JP5342145B2 - EphA2に結合する抗体およびその使用方法 - Google Patents
EphA2に結合する抗体およびその使用方法 Download PDFInfo
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Description
本発明は、生物学および免疫療法の分野にある。より具体的には、本発明はEphA2と結合する抗体のファミリーの発見に関する。本発明はさらに、抗EphA2ファミリー抗体を用いる、EphA2に関連する種々のヒト疾患および癌の診断および/または治療を提供する。
抗体は、それらの既知の診断における使用に加えて、治療薬として有用であることが示されている。例えば、免疫療法、または治療目的のための抗体の使用は、ここ数年、癌を治療するために用いられている。受動的な免疫療法は、癌治療でのモノクローナル抗体の使用を含む。例えば、Cancer:Principles and Practice of Oncology,6th Edition(2001)Chapt.20 pp.495−508を参照されたい。これらの抗体は、腫瘍細胞増殖もしくは生存の直接阻害、および身体の免疫系の天然の殺細胞活性を補充するそれらの能力の双方による固有の治療的生物活性を有し得る。これらの薬剤は単独で、あるいは放射線療法または化学療法薬と併用して投与することができる。リツキシマブおよびトラスツズマブは、それぞれ非ホジキンリンパ腫および乳癌の治療に認可されていて、そのような治療薬の2つの例である。あるいは、抗体を用いて、抗体が毒素と結合し、腫瘍と特異的に結合することによりその毒素を腫瘍に向ける抗体複合体を作製することができる。ゲムツズマブ・オゾガマイシンは、白血病の治療に用いられる認可された抗体複合体の例である。癌細胞と結合し、診断および治療に利用可能性を有するモノクローナル抗体が刊行物に開示されている。例えば、とりわけ、多少の分子量の標的タンパク質を開示する以下の特許出願:米国特許第6,054,561号(200KD c−erbB−2(Her2)、およびサイズ40〜200KDのその他の未知の抗原)および米国特許第5,656,444号(50KDおよび55KD、癌胎児性タンパク質)を参照されたい。臨床実験中の抗体および/または固形腫瘍の治療に認可された抗体の例としては、トラスツズマブ(抗原:180kD、HER2/neu)、エドレコロマブ(抗原:40〜50kD、Ep−CAM)、抗ヒト乳脂肪球(HMFG1)(抗原>200kD、HMW ムチン)、セツキシマブ(抗原:150kDおよび170kD、EGF受容体)、アレムツズマブ(抗原:21〜28kD、CD52)、ならびにリツキシマブ(抗原:35kD、CD20)が挙げられる。
本明細書に開示される本発明は、種々のヒト癌で発現するEphA2という抗原と結合する抗体に関する。従って、一態様では、本発明は、抗原EphA2と選択的に結合する、抗体の1ファミリー、または1つの抗体もしくは1つのポリペプチド(抗体であってもなくてもよい)である。本発明において特許請求される抗体は、先行技術で示されるEphA2抗体の示す有効性のレベルを超えて、腫瘍細胞増殖の阻害に意外にも且つ非常に効果的である。これらの抗体のうちのいくつかは、本明細書においてLUCA19、SPL1、LUCA40、またはSG5と呼ばれている。本発明の態様では、腫瘍細胞の増殖を阻害する能力を有するが、EphA2のホスホチロシン含量を増加させない特定の抗体が発見された。
a.癌細胞上でEphA2と結合する能力;
b.インビトロまたはインビボで生きた癌細胞の表面に露出しているEphA2の一部と結合する能力;
c.EphA2のホスホチロシン含量を増加させずに腫瘍細胞の増殖を阻害する能力;
d.EphA2を発現している癌細胞に治療薬または検出可能なマーカーを送達する能力;ならびに
e.EphA2を発現している癌細胞の中に治療薬または検出可能なマーカーを送達する能力;
のうちの少なくとも1つ、さらに好ましくは2またはそれ以上を有する、治療上有効な量のEphA2抗体を前記患者に投与する工程を含む。
本明細書において開示される本発明は、抗原であるEphA2と結合する抗体およびポリペプチド、ならびにこれらの抗体およびポリペプチドを作製し、これらの抗体およびポリペプチドを用いてEphA2の発現および/または過剰発現に関連する種々の疾患ヒト癌を診断および治療する方法を提供する。EphA2は種々のヒト癌に存在することが示されており、その発現は種々のヒト癌で増加している。以下の項に特定される宿主細胞のいずれか1つにより産生されたものなどの抗EphA2抗体が生成され、それらはEphA2と選択的に結合することが示されている。
