ES2258365B1 - Derivados de disulfuro, sulfuro, sulfoxido y sulfona de azucares ciclicos y sus usos. - Google Patents
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Abstract
Derivados de disulfuro, sulfuro, sulfóxido y sulfona de azúcares cíclicos y sus usos. Derivados de mononitrato de dianhidrohexitol y sus sales aceptables desde el punto de vista farmacéutico correspondientes a la fórmula (I) **(FIGURA)** composiciones farmacéuticas que contengan estos compuestos y sus usos.
Description
Derivados de disulfuro, sulfuro, sulfóxido y
sulfona de azúcares cíclicos y sus usos.
La presente invención se refiere a derivados de
disulfuro, sulfuro, sulfóxido y sulfona de mononitrato de 1,4:3,6
dianhidrohexitol y su uso para la prevención y/o tratamiento de
trastornos cardiovasculares.
El óxido nítrico (NO) es una de las moléculas
activas biológicamente más pequeñas y simples que podemos encontrar
en la naturaleza. Además, el NO parece ser una de las moléculas más
ubicuas en los mamíferos. Al ser una de las moléculas de
señalización de uso más generalizado, el NO tiene una gran
importancia en el control de prácticamente todas las funciones
orgánicas y celulares del cuerpo. El NO es la única molécula
endógena capaz de funcionar como un neurotransmisor, autacoide,
mediador constitutivo, mediador inducible, molécula citoprotectora y
molécula citotóxica.
Dado que el NO desempeña múltiples acciones
fisiológicas en la regulación de numerosas y diversas funciones
orgánicas, los defectos en la ruta del NO conllevan el desarrollo
de diferentes condiciones patológicas. Estos trastornos incluyen la
hipertensión, aterosclerosis, enfermedades de las arterias
coronarias, insuficiencia cardíaca, hipertensión pulmonar, ictus,
impotencia, complicaciones vasculares de la diabetes mellitus,
úlceras gastrointestinales, asma y otros trastornos del sistema
nervioso central y sistémico.
Todos los donadores de óxido nítrico (DNOs)
comparten la propiedad común de producir actividad relacionada con
el NO cuando se aplican en sistemas biológicos y, por tanto,
mimetizan las respuestas al NO endógeno. No obstante, los procesos
que llevan a la formación/liberación del NO difieren de manera
significativa entre las clases de compuestos, al igual que entre sus
reactividades químicas: Mientras que algunos compuestos requieren
catálisis enzimática, otros producen NO de manera no enzimática.
Algunos DNOs requieren interacción con tioles para liberar NO,
mientras que otros son generadores espontáneos de NO. En algunos
compuestos, la liberación de NO es precedida por una reducción o
por una oxidación. El proceso se complica aún más por la
susceptibilidad específica de los compuestos a los cambios en el
pH, oxígeno, luz y temperatura y por la formación de diferentes
subproductos que se produce durante la descomposición o el
metabolismo. Además, la cinética de la liberación de NO a partir de
un compuesto determinado es, a menudo, más importante que la
cantidad absoluta de NO liberado. Es más, la distribución tisular
de los DNOs y el lugar en el que se genera el NO es también muy
importante. Todas estas consideraciones son importantes, pues
explican los muy diferentes perfiles farmacológicos obtenidos con
los distintos DNOs descritos en la bibliografía y hace necesario
caracterizar completamente el perfil farmacológico de los nuevos
DNOs en investigación y
desarrollo.
desarrollo.
DNOs basados en una estructura de mononitrato de
isosorbida que son útiles desde un punto de vista farmacéutico
aparecen descritos en WO 00/20420. Esta solicitud de patente
describe nitratos orgánicos capaces de proporcionar un potente
efecto vasodilatador y que, al mismo tiempo, generan poca o nula
tolerancia. Sin embargo, no existe indicación alguna sobre el
posible uso de dichos compuestos para el tratamiento de la
activación de plaquetas, trombosis, ictus, daño tisular debido a
isquemia y/o isquemia/reperfusión; condiciones patológicas en las
que el estrés oxidativo desempeña un importante papel en su
patogénesis; y/o aterosclerosis.
Uno de los principales problemas de los nitratos
orgánicos descritos en la literatura y de aquellos utilizados
clínicamente reside en el hecho de que su mecanismo de acción
radica en la relajación del músculo liso vascular sin modificar
otros procesos patológicos involucrados en las enfermedades
cardiovasculares.
La isquemia tisular resulta en la depleción de
las reservas intracelulares de adenosina-trifosfato
(ATP), lo que consecuentemente compromete el funcionamiento de la
bomba iónica dependiente del ATP asociada a la membrana en las
células endoteliales. Esta disfunción de la membrana permite la
entrada de calcio, sodio y agua en las células. La resultante
acumulación de calcio y otros iones en la célula puede derivar en
una tumefacción celular y en la inapropiada activación de las
enzimas celulares. Una enzima que se activa por el aumento del
calcio intracelular durante la isquemia es la xantina
deshidrogenasa (XDH). En condiciones normales, la XDH oxida la
hipoxantina (un producto de descomposición en el metabolismo del
ATP) de una manera dependiente de NADPH para producir xantina y
ácido úrico. Sin embargo, durante la condición hipóxica de la
isquemia, los niveles de hipoxantina aumentan dentro de la célula
debido a la hidrólisis de ATP y se produce una activación
dependiente del calcio de las proteasas que convierte a la XDH
reductora de NADPH en una forma de enzima reductora de oxígeno
denominada xantina oxidasa (XO). Al producirse el restablecimiento
del flujo de sangre (reperfusión) al tejido y con la reintroducción
de oxígeno molecular, la XO convertirá la hipoxantina en xantina y
ácido úrico y ello catalizará la reducción de oxígeno molecular para
formar tanto radicales superóxidos de anión (O_{2}^{-}) como
peróxido de hidrógeno (H_{2}O_{2}). Este mecanismo de
producción de radicales de oxígeno dependiente de la XO ha sido
invocado para explicar la participación del O_{2}^{-} y el
H_{2}O_{2} en las lesiones de la reperfusión producidas en una
variedad de órganos, incluyendo el intestino, el cerebro, el
corazón y el músculo esquelético.
La generación de radicales de oxígenos en
tejidos post-isquémicos parece sobrepasar la
capacidad de los antioxidantes endógenos tales como la superóxido
dismutasa (SOD), catalasa, glutationa para proteger las células
endoteliales y parenquimatosas. Los antioxidantes exógenos tales
como el SOD y la catalasa han demostrado atenuar la infiltración de
leucocitos y las lesiones a tejidos producidas por la isquemia y la
reperfusión.
La biodisponibilidad del óxido nítrico parece
estar reducida en la reperfusión, lo que probablemente se deba a un
deterioro de la producción endotelial de NO y a una inactivación
aumentada de NO por el O_{2}^{-} derivado de células
endoteliales. La biodisponibilidad limitada del NO contribuye a las
interacciones anormales célula-célula y a la
disfunción vascular durante la reperfusión. Los donadores de óxido
nítrico han demostrado resultados prometedores como agentes
protectores en modelos experimentales de
isquemia-reperfusión. No obstante, considerando los
procesos involucrados en los daños producidos por la
isquemia-reperfusión, sería muy interesante
disponer de una molécula con ambas propiedades: que fuera donador
de NO y que, al mismo tiempo, tuviera propiedades antioxidantes.
La aterosclerosis es un proceso activo originado
por el daño continuo del endotelio vascular. Se desarrolló la
hipótesis de la aterosclerosis como respuesta al daño del endotelio
cuando se estudió la asociación de aterosclerosis con factores de
riesgo (niveles plasmáticos elevados de LDL, bajos niveles
plasmáticos de HDL, hipertensión, estrés oxidativo, tabaquismo,
diabetes mellitus, niveles plasmáticos elevados de Lp(a) o
modificaciones de la LDL tales como oxidación o glicosilación que
evitan la eliminación de LDL por los receptores específicos). La LDL
se acumula en la pared vascular como consecuencia de un transporte
activo de células endoteliales. Durante este proceso, la LDL sufre
la oxidación de una parte de la molécula. La presencia de LDL
oxidada (ox-LDL) es de vital importancia para el
desarrollo de lesiones ateroscleróticas. En el mismo sentido, la
teoría de que la LDL oxidada es responsable de algunas de las
características patológicas de las lesiones ateroscleróticas deriva
de los hallazgos en sistemas de células en cultivo que revelan que
la LDL oxidada causa cambios celulares que se correlacionan con
aspectos conocidos de las lesiones arteriales pero que no están
inducidos por la LDL nativa. La lesión endotelial, la retención de
LDL en el intersticio de íntima, el reclutamiento de monocitos en
la íntima, el enriquecimiento de los macrófagos con lípidos
derivados de lipoproteínas, la migración y proliferación de células
musculares lisas, la acumulación de detritus de células necróticas
y las tendencias hacia la vasoconstricción y la actividad
pro-coagulante son características de la
aterosclerosis.
La vasculopatía del trasplante alogénico
cardíaco es una forma inusualmente acelerada y difusa de
aterosclerosis coronaria que limita el éxito a largo plazo del
trasplante de corazón. La disfunción vasodilatadora del endotelio
coronario es un marcador común y temprano para el desarrollo de
vasculopatía del trasplante alogénico.
Por tanto, nuevos nitratos orgánicos que, además
de su actividad vasodilatadora, podrían combinar actividades que
les permitieran modificar otros procesos patológicos que forman
parte de las enfermedades cardiovasculares, tales como la
aterosclerosis y el daño tisular debido a la isquemia y/o a la
isquemia y a la reperfusión, supondrían un gran avance con respecto
a los compuestos utilizados hoy en día.
Un objeto de la invención es un novedoso tipo de
compuestos, derivados del mononitrato de dianhidrohexitol, que son
capaces de proporcionar un potente efecto vasodilatador y que, al
mismo tiempo, modifican otros procesos patológicos involucrados en
las enfermedades cardiovasculares tales como aterosclerosis,
vasculopatía del trasplante alogénico y daño tisular debido a
isquemia y/o isquemia-reperfusión.
Otro objeto de la invención es un novedoso tipo
de compuestos, derivados del mononitrato de dianhidrohexitol, que
son capaces de proporcionar un potente efecto antitrombótico
incluso a una dosis que no modifica la tensión arterial.
Otro objeto de la invención es un novedoso tipo
de compuestos, derivados del mononitrato de dianhidrohexitol, que
son capaces de proporcionar una sinergia con fármacos
trombolíticos, anticoagulantes, antitrombóticos, antioxidantes e
hipolipemiantes.
Otro objeto más de la presente invención tiene
que ver con el uso de los derivados del mononitrato de
dianhidrohexitol para la fabricación de medicamentos para el
tratamiento de trastornos cardiovasculares relacionados con la
aterosclerosis.
Los derivados del mononitrato de
dianhidrohexitol y sus sales aceptables desde el punto de vista
farmacéutico, que son un objeto de la presente invención,
corresponden a la siguiente fórmula (I)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
donde
n es un número entero de entre 0, 1, ó 2,
X representa -S(O)_{m}-, -(C=O)-
o un enlace sencillo, donde m es un número entero de entre 0, 1, ó
2, y
R representa hidrógeno o un residuo seleccionado
de entre:
- C_{1-6} alquilo;
- C_{2-6} alquenilo;
- C_{3-8} cicloalquilo;
- C_{3-8} cicloalquilo, donde un grupo CH_{2} es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3};
- C_{4-8} cicloalquenilo;
- C_{4-8} cicloalquenilo, donde un grupo CH_{2} es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3};
- fenilo;
- piridilo;
- tiofenilo;
- nitrosilo;
- S-cisteinil;
- S-glutationil; y
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
y este último resudio puede estar
opcionalmente sustituido hasta por tres grupos independientes
seleccionados de entre C_{1-6} alquilo,
C_{2-6} alquenilo, C_{3-8}
cicloalquilo, C_{4-8} cicloalquelino, acetiloxi,
hidroxilo, ONO_{2} y
halógeno.
