JP2018500328A - 一本鎖Fc融合タンパク質 - Google Patents
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Abstract
Description
この出願は、2014年12月19日に出願された米国仮出願第62/094,242号の利益を主張する。上記出願の全体の教示は、参考として本明細書に援用される。
「ポリペプチド」とは、長さ、翻訳後修飾、または機能とは無関係に、2つまたはそれよりも多いアミノ酸の任意の配列のことである。「ポリペプチド」、「ペプチド」および「タンパク質」は本明細書では互換的に使用される。ポリペプチドは天然のアミノ酸および非天然のアミノ酸を含むことが可能である。ポリペプチドは種々の標準化学法のいずれにおいても改変することが可能である(例えば、アミノ酸は保護基を用いて改変することが可能である;カルボキシ末端アミノ酸を末端アミド基にすることが可能である;アミノ末端残基は、例えば、親油性を増強する基を用いて改変することが可能である;またはポリペプチドは化学的にグリコシル化するもしくは他の方法で改変して安定性もしくはin vivo半減期を増加することが可能である)。ポリペプチド改変は、環状化合物もしくは他の分子などの別の構造をポリペプチドに付着させることを含むことが可能であり、1つまたは複数のアミノ酸を変化した立体配置で(すなわち、RもしくはS;またはLもしくはD)含有するポリペプチドも含むことが可能である。
本発明の一本鎖Fc融合タンパク質は、アミノ末端(N末端)からカルボキシ末端(C末端)まで以下の配置:
X−L1−HINGE−Fc
を有し、
Xは、可溶性タンパク質であり;
L1は、アミノ末端からカルボキシ末端まで以下の配置:
L2−CL−L3−CH1−L4またはL2−CH1−L3−CL−L4
を有するリンカーであり、
L2とL4は、独立してポリペプチドリンカーであるか、または独立して存在せず、
L3は、ポリペプチドリンカーであり;
CLは、免疫グロブリン軽鎖由来の定常領域ポリペプチドであり;
CH1は、免疫グロブリン重鎖のCH1ドメイン由来の定常領域ポリペプチドであり;
HINGEは、免疫グロブリンのヒンジ配列であるか、または存在せず、ただし、HINGEが存在しない場合はL4が存在し、
Fcは、免疫グロブリンのカルボキシ末端またはその任意の活性断片もしくは誘導体である。
本発明は、本明細書に開示される種々のFc融合タンパク質のいずれかをコードする核酸も提供する。コドン使用は、細胞における発現を改善するように選択することができる。そのようなコドン使用は選択される細胞型に依存することになる。E.coliおよび他の細菌、ならびに哺乳動物細胞、植物細胞、酵母細胞および昆虫細胞については特殊なコドン使用パターンが開発されている。例えば、Mayfieldら、Proc. Natl. Acad. Sci. USA、100巻(2号):438〜442頁(2003年1月21日);Sinclairら、Protein Expr. Purif.、26巻(I号):96〜105頁(2002年10月);Connell, N.D.、Curr. Opin. Biotechnol.、12巻(5号):446〜449頁(2001年10月);Makridesら、Microbiol Rev.、60巻(3号):512〜538頁(1996年9月);およびSharpら、Yeast、7巻(7号):657〜678頁(1991年10月)を参照されたい。
一態様では、本発明は診断剤または治療剤として有用であるFc融合タンパク質を提供する。一態様では、本発明は障害の処置において有用であるFc融合タンパク質を提供する。処置することができる疾患または障害は、本発明の新規のL1リンカーを介して、Fcドメインに融合されているタンパク質(X)の正体により指定され、がん、炎症性疾患、関節炎、骨粗鬆症、感染症、特に肝炎、細菌感染症、ウイルス感染症、遺伝病、肺疾患、糖尿病、ホルモン関連疾患、アルツハイマー病、心疾患、心筋梗塞、深部静脈血栓症、循環系の疾患、高血圧、低血圧、アレルギー、疼痛緩和、低身長症および他の成長障害、中毒、凝血疾患(blot clotting disease)、自然免疫系の疾患、塞栓症、創傷治癒、火傷の治癒、クローン病、喘息、潰瘍、敗血症、緑内障、脳血管虚血、呼吸促迫症候群、角膜潰瘍、腎疾患、糖尿病性足潰瘍、貧血、第IX因子欠乏症、第VIII因子欠乏症、第VII因子欠乏症、粘膜炎、嚥下障害、栓球障害、肺塞栓症、不妊症、性腺機能低下症、白血球減少症、好中球減少症、子宮内膜症、ゴーシュ病、肥満、リソソーム蓄積症、エイズ、月経前症候群、ターナー症候群、悪液質、筋ジストロフィー、ハンチントン病、大腸炎、重症急性呼吸器症候群、カポジ肉腫、肝腫瘍、乳房腫瘍、神経膠腫、非ホジキンリンパ腫、慢性骨髄性白血病、ヘアリーセル白血病、腎細胞癌、肝腫瘍、リンパ腫、黒色腫、多発性硬化症、カポジ肉腫、パピローマウイルス、肺気腫、気管支炎、歯周疾患、認知症、分娩、非小細胞肺がん、膵臓腫瘍、前立腺腫瘍、先端巨大症、乾癬、卵巣腫瘍、ファブリー病、リソソーム蓄積症を含むがこれらに限定されない。
