JP5797112B2 - 心不全の治療または予防のためのニューレグリンまたはそのサブ配列の治療的投与方法 - Google Patents
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Description
本発明の分野は、心不全に治療に関する。より具体的には、本発明は改善された投与レジメンに関し、該投与レジメンにより、グリア成長因子2(GGF2)のようなニューレグリンまたはその断片の投与の治療的利益が維持および/または増強され、その上、いずれの潜在的な副作用も同時に最小限化される。
必要とする患者への医用薬剤の投与に関連する基本的な課題は、許容性と効能との関係である。治療指数は、患者へ投与され得る物質の有効用量から、患者に対して望ましくない副作用が見られる用量までの範囲である。一般的に、有効用量と副作用が発生する用量との差が大きいほど、物質はより安全であり、患者によって許容される可能性がより高い。
[請求項1001]
哺乳動物における心不全を治療または予防するための方法であって、
上皮増殖因子様(EGF様)ドメインを含むペプチドを提供する工程;
治療有効量が哺乳動物において心不全を治療または予防するために有効である、該ペプチドの該治療有効量を該哺乳動物へ少なくとも48時間の間隔で投与する工程
を含む、方法。
[請求項1002]
前記投与する工程が48時間毎に行われる、請求項1001記載の方法。
[請求項1003]
前記投与する工程が96時間毎に行われる、請求項1001記載の方法。
[請求項1004]
前記投与が、4日毎、1週間毎、10日毎、14日毎、1ヶ月毎、2ヶ月毎、3ヶ月毎または4ヶ月毎からなる群より選択されるレジメンで行われる、請求項1001記載の方法。
[請求項1005]
前記哺乳動物がヒトである、請求項1001記載の方法。
[請求項1006]
前記ペプチドが組換えヒトGGF2である、請求項1001記載の方法。
[請求項1007]
前記ペプチドが、
である、請求項記載の方法。
[請求項1008]
前記ペプチドが、
である、請求項記載の方法。
[請求項1009]
前記ペプチドが、ニューレグリン(NRG)-1遺伝子、ニューレグリン(NRG)-2遺伝子、ニューレグリン(NRG)-3遺伝子、またはニューレグリン(NRG)-4遺伝子によってコードされる、請求項1001記載の方法。
本発明者らは、適切に空けられた時間間隔でのニューレグリンの不連続のまたは断続的な投与が、その必要がある患者へニューレグリンの治療有効量を送達し、このような治療レジメンが、うっ血性心不全などの心疾患を防ぐために、予防するために、改善するために、最小限にするために、治療するためにまたは回復に向かわせるために有用であるという驚くべき発見をした。
上記の通り、NRG-1、NRG-2、NRG-3およびNRG-4遺伝子によってコードされるペプチドは、それらがErbB受容体へ結合しこれを活性化することを可能にするEGF様ドメインを有する。Holmesら(Science 256:1205-1210, 1992)は、EGF様ドメインは単独でp185erbB2受容体に結合しこれを活性化するのに十分であることを示した。従って、NRG-1、NRG-2またはNRG-3遺伝子によってコードされる任意のペプチド産物、または任意のニューレグリン様ペプチド、例えば、ニューレグリン遺伝子もしくはcDNAによってコードされるEGF様ドメイン(例えば、米国特許番号5,530,109、米国特許番号5,716,930、および米国特許番号7,037,888に記載される、NRG-1ペプチドサブドメインC-C/DもしくはC-C/D'を含むEGF様ドメイン;またはWO 97/09425に開示されるEGF様ドメイン)を有するペプチドが、うっ血性心不全を予防または治療するために本発明の方法において使用され得る。米国特許番号5,530,109;米国特許番号5,716,930;米国特許番号7,037,888;およびWO 97/09425の各々の内容は、その全体が本明細書に組み入れられる。
