[go: up one dir, main page]

JP6054051B2 - 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法 - Google Patents

高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法 Download PDF

Info

Publication number
JP6054051B2
JP6054051B2 JP2012090423A JP2012090423A JP6054051B2 JP 6054051 B2 JP6054051 B2 JP 6054051B2 JP 2012090423 A JP2012090423 A JP 2012090423A JP 2012090423 A JP2012090423 A JP 2012090423A JP 6054051 B2 JP6054051 B2 JP 6054051B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
hdl
apoe
cholesterol
surfactant
concentration
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2012090423A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2013215169A (ja
Inventor
康樹 伊藤
康樹 伊藤
仁志 千葉
仁志 千葉
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hokkaido University NUC
Denka Seiken Co Ltd
Original Assignee
Hokkaido University NUC
Denka Seiken Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hokkaido University NUC, Denka Seiken Co Ltd filed Critical Hokkaido University NUC
Priority to JP2012090423A priority Critical patent/JP6054051B2/ja
Priority to US14/391,897 priority patent/US9890412B2/en
Priority to PCT/JP2013/060778 priority patent/WO2013154119A1/ja
Priority to EP13775869.4A priority patent/EP2837693B1/en
Priority to TW102112896A priority patent/TWI597364B/zh
Publication of JP2013215169A publication Critical patent/JP2013215169A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP6054051B2 publication Critical patent/JP6054051B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/92—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving lipids, e.g. cholesterol, lipoproteins, or their receptors
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/775—Apolipopeptides