En los componentes incluidos en la formula (I)
en la que RXS(O)_{n}- y -ONO_{2} tienen forma
trans para cada uno en lo que respecta al plano del anillo, tal y
como se describe en las fórmulas (Ia) y (Ib):
teniendo en cuenta que
RXS(O)_{n}- no representa 4 ,
donde Z es un grupo alquilo
C_{1}-C_{4}, grupo aril o grupo aralquil, el
cual puede ser eventualmente
sustituido.
Sorprendentemente, los compuestos de la fórmula
I, además del potente efecto vasodilatador con tolerancia pequeña o
nula, poseen propiedades anti-activación de las
plaquetas, anti-trombótica, anti ictus,
antioxidante, anti lesión/daño tisular debido a isquemia y/o
isquemia/reperfusión y propiedades
anti-ateroscleróticas.
Otra incorporación de la presente invención
tiene que ver con una composición farmacéutica que incluye los
derivados de mononitrato dianhidrohexitol anteriormente mencionados
y sus sales aceptables desde el punto de vista farmacéutico de
acuerdo con la fórmula (I).
Otra incorporación de la presente invención
tiene que ver con el uso de los derivados de mononitrato
dianhidrohexitol y sus sales aceptables desde el punto de vista
farmacéutico de acuerdo con la fórmula (I) para la fabricación de
compuestos farmacéuticos para la prevención y/o tratamiento de la
aterosclerosis, disfunciones endoteliales, espamos vasculares,
vasculopatía del trasplante alogénico, disfunciones del sistema
circulatorio, activación de plaquetas, trombosis, ictus, condiciones
patológicas en las que el estrés oxidativo desempeña un importante
papel en sus patogénesis, tales como pero sin limitarse a ella, la
enfermedad de Alzheimer, condiciones patológicas en las que el
déficit de óxido nítrico desempeña un papel importante en su
patogénesis y/o daño tisular debido a isquemia y/o debido a
isquemia-reperfusión.
Las expresiones empleadas anteriormente serán
explicadas con mayor detalle a continuación:
El término "halógeno" se refiere al flúor,
cloro, bromo o yodo, de entre los que se prefiere el bromo.
El término "C_{1-6}
alquilo", tal y como se utiliza en el presente documento, se
refiere a un grupo alquilo de cadena lineal o ramificada que cuenta
con entre 1 y 6 átomos de carbono, incluyendo, por ejemplo, metilo,
etilo, n-propilo, isopropilo,
n-butilo, iso-butilo,
sec-butilo, t-butilo, pentilo y
hexilo.
El término "C_{2-6}
alquelino", tal y como se utiliza en el presente documento, se
refiere a un grupo alquelino de cadena lineal o ramificada que
cuenta con entre 2 y 6 átomos de carbono y al menos un doble enlace
de estereoquímica E o Z, según proceda. Este término incluirá, por
ejemplo, vinilo, alilo, 1- y 2-butenilo y
2-metil-2-propenilo.
El término "C_{3-8}
cicloalquilo", tal y como se utiliza en el presente documento, se
refiere a un grupo alicíclico que cuenta con entre 3 y 8 átomos de
carbono. Algunos ejemplos ilustrativos de dichos grupos
cicloalquilos son ciclopropilo, ciclobutilo, ciclopentilo y
ciclohexilo.
De acuerdo con esto, el término
"C_{3-8} cicloalquilo, donde un grupo CH_{2}
es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3}", se refiere a un grupo
alicíclico que cuenta con entre 3 y 8 átomos de carbono donde un
grupo CH_{2} es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3}. Algunos
ejemplos ilustrativos de esos grupos son tetrahidropirano,
tetrahidrofurano, pirrolidino, piperidino y tetrahidrotiofeno.
El término "C_{4-8}
cicloalquelino" se refiere a un grupo alicíclico que cuenta con
entre 4 y 8 átomos de carbono. Algunos ejemplos ilustrativos de
dichos grupos cicloalquelinos son ciclopentenilo, ciclohexenilo,
cicloheptenilo y ciclooctenilo.
Se prefiere que R represente el hidrógeno,
C_{1-6} alquilo, C_{2-6}
alquenilo, C_{3-8} cicloalquilo,
C_{4-8} cicloalquenilo, (C_{1-6}
alquilo)C_{3-8} cicloalquilo,
(C_{1-6} alquilo)C_{4-8}
cicloalquelino, fenilo o (C_{1-6}
alquilo)fenilo, mientras que C_{1-6}
alquilo es especialmente preferible.
También se prefiere que en la fórmula (I) m, n o
ambos sean 0.
También se prefiere que X represente un enlace
sencillo o -S-.
Los compuestos especialmente preferidos de la
fórmula I son:
2-tioisosorbida
5-mononitrato,
5,5'-dinitrato-2,2'-ditio-diisosorbida,
2-metiltioisosorbida 5-mononitrato,
2-metil-sulfinilisosorbida
5-mononitrato,
2-metilsulfonilisosorbida
5-mononitrato,
S-nitroso-2-tioisosorbida
5-mononitrato,
2-(tetrahidropiran-2-il-tio)-isosorbida
5-mononitrato,
2-(iso-sorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato, y
2-(5'-acetiloxiisosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato.
Además, para la fabricación de compuestos
farmacéuticos para la prevención y/o el tratamiento de la
trombosis, isquemia, daño celular/tisular inducido por isquemia y/o
isquemia y reperfusión, hipertensión, espamos vascular,
aterosclerosis y/o vasculopatía del trasplante cardíaco, se prefiere
especialmente el uso de
2-acetiltio-isosorbida-5-mononitrato
(compuesto (12)) y sus sales farmacéuticamente aceptables:
Adicionalmente, los compuestos de la fórmula I,
especialmente
2-acetiltio-isosorbida-5-mononitrato
(12), y sus sales, también pueden utilizarse en la terapia para la
prevención y/o tratamiento de la aterosclerosis, vasculopatia del
trasplante cardíaco, activación de plaquetas, trombosis, ictus,
condiciones patológicas en las que el estrés oxidativo desempeña un
papel importante en su patogénesis, y/o daño tisular debido a
isquemia y/o isquemia-reperfusión. Estos compuestos
pueden ser utilizados especialmente en la prevención y/o el
tratamiento de condiciones patológicas en las que el estrés
oxidativo desempeña un papel importante en su patogénesis, tales
como alergia, ictus, enfermedad de Alzheimer y/o enfermedades
cardiovasculares isquémicas. La composición farmacéutica puede
administrarse por diferentes vías. Por ejemplo, pueden
administrarse por vía oral en forma de preparados farmacéuticos
tales como comprimidos, cápsulas, jarabes y suspensiones. También,
parenteralmente en forma de soluciones o emulsiones, etc. Puede
también administrarse por vía tópica en forma de cremas, pomadas,
bálsamos, etc. y transdérmicamente por ejemplo, mediante el uso de
parches o bandas. También pueden aplicarse directamente en el recto
como supositorios. Estos preparados pueden contener excipientes,
activadores, agentes quelantes, estabilizadores, etc.
fisiológicamente aceptables. En el caso de las inyecciones, se
pueden incorporar tampones, agentes solubilizantes o isotónicos
fisiológicamente aceptables.
Las composiciones farmacéuticas de acuerdo con
la presente invención pueden incluir además un agente trombolítico,
preferiblemente un activador del plasminógeno, uroquinasa,
estreptoquinasa, alteplasa o anistreplasa. También pueden contener
un agente anticoagulante, preferiblemente heparina, dicumarol,
acenocumarol, enoxaparina o polisulfato de pentosán. Además, pueden
contener adicionalmente un agente antitrombótico, preferiblemente
aspirina, dipiridamol, ticlopidina, clopidrogel, triflusal,
polisulfato de pentosano o abciximab. También pueden contener
inmunoglobulina o un fragmento de ésta que tenga específidad por la
glicoproteína IIb/IIIa.
De forma alternativa, las composiciones
farmacéuticas de acuerdo con la invención pueden contener además un
agente hipolipemiante preferiblemente simvastatina, lovastatína,
atorvastatína, pravastatina, fluvastatina, lifibrol, acifrán,
acitemato o glunicato. También pueden contener un agente
antioxidante/secuestrador de radicales libres, preferentemente
seleccionado de entre nicaravén, ranolazina, emoxipina, glutationa,
edaravona, raxofelast, licopene, acetilcisteina,
N-Acetil-L-cisteina,
N-acetilcisteina o carvedilol.
Las composiciones farmacéuticas de acuerdo con
la presente invención pueden utilizarse para el tratamiento y/o
prevención de la aterosclerosis, vasculopatia del trasplante
cardíaco, activación de plaquetas, trombosis, ictus, daño tisular
debido a isquemia y/o debido a isquemia-reperfusión
y/o condiciones patológicas donde el estrés oxidativo desempeña un
papel importante en su patogénesis (tales pero sin limitarse a
éstas, la alergia, el ictus, la enfermedad de Alzheimer, las
enfermedades isquémicas cardiovasculares); y/o condiciones
patológicas donde un déficit de NO desempeña un papel importante en
su patogénesis. También pueden utilizarse para el tratamiento y/o
prevención de disfunciones del sistema circulatorio, especialmente
disfunciones cardiovasculares y coronarias.
La dosis diaria puede variar en función de los
síntomas específicos, la edad, el peso del paciente, el modo
específico de administración, etc. y la dosis normal diaria para un
adulto puede variar entre 0.1 y 500 mg y puede administrarse en una
dosis única o dividida en diferentes dosis a lo largo del día.
Otra incorporación de la presente invención
tiene que ver con los procesos para preparar los compuestos de la
fórmula I o sus sales aceptables desde el punto de vista
farmacéutico, tal y como se define anteriormente.
Por tanto, se proporciona un proceso que incluye
los siguientes pasos:
a) efectuar una hidrólisis de un compuesto de la
fórmula II:
donde R' es
C_{1-6} alquilo, preferentemente
metilo,
para obtener 2-tioisosorbida
5-mononitrato (1),
y
b) opcionalmente, efectuar sobre el compuesto
(1) preparado de acuerdo con el paso a):
- I.
- Una oxidación para obtener 5,5'-dinitrato-2,2'-ditio-diisosorbida (2) o 2-(isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida 5-mononitrato (8), o
- II.
- Una alquilación o arilación para obtener 2-(alquilo o arilo)tioisosorbida 5-mononitrato; opcionalmente seguido por una oxidación para obtener 2-(alquilo o arilo) sulfinil-isosorbida 5-mononitrato o 2-(alquilo o arilo)-sulfonil-isosorbida 5-mononitrato, o
- III.
- Una nitrosación para obtener S-nitroso-2-tioisosorbida 5-mononitrato (6).
Se proporciona otro proceso que incluye los
siguientes pasos:
a) efectuar una oxidación de un compuesto de la
fórmula III:
donde R' es
C_{1-6} alquilo, preferentemente
metilo,
para obtener
2,2'-ditio-diisosorbida (10),
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\vskip1.000000\baselineskip
b) efectuar una nitración con un agente nitrante
en presencia de un anhídrido carboxílico, preferentemente anhídrido
acético, del compuesto preparado en el paso a) para obtener
2-(5'-aciloxi-isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato.
Finalmente, otra incorporación de la presente
invención tiene que ver con el compuesto
2,2'-ditio-diisosorbida (10), que es
un compuesto intermedio en la preparación del compuesto 11 de la
invención.
En los ejemplos de trabajo incluidos en el
presente documento (vide infra) se describen con detalle los
procesos adecuados para obtener varios de los compuestos de acuerdo
con la fórmula general (1). A la vista de estos ejemplos, es de
conocimiento general entre las personas con formación obtener los
compuestos no ejemplificados explícitamente a través de las
modificaciones adecuadas de los ejemplos de trabajo. Resultará
obvio para una persona con formación que estos ejemplos son
meramente ilustrativos y no deben considerarse como una limitación
de la invención.
Los compuestos obtenidos en los ejemplos que
aparecen a continuación se identifican mediante los datos de la
espectroscopia de resonancia magnética nuclear de su protón
(^{1}H-NMR) y carbono-13
(^{13}C-NMR).
Los espectros de resonancia magnética nuclear
fueron registrados utilizando espectrómetros Varian
Gemini-2000 o Varian Gemini-300.
La frecuencia de operación y el disolvente
utilizado para registrar el espectro aparecen indicados en los
espectros ^{1}H-NMR. La posición de las señales se
indican en \delta (ppm) y la señal de los protones del disolvente
se toma como referencia. Los valores de referencia fueron 7.24 ppm
para el cloroformo deuterado y 2.49 ppm para dimetil sulfóxido
deuterado. La señal obtenida para los protones de tetrametilsilano
(TMS) se toma ocasionalmente como referencia interna, con 0 ppm
como valor de referencia. El número de protones de cada señal se
miden mediante integración electrónica y el tipo de señal se indica
entre paréntesis utilizando las siguientes abreviaturas: s
(simple), d (doblete), t (triplete), dd (doblete de dobletes), ddd
(doblete de doblete de dobletes), bs (señal ancha), cs (señal
compleja), s.a. D_{2}O (simplifica traa deuterar), d.a. D_{2}O
(desaparece al deuterar).
La frecuencia de operación y el disolvente
utilizado para registrar el espectro aparecen indicados en los
espectros ^{13}C-NMR. La posición de las señales
se indican en \delta (ppm) y la señal de los carbonos del
disolvente se toma como referencia. Los valores de referencia son
77.00 ppm para cloroformo deuterado y 39.50 ppm para dimetil
sulfóxido hexadeuterado.
En algunos casos, también se llevaron a cabo
experimentos de resonancia magnética nuclear utilizando las
secuencias de pulso APT (Attached Proton Test), HETCOR
(Heteronuclear Chemical Shift Correlation) o COSY (Correlated
Spectroscopy) como ayuda para la asignación.
En la parte experimental, se emplean las
siguientes abreviaturas:
| AcOEt | acetato de etilo |
| AcOH | ácido acético |
| DMSO-d_{6} | dimetil sulfóxido hexadeuterado |
| EtOH | alcohol etílico |
| EtOEt | éter dietílico |
| HPLC | cromatografía líquida de alta resolución |
| Hx | hexano |
| Mel | yoduro de metilo |
| MeOH | alcohol metílico |
| THP | tetrahidropiranil |
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\vskip1.000000\baselineskip
En un matraz de 50 ml, se disuelve 1.00 g (4,02
mmol) de 2-acetiltioisosorbida
5-mononitrato (12) obtenido de acuerdo con WO
00/20420 en 20,0 mL de alcohol metílico. Se añaden 10,0 mL de una
solución de metanol al 10% de hidróxido de sodio de una vez.
Después de tapar el matraz rápidamente se agita durante 1 minuto a
temperatura ambiente (ca. 25°C), Se añaden de una vez 2,23 mL de
ácido hidroclórico concentrado. Se agita y concentra hasta
sequedad, eliminando el disolvente a presión reducida a una
temperatura por debajo de los 30°C.
El residuo se suspende en cloroformo. Esta
solución de cloroformo se filtra y posteriormente seca sobre
sulfato de magnesio anhidro. Tras la filtración, se elimina el
disolvente a presión reducida. Se seca a presión reducida para
obtener 0,83 g de un aceite anaranjado-amarillento
correspondiente al producto que nos ocupa. Rendimiento: 100%.
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,36-5,26 (1H, m, CHONO_{2}), 4,95
(1H, t, J=5,0 Hz, CHCHONO_{2}), 4,42 (1H, d, 4,8 Hz, CHCHS), 4,07
(1H, dd, J=4,6 Hz, J=4,4 Hz, H-CHCHS), 3,97 (1H,
dd, J=5,64 Hz, J=2,5 Hz, H-CHCHONO_{2}),
3,87-3,76 (2H, cs, H-CHCHS,
H-CHCHONO_{2}), 3,45-3,35 (1H, m,
CHS), 1,77 (1H, d, J=8,6Hz, SH).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 91,21 (CHCHS), 81,22 (CHONO_{2}), 81,07
(CHCHONO_{2}), 76,15 (CH_{2}CHS), 69,26 (CH_{2}CHONO_{2}),
42,82 (CHS).
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Procedimiento
1
Se disuelven 0,50 g de
2-acetiltioisosorbida 5-mononitrato
(12) obtenidos de acuerdo con WO 00/20420 en 10,0 mL de alcohol
metílico. Esta solución se añade lentamente, gota a gota, a 200,0
mL de plasma humano en un matraz de 250 mL con agitación magnética
intensa. La mezcla de reacción se agita a temperatura ambiente
durante 15 horas. El crudo de reacción se vierte sobre 500,0 mL de
acetonitrilo mientras se agita vigorosamente, se observa la
precipitación instantánea de un sólido blanco floculante
correspondiente a las proteínas del plasma. Se centrifuga a 3000
rpm y a 20ºC durante 30 min y se separa el líquido y el sólido
(masa proteica). Se resuspende el sólido en 250,0 mL de
acetonitrilo. Se agita y centrifuga bajo las mismas condiciones
señaladas anteriormente (3000 rpm/20°C/30 min).
Se decanta y se combina el líquido sobrenadante
con el anterior. El disolvente se evapora a presión reducida a una
temperatura por debajo de los 30°C. El residuo acuoso resultante
(alrededor de 200,0 mL), se extrae con cloroformo 4 x 500,0 mL. Las
fases orgánicas se combinan y secan sobre sulfato de magnesio
anhídrido. Se filtra y se concentra el disolvente a presión
reducida. Se obtienen 350 mg de un sólido blanco que se purifica
mediante cromatografía: (CHCl_{3}/AcOEt 6:1), aislándose 250 mg
de un sólido blanco correspondiente al producto de disulfuro
2-tioisosorbida 5-mononitrato (2).
Rendimiento: 60%.
Procedimiento
2
En un matraz de 50.0 mL, se disuelve 1,00 g
(4,02 mmol) de 2-acetiltioisosorbida
5-mononitrato (12) obtenido de acuerdo con WO
00/20420 en 20,0 mL de alcohol metílico y se añaden 10,0 mL de una
solución de metanol al 10% de hidróxido de potasio. Se tapa el
matraz y se agita la mezcla de reacción durante 5 horas a
temperatura ambiente. Se observa la precipitación de un sólido
blanco correspondiente al disulfuro (2) durante la reacción. El
sólido se filtra y lava varias veces con alcohol metílico. Mediante
el secado a presión reducida, se obtienen 0,58 g de un sólido
blanco correspondiente al producto disulfuro
2-tioisosorbida 5-mononitrato (2).
Rendimiento: 70%.
^{1}H-NMR (200 MHz,
DMSO-d_{6}): 5,51-5,43 (2H, m,
2CHONO_{2}), 4,96 (2H, t, J=5,4 Hz, 2CHCHONO_{2}), 4,51 (2H, d,
J=4,8 Hz, 2CHCHS), 4,04-3,73 (10H, cs,
2CH_{2}CHONO_{2}, 2CH_{2}CHS, 2CHS).
^{13}C-NMR (50 MHz,
DMSO-d_{6}): 88,46 (2CHCHS), 83,31 (2CHONO_{2}),
81,50 (2CHCHONO_{2}), 73,24 (2 CH_{2}CHS), 69,95
(2CH_{2}CHONO_{2}), 54,01 (2CHS).
En un matraz de 50 mL, se disuelve 1,00 g (4,02
mmol) de 2-acetiltioisosorbida
5-mononitrato (12) obtenido de acuerdo con WO
00/20420 en 20,0 mL de alcohol metílico y se añaden de una vez 5,0
mL de una solución de metanol al 10% de hidróxido de potasio. Se
tapa el matraz y la mezcla de reacción se agita durante 5 minutos a
temperatura ambiente.
Se añaden 2,0 mL de yoduro de metilo (32,00
mmol) de una vez, se tapa el matraz y agita la mezcla durante 2
horas a temperatura ambiente.
Se concentra hasta sequedad, eliminando el
disolvente a presión reducida. El residuo se disuelve en 250,0 mL
de cloroformo y se lava con 50,0 mL de agua. La fase orgánica se
separa y se lava con 3 x 50,0 mL de agua.
Se seca sobre sulfato de magnesio anhídrido, se
filtra y se elimina el disolvente a presión reducida. Tras el
secado a presión reducida, se obtienen 0,68 g de un sólido blanco
correspondiente al producto de interés. Rendimiento: 76%.
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,34-5,26 (1H, m, CHONO_{2}), 4,93
(1H, t, J=5,2 Hz, CHCHONO_{2}), 4,48 (1H, d, J=4,8Hz, CHCHS),
4,14 (1H, dd, J=9,7 Hz, J=4,8 Hz, H-CHCHS), 4,01
(1H, dd, J=11,2 Hz, J=3,0 Hz, H-CHCHO
NO_{2}), 4,01-3,81 (2H, cs, H-CHCHS, H-CHCHONO_{2}), 3,30-3,24 (1H, m, CHS), 2,15 (3H, s, CH_{3}).
NO_{2}), 4,01-3,81 (2H, cs, H-CHCHS, H-CHCHONO_{2}), 3,30-3,24 (1H, m, CHS), 2,15 (3H, s, CH_{3}).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 88,65 (CHCHS), 81,55 (CHCHONO_{2}), 81,26
(CHONO_{2}), 73,87 (CH_{2}CHS), 69,10 (CH_{2}CHONO_{2})
50,74 (CHS), 14,74 (CH_{3}).
En un matraz de 500 mL, se disuelven 7,3 g (32,9
mmol) de 2-metiltioisosorbida
5-mononitrato (3) obtenidos de acuerdo con el
ejemplo 3 en 75 mL de dioxano. Se añade muy lentamente una solución
de 7,04 g (32,9 mmol) de NalO_{4} en 110 mL de agua, gota a gota,
y después se agita durante 1 hora a temperatura ambiente. Se filtra
la mezcla y se elimina el dioxano a presión reducida. Se añaden 150
mL de agua. La mezcla se extrae con 2 x 300 mL porciones de
cloroformo. Se seca sobre sulfato de magnesio anhídrido, se filtra
y se elimina el disolvente a presión reducida. Se obtienen 6,6 g de
un crudo de reacción que contiene un 65% de (4) y un 35% de (5). El
crudo de reacción resultante se recristaliza dos veces con I dioxano
para obtener 2,9 g del producto de interés (4) con una pureza del
95% mediante HPLC. Se elimina a presión reducida el disolvente de
las aguas madres de la primera recristalización y se recristaliza
el residuo resultante con dioxano para obtener 1 g del producto de
interés (5) con una pureza del 95% mediante HPLC.
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,39-5,28 (1H, m, CHONO_{2}), 5,02
(1H, dd, J=5,6 Hz, J=1,6 Hz, CHCHS), 4,89 (1H, t, J=5,5 Hz,
CHCHONO_{2}), 4,29 (1H, dd, J=10,4 Hz, J=6,4 Hz,
H-CHCHS), 4,20-3,91 (3H, cs,
H-CHCHS, CH_{2}CHONO_{2}),
3,38-3,31 (1H, m, CHSO), 2,61 (3H, s,
CH_{3}).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 82,11 (CHCHONO_{2}), 81,51 (CHCHS), 80,55
(CHONO_{2}), 69,65 (CH_{2}CHS) 69,28 (CH_{2}CHONO_{2}),
66,24 (CHSO), 37,28 (CH_{3}).