個体がうっ血性心不全を発症する可能性を増加させるリスク因子は、周知である。これらとしては、喫煙、肥満、高血圧、虚血性心疾患、血管疾患、冠動脈バイパス手術、心筋梗塞、左室収縮機能障害、心毒性化合物(アルコール、薬物、例えば、コカイン、ならびにアントラサイクリン抗生物質、例えば、ドキソルビシン、およびダウノルビシン)への曝露、ウイルス感染症、心膜炎、心筋炎、歯肉炎、甲状腺疾患、放射線被曝、心不全のリスクを増加させることが公知である遺伝的欠陥(例えば、Bachinski and Roberts, Cardiol. Clin. 16:603-610, 1998;Siu et al., Circulation 8:1022-1026, 1999;およびArbustini et al., Heart 80:548-558, 1998に記載されるもの)、飢餓、摂食障害、例えば食欲不振症および過食症、心不全の家族歴、ならびに心筋肥大が挙げられるが、これらに限定されない。
ニューレグリンおよびニューレグリン遺伝子によってコードされるEGF様ドメインを含むペプチドが、薬学的に許容される希釈剤、担体、または賦形剤と共に、患者または実験動物へ投与され得る。本発明の組成物は、単位剤形で提供され得る。
最適な薬物濃度の定義は、特定の薬物の薬力学的特徴に応じて変化する。例えば、ペニシリンなどの時間依存性の抗生物質についての最適な療法は、2〜4の最高濃度対MIC(最小阻止濃度)比率、および投与間隔の75%に等しいMICを超える時間を達成することに関する。例えば、ゲンタマイシンなどの濃度依存性の抗生物質について、効能は、約8〜10の最高濃度対MIC比率を得る事に関する。特定の薬物の投与に伴う微妙な差異に関係なく、薬物療法は、標的種における薬物の薬物動態学、薬力学および毒性プロファイルに基づいて前もって決定された「治療ウインドウ」の制限内で標的血漿中濃度(これは、しばしば、作用部位での濃度を表す)を達成しようとする。このウインドウの幅は、種々の薬物および種について変化する。最小有効濃度と最小毒性濃度との差が小さい(2〜4倍)場合、治療ウインドウは狭いと言われる。対照的に、有効濃度と毒性濃度との間に大きな差がある場合、薬物は、広い治療ウインドウを有すると考えられる。狭い治療ウインドウを有する薬物の例は、ジゴキシンであり、ここで、平均の有効濃度と毒性濃度との差は2または3倍である。他方で、アモキシシリンは、広い治療域を有し、患者の過剰投与は、毒性問題を一般的に伴わない。
薬物応答性に関しての同一種の健常被験体間の顕著な変動性は、一般的である。さらに、病状は、臓器系および機能(例えば、腎臓、肝臓、含水量)に影響を与える可能性を有し、これは、次に、薬物応答性に影響を与え得る。これは、次に、薬物が投与される病気の個体における薬物応答性の差異の増加に寄与する。さらに別の関連する問題は、同時の複数の薬物の投与に関し、これは、一方または両方の薬物に対する応答性の変化をもたらし得る薬物動態学的相互作用を生じさせる。要約すると、生理学的(例えば、年齢)、病理学的(例えば、疾患効果)、および薬理学的(例えば、薬物相互作用)因子は、動物における薬物のディスポジションを変化させ得る。その結果として起こる個体間の変動性の増加は、狭い治療指数を有する薬物の治療失敗または毒性をもたらし得る。
間隔の最初に存在する血清中濃度が50%減少するために必要とされる時間。おおよその半減期を知ることは、臨床医にとって必須であり、何故ならば、それは、経口剤での最適な投与スケジュール、血清中濃度の用量内変動、および定常状態を達成するために必要とされる時間を決定するためである。
付録7
125I-rhGGF2の単回の静脈内または皮下への投与の後の雄性Sprague-Dawleyラットの血漿中の125I-rhGGF2由来の放射能の平均薬物動態
群1−i.v. 群2−s.c.