第IX因子scCLCH1−Fcの設計
一本鎖第IX因子分子は、第IX因子配列、その後に、アミノ酸配列:GGGGSGGGGS(配列番号11)を有する10残基のリンカー、IgG1のCLドメイン、その後に、アミノ酸配列:GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS(配列番号12)を有する20残基のリンカー、その後にヒトIgG1のCH1、ヒンジおよびFc部分を含有する。
以下のDNA配列:
KC−1 Delta(商標)装置(Tcoag、Wicklow、IRE)を使用して自動第IX因子活性アッセイを行い、第IX因子scCLCH1−Fcタンパク質のFIX成分がFIX欠乏血漿の凝固活性を回復させる能力を定量した。試験試料を、等体積のヒトFIX欠乏血漿(George King Bio−Medical Inc、Overland Park、KS)およびセファリン含有エラグ酸活性化剤(aPTT−可溶性活性化剤、Helena Laboratories、cat.#5389)と混合し、4分間のインキュベーション後、5mM塩化カルシウム(25mMストック、VWR)を添加して凝固時間を測定した。凝固時間 対 精製タンパク質に対するrヒト第IX因子(FIX)(Haematologic Technologies Inc. Essex Junction、VT)標準物質の段階希釈物の活性単位濃度(IU/mL)の較正曲線に基づいて活性を算出した。固有の凝血系の因子は、血漿を、最適量のリン脂質および界面活性剤とともに37℃でインキュベートすることにより活性化される。カルシウムイオンを添加すると凝血プロセスが引き起こされ、次いで凝固時間が測定される。APTTは、フィブリン血栓が形成されるのに要する時間である(図3)。
第IX因子scCLCH1−Fcを、単回静脈内用量51IU/kgでラット3匹の外側尾静脈に投与した。第IX因子scCLCH1−Fcを投与した0.25、4、8、24、48、72、96、および168時間後に血液試料を収集し、クエン酸塩加血漿(最終0.32%)を調製した。ヤギ抗ヒト第IX因子アフィニティー精製IgG(Enzyme Research Laboratories、South Bend、IN)を捕捉抗体として、ヤギ抗ヒトIgG Fc交差吸着ビオチン化抗体(Bethyl Laboratories、Montgomery、TX)を検出抗体として用いる、標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WINNONLIN(登録商標)ソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(図4および表1)。
TNF−R2 scCLCH1−Fcの設計
一本鎖TNFR2分子は、TNFR2配列、その後に、10残基のリンカーGGGGSGGGGS(配列番号11)、IgG1のCLドメイン、その後に、20残基のリンカーGGGGSGGGGSGGGGSGGGGS(配列番号12)、その後にヒトIgG1のCH1、ヒンジおよびFc部分を含有する。
以下のDNA配列:
HEK−Blue(商標)TNF−α細胞(InvivoGen)は、NF−κB/AP−1経路の活性化を監視することにより、in vitroでの生物活性TNF−αを検出するために特に設計された、ヒト胎児腎臓細胞である。この細胞株は、5つのNFκbおよび5つのAP−1結合部位に融合されているIFN−β最小プロモーターの制御下で、誘導性分泌型胎児性アルカリホスファターゼ(SEAP)レポーター遺伝子を発現する。TNF−αアンタゴニストアッセイでは、2mM L−グルタミン、4.5g/lグルコースおよび10%熱失活FBS(Gibco)ならびに235pM TNF−α1a(InvivoGen)を含有するDMEM培地に、HEK−Blue TNF−α細胞を50,000細胞/ウェルでプレーティングした。様々な濃度のTNF−R2直接融合物またはTNF−R2一本鎖融合体(TNF−R2 scCLCH1−Fc)とともに、細胞を37℃、5%CO2で20時間インキュベートした。QUANTI−Blueを添加して37℃、5%CO2で3時間インキュベートすることによりSEAP産生を検出し、プレートリーダーで630nmで読み取った。SEAP遺伝子の活性化は、TNF−αアンタゴニストTNF−R2により用量に依存した形で阻害され得る。TNF−R2一本鎖融合体分子がIC50 51pMでSEAP遺伝子の活性化を阻害したのに対し、TNF−R2の直接融合物はIC50 112pMで阻害した(図6)。