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,39-5,28 (1H, m, CHONO_{2}), 4,89
(1H, t, J=5,6 Hz, CHCHONO_{2}), 4,68 (1H, d, 5,4 Hz, CHCHS),
4,40-3,88 (4H, cs, CH_{2}CHS,
CH_{2}CHONO_{2}), 3,48-3,40 (1H, m, CHSO_{2}),
2,58 (3H, s, CH_{3}).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 82,92 (CHCHS), 82,30 (CHCHONO_{2}), 80,54
(CHONO_{2}), 69,22 (CH_{2}CHONO_{2}), 67,92 (CH_{2}CHS),
66,98 (CHSO_{2}), 36,68 (CH_{3}).
En un vial de color ámbar, se disuelven 0,5 g
(2,41 mmol) de 2-tioisosorbida
5-mononitrato (1), obtenidos de acuerdo con el
ejemplo 1, en 4,0 mL de MeOH, se tapa el vial y se agita en un baño
de hielo. Se añaden 320 \muL (0,249 g, 2,41 mmol) de
tert-butoxinitrito y se agita con el vial tapado
bajo condiciones de frío durante 7 horas. El sólido blanco se
filtra y el filtrado se concentra hasta sequedad a presión
reducida, temperatura ambiente y protegido de la luz. Se obtienen
0,48 g (rendimiento: 84%) de un sólido rojo intenso identificado
como
S-nitroso-2-tioisosorbida
5-mononitrato (6).
^{1}H-NMR (CDCl_{3}, 200
MHz): 5,40-5,25 (sc, 1H, CHONO_{2}),
4,84-4,64 (sc, 2H, CHSNO, CHCHONO_{2}),
4,40-4,30 (m, 2H, H-CHCHSNO,
CHCHSNO), 4,12 (dd, 1H, J=11,4 Hz, J=2,6 Hz,
H-CHCHONO_{2}), 4,00-3,80 (sc, 2H,
H-CHCHSNO, H-CHCHONO_{2}).
^{13}C-NMR (CDCl_{3}, 50
MHz): 88,2 (CHCHSNO), 81,9+81,1 (CHCHONO_{2}, CHONO_{2}), 73,4
(CH_{2}CHSNO), 69,5 (CH_{2}CHONO_{2}), 51,6 (CHSNO).
Se suspenden 0,5 g (2,41 mmol) de
2-tioisosorbida 5-mononitrato (1),
obtenidos de acuerdo con el ejemplo 1, en 6 mL de
3,4-dihidro-2H-piran
y se enfría la mezcla en un baño de hielo. Se añaden 0,10 g (0,40
mmol) de p-toluenesulfonato de piridinio y se agita
a temperatura ambiente durante una noche bajo atmósfera de
nitrógeno. Se añaden 50 mL de EtOEt y la mezcla se lava con 2 x 40
mL de una solución saturada de NaCl. Se obtienen 1,15 g de un crudo
de reacción que se purifica por cromatografía (Hx:AcOEt 3:2)
rindiendo 0,65 g del producto de interés con una pureza del 83%. La
recristalización con hexano rinde 0,45 g del producto con una
pureza del 95%, identificado por sus datos espectroscópicos como
2-(tetrahidropiran-2-il)-2-tioisosorbida
5-mononitrato (7).
^{1}H-NMR (CDCl_{3}, 200
MHz): 5,28 (ddd, 1H, J=11,OHz, 5,4Hz, 2,8Hz, CHONO_{2}),
5,0-4,85 (sc, 2H, CHSTHP, CHCHONO_{2}), 4,59 (dd,
1H, J=11,2Hz, 4,6Hz, CHCHSTHP), 4,20-3,80 (sc, 5H,
CH_{2}CHSTHP, H-CHCHONO_{2}, CH_{2 \ THP}),
3,60-3,40 (sc, 2H, H-CHCHONO_{2},
CH_{THP}), 2,00-1,45 (sc, 6H, 3CH_{2 \
THP}).
^{13}C-NMR (CDCl_{3}, 50
Mhz): 89,5 y 89,1 (CHCHS), 83,0 y 81,6 (CHCHONO_{2}), 81,4 y 81,3
(CHSTHP, CHONO_{2}), 74,9 y 74,1 (CH_{2 \ THP}), 69,0 y 68,9
(CH_{2}CHSTHP), 64,8 y 64,7 (CH_{2}CHONO_{2}), 49,1 y 47,6
(CH_{2 \ THP}), 31,3 y 31,2 (CH_{2 \ THP}), 25,4 (CH_{2 \
THP}), 21,7 y 21,6 (CH_{2 \ THP}).
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A una solución de 0,170 g (1,72 mmol) de
succinimida en EtOH se añade a 0,323 g (1,56 mmol) de
2-tioisosorbida 5-mononitrato (1).
Tras la aparición de un precipitado blanco, se añaden 0,168 mg (2
mmol) de NaHCO_{3}. Tras agitar a temperatura ambiente durante 3
horas y 45 minutos, se añaden otros 100 mg (1,19 mmol) de
NaHCO_{3} y 10 gotas de agua. Tras otra hora y 30 minutos de
agitación, se lleva la mezcla a reflujo. Tras dos horas a reflujo,
se elimina el EtOH a presión reducida y se añaden 150 mL de agua y
150 mL de AcOEt. Se forma una emulsión y se añade NaCl_{(s)}
hasta que las dos fases decantan. La fase orgánica se separa y la
fase acuosa se lava con 2 x 150 mL porciones de AcOEt. Las tres
fases orgánicas se lavan por separado con 100 mL de agua para cada
una y las fases orgánicas se combinan y secan sobre
Na_{2}SO_{4} anhidro. Se filtra, se lava con AcOEt y se elimina
el disolvente de la filtración a presión reducida, obteniéndose así
336 mg de un crudo de reacción que se purifica por cromatografía
flash. Se usa una mezcla de 1:1 CHCl_{3}/AcOEt como eluyente para
la separación cromatográfica y se obtiene una fracción de 98 mg del
producto de interés (8).
^{1}H-NMR (300 MHz,
CDCl_{3}): 5,40-5,32 (1H, cs, CHONO_{2}),
5,04-4,98 (1H, cs, CHCHONO_{2}),
4,70-4,60 (3H, cs, 3CH), 4,36-4,26
(1H, cs, CHOH), 4,22-4,12 (2H, cs,
2H-CH), 4,10-4,00 (3H, cs,
3H-CH), 3,94-3,86 (2H, cs,
2H-CH), 3,68-3,56 (3H, cs,
2CH-S, 1 H-CH), 2,55 (1H, d, J=6,9
Hz, OH).
Espectroscopia infrarroja (en pastilla
KBr): 3461 cm^{-1}, 2987 cm^{-1}, 1642 cm^{-1}, 1465
cm^{-1}, 1279 cm^{-1}, 1077 cm^{-1}, 846 cm^{-1}.
experimental (%): 39,53 C, 34,70 H, 4,77 0, 3,96
N, 17,04 S.
calculado (%): 39,23 C, 34,84 H, 4,66 0, 3,81 N,
17,45 S.
\newpage
Electrospray: 368(M+1).
Impacto electrónico (m/z, (% abundancia
relativa)): 367 (7,4)(M+), 261 (3,8), 160 (8,6), 129 (15,5),
127(14,2), 85 (35,7), 69 (100).
Paso
1
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En un matraz de 500 mL, se disuelven 15 g (74
mmol) de 2-acetiltioisosorbida (13), obtenidos de
acuerdo con WO 00/20420, en 225 mL de EtOH. Se añade una disolución
de 11,3 g de KOH del 85% en 150 mL de agua. La mezcla resultante se
agita a temperatura ambiente durante 2 horas, se neutraliza con
AcOH_{(c)} y se elimina el EtOH a presión reducida. La solución
resultante se lleva a pH básico mediante la adición de NaOH_{(s)}
y se agita a temperatura ambiente mientras que se burbujea una
corriente de aire a través de la solución durante 10 horas. Se
acidifica la solución con HCl_{(c)} y se lleva a pH=4. Se elimina
el agua a presión reducida y el residuo resultante se vuelve a
disolver en CH_{2}Cl_{2}, filtrado y secado sobre
Na_{2}SO_{4} anhidro. Se filtra, se lava la solución y se
elimina el disolvente de la filtración a presión reducida,
obteniéndose así 9,22 g de un crudo de reacción que se purifica
mediante cromatografía flash utilizando diferentes mezclas de
ciclohexano/acetato de etilo como eluyente. La elución se inicia
con 3 L de mezcla 1:1 y, después de ello, el porcentaje del
disolvente polar aumenta, primero con 2 L de mezcla 3:5,
posteriormente con 2 L de mezcla 1:2 y finalmente se eluye
únicamente con AcOEt. Se aíslan 2,64 g del tiol (9) y otros 3,06 g
de disulfuro (10).
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 4,68-4,58 (1H, cs, CHCHOH),
4,48-4,40 (1H, cs, CHCHSH),
4,34-4,18 (1H, bs, s.a. D_{2}O, CHOH),
4,16-4,06 (1H, m H-CHCHSH),
3,96-3,78 (2H, cs, H-CHCHOH,
H-CHCHSH), 3,62-3,50 (1H, cs, 1
H-CHCHOH), 3,48-3,36 (1H, cs, s.a.
D_{2}O, CHS), 2,80-2,60 (1H, bs, d.a. D_{2}O,
OH), 1,75 (1H, d, J=8 Hz, d.a. D_{2}O, SH).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 90,42 (CHCHSH), 81,47 (CHCHOH), 76,27 (CH_{2}CHSH),
74,00 (CH_{2}CHOH), 72,04 (CHOH), 43,81 (CHSH).
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 4,68-4,56 (4H, cs, 2CHCHS, 2CHCHOH),
4,34-4,19 (2H, cs, s.a. D_{2}O, 2 CHOH),
4,19-3,97 (4H, cs, 2CH_{2}CHS),
3,92-3,80 (2H, cs, 2H-CHCHOH),
3,66-3,52 (4H, cs, 2H-CHCHOH, 2CHS),
2,63 (2H, d, J=6,6 Hz, d.a. D_{2}O, 2OH).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 87,42 (2CHCHS), 81,98 (2CHCHOH), 73,93 (2CH_{2}CHOH)
72,89 (2CH_{2}CHS), 72,07 (2CHOH), 54,74 (2CHS).
\newpage
Paso
2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepara una mezcla de nitración mediante la
adición, lenta y cuidadosa, de 1,8 mL de 60% de HNO_{3}, a 0ºC, a
una mezcla de 7,5 mL de anhídrido acético y 12,5 mL de ácido
acético. En un matraz de 100 mL con un refrigerante de reflujo,
termómetro y un agitador magnético se disuelven 2,77 g (8,6 mmol) de
2,2'-ditiodiisosorbida (10), obtenidos de acuerdo
con el ejemplo 8, en 17 mL de ácido acético y se añaden 3,5 mL de
anhídrido acético. Se enfría la mezcla a una temperatura de 0°C en
un baño de hielo y sal. A los 15 minutos, se añaden 4 mL de la
mezcla de nitración previamente preparada, gota a gota. Se agita a
0ºC durante 2 horas, observando la solidificación del crudo de
reacción. Posteriormente, se agita durante 2 horas y 30 minutos a
temperatura ambiente. El crudo de reacción se vierte sobre 100 mL
de agua, se filtra y se lava con mucha cantidad de agua. El sólido
resultante se seca a presión reducida en presencia de
P_{2}O_{5}. Se obtienen 2,69 g de un crudo de reacción que se
purifica mediante cromatografía preparativa de fase reversa. Se
utiliza como eluyente una mezcla 1:1 acetonitrilo:agua. Se aísla
una fracción de 1,01 g del diacetato (14)(R=COCH_{3}) y otra
fracción de 0,5 g de acetato-nitrato (11)(R=
NO_{2}).
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,16-5,02 (2H, cs, 2CHOOO),
4,85-4,76 (2H, cs,
2CH-O-C), 4,63-4,56
(2H, cs, 2CHOC), 4,17-4,05 (2H, cs,
2H-CH), 4,00-3,74 (6H, cs, 6
H-CH), 3,56-3,48 (2H, cs, 2CHS),
2,09 (6H, s, CH_{3}).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 170,27 (2CO), 87,73 (2CHCHS), 80,76 (2CHCHO), 73,79
(2CHO), 72,66 (2CH_{2}
CHS), 70,46 (2CH_{2}CHO), 54,42 (2CHS), 20,63 (2CH_{3}).
CHS), 70,46 (2CH_{2}CHO), 54,42 (2CHS), 20,63 (2CH_{3}).
^{1}H-NMR (200 MHz,
CDCl_{3}): 5,37-5,28 (1H, cs, CHONO_{2}),
5,18-5.06 (1H, cs, CHO-CO),
5,02-4,94 (1H, cs, CHOC), 4,87-4,78
(1H, cs, CHOC), 4,64-4,56 (2H, cs, 2 CHOC),
4,18-3,75 (8H, cs, 4CH_{2}),
3,59-3,50 (2H, cs, 2 CHS), 2,10 (3H, s,
CH_{3}).
^{13}C-NMR (50 MHz,
CDCl_{3}): 170,29 (CO), 88,25 (CH), 87,43 (CH), 81,58 (CH), 81,16
(CH), 80,79 (CH), 73,80 (CH), 72,78 (CH_{2}), 72,66 (CH_{2}),
70,51 (CH_{2}), 69,32 (CH_{2}), 54,42 (CHS), 53,72 (CHS), 20,65
(CH_{3}).
Ionización química (NH_{3}): 410
(M+1)^{+}, 427 (M+18)^{+}.
El método utilizado en los ensayos es
sustancialmente el mismo que el descrito en las siguientes
referencias:
\text{*}Furchgot, R.F., "Methods in
nitric oxide research"; Feelisch & Stamler, eds., John Wiley
& Sons, Chichester, England, pp 567-581.
\text{*}Trongvanbichnam K., et
al., Jpn. J. Pharmacol. 71 (1996);
167-173.
\text{*}Salas, E., et al.,
Eur. J. Pharmacol. 258 (1994);
47-55.
Los diferentes compuestos se someten a ensayo a
5 concentraciones diferentes, con un rango de concentración que
oscila entre 0.0001 y 10 mM, utilizando entre 6 y 9 anillos
arteriales para cada compuesto. Los resultados obtenidos se comparan
con los del isosorbida 5-mononitrato, que se
utiliza como producto de referencia.
Los resultados se muestran en la tabla 1 y se
expresan como EC_{50} (concentración efectiva 50), que es la
concentración de cada uno de los compuesto sometido a ensayo que
produce una vasodilatación igual al 50% del tono máximo al que el
anillo arterial se ha contraído con 1 \muM de Fenilefrina.
| Ensayo de vasorelajación | |
| Compuesto | EC_{50} mM (media \pm SD) |
| Isosorbida 5-mononitrato | 0.92 \pm 0.2 |
| (1) | 0.041 \pm 0.006 |
| (2) | 0.0053 \pm 0.001 |
| (3) | 0.043 \pm 0.006 |
| (4) | 0.338 \pm 0.01 |
| (6) | 0.0012 \pm 0.0001 |
| (7) | 0.05 \pm 0.009 |
| (9) | 0.024 \pm 0.005 |
| (12) | 0.023 \pm 0.010 |
Como puede observarse en la tabla, todos los
compuestos sometidos a ensayo son más potentes como vasorelajantes
que el producto de referencia.
El método empleado en los ensayos es
sustancialmente el mismo que el descrito en la siguiente
referencia:
\text{*}Salas, E., et al.,
Br. J. Pharmacol. 112 (1994);
1071-1076.
Los compuestos se someten a ensayo a cuatro
concentraciones diferentes utilizando plasma humano rico en
plaquetas obtenido de por lo menos 6 donantes sanos diferentes. Los
resultados obtenidos se comparan con los de
5-isosorbida mononitrato, que se utiliza como
producto de referencia.
Los resultados se muestran en la tabla 2 y se
expresan como IC_{50} (concentración inhibidora 50), que es la
concentración de cada compuesto sometido a ensayo que producen una
inhibición igual al 50% de la agregación obtenida mediante una
concentración submáxima (1-4 \muM ) de ADP (una
concentración submáxima de ADP es la cantidad mínima de ADP que
produce la agregación máxima).
| Ensayo de inhibición de la agregación de las plaquetas | |
| (Plasma humano rico en plaquetas) | |
| Compuesto | IC_{50} mM (media \pm SD) |
| Isosorbida 5-mononitrato | 2.68 \pm 0.33 |
| (1) | 0.11 \pm 0.01 |
| (2) | 0.01 \pm 0.007 |
| (3) | 0.41 \pm 0.09 |
| (4) | 1.00 \pm 0.01 |
| (5) | 0.85 \pm 0.15 |
| (6) | 0.0019 \pm 0.0005 |
| (7) | 0.58 \pm 0.021 |
| (12) | 0.089 \pm 0.01 |
Como puede observarse en la tabla 2, todos los
compuestos sometidos a ensayo tienen una potente actividad
inhibidora de la agregación de plaquetas, actividad que resulta
superior a la del compuesto de referencia.
Los métodos utilizados en los ensayos para
determinar el efecto de los compuestos sobre la adhesión de
plaquetas y monocito a células endoteliales humanas son
sustancialmente iguales a los descritos en las siguientes
referencias:
Del Maschio A. et al., J Cell
Biol 1996; 135: 497-510
Bombeli T. et al., Blood
1999; 93: 3831-3838
Colomé C. et al;
Atherosclerosis 2000; 149: 295-302;
y
Martin-Satue M. et
al; British Journal of Cancer 1999; 80:
1169-1174.
La adhesión de células monocíticas U937 a
células endoteliales confluentes de la microvasculatura
humana
(HMEC-1) activadas mediante TNF-\alpha (50 ng/ml) y de las plaquetas a células endoteliales umbilicales humanas (HUVEC) activadas mediante LDL mínimamente modificada/50 \mug/ml) fue los métodos utilizados para determinar el efecto inhibidor de los compuestos sobre la adhesión celular. La adhesión de los monocitos previamente marcados con calcein-AM (Molecular Probes) a HMEC-1 activado mediante TNF-\alpha, fue evaluada mediante la determinación de la fluorescencia celular asociada. La adhesión de plaquetas humanas lavadas previamente marcadas con MoAb contra CD36-FITC a HUVEC activado (50 \mug/ml de LDL mínimamente modificado, LDLmm) fue determinada mediante Citometría de Escaneado Láser (LSC, Olimpus), determinando la fluorescencia celular asociada. Los resultados se expresan como el porcentaje de inhibición con respecto del control (adhesión de las células en ausencia de compuestos). La tabla 3 muestra el efecto de los compuestos sobre la adhesión U947 a HMEC-1 activado. La tabla 4 muestra el efecto de los compuestos sobre la adhesión de plaquetas a HUVEC activado.
(HMEC-1) activadas mediante TNF-\alpha (50 ng/ml) y de las plaquetas a células endoteliales umbilicales humanas (HUVEC) activadas mediante LDL mínimamente modificada/50 \mug/ml) fue los métodos utilizados para determinar el efecto inhibidor de los compuestos sobre la adhesión celular. La adhesión de los monocitos previamente marcados con calcein-AM (Molecular Probes) a HMEC-1 activado mediante TNF-\alpha, fue evaluada mediante la determinación de la fluorescencia celular asociada. La adhesión de plaquetas humanas lavadas previamente marcadas con MoAb contra CD36-FITC a HUVEC activado (50 \mug/ml de LDL mínimamente modificado, LDLmm) fue determinada mediante Citometría de Escaneado Láser (LSC, Olimpus), determinando la fluorescencia celular asociada. Los resultados se expresan como el porcentaje de inhibición con respecto del control (adhesión de las células en ausencia de compuestos). La tabla 3 muestra el efecto de los compuestos sobre la adhesión U947 a HMEC-1 activado. La tabla 4 muestra el efecto de los compuestos sobre la adhesión de plaquetas a HUVEC activado.
| Inhibición de adhesión de monocito U937 a células endoteliales humanas activadas | |
| HMEC-1 | |
| Compuesto | % de inhibición a control (media \pm s.e.m.) |
| (1) | 30 \pm 8 |
| (12) | 15 \pm 2 |
| Inhibición de adhesión de plaquetas a HUVEC activado mediante LDLmm | |
| (50 \mug/ml) | |
| Compuesto | % de inhibición a control (media \pm s.e.m.) |
| (12) | 87,5% \pm 5,1% |
El método utilizado en los ensayos para
determinar el efecto de los compuestos en la transcitosis de LDL en
células endoteliales microvasculares humanas es sustancialmente el
mismo que el descrito en Colomé C. et al; Atherosclerosis
2000; 149: 295-302. Ente ensayo permite predecir el
potencial antiaterosclerótico de los compuestos, ya que la
acumulación de LDL en la pared vascular como consecuencia del
transporte activo de una célula endotelial vascular es uno de los
primeros pasos en el desarrollo de la aterosclerosis.
El método empleado en los ensayos para aislar
las partículas de LDL a partir de plasma humano fresco y el marcaje
con Dil es sustancialmente igual al descrito en Pedreño J. et
al., Atherosclerosis 2001; 155: 99-112, y
Stephan Z.F. y Yuracheck E.C. J. Lipid Res. 1993;
34:325-330.
HMEC-1 activadas (100 \muM
histamina) y no activadas fueron cultivadas hasta concluencia en el
pocillo superior de insertos de cocultivo (Falcon HTS FluorBloK).
Posteriormente, se añadió LDL-Dil (hasta 200
\mug/ml) y se incubaron las células durante 2 h en presencia y
ausencia de los compuestos. Tras esas dos horas, se evaluó la
transcitosis de partículas LDL-Dil a través de
células endoteliales mediante la determinación de la presencia de
fluorescencia en el pocillo inferior del inserto de cocultivo. Los
resultados se expresan en forma de porcentaje de inhibición con
respecto del control (en ausencia de compuestos). La tabla 5 muestra
el efecto de los compuestos en la transcitosis
LDL-Dil a través de HMEC-1.
| Inhibición de transcitosis LDL en células endoteliales microvasculares humanas | ||
| % de inhibición a control (media \pm s.e.m.) | ||
| Células en reposo | Células estimuladas | |
| Compuesto | ||
| (1) | 58 \pm 15 | 122 \pm 8 |
| (12) | 51 \pm 19 | 80 \pm 12 |
El método utilizado en los ensayos para
determinar el efecto de los compuestos sobre la oxidación LDL es
sustancialmente el mismo que el descrito en las siguientes
referencias:
Spranger T., et al., Chem.
Phys. Lipids 1998; 91: 39-52
Lynch S.M., et al., Biochim.
Biophys. Acta 2000; 1485: 11-22
Pedreño J., et al., Thromb.
Res. 2000; 99: 51-60.
El método utilizado en los ensayos para aislar
las partículas LDL del plasma humano fresco es sustancialmente
igual al descrito en Pedreño J., et al., Atherosclerosis
2001; 155: 99-112.
La modificación oxidativa de las lipoproteínas
de baja densidad (LDL) es considerada actualmente como el
acontecimiento central del desarrollo de la enfermedad
cardiovascular aterosclerótica. La exposición de LDL a hemina libre
de globina (el complejo de ión férrico (Fe^{3+}) con
protoporfirina IX), derivada de la hemoglobina de los eritrocitos
circulantes sirve de fuente fisiológica del prooxidante Fe^{3+}
capaz de promover la oxidación de LDL. Los compuestos se añaden
in vitro para determinar su actividad inhibidora en la
oxidación LDL inducida por la hemina y H_{2}O_{2}. Se incubó
LDL a una concentración final de proteína de 0,2 mg/ml en presencia
de 2,5 \muM de hemina y 5 \muM H_{2}O_{2}. La modificación
oxidativa de las partículas LDL fue evaluada mediante la medición
de los dienos conjugados. Las muestras experimentales fueron
incubadas a 37°C y el aumento de la absorbancia a 234 nm fue
registrado automáticamente cada 5 min durante al menos 5 h. El
efecto de los compuestos sobre la oxidación LDL inducida por la
hemina fue sometido a ensayo a 7 concentraciones diferentes
utilizando preparados de LDL de 7 donantes sanos diferentes. La
tabla 6 muestra la actividad inhibidora de los compuestos a 10
\muM expresada como el porcentaje de aumento del lag phase
(tiempo que se requiere para que se inicie la reacción de formación
de dienos conjugados) con respecto al control.
| Inhibición de oxidación LDL | |
| Compuesto | % de incremento del lag phase con respecto al control (media \pm s.e.m.) |
| Isosorbida 5-mononitrato | 0 |
| (1) | 290 \pm 8 |
| (12) | 117 \pm 56 |
El método utilizado en los ensayos para
determinar el efecto de los compuestos sobre la capacidad de
oxidación del plasma es sustancialmente igual al descrito en
Spranger T. et al., Chem Phys Lipids 1998; 91:
39-52.
La oxidación de lipoproteínas inducida in
vitro en la matriz plasmática pretende representar un modelo
relevante de la oxidación de Iipoproteínas en la pared arterial. La
oxidación de las Iipoproteínas fue evaluada como la capacidad de
oxidación del plasma heparinizado y se midió mediante
espectrofotometría como un aumento en la absorbancia a 234 nm. Se
añadieron los compuestos in vitro para determinar su
actividad inhibidora sobre la capacidad de oxidación del plasma
inducido por Cu^{2+} (CuSO_{4}). El plasma heparinizado fue
diluido con solución salina tampón fosfato (PBS) que contenía 0.16
M de NaCl y la oxidación se inició con 50 \muM CuSO_{4}. Se
incubaron las muestras experimentales a 37°C y el aumento en la
absorbancia a 234 nm fue registrado automáticamente cada 15 minutos
durante al menos 12 h. El efecto de los compuestos sobre la
capacidad de oxidación del plasma inducido por Cu^{2+} fue
sometido a ensayo a 7 concentraciones diferentes utilizando plasma
heparinizado de 7 donantes sanos diferentes. La tabla 7 muestra la
actividad inhibidora de los compuestos a 10 \muM expresada como el
porcentaje de aumento del lag phase con respecto al control.
\vskip1.000000\baselineskip
| Inhibición de oxidación de plasma | |
| Compuesto | % de incremento del laga phase con respecto al control (media \pm s.e.m.) |
| (1) | 245 \pm 26 |
| (2) | 7 \pm 1 |
| (12) | 200 \pm 10 |
| Isosorbida 5-mononitrato | 0 |
El método utilizado es sustancialmente igual al
descrito por Shore B, Shore V. en: Day CE (ed) Atherosclerosis Drug
Discovery, Plenum Press, New York and London, pp
123-141, 1976.
Se mantuvieron veintiún machos de conejo blanco
de Nueva Zelanda (de 10 semanas de edad al principio del protocolo)
bajo condiciones estándar (22°C, 40% a 60% de humedad) con ciclos
día/noche regulares y acceso libre a agua. Los animales fueron
asignados a uno de los 3 grupos de manera aleatoria. El grupo 1
(n=5) recibió una dieta de mantenimiento estándar durante 75 días;
el grupo 2 (n=16) recibió la misma dieta pero con un suplemento del
1% (peso/peso) de colesterol durante 45 días. Al final de este
periodo, se dividió el grupo 2 en dos grupos aleatorios. El grupo
tratado (n=9) recibió durante otros 30 días 1,9 mg/kg/día del
compuesto 12 (manteniendo el 1% de colesterol en su dieta) y el
grupo no tratado (n=7) recibió una dieta con un 1% de colesterol
durante otros 30 días.
Las variables del estudio incluían triglicéridos
y colesterol total. Los animales fueron sacrificados al día 75 tras
el inicio del protocolo con pentobarbital i.v. Se extrajo la aorta
completa hasta 1 o 2 cm de las arterias ilíacas y se fijó en tampón
fosfato 0,1 M (pH 7,4) conteniendo 4% de glutaraldehido. Los
análisis macroscópico y microscópico de las muestras se llevaron a
cabo de manera ciega. Se diseccionaron las aortas y se tiñeron con
Red Oil. Se eliminó la grasa adventicia y se abrieron las aortas
longitudinalmente, se sumergieron en una solución de Red oil
durante la noche, se lavaron con propilenglicol y se fijaron sobre
una superficie plana. Se tomaron imágenes de las aortas con una
cámara estándar. Posteriormente, se tomaron tres secciones de la
zona del arco aórtico, la aorta torácica y la aorta abdominal
(orificios renales). Se fijaron las secciones con parafina, se
cortaron con un microtomo Ultracut (Spain) y se tiñeron de forma
convencional con hematosilina eosina. Se tomaron imágenes de las
aortas teñidas con Red Oil y hematosilina eosina con una cámara
estándar. Se importaron dichas imágenes a la aplicación Photoshop
(Adobe) mediante un escáner de diapositivas AGFA. Mediante el
procedimiento previamente descrito por Lillie RD (Lillie, R.D.,
1994, Stain Technology, vol. 19, pp 55) se determinó la superficie
de lesión en toda la aorta y el grosor de la íntima en cortes
histológicos. La superficie ó área de la lesión arteriosclerótica
(evaluada a partir de las aortas teñidas con el Red Oil) se
determina por el número de pixeles de la imagen convertidos a
mm^{2}. El grosor de la íntima arterial (evaluado a partir de las
muestras histológicas teñidas con
Hematosilina-Eosina) se cuantificó en mm^{2} de
forma similar a como se describe para la superficie o área de la
lesión aterosclerótica. Para ello, se seleccionaron las secciones
que contenían lesiones de estrías grasas y se determinó el grosor de
la íntima (desde la media arterial hasta el endotelio). El grosor
medio de la zona de lesión fue evaluado en secciones
representativas por cuadrante aórtico y se calculó la media
estadística.
La tabla 8 muestra los niveles plasmáticos en
ayunas de el colesterol total, el colesterol HDL y de
triglicéridos. El examen estadístico (t de Student) no reveló
diferencia significativa alguna entre el grupo medicado y el grupo
control (el grupo no medicado pero con dieta alta en colesterol) en
lo que respecta a los lípidos plasmáticos.
| Perfil de lípidos plasmáticos [mg/dl] (media \pm s.e.m.) | ||||
| Control | Tratado con el ejemplo del compuesto (12) | |||
| Basal | Final | Basal | Final | |
| Colesterol total | 42 \pm 4.4 | 1073.9 \pm 4.9 | 33.3 \pm 4.1 | 1461 \pm 147 |
| Triglicéridos | 185 \pm 50 | 312.7 \pm 130 | 121 \pm 34 | 347 \pm 82 |
El porcentaje de superficie cubierta por lesión
ateroscleróticas se muestran en la tabla 9.
| Lesiones arterioscleróticas | |
| Grupo | Porcentaje de área de lesiones arterioscleróticas (%) |
| (media \pm s.e.m.) | |
| Control | 62 \pm 6 |
| Tratado con el ejemplo de compuesto (12) | 15 \pm 3 |
El grosor de la capa de íntima de la aorta se
muestra en la tabla 10.
| Grosor de la capa de íntima de la aorta | |
| Grupo | Grosor mm^{2} (media \pm s.e.m.) |
| Control | 0.323 \pm 0.013 |
| Tratado con el ejemplo de compuesto (12) | 0.096 \pm 0.009 |
En la tabla 8 se muestra que no existía
diferencia alguna en los lípidos plasmáticos entre el grupo de
control y el medicado, por lo que se demuestra que el compuesto
(12) no tuvo influencia alguna sobre el metabolismo de lípidos. Tal
y como se puede ver en la tabla 9 y en la tabla 10, tanto el
porcentaje de área de las lesiones ateroscleróticas como el grosor
de íntima fueron reducidos significativamente en el grupo tratado
con el compuesto (12) en comparación con el grupo de control.
El efecto preventivo y terapéutico de los
presentes compuestos sobre la aterosclerosis también se ilustrará a
través del siguiente ejemplo.
El efecto preventivo y curativo de la
aterogénesis de los compuestos se investigó en el modelo de ratón
deficiente de apo E alimentado con dieta estándar. Se alimentó
ratones hembras y machos con deficiencia de apo E (OLA129X C57/BL6J)
de tres meses de edad con dieta estándar. El grupo control incluía
8 ratones machos y 7 ratones hembras, mientras que el grupo tratado
consistía en 8 ratones machos y 7 ratones hembras. Todos los
animales tenían niveles de colesterol y peso corporal similares al
comienzo del experimento. Tanto el grupo de control como el tratado
fueron estudiados durante 12 semanas. El grupo de control recibió 5
mg/Kg/día del compuesto (12).
Los parámetros de lípidos plasmáticos
(colesterol total, colesterol HDL y triglicéridos) y el estrés
oxidativo (medido como niveles de
8-iso-prostaglandina F2\alpha)
fueron medidos a intervalos predeterminados. Tras la finalización
del periodo de administración, la aorta torácica fue aislada y
teñidas para determinar el área de las lesiones ateroscleróticas
depositadas en la pared interna del vaso sanguíneo de acuerdo con
el método de Red Oil (Lillie, R.D., 1994, Stain Technology, vol. 19,
pp 55).
Los niveles plasmáticos en ayunas de el
colesterol total, el colesterol HDL, los triglicéridos y los
niveles de 8-iso-prostaglandina
F2\alpha- se muestran en la tabla 11.
\vskip1.000000\baselineskip
| (media \pm s.d.) | ||||
| Macho | Hembra | |||
| Control | Tratado con | Control | Tratado con | |
| compuesto (12) | compuesto (12) | |||
| Colesterol total (mmol.L-1) | 14.3 \pm 2 | 18 \pm 3 | 9.5 \pm 2 | 11.3 \pm 1.5 |
| Colesterol HDL (mmol.L-1) | 0.5 \pm 0.15 | 0.47 \pm 0.15 | 0.4 \pm 0.1 | 0.48 \pm 0.13 |
| Triglicéridos (mmol.L-1) | 2.6 \pm 0.6 | 1.5 \pm 0.4 | 1.9 \pm 0.6 | 1.3 \pm 0.2 |
| 8-iso-prostaglandina F2\alpha (pg.mL-1) | 273 \pm 19 | 101 \pm 13 | 182 \pm 19 | 99 \pm 7 |
El porcentaje de superficie ó área cubierto por
las lesiones ateroscleróticas depositadas en la pared interna del
vaso sanguíneo y el área cubierta con macrófagos se muestran en la
tabla 12.
\vskip1.000000\baselineskip
| Grupo | Área cubierta con macrófagos | Área de lesiones ateroscleróticas |
| [\mum^{2}] (average \pm s.e.m) | [\mum^{2}] (media \pm s.e.m.) | |
| Control | 80 \pm 27 | 60 \pm 8 |
| Tratado con ejemplo de compuesto (12) | 55 \pm 19 | 45 \pm 9 |
En la tabla 11 se muestra que el compuesto (12)
es capaz de descender los niveles de triglicéridos en el plasma,
así como el estrés oxidativo de estos animales. En la tabla 12 se
muestra cómo el compuesto (12) reduce tanto el área de lesiones
arterioscleróticas como el área cubierta con macrófagos.
