[go: up one dir, main page]

EP0726275B1 - Benzodiazepinproteinkonjugate und ihre Verwendung zur immunologischen Bestimmung von Benzodiazepinen - Google Patents

Benzodiazepinproteinkonjugate und ihre Verwendung zur immunologischen Bestimmung von Benzodiazepinen Download PDF

Info

Publication number
EP0726275B1
EP0726275B1 EP96101315A EP96101315A EP0726275B1 EP 0726275 B1 EP0726275 B1 EP 0726275B1 EP 96101315 A EP96101315 A EP 96101315A EP 96101315 A EP96101315 A EP 96101315A EP 0726275 B1 EP0726275 B1 EP 0726275B1
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
benzodiazepine
formula
group
compounds
benzodiazepines
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
EP96101315A
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
EP0726275A1 (de
Inventor
Erasmus Dr. Huber
Christian Dr. Klein
Hans-Peter Dr. Josel
Bruno Zink
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Roche Diagnostics GmbH
Original Assignee
Roche Diagnostics GmbH
Boehringer Mannheim GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Roche Diagnostics GmbH, Boehringer Mannheim GmbH filed Critical Roche Diagnostics GmbH
Publication of EP0726275A1 publication Critical patent/EP0726275A1/de
Application granted granted Critical
Publication of EP0726275B1 publication Critical patent/EP0726275B1/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D403/00—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00
    • C07D403/02—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings
    • C07D403/06—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings linked by a carbon chain containing only aliphatic carbon atoms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D403/00—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00
    • C07D403/02—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings
    • C07D403/12—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings linked by a chain containing hetero atoms as chain links
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/44—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material not provided for elsewhere, e.g. haptens, metals, DNA, RNA, amino acids

Definitions

  • the invention relates to benzodiazepine protein conjugates, their preparation and their use as an immunogen, a method for generating antibodies against benzodiazepines and a Immunoassay for the detection of benzodiazepines using these antibodies. Further are the subject of the invention new benzodiazepine linker compounds, their preparation and their use in the preparation of the new conjugates.
  • Benzodiazepines play a big role Role as a drug and sedative, on the other hand, can be addictive and alternative drugs misused play a role in poisoning, especially in mixed intoxications and Suicids. Your proof is also of great relevance to traffic medicine.
  • hapten linker compounds Couplable benzodiazepine linker compounds
  • Haten linker compounds are necessary for the synthesis of benzodiazepine protein conjugates
  • the benzodiazepine protein conjugates are on the one hand as Immunogens used to produce antibodies directed against benzodiazepines
  • Benzodiazepine-enzyme conjugates on the other hand, can also be used as enzyme-labeled antigens or can be used as polyhaptens in immunoassays.
  • Benzodiazepine linker compounds and benzodiazepine protein conjugates are known: e.g. EP-A-0 264,797, J. Pharm. Sci. 66, 235 (1977), Biochem. Pharm. Exp. Therapeutics 186, 167 (1973), J. Immunoassay 4, 135 (1983), US-P-4,243,654, US-P-4,046,636, US-P-4,777,169, US-P-4,043,989, WO-A-93/20067 and US-P-4,083,948.
  • the antibodies generated with it are used in serum tests.
  • a special feature of immunoassays for the detection of benzodiazepines is that Antibodies are needed that are not just a specific benzodiazepine compound, but that can identify as many different relevant benzodiazepines as possible (high cross reactivity). Another difficulty is the detection of benzodiazepines then when these are to be detected in urine. Degradation products occur here (Metabolites) of the benzodiazepines on (Clarke's Isolation and Identification of Drugs, 2nd ed., The Pharmaceutical Press, London 1986; R.C.
  • the object of the invention was therefore to form immunogens of benzodiazepine protein conjugates to provide the antibody as an immune response generate with the highest possible cross-reactivity to relevant benzodiazepines, especially against benzodiazepine degradation products in urine Immunogens are provided in the form of benzodiazepine-protein conjugates, the antibodies produce their binding ability only to a small extent on the linker part structure of the conjugate is directed.
  • N 2 is preferred.
  • Macromolecular carrier substances are preferably polypeptides, for example KLH (key limpet hemocyanin), edestin or bovine serum albumin. Enzymes such as ⁇ -galactosidase, are suitable.
  • Halogen means fluorine, chlorine, bromine or iodine.
  • Preferred residue for R3 and X is chlorine.
  • the preferred radical for R3 is halogen, in particular chlorine.
  • Very preferred compounds of the formula are compounds of the formulas Ia and Ib.
  • the conjugates according to the invention are used as immunogens for the production of antibodies against benzodiazepines.
  • the invention relates to a method for producing antibodies against benzodiazepines by immunizing a mammal and obtaining the antibodies produced by known methods, for example from the serum or spleen, characterized in that a conjugate according to the invention is used as an immunogen.
  • the antiserum is produced by known methods, preferably in mice or sheep. Such immunization is described, for example, in B. Dunkar, J. Agr. Food Chem. 38 (1990), 433-437 and NH Ogodrow, J. Agric Food Chem. 38 (1990), 940-946.
  • Another object of the invention are antibodies that are immunized with the Benzodiazepine conjugates according to the invention are available. These antibodies are monoclonal or preferably polyclonal.
  • Antibodies are produced by immunizing a test animal with the immunogen. This step of the method according to the invention can be based on a customary method In a manner known to those skilled in the art.
  • the immunogen is preferably administered to the Experimental animal in combination with an adjuvant. It is particularly preferably used as Adjuvant Freund's adjuvant or aluminum hydroxide together with Bortadella pertussis.
  • the immunization is preferably carried out over several months with at least four immunizations every four to six weeks.
  • the immunogen is preferably injected intraperitoneally.
  • B-lymphocytes are obtained from animals immunized in this way, with a permanent Myeloma cell line to be fused.
