JP2012080885A

JP2012080885A - 平滑筋治療用薬剤および方法

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Publication number: JP2012080885A
Application number: JP2011243223A
Authority: JP
Inventors: Colleen Brophy; コリーンブロフィー、; Padmini Komalavilas; パドミニコマラヴィラス、; Alyssa Panitch; アリッサパニッチ、; Brandon Seal; ブランドンシール、; Joshi Lokesh; ジョシロケッシュ、
Original assignee: University of Arizona; Arizona's Public Universities
Current assignee: University of Arizona; Arizona's Public Universities
Priority date: 2001-08-23
Filing date: 2011-11-07
Publication date: 2012-04-26
Anticipated expiration: 2022-08-23
Also published as: AU2007200030A1; ES2432225T3; EP1523323B1; US20060035814A1; AU2007200030B2; AU2002324777B2; JP5552470B2; JP2005506836A; EP1523323A2; US20030060399A1; EP1523323A4; US20090176694A1; DK1523323T3; WO2003018758A2; US8044018B2; CA2458574A1; JP2009142270A; EP2301563A2; US7135453B2; US20090176695A1

Abstract

【課題】平滑筋血管痙攣を治療または阻害し、平滑筋弛緩を促進し、平滑筋に関わる他の治療を改善するための、ならびに、平滑筋細胞の増殖と遊走を治療および阻害するための新しい方法と治療方法を提供する。
【解決手段】平滑筋細胞の増殖と遊走を治療および阻害するためのみならず、平滑筋血管痙攣を治療または阻害するための、熱ショックタンパク質２０（ＨＳＰ２０）由来のポリペプチドを含むポリペプチド。
【選択図】図４

Description

（相互参照）
本願は２００１年８月２３日に提出した米国仮特許出願（シリアル番号：６０／３１４、５３５）に優先権を主張し、この仮出願の開示の全体を参照により本願に組み込む。

（政府の資金援助についての記載）
国立衛生研究所を通して米国政府は、本プロジェクトに対し、付与番号ＲＯ１ＨＬ５８０２７−０６として資金援助を行っている。したがって、米国政府は本発明に対して一定の権利を有しうる。

（技術分野）
本発明は、一般には細胞生物学、分子生物学、薬学および平滑筋生物学の分野に関する。

筋肉には、心筋、骨格筋および平滑筋の３つの種類がある。平滑筋は、血管壁、気道、胃腸管および尿生殖路に見られる。上記筋肉によって内側が覆われる管の口径は、上記臓器における筋肉の収縮状態と弛緩状態の間で動的平衡によって決まる。平滑筋の収縮と弛緩は、筋肉内の様々な信号伝達経路によって媒介される。弛緩を誘導する経路は、収縮の阻害も行う。平滑筋の継続的な収縮が、筋肉の「痙攣」である。この痙攣は、弛緩を誘導する経路または系を活性化する、言い換えれば、収縮を阻害することによって防止することができる。

大半の場合、平滑筋は、心筋および骨格筋の規則正しい構造を持たない点、最小限の酸素使用量で緊張性収縮を維持できる点で特異である。病理学的緊張性収縮は、筋肉が痙攣している状態である。

多くの病理学的状態には、血管平滑筋、すなわち血管の内側を覆う平滑筋の痙攣（「血管痙攣」）が関連している。血管の血管痙攣は血管の管腔を狭めて、血流を制限してしまう。どの血管で痙攣が起こっても、その血管によって血液が供給される臓器に虚血をもたらす。虚血は、組織への血流と酸素供給の可逆的欠如である。心臓内で血管の痙攣が起こると心虚血および／または梗塞につながり、脳内の血管で痙攣が起こると脳梗塞に繋がり、腸への供給を行う血管で痙攣が起こると腸間膜虚血に繋がり、勃起には陰茎海綿体血管の血管拡張が必要であることから、陰茎内の血管の弛緩が欠如するとインポテンスに繋がり、頭蓋内血管の痙攣は偏頭痛に繋がる。

過剰な血管収縮（または不十分な血管拡張）は他の疾病状態においても起こる。高血圧は、血管壁、特に循環器系のより小さな血管壁の肥厚によってだけでなく、過剰な血管収縮によっても引き起こされる。このプロセスは、肺血管にも影響し、肺高血圧およびぜんそく（気管支痙攣）を引き起こす。過剰な収縮または平滑筋の不十分な拡張が関係していることが知られている他の疾患としては、妊娠中毒症、早期分娩、子癇前症／子癇、レイノー病または現象、肛門裂傷、アカラシア、溶血性尿毒症、および、狭心症を引き起こす型の冠状動脈痙攣であるＰｒｉｎｚｍｅｔａｌ型狭心症が挙げられる。冠状動脈における痙攣は、血管形成術やステント配置の間などの間など、冠状動脈の機械的操作の間にも起こる。この痙攣は虚血や塞栓に繋がることもある。

脈管に関わる外科処置もまた平滑筋の血管痙攣によって複雑化し、再狭窄や血管閉塞を含む短期および長期の合併症を引き起こすこともある。一般には、血管痙攣が持続的であると、構成的な再造形／内膜過形成、そして最終的には血管の閉塞に繋がる。血管の拡大、血管形成術、および透析アクセスフィステルやシャントなどの人工機器の移植などの補修的外科処置には、平滑筋への損傷が伴う。これが平滑筋細胞の増殖と遊走を引き起こす。そして最終的には構成的な再造形および内膜過形成に繋がる。このプロセスが再狭窄、人工グラフト不全、ステントおよびステントグラフト不全、微小血管グラフト不全、アテローム性動脈硬化症、および移植血管症に繋がる。

まだ完全には理解されていないが、内膜過形成は、内皮細胞の損傷とそれに続く血管平滑筋の増幅および媒質から内膜への遊走とを含む一連の事象によって媒介される。このプロセスは収縮性から合成的表現型への、平滑筋細胞の表現型の調節に関連している。「合成的」平滑筋細胞は、細胞外基質タンパク質を分泌し、これにより、上述のような病理学的血管狭窄が起こる。さらに、平滑筋の増殖と遊走の増加によっても、平滑筋肉腫や平滑筋腫などの平滑筋細胞腫瘍が起こりうる。

したがって、平滑筋血管痙攣を治療または阻害し、平滑筋弛緩を促進し、平滑筋に関わる他の治療を改善するための、ならびに、平滑筋細胞の増殖と遊走を治療および阻害するための新しい方法と治療方法を特定することは非常に有益であろう。

（発明の概要）
本発明は、平滑筋血管痙攣を治療または阻害し、平滑筋の弛緩を促進し、平滑筋が関与する他の治療を改良し、平滑筋細胞増殖および遊走を治療および阻害するための新しい方法および治療方法を提供する。

１つの態様において、本発明は、下記の一般式Ｉに記載のアミノ酸配列から成るポリペプチドを提供する：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５−］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列ＷＬＲＲ（配列番号：１）の０、１、２、３または４アミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ヒドロキシリジン、ヒドロキシプロリン、ホスホセリンアナログ、およびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、属の配列Ｚ１−Ｚ２−Ｚ３の０、１、２または３アミノ酸であり（式中、Ｚ１はＧおよびＤから成る群より選択され、Ｚ２はＬおよびＫから成る群より選択され、Ｚ３はＳおよびＴよりなる群より選択される）、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、ｕは１〜５））。

好ましい実施形態において、Ｘ４はリン酸化されている。さらに好ましい実施形態において、Ｘ２〜Ｘ６の少なくとも１つが、形質導入ドメインを含む。

別の態様において、本発明は下記の一般式ＩＩに記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを提供する：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列番号：２９７の残基１〜１４の間の熱ショックタンパク質２０の配列の０〜１４個のアミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ヒドロキシリジン、ヒドロキシプロリン、ホスホセリンアナログおよびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、配列番号：２９７の残基２１〜１６０に間の熱ショックタンパク質２０の０〜１４０個のアミノ酸であり、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、Ｘ２とＸ６のうちの少なくとも１つが形質導入ドメインを含む））。

好ましい実施形態において、Ｘ４はリン酸化されている。

他の態様において、本発明は、本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドと、医薬適合性の担体とを含む医薬組成物を提供する。

他の態様において、本発明は本発明のポリペプチドをコードする単離核酸配列を提供する。さらなる態様において、本発明は、本発明の核酸配列を含む組み換え発現ベクターと、本発明の組み換え発現ベクターによって形質移入された宿主細胞を提供する。

他の態様において、本発明は、改良された生物医療機器も提供し、該生物医療機器は、生物医療機器上または機器中に配設した本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドを含む。様々な実施形態において、上記生物医療機器には、ステント、グラフト、シャント、ステントグラフト、血管形成用機器、バルーンカテーテル、フィステル、および移植可能な薬物送達装置が含まれる。

他の態様において、本発明は、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するための方法を提供し、該方法は、平滑筋細胞を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む。本発明の本態様の様々な好ましい実施形態において、本方法は、内膜過形成、狭窄、再狭窄およびアテローム性動脈硬化症からなる群より選択される疾患を治療または予防するために用いられる。本発明の本態様の様々な他の好ましい実施形態において、本方法は、血管形成術、血管拡大術、動脈内膜切除、アテローム切除術、バイパス手術、血管移植、臓器移植、補綴移植、微小血管再構築、形成外科フラップ再構築、およびカテーテル配置から成る群より選択される処置を受けたか、受けている最中か、受ける予定のある被験者に対して実施される。本発明の本態様のさらなる実施形態において、本方法は、平滑筋細胞腫瘍を治療するために用いられる。

さらなる実施形態において、本発明は、内膜過形成、狭窄、再狭窄および／またはアテローム性動脈硬化症からなる群より選択される疾患を治療または阻害するための方法を含み、該方法は、その治療または阻害を必要とする被験者に、内膜過形成、狭窄、再狭窄および／またはアテローム性動脈硬化症を治療または阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０またはその機能的均等物を接触させることを含む。

さらなる態様において、本発明は、平滑筋細胞腫瘍を治療するための方法を含み、該方法は、その治療を必要とする被験者に、平滑筋細胞腫瘍の治療に有効な量のＨＳＰ２０またはその機能的均等物を接触させることを含む。

さらなる態様において、本発明は、平滑筋痙攣を治療または予防するための方法を提供し、該方法は、その治療または予防が必要な被験者に、平滑筋痙攣の阻止するのに有効な量の本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドを接触させることを含む。本発明の本態様の様々な好ましい実施形態において、筋肉細胞痙攣は、狭心症、Ｐｒｉｎｚｍｅｔａｌ型狭心症（冠状動脈痙攣）、虚血、脳梗塞、徐脈、高血圧症、（肺）高血圧症、ぜんそく（気管支痙攣）、妊娠中毒症、早期分娩、子癇前症／子癇、レイノー病／現象、溶血性尿毒症、非閉塞性腸間膜虚血、肛門裂傷、アカラシア、インポテンス、偏頭痛、平滑筋痙攣に関連する虚血性筋傷害、および移植血管症などの血管症から成る群より選ばれる疾病または状態に関連している。

さらなる態様において、本発明は、平滑筋弛緩を促進するための方法を提供し、該方法は、平滑筋弛緩を促進するのに有効な量の本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む。

緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）単独、ＨＳＰ２０に対する野生型ｃＤＮＡの５’末端に融合させたＧＦＰ（ＷＴ）、またはＰＫＡリン酸化部位がアラニンに変異されているＨＳＰ２０構築物に融合させたＧＦＰ（Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０）（ＭＵＴ）を含むベクターで、メサンギウム細胞を形質移入し、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ）で０分間、３０分間、６０分間または９０分間処理後の細胞の下の皺の数を決定した。メサンギウム細胞にＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０を形質導入し、位相差顕微鏡を用いて表示した時間に細胞下の皺の数を決定した（ｎ＝１０、^＊＝時間０との比較で、ｐ＜０．０５）。内皮を剥いだウシ頸動脈平滑筋の横行条片を、セロトニン（１μＭで１０分間）と予め接触させ、漸増用量のＦＩＴＣ−ホスホ−ＨＳＰ２０−ＴＡＴ、ＦＩＴＣ−スクランブルドホスホＨＳＰ２０−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０５）、またはＦＩＴＣ−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ、閉じた三角）（配列番号：３０６）を１０分ごとに添加し、濃度の百分率を計算した。力は、セロトニン最大濃度の百分率で示した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。内皮を剥いでいないブタの冠状動脈の環状切片をセロトニン（１μＭで１０分間）と予め接触させ、漸増用量のＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、閉円）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０８）を１０分ごとに添加し、弛緩の百分率をセロトニン最大濃度の百分率として計算した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。使用したペプチドの濃度は、ｘ軸に示されている。メサンギウム細胞のホモジネート（レーン１）、ラット大動脈平滑筋細胞（レーン２）、およびＰＫＧ形質移入ラット大動脈平滑筋細胞（レーン３）を、ＰＫＧ（パネルＡ）またはＨＳＰ２０（パネルＢ）に対してイムノブロットした。別の実験において、メサンギウム細胞を非処理にするか（パネルＣ）、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、１５分間、パネルＤ）で処理した。タンパク質は、２次元電気泳動によって分離し、イモビロンに転写し、抗ＨＳＰ２０抗体によって調べた。ＨＳＰのリン酸化が上昇すると、タンパク質の電気泳動移動度が、より酸性側のイソ型（矢印方向）の方へ移動する。形質移入メサンギウム細胞を固定し、アクチンフィラメントをリン酸標識したファロイジンで染色した。メサンギウム細胞をＥＧＦＰ単独（ＥＧＦＰ）、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０（ＭＵＴ−ＥＧＦＰ）または野生型ＨＳＰ２０（ＷＴ−ＥＧＦＰ）で形質移入した。細胞をスライドグラス上にプレーティングし、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、３０分間、ｄｂ−ｃＡＭＰ）で処理するか、処理しないでおいた（対照）。細胞を固定し、ローダミンファロイジンで染色した。ジブチリルｃＡＭＰは、中央アクチンストレスファイバの欠損をＥＧＦＰにおいてはもたらしたが、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０においてはもたらさなかった。ＨＳＰ２０を過剰発現している細胞において、アクチン繊維は周縁に局在していた。ウシ大動脈内皮細胞（８０Ｋ〜１００Ｋ細胞）を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳ中、ガラスカバースリップ上で一晩平板培養した（２４ウェルプレート）。細胞を１時間血清飢餓状態（血清無し）におき、ＨＳＰ２０［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ−ｐＨＳＰ２０（１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＨＳＰ２０スクランブルドアナログ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ−ｓｃＨＳＰ２０（１０μＭ）］（配列番号：３０８）の存在下で３０分間インキュベートした。細胞を３％グルタルアルデヒドで固定し、局所性付着の数を干渉反射顕微鏡を用いて検出した。ＨｅｐＩペプチドを正の対照として用いた。集密的Ａ１０細胞を血清飢餓状態に（０．５％ウシ胎仔血清、ＦＢＳ）４８時間おいた。ゴムスクレーパーを用いて細胞単層中に線状の傷を作り、金属ピンを用いて引っ掻いた縁部に印を付けた。細胞を、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む１０％培地に交換して、２４時間インキュベートした。細胞を固定し、ヘマトキシリンで染色した。１ｃｍ２の掻爬面積に遊走した細胞の数を遊走の指標として係数した。さらなる実験において、Ａ１０細胞の遊走はボイデンチャンバアッセイにおいて決定した。Ａ１０細胞を３日間血清飢餓状態においた。その後細胞を、１０％ウシ胎仔血清と、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む培地で処理した。２４時間後、細胞計数を行った。