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

本発明は、高密度リポ蛋白（HDL）中のコレステロール（-C）の亜分画定量方法に関する。
HDLは、動脈硬化壁を含めた各組織からコレステロールを受け取るので細胞内に蓄積したコレステロールの除去作用に関係し、冠動脈硬化症をはじめとする各種動脈硬化症の危険予防因子であり、その血中レベルは動脈硬化性疾患の発症予知に有用な指針となることが知られている。
HDLはアポタンパクとよばれるタンパク質と、リン脂質、コレステロール、中性脂肪といった脂質成分の複合体であるが、その成分の一つであるアポリポタンパク質Ｅ（ApoE）の含量比率の違いからApoE-Containing HDLとApoE deficient HDLの亜分画に分類することが出来る。ApoE-Containing HDLは、コレステロール引き抜き能が強く、抗血小板作用もあり、HDLの中でも超善玉リポタンパクとして注目されている。最近では、スタチンに次ぐ脂質異常症治療薬として、HDL-Cを上昇させるコレステロールエステル輸送蛋白（CETP）阻害薬に期待が寄せられているCETP阻害薬はHDLのうち特にApoE-Containing HDLを主に増加させることが知られている。
HDL-Cの測定方法としては、例えば超遠心分離によってHDLを他のリポ蛋白と分離した後、コレステロール測定に供する方法や、電気泳動によって分離した後に脂質の染色を行なってその発色強度を測定する方法等が知られている。しかしながら、これらの方法は、いずれも操作が煩雑であり、多数の検体を処理できない等の問題があり、日常的にはほとんど用いられていない。
HDL-Cの測定方法として、検体に沈殿剤を加えてHDL以外のリポ蛋白質を凝集させ、これを遠心分離によって取り除き、分離されたHDLのみを含む上清中のコレステロールを測定する方法がある。この方法では使用する沈殿剤の種類によってHDLの亜分画に対する反応性が異なることが知られており、リンタングステン酸−マグネシウムやデキストラン硫酸−マグネシウム、ヘパリン−カルシウムを沈殿剤として用いた方法ではApoE-Containing HDLはVLDL、LDL等のリポタンパクと共に凝集し、遠心分離により沈殿分画として取り除かれるため、HDL分画として測定できない。一方、ヘパリン−マンガンやポリエチレングリコール（PEG）を用いた方法ではApoE-Containing HDLは凝集せずHDLとして測定される。いずれにしろこの沈殿剤を使用してHDLを分離し定量する方法は、超遠心法や電気泳動法に比較して簡便であるものの、沈殿剤を加えて分離する操作を含むため、簡便性で満足できるものでなく、また比較的多量の検体量を必要とする。
近年ではHDL-Cを定量する簡便な方法として、沈殿剤を用いた前処理操作なく、自動分析装置でHDL-Cを定量する方法が知られており、コレステロールエステラーゼやコレステロールオキシダーゼ酵素を化学修飾し、シクロデキストリン等の包接化合物存在下においてHDL-Cを特異的に捕える方法（特許文献１を参照）やHDL以外のリポ蛋白と凝集体や複合体を形成させ、その後にHDL中のコレステロールを酵素的反応で捕える方法（特許文献２及び３を参照）、HDLに特異的に作用するHLBが１３〜１４の界面活性剤を用いる方法（特許文献４を参照）等が知られている。
特開平7-301636号公報 特開平8-131197号公報 特開平8-201393号公報 WO98/26090
以上に述べた方法はHDL−コレステロール（HDL-C）（以下、コレステロールを-Cで表す場合がある）を測定できるものの、HDL亜分画に対する反応性が異なり、HDLを亜分画に分けて考えた場合、ApoE deficient HDLコレステロール（ApoE deficient HDL-C）、ApoE-Containing HDLコレステロール（ApoE-Containing HDL-C）をそれぞれ部分的にも、又はほとんど測定できず、ApoE deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-Cを分別して定量できないという問題があった。
本発明の目的は、煩雑な分画分離操作を必要とせず、全HDL-CやApoE-Containing HDL-C、ApoE deficient HDL-C等のHDL亜分画中のコレステロールを別々又は同時に定量する方法を提供することである。
本願発明者らは、鋭意研究の結果、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤の濃度により、HDL亜分画であるApoE deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-Cの反応性が異なり、ApoE deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-Cに反応するこれらの界面活性剤の濃度を調節することにより、ApoE deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-C、総HDL-Cをそれぞれ別々又は同時に定量できることを見出した。また、これらの界面活性剤の濃度を調節することによりApoE-Containing HDL-C、ApoE deficient HDL-C、を分別して別々に測定することができ、さらに全HDL-C（ApoE-Containing HDL-C及びApoE deficient HDL-Cを含む）も測定することができる。また、3つの試薬を用いる汎用自動分析装置を用いて3工程で測定を行う場合、第１工程ではHDL以外のリポ蛋白中コレステロールを反応系外に導き、続く第２工程で用いる第２試薬中、及び第３工程で用いる第３試薬中においてこれらの界面活性剤濃度の条件を変更することにより、ApoE-Containing HDL-C、ApoE deficient HDL-C及び全HDL-Cを単独で、又はこれらの複数、すなわち２種又は３種を同時に測定できることを見出した。
さらに、第１工程と第２工程の条件を合わせた第１試薬中でApoE-Containing HDL以外のリポ蛋白中コレステロールを反応系外に導き、続く第２試薬にてApoE-Containing HDL-Cを測定することにより2つの試薬を用いる汎用自動分析装置を用いて2工程でApoE-Containing HDL-Cを測定できることを見出し、本発明を完成した。
このように、本発明の方法により、被検試料中の粒子サイズが大きいApoE-deficient HDL-C及びApoE-ContainingHDL-Cをそれぞれ定量することができ、さらにこれらの亜分画HDL-Cを含む全HDL-Cを定量することができる。
すなわち、本発明は以下の通りである。
[１] 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.05〜0.10％の濃度で加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
[２] 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.15〜0.75％となるように加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-Containing HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
[３] 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.05〜0.10％の濃度で加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量し、ApoE deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量し、次いで、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.15〜0.75％となるように加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-Containing HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
[４] (i) 被検試料中のHDL以外のリポ蛋白中コレステロールを反応系外に導き、(ii) [１]の方法によりApoE deficient HDL中のコレステロールを分別定量し、(iii) さらに[２]の方法によりApoE-Containing HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量することを含むHDL亜分画中のコレステロールを測定する方法。
[５] [１]の方法により得られたApoE deficient HDL中のコレステロールの定量値及び[２]の方法により得られたApoE-Containing HDL中のコレステロールの定量値により総HDL-コレステロールを定量する[１]〜[３]のいずれかの方法。
[６] 汎用の自動分析装置にて１回のサンプリングによりApoE deficient HDL中のコレステロール、ApoE-Containing HDL中のコレステロール、及び総HDL-コレステロールを同時に定量する[１]〜[５]のいずれかの方法。
[７] 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.05〜0.10％の濃度で加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を消去することによりApoE-Containing HDL以外のHDL中のコレステロールを反応系外に導き、次いでポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.15〜0.75％となるように加え、コレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによるApoE-Containing HDL中のコレステロールを定量するApoE-Containing HDL中のコレステロールの定量方法。
