JP6452175B2 - ＩＬ−１５およびＩＬ−１５ＲαＳＵＳＨＩドメインに基づいた免疫サイトカイン - Google Patents

Description

本国際特許出願は、２０１１年６月２４日に出願された欧州特許出願１１３５８００５．４号の優先権を主張し、その出願は本明細書に参照により組み込まれる。

本発明は、新規免疫サイトカインおよび特に癌の治療のための医薬としてのそれらの使用に関する。

医学における免疫療法とは、予防的および／または治療的目標を達成するために免疫系を調節する概念に基づいた治療戦略の配置を指す。

過去数年において、免疫療法が、いくつかの病理、特に癌の治療または予防のために使用されている。モノクローナル抗体を産生するための細胞融合技術の開発以来、膨大な数のモノクローナル抗体が研究者により産生されている。その後、ヒトモノクローナル抗体を産生するためにＢ細胞ハイブリドーマ技術およびＥＢＶハイブリドーマ技術を含む、他の技術がモノクローナル抗体を生成するために開発されている。

モノクローナル抗体（Ｍａｂ）はほとんどの任意のエピトープを標的にするために開発され得る。特定の細胞／分子に対する特異的認識および結合の性質は、種々の疾患状態についての診断および治療試薬としてのＭａｂの開発を促す。組換えＤＮＡ技術が、ヒトへのそれらの投与に適合するようにキメラまたはヒト化抗体を生成するために使用されている。現在、リツキサン（ＲＩＴＵＸＡＮ）（登録商標）、ハーセプチン（ＨＥＲＣＥＰＴＩＮ）（登録商標）、アバスチン（ＡＶＡＳＴＩＮ）（登録商標）などのいくつかのモノクローナル抗体が商品化されており、癌、感染症、免疫疾患などの治療に利用可能である。

モノクローナル抗体は標的分子であり、腫瘍組織などの特定の領域（細胞、組織など）内に局在化できる。この特性はまた、腫瘍抗原と呼ばれる腫瘍部位内の特異的分子を標的しようとして種々の物質（ペイロード）にコンジュゲートしたＭａｂの開発を導いた。このような物質（ペイロード）は、毒素、薬物、放射性核種、プロドラッグ化合物などであってもよい。これらの結合の多くは、抗体の所与の調製物との反応部分（ペイロード）の化学的コンジュゲーションを含み、そのプロセスは煩雑で、変化を受ける場合がある（特許文献１）。

これらの新たな分子の中で、免疫サイトカインが特に注目されている。前記免疫サイトカインは抗体およびサイトカインを含む融合タンパク質に対応する。これらのタンパク質は抗原結合能力およびサイトカイン活性の両方を保有する。

サイトカインは、ホルモンおよび神経伝達物質のようなシグナル伝達タンパク質および糖タンパク質の分類であり、細胞連絡に広範に使用されている。ホルモンは特定の器官により血液中に分泌されるが、神経伝達物質は神経作用に関連し、サイトカインは起源および目的に関して化合物のより多様化したクラスである。それらは広範囲の造血細胞および非造血細胞種類により産生され、近くの細胞または器官全体の両方に作用でき、時々、他の化学物質の存在に強く依存する。サイトカインファミリーは主に８〜３０ｋＤａの質量を有する小さな水溶性のタンパク質および糖タンパク質からなる。サイトカインは、固有および適応免疫反応の両方の機能に不可欠である。それらは多くの場合、十分な免疫細胞を活性化させ、動員し、病原体に対する系の反応を増加させる目的で病原体と遭遇した免疫細胞により分泌される。しかしながら、免疫系の発達および機能におけるそれらの役割以外に、サイトカインはまた、胚形成の間のいくつかの発達プロセスに関与する。

サイトカインの中で、インターロイキン１５（ＩＬ−１５）は、ウイルス（複数も含む）による感染、または非自己として認識されるか、もしくは弱体化される細胞による間接刺激後に単核食細胞（および一部の他の細胞）により分泌されるＩＬ−２と構造的に類似したサイトカインである。このサイトカインはナチュラルキラー細胞；自然免疫系の細胞増殖を誘導し、その主な役割はウイルス感染した細胞を殺傷することである。この遺伝子によりコードされるタンパク質は、Ｔおよびナチュラルキラー細胞活性化および増殖を調節するサイトカインである。

したがって、ＩＬ−１５に基づいた免疫サイトカインの構築が、腫瘍特異的抗体の腫瘍標的性質とインターロイキン１５の免疫調節作用との組み合わせのために特に注目される。特にインターロイキン−２（ＩＬ−２）を使用したいくつかの免疫サイトカインが既に得られており、第２相腫瘍臨床試験において非常に興味があり、有望な結果が実証されている。これらの融合タンパク質のいくつかの例はいくつかの特許出願（特許文献２、特許文献３、特許文献４、特許文献５、特許文献６）に記載されている。

したがって、インターロイキン１５に基づいた免疫サイトカインはＨＥＫ−２９３細胞内で産生されており、特許文献７および非特許文献１に記載されている。

それにも関わらず、本発明者らは、このようなインターロイキン１５に基づいた免疫サイトカインが非常に制限されたインターロイキン１５活性を有すること、およびそれらの産生が特に低い収率で多くのタンパク質汚染物質を有するＣＨＯ細胞内で非常に困難であることを実証した。

米国特許第４，６７１，９５８号明細書 米国特許第５，６４５，８３５号明細書 欧州特許第０，３０５，９６７号明細書 国際公開第８６／０１５３３号パンフレット 欧州特許第０，４３９，０９５号明細書 国際公開第８５／００９７４号パンフレット 国際公開第２００７／１２８５６３号パンフレット

ＫＡＳＰＡＲら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、第６７巻（１０）、４９４０−４９４８ページ、２００７

したがって、免疫療法において使用され得るインターロイキン１５に基づいた免疫サイトカインについての必要性が依然として存在する。

本発明は、
Ａ）コンジュゲート、および
Ｂ）前記コンジュゲートに共有原子価により直接または間接的に結合された抗体またはその断片を含む、免疫サイトカインであって、
前記コンジュゲートが、
（ｉ）インターロイキン１５またはその誘導体のアミノ酸配列を含むポリペプチド、および
（ｉｉ）ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチド、
を含む、免疫サイトカインに関する。

第２の態様において、本発明は上記の免疫サイトカインをコードする核酸に関する。

第３の態様において、本発明は上記の核酸を含むベクターを提供する。

第４の態様において、本発明は、上記のポリヌクレオチドまたはベクターを用いて遺伝子操作された宿主細胞に関する。本発明はまた、本発明に係る免疫サイトカインを発現する遺伝子操作された宿主細胞を産生する方法であって、前記方法は、（ｉ）インビトロまたはエキソビボで上記の核酸またはベクターを宿主細胞内に組み込む工程と、（ｉｉ）得られた遺伝子操作された組換え宿主細胞をインビトロまたはエキソビボで培養する工程と、（ｉｉｉ）必要に応じて、前記免疫サイトカインを発現および／または分泌する細胞を選択する工程と、を含む方法に関する。

好ましい実施形態において、遺伝子操作された前記宿主細胞は動物細胞、好ましくはＣＨＯ細胞である。

第５の態様において、本発明は、最終的に薬学的に許容可能な担体と結合する、上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸、または前記核酸を含む核酸ベクターを含む医薬組成物を提供する。

好ましい実施形態において、前記組成物は、好ましくは抗癌剤である、さらなる治療剤を含む。

第６の態様において、本発明は、被験体における癌を治療するための上記の医薬組成物に関する。

第７の態様において、本発明は、被験体における癌を治療するための同時、別々または連続使用のための組み合わされた調製物として、
（ｉ）上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸配列、またはそのような核酸配列を含むベクターと、
（ｉｉ）治療剤、好ましくは抗癌剤と
を含むプロドラッグに関する。

第８の態様において、本発明は、上記の医薬組成物を被験体に投与する工程を含む、被験体における癌を治療するための方法に関する。

最後の態様において、本発明は、治療有効量の
（ｉ）上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸配列、またはそのような核酸配列を含むベクター、および
（ｉｉ）治療剤、好ましくは抗癌剤を、それを必要とする被験体に同時、別々または連続して投与する工程を含む、癌を治療する方法に関する。

図１は、ＩＬ１５と比較したＩＬ１５抗ＣＤ２０免疫サイトカインの活性を示す。 図２は、ＩＬ１５と比較したＩＬ１５抗ＧＤ２０−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインの活性を示す。 図３は、ＩＬ１５抗ＣＤ２０、抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化および抗ＨＥＲ２ＩＬ−１５免疫サイトカインのそれぞれのＣＤ２０、ＧＤ２−Ｏアセチル化およびＨＥＲ−２結合活性を示す。 図４は、抗ＣＤ２０抗体（リツキシマブ）と比較したＩＬ１５抗ＣＤ２０免疫サイトカインのＩＬ−１５Ｒα結合活性を示す。 図５は、ＩＬ１５抗ＣＤ２０、抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化および抗ＨＥＲ２ＲＬＩ免疫サイトカインのそれぞれのＣＤ２０、ＧＤ２−Ｏアセチル化およびＨＥＲ−２結合活性を示す。 図６は、ＲＬＩ抗ＣＤ２０およびＩＬ１５抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインのＩＬ１５Ｒα結合活性を示す。 図７は、ＩＬ１５と比較したＲＬＩ抗ＣＤ２０免疫サイトカインの活性を示す。 図８は、ＩＬ１５と比較したＲＬＩ抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインの活性を示す。 図９は、抗ＧＤ２−Ｏアセチル化抗体と比較した抗ＧＤ２−Ｏアセチル化免疫サイトカインの抗転移活性を示す。 図１０は、Ｒａｊｉモデルにおける抗ＣＤ２０免疫サイトカインの抗腫瘍活性を示す。 図１１は、ＩＬ１５と比較したＩＬ−１５抗ＨＥＲ２免疫サイトカインの活性を示す。 図１２は、ＩＬ１５と比較したＲＬＩ抗ＨＥＲ２免疫サイトカインの活性を示す。

本発明は、インターロイキン１５を含む免疫サイトカインの産生はインターロイキン１５活性の９０％超の損失を導き、ＲＬＩに基づいた免疫サイトカインの産生は、ＩＬ−１５に基づいた免疫サイトカインより非常に優れたαβγおよびβγ免疫細胞において強力な生物活性を示す革新的なＩＬ１５免疫サイトカインを導くという本発明者らによる発見に基づく。

驚くべきことに、完全なＩｇＧモノクローナル抗体を有するＲＬＩに基づいた免疫サイトカインは、ＲＬＩ単独またはｓｃＦｖ断片抗体と比較してβγ免疫細胞において向上した生物学的効率を示す。βγ免疫細胞におけるこの活性の驚くべき増加は、免疫抑制環境におけるＮＫ細胞およびＴリンパ球の活性化／再活性化に関して重要であり得る。

さらに驚くべきことに、インターロイキン１５免疫サイトカインは、活性であるように免疫グロブリンとインターロイキン１５部分との間のリンカーの存在を必要とするが、本発明の免疫サイトカインは、そのそれぞれの免疫グロブリンとサイトカイン部分との間に任意のリンカーを有してまたは有さずに同様のインターロイキン１５活性を示す。リンカー領域のこの不必要な存在は、新規抗原エピトープおよび免疫原性を生成するヒンジ領域を制限する融合タンパク質免疫原性に関して、ならびに制限された切断型を用いた生産収率に関して強い議論を示し得る。

さらに驚くべきことに、本発明の免疫サイトカインは、ＲＬＩ単独と比較して高い活性（すなわち１０〜１００倍）を示すＩＬ−１５スーパーアゴニストである。

さらに、本発明者らは、ＣＨＯ細胞内で本発明の免疫サイトカインの生産の良好な収率を得、それは９０％より高い収率を有する。これは、ＣＨＯ細胞内のインターロイキン１５免疫サイトカインの同じ細胞内の生産は非常に困難であるため、驚くべきことである。

免疫サイトカインは、従来、限定された血清半減期を有し、免疫サイトカインに関連する腫瘍局在率は、強力な抗腫瘍効果を生成するのに重要な問題であるので、非常に低い濃度で免疫細胞を活性化することを可能にするＲＬＩに基づいた免疫サイトカインの特異的生物活性は、この分野において重要な革新的工程を示し、癌患者におけるこのような生体化合物の効果を改善できる。

最後に、本発明の免疫サイトカインの強い活性は、２．５〜１ｍｇ／被験体のｋｇ以下の用量、さらに０．１ｍｇ／ｋｇ以下の用量で注射により投与される、この免疫サイトカインについての実際的な治療的使用を予測できる。実際に、国際特許出願ＷＯ２００７／１２８５６３号に開示されているものなどのインターロイキン１５免疫サイトカインの低い活性は実際の治療的使用を可能にしていない（すなわち、治療的効果を得るのに、マウス腫瘍モデルにおいて１日に４回の注射で２０μｇ超の免疫サイトカインの用量を必要としたことは、いくらかの治療的効果を得るために５ｍｇ／ｋｇ超の免疫サイトカインの用量の必要性を示唆している）。

したがって、一態様において、本発明は、
Ａ）コンジュゲート、および
Ｂ）前記コンジュゲートに共有原子価により直接または間接的に結合された抗体またはその断片
を含む、免疫サイトカインであって、
前記コンジュゲートは、
（ｉ）インターロイキン１５またはその誘導体のアミノ酸配列を含むポリペプチド、および
（ｉｉ）ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチド
を含む、免疫サイトカインに関する。

「免疫サイトカイン」という用語は、サイトカインまたはその誘導体に共有原子価により直接または間接的に結合された抗体またはその断片を含む分子を指す。前記抗体および前記サイトカインはリンカーペプチドにより連結され得る。