El método utilizado es sustancialmente igual al
descrito por Kurz (Kurz K.D., et al., Thromb. Res. 1990,
60:269-280) y modificado por Feuerstein (Feuerstein
G.Z., et al., Artherioscler. Thromb. Vasc. Biol. 1999, 19:
2554-25562).
Las ratas recibieron una única dosis oral de 100
mg/Kg de los compuestos.
Cuarenta y cinco minutos después de
administrarse la dosis, las ratas fueron anestesiadas con
pentobarbital sódico (40 mg/kg, i.p.) y fueron colocadas
posteriormente de manera dorsal sobre una mesa quirúrgica calentada
(37°C).
Se aisló la arteria carótida izquierda y se
colocó bajo ésta una lámina de Parafilm M (7 x 20 mm, American
National Can). Se colocó una sonda electromagnética de
flujo(Transonic Systems Inc.) en la arteria para medir el
flujo de sangre.
Sesenta minutos tras la administración del
producto, se colocó (y no se retiró durante todo el experimento) un
parche de papel de filtro saturado con una solución de FeCl_{3}
(70%) sobre la arteria carótida izquierda y distal a de la sonda de
flujo para iniciar la trombosis. Se controló el flujo de sangre
durante los 60 min posteriores a la aplicación del parche en la
arteria.
Se consideró que el vaso se había ocluido
totalmente por el trombo formado cuando se detectó ausencia del
flujo sanguíneo (0,0 ml/min). En este modelo, la formación de
trombos oclusivos normalmente tiene lugar en un plazo de 15 o 20
minutos en animales no tratados. Se consideró que un animal estaba
totalmente protegido por el tratamiento si un trombo no ocluía el
vaso durante el periodo de estudio (60 min tras la aplicación
continua del parche de FeCl_{3}).
Los resultados se muestran en la tabla 13 y se
expresan como el porcentaje de animales totalmente protegidos por
el tratamiento.
\vskip1.000000\baselineskip
| Actividad antitrombótica in vivo | |
| Compuesto | % de animales totalmente protegidos |
| 1 | 100 |
| 3 | 100 |
| 4 | 80 |
| 12 | 71 |
\vskip1.000000\baselineskip
Como puede observarse en la tabla 13, todos los
compuestos sometidos a ensayo tiene una potente actividad
antitrombótica in vivo.
El método utilizado es sustancialmente igual al
descrito por Kurz (Kurz K.D., et al., Thromb. Res. 1990, 60:
269-280) y modificado por Feuerstein (Feuerstein
G.Z., et al., Artherioscler. Thromb. Vasc. Biol. 1999, 19:
2554-25562).
Las ratas recibieron una única dosis oral o la
combinación de dos compuestos, tal y como se describe en la tabla
14. las dosis de los compuestos utilizados no modificaron la
presión arterial o la frecuencia cardíaca de los animales.
Cuarenta y cinco minutos después de
administrarse la dosis, las ratas fueron anestesiadas con
pentobarbital sódico (40 mg/kg, i.p.) y fueron colocadas
posteriormente de manera dorsal sobre una mesa quirúrgica calentada
(37°C).
Se aisló la arteria carótida izquierda y se
colocó bajo ésta una lámina de Parafilm M (7 x 20 mm, American
National Can). Se colocó una sonda electromagnética de flujo
(Transonic Systems Inc.) en la arteria para medir el flujo de
sangre.
Sesenta minutos tras la administración del
producto, se colocó (y no se retiró durante todo el experimento) un
parche de papel de filtro saturado con una solución de FeCl_{3}
(70%) sobre la arteria carótida izquierda y distal a la sonda de
flujo para iniciar la trombosis. Se controló el flujo de sangre
durante los 60 min posteriores a la aplicación del parche en la
arteria.
Se consideró que el vaso se había ocluido por el
trombo formado cuando se detectó ausencia de flujo sanguíneo (0,0
ml/min). En este modelo, la formación de trombos oclusivos
normalmente tiene lugar en un plazo de 15 o 20 minutos en animales
no tratados. Se consideró que un animal estaba totalmente protegido
por el tratamiento si un trombo no ocluía el vaso durante el
periodo de estudio (60 min tras la aplicación del parche de
FeCl_{3}).
El concepto de producto fraccional fue utilizado
para identificar la sinergia entre los compuestos. De acuerdo con
este concepto, si consideramos la protección completa de un animal
como:
Inhibición \
fraccional = \left(1 - \frac{A}{B}\right) \times
100
Donde A es la tasa de animales con oclusión
trombótica en el grupo tratado y B es la tasa de animales con
oclusión trombótica en el grupo de control.
Para dos fármacos que actúan de manera
independiente:
Inhibición \
fraccional = \left[1-\left(\frac{A_{1}}{B} \times
\frac{A_{2}}{B}\right)\right] \times
100
donde A_{1} es la tasa de
animales con oclusión trombótica en el grupo de tratamiento
A_{1}; A_{2} es la tasa de animales con oclusión trombótica en
el grupo de tratamiento A_{2}; y B es la tasa de animales con
oclusión trombótica en el grupo de
control.
Si la protección obtenida con la combinación de
los fármacos es superior a la inhibición fraccional para dos
compuestos actuando de manera independiente, entonces se considera
que el sinergismo tiene lugar.
Los resultados se muestran en la tabla 14 y se
expresan como la tasa de animales con oclusión trombótica en cada
grupo.
\vskip1.000000\baselineskip
| Grupo | Tasa de animales con oclusión trombótica |
| (% de animales protegidos) | |
| Control | 1 (0%) |
| Aspirina (100 mg/Kg/día, oral, durante 3 días) | 0.50 (50%) |
| Compuesto 12 (22.3 mg/Kg, oral, agudo el día de estudio) | 0.5 (50%) |
| Aspirina (100 mg/Kg/día, oral durante 3 días) + | 0 (100%) |
| compuesto 12 (22.3 mg/Kg, oral, agudo el día de estudio) | |
| Clopidogrel (1.5 mg/Kg/día, oral durante 3 días) | 0.50 (50%) |
| Clopidogrel (1.5 mg/Kg/día, oral durante 3 días) + | 0.17 (83%) |
| compuesto 12 (22.3 mg/Kg, oral, agudo el día de estudio) |
\vskip1.000000\baselineskip
Inhibición \
fraccional \ (aspirina + compuesto \ 12) =
\left[1-\left(\frac{0\text{.}5}{1}\times\frac{0\text{.}5}{1}\right)\right]\times
100 =
75%
Dado que el porcentaje de animales protegido con
la combinación de los dos fármacos (aspirina + compuesto 12) es
superior al 75% (es de un 100%) existe un sinergismo entre los dos
productos.
Inhibición \
fraccional \ (clopidogrel + compuesto \ (12)) =
\left[1-\left(\frac{0\text{.}5}{1}\times\frac{0\text{.}5}{1}\right)\right]\times
100 =
75%
Dado que el porcentaje de animales protegido con
la combinación de los dos fármacos (clopidogrel + compuesto 12) es
superior al 75% (es de un 83%) existe un sinergismo entre los dos
productos.
\newpage
El método utilizado es sustancialmente igual al
descrito por Caveda L., et al. (J. Clin. Invest. 1996; 98:
886-893).
Para la determinación de la capacidad de inhibir
la citotoxicidad inducida por radicales de oxígeno, se utilizaron
Células Endoteliales Umbilicales Humanas (HUVEC). Se aislaron las
HUVEC y se cultivaron en M199 y 20% FCS (Fetal Calf Serum).
El ensayo XTT se basa en la hidrólisis por las
células metabólicamente activas de la sal de tetrazolio XTT para
formar un producto anaranjado (formazan). El formazan formado es
soluble y se cuantifica directamente mediante
espectrofotometría.
Las células HUVEC fueron cultivadas hasta un
estado de sub-confluencia en una placa de cultivo
de 96 pocillos y fueron pretratadas con 50 \muM del compuesto
durante una hora. Tras ello, las células fueron tratadas con 800
\muM de peroxinitrito durante toda la noche.
Tras la incubación nocturna, las células fueron
incubadas con la solución amarilla XTT (concentración final 0.3
mg/ml) durante 4 horas. Tras este periodo de incubación, se formó
la solución de formazan, la cual fue cuantificada
espectrofotométricamente a 450 nm utilizando un lector de placas de
ELISA.
Los resultados se muestran en la tabla 15 y se
expresan como el porcentaje de células muertas.
\vskip1.000000\baselineskip
| Actividad citoprotectora in vitro | |
| Compuesto | % de células muertas |
| 1 | 80 |
| 2 | 80 |
| 3 | 80 |
| 12 | 50 |
\vskip1.000000\baselineskip
Como puede observarse en la tabla 15, todos los
compuestos sometidos a ensayo tienen una actividad protectora
(p<0,05) de la célula contra daños celulares inducidos por
radicales de oxígeno.
Los experimentos se llevaron a cabo de acuerdo
con el modelo de rata descrito previamente por Hirata Y et
al (Journal of Cardiovascular Pharmacology. 1998,
31:322-326)
Tras un periodo de ayuno alimenticio de 6 horas,
los animales fueron divididos en grupos de al menos 8 animales cada
uno.
Las dosis de productos se administraron mediante
sonda oral 1 hora antes de la inducción de la isquemia. Los
animales fueron anestesiados con pentobarbital (40 mg/kg, i.p.) y se
registró el electrocardiograma de la derivación estándar II para
detectar la depresión de la onda S. Se inyectaron 0.3 U/kg de
arginina-vasopresina (AVP) (Sigma Chemicals, St
Louis, Mo, USA) en la arteria carótida para inducir la
vasoconstricción de arterias coronarias pequeñas y el aumento de la
resistencia coronaria. Los grupos tratados recibieron AVP 60 min
después del fármaco de ensayo. En todos los grupos, tras la
inyección de AVP, se efectuó un registro de ECG de 10 minutos.
Los resultados se muestran en la tabla 16 y se
expresan como decrementos de la onda S (\muvolts).
| Compuesto | Dosis (mg/kg, p.o.) | Decremento de onda S (\muV) | Protección del decremento de onda S (%) |
| Vehículo | - | 46.2 \pm 4.9 | - |
| 12 | 20 | 22.6 \pm 5.9 | 52 |
| 12 | 100 | 8.6 \pm 2.8 | 81 |
| 9 | 20 | 16.5 \pm 9.8 | 64 |
| 9 | 100 | 9.7 \pm 4.6 | 79 |
| 4 | 20 | 36.5 \pm 11.6 | 21 |
| 4 | 100 | 5.9 \pm 3.9 | 87 |
Como puede observarse en la tabla 16, todos los
compuestos sometidos a ensayo protegen contra el daño cardíaco por
isquemia-reperfusión.
Claims (32)
1. Un compuesto de acuerdo con la fórmula (I) o
una sal farmacéuticamente aceptable del mismo:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
donde
n es un número entero de entre 0, 1, o 2,
X representa -S(O)_{m}-, -(C=O)-
o un enlace sencillo, donde m es un número entero de entre 0, 1, o
2, y
R representa hidrógeno o un residuo de entre los
siguientes:
- C_{1-6} alquilo;
- C_{2-6} alquenilo;
- C_{3-8} cicloalquilo;
- C_{3-8} cicloalquilo, donde un grupo CH_{2} es sustituido por O, S, NH o NCH_{3};
- C_{4-8} cicloalquenilo;
- C_{4-8} cicloalquenilo, donde un grupo CH_{2} es sustituido por O, S, NH o NCH_{3};
- fenilo;
- piridilo;
- tiofenilo;
- nitrosilo;
- S-cisteinil;
- S-glutationil; y
y este último residuo puede estar
opcionalmente sustituido hasta por tres grupos independientes
seleccionados de entre C_{1-6} alquilo,
C_{2-6} alquenilo, C_{3-8}
cicloalquilo, C_{4-8} cicloalquelino, acetiloxi,
hidroxilo, ONO_{2} y
halógeno.
