後,評估TVI達6天, 此時間對應觀察到對照組小鼠之腫瘤體積加倍所需之時間 〇 b)依據公式LCK =(T-C) /3·32 X DT計算Log細胞殺 死(LCK )値,其中T和C分別係對治療組(T )和對照組 (C )腫瘤達到被測量體積所需之平均時間(天)且DT係 觀察到對照組小鼠之腫瘤體積加倍所需之時間。 c ) CR係定義爲經治療終止後腫瘤消失持續達至少6天 。實驗終止前未再生長之腫瘤被視爲“治癒”。 藉由下述之方式評估藥物治療之毒性效果。 -42- 201004647 a)依據公式BWL(%) =100 -(第χ天平均體重/第} 天平均體重)X 1〇〇計算BWL,其中第1天係治療第丨天且 第X天係隨後之任一天。最高(最大)BWL値係記載於表 中。於治療期間全程對小鼠每天稱重。 b )致死毒性係定義爲於任何對照組小鼠死亡前發生 之任何治療組小鼠死亡。對小鼠每天調查死亡數。計算TI (治療指數)爲比例MTD/ED80。 結果 於異種移植之CD1裸鼠體內,ST3 8 3 3之抗腫瘤活性係 最具有拮抗腫瘤之活體外反應性。該分子顯現依據該療程 qd X 5/w X 2w經皮下投遞25 mg/kg之大約最大耐受劑量 (MTD ),因爲BWL値係25%且10隻小鼠翁1隻死亡。 ST3833顯示有效之抗腫瘤功效,因爲ST3 83 3產生對所有腫 瘤之完全退化(被治癒之小鼠於第90天於該MTD下係100% )(表5 )。於1/3 MTD ( 8.3 mg/kg)下觀察到50%被治癒 小鼠。於較低劑量(2.77和0.92 mg/kg )下,被治癒小鼠 係達3 0 %。經最後治療後之功效持續性和該共軛物之良好 可耐受性顯示高治療指數(ΤΙ = 8·9),此結果建議該共鞭 物之高治療功效。 -43- 201004647 表5 經皮下投遞(qdx5/wx2w)之ST3833拮抗CD1裸鼠體內經異 種移植的A2780卵巢癌之抗腫瘤活性_______ 化合物 a劑量 bBWL% c致死 毒性 dTVI°/〇 eCR f治癒 gLCK hTI mg/10 ml/kg 00 ρ 25 24 1/10 100 9/9 9/9 >11.4 8.9 8.3 0 0/10 100 5/10 4/10 2.7 2.77 0 0/10 75 3/10 3/10 1.1 0.92 0 0/10 60 3/10 3/10 0.9 a每次投藥之皮下劑量 b因藥物治療所產生之最大BWL% e死亡/治療動物 dTVI%對對照組小鼠 eCR:腫瘤消失達至少10天 f治癒:腫瘤注射後90天未損傷之小鼠 gLCK,參閱方法 hTI:治療指數(MTD/ED80) 活體內評估共軛物ST3 8 3 3於心內注射PC3人前列腺癌所引 起之骨轉移上之抗轉移活性 藉由腹膜內注射4 ml/kg混合物(甲苯噻嗪:氯胺酮 1 0 〇 )麻醉雄性C D 1裸鼠。利用2 7 -規針藉由心內注射(1 X 1〇5細胞/0.1 ml/小鼠)將PC3腫瘤細胞接種至小鼠之心臟 左心室。將鼠隻區分爲下述之實驗組(1 1隻鼠/組)且經 腫瘤注射3天後,依下述之方式投服分子: 載體(DMSO 10%)靜脈內q4dx4 ST3833 56 mg/l〇 ml/kg靜脈內 q4dx4 爲評估藥物之抗腫瘤活性,利用Fax itr on系統進行高 -44- 201004647 解析全身放射學分析。腫瘤注射後進行放射學分析3 0天。 硏究期間全程記錄體重並注意死亡數。 該共軛物於靜脈內投藥56 mg/kg ( q4dx4 )下顯現良 好之耐受性,因爲未發現致死毒性之體重減少。該分子顯 現顯著地增加4 5 %之生命期(P <〇 · 〇 〇 1 )且降低溶骨損傷之 發生(自載體處理組鼠隻之9 1 %至藥物治療組鼠隻之4 5 % :表 6 )。 表6 靜脈內投遞(q4dx4)之共軛物ST3 83 3於拮抗CD1裸鼠體內經 異種移植 :的PC3獻 —列腺癌上之抗轉移活性 化合物 a劑量mg/ 10 ml/kg bBWL% 。致死毒性 d溶骨損 傷發生 eMST (範圍天數) fILS% 載體 0 0 0/11 10/11 40 (37-45) / ST3833 56 0 0/11 5/11 58 (45-71) ***45 3每次投藥之靜脈內劑量 b因藥物治療所產生之最大BWL% e死亡/治療動物 d溶骨損傷發生(腫瘤注射後3〇天,藥物治療組鼠隻轉移之數目對載體處理組鼠隻) eMST:平均存活時間 fILS%:生命期增加 * * *Ρ<〇·〇〇 1對載體處理組(Mann-Whitney試驗) 【圖式簡單說明】 圖1描述用於合成雙重靶向性細胞毒性衍生物類之不 同片段的化學結構。 圖2描述雙重靶向性細胞毒性衍生物類之化學結構。 -45- 201004647 圖3描述用於合成片段1、2、5、6及12及完全合成片 段1 0 (圖3 . e )之某些構築團的合成。 圖4槪要地描述供合成每個最終化合物所需之兩個片 段的本性。 -46 -