本発明の実践には、特に示さない限り、この分野の技術の範囲内にある、分子生物学(組み換え技術を含む)、細菌学、細胞生物学、生化学および免疫学の従来の手法が用いられる。そのような手法は文献、例えばMolecular Cloning:A Laboratory Manual,second edition(Sambrookら1989)Cold Spring Harbor Press;Oligonucleotide Synthesis(MJ.Gait,ed.,1984);Methods in Molecular Biology,Humana Press;Cell Biology:A Laboratory Notebook(J.E.Cellis,ed.,1998)Academic Press;Animal Cell Culture(R.I.Freshney,ed.,1987);Introduction to Cell and Tissue Culture(J.P.Mather and P.E.Roberts,1998)Plenum Press;Cell and Tissue Culture:Laboratory Procedures(A.Doyle,J.B.Griffiths,and D.G.Newell,eds.,1993−8)J.Wiley and Sons;Methods in Enzymology(Academic Press,Inc.);Handbook of Experimental Immunology(D.M.Weir and C.C.Blackwell,eds.);Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells(J.M.Miller and M.P.Calos,eds.,1987);Current Protocols in Molecular Biology(F.M.Ausubelら、eds.,1987);PCR:The Polymerase Chain Reaction,(Mullisら、eds.,1994);Current Protocols in Immunology(J.E.Coliganら、eds.,1991);Short Protocols in Molecular Biology(Wiley and Sons,1999);Immunobiology(CA.Janeway and P.Travers,1997);Antibodies(P.Finch,1997);Antibodies:a practical approach(D.Catty.,ed.,IRL Press,1988−1989);Monoclonal antibodies:a practical approach(P.Shepherd and C.Dean,eds.,Oxford University Press,2000);Using antibodies:a laboratory manual(E.Harlow and D.Lane(Cold Spring Harbor Laboratory Press,1999);The Antibodies(M.Zanetti and J.D.Capra,eds.,Harwood Academic Publishers,1995);and Cancer:Principles and Practice of Oncology(V.T.DeVitaら、eds.,J.B.Lippincott Company,1993)に十分に説明されている。
EphA2とは、分子量約130kDのポリペプチド抗原を指し、本発明の抗体はこれを対象としている。本明細書にさらに詳細に記載されるように、この抗原は2以上の異なるエピトープを有する。本発明の好ましい抗体の実施形態のいくつかは、該EphA2抗原の2またはそれ以上の特異的なエピトープのうちの1つを対象としている。現在、EphA2は対応する正常組織と比較して、ある種の癌細胞において過剰発現すると考えられている。
本発明は、EphA2と結合する抗体、ポリペプチドおよびタンパク質を含む医薬組成物、ならびにEphA2と結合する抗体、ポリペプチドおよびタンパク質をコードする配列を含むポリヌクレオチドをはじめとする組成物を包含する。本明細書において、組成物は、EphA2と結合する1またはそれ以上の抗体、ポリペプチドおよび/またはタンパク質、および/またはEphA2と結合する1またはそれ以上の抗体、ポリペプチドおよびタンパク質をコードする配列を含む1またはそれ以上のポリヌクレオチドを含む。これらの組成物は、当技術分野で周知の、バッファーを含む薬学的に受容可能な賦形剤などの好適な賦形剤をさらに含んでよい。
いくつかの方法を用いて、癌細胞でEphA2と結合するモノクローナル抗体をさらにスクリーニングすることができる。用いることのできる1つの方法は、免疫組織化学(IHC)である。標準的な免疫組織化学手法は平均的な当業者に公知である。例えば、Animal Cell Culture Methods(J.P.Mather and D.Barnes,eds.,Academic Press,Vol.57,Ch.18 and 19,pp.314−350,1998)を参照されたい。生体サンプル(例えば、組織)は、生検、剖検(autopsies)、または剖検(necropsies)から得ることができる。EphA2が癌細胞にしか存在しないことを確かめるため、LUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40を用いて、癌を有する個体由来の組織でのEphA2の存在を検出することができ、一方では、癌を患っている個体由来のその他の非癌組織、または癌を有さない個体由来の組織を対照として用いる。組織は、凍結中の損傷を防ぐ固体または半固体物質(例えば、アガロースゲルまたはOCT)に包埋した後、染色のために分割することができる。異なる臓器および異なる程度の癌を用いてモノクローナル抗体をスクリーニングすることができる。スクリーニングの目的に用いられ得る組織の例としては、限定されないが、卵巣、乳房、肺、前立腺、結腸、腎臓、皮膚、甲状腺、脳、心臓、肝臓、胃、神経、血管、骨、上部消化管、および膵臓が挙げられる。スクリーニングの目的に用いられ得る異なる癌の種類の例としては、限定されないが、癌腫、腺癌、肉腫、腺肉腫、リンパ腫、および白血病が挙げられる。