Siempre que
Cuando RXS(O)_{n}- y -ONO_{2}
estén en forma trans uno respecto al otro, en lo que respecta al
plano de anillo, tal y como se describe en las fórmulas (Ia) y
(Ib):
\vskip1.000000\baselineskip
entonces
RXS(O)_{n}- no representa 22 ,
donde Z es un grupo alquilo C_{1-4},
grupo arilo o grupo aralquilo, el cual puede estar eventualmente
sustituido.
2. Un compuesto de la fórmula (I) o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con la
reivindicación 1, donde m, n o ambos sea 0.
3. Un compuesto de la fórmula (I) o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con la
reivindicación 1 o 2, donde X represente un enlace sencillo o
-S-.
4. Un compuesto de la fórmula (I) o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 3, donde R represente hidrógeno,
C_{1-6} alquilo, C_{2-6}
alquenilo, C_{3-8} cicloalquilo,
C_{4-8} cicloalquenilo,
(C_{1-6} alquilo)C_{3-8}
cicloalquilo, (C_{1-6} alquilo)
C_{4-8} cicloalquenilo, fenilo o
(C_{1-6} alquilo)fenilo.
5. Un compuesto de la fórmula (I) o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 4, donde R sea C_{1-6}
alquilo.
6. Un compuesto de la fórmula (I) o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 3, seleccionado de entre:
2-tioisosorbida
5-mononitrato,
5,5'-dinitrato-2,2'-ditio-diisosorbida,
2-metiltioisosorbida
5-mononitrato,
2-metilsulfinilisosorbida
5-mononitrato,
2-metilsulfonilisosorbida
5-mononitrato,
S-nitroso-2-tioisosorbida
5-mononitrato,
2-(tetrahidropirano-2-il-tio)-isosorbida
5-mononitrato,
2-(isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato, y
2-(5'-acetiloxiisosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato.
7. Una composición farmacéutica que contenga al
menos un compuesto de la fórmula (I) o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, como ingrediente(s) activo(s),
opcionalmente junto con uno o más excipiente(s),
activador(es), agente(s) quelante(s) y/o
estabilizador(es) fisiológicamente aceptables.
8. Una composición farmacéutica de acuerdo con
la reivindicación 7 que además contenga un trombolítico,
preferentemente un activador del plasminógeno, uroquinasa,
estreptoquinasa, alteplasa o anistreplasa.
9. Una composición farmacéutica de acuerdo con
la reivindicación 7 u 8, que además contenga un anticoagulante,
preferentemente heparina, dicumarol, acenocumarol, enoxaparina o
polisulfato de pentosano.
10. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 9, que además contenga un
antitrombótico, preferentemente aspirina, dipiridamol, ticlopidina,
clopidrogel, triflusal, polisulfato de pentosano o abciximab.
11. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 10, que además contenga una
inmunoglobulina o un fragmento de ésta con especificidad para la
glicoproteína IIb/IIIa.
12. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 11, que además contenga un
hipolipemiante, preferentemente simvastatína, lovastatína,
atorvastatína, pravastatína, fluvastatína, lifibrol, acifrán,
acitemato o glunicato.
13. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 12, que además contenga un
antioxidante/secuestrador de radicales libres, preferentemente
seleccionado de entre nicaravén, ranolazina, emoxipina, glutationa,
edaravona, raxofelast, licopene, acetilcisteina,
N-Acetil-L-cisteina,
N-acetilcisteina o carvedilol.
14. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 13 para la prevención y/o
tratamiento de la aterosclerosis, disfunciones endoteliales,
espamos vasculares, vasculopatía del trasplante alogénico,
disfunciones del sistema circulatorio, activación de plaquetas,
trombosis, ictus, condiciones patológicas en las que el estrés
oxidativo desempeña un importante papel en su patogénesis,
condiciones patológicas en las que el déficit de óxido nítrico
desempeña un papel importante en su patogénesis, y/o daño tisular
debido a isquemia y/o debido a
isquemia-reperfusión.
15. Una composición farmacéutica de acuerdo con
la reivindicación 14 para la prevención y/o tratamiento de
condiciones patológicas en las que el estrés oxidativo desempeña un
importante papel en su patogénesis tales como, pero no limitadas a
ellas, alergias, ictus, enfermedad de Alzheimer y enfermedades
isquémicas cardiovasculares.
16. Una composición farmacéutica de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 7 a 13, para el tratamiento y/o
prevención de disfunciones del sistema circulatorio,
preferentemente disfunción cardiovascular y/o coronaria.
17. El uso de al menos un compuesto de la
fórmula (I) o una sal aceptable farmacéuticamente del mismo:
donde
n es un número entero de entre 0, 1, 0 2,
X representa -S(O)_{m}-, -(C=O)-
o un enlace sencillo, donde m es un número entero de entre 0, 1, o
2, y
R representa hidrógeno o un residuo seleccionado
de entre:
- C_{1-6} alquilo;
- C_{2-6} alquenilo;
- C_{3-8} cicloalquilo;
- C_{3-8} cicloalquilo, donde un grupo CH_{2} es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3};
- C_{4-8} cicloalquenilo;
- C_{4-8} cicloalquenilo, donde un grupo CH_{2} es reemplazado por O, S, NH o NCH_{3};
- fenilo;
- piridilo;
- tiofenilo;
- nitrosilo;
- S-cisteinil;
- S-glutationil; y
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
y este último residuo puede estar
opcionalmente sustituido hasta por tres grupos independientes
seleccionados de entre C_{1-6} alquilo,
C_{2-6} alquenilo, C_{3-8}
cicloalquilo, C_{4-8} cicloalquelino, acetiloxi,
hidroxilo, ONO_{2} y
halógeno
como un ingrediente activo para la
fabricación de composiciones farmacéuticas para la prevención y/o
tratamiento de la aterosclerosis, disfunciones endoteliales,
espamos vasculares, vasculopatía del trasplante alogénico,
disfunciones del sistema circulatorio, activación de plaquetas,
trombosis, ictus, condiciones patológicas en las que el estrés
oxidativo desempeña un importante papel en su patogénesis,
condiciones patológicas en las que el déficit de óxido nítrico
desempeña un papel importante en su patogénesis, y/o el daño
tisular debido a isquemia y/o debido a
isquemia-reperfusión.
18. El uso de acuerdo con la reivindicación 17,
donde m, n o ambas sea 0.
19. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 18, donde X represente un enlace sencillo o
-S-.
20. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 19, donde R represente hidrógeno,
C_{1-6} alquilo, C_{2-6}
alquenilo, C_{3-8} cicloalquilo,
C_{4-8} cicloalquenilo,
(C_{1-6} alquilo)C_{3-8}
cicloalquilo, (C_{1-6} alquilo)
C_{4-8} cicloalquenilo, fenil o
(C_{1-6} alquilo)fenilo.
21. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 20, donde R sea C_{1-6}
alquilo.
22. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 19, donde el compuesto se selecciona de
entre:
2-tioisosorbida
5-mononitrato,
5,5'-dinitrato-2,2'-ditio-diisosorbida,
2-metiltioisosorbida
5-mononitrato,
2-metilsulfinilisosorbida
5-mononitrato,
2-metilsulfonilisosorbida
5-mononitrato,
S-nitroso-2-tioisosorbida
5-mononitrato,
2-(tetrahidropirano-2-il-tio)-isosorbida
5-mononitrato,
2-(isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato, y
2-(5'-acetiloxiisosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato.
23. El uso de acuerdo con la reivindicación 17,
donde el compuesto es acetiltioisosorbida
5-mononitrato, que se representa mediante la
siguiente fórmula:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
24. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 23, donde la composición farmacéutica también
incluya un trombolítico, preferentemente un activador del
plasminógeno, uroquinasa, estreptoquinasa, alteplasa o
anistreplasa.
25. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 24, donde la composición farmacéutica también
incluya un anticoagulante, preferentemente heparina, dicumarol,
acenocumarol, enoxaparina o polisulfato de pentosano.
26. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 25, donde la composición farmacéutica además
contenga un antitrombótico, preferentemente aspirina, dipiridamol,
ticlopidina, clopidrogel, triflusal, polisulfato de pentosano o
abciximab.
27. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 26, donde la composición farmacéutica además
contenga inmunogiobulina o un fragmento de ésta con especificidad
por la glicoproteína IIb/IIIa.
28. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 27, donde la composición farmacéutica además
contenga un hipolipemiante, preferentemente simvastatína,
lovastatina, atorvastatína, pravastatina, fluvastatína, lifibrol,
acifrán, acitemato o glunicato.
29. El uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 17 a 28, donde la composición farmacéutica también
contenga un antioxidante/secuestrador de radicales libres,
preferentemente seleccionado de entre nicaravén, ranolazina,
emoxipina, glutationa, edaravona, raxofelast, licopene,
acetilcisteina,
N-Acetil-L-cisteina,
N-acetilcisteina o carvedilol.
30. Un proceso para la preparación de un
compuesto de la formula (I) o una sal aceptable farmacéuticamente
del mismo de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6
que comprenda los siguiente pasos:
a) efectuar una hidrólisis de un compuesto de la
fórmula II:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
donde R' es
C_{1-6} alquilo, preferentemente
metilo,
\newpage
para obtener 2-tioisosorbida
5-mononitrato (1),
y
b) opcionalmente, efectuar sobre el compuesto
(1) preparado de acuerdo con el paso a):
- I.
- Una oxidación para obtener 5,5'-dinitrato-2,2'-ditio-diisosorbida (2) o 2-(isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida 5-mononitrato (8), o
- II.
- Una alquilación o arilación para obtener 2-(alquilo o arilo)tioisosorbida 5-mononitrato; opcionalmente seguido por una oxidación para obtener 2-(alquilo o arilo) sulfinil-isosorbida 5-mononitrato o 2-(alquilo o arilo)-sulfonil-isosorbida 5-mononitrato, o
- III.
- Una nitrosación para obtener S-nitroso-2-tioisosorbida 5-mononitrato (6).
31. Un proceso para la preparación de un
compuesto de la formula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable
del mismo de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6
que contenga los siguiente pasos:
a) efectuar una oxidación de un compuesto de la
fórmula III:
donde R' es C1-6
alquilo, preferentemente
metilo,
para obtener
2,2'-ditio-diisosorbida(10),
b) efectuar una nitración con un
agente nitrante en presencia de un anhídrido carboxílico,
preferentemente anhídrido acético, del compuesto preparado en el
paso a) para obtener
2-(5'-aciloxi-isosorbidil-2'-ditio)-isosorbida
5-mononitrato
(11).
32. Un intermedio de síntesis de un compuesto de
acuerdo con la fórmula (I) que sea
2,2'-ditio-diisosorbida (10).
Priority Applications (40)
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|---|---|---|---|
| ES200302368A ES2258365B1 (es) | 2003-10-03 | 2003-10-03 | Derivados de disulfuro, sulfuro, sulfoxido y sulfona de azucares ciclicos y sus usos. |
| JP2006530042A JP4809769B2 (ja) | 2003-10-03 | 2004-09-29 | 環状糖の二硫化物、硫化物、スルホキシド及びスルホン誘導体とその使用方法 |
| DE112004001860T DE112004001860T5 (de) | 2003-10-03 | 2004-09-29 | Disulfid-,Sulfid-,Sulfoxid- und Sulfonderivate von cyclischen Zuckern und Verwendungen davon |
| CA2540500A CA2540500C (en) | 2003-10-03 | 2004-09-29 | Disulfide, sulfide, sulfoxide, and sulfone derivatives of cyclic sugars and uses thereof |
| HK06113705.3A HK1092807B (en) | 2003-10-03 | 2004-09-29 | Disulfide, sulfide, sulfoxide, and sulfone derivatives of cyclic sugars and uses thereof |
| EP04765682A EP1668017B1 (en) | 2003-10-03 | 2004-09-29 | Disulfide, sulfide, sulfoxide, and sulfone derivatives of cyclic sugars and uses thereof |
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