  • the fusion takes place according to the known method of Koehler and Milstein (Nature 256, 1975, 495-497).
  • the primary cultures of Hybrid cells are grown in the usual way, e.g. using a commercially available Zellsorters or cloned by "limited dilution”.
  • ELISA method enzyme immunoassay
  • the antibodies show a high cross-reactivity, especially towards temazepam, oxazepam, Lorazepam, bromazepam, alprazolam and against breakdown products such as temazepam glucuronide or benzophenone, oxazepam glucuronide and aminoflunitrazepam.
  • they show little cross reactivity with the linker bridge.
  • Another object of the invention is the use of the antibody thus obtained in Immunoassays.
  • the antibodies are attached to a label (e.g. an enzyme, a radioactive marking or a particle such as latex or metal sol) or to another Binding partner (e.g. streptavidin) or bound to a solid phase.
  • a label e.g. an enzyme, a radioactive marking or a particle such as latex or metal sol
  • Binding partner e.g. streptavidin
  • the procedure for determining the presence of benzodiazepine or benzodiazepine metabolites using the antibodies of the invention is carried out so that a sample, preferably urine, to be tested for benzodiazepines with at least an antibody according to the invention, which is optionally labeled or on a solid phase is bound or can be bound to a solid phase with another binding partner, is contacted and the formation of the antibody-benzodiazepine complex in a suitable Way, for example via a marker.
  • the immunoassay is preferably carried out in the form of a heterogeneous immunoassay, particularly preferred on a chromatography test strip, as described, for example, in DE-OS 44 39 429 or DE-OS 40 24 919 is described (see Figure 1).
  • Such a test strip preferably contains those arranged one behind the other on a carrier film absorbent zones: an analyte application zone (1), a conjugate zone (2) on which a marked Binding partner and possibly a binding partner with a specific binding site, e.g. Biotin, for the capture zone (3) is housed, a capture zone (3) on which a Trapping reagent for the analyte or an analyte antibody or a specific one Trapping reagent for a specific binding partner binding site, e.g. Streptavidin, is applied, and a target zone (4) in which non-trapped marking is measured.
  • an analyte application zone (1) preferably contains those arranged one behind the other on a carrier film absorbent zones: an analyte application zone (1), a conjugate zone (2) on which a marked Binding partner and possibly a binding partner with a specific binding site, e.g. Biotin, for the capture zone (3) is housed, a capture zone (3) on which a Tra
  • the immunoassay forms according to the task of the analyte on the application zone in the conjugate zone a complex of analyte with a labeled antibody over another antibody either in the Solid phase zone is bound to the solid phase or there via a specific binding pair to Example biotin streptavidin can be bound, immobilized there.
  • analyte and labeled analyte analog compete for one Antibody that is solid-phase bound in the capture zone or there via a specific Binding site can be solid-phase bound.
  • the immunoassay is preferably carried out according to an IEMA analog test principle.
  • a labeled antibody in excess of the analyte in the conjugate zone.
  • Excess labeled antibodies are captured in the capture zone by analyte analogs trapped while labeled analyte-antibody complexes are detected in the target zone become.
  • Customary labels such as enzyme labels, fluorescent labels, Dye markings in question, especially direct marking, especially metal marking, gold marking is particularly preferred.
  • the immunoassay delivers quick and accurate results that are also degradation products from Includes benzodiazepines.
  • Another object of the invention is a process for the preparation of the benzodiazepine protein conjugates according to the invention. It is characterized in that benzodiazepine linker compounds of the formula III are reacted with a carrier substance compound, preferably with polypeptide compounds which contain at least one thiol group, to give compounds of the formula I.
  • the polypeptide compounds can inherently contain SH groups. However, SH groups can also be artificially introduced into the polypeptide compound by methods known to those skilled in the art.
  • the radicals R3 and X and n of the formula III have the meaning given for the formula I, R1 'is hydrogen methyl or R', R2 'is hydrogen, hydroxy or an OR' group, with either R1 'or R2' being an R.
  • 'Group contains and R' represents a group of formula IV.
  • the benzodiazepine linker compounds of formula III are new. The invention therefore further relates to these compounds and their use for the preparation of the benzodiazepine protein conjugates according to
  • Another object of the invention is a process for the preparation of the benzodiazepine linker compounds of formula III.
  • R2 ' is an OR' group and R1 'is a hydrogen or CH3 group, the compounds are prepared as follows:
  • R1 ' is R' in formula III
  • a benzodiazepine compound of the formula X is alkylated with N-protected bromoethylamine and the amide group is hydrolytically cleaved to give the amine (compound of the formula XI).
  • the 1-ethylmaleimides of the formula III are formed, for example, by reaction with ethoxycarbonylmaleimide.
  • 5 sheep are immunogenic by coupling the benzodiazepine compounds obtained according to Examples 3 and 4 with a carrier substance, in Freund's adjuvant immunized.
  • the dose is 500 ⁇ g per animal.
  • the immunizations are over 6 months or repeated every 4 weeks.
  • Antiserum samples are taken once a month from all animals and are present of benzodiazepine antibodies. This measurement is carried out in Example 2 described. For further investigations, such antisera are selected that are diluted 1: 10000 or higher deliver sufficiently high measurement signal (at least 100 mE after 30 to 60 minutes of color development).
  • Microtiter plates (Maxisorp F96, Nunc, Order No. 4-42404) are mixed with streptavidin (Boehringer Mannheim GmbH, Order No. 976 539) coated, the concentration 5 ⁇ g / ml protein is dissolved in the coating buffer. In each well of the microtiter plates 100 ⁇ l of this solution are pipetted. After one hour of incubation at room temperature while shaking, the solution is poured out and the plate is washed three times with washing solution.
  • the conjugate delorazepam-1-DSS-biotin (3) is dissolved in incubation buffer ad 10 ng / ml.
  • the wells of the microtiter plates are charged with 100 ⁇ l of this solution and then incubated and washed as described above.