125I-rhGGF2の単回の静脈内または皮下への投与の後の雄性Sprague-Dawleyラットの血漿中の125I-rhGGF2由来の放射能の平均薬物動態
付録9
群1−i.v. 群2−s.c.
定常状態血清中濃度は、各投与により繰り返される値であり、所定の時間間隔における投与される薬物の量と排出される量との平衡状態を示す。任意の薬物での長期間投与の間、その平均定常状態血清中濃度の2つの主要な決定要因は、薬物が投与される速度、および特定の患者における薬物の総クリアランスである。
血清中濃度対時間曲線上の最大濃度のポイント。最高血清中濃度の正確な時間は、予測するのが困難であり、何故ならば、それは、インプット速度とアウトプット速度との間の複雑な関係を表すためである。
投与間隔の間に見られる最小血清中濃度。トラフ濃度は、次の用量を投与する直前の期間において理論上存在する。
薬物が身体に入るプロセス。血管内投与された薬物は、完全に吸収されるが、血管外投与は、吸収の種々の程度および速度をもたらす。吸収速度と排出速度との関係は、血流中の薬物濃度の主な決定要因である。
血管内腔から血管外液および組織へのならびにそれに従って標的受容体部位への、全身的に利用可能な薬物の分散。
高度の効能と低リスクの用量関連毒性とに関連する血清中薬物濃度のその範囲。治療域は、統計的概念であり:それは、大部分の患者における治療応答と関連する濃度範囲である。結果として、ある患者は、その範囲の下限未満の血清中濃度で治療応答を示し、一方、他の患者は、治療的利益について上限を超える血清中濃度を必要とする。
本発明をその特定の態様に関連して説明したが、本発明はさらなる改変が可能であることが理解され、本出願は、本発明の任意のバリエーション、使用、または適応を含むように意図され、これらは、一般的に本発明の原理に従い、本発明が属する分野内の公知または通常のプラクティス内の本開示からのこのような逸脱を含み、本明細書上記に記載の必須の特徴へ適用され得、添付の特許請求の範囲の範囲に入る。
GGF2 のIgEGF(Ig154Y)ドメイン(EGF-Ig)のクローニング、発現および精製
DNA:
IgEGFドメインを、既存のGGF2 cDNAから増殖し、Nde1およびBamH1制限部位を使用してpet 15bベクター(Novagenカタログ番号69661-3)へクローニングした。得られるタンパク質は、21.89 kda+約3kDa Hisタグ(=約25 kDa)である。
下線が引かれた配列は、増幅のために使用されたプライマーである。太字の配列は、petベクターへ配列を挿入するために使用されたクローニング部位である(Nde1およびBamH1)。
LB培地中において25℃で24時間Overnight Express Autoinduction System(Novagen)を使用して、タンパク質発現のためにクローンをBl21細胞へ形質転換した。
Novagen Protein Refolding Kit, 70123-3より適応させた。
His TRAPカラム−製造業者の説明書通り。
タンパク質発現をウエスタンブロッティングによって評価した。Hisタグを有する得られるバンドは、約25 kDに移動する。
Novagen製のOvernight Express Autoinduction System 1(カタログ番号71300-4)中において25℃で、培養物を増殖させた。培養物を遠心沈殿させ、ペレットを取り出し、可溶化し、再折り畳みし、Ig154Yを得、その後、精製を行い得る。
10×洗浄バッファー:200mM Tris-HCl, pH 7.5、100mM EDTA、10% Triton X-100
10×可溶化バッファー:500mM CAPS, pH 11.0
50×透析バッファー:1M Tris-HCl, pH 8.5
30%N-ラウリルサルコシン-粉末(Sigma 61739-5G)として添加。
1M DTT
還元型グルタチオン(Novagen 3541)
酸化型グルタチオン(Novagen 3542)
- 細胞ペレットを1×洗浄バッファー30ml中に解凍し、再懸濁した。