本発明の方法においては、HDLに反応する界面活性剤を低濃度（終濃度0.05〜0.10％）で用いることにより、HDLの亜分画であるApoE-deficient HDLのみを反応させ、 ApoE-deficient HDL-Cを測定し、第２工程ではApoE-Containing HDL-Cの反応性が高い濃度範囲、すなわち、界面活性剤を高濃度（終濃度0.15〜0.75％）で用いることにより、HDLの亜分画であるApoE-Containing HDLのみを反応させることにより、ApoE-Containing HDL-C及びApoE deficient-Cを定了する本発明の方法により、被検試料中の粒子サイズが大きいApoE-deficient HDL-C及びApoE-ContainingHDL-Cをそれぞれ定量することができ、さらにこれらの亜分画HDL-Cを含む全HDL-Cを定量することができる。taining HDL-Cのみを測定することができる。
HDL試料に対して、本発明の実施例１の方法により測定した場合のPT-DS-Mg法に対する差（％バイアス）を示す図である。 HDL試料に対して、本発明の実施例2の方法により測定した場合の13％PEG沈殿法に対する差（％バイアス）を示す図である。 HDL試料に対して、本発明の実施例3の方法により測定した場合の13％PEG沈殿法（a）、PT-DS-Mg沈殿法（b）、13％PEG沈殿法とPT-DS-Mgの差（c）に対する相関性を示す図である。 HDL試料に対して、本発明の実施例４の方法により測定した場合の13％PEG沈殿法とPT-DS-Mgの差に対する相関性を示す図である。
以下、本発明について詳細に説明する。
リポ蛋白中に含まれるコレステロールとしては、エステル型コレステロール（コレステロールエステル）及び遊離型コレステロールがある。本明細書において、単に「コレステロール」という場合には、これらの両者を包含する。
リポ蛋白は大きくVLDL、LDL及びHDLの分画に分けられる。このうち、HDLはApoEの含量比率の違いからApoE-Containing HDLとApoE deficient HDLの亜分画に分類することが出来る。通常、ApoE-Containing HDLはHDL中にApoEを含有したもの、ApoE deficient HDLはApoEを含有しないものを示す。HDLをApoE-Containing HDLとApoE deficient HDLに分けているのは、これらのリポ蛋白では動脈硬化に対する作用機序が異なるので、分別測定する必要があったからである。すなわち、ApoE-Containing HDLはコレステロール引き抜き能が強く、抗血小板作用もあり、HDLの中でも善玉として作用している。また、脂質異常症治療薬としてHDL-Cを上昇させるCETP阻害薬でも主にApoE-Containing HDLが上昇することが知られている。また、ApoEが存在するか又は含有量が多いHDLをApoE-rich HDLと呼ぶことがあるが、これもApoE-containing HDLに含まれる。HDL内部に存在するApoＥ含有量の分布は連続しているので、リポ蛋白中のApoE含有比により、明確にApoE-Containing HDLとApoE deficient HDLを区別できるものではないが、後述のように例えばApoE含有量を指標にクロマトグラフィー等によりHDLを分画した場合、特定のApoE含量を定め、その値によりApoE-Containing HDLとApoE-deficient HDLを区別すればよい。
またHDLは密度の違いによってHDL２とHDL３に分類することができ、それぞれについてApoE 含有量の違う、ApoE-Containing HDL２、及びApoE-Containing HDL３が存在する。また粒子サイズの大きい大型のHDLには通常存在するアポリポタンパクＡ１（ApoA1）が欠損しており、ApoEが多数存在するものがあるが、これもApoE-Containing HDLに含まれる。リポ蛋白粒子サイズの直径は、報告者により異なるがVLDLが30nm〜80nm（30nm〜75nm）で、LDLが22nm〜28nm(19nm〜30nm)、HDLが直径７〜10nmである。比重は、VLDLが1.006以下、LDLが1.019〜1.063、HDLが1.063〜1.21である。
本発明の方法においては、ApoE containing HDL中のコレステロール、ApoE-deficient HDL中のコレステロール、及びApoE containing HDLとApoE-deficient HDLを含む全HDL中のコレステロールの測定を目的とする。
本発明の方法において測定に供される被検試料としては、HDL、LDL、VLDL及びCM等のリポ蛋白を含む可能性がある試料であればいずれのものでもよく、例えば、血清、血漿等の体液やその希釈物を挙げることができるがこれらに限定されるものではない。
本発明の方法は通常、自動分析装置を用いて行われる。本発明の方法は、第１工程及び第２工程の２工程、又は第１工程、第２工程及び第3工程の３工程で行うことができる。２工程からなる方法及び３工程からなる方法として以下の方法が例示され、それぞれの方法の各工程で以下の反応が起こる。
（１） 第１工程でApoE-deficient HDL-Cを測定し、第２工程でApoE-Containing HDL-Cを測定する２工程からなる方法。
（２） 第１工程でHDL以外のリポ蛋白（CM、VLDL、LDL）を反応系外に導き、第２工程でApoE-deficient HDL-Cを測定し、第３工程でApoE-Containing HDL-Cを測定する３工程からなる方法。（２）の方法においては、第２工程及び第３工程より総HDL-Cを測定する。該方法は、後記の実施例３の方法である。
（３） 第１工程でApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白（CM、VLDL、LDL、ApoE-deficient HDL-C）を反応系外に導き、第２工程でApoE-Containing HDL-Cを測定する２工程からなる方法。該方法は後記の実施例４の方法である。
（１）の２工程からなる方法の詳細は以下のとおりである。
第１工程で界面活性剤をApoE-deficient HDLに反応性が高い濃度範囲、すなわち、界面活性剤を低濃度（終濃度0.05〜0.10％）で用いApoE-deficient HDL-Cを測定し、第２工程ではApoE-Containing HDLの反応性が高い濃度範囲、すなわち、界面活性剤を高濃度（終濃度0.15〜0.75％）で用いApoE-Containing HDL-Cを測定する。第１工程でApoE deficient HDL-Cの反応が起こり、第２工程でApoE-Containing HDL-Cの反応が起こる。第１工程での吸光度増加分からApoE deficient HDL-C濃度を定量することができ、また、第２工程での吸光度増加分からApoE-Containing HDL-C濃度を定量することができ、さらに第１工程及び第２工程での総吸光度増加分から総HDL-C濃度を定量することができる。
本方法では、試料中にHDL以外のリポ蛋白が存在していても、ApoE deficient HDL-C濃度及びApoE-Containing HDL-C濃度を定量することができ、さらに総HDL-C濃度を定量することができる。
ApoE deficient HDL-C濃度及びApoE-Containing HDL-C濃度をより特異的に測定するために、以下の（２）や（３）の方法のように、あらかじめHDL以外のリポ蛋白を反応系外に導くことができる。
（２）の３工程からなる方法の詳細は以下のとおりである。
第１工程ではCM、VLDL、LDL等の測定対象外のリポ蛋白を反応系外へ導く。その結果、第２工程以降の工程ではApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの亜分画HDLを含むHDLが反応することになる。すなわち、コレステロールエステラーゼを被検試料と反応させ、生じたコレステロールをコレステロールオキシダーゼ又はコレステロールデヒドロゲナーゼ等のコレステロール反応酵素の存在下で反応させ反応系外へ導く。この際、反応系外へ導こうとするリポ蛋白に反応性を有する特定の界面活性剤の存在下で反応を起こさせてもよい。
ここで、リポ蛋白のコレステロールを反応系外に導くとはCM、VLDL及びLDL並びに測定対象以外の亜分画HDLなどのリポ蛋白に含まれるコレステロールが、測定対象であるHDL-C又は亜分画HDL-Cの定量に影響を及ぼさないように、上記リポ蛋白に含まれるコレステロールを消去、凝集させたり、後の工程で反応しないよう阻害すること等を言う。
消去とは被検試料中のリポ蛋白コレステロールを分解し、その分解物が次の工程において検出されないようにすることを意味する。リポ蛋白コレステロールを消去するための方法としては、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ発生した過酸化水素を、カタラーゼを用いて水と酸素に分解する方法が挙げられる。また、及びペルオキシダーゼを用いて水素供与体と発生した過酸化水素を反応させ無色キノンに転化してもよいが、これらに限定されるものではない。
また、リポ蛋白がブロックされ酵素と反応しない場合もあり、この場合もリポ蛋白のコレステロールを反応系外に導くという。ここで、ブロックとは、界面活性剤等がリポ蛋白に結合（保護）し酵素のリポ蛋白への反応が起こらなくなることをいう。例えば、（２）の方法において、LDLは第１工程から第３工程のいずれの工程でも反応しない。この場合もLDLが反応系外に導かれたという。