TNF−R2 scCLCH1−Fcを、単回静脈内用量5mg/kgでラット3匹の外側尾静脈に投与した。TNF−R2 scCLCH1−Fcを投与した0.083、1、6、24、48時間後、5、7、9、12、15、21、28日後に血液試料を収集した。ヤギ抗ヒトF(ab’)2 IgG Fc(Thermo Scientific、Rockford、IL)を捕捉抗体として、ヤギ抗ヒトIgG Fc交差吸着ビオチン化抗体(Bethyl Laboratories、Montgomery、TX)を検出抗体として用いる、標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WinNonlin(登録商標)ソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(図7および表2)。
IL1Ra scCLCH1−Fcの設計
一本鎖IL1Ra分子は、IL1Ra配列、その後に、10残基のリンカーGGGGSGGGGS(配列番号11)、IgG1のCLドメイン、その後に、20残基のリンカーGGGGSGGGGSGGGGSGGGGS(配列番号12)、その後にヒトIgG1のCH1、ヒンジおよびFc部分を含有する。
以下のDNA配列:
HEK−Blue(商標)IL−1β細胞(InvivoGen)は、IL−1βにより誘導されるNF−κB/AP−1経路の活性化を監視することにより、in vitroでの生物活性IL−1βを検出するために特に設計された、ヒト胎児腎臓細胞である。この細胞株は、5つのNFκbおよび5つのAP−1結合部位に融合されているIFN−β最小プロモーターの制御下で、誘導性分泌型胎児性アルカリホスファターゼ(SEAP)レポーター遺伝子を発現する。IL−1βアンタゴニストアッセイでは、2mM L−Gluおよび10%熱失活FBS(Gibco)ならびに57pM IL−1β(R&D systems)を含有するDMEM培地に、HEK−Blue IL−1β細胞を50,000細胞/ウェルでプレーティングした。様々な濃度のIL1RascCLCH1−Fcとともに、細胞を37℃、5%CO2で20時間インキュベートした。QUANTI−Blueを添加して37℃、5%CO2で3時間インキュベートすることによりSEAP産生を検出し、プレートリーダーで630nmで読み取った。IL−1βによるSEAP遺伝子の活性化は、IL−1βアンタゴニストIL−1Raにより用量に依存した形で阻害され得る。IL−1Ra一本鎖分子は、IC50 12.5NmでIL−1βによるSEAP遺伝子の活性化を阻害した(図9)。
IL1Ra scCLCH1−Fcを、単回静脈内用量2mg/kgでラット3匹の頚静脈カテーテルに投与した。IL1Ra scCLCH1−Fcを投与した0.083、0.25、1、2、6、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。IL1Ra scCLCH1−Fcを、単回皮下用量5mg/kgでラット3匹の肩甲間部に投与した。IL1Ra scCLCH1−Fcを投与した0.25、1、2、4、6、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。ヤギ抗ヒトF(ab’)2 IgG Fc(Thermo Scientific、Rockford、IL)を捕捉抗体として、マウス抗ヒトIL1Raビオチンコンジュゲート(Invitrogen、Grand Island、NY)を検出抗体として用いる、標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WINNONLIN(登録商標)ソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(図10および表3)。
IL1Ra scCLCH1−Fcのボーラス硝子体内注射剤0.5mgを、オスのウサギ8匹の各眼に投与した。IL1Ra scCLCH1−Fcを投与した4、96、168および336時間後に動物2匹から血液試料を収集した。屠殺時、各動物から両方の眼を収集し液体窒素中で急速冷凍した。標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WINNONLIN(登録商標)ソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(表4および図11)。
IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcの設計