Claims (1)

  1. 201004647 七、申請專利範圍: 1.一種式I環肽 [(L-D)nE]m-F-D-PI-Sl-CT 式I 其中 L係識別α-整合蛋白受體之式Π環肽 c(R1-Arg-Gly-Asp-R2) 式II R1 係 Amp、Lys或 Aad ; R2係呈R構型之Phe、Tyr或Amp; D於每次出現時可爲相同或不同且係不存在或係式III 二價基 -SP1-A1-SP2-A2-SP3-式III SP1係不存在或係 RMCHJqjocHrCH^q-O-CCHOq-R4 I R3和R4係相同或不同且係不存在或係_€〇_、—COO-、 -NH-、-〇 -或式IV、式VIII或式IX之二價基
    式 VIII
    q於每次出現時可爲相同或不同且係獨立地〇至6之整 -47- 201004647 數; A 1係不存在或含有親水性側鏈之天然或非天然(L ) 或(D )胺基酸; SP2係不存在或係與SP1者相同; A2係不存在或係與A1者相同; SP3係不存在或係與SP1者相同; m = 1 或 2 ; n= 1 或 2 ; E於每次出現時可爲相同或不同且係Glu、Lys或不存 在; F係與E相同或係不存在或式X之組胺酸類似物;
    其中該三唑環係與D-PI-SI-CT部分連接,該羰基部分係與 含有L之部分連接且SP1係如上述所定義者; PI係由選自Ala或Cit之(L)或(D)胺基酸所構成的 天然或非天然之寡肽; S I係二價基對胺基苄氧羰基; c T代表細胞毒性基團; 彼等之互變異構體、幾何異構體、光學活性型式(諸 如鏡像異構物、非鏡像異構物及彼等之消旋型式)及前述 -48 - 201004647 彼等之藥學上可接受之鹽; 唯其: 至少一個D應存在;且 當E存在且係Lys時,E係經由其胺基部分與含有L基之 部分連接,或當E存在且係Glu時,E係經由其羧基部分與 含有L基之部分連接。 2. 如申請專利範圍第1項之環狀,其中CT係喜樹鹼衍 生物,R1係Amp或Aad,R2係選自Phe、Amp或Tyr。 3. 如申請專利範圍第1或2項之環肽,其中m=l且n=l。 4. 如申請專利範圍第1或2項之環肽,其中m=l且n = 2。 5·—種具有整合蛋白ανβ3和ανβ5抑制性質的如申請專 利範圍第1至4項中任一項之環肽於作爲藥物上之用途。 6. 如申請專利範圍第5項之用途,該環肽具有低於1 μΜ之整合蛋白IC5〇値。 7. —種醫藥組成物,其含有與至少一種藥學上可接受 之賦形劑及/或載體混合之作爲活性成分的至少一種如申 請專利範圍第1至4項中任一項之環肽。 8. ^種合成如申請專利軔圍弟1至3項中任一項之環肽 之方法,其係藉由令式V化合物 (CT-SI-PI)-NH2 (式 V) (其中CT、SI及PI係如上所述者) 與式VI之含有疊氮基的衍生物 L^SP^A^SP^A'-SP^-Ns (式 VI) (其中L、SP1、A1、SP2、A2及SP3係如上所述者且尺4係 -49- 201004647 CO,且其中CT、SI及PI係如上所述者)反應。 9. 一種合成如申請專利範圍第1至3項中任一項之環肽 之方法,其係藉由令式VII化合物 (CT-SI-PI)-CO-C = CH (式 VII) (其中CT、SI及PI係如上所述者) 與式VI化合物(其中該式VI化合物中之L、SP1、A1、 SP2、A2及SP3係如上所述者’唯其R4係不存在)反應。 1 0 .—種合成如申請專利範圍第1、2及4項中任一項之 環肽之方法’其係藉由令式XI化合物 (CT-SI-PI)-D-NHCH2-C = CH (式 XI) c其中CT、SI、PI及D係如上所述者) 與式XII化合物 [(L-D)nE]m-COCH2-N3 (式 XII) (其中L、D及E係如上所述者)反應。 1 1 · 一種合成如申請專利範圍第1、2及4項中任一項之 環肽之方法,其係藉由令式ΧΙΠ化合物 (CT-SI-PI)-D-N3 (式 XIII) (其中CT、SI、PI及D係如上所述者) 與式xiv化合物 [(L-D)nE]m-CO-CH(NHD)CH2-C = CH (式 XIV) (其中L、D及E係如上所述者)反應。 1 2.—種如申請專利範圍第7項之鸷藥組成物於製備具 有抗癌活性的藥物上之用途。 1 3 · —種如申請專利範圍第7項之鹭藥組成物於製備供 -50- 201004647 治療哺乳動物罹患未受控制之細胞生長、侵襲及/或轉移 指徵的藥物上之用途。 1 4.如申請專利範圍第1 3項之用途,其係用於治療卵 巢癌及/或前列腺癌。 -51 -
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