[go: up one dir, main page]

HU224831B1 - Protein with phospholipase activity - Google Patents

Protein with phospholipase activity Download PDF

Info

Publication number
HU224831B1
HU224831B1 HU9901640A HUP9901640A HU224831B1 HU 224831 B1 HU224831 B1 HU 224831B1 HU 9901640 A HU9901640 A HU 9901640A HU P9901640 A HUP9901640 A HU P9901640A HU 224831 B1 HU224831 B1 HU 224831B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
phospholipase
leu
ser
thr
aspergillus
Prior art date
Application number
HU9901640A
Other languages
English (en)
Inventor
Gerald Jungschaffer
Quoc Khanh
Fridolin Loeffler
Erwin Schuster
Bruno Sproessler
Sabine Dr Wolf
Original Assignee
Ab Enzymes Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ab Enzymes Gmbh filed Critical Ab Enzymes Gmbh
Publication of HUP9901640A2 publication Critical patent/HUP9901640A2/hu
Publication of HUP9901640A3 publication Critical patent/HUP9901640A3/hu
Publication of HU224831B1 publication Critical patent/HU224831B1/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A21BAKING; EDIBLE DOUGHS
    • A21DTREATMENT OF FLOUR OR DOUGH FOR BAKING, e.g. BY ADDITION OF MATERIALS; BAKING; BAKERY PRODUCTS
    • A21D8/00Methods for preparing or baking dough
    • A21D8/02Methods for preparing dough; Treating dough prior to baking
    • A21D8/04Methods for preparing dough; Treating dough prior to baking treating dough with microorganisms or enzymes
    • A21D8/042Methods for preparing dough; Treating dough prior to baking treating dough with microorganisms or enzymes with enzymes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A21BAKING; EDIBLE DOUGHS
    • A21DTREATMENT OF FLOUR OR DOUGH FOR BAKING, e.g. BY ADDITION OF MATERIALS; BAKING; BAKERY PRODUCTS
    • A21D2/00Treatment of flour or dough by adding materials thereto before or during baking
    • A21D2/08Treatment of flour or dough by adding materials thereto before or during baking by adding organic substances
    • A21D2/24Organic nitrogen compounds
    • A21D2/26Proteins
    • A21D2/267Microbial proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C11ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11BPRODUCING, e.g. BY PRESSING RAW MATERIALS OR BY EXTRACTION FROM WASTE MATERIALS, REFINING OR PRESERVING FATS, FATTY SUBSTANCES, e.g. LANOLIN, FATTY OILS OR WAXES; ESSENTIAL OILS; PERFUMES
    • C11B3/00Refining fats or fatty oils
    • C11B3/003Refining fats or fatty oils by enzymes or microorganisms, living or dead
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/16Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/18Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/913Aspergillus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/913Aspergillus
    • Y10S435/917Aspergillus niger