本発明の免疫サイトカインのコンジュゲート
「インターロイキン１５」という用語は、当該技術分野のその一般的な意味において、ＩＬ−２と構造的に類似するサイトカインを指す（ＧＲＡＢＳＴＥＩＮら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、ｖｏｌ．２６４（５１６１）、ｐ：９６５−９６８、１９９４）。このサイトカインはＩＬ−１５、ＩＬ１５またはＭＧＣ９７２１としても知られている。このサイトカインおよびＩＬ−２は多くの生物活性を共有し、それらは共通のヘマトポイエチン受容体サブユニットに結合することが見出された。したがって、それらは同じ受容体を競合し得、互いの活性を負に調節する。ＩＬ−１５がＴおよびナチュラルキラー細胞の活性化および増殖を調節すること、ならびにＣＤ８＋メモリ細胞の数がこのサイトカインとＩＬ２との間の平衡により制御されることが示されていることは確立されている。ＩＬ−１５活性は、実施例に開示されているように、ｋｉｔ２２５細胞株でのその増殖誘導を定量することにより測定され得る（ＨＯＲＩら、Ｂｌｏｏｄ、ｖｏｌ．７０（４）、ｐ：１０６９−７２、１９８７）。

前記ＩＬ−１５またはその誘導体は、ｋｉｔ２２５細胞株の増殖誘導においてヒトインターロイキン１５の活性の少なくとも１０％、好ましくは少なくとも２５％およびより好ましくは少なくとも５０％を有する。

前記インターロイキン１５は、哺乳動物インターロイキン１５、好ましくは霊長類インターロイキン１５、より好ましくはヒトインターロイキン１５である。

哺乳動物インターロイキン１５は当業者により簡単に識別され得る。一例として、イノシシ（Ｓｕｓ ｓｃｒｏｆａ）（受入番号ＡＢＦ８２２５０）から、ドブネズミ（Ｒａｔｔｕｓ ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ）（受入番号ＮＰ＿０３７２６１）から、ハツカネズミ（Ｍｕｓ ｍｕｓｃｕｌｕｓ）（受入番号ＮＰ＿０３２３８３）から、ウシ（Ｂｏｓ Ｔａｕｒｕｓ）（受入番号ＮＰ＿７７６５１５）から、イエウサギ（Ｏｒｙｃｔｏｌａｇｕｓ ｃｕｎｉｃｕｌｕｓ）（受入番号ＮＰ＿００１０７５６８５）から、ヒツジ（Ｏｖｉｅｓ ａｒｉｅｓ）（受入番号ＮＰ＿００１００９７３４）から、ネコ（Ｆｅｌｉｓ ｃａｔｕｓ）（受入番号ＮＰ＿００１００９２０７）から、カニクイザル（Ｍａｃａｃａ ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）（受入番号ＢＡＡ１９１４９）から、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）（受入番号ＮＰ＿０００５７６）から、アカゲザル（Ｍａｃａｃａ Ｍｕｌａｔｔａ）（受入番号ＮＰ＿００１０３８１９６）から、モルモット（Ｃａｖｉａ ｐｏｒｃｅｌｌｕｓ）（受入番号ＮＰ＿００１１６６３００）から、またはミドリザル（Ｃｈｌｏｒｏｃｅｂｕｓ ｓａｂａｅｕｓ）（受入番号ＡＣＩ２８９）からのインターロイキン１５を挙げることができる。

本明細書で使用する場合、「哺乳動物インターロイキン１５」という用語は、コンセンサス配列の配列番号１を指す。

霊長類インターロイキン１５は当業者により簡単に識別され得る。一例として、イノシシ（Ｓｕｓ ｓｃｒｏｆａ）（受入番号ＡＢＦ８２２５０）から、イエウサギ（Ｏｒｙｃｔｏｌａｇｕｓ ｃｕｎｉｃｕｌｕｓ）（受入番号ＮＰ＿００１０７５６８５）から、カニクイザル（Ｍａｃａｃａ ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）（受入番号ＢＡＡ１９１４９）から、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）（受入番号ＮＰ＿０００５７６）から、アカゲザル（Ｍａｃａｃａ Ｍｕｌａｔｔａ）（受入番号ＮＰ＿００１０３８１９６）から、またはミドリザル（Ｃｈｌｏｒｏｃｅｂｕｓ ｓａｂａｅｕｓ）（受入番号ＡＣＩ２８９）からのインターロイキン１５を挙げることができる。

本明細書で使用する場合、「霊長類インターロイキン１５」という用語は、コンセンサス配列の配列番号２を指す。

ヒトインターロイキン１５は当業者により簡単に識別でき、アミノ酸配列の配列番号３を指す。

本明細書に使用する場合、「インターロイキン１５誘導体」という用語は、配列番号１、配列番号２および配列番号３からなる群において選択されるアミノ酸配列と少なくとも９２．５％（すなわち約１０アミノ酸置換に対応する）、好ましくは少なくとも９６％（すなわち約５アミノ酸置換に対応する）、より好ましくは少なくとも９８．５％（すなわち約２アミノ酸置換に対応する）または少なくとも９９％（すなわち約１アミノ酸置換に対応する）の同一性のパーセンテージを有するアミノ酸配列を指す。このような誘導体は、その個人的知識および本特許出願の教示を考慮して当業者により簡単に識別され得る。このような誘導体の一例として、国際特許出願ＰＣＴＷＯ２００９／１３５０３１に記載されているものを挙げることができる。また、天然アミノ酸が化学修飾アミノ酸に置換されてもよいことが理解される。典型的に、このような化学修飾アミノ酸はポリペプチド半減期を増加させる。

本明細書に使用する場合、２つのアミノ酸配列間の「同一性のパーセンテージ」とは、前記配列の最高のアラインメントを用いて得た、比較される２つの配列間の同一アミノ酸のパーセンテージを意味し、このパーセンテージは純粋に統計的であり、これらの２つの配列の間の相違はアミノ酸配列にわたってランダムに広がる。本明細書に使用する場合、「最高のアラインメント」または「最適なアラインメント」とは、決定された同一性のパーセンテージ（以下を参照）が最高であるアラインメントを意味する。２つのアミノ酸配列間の配列比較は、通常、最高のアラインメントに従って以前に整列されたこれらの配列を比較することにより実施され、この比較は、類似性の局所領域を識別し、比較するために比較のセグメントで実施される。比較を実施するのに最適な配列アラインメントは、手動の方法による以外に、ＳＭＩＴＨおよびＷＡＴＥＲＭＡＮ（Ａｄ．Ａｐｐ．Ｍａｔｈ．ｖｏｌ．２、ｐ：４８２、１９８１）により開発された全体的相同性アルゴリズムを使用することにより、ＮＥＤＤＬＥＭＡＮおよびＷＵＮＳＣＨ（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、ｖｏｌ．４８、ｐ：４４３、１９７０）により開発された局地的相同性アルゴリズムを使用することにより、ＰＥＡＲＳＯＮおよびＬＩＰＭＡＮ（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、ｖｏｌ．８５、ｐ：２４４４、１９８８）により開発された類似性の方法を使用することにより、このようなアルゴリズムを使用したコンピュータソフトウェア（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ ＧｅｎｅｔｉｃｓソフトウェアパッケージにおけるＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＢＬＡＳＴ Ｐ、ＢＬＡＳＴ Ｎ、ＦＡＳＴＡ、ＴＦＡＳＴＡ、Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ、５７５Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｄｒ．、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ ＵＳＡ）を使用することにより、ＭＵＳＣＬＥ多重アラインメントアルゴリズム（Ｅｄｇａｒ、Ｒｏｂｅｒｔ Ｃ．、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、ｖｏｌ．３２、ｐ：１７９２、２００４）を使用することにより実施され得る。最適な局地的アラインメントを得るために、好ましくは、ＢＬＯＳＵＭ６２マトリクスを用いたＢＬＡＳＴソフトウェアを使用できる。アミノ酸の２つの配列の間の同一性パーセンテージは、最適に整列されたこれらの２つの配列を比較することにより決定され、アミノ酸配列は、それらの２つの配列の間で最適なアラインメントを得るために基準配列に対して付加または欠失を含むことができる。同一性のパーセンテージは、それらの２つの配列の間の同一の位置の数を決定し、この数を比較位置の総数で割り、得た結果に１００を掛けることにより計算されて、これらの２つの配列の間の同一性のパーセンテージを得る。

好ましくは、インターロイキン１５誘導体はＩＬ−１５アゴニストまたはスーパーアゴニストである。当業者はＩＬ−１５アゴニストまたはスーパーアゴニストを簡単に識別できる。ＩＬ−１５アゴニストまたはスーパーアゴニストの一例として、国際特許出願ＷＯ２００５／０８５２８２またはＺＨＵら（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、ｖｏｌ．１８３（６）、ｐ：３５９８−６０７、２００９）に開示されているものを挙げることができる。

さらに好ましくは、前記ＩＬ−１５アゴニストまたはスーパーアゴニストは、（ヒトＩＬ−１５、配列番号３の配列に関して）Ｌ４５Ｄ、Ｌ４５Ｅ、Ｓ５１Ｄ、Ｌ５２Ｄ、Ｎ７２Ｄ、Ｎ７２Ｅ、Ｎ７２Ａ、Ｎ７２Ｓ、Ｎ７２ＹおよびＮ７２Ｐを含む／からなる群において選択される。

本明細書に使用する場合、「ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメイン」は、当該技術分野におけるその一般的な意味において、ＩＬ−１５Ｒαのシグナルペプチド後の第１のシステイン残基（Ｃ１）で開始し、前記シグナルペプチド後の第４のシステイン残基（Ｃ４）で終了するドメインを指す。ＩＬ−１５Ｒαの細胞外領域の一部に対応する前記ｓｕｓｈｉドメインはＩＬ−１５に対するその結合に必要である（ＷＥＩら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、ｖｏｌ．１６７（１）、ｐ：２７７−２８２、２００１）。

ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体の前記ｓｕｓｈｉドメインは、ヒトインターロイキン１５に対するヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインの結合活性の少なくとも１５％、好ましくは少なくとも２５％、より好ましくは少なくとも５０％を有する。前記結合活性はＷＥＩら（上述、２００２）に開示される方法により簡単に決定され得る。

ＩＬ−１５Ｒαの前記ｓｕｓｈｉドメインは、哺乳動物ＩＬ−１５αのｓｕｓｈｉドメイン、好ましくは霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメイン、より好ましくはヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインである。

哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインは当業者により簡単に識別され得る。一例として、ドブネズミ（Ｒａｔｔｕｓ ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ）（受入番号ＸＰ＿００２７２８５５５）から、ハツカネズミ（Ｍｕｓ ｍｕｓｃｕｌｕｓ）（受入番号ＥＤＬ０８０２６）から、ウシ（Ｂｏｓ Ｔａｕｒｕｓ）（受入番号ＸＰ＿００２６９２１１３）から、イエウサギ（Ｏｒｙｃｔｏｌａｇｕｓ ｃｕｎｉｃｕｌｕｓ）（受入番号ＸＰ＿００２７２３２９８）から、カニクイザル（Ｍａｃａｃａ ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）（受入番号ＡＣＩ４２７８５）から、ブタオザル（Ｍａｃａｃａ ｎｅｍｅｓｔｒｉｎａ）（受入番号ＡＣＩ４２７８３）から、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）（受入番号ＣＡＩ４１０８１）から、アカゲザル（Ｍａｃａｃａ Ｍｕｌａｔｔａ）（受入番号ＮＰ＿００１１６６３１５）から、スマトラオランウータン（Ｐｏｎｇｏ ａｂｅｌｉｉ）（受入番号ＸＰ＿００２８２０５４１）から、シロエリマンガベイ（Ｃｅｒｃｏｃｅｂｕｓ ｔｏｒｑｕａｔｕｓ）（受入番号ＡＣＩ４２７８４）から、コモンマーモセット（Ｃａｌｌｉｔｈｒｉｘ ｊａｃｃｈｕｓ）（受入番号ＸＰ＿００２７５００７３）から、またはモルモット（Ｃａｖｉａ ｐｏｒｃｅｌｌｕｓ）（受入番号ＮＰ＿００１１６６３１４）からのＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインを挙げることができる。

本明細書に使用する場合、「哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメイン」という用語はコンセンサス配列の配列番号４を指す。

好ましくは、哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチドは、コンセンサス配列の配列番号５を指す。

霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインは当業者により簡単に識別され得る。一例として、イエウサギ（Ｏｒｙｃｔｏｌａｇｕｓ ｃｕｎｉｃｕｌｕｓ）から、カニクイザル（Ｍａｃａｃａ ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）から、ブタオザル（Ｍａｃａｃａ ｎｅｍｅｓｔｒｉｎａ）から、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）から、アカゲザル（Ｍａｃａｃａ Ｍｕｌａｔｔａ）から、スマトラオランウータン（Ｐｏｎｇｏ ａｂｅｌｉｉ）から、シロエリマンガベイ（Ｃｅｒｃｏｃｅｂｕｓ ｔｏｒｑｕａｔｕｓ）から、またはコモンマーモセット（Ｃａｌｌｉｔｈｒｉｘ ｊａｃｃｈｕｓ）からのＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインを挙げることができる。

本明細書に使用する場合、「霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメイン」という用語はコンセンサス配列の配列番号６を指す。

好ましくは、霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチドとは、コンセンサス配列の配列番号７を指す。

ヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインは当業者により簡単に識別でき、アミノ酸配列の配列番号８を指す。