  • dilution series For each benzodiazepine compound to be examined, there will be a dilution series made in incubation buffer.
  • the series contains a total of 10 different concentrations in dilution levels 1: 3, starting with the maximum concentration.
  • the maximum concentrations are 1 ⁇ g / ml for temazepam, oxazepam, lorazepam, bromazepam, alprazolam, Hydroxy-alprazolam, hydroxy-triazolam and amino-flunitrazepam.
  • the maximum concentration is 10 ⁇ g / ml for temazepam glucuronide, 2-amino-4-chlorobenzophenone, Oxazepam glucuronide, lorazepam glucuronide and 2-amino-2 ', 4-dichlorobenzophenone.
  • Incubation buffer without hapten is used for comparison. 50 ⁇ l of each of these solutions are presented in the wells of the plate.
  • the antisera are diluted at least 1: 10000 with incubation buffer. 50 ⁇ l each of the diluted Serums are added to the wells with the hapten solutions and mixed. The final concentration of the haptens and the antibodies in the test is half that of the solutions used.
  • hapten-biotin conjugate For the detection of antibodies bound to the solid phase via the hapten-biotin conjugate a conjugate of horseradish peroxidase and rabbit antibodies against IgG from sheep. The detection conjugate is incubated with 20 mU / ml peroxidase activity diluted and this solution distributed to the wells (100 ⁇ l / well).
  • the benzodiazepine concentration that corresponds exactly to this signal value (cut-off value) is achieved by linear interpolation between neighboring Hapten series standards for each of the compounds examined.
  • Table 1 shows the cut-off values for a number of benzodiazepine drugs and their Metabolism derivatives, exemplary for the antisera of 3 or 5 sheep.
  • the serum samples were obtained 12 months after the start of immunization.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Plural Heterocyclic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Die Erfindung betrifft Benzodiazepinproteinkonjugate, deren Herstellung, deren Verwendung als Immunogen, ein Verfahren zur Erzeugung von Antikörpern gegen Benzodiazepine und ein Immunoassay zum Nachweis von Benzodiazepinen unter Verwendung dieser Antikörper. Weiter sind Gegenstand der Erfindung neue Benzodiazepin-Linkerverbindungen, deren Herstellung und deren Verwendung zur Herstellung der neuen Konjugate.
Der analytische Nachweis von Verbindungen aus der Klasse der Benzodiazepine hat in den letzten 1 1/2 Jahrzehnten zunehmende Bedeutung erlangt. Benzodiazepine spielen eine große Rolle als Arznei und Beruhigungsmittel, können andererseits als Sucht- und Ausweichdrogen mißbraucht werden, spielen eine Rolle bei Vergiftungen, vor allem bei Mischintoxikationen und Suiciden. Ihr Nachweis ist auch von großer verkehrsmedizinischer Relevanz.
Deshalb besteht zunehmend Interesse an immunologischen Nachweismethoden zum schnellen, qualitativen und quantitativen Nachweis von Benzodiazepinen in Körperflüssigkeiten. Für Immunoassays notwendig sind kupplungsfähige Benzodiazepinlinker-Verbindungen ("Hapten-Linker-Verbindungen") zur Synthese von Benzodiazepinproteinkonjugaten ("Haptenproteinkonjugate"). Die Benzodiazepinproteinkonjugate werden einerseits als Immunogene zur Erzeugung von gegen Benzodiazepine gerichteten Antikörpern eingesetzt, Benzodiazepin-Enzymkonjugate können andererseits auch als enzymmarkierte Antigene oder als Polyhaptene in Immunoassays verwendet werden.
Benzodiazepinlinkerverbindungen und Benzodiazepinproteinkonjugate sind bekannt: z.B. EP-A-0 264 797, J. Pharm. Sci. 66, 235 (1977), Biochem. Pharm. Exp. Therapeutics 186, 167 (1973), J. Immunoassay 4, 135 (1983), US-P-4,243,654, US-P-4,046,636, US-P-4,777,169, US-P-4,043,989, WO-A-93/20067 und US-P-4,083,948. Die damit erzeugten Antikörper werden in Serumtests eingesetzt.
Ebenfalls bekannt ist die Verwendung von Maleimidgruppen in Linkern zur Anbindung von Haptenen an Proteine, bspw. aus WO-A 90/15798, J. Med. Chem. 37, 2609 (1994) und Bioconjugate Chem. 3, 2 (1992).
Eine Besonderheit bei Immunoassays zum Nachweis von Benzodiazepinen liegt darin, daß Antikörper benötigt werden, die nicht nur eine bestimmte Benzodiazepinverbindung, sondern die eine möglichst große Anzahl verschiedener relevanter Benzodiazepine erkennen können (hohe Kreuzreaktivität). Eine weitere Schwierigkeit zum Nachweis von Benzodiazepinen besteht dann, wenn diese in Urin nachgewiesen werden sollen. Hier treten Abbauprodukte (Metabolite) der Benzodiazepine auf (Clarke's Isolation and Identification of Drugs, 2nd ed., The Pharmaceutical Press, London 1986; R.C. Baselt, Disposition ofToxic Drugs and Chemicals in Man, 3rd ed., Year Book Medical Publishers Inc., 1989), insbesondere Amine, Glucuronide und Benzophenone, die durch die in einem Immunoassay verwendeten Antikörper ebenfalls erfaßt werden sollten. Die Aufgabe der Erfindung war es daher, Immunogene in Form von Benzodiazepinproteinkonjugaten zur Verfügung zu stellen, die als Immunantwort Antikörper mit einer möglichst hohen Kreuzreaktivität gegenüber relevanten Benzodiazepinen erzeugen, insbesondere auch gegen Benzodiazepinabbauprodukte im Urin.Ferner sollten Immunogene in Form von Benzodiazepin-Proteinkonjugaten zur Verfügung gestellt werden, die Antikörper erzeugen, deren Bindungsfähigkeit nur zu einem geringen Teil auf die Linkerteilstruktur des Konjugates gerichtet ist.
Die Aufgabe wird gelöst durch die Erfindung wie sie in den Ansprüchen beschrieben ist.
Gegenstand der Erfindung sind neue Benzodiazepinproteinkonjugate der Formel I in der R1 Wasserstoff, eine Methylgruppe oder R darstellt, R2 Wasserstoff, Hydroxy, oder eine OR-Gruppe darstellt, wobei entweder R1 oder R2 eine R-Gruppe enthält, R3 Halogen, NO2 oder NH2 darstellt, X Wasserstoff oder Halogen darstellt, wobei R eine Gruppe der Formel II darstellt, in der Z eine makromolekulare immunogen wirksame Trägersubstanz bedeutet und n=2 oder 3 ist.
Bevorzugt ist n=2.
Figure 00020001
Makromolekulare Trägersubstanzen sind bevorzugt Polypeptide, beispielsweise KLH (key limpet haemocyanin), Edestin oder Rinderserumalbumin. Auch Enzyme, wie β-Galaktosidase, sind geeignet.
Unter Halogen wird Fluor, Chlor, Brom oder Jod verstanden. Bevorzugter Rest für R3 und X ist Chlor.
Bevorzugter Rest für R3 ist Halogen, insbesondere Chlor.
Ganz bevorzugte Verbindungen der Formel sind Verbindungen der Formel Ia und Ib.
Figure 00030001
Die erfindungsgemäßen Konjugate werden als Immunogene zur Herstellung von Antikörpern gegen Benzodiazepine eingesetzt. Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Erzeugung von Antikörpern gegen Benzodiazepine durch Immunisierung eines Säugetieres und Gewinnung der erzeugten Antikörper nach bekannten Verfahren, z.B. aus dem Serum oder der Milz, dadurch gekennzeichnet, daß ein erfindungsgemäßes Konjugat als Immunogen verwendet wird. Die Herstellung des Antiserums erfolgt nach bekannten Verfahren, vorzugsweise in Mäusen oder Schafen. Eine derartige Immunisierung ist beispielsweise in B. Dunkar, J. Agr. Food Chem. 38 (1990), 433 - 437 und N.H. Ogodrow, J. Agric Food Chem. 38 (1990), 940 - 946 beschrieben.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Antikörper, die aufgrund Immunisierung mit den erfindungsgemäßen Benzodiazepinkonjugaten erhältlich sind. Diese Antikörper sind monoklonal oder bevorzugt polyklonal.
Die Herstellung von Antikörpern erfolgt durch die Immunisierung eines Versuchstieres mit dem Immunogen. Dieser Schritt des erfindungsgemäßen Verfahrens kann auf eine übliche, dem Fachmann bekannte Weise geschehen. Verzugsweise verabreicht man das Immunogen dem Versuchstier in Kombination mit einem Adjuvans. Besonders bevorzugt verwendet man als Adjuvans Freundsches Adjuvans oder Aluminiumhydroxid zusammen mit Bortadella pertussis. Die Immunisierung erfolgt vorzugsweise über mehrere Monate mit mindestens vier Immunisierungen in vier- bis sechswöchigem Abstand. Die Injektion des Immunogens erfolgt vorzugsweise intraperitoneal.
Aus so immunisierten Tieren werden B-Lymphozyten gewonnen, die mit einer permanenten Myelomzellinie fusioniert werden. Die Fusionierung erfolgt nach dem bekannten Verfahren von Köhler und Milstein (Nature 256, 1975, 495-497). Die hierbei gebildeten Primärkulturen von Hybridzellen werden in üblicher Weise, z.B. unter Verwendung eines handelsüblichen Zellsorters oder durch "limited dilution" kloniert. Es werden jeweils die Kulturen weiterverarbeitet, die in einem geeigneten Testverfahren, beispielsweise einem Enzym-Immuno-Assay (ELISA-Verfahren), positiv gegen das Benzodiazepin reagieren.
Die Antikörper zeigen eine hohe Kreuzreaktivität insbesondere gegenüber Temazepam, Oxazepam, Lorazepam, Bromazepam, Alprazolam und gegen Abbauprodukte wie Temazepam-Glucuronid oder -Benzophenon, Oxazepam-Glucuronid und Aminoflunitrazepam. Dabei weisen sie andererseits wenig Kreuzreaktivitäten mit der Linkerbrücke auf.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist die Verwendung des so erhaltenen Antikörpers in Immunoassays. Insbesondere werden die Antikörper an eine Markierung (z.B. ein Enzym, eine radioaktive Markierung oder ein Partikel wie Latex oder Metallsol) oder an einen weiteren Bindepartner (z.B. Streptavidin) oder an eine Festphase gebunden, verwendet.
Das Verfahren zur Bestimmung der Anwesenheit von Benzodiazepin oder Benzodiazepinmetaboliten unter Verwendung der erfindungsgemäßen Antikörper wird so durchgeführt, daß eine Probe, bevorzugt Urin, die auf Benzodiazepine untersucht werden soll, mit mindestens einem erfindungsgemäßen Antikörper, der gegebenenfalls markiert ist oder an eine Festphase gebunden ist oder mit einem weiteren Bindepartner an eine Festphase gebunden werden kann, kontaktiert wird und die Bildung des Antikörper-Benzodiazepin-Komplexes in einer geeigneten Weise, zum Beispiel über eine Markierung, bestimmt wird.
Bevorzugt wird der Immunoassay in Form eines heterogenen Immunoassays durchgeführt, besonders bevorzugt auf einem Chromatographieteststreifen, wie er beispielsweise in DE-OS 44 39 429 oder DE-OS 40 24 919 beschrieben ist (siehe Figur 1).