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

A találmány tárgya elkülönített, kétláncú foszfolipáz hasítási termék foszfolipázaktivitással, azonban lizofoszfolipázaktivitás nélkül.
Az étkezési olaj nyálkátlanítása során a nem hidrolizálható foszfolipidek a foszfolipáz által vízoldhatóvá válnak, és így kíméletesen, olcsón és környezetbarát módon távolíthatók el az étkezési olajból. A 0 513 709 számú európai szabadalmi bejelentésben (Röhm/Lurgi) írtak le először hatékony enzimatikus nyálkátlanítási eljárást. Ennek során a vízzel előnyálkátlanított étkezési olajat foszfolipáz vizes oldatával 10 mikrométernél kisebb cseppecskékké emulgeálták. A 3 és 6 közötti pH-η és 50 és 70 °C közötti hőmérsékleten végzett hidrolízis után a vizes fázist elválasztották. Ezt az enzimatikus nyálkátlanítási eljárását a Lurgi cég „EnzyMax-eljárás”-ként vezette be az étolajiparba. A DE 43 39 556 számú német szabadalmi bejelentésben ennek az eljárásnak egy további változataként az enzim újrafelhasználását írták le, amelyet úgy végeznek, hogy az enzimet a használt, iszapot tartalmazó vizes fázisból tenzidek vagy oldáskönnyítő szerek hozzáadásával kioldják, és mint lényegében üledékmentes, enzimtartalmú oldatot újra felhasználják.
Az enzim szükséges mennyiségének rendelkezésre bocsátása nagyüzemi eljárás kivitelezéséhez csak mikroorganizmusok segítségével lehetséges. Ezért igény van olyan mikrobiális forrásra, amely lehetővé teszi a foszfolipáz enzim korlátlan mennyiségben történő termelését. A DE-OS 195 27 274,9 számon nyilvánosságra hozott, 1995. július 26-án tett (Röhm/Lurgi) német szabadalmi bejelentésben leírják, hogy az Aspergillus niger-ben alkalmas foszfolipázt találtak. Ez a lecitint lizolecitinné hasítja, de képes arra is, hogy a lizolecitint továbbhasítsa foszfatidil-kolinná. Az Aspergillusból származó tiszta lizofoszfolipázok, amelyek csak a lizolecitint képesek hasítani, a nyálkátlanítási eljárásban hatástalanok. Ez a nem acilhasító C és D foszfolipázokra is érvényes.
Ezen túlmenően a foszfolipázok mint sütési segédanyagok tészta feldolgozásának javítására is alkalmazhatók.
Az EP 575 133 számú publikált európai szabadalmi bejelentés olyan enzimkészítményt ismertet, amely foszfolipid hidrolízisével lizofoszfolipidet állít elő.
A WO 95/22615 számon publikált PCT szabadalmi bejelentés szerint javított mosó- és/vagy edénymosó hatású zsírbontó enzimeket állítanak elő. Abban az esetben, ha az enzim foszfolipáz, az előállítása foszfolipázból történik.
Az egyik utóbbi anterioritás sem utal olyan enzimre vagy eljárásra, amelynél a lizofoszfolipázaktivitás foszfolipázaktivitásra változna.
A jelen találmány alapját képező feladat egy foszfolipáz kedvező áron és nagy tisztaságban történő rendelkezésre bocsátása. A cél, hogy a foszfolipázt egy transzformált gazdaszervezettel nagy mennyiségben lehessen előállítani. Lehetővé kell tenni továbbá olyan preparátumok enzimmel történő előállítását, amelyek foszfolipidek hidrolíziséhez, így keményítőhidrolizátumok derítéséhez és sütési segédanyagok előállításához különösen jól alkalmazhatók.
A találmány ezt a feladatot egy elkülönített, kétláncú, foszfolipáz hasítási termékkel oldja meg, amely foszfolipázaktivitással rendelkezik, azonban lizofoszfolipázaktivitás nélküli. A találmány szerinti termék az Asperg/7/us-lizofoszfolipáz 2. azonosítási számú érett szekvenciájának elhasításával nyert két darabból áll, amelyeket legalább egy, redukáló körülmények között hasítható kötés kapcsol össze.
Meglepő módon azt találtuk, hogy az Aspergillus-bóí izolálható dezoxiribonukleinsavval (DNS) a DE-OS 196 20 649,9 számon nyilvánosságra hozott német szabadalmi bejelentés szerint transzformált mikroorganizmus nemcsak egy lizofoszfolipázt kódol, hanem meghatározott tenyésztési körülmények között egy foszfolipázba is processzálódik. A foszfolipáz így ugyanolyan primer struktúrával rendelkezik, mint a lizofoszfolipáz, mégis más a szekunder és a tercier struktúrája, és ezáltal eltérőek a fiziológiai tulajdonságai is. A megfelelő szekvencia a DE-OS 196 20 649,9 szerinti 1. azonosítási számú szekvencia. Egy további, foszfolipázt kódoló szekvenciát az Aspergillus niger-bő\ izoláltunk, ez az Aspergillus foetidus-bó\ származó homológ szekvenciától csak az aminosavak 6%-ában különbözik. Az Aspergillus niger-ből származó foszfolipáz és az Aspergillus foetidusból származó lizofoszfolipáz is 270 aminosavból áll, és a molekulatömegük egyaránt 36 000 Da (lásd az 1+2. azonosítási számú szekvenciát). A transzformált mikroorganizmusok előállítását illetően a DE-OS 196 20 649,9 számú német nyilvánosságrahozatali iratot kell figyelembe venni. Aspergillus-bó\ előállított foszfolipázt a technika állásához tartozó iratokban eddig még nem írtak le.
Nakaya és munkatársai az Eur. J. Biochem. 1990, 193 (1) 31-38. irodalmi helyen egy olyan fehérjét írnak le, amelynek a szekvenciája a foszfolipáz A2 szekvenciájához hasonló.
A foszfolipázok a lizofoszfolipázoktól a fehérjék kémiájában ismeretes módszerekkel elválaszthatók és nagyon tiszta állapotban nyerhetők. A tisztított foszfolipázok és lizofoszfolipázok összehasonlításakor a következő különbségeket találjuk.
Az Aspergillus foetidus-bó\ nyert foszfolipázok SDS-gél-elektroforézissel mért molekulatömege redukáló körülmények között 30 000 Da és a lizofoszfolipázoké kb. 36 000 Da, nem redukáló körülmények között azonban mindkét enzim molekulatömege kb. 36 000 Da. Redukáló körülmények között a foszfolipáz két láncra esik szét, amelyek közül a nagyobbat (30 000 Da) gélelektroforézissel ki lehet mutatni. A 6000 Da molekulatömegű kisebb darabot azonban, módszertani okokból, ugyanilyen gélelektroforézissel nem lehet kimutatni, de ezekből az adatokból arra lehet következtetni, hogy a foszfolipáz két peptidláncból áll. Ezt a feltételezést a fehérjeszekvenálás eredményei igazolják.
Az Aspergillus foetidus-bó\ nyert foszfolipáz fehérjeszekvenciája igen jó egyezést mutat a lizofoszfolipáz fehérjeszekvenciájával, mégis vannak különbségek. A foszfolipáznál 1:1 arányban két -NH2 végcsoport található, ezzel szemben a lizofoszfolipáznál csak egy. A foszfolipáz két -NH2 végcsoportja közül az egyik egy 6000 Da molekulatömegű peptidhez, míg a másik -NH2
HU 224 831 Β1 végcsoport 30 000 Da molekulatömegei pepiidhez tartozik. A kisebbik peptid az érett lizofoszfolipázfehérjének az 1-től a 44. aminosavig tartó részével egyezik meg (vő. a DE-OS 196 20 649.9 számú német nyilvánosságrahozatali irat szerinti 1. azonosítási számú szekvenciával), a 30 000 Da molekulatömegű fehérje szekvenciája a lizofoszfolipáz szekvenciájából a 45-től a 270. aminosavig tartó résznek felel meg (vő. a DE-OS 196 20 649.9 számú német nyilvánosságrahozatali irat szerinti 1. azonosítási számú szekvenciával).
Ez az észlelés arra mutat, hogy az Aspergillus foetidus-bó\ származó foszfolipáz a lizofoszfolipázfehérje processzálása révén keletkezhet, de az még nem világos, hogy a processzálás a sejtfalon kívül vagy belül játszódik-e le, és milyen módon megy végbe. A foszfolipáz és a lizofoszfolipáz közötti kapcsolatot az 1. ábra mutatja.
Eltérő a foszfolipáz és a lizofoszfolipáz izoelektromos pontja, a pH- és hőmérsékleti optimuma, és nagyon jelentős a különbség a hőstabilitásukban. A következő táblázat ezeket az értékeket egymás mellett tartalmazza.
1. táblázat
Az Aspergillus foetidus-bói származó foszfolipáz és lizofoszfolipáz tulajdonságainak összehasonlítása
Foszfolipáz Lizo- foszfolipáz
Molekulatömeg (SDS-gél, red.) 30 000 Da 36 000 Da
Molekulatömeg (SDS-gél, nem red.) 36 000 Da 36 000 Da
Izoelektromos pont pH 4,3 pH 4,2
Optimális hőmérséklet 50 °C 55 °C
Optimális pH 3-4 4,5
pH-stabilitás (1 óra 60 °C-on) 3,5 4,5
>75% maradékaktivitás 10% maradékaktivitás