好ましくは、ヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチドは配列番号９を指す。

本明細書に使用する場合、「ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインの誘導体」という用語は、配列番号４、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、および配列番号９からなる群において選択されるアミノ酸配列と少なくとも９２％（すなわち約５アミノ酸置換に対応する）、好ましくは少なくとも９６％（すなわち約２アミノ酸置換に対応する）、より好ましくは少なくとも９８％（すなわち約１アミノ酸置換に対応する）の同一性のパーセンテージを有するアミノ酸配列を指す。このような誘導体は、ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインの４つのシステイン残基を含み、彼／彼女の一般知識および本特許出願の教示を考慮して当業者により簡単に識別できる。また、天然アミノ酸が化学修飾アミノ酸により置換されてもよいことも理解される。典型的に、このような化学修飾アミノ酸はポリペプチド半減期を増加できる。

好ましい実施形態によれば、コンジュゲートは、（ｉｉ）ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチドを含む。

ＩＬ−１５Ｒαヒンジドメインは、ｓｕｓｈｉドメイン後の最初のアミノ酸残基で開始し、グリコシル化の最初の潜在的部位の前の最後のアミノ酸残基で終了するアミノ酸配列と定義される。ヒトＩＬ−１５Ｒαにおいて、ヒンジ領域のアミノ酸配列は、前記ｓｕｓｈｉドメインに対するＣ末端位置において、このＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメイン後に位置する１４のアミノ酸配列からなる。すなわち、前記ＩＬ−１５Ｒαヒンジ領域は、前記（Ｃ４）システイン残基後の最初のアミノ酸で開始し、１４アミノ酸で終了する（標準的な「Ｎ末端からＣ末端」方向で数える）。

ＩＬ−１５Ｒαの前記ｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインは、哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメイン、好ましくは霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメイン、より好ましくはヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインである。

哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインのアミノ酸配列は当業者により簡単に識別され得る。本明細書に使用する場合、「哺乳動物ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメイン」という用語は、コンセンサス配列の配列番号１０を指す。

霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインのアミノ酸配列は当業者により簡単に識別され得る。本明細書に使用する場合、「霊長類ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメイン」という用語は、コンセンサス配列の配列番号１１を指す。

ヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインのアミノ酸配列は当業者により簡単に識別され得る。本明細書に使用する場合、「ヒトＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメイン」という用語は、コンセンサス配列の配列番号２を指す。

本明細書に使用する場合、「ＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉおよびヒンジドメインの誘導体」という用語は、配列番号１０、配列番号１１、および配列番号１２からなる群において選択されるアミノ酸配列と少なくとも９３％（すなわち約５アミノ酸置換に対応する）、好ましくは少なくとも９７％（すなわち約２アミノ酸置換に対応する）、より好ましくは少なくとも９８％（すなわち約１アミノ酸置換に対応する）の同一性のパーセンテージを有するアミノ酸配列を指す。このような誘導体はＩＬ−１５Ｒαのｓｕｓｈｉドメインの４つのシステイン残基を含み、その一般知識および本特許出願の教示を考慮して当業者により簡単に識別され得る。また、天然アミノ酸が化学修飾アミノ酸により置換されてもよいことも理解されるであろう。典型的に、このような化学修飾アミノ酸はポリペプチド半減期を増加できる。

コンジュゲートの両方のポリペプチドｉ）およびｉｉ）は、米国特許第８，１２４，０８４（Ｂ２）号に開示されている複合体におけるように非共有結合されてもよい。前記コンジュゲートまたは複合体は、適切な量のポリペプチドｉ）を提供すること、適切な量のポリペプチドｉｉ）を提供すること、複合体（すなわちコンジュゲート）形成を可能にするのに十分な時間の間、適切なｐＨおよびイオン条件下で両方のポリペプチドを混合すること、および任意に前記複合体を濃縮または精製することにより、簡単に得ることができる。複合体（すなわちコンジュゲート）のポリペプチドは、例えば、標準的な方法に係るペプチドシンセサイザーを使用して；細胞または細胞抽出物中で別々に各ポリペプチドを発現すること、次いでそのポリペプチドを単離および精製することにより、形成され得る。任意に、本発明の治療的ポリペプチド複合体は、同じ細胞または細胞抽出物中で両方のポリペプチドｉ）およびｉｉ）を発現すること、次いで例えば、リンホカインタンパク質、リンホカイン受容体部分、または複合体に対する抗体を用いたアフィニティクロマトグラフィーなどのクロマトグラフ技術を使用して複合体を単離および精製することにより形成されてもよい。

コンジュゲートの両方のポリペプチドｉ）およびｉｉ）はまた、二官能性タンパク質カップリング剤を使用してまたは融合タンパク質中で共有結合されてもよい。

二官能性タンパク質カップリング剤は当業者に周知であり、それらを使用した方法として、例えば、Ｎ−スクシンイミジル（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、スクシンイミジル（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート、イミノチオラン（ＩＴ）、イミドエステルの二官能性誘導体（アジプイミド酸ジメチルＨＣＬなど）、活性エステル（スベリン酸ジサクシンイミジルなど）、アルデヒド（グルタルアルデヒドなど）、ビス−アジド化合物（ビス（ｐ−アジドベンゾイル）ヘキサンジアミンなど）、ビス−ジアゾニウム誘導体（ビス−（ｐ−ジアゾニウムベンゾイル）−エチレンジアミンなど）、ジイソシアネート（トルエン（ｔｏｌｙｅｎｅ）２，６−ジイソシアネートなど）、およびビス−活性フッ化化合物（１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼンなど）が挙げられる。

「融合タンパク質」という用語は、元は別個のタンパク質をコードする２つ以上の遺伝子の結合により作製されるタンパク質を指す。それはキメラタンパク質としても知られている。この融合遺伝子の翻訳の結果、元のタンパク質の各々に由来する官能特性を有する単一ポリペプチドが生じる。組換え融合タンパク質は、生物学的研究または治療に使用するための組換えＤＮＡ技術により人工的に作製される。組換え融合タンパク質は融合遺伝子の遺伝子操作により作製されるタンパク質である。これは典型的に、第１のタンパク質をコードするｃＤＮＡ配列から停止コドンを除去すること、次いでライゲーションまたはオーバーラップエクステンションＰＣＲによりフレーム内に第２のタンパク質のｃＤＮＡ配列を付加することを含む。次いでそのＤＮＡ配列は単一タンパク質として細胞により発現される。そのタンパク質は、両方の元のタンパク質、またはいずれかの一部のみの全配列を含むように操作されてもよい。

好ましい実施形態において、コンジュゲートは融合タンパク質である。

インターロイキン１５またはその誘導体のアミノ酸配列は、ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列に対してＣ末端またはＮ末端位置に存在する。好ましくは、インターロイキン１５またはその誘導体のアミノ酸配列は、ＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列に対してＣ末端位置に存在してもよい。

インターロイキン１５またはその誘導体のアミノ酸配列およびＩＬ−１５Ｒαまたはその誘導体のｓｕｓｈｉドメインのアミノ酸配列は第１の「リンカー」アミノ酸配列により分離されてもよい。前記第１の「リンカー」アミノ酸配列は、融合タンパク質が適切な二次および三次構造を形成することを確実にするのに十分な長さであってもよい。

第１のリンカーアミノ酸配列の長さは融合タンパク質の生物活性に顕著に影響を与えずに変化してもよい。典型的に、第１のリンカーアミノ酸配列は、少なくとも１つであるが、３０アミノ酸未満、例えば２〜３０アミノ酸、好ましくは１０〜３０アミノ酸、より好ましくは１５〜３０アミノ酸、さらにより好ましくは１５〜２５アミノ酸、最も好ましくは１８〜２２アミノ酸のリンカーを含む。

好ましいリンカーアミノ酸配列はコンジュゲートに適切な構造（すなわちＩＬ−１５Ｒβ／γシグナル伝達経路を介する適切なシグナル伝達活性を可能にする構造）を適合できるものである。

最も適切な第１のリンカーアミノ酸配列は、（１）フレキシブルな伸長構造を適合し、（２）融合タンパク質の機能ドメインと相互作用できる秩序的な二次構造を発生する性質を示さず、（３）機能タンパク質ドメインとの相互作用を促進できる最小の疎水性または荷電特性を有する。

好ましくは、第１のリンカーアミノ酸配列は、Ｇｌｙ（Ｇ）、Ａｓｎ（Ｎ）、Ｓｅｒ（Ｓ）、Ｔｈｒ（Ｔ）、Ａｌａ（Ａ）、Ｌｅｕ（Ｌ）、およびＧｌｎ（Ｑ）を含む群において、最も好ましくはＧｌｙ（Ｇ）、Ａｓｎ（Ｎ）、およびＳｅｒ（Ｓ）を含む群において選択されるほぼ天然アミノ酸を含む。

リンカー配列の例は米国特許第５，０７３，６２７号および同第５，１０８，９１０号に記載されている。

より特に本発明に適している例示的なフレキシブルなリンカーとしては、配列番号１３（ＳＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＳＧＧＧＧＳＬＱ）、配列番号１４（ＳＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧ）または配列番号１５（ＳＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＳＬＱ）の配列によりコードされるものが挙げられる。

本発明の免疫サイトカインの抗体
「抗体」という用語は、ジスルフィド結合により相互連結される、４つのポリペプチド鎖、２つの同一の重（Ｈ）鎖（完全長の場合、約５０〜７０ｋＤａ）および２つの同一の軽（Ｌ）鎖（完全長の場合、約２５ｋＤａ）を含む四量体に対応する免疫グロブリン分子を指す。軽鎖はκおよびλと分類される。重鎖は、γ、μ、α、δ、またはεと分類され、抗体のアイソタイプをＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥとそれぞれ定義する。各重鎖はＮ末端重鎖可変領域（本明細書中でＨＣＶＲと略する）および重鎖定常領域からなる。重鎖定常領域は、ＩｇＧ、ＩｇＤ、およびＩｇＡについて３つのドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、およびＣＨ３）；ならびにＩｇＭおよびＩｇＥについて４つのドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３、およびＣＨ４）からなる。各軽鎖は、Ｎ末端軽鎖可変領域（本明細書中でＬＣＶＲと略する）および軽鎖定常領域からなる。軽鎖定常領域は１つのドメイン、ＣＬからなる。ＨＣＶＲおよびＬＣＶＲ領域は、フレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれる、より保存される領域が散在している、相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ばれる超可変性領域にさらに細分されてもよい。各ＨＣＶＲおよびＬＣＶＲは、以下の順序：ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４でアミノ末端からカルボキシ末端に整列される、３つのＣＤＲおよび４つのＦＲからなる。各ドメインに対するアミノ酸の割り当ては周知の慣用法に従う。特定の抗原に結合する抗体の機能的能力は、各軽／重鎖対の可変領域に依存し、主にＣＤＲにより決定される。

本明細書に使用する場合、「抗体」という用語はモノクローナル抗体自体を指す。モノクローナル抗体は、ヒト抗体、キメラ抗体および／またはヒト化抗体であってもよい。

有益には、抗体という用語は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２（ＩｇＧ２ａまたはＩｇＧ２ｂ）、ＩｇＧ３およびＩｇＧ４などのＩｇＧを指す。好ましくは、抗体という用語は、ＩｇＧ１またはＩｇＧ２、より好ましくはＩｇＧ２ａを指す。

「キメラ抗体」とは、マウス免疫グロブリン由来の可変領域およびヒト免疫グロブリンの定常領域からなる抗体を意味する。この変化は、マウス定常領域を有するヒト抗体の定常領域を単に置換することからなり、それにより、医薬用途に許容可能であるように十分に低い免疫原性を有することができるヒト／マウスキメラを生じる。このようなキメラ抗体を産生するための多くの方法が既に報告されており、それ故、当業者の一般知識の一部を形成している（例えば、米国特許第５，２２５，５３９号を参照のこと）。

「ヒト化抗体」とは、非ヒト相補性決定領域（ＣＤＲ）を有する抗体の配列を変化させることによるヒト抗体生殖細胞系列由来の部分的または完全にアミノ酸配列からなる抗体を意味する。抗体および最終的にＣＤＲの可変領域のこのヒト化は、当該技術分野において現在周知による技術により作製される。一例として、英国特許第２１８８６３８Ａ号および米国特許第５，５８５，０８９号は、置換される抗体の一部のみが相補性決定領域、すなわち「ＣＤＲ」である、組換え抗体が産生されるプロセスを開示している。ＣＤＲ移植技術は、マウスＣＤＲ、ならびにヒト可変領域フレームワークおよび定常領域からなる抗体を生成するために使用されている（例えば、ＲＩＥＣＨＭＡＮＮら、Ｎａｔｕｒｅ、ｖｏｌ．３３２、ｐ：３２３−３２７、１９８８を参照のこと）。これらの抗体は、Ｆｃ依存性エフェクター機能に必要であるが、抗体に対する免疫反応を非常に引き起こしにくいヒト定常領域を保有する。一例として、可変領域のフレームワーク領域は、非ヒトＣＤＲを実質的にインタクトなままにする、対応するヒトフレームワーク領域により置換されるか、またはさらに、ヒトゲノムに由来する配列でＣＤＲを置き換える（例えば、米国特許出願公開第２００６／２５８８５号を参照のこと）。完全なヒト抗体は遺伝子組換えマウスにおいて産生され、その免疫系はヒト免疫系に対応するように変化される。上述のように、それは、一本鎖形態を表す断片を含む、抗体の免疫学的に特異的な断片を利用するために本発明の方法に使用するのに十分である。