- プロテアーゼ阻害剤(50ml当たり10×を25ul)、DNase(50ml当たり1mg/mlを200ul)およびMgCl2(50ml当たり1Mを500ul)を、懸濁液へ添加した。
- 氷上で冷却しながら超音波処理によって細胞を溶解した。
- 超音波処理に続いて、封入体を12分間の10000×gでの遠心分離によって収集した。
- 上澄みを除去し、ペレットを、1×洗浄バッファー30ml中に完全に再懸濁した。
- 工程4を繰り返した。
- ペレットを、1×洗浄バッファー30ml中に完全に再懸濁した。
- 封入体を10分間の10000×gでの遠心分離によって収集した。
- 処理される封入体の湿重量から、10〜15mg/mlの濃度で封入体を再懸濁するために必要な1×可溶化バッファーの量を計算する。計算された体積が250mlを超える場合、250mlを使用する。
- 室温で、0.3%N-ラウリルサルコシン(さらなる最適化において必要な場合には、2%までが使用され得る)(300mg/100mLバッファー)および1mM DTTが補われた計算された体積の1×可溶化バッファーを調製する。
- 工程2からの計算された量の1×可溶化バッファーを封入体へ添加し、穏やかに混合する。大きな細片は、ピペット操作を繰り返すことによって破壊され得る。
- 25℃、50〜100 rpmで4〜5時間(さらなる最適化において必要な場合には、さらに長く)、リフリジレーターシェーカー中においてインキュベートする。
- 室温での10分間の10000×gでの遠心分離によって清澄化する。
- 可溶性タンパク質を含有する上澄みを、清潔なチューブへ移す。
- 可溶化タンパク質の透析用の必要とされる体積のバッファーを調製する。透析は、試料の体積の50倍を超える少なくとも2回のバッファー交換を伴って行われるべきである。50×透析バッファーを所望の体積で1×へ希釈し、0.1mM DTTを補う。
- 4℃で少なくとも4時間透析する。バッファーを交換し、継続する。さらに4時間またはそれ以上の間、透析する。
- DTTを省略することを除いては、工程1において決定された通りに、新たな透析バッファーを調製する。
- 透析バッファーにDTTは含まれずに、2つのさらなる変更(各々、数分 4時間)によって透析を継続する。
- 1×透析バッファー中において1mM還元型グルタチオン(1.2g/4L)および0.2mM酸化型グルタチオン(0.48g/4L)を含有する透析バッファーを調製する。体積は、可溶化タンパク質試料の体積よりも25倍大きいべきである。4℃まで冷やす。
- 工程1からの再折り畳みされたタンパク質を4℃で一晩透析する。
全ての手順を4℃で行う。
化学物質:
トリズマ塩酸塩(Sigma T5941-500G)
塩化ナトリウム5M溶液(Sigma S6546-4L)
水酸化ナトリウム10N(JT Baker 5674-02)
イミダゾール(JT Baker N811-06)
バッファーA:20mM Tris-HCL+500mM NaCl pH 7.5
バッファーB:バッファーA+500mMイミダゾール pH 7.5
カラムの平衡:バッファーA- 5CV、バッファーB- 5CV、バッファーA- 10CV
0.5ml/分で20mlカラム上での1実行当たり20mlの試料をロードする。
カラムを5CVのバッファーAで洗浄する。
カラムを5CVの280mMイミダゾールで溶出する。
10CVの100%バッファーBでクリーニングする。
15CVのバッファーAで平衡させる。
SDS-page銀染色でフラクションを分析する。
Ig154Yを含むフラクションをプールする。
Hisタグの除去を、Novagen製のThrombin Cleavage Capture Kit(カタログ番号69022-3)で行う。前もっての試験に基づいて、最良の条件は、Ig154Yタンパク質10μg毎について1μl当たり0.005Uの酵素でのトロンビンを用いて室温で4時間である。4時間のインキュベーション後、トロンビン酵素1単位当たりストレプトアビジンアガローススラリー16μlを添加する。室温で30分間試料を揺り動かさせる。スピン濾過または滅菌濾過(体積に依存する)によってIg154Yを回収する。完全な切断を、EGFおよび抗Hisウエスタンブロッティングによって測定する。