Abban, hogy az adott mikroorganizmusokból lizofoszfolipáz helyett foszfolipázt kapjunk, a fermentációs körülmények lényeges szerepet játszanak. A foszfolipáz képződése szempontjából fontos, hogy a tenyésztést savas vagy gyengén bázikus közegben végezzük. A pH értéke ennek megfelelően a 2 és 9 közötti tartományban, előnyösen 3 és 8 között van. Ilyen körülmények között nagyrészt foszfolipáz képződik. Az előállítás a következőképpen történik. Először egy alkalmas gazdaszervezetet választunk ki a foszfolipáz lehetőleg egyszerű előállítására. Bár lehetséges gazdaszervezetként sokféle penészgomba, így például a termofil Humicola, Thermomyces és Mucor nemzetségek, a Rhizopus, Absidia, Chaetomium, Trichoderma, Thielavia, Penicillium és Cephalosporium nemzetségek képviselője számításba jön, előnyösen mégis az Aspergillus nemzetség fajait alkalmazzuk. A találmány szerinti plazmidokkal történő transzformáció után olyan transzformánsok izolálhatok, amelyek a gazdaszervezetekhez képest nagy mennyiségben termelnek foszfolipázt. Transzformált gazdaszervezetként előnyös egy Aspergillus oryzae, Aspergillus sojae, Aspergillus niger, Aspergillus awamori, Aspergillus foetidus, Aspergillus ellipticus, Aspergillus aculeatus, Aspergillus carbonarius vagy Aspergillus phoenicis fajhoz tartozó Aspergillus törzs vagy egy Trichoderma viride, Trichoderma longibrachiatum vagy Trichoderma reesei fajhoz tartozó Trichoderma törzs.
Egy olyan transzformánst, amelyet a gazdatörzsnek egy szelekciós plazmiddal, előnyösen pAN7-1-gyel, p3SR2-vel vagy pSTA10-zel és egy expressziós plazmiddal, előnyösen pKC3-mal, pKC9-cel, pKC12-vel vagy pKCN2-vel történő kotranszformációjával állítottunk elő, a gazdatörzs számára szokásos tápközegben tenyésztünk; ez a tápközeg legalább egy felhasználható szénforrást, így például kukoricadarát, keményítőt, keményítődextrint és legalább egy felhasználható szerves nitrogénforrást, így például feltárt kukoricáiét, élesztőautolizátumot, szójalisztet, szójafehérjét vagy -peptont önmagában vagy szervetlen nitrogénforrásokkal, így ammóniumsókkal vagy nitrátokkal kombinálva tartalmaz, és sterilizálás után a tápközeg pH-ját savasra vagy enyhén lúgos értékre állítjuk be. A tápoldatot kiegészíthetjük olyan anyagokkal, amelyek a foszfolipáz képződését nagymértékben megnövelik. A szójából származó foszfolipidek tartalmaznak ilyen anyagokat, de más jellegű anyagok, mint például polioxi-etilén-éterek is szóba jöhetnek. A sterilizált tápoldatnak a transzformáns konídiumával vagy vegetatív micéliumával történő beoltása után levegőbevezetés mellett, 20 °C és 60 °C közötti, előnyösen 25 °C és 40 °C közötti hőmérsékleten a transzformáns növekszik, és a találmány szerinti foszfolipázt termeli. A tenyésztés alatt a tenyészet pH-értékét sav vagy lúg hozzáadásával korrigáljuk úgy, hogy a pH a savas és a gyengén lúgos közötti tartományban, előnyösen 3 és 8 között maradjon. 48-120 órás tenyésztési idő után a foszfolipázt úgy nyerhetjük ki, hogy az oldhatatlan táptalajmaradékot és a biomasszát elválasztjuk, ez általában szűréssel történik, majd a szűrletet szokásos módszerekkel, például ultraszűréssel koncentráljuk. A koncentrátumot (retentátumot) növényi olajok nyálkátlanítására vagy foszfolipidek kezelésére használhatjuk. A foszfolipázt továbbá élelmiszerek Teológiai tulajdonságainak javítására is alkalmazhatjuk.
A következő mikroorganizmusok vannak deponálva a Mikroorganizmusok és Sejtkultúrák Német Gyűjteményében (DSM), Németország, 38 124 Braunschweig, Mascherorder Weg 1B, a Budapesti Szerződés rendelkezéseinek megfelelően:
A. oryzae RH 3745: letétbehelyezési szám DSM 11 283 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 11. 11.)
A. ellipticus RH 3886: letétbehelyezési szám DSM 11 284 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 11. 11.)
A. foetidus RH 3046: letétbehelyezési szám DSM 10 652 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 04. 24.)
E. coli DH5a pKC3: letétbehelyezési szám DSM 10 653 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 04. 24.)
HU 224 831 Β1
E. coli DH5a pKC9: letétbehelyezési szám DSM 10 654 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 04. 24.)
E. coli DH5a pKC12: letétbehelyezési szám DSM
655 (a letétbe helyezés ideje: 1996. 04. 24.)
E. coli DH5a pKCN2: letétbehelyezési szám DSM
352 (a letétbe helyezés ideje: 1996.12. 23.)
A. niger RH 3909: letétbehelyezési szám DMS 11 353 (a letétbe helyezés ideje: 1996.12. 23.)
A találmányt közelebbről az alábbi példák és ábrák világítják meg.
Az 1. ábra az Aspergillus-bó\ származó lizofoszfolipázgének processzálását és a foszfolipáz keletkezését mutatja.
A 2. ábrán a pKCN2 plazmid szerkezete látható.
1. példa
A dKCN2 expressziós vektor konstrukciója Lizofoszfolipázgének izolálása A. niger NRRL3-ból Az A. niger NRRL3 kromoszomális DNS-ét a Hynes
M. J. és munkatársai által a Mól. Cell. Bioi. 3, 1430-1439 (1983) irodalmi helyen leírtak szerint izoláljuk. (Az A. niger NRRL3 mikroorganizmus az Agricultural Research Service Culture Collection gyűjteményben
NRRL3 számon, az American Type Culture Collection gyűjteményben ATCC 9029 számon férhető hozzá.)
A kapott nagy molekulájú DNS-t Sau3AI-vel részlegesen hidrolizáljuk és szacharózsűrűséggradiens-centrifu5 gálással nagyság szerint frakcionáljuk. A 9-20 kb nagyságú DNS-molekulákat SamHI/EcoRI enzimekkel hidrolizált EMBL3-DNS-be inszertáljuk és in vitro bepakoljuk.
A kromoszomális lizofoszfolipázgének azonosítására egy lambda-EMBL3-génbankban a pKC1/36 plazmidból a HindWISaft cDNS-fragmentumot alkalmazzuk hibridizálási szondaként. A pKC1/36 plazmid tartalmazza az A. foetidus RH 3046-ból izolált lizofoszfolipáz-cDNS-t.
A hibridizálás és a többszörös szétválasztás után két pozitív kiónt lehet azonosítani. Az 1. számú klónból a fág-DNS-eket kipreparáljuk és BamHI-gyel hidrolizáljuk. Ez a Southern-hibridizálás szerint kb. 9 kb-nál mutat pozitív jelet. A SamHI-fragmentet pUC18-ba klónozzuk, és a kapott plazmidot, amely a teljes kromoszomális lizofoszfolípázgént tartalmazza, pKCN-nek nevezzük.
A pKCN2 expressziós vektor konstrukciója
A pKCN2 plazmidba a lizofoszfolípázgént az A. oryzae alfa-amiláz-promoter és az A. nidulans trpC-terminátor hatása alatt építjük be.
A lizofoszfolipázgén izolálása a pKCN plazmidból
PCR-módszer segítségével történik. Két oligonukleotidprimert alkalmazunk, amelyek szekvenciája a következő:
KC29:
5’-GGA ATT CAC CTG CTA ACC ATG TTC TCT GGA GGG TTT GGA GTG-3’ SspMI Met (3. azonosítási számú szekvencia)
KC43
5’-CG GGATCC AAG CTA TAG CAG ACA CTC TGA AAT TG-3’
BamHI AMB (4. azonosítási számú szekvcencia)
A polimeráz-láncreakcióhoz egy reakcióedényben 0,1 ml 20 mM trisz-HCI-ot, amelynek pH-ja 8,4, 50 mM KCI-ot, 1,5 mM MgCI2-ot, 0,2 mM dNTP-t (amely dATP-ből, dCTP-ből, dGTP-ből és dTTP-ből 40 0,2-0,2 mM-t tartalmaz), 50-50 pmol KC 29-et és KC43-at, 1 ng pKCN-t mátrixként és 2,5 U Tag-polimerázt keverünk össze. Az elegyet 20 cikluson keresztül reagáltatjuk (94 °C, 40 s; 40 °C, 1 perc; 72 °C, perc). A reakció befejezése után az amplifikált fragmentumot tisztítjuk, BspMI-gyel és BamHI-gyel hidrolizáljuk és az Λ/col/BamHI-gyel hasított plazmidba inszertáljuk. A pKE2 plazmid tartalmazza az A. oryzae alfa-amiláz-promotert és az A. nidulas frpC-terminátort.
(A pKE2 plazmidot a pKCN2 plazmidból állíthatjuk elő az ebben a példában leírt módon a foszfolipázgén kimetszésével.)
A pKCN2 plazmid szerkezetét restrikciós analízissel és az azt követő szekvenálással igazoljuk.
2. példa
Transzformációs módszer az Aspergillus és a Trichoderma reesei törzsekhez (A Trichoderma reesei törzs többek között ATCC 13 631 számon férhető hozzá.)
A transzformálandó gombatörzs kb. kéthetes Petricsésze-tenyészetéből spóraszuszpenziót állítunk elő kb. 10 ml 0,85%-os NaCI-oldatban, egy spatula segítségével történő lehalászással. Négy, 1 literes rázólombik mindegyikébe 100-100 ml, 1% keményítőextraktumot tartalmazó Czapek-Dox-minimáltáptalajt (Oxoid) mérünk, mindegyiket 1 ml spóraszuszpenzióval oltjuk be, és kb. 16 órán keresztül, 28 °C hőmérsékleten, 45 120 fordulat/perc fordulatszámú rázógépen inkubáljuk. A micéliumot mind a négy rázólombikban papírszűrőn elválasztjuk, és kb. 50 ml MP-pufferrel (1,2 M MgSO4 10 mM foszfátpufferben, pH 5,8) leöblítjük. A puffer átfolyása után a nedves micéliumot kapjuk, amelynek tö50 mege általában 3-5 g.
A nedves micéliumhoz, egy grammjára számítva, 5 ml MP-puffert, 120 mikroliter Novozym-oldatot [1 g Novozym® 234 (Novo Nordisk) 6 ml MP-pufferben] és 25 mikroliter béta-glükuronidázt (Sigma) adunk. A mi55 céliumszuszpenziót 5 percre jeges vízbe állítjuk. Ezután 60 mikroliter marhaszérumalbumin-oldatot (0,2 g marha-szérumalbumin 4 ml MP-pufferben, sterilre szűrve) adunk hozzá, majd a rendszert gyengén rázva 30 °C-on inkubáljuk. A protoplasztok képződését mik60 roszkóppal vizuálisan követjük. Amikor már nem ta4
HU 224 831 Β1 pasztaljuk a protoplasztképződés jelentős növekedését, a reakciót megszakítjuk a protoplasztok összegyűjtése céljából. Ez a helyzet általában 3-5 óra eltelte után következik be.