ヒト化抗体は再び、ヒトフレームワーク、非ヒト抗体由来の少なくとも１つのＣＤＲを含む抗体を指し、任意の定常領域の存在は、ヒト免疫グロブリン定常領域と実質的に同一、すなわち少なくとも約８５または９０％、好ましくは少なくとも９５％同一である。それ故、場合によりＣＤＲを除いてヒト化抗体の全ての部分は、１つ以上の天然のヒト免疫グロブリン配列の対応する部分と実質的に同一である。例えば、ヒト化免疫グロブリンは典型的に、キメラマウス可変領域／ヒト定常領域抗体を包含しない。一例として、ヒト化免疫グロブリンの設計は以下のように実施されてもよい：アミノ酸が以下のカテゴリー下に入る場合、使用されるヒト免疫グロブリン（アクセプター免疫グロブリン）のフレームワークアミノ酸は、ＣＤＲ提供非ヒト免疫グロブリン（ドナー免疫グロブリン）由来のフレームワークアミノ酸により置換される：（ａ）アクセプター免疫グロブリンのヒトフレームワーク領域内のアミノ酸は、その位置におけるヒト免疫グロブリンにとって稀であるのに対して、ドナー免疫グロブリン内の対応するアミノ酸は、その位置におけるヒト免疫グロブリンにとって典型的である；（ｂ）アミノ酸の位置はＣＤＲの位置とすぐに隣接する；または（ｃ）フレームワークアミノ酸の任意の側鎖原子は、３次元免疫グロブリンモデルにおけるＣＤＲアミノ酸の任意の原子の約５〜６Å（中心間）内である（ＱＵＥＥＮら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、ｖｏｌ．８８、ｐ２８６９、１９９１）。アクセプター免疫グロブリンのヒトフレームワーク領域およびドナー免疫グロブリン内の対応するアミノ酸内のアミノ酸の各々がその位置におけるヒト免疫グロブリンにとって稀である場合、そのようなアミノ酸は、その位置におけるヒト免疫グロブリンにとって典型的であるアミノ酸に置換される。

本明細書に使用する場合、「抗体断片」という用語は、その抗体対部分より同じ抗原と反応できる抗体断片を指す。そのような断片は当業者により簡単に識別でき、一例として、Ｆ_ａｂ断片（例えばパパイン消化による）、Ｆ_ａｂ’断片（例えばペプシン消化および部分的還元による）、Ｆ（_ａｂ’）_２断片（例えばペプシン消化による）、Ｆ_ａｃｂ（例えばプラスミン消化による）、Ｆ_ｄ（例えばペプシン消化、部分的還元および再凝集による）を含み、また、ｓｃＦ_ｖ（一本鎖Ｆｖ；例えば分子生物技術による）断片も本発明に包含される。

このような断片は、当該技術分野において公知および／または本明細書に記載されている酵素的切断、合成または組換え技術により産生され得る。抗体はまた、１つ以上の停止コドンが天然の停止部位の上流に組み込まれる抗体遺伝子を使用して種々の切断型で産生されてもよい。例えば、Ｆ（_ａｂ’）_２重鎖部分をコードする組み合わせ遺伝子は、重鎖のＣＨ_１ドメインおよび／またはヒンジ領域をコードするＤＮＡ配列を含むように設計されてもよい。抗体の種々の部分は従来技術により化学的に一緒に結合され得るか、または遺伝子操作技術を使用して隣接タンパク質として調製され得る。

好ましくは、前記抗体断片はｓｃＦｖ断片である。

好ましい実施形態において、前記抗体またはその断片は、腫瘍新血管形成または腫瘍細胞外マトリクスに関連する抗原に対して、あるいは腫瘍抗原に対して誘導される。

本明細書に使用する場合、「腫瘍新血管形成に関連する抗原」とは、腫瘍に存在する新たに合成される血管により発現される抗原を指す。

このような抗原の一例として、フィブロネクチンのＥＤＡおよびＥＤＢドメイン、Ｅｎｄｏｓａｌｉｎ／ＴＥＭ１、Ｅｎｄｏｇｌｉｎ／１０５、ＰＳＭＡまたはＢ７−Ｈ４を挙げることができる。

本明細書に使用する場合、「腫瘍細胞外マトリクスに関連する抗原」とは、腫瘍内に存在する細胞外マトリクス内に発現される抗原を指す。

このような抗原の一例として、ラミニン−３３２のＧ４５断片を挙げることができる（ＲＯＵＳＳＥＬＬＥら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、ｖｏｌ．６８（８）、ｐ：２８８５−９４、２００８）。

本明細書に使用する場合、「腫瘍抗原」とは腫瘍細胞内に産生される抗原物質を指す。多くの腫瘍抗原は当業者に周知であり、非限定的な例として、ＣＤ−２０、ＣＥＡ、ＥＧＦＲ、ＧＤ２、ＥＰＣＡＭ、ＭＵＣｌ、ＰＳＭＡ、ＣＤ−１９、ＧＤ３、ＧＭ１、ＣＡＩＸ、ＧＤ２−Ｏ−アセチル化またはＨＥＲ２を挙げることができる。

ＣＤ−２０は、早期プレＢ細胞発生の間に発現される非グリコシル化リンタンパク質であり、形質細胞分化まで保持する。特に、ＣＤ２０分子は細胞周期開始および分化に必要な活性化プロセスにおける工程を調節でき、通常、腫瘍性（「腫瘍」）Ｂ細胞において非常に高いレベルで発現される。定義により、ＣＤ２０は、「正常」Ｂ細胞および「悪性」Ｂ細胞の両方に存在する。したがって、ＣＤ２０表面抗原はＢ細胞リンパ腫の「標的化」のための候補として機能する可能性を有する。

ＣＤ−２０に対して誘導される抗体に関して、リツキシマブ（「ＲＩＴＵＸＡＮ（登録商標）」）（米国特許第５，７３６，１３７号）；「Ｙ２Ｂ８」または「イブリツモマブチウキセタン」ＺＥＶＡＬＩＮ（登録商標）と指定されたイットリウム−［９０］−標識化２Ｂ８マウス抗体（米国特許第５，７３６，１３７号）；「^１３１Ｉ−ＢＩ」抗体（ヨウ素１３１トシツモマブ、ＢＥＸＸＡＲ（登録商標））を生成するために必要に応じて^１３１Ｉで標識された「トシツモマブ」とも呼ばれるマウスＩｇＧ２ａ「ＢＩ」（米国特許第５，５９５，７２１号）；およびヒト化２Ｈ７；オファツムマブ、ＣＤ２０ｈｕＭａｘ−ＣＤ２０上の新規エピトープに対する完全なヒト化ＩｇＧ１（国際公開第２００４／０３５６０７号）を挙げることができる。それらの中で、リツキシマブ、イブリツモマブ、チウキセタン、およびトシツモマブは、特定のリンパ腫の治療のために承認された市場で手に入れることができ、オファツムマブは、特定の白血病の治療のために承認された市場で手に入れることができる。

ＣＥＡ（癌胎児性抗原）糖タンパク質は細胞接着に関連する腫瘍マーカーである。

ＣＥＡに対して誘導される抗体に関して、アルシツモマブ（ＩＭＭＵＮＯＭＥＤＩＣＳ）を挙げることができる。

ＥｒｂＢ受容体は、上皮、間葉およびニューロン起源の種々の組織内に発現される。正常な条件下で、ＥｒｂＢ受容体の活性化は、成長因子のＥＧＦファミリーのメンバーである、それらのリガンドの空間的および一時的発現により制御される。ＥｒｂＢ受容体に結合するリガンドは、受容体ホモ−およびヘテロ二量体の形成ならびに内在キナーゼドメインの活性化を誘導し、細胞質尾部内の特異的チロシンキナーゼ残基上でのリン酸化を生じる。これらのリン酸化残基は、種々のタンパク質のためのドッキング部位として機能し、その動員により、細胞内シグナル伝達経路の活性化を導く。ＥｒｂＢ受容体のうち、ＥＧＦＲおよびＨＥＲ２は細胞増殖および分化を調節するのに重要な役割を果たすことが知られている。それらは、細胞外成長因子結合時にホモ−および／またはヘテロ二量体内の他のＨＥＲ受容体と集合する強い傾向を有し、その結果、種々の形態のシグナル変換経路活性化を生じ、アポトーシス、生存、または細胞増殖のいずれかを導く。

ＥＧＦＲに対して誘導される抗体に関して、マツズマブ（ｈＭＡｂ４２５、米国特許第５，５５８，８６４号；欧州特許第０５３１４７２号）としても指定される、ヒト化モノクローナル抗体４２５、セツキシマブ（ＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）；米国特許第７，０６０，８０８号）としても指定される、キメラモノクローナル抗体２２５（ｃＭａｂ２２５）および完全ヒト抗ＥＧＦＲ抗体パニツムマブ（ＶＥＣＴＩＢＩＸ（登録商標）；米国特許第６，２３５，８８３号）を挙げることができる。それらの中で、セツキシマブおよびパニツムマブはインビボにおいてヒト大腸腫瘍を阻害することが実証され、その両方は承認された市場で手に入れることができる。

Ｈｅｒ２に対して誘導される抗体に関して、ｈｕＭＡｂ４Ｄ５−８、ｒｈｕＭＡｂ ＨＥＲ２、トラスツズマブ、またはＨＥＲＣＥＰＴＩＮ（登録商標）（米国特許第５，８２１，３３７号）と指定されたマウス抗体４Ｄ５（米国特許第５，６７７，１７１号）の組換えヒト化型を挙げることができる。この抗体は、腫瘍がＥｒｂＢ２タンパク質を過剰発現する転移性乳癌を患っている患者を治療するために１９９８年に承認された市場で手に入れることができる。

ＧＤ２は、神経芽細胞腫および黒色腫を含む、神経外胚葉起源の腫瘍上で発現されるジシアロガングリオシドである。

ＧＤ２に対して誘導される抗体に関して、神経芽細胞腫の治療に使用されている、マウスＩｇＧ３モノクローナル抗体３Ｆ８、またはＧＤ２のＯ−アセチル化形態に特異的である、マウスＩｇＧ３モノクローナル抗体８Ｂ６を挙げることができる（国際特許出願ＰＣＴＷＯ２００８／０４３７７７）。

好ましくは、抗体は、ＣＤ−２０（例えば、米国特許第５，７３６，１３７号に開示されるリツキシマブ）、ＧＤ２−Ｏ−アセチル化（例えば、国際特許出願ＰＣＴＷＯ２００８／０４３７７７に開示されているもの）またはＨＥＲ２（例えば、米国特許第５，８２１，３３７号に開示されているトラスツズマブまたはＨＥＲＣＥＰＴＩＮ（登録商標））に対して誘導される。

コンジュゲートおよび抗体またはその断片の両方は、二官能性タンパク質カップリング剤を使用してまたは融合タンパク質中で共有結合されてもよい。

二官能性タンパク質カップリング剤の方法は当業者により周知であり、以前に開示されている。一例として、当業者は、ＴＩＬＬら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｕ．Ｓ．Ａ．、ｖｏｌ．８６（６）、ｐ：１９８７−９１、１９８９）に開示されている方法を使用できる。

好ましい実施形態において、免疫サイトカインは融合タンパク質である。

別の好ましい実施形態において、免疫サイトカインは複合体、好ましくはポリペプチドｉ）とｉｉ）との間にコンジュゲートを含む複合体であり、ポリペプチドｉ）またはｉｉ）は抗体またはその断片に融合される。

ポリペプチドｉ）、ポリペプチドｉｉ）、またはコンジュゲートは、抗体またはその断片のアミノ酸配列に対してＣ末端またはＮ末端位置に存在してもよい。

好ましくは、コンジュゲートは融合タンパク質であり、コンジュゲートのアミノ酸配列は、抗体またはその断片のアミノ酸配列に対してＣ末端位置に存在し、最も好ましくは抗体もしくはその断片の重鎖定常領域の少なくとも１つのアミノ酸配列に対してＣ末端位置に存在する。

コンジュゲートのアミノ酸配列および抗体またはその断片のアミノ酸配列は、第２の「リンカー」アミノ酸配列により分離されてもよく、またはされなくてもよい。

特定の実施形態において、本発明の免疫サイトカインは、コンジュゲートおよび抗体またはその断片が任意のリンカーにより分離されない融合タンパク質である。

実際に、本発明者らは驚くべきことに、本発明の免疫サイトカインが、活性であるように免疫グロブリンとサイトカイン部分との間に任意のリンカーを必要としないことを確立した。

第１のリンカーアミノ酸配列に関して、前記第２の「リンカー」アミノ酸配列は、融合タンパク質が適切な二次および三次構造を形成することを確実にするのに十分な長さであってもよい。

第１のリンカーアミノ酸配列の長さは融合タンパク質の生物活性に顕著に影響を与えずに変化してもよい。典型的に、第１のリンカーアミノ酸配列は、少なくとも１つであるが、３０アミノ酸未満、例えば２〜３０アミノ酸、好ましくは１０〜３０アミノ酸、より好ましくは１５〜３０アミノ酸、最も好ましくは１５〜２５アミノ酸のリンカーを含む。

第１のリンカーアミノ酸配列に関して、最も適切な第２のリンカーアミノ酸配列は、（１）フレキシブルな伸長構造を適合し、（２）融合タンパク質の機能ドメインと相互作用できる秩序的な二次構造を発生する性質を示さず、（３）機能タンパク質ドメインとの相互作用を促進できる最小の疎水性または荷電特性を有する。

好ましくは、第２のリンカーアミノ酸配列は、Ｇｌｙ（Ｇ）、Ａｓｎ（Ｎ）、Ｓｅｒ（Ｓ）、Ｔｈｒ（Ｔ）、Ａｌａ（Ａ）、Ｌｅｕ（Ｌ）、およびＧｌｎ（Ｑ）を含む群において、最も好ましくはＧｌｙ（Ｇ）、Ａｓｎ（Ｎ）、およびＳｅｒ（Ｓ）を含む群において選択されるほぼ天然のアミノ酸を含む。

本発明に適した第２のリンカーアミノ酸配列の一例として、配列番号１６（ＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧ）または配列番号１７（ＡＡＧＧＧＳＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＡＡ）の配列を挙げることができる。