モノクローナル抗EphA2抗体、および、本明細書に開示される方法により作製される、EphA2と結合するLUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40の同等の抗体またはポリペプチド誘導体を用いて、種々の組織(限定されないが、卵巣、乳房、肺、前立腺、結腸、腎臓、皮膚、甲状腺、脳、心臓、肝臓、胃、神経、血管、骨、上部消化管、および膵臓を含む)において癌細胞の存在または不在を診断目的のために識別または検出することができる。簡単にするために、これらの方法が本明細書に記載されるいずれかのEphA2結合の実施形態に適用するという理解の下で、参照は、一般にLUCA19、SPL1、SG5もしくはLUCA40または抗体に対して行う。検出は、一般に、本明細書に記載されるEphA2と結合する抗体またはポリペプチドと細胞とを接触させること、およびEphA2と特異的に結合する抗体(例えば、LUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40、LUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40のヒト化抗体、ヒト抗体またはその他の任意のEphA2結合部分)との間の複合体の形成を含む。そのような複合体の形成は、インビトロであってもインビボであってもよい。理論に縛られることなく、モノクローナル抗EphA2抗体は、EphA2の細胞外ドメインを介してEphA2と結合することができる。本明細書において、検出には定性的および/または定量的検出が含まれ、さらに、癌細胞において増加したEphA2の発現レベルに関して、測定したレベルを正常細胞と比較することが含まれ得る。
本明細書に開示される方法により作製されるモノクローナル抗EphA2抗体および同等な抗体(ならびに本発明のその他のポリペプチドの実施形態)は、限定されないが、黒色腫、乳癌、肺癌、結腸癌、または前立腺癌をはじめとする癌を有する個体において治療目的のために用いられ得る。また、これらの治療法は、前記の連結された実施形態にも適用される。簡単にするために、これらの方法が本明細書に記載されるいずれかのEphA2結合の実施形態に適用されるという理解の下で、参照は、一般にLUCA19、SPL1、SG5もしくはLUCA40または抗体(限定されないが、本明細書に記載される連結された実施形態を含むヒト化抗体およびヒト抗体を含む)に対して行う。LUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40を用いる治療は、上記のように、インビトロおよび/またはインビボの双方で、そのような抗体とEphA2との複合体の形成を必要とし得る。一実施形態では、モノクローナル抗EphA2抗体は、癌細胞と結合して癌細胞の成長および/または増殖を低下させ得る。別の実施形態では、モノクローナル抗EphA2抗体は癌細胞と結合して癌細胞でのアポトーシス細胞死を誘導し得る。別の実施形態では、モノクローナル抗EphA2抗体は癌細胞と結合して転移の発生を遅延させ得る。別の実施形態では、モノクローナル抗EphA2抗体は癌細胞と結合してLUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40と連結された治療薬(毒素、または放射性化合物など)を癌細胞へ送達し得る。一部の実施形態のためには、治療薬(毒素など)が細胞へ導入される(すなわち内部に取り入れられる)。これらの方法に特に適した薬剤としては、細胞の内部で活性のある薬剤が挙げられる。そのような薬剤の例としては、限定されないが、サポリン、カリチアマイシン、オーリスタチン、およびメイタンシノイドが挙げられる。一般に、これらの実施形態において有効量(治療薬を標的癌細胞へ、および/または標的癌細胞の中に送達するために十分な量)が個体へ投与される。さらに別の実施形態では、癌を有する個体にLUCA19、SPL1、SG5またはLUCA40での緩和治療を行う。癌患者の緩和治療は、癌の進行に直接影響を及ぼさずに、疾患の有害症状、または疾患に対してなされた他の治療によって生じる医原性の症状を治療するかまたは軽減することを伴う。これには、疼痛、栄養補給、性的問題、心理的苦悩、鬱病、疲労、精神障害、悪心、嘔吐などの緩和が含まれる。