第２工程では、測定対象であるApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLを含むHDLに反応性を有する界面活性剤の存在下でコレステロールエステラーゼを被検試料と反応させる。生じたコレステロールをコレステロールオキシダーゼ又はコレステロールデヒドロゲナーゼ等のコレステロール反応酵素の存在下で反応させ、発生した過酸化水素をキノン色素に転化させキノン色素を吸光度測定により測定することにより測定対象を酵素的に定量することができる。
用いる界面活性剤の濃度により、界面活性剤のApoE deficient HDL及びApoE-Containing HDLに対する反応性は異なる。例えば、実施例１に示すように、界面活性剤が低濃度（終濃度0.05〜0.10％）の場合、ApoE deficient HDL に対する反応性は高いが、ApoE-Containing HDLに対する反応性は低い。一方、界面活性剤濃度が高濃度（0.15〜0.75％）の場合、ApoE deficient HDLだけでなくApoE-Containing HDLも反応を示す。従って、界面活性剤を上記の低濃度の範囲で用いた場合、ApoE deficient HDLのみが反応し、ApoE deficient HDL-Cのみの定量が可能となる。ここで、界面活性剤の終濃度とは、各工程において、その工程で添加する試薬を添加したときの反応系全体における界面活性剤の濃度をいう。例えば、上記の（２）の方法において、第１工程で180μlの第１試薬と数μlの試料を添加し、第２工程で60μlの第２試薬を添加し、第３工程で６０μlの第３試薬を添加する場合であって、第２試薬にＤ１％の界面活性剤が含まれ、第３試薬にＤ２％の界面活性剤が含まれている場合、第２試薬を添加したときの第２工程における界面活性剤終濃度は、（Ｄ１×1/4）％で表すことができ、第３試薬を添加したときの第３工程における界面活性剤の終濃度は、｛（Ｄ１×1/4）×4/5＋Ｄ２×1/5｝％で表すことができる。また、上記の（３）の方法において、第１工程で180μlの第１試薬と数μlの試料を添加し、第２工程で60μlの第２試薬を添加する場合であって、第１試薬にＤ３％の界面活性剤が含まれ、第２試薬にＤ４％の界面活性剤が含まれている場合、第１試薬を添加したときの第１工程における界面活性剤終濃度は、Ｄ３％で表すことができ、第２試薬を添加したときの第２工程における界面活性剤の終濃度は、｛（Ｄ３×3/4）+ D4×1/4｝％で表すことができる。
第３工程において、界面活性剤を上記の高濃度の範囲で用いた場合、ApoE-Containing HDLが反応し、ApoE-Containing HDL-Cを定量することができる。この際、第２工程でApoE deficient HDL-Cに対してのみ反応し、ApoE deficient HDL-Cの量に応じて過酸化水素が発生し、キノン色素が生じる。第３工程で高濃度の界面活性剤を用いた場合、ApoE-Containing HDLが反応し、ApoE-Containing HDL-Cの量に応じてさらに過酸化水素が発生し、キノン色素が生じる。第２工程に対して、第３工程で認められる、ApoE-Containing HDL-Cの反応により生じたキノン色素による吸光度の増加分をApoE-Containing HDL-Cとして定量することができる。また第２工程及び第３工程の両工程の界面活性剤とApoE deficient HDL-C及びApoE-Containing HDL-Cとの反応により生じたキノン色素による吸光度の増加分を合算することによりApoE deficient HDL-C及びApoE-Containing HDL-Cを含む総HDL-Cを定量することができる。
このように、ApoE deficient HDL-C及びApoE-Containing HDL-Cを特異的に測定するためにApoE deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-Cを反応させ定量する工程の前に、CM、VLDL、LDL等の測定対象外のリポ蛋白を反応系外へ導く工程を加えることができる。この方法においては、第１工程ではHDL以外のリポ蛋白を反応系外へ導き、第２工程でApoE deficient HDL -Cの反応が起こり、第３工程でApoE-Containing HDL-Cの反応が起こる。第２工程での吸光度増加分からApoE deficient HDL -C濃度を定量することができ、また、第３工程での吸光度増加分からApoE-Containing HDL-C濃度を定量することができ、さらに第２工程及び第３工程での総吸光度増加分から総HDL-C濃度を定量することができる。
本発明では汎用の自動分析装置を用いてそれぞれ第１工程、第２工程、第３工程で異なる組成の試薬を用いる。第１工程、第２工程、第３工程で用いる試薬を第１試薬、第２試薬、第３試薬と呼ぶ。このように３種類の試薬を用いることにより一回の被検試料のサンプリングで、一連の反応を起こさせ、吸光度を測定することによりでApoE deficient HDL -C、ApoE-Containing HDL-C、及び総HDL-C濃度を算出することができる。
汎用の自動分析装置としては、日立7180、TBA200FR、AU640、BM6050等を用いることができる。
（３）の２工程からなる方法の詳細は以下のとおりである。
第１工程では、ApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白中コレステロール（CM、VLDL、LDL、ApoE-deficient HDL-C）を反応系外に導く。上記（２）の方法では、第１工程でCM、VLDL、LDL等の測定対象外のリポ蛋白を反応系外へ導くが、本方法においては、第１工程において、さらに界面活性剤をApoE-deficient HDL-Cに反応性が高い濃度範囲、すなわち、界面活性剤を低濃度（終濃度0.05〜0.10％）で用いればよい。すなわち、本方法においては、ApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白中コレステロールを反応系外に導くことになる。第２工程では、ApoE-Containing HDL-Cを測定する。ApoE-Containing HDL-Cの測定には、（２）の方法と同様に、界面活性剤濃度が高濃度（0.15〜0.75％）で用いればよい。本法においては、第２工程でApoE-Containing HDL-Cの量に応じてキノン色素が生じ、該キノン色素による吸光度を測定することにより、ApoE-Containing HDL-Cを定量することができる。
この反応では第１試薬を第１工程で、第２試薬を第２工程で使用するため、2試薬のみでApoE-Containing HDL-Cを測定することができる。
上記のように、本発明のApoE deficient HDLやApoE-Containing HDLのHDL亜分画のコレステロールを反応させ、測定あるいは反応系外に導く工程では、HDLに反応する界面活性剤を用いる。ApoE deficient HDL-Cを分解し定量する工程では、界面活性剤を低濃度で使用するのが好ましく、その濃度範囲は上記のように終濃度で0.05〜0.10％であり、好ましくは終濃度で0.075〜0.10％である。一方、ApoE-Containing HDL-Cを分解し定量する工程では、界面活性剤を高濃度で使用するのが好ましく、その濃度範囲は上記のように終濃度で0.15〜0.75％であり、好ましくは終濃度で0.15〜0.5％である。
上述の３工程からなる（２）の方法では、HDLに反応する界面活性剤を第２工程では低濃度で用い、第３工程では高濃度で用いればよい。２工程からなる（３）の方法では、HDLに反応する界面活性剤を第１工程では低濃度で用い、第２工程では高濃度で用いればよい。２工程からなる（１）の方法では、第１工程では低濃度で用い、第２工程では高濃度で用いればよい。
本発明の方法においては、ApoE deficient HDL及びApoE-Containing HDLを含む HDLに反応する界面活性剤を用いる。HDLに反応する界面活性剤としては、ApoE-Containing HDL反応率／ApoE deficient HDL反応率比が0.7以上、1.3未満の界面活性剤、好ましくはApoE-Containing HDL反応率／ApoE deficient HDL反応率比が0.8以上、1.2未満の界面活性剤が挙げられる。ここで、界面活性剤のリポ蛋白への反応性は、該界面活性剤の存在下でリポ蛋白にコレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させた場合に、コレステロールの反応する程度を指標に評価することができる。具体的には、例えば、リポ蛋白と反応させる試薬に種々の界面活性剤を含ませ測定を行うことによりその界面活性剤のリポ蛋白に対する反応性を測定することができる。ApoE-containing HDLに対する界面活性剤の反応量とApoE-deficient HDLに対する界面活性剤の反応量を測定し、それぞれの試料中の総コレステロール量との比（以下、「ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比」と言う）を求めればよい。それより、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比を算出することができる。
