JP2024052890A - 薬学的組成物、抗原結合分子、治療方法、およびスクリーニング方法 - Google Patents
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Abstract
Description
CD4およびCD70二重陽性細胞やHER2およびEGFR二重陽性細胞を用いた二重特異性抗体の検討では、単陽性細胞と比較して10倍程度の傷害活性向上が図られている(非特許文献24,25)。
そのような中、近年、二重特異性抗体の作製方法に関する様々な技術が開発されている(特許文献1~6)。
前記第1の抗原結合分子および前記第2の抗原結合分子が、共有結合によって結合しておらず、そして、液中で混合した場合にホモ二量体よりもヘテロ二量体を形成しやすい、薬学的組成物。
[2]表面プラズモン共鳴において1 mm2あたり50 pgの前記第1の抗原結合分子が固定化されたセンサーチップと2.5 mg/mLの前記第2の抗原結合分子を含有する測定液とを用いて両抗原結合分子の親和性を測定したときに、前記第1の抗原結合分子に対する前記第2の抗原結合分子の結合量がモル比で1:0.1~1:0.9の範囲内にある、[1]に記載の組成物。
[4]前記ヘテロ二量体を形成した場合における前記ヘテロ二量体のFcγRへの結合活性が、前記第1の抗原結合分子の単量体もしくは前記第2の抗原結合分子の単量体のFcγRへの結合活性、または前記ホモ二量体を形成した場合における前記ホモ二量体のFcγRへの結合活性よりも高い、[1]から[3]のいずれかに記載の組成物。
(i)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が正電荷の領域を有し、他方が負電荷の領域を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記正電荷の領域が前記負電荷の領域に相互作用する、改変
(ii)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が凸部を有し、他方が凹部を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記凸部が前記凹部に嵌合して相互作用する、改変
(iii)前記第1のCH3および前記第2のCH3が改変されたIgGのCH3であり、前記改変されたIgGのCH3はその一部がIgAのCH3の一部と置き換えられており、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記第1のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部と前記第2のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部とが相互作用する、改変
[6]前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方または両方が、EUナンバリングシステムでの357位、397位および409位のアミノ酸残基のうち少なくとも一つの他のアミノ酸残基への置換をさらに有する、[1]から[5]のいずれかに記載の組成物。
[8]前記第1のポリペプチドおよび前記第2のポリペプチドのいずれか一方または両方における前記ヒンジ領域部分が、EUナンバリングシステムでの226位および229位のいずれか一方または両方のシステイン残基における他のアミノ酸残基への改変を有する、[7]に記載の組成物。
[10]前記第1の抗原および前記第2の抗原を発現する細胞が存在する条件下でのエフェクター機能が、前記第2の抗原を発現せず前記第1の抗原を発現する細胞または前記第1の抗原を発現せず前記第2の抗原を発現する細胞が存在する条件下よりも高い、[1]から[9]のいずれかに記載の組成物。
前記第1の抗原結合分子および前記第2の抗原結合分子が、共有結合によって結合しておらず、
前記第1のCH3および前記第2のCH3が以下の(iv)から(vi)の少なくとも一の改変を有する、薬学的組成物。
(iv)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が正電荷の領域を有し、他方が負電荷の領域を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記正電荷の領域が前記負電荷の領域に相互作用する、改変
(v)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が凸部を有し、他方が凹部を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記凸部が前記凹部に嵌合して相互作用する、改変
(vi)前記第1のCH3および前記第2のCH3が改変されたIgGのCH3であり、前記改変されたIgGのCH3はその一部がIgAのCH3の一部と置き換えられており、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記第1のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部と前記第2のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部とが相互作用する、改変
第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む第2のポリペプチドとを有する第2の抗原結合分子と液中で混合した場合に前記第1の抗原結合分子間のホモ二量体よりも前記第2の抗原結合分子とのヘテロ二量体を形成しやすく、前記ヘテロ二量体において、前記第1の抗原結合分子と前記第2の抗原結合分子とは共有結合によって結合していない、第1の抗原結合分子。
[13]第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む第2のポリペプチドとを有する第2の抗原結合分子であって、
第1の抗原に結合する第1の抗原結合領域と、第1のCH2および第1のCH3のいずれか一方または両方を含む第1のポリペプチドとを有する第1の抗原結合分子と液中で混合した場合に前記第2の抗原結合分子間のホモ二量体よりも前記第1の抗原結合分子とのヘテロ二量体を形成しやすく、前記ヘテロ二量体において、前記第1の抗原結合分子と前記第2の抗原結合分子とは共有結合によって結合していない、第2の抗原結合分子。
前記第1の抗原結合分子および前記第2の抗原結合分子は、投与前および投与後に共有結合によって結合せず、前記病原細胞の表面でヘテロ二量体を形成してエフェクター機能を奏する、方法。
(a)第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子が、共有結合によって結合しない、
(b)第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子が、第1の抗原結合分子間または第2の抗原結合分子間のホモ二量体よりも、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の間のヘテロ二量体を形成しやすい、
(c)表面プラズモン共鳴において1 mm2あたり50 pgの第1の抗原結合分子が固定化されたセンサーチップと2.5 mg/mLの第2の抗原結合分子を含有する測定液とを用いて両抗原結合分子の親和性を測定したときに、当該第1の抗原結合分子に対する当該第2の抗原結合分子の結合量がモル比で1:0.1~1:0.9の範囲内にある、
第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の組み合わせを選択する方法。
本明細書において「ポリペプチド」は、複数のアミノ酸がペプチド結合したペプチドすべてを包含する。本明細書においては、ポリペプチドを「ペプチド」または「タンパク質」と呼ぶことがある。
本明細書において「抗原結合領域」は、抗原に結合する活性を有する化合物を意味する。抗原結合領域は、ペプチド性であってもよく、非ペプチド性であってもよい。
本明細書において、「CH2」は、抗体のCH2の1鎖のポリペプチドを意味する。具体的には、CH2は、EUナンバリングシステムでのH鎖231~340位のアミノ酸残基で示される領域であり、本明細書では野生型のほか、野生型においてアミノ酸残基の置換、付加、または欠失させた改変体も包含する。
本明細書において、「CH3」は、抗体のCH3の1鎖のポリペプチドを意味する。具体的には、CH3は、EUナンバリングシステムでのH鎖341位からC末端までのアミノ酸残基で示される領域であり、本明細書では野生型のほか、野生型においてアミノ酸残基の置換、付加、または欠失させた改変体も包含する。
本明細書において、「CL」は、抗体のCLの1鎖のポリペプチドを意味する。具体的には、CLは、EUナンバリングシステムでのL鎖108位からC末端までのアミノ酸残基で示される領域であり、本明細書では野生型のほか、野生型においてアミノ酸残基の置換、付加、または欠失させた改変体も包含する。
一態様において、抗体半分子は、キメラ抗体やヒト化抗体に由来するものを包含する。
一態様において、抗体半分子は、IgG、IgM、IgA、IgD、IgEなどの各種アイソタイプに由来するものを包含する。抗体半分子は、好ましくはIgG由来のものである。IgGには、IgG1、IgG2、IgG3およびIgG4が存在する。抗体半分子は、これらのうちいずれのサブタイプ由来でもよい。抗体半分子は、エフェクター機能を発揮しやすい観点から、好ましくはIgG1またはIgG2由来である。
一局面において、本発明は、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子のいずれか一方または両方を含有する薬学的組成物を提供する。
第1の抗原結合分子は、第1の抗原結合領域と第1のポリペプチドとを有する。
第1の抗原結合領域は、第1の抗原に結合する領域である。好ましくは、第1の抗原結合領域は、抗体半分子の可変領域部分またはその第1の抗原結合性断片を含んでいる。第1の抗原結合性断片とは、第1の抗原への結合性を保持した、抗体半分子の可変領域部分の断片を意味する。
好ましくは、第1の抗原および第2の抗原のいずれか一方または両方が異常細胞に発現しているが正常細胞では発現しておらず、より好ましくは、第1の抗原および第2の抗原の両方が異常細胞に発現しているが正常細胞では発現していない。
第1のポリペプチドは、第1のCH2および第1のCH3のいずれか一方または両方を含む。第1のポリペプチドは、好ましくは、第1のCH3を含む。
一態様において、第1のポリペプチドは、抗体半分子におけるヒンジ領域部分をさらに含んでいてもよい。本態様において、第1のポリペプチドは、抗体半分子におけるFc領域部分を含んでいてもよい。
第1の抗原結合分子は、上述の第1の抗原結合領域および第1のポリペプチド以外の化合物を有していてもよい。「第1の抗原結合領域と第1のポリペプチド以外の化合物」は、例えば、ペプチド性または非ペプチド性のリンカー、およびその他の化合物などが挙げられる。その他の化合物としては、ペプチド性または非ペプチド性の細胞傷害剤などが挙げられる。
第2の抗原結合分子は、第2の抗原結合領域と第2のポリペプチドとを有する。
第2の抗原結合領域は、第2の抗原に結合する領域である。好ましくは、第2の抗原結合領域は、抗体半分子の可変領域部分またはその第2の抗原結合性断片を含んでいる。第2の抗原結合性断片とは、第2の抗原への結合性を保持した、抗体半分子の可変領域部分の断片を意味する。
好ましくは、第1の抗原および第2の抗原のいずれか一方または両方が異常細胞に発現しているが正常細胞では発現しておらず、より好ましくは、第1の抗原および第2の抗原の両方が異常細胞に発現しているが正常細胞では発現していない。
第2のポリペプチドは、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む。第2のポリペプチドは、好ましくは、第2のCH3を含む。
一態様において、第2のポリペプチドは、抗体半分子におけるヒンジ領域部分をさらに含んでいてもよい。本態様において、第2のポリペプチドは、抗体半分子におけるFc領域部分を含んでいてもよい。
第2の抗原結合分子は、上述の第2の抗原結合領域および第2のポリペプチド以外の化合物を有していてもよい。「第2の抗原結合領域と第2のポリペプチド以外の化合物」は、例えば、ペプチド性または非ペプチド性のリンカー、およびその他の化合物などが挙げられる。その他の化合物としては、ペプチド性または非ペプチド性の細胞傷害剤などが挙げられる。
第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、共有結合によって結合していない。薬学的組成物中で、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、共有結合によって結合していない限り相互作用していてもよい。共有結合によらない該相互作用としては、水素結合および分子間結合などが挙げられる。該相互作用の量は、好ましくは少ない。該量が少ないほど、副作用がより低減される。
当該モル比は、第2の抗原結合分子の結合量の上限値として、1:0.9以下であればよく、好ましくは1:0.8以下、より好ましくは1:0.7以下、さらに好ましくは1:0.65以下、最も好ましくは1:0.5以下である。当該上限値がより低いほど、第1の抗原および第2の抗原を発現する細胞が存在しない条件下でヘテロ二量体がより形成されにくく、副作用がより低減される。
一方、当該モル比は、第2の抗原結合分子の結合量の下限値として、1:0.1以上であればよく、好ましくは1:0.14以上、より好ましくは1:0.17以上、さらに好ましくは1:0.2以上、最も好ましくは1:0.23以上である。当該下限値がより高いほど、第1の抗原および第2の抗原を発現する細胞の表面で第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子のヘテロ二量体が形成されやすくなり、そしてエフェクター機能がより高くなる。
表面プラズモン共鳴による測定において用いられる測定液としては、例えば、HBS-EP+10X(GEヘルスケア)が使用される。HBS-EP+10Xは10倍の濃度にされた測定液であるから、使用時には10分の1に希釈して使用される。使用時の測定液の具体的な組成は、0.01MのHEPES、0.15MのNaCl、3mMのEDTA、0.05% (v/v)のSurfactantP20、pH 7.4である。測定時の測定液の好ましい温度は25℃である。
副作用を低減する観点から、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、好ましくは、液中で相互作用しにくい。しかしながら、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の間の該相互作用は平衡状態にあるため、薬学的組成物中における対象への投与に適した濃度以上に、液中で第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の濃度を高めた場合、該相互作用が生じる可能性がある。その場合において、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の濃度を高くすればするほど、相互作用する第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の量は増加する。
(i)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が正電荷の領域を有し、他方が負電荷の領域を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記正電荷の領域が前記負電荷の領域に相互作用する、改変
(ii)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が凸部を有し、他方が凹部を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記凸部が前記凹部に嵌合して相互作用する、改変
(iii)前記第1のCH3および前記第2のCH3が改変されたIgGのCH3であり、前記改変されたIgGのCH3はその一部がIgAのCH3の一部と置き換えられており、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記第1のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部と前記第2のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部とが相互作用する、改変