IL−2/IL−2Rα一本鎖融合体分子は、IgG1重鎖のCL−CH1−Fcドメイン(配列番号19)またはCH1−CL−Fc(配列番号20)に結合されているIL−2Rα融合タンパク質の細胞外ドメインに結合されている円順列変異されたヒトIL−2を含有し(図12Aおよび12B)、本明細書ではそれぞれ、IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcと呼ばれる。哺乳動物細胞での発現のため、配列番号10のN末端リーダー配列を配列番号19および配列番号20のタンパク質に添加した。
遺伝子を合成により合成し、pcDNA3.1発現ベクターとして供給し(GeneArt)、Expi293発現系(Life Technologies)を使用してHEK293細胞で一過的に発現させた。タンパク質を、プロテインA(GE Healthcare)を使用して、低pHでの溶出により精製し、1×PBS 2Lで2回透析した。
eBioscienceのホスホ−STAT5A/B(Tyr694/Tyr699)InstantOne(商標)ELISAキットを使用して、IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcが、ヒトHH T細胞リンパ腫細胞株(ATCC CRL−2105)においてpSTAT5を活性化する能力を評価することにより、in vitroでの生物活性を評価した。アッセイでは、10%FBSを含有するRPMI1640培地に、HH細胞を2×105細胞/ウェルでプレーティングした。約50nMから減少する濃度の野生型IL−2(wtIL−2)、IL−2/IL−2Ra scClCH1 FcもしくはIL−2/IL−2Ra scCH2Cl Fcとともに、または刺激なしで、試料を37℃、5%CO2インキュベーター内で約25±5分間インキュベートした。細胞溶解混合物(キットで供給される)25μLを迅速に添加することにより刺激反応を終結させ、タイタープレート振とう機において300rpmで絶えず振とうしながら室温で10分間インキュベートした。生じた溶解産物の50μLアリコートを、アッセイプレート(キットで供給される)の各ウェルに添加した。各ウェルに抗体カクテル50μLを添加した後、プレートに蓋をし、タイタープレート振とう機において300rpmで絶えず振とうしながら室温で1時間インキュベートした。次いで、プレートを1×洗浄緩衝液300μL/ウェルで3回洗浄した。検出試薬100μLを各ウェルに添加し、300rpmで絶えず振とうしながら室温で30分間インキュベートした。停止液100μLを添加することにより検出反応を停止させ、SynergyMxプレートリーダーを使用して450nMでの吸光度を測定した。IL−2/IL−2Ra scClCH1 Fc(EC50=0.97nM)、またはIL−2/IL−2Ra scCH2Cl Fc(EC50=1.1nM)およびwtIL−2(EC50=0.80nM)が、用量に依存した形で活性であった(図15)。
IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcを、単回静脈内用量1mg/kgでラット3匹の尾静脈に投与した。IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcを投与した0.083、0.25、0.5、1、3、8、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcを、単回皮下用量2mg/kgでラット3匹の肩甲間部に投与した。IL−2/IL−2Rα scCLCH1−FcおよびIL−2/IL−2Rα scCH1CL−Fcを投与した0.25、0.5、1、2、6、8、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WinNonlinソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(図16および表5)。
IFNβ scCLCH1−Fcの設計
IFNβ一本鎖融合体分子は、IgG1重鎖のCL−CH1−Fcドメインに結合されているIFNβ(C17S)を含有する(図17)。哺乳動物細胞での発現のため、配列番号10のN末端リーダー配列を配列番号18のタンパク質に添加した。
遺伝子を合成により合成し、pcDNA3.1発現ベクターとして供給し(GeneArt)、Expi293発現系(Life Technologies)を使用してHEK293細胞で一過的に発現させた。タンパク質を、プロテインA(GE Healthcare)を使用して、低pHでの溶出により精製し、1×PBS 2Lで2回透析した。