核酸、ベクターおよび組換え宿主細胞
第２の態様において、本発明は、上記の免疫サイトカイン、好ましくは融合タンパク質に対応する免疫サイトカインをコードする核酸に関する。

前記核酸はＲＮＡまたはＤＮＡ、好ましくはＤＮＡに対応する。

好ましい実施形態によれば、本発明の免疫サイトカインをコードする核酸は、原核細胞または真核細胞、好ましくは真核細胞内で核酸の発現を導く遺伝子発現配列に作動可能に連結される。「遺伝子発現配列」は、作動可能に連結される免疫サイトカイン核酸の効率的な転写および翻訳を促進する、プロモーター配列またはプロモーター−エンハンサーの組み合わせなどの任意の調節ヌクレオチド配列である。遺伝子発現配列は、例えば、構成的または誘導的プロモーターなどの哺乳動物またはウイルスプロモーターであってもよい。

構成的哺乳動物プロモーターとしては、限定されないが、以下の遺伝子についてのプロモーター：ヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＰＴＲ）、アデノシンデアミナーゼ、ピルビン酸キナーゼ、ベータ−アクチンプロモーター、筋肉クレアチンキナーゼプロモーター、ヒト伸長因子プロモーターおよび他の構成的プロモーターが挙げられる。真核細胞中で構成的に機能する例示的なウイルスプロモーターとしては、例えば、シミアンウイルス（例えばＳＶ４０）、パピローマウイルス、アデノウイルス、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、Ｍｏｌｏｎｅｙ白血病ウイルスおよび他のレトロウイルスの長い末端反復（ＬＴＲ）、ならびに単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼプロモーター由来のプロモーターが挙げられる。他の構成的プロモーターは当業者に公知である。

本発明の遺伝子発現配列として有用なプロモーターにはまた、誘導性プロモーターが含まれる。誘導性プロモーターは誘導剤の存在下で発現される。例えば、プロモーター内のメタロチオンは特定の金属イオンの存在下で転写および翻訳を促進するために誘導される。他の誘導性プロモーターは当業者に公知である。

一般に、遺伝子発現配列には、必要な場合、ＴＡＴＡボックス、キャッピング配列、ＣＡＡＴ配列などのそれぞれ転写および翻訳の開始に関与する５’非転写および５’非翻訳配列が含まれる。特に、このような５’非転写配列は、作動可能に連結された核酸の転写調節のためのプロモーター配列を含むプロモーター領域を含む。遺伝子発現配列は必要に応じて、エンハンサー配列または所望の場合、上流の活性化因子配列を含む。本明細書に使用する場合、本発明の免疫サイトカインを発現する核酸配列および遺伝子発現配列は、それらが、遺伝子発現配列の影響または制御下で配列をコードする本発明の免疫サイトカインの発現もしくは転写および／または翻訳を認識するように共有結合する場合、「作動可能に連結される」前記のものである。

５’遺伝子発現配列におけるプロモーターの誘導が本発明の免疫サイトカインの転写を生じる場合、および２つのＤＮＡ配列間の結合の性質が、（１）フレームシフト変異の導入を生じず、（２）本発明の免疫サイトカインの転写を導くプロモーター領域の能力を干渉せず、または（３）タンパク質に翻訳される対応するＲＮＡ転写の能力を干渉しない場合、２つのＤＮＡ配列は、作動可能に連結される前記のものである。したがって、遺伝子発現配列が核酸配列の転写に影響を与えることができ、得られる転写が所望のポリペプチドに翻訳される場合、遺伝子発現配列は本発明の免疫サイトカインをコードする核酸配列に作動可能に連結される。

有益には、ｍＲＮＡ分子は多くの場合、組換え分子の産生収率を向上させることが実証されているので、前記核酸配列はイントロンを含む。イントロンの任意の配列が使用されてもよく、一例として、ＺＡＧＯら（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、ｖｏｌ．５２（Ｐｔ３）、ｐ：１９１−８、２００９）およびＣＡＭＰＯＳ−ＤＡ−ＰＡＺら（Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、ｖｏｌ．３９（２）、ｐ：１５５−８、２００８）に開示されている性質のものが挙げられる。

本発明の免疫サイトカインをコードする核酸は、インビボで単独で、またはベクターと結合して送達されてもよい。

第３の態様において、本発明は上記の核酸を含むベクターに関する。

その広範な意味において、「ベクター」は、本発明の免疫サイトカインをコードする核酸の細胞への転写を促進できる任意のビヒクルである。好ましくは、ベクターは、ベクターの非存在下で生じる分解の程度より低い分解である細胞に核酸を輸送する。一般に、本発明に有用なベクターとしては、限定されないが、プラスミド、コスミド、ファージミド、エピソーム、人工染色体、ウイルス、免疫サイトカイン核酸配列の挿入または組み込みにより操作されるウイルスまたは細菌源に由来する他のビヒクルが挙げられる。

プラスミドベクターは、好ましい種類のベクターであり、当該技術分野において広範に記載されており、当業者に周知である。例えば、ＳＡＮＢＲＯＯＫら、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ」、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、１９８９を参照のこと。プラスミドの非限定的な例としては、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＲＣ／ＣＭＶ、ＳＶ４０、およびｐＢｌｕｅＳｃｒｉｐｔが挙げられ、他のプラスミドは当業者に周知である。さらに、プラスミドはＤＮＡの特定の断片を除去および付加するために制限酵素およびライゲーション反応を使用してカスタム設計されてもよい。

好ましくは、核酸ベクターは細菌および哺乳動物細胞の両方において活性である選択可能なマーカーを含んでもよい。

第４の態様において、本発明は核酸または上記のベクターで遺伝子操作された宿主細胞に関する。

本明細書に使用する場合、「遺伝子操作された宿主細胞」という用語は、核酸または上記のベクターで形質導入、形質変換またはトランスフェクトされた宿主細胞に関する。

適切な宿主細胞の代表的な例として、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）などの細菌細胞、酵母などの真菌細胞、Ｓｆ９などの昆虫細胞、ＣＨＯまたはＣＯＳなどの動物細胞、植物細胞などが挙げられる。適切な宿主の選択は本明細書の教示から当業者の範囲内であるとみなされる。

好ましくは、遺伝子操作された宿主細胞は動物細胞であり、最も好ましくはＣＨＯ−Ｓ細胞（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、カタログ番号１１６１９−０１２）である。

チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞は、組換えタンパク質、抗体、ペプチドボディ、およびレセプターリガンドなどの生物製剤を製造するための生物薬剤産業において頻繁に使用されている。ＣＨＯ細胞がしばしば使用される理由の１つは、それらの細胞が生物学的生産のための広範囲の安全な実績を有するからである。これは十分に特徴付けられた細胞株とみなされ、その結果、必要とされる安全試験は、他の細胞種類に必要とされるものより、一部の事項（例えばレトロウイルス安全性）においてそれ程厳格でなくてもよい。それにも関わらず、インターロイキン１５の産生は特にこの細胞において非常に困難である。

驚くべきことに、本発明者らは、本発明の免疫サイトカインがこの細胞において十分に産生し、得られた免疫サイトカインがさらに非常に良好な純度および活性を有することを確立した。

宿主細胞内への上記の核酸またはベクターの導入は、リン酸カルシウムトランスフェクション、ＤＥＡＥ−デキストラン媒介性トランスフェクション、またはエレクトロポレーションなどの当業者に周知の方法により行われ得る。

本発明はまた、本発明に係る免疫サイトカインを発現する遺伝子操作された宿主細胞を産生する方法であって、前記方法は、（ｉ）上記の核酸またはベクターをインビトロまたはエキソビボで宿主細胞内に導入する工程、（ｉｉ）得られた遺伝子操作された組換え宿主細胞をインビトロまたはエキソビボで培養する工程、ならびに（ｉｉｉ）必要に応じて、前記免疫サイトカインを発現および／または分泌する細胞を選択する工程を含む、方法に関する。このような組換え宿主細胞は本発明の免疫サイトカインを産生するために使用されてもよい。

本発明の免疫サイトカインを含む医薬組成物
本発明のさらなる目的は、最終的に薬学的に許容可能な担体と結合される、上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸、または前記核酸を含むベクターを含む医薬組成物に関する。

「薬学的に許容可能な」という用語は、生理学的に耐性があり、典型的に、ヒトに投与される場合、異常亢進、目眩などのアレルギーまたは同様の望ましくない反応を生じない、分子実体および組成物を指す。好ましくは、本明細書に使用する場合、「薬学的に許容可能な」という用語は、連邦政府の監督官庁により承認されていること、または動物、より特にヒトに使用するために米国薬局方もしくは他の一般に認識されている薬局方に記載されているものを意味する。

「担体」という用語は、化合物と共に投与される溶媒、アジュバント、賦形剤、またはビヒクルを指す。このような医薬担体は、ピーナッツ油、ダイズ油、鉱油、ゴマ油などの石油、動物、植物または合成起源のものを含む、水および油などの滅菌液であってもよい。

医薬組成物は、「有効量」の本発明の免疫サイトカインを含み、その有効量は癌細胞の増殖を阻害するのに十分な量、好ましくは腫瘍増殖の退行を誘導するのに十分な量である。投与のために使用される用量は、関連する病理、または所望の治療期間の種々のパラメータに応じて、特に使用される投与様式に応じて適合されてもよい。当然、医薬組成物の形態、投与様式、投薬およびレジメンは当然に、被験体の治療される病態、病気の重症度、年齢、体重、および性別などに依存する。以下に提供される有効量の範囲は、本発明を限定することを意図するものではなく、好ましい用量範囲を表す。しかしながら、好ましい用量は、過度の実験を必要とせずに当業者に理解され、決定できるように、個々の被験体に合わせられ得る。

本発明の免疫サイトカインの注目すべき効果を考慮して、当業者は被験体を治療するために非常に低い用量を使用するように計画できる。非限定的な例として、本発明の免疫サイトカインは、２．５ｍｇ／被験体のｋｇまたは１ｍｇ／被験体のｋｇまたはそれ以下の用量、好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ以下または０．２５ｍｇ／ｋｇ以下の用量、最も好ましくは０．１ｍｇ／ｋｇ以下の用量で注射により投与されてもよい。

一例として、本発明の医薬組成物は、局所的、経口、鼻腔内、眼球内、静脈内、筋肉内または皮下投与用などに製剤化されてもよい。好ましくは、医薬組成物は、注射されることを目的とする製剤のために薬学的に許容可能であるビヒクルを含有する。それらは特に等張、滅菌、生理食塩水溶液（モノナトリウム塩酸塩もしくはリン酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウムもしくは塩化マグネシウムなどまたはそのような塩の混合物）または状況に応じて、滅菌水もしくは生理学的食塩水の添加時に、注射溶液の構成を可能にする、乾燥、特に凍結乾燥組成物中に存在してもよい。適切な医薬担体は、Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎによる「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」に記載されている。

本発明の免疫サイトカイン、それをコードする核酸または核酸ベクターは、緩衝液または水中に溶解されてもよいか、あるいはエマルション、マイクロエマルション、ヒドロゲル（例えばＰＬＧＡ−ＰＥＧ−ＰＬＧＡトリブロックコポリマーベースのヒドロゲル）中、ミクロスフェア中、ナノスフェア中、微粒子中、ナノ粒子（例えば乳酸グリコール酸共重合体）中、微粒子（例えばポリ乳酸（ＰＬＡ）；乳酸グリコール酸共重合体（ＰＬＧＡ）；ポリグルタミン酸塩ミクロスフェア、ナノスフェア、微粒子またはナノ粒子）中、リポソーム中、または他のガレニック（ｇａｌｅｎｉｃ）製剤中に組み込まれてもよい。全ての場合、製剤は滅菌され、注射できるように許容可能な程度まで流動されなければならない。それは製造および貯蔵条件下で安定でなければならず、細菌および真菌などの微生物の汚染作用に対して保存されなければならない。

遊離塩基または薬理学的に許容可能な塩としての活性化合物の溶液は、ヒドロキシプロピルセルロースなどの界面活性剤と適切に混合される水中で調製されてもよい。

分散系もまた、グリセロール、液体ポリエチレングリコール、それらの混合物および油中で調製されてもよい。通常の貯蔵および使用条件下で、これらの調製物は微生物の増殖を防ぐために防腐剤を含有する。

本発明に係る免疫サイトカインは中性または塩形態で組成物に製剤化されてもよい。薬学的に許容可能な塩には、例えば、塩酸もしくはリン酸などの無機酸、または酢酸、シュウ酸、酒石酸、マンデル酸などの有機酸と共に形成される酸付加塩（タンパク質の遊離アミノ基と共に形成される）が含まれる。遊離カルボキシル基と共に形成される塩もまた、例えば、ナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウム、または水酸化第二鉄などの無機塩基、およびイソプロピルアミン、トリメチルアミン、ヒスチジン、プロカインなどの有機塩基から誘導されてもよい。

担体はまた、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコールなど）、それらの適切な混合物、および植物油を含有する溶媒または分散媒であってもよい。本発明の免疫サイトカインはまた、そのバイオディスポニビリティ（ｂｉｏｄｉｓｐｏｎｉｂｉｌｉｔｙ）を増加させるように、例えばペグ化により修飾されてもよい。本発明の免疫サイトカインが核酸形態を有する場合、担体はまた、ウイルスなど（例えばＭＶＡ、ｒＡＡＶ、レンチウイルスなど）のベクターであってもよい。

適切な流動性は、例えば、レシチンなどのコーティングの使用により、分散系の場合の必要な粒径の維持により、および界面活性剤の使用により維持されてもよい。微生物の作用の防止は、種々の抗菌剤および抗真菌剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、チメロサールなどによりもたらされ得る。多くの場合、等張剤、例えば、糖または塩化ナトリウムを含むことが好ましい。