本願において、特に注記しない限り、使用した技術はいくつかの周知の参照文献のいずれかに見いだすことができる。そのような例としては、分子クローニング：実験マニュアル（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ）（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９年、ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）、遺伝子発現技術（ＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）（ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１８５巻、Ｄ．Ｇｏｅｄｄｅｌ編、１９９１年、ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，カリフォルニア州）、酵素学の方法（ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ）内の「蛋白質精製のためのガイド」（ＧｕｉｄｅｔｏＰｒｏｔｅｉｎＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（Ｍ．Ｐ．Ｄｅｕｔｓｈｃｅｒ編，（１９９０年）ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓＩｎｃ．）；ＰＣＲプロトコル：方法と応用のためのガイド（ＰＣＲＰｒｏｔｏｃｏｌｓ：ＡＧｕｉｄｅｔｏＭｅｔｈｏｄｓａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ）（Ｉｎｎｉｓら、１９９０年、ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，カリフォルニア州）、動物細胞の培養:基礎技術マニュアル（ＣｕｌｔｕｒｅｏｆＡｎｉｍａｌＣｅｌｌｓ：ＡＭａｎｕａｌｏｆＢａｓｉｃＴｅｃｈｎｉｑｕｅ）、第２版（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，１９８７年、Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．ＮｅｗＹｏｒｋ，ニューヨーク州）および、遺伝子転写と発現のプロトコル（ＧｅｎｅＴｒａｎｓｆｅｒａｎｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＰｒｏｔｏｃｏｌｓ）、１０９〜１２８、Ｅ．Ｊ．Ｍｕｒｒａｙ編、ＴｈｅＨｕｍａｎａＰｒｅｓｓＩｎｃ．，Ｃｌｉｆｔｏｎ，ニュージャージー州）が挙げられる。

１つの態様において、本発明は、下記の一般式Ｉに記載のアミノ酸配列から成るポリペプチドを提供する：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５−］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列ＷＬＲＲ（配列番号：１）の０、１、２、３または４アミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ヒドロキシリジン、ヒドロキシプロリン、ホスホセリンアナログ、およびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、属の配列Ｚ１−Ｚ２−Ｚ３の０、１、２または３アミノ酸であり
（式中、Ｚ１はＧおよびＤから成る群より選択され、
Ｚ２はＬおよびＫから成る群より選択され、
Ｚ３はＳおよびＴよりなる群より選択される）、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、ｕは１〜５））。

本願においては、アミノ酸の３文字表記と１文字表記の両方を用いる。本明細書中、「ｎｏｒＬ」はノルロイシンを意味し、「Ｏｒｎ」はオルニチンを意味する。

「ポリペプチド」は広義では、サブユニットアミノ酸、アミノ酸アナログ、ペプチド疑似体の配列を指すために用いられる。サブユニット同士は、注記しない限り（Ｘ２位置が１つの芳香環を含む一つの非アミノ酸分子である場合を含む）、ペプチド結合によって連結されている。本明細書中に記載するポリペプチドは、化学的に合成されたものであってもよしし、組み換えによって発現されるものであってもよい。

好ましくは、本発明のポリペプチドは化学的に合成される。固相、液相またはペプチド縮合技術、またはそれらの任意の組み合わせなどの周知の技術を用いて調製された合成ポリペプチドは、天然のアミノ酸と非天然のアミノ酸を含みうる。ペプチド合成のために用いるアミノ酸は、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄのオリジナルの固相法（１９６３年、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．８５：２１４９〜２１５４）の標準的な脱保護、中和、カップリングおよび洗浄を用いた、標準的なＢｏｃ（Ｎａ−アミノ保護Ｎａ−ｔ−ブチルオキシカルボニル）アミノ酸であってもよいし、あるいは、ＣａｒｐｉｎｏおよびＨａｎ（１９７２年、Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．３７：３４０３〜３４０９）に初めて記載された塩基に不安定なＮａ−アミノ保護９−フルオレニルメトキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）アミノ酸であってもよい。ＦｍｏｃとＢｏｃＮａ−アミノ保護アミノ酸のいずれも、Ｓｉｇｍａ社、ＣａｍｂｒｉｄｇｅＲｅｓｅａｒｃｈＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ、または当業者に馴染みのある他の薬品会社から入手することができる。さらに、ポリペプチドは、当業者に馴染みのあるＮａ保護基を用いて合成することもできる。

固相ペプチド合成は、例えば、ＳｔｅｗａｒｔとＹｏｕｎｇ，１９８４年、固相合成（ＳｏｌｉｄＰｈａｓｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ）、第２版、ＰｉｅｒｃｅＣｈｅｍｉｃａｌＣｏ．，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，イリノイ州；ＦｉｅｌｄｓとＮｏｂｌｅ、１９９０年、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｅｐｔ．ＰｒｏｔｅｉｎＲｅｓ．３５：１６１〜２１４の中に記載されている当業者に馴染みのある技術によって、あるいは自動合成装置を用いて達成することができる。本発明のポリペプチドは、特定の特性を与えるために、Ｄ−アミノ酸（インビボにおいてＬ−アミノ酸特異的プロテアーゼに耐性）、Ｄ−およびＬ−アミノ酸との組み合わせ、ならびに様々な「デザイナー」アミノ酸（例えば、β−メチルアミノ酸、Ｃａ−メチルアミノ酸、およびＮａ−メチルアミノ酸など）を含んでいてもよい。合成アミノ酸は、リジンの代わりにオルニチン、ロイシンまたはイソロイシンの代わりにノルロイシンを含んでいる。

さらに、ポリペプチドは、新奇な特性を有するペプチドを合成するために、ペプチド疑似結合、例えばエステル結合などを有していてもよい。例えば、還元型ペプチド結合を取り込んだペプチド、すなわちＲ_１−ＣＨ_２−ＮＨ−Ｒ_２（式中、Ｒ_１およびＲ_２はアミノ酸残基または配列である）を生成することもできる。還元型ペプチド結合は、ジペプチドサブユニットとして導入してもよい。このようなポリペプチドは、プロテアーゼ活性に耐性であると考えられ、またインビボにおける長い半減期を有すると考えられる。

一般式Ｉのポリペプチドの様々な実施形態に従えば、領域［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５−］_ｕは、１、２、３、４または５コピー数存在してもよい。好ましい実施形態において、上記領域は１コピー数存在する。他の実施形態において、平滑筋細胞増殖、平滑筋細胞遊走、および平滑筋細胞痙攣のうちの１つまたはそれ以上を阻害するために、および／または、平滑筋血管弛緩を促進するために、ポリペプチドの使用効力を高めるための複数のコピーが存在する。

一般式Ｉのポリペプチドの様々な態様に従えば、Ｘ４はＳ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ホスホセリン擬似体、またはホスホチロシン疑似体である。より好ましくは、Ｘ４はＳ、ＴまたはＹであり、より好ましくはＸ４はＳまたはＴであり、最も好ましくはＸ４はＳである。これらの実施形態において、Ｘ４はＳ、Ｔ、またはＹであり、最も好ましくはＸ４はリン酸化されている。Ｘ４がＤまたはＥの場合には、これらの残基はリン酸化状態を模倣する負の変化を有する。本発明のポリペプチドは、Ｘ４がリン酸化されているか、ホスホセリンまたはホスホチロシン疑似体、または例えばＤまたはＥ残基などのリン酸化アミノ酸残基の他の疑似体である場合に最も効果が高い。ホスホセリンの疑似体としては、特に限定はされないが、スルホセリン、リン酸酸素に対してメチレン置換基を含むアミノ酸疑似体、４−ホスホノ（ジフルオロメチル）フェニルアラニンおよびＬ−２−アミノ−４−（ホスホノ）−４，４−ジフルオロブタン酸が挙げられる。例えば、ＯｔａｋａらのＴｅｔｒａｈｅｄｒｏｎＬｅｔｔｅｒｓ３６：９２７〜９３０（１９９５年）のように、他のホスホセリン疑似体は当業者によって作成可能である。ホスホチロシン疑似体としては、限定はされないが、例えば、ホスホノメチルフェニルアラニン、ジフルオロホスホノメチルフェニルアラニン、フルオロ−Ｏ−マロニルチロシンおよびＯ−マロニルチロシンが挙げられる（例えば、Ａｋａｍａｔｓｕら、ＢｉｏｏｒｇＭｅｄＣｈｅｍ１９９７年、１月；５（１）：１５７〜１６３）。

別の実施形態において、Ｘ１は、１つの芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子である。１つの好ましい実施形態において、１つの芳香環を含む前記１つまたはそれ以上の分子は、アミノ酸であり、Ｘ１は（Ｆ／Ｙ／Ｗ）_Ｚであり、式中、「ｚ」は１〜５アミノ酸である。したがって、例えば、Ｘ１はＦ、ＹおよびＷの任意の組み合わせの１または２個のアミノ酸残基、例えば、Ｆ、ＦＦ、Ｙ、ＹＹ、Ｗ、ＷＷ、ＦＹ、ＦＷ、ＹＦ、ＹＷ、ＷＹおよびＷＦなどが可能である。あるいは、Ｘ１は、Ｆ、ＹおよびＷの３、４または５個のアミノ酸の組み合わせであってもよい。他の好ましい実施形態において、１つの芳香環を含む分子は、随意でハロゲン、低級アルキル、低級アルキルチオ、トリフルオロメチル、低級アシロキシ、アリールおよびヘテロアリールによって置換されていてもよい１つまたはそれ以上の芳香環を含む分子からなる群より選択される。最も好ましい実施形態において、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子は、９−フルオレニルメチル（Ｆｍ）を含む。このような分子としては限定はされないが、例えば、９−フルオレニルメチルカルボニル、９−フルオレニルメチルカルバメート、９−フルオレニルメチルカーボネート、９−フルオレニルメチルエステル、９−フルオレニルメチルホスフェート、およびＳ−９−フルオレニルメチルチオエーテルが挙げられる。芳香族を含む分子がアミノ酸でない実施形態において、該分子は、限定はされないが、ペプチド合成において用いられる標準Ｆｍｏｃ保護化学を含む当業者周知の方法によってポリペプチドに結合させることもできる。

一般式Ｉのポリペプチドの様々な実施形態において、Ｘ３は配列ＷＬＲＲ（配列番号：１）の０、１、２、３または４アミノ酸である。Ｘ３が配列の１アミノ酸だけからなる場合、「Ｒ」は存在する。これは「Ｒ」が、配列のカルボキシ末端アミノ酸であり、Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ（配列番号：２）配列の残りの部分のアミノ末端に存在すると考えられるからである。Ｘ３が、ＷＬＲＲ（配列番号：１）のうちの２つのアミノ酸からなる場合、添加される２つのアミノ酸は「ＲＲ」となる。他の変形は、本明細書の教示に基づいて当業者に明らかであろう。

同様に、Ｘ５を構成する残基の変形も、本明細書の教示に基づいて当業者に明らかであろう。

このように、本発明の上記様々な態様に従えば、一般式Ｉに従うポリペプチドの代表的試料は、以下のものが含まれるが、これらに限定されることはない：（ＡＳＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：３）；（ＡＴＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：４）；（ＲＡＳＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：５）；（ＲＡＴＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：６）；（ＡＹＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：７）；（ＲＡＹＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：８）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：９）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１０）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰ）_ｕ；（配列番号：１１）（ＲＲＡＴＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１２）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１３）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１４）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１５）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１６）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰ）_ｕ（配列番号：１７）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：１８）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：１９）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：２０）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：２１）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：２２）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：２３）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：２４）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：２５）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：２６）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：２７）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：２８）；ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：２９）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：３０）；（ＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：３１）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：３２）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：３３）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：３４）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：３５）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：３６）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：３７）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：３８）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：３９）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：４０）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：４１）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：４２）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：４３）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：４４）；（ＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：４５）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：４６）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：４７）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：４８）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：４９）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：５０）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：５１）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：５２）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：５３）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：５４）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：５５）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：５６）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：５７）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：５８）；（ＷＬＲＲＡＳＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：５９）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：６０）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：６１）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：６２）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：６３）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：６４）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：６５）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：６６）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：６７）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：６８）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：６９）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：７０）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：７１）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：７２）；（ＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：７３）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：７４）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：７５）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：７６）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：７７）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：７８）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：７９）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：８０）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：８１）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：８２）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：８３）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：８４）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：８５）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：８６）；（ＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：８７）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：８８）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：８９）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：９０）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：９１）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：９２）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：９３）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：９４）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：９５）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：９６）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：９７）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：９８）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：９９）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：１００）；（ＷＬＲＲＡＴＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：１０１）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：１０２）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：１０３）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：１０４）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：１０５）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：１０６）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：１０７）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：１０８）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：１０９）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：１１０；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：１１１）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：１１２）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：１１３）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：１１４）；（ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：１１５）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：１１６）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：１１７）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：１１８）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：１１９）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：１２０）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：１２１）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：１２２）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：１２３）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：１２４）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：１２５）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：１２６）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：１２７）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：１２８）；（ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：１２９）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：１３０）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：１３１）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：１３２）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：１３３）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：１３４）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：１３５）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：１３６）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：１３７）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：１３８）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：１３９）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：１４０）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：１４１）；（ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：１４２）；および
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配列番号：２３６）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：２３７）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：２３８）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：２３９）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：２４０）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：２４１）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：２４２）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：２４３）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：２４４）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：２４５）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：２４６）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：２４７）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：２４８）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：２４９）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：２５０）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：２５１）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：２５２）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：２５３）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：２５４）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：２５５）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：２５６）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：２５７）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：２５８）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：２５９）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：２６０）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：２６１）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：２６２）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：２６３）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：２６４）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧ）_ｕ（配列番号：２６５）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤ）_ｕ（配列番号：２６６）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬ）_ｕ（配列番号：２６７）
；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫ）_ｕ（配列番号：２６８）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬ）_ｕ（配列番号：２６９）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫ）_ｕ（配列番号：２７０）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＳ）_ｕ（配列番号：２７１）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＬＴ）_ｕ（配列番号：２７２）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＳ）_ｕ（配列番号：２７３）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＧＫＴ）_ｕ（配列番号：２７４）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＳ）_ｕ（配列番号：２７５）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＬＴ）_ｕ（配列番号：２７６）；（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＳ）_ｕ（配列番号：２７７）；および（（Ｆ／Ｙ／Ｗ）ＷＬＲＲＡＹＡＰＬＰＤＫＴ）_ｕ（配列番号：２７８）（式中「ｕ」は上記定義の通りであり、（Ｆ／Ｙ／Ｗ）は、当該残基がＦ、ＹおよびＷから選ばれることを意味する。一般式Ｉの範囲にある他の特異的ポリペプチドは、本明細書中の教示に基づいて当業者によって容易に理解されるであろう。

さらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、領域［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５−］_ｕからの様々な配列の組み合わせからなる。この態様において、例えば、ポリペプチドは、１コピーの配列番号：９と１コピーの配列番号：１４３とで構成することができる。別の例として、前記ポリペプチドは２コピーの配列番号：２００と３コピーの配列番号：６２からなるものであってもよい。本発明の教示に基づいてそのような多くの組み合わせが可能であることは、当業者にとって明らかであろう。

好ましい実施形態にといて、Ｘ２とＸ６のうちの少なくとも一方が、形質導入ドメインを含んでいる。本明細書中で用いる「形質導入ドメイン」とは。細胞膜を貫通する活性ドメインを保持しうる１つまたはそれ以上のアミノ酸配列または任意の他の分子のことをいう。これらのドメインを他のポリペプチドに連結して、該連結されたポリペプチドが細胞膜を通過できるようにすることもできる。いくつかの事例において、形質導入分子は、活性ポリペプチドに共有結合されている必要はない（例えば、配列番号：２９１）。好ましい実施形態において、形質導入ドメインは、ペプチド結合によって残りのポリペプチドに連結されている（例えば、Ｃｅｌｌ５５：１１７９〜１１８８、１９８８年、Ｃｅｌｌ５５：１１８９〜１１９３、１９８８年；ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ９１：６６４〜６６８、１９９４年；Ｓｃｉｅｎｃｅ２８５：１５６９〜１５７２、１９９９年、Ｊ．ＢｉｏｌＣｈｅｍ２７６：３２５４〜３２６１、２００１年；およびＣａｎｃｅｒＲｅｓ６１：４７４〜４７７、２００１年を参照のこと）。本実施形態において、上述のどのポリペプチドも少なくとも１つの形質導入ドメインを含んでいると考えられる。さらなる実施態様において、Ｘ２とＸ６の両方が形質導入ドメインを含んでいる。さらに好ましい実施形態において、形質導入ドメインは、（Ｒ）_４−９（配列番号：２７９）；ＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＰＱ（配列番号：２８０）；ＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡ（配列番号：２８１）；ＤＡＡＴＡＴＲＧＲＳＡＡＳＲＰＴＥＲＰＲＡＰＡＲＳＡＳＲＰＲＲＰＶＥ（配列番号：２８２）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８３）；ＰＬＳＳＩＦＳＲＩＧＤＰ（配列番号：２８４）；ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ（配列番号：２８５）；ＡＡＶＬＬＰＶＬＬＡＡＰ（配列番号：２８６）；ＶＴＶＬＡＬＧＡＬＡＧＶＧＶＧ（配列番号：２８７）；ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡＷＳＱＰ（配列番号：２８８）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８９）；ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ（配列番号：２９０）；ＫＥＴＷＷＥＴＷＷＴＥＷＳＱＰＫＫＫＲＫＶ（配列番号：２９１）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９２）；ＫＡＦＡ
ＫＬＡＡＲＬＹＲＡＡＧＣ（配列番号：２９３）；ＡＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９４）；ＫＡＦＡＡＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９５）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＱＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９６）、および、ＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ（配列番号：３０６）からなる群より選択される。

別の実施形態において、本発明は、下記の一般式ＩＩに記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを提供する：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列番号：２９７の残基１〜１４の間の熱ショックタンパク質２０の配列の０〜１４個のアミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ヒドロキシリジン、ヒドロキシプロリン、ホスホセリンアナログおよびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、配列番号：２９７の残基２１〜１６０に間の熱ショックタンパク質２０の０〜１４０個のアミノ酸であり、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、Ｘ２とＸ６のうちの少なくとも１つが形質導入ドメインを含む））。

このように、一般式ＩＩのポリペプチドの様々な好ましい実施形態において、Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ホスホセリンアナログ、またはホスホチロシンアナログである。好ましい実施形態において、Ｘ４はＳ、ＴまたはＹである。さらに好ましい実施形態において、Ｘ４はＳまたはＴである。最も好ましい実施形態において、Ｘ４はＳである。

Ｘ４がＳ、ＴまたはＹであるこれらの好ましい実施形態において、Ｘ４はリン酸化されていることが最も好ましい。Ｘ４がＤまたはＥである場合には、これらの残基は、リン酸化状態を模倣する負に荷電を有している。本発明のポリペプチドは、Ｘ４がリン酸化されているか、ホスホセリンまたはホスホチロシン疑似体、またはリン酸化されたＤまたはＥ残基などのアミノ酸残基の他の疑似体である場合に本発明の方法において最適な効力を有する。

さらなる実施形態において、Ｘ１は、上述の実施形態に関して開示したような、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子である。

これらの実施形態において、ポリペプチドは、少なくとも１つの形質導入ドメインを有する。さらなる実施形態において、Ｘ２とＸ６の両方が形質導入ドメインを含む。このような形質導入ドメインの好ましい実施形態は上述の通りである。

一般式ＩＩのポリペプチドの１つの好ましい実施形態は、完全長のＨＳＰ２０を含む（Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９７−Ｘ６）。

ＭｅｔＧｌｕＩｌｅＰｒｏＶａｌＰｒｏＶａｌＧｌｎＰｒｏＳｅｒＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＳｅｒＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＳｅｒＡｌａＰｒｏＧｌｙＡｒｇＬｅｕＰｈｅＡｓｐＧｌｎＡｒｇＰｈｅＧｌｙＧｌｕＧｌｙＬｅｕＬｅｕＧｌｕＡｌａＧｌｕＬｅｕＡｌａＡｌａＬｅｕＣｙｓＰｒｏＴｈｒＴｈｒＬｅｕＡｌａＰｒｏＴｙｒＴｙｒＬｅｕＡｒｇＡｌａＰｒｏＳｅｒＶａｌＡｌａＬｅｕＰｒｏＶａｌＡｌａＧｌｎＶａｌＰｒｏＴｈｒＡｓｐＰｒｏＧｌｙＨｉｓＰｈｅＳｅｒＶａｌＬｅｕＬｅｕＡｓｐＶａｌＬｙｓＨｉｓＰｈｅＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｕＩｌｅＡｌａＶａｌＬｙｓＶａｌＶａｌＧｌｙＧｌｕＨｉｓＶａｌＧｌｕＶａｌＨｉｓＡｌａＡｒｇＨｉｓＧｌｕＧｌｕＡｒｇＰｒｏＡｓｐＧｌｕＨｉｓＧｌｙＰｈｅＶａｌＡｌａＡｒｇＧｌｕＰｈｅＨｉｓＡｒｇＡｒｇＴｙｒＡｒｇＬｅｕＰｒｏＰｒｏＧｌｙＶａｌＡｓｐＰｒｏＡｌａＡｌａＶａｌＴｈｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｙＶａｌＬｅｕＳｅｒＩｌｅＧｌｎＡｌａＡｌａＰｒｏＡｌａＳｅｒＡｌａＧｌｎＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＡｌａＡｌａＡｌａＬｙｓ（配列番号：２９７）。

一般式ＩＩのポリペプチドの他の好ましい実施形態は、１６位のセリンがアスパラギン酸で置換されている完全長のＨＳＰ２０を含む（Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９８−Ｘ６）：
ＭｅｔＧｌｕＩｌｅＰｒｏＶａｌＰｒｏＶａｌＧｌｎＰｒｏＳｅｒＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＡｓｐＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＳｅｒＡｌａＰｒｏＧｌｙＡｒｇＬｅｕＰｈｅＡｓｐＧｌｎＡｒｇＰｈｅＧｌｙＧｌｕＧｌｙＬｅｕＬｅｕＧｌｕＡｌａＧｌｕＬｅｕＡｌａＡｌａＬｅｕＣｙｓＰｒｏＴｈｒＴｈｒＬｅｕＡｌａＰｒｏＴｙｒＴｙｒＬｅｕＡｒｇＡｌａＰｒｏＳｅｒＶａｌＡｌａＬｅｕＰｒｏＶａｌＡｌａＧｌｎＶａｌＰｒｏＴｈｒＡｓｐＰｒｏＧｌｙＨｉｓＰｈｅＳｅｒＶａｌＬｅｕＬｅｕＡｓｐＶａｌＬｙｓＨｉｓＰｈｅＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｕＩｌｅＡｌａＶａｌＬｙｓＶａｌＶａｌＧｌｙＧｌｕＨｉｓＶａｌＧｌｕＶａｌＨｉｓＡｌａＡｒｇＨｉｓＧｌｕＧｌｕＡｒｇＰｒｏＡｓｐＧｌｕＨｉｓＧｌｙＰｈｅＶａｌＡｌａＡｒｇＧｌｕＰｈｅＨｉｓＡｒｇＡｒｇＴｙｒＡｒｇＬｅｕＰｒｏＰｒｏＧｌｙＶａｌＡｓｐＰｒｏＡｌａＡｌａＶａｌＴｈｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｙＶａｌＬｅｕＳｅｒＩｌｅＧｌｎＡｌａＡｌａＰｒｏＡｌａＳｅｒＡｌａＧｌｎＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＡｌａＡｌａＡｌａＬｙｓ（配列番号：２９８）。

一般式ＩＩのポリペプチドの他の好ましい実施形態は、１６位のセリンがグルタミン酸で置換されている完全長のＨＳＰ２０を含む（Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９９−Ｘ６）：
ＭｅｔＧｌｕＩｌｅＰｒｏＶａｌＰｒｏＶａｌＧｌｎＰｒｏＳｅｒＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＧｌｕＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＳｅｒＡｌａＰｒｏＧｌｙＡｒｇＬｅｕＰｈｅＡｓｐＧｌｎＡｒｇＰｈｅＧｌｙＧｌｕＧｌｙＬｅｕＬｅｕＧｌｕＡｌａＧｌｕＬｅｕＡｌａＡｌａＬｅｕＣｙｓＰｒｏＴｈｒＴｈｒＬｅｕＡｌａＰｒｏＴｙｒＴｙｒＬｅｕＡｒｇＡｌａＰｒｏＳｅｒＶａｌＡｌａＬｅｕＰｒｏＶａｌＡｌａＧｌｎＶａｌＰｒｏＴｈｒＡｓｐＰｒｏＧｌｙＨｉｓＰｈｅＳｅｒＶａｌＬｅｕＬｅｕＡｓｐＶａｌＬｙｓＨｉｓＰｈｅＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｕＩｌｅＡｌａＶａｌＬｙｓＶａｌＶａｌＧｌｙＧｌｕＨｉｓＶａｌＧｌｕＶａｌＨｉｓＡｌａＡｒｇＨｉｓＧｌｕＧｌｕＡｒｇＰｒｏＡｓｐＧｌｕＨｉｓＧｌｙＰｈｅＶａｌＡｌａＡｒｇＧｌｕＰｈｅＨｉｓＡｒｇＡｒｇＴｙｒＡｒｇＬｅｕＰｒｏＰｒｏＧｌｙＶａｌＡｓｐＰｒｏＡｌａＡｌａＶａｌＴｈｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＳｅｒＰｒｏＧｌｕＧｌｙＶａｌＬｅｕＳｅｒＩｌｅＧｌｎＡｌａＡｌａＰｒｏＡｌａＳｅｒＡｌａＧｌｎＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＡｌａＡｌａＡｌａＬｙｓ（配列番号：２９９）。

一般式ＩＩに従う他の好ましい実施形態は、必要な形質導入ドメインをＸ２またはＸ６のいずれか一方もしくは両方に有した、一般式Ｉの実施形態として上で開示したペプチドである。一般式ＩＩに従うさらに好ましい実施形態は、以下の通りである：
（配列番号：３００）がＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＳｅｒＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＬｙｓであるような、Ｘ１−Ｘ２−配列番号：３００−Ｘ６、
（配列番号：３０１）がＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＡｓｐＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＬｙｓであるような、Ｘ１−Ｘ２−配列番号：３０１−Ｘ６、および
（配列番号：３０２）がＴｒｐＬｅｕＡｒｇＡｒｇＡｌａＧｌｕＡｌａＰｒｏＬｅｕＰｒｏＧｌｙＬｅｕＬｙｓであるような、Ｘ１−Ｘ２−配列番号：３０２−Ｘ６。

一般式ＩＩに従うポリペプチドの上記実施形態において、ポリペプチドはリン酸化されていることが好ましく、１６位の残基でリン酸化されているか、１６位のアミノ酸残基にリン酸化疑似体を含んでいることが最も好ましい。

さらなる態様において、本発明は、本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドと、ＨＳＰ２７の阻害剤とを含む組成物を提供する。ＨＳＰ２７はＨＳＰ２０と近い関係にあり、これらの２つのタンパク質は巨大分子凝集において共存することが多く、いずれもアクチン結合性タンパク質である。ＨＳＰ２７のリン酸化の増加は平滑筋収縮と関連しており、細胞をＨＳＰ２７の優勢活性リン酸化変異体で形質移入すると、ストレスファイバが形成される（ＭｏｌＣｅｌｌＢｉｏｌ１５：５０５〜５１６、１９９５年）。さらに、ＨＳＰ２７のリン酸化の増加は、平滑筋細胞の遊走にも関連している。これに対し、ＨＳＰ２０は血管弛緩を促進し、本願の結果からは、ＨＳＰ２０のリン酸化アナログがストレスファイバ形成の欠如を導き、平滑筋細胞の増殖と遊走を阻害することが実証された（下記実施例参照）。上記データはＨＳＰ２０とＨＳＰ２７は対照的な機能を有することを示す。したがって、本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドと、ＨＳＰ２７の阻害剤を組み合わせて用いることにより、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するために、また平滑筋弛緩を促進するために、また平滑筋痙攣を阻害するために、本発明の方法を実施する際の効率が向上することになる（下記参照）。