HEK−Blue(商標)IFNα/β細胞(InvivoGen)は、ISGF3経路の活性化を監視することにより、in vitroでの生物活性タイプI IFNを検出するために特に設計された、ヒト胎児腎臓細胞である。この細胞株は、IFNα/β誘導性ISG54プロモーターの制御下で、誘導性分泌型胎児性アルカリホスファターゼ(SEAP)レポーター遺伝子を発現する。IFNβアゴニストアッセイでは、2mM L−グルタミン、4.5g/lグルコースおよび10%熱失活FBS(Gibco)を含有するDMEM培地に、HEK−Blue IFNα/β細胞を50,000細胞/ウェルでプレーティングした。様々な濃度のIFNβ scCLCH1−FcまたはwtIFNβ(Peprotech)とともに、細胞を37℃、5%CO2で20時間インキュベートした。QUANTI−Blueを添加して37℃、5%CO2で3時間インキュベートすることによりSEAP産生を検出し、プレートリーダーで630nmで読み取った。IFNβ scCLCH1−Fc(EC50=0.9pM)およびwtIFNβ(EC50=0.6pM)が、用量に依存した形で活性であった(図20)。
IFNβ scCLCH1−Fcを、単回静脈内用量0.5mg/kgでラット3匹の外科的に埋め込まれた頚静脈カテーテルに投与した。IFNβ scCLCH1−Fcを投与した0.083、0.25、0.5、1、3、8、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。IFNβ scCLCH1−Fcを、単回皮下用量1mg/kgでラット3匹の肩甲間部に投与した。IFNβ scCLCH1−Fcを投与した0.25、0.5、1、2、6、8、24、48、72、96および168時間後に血液試料を収集した。標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。WinNonlinソフトウェア(Pharsight Corporation、Mountain View、CA)によるノンコンパートメントモデリングを使用して、薬物動態分析を行った。MSDデータ由来の薬物動態パラメータ推定値には、最高濃度(Cmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、および排泄半減期(t1/2)が含まれていた(図21および表6)。
scIL−10:CL:CH1:FcおよびscIL−10:CH1:CL:Fcの設計
scIL−10一本鎖融合体分子は、IgG1重鎖のCL−CH1−FcドメインまたはCH1−CL−Fcに結合されている、共有結合したIL−10ホモ二量体融合タンパク質を含有する(図22Aおよび22B)。合成された各分子のアミノ酸配列を表7に記載する。
遺伝子を合成により合成し、pcDNA3.1発現ベクターとして供給し(GeneArt)、Expi293発現系(Life Technologies)を使用してHEK293細胞で一過的に発現させた。タンパク質を、プロテインA(GE Healthcare)を使用して、低pHでの溶出により精製し、1×PBS 2Lで2回透析した。
scIL−10:CL:CH1:FcおよびscIL−10:CH1:CL:Fcが、マウス肥満細胞株MC/9(ATCC CRL−8306)の増殖を刺激する能力を評価することにより、in vitroでの生物活性を評価した。scIL−10直接Fc融合タンパク質(scIL−10:Fc)を対照として使用した。アッセイでは、10%熱失活ウシ胎仔血清、2mMグルタミンおよび0.05mM 2−メルカプトエタノールを含有するDMEM培地に、MC/9細胞を10,000細胞/ウェルでプレーティングした。様々な濃度のヒトIL−10(R&D Systems)、scIL−10:CL:CH1:Fc、scIL−10:CH1:CL:FcまたはscIL−10:Fcとともに、細胞を37℃、5%CO2で72時間インキュベートした。72時間後、製造業者のプロトコールに従って、細胞を37℃、5%CO2で4時間、CellTiter−Blue(Promega)で染色した。蛍光測定を560/590nmで行った。IL−10(EC50=75pM)、scIL−10:CL:CH1:Fc(EC50=79pM)、scIL−10:CH1:CL:Fc(EC50=93pM)およびscIL−10:Fc(EC50=493pM)が、用量に依存した形で活性であった(図25)。