また、本発明は、診断および/または治療で用いる、本明細書に記載されるEphA2と結合する抗体または任意の組成物を含むキットを提供する。従って、キットはEphA2と選択的に結合する、かつ/またはEphA2と複合体を形成することができる抗体(例えば、乳癌細胞、結腸癌細胞、肺癌細胞、または前立腺癌細胞の検出に有用である)を含む。一部の実施形態では、キットは、抗EphA2抗体、または、LUCA19、SPL1、SG5もしくはLUCA40が選択的に結合するエピトープと同一のエピトープに選択的に結合する抗体を含む。一部の実施形態では、キットは、治療薬または標識薬剤と結合した、抗EphA2抗体または、LUCA19、SPL1、SG5もしくはLUCA40が選択的に結合するエピトープと同一のエピトープに選択的に結合する抗体を含む。これらのキットには、前記抗体または本明細書に記載される任意の抗体もしくはポリペプチド実施形態と治療薬または標識薬剤とを結合させるための使用説明書および/または試薬がさらに含まれ得る。いくつかの態様では、抗体(例えば、モノクローナル、ポリクローナル、ヒト、ヒト化、その他)のEphA2との結合は、個体において癌を診断するため、例えば、癌細胞の存在または不在を検出するためのキット、および乳房癌細胞、結腸癌細胞、肺癌細胞、または前立腺癌細胞の存在または不在を検出するためのキットに用いられる。その他の態様では、キットは、例えば、癌または癌の家族歴を有する個体を治療するために用いられ得る。癌を有する個体を治療するためのキットとしては、限定されないが、癌細胞の成長および/または増殖を阻害するためのキット、治療薬を癌細胞へ送達するためのキット、治療薬を癌細胞の中へ送達するためのキットが挙げられる。本発明のキットは適した包装がされており、所望により、さらなる構成要素、例えば、バッファーおよびEphA2との結合を判定する説明書(捕獲試薬、現像試薬、標識、反応表面、検出手段、対照サンプル、および解釈データなど)を提供する。説明書は、抗原結合の任意の測定(限定されないが、本明細書に記載されるアッセイ法を含む)のためであってよい。他の実施形態では、説明書は、癌細胞(乳癌細胞、肺癌細胞、結腸癌細胞、または前立腺癌細胞など)の成長および/または増殖を阻害するための説明書、治療薬を癌細胞へ送達するための説明書、治療薬を癌細胞の中へ送達するための説明書をはじめとする、本明細書に記載される任意の方法のためであってよい。一部の実施形態では、上記の試薬は複数の測定が行われ得るように、同じ個体での経時的測定または複数個体での測定が可能となるように、供給される。標識された抗ヒト抗体など、抗体の結合を検出するためのいずれかの適当な手段を用いて(そしてキットに含めて)よい(標識は酵素、フルオロフォア、化学発光物質、放射性同位元素または補酵素であってよい)。一般に、用いられる標識は酵素である。
組織または細胞培養から単離した全細胞を、特定の細胞種を代表する表面抗原に特異的なモノクローナル抗体産生のための免疫原として用いた。そのような、本発明の実践に適した方法は米国特許第6,541,225号に記載されている。概して、特定の細胞種の細胞表面抗原に対するモノクローナル抗体を産生するために、形質転換されていないB細胞をその種類の生存可能かつ無傷な細胞で、好ましくは、表面に血清を含まない細胞で免疫化することが望ましい。抗原EphA2に対するモノクローナル抗体(限定されないが、LUCA19、LUCA40、またはSPL1など)の産生に適した細胞株としては、BT−474(ATCC# HTB−20)、MDA−MB−175VII(ATCC# HB−25)、MDA−MB−361(ATCC# HB−27)、SKBR3(ATCC# HTB−30)、SKMES−1(ATCC# HTB−58)、ES−2(ATCC# CRL−1978)、SKOV3(ATCC# HTB−77)、HPAFII(ATCC# CRL−1997)、Hs700T(ATCC# HTB−147)、Colo205(ATCC# CCL−222)、HT−29(ATCC# HTB−38)、SW480(ATCC# CCL−228)、SW948(ATCC# CCL−237)、A498(ATCC# HTB−44)およびCaki−2(ATCC# HTB−47)が挙げられる。
非変性アジュバント(Ribi、R730、Corixa,Hamilton MT)をリン酸緩衝生理食塩水で2mlに再水和した。次に、この再水和アジュバント100μlを、免疫化に用いる実施例1からのいくつかの細胞ペレットとともに穏やかに混合した。BaIb/cマウスの足の裏からマウス1匹あたり約106細胞を、週に約1回または2回注入した。正確な免疫化スケジュールは次の通り。0日目、免疫化+Ribi。3日目、免疫化+Ribi。7日目、免疫化+Ribi。24日目、免疫化−Ribi。29日目、免疫化−Ribi。32日目、免疫化−Ribi。36日目、免疫化−Ribi。44日目、免疫化−Ribi。51日目、免疫化−Ribi。69日目、抗体価検査のため出血。71日目、免疫化+Ribi。74日目、免疫化+Ribi。81日目、免疫化+Ribi。91日目、融合前の追加免疫(Ribi無し)。104日目、融合のため結節を収集。