注射可能な組成物の持続的吸収は、吸収遅延剤の組成物、例えば、モノステアリン酸アルミニウム、ゼラチン、ポリオール、半減期増強共有結合および非共有結合製剤の使用によりもたらされ得る。

加水分解および変性を含む、ペプチド不安定性または分解の多くの原因が存在する。疎水性相互作用は分子のクランピング（すなわち凝集）を一緒に引き起こし得る。安定剤がこのような問題を減少または防止するために加えられてもよい。

安定剤としては、シクロデキストリンおよびその誘導体が挙げられる（米国特許第５，７３０，９６９号を参照のこと）。スクロース、マンニトール、ソルビトール、トレハロース、デキストリンおよびグリセリンなどの適切な防腐剤もまた、最終製剤を安定化するために加えられてもよい。イオン性および非イオン性界面活性剤、Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−キシロース、Ｄ−ガラクツロン酸、トレハロース、デキストラン、ヒドロキシエチルデンプン、およびそれらの混合物から選択される安定剤が製剤に加えられてもよい。アルカリ金属塩または塩化マグネシウムの添加はペプチドを安定化できる。ペプチドはまた、それを、デキストラン、コンドロイチン硫酸、デンプン、グリコーゲン、デキストリンおよびアルギン酸塩からなる群から選択されるサッカリドと接触させることにより安定化されてもよい。添加され得る他の糖としては、単糖、二糖、糖アルコール、およびそれらの混合物（例えば、グルコース、マンノース、ガラクトース、フルクトース、スクロース、マルトース、ラクトース、マンニトール、キシリトール）が挙げられる。ポリオールはペプチドを安定化でき、水混和性または水溶性である。適切なポリオールは、ポリヒドロキシアルコール、マンニトール、グリセロール、エチレングリコール、プロピレングリコール、トリメチルグリコール、ビニルピロリドン、グルコース、フルクトース、アラビノース、マンノース、マルトース、スクロース、およびそれらのポリマーを含む単糖および二糖であってもよい。血清アルブミン、アミノ酸、ヘパリン、脂肪酸およびリン脂質、界面活性剤、金属、ポリオール、還元剤、金属キレート剤、ポリビニルピロリドン、加水分解ゼラチン、および硫酸アンモニウムを含む、種々の賦形剤もまた、ペプチドを安定化できる。

サイトカイン療法の有望性は、実際にこれらの新規サイトカインの同定から誘導されるものであるが、さらにより根本的には、その分野は、サイトカインと相補的免疫刺激能力とのいくつかの組み合わせの使用により達成され得る、相乗効果および／または新規生物効果が納得のいくように実証されている今までに膨らんだ量の前臨床データから非常に利点を受ける。ＲＬＩに基づいた免疫サイトカインとの潜在的な治療活性剤の組み合わせとしては、例えば、化学療法剤、血管新生阻害剤、または免疫調節剤が挙げられる。

好ましい実施形態において、本発明の組成物は、化学療法剤、血管新生阻害剤、または免疫調節剤などのさらなる治療活性剤を含んでもよい。

化学療法剤に関して、それらの治療効果は、免疫応答に対する間接的作用により、免疫原性細胞死を誘導すること、免疫抑制環境を平衡化すること、主要な大きな腫瘍を減量すること、次いで免疫攻撃を促進すること、または一時的なリンパ球減少後の恒常的なリンパ球増殖の誘導により、部分的に媒介され得ることが実証されている。それらの多くは当業者に周知であり、本発明の免疫サイトカインと組み合わされ得る化学療法剤の例として、フルダラビン、ゲムシタビン、カペシタビン、メトトレキサート、タキソール、タキソテール、メルカプトプリン、チオグアニン、ヒドロキシウレア、シタラビン、シクロホスファミド、イホスファミド、ニトロソウレア、シスプラチン、カルボプラチンおよびオキサリプラチンなどの白金錯体、マイトマイシン、ダカルバジン、プロカルビジン、エトポシド、テニポシド、カンパテシン（ｃａｍｐａｔｈｅｃｉｎ）、ブレオマイシン、ドキソルビシン、イダルビシン、ダウノルビシン、ダクチノマイシン、プリカマイシン、ミトキサントロン、Ｌ−アスパラギナーゼ、ドキソルビシン、エピムビシン（ｅｐｉｍｂｉｃｍ）、５−フルオロウラシル、ドセタキセルおよびパクリタキセルなどのタキサン、ロイコボリン、レバミゾール、イリノテカン、エストラムスチン、エトポシド、ナイトロジェンマスタード、ＢＣＮＵ、カルムスチンおよびロムスチンなどのニトロソウレア、ビンブラスチン、ビンクリスチンおよびビノレルビンなどのビンカアルカロイド、イマチニブメシラート（ｉｍａｔｉｍｂ ｍｅｓｙｌａｔｅ）、ヘキサメチレンアミン（ｈｅｘａｍｅｔｈｙｈｎｅｌａｍｉｎｅ）、トポテカン、キナーゼ阻害剤、ホスファターゼ阻害剤、ＡＴＰａｓｅ阻害剤、チロホスチン、プロテアーゼ阻害剤、阻害剤ハービマイシンＡ、ゲニステイン、エルブスタチンおよびラベンダスチンＡを挙げることができる。

血管新生阻害剤に関して、それらは、免疫系に対して標的外（ｏｆｆ−ｔａｒｇｅｔ）の効果を有し、そして腫瘍免疫反応を促進できることが実証されている。本発明の免疫サイトカインと組み合わされ得る血管新生阻害剤の例としては、ソラフェニブ、スニチニブ、およびパゾパニブなどのそのチロシンキナーゼを介して血管内皮増殖因子受容体（ＶＥＧＦＲ）を標的とする薬物、またはテムシロリムス（ｔｅｍｓｉｒｏｌｉｍｕｓ）およびエベロリムスなどのラパマイシンの哺乳動物標的（ｍＴＯＲ）を挙げることができる。

本発明の免疫サイトカインと組み合わせることができる免疫調節剤に関して、サイトカイン（ＩＬ−２、ＩＬ−７、ＩＬ−１５、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＩＬ−２１、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ＩＦＮα、．．．）、ケモカイン／抗血管形成サイトカイン（ＩＰ１０、Ｍｉｇ、ＳＤＦ−１、ＲＡＮＴＥＳ、．．．）、ＴＬＲアゴニスト、および免疫調節抗体（抗ＣＴＬＡ４、抗ＰＤ１、抗ＴＧＦｂ、アゴニスト抗ＣＤ４０、．．．）を挙げることができる。

治療方法および使用
さらなる態様において、本発明は、被験体における癌を治療するための上記の医薬組成物、好ましくは上記の免疫サイトカインを含む医薬組成物に関する。

本明細書に使用する場合、「被験体」という用語は、齧歯動物、ネコ科、イヌ科または霊長類などの哺乳動物、最も好ましくはヒトを示す。

別の態様において、本発明は、
被験体における癌を治療するための同時、別々、または連続使用のための組み合わせた調製物として、
（ｉ）上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸配列、またはそのような核酸配列を含むベクター、および
（ｉｉ）治療剤、好ましくは抗癌剤
を含有する製剤に関する。

さらに別の態様において、本発明は、上記の医薬組成物を被験体に投与する工程を含む、前記被験体における癌を治療するための方法に関する。

最後の態様において、本発明は、治療有効量の
（ｉ）上記の免疫サイトカイン、それをコードする核酸配列、またはそのような核酸配列を含むベクター、および
（ｉｉ）治療剤、好ましくは抗癌剤
を、それを必要とする被験体に同時、別々、または連続して投与する工程を含む、癌を治療するための方法に関する。

本発明の文脈において、本明細書に使用する場合、「治療する」または「治療」という用語は、このような用語が適用される疾患もしくは病態、またはこのような疾患もしくは病態の１種以上の症状の進行を反転、軽減、阻害、または予防することを意味する。本明細書に使用する場合、「癌を治療する」という用語は、癌細胞の増殖の阻害を意味する。好ましくは、このような治療はまた、腫瘍増殖の退行、すなわち測定可能な腫瘍のサイズの減少を導く。最も好ましくは、このような治療は腫瘍の完全な退行を導く。

以下において、本発明をアミノ酸配列、核酸配列および実施例を参照してより詳細に記載する。しかしながら、本発明は実施例の詳細に限定されることを意図するわけではない。むしろ、本発明は、本明細書の実施例に明確に記載していないが、当業者が過度の試みを必要とせずに理解する詳細を含む任意の実施形態に関する。

１）インターロイキン１５に基づいた免疫サイトカインの構築
抗ＣＤ２０（リツキシマブ）および抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインの構築
抗ＣＤ２０キメラＩｇＧ軽鎖および抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化キメラＩｇＧ軽鎖をコードする発現プラスミドは、親切にも、Ｄｒ ＷＡＴＩＥＲ（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｆｒａｎｃｏｉｓ−Ｒａｂｅｌａｉｓ ｄｅ Ｔｏｕｒｓ、フランス）およびＤｒ ＢＩＲＫＬＥ（ＩＮＳＥＲＭ、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｅ ｄｅ Ｎａｎｔｅｓ、Ｕ８９２、フランス）によりそれぞれ提供された。各抗体のキメラＩｇＧ重鎖配列は、ＩＬ１５（配列番号３、９３位におけるアミノ酸はＫである）に対して２２アミノ酸（配列番号１６）のリンカーを有するまたは有さない３’末端において融合するように設計した。これらのヌクレオチド配列を合成し、ＧＥＮＥＡＲＴによりｐｃＤＮＡ３．１プラスミド内でクローニングした。抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化抗体（８Ｂ６）の軽鎖および重鎖の完全配列は、特許出願ＥＰ２，０７６，５４２Ａ１およびＣＥＲＡＴＯら（Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ、ｖｏｌ．１６（４）、ｐ：３０７−１６、１９９７）に開示されている。抗ＣＤ２０抗体（２Ｂ８）の軽鎖および重鎖の完全な配列は、米国特許第５，７３６，１３７号（ＡＮＤＥＲＳＯＮら、「Ｃ２Ｂ８」と呼ばれる抗体として）およびＲＥＦＦら（Ｂｌｏｏｄ、ｖｏｌ．８３（２）、ｐ：４３５−４５、１９９４）に開示されている。

プラスミドＤＮＡ調製およびトランスフェクション試薬
４０ｋＤａの線形ＰＥＩはＰＯＬＹＳＣＩＥＮＣＥから得た。１ｍｇ／ｍＬのストック溶液を、加熱しながら水中でＰＥＩを溶解し、ＮａＯＨにより中和し、０．２２μｍのフィルタを通す濾過により滅菌することにより調製した。溶液ストックをアリコートし、−２０℃に保存した。

トランスフェクション用のプラスミドＤＮＡを、製造業者のプロトコル（ＭＡＣＨＥＲＥＹ−ＮＡＧＥＬ）に従ってプラスミド精製キットを使用し、０．２２μｍのフィルタを通す濾過により滅菌して精製した。

免疫サイトカインの産生および精製
１−懸濁液中の一過性トランスフェクション：
通常のように維持したＣＨＯ−Ｓ（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）細胞を、ＰｏｗｅｒＣＨＯ２培地（ＬＯＮＺＡ）中で１×１０^６細胞／ｍＬの密度で播種し、５％ＣＯ_２を含む振盪インキュベータ（１００ｒｐｍ）において３７℃にて一晩培養した。トランスフェクションのために、次いで細胞をＣＤ−ＣＨＯ培地（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）中で２×１０^６細胞／ｍＬに希釈した。トランスフェクション複合体を、ＮａＣｌ１５０ｍＭを使用して１０％の培養体積中で調製した。発現構築物ＤＮＡ（２．５ｍｇ／Ｌの培養体積、１：２比の重鎖をコードするプラスミド対軽鎖をコードするプラスミドを使用した）を、ＮａＣｌ（１０ｍｇ／ｍＬの最終培養体積）中に希釈したＰＥＩと混合し、培地に加える前に室温にて１０分間インキュベートした。細胞を、３７℃にて５時間、振盪インキュベータ（１３０ｒｐｍ）中で培養し、その後、ＰｏｗｅｒＣＨＯ２培地で培養体積を２倍にした。トランスフェクションの５日後に上清を回収した。

２−接着細胞における安定なトランスフェクション
ＣＨＯ−Ｋ１細胞（ＡＴＣＣｎ^○ＣＣＬ−６１）を、ｌ−グルタミン、１０％ＦＣＳおよびペニシリン（１００単位／ｍｌ）／ストレプトマイシン（１００μｇ／ｍｌ）を補足したＤＭＥＭ中で増殖させ、製造業者により推奨されるようにリポフェクタミン２０００試薬（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）を使用して各ベクターでトランスフェクトした。抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化ＩＣＫおよび抗ＣＤ２０ＩＣＫについてそれぞれ、ジェネティシンおよびハイグロマイシン（０．５ｍｇ／ｍｌ）またはブラスチシンおよびハイグロマイシン（５μｇ／ｍＬおよび１００μｇ／ｍＬ）を含有する培地での限界希釈によりクローンを選択した。各クローンの培養上清を、ＥＬＩＳＡにより二官能性タンパク質産生についてアッセイした。ＩＣＫの産生に関して、選択されたクローンを２５％のＤＭＥＭ培地および７５％のＡＩＭ培地（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）中で増幅させた。次いで細胞を１００％のＡＩＭ中に維持し、上清を回収し、１０日間、２日毎に入れ替えた。