Millipore Centriprep 3000 MWCO 15ml濃縮器(Ultracel YM-3, 4320)を用いて、所望の濃度へ調節する。
20mM Tris+500mM NaCl pH 7.5および1×PBS+0.2% BSA中において保存する。
DNA:
NRG1b2 egfドメインを、ヒト脳cDNAからクローニングし、Nde1およびBamH1 制限部位を使用してpet 15bベクター(Novagenカタログ番号69661-3)へクローニングした。得られるタンパク質は、6.92 kda+約3kDa Hisタグ(=9.35 kDa)である。
LB培地中において25℃で24時間Overnight Express Autoinduction System(Novagen)を使用して、タンパク質発現のためにクローンをBl21細胞へ形質転換した。発現は、主に不溶性の封入体においてである。
Novagen Protein Refolding Kit, 70123-3から適応させた。
タンパク質を2.5ml/分でアニオン交換カラムDEAE上へロードする。EGF-Id断片は素通り画分に残り、一方、汚染物質は結合し、より高い塩で溶出される。ローディングおよび洗浄バッファーは、50mM Tris pH7.9であり、溶出バッファーは、1M NaClを含む50mM Tris pH7.9である。素通り画分をプールし、Millipore製のCentriprep YM-3で濃縮する。
タンパク質発現をウエスタンブロッティングによって評価する。得られるバンドは、約10kDに移動する。
Novagen製のOvernight Express Autoinduction System 1(カタログ番号71300-4)中において25℃で、培養物を増殖させる。ほんの僅かだけ可溶性のNRG-156Q(EGF-Id)が、存在する。培養物を遠心沈殿させ、ペレットを取り出し、可溶化し、再折り畳みし、NRG-156Qを得、その後、精製を行い得る。
10×洗浄バッファー:200mM Tris-HCl, pH 7.5、100mM EDTA、10% Triton X-100
10×可溶化バッファー:500mM CAPS, pH 11.0
50×透析バッファー:1M Tris-HCl, pH 8.5
30%N-ラウリルサルコシン-粉末(Sigma 61739-5G)として添加
1M DTT
還元型グルタチオン(Novagen 3541)
酸化型グルタチオン(Novagen 3542)
- 細胞ペレットを1×洗浄バッファー30ml中に解凍し、再懸濁する。完全な再懸濁のために、必要な場合は混合する。
- プロテアーゼ阻害剤(50ml当たり10×を25ul)、DNase(50ml当たり1mg/mlを200ul)およびMgCl2(50ml当たり1Mを500ul)を、懸濁液へ添加する。
- 超音波処理によって細胞を溶解する。
a.この工程の間、細胞を氷上で冷却する。
b.懸濁液の粘着性が減少するまで、スクエアチップを使用して、10回、レベル6で30秒間超音波処理する。各超音波処理の間、懸濁液を氷上において60秒間冷却させる。超音波処理の際、50mlコニカルチューブ中において体積を40ml以下に維持する。
- 完了したら、各懸濁液を、F-16/250ローターでの使用のために250mlアングルドネック(angled neck)遠心分離機ボトルへ移す。
- 封入体を12分間の10,000×gでの遠心分離によって収集する。
- 上澄みを除去し(可溶性タンパク質の分析のために試料を保持する)、ペレットを1×洗浄バッファー30ml中に完全に再懸濁する。
- 工程4における通り遠心分離を繰り返し、ペレットを保持する。
- 再度、ペレットを1×洗浄バッファー30ml中に完全に再懸濁する。
- 封入体を10分間の10,000×gでの遠心分離によって収集する。上澄みをデカンテーションし、逆さにしたチューブをペーパータオル上で軽くたたくことによって、最後の微量の液体を除去する。