ヒト癌細胞、例えば、限定されないが、SKMES−1、786−O、およびColo205細胞株を、10.0mM EDTAの存在下、組織培養フラスコから分離し、1400rpmで5分間遠心分離し、1% BSAおよび2mM EDTAを含むPBS(FACS希釈液)に再懸濁した。細胞を計数し、107細胞/mlに調整した。約0.1mlの細胞を、100μl FACS希釈液とともに37℃にて30分間インキュベートした。タンパク質Gアフィニティークロマトグラフィーを用いてヒト癌細胞株と結合するモノクローナル抗体を組織培養上清から精製した。必要であれば、過剰なウシIgGを除去するために、抗体精製の前に組織培養上清をウシIgGカラムに通してもよい。次の物質が抗体精製プロセスに用いられた:ハイブリドーマ組織培養上清、Immunopure(G)IgG結合バッファー(Pierce #21011 Rockford,IL)、Immunopure IgG溶出バッファー(Pierce #21009)、濃HCl(pH調節用)、Corning 1リットルPES(ポリエーテルスルホン)、0.22μmフィルター(Corning #431098,Corning,NY)、Amersham Pharmacia AKTA Explorer System(Amersham Biosciences,Piscataway,NJ)、Protein−G Sepharose 4 Fast Flow(Amersham Biosciences #17−0618−03)、3M チオシアン酸カリウム/50mM Tris pH7.8で構成されるストリッピングバッファー、およびPBS(リン酸緩衝生理食塩水)、3M Tris pH9.0。
腎細胞癌細胞株SW480(ATCC# CCL−228)を175cm2培養皿でコンフルエントに達するまで増殖させた。コンフルエントな単層をハンクス平衡塩(重炭酸ナトリウムまたはフェノールレッドを含まないHBSS+;10mM HEPES、pH7.4;Sigma Chemicalsで緩衝)で3回洗浄し、200μgのスルホ−NHS−LC−ビオチン(Pierce Endogen)で室温にて30分間ビオチン化した。次に、細胞を0.1M Trisを含むHBSS+、pH7.4(Sigma Chemicals)で洗浄し、0.1M Trisを含むHBSS+、pH7.4中で室温にて15分間インキュベートした。細胞を最後にHBSS+で3回洗浄し、氷上で、溶解バッファー(2% Triton X−100、2mM PMSF、0.1%アジ化ナトリウム、および溶解バッファー5mlあたり1錠のEDTAフリー、コンプリート・ミニ−プロテアーゼカクテル(Roche Molecular Biochemicals)を含むHBSS+)中、5分間のインキュベーションにより溶解した。
癌患者由来の凍結した組織サンプルをOCT化合物中に包埋し、ドライアイスを用いてイソペンタン中で急速冷凍した。凍結切片を、ライカ3050CMミクロトームを用いて厚さ8〜10μmに切り、SuperFrost Plusスライド(VWR #48311−703)に解凍マウントした。切片を75%アセトン/25%エタノールで10℃にて固定し、室温にて2〜4時間風乾させた。固定した切片を使用するまで−80℃で保存した。
モノクローナル抗体mu−LUCA19、mu−LUCA40およびmu−SPL1を用いて異なる組織種由来の様々な細胞株との反応を試験した。弱い陽性染色を「+」、中程度の陽性染色を「++」、強い陽性染色を「+++」および陰性の染色を「−」として結果を記録した。
SPL1、LUCA19、SG5およびLUCA40が反応性である抗原を同定するため、免疫沈降(Ippt)実験を行った。免疫沈降のために、175cm2フラスコ30個のSW480細胞を30mlの溶解バッファーで溶解した。溶解バッファーは、2% Triton X−100、プロテアーゼ阻害剤カクテル(溶解バッファー5mlあたり1錠のRoche Molecular Biochemicals製コンプリート・ミニ、EDTAフリー、プロテアーゼカクテル)、0.1%アジ化ナトリウム、および2mM PMSFで強化されたHanks緩衝塩溶液(HBSS+)で構成された。細胞ライセートを4℃にて30分間24,000×gで浄化した後、1mlのタンパク質G(Amersham Pharmacia)からなるカラムに通した。次に、事前に洗浄したSW480ライセートを、mu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5またはmu−LUCA40に吸収させたタンパク質G(10μgのmu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5またはmu−LUCA40を5μlのタンパク質Gとともに室温にて30分間プレインキュベートした)とともに4℃にて2時間インキュベートした。次に、ビーズ(事前に洗浄したタンパク質Gビーズとタンパク質Gを吸収したmu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5またはmu−LUCA40ビーズの双方)を溶解バッファーで3回洗浄し、30μlのSDSサンプルバッファー(3% SDS、20%グリセロール、10mM DTT、2% ブロモフェノールブルー、0.1M Tris、pH8.0)で溶出した。次に、25μlの溶出液をSDS−PAGEで分離し、クーマシー染色により視覚化した。5μlの溶出液をSDS−PAGEで分離し、さらにウエスタンブロッティングのためにニトロセルロースに移した。