３−上清精製：
回収した上清を、４℃にて２０分間、３０００ｒｐｍにて遠心分離し、ＮａＯＨでｐＨ７．８に平衡化し、０．２２μｍのフィルタを通して濾過した。馴化培地を、製造業者の指示書に従ってプロテインＡカラム（ＧＥ）を使用してアフィニティクロマトグラフィーにより精製した。精製したタンパク質を５０ｋＤａのＡＭＩＣＯＮ単位（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ）で濃縮した。この工程の間、溶出緩衝液をＰＢＳと置き換えた。精製したタンパク質をＥＬＩＳＡにより最後にアッセイし、２８０ｎｍにて吸光度を測定した。純度を電気泳動により評価した。

４−ＥＬＩＳＡによる免疫グロブリン部分の検出
Ｍａｘｉｓｏｒｐ平底マイクロタイタープレート（ＮＵＮＣ）を、４℃にて１．５μｇ／ｍＬにＰＢＳ中で希釈した１００μＬのヤギ抗ヒト抗体（ＵＰ８９２３７０、ＩＮＴＥＲＣＨＩＭ）でコーティングした。次いでプレートを３７℃にて１時間、２００μＬの遮断緩衝液（ＰＢＳ中の１％ＢＳＡ＋０．１％ＴＷＥＥＮ２０）で遮断した。次いでプレートを洗浄緩衝液（ＰＢＳ中の０．１％ＴＷＥＥＮ２０）で３回洗浄し、遮断緩衝液中で希釈した試料を加え、３７℃で３０分インキュベートした（１００μＬ）。３回の洗浄後、１：１００００に希釈したペルオキシダーゼコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ１（１０９−０３６−００３、ＪＡＣＫＳＯＮ）を加え、３７℃にて３０分間インキュベートした。ＴＭＢ基質（ＩＮＴＥＲＣＨＩＭ）を使用してタンパク質レベルを決定し、プレートを４５０ｎｍにて読み取った。精製したリツキシマブ（ＲＯＣＨＥ）を使用してプレート上での標準曲線を生成した。

５−ＥＬＩＳＡによるサイトカイン部分の検出
Ｍａｘｉｓｏｒｐ平底マイクロタイタープレート（ＮＵＮＣ）を、４℃にて１６時間、２μｇ／ｍＬに炭酸塩緩衝液中で希釈した１００μＬの抗ＩＬ１５Ｂ−Ｅ２９（ＤＩＡＣＬＯＮＥ）でコーティングした。次いでプレートを３７℃にて１時間、２００μＬの遮断緩衝液（ＰＢＳ中の１％ＢＳＡ）で遮断した。次いでプレートを洗浄緩衝液（ＰＢＳ中の０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で３回洗浄した。ＴＢＳ＋０．０５％ＢＳＡ中で希釈した試料を加え、３７℃にて１時間３０分インキュベートした（１００μＬ）。３回の洗浄後、２００ｎｇ／ｍＬに希釈したビオチン化抗ＩＬ１５抗体ＢＡＭ２４７（Ｒ＆Ｄ ＳＹＳＴＥＭ）を加え、３７℃にて１時間３０分間、インキュベートした。プレートを３回洗浄し、ペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンを１：１０００希釈して加えた。ＴＭＢ基質（ＩＮＴＥＲＣＨＩＭ）を使用してタンパク質レベルを決定し、プレートを４５０ｎｍにて読み取った。ＩＬ−１５（ＰＥＰＲＯＴＥＣＨ）を使用してプレート上での標準曲線を生成した。

その結果により、免疫サイトカインの得られた調製物が多くのタンパク質汚染物質（すなわち２５％以上）を含むことが示された。これらのタンパク質汚染物質を減少させるために、２つの抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化／インターロイキン１５免疫サイトカインを別のラウンドのプロテインＡセファロース精製に供した。

この２回目のラウンドのプロテインＡセファロース精製後、ＩＣＫｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＩＬ１５およびｃ８Ｂ６−ＩＬ１５の純度はそれぞれ７０および９０％であった。

免疫サイトカインの増殖活性
得られた免疫サイトカインのインターロイキン−１５増殖活性を試験した。ＩＣＫに対するＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞の増殖反応を、［^３Ｈ］チミジン組み込みにより測定した。細胞を３日間培地中に維持し、２回洗浄し、Ｋｉｔ２２５および３２Ｄβについてそれぞれ２４時間または４時間、サイトカインを含まない培地中で飢餓させた。次いでそれらを、１００μｌ中の１０^４細胞／ウェルにてマルチウェルプレート中に播種し、増加させた濃度の試料を補足した培地中で４８時間培養した。ヒトｒＩＬ−１５およびＲＬＩを校正物として使用した。０．５μＣｉ／ウェルの［^３Ｈ］チミジンを用いて１６時間、細胞をパルスし、ガラス繊維フィルタ上で収集し、細胞結合放射線物質を測定した。

図１は、増加させた濃度のｒＩＬ−１５（■）、ｃ８Ｂ６−ＩＬ１５（△）、およびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＩＬ１５（○）と共に培養したＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

図２は、増加させた濃度のｒＩＬ−１５およびｃ２Ｂ８−ｌ２２−ＩＬ１５（○）と共に培養したＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

その結果により、ＩＬ−１５の生物活性は免疫サイトカインに関して劇的に減少したことが示され、モノクローナル抗体とのＩＬ−１５のコンジュゲーションが活性の損失を誘導することを意味する。さらに、この損失は２つの部分の間のリンカーの非存在下で、より重要である。この活性の損失はβγ状態において、より顕著であることが示される。

免疫サイトカインの結合活性
抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化ＩＣＫの特異的結合を、それぞれ腫瘍細胞ＲａｊｉおよびＩＭＲ３２でフローサイトメトリーにより評価した。エフェクター細胞においてＩＬ−１５受容体に結合するＩＣＫの能力をＫｉｔ２２５で試験した。標的細胞でコーティングしたＩＣＫは、ＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂ（ＰＮ ＩＭ０５５０、ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）、またはＰＥ−ストレプトアビジン（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ）に結合したビオチン化マウス抗ＩＬ１５抗体（ＢＡＭ２４７、Ｒ＆Ｄ ＳＹＳＴＥＭ）と共に表した。標的細胞（１×１０^５）を、４℃にて１時間、各ＩＣＫと共にインキュベートし、洗浄し、次いで４℃にて１時間、ＰＥコンジュゲートと共にインキュベートした。洗浄した細胞を最後にＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲ（ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）で分析した。

図３は、ＣＤ２０を発現するＲａｊｉ細胞およびＧＤ２Ｏ−アセチル化を発現するＩＭＲ３２細胞におけるＩＣＫ抗ＣＤ２０（ｃ２Ｂ８−ｌ２２−ＩＬ１５）および抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化（ｃ８Ｂ６−ＩＬ１５およびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＩＬ１５）のフローサイトメトリーの評価を示す。最初に細胞をＩＣＫとインキュベートし、次いで抗ＣＤ−２０についてＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂと、または抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２についてビオチン化抗ＩＬ１５＋ＰＥコンジュゲートストレプトアビジンとそれぞれインキュベートした。最後に、試料をＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲで分析した。ＩＣＫは抗ＣＤ２０Ｍａｂリツキシマブ（ＭＡＢＴＨＥＲＡ、ＲＯＣＨＥ）とＲａｊｉ細胞において比較した。

図４は、ＩＬ１５Ｒを発現するＫｉｔ２２５細胞におけるＩＣＫ抗ＣＤ２０（ｃ２Ｂ８−ｌ２２−ＩＬ１５）および抗ＧＤ２Ｏアセチル化（ｃ８Ｂ６−ＩＬ１５およびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＩＬ１５）のフローサイトメトリーの評価を示す。最初に細胞をＩＣＫとインキュベートし、次いでＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂとインキュベートした。最後に試料をＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲで分析した。ＩＣＫを抗ＣＤ２０ Ｍａｂリツキシマブ（ＭＡＢＴＨＥＲＡ、ＲＯＣＨＥ）と比較した。

その結果は、異なる免疫サイトカインがＩＬ−１５受容体およびまた、それらのそれぞれの腫瘍抗原標的に結合することを示す。

したがって、これらの免疫サイトカインにおけるインターロイキン１５活性の損失は、その特異的受容体におけるインターロイキン１５の結合の損失の結果ではない。それにも関わらず、この存在する結合は、正常な細胞増殖を誘導することを可能にしないように見える。

ＲＬＩに基づいた免疫サイトカインの構築
抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化ＲＬＩ免疫サイトカインの構築
抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインを、ＩＬ１５ホモサピエンス（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）配列をＲＬＩ２配列（配列番号１７）に置き換えたことを除いて以前のように構築した。

免疫サイトカインの産生および精製
免疫サイトカインの産生および精製は、１ラウンドのプロテインＡセファロース精製の後にのみ、これらの免疫サイトカインを、良好な収率および良好な純度（すなわち９０％超）で得たことを除いて以前のように実施した。

免疫サイトカインの結合活性
抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化ＩＣＫ ＲＬＩの特異的結合を、腫瘍細胞Ｒａｊｉ、ＷＭ２６６．４およびＩＭＲ３２においてフローサイトメトリーにより評価した。エフェクター細胞においてＩＬ−１５受容体に結合するＩＣＫ ＲＬＩの能力をＫｉｔ２２５で試験した。標的細胞でコーティングしたＩＣＫ ＲＬＩは、ＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂ（ＰＮＩＭ０５５０ ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）、またはＰＥ−ストレプトアビジン（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ）に結合したビオチン化マウス抗ＩＬ−１５抗体（ＢＡＭ２４７、Ｒ＆Ｄ ＳＹＳＴＥＭ）を有する細胞を表した。標的細胞（１×１０^５）を、４℃にて１時間、各ＩＣＫとインキュベートし、洗浄し、次いで４℃にて１時間、ＰＥコンジュゲートとインキュベートした。洗浄した細胞を最後にＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲ（ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）で分析した。

図５は、ＣＤ２０を発現するＲａｊｉ細胞ならびにＧＤ２Ｏ−アセチル化を発現するＷＭ２６６．４およびＩＭＲ３２細胞におけるＩＣＫ ｃ２Ｂ８−ＲＬＩ、ｃ８Ｂ６−ＲＬＩおよびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＲＬＩのフローサイトメトリーの評価を示す。細胞を最初にＩＣＫ ＲＬＩとインキュベートし、次いで抗ＣＤ２０についてＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂと、または抗ＣＤ２０および抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化についてビオチン化抗ＩＬ１５＋ＰＥコンジュゲートストレプトアビジンとそれぞれインキュベートした。最後にＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲで試料を分析した。ＩＣＫ ＲＬＩを、抗ＣＤ２０Ｍａｂリツキシマブ（ＭＡＢＴＨＥＲＡ、ＲＯＣＨＥ）とＲａｊｉ細胞において比較した。

図６は、ＩＬ１５Ｒαを発現するＫｉｔ２２５細胞におけるＩＣＫ ＲＬＩ抗ＣＤ２０（ｃ２Ｂ８−ＲＬＩ）および抗ＧＤ２Ｏ−アセチル化（ｃ８Ｂ６−ＲＬＩおよびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＲＬＩ）のフローサイトメトリーの評価を示す。細胞を最初にＩＣＫ ＲＬＩとインキュベートし、次いでＰＥコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ ｍＡｂとインキュベートした。最後に、試料をＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲで分析した。

その結果は、本発明の免疫サイトカインがＩＬ−１５受容体、およびまた、それらのそれぞれの腫瘍抗原標的に結合することを示す。

免疫サイトカインの増殖活性
新たに得られた免疫サイトカインのインターロイキン−１５増殖活性を試験した。

図７は、増加させた濃度のＲＬＩ（■）、ｒＩＬ−１５（◆）、ｃ８Ｂ６−ＲＬＩ（△）、およびｃ８Ｂ６−ｌ２２−ＲＬＩ（○）と培養したＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

図８は、増加させた濃度のＲＬＩ（■）、ｒＩＬ−１５（◆）およびｃ２Ｂ８−ＲＬＩ（△）と培養した３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

その結果は、ＩＬ−１５の生物活性が、ＩＬ１５免疫サイトカインにも関わらず、ＲＬＩ由来の免疫サイトカインに関して保存されることを示し、このことは、モノクローナル抗体とのＲＬＩのコンジュゲーションが驚くべきことにこのＩＬ−１５活性の保存を可能にすることを意味する。さらに、この興味のある効果はＲＬＩとモノクローナル抗体との間の任意の第２のリンカーを必要としない。驚くべきことに、ＲＬＩ由来の免疫サイトカインが、βγ状態の遊離ＩＬ−１５と比較して生物活性の顕著な増加（約１０〜１００倍の増加）を示すことは留意されるべきである。

抗ＧＤ２−Ｏ−アセチル化免疫サイトカインの抗腫瘍能力
マウスＮＸＳ２神経芽腫細胞株を、標準的な組織培養条件（３７℃、５％ＣＯ２）下でＤＭＥＭ（１０％ＦＣＳ）中で増殖させた。ＧＤ２−Ｏ−Ａｃを発現するＮＸＳ２ ＮＢ細胞株を発生させ、ＬＯＤＥら（Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ．、ｖｏｌ．８９（２１）、ｐ：１５８６−９４、１９９７）により特徴付けた。

８週齢のＡ／ＪＯｌａＨｓｄマウスはＨＡＲＬＡＮ研究所から購入した。マウスを、フランスの実験動物管理公認協会（Ｆｒｅｎｃｈ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ａｃｃｒｅｄｉｔａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）により承認されている、Ｉｎｓｅｒｍ Ｕ８９２の動物施設に収容し、Ｉｎｓｅｒｍ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅおよびフランス農務省（Ｆｒｅｎｃｈ Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ）の規制および基準に従って維持する。