マウスにおけるscIL−10:CL:CH1:Fc、scIL−10:CH1:CL:Fc、およびscIL−10:Fcの薬物動態を、尾静脈に投与される単回静脈内用量0.5mg/kgおよび肩甲間部に投与される単回皮下用量2.5mg/kgで評価した。scIL−10:CL:CH1:Fc、scIL−10:CH1:CL:FcおよびscIL−10:Fcを投与した0.083、0.5、1、4、6、24、48、96、168、192および216時間後に血液試料(n=3試料/時点/融合タンパク質)を収集した。各時点/融合タンパク質/投与経路で血清をプールし、標準的なMSD技術を使用して濃度を測定した。生物学的分析データを、Phoenix WinNonlin6.4ソフトウェアを使用するノンコンパートメント薬物動態分析にかけた。標準的な薬物動態パラメータである、最高濃度(Cmax)、最高濃度到達時間(Tmax)、時間対濃度曲線下面積(AUC)、平均滞留時間(MRT)、排泄半減期(t1/2)、クリアランス(CL)、定常状態での分布容積(Vss)、およびバイオアベイラビリティ(%F)を含む薬物動態パラメータを決定し、表8および9に報告した。
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
アミノ末端からカルボキシ末端まで以下の配置:
X−L1−HINGE−Fc
を有する一本鎖融合タンパク質であって、
Xは、可溶性タンパク質またはその任意の活性断片もしくは誘導体であり;
L1は、アミノ末端からカルボキシ末端まで以下の配置:
L2−CL−L3−CH1−L4またはL2−CH1−L3−CL−L4
を有するリンカーであり、
L2とL4は、独立してポリペプチドリンカーであるか、または独立して存在せず;L3は、ポリペプチドリンカーであり;
CLは、免疫グロブリン軽鎖の定常領域ポリペプチドであり;
CH1は、免疫グロブリン重鎖のCH1ドメイン由来の定常領域ポリペプチドであり;
HINGEは、免疫グロブリンのヒンジ配列であるか、または存在せず、ただし、HINGEが存在しない場合はL4が存在し;
Fcは、免疫グロブリンのカルボキシ末端またはその任意の活性断片もしくは誘導体である、
一本鎖融合タンパク質。
(項目2)
CL、CH1、HINGEおよびFcが、それぞれヒトIgG1のCL、CH1、ヒンジおよびFc領域と少なくとも90%同一である、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目3)
Xが、第IX因子、TNFR2もしくはIL1Raまたはそれらの任意の活性断片もしくは誘導体である、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目4)
L3が、アミノ酸配列(GGGGS) n を有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目5)
L2が、存在し、アミノ酸配列(GGGGS) n を有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目6)
L4が、存在し、アミノ酸配列(GGGGS) n を有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目7)
HINGEおよびL2が存在し、L4が存在しない、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目8)
HINGE、L2およびL4が存在する、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目9)
HINGEが存在せず、L4が存在する、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目10)
HINGEが存在せず、L2およびL4が存在する、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目11)
項目1に記載の融合タンパク質を含む二量体化複合体。
(項目12)
前記二量体化複合体がホモ二量体複合体である、項目11に記載の二量体化複合体。
(項目13)
Xが、円順列変異によって改変されている可溶性タンパク質を含む、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目14)
Xが、円順列変異されたIL−2を含む、項目13に記載の融合タンパク質。
(項目15)
Xが、任意選択のリンカーを介してIL−2Rαに融合されている円順列変異されたIL−2を含む、項目13に記載の融合タンパク質。
(項目16)
XがIFNβである、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目17)
Xが、IL−10、IL−2、IL−2Rαまたはそれらの融合物、あるいはIFNβまたはその任意の活性断片もしくは誘導体である、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目18)