Mu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5およびmu−LUCA40と結合する抗原を実施例7に記載されるように単離し、Kaneら、J Bio Chem.2002 June 21;277(25):22115−8、Epub May 06の方法に従ってタンデム質量分析に付した。タンパク質をSDS−PAGEで分離し、ゲルをコロイド状のクーマシーブルー試薬(Invitrogen)で染色する。対象のタンパク質をゲル中でトリプシン消化させる。トリプシンペプチドを、Wuら、Nature 405:477−482(2000)に記載されるように、イオントラップ質量分析計(Thermo−Finnigan LCDQ DECA XP)でマイクロキャピラリー液体クロマトグラフィーMS/MSにより配列決定する。
mu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5およびmu−LUCA40と結合するEphA2上の特異的なエピトープを、競合サンドイッチELISAを用いて評価した。50μl/ウェルの10μg/ml濃度のmu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5またはmu−LUCA40をHBSS(重炭酸ナトリウムおよびフェノールレッドを含まないハンクス平衡塩)に希釈し、室温にて2時間放置して96ウェルMaxisorbマイクロタイタープレートと結合させた。次に、コーティングされたプレートを、1% BSA(W/V)を含有するHBSSで30分間ブロッキングした。HT−29細胞を実施例7に記載されるように溶解させた。次に、ブロッキングしたマイクロタイターウェルに、ライセートをウェルあたり150μlの量で適用する。ライセートを室温にて1時間置いてインキュベートさせる。インキュベーション後、プレートを次にブロッキングバッファーで完全に洗浄する。ビオチン化したmu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5およびmu−LUCA40(濃度50μl/ウェル、1μg/ml)をマイクロタイターウェルに添加し、室温にて1時間置いてインキュベートさせる。ビオチン化したmu−SPL1、mu−LUCA19、mu−SG5およびmu−LUCA40は、精製抗体1mgにつき1μlのDMSOに希釈した200mg/mlスルホ−NHS−LC−ビオチンを室温にて2時間インキュベートすることにより調製した。次に、終濃度0.1M Tris、pH7.4で室温にて30分間ビオチン化抗体をクエンチする。次にビオチン化した抗体を分子量30kDaのカットオフフィルターに通して濃縮することにより遊離ビオチンから分離する。ビオチン化抗体を1時間インキュベートした後、プレートをHBSSで完全に洗浄する。西洋ワサビペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジン(SA−HRP)をHBSSに濃度1:10,000にて希釈する。希釈したSA−HRPを洗浄したマイクロタイターウェルに50μl/ウェルで加え、室温にて30分間インキュベートさせる。SA−HRPのインキュベーションの後、プレートを最後にHBSSで完全に洗浄し、色変化反応用の1−Step TMB基質100μl/ウェルを添加して発色させる。発色は、ミリQ水に希釈した1Mリン酸100μl/ウェルを添加して停止させる。次に、ThermoMaxマイクロタイタープレートリーダーを用いて発色したプレートを450nmで分析する。
内因性のEphA2を発現する神経膠腫細胞株であるG55細胞におけるEphA2の刺激をmu−LUCA19およびmu−SG5を用いて調査した。細胞を30μg/mlまでの漸増濃度のmu−LUCA19かまたはmu−SG5で処理し、免疫沈降したEphA2のホスホチロシン含量を、ホスホチロシン特異的抗体(4G10、Upstate Cell Signaling Solutions,New York)を用いてウエスタンブロット解析により測定した。mu−LUCA19かまたはmu−SG5のいずれかで処理したG55細胞から免疫沈降したEphA2中のホスホチロシン含量には差は見られなかった。全EphA2含量の対照ウエスタンブロットを行って、各々の処理条件について免疫沈降した全EphA2タンパク質が同一であることを確認した。A549細胞およびmu−LUCA19およびmu−SG5抗体を用いて類似の結果が見られた。これらの結果は、内因性EphA2を発現している細胞をmu−LUCA19かまたはmu−SG5のいずれかで処理してもEphA2のホスホチロシン含量を増加も減少もさせないことを示す。