実験用の肝転移は２００μｌのＤＭＥＭ（ｐＨ７．４）中の１×１０^５個のＮＸＳ２ＮＢ腫瘍細胞の尾静脈注射により誘導した。腫瘍細胞接種の１日後に処置を開始し、１、４、７および１１日目に８０ｐｍｏｌのｃ８Ｂ６−ＲＬＩ２またはｃ８Ｂ６の４回のｉ．ｐ．注射を実施した。移植の２５日後にマウスを屠殺し、負荷された肝臓腫瘍を湿潤肝臓の重量により評価した。

図９はＮＸＳ２肝転移に対するｃ８Ｂ６−ＲＬＩ２の効果を示す。ｃ８Ｂ６（１２μｇ）またはｃ８Ｂ６−ＲＬＩ（１６μｇ）を、１、４、７および１１日目にｉ．ｐ．投与した。左：グラフは各群（ｎ＝５）の平均；バーはＳＥＭを表す。右：肝臓の写真を表し、矢印はいくつかの転移を示す。

その結果は、ＩＣＫを与えたマウスが肝転移を有さないことを示す。したがって、およびｃ８Ｂ６と対照的に、ＩＣＫはＮＸＳ２肝転移の発生を根絶することができ、このことは、モノクローナル抗体に対するＲＬＩコンジュゲーションがその抗腫瘍能力を劇的に増加させることを意味する。

Ｒａｊｉモデルにおける抗ＣＤ２０−ＲＬＩ２の抗腫瘍能力
ヒトＲａｊｉＢ細胞を、１０％ウシ胎仔血清、２ｍＭのｌ−グルタミンを補足したＲＰＭＩＩ６４０培地中で培養した。

８週齢のＳＣＩＤ ＣＢ−１７マウスは、ＣＨＡＲＬＥＳ ＲＩＶＥＲ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ研究所から購入した。マウスは、マイクロアイソレータ装置のオートクレーブ処理したケージを使用して別の施設における特定の病原体を含まない条件下に維持し、放射線照射した固形食物および滅菌水を与えた。

接種のために、Ｒａｊｉ細胞をそれらの対数期で収集し、洗浄し、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中の２．５×１０^６個の細胞／０．１ｍｌにて再懸濁し、その後、マウスに静脈内注射し、続いて、移植後３週間の間、（５日目に開始して）１週間に３回、免疫サイトカインによりｉｐ処置した。半分の用量を与えた「免疫サイトカイン」および「リツキシマブ＋ＲＬＩ」の群を除いて、マウスを等モル量で処置した。後肢まひの存在についてマウスを毎日モニターし、その場合、マウスを屠殺し、死として記録した。

図１０は、Ｒａｊｉ細胞をｉｖ注射し、ＰＢＳ（■）；ＲＬＩ（▲；２μｇ）；リツキシマブ（◆；１２μｇ）；リツキシマブ＋ＲＬＩ（●；６μｇ＋１μｇ）、抗ＣＤ２０−ＲＬＩ（▼；８μｇ）を用いてＪ５−Ｊ７−Ｊ９；Ｊ１２−Ｊ１４−Ｊ１６；Ｊ１９−Ｊ２１−Ｊ２３で処置したＣＢ１７ＳＣＩＤマウス（ｎ＝５）のＫａｐｌａｎ−Ｍｅｉｅｒ生存分析を示す。

その結果は、ＲＬＩまたはリツキシマブで処置したＲａｊｉマウスで得られた生存率が類似しており、ＰＢＳ対照と比べて、２０〜２７日、および２８日のそれぞれに腫瘍を保有しているマウスの生存率が５０％に拡大したことを示す。

その結果はさらに、「リツキシマブ＋ＲＬＩ」群について腫瘍を保有しているマウスの生存率の半分の増加を示し、この増加はＲＬＩ群において得られたものと顕著に異なる（Ｐ＜０．０１またはそれ未満）。

最後に、および驚くべきことに、その結果は、抗ＣＤ２０免疫サイトカインによる処置により、実験の終わり（５０日）までマウスが死なず、腫瘍発生を全体的に無効にすることを示す。

３）さらなる免疫サイトカインの構築
抗ＨＥＲ２Ｎｅｕ（完全ＩｇＧおよびＳｃＦｖ）ＲＬＩおよびＩＬ１５免疫サイトカインの構築
抗ＨＥＲ２マウス４Ｄ５ＩｇＧ軽鎖、抗ＨＥＲ２マウスＩｇＧ４Ｄ５重鎖および抗ＨＥＲ２ｓｃＦｖをコードする配列は親切にも、Ｄｒ ＤＯＮＤＡ（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ Ｌａｕｓａｎｎｅ、スイス）により提供された。抗ＨＥＲ２Ｎｅｕ ＩＬ１５−およびＲＬＩ−免疫サイトカインは、抗ＨＥＲ２Ｎｅｕ抗体の抗ＨＥＲ２Ｎｅｕ軽鎖（配列番号１８）および重鎖（配列番号１９）に基づいて以前のように構築した。これらの構築物に関して、キメラＩｇＧ重鎖配列をコードする配列を有するフレーム内のベータ２ミクログロブリンのリーダー配列をコードする配列は、ＩＬ１５（配列番号２０および２１のそれぞれ）およびＲＬＩ（配列番号２２および２３のそれぞれ）に対して２２アミノ酸（配列番号１６）のリンカーを有するまたは有さない３’末端において融合するように設計した。

ＩＬ１５（配列番号２４および２５のそれぞれ）およびＲＬＩ（配列番号２６および２７のそれぞれ）に対して２２アミノ酸のリンカーを有するまたは有さない３’末端において融合された抗ＨＥＲ２Ｎｅｕ ＳｃＦｖ断片をコードする配列を有するフレーム内にベータ２ミクログロブリンのリーダー配列をコードする配列に対応する構築物をさらに設計し、生成した。これらのヌクレオチド配列をＧＥＮＥＡＲＴにより合成し、ｐＣＲ３（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）プラスミド内にサブクローニングした。

これらの化合物の生物および結合活性を試験する。

インターロイキン１５に基づいた免疫サイトカインの構築
プラスミドＤＮＡ調製およびトランスフェクション試薬
４０ｋＤａの線形ＰＥＩはＰＯＬＹＳＣＩＥＮＣＥから得た。１ｍｇ／ｍＬのストック溶液を、加熱しながら水中にＰＥＩを溶解し、ＮａＯＨにより中和し、０．２２μｍフィルタを通す濾過により滅菌することにより調製した。溶液ストックをアリコートし、−２０℃に保存した。

トランスフェクションのためのプラスミドＤＮＡを、製造業者のプロトコル（ＭＡＣＨＥＲＥＹ−ＮＡＧＥＬ）に従ってプラスミド精製キットを使用し、０．２２μｍフィルタを通す濾過により滅菌して精製した。

免疫サイトカインの産生および精製
１−一過的トランスフェクション：
親切にもＤｒ．ＳＣＨＮＥＩＤＥＲ（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ Ｌａｕｓａｎｎｅ、スイス）により提供されたＨＥＫ２９３Ｔ細胞を、３７℃および５％ＣＯ_２にてＴ１７５ｃｍ２フラスコ中のＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ１０％ＳＶＦ中に播種した。トランスフェクションの日に、ＤＮＡプラスミドおよびＰＥＩの複合体を滅菌ＮａＣｌ１５０ｍＭ中に調製した。ＮａＣｌ（１．２５ｍｇ／Ｌの培養体積）中で希釈したプラスミドＤＮＡを、ＮａＣｌ（１２．５ｍｇ／Ｌの培養体積）中で希釈したＰＥＩと混合し、室温にて１０分間インキュベートし、その後、細胞培養物に加えた。抗ＨＥＲ２ＩｇＧ−ＲＬＩまたは−ＩＬ１５免疫サイトカインについて、１：２の比のＤＮＡプラスミド（重鎖：軽鎖）を使用した。次いで細胞を３７℃にて４時間培養した。この時間の後、培地を除去し、ＳＶＦを含まない新たなＤＭＥＮを加えた。トランスフェクションの５日後に上清を回収した。

２−上清精製：
回収した上清を、最初に１０００ｒｐｍにて５分間、次に４℃にて１５分間３０００ｒｐｍで遠心分離し、製造業者により推奨されているように２０ｍＭのリン酸ナトリウムｐＨ８〜９に調整し、０．２２μｍフィルタを通して濾過した。馴化培地を、製造業者の指示書に従ってプロテインＡカラム（ＧＥ）を使用してアフィニティクロマトグラフィーにより精製した。精製したタンパク質を、ＩｇＧ−ＩＣＫについて５０ｋＤａまたはｓｃＦｖ−ＩＣＫについて１０ｋＤａのＡＭＩＣＯＮユニット（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ）で濃縮した。この工程の間、溶出緩衝液をＰＢＳに置き換えた。タンパク質を最後にＥＬＩＳＡによりアッセイし、吸光度を２８０ｎｍで測定した。純度を電気泳動により評価した。

免疫サイトカインの結合活性
抗ＨＥＲ２ＩｇＧ−ＩＣＫまたはｓｃＦｖ−ＩＣＫの特異的結合を、抗ＩＬ１５抗体を使用してＨＥＲ２陽性細胞ＳＫ−ＢＲ−３においてフローサイトメトリーにより評価した。エフェクター細胞においてＩＬ−１５受容体に結合するＩＣＫの能力をＫｉｔ２２５で試験した。標的細胞でコーティングしたＩＣＫは、ＦＩＴＣコンジュゲートヤギ抗マウスＩｇＧ ｍＡｂ（ＳＩＧＭＡ−ＡＮＤＲＩＣＨ）またはＦＩＴＣコンジュゲートマウス抗ＩＬ１５抗体（Ｒ＆Ｄ ＳＹＳＴＥＭ）と共に表した。標的細胞（１×１０^５）を４℃にて１時間、各ＩＣＫとインキュベートし、洗浄し、次いで４℃にて１時間、ＦＩＴＣコンジュゲートとインキュベートした。洗浄した細胞を最後にＦＡＣＳＣＡＬＩＢＵＲ（ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）で分析した。

図３は、ＨＥＲ２を発現するＳＫＢＲ３細胞において抗ＨＥＲ２（トラスツズマブ−ＩＬ１５およびトラスツズマブ−ｌ２２−ＩＬ１５）のフローサイトメトリーの評価を示す。

図５は、ＨＥＲ２を発現するＳＫＢＲ３細胞におけるＩＣＫトラスツズマブ−ＲＬＩのフローサイトメトリーの評価を示す。抗ＨＥＲ２ ＩＣＫを、トラスツズマブ（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）、Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）とＳＫＢＲ３細胞において比較した。

その結果は関連ＴＡＡを発現する腫瘍細胞株をコーティングするＩＣＫトラスツズマブ−ＲＬＩの能力を示した。

免疫サイトカインの増殖活性
ＩＬ−１５およびトラスツズマブまたは抗ＨＥＲ２ ｓｃＦｖ断片の融合物のインターロイキン−１５増殖活性を、以前に記載された方法に従って［^３Ｈ］チミジン組み込みを測定することによってＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞において試験した。

図１１は、増加させた濃度のトラスツズマブ−ｌ２２−ＩＬ−１５（○）、トラスツズマブ−ＩＬ−１５（△）、およびｒＩＬ−１５（■）と培養したＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

図１２は、増加させた濃度のトラスツズマブ−ＲＬＩ（△）、ＲＬＩ（■）、およびｒＩＬ−１５（◆）と培養したＫｉｔ２２５および３２Ｄβ細胞による［^３Ｈ］チミジン組み込みを示す。

その結果は、ＩＬ−１５の生物活性が、免疫サイトカインに関してαβγ細胞において劇的に減少したことを示し、このことは、モノクローナル抗体とのＩＬ−１５のコンジュゲーションが活性の損失を誘導することを意味する。さらに、この損失は、２つの部分の間のリンカーの非存在下において、より重要である。βγ細胞において、コンジュゲーションはリンカーを有するまたは有さないＩＬ−１５の生物活性を完全に無効にする。

ＩＬ１５免疫サイトカインに関わらず、ＲＬＩ由来の免疫サイトカインに関して、その結果はＩＬ−１５の生物活性が保存されることを示し、モノクローナル抗体とのＲＬＩのコンジュゲーションが驚くべきことにこのＩＬ−１５活性の保存を可能にすることを意味する。さらに、この興味のある効果はＲＬＩとモノクローナル抗体との間の任意の第２のリンカーを必要としない。

さらに驚くべきことに、その結果は、ＲＬＩ由来のトラスツズマブ免疫サイトカインが、βγ状態における遊離ＩＬ−１５と比較して生物活性の顕著な増加（約１０〜１００倍の増加）を提示することを示す。

その結果はさらに、ＩＬ１５免疫サイトカインに関わらず、ＲＬＩ由来のｓｃＦｖ免疫サイトカインに関して、ＩＬ−１５の生物活性もまた、保存されることを示し、このことは、ｓｃＦｖ断片とのＲＬＩのコンジュゲーションが驚くべきことにこのＩＬ−１５活性の保存を可能にすることを意味する（データは示さず）。再び、この興味のある効果はＲＬＩとｓｃＦｖ断片との間の任意の第２のリンカーを必要としない（データは示さず）。

Claims (7)

1. 配列番号１７で表されるＲＬＩアミノ酸配列からなるコンジュゲート。
2. 請求項１に記載のコンジュゲートをコードする核酸。
3. 請求項２に記載の核酸を含むベクター。
4. 請求項２に記載の核酸又は請求項３に記載のベクターを用いて遺伝子操作された宿主細胞。
5. 請求項１に記載のコンジュゲート、請求項２に記載の核酸又は請求項３に記載のベクターと、薬学的に許容可能な担体とを含む医薬組成物。
6. 前記医薬組成物が、被験体における癌を治療するためである、請求項５に記載の医薬組成物。
7. 薬学的に許容可能な前記担体がビヒクルである、請求項５に記載の医薬組成物。