XがIL−10である、項目1に記載の融合タンパク質。
(項目19)
項目18に記載の融合タンパク質のホモ二量体複合体。
(項目20)
患者において聴覚障害、腎細胞癌、黒色腫、乾癬、線維症、うつ病、または炎症性腸疾患(IBD)を処置する方法であって、前記患者に治療有効量の項目18に記載の融合タンパク質またはそのホモ二量体複合体を投与することを含む、方法。
(項目21)
聴覚障害、腎細胞癌、黒色腫、乾癬、線維症、うつ病、および炎症性腸疾患(IBD)を処置するための医薬の製造において使用するための、項目18または19に記載の融合タンパク質。
(項目22)
がん、自己免疫疾患または出血性障害の処置において使用するための、項目3に記載の融合タンパク質またはそのホモ二量体複合体。
Claims (22)
- アミノ末端からカルボキシ末端まで以下の配置:
X−L1−HINGE−Fc
を有する一本鎖融合タンパク質であって、
Xは、可溶性タンパク質またはその任意の活性断片もしくは誘導体であり;
L1は、アミノ末端からカルボキシ末端まで以下の配置:
L2−CL−L3−CH1−L4またはL2−CH1−L3−CL−L4
を有するリンカーであり、
L2とL4は、独立してポリペプチドリンカーであるか、または独立して存在せず;L3は、ポリペプチドリンカーであり;
CLは、免疫グロブリン軽鎖の定常領域ポリペプチドであり;
CH1は、免疫グロブリン重鎖のCH1ドメイン由来の定常領域ポリペプチドであり;
HINGEは、免疫グロブリンのヒンジ配列であるか、または存在せず、ただし、HINGEが存在しない場合はL4が存在し;
Fcは、免疫グロブリンのカルボキシ末端またはその任意の活性断片もしくは誘導体である、
一本鎖融合タンパク質。 - CL、CH1、HINGEおよびFcが、それぞれヒトIgG1のCL、CH1、ヒンジおよびFc領域と少なくとも90%同一である、請求項1に記載の融合タンパク質。
- Xが、第IX因子、TNFR2もしくはIL1Raまたはそれらの任意の活性断片もしくは誘導体である、請求項1に記載の融合タンパク質。
- L3が、アミノ酸配列(GGGGS)nを有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、請求項1に記載の融合タンパク質。
- L2が、存在し、アミノ酸配列(GGGGS)nを有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、請求項1に記載の融合タンパク質。
- L4が、存在し、アミノ酸配列(GGGGS)nを有しnが1〜5であるポリペプチドリンカーである、請求項1に記載の融合タンパク質。
- HINGEおよびL2が存在し、L4が存在しない、請求項1に記載の融合タンパク質。
- HINGE、L2およびL4が存在する、請求項1に記載の融合タンパク質。
- HINGEが存在せず、L4が存在する、請求項1に記載の融合タンパク質。
- HINGEが存在せず、L2およびL4が存在する、請求項1に記載の融合タンパク質。
- 請求項1に記載の融合タンパク質を含む二量体化複合体。
- 前記二量体化複合体がホモ二量体複合体である、請求項11に記載の二量体化複合体。
- Xが、円順列変異によって改変されている可溶性タンパク質を含む、請求項1に記載の融合タンパク質。
- Xが、円順列変異されたIL−2を含む、請求項13に記載の融合タンパク質。
- Xが、任意選択のリンカーを介してIL−2Rαに融合されている円順列変異されたIL−2を含む、請求項13に記載の融合タンパク質。
- XがIFNβである、請求項1に記載の融合タンパク質。
- Xが、IL−10、IL−2、IL−2Rαまたはそれらの融合物、あるいはIFNβまたはその任意の活性断片もしくは誘導体である、請求項1に記載の融合タンパク質。
- XがIL−10である、請求項1に記載の融合タンパク質。
- 請求項18に記載の融合タンパク質のホモ二量体複合体。
- 患者において聴覚障害、腎細胞癌、黒色腫、乾癬、線維症、うつ病、または炎症性腸疾患(IBD)を処置する方法であって、前記患者に治療有効量の請求項18に記載の融合タンパク質またはそのホモ二量体複合体を投与することを含む、方法。
- 聴覚障害、腎細胞癌、黒色腫、乾癬、線維症、うつ病、および炎症性腸疾患(IBD)を処置するための医薬の製造において使用するための、請求項18または19に記載の融合タンパク質。
- がん、自己免疫疾患または出血性障害の処置において使用するための、請求項3に記載の融合タンパク質またはそのホモ二量体複合体。
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