Ein solcher Teststreifen enthält bevorzugt auf einer Trägerfolie hintereinander angeordnete saugfähige Zonen: eine Analytaufgabezone (1), eine Konjugatzone (2), auf der ein markierter Bindungspartner und gegebenenfalls ein Bindungspartner mit einer spezifischen Bindestelle, z.B. Biotin, für die Abfangzone (3) untergebracht ist, eine Abfangzone (3), auf der ein Abfangreagenz für den Analyten oder ein Analytantikörper oder ein spezifisches Abfangreagenz für eine spezifische Bindestelle eines Bindungspartners, z.B. Streptavidin, aufgebracht ist, und eine Zielzone (4), in der nichtabgefangene Markierung gemessen wird.
Wird der Immunoassay nach einem Sandwich-Prinzip durchgeführt, bildet sich nach Aufgabe des Analyten auf die Aufgabezone in der Konjugatzone ein Komplex von Analyt mit einem markierten Antikörper, der über einen weiteren Antikörper, der entweder in der Festphasenzone festphasengebunden ist oder dort über ein spezifisches Bindungspaar, zum Beispiel Biotin-Streptavidin gebunden werden kann, dort immobilisiert wird.
Bei einem kompetitiven Test konkurrieren Analyt und markiertes Analytanalogon um einen Antikörper, der in der Abfangzone festphasengebunden oder dort über eine spezifische Bindungsstelle festphasengebunden werden kann.
Bevorzugt wird der Immunoassay nach einem IEMA analogen Testprinzip durchgeführt. Hier befindet sich in der Konjugatzone ein markierter Antikörper im Überschuß zum Analyten. Überschüssige markierte Antikörper werden in der Abfangzone durch Analytanaloga abgefangen, während markierte Analyt-Antikörper-Komplexe in der Zielzone nachgewiesen werden.
Als Markierungen kommen übliche Markierungen, wie Enzymmarkierung, Fluoreszenz-, Farbstoffmarkierungen in Frage, besonders Direktmarkierung, insbesondere Metallmarkierung, ganz besonders bevorzugt Goldmarkierung.
Der Immunoassay liefert schnelle und exakte Ergebnisse, die auch Abbauprodukte von Benzodiazepinen einschließt.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen Benzodiazepinproteinkonjugate. Es ist dadurch gekennzeichnet, daß Benzodiazepin-Linkerverbindungen der Formel III mit einer Trägersubstanzverbindung, bevorzugt mit Polypeptidverbindungen, die mindestens eine Thiolgruppe enthalten, zu Verbindungen der Formel I umgesetzt werden. Dabei können die Polypeptidverbindungen von sich aus SH-Gruppen enthalten. Es können aber auch künstlich SH-Gruppen durch dem Fachmann bekannte Methoden in die Polypeptid-Verbindung eingeführt werden. Die Reste R3 und X und n der Formel III haben dabei die für Formel I gegebene Bedeutung, R1' ist Wasserstoff Methyl oder R', R2' ist Wasserstoff, Hydroxy oder eine OR'-Gruppe, wobei entweder R1' oder R2' eine R' Gruppe enthält und R' eine Gruppe der Formel IV bedeutet.
Figure 00050001
Die Benzodiazepin-Linkerverbindungen der Formel III sind neu. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind daher diese Verbindungen und deren Verwendung zur Herstellung der erfindungsgemäßen Benzodiazepinproteinkonjugate.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung der Benzodiazepin-Linkerverbindungen der Formel III.
Ist in der Formel III R2' eine OR'-Gruppe und R1' eine Wasserstoff- oder CH3-Gruppe, so werden die Verbindungen folgendermaßen hergestellt:
Figure 00060001
(Schema 1)
Benzodiazepine der Formel V werden beispielsweise mit Metachlorperbenzoesäure zu Verbindungen der Formel VI oxidiert und mit Essigsäureanhydrid unter Umlagerung acyliert (Verbindungen der Formel VII). Solche Verbindungen werden in US-Patent 4,083,948 beschrieben. Anschließend wird unter Säurekatalyse mit N-geschütztem Ethanolamin oder Propanolamin umgesetzt (Verbindungen der Formel VIII und IX). Mit beispielsweise Ethoxycarbonylmaleimid wird anschließend zu den Benzodiazepin-3-Oxyethylmaleimiden bzw. Oxypropylmaleimiden der Formel III mit R2'=OR' umgesetzt.
Ist dagegen in Formel III R1' gleich R', so wird eine Benzodiazepinverbindung der Formel X mit N geschütztem Bromethylamin alkyliert und die Amidgruppe hydrolytisch zum Amin (Verbindung der Formel XI) gespalten. Die Bildung der 1-Ethylmaleimide der Formel III erfolgt beispielsweise durch Umsetzung mit Ethoxycarbonylmaleimid.
Figure 00070001
Beispiel 1 Immunisierung und Prüfung der Antiseren
5 Schafe werden mit Immunogenen, die durch Kopplung der Benzodiazepinverbindungen gemäß Beispiele 3 und 4 mit einer Trägersubstanz erhalten wurden, in Freund'schen Adjuvans immunisiert. Die Dosis beträgt 500 µg je Tier. Die Immunisierungen werden über 6 Monate oder länger jeweils in Abständen von 4 Wochen wiederholt.
Monatlich 1 x werden von allen Tieren Antiserum-Proben entnommen und auf Anwesenheit von Benzodiazepin-Antikörper untersucht. Die Durchführung dieser Messung ist in Beispiel 2 beschrieben. Für weitere Untersuchungen werden solche Antiseren ausgewählt, die in Verdünnung 1:10000 oder höher ausreichend hohes Meßsignal liefern (mindestens 100 mE nach 30 bis 60 Minuten Farbentwicklung).
Drei Monate nach Beginn der Immunisierung zeigten die Seren aller Tiere ausreichend hohes Signal.
Beispiel 2 Nachweis verschiedener Benzodiazepine Verwendete Lösungen
Beschichtungspuffer:
50 mM Natriumbicarbonat; 0,09% Natriumazid; pH 9,6
Inkubationspuffer:
10 mM Natriumphosphat; 0,1% Tween 20 (Fa. Brenntag, Best.Nr. 460761; 0,9 % NaCl; 1% Crotein C (Fa. CRODA GmbH, Best.Nr. 38241422); pH 7,4
Waschlösung:
0,9 % NaCl; 01,% Tween 20;
Substratlösung:
Substratlösung Enzymun (Boehringer Mannheim GmbH, Best.Nr.85742), enthält 1,9 mM ABTS und 3,2 mM Natriumperborat in Phosphat-Citrat-Puffer pH 4,4) mit 2mg/ml Vanillin.
Durchführung Beschichtung:
Mikrotiterplatten (Maxisorp F96, Fa. Nunc, Best. Nr. 4-42404) werden mit Streptavidin (Boehringer Mannheim GmbH, Best. Nr. 976 539) beschichtet, das in der Konzentration 5µg/ml Protein im Beschichtungspuffer gelöst wird. In jedem Napf der Mikrotiterplatten werden 100 µl dieser Lösung pipettiert. Nach einstündiger Inkubation bei Raumtemperatur unter Schütteln wird die Lösung ausgeschüttet und die Platte dreimal mit Waschlösung gewaschen.
Synthese von Delorazepam-Biotinkonjugat (3)
92,4 mg (0,2 mmol) des Trifluoracetats von (2) werden in 10 ml THF gelöst und mit einer Lösung von 150.6 mg (0,24 mmol) Biotin-DDS (1) hergestellt (hergestellt nach WO-A 94/17072) in 5 ml DMF versetzt. Zum Reaktionsgemisch gibt man 50 µl Triethylamin und läßt 16 h bei 20°C rühren. Danach wird das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer unter Ölpumpenvakuum entfernt und der Rückstand in 20 ml Chloroform aufgenommen. Man wäscht zweimal mit je 20 ml gesättigter NaHCO3-Lösung und zieht anschließend das Chloroform am Rotationsverdampfer ab. Das feste Produkt 3 wird mit ca. 5 ml Essigester digeriert, abgesaugt und über Nacht im Exsikkator getrocknet.
Ausbeute:
21 mg (12% d. Th.) farbloses, feinkristallines Pulver
DC:
Kieselgel, Essigester/Methanol 1/1 (v/v); Rf=0,48
Das Konjugat Delorazepam-1-DSS-Biotin (3) wird in Inkubationspuffer ad 10 ng / ml gelöst. Die Näpfe der Mikrotiterplatten werden mit je 100 µl dieser Lösung beschickt und ananschließend inkubiert und gewaschen wie oben beschrieben.
Figure 00090001
Reaktion der Antikörper mit den Haptenen
Von jeder Benzodiazepin-Verbindung, die untersucht werden soll, wird eine Verdünnungsreihe in Inkubationspuffer hergestellt. Die Reihe enthält insgesamt 10 verschiedene Konzentrationen in Verdünnungsstufen 1:3, beginnend mit der Maximalkonzentration. Die Maximalkonzentrationen sind 1µg/ml für Temazepam, Oxazepam, Lorazepam, Bromazepam, Alprazolam, Hydroxy-Alprazolam, Hydroxy-Triazolam und Amino-Flunitrazepam. Die Maximalkonzentration beträgt 10 µg / ml für Temazepam-Glucuronid, 2-Amino-4-chlorbenzophenon, Oxazepam-Glucuronid, Lorazepam-Glucuronid und 2-Amino-2',4-dichlorbenzophenon.
Zum Vergleich wird Inkubationspuffer ohne Hapten eingesetzt. Je 50 µl dieser Lösungen werden in den Näpfen der Platte vorgelegt.
Die Antiseren werden mindestens 1 : 10000 mit Inkubationspuffer verdünnt. Je 50 µl des verdünnten Serums werden in die Näpfe mit den Hapten-Lösungen gegeben und gemischt. Die Endkonzentration der Haptene und der Antikörper im Test ist damit halb so hoch wie die der eingesetzten Lösungen.
Inkubation (60 Minuten) und waschen wie oben beschrieben.
Reaktion mit dem Nachweis-Konjugat
Zum Nachweis der Antikörper, die über das Hapten-Biotin-Konjugat an die Festphase gebunden sind, dient ein Konjugat aus Meerrettich-Peroxydase und Kaninchen-Antikörpern gegen IgG aus Schafen. Das Nachweiskonjugat wird mit Inkubationspuffer auf 20 mU / ml Peroxidase-Aktivität verdünnt und diese Lösung auf die Näpfe verteilt (100 µl / Napf).
Inkubation (60 Minuten) und waschen wie oben beschrieben.
Substratreaktion:
Alle Näpfe werden mit je 100 µl Substratlösung gefüllt und unter Schütteln inkubiert, bis die Farbentwicklung in den Proben ohne Hapten subjektiv ausreichend erscheint. Dann wird die Extinktion aller Näpfe als Differenzmessung bei denn Wellenlängen 405 / 492 Nanometer bestimmt.
Auswertung
Als positives Ergebnis (eindeutiger Nachweis des eingesetzten Benzodiazepins) wird die Senkung des Meßsignals um mindestens 20% gegenüber dem Leerwert ohne Hapten betrachtet. Die Benzodiazepin-Konzentration, die genau diesem Signalwert entspricht (cut-off-Wert) wird durch lineare Interpolation zwischen benachbarten Standards der Hapten-Reihe für jede der untersuchten Verbindungen ermittelt.
Ergebnisse:
Tabelle 1 zeigt die cut-off-Werte für eine Reihe von Benzodiazepin-Pharmaka und ihren Stoffwechsel-Derivaten, beispielhaft für die Antiseren von 3 oder 5 Schafen. Die Serumproben wurden 12 Monate nach Beginn der Immunisierung gewonnen.
Die Zahlen belegen, daß eine breite Palette von Benzodiazepinen völlig unterschiedlicher Struktur mit sehr guter bis ausreichender Sensitivität von allen drei Antiseren nachgewiesen werden kann.
Nachweis von Benzodiazepinen
Angegeben sind die Benzodiazepin-Konzentrationen (Nanogramm / ml), die im kompetitiven ELISA eine Signalerniedrigung um 20% gegenüber dem Leerwert ohne Hapten erzeugen.
Tier-Nummer (eingesetzte Serumverdünnung)
Benzodiazepin-Verbindung 1 (1:14000) 2 (1:16500) 3 (1:11500)
Temazepam 0,13 0,24 0,35
2-Amino-4-chlorbenzophenon 64 68 69
Temazepam-Glucuronid 2,1 n.b. n.b.
Oxazepam 0,29 0,26 0,41
Oxazepam-Glucoronid 7,5 8,7 11,0
Lorazepam 1,7 1,3 2,0
Lorazepam-Glucuronid 80 7,3 49
2-Amino-2',4-dichlorbenzophenon 270 160 130
Bromazepam 5,5 150 25
Alprazolam 0,09 0,54 0,10
Hydroxy-Alprazolam 0,47 5,0 0,34
Hydroxy-Triazolam 3,0 15 9,1
Amino-Flunitrazepam 6,0 0,42 4,1
Beispiel 3 Synthese von 7-Chlor-3-[2-(N-maleinimido)ethyl]oxy-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-Benzodiazepin-2(3H)on (IIIa) 1. 7-Chlor-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on-4-oxid (VI)
5.70 g (20 mmol) 7-Chlor-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (Fa.Sigma, Nr.T 8275) werden in 150 ml Dichlormethan gelöst und unter Rühren bei 20°C mit 13.8 g (40 mmol) 3-Chlor-peroxybenzoesäure (Fa.Aldrich, Nr.27,303-1) versetzt. Man läßt die Lösung 1.5 h bei 20°C weiterrühren. Danach wird die Reaktionsmischung mit 200 ml 5% NH3 und anschließend mit 200 ml 0.1 n NaOH gewaschen. Das Lösungsmittel wird am Rotationsverdampfer entfernt und der verbleibende ölige Rückstand unter Erwärmen auf 40-45°C in 25 ml Isopropanol gelöst. Danach läßt man das Produkt unter langsamen Abkühlen auf Raumtemperatur kristallisieren. 2h nach beginnender Kristallisation wird das feste Produkt 2 abgesaugt und mit je 50 ml Isopropanol und 50 ml Diisopropylether gewaschen. Man trocknet abschließend über Nacht im Exsikkator über Paraffin.
Ausbeute:
3.30 g (55% d.Th) farblose Kristalle.
DC:
Kieselgel, Essigester/Petrolether 2/1 (v/v); Rf= 0.41
2. 3-Acetoxy-7-chlor-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (VII)
3.0 g (10 mmol) der Verbindung VI werden 5 h in 30 ml THF + 60 ml Acetanhydrid unter Rückfluß erhitzt. Anschließend wird die Lösung am Rotationsverdampfer zur Trocknen eingedampft und der kristalline Rückstand mit 50 ml Isopropylether digeriert. Man saugt ab und trocknet das Produkt 3 2 h am Hochvakuum bei 50°C.
Ausbeute:
3.27 g (99 % d.Th.) farblose Kristalle.
DC:
Kieselgel, Essigester/Petrolether 2/1 (v/v); Rf= 0.50
3. N-(tert.-Butoxycarbonyl)ethanolamin
30.5 g (0.5 mol) Ethanolamin (Fa.Fluka, Nr.02400) werden in 300 mlDioxan/Wasser 1/1 (v/v) gelöst und unter Eiskühlung tropfenweise mit einer Lösung von 109 g (0.5 mol) Di-tert.-butyldicarbonat (Fa.Fluka, Nr.34659) in 150 ml Dioxan versetzt. Man entfernt die Eiskühlung und läßt die Lösung unter Rühren auf Raumtemperatur kommen. Nach weiteren 18 h wird die Lösung am Rotationsverdampfer eingedampft, der ölige Rückstand in 250 ml Essigester gelöst und über ca.20 g Na2SO4 getrocknet. Nach Filtration wird abermals eingedampft und das ölige Produkt 3 h am Hochvakuum getrocknet.
Ausbeute:
80.2 g (99% d.Th.) farbloses Öl.
DC:
Kieselgel, Essigester/Methanol 1/1 (v/v);
Detektion durch Besprühen mit Ninhydrin-Lösung; Rf= 0.74 4. 3-[2-(tert.-Butoxycarbonylamino)ethyl]oxy-7-chlor-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (VIII)
1.5 g (5 mmol) der Verbindung VII werden 50 ml Chloroform (über Aluminiumoxid getrocknet) gelöst. Unter kräftigem Rühren bei 20°C leitet man 10 min über eine Kapillare in stetigem Strom (ca. 40-50 cm3/min) HCI-Gas durch die Lösung. Anschließend läßt man 18 h bei 20°C rühren. Dann wird die Reaktionslösung am Rotationsverdampfer zur Trocknung eingedampft. Der feste Rückstand wird in 20 ml Chloroform (über Aluminiumoxid getrocknet) gelöst und mit 960 mg (6 mmol) N-(tert.-Butoxycarbonyl)ethanolamin in 10 ml des gleichen Lösungsmittels versetzt. Man gibt 500 mg Nafion-NR 50 (Fa.Aldrich, Nr.30,938-9) zu und läßt 1 h bei 20°C rühren. Danach wird die Lösung filtriert, zweimal mit je 50 ml Wasser gewaschen und über ca. 5 g Na2SO4, wasserfrei, getrocknet. Das Lösungsmittel wird am Rotationsverdampfer entfernt. Dann wird das Rohprodukt in einem möglichst geringen Volumen Essigester/Petrolether 2/1 (v/v) unter leichtem Erwärmen gelöst und durch Säulenchromatographie an Kieselgel (Säule: 4 x 68 cm, Eluent: Essigester/Petrolether 2/1 (v/v)) gereinigt. Die entsprechenden Fraktionen werden gesammelt, das Lösungsmittel wird am Rotationsverdampfer entfernt und das kristalline Produkt 2 h im Hochvakuum bei 50°C getrocknet.