本明細書中で用いるＨＳＰ２７の「阻害剤」には、ＨＳＰ２７抗体、抗センスＨＳＰ２７核酸、またはＨＳＰ２７のリン酸化の小分子阻害剤、例えばＳＢ２０３５８０（ＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅＢｅｅｃｈａｍより入手可能）などが含まれる。

前記ポリペプチドは、滅菌などの従来の薬剤的操作に供してもよいし、および／または、保存剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、緩衝剤などの従来の補助剤を含んでいてもよい。

他の態様において、本発明は、本明細書中で開示する１つまたはそれ以上のポリペプチドと、医薬適合性の担体とを含む医薬組成物を提供する。このような医薬組成物は、以下のように本発明の方法を実施するために特に有用である。

投与にあたっては、ポリペプチドは、通常は示した投与経路に適した１つまたはそれ以上の補助剤と組み合わせられる。化合物は、ラクトース、スクロース、スター澱粉散剤、アルカン酸のセルロースエステル、ステアリン酸、タルク、ステアリン酸マグネシウム、酸化マグネシウム、リン酸および硫酸のナトリウムおよびカルシウム塩、アカシアゴム、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム、ポリビニルピロリジン、硫酸デキストラン、ヘパリン含有ゲル、および／またはポリビニルアルコールと混合してもよいし、または従来的投与のために錠剤化またはカプセル化してもよい。あるいは、本発明の化合物は、生理食塩水、水、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、カルボキシメチルセルロースコロイド溶液、エタノール、コーン油、落花生油、綿実油、ごま油、トラガカントゴム、および／または様々な緩衝液に溶解してもよい。その他の補助剤および投与方法については薬学分野の当業者によって周知である。担体または希釈剤は、モノステアリン酸グリセリルやジステアリン酸グリセリルなどの時間遅延物質を、単独またはワックスあるいは他の当該技術分野において周知の物質と組み合わせて含んでいてもよい。

前記ポリペプチドまたはその医薬組成物は、経口、非経口、吸入噴霧、経腸、または局所投与などの任意の適切な経路によって、従来の薬剤的に許容可能な担体、補助剤および賦形剤を含む用量単位製剤にて投与することができる。本明細書中で用いる非経口という用語には、皮下、静脈内、動脈内、筋肉内、胸骨内、腱内、脊椎内、頭蓋内、胸腔内、輸液技術または腹腔内が含まれる。投与の好ましい実施形態は治療中の状態に関して異なるが、詳細については後述する。

ポリペプチドは、固体形態（顆粒、粉末または坐剤を含む）、液体形態（例えば、溶液、懸濁液または乳濁液）のいずれからなるものであってもよい。本発明のポリペプチドは、様々な溶液に適用することができる。本発明に従って用いるのに適した溶液は、無菌であり、十分な量のポリペプチドを溶解し、予定の用途に対して無害であるものである。

他の実施態様において、本発明は、本発明のポリペプチドをコードする単離核酸配列を提供する。本発明の本態様に従う適切な核酸配列は、本明細書中の開示に基づいて当業者によって明らかであろうし、当該技術分野における一般的な知識である。そのような核酸配列の一例が、配列番号：３２０として提供されている。

別の態様において、本発明は、上述のように、本発明の単離核酸分子に機能的に連結されたＤＮＡ制御配列を含む発現ベクターを提供する。本発明の核酸配列に機能的に連結された「制御配列」とは、当該核酸分子の発現を行わせることのできる核酸配列である。制御配列は、核酸分子の発現を指示するように機能しさえすれば、当該核酸配列と隣接している必要はない。したがって、例えば、転写後のまだ翻訳されていない介在配列を、プロモーター配列と核酸配列の間に存在させることができ、この場合も、プロモーター配列は、コード配列に「機能的に連結されている」と考えることができる。他のこのような制御配列としては、限定はされないが、ポリアデニル化シグナル、終結シグナル、およびリボゾーム結合部位が挙げられる。

このような発現ベクターとしては、限定はされないがプラスミドおよびウィルス由来の発現ベクターを含む当該技術分野において知られる任意の種類のものが挙げられる。

さらなる態様において、本発明は、本発明の発現ベクターを含む遺伝子操作による宿主細胞を提供する。そのような宿主細胞は、原核細胞または真核細胞のいずれであってもよく、一時的または安定的に形質移入を受けることが可能であり、ウィルスベクターによる形質導入を受けることも可能である。

別の態様において、本発明は改良型生物医療機器を提供し、該生物医療機器は、該生物医療機器上または機器中に配置された本発明の１つまたはそれ以上のポリペプチドを含んでいる。好ましい実施形態において、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドは上述のようにリン酸化されている。

本明細書中で用いる「生物医療機器」とは、所望の結果をもたらすために、例えばヒトなどの被験体に移植される機器のことをいう。本発明の本態様に従う特に好ましい生物医療機器としては、限定はされないが、ステント、グラフト、シャント、ステントグラフト、フィステル、血管形成用機器、バルーンカテーテル、および任意の移植可能な薬剤送達機器が挙げられる。

本明細書中で用いる「グラフト」という用語は、天然および人工両方のグラフトまたは移植片のことをいう。最も好ましい実施形態において、グラフトは血管グラフトである。

本明細書中で用いる「ステント」という用語には、ステントそのもの、ならびにステント配置を容易にするために用いられる任意のスリーブまたは他の部品が含まれる。

本明細書中で用いる「〜上または〜中に配置される」という表現は、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドを、生物医療機器の外面、内面に直接または間接的に接触可能であるか、あるいは該生物医療機器内に埋め込み可能であることをいう。「直接」接触は、ポリペプチドを機器上または機器中に直接配置することを意味し、これには限定はされないが、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドを含む溶液中に生物医療機器を浸漬すること、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドを含む溶液を機器上にスピンコートするか噴霧すること、該ポリペプチドを送達するような任意の機器を移植すること、および該ポリペプチドをカテーテルを介して任意の臓器の表面またはその内部に直接投与することが含まれる。

「間接」接触は、１つまたはそれ以上のポリペプチドが生物医療機器に直接接触しないことを意味する。例えば、１つまたはそれ以上のポリペプチドを、ゲルマトリックスなどのマトリックス中あるいは粘性流体中に存在させて、これらのマトリックスまたは粘性流体を生物機器上に配置するようにしてもよい。このようなマトリックスは、例えば、必要に応じて１つまたはそれ以上のポリペプチドの結合および解離特性を変更するように調製することができる。

さらなる実施形態において、前記生物医療機器は、該生物医療機器上または機器中に配置される小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤をさらに含む。好ましい実施形態において、このような阻害剤は、ＨＳＰ２７抗体、抗センスＨＳＰ２７核酸、またはＳＢ２０３５８０などのＨＳＰ２７のリン酸化の小分子阻害剤から選択される。

別の態様において、本発明は、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するための方法を提供し、該方法は、平滑筋細胞を、平滑筋細胞増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０、またはその機能的均等物、例えば、一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリヌクレオチドと接触させることを含む。最も好ましい実施形態において、前記１つまたはそれ以上のポリヌクレオチドは上記開示のように、リン酸化されている。さらなる実施形態において、前記方法は、平滑筋細胞を、平滑筋細胞増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む。さらなる実施形態において、前記方法は、細胞を、ＨＳＰ２０のリン酸化を刺激するのに十分な量のＰＫＧと接触させることをさらに含み、該方法において、該接触工程は、細胞をＰＫＧの発現を指示することのできる発現ベクターで形質移入するか、細胞にＰＫＧ−形質導入ドメインキメラに形質導入を行うかの工程を含む。

内膜過形成は、グラフト不全の原因となる複合プロセスであり、動脈バイパスグラフトの不全の最も一般的な原因である。完全には理解されていないものの、内膜過形成は、内皮細胞の損傷とそれに続く血管平滑筋の増幅および媒質から内膜への遊走とを含む一連の事象によって媒介される。このプロセスは収縮性から合成的表現型への、平滑筋細胞の表現型の調節に関連している。「合成的」平滑筋細胞は、細胞外基質タンパク質を分泌し、これにより、血管管腔の病理学的狭窄が起こり、グラフトの狭窄および最終的にグラフト不全に繋がる。このような内皮細胞の損傷とそれに続く平滑筋細胞の増殖および内膜への遊走は、最も一般的には閉塞した血管を開通するための血管形成術後の再狭窄に特徴的である。以下で検討するように、ＨＳＰ２０と、その機能的均等物、たとえば一般式ＩおよびＩＩのポリペプチドなどは、平滑筋細胞の増殖と遊走を阻害する。

この態様において、本発明は、インビトロまたはインビボのいずれかで用いることができる。１つの実施形態において、本発明はインビトロであり、該方法においては、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害して、グラフト不全に繋がるその後の内膜過形成とグラフト配置後の狭窄を阻害するために、静脈または動脈グラフトをＨＳＰ２０またはその機能的均等物と接触させてから、患者への移植を行う。このことは、例えば、本発明の組み換え発現ベクター（最も好ましくはアデノウィルスベクターなどのウィルスベクター）を当該部位に送達し、平滑筋細胞を形質移入することによって達成できる。より好ましくは、平滑筋細胞への送達は、平滑筋細胞への進入を容易にする少なくとも１つの形質導入ドメインを含む一般式ＩまたはＩＩのポリペプチドを用いることによって達成することができる。以下の実施例では、平滑筋細胞に送達される少なくとも１つの形質導入ドメインを含む本発明のポリペプチドの能力について実証する。

より好ましいインビトロ実施形態において、本方法は、グラフトを少なくとも１つの形質導入ドメインを含む１つまたはそれ以上の本発明のポリペプチドと接触させることを含む。グラフトを配置した後、被験者に対してヘパリンによる全身治療を施すことが好ましい。これは、ヘパリンがタンパク質形質導入ドメインに結合し、それらが細胞内へ形質導入されるのを防止することがわかってきているからである。この手法により、タンパク質形質導入がグラフトのみで局所化され、周辺組織には及ばなくなる。

本態様の様々な他の好ましい実施形態において、本方法は、インビボで実施され、内膜過形成、狭窄、再狭窄およびアテローム性動脈硬化症からなる群より選ばれる疾患を治療または予防するために用いられる。これらの実施形態において、接触工程は、治療中の被験者内の血管をＨＳＰ２０またはその機能的均等物、例えば、一般式ＩまたはＩＩに従うポリペプチドなどと接触させることにより直接的に行うことができる。例えば、ＨＳＰ２０またはその機能的均等物、例えば、一般式ＩまたはＩＩに従うポリペプチドなどを、多孔性カテーテルに通すか、あるいは、カテーテルを介して損傷部位に注射するか、もしくは１つまたはそれ以上のポリペプチドを含むゲルまたは粘性液体を損傷部位上に広げることができる。直接送達のこれらの実施形態において、ＨＳＰ２０またはその機能的均等物、例えば、一般式ＩまたはＩＩに従うポリペプチドなどは、損傷または損傷の部位において平滑筋細胞に送達することが最も好ましい。このことは、例えば、本発明の組み換え発現ベクター（最も好ましくはアデノウィルスベクターなどのウィルスベクター）を当該部位に送達することによって達成できる。より好ましくは、平滑筋細胞への送達は、平滑筋細胞への進入を容易にする少なくとも１つの形質導入ドメインを含む一般式ＩまたはＩＩのポリペプチドを用いることによって達成することができる。以下の実施例では、平滑筋細胞に送達される少なくとも１つの形質導入ドメインを含む本発明のポリペプチドの能力について実証する。

本発明の本態様の様々な他の実施形態において、本発明は、血管形成術、血管ステント配置、動脈内膜切除、アテローム切除術、バイパス手術（冠状動脈バイパス手術、末梢血管バイパス手術など）、血管移植、臓器移植、補綴移植、微小血管再構築、形成外科フラップ再構築、およびカテーテル配置から成る群より選択される処置を受けたか、受けている最中か、受ける予定のある被験者に対して実施される。

本発明の本態様のさらなる実施形態において、本方法は、平滑筋細胞腫瘍を治療するために用いられる。好ましい実施形態において、腫瘍は、筋肉から発生する悪性新生物として定義される平滑筋肉腫である。平滑筋肉腫は、小さな血管と大きな血管の両方の壁から発生するので、体内の至る所で発生しうるが、腹膜、子宮および胃腸管（特に食道）平滑筋肉腫がより一般的である。あるいは、平滑筋腫瘍は、悪性でない平滑筋新生物である平滑筋腫であってもよい。最も好ましい実施形態において、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドは、上述のようにリン酸化されている。さらなる実施形態において、本発明は、平滑筋を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の、小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む。

実施例においてさらに検討するように、ＨＳＰ２０およびその機能的均等物、例えば一般式ＩおよびＩＩのポリペプチドなどは、いずれも内膜過形成に関係するアクチンストレスファイバ形成および付着プラークにも障害を与える。実験結果から、さらに、本発明のポリペプチドは、内膜過形成に対しても直接的な阻害効果を有することが示された。したがって、別の態様において、本発明は、内膜過形成、狭窄、再狭窄およびアテローム性動脈硬化症からなる群より選ばれる１つまたはそれ以上の疾患を治療または阻害する方法をさらに提供し、該方法は、その必要のある被験者に、内膜過形成、狭窄、再狭窄、および／またはアテローム性動脈硬化症を治療または阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０または、その機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドを接触させることを含む。本態様における、ＨＳＰ２０、またはその機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドの送達は上記の開示と同様である。最も好ましい実施形態において、前記１つまたはそれ以上のポリペプチドは、上記開示したようにリン酸化されている。さらなる実施形態において、本方法は、平滑筋を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の、小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む。

本発明の本態様の様々な他の実施形態において、本発明は、血管形成術、血管ステント配置、動脈内膜切除、アテローム切除術、バイパス手術、血管移植、臓器移植、補綴移植、微小血管再構築、形成外科フラップ再構築、およびカテーテル配置から成る群より選択される処置を受けたか、受けている最中か、受ける予定のある被験者に対して実施される。

さらなる態様おいて、本方法は、平滑筋細胞腫瘍を治療するための方法を提供し、該方法は、その必要のある被験者に、平滑筋腫瘍の成長および／転移を阻害するのに有効な量の、ＨＳＰ２０または、その機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドを投与することを含む。好ましい実施形態において、前記腫瘍は平滑筋肉腫である。あるいは、平滑筋腫瘍は、平滑筋腫であってもよい。さらなる実施形態において、本発明は、平滑筋を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の、小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む。