抗体が、単層としてインビトロで増殖された場合に細胞数を減少させる能力は、様々な量の試験抗体または対照精製抗体の存在下または不在下で増殖された細胞単層を用いて評価することができ、細胞数の変化はMTTを用いて評価することができる。MTTは、ミトコンドリア酵素の活性を測定し、相対生存細胞数を相互に関連付ける染料である。目的の細胞を96ウェルプレート中の10%ウシ胎児血清を補給したF12/DMEM(1:1)成長培地に蒔いて増殖させた。細胞株を、濃度範囲1500〜2500細胞/ウェルで96ウェル皿のウェルに3つ組で蒔いた。播種した直後に、mu−SPL1、mu−LUCA19またはmu−LUCA40を添加した。細胞を5% CO2/空気にて5日間、加湿インキュベーター中で37℃にてインキュベートした。アッセイの終わりに、MTTをPBS(5mg/ml)に溶かし、直接ウェルに1:10希釈で添加した。プレートをインキュベーター内に戻して4時間置いた。インキュベーションの後、培地を除去し、100μl DMSOを添加してMTTの沈殿を可溶化した。プレートをO.D.540nmで読み取った。これらの実験において、mu−LUCA40は786−O、A549、Caki−2、ES−2、SKMES−1、およびSKOV3細胞株の増殖を阻害し、SPL1およびLUCA19の増殖は阻害しなかった。
Mab−ZAP(Advanced Targeting Systems,San Diego,CA)は、タンパク質合成を阻害する毒素であるサポリンにコンジュゲートした抗マウスIgGである。この毒素は細胞膜に対して不透過性である。モノクローナル抗体が内部移行可能な細胞表面抗原と結合していると、毒素コンジュゲートは結合しているモノクローナルと結合することができ、それにより、細胞の内部に取り込まれることができ、最終的に細胞を死滅させることができる。毒性作用の実証は内部移行に依存しているため、Mab−ZAPは、細胞毒性効果を表するために内部移行に依存している任意の毒素の適した標的として所定の表面抗原が役立つかどうかを評価するために役立ち得る。そのようなものとして、Mab−ZAPはそのような内部移行に依存する毒素、例えばメイタンシノイドおよびカリチアマイシンのモデルとして役立つ。
ヒト腫瘍細胞をヌード(nu/nu)マウスの腎被膜下に移植した。3つの腫瘍細胞株を用いた。ES−2およびSKOV3−3卵巣腫瘍由来細胞株、およびCaki−2腎腫瘍由来細胞株をATCCから入手した。一部の研究では、両方の腎臓に異種移植を行った。処置動物には、移植は腎被膜に行った(コラーゲンゲル中500K細胞)。抗EphA2モノクローナル抗体SPL1またはLUCA40を濃度50mg/kgおよび0.01mL/体重gの量で腹膜内に注射した。移植後2日目に投薬を開始し、SPL1、LUCA40またはPBSの用量を単回の急速注射として週に3回投与した。対照マウスにはPBSのみを注射した。最後の注射から3日後、動物を安楽死させ、移植片を含む腎臓を調べた。
この調査は、卵巣癌および肺癌の皮下モデルにおけるSPL1抗体の用量反応性抗腫瘍データを試験するようデザインされた。
図1に示すように、SPL1処置A549腫瘍異種移植片のサブセットは、投薬の停止後に徐々に再び増殖したことが見出された(腫瘍の再増殖は投薬の停止後に2倍またはそれ以上の量での増大と定義する)。100mg/kg治療群の16匹のマウスのうち7匹には腫瘍の再増殖が見られたが、100mg/kg治療群の16匹のマウスのうち9匹は投薬の停止後も腫瘍のないままであった。同様に、30mg/kg治療群の15匹のマウスのうち3匹に腫瘍の再増殖が見られたが、30mg/kg治療群の15匹のマウスのうち12匹は投薬の停止後も腫瘍のないままであった。図1にグラフで示した、「投薬停止」後の時点での結果は、腫瘍の再増殖したマウスの腫瘍サイズのみが表されている。
Claims (27)
- EphA2に結合する単離された抗体、またはその抗原結合断片であって、
前記抗体または前記断片は、
(A) ATCC番号PTA−5070を有する宿主細胞によって、または
(B) 前記宿主細胞の後代によって
産生され、
ATCC番号PTA−5070を有する細胞株によって産生された抗体LUCA19の結合特異性を保持している単離された抗体、またはその抗原結合断片。 - 前記単離された抗体はヒト化抗体である、請求項1に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体は、ATCC番号PTA−5070を有する細胞株によって産生された抗体LUCA19の、重鎖および軽鎖可変領域由来の重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含むキメラ抗体である、請求項1に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記キメラ抗体は、ヒト抗体由来の重鎖定常領域および軽鎖定常領域を含む、請求項3に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体が、治療薬に結合されている、請求項1〜4のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記抗原結合断片は、Fab、Fab’、F(ab’)2、およびFvからなる群より選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の単離された抗体の抗原結合断片。
- EphA2に結合する単離された抗体、またはその抗原結合断片であって、
前記抗体または前記断片は、