A protoplasztszuszpenziót a még jelen lévő durva micéliumrészek elválasztására egy MP-pufferrel átitatott üveggyapot szűrőre visszük és centrifugacsövecskékbe vezetjük. A csövecskék felső felébe 600 mM szorbitot, 100 mM trisz/HCI-ot (pH 7) rétegzünk. A csöveket 10 percig 2500 g-n centrifugáljuk. A protoplasztokat a közbenső rétegből elválasztjuk, és 1 M szorbit, 10 mM trisz/HCI (pH 7,5) oldattal felvesszük. Ezután a protoplasztokat két alkalommal STC-pufferrel (1 M szorbit, 10 mM trisz/HCI, pH 7,5, 10 mM CaCI2) 1500 g-n centrifugálva mossuk, és végül 1 ml STC-pufferrel felvesszük.
Az A. oryzae transzformálása céljából 300 mikroliter protoplasztszuszpenziót, kb. 10 mikrogramm p3SR2-t, mint szelekciós plazmidot, és az adott plazmid 10 mikrogrammját az LPL expressziója céljából 25 mikroliter 10 mM trisz/HCI, 8-as pH-jú oldathoz adjuk és 10 percig 0 °C-on inkubáljuk. Ezután ugyanebből a plazmidelegyből még egyszer 25 mikrolitert és 400 mikroliter PEG-oldatot [60% polietilénglikol 6000 (Fluka) 10 mM trisz/HCI-ban, pH 7,5, 50 mM CaCI2j adunk hozzá, a komponenseket nagyon óvatosan összekeverjük, és a reakcióelegyet 5 percig szobahőmérsékleten inkubáljuk. 600 mikroliter PEG-oldat hozzáadása és összekeverés után a reakcióelegyet további 20 percig szobahőmérsékleten inkubáljuk. Ezt követően a reakcióelegyet kb. 9 ml acetamid-lágyagarral, (minimáltáptalaj egyetlen nitrogénforrásként 10 mM acetamiddal, 1 M szacharóz, 0,6 tömeg% agar) 45 °C-on összekeverjük és 4 Petrí-csészébe szétosztjuk ugyanezzel a táptalajjal, amely azonban 1,5 tömeg% agart (Oxoid) és 15 mM CsCI-ot tartalmaz. A csészéket 28 °C-on inkubáljuk. 6-10 nap elteltével a gyorsan növekvő kolóniákat (a transzformánsokat) szacharóz nélküli acetamidközegre átoltjuk, kétszer egyedi spóratelepek formájában tisztítjuk, és végül teljes értékű közegre, például burgonya-dextróz-agarra visszük át.
Az A. niger, az A. awamori (többek között ATCC 14 331 számon férhető hozzá), az A. japonicus (többek között ATCC 1042 számon férhető hozzá) vagy az A. foetidus törzsek transzformánsait hasonlóképpen előállíthatjuk a p3SR2 plazmiddal. A transzformációt azonban előnyösen a pAN7-1 plazmiddal végezzük. A protoplasztok előállítását és a DNS-plazmid hozzáadását a fentiekben a p3SR2-re leírtakkal analóg módon végezzük. Az acetamid-lágyagar hozzáadása helyett azonban a teljes transzformációs elegyet kb. 45 °C-ra lehűtött 100 ml Czapek-Dox-minimáltáptalajhoz (Oxoid) adjuk, amely 100 mikrogramm/ml Hygromycin B-t, 1,5 tömeg% agart (Oxoid) és 1 M szacharózt tartalmaz, majd a komponenseket óvatosan összekeverjük. Az elegyet ezután 10 ml-es adagokban Petri-csészékbe osztjuk szét, amelyek mindegyikébe előzetesen szilárd alsó rétegként 10 ml Czapek-Dox-minimáltáptalajt (Oxoid) mértünk be, amely 1,5 tömeg% agart (Oxoid) tartalmaz, de Hygromycint és szacharózt nem. A felső agarréteg megdermedése után a Petri-csészéket 30 °C és 37 °C közötti hőmérsékleten inkubáljuk. A Hygromycin B-vel szemben rezisztens transzformánsokat kb. 3-10 nap után le lehet oltani, és a rezisztencia felülvizsgálatára Czapek-Dox-minimáltáptalajra (Oxoid), amely 50 mikrogramm/ml Hygromycin B-t és 1,5 tömeg% agart (Oxoid) tartalmaz, át lehet vinni.
Az A. sojae (többek között ATCC 11 906 számon férhető hozzá) és az A. phoenicis (többek között ATCC 11 362 számon férhető hozzá) transzformációjára egy harmadik szelekciós alapelvet alkalmazunk, mivel ezeknek a törzseknek a fenti fajai fel tudják használni az acetamidot, és ugyanakkor Hygromycin B-re rezisztensek. Kloráttartalmú táptalajon szelekcióval olyan mutánsok izolálhatok, amelyeknek a nitrát-reduktáz-génjük (niaD) hibás, és ezért ezek már nem képesek egyetlen nitrogénforrásként nitrátot tartalmazó táptalajon növekedni [Cove D. J. (1976) Heredity 36, 191-203], A pSTA10 plazmiddal végzett transzformáció által [Unkles S. E. és munkatársai, (1989) Mól. Gén. Génét. 218, 99-104] amelyen a nitrát-reduktáz-génre vonatkozó intakt információ megtalálható, a hiba kiküszöbölődik, így a transzformánsok egyetlen nitrogénforrásként nitrátot tartalmazó táptalajon is növekednek, míg a nem transzformáit sejtek növekedése elmarad.
Ez a szelekciós módszer az A. sojae mellett más Aspergillus fajoknál ugyanígy alkalmazható; a niaDmutánsok előállítása azonban mindenképpen egy további műveleti lépést jelent a Hygromycin-B-rezisztencia vagy az acetamidfelhasználás alkalmazásához képest.
3. példa
A PL-t kiválasztó transzformánsok előállítása
Az A. niger, az A. Awamori, az A. foetidus, az A. carbonarius és az A. ellipticus transzformánsai Ezeknek az Aspergillus fajoknak a protoplasztjait az
1. példában leírt módszer szerint állítjuk elő a pAN7-1 plazmiddal és a pKC3, pKC9, pKC12 vagy pKCN2 plazmidok valamelyikével a 2. példa szerint végzett kotranszformálással. [Például ATCC 14 331 számon hozzáférhető A. awamori törzset és ATCC 1025 számon hozzáférhető A. carbonarius törzset alkalmazunk. A pAN7-1 plazmid a Gene, 56, 117-124 (1987) publikációból ismert.] A protoplasztok regenerálására a transzformációs elegyet a fent leírtak szerint Hygromycinre rétegezzük, a transzformánsokat a regenerációs lemezről izoláljuk, tisztítjuk, és a következő tápoldat alkalmazása mellett rázókísérletben a PL-termelés szempontjából vizsgáljuk:
Maltodextrin 3,75%
Feltárt kukoricapor 3,0%
KH2PO4 1,0%
K2HPO4 0,7%
Triton X-100 0,10% vezetékes vízben 30 percig, 121 °C-on sterilizálva. Ehhez a rázókultúra biomasszáját leszűrjük, és a kultúraszűrletben a foszfolipázaktivitást (PLU) mérjük.
HU 224 831 Β1
A transzformánsok a gazdatörzsnél lényegesen nagyobb foszfolipázaktivitást mutatnak.
Az A. oryzae és az A. aculeatus transzformánsai A protoplasztok előállítását és a transzformálást ezeknél a fajoknál is a 2. példában leírt módon végezzük. (Például az ATCC 16 872 számon deponált A. aculeatus törzset használjuk.) A protoplasztokat a p3SR2 plazmiddal és a pKC3, pKC9, pKC12 vagy a pKCN2 plazmidok valamelyikével kotranszformáljuk. [A p3SR2 plazmid az EMBO J„ 4(2), 475-479 (1985) publikációból ismert, előállításához az említett publikációban hivatkozott Mól. Cell. Bioi., 3(8), 1430-1439 (1983) publikációban leírt módszert alkalmazhatjuk.] A protoplasztok regenerálására a transzformációs elegyet a fentiek szerint az egyetlen nitrogénforrásként acetamidot tartalmazó táptalajra rétegezzük, majd a transzformánsokat a regenerációs lemezről izoláljuk, tisztítjuk, és rázókísérletben az alábbi tápoldat felhasználásával a PL termelésére vizsgáljuk:
Maltodextrin 3,75%
Feltárt kukoricapor 3,0% (NH4)2HPO4 0,5%
Triton X-100 0,10% vezetékes vízben 30 percig, 121 °C-on sterilizálva.
Az A. sojae és az A. phoenicis transzformánsai
Az A. sojae RH 3782 n/'aD22 és az A. phoenicis RH 3828 niaD törzseket, amelyek az A. sojae RH 3782 és az A. phoenicis RH 3828 törzseknek a Cove (1976) által leírt módon előállított mutánsai, az alábbi tápoldatban tenyésztjük (az A. phoenicis RH 3828 törzs azonos az ATCC 12 847 számú A. phoenicis törzzsel, az A. sojae RH 3782 törzs az ATCC törzsgyűjteményben szereplő A. sojae törzsek mutánsa):
Glükóz (MERCK) 2%
Malátaextraktum (OXOID) 0,5%
Bacto-Pepton (DIFCO) 0,025%
Ionmentes víz, a pH-értéke 5,0-re beállítva; sterilizálás: 30 percig 121 °C-on.
A micéliumból az 1. példa szerinti metodikával kinyerjük a protoplasztokat, és ezeket a pSTA10-zel, mint szelekciós plazmiddal és a pKC3, pKC9 vagy a pKC12 plazmidok egyikével kotranszformáljuk. [A pSTA10 plazmid a Gene, 78, 157-166 (1989) publikációból ismert.] A protoplasztok regenerálására a transzformációs elegyet 9 ml lágy agarral (ozmotikusán stabilizálva) keverjük össze, amelynek összetétele a következő:
0,1 M Na-foszfát-puffer pH 6 15 ml
M szacharóz (MERCK) 10,28 g
Millipore vízzel 29,1 ml-re kiegészítve
Agár (OXOID) 0,18 g (=0,6%)
Az elegyet 30 percig 121 °C-on sterilizáljuk, ezután sterilen hozzáadunk sóoldatot (7.14.2) 0,6 ml
M NaNO3-oldatot 0,3 ml és szétosztjuk négy olyan agarrétegre, amelyek összetétele ugyanilyen, azzal az eltéréssel, hogy 1% agart tartalmaznak. 6-10 napos, 37 °C-on végzett inkubálás után a transzformánsokat az agarrétegekről izoláljuk, nitrát-szacharóz-agaron kikenéssel tisztítjuk. Transzformánsok sokaságát kapjuk egyetlen nitrogénforrásként nitrátot tartalmazó táptalajon végzett szelekcióval, és az azt követő tisztítással, majd rázólombikban az alábbi tápoldatot alkalmazva a PL termelését vizsgáljuk:
Maltodextrin 3,75%
Feltárt kukoricapor 3,0%
KH2PO4 1,0%
K2HPO4 0,7%
Triton X-100 1,0% vezetékes vízben 30 percig, 121 °C-on sterilizálva.
A PL-t nem, vagy csak kismértékben termelő transzformánsok és a nem transzformált gazdatörzsek mellett olyan transzformánsokat is találunk, amelyek a tenyészet szűrletében jelentősen megnövekedett PL-aktivitást mutatnak. Ezek a kotranszformánsoknak nevezett törzsek alkalmasak az enzimek előállítására. A 2. táblázat a transzformánsok PL-termelésének jellemző eredményeit mutatja a nem transzformált gazdák PL-termelésével szembeállítva.
2. táblázat
A gazdatörzsek és transzformánsok PL-képzésének összehasonlítása
Törzs, illetve transzformáns Relatív PL-aktivitás
A. oryzae RH 3745 100
A. oryzae RH 3745 p3SR2 pKC9 3000-4000
A. oryzae RH 3745 p3SR2 pKCN2 2000-2500
A. sojae RH 3782 niaD22 100
A. sojae RH 3782 niaD22 pSTA10 pKC9 500-700
A. foetidus RH 3046 100
A. foetidus RH 3046 pAN7-1 pKC9 1000-1500
A. phoenicis RH 3828 niaD 100
A. phoenicis RH 3828 niaD pSTA10pKC9 400-600
A. ellipticus 100
A. ellipticus pAN7-1 pKC12 800-900
A. heteromorphus niaD 100
A. heteromorphus niaD pSTA10 pKC9 900-1000
A. carbonarius 100
A. carbonarius pAN7-1 pKC9 400-600
A. aculeatus 100
A. aculeatus p3SR2 pKC9 900-1200
A. niger 100
A. niger pAN7-1 pKC12 700-1000
A. awamori 100
A. aivamori pAN7-1 pKC12 600-800
A fenti táblázatban szereplő A. heteromorphus niaD törzs az ATCC 12 064 számú A. heteromorphus törzs niaD mutánsa, amelynek a nitrát-reduktáz-génje (niaD)
HU 224 831 Β1 hibás, tehát nem csupán nitráton, mint egyedüli nitrogénforráson növekszik. A mutáns előállítása szerepel a
2. példában, és a Heredity, 36, 191-203 (1976) publikációban leírt módon történik.
4. példa
A PL tisztítása az A. foetidusból
Az A. foetidus RH 3788 2080 ml-es tenyészetretentátját az elektromos vezetőképesség megállapítása céljából 3520 ml desztillált vízzel hígítjuk, és 160 ml 1 M NaOH-oldattal a pH-t 7,0-re állítjuk. A minta térfogata 5760 ml és vezetőképessége 7,8 mS/cm. (Az A. foetidus RH 3788 törzs az A. foetidus RH 3046 törzs mutánsa, ez utóbbi DSM 10 652 számon 1996. április 24-én lett letétbe helyezve.)
A következő lépésben ioncserés kromatográfiát végzünk DEAE-fraktogélen (MERCK). Ehhez 5760 ml enzimoldatot négy részletben (mindegyik 1440 ml) egy DEAE-fraktogél-oszlopra viszünk (magassága 278 mm, átmérője 100 mm). Az oszlopot A pufferrel (20 mM foszfátpuffer Na2HPO4/KHPO4-ból készítve, amelynek a pH-értéke 7,0, ehhez hozzáadva 15 mM NaCI). Az elúciót az A puffertől a B pufferig (A puffer+1 M NaCI) folyamatosan változó összetételű gradienseleggyel végezzük. 70 ml/perc sebességgel eluálunk, és 350 ml-es frakciókat gyűjtünk.
A frakciókat a PL jelenlétére vizsgáljuk. Ez a PL-aktivitás mérésével történik. Egy PL-egység a definíció szerint az az enzimmennyiség, amely a lecitint 3,5 pH-jú vizes oldatban 40 °C-on 1 mikromól/perc sebességgel hidrolizálja.
A PL-aktivitás mérését az alábbiak szerint végezzük:
Szubsztrát: 1 g Epikuron 200-at (foszfatidil-kolin, gyártó Lucas Meyer), 100 g desztillált vizet és 5 ml 0,32 M CaCI2-oldatot Ultra Turraxszal homogenizálunk.
Analízis: 10 ml szubsztráthoz 10 ml 1%-os Triton X-100 oldatot (gyártó Fluka) és 5 ml 0,0033 M citromsav-monohidrát-oldatot adunk, és az elegyet 10 percig 40 °C-on temperáljuk; a pH 3,4 és 3,5 közé áll be. 0,1 ml enzimoldatot adunk hozzá, és a keveréket 10 percig 40 °C-on inkubáljuk. Az analizálandó minta enzimkoncentrációja nem lehet 2,5 U/g feletti. A reakcióidő elteltével az elegyet 0,01 M KOH-dal 10,0 pH-értékig visszatitráljuk, az első 5 ml-t gyorsan adjuk hozzá, majd csökkentjük a titrálási sebességet, hogy elkerüljük a túltitrálást.
A vakpróba fogyásának méréséhez (BW) az enzimet 15 percig 95 °C hőmérsékleten hevítjük és inaktiváljuk. Lehűlés után ugyanúgy hígítjuk, mint a mérendő oldatot - ennek fogyása HW -, és a továbbiakban is úgy járunk el, mint a mérendő mintával.
Számítás:
HW (ml)-BW (ml)x0,01 M*1000 =PLU/g, pH 3,5=-—-L-J—t10 perc*0,1 ml*enzimkonc. g/ml
A 195 27 274.9 számú, 1995. július 26-i német szabadalmi bejelentésben a foszfolipázt lecitázegységekben, LU/g-ban adják meg. Egy lecitázegység az az enzimmennyiség, amely 40 °C-on, 8-as pH-nál tojássárgájából 1 perc alatt 1 μΜ zsírsavat szabadít fel. 1 LU/g
8-as pH-érték mellett 108 PLU/g-nak felel meg, 3,5-es pH-érték mellett.
A PL kb. 0,11 M NaCI-nál eluálódik. A négy részlet kromatografálásakor kapott PL-tartalmú frakciókat egyesítjük (8950 ml), és egy CH2A-koncentrátorral gyártó az Amicon cég, Hollow-Fiber MG10 000 patronok - 2570 ml térfogatra töményítjük. Ehhez a mintához keverés közben 782 ml 3 M ammónium-szulfát-oldatot adunk (a minta most 0,7 M ammónium-szulfátot tartalmaz).
A következő lépésben a 3352 ml-es mintát felvisszük egy Phenyl-Sepharose 6 Fást Flow, alacsony szubsztitúciós fokú oszlopra (gyártó Pharmacia, magasság 215 mm, átmérő 100 mm). Az oszlopot C pufferrel (20 mM foszfátpuffer, pH 7,0+0,5 M ammónium-szulfát) utánamossuk, és a C puffertől a D pufferig (20 mM foszfátpuffer, pH 7,0) folyamatosan változó összetételű gradienseleggyel eluáljuk. A PL-tartalmú frakciókat egyesítjük (790 ml), a koncentrátorral (lásd fent) betöményítjük, és a D pufferrel szemben dializáljuk; a kapott minta térfogata 150 ml.
Egy további lépésben a mintát öt 30 ml-es részletben egy Mono Q (Pharmacia, 6,3 ml) anioncserélő-kromatográfiás oszlopra visszük. Az oszlopot a D pufferrel öblítjük, és a D puffertől a B pufferig folyamatosan változó összetételű gradienseleggyel eluáljuk, a PL kb. 200 mM NaCI-nál eluálódik.
A PL-tartalmú frakciókat egyesítjük, és PD-10-oszlopon (Pharmacia) E pufferrel szemben (20 mM foszfátpuffer, pH 7,1) dializáljuk. A minta térfogata 24 ml.
A PL végső tisztítása MONO P HR5/20-on (kromatofokuszálás)
A 24 ml mintát (lásd fent) MONO P-oszlopra (magasság 200 mm, átmérő 5 mm) visszük. Az oszlopot E pufferrel utánamossuk. A mintát F pufferrel (Polybuffer 74, gyártó Pharmacia, 1:10 arányban desztillált vízzel hígítva és 1 M HCI-dal pH=4-re állítva) eluáljuk. A PL az oszlopról 13-szoros oszloptérfogat F puffer áthaladása után eluálódik.
A tisztított fehérje az SDS-gél-elektroforézis során kb. 31 000 Da molekulatömegnél mutat egy egységes sávot. Az izoelektromos pont kb. 4,3-es pH-nál van. Az ily módon tisztított fehérjét használjuk szekvenálásra. Az így izolált foszfolipázt antitestek előállítására alkalmazzuk nyulakban. Az immunizálást a Harlowe és Lane által leírt standardeljárás szerint (Ed. Harlowe és Dávid Lane, Antibodies, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988) végezzük. A kapott antiszérumot közvetlenül felhasználhatjuk a fehérjetranszferhez (a „Western blots”-hoz, amit szintén Harlowe és Lane írt le a fenti irodalmi helyen), ahol ez specifikusan a foszfolipázsávot jelzi.
5. példa
Szójaolaj nyálkátlanítása
200 g nedvesen nyálkátlanított, 160 ppm maradék foszfáttartalmú szójaolajat gömblombikban 40 °C-ra melegítünk. Hozzáadunk 10 g vizet, amely 20 mg citromsavat és 100 egység foszfolipázt tartalmaz. Az enzim egy olyan, foszfolipázt kiválasztó Aspergillus niger-transzformáns 3. példa szerinti fermentációjából
HU 224 831 Β1 származik, amely tartalmazza a foszfolipázszerkezetet.
Az aktivitást 3,5-es pH-nál határozzuk meg. Ehhez 10 ml 1%-os foszfatidil-kolint (Epikuron 200, Lucas Meyer), amely 0,5 ml 0,32 M CaCI2-ot tartalmaz, 10 ml Triton X-100 oldattal és 5 ml 0,0033 M citromsav-mo- 5 nohidrát-oldattal összekeverünk, és az elegyet 10 percig 40 °C-on temperáljuk. Ezután 0,1 ml megfelelően hígított enzimoldatot adunk hozzá, és 10 percig 40 °C-on inkubáljuk, majd 0,01 M KOH-oldattal pH
10-re titráljuk. Levonjuk a vakpróbára kapott értéket (95 °C-on 15 percig melegített enzimoldat), és a számítást a 3. példa szerint végezzük.
A gömblombik tartalmát egy külső forgószivattyúval intenzíven diszpergáljuk. Ennek során a lombik tartalmát körülbelül percenként egyszer áramoltatjuk át. A vizes fázis részecskemérete 1 μ alatti. Kétórás időközönként mintát veszünk, és megvizsgáljuk a foszfortartalmat. A következő értékeket kapjuk:
Idő 0 2 4 6 8 (órákban)
Foszfortartalom (ppm-ben) 160 24 12 7 3
Azokban a kísérletekben, amelyek során a fentiek szerint jártunk el, de az enzimpreparátum helyett egy megfelelő savófehérjét, tehát nem enzimatikus fehérjét vagy kereskedelmi lizofoszfolipázt (G-Zyme, gyártó Enzyme Biosystems, USA, 1000 lizofoszfolipázegység 20 200 ml szójaolajban) alkalmaztunk, a foszfortartalmat nem lehetett 80 ppm alá csökkenteni.