さらなる態様において、本発明は、平滑筋痙攣を治療または防止するための方法を提供し、該方法は、その必要のある被験者またはグラフトに、平滑筋痙攣を阻害するのに有効な量の、ＨＳＰ２０または、その機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドを接触させることを含む。最も好ましい実施形態において、前記１つまたはそれ以上のポリヌクレオチドは上記開示のように、リン酸化されている。さらなる実施形態において、前記方法は、平滑筋細胞を、平滑筋細胞増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の小型熱ショックタンパク質ＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む。さらなる実施形態において、前記方法は、細胞を、ＨＳＰ２０のリン酸化を刺激するのに十分な量の細胞と接触させることをさらに含む。

以下の実施例は、ＨＳＰ２０または、その機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドが、血管痙攣などの平滑筋痙攣を阻害するのに有効であることを実証している。特別な作用機構に限定されることなく、ＨＳＰ２０または、その機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドは、平滑筋の血管弛緩を促進し、収縮を阻害することによって、それらの抗平滑筋痙攣作用を遂行していると考えられている。

平滑筋は、血管、気道、胃腸管、および尿生殖路に見られる。平滑筋の継続的な収縮が、筋肉の「痙攣」である。多くの病理学的状態には、血管平滑筋、すなわち血管の内側を覆う平滑筋の痙攣（「血管痙攣」）が関係する。これにより、狭心症や虚血などの症状（心臓動脈が関与する場合）、または、脳血管が関与する場合にはくも膜下出血を誘導血管痙攣の場合には脳梗塞が引き起こされる。高血圧は、血管壁、特に循環器系のより小さな血管壁の肥厚によってだけでなく、過剰な血管収縮によっても引き起こされる。

したがって、本発明の本態様の１つの実施形態において、筋肉細胞痙攣は血管痙攣を含み、本方法は、血管痙攣を治療または阻害するために用いられる。本方法の好ましい実施形態には、限定はされないが、狭心症、冠状動脈血管痙攣、Ｐｒｉｎｚｍｅｔａｌ型狭心症（心外膜冠状動脈の突発性局所性痙攣）、虚血、脳梗塞、徐脈、および高血圧が含まれる。

本発明の本態様の別の実施形態において、平滑筋痙攣は、静脈または動脈グラフトなどのグラフトを、上述のようにＨＳＰ２０またはその機能的均等物、例えば一般式ＩまたはＩＩに従う１つまたはそれ以上のポリペプチドで処理することによって阻害される。末梢血管および冠状動脈の再構築に対する理想的な管路の１つとして、より大きな伏在静脈がある。しかしながら、管路の回収中の外科操作が血管痙攣を引き起こすことも多い。血管痙攣の正確な病因は複雑であり、多因性である可能性が最も高い。殆どの研究は、血管痙攣は、静脈の媒質における収縮の増加または弛緩の低下によるものであると示唆している。エンドセリン−１やトロンボキサンなどの多くの血管収縮物質が手術中に増加し、血管の平滑筋の収縮を起こす。ノルエピネフリン、５−ヒドロキシトリプタミン、アセチルコリン、ヒスタミン、アンジオテンシンＩＩ、およびフェニルエピネフリンなどの他の血管収縮物質が、静脈移植痙攣に関与していた。パパベリンは、これまでに用いられてきた平滑筋血管拡張剤である。痙攣がパパベリンの存在下でも起こるような状況では、外科医は、痙攣を遮断するために管内機械的膨張を用いている。これが静脈グラフトの壁の損傷とそれに続く内膜過形成に繋がる。内膜過形成は、グラフト不全の主たる原因である。

このように、本実施形態において、グラフトを、グラフト提供者から回収する間、回収後（移植前）、および／またはグラフト受容者への移植の間、ＨＳＰ２０またはその機能的均等物と接触させておくこともできる。このことは、例えば、組み換え発現ベクター（最も好ましくは、アデノウィルスベクターなどのウィルスベクター）を当該部位に送達し、平滑筋細胞を形質移入することによって達成できる。より好ましくは、平滑筋細胞への送達は、平滑筋細胞への進入を容易にする少なくとも１つの形質導入ドメインを含む一般式ＩまたはＩＩのポリペプチドを用いることによって達成することができる。以下の実施例では、平滑筋細胞に送達される少なくとも１つの形質導入ドメインを含む本発明のポリペプチドの能力について実証する。グラフト移植の間、受容側の被験者はヘパリンによる全身処置を受けることが好ましい。これは、ヘパリンがタンパク質形質導入ドメインに結合し、それらが細胞内へ形質導入されるのを防止することがわかってきているからである。この手法により、タンパク質形質導入がグラフトのみに局在化され、周辺組織には及ばなくなる。本発明の本実施形態の方法は、グラフトの回収および／または移植の間の静脈グラフト痙攣を阻害し、したがって短期および長期のグラフト成功率を高める。

様々な他の実施形態において、筋肉細胞痙攣は、限定はされないが、肺高血圧症、ぜんそく（気管支痙攣）、妊娠中毒症、早期分娩、子癇前症／子癇、レイノー病／現象、溶血性尿毒症、非閉塞性腸間膜虚血（腸間膜への血流が十分でないために起こる腸間膜の虚血）、肛門裂傷（内肛門括約筋の持続的な痙攣によって引き起こされる）、アカラシア（下部食道括約筋の持続的な痙攣によって引き起こされる）、インポテンス（陰茎内の血管の弛緩の欠如によって引き起こされる。勃起には陰茎海綿体血管の血管拡張が必要）、偏頭痛（頭蓋内血管の痙攣によって引き起こされる）、平滑筋痙攣に関連する虚血性筋傷害、および移植血管症などの血管症（アテローム性動脈硬化症と類似の移植された血管における反応であり、収縮性再造形と移植された血管の最終的な閉塞を伴い、これが心臓移植不全の主な原因となっている。）を含む疾患と関連している。

本発明の様々な態様の上記様々な開示に対して、好ましい送達経路は異なっている。局所投与は、静脈グラフト痙攣、内膜過形成、再狭窄、内膜過形成、ステントによる人工グラフト不全、内膜過形成／収縮性再造形によるステントグラフト不全、血管痙攣による微小血管グラフト不全、移植血管症、および男性および女性の性機能障害の治療または阻害を含む方法に対して好ましい。本明細書中で用いる「局所投与」とは、ポリペプチドをその臓器の表面に送達することをいう。

脳脊髄液中へのポリペプチドの送達として定義される鞘内投与は、脳梗塞およびくも膜下出血誘導性血管痙攣を治療または阻害するための好ましい送達経路である。腹腔へのポリペプチドの送達として定義される腹腔内投与は、非閉塞性腸管内虚血を治療または阻害するための好ましい送達経路である。経口投与は、アカラシアを治療または阻害するための好ましい送達経路である。静脈内投与は、高血圧よび徐脈を治療するための好ましい送達経路である。坐剤による投与は、肛門裂傷を治療または阻害するのために好ましい。エアロゾル送達は、ぜんそく（すなわち気管支痙攣）を治療または阻害するために好ましい。子宮内投与は、早期分娩および子癇前症／子癇を治療または阻害するために好ましい。

本発明の上記様々な態様を実施するにあたり、使用するポリペプチドまたは医薬組成物の量または用量範囲は、平滑筋細胞増殖、平滑筋細胞遊走、平滑筋痙攣の１つまたはそれ以上を効果的に治療または阻害するものであり、および／または、平滑筋の弛緩を促進するものである。このような使用可能なポリペプチドの阻害（または平滑筋弛緩の場合には促進）量は、一般に、体重１ｋｇあたり約０．０１μｇ〜約１０ｍｇの範囲にあり、好ましくは体重１ｋｇあたり約０．０５μｇ〜５ｍｇの範囲にある。

本発明は以下の実施例を参照してより理解されるであろうが、実施例は、単に説明を目的としたものであって、添付の請求項によって定義される本発明の範囲を限定するものではない。

本実施例では、メサンギウム細胞におけるＨＳＰ２０の環状ヌクレオチド依存性リン酸化の研究について説明する。ＰＫＧの収縮性表現型とＰＫＧの発現は、平滑筋細胞が培養中に継代されたため失われている。メサンギウム細胞は、培養中に収縮性表現型を維持することが示されている。培養中のメサンギウム細胞が、ＰＫＧとＨＳＰ２０とを発現し続けているかどうかを調べるため、多継代メサンギウム細胞を、多継代血管平滑筋細胞およびＰＫＧで安定に形質移入された平滑筋細胞と比較した。細胞をホモジナイズし、ＰＫＧおよびＨＳＰ２０に対するウサギポリクローナル抗体を用いてイムノブロッティングを行った。多継代血管平滑筋細胞は、ＰＫＧまたはＨＳＰ２０を発現していなかった。しかしながら、ＰＫＧで安定に形質移入された平滑筋細胞はＰＫＧおよびＨＳＰ２０を発現する。培養したメサンギウム細胞は、ＰＫＧとＨＳＰ２０の両方について、ＰＫＧで形質移入した血管平滑筋細胞と同様の量発現していた。上記のデータから、ＰＫＧおよびＰＫＧ基質タンパク質であるＨＳＰ２０の発現は、調和的に調節されていること、およびこれらのタンパク質の発現は細胞を収縮性表現型に維持するために重要である可能性が示唆される。収縮性から合成性表現型への表現型の変調は、アテローム発生の損傷モデルに対する応答、および内膜過形成の発症に関与していたため、タンパク質の形質導入を介して、あるいは遺伝子形質導入によってＨＳＰ２０を導入することにより、細胞を収縮性表現型に維持し、内膜過形成を阻害する新しい治療的手法を提供できると提案する。

本実施例では、リン酸化部位（セリン１６）がアラニンに変異されているＨＳＰ２０Ｓ１６Ａ変異体の生産について説明する。ＨＳＰ２０に対するｃＤＮＡをｐＥＧＦＰ−Ｃ２発現ベクター（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．より市販）にクローニングした。ＨＳＰ２０Ｓ１６Ａ変異体を生産するために、Ｐｆｕポリメラーゼ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，ＬａＪｏｌｌａ，カリフォルニア州より市販）による２つの相補的オリゴヌクレオチド戦略を用いて、単一のヌクレオチド変異をＨＳＰ２０ｃＤＮＡ配列中に導入した。すべての配列について、方向と、適切な変異を有すること、および他の変異を有しないことを、３７７Ｐｅｒｋｉｎ−ＥｌｍｅｒＡＢＩプリズムＤＮＡシーケンサー（ＦｏｒｓｔｅｒＣｉｔｙ，カリフォルニア州）を用いて確認した。同様の技術を用いて、セリン１６をアスパラギン酸またはグルタミン酸に変異させることができる。

本実施例では、筋肉様細胞の遺伝子操作によって、それらの収縮能力を変えることができることについて説明する。具体的には、ＨＳＰ２０を過剰発現するように細胞を操作することにより、これらが収縮する（痙攣状態に入る）ことを防止する。細胞がリン酸化不能のＨＳＰ２０の変異形を過剰発現すると、該細胞は、弛緩をもたらす強力な薬品で処理した場合でも収縮したまま（痙攣状態）である。この実験から、ＨＳＰ２０のリン酸化は、筋肉が弛緩するために必要とする影響力の大きい事象であることが実証された。

実験は以下のようにして実施した。メサンギウム細胞を緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）単独、ＨＳＰ２０に対する野生型ｃＤＮＡの５’末端に融合させたＧＦＰ（ＷＴ）、またはＰＫＡリン酸化部位がアラニンに変異されているＨＳＰ２０構築物に融合させたＧＦＰ（Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０）（ＭＵＴ）を含むベクターで、形質移入した。細胞を血清の存在下、シリコンゴム基板上で４８時間平板培養した。平板をＤｅｌｔａＶｉｓｉｏｎ画像収集および逆重畳ソフトウェアを備えたＺｅｉｓｓ反転蛍光顕微鏡の台の上に置いた（ＡｐｐｌｉｅｄＰｒｅｃｉｓｉｏｎ，Ｉｓｓａｑｕａｈ，ワシントン州）。ＤｅｌｔａＶｉｓｉｏｎソフトウェアは、各プレート上で８つの異なる細胞に対して（ｘおよびｙ軸）、２ｎｍ間隔で取得した７つのｚ軸画像を用いて較正した。蛍光および位相差画像は、細胞とシリコン膜とが近接して連続するように取得した。走査プロセスのあいだ、各細胞のｚ軸を監視して、細胞がシリコン膜上で弛緩している際に撮影スタックが適切なレベルに維持されているかを確認した。ベースライン画像は１時間毎に取得した。その後細胞をジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ）で、０分間、３０分間、６０分間、または９０分間処理し、結果を図１に示した。

ＨＳＰ２０が変化していない緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現する対照細胞は、ジブチリルｃＡＭＰで処理した時間を通して弛緩していた（細胞下の皺が消えていた）。ＧＦＰで標識したＨＳＰ２０を過剰発現している細胞（ＷＴ）は、皺を形成しておらず、該細胞は収縮できないか、痙攣状態になることができなかった。リン酸化不能のＨＳＰ２０の変異形を発現している細胞（Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０）（ＭＵＴ）は、十分な皺を形成した（収縮した）が、ジブチリルｃＡＭＰに反応して弛緩することはなかった（痙攣状態のままであった）。この図は６つの別個の形質移入を代表するものであり、該形質移入において各構築物を用いて少なくとも１２個の細胞を撮影し、総計データをグラフに示した（^＊＝最初の皺の数と比較してｐ＜０．０５）。同様の知見が、環状ヌクレオチド依存性信号伝達経路をニトロプルシドナトリウム（１０μＭ）、ジブチリルｃＧＭＰ（１０μＭ）、またはフォルスコリン（１０μＭ）（データ示さず）で活性化した場合にも観察された。９０分間撮影した未処理細胞における基質には皺の変化は見られなかった（データ示さず）。これらのデータから、野生型ＨＳＰ２０の過剰発現は、細胞の収縮を阻害し、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０変異タンパク質の発現は、弛緩を阻害することがわかる。このように、上記のデータは、ＨＳＰ２０のリン酸化が平滑筋の弛緩に対して必要かつ十分であることを示し、ＨＳＰ２０のリン酸化が、環状ヌクレオチド信号伝達経路が収縮を阻害するか、弛緩を引き起こすかの収束点を示すことを示唆するものである。

本実験では、リン酸化ＨＳＰ２０が筋肉様細胞のペプチドアナログの形質導入を緩めるかどうかを実証する。ＴＡＴ配列を含むＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログを合成した（ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（ＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０と呼ぶ）（配列番号：３０４）（^＊は「Ｓ」残基がリン酸化されていることを示す）。メサンギウム細胞を血清の存在するシリコン基質上にプレーティングし、４８時間後、細胞をＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０ホスホノペプチド（５０μＭ）で処理した。細胞下の皺の数は、示した時間において、位相差顕微鏡を用いて決定した（ｎ＝１０、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。本実施例の結果が図２に示されている。細胞をＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログで処理することにより、皺は時間依存的な損失を見せる（細胞の弛緩）。この実験から、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入もまた細胞を弛緩させることが実証された。