(A) ATCC番号PTA−6059を有する宿主細胞によって、または
(B) 前記宿主細胞の後代によって
産生され、
ATCC番号PTA−6059を有する細胞株によって産生された抗体SPL1の結合特異性を保持している単離された抗体、またはその抗原結合断片。 - 前記単離された抗体はヒト化抗体である、請求項7に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体は、ATCC番号PTA−6059を有する細胞株によって産生された抗体SPL1の、重鎖および軽鎖可変領域由来の重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含むキメラ抗体である、請求項7に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記キメラ抗体は、ヒト抗体由来の重鎖定常領域および軽鎖定常領域を含む、請求項9に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体が、治療薬に結合されている、請求項7〜10のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記抗原結合断片は、Fab、Fab’、F(ab’)2、およびFvからなる群より選択される、請求項7〜11のいずれか1項に記載の単離された抗体の抗原結合断片。
- EphA2に結合する単離された抗体、またはその抗原結合断片であって、
前記抗体または前記断片は、
(A) ATCC番号PTA−6056を有する宿主細胞によって、または
(B) 前記宿主細胞の後代によって
産生され、
ATCC番号PTA−6056を有する細胞株によって産生された抗体LUCA40の結合特異性を保持している単離された抗体、またはその抗原結合断片。 - 前記単離された抗体はヒト化抗体である、請求項13に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体は、ATCC番号PTA−6056を有する細胞株によって産生された抗体LUCA40の、重鎖および軽鎖可変領域由来の重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含むキメラ抗体である、請求項13に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記キメラ抗体は、ヒト抗体由来の重鎖定常領域および軽鎖定常領域を含む、請求項15に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体が、治療薬に結合されている、請求項13〜16のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記抗原結合断片は、Fab、Fab’、F(ab’)2、およびFvからなる群より選択される、請求項13〜17のいずれか1項に記載の単離された抗体の抗原結合断片。
- EphA2に結合する単離された抗体、またはその抗原結合断片であって、
前記抗体または前記断片は、
(A) ATCC番号PTA−7356を有する宿主細胞によって、または
(B) 前記宿主細胞の後代によって
産生され、
ATCC番号PTA−7356を有する細胞株によって産生された抗体SG5の結合特異性を保持している単離された抗体、またはその抗原結合断片。 - 前記単離された抗体はヒト化抗体である、請求項19に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体は、ATCC番号PTA−7356を有する細胞株によって産生された抗体SG5の、重鎖および軽鎖可変領域由来の重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含むキメラ抗体である、請求項19に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記キメラ抗体は、ヒト抗体由来の重鎖定常領域および軽鎖定常領域を含む、請求項21に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記単離された抗体が、治療薬に結合されている、請求項19〜22のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片。
- 前記抗原結合断片は、Fab、Fab’、F(ab’)2、およびFvからなる群より選択される、請求項19〜23のいずれか1項に記載の単離された抗体の抗原結合断片
- 治療薬又は検出可能なマーカーとコンジュゲートさせた請求項1〜24のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片の治療上有効な量を薬学的に受容可能な担体とともに含む医薬組成物。
- 請求項7〜18のいずれか1項に記載の単離された抗体、またはその抗原結合断片の治療上有効な量を薬学的に受容可能な担体とともに含む医薬組成物。
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