- 処理される封入体の湿重量から、10〜15mg/mlの濃度で封入体を再懸濁するために必要な1×可溶化バッファーの量を計算する。計算された体積が250mlを超える場合、250mlを使用する。
- 室温で、0.3%N-ラウリルサルコシン(さらなる最適化において必要な場合には、2%までが使用され得る)(300mg/100mLバッファー)および1mM DTTが補われた計算された体積の1×可溶化バッファーを調製する。
- 工程2からの計算された量の1×可溶化バッファーを封入体へ添加し、穏やかに混合する。大きな細片は、ピペット操作を繰り返すことによって破壊され得る。
- 25℃、50〜100 rpmで4〜5時間、リフリジレーターシェーカー中においてインキュベートする。
- 室温での10分間の10,000×gでの遠心分離によって清澄化する。
- 可溶化タンパク質の透析用の必要とされる体積のバッファーを調製する。透析は、試料の体積の50倍を超える少なくとも2回のバッファー交換を伴って行われるべきである。
- 50×透析バッファーを所望の体積で1×へ希釈し、0.1mM DTTを補う。
- 4℃で少なくとも4時間透析する。バッファーを交換し、継続する。さらに4時間またはそれ以上の間、透析する。
- DTTを省略することを除いては、工程1において決定された通りに、新たな透析バッファーを調製する。
- 透析バッファーにDTTは含まれずに、2つのさらなる変更(各々、数分 4時間)によって透析を継続する。
- 1×透析バッファー中において1mM還元型グルタチオン(1.2g/4L)および0.2mM酸化型グルタチオン(0.48g/4L)を含有する透析バッファーを調製する。体積は、可溶化タンパク質試料の体積よりも25倍大きいであるべきである。4℃まで冷やす。
- 工程1からの再折り畳みされたタンパク質を4℃で一晩透析する。
全ての手順を4℃で行う。
化学物質:
トリズマ塩酸塩(Sigma T5941-500G)
塩化ナトリウム5M溶液(Sigma S6546-4L)
水酸化ナトリウム10N(JT Baker 5674-02)
バッファーA:50mM Tris-HCL pH 8.0
バッファーB:50mM Tris-HCLおよび1M NaCl pH 8.0
カラムの平衡:バッファーA- 5CV、バッファーB- 5CV、バッファーA- 10CV
- 2.0ml/分で20mlカラム上での1実行当たり50mlの試料をロードする(NRG-156(EGF-Id)は素通り画分中にある)。
- 20mlカラムを5CVのバッファーAで洗浄する。
20mlカラムを100%Bへの勾配で5CVにおいて用いる。これによって汚染物質が溶出除去される。
- 10CVの100%バッファーBでクリーニングする。
- 15CVのバッファーAで平衡させる。
- SDS-page銀染色でフラクションを分析する。
- NRG-156Q(10kDa)を含むフラクションをプールする。
- Millipore Centriprep 3000 MWCO 15ml濃縮器(Ultracel YM-3, 4320)を用いて濃縮する。
- 濃度を測定するためにModified Lowry Protein Assayを使用する。
Hisタグの除去を、Novagen製のThrombin Cleavage Capture Kit(カタログ番号69022-3)で行う。前もっての試験に基づいて、最良の条件は、NRG-156Q(EGF-Id)タンパク質10μg毎について1μl当たり0.005Uの酵素でのトロンビンを用いて室温で4時間である。4時間のインキュベーション後、トロンビン酵素1単位当たりストレプトアビジンアガローススラリー16μlを添加する。室温で30分間試料を揺り動かさせる。スピン濾過または滅菌濾過(体積に依存する)によってNRG-156Qを回収する。完全な切断を、EGFおよび抗Hisウエスタンによって測定する。
4℃で1×PBSおよび0.2% BSA中に保存する。