6. példa
A tésztaminőség javítása 25
A következő sütési kísérletet a találmány szerinti foszfolipázzal hajtottuk végre. 100 tömegrész lisztből, tömegrész sóból, 3 tömegrész sütőélesztőből, 58-60 tömegrész vízből és 40-50 ppm aszkorbinsavból (a tészta tömegére vonatkoztatva) készítettünk 30 tésztát egy spiráltésztagépen (Kemper gyártmány), percig az alacsonyabb és 6 percig a magasabb fokozaton. A tésztakészítés megkezdése előtt hozzáadtuk a vízhez az enzimet és az egyéb adalékokat. A tészta hőmérséklete 23 °C és 25 °C közötti volt.
A tésztát 20 percig pihentettük, majd szabadon szakított fehér kenyér előállítására 350 g-os darabokra osztottuk, formáztuk, 70, illetve 90 percig 32 °C-on 80% relatív nedvességtartalom mellett kelesztettük, és 32 percig 230 °C-on sütöttük. A 3. táblázatban a kenyér térfogatát adjuk meg a hozzáadott enzimmennyiség függvényében. A sütési eredmények azt mutatják, hogy a foszfolipáz hozzáadása által nőtt a sütési térfogat, és javult a kenyérbél szerkezete. A tésztára gyakorolt stabilizálóhatás a hosszabb kelesztési idő (90 perc) mellett adódó jobb sütési eredményekben mutatkozik meg.
3. táblázat Sütési kísérlet
Adalék/100 kg liszt Sütési térfogat% ( 70 perc kelesztés) Sütési térfogat% (90 perc kelesztés) Pórusszerkezet
Nincs adalék 1000 cm3 100 1050 cm3 100 egyenetlen
Gombaamiláz 1000 SKB 1050 cm3 105 1130 cm3 107 egyenetlen
Gombaamiláz 1000 SKB + Foszfolipáz 12 500 PLU 1100 cm3 110 1225 cm3 117 egyenetlen
Gombaamiláz 50 000 SKB 1225 cm3 122 1275 cm3 121 egyenletes
Gombaamiláz 50 000 SKB + Foszfolipáz 12 500 PLU 1275 cm3 128 1365 cm3 130 egyenletes
Gombaxilanáz 12 000 UXYL 1325 cm3 133 1375 cm3 131 egyenletes
Gombaxilanáz 12 00 UXYL + Foszfolipáz 12 500 PLU 1375 cm3 138 1475 cm3 140 egyenletes
HU 224 831 Β1
Az 1. azonosítási számú szekvencia adatai (i) A szekvencia jellemzői:
(A) Hossz: 1368 bázispár (B) Fajta: nukleotid (C) Szálforma: kétszálú (D) Topológia: lineáris (ii) A molekula fajtája: genom-DNS (iii) Hipotetikus: nem (iv) Antiszensz: nem (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs: intron (B) Helyzete: 222...275 (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs. intron (B) Helyzet: 442...486 (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs: intron (B) Helyzet: 824...874 (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs: CDS (B) Helyzet: kapcsolás (140...221, 276...441, 487...823, 875...1180) (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs: mat_peptid (B) Helyzet: 221...1180 (ix) Ismertetőjel:
(A) Név/kulcs: sig_peptid (B) Helyzete: 140...220 (xi) Szekvencialeírás: 1. azonosítási számú szekvencia
ATGGGGAATT GGGGTGGGTA ATATGATACA GGTATAAAAG GGGGCTCGGA GGTGCAGTTG 60
GATAGAAGCA TTGTGTGTGC ATTGCAGCAG TCCGTTGGTC TCACGTCTCT GGTTGCCTCG 120
ATTGTATATA TACTGCAGG ATG TTC TCT GGA CGG TTT GGA GTG CTT TTG ACA 172
Met Phe Ser Gly Arg Phe Gly Val Leu Leu Thr
-27 -25 -20
GCG CTT GCT GCG CTG TGT GCT GCG GCA CCG ACA CCA CTT GAT GTG CGG A 221
Ala Leu Ala Ala Leu Cys Ala Ala Ala Pro Thr Pro Leu Asp Val Arg
-15 -10 -5
GTAGGTGTGC CTGATTTGAA GTGGCTGGAT AGCACTGATG AAGGTTTTGA ATAG GT 277
Ser
GTC Val TCG Ser ACT Thr TCC Ser 5 ACG Thr TTG Leu GAT Asp GAG Glu CTG Leu 10 CAA Gin TTG Leu TTC Phe TCG Ser CAA Gin 15 TGG Trp TCT Ser 325
GCC GCA GCT TAT TGC TCG AAC AAT ATC GAC TCG GAC GAC TCT AAC GTG 373
Ala Ala Ala 20 Tyr Cys Ser Asn Asn 25 Ile Asp Ser Asp Asp 30 Ser Asn Val
ACA TGC ACG GCC GAC GCC TGT CCA TCA GTC GAG GAG GCG AGC ACC AAG 421
Thr Cys 35 Thr Ala Asp Ala Cys 40 Pro Ser Val Glu Glu 45 Ala Ser Thr Lys
ATG Met CTG Leu CTG Leu GAG Glu TTT Phe GAC Asp CT I Leu GTATGTTGCT CCAGTGAAAT GGATAGAACA 471
55
HU 224 831 Β1
CAGCTGATTG AATAG G ACA AAT AAC TTT GGA GGC ACA GCC GGT TTC CTG Thr Asn Asn Phe Gly Gly Thr Alá Gly Phe Leu
65
520
GCC Alá GCG Alá GAC AAC ACC AAC AAG Lys CGG Arg 75 CTC Leu GTG Val GTC Val GCC Alá TTC Phe 80 CGA GGC AGT Ser
Asp 70 Asn Thr Asn Arg Gly
AGC ACC ATC AAG AAC TGG ATT GCT GAT CTC GAC TTC ATC CTG CAA GAT
Ser Thr Ile Lys Asn Trp Ile Alá Asp Leu Asp Phe Ile Leu Gin Asp
85 90 95
AAC GAT GAC CTC TGT ACT GGC TGC AAG GTT CAC ACT GGA TTC TGG AAG
Asn Asp Asp Leu Cys Thr Gly Cys Lys Val His Thr Gly Phe Trp Lys
100 105 110 115
GCA TGG GAA GCC GCT GCA GAC AAT CTG ACG AGC AAG ATC AAG TCC GCG
Alá Trp Glu Alá Alá Alá Asp Asn Leu Thr Ser Lys Ile Lys Ser Alá
120 125 130
ATG AGC ACG TAT TCG GGC TAT ACC CTC TAC TTC ACC GGG CAC AGC TTG
Met Ser Thr Tyr Ser Gly Tyr Thr Leu Tyr Phe Thr Gly His Ser Leu
135 140 145
GGC GGC GCA TTG GCT ACA CTG GGA GCA ACG GTC TTG CGA AAT GAC GGT
Gly Gly Alá Leu Alá Thr Leu Gly Alá Thr Val Leu Arg Asn Asp Gly
150 155 160
TAT AGC GTT GAA CTG GTGAGTGCTT CAGAGGGTGA TCATTAAACA GCCGGTTCTG
Tyr Ser Val Glu Leu
165
568
616
664
712
760
808
863
913
ACAGTCAATA G TAC ACC TAT GGA TGT CCT CGA GTC GGA AAC TAT GCG CTG Tyr Thr Tyr Gly Cys Pro Arg Val Gly Asn Tyr Alá Leu
170 175 180
GCC GAG CAC ATC ACC AGC CAG GGA TCT GGA GCG AAC TTC CCT GTT ACA
Alá Glu His Ile Thr Ser Gin Gly Ser Gly Alá Asn Phe Pro Val Thr
185 190 195
CAC TTG AAC GAC ATC GTC CCC CGG GTG CCA CCC ATG GAC TTT GGA TTC
His Leu Asn Asp Ile Val Pro Arg Val Pro Pro Met Asp Phe Gly Phe
200 205 210
AGC CAG CCA AGT CCA GAA TAC TGG ATC ACC AGT GGC ACC GGA GCC AGT
Ser Gin Pro Ser Pro Glu Tyr Trp Ile Thr Ser Gly Thr Gly Alá Ser
215 220 225
GTC ACG GCG TCG GAT ATT GAA CTC ATC GAG GGA ATC AAT TCG ACG GCG
Val Thr Alá Ser Asp Ile Glu Leu Ile Glu Gly Ile Asn Ser Thr Alá
230 235 240 245
GGG AAT GCA GGC GAA GCA ACG GTG GAC GTT TTG GCT CAC TTG TGG TAC
Gly Asn Alá Gly Glu Alá Thr Val Asp Val Leu Alá His Leu Trp Tyr
250 255 260
TTT TTC GCA ATT TCA GAG TGT CTG CTA TAGCTTGGAC AGTCCGATGA
Phe Phe Alá Ile Ser Glu Cys Leu Leu
265 270
961
1009
1057
1105
1153
1200
HU 224 831 Β1
AATAAGTGCG GAGAGAAAGT GTAAATAGTA ATTAAGTATA TATCAGGCAG AGAAGCAGTG GTGGTCAGAG AAGAAAGAGT GAGTCCCATT ACGTAGCAGA TAACCACGTG TGGAGGCGCT GTTCCTCCAC TTGCAGTTGC GGCCATCAAT CATATTCTTC TCCTTACT (2) A 2. azonosítási számú szekvencia adatai:
(i) A szekvencia jellemzői:
(A) Hossz: 297 aminosav (B) Fajta: aminosav (D) Topológia: lineáris (ii) A molekula fajtája: fehérje
1260
1320
1368
(xi) A szekvencia leírása: 2. azonosítási számú szekvencia: Alá Leu -15 Alá Alá Leu
Met -27 Phe Ser -25 Gly Arg Phe Gly Val -20 Leu Leu Thr
Cys Alá Alá Alá Pro Thr Pro Leu Asp Val Arg Ser Val Ser Thr Ser
-10 -5 1 5
Thr Leu Asp Glu Leu Gin Leu Phe Ser Gin Trp Ser Alá Alá Alá Tyr
10 15 20
Cys Ser Asn Asn Ile Asp Ser Asp Asp Ser Asn Val Thr Cys Thr Alá
25 30 35
Asp Alá Cys Pro Ser Val Glu Glu Alá Ser Thr Lys Met Leu Leu Glu
40 45 50
Phe Asp Leu Thr Asn Asn Phe Gly Gly Thr Alá Gly Phe Leu Alá Alá
55 60 65
Asp Asn Thr Asn Lys Arg Leu Val Val Alá Phe Arg Gly Ser Ser Thr
70 75 80 85
Ile Lys Asn Trp Ile Alá Asp Leu Asp Phe Ile Leu Gin Asp Asn Asp
90 95 100
Asp Leu Cys Thr Gly Cys Lys Val His Thr Gly Phe Trp Lys Alá Trp
105 110 115
Glu Alá Alá Alá Asp Asn Leu Thr Ser Lys Ile Lys Ser Alá Met Ser
120 125 130
Thr Tyr Ser Gly Tyr Thr Leu Tyr Phe Thr Gly His Ser Leu Gly Gly
135 140 145
Alá Leu Alá Thr Leu Gly Alá Thr Val Leu Arg Asn Asp Gly Tyr Ser
150 155 160 165
Val Glu Leu Tyr Thr Tyr Gly Cys Pro Arg Val Gly Asn Tyr Alá Leu
170 175 180
Alá Glu His Ile Thr Ser Gin Gly Ser Gly Alá Asn Phe Pro Val Thr
185 190 195
His Leu Asn Asp Ile Val Pro Arg Val Pro Pro Met Asp Phe Gly Phe
200 205 210
Ser Gin Pro Ser Pro Glu Tyr Trp Ile Thr Ser Gly Thr Gly Alá Ser
215 220 225
HU 224 831 Β1
Val 230 Thr Alá Ser Asp Ile 235 Glu Leu Ile Glu Gly 240 Ile Asn Ser Thr Alá 245
Gly Asn Alá Gly Glu Alá Thr Val Asp Val Leu Alá His Leu Trp Tyr
250 255 260
Phe Phe Alá Ile Ser Glu Cys Leu Leu
265 270 (2) A 3. azonosítási számú szekvencia adatai:
(i) A szekvencia jellemzői:
(A) Hossz: 42 bázispár (B) Fajta: nukleotid (C) Szálforma: egyszálú (D) Topológia: lineáris (ii) A molekula fajtája: genom-DNS (iii) Hipotetikus: nem (iv) Antiszensz: nem (xi) A szekvencia leírása: 3. azonosítási számú szekvencia:
GGAATTCACC TGCTAACCAT GTTCTCTGGA CGGTTTGGAG TG (2) A 4. azonosítási számú szekvencia adatai (i) A szekvencia jellemzői:
(A) Hossz: 34 bázispár (B) Fajta: nukleotid (C) Száiforma: egyszálú (D) Topológia: lineáris (ii) A molekula fajtája: genom-DNS (iii) Hipotetikus: nem (iv) Antiszensz: nem (xi) A 4. azonosítási számú szekvencia leírása:

Claims (9)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Elkülönített kétláncú foszfolipáz hasítási termék foszfolipázaktivitással, azonban lizofoszfolipázaktivitás 40 nélkül, azzal jellemezve, hogy az Aspergillus lizofoszfolipáz 2. azonosítási számú érett szekvenciájának elhasításával nyert két hasítási darabból áll, amelyeket legalább egy, redukáló körülmények között hasítható kötés kapcsol össze. 45
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy a hasítási darab molekulatömege 30 kDa körüli.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy a kétláncú foszfolipáz molekulatömege 36 kDa körüli.
  4. 4. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy az érett Aspergillus lizofoszfolipázfehérje hasítása a 44. és 45. aminosav között történt.
  5. 5. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy Aspergillus foetidusból kinyert, lizofoszfolipázaktivitású érett fehérjéből származik.
  6. 6. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy egy Aspergillus-tenyészetből lett elkülönítve.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy a tenyészet Aspergillus foetidus tenyészete.
  8. 8. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy specifikusan kötődik az Aspergillus foetidus RH 3046-ból származó tisztított foszfolipázzal szembeni antitesthez.
  9. 9. Az 1. igénypont szerinti hasítási termék, azzal jellemezve, hogy a 2. azonosítási számú érett szekvenciából legalább a 45. és 270. aminosav közötti részt tartalmazza.
HU9901640A 1997-01-16 1998-01-08 Protein with phospholipase activity HU224831B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19701348A DE19701348A1 (de) 1997-01-16 1997-01-16 Protein mit Phospholipaseaktivität
PCT/EP1998/000081 WO1998031790A1 (de) 1997-01-16 1998-01-08 Protein mit phospholipaseaktivität