当該細胞が存在しない条件下には、第1の抗原および第2の抗原を発現する細胞が存在しないが、第2の抗原を発現せず第1の抗原を発現する細胞または第1の抗原を発現せず第2の抗原を発現する細胞が存在する条件下が包含される。すなわち、「第1の抗原および第2の抗原を発現する細胞が存在する条件下でのヘテロ二量体の形成量が、細胞が存在しない条件下におけるよりも多い」には、薬学的組成物を生体内に投与したときに、第1の抗原および第2の抗原を発現する細胞の表面でのヘテロ二量体の形成量が、第2の抗原を発現せず第1の抗原を発現する細胞または第1の抗原を発現せず第2の抗原を発現する細胞の表面でのヘテロ二量体の形成量よりも多いことが包含される。
本態様においてFcγRは、たとえば、げっ歯類および霊長類のFcγRが挙げられ、これらのうちいずれか一のFcγRでよい。本態様においてFcγRは、好ましくはげっ歯類および霊長類のFcγRである。げっ歯類は好ましくはマウスおよびラットである。霊長類は好ましくはカニクイザルおよびヒトである。本態様においてFcγRは、ヒトFcγRと、これと構造的に相同性があり、同様の機能的を有するげっ歯類およびヒト以外の霊長類のホモログが挙げられる。
本態様におけるFcγRのサブクラスとしては、ヒトFcγRI、ヒトFcγRIIおよびヒトFcγRIII、ならびにこれらのげっ歯類およびヒト以外の霊長類のホモログが挙げられる。これらの中でも、FcγRは、好ましくはヒトFcγRIIもしくはヒトFcγRIII、またはこれらのげっ歯類およびヒト以外の霊長類のホモログであり、より好ましくはヒトFcγRIIIまたはこのげっ歯類およびヒト以外の霊長類のホモログである。ヒトFcγRは、好ましくはヒトFcγRIIまたはヒトFcγRIIIであり、より好ましくはヒトFcγRIIIである。
本態様におけるヒトFcγRIIは、さらにヒトFcγRIIA、ヒトFcγRIIBおよびヒトFcγRIICに分けられる。これらの中でも、ヒトFcγRIIは、好ましくはヒトFcγRIIBである。ヒトFcγRIIIは、さらにヒトFcγRIIIAおよびヒトFcγRIIIBに分けられる。これらの中でも、ヒトFcγRIIIは、好ましくはヒトFcγRIIIAである。
エフェクター機能は、好ましくはADCCおよびCDCであり、より好ましくはADCCである。
該態様において、より好ましくは、EUナンバリングシステムでの226位および229位のいずれか一方または両方のシステイン残基における他のアミノ酸残基への置換に、上述の第1のCH3および第2のCH3のいずれか一方または両方の、EUナンバリングシステムでの357位、397位および409位のアミノ酸残基のうち少なくとも一つにおける他のアミノ酸残基への置換が組み合わせられる。これらの改変の組み合わせにより、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、共有結合によって結合していないものとなり、さらに液中で混合した場合にホモ二量体よりもヘテロ二量体を形成しやすいものとなる。
薬学的組成物は、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子以外にその他の成分を含有していてもよい。
その他の成分としては、例えば、薬学的に許容される担体が挙げられる。
薬学的組成物は、好ましくは非経口投与により投与される。例えば、注射剤型、経鼻投与剤型、経肺投与剤型、経皮投与型の組成物とすることができる。例えば、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射などにより全身または局部的に投与することができる。
第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、同じ剤に調剤されてもよく、別々の剤に調剤されてもよい。薬学的組成物が他の成分として細胞傷害剤を含有する場合、細胞傷害剤は第1の抗原結合分子または第2の抗原結合分子と同じ剤に調剤されてもよく、別々の剤に調剤されてもよい。別々の剤に調剤された場合には投与するタイミングを含有成分ごとに決定され得る。
薬学的組成物の対象疾患は、特に限定されないが、好ましくは第1の抗原および第2の抗原を発現する病原細胞に起因する疾患である。すなわち、該疾患は、第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子が細胞表面でヘテロ二量体を形成し、エフェクター機能を発揮させることが望ましい疾患である。
具体的な対象疾患としては、例えば、細胞増殖性疾患、免疫亢進性疾患、感染性疾患などが挙げられる。細胞増殖性疾患としては、腫瘍が挙げられる。免疫亢進性疾患としては、自己免疫疾患が挙げられる。感染性疾患としては、細菌感染およびウイルス感染が挙げられる。
第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、タンパク質を得るための一般的な方法により製造される。抗原結合分子は、通常、これらをコードする核酸を用いて、宿主細胞に発現させて得られる。宿主細胞で発現した抗原結合分子は、通常、宿主細胞から回収され、精製される。第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子は、宿主細胞に共発現させて得てもよく、別々の宿主細胞に発現させて得てもよい。以下、具体的な製造方法について述べる。
1.第1の抗原結合分子の別の態様
第1の抗原結合分子の別の具体的な態様としては、例えば、第1の抗原に結合する第1の抗原結合領域と、第1のCH2および第1のCH3のいずれか一方または両方を含む第1のポリペプチドとを有する第1の抗原結合分子であって、第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む第2のポリペプチドとを有する第2の抗原結合分子と液中で混合した場合に前記第1の抗原結合分子間のホモ二量体よりも前記第2の抗原結合分子とのヘテロ二量体を形成しやすく、前記ヘテロ二量体において、前記第1の抗原結合分子と前記第2の抗原結合分子とは共有結合によって結合していない、第1の抗原結合分子、が挙げられる。
本態様において、第1の抗原結合領域、第1のポリペプチド、およびこれら以外のその他の部分は、「1.第1の抗原結合分子」で述べたものと同じである。第2の抗原結合領域、第2のポリペプチド、およびこれら以外のその他の部分は、「2.第2の抗原結合分子」で述べたものと同じである。第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子との関係は、「3.第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子の関係」で述べたものと同じである。
本態様において、第1の薬学的組成物は、第2の抗原結合分子を含有しない以外は、上述の「1.第1の抗原結合分子」、「2.第2の抗原結合分子」、「3.第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子の関係」、「4.その他の成分」、「5.剤形」、「6.対象疾患」および「7.製造方法」と同じである。
第2の抗原結合分子の別の具体的な態様としては、例えば、第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む第2のポリペプチドとを有する第2の抗原結合分子であって、第1の抗原に結合する第1の抗原結合領域と、第1のCH2および第1のCH3のいずれか一方または両方を含む第1のポリペプチドとを有する第1の抗原結合分子と液中で混合した場合に前記第2の抗原結合分子間のホモ二量体よりも前記第1の抗原結合分子とのヘテロ二量体を形成しやすく、前記ヘテロ二量体において、前記第1の抗原結合分子と前記第2の抗原結合分子とは共有結合によって結合していない、第2の抗原結合分子、が挙げられる。
本態様において、第1の抗原結合領域、第1のポリペプチド、およびこれら以外のその他の部分は、「1.第1の抗原結合分子」で述べたものと同じである。第2の抗原結合領域、第2のポリペプチド、およびこれら以外のその他の部分は、「2.第2の抗原結合分子」で述べたものと同じである。第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子との関係は、「3.第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子の関係」で述べたものと同じである。
本態様において、第3の薬学的組成物は、第1の抗原結合分子を含有しない以外は、上述の「1.第1の抗原結合分子」、「2.第2の抗原結合分子」、「3.第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子の関係」、「4.その他の成分」、「5.剤形」、「6.対象疾患」および「7.製造方法」と同じである。
薬学的組成物の別の具体的な態様としては、例えば、第1の抗原に結合する第1の抗原結合領域と、第1のCH3を含む第1のポリペプチドとを有する第1の抗原結合分子、および第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH3を含む第2のポリペプチドとを有する第2の抗原結合分子を含有し、前記第1の抗原結合分子および前記第2の抗原結合分子が、共有結合によって結合しておらず、前記第1のCH3および前記第2のCH3が以下の(iv)から(vi)の少なくとも一の改変を有する、薬学的組成物、が挙げられる。
(iv)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が正電荷の領域を有し、他方が負電荷の領域を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記正電荷の領域が前記負電荷の領域に相互作用する、改変
(v)前記第1のCH3および前記第2のCH3のいずれか一方が凸部を有し、他方が凹部を有し、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記凸部が前記凹部に嵌合して相互作用する、改変
(vi)前記第1のCH3および前記第2のCH3が改変されたIgGのCH3であり、前記改変されたIgGのCH3はその一部がIgAのCH3の一部と置き換えられており、前記ヘテロ二量体が形成される際に前記第1のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部と前記第2のCH3に置き換えられた前記IgAのCH3の一部とが相互作用する、改変
一局面において、本発明は、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子を、対象に同時投与または逐次投与することを含む治療方法を提供する。該治療方法に適した対象は、第1の抗原および第2の抗原を発現する病原細胞に起因する疾患を有する。
第1の抗原結合分子は、上述の「B.薬学的組成物」の「1.第1の抗原結合分子」、または「C.抗原結合分子および薬学的組成物の別の態様」の「1.第1の抗原結合分子の別の態様」におけるものと同じである。
第2の抗原結合分子は、上述の「B.薬学的組成物」の「2.第2の抗原結合分子」、または「C.抗原結合分子および薬学的組成物の別の態様」の「2.第2の抗原結合分子の別の態様」におけるものと同じである。
第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子は、投与前および投与後に共有結合によって結合しないが、第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子が病原細胞の表面でヘテロ二量体を形成してエフェクター機能を奏する。
逐次投与は、第1の抗原結合分子を含有するが第2の抗原結合分子を含有しない第1の薬学的組成物と、第2 の抗原結合分子を含有するが第1 の抗原結合分子を含有しない第3 の薬学的組成物が、時間をずらして投与される。第1の薬学的組成物と第2の薬学的組成物の投与間隔は、投与後に第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子が病原細胞の表面でヘテロ二量体を形成してエフェクター機能を奏する範囲内に設定される。
「同時投与または逐次投与」は、同時投与と逐次投与の組み合わせを包含する。
一局面において、本発明は、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の組み合わせを選択するスクリーニング方法を提供する。該スクリーニング方法は、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の組み合わせを選択する方法である。
該組み合わせは、第1の抗原結合分子の改変体群および第2の抗原結合分子の改変体群から選択される。
第21の抗原結合分子の改変体群は、第2の抗原に結合する第2の抗原結合領域と、第2のCH2および第2のCH3のいずれか一方または両方を含む第2のポリペプチドとを有する、抗原結合分子の改変体の集合体である。
(a)第1の抗原結合分子と第2の抗原結合分子が、共有結合によって結合しない。
(b)第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子が、第1の抗原結合分子間または第2の抗原結合分子間のホモ二量体よりも、第1の抗原結合分子および第2の抗原結合分子の間のヘテロ二量体を形成しやすい。
(c)表面プラズモン共鳴において1 mm2あたり50 pgの第1の抗原結合分子が固定化されたセンサーチップと2.5 mg/mLの第2の抗原結合分子を含有する測定液とを用いて両抗原結合分子の親和性を測定したときに、当該第1の抗原結合分子に対する当該第2の抗原結合分子の結合量がモル比で1:0.1~1:0.9の範囲内にある。
(c)の選択方法としては、例えば、表面プラズモン共鳴を用いた結果から算定された上記モル比が上記範囲内であるか否かにより行われる。
アミノ酸置換の導入はQuikChange Site-Directed Mutagenesis Kit(Stratagene)、PCRまたはIn fusion Advantage PCR cloning kit (TAKARA)等を用いて当業者公知の方法で行い、発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターの塩基配列は当業者公知の方法で決定した。作製したプラスミドをヒト胎児腎癌細胞由来HEK293H株(Invitrogen)、またはFreeStyle293細胞(Invitrogen社)に、一過性に導入し、抗体半分子の発現を行った。得られた培養上清から、rProtein A Sepharose(登録商標) Fast Flow(GEヘルスケア)を用いて当業者公知の方法で、抗体半分子を精製した。精製抗体半分子濃度は、分光光度計を用いて280 nmでの吸光度を測定し、得られた値からPACE法により算出された吸光係数を用いて抗体半分子濃度を算出した(Protein Science 1995 ; 4 : 2411-2423)。
得られた抗体半分子の分子量をHPLCであるAgilent 1260 Infinity(登録商標)(Agilent Technologies)、カラムにはG3000SWXL(TOSOH)を用いて当業者公知の方法で分析した。抗体半分子タンパク質濃度は0.25mg/mLとして、80 μLのインジェクションを行った。
FcγRの細胞外ドメインを以下の方法で調製した。まずFcγRの細胞外ドメインの遺伝子の合成を当業者公知の方法で実施した。その際、FcγRIIIaについては多型が知られているが、多型部位についてはJ. Clin. Invest., 1997, 100 (5): 1059-1070を参考にして作製した。
Biacore(登録商標) T200を用いて、目的の抗体半分子とFcγRとの相互作用解析を行った。測定にはBiotin CAPture Kit, Series S(GEヘルスケア)、ランニングバッファーにはHBS-EP+10X (GE ヘルスケア)を10分の1に希釈して用い、測定温度は25℃とした。センサーチップにはSeries S Sencor Chip CAP(GEヘルスケア)に予めビオチン化しておいた抗原ペプチドを相互作用させ固定化したチップを用いた。これらのチップへ目的の抗体半分子をキャプチャーさせ、ランニングバッファーで希釈したFcγRを相互作用させた。チップにキャプチャーした抗原と抗体半分子はKitに付属の説明書の通りに洗浄し、チップを再生して繰り返し用いた。
FcγRIIIa-V158 Jurkat cells(以下、Jurkat cellsと指称する。)をエフェクター細胞として用いて各被験抗体半分子のADCC活性を以下のように測定した。
Jurkat cells をフラスコより回収し4%FBSを含むRPMI 1640培地(Gibco)(以下Assay Bufferと称する。)によって1回細胞を洗浄した後、当該細胞がAssay Buffer中にその細胞密度が3x106 細胞/ mLとなるように懸濁した。当該細胞懸濁液をJurkat cells溶液として以後の実験に供した。
SK-Hep-1にヒトグリピカン3を強制発現させたSK-pca60、ヒトエピレグリンを発現させたSKE-4B2、またはヒトグリピカン3とヒトエピレグリンの両方を発現させたEREG_SK-pca60_#2をディッシュから剥離し、Assay Bufferによって1回細胞を洗浄した後、当該細胞がAssay Buffer中にその細胞密度が1x106 細胞/ mLとなるように懸濁した。当該細胞懸濁液を標的細胞溶液として以後の実験に供した。
Bio-Glo Luciferase Assay Buffer 100mL(Promega)をBio-Glo Luciferase Assay Substrate(Promega)のボトルに加え、転倒混和する。ボトルを遮光し、-20℃で凍結する。当該発光試薬を以後の実験に供した。
ADCC活性をルシフェラーゼ発光のFold changeによって評価した。まず、(2)で調製した標的細胞を96ウェルFlat底白色プレートの各ウェル中に25μlずつ(2.5 x 104 cells/ウェル)添加した。次に、各濃度(0.00003、0.0003、0.003、0.03、0.3、3、30μg/mL)に調製した抗体半分子溶液を各ウェル中に25μlずつ添加した。各ウェル中に(1)で調製したJurkat cells溶液各25μl(7.5 x 104 cells/ウェル)を加えた当該プレートを、5%炭酸ガスインキュベータ中において37℃で24時間静置した。(3)で調製した発光試薬を融解し各ウェルに75μlずつ加え室温で10分間静置した。当該プレートの各ウェル中の150μlの培養上清のルシフェラーゼの発光をルミノメーターを用いて測定した。下式1に基づいてADCC活性を求めた。
Fold change=A/B
得られた抗体半分子間の相互作用をBiacore(登録商標) T200を用いて分析した。測定にはBiotin CAPture Kit, Series S(GEヘルスケア)、ランニングバッファーにはHBS-EP+10X (GE ヘルスケア)を10分の1に希釈して用い、測定温度は25℃とした。センサーチップにはSeries S Sencor Chip CAP(GEヘルスケア)に予めビオチン化しておいた抗原ペプチドを相互作用させ固定化したチップを用いた。これらのチップへ目的の抗体半分子Aを約50 RUキャプチャーさせ、ランニングバッファーで希釈した目的の抗体半分子Bを2.5 mg/mLとして、30μL/minの流速で180秒間相互作用させ測定を実施した。以下の式2に基づきモル結合割合を計算した。チップにキャプチャーした抗体半分子AはKitに付属の説明書の通りに洗浄し、チップを再生して繰り返し用いた。
モル結合割合=(アナライトとして結合した抗体半分子Bの結合量(RU、最大値)/抗体半分子Bの分子量)/(キャプチャーされた抗体半分子Aの結合量(RU)/抗体半分子Aの分子量)
電気化学免疫測定法(ECLIA)により測定した。Human IgG-heavy and light chain Antibody (Bethyl)を固相化したMULTI-ARRAY 96-well plate (MSD)に、血漿サンプルを添加し、室温で反応させた。続けて、Anti-Human IgG (Jackson Immuno Research)を反応後、SULFO-TAG streptavidin (MSD)を加えて反応させた。測定はSECTOR S 600 (MSD)で実施した。
LC-MSにより測定した。Ab-Capcher Mag (ProteNova)と血漿サンプルを混合した後、Lysozyme, DTT, Ureaを含む混合溶液を添加し、反応させた。さらに、Iodoacetamid溶液 (Sigma Aldrich)を反応させた後、Trypsin溶液を加えた。その後、上清を回収し、Trifluoroacetic acid (wako)を添加した後、Acquity UPLC (Waters)に注入し、Xevo TQ-S (Waters)で測定した。
C57BL/6NCr Slcマウス (♂、7週令、日本エスエルシー株式会社) からヘマクリット毛細管 (テルモ株式会社) を用いて背中足静脈採血を実施した。2 mLのACK Lyncing Buffer (gibco) に採取した血液を15 μLずつ加え、暗所、室温で5分間インキュベートした後、500×gで5分間遠心分離し上清を除去した。これを再度繰り返した。MACS buffer (Miltenyi Biotec) 1450 mLにBSA stock solution (Miltenyi Biotec) 75 mLを添加したBuffer (FACS buffer)を調製し、FcR blocking reagent (Miltenyi Biotec) を10倍希釈した後、20 μL/Tubeで細胞を懸濁した。10分間室温でインキュベートした後、BUV395 anti-CD45R/B220(BD) 0.5 μL、PE-CF594 anti-IgM (BD) 0.5 μLおよびZombie NIR Fixable Viability Kit 0.4 μLを添加し、4℃で20分間インキュベートした後、2 mLのFACS bufferを加え、500×gで5分間遠心分離し、上清を除去した。400 μLのFACS bufferで再懸濁し、BD FACS LSR Fortessa X-20 (BD) で解析した。
Flowjo ver7.6 (トミーデジタルバイオロジー) を用いて解析を行った。生細胞をゲートした後、解析対象となるCD45R/B220+ IgM+の画分をB細胞とした。生細胞中のB細胞の割合を各サンプルごとに算出した。
以下に二重陽性細胞選択的傷害活性を有する抗体半分子を作製するための具体的なアミノ酸置換の手順を示す。作製、評価した抗体半分子の略称および名称と、CH3改変と、抗体半分子の配列番号を表1に示す。なお、抗体半分子H鎖可変領域部分の名称をVHとした場合、定常領域部分にCHを持つ抗体半分子のH鎖に対応する配列はVH-CHと呼び、抗体半分子L鎖可変領域部分の名称をVLとした場合、定常領域部分にCLを持つ抗体半分子のL鎖に対応する配列はVL-CLと呼ぶ。発現後に精製して得られた抗体半分子は、例えばホモ二量体化抗体の発現に用いた抗体半分子H鎖に対応する発現ベクターがVH1-CH1、抗体半分子L鎖に対応する発現ベクターがVL1-CL1であるホモ二量体化抗体の場合、VH1-CH1/VL1-CL1と表記する。4本鎖を持つヘテロ二量体化抗体の発現に用いた抗半分子体H鎖に対応する発現ベクターの一つがVH1-CH1、もう一つの抗体半分子H鎖がVH2-CH2、抗体半分子L鎖に対応する発現ベクターの一つがVL1-CL1、もう一つの抗体半分子L鎖がVL2-CL2である場合、VH1-CH1/VL1-CL1//VH2-CH2/VL2-CL2と表記する。また、それぞれの抗体半分子を等量混合する場合、抗体半分子AをVH1-CH1/VL1-CL1、抗体半分子BをVH2-CH2/VL2-CL2とした場合、VH1-CH1/VL1-CL1+VH2-CH2/VL2-CL2と表記する。簡略化のため定常領域の略称のみを用いてA1、B1、またはA1+B1のように表記する場合もある。アミノ酸の改変を示す場合には、D356Kのように示す。最初のアルファベット(D356KのDに該当)は、改変前のアミノ酸残基を一文字表記で示した場合のアルファベットを意味し、それに続く数字(D356Kの356に該当)はその改変箇所のEUナンバーを意味し、最後のアルファベット(D356KのKに該当)は改変後のアミノ酸残基を一文字表記で示した場合のアルファベットを意味する。また、改変を行う鋳型としては天然型IgG1に対して末端のGKが欠損した配列を使用した。
作製した抗体半分子A、Bの分子量の評価をサイズ排除クロマトグラフィーで実施した。この時whole抗体のコントロール(図1aのWのピーク)としては国際公開第2009/125825号に開示されているヒトインターロイキン6レセプターに対する抗体を使用した。H鎖可変領域はMRAH(配列番号:11)を用いてH鎖定常領域は天然型IgG1の配列(配列番号:12)を使用した。L鎖可変領域はMRAL(配列番号:13)を使用しL鎖定常領域は天然型κ鎖であるk0(配列番号:14)の配列を使用した。抗体半分子状態のコントロール(図1bのHのピーク)として、H鎖可変領域は国際公開第2013/100120号に記載の抗ヒトエピレグリン抗体のH鎖可変領域部分であるEGLVH(配列番号:15)を使用し、H鎖定常領域部分はLuらの報告(Shan L, Colazet M, Rosenthal KL, Yu XQ, Bee JS, Ferguson A, Damschroder MM, Wu H, Dall'Acqua WF, Tsui P, Oganesyan V. (2016) Generation and Characterization of an IgG4 Monomeric Fc Platform. PLoS One. 2016 Aug 1;11(8))に記載の改変を有するwtIgG4C4(配列番号:16)を使用した。L鎖可変領域は国際公開第2013/100120号に記載の抗ヒトエピレグリン抗体のL鎖可変領域部分であるEGLVL(配列番号:17)を使用しL鎖定常領域は天然型κ鎖であるk0の配列を使用した。また、測定は試験例2に記した方法に従って実施した。なお、この時のH鎖可変領域はそれぞれMRAHを用い、L鎖については全てMRAL-k0を用いて測定を実施した。
測定の結果、図1に示すように、抗体半分子A1、A3、A4、A5のみの場合は抗体半分子(Hのピーク)とwhole抗体(Wのピーク)の混合物が得られ(図1c、e-g)、A2は抗体半分子(Wのピーク)と抗体半分子とwhole抗体の平衡にあると推定される状態の分子(Eのピーク)が得られ(図1d)、抗体半分子B1、B2、B3、B4、B5のみの場合は抗体半分子(Hのピーク)として存在していた(図1h-l)。また、抗体半分子A1とB1(図1m)、A2とB2(図1n)、A3とB3(図1o)、A4とB4(図1p)、A5とB5(図1q)を混合しても、whole抗体の形成(Wのピーク)がそれぞれ抗体半分子A1、A2、A3、A4、A5のみの場合または抗体半分子B1、B2、B3、B4、B5のみの場合に比べて増えることは無かった。なお、A1-B1(図1m)、A3-B3(図1o)を混合した時については、抗体半分子とwhole抗体の平衡にあると推定される状態の分子(Eのピーク)の形成が見られた。
次に、これらの抗体半分子が溶液中では抗体半分子の状態でいて、FcγRIIIaへの結合能は示さないが、抗原結合に伴い局所的に濃縮されることによりヘテロ二量体化し、FcγRIIIaへ結合が回復するかを試験例3に記した方法に従って測定した。なお、この時のH鎖可変領域部分はMRAHを、L鎖可変領域部分はMRAL、L鎖定常領域部分はk0を用いて測定を実施した。天然型IgG1の値はMimotoらの報告(Mimoto F, Igawa T, Kuramochi T, Katada H, Kadono S, Kamikawa T, Shida-Kawazoe M, Hattori K.(2013) Novel asymmetrically engineered antibody Fc variant with superior FcγR binding affinity and specificity compared with afucosylated Fc variant. MAbs 5(2), 229-236)に記載の値を使用した。
測定の結果、表2に示すとおり、抗体半分子AのシリーズであるA1-A5や抗体半分子BのシリーズであるB1-B5はそれぞれ単独ではFcγRIIIaへの結合能は示さなかったが、抗体半分子A1とB1、A2とB2、A3とB3、A4とB4、A5とB5をそれぞれ混合した時に初めてFcγRIIIaへの結合能を示した。
これらの定常領域を有する抗体半分子が既存の二重特異性抗体に対して優れた二重陽性細胞選択的傷害活性を有するかどうか試験例4に記された方法に従って測定を行った。抗原発現細胞としてはSK-Hep-1にグリピカン3を強制発現させた国際公開第2016/182064号に記載のSK-pca60を、エピレグリンを強制発現させた国際公開第2014/208482号に記載のSKE-4B2を使用した。グリピカン3、エピレグリン二重陽性細胞としてはSK-pca60にエピレグリンを強制発現させたEREG_SK-pca60_#2を使用した。この時実施例3で用いた抗体半分子Aのシリーズについては、そのH鎖可変領域部分が国際公開第2009/041062号に記載の抗GPC3抗体であるGH0(配列番号:18)であるものを使用し、そのL鎖可変領域部分が国際公開第2009/041062号に記載の抗GPC3抗体であるGL0(配列番号:19)であるものを使用し、L鎖定常領域部分はk0を使用した。抗体半分子BについてはEGLVHを使用し、L鎖可変領域はEGLVLを使用し、L鎖定常領域はk0を使用した。また、既存の二重特異性抗体としてはGH0-Kn125P17/GL0-k0//EGLVH-Hl076N17/EGLVL-k0(GH0/EGLVH-BiAb)を用いた。二重特異性抗体の定常領域はヘテロ二量体化した時にADCC活性が増強されるように国際公開第2013/002362号に記載のCH2にL234Y、L235Q、G236W、S239M、H268D、D270E、S298AをKn125P17(配列番号:20)に、D270E、K326D、A330M、K334EをHl076N17(配列番号:21)にそれぞれ置換した。また、二重特異性抗体を電荷の違いを利用して作製するために国際公開第2015/046467号に記載のD356K、V397YをKn125P17に、V397Y、K439EをHl076N17にそれぞれ置換した。また、356-358位の配列については天然型IgG1のアロタイプであるEEMの配列を使用した。このようにして作製されたGH0-Kn125P17/GL0-k0、EGLVH-Hl076N17/EGLVL-k0を定常領域の電荷の違いを利用した当業者公知の方法(Proc. Natl. Acad. Sci., 110, 5145-5150, 2013)で混合し、目的の二重特異性抗体を作製した。
これら抗体半分子A1とB1、A2とB2、A3とB3、A4とB4、A5とB5間における相互作用を、Biacore(登録商標)を用いて試験例5に記された方法に従って測定した。この時キャプチャーされる抗体半分子のH鎖可変領域部分は国際公開第2009/041621号に記載の抗ヒトIL6レセプター抗体のH鎖可変領域部分であるPF1H(配列番号:22)を使用し、L鎖可変領域部分は国際公開第2009/041621号に記載の抗ヒトIL6レセプター抗体のL鎖可変領域部分であるPF1L(配列番号:23)を使用しL鎖定常領域部分はk0を使用した。また、アナライトとして使用した抗体半分子のH鎖可変領域は国際公開第2015/174439号に記載の抗KLH抗体であるIC17H(配列番号:24)を使用し、L鎖可変領域については国際公開第2015/174439号に記載の抗KLH抗体であるIC17L(配列番号:25)を使用しL鎖定常領域であるk0を使用した。
その結果、表3に示すように、抗体半分子A1-A5が約50RUキャプチャーされたとき、それぞれ抗体半分子B1-B5のモル結合割合が0.18-0.63の時に二重陽性細胞選択的ADCC活性が発揮されることが示された。
抗体半分子DA303v2およびDB220v2がマウス生体内において抗原に結合した時にだけ二量体を形成し、細胞傷害活性を示すかどうかについて、抗マウスCD19抗体の可変領域部分を有する抗体半分子を用いて評価した。
抗マウスCD19抗体(Clone: 1D3)はATCCから細胞株HB-305を購入し、当業者公知の方法によって抗体遺伝子をクローニングした。抗体半分子H鎖定常領域部分として天然型ヒトIgG1のC末端のGlyおよびLysを除去したG1d(配列番号:26)のCH2にADCC増強改変としてL234Y/L235Q/G236W/S239M/H268D/D270E/S298Aが、CH3に抗体半分子形成とヘテロ二量体化促進のための改変D356K/V397Y/K409Dが導入された定常領域部分DA303v2(配列番号:27)をもち、抗マウスCD19抗体のH鎖可変領域部分を有する抗体半分子H鎖の遺伝子を作成した。同様に抗体H鎖定常領域部分としてG1dのCH2にADCC増強改変としてD270E/K326D/A330M/K334Eが、CH3に抗体半分子形成とヘテロ二量体化促進のための改変V397Y/K409D/K439Eが導入された定常領域部分DB220v2(配列番号:28)をもち、抗マウスCD19抗体のH鎖可変領域部分を有する抗体半分子H鎖の遺伝子を作成した。またこれら抗体半分子と同じADCC増強改変を有するwhole抗体を作成するため、抗体H鎖定常領域としてG1dのCH2にADCC増強改変としてL234Y/L235Q/G236W/S239M/H268D/D270E/S298Aが導入され、CH3にヘテロ二量体化改変としてY349C/T366Wが導入されたKn125(配列番号:29) を持ち、抗マウスCD19抗体のH鎖可変領域を有する抗体H鎖の遺伝子と、抗体H鎖定常領域としてG1dのCH2にADCC増強改変としてD270E/K326D/A330M/K334Eが導入され、CH3にヘテロ二量体化改変としてD356C/T366S/L368A/Y407Vが導入されたHl076(配列番号:30)を有し、抗マウスCD19抗体のH鎖可変領域を有する抗体H鎖の遺伝子が作成された。Kn125とHl076にはKnobs-into-holes技術(Margaret Merchant et al., Nature Biotechnology 1998, 16, 677-681)が導入されており、これら2つのH鎖遺伝子を抗マウスCD19抗体のL鎖遺伝子と共発現することでヘテロ二量体化したwhole抗体が生成される。また同じくG1dに対して国際公開第2013/047748号に記載されているマウスFcγRへの結合を減弱するための改変(L235R/S239K)を導入した定常領域F760(配列番号:31)をH鎖定常領域としてもち、抗マウスCD19抗体H鎖可変領域を有する抗体H鎖の遺伝子と、国際公開第2015/174439号に記載されているADCC活性を増強したマウスIgG2a定常領域(mFa55: 配列番号:32)をH鎖定常領域としてもち、抗マウスCD19抗体H鎖可変領域を有する抗体H鎖の遺伝子を作成した。マウスCD19に結合しない抗体として、国際公開第2015/174439号に記載の抗KLH抗体のH鎖可変領域であるIC17H(配列番号:24)を有し、FcγRへの結合を減弱した定常領域F760nN17(配列番号:33)を有する抗体H鎖遺伝子をそれぞれ作成した。抗体L鎖としては、天然型ヒトkappa定常領域(k0:配列番号:14)を有し、抗マウスCD19抗体L鎖可変領域をもつ抗体L鎖の遺伝子と、同じく天然型マウスkappa定常領域(mk0: 配列番号:34)を有し、抗マウスCD19抗体L鎖可変領域をもつ抗体L鎖の遺伝子を作成した。また抗KLH抗体L鎖可変領域IC17L(配列番号:25)を持ち、天然型ヒトkappa定常領域(k0)を有する抗体L鎖遺伝子を作成した。ここで作成したそれぞれの遺伝子を表4に示す組み合わせで発現し、試験例1に記載の方法で目的の抗体を得た。
実施例6-1で調製した抗体半分子のうち、1D3-mFa55、1D3-Kn125/Hl076、1D3-DA303v2、1D3-DB220v2および1D3-DA303v2と1D3-DB220v2の等量混合物のマウスFcγRI、II、III、IVに対する結合測定を実施した。また比較対象として天然型ヒトIgG1の配列からC末端のGlyおよびLysを除去したG1dをH鎖定常領域としてもち、抗マウスCD19抗体のH鎖可変領域部分を有する抗体半分子H鎖の遺伝子と、天然型ヒトkappa定常領域k0を有し、抗マウスCD19抗体L鎖可変領域をもつ抗体L鎖の遺伝子を作成し、試験例1の方法に従って抗マウスCD19抗体半分子、1D3-G1dを得た。マウスFcγRI、II、III、IVは国際公開第2014/030750号に記載の方法により調製した。Biacore(登録商標) T200 (GEヘルスケア)を用いて、各抗体半分子またはその二量体とFcγRとの相互作用解析を行った。ランニングバッファーにはHBS-EP+10X (GEヘルスケア)を10分の1に希釈して用い、測定温度は25℃とした。Series S Sensor Chip CM5(GEヘルスケア)に、アミンカップリング法によりProtein A/G (PIERCE)を固定化したチップを用いた。このセンサーチップに目的の抗体半分子をキャプチャーし、ランニングバッファーで希釈したFcγRを相互作用させて測定を行った。また25 mM NaOHと、10 mM Glycine-HCl (pH1.5)を反応させることでセンサーチップにキャプチャーした抗体半分子を洗浄し、センサーチップを再生して繰り返し用いた。各抗体半分子またはその二量体のFcγRに対するKD値を算出するための速度論的な解析は以下の方法にしたがって実施した。まず、上記のセンサーチップに目的の抗体半分子をキャプチャーさせ、ランニングバッファーで希釈したmFcγRを相互作用させ、得られたセンサーグラムに対してBiacore(登録商標) Evaluation Softwareにより測定結果を1:1 Langmuir binding modelでglobal fittingさせることで結合速度定数ka (L/mol/s)、解離速度定数kd(1/s)を算出し、その値から解離定数KD (mol/L) を算出した。また、抗体半分子またはその二量体とFcγRとの相互作用が微弱で、上記の速度論的な解析では正しく解析できないと判断された場合、その相互作用についてはBiacore(登録商標) T100 Software Handbook BR1006-48 Edition AEに記載の以下の1:1結合モデル式を利用してKDを算出した。
Req = C・Rmax/(KD+C) + RI
Req: a plot of steady state binding levels against analyte concentration
C: concentration
RI: bulk refractive index contribution in the sample
Rmax: analyte binding capacity of the surface
KD = C・Rmax/(Req-RI)-C
実施例6-1に記載の方法で作製した1D3-Kn125/Hl076、1D3-DA303v2、1D3-DB220v2、1D3-DA303v2/DB220v2のマウスにおける血中薬物動態を評価した。投与は10 mg/kgでマウス尾静脈より行い、頸静脈より経時的に採血を行った。血漿中濃度は、1D3-Kn125/Hl076、1D3-DA303v2、1D3-DB220v2については電気化学免疫測定法 (ECLIA: 試験例6)で、1D3-DA303v2/DB220v2についてはそれぞれの抗体半分子をLC-MS (試験例7)で測定した。その結果、whole抗体である1D3-Kn125/Hl076に比べて、1D3-DA303v2、1D3-DB220v2、1D3-DA303v2/DB220v2の血中からの消失は非常に速く、投与後3日で投与直後の濃度に対して1/100程度まで減少した(図3)。また、1D3-DA303v2、および1D3-DB220v2それぞれについて、単独投与と混合投与で血漿中濃度推移に顕著な差はないことが示された。このことは、混合投与においても抗体半分子はヘテロ二量体化せずに単体で存在し、可変領域で抗原に結合した際に初めてヘテロ二量体化することを示唆している。
実施例6-1に記載の方法で精製、調製した抗マウスCD19抗体半分子 (表4に記載) をマウスに静脈内投与することで細胞傷害活性を示すかを検証した。なお、in vivo B cell depletion試験の投与量の設定は、実施例6-3に示すwhole抗体および抗体半分子の消失濃度推移から、各検体でトラフ濃度が同程度になるように設定した。具体的には、C57BL/6NCr Slcマウスに必要血中濃度を維持するために表6に示す投与条件で、各種抗体または抗体半分子を静脈内投与した (各群n=3)。投与後3日目に背中足静脈採血を実施し、試験例8に記載の方法で血中のB細胞を染色した後、FACSで生細胞中におけるB細胞を検出した。試験例9に記載の方法で血中のB細胞の割合を算出した結果、KLH-F760nN17と比較して1D3-F760は細胞傷害活性を示さず、陽性対照である1D3-mFa55および1D3- Kn125/Hl076は有意に細胞傷害活性を示した。本条件下で、抗体半分子1D3-DA303v2および1D3-DB220v2はそれぞれの単独投与で細胞傷害活性を示さないが、これらを等量混合して投与した場合は、KLH-F760nN17と比較して有意に細胞傷害活性を示すことが明らかとなった (図4)。実施例6-3で示した通り、抗体半分子は混合した状態で投与しても可変領域が抗原に結合しなければ抗体半分子として存在すると考えられるため、ここで得られたB cell depletion活性は、それぞれの抗体半分子が可変領域で抗原に結合して初めてヘテロ二量体を形成し、ADCC活性を示した結果であると考察される。
アミノ酸置換の導入はQuikChange Site-Directed Mutagenesis Kit(Stratagene)、PCRまたはIn fusion Advantage PCR cloning kit (TAKARA)等を用いて当業者公知の方法で行い、発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターの塩基配列は当業者公知の方法で決定した。作製したプラスミドをExpi293細胞(Invitrogen)に、一過性に導入し、抗体半分子の発現を行った。得られた培養上清から、MonoSpin ProA 96ウェルプレートタイプ(商標登録)(GLサイエンス)を用いて当業者公知の方法で、抗体半分子を精製した。精製抗体半分子濃度は、分光光度計を用いて280 nmでの吸光度を測定し、得られた値からPACE法により算出された吸光係数を用いて抗体半分子濃度を算出した(Protein Science 1995 ; 4 : 2411-2423)。
得られた抗体半分子の分子量をHPLCであるACQUITY UPLC H-Class(登録商標)(Waters)、カラムにはSuperSW3000(TOSOH)を用いて当業者公知の方法で分析した。抗体半分子タンパク質濃度は0.10 mg/mLとして、10 μLのインジェクションを行った。
実施例1で使用したヘテロ二量体化改変を使用せずにホモ二量体の形成を抑制することができるかどうかを検証するため、ヘテロ二量体化改変を使用しない、もしくはHaらの報告(Ha JH, Kim JE, Kim YS (2016) Immunoglobulin Fc Heterodimer Platform Technology: From Design to Applications in Therapeutic Antibodies and Proteins. Front Immunol. 2016 Oct 6;7:394.)に記載されている改変を使用した。具体的には、ADCC増強改変、ヒンジ領域の改変、CH3界面不安定化改変のみの半分子抗体A、Bと、それに加えて抗体半分子AにY349T、T394Fを、抗体半分子BにS364H、F405Aをそれぞれ置換した。作製、評価した抗体半分子の略称および名称と、CH3改変と、抗体半分子の配列番号を表7に示す。
作製した抗体半分子A、Bの分子量の評価をサイズ排除クロマトグラフィーで実施した。この時whole抗体のコントロール(図5-1aのWのピーク)としては国際公開第2009/125825号に開示されているヒトインターロイキン6レセプターに対する抗体を使用した。H鎖可変領域はMRAH(配列番号:11)を用いてH鎖定常領域は天然型IgG1の配列(配列番号:12)を使用した。L鎖可変領域はMRAL(配列番号:13)を使用しL鎖定常領域は天然型κ鎖であるk0(配列番号:14)の配列を使用した。抗体半分子状態のコントロール(図5bのHのピーク)として、H鎖可変領域は国際公開第2013/100120号に記載の抗ヒトエピレグリン抗体のH鎖可変領域部分であるEGLVH(配列番号:15)を使用し、H鎖定常領域部分はLuらの報告(Shan L, Colazet M, Rosenthal KL, Yu XQ, Bee JS, Ferguson A, Damschroder MM, Wu H, Dall'Acqua WF, Tsui P, Oganesyan V. (2016) Generation and Characterization of an IgG4 Monomeric Fc Platform. PLoS One. 2016 Aug 1;11(8))に記載の改変を有するwtIgG4C4(配列番号:16)を使用した。L鎖可変領域は国際公開第2013/100120号に記載の抗ヒトエピレグリン抗体のL鎖可変領域部分であるEGLVL(配列番号:17)を使用しL鎖定常領域は天然型κ鎖であるk0の配列を使用した。また、測定は試験例11に記した方法に従って実施した。なお、この時のH鎖可変領域はそれぞれMRAHを用い、L鎖については全てMRAL-k0を用いて測定を実施した。
測定の結果、図5に示すように、抗体半分子A1、A6のみの場合は抗体半分子(Hのピーク)とwhole抗体(Wのピーク)の混合物が得られ(図5c、d)、抗体半分子A7、B1、B6、B7のみの場合は抗体半分子(Hのピーク)として存在していた(図5e-h)。また、抗体半分子A1とB1(図5i)、A6とB6(図5j)、A7とB7(図5k)を混合しても、whole抗体の形成(Wのピーク)がそれぞれ抗体半分子A1、A6、A7のみの場合または抗体半分子B1、B6、B7のみの場合に比べて増えることは無かった。
これらの定常領域を有する抗体半分子が既存の二重特異性抗体に対して優れた二重陽性細胞選択的傷害活性を有するかどうか試験例4に記された方法に従って測定を行った。抗原発現細胞としてはSK-Hep-1にグリピカン3を強制発現させた国際公開第2016/182064号に記載のSK-pca60を、エピレグリンを強制発現させた国際公開第2014/208482号に記載のSKE-4B2を使用した。グリピカン3、エピレグリン二重陽性細胞としてはSK-pca60にエピレグリンを強制発現させたEREG_SK-pca60_#2を使用した。この時抗体半分子Aのシリーズについては、そのH鎖可変領域部分が国際公開第2009/041062号に記載の抗GPC3抗体であるGH0(配列番号:18)であるものを使用し、そのL鎖可変領域部分が国際公開第2009/041062号に記載の抗GPC3抗体であるGL0(配列番号:19)であるものを使用し、L鎖定常領域部分はk0を使用した。抗体半分子BについてはEGLVHを使用し、L鎖可変領域はEGLVLを使用し、L鎖定常領域はk0を使用した。また、既存の二重特異性抗体としてはGH0-Kn125P17/GL0-k0//EGLVH-Hl076N17/EGLVL-k0(GH0/EGLVH-BiAb)を用いた。二重特異性抗体の定常領域はヘテロ二量体化した時にADCC活性が増強されるように国際公開第2013/002362号に記載のCH2にL234Y、L235Q、G236W、S239M、H268D、D270E、S298AをKn125P17(配列番号:20)に、D270E、K326D、A330M、K334EをHl076N17(配列番号:21)にそれぞれ置換した。また、二重特異性抗体を電荷の違いを利用して作製するために国際公開第2015/046467号に記載のD356K、V397YをKn125P17に、V397Y、K439EをHl076N17にそれぞれ置換した。また、356-358位の配列については天然型IgG1のアロタイプであるEEMの配列を使用した。このようにして作製されたGH0-Kn125P17/GL0-k0、EGLVH-Hl076N17/EGLVL-k0を定常領域の電荷の違いを利用した当業者公知の方法(Proc. Natl. Acad. Sci., 110, 5145-5150, 2013)で混合し、目的の二重特異性抗体を作製した。
測定は抗体半分子A1とB1、A6とB6、A7とB7を混合して添加した。測定した結果を図6に示す。A1 + B1の場合と同様に、A6 + B6、A7 + B7の場合もSK-pca60やSKE-4B2に対してはADCC活性が低く、EREG_SK-pca60_#2に対して強いADCC活性を示した。既存の二重特異性抗体を用いた場合にはSK-pca60、SKE-4B2、EREG_SK-pca60_#2の全ての細胞に対して強いADCC活性が示された。以上のことから、今回作製した抗体半分子A6、A7およびB6、B7もどちらの細胞に対しても既存の二重特異性抗体より優れた二重陽性細胞選択的傷害活性を有することが明らかとなった。
これら抗体半分子A1とB1、A6とB6、A7とB7間における相互作用を、Biacore(登録商標)を用いて試験例5に記された方法に従って測定した。この時キャプチャーされる抗体半分子のH鎖可変領域部分は国際公開第2009/041621号に記載の抗ヒトIL6レセプター抗体のH鎖可変領域部分であるPF1H(配列番号:22)を使用し、L鎖可変領域部分は国際公開第2009/041621号に記載の抗ヒトIL6レセプター抗体のL鎖可変領域部分であるPF1L(配列番号:23)を使用しL鎖定常領域部分はk0を使用した。また、アナライトとして使用した抗体半分子のH鎖可変領域は国際公開第2015/174439号に記載の抗KLH抗体であるIC17H(配列番号:24)を使用し、L鎖可変領域については国際公開第2015/174439号に記載の抗KLH抗体であるIC17L(配列番号:25)を使用しL鎖定常領域であるk0を使用した。
その結果、表8に示すように、抗体半分子A6、A7が約50RUキャプチャーされたとき、それぞれ抗体半分子B6、B7のモル結合割合が0.18-0.63の範囲内となり、二重陽性細胞選択的ADCC活性も発揮されることが示された。抗体半分子Bのランニングバッファーによる希釈は、実施例5では18.6-28.0倍希釈したのに対し、本実施例では5.7-9.0倍希釈した。
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