HDLに反応する界面活性剤として、具体的には、陰イオン界面活性剤としてアルキルベンゼンスルホン酸ナトリウムが、非イオン界面活性剤としてはポリオキシエチレンモノラウレート、ラウリルアルコールアルコキシレート、ポリオキシエチレンラウリルアミン、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体、分子量1700未満のポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックポリマー、HLB13.0以上14.5未満のポリオキシエチレンノニルフェニルエーテルが、両性界面活性剤としてはアルキルジメチルアミノ酢酸ベタイン、アルキルカルボキシメチルヒドロキシエチルイミダゾリウムベタインが好ましく、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体が特に好ましい。
具体的な界面活性剤の例として、陰イオン界面活性剤としては、ニューレックスソフト60-N、ニューレックスパウダーF、ニューレックスペーストH（以上日本油脂社製）、ネオペレックスNo.1-F、ネオペレックス G-65、エマール NC-35（以上、花王社製）、非イオン界面活性剤の例として、アデカトールLB70、アデカトール LB-103、アデカトール LB-93（以上旭電化社製）、ディスパノールK-3、ノニオンL-4、ノニオンMN-811、ノニオンNS-210、ノニオンNS-212、ナイミーンL-202、プロノン102、プロノン204（以上日本油脂社製）、ノニポール８５、ノニポール９５、ノニポール１００、ノニポール１２０（以上三洋化成社製）、エマルゲンB66（花王）、両性界面活性剤の例としてアンヒトール24B（花王社製）、ニッサンアノンBF、ニッサンアノンGLM-R-LV、ニッサンアノンLG（以上日本油脂社製）等が挙げられる。
このうち、エマルゲンB66等がポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体である。
本発明の方法においては、被検試料中のHDL亜分画のコレステロールを測定するために、上記の方法（２）や（３）のように、最初にHDL以外のリポ蛋白を消去することにより反応系外に導く。HDL以外のリポ蛋白を消去する方法として、カタラーゼを用いる方法、及び無色キノンを形成する方法を挙げることができる。すなわち、HDLに作用する界面活性剤の非存在下において、被検試料にコレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、生じたHDL以外のリポ蛋白由来の過酸化水素を除去する。コレステロールエステラーゼの作用により、リポ蛋白中のエステル型コレステロールが加水分解されて遊離型コレステロールと脂肪酸が生じる。次いで、この生じた遊離型コレステロールと元々リポ蛋白中に存在する遊離型コレステロールがコレステロールオキシダーゼの作用で酸化されてコレステノンと過酸化水素が生じる。この生じた過酸化水素を除去することによりリポ蛋白を消去することができる。過酸化水素を除去する方法としては、カタラーゼを作用させて水と酸素に分解する方法、及びペルオキシダーゼの作用により、例えばDAOS（Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシスルホプロピル）−３，５−ジメチオキシアニリン）のような、過酸化水素と反応して無色キノンを生じるフェノール系又はアニリン系水素供与体化合物と反応させて過酸化水素を無色キノンに転化する方法等を挙げることができるがこれらに限定されるものではない。
HDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程においては、HDLに作用する界面活性剤の非存在下において行なえばよい。こうすることにより、HDLはほとんど反応せず、LDL、VLDL-CM等のリポ蛋白のみが反応し、LDL、VLDL-CM等の他のリポ蛋白中のコレステロールのみが消去、又は保護され反応系外に導かれる。この結果、次の第２工程において、HDLに反応する界面活性剤を用いることにより、総HDL又はApoE-Containing HDL及び／又はApoE-deficient HDLのHDL亜分画中のコレステロールが選択的に定量される。
上記の方法（２）及び（３）の、HDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程、あるいはApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白を反応系外に導く第１工程の反応液中のコレステロールエステラーゼの濃度は0.2〜1.0U/ml程度が好ましく、また、コレステロールオキシダーゼの濃度は0.1〜0.7U単位/ml程度が好ましい。さらに、カタラーゼの濃度は40〜100U/ml程度が好ましく、ペルオキシダーゼの濃度は0.4〜1.0U/ml程度が好ましい。また、過酸化水素と反応して無色キノンを生じる化合物の濃度は0.4〜0.8mmol/l程度が好ましい。
上記の方法（２）及び（３）の第１工程の反応は、pH５〜８の緩衝液中で行なうことが好ましく、緩衝液としてはリン酸、グリシン、トリス及びグッドの緩衝液が好ましい。特にグッドの緩衝液であるBis-Tris、PIPES、MOPSO、BES、HEPES及びPOPSOが好ましく、緩衝液の濃度は10〜500mM程度が好ましい。
上記の方法（２）及び（３）の第１工程で、HDL以外のリポ蛋白の消去効率を高めるために、反応液中に２価の金属イオンを含ませてもよい。２価の金属イオンとしては銅イオン、鉄イオン及びマグネシウムイオンを好ましく使用することができるが、特にマグネシウムイオンが好ましい。２価の金属イオンの濃度は５〜200mM程度が好ましい。例えば、塩化マグネシウムを添加すればよい。
さらに、上記の方法（２）及び（３）の第１工程の反応液中には、任意的に、リポ蛋白加水分解酵素を加えることもできる。この酵素を加えることにより、特にVLDL中のコレステロールが反応し易くなるので好ましい。この酵素の反応液中の濃度は、5.0〜10.0U/ml程度が好ましい。
上記の方法（１）、（２）及び（３）の各工程の反応温度は25℃〜40℃程度が適当であり、37℃が最も好ましい。また、反応時間は２〜10分間程度でよい。
本発明の方法において発生したコレステロールの酵素的な定量方法自体はこの分野において周知であり、例えば上記の方法（２）及び（３）の第１工程と同様、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼの作用によりコレステロールエステル及び遊離型コレステロールから過酸化水素を発生させ、発生した過酸化水素を定量することにより行なうことができる。過酸化水素の定量は、例えば、ペルオキシダーゼの存在下で、過酸化水素と反応してキノン色素を形成する化合物と反応させ、生じたキノン色素の量を吸光度測定等により測定することにより行なうことができる。キノン色素は、例えば過酸化水素と４−アミノアンチピリン及びフェノール系若しくはアニリン系水素供与体を用いることにより形成させることができる。
水素供与体化合物のうちアニリン系水素供与体化合物として、N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3，5‐ジメトキシアニリン（HDAOS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3‐メトキシアニリン（ADPS）、N-エチル-N-スルホプロピルアニリン（ALPS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3，5‐ジメトキシアニリン（DAPS）、N‐スルホプロピル‐3，5‐ジメトキシアニリン（HDAPS）、N-エチル-N-スルホプロピル‐3，5‐ジメチルアニリン（MAPS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3‐メチルアニリン（TOPS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3‐メトキシアニリン（ADOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）アニリン（ALOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）-3，5‐ジメトキシアニリン（DAOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）-3，5‐ジメチルアニリン（MAOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3‐メチルアニリン（TOOS）及びN‐スルホプロピルアニリン（HALPS）等が挙げられる。
キノン色素を生成する化合物の濃度は、特に限定されないが、反応混合物全体に対し、例えば４−アミノアンチピリンでは、好ましくは0.1〜2.0mM、さらに好ましくは0.5〜1.5mMであり、フェノール系又はアニリン系水素供与体化合物では0.5〜2.0mmol/Lが好ましい。また、ペルオキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、反応混合物全体に対し、0.4〜5U/mlが好ましい。なお、キノン色素を形成させる工程の好ましい反応条件（反応温度、反応時間、緩衝液、pH）は、HDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程、あるいはApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程の好ましい反応条件と同じである。
なお、HDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程、あるいはApoE-Containing HDL-C以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程において、生じた過酸化水素をカタラーゼで分解する場合には、後のキノン色素を形成させる工程ではこのカタラーゼを阻害する必要があるので、第２工程において例えばアジ化ナトリウムのようなカタラーゼ阻害剤を用いてカタラーゼを阻害する。