GGF2についてのクローニングおよび背景情報については、米国特許番号5,530,109を参照のこと。細胞株は米国特許番号6,051,401に記載されている。米国特許番号5,530,109および米国特許番号6,051,401の各々の全内容は、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。
この細胞株を、無血清条件においてrhGGF2の高い産生速度を支持するのに十分な量のフェチュイン(ヒトα2HSG)を産生するように設計した。
2.2×106細胞/mLのGGF2の1つのバイアルを100mlのAcorda培地1(表3を参照のこと)中へ解凍し、産生容器に接種するのに十分な数に達するまで拡大させた。細胞を、2リットル通気性ローラーボトル中において、1.0×105細胞/mLで、産生培地Acorda培地2(表4を参照のこと)へ接種した。ローラーボトルを37℃で5日間、次いで27℃で26日間維持する。ローラーボトルを、細胞数および全体的な外観についてモニタリングするが、それらに供給はしない。いったん生存力が10%未満になると、細胞をスピンアウトし、馴化培地を採取し、滅菌濾過する。
全ての手順を4℃で行う。
化学物質:
酢酸ナトリウム
氷酢酸(pH調節のため)
10N NaOH(pH調節のため)
NaCl
硫酸ナトリウム
L-アルギニン(JT Bakerカタログ番号:2066-06)
マンニトール(JT Bakerカタログ番号:2553-01)
出発材料:
馴化培地上澄み。pHを6.5に調節する。
捕捉−カチオン交換クロマトグラフィー
HiPrep SP 16/10(Amersham Biosciences)
カラム平衡:バッファーA - 5CV、バッファーB - 5CV、バッファー15%B - 5CV
バッファーA:20 mM 酢酸Na, pH 6.0
バッファーB:20 mM 酢酸Na, pH 6.0, 1M NaCl
可能である場合は一晩連続的なロードで、試料を2ml/分でロードする。連続的なローディングによって、結合はより十分となる。
出発試料についての最大容量:5 mg GGF2/ml培地
流量:3ml/分
第1洗浄:15%B、10CV
第2洗浄:35%B、10CV
GGF2溶出:60%B、8CV
カラム洗浄:100%B、8CV
精製−ゲル濾過クロマトグラフィー
Sephacryl S200 26/60
溶出バッファー:20 mM酢酸Na、100mM硫酸ナトリウム、1%マンニトール、10 mM L-アルギニン, pH 6.5
バッファー導電率:
試料:約AU280 1.0まで濃縮されたSP GGF2溶出プール
流量:1.3 ml/分
ピーク溶出:注入開始から約0.36CVにおいて。
プレ平衡バッファー:20 mM酢酸Na、100mM硫酸ナトリウム、1%マンニトール、10 mM L-アルギニン, pH 6.5
素通り画分を収集する。
試料へ追加の90 mM L-アルギニンを添加する。
濃縮する。
滅菌濾過する。
投与経路
試験物および対照物を静脈内注射によって投与した。群1へ割り当てられた動物は、ビヒクルまたは試験物で処置せず;これらの動物は、処置を施さない年齢を適合させた対照として役立った。投与頻度、期間および用量は、表5〜8に記載の通りであった。用量体積は約1 ml/kgであった。
試験物および対照物を、尾静脈を介して投与した。個々の用量は、最新の体重に基づいた。スポンサーによって特に指示されない限り、用量をボーラス注射によって投与した。
外科的処置−左前下行枝動脈結紮
Charles River Laboratories Surgical Capabilities Reference Paper, Vol. 13, No.1, 2005に記載された通りに、外科的処置を、Charles River Laboratoriesで行った。簡単に記載すると、皮膚および胸筋を通って胸骨の僅かに左側の胸部に、頭蓋尾方向切開を作製する。第3および第4肋骨を横に切開し、肋間筋を鈍的解剖する。胸腔に迅速に入り、心膜を完全に開く。心臓を切開から体外へ出す。肺動脈円錐および左心耳を確認する。小さな曲針を使用し、左前下行枝冠状動脈下に1本の5-0絹縫合糸を通す。結紮を結び、心臓を胸郭へ戻す。胸壁および皮膚切開を閉じながら、胸腔中の空気を徐々に追い出す。陽圧換気を使用して動物を蘇生させ、酸素に富む環境下に置く。
短期術後モニタリングおよび適切な鎮痛薬の投与を、Charles River Laboratories Surgical Capabilities Reference Paper, Vol. 13, No.1, 2005に記載された通りにCharles River Laboratoriesによって行った。
ケージサイド観察
罹病、死滅、損傷、ならびに食料および水の利用可能性について少なくとも1日2回、全ての動物を観察した。健康状態が良くない動物を、さらなるモニタリングおよび可能性のある安楽死のために同定した。
無作為化の前に少なくとも1回および研究の間毎週、体重を測定および記録した。
食料消費は測定しなかったが、食欲不振は記録に残した。
受け取り(0日目)後1、12、22および32日目に、群1へ割り当てられた全ての動物について、心エコー検査を行った。Charles River Laboratoriesで行われた外科的処置(0日目)後7、18、28および38日目に、群2〜5へ割り当てられた全ての動物について、心エコー検査を行った。
左心室の、中央乳頭筋レベルにおいてまたは心エコー検査による観察される梗塞領域の位置に依存してその他において、ECHO画像を撮影した。M-モードおよび2-D画像をCDおよび/またはMODに記録および保存した。ECHOで得られる測定パラメータは以下を含む:心室内隔壁厚み(拡張期);単位=cm;心室内隔壁厚み(収縮期);単位=cm;左心室内部寸法(拡張期);単位=cm;左心室内部寸法(収縮期);単位=cm;左心室乳頭壁厚み(拡張期);単位=cm;左心室乳頭壁厚み(収縮期);単位=cm;拡張末期容量;単位=mL;収縮末期容量;単位=mL;駆出率;パーセンテージとして報告;一回心拍出量;単位=ml;およびパーセント短縮率;パーセンテージとして報告。
瀕死
試験施設標準操作手順によって定義されるいずれの瀕死の動物も、人道的な理由のために安楽死させた。死の間際に安楽死させたかまたは死んだ状態で見つけられた全ての動物を、通常の検死へ供した。
大静脈への飽和塩化カリウム注射、続いての死を確実にするための承認された方法、例えば全採血によって、安楽死を行った。
研究した全ての生き残っている動物を、それらの予定の検死時に安楽死させたか、または必要ならば、死の間際に安楽死させた。
研究1−
GGF2 0.625 mg/kg iv 1日毎(qday)でのラットの処置により、駆出率および短縮率の変化によって本明細書で示される心機能の有意な改善が得られた。EGF-1d断片は、同程度の改善をもたらさなかった。表5を参照のこと。
GGF2 0.625および3.25 mg/kg iv 1日毎でのラットの処置により、駆出率および短縮率の変化によって本明細書で示される心機能の有意な改善が得られた。処置期間の間、収縮末期容量および拡張末期容量においても、有意な改善が見られた。表6を参照のこと。
GGF2 3.25 mg/kg iv 24、48または96時間毎でのラットの処置により、駆出率および短縮率の変化によって本明細書で示される心機能の有意な改善が得られた。処置期間の間、収縮末期容量および拡張末期容量においても、有意な改善が見られた。表7を参照のこと。
Claims (3)
- 哺乳動物における心不全を治療または予防するための薬学的組成物の製造のための、上皮増殖因子様(EGF様)ドメインを含むペプチドの使用であって、
該ペプチドが組換えヒトグリア成長因子2(GGF2)またはその断片であり、
該ペプチドの治療有効量が、該哺乳動物へ少なくとも96時間の間隔で投与されるものであり、該治療有効量が、該哺乳動物において心不全を治療または予防するために有効である、使用。 - 前記哺乳動物がヒトである、請求項1記載の使用。
- 組換えヒトグリア成長因子2(GGF2)またはその断片がSEQ ID NO:2のアミノ酸配列またはその断片を含む、請求項1記載の使用。
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