本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入によって、血管平滑筋の無傷の条片における痙攣が弛緩し、防止されることを実証する。内皮を剥いだウシ頸動脈平滑筋の横行条片を、９５％Ｏ_２／５％ＣＯ_２で平衡化した、重炭酸バッファを含む筋肉浴（１２０ｍＭＮａＣｌ、４．７ｍＭＫＣｌ、１．０ｍＭＭｇＳＯ_４、１．０ｍＭＮａＨ_２ＰＯ_４、１０ｍＭグルコース、１．５ｍＭＣａＣｌ_２および２５ｍＭＮａ_２ＨＣＯ_３、ｐＨ７．４）中、３７℃、１グラムの張力で２時間懸濁した。筋肉はセロトニンで予め収縮させておき（１μＭで１０分間）、漸増用量のＦＩＴＣ−ホスホ−ＨＳＰ２０−ＴＡＴ、ＦＩＴＣ−スクランブルドホスホＨＳＰ２０−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０５）、またはＦＩＴＣ−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ、閉じた三角）（配列番号：３０６）を１０分ごとに添加した。力は、セロトニン最大濃度の百分率として示した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。代表的な条片を４％パラホルムアルデヒド中に固定し、蛍光顕微鏡を用いて観察した（４０倍）。内弾性板（ＩＥＬ）は自己蛍光発光し、媒質と外膜（ＡＤＶ）もまた蛍光を示した（図示せず）。

本実施例の結果が図３に示されている。無傷のウシ頸動脈平滑筋の予め収縮させた条片にＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０リン酸化ペプチドを形質導入すると、セロトニンで予め収縮させておいた筋肉が用量依存的に減少した。スクランブルド配列またはＦＩＴＣ−ＴＡＴ単独を含むペプチドは、収縮力に顕著な効果を有しなかった。このことは、リン酸化ペプチドアナログが無傷の血管平滑筋における痙攣を弛緩および防止することを示す。ＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０リン酸化ペプチドを形質導入した後には、筋肉条片に広範な蛍光染色パターンが見られ、このことからペプチドが筋肉内に進入したことがわかる。

本実験では、異なる形質導入ペプチドによって、ＨＳＰ２０リン酸化ペプチドアナログを導くことができることを証明する。さらに、本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログが、異なる種の異なる血管床に由来する平滑筋における痙攣を弛緩および防止することを実証する。最終的に、本実験では、ＨＳＰ２０アナログの形質導入によって、無傷の内皮が存在する筋肉内における痙攣を弛緩および防止することを実証する。

内皮を剥いでいないブタ冠状動脈の環状切片を、９５％Ｏ_２／５％ＣＯ_２で平衡化した、重炭酸バッファを含む筋肉浴（１２０ｍＭＮａＣｌ、４．７ｍＭＫＣｌ、１．０ｍＭＭｇＳＯ_４、１．０ｍＭＮａＨ_２ＰＯ_４、１０ｍＭグルコース、１．５ｍＭＣａＣｌ_２および２５ｍＭＮａ_２ＨＣＯ_３、ｐＨ７．４）中、３７℃、１グラムの張力で２時間懸濁した。筋肉はセロトニンで予め収縮させておき（１μＭで１０分間）、漸増用量のＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、閉円）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０８）を１０分ごとに添加した（図４）。弛緩の百分率は、セロトニン最大濃度の百分率として示した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。使用したペプチドの濃度をｘ軸に示した。代表的な環状切片をＦＩＴＣに連結したペプチド（１ｍＭ最終濃度）で処理し（３７℃で１５分間）、４％パラホルムアルデヒド中に固定し、蛍光顕微鏡を用いて観察した（４０倍拡大率）。

本実験の結果は図４に示されている。ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは異なる種および異なる血管床に由来する筋肉における痙攣を弛緩および防止することがわかる。タンパク質形質導入アナログで処理した条片には顕著な蛍光が見られた。このことは、ＴＡＴとは異なるタンパク質形質導入ペプチドがリン酸化ペプチドアナログを変換し、筋肉における痙攣を弛緩および防止することを実証している。

本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログのタンパク質形質導入によって、血管以外の平滑筋における痙攣を弛緩および防止できることを示す。

内肛門括約筋は、癌のための腹部会陰切開後のヒトの病理標本より得た。平滑筋は実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。筋肉は、重炭酸バッファ中で温めると、緊張性の持続した収縮を見せた。上記の収縮は、グアニン酸シクラーゼ活性化剤である、ニトロプルシドナトリウム（ＳＮＰ）を加えると弛緩した。ニトロプルシドナトリウムを浴から洗い流すと、筋肉は再び自発的に収縮した。筋肉を、ＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、最終濃度１ｍＭ）（配列番号：３０７）で処理した。リン酸化ペプチドアナログに応答して筋肉は弛緩し、痙攣は防止され、弛緩が持続した。

内膜平滑筋は、ブタの白癬菌より得た。これらの筋肉は、実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。筋肉は、高い細胞外塩化カリウム（ＫＣｌ１１０ｍＭ）とカルバコール（１０^−６Ｍ）に応答して、一時的な収縮を発生した。次に筋肉をＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、最終濃度１ｍＭ）（配列番号：３０７）を含むデキストランゲルで処理し、カルバコールで処理した。リン酸化ペプチドアナログで処理することにより、カルバコールに対する収縮性反応は顕著に減衰した。

気管および海綿体の平滑筋は、屠殺後のニュージーランド白ウサギから得た。筋肉は実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。気管筋肉はカルバコールで予め収縮させておき、海綿体平滑筋はノルエピネフリンで予め収縮させておいた。次に筋肉をＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）で処理した。気管および海綿体のいずれの筋肉も弛緩し、痙攣はリン酸化ペプチドアナログに反応して妨害された。

本実験の結果は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは、ヒト肛門括約筋平滑筋、ブタ腸平滑筋、ウサギ気管平滑筋およびウサギ海綿体平滑筋における痙攣を弛緩および防止することを示している。

本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログのタンパク質導入によって、ヒト伏在静脈平滑筋における痙攣を弛緩および防止できることを示す。

ヒト伏在静脈は、血管バイパス術後に廃棄された残留物から得た。伏在静脈の環状切片を実施例４に記載したように筋肉浴中で平衡化した。環状切片は、７．５％デキストランゲルのみ、またはＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）を含有する７．５％デキストランゲルで処理した。次に環状切片をセロトニン（１μＭ）で処理した。７．５％デキストランゲルのみで処理した環状切片は、セロトニンに反応して収縮した。しかしながら、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログを含んだ７．５％デキストランゲルで処理した環状切片は、セロトニンに反応して収縮することはなかった。

上記の結果は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログが、ヒト伏在静脈平滑筋の痙攣（収縮）を防止することを示している。

本実験は、リン酸化ＨＳＰ２０のより小さいペプチドアナログが、大きいアナログよりも効率的に平滑筋の痙攣を弛緩および防止することを実証するために行った。

内皮を剥いでいないウサギ大動脈の環状切片を、９５％Ｏ_２／５％ＣＯ_２で平衡化した、重炭酸バッファを含む筋肉浴（１２０ｍＭＮａＣｌ、４．７ｍＭＫＣｌ、１．０ｍＭＭｇＳＯ_４、１．０ｍＭＮａＨ_２ＰＯ_４、１０ｍＭグルコース、１．５ｍＭＣａＣｌ_２および２５ｍＭＮａ_２ＨＣＯ_３、ｐＨ７．４）中、３７℃、１グラムの張力で２時間懸濁した。環状切片をノルエピネフリン（１０^−７Ｍ）で予め収縮させておき、ＲＲＲＲＲＲＡｐＳＡＰＬＰ（配列番号：３０９）またはＲＲＲＲＷＬＲＲＡｐＳＡＰＬＰ（配列番号：３１０）で処理した。いずれのペプチドも迅速かつ完全な弛緩をもたらし、筋肉の痙攣の阻害、および弛緩はより早く、筋肉は長いペプチドを用いた場合よりも長い間弛緩状態を維持した。使用したペプチドは、Ｆｍｏｃに基づくペプチド合成によって調製し、ペプチドは、該ペプチドのアミノ末端にＦｍｏｃ部分を保持していた。

上記のデータは、ポリアルギニン配列がＨＳＰ２０アナログを変換して弛緩を誘導すること、および、より小さな配列ＡｐＳＡＰＬＰ（配列番号：３）（式中、「ｐ」はＳ残基がリン酸化されていることを示す）が、痙攣の迅速かつ完全な弛緩および阻害をもたらすことを示している。

本実験では、ＰＫＧで安定的に形質移入されたメサンギウム細胞中およびラット大動脈平滑筋においてＨＳＰ２０が発現されることを示す。本実験では、メサンギウム細胞の弛緩がＨＳＰ２０のリン酸化の増加に関連していることについても示す。

メサンギウム細胞のホモジネート（図５、レーン１）、ラット大動脈平滑筋細胞（図５、レーン２）、およびＰＫＧ形質移入ラット大動脈平滑筋細胞（図５、レーン３）を、ＰＫＧ（図５、パネルＡ）またはＨＳＰ２０（図５、パネルＢ）に対してイムノブロットした。別の実験において、メサンギウム細胞を非処理にするか（図５、パネルＣ）、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、１５分間、図５、パネルＤ）で処理した。タンパク質は、２次元電気泳動によって分離し、イモビロンに転写し、抗ＨＳＰ２０抗体によって調べた。ＨＳＰのリン酸化が上昇すると、タンパク質の電気泳動移動度が、より酸性側のイソ型（矢印方向）の方へ移動する。

上記のデータは、メサンギウム細胞における環状ヌクレオチド依存性信号伝達経路が（図２に示すように）、ＨＳＰ２０のリン酸化と関連していることを示す。

本実験では、ＨＳＰ２０を発現している細胞（安定的にＰＫＧが形質移入された細胞）が収縮できることを示す。

多継代されたか、もしくはＰＫＧを安定的に発現するラット大動脈平滑筋細胞を、血清存在下においてシリコン基質上で培養した。細胞は位相差顕微鏡（１０倍拡大率）で撮影した。多継代された細胞は基質上に皺を形成しなかったが、ＰＫＧ形質移入細胞は皺を形成した。皺が可逆的であるかどうかを調べるために、ＰＫＧ形質移入細胞をジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ）で３０分間処理した。ジブチリルｃＡＭＰによって、皺の形成は減少した。

実施例１０と併せて、上記の結果は、ＨＳＰ２０の発現が収縮性表現型に関連していることを示す。血管平滑筋細胞は、広範に分岐した表現型で存在する。通常の血管壁において、平滑筋細胞はよく区別された収縮性表現型を示し、力を生み出すことができる。損傷あるいは培養条件に応答して、細胞は合成表現型または分泌表現型に変調する。これらの細胞は増殖し、内膜過形成に寄与するマトリックスタンパク質を分泌する。表現型の変調は、遺伝子発現、タンパク質発現、形態、および生理反応の変化と関連している。このことは、アテローム性動脈硬化症や内膜過形成において起こる血管管腔の病理的狭窄を導く。これは血管の狭窄障害および最終的には血管の閉塞に繋がる。したがって、ＨＳＰ２０の発現を維持することは、収縮表現型の維持のために重要である。

細胞付着、細胞質分裂、細胞運動、遊走および収縮などの細胞プロセスは、すべてアクチン細胞骨格の動的再編成を必要とする。本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化が、これらのアクチンフィラメントの変化を変調することを示す。

形質移入されたメサンギウム細胞を固定し、アクチンフィラメントを蛍光標識したファロイジンで染色した。メサンギウム細胞にＥＧＦＰ単独（ＥＧＦＰ）、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０（ＭＵＴ−ＥＧＦＰ）または野生型ＨＳＰ２０（ＷＴ−ＥＧＦＰ）で形質移入した。細胞をスライドグラス上にプレーティングし、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、３０分間、ｄｂ−ｃＡＭＰ）で処理するか、処理しないでおいた（対照）。細胞を固定し、ローダミンファロイジンで染色した。ジブチリルｃＡＭＰは、中央アクチンストレスファイバの欠損をＥＧＦＰにおいてはもたらしたが、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０においてはもたらさなかった。ＨＳＰ２０を過剰発現している細胞において、アクチン繊維は周縁に局在していた。本実験の結果は図６に示されている。

上記の実験は、ＨＳＰ２０のリン酸化の増加をもたらす環状ヌクレオチド依存性信号伝達経路の活性化が、中心アクチンストレスファイバの損失と関連していることを示している。ＨＳＰ２０の過剰発現も、アクチンストレスファイバの損失と関連している。セリンがアラニンに置換されており（Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０）、リン酸化され得ないＨＳＰ２０の変異型を過剰発現している細胞において、環状ヌクレオチド依存性信号伝達経路の活性化に伴う上記中央アクチン繊維の損失は見られなかった。これらの研究から、ＨＳＰ２０のリン酸化は、アクチン繊維形成の変化と関連していることが実証された。

本実験では、平滑筋細胞に、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログでタンパク質形質導入することによっても、アクチン繊維形成に変化がもたらされることを示す。

ラット大動脈平滑筋細胞を、ＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ｐＨＳＰ２０（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、５０μＭ）（配列番号：３０７）の存在下および非存在下において、リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）で処理した。リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）は、アクチン繊維形成を促進する物質である。ＬＰＡによるアクチンの阻害は、内膜過形成を阻害することが分かっている。

細胞を固定し、ファロイジンで染色し、共焦点顕微鏡により画像を得た。ＬＰＡは、強固なアクチンストレスファイバ形成をもたらしたが、ＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ｐＨＳＰ２０ペプチドの存在下においてＬＰＡで処理した細胞においては、中央アクチンストレスファイバの損失は見られなかった。上記の研究は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログによるタンパク質形質導入が、ＬＰＡによって誘導されるアクチンファイバ形成を阻害することを示している。上記の研究から、ＨＳＰ２０はアクチンファイバ形成を変換する直接的な役割を有していることが確認された。

細胞の付着形成には、インテグリンと細胞外基質基材との間の相互作用が関与する。これにより、インテグリン凝集が誘導される。次に細胞はアクチンミクロフィラメントを形成し、細胞は広がった。マトリックスによって適当な信号が与えられれば、局所付着の形成とアクチン含有ストレスファイバによって特徴付けられるように、細胞はそれらの細胞骨格を編成し始める。細胞付着は、細胞遊走と一体化した動的可逆的プロセスである。ｃＧＭＰの活性化により、局所的な付着の分解が起こる。これらの研究は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログが、局所的付着の分解を媒介していることを示す。