以下、本発明を実施例に基づき具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。なお、下記例において、「％」は特に断りがない限り「重量％」を示す。
実施例１
HDL亜分画測定における界面活性剤濃度の効果を確認するために、下記の組成を有する試薬を調製した。
第１試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
HDAOS 0.7 mmol/l
コレステロールエステラーゼ 1.4 U/ml
コレステロールオキシダーゼ 0.8 U/ml
カタラーゼ 600 U/ml
塩化マグネシウム 10 mmol/l
第２試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
４−アミノアンチピリン 4.0 mmol/l
コレステロールオキシダーゼ 2.4 U/ml
ペルオキシダーゼ 2.4 U/ml
アジ化ナトリウム 0.1%
界面活性剤（ポリオキシエチレンベンジルフェニル誘導体）
0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1.0, 1.5, 2.0, 3.0%
第2試薬中の界面活性剤濃度を0.2〜3.0％の範囲で変動させた試薬を用いてApoE deficient HDL-C濃度141.8mg/mlを含む高HDL-C試料（Total HDL-C 195.8mg/ml）を測定し、ApoE-deficient HDLに対する反応性を測定した。試料2.4μｌに第１試薬180μｌを混和し、37℃で５分間反応させた後に、第２試薬60μｌを37℃で５分間反応させ、主波長／副波長＝600nm/700nmとして吸光度差を測定し、検量線よりコレステロール濃度を求めた。反応液中の界面活性剤の最終濃度は0.05〜0.75％であった。比較対照としてApoE-Containing HDL-Cを測定せずにApoE-deficient HDL-Cのみを測定できるリンタングステン酸-デキストラン硫酸-マグネシウム沈殿法（PT-DS-Mg法）（BIOCHEMICAL MEDICINE AND METABOLIC BIOLOGY 46, 329-343 (1991)）を用いて同様の試料を測定した。
用いる試料の容積は試薬の容積に対して微量であるので試料の容積を無視した場合、第１試薬と第２試薬の容積比は３：１である。従って、Ｃ１％の界面活性剤を含む第２試薬を添加したときの界面活性剤の終濃度はＣ１×1/4％となる。本実施例では、第２試薬における濃度が0.2〜3.0％であるので、終濃度は0.05〜0.75％となる。
結果を図１に示す。図１は界面活性剤の最終濃度に対する結果を％バイアスで示している。％バイアスは、（実施例測定値-基準法測定値）/基準法測定値×100により求めることができる。
図１に示されるように、第2試薬中の界面活性剤濃度が0.2〜0.4％（終濃度0.05〜0.10％）の場合、HDL-C高値検体においてPT-DS-Mg法に対する測定値の％バイアスが±2％以内となる。これに対し、第2試薬の界面活性剤濃度が0.6〜3.0％（終濃度0.15〜0.75％）では測定値が上昇し、ApoE-deficient HDL-C以外のHDL亜分画（ApoE-Containing HDL-C）と反応していることがわかる。
実施例２
試薬やその他の条件は実施例１と同様とし、比較対照法としてApoE-Containing HDL-C を含めた総HDL-Cを測定できる13％PEG法（J Lipid Research 38, 1204-16: 1997）を用いて高HDL-C試料（Total HDL-C 195.8mg/ml）を測定した。
結果を図２に示す。図２は界面活性剤の終濃度に対する結果を％バイアスで示している。
図２に示されるように、第2試薬中の界面活性剤濃度が0.2〜0.4 ％（終濃度0.05〜0.08％）の場合、HDL-C高値検体において13％PEG法に対する測定値の％バイアスが-2％以下となる。これに対し、第2試薬の界面活性剤濃度が0.6〜3.0％（終濃度0.15〜0.75％）では測定値が上昇し、13％PEG法に対する測定値の％バイアスが±2％以内となる。このことから高濃度の界面活性剤存在下では、ApoE-Containing HDL-Cを含めた総HDL-Cと反応していることがわかる。
実施例３
第１工程（第１試薬を添加）はHDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程、第２工程（第２試薬を添加）はApoE-deficient HDL-Cを測定する工程、第３工程（第３試薬を添加）はApoE-Containing HDL-Cを測定する工程で用いる試薬として、以下の試薬を調製した。
第１試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
HDAOS 0.7 mmol/l
コレステロールエステラーゼ 1.4 U/ml
コレステロールオキシダーゼ 0.8 U/ml
カタラーゼ 600 U/ml
塩化マグネシウム 10 mmol/l
第２試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
４−アミノアンチピリン 4.0 mmol/l
ペルオキシダーゼ 2.4 U/ml
アジ化ナトリウム 0.1%
界面活性剤（ポリオキシエチレンベンジルフェニル誘導体） 0.2%
第３試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
界面活性剤（ポリオキシエチレンベンジルフェニル誘導体） 1.0%
分析装置として日立7180を用い、試料2.4μｌに第１試薬180μｌを混和し、37℃で５分間反応させた後に、第２試薬60μｌを37℃で５分間反応させ、その後第３試薬60μｌを37℃で５分間反応させた。主波長／副波長＝600nm/700nm、測光ポイントをApoE-deficient HDL-C：Δ22-8、ApoE-Containing HDL-C：Δ27-22、総HDL-C：Δ27-9として吸光度差を測定し、キャリブレーションより求めたファクターを乗じてコレステロール濃度（mg/dL）を算出した。比較対照法として、ApoE-deficient HDL-C測定法として（PT-DS-Mg法）、ApoE-Containing HDL-Cを含めた総HDL-C測定法として13％PEG法を測定した。ApoE-Containing HDL-Cは13％PEG法よりPT-DS-Mg法を減ずることにより計算にて求めた。試料としてHDL-C濃度の異なるヒト血清を使用した。
第２試薬を添加したときの反応液中の界面活性剤の終濃度は0.2×1/4=0.05％であり、第３試薬を添加した時の反応液中の界面活性剤の終濃度は0.05×4/5+1.0×1/5＝0.24％であった。
結果を図３に示す。図３は本発明の方法で測定した値と13％PEG沈殿法（a）、PT-DS-Mg沈殿法（b）、13％PEG沈殿法とPT-DS-Mgの差（c）との間の相関を示す。
図３a〜cに示されるように、本発明法によって求めたApoE-deficient HDL-C、ApoE-Containing HDL-C、総HDL-Cは比較対照法とそれぞれ良好な相関性（y = x + 0.5 , r = 0.999 , y = x + 0.4 , r = 0.991 , y = x + 3.0 , r = 0.999 ）を示した。
実施例４
第１工程（第１試薬を添加）はApoE-Containing HDL以外のリポ蛋白を反応系外に導く工程、第２工程（第２試薬を添加）はApoE-Containing HDL-Cを測定する工程で用いる試薬として、以下の試薬を調製した。
第１試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
ＨＤＡＯＳ 0.7 mmol/l
コレステロールエステラーゼ 0.8 U/ml
コレステロールオキシダーゼ 1.6 U/ml
カタラーゼ 600 U/ml
塩化マグネシウム 10 mmol/l
界面活性剤（ポリオキシエチレンベンジルフェニル誘導体） 0.067%
第２試薬
BES緩衝液 pH7.0 100 mmol/l
４−アミノアンチピリン 4.0 mmol/l
ペルオキシダーゼ 2.4 U/ml
アジ化ナトリウム 0.1%
界面活性剤（ポリオキシエチレンベンジルフェニル誘導体） 1.0%
本発明における測定条件は実施例１と同様とした。すなわち、試料2.4μｌに第１試薬180μｌを混和し、37℃で５分間反応させた後に、第２試薬60μｌを37℃で５分間反応させ、主波長／副波長＝600nm/700nmとして吸光度差を測定し、検量線よりコレステロール濃度を求めた。比較対照法として、ApoE-Containing HDL-C濃度をApoE-Containing HDL-Cは13％PEG法よりPT-DS-Mg法を減ずることにより計算にて求めた。試料としてHDL-C濃度の異なるヒト血清を使用した。
第１試薬を添加したときの反応液中の界面活性剤の最終濃度は0.067％であり（試料の容積は小さいので無視した）、第２試薬を添加した時の反応液中の界面活性剤の最終濃度は0.067×4/5+1.0×1/5＝0.254％であった。
結果を図４に示す。図４はHDL試料に対して、本発明の実施例４の方法により測定した場合の13％PEG沈殿法とPT-DS-Mgの差に対する相関性を示す。
図４に示されるように、本発明法によって求めたApoE-Containing HDL-Cは比較対照法と良好な相関性（y = x + 1.4 , r = 0.984）を示した。