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP9901640A2 HUP9901640A2 (hu) 1999-08-30
HUP9901640A3 HUP9901640A3 (en) 2001-09-28
HU224831B1 true HU224831B1 (en) 2006-02-28

Family

ID=7817548

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9901640A HU224831B1 (en) 1997-01-16 1998-01-08 Protein with phospholipase activity

Country Status (16)

Country Link
US (1) US6140094A (hu)
EP (1) EP0904357B1 (hu)
CN (1) CN1152954C (hu)
AR (1) AR010099A1 (hu)
AT (1) ATE348151T1 (hu)
AU (1) AU6208098A (hu)
BR (1) BR9805893A (hu)
CA (1) CA2243476C (hu)
DE (2) DE19701348A1 (hu)
DK (1) DK0904357T3 (hu)
ES (1) ES2275299T3 (hu)
HU (1) HU224831B1 (hu)
MY (1) MY117580A (hu)
PT (1) PT904357E (hu)
TW (1) TW565610B (hu)
WO (1) WO1998031790A1 (hu)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6936289B2 (en) 1995-06-07 2005-08-30 Danisco A/S Method of improving the properties of a flour dough, a flour dough improving composition and improved food products
PL184045B1 (pl) 1995-06-07 2002-08-30 Danisco Sposób polepszania reologicznych właściwości ciasta z mąki oraz jakości wytworzonego z ciasta wyrobu gotowego
DE19620649A1 (de) * 1996-05-22 1997-11-27 Roehm Gmbh Rekombinant hergestellte Lysophospholipase aus Aspergillus
EP0977869B2 (en) * 1997-04-09 2008-11-12 Danisco A/S Lipase and use of same for improving doughs and baked products
DK1073339T4 (da) 1998-04-20 2008-08-18 Novozymes As Fremstilling af dej og bagte produkter
DE69904941T3 (de) 1998-07-21 2008-01-31 Danisco A/S Lebensmittel
EP2302043A3 (en) 1998-11-27 2011-07-20 Novozymes A/S Lipolytic enzyme variants
US7312062B2 (en) * 1998-11-27 2007-12-25 Novozymes A/S Lipolytic enzyme variants
AU2011204998B2 (en) * 1998-11-27 2013-02-14 Novozymes A/S Lipolytic enzyme variants
ATE494366T1 (de) * 1999-10-14 2011-01-15 Novozymes As Lysophospholipase aus aspergillus
EP2258853B1 (en) 2000-04-28 2016-06-08 Novozymes A/S Lipolytic enzyme variant
JP2004522435A (ja) 2001-01-10 2004-07-29 ノボザイムス アクティーゼルスカブ 脂肪分解酵素変異体
JP2004522448A (ja) 2001-02-23 2004-07-29 ノボザイムス アクティーゼルスカブ 脂質分解酵素遺伝子
NZ528260A (en) 2001-05-18 2005-09-30 Danisco Method of improving dough and bread quality with the addition of an enzyme that hydrolyses a glycolipid and a phospholipid and incapable of hydrolysing a triglyceride or monoglyceride
US20050255544A1 (en) 2002-01-16 2005-11-17 Novozymes A/S Lipolytic enzyme variants and method for their production
DE60333629D1 (de) * 2002-05-21 2010-09-16 Dsm Ip Assets Bv Neue phospholipasen und deren verwendungen
US6773731B2 (en) * 2002-10-18 2004-08-10 James S. Campbell Liquid egg yolk product comprising lysophospholipoprotein
US7955814B2 (en) 2003-01-17 2011-06-07 Danisco A/S Method
MXPA05007653A (es) 2003-01-17 2005-09-30 Danisco Metodo.
US20050196766A1 (en) * 2003-12-24 2005-09-08 Soe Jorn B. Proteins
EP1602721B8 (en) * 2003-03-04 2012-03-07 National Institute of Technology and Evaluation Koji mold-origin phospholipase a sb 2 /sb
CN101319204A (zh) * 2003-04-28 2008-12-10 诺维信公司 磷脂酶和其生产方法
GB0716126D0 (en) 2007-08-17 2007-09-26 Danisco Process
US7906307B2 (en) 2003-12-24 2011-03-15 Danisco A/S Variant lipid acyltransferases and methods of making
US7718408B2 (en) * 2003-12-24 2010-05-18 Danisco A/S Method
GB0405637D0 (en) 2004-03-12 2004-04-21 Danisco Protein
EP2267108A1 (en) 2004-07-16 2010-12-29 Danisco A/S Enzymatic oil-degumming method
US20070148311A1 (en) * 2005-12-22 2007-06-28 Bunge Oils, Inc. Phytosterol esterification product and method of make same
DE102006046857A1 (de) 2006-10-02 2008-04-03 Ab Enzymes Gmbh Klonierung, Expression und Verwendung saurer Lysophospholipasen
DE102006046719A1 (de) 2006-10-02 2008-04-03 Ab Enzymes Gmbh Klonierung, Expression und Verwendung saurer Phospholipasen
PL2405007T3 (pl) 2007-01-25 2014-04-30 Dupont Nutrition Biosci Aps Wytwarzanie acylotransferazy lipidowej z przekształconych komórek gospodarza Bacillus licheniformis
US8338133B2 (en) * 2007-01-30 2012-12-25 Mitsubishi-Kagaku Foods Corporation DNA encoding glyceroglycolipid lipase
US8956853B2 (en) * 2007-01-30 2015-02-17 Bunge Oils, Inc. Enzymatic degumming utilizing a mixture of PLA and PLC phospholipases
US8460905B2 (en) * 2007-09-11 2013-06-11 Bunge Oils, Inc. Enzymatic degumming utilizing a mixture of PLA and PLC phospholipases with reduced reaction time
US8241876B2 (en) 2008-01-07 2012-08-14 Bunge Oils, Inc. Generation of triacylglycerols from gums
EP2249156A1 (en) * 2009-04-29 2010-11-10 Aterovax Enzymatic assay for the quantitative determination of phospholipase A1 or A2 activity in a sample based on the use of a solid phase coated with a fluorochrome-labelled substrate
DE102009051013A1 (de) 2009-10-28 2011-06-09 Ab Enzymes Gmbh Klonierung, Expression und Verwendung saurer Phospholipasen
PL2545150T3 (pl) 2010-03-12 2019-01-31 Dupont Nutrition Biosciences Aps Sposób
AR085251A1 (es) 2011-02-23 2013-09-18 Danisco Proceso para tratar aceite vegetal
WO2013104660A1 (en) 2012-01-13 2013-07-18 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process for treating a plant oil comprising hydrolysing chlorophyll or a chlorophyll derivative and involving partial caustic neutralisation
WO2013160370A1 (en) 2012-04-25 2013-10-31 Novozymes A/S Method of baking
MX2019009551A (es) 2017-02-20 2020-01-30 Novozymes As Enzima lipolitica para usarse en horneado.

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW362115B (en) * 1992-06-16 1999-06-21 Sankyo Lifetech Co Ltd Novel phospholipase A1, process for its preparation and the use thereof
ATE222604T1 (de) * 1994-02-22 2002-09-15 Novozymes As Methode zur herstellung einer variante eines lipolytischen enzymes
DE19527274A1 (de) * 1995-07-26 1997-01-30 Metallgesellschaft Ag Enzymatisches Verfahren zur Entschleimung von pflanzlichen Ölen mit Aspergillus-Phospholipase
DE19620649A1 (de) * 1996-05-22 1997-11-27 Roehm Gmbh Rekombinant hergestellte Lysophospholipase aus Aspergillus

Also Published As

Publication number Publication date
AR010099A1 (es) 2000-05-17
MY117580A (en) 2004-07-31
DE19701348A1 (de) 1998-07-23
EP0904357A1 (de) 1999-03-31
CA2243476C (en) 2009-01-06
HUP9901640A2 (hu) 1999-08-30
WO1998031790A1 (de) 1998-07-23
CN1152954C (zh) 2004-06-09
CA2243476A1 (en) 1998-07-23
DE59813840D1 (de) 2007-01-25
TW565610B (en) 2003-12-11
HUP9901640A3 (en) 2001-09-28
CN1216061A (zh) 1999-05-05
US6140094A (en) 2000-10-31
AU6208098A (en) 1998-08-07
ES2275299T3 (es) 2007-06-01
HK1019074A1 (en) 2000-01-21
ATE348151T1 (de) 2007-01-15
EP0904357B1 (de) 2006-12-13
PT904357E (pt) 2007-03-30
BR9805893A (pt) 1999-08-24
DK0904357T3 (da) 2007-04-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU224831B1 (en) Protein with phospholipase activity
US5306633A (en) Bacterial xylanase, method for its production, bacteria producing a xylanase, DNA fragment encoding a xylanase, plasmid containing the DNA fragment, baking agents containing a xylanase, and method for producing bread and baked goods using the xylanase
JP3824174B2 (ja) ホスホリパーゼの使用による高い量の非水和性リンを含む食用油中のリン含有成分の減少、ホスホリパーゼaおよび/またはb活性を有する糸状菌からのホスホリパーゼ
AU718990B2 (en) Lysophospholipase produced from Aspergillus by recombinant methods
JP4040677B2 (ja) アミノペプチダーゼ活性を有する酵素
KR100319442B1 (ko) 플루라나아제, 이를 제조하는 미생물, 이플루라나아제의 제조방법과 이의 용도
CN100415889C (zh) 阿拉伯木聚糖降解酶
KR20000005277A (ko) 신규피타제 및 이 피타제를 코드하는 유전자
US5612208A (en) Ascorbate oxidase, gene encoding the same, process for producing the same, and reagent composition using the same
JPH08280388A (ja) 繊維状菌類中に発現する異種ポリペプチドの製造方法
JP2002511746A (ja) プロリルピペプチジルアミノペプチダーゼ活性を有するポリペプチド及びそれをコードする核酸
US20170137788A1 (en) Saccharide oxidase, and production method for same and use of same
JPH08507221A (ja) アルカリ耐性キシラナーゼ
JP2002514920A (ja) アミノペプチダーゼ活性を有するポリペプチドおよびそれをコードする核酸
JP3117997B2 (ja) アスペルギルス発現システム
US7109014B1 (en) Diglycosidase isolated from microorganisms
US9322003B2 (en) Cloning, expression and use of acid phospholipases
US5783414A (en) Expression system, integration vector and cell transformed by this integration vector
JP2003516112A (ja) 相同又は非相同タンパク質生産のための組換えペニシリウム フニクロスム
US6228632B1 (en) Leucine aminopeptidases produced recombinantly from Aspergillus soyae
JPH09505481A (ja) アスペルギルス・フェティダス発現系
CN101233232B (zh) 新型二糖苷酶以及编码该二糖苷酶的基因
US20060240509A1 (en) Myrothecium sp transformation and expression system
JP2002360287A (ja) 優れたグルコース耐性を具えたβ−グルコシダーゼ
JPH0965883A (ja) アスコルビン酸酸化酵素をコードする遺伝子

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees