JP2019518037A - B型肝炎感染症治療用のPAPD5又はPAPD7のmRNA減少用核酸分子 - Google Patents
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Abstract
Description
(a)PAPD5及び/又はPAPD7を発現する細胞と被験化合物又は被験組成物を接触させること、
(b)前記被験化合物又は被験組成物が存在する状態と存在しない状態でPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を測定すること、及び
(c)HBV感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物としてPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を低下させる化合物又は組成物を特定すること
を含む前記方法である。
したがって、本発明はHBV感染症を予防及び/又は治療(すなわち、改善及び/又は抑制)する化合物としてPAPD5又はPAPD7の発現及び/又は活性(例えば発現)を低下させる化合物(又はPAPD5とPAPD7を減少させる化合物の混合物)が特定されるスクリーニング方法に関する。本発明の好ましい実施形態ではその化合物はRNAi分子、特にsiRNA、shRNA、又はアンチセンスオリゴヌクレオチドなどの核酸分子である。本発明のスクリーニング方法を用いてPAPD5 mRNA又はPAPD7 mRNAのどちらかを標的とする240種類のLNA修飾型アンチセンスオリゴヌクレオチドがPAPD5又はPAPD7の発現、又は両方の発現を低下させる能力について混合化合物を使用してスクリーニングされている。これらの化合物の中には単独で、又は混合物としてHBV感染症を改善及び/又は抑制する能力を確認するためにさらに試験されたものもある。
(a)PAP関連ドメイン含有タンパク質5(PAPD5)及び/又はPAP関連ドメイン含有タンパク質7(PAPD7)を発現する細胞と被験化合物を接触させること、
(b)前記被験化合物又は被験組成物が存在する状態と存在しない状態でPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を測定すること、及び
(c)HBV感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物又は組成物としてPAPD5又はPAPD7の発現及び/又は活性を低下させる化合物を特定すること
を含み、所望により
(d)PAPD5及びPAPD7の発現及び/又は活性を低下させる混合化合物を試験すること
を含む前記方法である。
(i)配列番号1又は2のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列、
(ii)配列番号4、5、又は10のヌクレオチド配列、又はその天然変異体、
(iii)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を配列番号1又は2に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、
(iv)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を(ii)のヌクレオチド配列に対して有するヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドを発現する前記ヌクレオチド配列、
(v)配列番号7又は8をコードするヌクレオチド配列など、配列番号1又は2の酵素活性断片をコードするヌクレオチド配列、
(vi)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を配列番号7又は8など、配列番号1又は2の酵素活性断片のアミノ酸配列に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、又は
(vii)配列番号4、5、又は10を含む、又は前記配列番号から成るヌクレオチド配列
を含む、又は前記ヌクレオチド配列から成るPAPD5標的核酸を含有する前記方法に関する。
(i)配列番号3のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列、
(ii)配列番号6又は11のヌクレオチド配列、又はその天然変異体、
(iii)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を配列番号3に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、
(iv)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を(ii)の核酸配列に対して有するヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドを発現する前記核酸配列、
(v)配列番号9をコードするヌクレオチド配列など、配列番号3の酵素活性断片をコードするヌクレオチド配列、又は
(vi)少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を配列番号9など、配列番号3の酵素活性断片のアミノ酸配列に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、又は
(vii)配列番号6又は11を含む、又は前記配列番号から成るヌクレオチド配列
を含む、又は前記ヌクレオチド配列から成るPAPD7標的核酸を含有する前記スクリーニング方法に関する。
(i)少なくとも1個の2’修飾ヌクレオシドを含むことが好ましい一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、又は
(ii)siRNA分子、又は
(iii)shRNA分子
から選択される核酸分子より成るスクリーニングライブラリーであり得る。
(a)PAPD5又はPAPD7に対する1種類以上のRNA干渉(RNAi)分子、
(b)次のものを含むゲノム編集装置
(i)部位特異的DNAヌクレアーゼ、又は部位特異的DNAヌクレアーゼをコードするポリヌクレオチド、及び
(ii)ガイドRNA、又はガイドRNAをコードするポリヌクレオチド
からなる群より独立して選択される前記阻害剤に関する。
(a)一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、
(b)siRNA分子、及び
(c)shRNA分子
からなる群より独立して選択され得る。
(i)少なくとも1種類の標的配列特異的CRISPR RNA(crRNA)分子と少なくとも1種類のトランス活性化crRNA(tracrRNA)分子から成る少なくとも1種類のガイドRNA、
(ii)前記(i)のRNA分子をコードするポリヌクレオチド、
(iii)少なくとも1種類の標的配列特異的crRNAと少なくとも1種類のtracrRNAを含むキメラRNA分子である少なくとも1種類のガイドRNA、又は
(iv)前記(iii)のキメラRNAをコードするポリヌクレオチド
をさらに含むことが好ましい。
(i)標的配列特異的CRISPR RNA(crRNA)分子を含む少なくとも1種類のガイドRNA、又は
(ii)前記(i)のRNA分子をコードするポリヌクレオチド
をさらに含むことが好ましい。
上で説明したように本発明の阻害剤は核酸分子であり得る。
PAPD5 siRNAプール(L−010011−00−0010;ON−TARGETplusヒトPAPD5):
siRNA−1‐J−010011−05−標的配列:CAUCAAUGCUUUAUAUCGA(配列番号252)
siRNA−2‐J−010011−06−標的配列:GGACGACACUUCAAUUAUU(配列番号253)
siRNA−3‐J−010011−07−標的配列:GAUAAAGGAUGGUGGUUCA(配列番号254)
siRNA−4‐J−010011−08−標的配列:GAAUAGACCUGAGCCUUCA(配列番号255)
PAPD7 siRNAプール(L−009807−00−0005;ON−TARGETplusヒトPAPD7):
siRNA−1‐J−009807−05−標的配列:GGAGUGACGUUGAUUCAGA(配列番号256)
siRNA−2‐J−009807−06−標的配列:CGGAGUUCAUCAAGAAUUA(配列番号257)
siRNA−3‐J−009807−07−標的配列:CGGAGUUCAUCAAGAAUUA(配列番号258)
siRNA−4‐J−009807−08−標的配列:GCGAAUAGCCACAUGCAAU(配列番号259)
CCGGGCCACATATAGAGATTGGATACTCGAGTATCCAATCTCTATATGTGGCTTTTTG(配列番号260)
CCGGCCAACAAATCTCAGCATGGATCTCGAGATCCATGCTGAGATTTGTTGGTTTTTG(配列番号261)
CCGGCGCCTGTAATCCCAGCACTTTCTCGAGAAAGTGCTGGGATTACAGGCGTTTTTG(配列番号262)
CCGGGCCTGTAATCCCAGCACTTTACTCGAGTAAAGTGCTGGGATTACAGGCTTTTTG(配列番号263)
CCGGCGATGTTGGAAGGAGTTCATACTCGAGTATGAACTCCTTCCAACATCGTTTTTG(配列番号264)
オリゴヌクレオチドデザインとは前記オリゴヌクレオチド配列におけるヌクレオシド糖修飾のパターンのことをいう。本発明のオリゴヌクレオチドは糖修飾ヌクレオシドを含み、DNAヌクレオシドを含んでもRNAヌクレオシドを含んでもよい。幾つかの実施形態では前記オリゴヌクレオチドは糖修飾ヌクレオシドとDNAヌクレオシドを含む。本発明のオリゴヌクレオチドへ修飾ヌクレオシドを組み込むことによって前記標的核酸への前記オリゴヌクレオチドの親和性が増大する場合がある。その場合、それらの修飾ヌクレオシドを親和性増大性修飾ヌクレオチドと呼ぶことができる。それらの修飾ヌクレオシドを単位と呼ぶ場合もある。
好ましい実施形態では本発明のオリゴヌクレオチドは本明細書において単に「ギャップマー」とも呼ばれるギャップマーデザイン又はギャップマー構造を有する。ギャップマー構造では前記オリゴヌクレオチドは5’から3’の方向に少なくとも3つの異なる構造領域である5’フランク、ギャップ、及び3’フランク、すなわちF−G−F’を含む。このデザインではF隣接領域とF’隣接領域(ウイング領域とも呼ばれる)はPAPD5標的核酸又はPAPD7標的核酸に対して相補的である修飾ヌクレオシドの連続伸長物を含み、一方でギャップ領域であるG領域は前記オリゴヌクレオチドが前記標的核酸と二重鎖になっているときにヌクレアーゼ、好ましくはRNaseなどのエンドヌクレアーゼ、例えばRNase Hを動員することが可能であるヌクレオチドの連続伸長物を含む。好ましい実施形態ではそのギャップ領域はDNAヌクレオシドから成る。G領域の5’末端と3’末端に隣接するF領域とF’領域は非ヌクレアーゼ動員性ヌクレオシド(3’エンド構造を有するヌクレオシド)を含むことが好ましく、1個以上の親和性増大性修飾ヌクレオシドを含むことがより好ましい。幾つかの実施形態では前記3’フランクは少なくとも1個のLNAヌクレオシド、好ましくは少なくとも2個のLNAヌクレオシドを含む。幾つかの実施形態では前記5’フランクは少なくとも1個のLNAヌクレオシドを含む。幾つかの実施形態では前記5’隣接領域と前記3’隣接領域の両方がLNAヌクレオシドを含む。幾つかの実施形態では前記隣接領域内の全てのヌクレオシドがLNAヌクレオシドである。他の実施形態では前記隣接領域はLNAヌクレオシドと他のヌクレオシドの両方を含んでよく(混合フランク)、例えばDNAヌクレオシド及び/又は2’置換ヌクレオシドなどの非LNA修飾ヌクレオシドを含んでよい。この場合、前記ギャップ領域は親和性増大性修飾ヌクレオシド、好ましくはβ−D−オキシ−LNAなどのLNAが5’末端と3’末端に隣接した少なくとも5個のRNase H動員性ヌクレオシドからなる連続配列(2’エンド構造を有するヌクレオシド、好ましくはDNA)として規定される。その結果、前記ギャップ領域に隣接する5’隣接領域と3’隣接領域のヌクレオシドは修飾ヌクレオシド、好ましくは非ヌクレアーゼ動員性ヌクレオシド又は高親和性ヌクレオシドである。
F領域(5’フランク又は5’ウイング)はG領域の5’末端に取り付けられており、少なくとも1個の修飾ヌクレオシド、例えば少なくとも2個、少なくとも3個、又は少なくとも4個の修飾ヌクレオシドを含む、前記修飾ヌクレオシドを含有する、又は前記修飾ヌクレオシドから成る。一実施形態ではF領域は1〜4個の修飾ヌクレオシド、例えば2〜4個の修飾ヌクレオシド、例えば1〜3個の修飾ヌクレオシド、例えば1個、2個、3個、又は4個の修飾ヌクレオシドを含む、又は前記修飾ヌクレオシドから成る。そのF領域はその領域の5’末端と3’末端に少なくとも1個の修飾ヌクレオシドを有すると規定される。
G領域(ギャップ領域)はRNase Hヌクレアーゼを動員することが可能な4〜18個、又は5〜17個、又は6〜16個、又は8〜12個の連続ヌクレオチド単位を含む、前記連続ヌクレオチド単位を含有する、又は前記連続ヌクレオチド単位から成ることが好ましい。
F’領域(3’フランク又は3’ウイング)はG領域の3’末端に取り付けられており、少なくとも1個の修飾ヌクレオシド、例えば少なくとも2個、少なくとも3個、又は少なくとも4個の修飾ヌクレオシドを含む、前記修飾ヌクレオシドを含有する、又は前記修飾ヌクレオシドから成る。一実施形態ではF’領域は1〜4個の修飾ヌクレオシド、例えば2〜4個の修飾ヌクレオシド、例えば1〜3個の修飾ヌクレオシド、例えば1個、2個、3個、又は4個の修飾ヌクレオシドを含む、又は前記修飾ヌクレオシドから成る。そのF’領域はその領域の5’末端と3’末端に少なくとも1個の修飾ヌクレオシドを有すると規定される。
D’領域とD”領域をそれぞれF領域の5’末端又はF’領域の3’末端に取り付けることが可能である。
F−G−F’、特にF1~7−G4~12−F’1~7
D’−F−G−F’、特にD’1~3−F1~7−G4~12−F’1~7
F−G−F’−D”、特にF1~7−G4~12−F’1~7−D”1~3
D’−F−G−F’−D”、特にD’1~3−F1~7−G4~12−F’1~7−D”1~3
PAPD5及びPAPD7の同時阻害によって相乗的効果がHBV増殖の阻害について生じることが本発明の背景において驚くべきことに示されている。PAPD5の発現だけを低下させると約50%のHBsAg及びHBeAgの分泌が減少することが添付実施例によって示されており、同様にPAPD5阻害剤を使用して細胞内HBV mRNAが減少した。PAPD7の発現だけを低下させると15%以下のHBsAg及びHBeAgの分泌が減少する。PAPD5及びPAPD7の同時ノックダウンによって単一ノックダウンの合計よりも上の相乗的効果がHBsAg及びHBeAgの分泌の減少について生じる。理論に捉われるものではないが、理論に捉われるものではないが、PAPD5及びPAPD7の両タンパク質は高い配列相同性と同じ酵素的機能を有しているのでこの相乗効果は両タンパク質の補正効果に起因する可能性がある。本発明の阻害剤はHBsAg分泌の減少によって慢性HBV感染症の発症を抑制する。特に、本発明の阻害剤はHBeAg分泌の阻害により、HBsAg分泌だけを減少させる化合物と比較してより効率的に慢性HBV感染症の発症を抑制する。加えて、母親になる女性においてHBeAgを減少させることによってその女性の子供での慢性HBV感染症の発症も抑制可能である。したがって、本発明の阻害剤はHBeAg分泌の減少によって慢性HBV感染症の発症(例えば、HBVに感染した母親の子供における慢性HBV感染症の発症)を抑制し、且つ、HBV感染者の感染性を低下させる。したがって、本発明の1つの態様はHBsAg及びHBeAgの分泌を減少させる本明細書において提供される阻害剤に関した。これと一致して本発明の追加の態様は慢性HBV感染症の発症を抑制し、且つ、HBV感染者の感染性を低下させる本明細書において提供される阻害剤、特に核酸分子又は混合核酸分子に関する。本発明の特定の態様では本明細書において提供される阻害剤はHBVに感染した母親の子供における慢性HBV感染症の発症を抑制する。この母親はHBeAg陽性であることが好ましい。
(i)本発明の阻害剤又は本発明の混合製剤、及び
(ii)所望により薬学的に許容可能な担体
を含む。
(a)検査対象から得られた試料においてPAPD5及び/又はPAPD7の量及び/又は活性を分析すること、
(b)少なくとも1人の基準対象のPAPD5及び/又はPAPD7の量及び/又は活性に対応する基準データと前記量及び/又は活性を比較すること、及び
(c)工程(b)の比較に基づいて治療成果を予測すること
を含む前記方法に関する。
したがって、本発明は以下の項目に関する。
1.B型肝炎ウイルス(HBV)感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物を特定するための方法であって、
(a)PAPD5及び/又はPAPD7を発現する細胞と被験化合物を接触させること、
(b)前記被験化合物が存在する状態と存在しない状態でPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を測定すること、及び
(c)HBV感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物としてPAPD5又はPAPD7の発現及び/又は活性を低下させる化合物を特定すること
を含む前記方法。
(a)配列番号4、5、又は10のヌクレオチド配列、又はその天然変異体、
(b)少なくとも80%の同一性を(a)のヌクレオチド配列に対して有するヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドを発現する前記核酸配列、
(c)配列番号4、5、又は10を含む、又は前記配列番号から成るヌクレオチド配列、
(d)配列番号1又は2のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列、
(e)少なくとも80%の同一性を配列番号1又は2に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、
(f)配列番号7又は8など、配列番号1又は2の酵素活性断片をコードするヌクレオチド配列、又は
(g)少なくとも80%の同一性を配列番号7又は8など、配列番号1又は2の酵素活性断片のアミノ酸配列に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列
を含む、又は前記ヌクレオチド配列から成る、項目3に記載の方法。
(a)配列番号6又は11のヌクレオチド配列、又はその天然変異体、
(b)少なくとも80%の同一性を(a)のヌクレオチド配列に対して有するヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドを発現する前記核酸配列、
(c)配列番号6又は11を含む、又は前記配列番号から成るヌクレオチド配列、
(d)配列番号3のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列、
(e)少なくとも80%の同一性を配列番号3に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列、
(f)配列番号9など、配列番号3の酵素活性断片をコードするヌクレオチド配列、又は
(g)少なくとも80%の同一性を配列番号9など、配列番号3の酵素活性断片のアミノ酸配列に対して有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列であって、ポリAポリメラーゼ機能を有するポリペプチドがそのポリヌクレオチドによってコードされる前記ヌクレオチド配列
を含む、又は前記ヌクレオチド配列から成る、項目5に記載の方法。
(a)一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、又は
(b)siRNA分子、及び
(c)shRNA分子
から選択される核酸分子より成るスクリーニングライブラリーである、項目1〜8の何れか一項に記載の方法。
(a)PAPD5又はPAPD7に対するRNA干渉(RNAi)分子、又は
(b)次のものを含むゲノム編集装置
(i)部位特異的DNAヌクレアーゼ、又は部位特異的DNAヌクレアーゼをコードするポリヌクレオチド、及び
(ii)ガイドRNA、又はガイドRNAをコードするポリヌクレオチド
である前記阻害剤。
(a)一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、
(b)siRNA分子、及び
(c)shRNA分子
からなる群より選択されるRNAi分子である、項目16に記載の使用のための阻害剤。
(a)PAPD5の発現及び/又は活性を阻害するRNAi分子、及び
(b)PAPD7の発現及び/又は活性を阻害するRNAi分子
(a)PAPD5の発現及び/又は活性を阻害するRNAi分子、及び
(b)PAPD7の発現及び/又は活性を阻害するRNAi分子
を含む前記混合製剤。
(a)検査対象から得られた試料においてPAPD5及び/又はPAPD7の量及び/又は活性を分析すること、
(b)少なくとも1人の基準対象のPAPD5及び/又はPAPD7の量及び/又は活性に対応する基準データと前記量及び/又は活性を比較すること、及び
(c)工程(b)の比較に基づいて治療成果を予測すること
を含む前記方法。
上で説明したように、本発明はHBV感染症の治療及び/又は予防に使用するためのPAPD5の阻害剤を単独で、又はPAPD7阻害剤と組み合わせて含む組成物に関する。その阻害剤は本明細書において規定される核酸分子であることが好ましい。具体的にはHBV感染症の治療及び/又は予防に使用するためのPAPD5の阻害剤とPAPD7の阻害剤を含む混合製剤が企図されており、前記阻害剤組成物又は前記混合製剤を含む医薬組成物が企図されている。前記医薬組成物(すなわち医薬品)は薬学的に許容可能な担体を所望により含む。前記医薬組成物は治療上許容可能な希釈剤、塩、賦形剤及び/又はアジュバントをさらに含んでよい。
ヌクレオチド配列
「ヌクレオチド配列」又は「ポリヌクレオチド」という用語は当技術分野において一般的に知られており、その用語はDNA及びRNAなどの天然分子を含む、又はそれらから成る分子、並びに例えばオリゴヌクレオチドチオホスフェート、置換リボオリゴヌクレオチド、LNA分子、PNA分子、GNA(グリコール核酸)分子、TNA(トレオース核酸)分子、モルホリノポリヌクレオチドなどの核酸類似体、又はポリシロキサン及び2’−O−(2−メトキシ)エチル−ホスホロチオエートなどの修飾型骨格を有する核酸、又はメチルヌクレオシド、チオヌクレオシド、サルフェートヌクレオシド、ベンゾイルヌクレオシド、フェニルヌクレオシド、アミノヌクレオシド、プロピルヌクレオシド、クロロヌクレオシド、及びメタノカルバヌクレオシドなどの置換基を有する核酸、又は検出を容易にするためのレポーター分子を含む、又はそれらから成る分子を含む。さらに、「ヌクレオチド配列」という用語は本発明の背景では「核酸分子」という用語と同等に解釈されるものとされ、その用語は具体的にDNA、RNA、PNA、又はLNA、又はそれらのハイブリッド、又は当技術分野において知られているそれらのあらゆる修飾物を指すことができる(例えば修飾物について例えば米国特許第5525711号明細書、米国特許第4711955号明細書、米国特許第5792608号明細書、欧州特許第302175号明細書を参照されたい)。本明細書において記載され、提供される核酸配列に含まれる核酸残基は天然核酸残基でも人工核酸残基でもよい。核酸残基の例はアデニン(A)、グアニン(G)、シトシン(C)、チミン(T)、ウラシル(U)、キサンチン(X)、及びヒポキサンチン(HX)である。当業者が理解するように、チミン(T)とウラシル(U)は各種のポリヌクレオチドに応じて互換的に使用され得る。例えば、当業者が理解するようにDNAの部分としてのチミン(T)は転写された対応するmRNAの部分としてのウラシル(U)に対応する。本明細書において記載され、提供されるポリヌクレオチドは一本鎖でも二本鎖でもよく、直鎖状でも環状でもよく、天然でも人工でもよい。
本明細書において使用される「核酸分子」又は「治療用核酸分子」という用語は2個以上の共有結合したヌクレオシドを含む分子(すなわちヌクレオチド配列)として当業者によって一般的に理解されるものとして定義される。本発明の方法の中で言及される核酸分子は概して50ヌクレオチド長い未満の治療用オリゴヌクレオチドである。それらの核酸分子はアンチセンスオリゴヌクレオチドであってよく、又はアンチセンスオリゴヌクレオチドを含んでよく、又はCRISPR RNA、siRNA、shRNA、アプタマー、又はリボザイムなどの別のオリゴマー核酸分子であってよい。核酸分子は一般的に固相化学合成と後続の精製によって実験室において作製される組成物である。核酸分子の配列に言及するときは共有結合したヌクレオチド又はヌクレオシドの配列、又はその核酸塩基部分の順序、又はその核酸塩基部分の修飾に対して言及している。本発明の核酸分子は人工的であり、化学合成されており、典型的には精製又は単離されている。本発明の核酸分子は1個以上の修飾ヌクレオシド又はヌクレオチドを含んでよい。
本明細書において使用される「オリゴヌクレオチド」という用語は2個以上の共有結合したヌクレオシドを含む分子として当業者によって一般的に理解されるものとして定義される。そのような共有結合したヌクレオシドは核酸分子又はオリゴマーと呼ばれる場合もある。オリゴヌクレオチドは一般的に固相化学合成と後続の精製によって実験室において作製される。オリゴヌクレオチドの配列に言及するときは共有結合したヌクレオチド又はヌクレオシドの配列、又はその核酸塩基部分の順序、又はその核酸塩基部分の修飾に対して言及している。本発明のオリゴヌクレオチドは人工的であり、化学合成されており、典型的には精製又は単離されている。本発明のオリゴヌクレオチドは1個以上の修飾ヌクレオシド又はヌクレオチドを含んでよい。アンチセンスオリゴヌクレオチドは内部二重鎖の形成が最低限であるか、又は全く無い一本鎖オリゴヌクレオチドである。siRNA分子は一般的に二重鎖分子を形成する2本の相補性オリゴヌクレオチド鎖(センス鎖とアンチセンス鎖)から成る。shRNA分子は一般的にアンチセンスオリゴヌクレオチドよりも長く、且つ、分子内に内部二重鎖(ヘアピン)構造を形成するオリゴヌクレオチドである。
本明細書において使用される「アンチセンスオリゴヌクレオチド」という用語は標的核酸、特に標的核酸上の連続配列にハイブリダイズすることにより標的遺伝子の発現を調整することが可能なオリゴヌクレオチドとして定義される。アンチセンスオリゴヌクレオチドは必ずしも二重鎖ではなく、したがってsiRNA又はshRNAではない。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは一本鎖であることが好ましい。
本明細書では「RNA干渉(RNAi)分子」という用語はRNAの発現又は翻訳を阻害する、本明細書において定義される核酸分子を含むあらゆる分子を指す。低分子干渉RNA(siRNA)は転写後の相補性mRNAに結合することによりそれらの分解と翻訳機会の喪失を引き起こす二本鎖RNAである。短ヘアピンRNA(shRNA)は発現するとDICERとRNA誘導性サイレンシング複合体(RISC)を介してmRNAを減少させることが可能なヘアピン構造を有する人工RNA分子である。RNAi分子は目的の遺伝子のRNA配列に基づいて設計可能である。その後で対応するRNAi分子を化学的に、又はインビトロ転写によって合成することができ、又はベクター若しくはPCR産物から発現することができる。
「連続ヌクレオチド配列」という用語は前記標的核酸に対して相補的である前記オリゴヌクレオチドの領域を指す。その用語は本明細書において「連続核酸塩基配列」という用語及び「オリゴヌクレオチドモチーフ配列」という用語と互換的に使用される。幾つかの実施形態では前記オリゴヌクレオチドの全てのヌクレオチドが前記連続ヌクレオチド配列を構成する。幾つかの実施形態では前記オリゴヌクレオチドは前記連続ヌクレオチド配列を含み、所望によりその他のヌクレオチド、例えば機能団を前記連続ヌクレオチド配列に結合するために使用される場合があるヌクレオチドリンカー領域を含んでよい。そのヌクレオチドリンカー領域は前記標的核酸に対して相補的であっても相補的でなくてもよい。
ヌクレオチドはオリゴヌクレオチドとポリヌクレオチドの基礎的要素であり、天然ヌクレオチドと非天然ヌクレオチドの両方が本発明の目的のためにヌクレオチドに含まれる。本質的にDNAヌクレオチド及びRNAヌクレオチドなどのヌクレオチドはリボース糖部分、核酸塩基部分、及び1つ以上のリン酸基(ヌクレオシドには存在しない)を含む。ヌクレオシド及びヌクレオチドは「単位」又は「単量体」と互換的に呼ばれる場合もある。
本明細書において使用される「修飾ヌクレオシド」又は「ヌクレオシド修飾」という用語は同等のDNAヌクレオシド又はRNAヌクレオシドと比較して糖部分又は(核酸)塩基部分の1つ以上の修飾の導入によって修飾されているヌクレオシドを指す。好ましい実施形態では修飾ヌクレオシドは修飾糖部分を含む。修飾ヌクレオシドという用語は本明細書において「ヌクレオシド類似体」又は修飾「単位」又は修飾「単量体」という用語と互換的に使用されてもよい。非修飾DNA糖部分又はRNA糖部分を有するヌクレオシドは本明細書においてDNAヌクレオシド又はRNAヌクレオシドと呼ばれる。DNAヌクレオシド又はRNAヌクレオシドの塩基領域に修飾を有するヌクレオシドはそれらの修飾がワトソン・クリック対合を許容する場合はそれでも一般的にDNA又はRNAと呼ばれる。
「修飾ヌクレオシド間結合」という用語は2個のヌクレオシドを共有結合で連結するホスホジエステル(PO)結合以外の結合として当業者によって一般的に理解されるように定義される。修飾ヌクレオシド間結合を有するヌクレオチドは「修飾ヌクレオチド」とも呼ばれる。幾つかの実施形態では修飾ヌクレオシド間結合はホスホジエステル結合と比較して本発明の核酸分子のヌクレアーゼ耐性を強化する。天然オリゴヌクレオチドではヌクレオシド間結合は隣接するヌクレオシド間でホスホジエステル結合を形成するリン酸基を含む。修飾ヌクレオシド間結合はインビボで使用されるオリゴヌクレオチド並びにsiRNAの安定化に特に有用であり、修飾ヌクレオシド間結合は本発明のオリゴヌクレオチド又はsiRNA内、例えばギャップマーオリゴヌクレオチドのギャップ領域内のDNAヌクレオシド領域又はRNAヌクレオシド領域、並びに修飾ヌクレオシド領域でのヌクレアーゼ切断に対して防御するように機能する場合がある。
核酸塩基という用語は核酸ハイブリダイゼーションにおいて水素結合を形成するヌクレオシド及びヌクレオチドに存在するプリン(例えばアデニン及びグアニン)部分及びピリミジン(例えばウラシル、チミン及びシトシン)部分を含む。本発明の背景では核酸塩基という用語は、天然核酸塩基と異なる場合があるが、核酸ハイブリダイゼーション時に機能的である修飾核酸塩基も包含する。この状況では「核酸塩基」はアデニン、グアニン、シトシン、チミジン、ウラシル、キサンチン、及びヒポキサンチンなどの天然核酸塩基、並びに非天然変異体の両方を指す。そのような変異体は例えばHirao et al (2012) Accounts of Chemical Research vol 45 page 2055及びBergstrom (2009) Current Protocols in Nucleic Acid Chemistry Suppl. 37 1.4.1に記載されている。
修飾オリゴヌクレオチド又は修飾核酸分子という用語は1つ以上の糖修飾ヌクレオシド及び/又は修飾ヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチド又は核酸分子を説明する。「キメラ」という用語は修飾ヌクレオシドを有するオリゴヌクレオチド又は核酸分子、具体的にはギャップマーオリゴヌクレオチドを説明するために文献中に使用されている用語である。
「相補性」という用語はヌクレオシド/ヌクレオチドのワトソン・クリック塩基対合能力を説明する。ワトソン・クリック塩基対はグアニン(G)−シトシン(C)とアデニン(A)−チミン(T)/ウラシル(U)である。オリゴヌクレオチドは修飾核酸塩基を有するヌクレオシドを含む場合があり、例えばシトシンの代わりに5−メチルシトシンが使用されることが多く、したがって相補性という用語は非修飾核酸塩基と修飾核酸塩基との間のワトソン・クリック塩基対合を包含する(例えばHirao et al (2012) Accounts of Chemical Research vol. 45 page 2055及びBergstrom (2009) Current Protocols in Nucleic Acid Chemistry Suppl. 37 1.4.1を参照されたい)ことが理解される。
本発明の背景では「同一性」又は「パーセント同一性」という用語はアミノ酸配列又はヌクレオチド配列が本明細書において示される配列、例えば配列番号1、2、又は3の配列に対して少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも98%、及びさらにより好ましくは少なくとも99%の同一性を有していることを意味しており、同一性の値が高い方が低い値よりも好ましい。本発明に従うと核酸配列又はアミノ酸配列が2つ以上存在する状況での「同一性」又は「パーセント同一性」は、当技術分野において知られている配列比較アルゴリズムを使用して、又は手作業の整列と目視検査によって測定する場合のように比較ウインドウ又は指定領域にわたって最大の一致度になるように比較及び整列したときに同一である2つ以上の配列、又は同一であるアミノ酸残基又はヌクレオチドを指定パーセンテージ(例えば、配列番号1、2、3、7、8、若しくは9のアミノ酸配列、又は例えば、配列番号4、5、6、10、若しくは11のヌクレオチド配列との例えば、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、又は少なくとも99%の同一性)で有する2つ以上の配列を指す。
本明細書において使用される「ハイブリダイズすること」又は「ハイブリダイズする」という用語は相対するストランド上の塩基対の間で水素結合を形成することによって二重鎖を形成する2本の核酸ストランド(例えばオリゴヌクレオチド及び標的核酸)として理解されるものとする。2本の核酸ストランド間の結合親和性はハイブリダイゼーションの強度である。ハイブリダイゼーションの強度はそのオリゴヌクレオチドの半数がその標的核酸と二重鎖を形成する温度として定義される融点(Tm)の面から説明されることが多い。生理的条件ではTmは厳密には親和性に比例しない(Mergny and Lacroix, 2003,Oligonucleotides 13:515-537)。標準状態ギブズ自由エネルギーΔG°はより正確な結合親和性の表記であり、それはRが気体定数であり、Tが絶対温度である式ΔG°=−RTln(Kd)による反応の解離定数(Kd)に関連付けられる。したがって、オリゴヌクレオチドと標的核酸との間の反応の非常に低いΔG°はそのオリゴヌクレオチドと標的核酸との間の強いハイブリダイゼーションを反映する。ΔG°は水溶液濃度が1Mであり、pHが7であり、且つ、温度が37℃である場合の反応に付随するエネルギーである。標的核酸へのオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションは自然発生的な反応であり、自然発生的な反応についてΔG°は0未満である。ΔG°は、例えば、Hansen et al., 1965,Chem. Comm. 36−38及びHoldgate et al., 2005, Drug Discov Todayに記載される等温滴定型熱量測定(ITC)法を使用することで実験的に測定可能である。当業者はΔG°の測定に市販の機器が利用可能であることを理解する。Sugimoto et al., 1995, Biochemistry 34:11211−11216及びMcTigue et al., 2004, Biochemistry 43:5388−5405によって記載される適切に得られた熱力学パラメーターを使用するSantaLucia, 1998, Proc Natl Acad Sci USA. 95: 1460−1465によって記載される最近傍モデルを用いることでΔG°の数値を推定することも可能である。ハイブリダイゼーションによって意図する核酸標的を調節することができるように本発明のオリゴヌクレオチドは、10〜30ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドについて−10kcal未満の推定ΔG°値で標的核酸にハイブリダイズする。幾つかの実施形態ではハイブリダイゼーションの程度又は強度は標準状態ギブズ自由エネルギーΔG°によって評価される。前記オリゴヌクレオチドは、8〜30ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドについて−10kcal未満の範囲、例えば−15kcal未満、例えば−20kcal未満、例えば−25kcal未満の推定ΔG°値で標的核酸にハイブリダイズし得る。幾つかの実施形態では前記オリゴヌクレオチドは−10〜−60kcal、例えば−12〜−40kcal、例えば−15〜−30kcal又は−16〜−27kcal、例えば−18〜−25kcalの推定ΔG°値で標的核酸にハイブリダイズする。
本発明によると前記標的核酸は哺乳類PAPD5又はPAPD7をコードする核酸であり、前記標的核酸は例えば遺伝子配列、RNA配列、mRNA配列及びプレmRNA配列、成熟mRNA配列、又はcDNA配列であってよい。したがって前記標的はPAPD5標的核酸又はPAPD7標的核酸と呼ばれる場合がある。本発明のオリゴヌクレオチド又は核酸分子は例えば哺乳類PAPD5又はPAPD7の標的エクソン領域であっても、例えばPAPD5プレmRNA又はPAPD7プレmRNA内の標的イントロン領域であってよい。前記標的核酸はPAPD5タンパク質又はPAPD7タンパク質、特にヒトPAPD5又はPAPD7などの哺乳類PAPD5又はPAPD7をコードする(例えば、ヒト、サル、ラット、及びブタのPAPD5又はPAPD7のmRNA配列とプレmRNA配列を提供する表1A及びB並びに表2A及びBを参照されたい)ことが適切である。
本明細書において使用される「標的配列」という用語は本発明のオリゴヌクレオチド又は核酸分子に対して相補的である核酸塩基配列を含む前記標的核酸内に存在するヌクレオチド配列を指す。幾つかの実施形態ではその標的配列は本発明のオリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列に対して相補的である前記標的核酸上の領域(すなわちサブ配列)から成る。
「天然変異体」という用語は、前記標的核酸と同じ遺伝子座に由来するが、例えば同じアミノ酸をコードするコドンが多数存在する原因となる遺伝コードの縮重のため、又はプレmRNAの選択的スプライシング若しくは単一ヌクレオチド多型及びアレル多型などの多型の存在のために異なる場合があるPAPD5又はPAPD7の遺伝子又は転写物の変異体を指す。したがって、前記オリゴヌクレオチドに対して充分な相補性配列が存在することに基づくと本発明のオリゴヌクレオチドは前記標的核酸及びその天然変異体を標的とし得る。
本明細書において使用される「発現の調整」という用語は、ある核酸分子の投与前のPAPD5又はPAPD7の量と比べてPAPD5又はPAPD7の量の変更するその核酸分子の能力についての総合的な用途として理解されるべきである。あるいは、発現の調整は対照実験を参照することにより判定可能である。その対照は生理食塩水組成物で処理された個体若しくは標的細胞、又は非ターゲティング若しくは核酸分子(モック)で処理された個体若しくは標的細胞であることが一般的に理解される。しかしながらその対照は標準治療で処置された個体であってもよい。
高親和性修飾ヌクレオシドは、例えば融点(Tm)によって評価される場合、前記オリゴヌクレオチドに組み込まれると前記オリゴヌクレオチドの相補性標的に対するその親和性を高める修飾ヌクレオチドである。本発明の高親和性修飾ヌクレオシドは融点を修飾ヌクレオシド当たり好ましくは+0.5〜+12℃の間の温度、より好ましくは+1.5〜+10℃の間の温度、最も好ましくは+3〜+8℃の間の温度だけ高める。多数の高親和性修飾ヌクレオシドが当技術分野において知られており、例えば多くの2’置換ヌクレオシド並びにロックド核酸(LNA)が高親和性修飾ヌクレオシドに含まれる(例えばFreier & Altmann; Nucl. Acid Res., 1997, 25, 4429−4443及びUhlmann; Curr. Opinion in Drug Development, 2000, 3(2), 293−213を参照されたい)。
本発明の核酸分子はDNA及びRNAに見られるリボース糖部分と比べて修飾糖部分、すなわち糖部分の修飾を有する1個以上のヌクレオシドを含んでよい。
2’糖修飾ヌクレオシドは2’位の位置にH又は−OH以外の置換基を有するヌクレオシド(2’置換ヌクレオシド)、又は2’架橋ビラジクルを含むヌクレオシドであり、2’糖修飾ヌクレオシドには2’置換ヌクレオシド及びLNA(2’−4’ビラジクル架橋)ヌクレオシドが含まれる。例えば、前記2’修飾糖は強化された結合親和性及び/又は上昇したヌクレアーゼ耐性を前記オリゴヌクレオチドに提供する場合がある。2’置換修飾ヌクレオシドの例は2’−O−アルキル−RNAヌクレオシド、2’−O−メチル−RNAヌクレオシド、2’−アルコキシ−RNAヌクレオシド、2’−O−メトキシエチル−RNA(MOE)ヌクレオシド、2’−アミノ−DNAヌクレオシド、2’−フルオロ−RNAヌクレオシド、及び2’−F−ANAヌクレオシドである。その他の例については例えばFreier & Altmann; Nucl. Acid Res., 1997, 25, 4429−4443、及びUhlmann; Curr. Opinion in Drug Development, 2000, 3(2), 293−213、及びDeleavey and Damha, Chemistry and Biology 2012, 19, 937を参照されたい。幾つかの2’置換修飾ヌクレオシドの例を下に示す。
LNAヌクレオシドはヌクレオチドのリボース糖環のC2’とC4’との間にリンカー基(ビラジクル又は架橋と呼ばれる)を含む修飾ヌクレオシドである。これらのヌクレオシドは文献では架橋核酸又は二環式核酸(BNA)とも呼ばれる。
Bは核酸塩基部分又は修飾核酸塩基部分を示し、
Zは隣接するヌクレオシドとのヌクレオシド間結合、又は5’末端基を示し、
Z*は隣接するヌクレオシドとのヌクレオシド間結合、又は3’末端基を示し、
Xは−C(RaRb)−、−C(Ra)=C(Rb)−、−C(Ra)=N−、−O−、−Si(Ra)2−、−S−、−SO2−、−N(Ra)−、及び>C=Zからなる群より選択される基を示し、
幾つかの実施形態ではXは−O−、−S−、NH−、NRaRb、−CH2−、CRaRb、−C(=CH2)−、及び−C(=CRaRb)−からなる群より選択され、
幾つかの実施形態ではXは−O−であり、
Yは−C(RaRb)−、−C(Ra)=C(Rb)−、−C(Ra)=N−、−O−、−Si(Ra)2−、−S−、−SO2−、−N(Ra)−、及び>C=Zからなる群より選択される基を示し、
幾つかの実施形態ではYは−CH2−、−C(RaRb)−、−CH2CH2−、−C(RaRb)−C(RaRb)−、−CH2CH2CH2−、−C(RaRb)C(RaRb)C(RaRb)−、−C(Ra)=C(Rb)−、及び−C(Ra)=N−からなる群より選択され、
幾つかの実施形態ではYは−CH2−、−CHRa−、−CHCH3−、CRaRb−からなる群より選択され、
又は−X−Y−が一緒に−C(RaRb)−、−C(Ra)=C(Rb)−、−C(Ra)=N−、−O−、−Si(Ra)2−、−S−、−SO2−、−N(Ra)−、及び>C=Zからなる群より選択される1つ、2つ、3つ、又は4つの基/原子から成る二価のリンカー基(ラジクルとも呼ばれる)を示し、
幾つかの実施形態では−X−Y−は−X−CH2−、−X−CRaRb−、−X−CHRa-、−X−C(HCH3)-、−O−Y−、−O−CH2−、−S−CH2−、−NH−CH2−、−O−CHCH3−、−CH2−O−CH2、−O−CH(CH3CH3)−、−O−CH2−CH2−、OCH2−CH2−CH2−、−O−CH2OCH2−、−O−NCH2−、−C(=CH2)−CH2−、−NRa−CH2−、N−O−CH2、−S−CRaRb−、及び−S−CHRa−からなる群より選択されるビラジクルを示す。
Zは−O−、−S−、及び−N(Ra)−から選択され、且つ、
Ra及び存在する場合はRbのそれぞれが独立して水素、所望により置換されるC1~6アルキル、所望により置換されるC2~6アルケニル、所望により置換されるC2~6アルキニル、ヒドロキシ、所望により置換されるC1~6アルコキシ、C2~6アルコキシアルキル、C2~6アルケニルオキシ、カルボキシ、C1~6アルコキシカルボニル、C1~6アルキルカルボニル、ホルミル、アリール、アリールオキシカルボニル、アリールオキシ、アリールカルボニル、ヘテロアリール、ヘテロアリールオキシカルボニル、ヘテロアリールオキシ、ヘテロアリールカルボニル、アミノ、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノ、カルバモイル、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノカルボニル、アミノC1~6アルキルアミノカルボニル、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノC1~6アルキルアミノカルボニル、C1~6アルキルカルボニルアミノ、カルバミド、C1~6アルカノイルオキシ、スルホノ、C1~6アルキルスルホニルオキシ、ニトロ、アジド、スルファニル、C1~6アルキルチオ、ハロゲンから選択され、その場合にアリール及びヘテロアリールが所望により置換されてもよく、2つのジェミナルな置換基であるRaとRbが一緒に所望により置換されるメチレン(=CH2)を示してもよく、全てのキラル中心については非対称性の基がR配向又はS配向のどちらでも存在していてよく、
R1、R2、R3、R5、及びR5*は水素、所望により置換されるC1~6アルキル、所望により置換されるC2~6アルケニル、所望により置換されるC2~6アルキニル、ヒドロキシ、C1~6アルコキシ、C2~6アルコキシアルキル、C2~6アルケニルオキシ、カルボキシ、C1~6アルコキシカルボニル、C1~6アルキルカルボニル、ホルミル、アリール、アリールオキシカルボニル、アリールオキシ、アリールカルボニル、ヘテロアリール、ヘテロアリールオキシカルボニル、ヘテロアリールオキシ、ヘテロアリールカルボニル、アミノ、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノ、カルバモイル、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノカルボニル、アミノC1~6アルキルアミノカルボニル、モノ及びジ(C1~6アルキル)アミノC1~6アルキルアミノカルボニル、C1~6アルキルカルボニルアミノ、カルバミド、C1~6アルカノイルオキシ、スルホノ、C1~6アルキルスルホニルオキシ、ニトロ、アジド、スルファニル、C1~6アルキルチオ、ハロゲンからなる群より独立して選択され、その場合にアリール及びヘテロアリールが所望により置換されてもよく、2つのジェミナルな置換基が一緒にオキソ、チオオキソ、イミノ、又は所望により置換されるメチレンを示してもよい。
ヌクレアーゼ介在性分解とはオリゴヌクレオチドが相補性ヌクレオチド配列と二重鎖を形成したときにそのような配列の分解を介在することが可能であることをいう。
アンチセンスオリゴヌクレオチドのRNase H活性は相補性RNA分子と二重鎖になっているときにRNase Hを動員するそのアンチセンスオリゴヌクレオチドの能力を指す。国際公開第01/23613号パンフレットはRNase H活性を決定するためのインビトロ方法を提供しており、それらの方法はRNase Hの動員能力を決定するために使用可能である。典型的には、pmol/l/分の単位で測定する場合、オリゴヌクレオチドに相補性標的核酸配列が提供されたときにそのオリゴヌクレオチドが、試験を受けるその修飾オリゴヌクレオチドと同じ塩基配列を有するが、そのオリゴヌクレオチド中の全てのDNA単量体とDNA単量体の間にホスホロチオエート結合を有する単量体だけを含んでいるそのオリゴヌクレオチドを使用し、且つ、国際公開第01/23613号パンフレット(参照により本明細書に援用される)の実施例91〜95によって提供される方法を用いたときに決定された初期速度の少なくとも5%、例えば、少なくとも10%又は20%超の初期速度を有する場合にそのオリゴヌクレオチドによってRNase Hの動員が可能であると考える。
本明細書において使用されるギャップマーという用語は1個以上の親和性増大性修飾ヌクレオシドを含む領域(フランク領域又はウイング領域)が5’側と3’側に隣接するRNase H動員性オリゴヌクレオチドから成る領域(ギャップ)を含むアンチセンスオリゴヌクレオチドを指す。様々なギャップマーデザインが本明細書に記載されている。ヘッドマーとテールマーはRNase Hの動員が可能なオリゴヌクレオチドであって、前記フランクのうちの1つが失われているオリゴヌクレオチド、すなわち前記オリゴヌクレオチドの末端のうちの一方だけしか親和性増大性修飾ヌクレオシドを含んでいないオリゴヌクレオチドである。ヘッドマーについては前記3’隣接領域が失われており(すなわち、前記5’隣接領域が親和性増大性修飾ヌクレオシドを含み)、テールマーについては前記5’隣接領域が失われている(すなわち、前記3’隣接領域が親和性増大性修飾ヌクレオシドを含む)。
LNAギャップマーという用語は親和性増大性修飾ヌクレオシドのうちの少なくとも1個がLNAヌクレオシドであるギャップマーオリゴヌクレオチドのことである。
混合ウイング領域ギャップマー又は混合フランクギャップマーという用語は前記フランク領域のうちの少なくとも一方が少なくとも1個のLNAヌクレオシドと少なくとも1個の非LNA修飾ヌクレオシド、例えば2’−O−アルキル−RNAヌクレオシド、2’−O−メチル−RNAヌクレオシド、2’−アルコキシ−RNAヌクレオシド、2’−O−メトキシエチル−RNA(MOE)ヌクレオシド、2’−アミノ−DNAヌクレオシド、2’−フルオロ−RNAヌクレオシド、及び2’−F−ANAヌクレオシドなどの少なくとも1個の2’置換修飾ヌクレオシド等を含むLNAギャップマーを指す。幾つかの実施形態では混合ウイング領域ギャップマーは(例えば5’側又は3’側に)LNAヌクレオシドだけを含む一方のフランクを有し、且つ、(逆の3’側又は5’側に)2’置換修飾ヌクレオシドと所望によりLNAヌクレオシドを含む他方のフランクを有する。
本明細書において使用される複合体という用語は非ヌクレオチド部分(結合部分又はC領域又は第3領域)に共有結合しているオリゴヌクレオチドを指す。
結合又はリンカーは、1つ以上の共有結合を介して1つの目的の化学基又は化学品を別の目的の化学基又は化学品に結合する2つの原子間の接続である。結合部分を直接的に、又は連結部分(例えばリンカー又はテーザー)を介して前記オリゴヌクレオチドに結合することが可能である。リンカーは第3領域、例えば結合部分をオリゴヌクレオチド(例えばA領域又はC領域の末端)に共有結合するように機能する。
「治療」、「治療すること」、「治療する」、又はそのような用語は所望の薬理学的及び/又は生理学的効果を得ることを全般的に意味するために本明細書において使用される。この効果は疾患及び/又はその疾患が原因の有害作用の部分的治癒又は完全治癒に関して治療的である。本明細書において使用される「治療」という用語は対象における疾患のあらゆる治療に当てはまり、その用語は(a)その疾患を抑制すること、すなわちHBsAg及び/又はHBeAgの増加の阻害のようにその疾患の発症を止めること、又は(b)その疾患を改善(すなわち軽減)すること、すなわちHBsAg及び/又はHBeAgの生産の抑制のようにその疾患の退行を引き起こすことを含む。したがって、HBV感染症を改善及び/又は抑制する化合物はHBV発明を治療する化合物である。本明細書において使用される「治療」という用語は、既に明確になり、且つ、顕在化したHBV感染症の治療のように既に顕在化した障害の医療介入に関することが好ましい。
本明細書において、「予防すること」、「予防」、又は「予防する」という用語は予防的処置、すなわち疾患を治療することよりもむしろ予防することが目的である手段又は手法に関する。予防は疾患又はその症状の完全予防又は部分的予防に関して予防的である所望の薬理学的及び/又は生理学的効果を得ることを意味する。したがって、本明細書において「HBV感染症の予防」には対象においてHBV感染症が生じることを予防すること、及びHBV感染症の症状が生じることを予防することが含まれる。本発明では特にHBVに感染した母親の子供におけるHBV感染症の予防が企図されている。
本発明の目的では「対象」(又は「患者」)は脊椎動物であり得る。本発明の背景では「対象」という用語にはヒトも他の動物も含まれ、特に哺乳類動物が含まれ、他の生物も含まれる。したがって、本明細書において提供される手段と方法はヒトの治療と獣医用途の両方に適用可能である。よって、本明細書では対象はマウス、ラット、ハムスター、ウサギ、モルモット、フェレット、ネコ、イヌ、ニワトリ、ヒツジ、ウシ、ウマ、ラクダ、又は霊長類動物などの動物であり得る。対象は哺乳類動物であることが好ましい。対象はヒトであることがより好ましい。
「B型肝炎ウイルス感染症」又は「HBV感染症」という用語は当技術分野において一般的に知られおり、その用語はB型肝炎ウイルス(HBV)によって引き起こされ、且つ、肝臓を侵す感染症を指す。HBV感染症は急性感染症又は慢性感染症であり得る。感染者の中には初期感染時に何の症状も無い者がおり、中には急に嘔吐、皮膚黄変、疲労感、暗色尿、及び腹部痛を伴う病状が始まる者もいる(「Hepatitis B Fact sheet N°204」、who.int.、2014年7月;2014年11月4日に検索)。これらの症状は数週間続くことが多く、これらの症状の結果死亡する場合があり得る。症状が始まるまで30日〜180日かかることがある。出生前後に感染した者では90%の者が慢性B型肝炎感染症を発症するが、5歳より後に感染した者では10%未満しか発症しない(「Hepatitis B FAQs for the Public − Transmission」、アメリカ疾病予防管理センター(CDC)、2011年11月29日に検索)。慢性患者の大半が症状を持たないが、しかしながらやがて肝硬変や肝臓癌が発症する(Chang, 2007, Semin Fetal Neonatal Med, 12: 160−167)。これらの合併症の結果、慢性患者の15〜25%が死亡する(「Hepatitis B Fact sheet N°204」、who.int.、2014年7月;2014年11月4日に検索)。本明細書では「HBV感染症」という用語には急性B型肝炎感染症と慢性B型肝炎感染症が含まれる。「HBV感染症」という用語には初期感染症の無症状期、有症状期、並びにHBV感染症の無症状慢性期も含まれる。
本明細書では配列番号1又は2(すなわちPAPD5)の酵素活性断片は、配列番号1又は2(すなわちPAPD5)の連続アミノ酸残基伸長物を含み、且つ、PAPD5の生物活性(すなわち機能性)、特にポリAポリメラーゼ機能を保持するポリペプチドに関する。これと合致して、本明細書では配列番号3(すなわちPAPD7)の酵素活性断片は、配列番号3(すなわちPAPD7)の連続アミノ酸残基伸長物を含み、且つ、PAPD7の生物活性(すなわち機能性)、特にポリAポリメラーゼ機能を保持するポリペプチドに関する。PAPD5及びPAPD7の酵素活性断片の例はヌクレオチジルトランスフェラーゼドメイン及びCid1ポリAポリメラーゼである。
本明細書では「ポリペプチド」という用語にはペプチド(アミド)結合によって連結されたアミノ酸単量体を含む、又はそのようなアミノ酸単量体から成る全ての分子が含まれる。したがって、「ポリペプチド」という用語はペプチド、オリゴペプチド、ポリペプチド、及びタンパク質などの全てのアミノ酸配列を含む。本明細書に記載される「ポリペプチド」は天然ポリペプチドであっても非天然ポリペプチドであってもよい。非天然ポリペプチドはその天然の相対物と比較して少なくとも1つの突然変異(例えば、アミノ酸置換、アミノ酸欠失、又はアミノ酸付加)を含む場合がある。非天然ポリペプチドはベクターにクローン化され、且つ/又は前記ポリペプチドの天然プロモーターではないプロモーターに機能可能であるように結合される場合もある。前記プロモーターは構成的活性プロモーターであり得る。本明細書において使用される「アミノ酸」又は「残基」という用語には天然アミノ酸並びに他のアミノ酸(例えば、非天然アミノ酸、核酸配列によってコードされないアミノ酸、合成アミノ酸等)のL異性体とD異性体が含まれる。天然アミノ酸の例はアラニン(Ala;A)、アルギニン(Arg;R)、アスパラギン(Asn;N)、アスパラギン酸(Asp;D)、システイン(Cys;C)、グルタミン(Gln;Q)、グルタミン酸(Glu;E)、グリシン(Gly;G)、ヒスチジン(His;H)、イソロイシン(Ile;I)、ロイシン(Leu;L)、リシン(Lys;K)、メチオニン(Met;M)、フェニルアラニン(Phe;F)、プロリン(Pro;P)、セリン(Ser;S)、トレオニン(Thr;T)、トリプトファン(Trp;W)、チロシン(Tyr;Y)、バリン(Val;V)である。翻訳後修飾天然アミノ酸はデヒドロブチリン(Dhb)及びラビオニン(Lab)である。非天然アミノ酸の例が上に記載されている。非天然ポリペプチドは天然型のポリペプチドのアミノ酸配列と比較してそのアミノ酸配列に共有結合又は非共有結合した1つ以上の非アミノ酸置換基又は異種性アミノ酸置換基、例えばレポーター分子又は他のリガンドを含む場合がある。
本明細書では「化合物」という用語は本発明によるRNAi分子などのあらゆる核酸分子、又はそのような核酸分子を含むあらゆる複合体を意味する。例えば、本明細書では化合物はPAPD5又はPAPD7に対するRNAi分子、具体的にはアンチセンスオリゴヌクレオチド、siRNA、又はshRNAであり得る。
「組成物」という用語が核酸分子化合物を説明するために使用される場合もある。核酸分子組成物は20%未満の不純物、好ましくは15%又は10%未満の不純物、より好ましくは9%、8%、7%、又は6%未満不純物、最も好ましくは5%未満の不純物を有する。それらの不純物は主要核酸分子成分よりも1ヌクレオチド又は2ヌクレオチド短い(n−1又はn−2)核酸分子であることが典型的である。
「阻害剤」という用語は当技術分野において知られており、その用語は特定のタンパク質(例えばPAPD5及び/又はPAPD7)の生理学的機能(すなわち活性)を完全又は部分的に抑制する、又は低下させることが可能な化合物/物質又は組成物に関する。本発明の背景において、PAPD5又はPAPD7の「阻害剤」はPAPD5遺伝子産物又はPAPD7遺伝子産物の発現の抑制又は低下によりそれぞれPAPD5又はPAPD7の活性/機能を抑制する、又は低下させることが可能である。したがって、PAPD5又はPAPD7の機能性(すなわち活性)であって、ポリAポリメラーゼ機能を含む前記機能の低下に反映されるPAPD5又はPAPD7の発現レベルの低下(例えばPAPD5又はPAPD7のmRNAレベルの低下、又はPAPD5若しくはPAPD7のタンパク質レベルの低下)がPAPD5又はPAPD7の阻害剤によって引き起こされ得る。よって、本発明の背景ではPAPD5又はPAPD7の阻害剤はPAPD5又はPAPD7のレベルを低下させることが可能であるPAPD5発現又はPAPD7発現の転写抑制因子も包含し得る。好ましい阻害剤は本発明の核酸分子である。
本明細書では「測定すること」という用語は「分析すること」又は「決定すること」(すなわち検出及び/又は定量すること)も意味する。例えば、「PAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を測定すること」という用語はPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性の量を決定すること、例えばPAPD5ポリペプチド及び/又はPAPD7ポリペプチド(すなわちタンパク質)の量を決定することを意味する。PAPD5タンパク質及び/又はPAPD7タンパク質の量及び/又は活性を測定するための方法が当技術分野において知られており、本明細書において上に記載されている。これと合致して、「被験化合物がHBVの増殖を阻害するか測定すること」という用語は被験化合物又は被験組成物がHBVの増殖を阻害するか分析又は決定(すなわち検出及び/又は定量)することを意味する。
オリゴヌクレオチドモチーフ配列及びオリゴヌクレオチド化合物
ハイブリジェニクス・サービス・SASによって実施されるY3Hスクリーニングに適切であるようにDHQとTHPの2種類の化学シリーズの各1種類の化合物を合成した。両化合物はPEG5リンカーを含み、且つ、トリメトプリム(TMP)アンカーリガンドでタグされた(表5)。
前記2種類の化合物はロッシュによってハイブリジェニクス・サービス・SASに提供され、透過性と毒性について検査された。その後、化合物をハイブリジェニクスのcDNAヒト胎盤ライブラリー(PLA)に対してスクリーニングした。それらのスクリーニングはハイブリジェニクスULTImate Y2H(商標)向けに開発された最適化済み細胞間接合プロトコルに従って、異なる化合物濃度を用いて実施された(表6)。
前記スクリーンより得られたクローンを96ウェルフォーマットで選び取り、スポットアッセイを用いる依存性アッセイにおいて選択条件(HIS+)下での増殖について陽性のクローンを評価した。前記タグ付き化合物が存在するときに選択培地上で増殖可能なクローンだけを選別し、処理(細胞溶解、PCR,遺伝子シーケンシング)し、BLAST分析を用いてタンパク質アラインメントについてマップした。
この検証工程ではそれぞれ1種類の特定された断片プレイと1種類の化学プローブ(HBX129653、HBX129654)を1対1実験において検査する。前記スクリーニングライブラリーから選択された3種類のプレイのプラスミドを酵母細胞から抽出し、大腸菌中で増幅し、そして再度YHGX13酵母細胞に形質転換処理した。それぞれの相互作用について、トリプトファン、ロイシン、及びヒスチジンを含まず、且つ、前記化学プローブとFK506を添加された選択培地上にフックコンストラクトとプレイコンストラクトの両方を発現する二倍体酵母培養物の1倍希釈物、1/10希釈物、1/100希釈物、及び1/1000希釈物をスポットした。二回の複製実験で相互作用を検査した。各化合物及び各濃度(DMSO;5μM、10μM、及び20μMのHBX129653;5μM、10μM、及び20μMのHBX129654;5μMのHBX24786トリメトプリム(TMP);及び5μMのHBX129634(TMP−PEG5−OH))に付き1枚のプレートを使用した。プレートを30℃で3日間にわたってインキュベートした。
全長PAPD5var1のコード配列(NM_001040284.2)及び全長PAPD7varX1のコード配列(XM_005248234.2)をそれらのタンパク質の(高GC含量を除くための)N末端側コドン最適化遺伝子断片と市販のC末端側領域のクローンから再構成し、元のpGADGHからの派生物であるプラスミドpP7(Cellular interactions in development: A practical approach、Hartley, D.A.編、1993年、Oxford University Press、オックスフォード内のBartelら著、153〜179頁)内にGal4活性化ドメイン(AD)とイン・フレームになるようにクローン化した(AD−プレイ)。挿入断片全体をシーケンシングすることでそれらのコンストラクトを確認した。それぞれのプレイについて、二倍体酵母培養物を作製するために前記プレイプラスミドで形質転換されたYHGX13酵母細胞(Y187 ade2−101::loxP−kanMX−loxP, matα)とDHFR(ジヒドロ葉酸レダクターゼ)フックで形質転換されたYPT6AT酵母細胞(mata)との間でミニ交雑を実施した。それぞれの相互作用について、トリプトファン、ロイシン、及びヒスチジンを含まず、且つ、前記化学プローブとFK506を添加された選択培地上にフックコンストラクトとプレイコンストラクトの両方を発現する二倍体酵母培養物の1倍希釈物、1/10希釈物、1/100希釈物、及び1/1000希釈物をスポットした。二回の複製実験で相互作用を検査した。各化合物及び各濃度(DMSO;5μM、10μM、及び20μMのHBX129653;5μM、10μM、及び20μMのHBX129654;5μMのHBX24786トリメトプリム(TMP);及び5μMのHBX129634(TMP−PEG5−OH))に付き1枚のプレートを使用した。プレートを30℃で3日間にわたってインキュベートした。
本競合アッセイは一定濃度の化学プローブ(HBX129653、HBX129654)と濃度上昇するその化学プローブの親化合物(MOL653、MOL654)又はその不活性型エナンチオマー(INACT653、INACT654)を使用する前記1対1検証に基づいている(表7)。前記遊離化合物について8種類の濃度(0μM、0.25μM、0.5μM、1μM、2μM、5μM、10μM、及び20μM)、及び前記タグ付きY3H化合物について一定濃度(1μM)の選択培地上で本競合アッセイを実施した。
HepaRG細胞(Biopredics International、レンヌ、フランス;カタログ番号HPR101)をウィリアムのE培地(GIBCO)、培養培地サプリメント(Biopredics、カタログ番号ADD710)、及び1%(体積/体積)GlutaMAX−I(Gibco番号第32551番)及び1×ペニシリン/ストレプトマイシン(Gibco番号第15140番)からなる完全HepaRG培養培地の中で5%CO2含有加湿雰囲気下、37℃において2週間にわたって培養した。分化を開始させるために集密細胞上の前記培養培地に0.9%(体積/体積)DMSO(シグマ・アルドリッチ、D2650)を添加した。1週間後に培地を完全分化培地(1.8%(体積/体積)DMSOを添加したHepaRG培養培地)に置き換え、7日毎に分化培地を交換しながらその中で細胞を約4週間にわたって維持した。分化したHepaRG細胞(dHepaRG)は胆管細胞様細胞に囲まれた肝細胞様細胞島を示した。HBV感染及び化合物処理の前にdHepaRG細胞を100μLの完全分化培地中にウェル当たり60,000細胞の割合でコラーゲンI被覆96ウェルプレート(Gibco、カタログ番号A11428−03)に播種した。HBV感染の前に播種後約1週間にわたって96ウェルプレート中で細胞に分化表現型を回復させた。
30のMOIでHBV粒子をdHepaRG細胞に感染させた。それらのHBV粒子はHBV産生HepG2.2.15細胞(Sells et al 1987 Proc Natl Acad Sci U S A 84, 1005−1009)から生産された。dHepaRGの培養条件、分化、及びHBV感染はこれまでに記載されている(Hantz, 2009, J. Gen. Virol., 2009, 90: 127−135)。簡単に説明すると、4%PEG−8000とウイルスストック(20〜30GE/細胞)を含む完全分化培地(ウィリアムのE培地(GIBCO)、培養培地サプリメント(Biopredics、カタログ番号ADD710)及び1%(体積/体積)GlutaMAX−I(Gibco番号第32551番)及び1×Pen/Strep(Gibco番号第15140番)から成り、1.8%(体積/体積)DMSOを添加されたHepaRG培養培地)を添加した(120μL/ウェル)。感染から1日後にリン酸緩衝生理食塩水でそれらの細胞を3回洗浄し、その実験中に培地(完全分化培地)を2日毎に交換した。
4種類の異なるsiRNAのプール(ON TARGETplus)をGE Dharmaconより取得した(表8)。
HBV抗原の発現と分泌に対する影響を評価するために11日目に上清を収集した。製造業者のプロトコルに従ってCLIA ELISAキット(Autobio Diagnostic;番号CL0310−2、番号CL0312−2)を使用してHBVのHBsAgレベルとHBeAgレベルを測定した。簡単に説明すると、ウェル当たり25μLの上清を各抗体で被覆されたマイクロタイタープレートに移し、25μLの酵素複合体試薬を添加した。そのプレートを振盪器上で60分間にわたって室温でインキュベートした後に自動洗浄機を使用してウェルを洗浄緩衝液で5回洗浄した。25μLの基質Aと基質Bを各ウェルに添加した。それらのプレートを振盪器上で10分間にわたって室温でインキュベートした後にEnvision発光リーダー(Perkin Elmer)を使用して発光を測定した。
HBV感染dHepaRG細胞から上清培地を取り除いた後にCellTiterGlo One溶液(Promega)と共に細胞をインキュベートして細胞生存度を測定した。
細胞内mRNAを単離するためにdHepaRGをPBS(Gibco)で1回洗浄し、そしてマグナピュア「96細胞内RNAラージボリュームキット」(ロッシュ;番号05467535001)を使用して溶解した。それらの溶解物は−80℃で貯蔵可能である。リアルタイムqPCR反応のためにAB7900 HT配列検出システム(Applied Biosystems)とTaqMan(登録商標)遺伝子発現マスターミックス(ThermoFisher Scientific)を使用した。HBV mRNAの検出のためにHBVコア特異的プライマー(Integrated DNA Technologies)(表9)を使用し、siRNAの存在下でのPAPD5及びPAPD7の減少の測定のために遺伝子特異的TaqMan(登録商標)発現アッセイプローブ(ThermoFisher Scientific;PAPD5:カタログ番号4331182;PAPD7:カタログ番号4331182)を使用した。β−アクチンに対するTaqMan(登録商標)発現アッセイプローブ(ThermoFisher Scientific;PAPD5:カタログ番号4331182)を使用して試料を正規化した。
以下の最適化を行うと共に製造業者のプロトコルに従ってQIAampウルトラセンス・ウイルスキット(Qiagen、番号53704)を使用してHBV DNAの抽出を実施する。緩衝液ACを添加する前に30μLと3μLのウイルス試料を1mLのPBSに希釈する。1回目の遠心分離工程を最高速度及び4℃で45分間にわたって行う。QuantStudio 12K Flex(Applied Biosystems)、TaqMan遺伝子発現マスターミックス(Applied Biosystems、番号4369016)、及び100μMの濃度にした上記の表9に表示のプライマーとプローブの1:1:0.5の比率のプレミックスを使用するqPCRによってHBV DNAの定量を二回の複製実験で行う。次の設定でそのqPCRを実施する。UDGインキュベーション(2分、50℃)、酵素活性化(10分、95℃)、及びqPCR(変性のための95℃で15秒の処理、及びアニーリングと伸長のための60℃で1分の処理を含むサイクルを40回)。ゲノム等量の計算は既知の濃度のHBV D遺伝子型プラスミド希釈物から生成された検量線に基づく。
オリゴヌクレオチド合成は一般的に当技術分野において知られている。適用可能であるプロトコルを以下に示す。使用する装置、支持体、及び濃度に関して方法を少し変更することにより本発明のオリゴヌクレオチドを作製した可能性がある。
アセトニトリル中の5’−O−DMT保護アミダイトの0.1M溶液と活性化剤としてのアセトニトリル中のDCI(4,5−ジシアノイミダゾール)の溶液(0.25M)を使用してβ−シアノエチルホスホロアミダイト(DNA−A(Bz)、DNA−G(ibu)、DNA−C(Bz)、DNA−T、LNA−5−メチル−C(Bz)、LNA−A(Bz)、LNA−G(dmf)、又はLNA−T)の結合を実施する。所望の修飾、例えば結合基を結合するためのC6リンカー又は結合基それ自体を有するホスホロアミダイトを最後のサイクルに使用することができる。キサンタンヒドリド(9:1アセトニトリル/ピリジン混液中の0.01M)を使用することによりホスホルチオエート結合を導入するためのチオール化を実施する。7:2:1のTHF/ピリジン/水の混液中の0.02Mヨウ素を使用してホスホルジエステル結合を導入することができる。残りの試薬はオリゴヌクレオチド合成に典型的に使用される試薬である。
Phenomenex Jupiter C18 10μ 150x10 mmカラム上での調製的RP−HPLCにより前記粗製化合物を精製する。0.1M酢酸アンモニウムpH8とアセトニトリルの混液を緩衝液として5mL/分の流速で使用する。集めた画分を凍結乾燥して精製した化合物を典型的には白色の固形物として産出する。
DCI:4,5−ジシアノイミダゾール
DCM:ジクロロメタン
DMF:ジメチルホルムアミド
DMT:4,4’−ジメトキシトリチル
THF:テトラヒドロフラン
Bz:ベンゾイル
Ibu:イソブチリル
RP−HPLC:逆相高速液体クロマトグラフィー
オリゴヌクレオチドとRNA標的(リン酸結合型、PO)の二重鎖を500mlのRNase非含有水中に3mMに希釈し、500mlの2×Tm緩衝液(200mM NaCl、0.2mM EDTA、20mMリン酸ナトリウム、pH7.0)と混合する。その溶液を3分間にわたって95℃まで加熱し、その後で30分間にわたって室温でアニーリングさせた。ペルティエ温度プログラマーPTP6を搭載したLambda 40 UV/VIS分光光度計上でPE Templabソフトウェア(Perkin Elmer)をして二重鎖の融点(Tm)を測定する。温度を20℃から95℃まで徐々に上げ、その後で25℃まで下げ、260nmでの吸光を記録する。1次導関数及び融解とアニーリングの両方の極大を使用して二重鎖のTmを評価する。
PAPD5/7はDHQ及びTHPの共通の相互作用パートナーとしてY3H ULTImate YChemHスクリーニングにおいて特定された。
材料と方法の節において記載されたような両化合物(DHQ及びTHP)についてのY3Hスクリーニングにおいて多数の断片によってPAPD5(変異体1:NP_001035374;変異体2:NP_001035375)とPAPD7(XP_005248291)の両方のタンパク質が特定された。それらの特定されたタンパク質はハイブリジェニクスによって(スケールA〜Dのうちの)Aという信頼スコアを与えられた(表10)。
第1の検証工程では(材料と方法の節において記載されたような)1対1検証アッセイのために第1のスクリーニングで特定された3種類の断片を選択し、それらの断片を3つの異なる濃度(5μM、10μM、及び20μM)で試験した(表11)。
タンパク質断片並びに全長PAPD5及び全長PAPD7へのDHQとTHPの結合の検証後に不活性型又は活性型の遊離化合物のどちらかを使用する(材料と方法の節において記載されたような)Y3H ULTImate YChenH競合実験においてその結合を確認した(表13).前記不活性型エナンチオマーが存在するときではなく前記親活性型化合物が存在するときに酵母の増殖低下が減少したことは、前記親化合物が前記化学プローブと競合し、前記タンパク質標的と相互作用することを意味する。
DHQ及びTHPのPAPD5/7への結合とこれらの2種類のタンパク質のHBV遺伝子発現に対する影響を相関づけるため、我々は自然にHBVに感染したdHepaRGにおいてこれらのタンパク質を減少させ、この減少のウイルスパラメーターに対する影響をモニターするためにRNAi技術を使用した。そのために我々は材料と方法の節に記載されているようにHBV感染dHepaRG細胞においてPAPD5及びPAPD7に対するsiRNAプール(表8参照)を使用した。
HBsAgとHBeAgを読みだされた情報として使用してDHQ及びTHP及びそれらの変異体のHBV感染症に対する有効性をHepG2.2.15細胞において測定した。
HBX129653(DHQ−TMP):IC50 HBsAg 1.181uM
HBX129654(THP−TMP):IC50 HBsAg 0.299uM
MOL653(DHQ−遊離活性型):IC50 HBsAg 0.003uM;IC50 HBeAg 0.007uM
MOL654(THP−遊離活性型):IC50 HBsAg 0.003uM
INACT653(DHQ−遊離不活性型):IC50 HBsAg 3.15uM
INACT654(THP−遊離不活性型):IC50 HBsAg >25uM
16〜20merのギャップマーを使用してオリゴヌクレオチドスクリーニングをPAPD5 mRNAに対して行った。HeLa細胞でのインビトロ実験において効力の試験を実施した。
HeLa細胞株を欧州培養細胞株系統保存機関より購入し(ECACC、番号93021013)、供給者が推奨するように37℃で5%のCO2を含む加湿インキュベーターの中で維持した。アッセイのために10%ウシ胎児血清(FBS)、2mMグルタミンAQ、1%NEAA、25μg/mlゲンタマイシンを含むイーグル最小基本培地(シグマ、M2279)の中でウェル当たり2,500細胞を96マルチウェルプレートに播種した。
PBS中に溶解したオリゴヌクレオチドを添加する前に24時間にわたって細胞を培養した。オリゴヌクレオチドの終濃度は5μMと25μMであり、最終培養体積はウェル当たり100μlであった。オリゴヌクレオチド化合物の添加から3日後にそれらの細胞を収集し、PureLink Pro 96 RNA精製キット(Ambion)を製造業者の指示に従って使用してRNAを抽出した。RNA/LNA二重鎖の変性(90℃、40秒)の後に供給業者の推奨に従う目的の遺伝子であるPAPD5(Hs00223727_m1、FAM−MGB、Life Technologies)とハウスキーピング遺伝子であるGUSB(Hu_4326320E、VIC−MGB、Life Technologies)向けのTaqManプライマーアッセイを用いる二重鎖設定でワンステッププロトコル(Quanta BioscienceのqScript(商標) XLT One−Step RT−qPCR ToughMix(登録商標)、Low ROX(商標)番号95134−500)でQPCRを行った。相対的なPAPD5 mRNA発現レベルが対照試料(PBS処理細胞)の平均の割合(%)として表14に示されている。図8はPAPAD5コード配列にわたる個々のオリゴヌクレオチド化合物によって達成された標的ノックダウンを提示している。
目的の遺伝子であるPAPD7(Hs00173159_m1、FAM−MGB、Life Technologies)向けのTaqManプライマーアッセイに置き換えて基本的に実施例4に記載されているようにオリゴヌクレオチドスクリーニングをPAPD7 mRNAに対して行った。
実施例4と実施例5より選ばれた最も有効なオリゴヌクレオチドはHBV感染dHepaRG細胞におけるHBV増殖パラメーターに対する効果を検査するために選択された。
表19に表示されるオリゴヌクレオチド混合物を使用して実施例7の実験を反復した。
非支援型送達の代わりにHBV感染dHepaRG細胞への前記オリゴヌクレオチドの形質移入を用いて同様の相乗的な結果が達成され得るか以下の実験において調査した。
Claims (22)
- B型肝炎ウイルス感染症の治療及び/又は予防に使用するための核酸分子であって、PAP関連ドメイン含有タンパク質5(PAPD5)の発現及び/又は活性を阻害する前記核酸分子を含む組成物。
- 前記組成物が
(a)PAPD5の発現及び/又は活性を阻害する核酸分子、及び
(b)PAP関連ドメイン含有タンパク質7(PAPD7)の発現及び/又は活性を阻害する核酸分子
を含む混合製剤である、請求項1に記載の使用のための組成物。 - 前記核酸分子が
(a)一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、
(b)siRNA分子、
(c)shRNA分子、及び
(d)次のものを含むゲノム編集装置、
(i)部位特異的DNAヌクレアーゼ、又は部位特異的DNAヌクレアーゼをコードするポリヌクレオチド、及び
(ii)ガイドRNA、又はガイドRNAをコードするポリヌクレオチド
からなる群より独立して選択される、請求項1又は2に記載の使用のための組成物。 - 前記核酸分子が
(a)PAPD5標的核酸に対して少なくとも80%の相補性を有する10〜30ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含み、且つ、PAPD5の発現を低下させることが可能である一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、及び
(b)PAPD7標的核酸に対して少なくとも80%の相補性の相補性を有する10〜30ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含み、且つ、PAPD7の発現を低下させることが可能である一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド
から選択される、請求項2又は3に記載の使用のための組成物。 - 前記組成物によってHBsAgの分泌が減少し、HBeAgの分泌が減少し、且つ/又は細胞内HBV mRNA若しくはHBV DNAの生産が阻害される、請求項1〜4の何れか一項に記載の使用のための組成物。
- 前記組成物によって慢性HBV感染症の発症が抑制され、且つ/又はHBV感染者の感染性が低下する、請求項1〜5の何れか一項に記載の使用のための組成物。
- B型肝炎ウイルス(HBV)感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物又は組成物を特定するための方法であって、
(a)PAPD5及び/又はPAPD7を発現する細胞と被験化合物又は被験組成物を接触させること、
(b)前記被験化合物又は被験組成物が存在する状態と存在しない状態でPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を測定すること、及び
(c)HBV感染症を予防、改善、及び/又は抑制する化合物としてPAPD5及び/又はPAPD7の発現及び/又は活性を低下させる化合物又は組成物を特定すること
を含む前記方法。 - 前記被験化合物が核酸分子ライブラリーであり、且つ、工程(c)によってPAPD5又はPAPD7のmRNA発現を少なくとも60%低下させる核酸分子が特定される、請求項7に記載の方法。
- 前記被験組成物がPAPD5を減少させることが可能な核酸分子とPAPD7を減少させることが可能な核酸分子の混合製剤である、請求項7に記載の方法。
- HBVの増殖を阻害する前記化合物がHBV表面抗原(HBsAg)の分泌を阻害し、且つ/又はHBVエンベロープ抗原(HBeAg)の分泌を阻害し、且つ/又は細胞内HBV mRNAの生産を阻害する、請求項7〜9の何れか一項に記載の方法。
- 10〜30ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列であって、PAPD5標的核酸に対して少なくとも80%相補的である前記連続ヌクレオチド配列を含み、又は前記連続ヌクレオチド配列から成り、且つ、PAPD5の発現を低下させることが可能である一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド。
- 10〜30ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列であって、PAPD7標的核酸に対して少なくとも80%相補的である前記連続ヌクレオチド配列を含み、又は前記連続ヌクレオチド配列から成り、且つ、PAPD7の発現を低下させることが可能である核酸分子。
- 前記核酸分子が一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドである、請求項12に記載の核酸分子。
- 1個以上の2’糖修飾ヌクレオシドを含む請求項11〜13の何れか一項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子。
- 前記1個以上の2’糖修飾ヌクレオシドが2’−O−アルキル−RNAヌクレオシド、2’−O−メチル−RNAヌクレオシド、2’−アルコキシ−RNAヌクレオシド、2’−O−メトキシエチル−RNAヌクレオシド、2’−アミノ−DNAヌクレオシド、2’−フルオロ−DNAヌクレオシド、アラビノ核酸(ANA)ヌクレオシド、2’−フルオロ−ANAヌクレオシド、及びLNAヌクレオシドからなる群より独立して選択される、請求項14に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子。
- 前記1個以上の2’糖修飾ヌクレオシドがLNAヌクレオシドである、請求項14又は15に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子。
- 前記連続ヌクレオチド配列内のヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項11〜16の何れか一項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子。
- 前記オリゴヌクレオチドが式5’−F−G−F’−3’のギャップマーであり、F領域とF’領域は独立して1〜7個の2’糖修飾ヌクレオシドを含み、G領域はRNase Hの動員が可能な6ヌクレオシドと16ヌクレオシドの間の領域である、請求項11又は請求項13〜17の何れか一項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド。
- 請求項11〜18の何れか一項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子、及び前記オリゴヌクレオチドに共有結合している少なくとも1つの結合部分を含む複合体。
- (a)PAPD5の発現及び/又は活性を阻害する核酸分子、及び
(b)PAPD7の発現及び/又は活性を阻害する核酸分子
を含む混合製剤。 - 前記核酸分子が請求項11〜18の何れか一項から選択されるか、又は請求項19に記載の複合体である、請求項20に記載の混合製剤。
- 請求項11〜18の何れか一項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は核酸分子、又は請求項19に記載の複合体、又は請求項20又は21に記載の混合製剤を含む医薬組成物。
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