Claims (2)

  1. 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.05〜0.10％の濃度で加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量し、ApoE deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量し、次いで、前記のポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤と同じ界面活性剤を終濃度0.15〜0.75％となるように加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-Containing HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
  2. 被検試料中に、ポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤を終濃度0.05〜0.10％の濃度で加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を除去することによりApoE-Containing HDL以外のHDL中のコレステロールを反応系外に導き、次いで前記のポリオキシエチレンベンジルフェニルエーテル誘導体からなる界面活性剤と同じ界面活性剤を終濃度0.15〜0.75％となるように加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによるApoE-Containing HDL中のコレステロールを定量するApoE-Containing HDL中のコレステロールの定量方法。
JP2012090423A 2012-04-11 2012-04-11 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法 Active JP6054051B2 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2012090423A JP6054051B2 (ja) 2012-04-11 2012-04-11 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法
US14/391,897 US9890412B2 (en) 2012-04-11 2013-04-10 Method for quantifying subfraction of cholesterol (−C) in high-density lipoprotein (HDL)
PCT/JP2013/060778 WO2013154119A1 (ja) 2012-04-11 2013-04-10 高密度リポ蛋白（hdl）中のコレステロール（-c）の亜分画定量方法
EP13775869.4A EP2837693B1 (en) 2012-04-11 2013-04-10 Method for quantifying subfraction of cholesterol (-c) in high-density lipoprotein (hdl)
TW102112896A TWI597364B (zh) 2012-04-11 2013-04-11 Quantitation of subcomponents of cholesterol (-C) in high density lipoprotein (HDL)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2012090423A JP6054051B2 (ja) 2012-04-11 2012-04-11 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2013215169A JP2013215169A (ja) 2013-10-24
JP6054051B2 true JP6054051B2 (ja) 2016-12-27

Family

ID=49327679

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2012090423A Active JP6054051B2 (ja) 2012-04-11 2012-04-11 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法

Country Status (5)

Country Link
US (1) US9890412B2 (ja)
EP (1) EP2837693B1 (ja)
JP (1) JP6054051B2 (ja)
TW (1) TWI597364B (ja)
WO (1) WO2013154119A1 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2021246426A1 (ja) 2020-06-02 2021-12-09 デンカ株式会社 リポ蛋白コレステロールの定量方法およびキット

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20170059595A1 (en) * 2014-02-28 2017-03-02 The Regents Of The University Of California High throughput biochemical fluorometric method for measuring hdl redox activity
JP7311248B2 (ja) * 2018-08-08 2023-07-19 デンカ株式会社 リポ蛋白コレステロールの定量方法及び定量キット
JP7455674B2 (ja) 2020-06-02 2024-03-26 デンカ株式会社 キットおよび方法

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2653755B2 (ja) 1994-03-08 1997-09-17 協和メデックス株式会社 高密度リポ蛋白中のコレステロールの定量法
JP2600065B2 (ja) 1994-03-08 1997-04-16 協和メデックス株式会社 高密度リポ蛋白中のコレステロールの定量法
JP2799835B2 (ja) 1995-01-31 1998-09-21 第一化学薬品株式会社 コレステロールの定量方法
US6479249B2 (en) 1996-12-09 2002-11-12 Denka Seiken Co., Ltd. Method of determining cholesterol content of high-density lipoproteins
JP3644490B2 (ja) * 1996-12-09 2005-04-27 デンカ生研株式会社 高密度リポ蛋白中のコレステロールの定量方法
JPH1156395A (ja) * 1997-08-27 1999-03-02 Dai Ichi Pure Chem Co Ltd コレステロールの定量法
US7348158B2 (en) * 2002-01-30 2008-03-25 Denka Seiken Co., Ltd. Method of quantifying cholesterol in high density lipoprotein and reagent compositions
US20050037504A1 (en) * 2003-07-17 2005-02-17 Dimagno Theodore John One-step assay for high-density lipoprotein cholesterol
US20050032141A1 (en) 2003-07-17 2005-02-10 Dimagno Theodore John Dry analytical element for high-density lipoprotein cholesterol quantification
JP5042023B2 (ja) * 2005-08-31 2012-10-03 デンカ生研株式会社 小粒子低比重リポ蛋白の定量方法および定量キット
CN101078729B (zh) 2006-05-10 2012-07-18 富士胶片株式会社 高密度脂蛋白胆固醇的测定方法
JP5356656B2 (ja) * 2006-05-10 2013-12-04 富士フイルム株式会社 高密度リポ蛋白コレステロールの測定方法
CA2679309C (en) * 2007-02-28 2015-05-26 Denka Seiken Co., Ltd. Reagent for quantitative determination of small, dense ldls
JP2007295935A (ja) * 2007-08-03 2007-11-15 Dai Ichi Pure Chem Co Ltd コレステロールの定量法
JP5813284B2 (ja) * 2009-10-26 2015-11-17 デンカ生研株式会社 ＡｐｏＥ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇＨＤＬ中コレステロールの測定方法
JP5598247B2 (ja) 2010-10-19 2014-10-01 株式会社リコー 電源装置

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2021246426A1 (ja) 2020-06-02 2021-12-09 デンカ株式会社 リポ蛋白コレステロールの定量方法およびキット

Also Published As

Publication number Publication date
JP2013215169A (ja) 2013-10-24
TWI597364B (zh) 2017-09-01
EP2837693A1 (en) 2015-02-18
WO2013154119A1 (ja) 2013-10-17
TW201348449A (zh) 2013-12-01
EP2837693B1 (en) 2018-12-05
US20150079616A1 (en) 2015-03-19
US9890412B2 (en) 2018-02-13
EP2837693A4 (en) 2015-12-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101394802B1 (ko) 소립자 저비중 리포 단백의 정량 시약
KR101833351B1 (ko) 고밀도 리포단백질3 중의 콜레스테롤의 정량 방법
KR101833350B1 (ko) 고밀도 리포단백질3 중의 콜레스테롤의 정량 방법
KR20150005625A (ko) 저밀도 리포단백질 이외의 리포단백질 중의 트리글리세리드의 소거 방법
JP5813284B2 (ja) ＡｐｏＥ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇＨＤＬ中コレステロールの測定方法
JP6054051B2 (ja) 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロール（−ｃ）の亜分画定量方法
JP2014030393A (ja) 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロールの定量方法
KR101891984B1 (ko) 고밀도 리포단백질3 중의 콜레스테롤의 정량 방법
US8906638B2 (en) Method for quantification of remnant-like lipoprotein cholesterol and kit for same
KR101871209B1 (ko) 고밀도 리포 단백질 2 중의 콜레스테롤의 정량 방법 및 그것을 위한 시약 키트
JP6829009B2 (ja) トリグリセリドリッチリポ蛋白中のコレステロールの定量方法及び定量試薬
CN104169432B (zh) 高密度脂蛋白3中的胆固醇的定量方法
JP2017060522A (ja) 高密度リポ蛋白（ｈｄｌ）中のコレステロールの定量方法
JP4865880B2 (ja) 低密度リポ蛋白中のコレステロールの定量方法

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20141209

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20151124

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20160120

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20160531

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20160830

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20161003

A911 Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911

Effective date: 20161026

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20161115

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20161130

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 6054051

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313115

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250