ウシ大動脈内皮細胞（８０Ｋ〜１００Ｋ細胞）を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳ中、ガラスカバースリップ上で一晩平板培養した（２４ウェルプレート）。細胞を１時間血清飢餓状態（血清無し）におき、ＨＳＰ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ−ｐＨＳＰ２０（１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＨＳＰ２０スクランブルドアナログ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ−ｓｃＨＳＰ２０（１０μＭ）］（配列番号：３０８）の存在下で３０分間インキュベートした。細胞を３％グルタルアルデヒドで固定し、局所性付着の数を干渉反射顕微鏡を用いて検出した。ＨｅｐＩペプチドを正の対照として用いた。このペプチドは、トロンボスポンジンのヘパリン結合部位に結合し、局所的付着分解を誘導する。ＨｅｐＩとｐＨＳＰ２０のいずれも局所的付着分解を引き起こした。結果は図７に示されている。

トロンボスポンジン１（Ｈｅｐ１）のアミノ末端ヘパリン結合ドメインからのペプチドによって誘導される分解と同等の、局所的付着の分解がＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０による処理によって引き起こされた。スクランブルドペプチドは、局所的付着分解には顕著な効果を有しなかった。これらの研究は、リン酸化されたＨＳＰ２０が局所的付着分解を媒介することを示している。これにより細胞結合を弱め、細胞遊走に必要な結合の形成を防止している。

本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログが細胞遊走を直接阻害することを示す。

集密的Ａ１０細胞を血清飢餓状態に（０．５％ウシ胎仔血清、ＦＢＳ）４８時間おいた。ゴムスクレーパーを用いて細胞単層中に線状の傷を作り、金属ピンを用いて引っ掻いた縁部に印を付けた。細胞を、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む１０％培地に交換して、２４時間インキュベートした。細胞を固定し、ヘマトキシリンで染色した。１ｃｍ^２の掻爬面積に遊走した細胞の数を遊走の指標として係数した。さらなる実験において、Ａ１０細胞の遊走はボイデンチャンバアッセイにおいて決定した。いずれの場合においても、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは、遊走の阻害をもたらした。図８は上記実験の結果を示したものである。

上記の結果は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入が、平滑筋細胞の血清に誘導される遊走を阻害することを示している。

本実験では、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入が、平滑筋細胞の血清によって誘導される増殖を阻害することを示す。

Ａ１０細胞を３日間血清飢餓状態においた。その後細胞を、１０％ウシ胎仔血清と、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む培地で処理した。２４時間後、細胞計数を行った。血清飢餓平板における１ウェルあたりの細胞数は、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を含有するウェルにおける２７６±６．１と比較して、平均して１０９（±７．４）細胞／ウェルであった。ＦＢＳの存在下において、形質導入ドメインを含むＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは、ＨＳＰ２０のスクランブルドリン酸化ペプチドアナログの形質導入と比較して（２４２．３±１５．３）、平滑筋の増殖を１４９±１４．６阻害した。上記の実験の結果が図９に示されている。

上記実施例により得られた結果は、ＨＳＰ２０が収縮性表現型と関連していること、およびＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入によりアクチン繊維形成、局所付着形成、平滑筋細胞遊走および平滑筋増殖が阻害されることを実証するものである。これらは本願を通して検討する内膜過形成や他の疾患に繋がるプロセスである。

本実験では、ＨＳＰ２０がヒト伏在静脈グラフトにおける内膜過形成を阻害することを示す。

ヒト伏在静脈の切片を３０％ウシ胎仔血清を含む培地中で培養した。切片を、血清のみを含む培地、血清とＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログ（ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、１０μＭ）（配列番号：３０８）とを含む培地で１４日間処理した。環状切片をホルマリン中に固定し、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色し、内膜の面積を形態計測的に測定した。血清のみまたは血清とスクランブルドアナログの形質導入で処理した環状切片に比べて、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログで処理した環状切片において内膜面積は顕著に減少していた。

これらの結果は、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログの形質導入により、ヒト伏在静脈において内膜過形成を阻害できることを示している。

本実験では、植物細胞を組み換えＨＳＰ２０を産生するように操作できることを示す。

タバコＢＹ−２細胞をベクターのみで形質転換するか（ベクター形質転換）、Ｈｉｓ標識したＨＳＰ２０構築物で形質転換した（６Ｘｈｉｓ−ＨＳＰ２０形質転換）。抗−６Ｘｈｉｓモノクローナル抗体を用いて細胞溶解物に対してウェスタンブロットを実施した。ＨＳＰ２０溶解物には２０ｋＤａポリペプチドの免疫活性が見られたが、ベクター形質転換溶解物には見られなかった。

一時的に発現している操作タバコ細胞の共焦点免疫蛍光画像の光学断面を、それぞれ、ｍｙｃ−エピトープで標識したＨＳＰ２０に対しては抗ｍｙｃ抗体で、ＨＳＰ２０に対しては抗ＨＳＰ２０抗体、ＴＡＴ−ＨＳＰ２０に対しては抗ＨＳＰ２０抗体、またはＨＩＳＴＡＴ−ＨＳＰ２０に対しては抗ｈｉｓ抗体でプローブした。発現は、４つの構築物のすべてにおいて見られた（１線分は１００μｍ）。

上記の結果は、タンパク質形質導入配列を含むタンパク質とＨＳＰ２０分子とを生産できるように植物を操作することができることを示している。これはＨＳＰ２０生産の代替供給源を表す。

緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）単独、ＨＳＰ２０に対する野生型ｃＤＮＡの５’末端に融合させたＧＦＰ（ＷＴ）、またはＰＫＡリン酸化部位がアラニンに変異されているＨＳＰ２０構築物に融合させたＧＦＰ（Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０）（ＭＵＴ）を含むベクターで、メサンギウム細胞を形質移入し、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ）で０分間、３０分間、６０分間または９０分間処理後の細胞の下の皺の数を決定した。メサンギウム細胞にＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ＨＳＰ２０を形質導入し、位相差顕微鏡を用いて表示した時間に細胞下の皺の数を決定した（ｎ＝１０、^＊＝時間０との比較で、ｐ＜０．０５）。内皮を剥いだウシ頸動脈平滑筋の横行条片を、セロトニン（１μＭで１０分間）と予め接触させ、漸増用量のＦＩＴＣ−ホスホ−ＨＳＰ２０−ＴＡＴ、ＦＩＴＣ−スクランブルドホスホＨＳＰ２０−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０５）、またはＦＩＴＣ−ＴＡＴ（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ、閉じた三角）（配列番号：３０６）を１０分ごとに添加し、濃度の百分率を計算した。力は、セロトニン最大濃度の百分率で示した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。内皮を剥いでいないブタの冠状動脈の環状切片をセロトニン（１μＭで１０分間）と予め接触させ、漸増用量のＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、閉円）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０８）を１０分ごとに添加し、弛緩の百分率をセロトニン最大濃度の百分率として計算した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。使用したペプチドの濃度は、ｘ軸に示されている。メサンギウム細胞のホモジネート（レーン１）、ラット大動脈平滑筋細胞（レーン２）、およびＰＫＧ形質移入ラット大動脈平滑筋細胞（レーン３）を、ＰＫＧ（パネルＡ）またはＨＳＰ２０（パネルＢ）に対してイムノブロットした。別の実験において、メサンギウム細胞を非処理にするか（パネルＣ）、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、１５分間、パネルＤ）で処理した。タンパク質は、２次元電気泳動によって分離し、イモビロンに転写し、抗ＨＳＰ２０抗体によって調べた。ＨＳＰのリン酸化が上昇すると、タンパク質の電気泳動移動度が、より酸性側のイソ型（矢印方向）の方へ移動する。形質移入メサンギウム細胞を固定し、アクチンフィラメントをリン酸標識したファロイジンで染色した。メサンギウム細胞をＥＧＦＰ単独（ＥＧＦＰ）、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０（ＭＵＴ−ＥＧＦＰ）または野生型ＨＳＰ２０（ＷＴ−ＥＧＦＰ）で形質移入した。細胞をスライドグラス上にプレーティングし、ジブチリルｃＡＭＰ（１０μＭ、３０分間、ｄｂ−ｃＡＭＰ）で処理するか、処理しないでおいた（対照）。細胞を固定し、ローダミンファロイジンで染色した。ジブチリルｃＡＭＰは、中央アクチンストレスファイバの欠損をＥＧＦＰにおいてはもたらしたが、Ｓ１６Ａ−ＨＳＰ２０においてはもたらさなかった。ＨＳＰ２０を過剰発現している細胞において、アクチン繊維は周縁に局在していた。ウシ大動脈内皮細胞（８０Ｋ〜１００Ｋ細胞）を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳ中、ガラスカバースリップ上で一晩平板培養した（２４ウェルプレート）。細胞を１時間血清飢餓状態（血清無し）におき、ＨＳＰ２０［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ−ｐＨＳＰ２０（１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＨＳＰ２０スクランブルドアナログ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ−ｓｃＨＳＰ２０（１０μＭ）］（配列番号：３０８）の存在下で３０分間インキュベートした。細胞を３％グルタルアルデヒドで固定し、局所性付着の数を干渉反射顕微鏡を用いて検出した。ＨｅｐＩペプチドを正の対照として用いた。集密的Ａ１０細胞を血清飢餓状態に（０．５％ウシ胎仔血清、ＦＢＳ）４８時間おいた。ゴムスクレーパーを用いて細胞単層中に線状の傷を作り、金属ピンを用いて引っ掻いた縁部に印を付けた。細胞を、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む１０％培地に交換して、２４時間インキュベートした。細胞を固定し、ヘマトキシリンで染色した。１ｃｍ２の掻爬面積に遊走した細胞の数を遊走の指標として係数した。さらなる実験において、Ａ１０細胞の遊走はボイデンチャンバアッセイにおいて決定した。Ａ１０細胞を３日間血清飢餓状態においた。その後細胞を、１０％ウシ胎仔血清と、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む培地で処理した。２４時間後、細胞計数を行った。

内皮を剥いでいないブタ冠状動脈の環状切片を、９５％Ｏ_２／５％ＣＯ_２で平衡化した、重炭酸バッファを含む筋肉浴（１２０ｍＭＮａＣｌ、４．７ｍＭＫＣｌ、１．０ｍＭＭｇＳＯ_４、１．０ｍＭＮａＨ_２ＰＯ_４、１０ｍＭグルコース、１．５ｍＭＣａＣｌ_２および２５ｍＭＮａ_２ＨＣＯ_３、ｐＨ７．４）中、３７℃、１グラムの張力で２時間懸濁した。筋肉はセロトニンで予め収縮させておき（１μＭで１０分間）、漸増用量のＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、閉円）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、開円）（配列番号：３０８）を１０分ごとに添加した（図４）。弛緩の百分率は、セロトニン最大濃度の百分率として示した（ｎ＝５、^＊＝ペプチド添加量０の場合と比較してｐ＜０．０５）。使用したペプチドの濃度をｘ軸に示した。代表的な環状切片をＦＩＴＣに連結したペプチド（１ｍＭ最終濃度）で処理し（３７℃で１５分間）、４％パラホルムアルデヒド中に固定し、蛍光顕微鏡を用いて観察した（４０倍拡大率）。

内肛門括約筋は、癌のための腹部会陰切開後のヒトの病理標本より得た。平滑筋は実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。筋肉は、重炭酸バッファ中で温めると、緊張性の持続した収縮を見せた。上記の収縮は、グアニン酸シクラーゼ活性化剤である、ニトロプルシドナトリウム（ＳＮＰ）を加えると弛緩した。ニトロプルシドナトリウムを浴から洗い流すと、筋肉は再び自発的に収縮した。筋肉を、ＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、最終濃度１ｍＭ）（配列番号：３０７）で処理した。リン酸化ペプチドアナログに応答して筋肉は弛緩し、痙攣は防止され、弛緩が持続した。

内膜平滑筋は、ブタの白癬菌より得た。これらの筋肉は、実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。筋肉は、高い細胞外塩化カリウム（ＫＣｌ１１０ｍＭ）とカルバコール（１０^−６Ｍ）に応答して、一時的な収縮を発生した。次に筋肉をＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、最終濃度１ｍＭ）（配列番号：３０７）を含むデキストランゲルで処理し、カルバコールで処理した。リン酸化ペプチドアナログで処理することにより、カルバコールに対する収縮性反応は顕著に減衰した。

気管および海綿体の平滑筋は、屠殺後のニュージーランド白ウサギから得た。筋肉は実施例６に記載したように筋肉浴中で平衡化した。気管筋肉はカルバコールで予め収縮させておき、海綿体平滑筋はノルエピネフリンで予め収縮させておいた。次に筋肉をＨＳＰ２０のＰＴＤ−リン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）で処理した。気管および海綿体のいずれの筋肉も弛緩し、痙攣はリン酸化ペプチドアナログに反応して妨害された。

ヒト伏在静脈は、血管バイパス術後に廃棄された残留物から得た。伏在静脈の環状切片を実施例４に記載したように筋肉浴中で平衡化した。環状切片は、７．５％デキストランゲルのみ、またはＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログ（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）を含有する７．５％デキストランゲルで処理した。次に環状切片をセロトニン（１μＭ）で処理した。７．５％デキストランゲルのみで処理した環状切片は、セロトニンに反応して収縮した。しかしながら、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログを含んだ７．５％デキストランゲルで処理した環状切片は、セロトニンに反応して収縮することはなかった。

ラット大動脈平滑筋細胞を、ＦＩＴＣ−ＴＡＴ−ｐＨＳＰ２０（ＦＩＴＣ−ＮＨ_２−βＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、５０μＭ）（配列番号：３０４）の存在下および非存在下において、リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）で処理した。リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）は、アクチン繊維形成を促進する物質である。ＬＰＡによるアクチンの阻害は、内膜過形成を阻害することが分かっている。

ウシ大動脈内皮細胞（８０Ｋ〜１００Ｋ細胞）を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳ中、ガラスカバースリップ上で一晩平板培養した（２４ウェルプレート）。細胞を１時間血清飢餓状態（血清無し）におき、ＨＳＰ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ−ｐＨＳＰ２０（１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＨＳＰ２０スクランブルドアナログ［ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ−ｓｃＨＳＰ２０（１０μＭ）］（配列番号：３０８）の存在下で３０分間インキュベートした。細胞を３％グルタルアルデヒドで固定し、局所性付着の数を干渉反射顕微鏡を用いて検出した。ＨｅｐＩペプチドを正の対照として用いた。このペプチドは、トロンボスポンジンのヘパリン結合部位に結合し、局所的付着分解を誘導する。ＨｅｐＩとｐＨＳＰ２０のいずれも局所的付着分解を引き起こした。結果は図７に示されている。

集密的Ａ１０細胞を血清飢餓状態に（０．５％ウシ胎仔血清、ＦＢＳ）４８時間おいた。ゴムスクレーパーを用いて細胞単層中に線状の傷を作り、金属ピンを用いて引っ掻いた縁部に印を付けた。細胞を、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む１０％培地に交換して、２４時間インキュベートした。細胞を固定し、ヘマトキシリンで染色した。１ｃｍ^２の掻爬面積に遊走した細胞の数を遊走の指標として係数した。さらなる実験において、Ａ１０細胞の遊走はボイデンチャンバアッセイにおいて決定した。いずれの場合においても、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは、遊走の阻害をもたらした。図８は上記実験の結果を示したものである。

Ａ１０細胞を３日間血清飢餓状態においた。その後細胞を、１０％ウシ胎仔血清と、ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ）（配列番号：３０８）（５０μＭ）を含む培地で処理した。２４時間後、細胞計数を行った。血清飢餓平板における１ウェルあたりの細胞数は、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を含有するウェルにおける２７６±６．１と比較して、平均して１０９（±７．４）細胞／ウェルであった。ＦＢＳの存在下において、形質導入ドメインを含むＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログは、ＨＳＰ２０のスクランブルドリン酸化ペプチドアナログの形質導入と比較して（２４２．３±１５．３）、平滑筋の増殖を１４９±１４．６阻害した。上記の実験の結果が図９に示されている。

ヒト伏在静脈の切片を３０％ウシ胎仔血清を含む培地中で培養した。切片を、血清のみを含む培地、血清とＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログ（ＰＴＤ−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡＷＬＲＲＡＳ^＊ＡＰＬＰＧＬＫ−ＣＯＯＨ、１０μＭ）（配列番号：３０７）またはＰＴＤ−スクランブルド−ｐＨＳＰ２０（ＮＨ_２−βＡＹＡＲＲＡＡＡＲＱＡＲＡＰＲＫＳ^＊ＬＷＡＬＧＲＰＬＡ−ＣＯＯＨ、１０μＭ）（配列番号：３０８）とを含む培地で１４日間処理した。環状切片をホルマリン中に固定し、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色し、内膜の面積を形態計測的に測定した。血清のみまたは血清とスクランブルドアナログの形質導入で処理した環状切片に比べて、ＨＳＰ２０のリン酸化ペプチドアナログで処理した環状切片において内膜面積は顕著に減少していた。

Claims

下記の一般式Ｉに記載のアミノ酸配列から成るポリペプチド：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５−］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列ＷＬＲＲ（配列番号：１）の０、１、２、３または４アミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ホスホセリンアナログ、およびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、属の配列Ｚ１−Ｚ２−Ｚ３の１、２または３アミノ酸であり
（式中、Ｚ１はＧおよびＤから成る群より選択され、Ｚ２はＬおよびＫから成る群より選択され、Ｚ３はＳおよびＴよりなる群より選択される）、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、ｕは１〜５））。
Ｘ４がＳである、請求項１に記載のポリペプチド。
Ｘ４がＴである、請求項１に記載のポリペプチド。
Ｘ４がＹである、請求項１に記載のポリペプチド。
Ｘ３がＲである、請求項１〜４のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ３がＲＲである、請求項１〜４のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ３がＬＲＲ（配列番号：３１１）である、請求項１〜４のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ３がＷＬＲＲ（配列番号：１）である、請求項１〜４のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＬである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＫである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＬである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＫである、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＬＳ（配列番号：３１２）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＬＴ（配列番号：３１３）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＫＳ（配列番号：３１４）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＧＫＴ（配列番号：３１５）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＬＳ（配列番号：３１６）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＬＴ（配列番号：３１７）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＫＳ（配列番号：３１８）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ５がＤＫＴ（配列番号：３１９）である、請求項１〜８のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ１が１つの芳香環を含む分子である、請求項１〜２２のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ１が、Ｆ、Ｙ、Ｗ、および９−フルオロエニルメチルを含む化合物からなる群より選択される、請求項２３に記載のポリペプチド。
Ｘ２が形質導入ドメインを含む、請求項１〜２４のいずれかに記載にポリペプチド。
Ｘ６が形質導入ドメインを含む、請求項１〜２４のいずれかに記載にポリペプチド。
Ｘ２とＸ６の両方が形質導入ドメインを含む、請求項１〜２４のいずれかに記載にポリペプチド。
Ｘ４がリン酸化されている、請求項１〜２７のいずれかに記載のポリペプチド。
形質導入ドメインが、（Ｒ）_４−９（配列番号：２７９）；ＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＰＱ（配列番号：２８０）；ＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡ（配列番号：２８１）；ＤＡＡＴＡＴＲＧＲＳＡＡＳＲＰＴＥＲＰＲＡＰＡＲＳＡＳＲＰＲＲＰＶＥ（配列番号：２８２）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８３）；ＰＬＳＳＩＦＳＲＩＧＤＰ（配列番号：２８４）；ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ（配列番号：２８５）；ＡＡＶＬＬＰＶＬＬＡＡＰ（配列番号：２８６）；ＶＴＶＬＡＬＧＡＬＡＧＶＧＶＧ（配列番号：２８７）；ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡＷＳＱＰ（配列番号：２８８）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８９）；ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ（配列番号：２９０）；ＫＥＴＷＷＥＴＷＷＴＥＷＳＱＰＫＫＫＲＫＶ（配列番号：２９１）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９２）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＡＡＧＣ（配列番号：２９３）；ＡＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９４）；ＫＡＦＡＡＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９５）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＱＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９６）、および、ＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ（配列番号：３０６）からなる群より選択される、請求項１〜２８のいずれかに記載のポリペプチド。
下記の一般式ＩＩに記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド：
Ｘ１−Ｘ２−［Ｘ３−Ａ（Ｘ４）ＡＰＬＰ−Ｘ５］_ｕ−Ｘ６
（式中、Ｘ１は存在しないか、１つまたはそれ以上の芳香環を含む１つまたはそれ以上の分子であり、
Ｘ２は存在しないか、形質導入ドメインを含み、
Ｘ３は、配列番号：２９７の残基１〜１４の間の熱ショックタンパク質２０の配列の０〜１４個のアミノ酸であり、
Ｘ４は、Ｓ、Ｔ、Ｙ、Ｄ、Ｅ、ホスホセリンアナログおよびホスホチロシンアナログからなる群から選択され、
Ｘ５は、配列番号：２９７の残基２１〜１６０に間の熱ショックタンパク質２０の０〜１４０個のアミノ酸であり、
Ｘ６は、存在しないか、形質導入ドメインを含む（式中、Ｘ２とＸ６のうちの少なくとも１つが形質導入ドメインを含む））。
Ｘ４がＳである、請求項３０に記載のポリペプチド。
Ｘ４がＴである、請求項３０に記載のポリペプチド。
Ｘ４がＹである、請求項３０に記載のポリペプチド。
ポリペプチドは、Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９７−Ｘ６；Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９８−Ｘ６；Ｘ１−Ｘ２−配列番号：２９９−Ｘ６；Ｘ１−Ｘ２−配列番号：３００−Ｘ６；Ｘ１−Ｘ２−配列番号：３０１−Ｘ６；およびＸ１−Ｘ２−配列番号：３０２−Ｘ６からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む、請求項３０に記載のポリペプチド。
Ｘ２とＸ６の両方が形質導入ドメインを含む、請求項３０〜３４のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ４がリン酸化されている、請求項３０〜３３および３５のいずれかに記載のポリペプチド。
ポリペプチドはリン酸化されている、請求項３４に記載のポリペプチド。
Ｘ１が１つの芳香環を含む分子である、請求項３０〜３７のいずれかに記載のポリペプチド。
Ｘ１は、Ｆ、Ｙ、Ｗ、および９−フルオロエニルメチルを含む化合物からなる群より選択される、請求項３８に記載のポリペプチド。
形質導入ドメインが、（Ｒ）_４−９（配列番号：２７９）；ＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＰＱ（配列番号：２８０）；ＡＹＡＲＡＡＡＲＱＡＲＡ（配列番号：２８１）；ＤＡＡＴＡＴＲＧＲＳＡＡＳＲＰＴＥＲＰＲＡＰＡＲＳＡＳＲＰＲＲＰＶＥ（配列番号：２８２）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８３）；ＰＬＳＳＩＦＳＲＩＧＤＰ（配列番号：２８４）；ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ（配列番号：２８５）；ＡＡＶＬＬＰＶＬＬＡＡＰ（配列番号：２８６）；ＶＴＶＬＡＬＧＡＬＡＧＶＧＶＧ（配列番号：２８７）；ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡＷＳＱＰ（配列番号：２８８）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＬＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（配列番号：２８９）；ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ（配列番号：２９０）；ＫＥＴＷＷＥＴＷＷＴＥＷＳＱＰＫＫＫＲＫＶ（配列番号：２９１）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９２）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＡＡＧＣ（配列番号：２９３）；ＡＡＦＡＫＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９４）；ＫＡＦＡＡＬＡＡＲＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９５）；ＫＡＦＡＫＬＡＡＱＬＹＲＫＡＧＣ（配列番号：２９６）、および、ＡＧＧＧＧＹＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲ（配列番号：３０６）からなるより選択される、請求項３０〜３９のいずれかに記載のポリペプチド。
請求項１〜４０のいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドと、薬剤的に許容可能な担体とを含む医薬組成物。
請求項１〜４０のいずれかに記載のポリペプチドをコードする単離核酸配列。
請求項４２の核酸を含む発現ベクター。
請求項４３の発現ベクターを含む宿主細胞。
改良型生物医療機器であって、該生物医療機器上または機器中に請求項１〜４０のいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドを含むことを特徴とする生物医療機器。
生物医療機器は、ステント、グラフト、シャントおよびフィステルからなる群より選択される、請求項４５に記載の改良型生物医療機器。
生物医療機器上または機器中に配置されたＨＳＰ２７阻害剤をさらに含む、請求項４４または４５に記載の改良型生物医療機器。
平滑筋細胞を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量の請求項１〜４０のいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む、平滑筋細胞の増殖および／または遊走の阻害方法。
平滑筋細胞を、平滑筋細胞の増殖および／または遊走を阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０、またはその機能的均等物と接触させることを含む、平滑筋細胞の増殖および／または遊走の阻害方法。
接触はインビボで行う請求項４８または４９に記載の方法。
前記方法は、内膜過形成、狭窄、再狭窄、移植血管症、およびアテローム性動脈硬化症を治療または予防するために用いられる、請求項５０に記載の方法。
前記方法は、血管形成術、血管ステント配置、動脈内膜切除、アテローム切除術、バイパス手術、血管移植、臓器移植、補綴移植、微小血管再構築、形成外科フラップ再構築、およびカテーテル配置から成る群より選択される処置を受けたか、受けている最中か、受ける予定のある被験者に対して実施される、請求項５１に記載の方法。
前記方法は、平滑筋細胞腫瘍を治療するために用いられる、請求項５０に記載の方法。
平滑筋細胞腫瘍は、平滑筋肉腫である、請求項５３に記載の方法。
前記方法は、平滑筋細胞をＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む、請求項４８〜５４のいずれかに記載の方法。
前記接触が血管との接触を含む、請求項４８〜５５のいずれかに記載の方法。
内膜過形成、狭窄、再狭窄、および／またはアテローム性動脈硬化症からなる群より選択される疾患の治療または阻害方法であって、その必要のある被験者を、内膜過形成、狭窄、再狭窄、および／またはアテローム性動脈硬化症を治療または阻害するのに有効な量の、請求項１〜４０にいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む方法。
内膜過形成、狭窄、再狭窄、および／またはアテローム性動脈硬化症からなる群より選択される疾患の治療または阻害方法であって、その必要のある患者を、内膜過形成、狭窄、再狭窄、および／またはアテローム性動脈硬化症を治療または阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０またはその機能的均等物と接触させることを含む方法。
前記被験者が、血管形成術、血管ステント配置、動脈内膜切除、アテローム切除術、バイパス手術、血管移植、臓器移植、およびカテーテル配置から成る群より選択される処置を受けたか、受けている最中か、受ける予定がある、請求項５７または５８に記載の方法。
前記方法が、平滑筋細胞をＨＳＰ２７の阻害剤と接触させることをさらに含む、請求項５７〜５９のいずれかに記載の方法。
前記接触が、血管を接触させる、請求項５７〜６０のいずれかに記載の方法。
平滑筋痙攣の治療または阻害方法であって、その必要のある被験者を、血管収縮を阻害するのに有効な量の、請求項１〜４０のいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む方法。
平滑筋痙攣の治療または阻害方法であって、その必要のある被験者を、血管痙攣を阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０またはその機能的均等物と接触させることを含む方法。
前記方法が、血管痙攣を治療または阻害するために用いられる、請求項６２または６３に記載の方法。
血管痙攣が、狭心症、冠状動脈痙攣、Ｐｒｉｎｚｍｅｔａｌ型狭心症、冠状動脈虚血、脳梗塞、徐脈高血圧症、肺性（肺）高血圧症、ぜんそく（気管支痙攣）、妊娠中毒症、早期分娩、子癇前症／子癇、レイノー病、レイノー現象、溶血性尿毒症、非閉塞性腸間膜虚血、肛門裂傷、アカラシア、インポテンス、偏頭痛、平滑筋痙攣に関連する虚血性筋傷害、および血管症から成る群より選ばれる疾病または状態に関連している、請求項６４に記載の方法。
前記方法が、平滑筋細胞をＨＳＰ２７の阻害剤に接触させることをさらに含む、請求項６２〜６５のいずれかに記載の方法。
前記接触が、血管を接触させることを含む、請求項６２〜６６のいずれかに記載の方法。
（ａ）請求項１〜４０のいずれかに記載のポリペプチド；および
（ｂ）ＨＳＰ２７の阻害剤
を含む組成物。
グラフトを、血管収縮を阻害するのに有効な量の、請求項１〜４０のいずれかに記載の１つまたはそれ以上のポリペプチドと接触させることを含む、平滑筋痙攣の阻害方法。
グラフトを、血管収縮を阻害するのに有効な量のＨＳＰ２０またはその機能的均等物と接触させることを含む、平滑筋痙攣の阻害方法。
前記方法が、血管痙攣を阻害するために用いられる、請求項６９または７０に記載の方法。
前記方法が、内膜過形成を阻害するために用いられる、請求項６９または７０に記載の方法。