Ausbeute:
1.22 g (55 % d.Th.) farblose Kristalle.
DC:
Kieselgel, Essigester/Petrolether 2/1 (v/v); Rf= 0.44
5. 3-(2-Aminoethyl)oxy-7-chlor-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on Hydrochlorid (IX)
1.11 g (2.5 mmol) der Verbindung VIII werden in 10 ml 2 molarer HCI in Dioxan gelöst, wobei sich innerhalb weniger Minuten ein öliger Niederschlag bildet. Man läßt die Suspension 30 min bei 20°C stehen, dekantiert das Lösungsmittel und digeriert den Rückstand mit 20 ml Essigester, wobei sich das Produkt verfestigt. Man rührt die Suspension 1 h bei 20°C, saugt ab und trocknet das Hydrochlorid 4 h bei 40°C am Hochvakuum.
Ausbeute:
910 mg (96% d.Th.) farbloses, feinkristallines Pulver.
DC:
Kieselgel, n-Butanol/Eisessig/Wasser 50/15/25 (v/v/v); Rf= 0.64
6. 7-Chlor-3-[2-(N-maleinimido)ethyl]oxy-1-methyl-5-phenyl-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (IIIa)
760 mg (2 mmol) der Verbindung IX werden bei 20°C in 10 ml gesättigter Natriumbicarbonat-Lösung suspendiert und unter Rühren mit 340 mg (2 mmol) N-Methoxycarbonylmaleinimid (Fa.Fluka, Nr.64940) versetzt. Nach ca 2-3 min bildet sich ein öliger Niederschlag. Nach weiteren 10 min gibt man 15 ml Tetrahydrofuran zu und läßt weitere 45 min bei 20°C rühren. Danach stellt man die Reaktionsmischung mit konz. HCl auf pH 6.0, extrahiert mit 50 ml Essigester und wäscht den Extrakt mit 2 x 50 ml Wasser. Die organische Lösung wird mit ca 5 g Na2SO4 getrocknet, am Rotationsverdampfer eingedampft und das verbleibende Rohprodukt durch Säulenchromatographie an Kieselgel (Säule: 2.5 x 50 cm, Eluent: Essigester) gereinigt. Die entsprechenden Fraktionen werden gesammelt, das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer entfernt und das verbleibende kristalline Maleinimid IIIa 3 h am Hochvakuum bei 40°C getrocknet.
Ausbeute:
315 mg (37% d.Th.) farbloser, feinkristalliner Feststoff.
DC:
Kieselgel, Essigester: Rf= 0.49
1H-NMR(CDCl3): d(ppm) = 3.37(s,3H;-CH3), 3.91/4.14(m;4H;-CH2-CH2-), 4.87(s,1H;-C3H-), 6.69(s,2H;-CH=CH-), 7.48(m,8H; Aromaten-H). Beispiel 4 Synthese von 7-Chlor-5-(2-Chlorphenyl)-1-[2-(N-maleinimido)ethyl]-oxy-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (IIIb) 1. N-(tert.-Butoxycarbonyl)-2-bromethylamin
10.2 g (50 mmol) 2-Bromethylamin Hydrobromid (Fa.Aldrich, Nr.B6,570-5) werden in 100 ml Dioxan/Wasser 1/1 (v/v) gelöst und mit 15 g (20.6 ml) Triethylamin versetzt. Man kühlt auf O° C und gibt unter Rühren tropfenweise eine Lösung von 10.9 g (50 mmol) Di-tert.-butyldicarbonat in 15 ml Dioxan zu. Die Reaktionsmischung läßt man langsam auf Raumtemperatur kommen und 18 h weiterrühren. Das Lösungsmittel wird am Rotationsverdampfer entfernt und der Rückstand in 200 ml Essigester aufgenommen. Man wäscht dreimal mit je 100 ml gesättigter Natriumbicarbonat-Lösung und abschließend zweimal mit je 100 ml Wasser. Die organische Lösung wird mit ca. 20 g Na2SO4 getrocknet, das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer entfernt und das ölige Produkt 3 h bei 40°C am Hochvakuum getrocknet.
Ausbeute:
12.0 g (98 % d.Th.) leicht bräunliches, zähes Öl.
DC:
Kieselgel, Essigester; Rf= 0.90
2. 7-Chlor-1-[2-(tert.-Butoxycarbonylamino)ethyl]-5-(2-chlorphenyl)-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on
3.05 g (10 mmol) 7-Chlor-5-(2-chlorphenyl)-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (Fa.Sigma, Nr.D 7662) werden in 20 ml Dimethylformamid gelöst und unter Luftausschluß (N2-Atmosphäre) auf 0°C gekühlt. Die leicht gelbe Lösung wird mit 480 mg (20 mmol) Natriumhydrid (Suspension in Paraffinöl; Fa.Merck, Nr.818023) versetzt und 10 min bei 0°C gerührt. Dabei verfärbt sich die Reaktionsmischung nach Orange-Braun. Anschließend gibt man 2.69 (12 mmol) N-(tert.-Butoxycarbonyl)-2-bromethylamin zur Lösung und läßt allmählich auf Raumtemperatur kommen. Die Lösung wird 18 h bei 20°C gerührt, dann wird der Ansatz auf Eis gegossen. Der sich bildende Niederschlag wird abgesaugt und das Produkt 8 durch präparative Säulenchromatographie an Kieselgel (Säule: 4 x 68 cm, Eluent: Essigester) gereinigt. Die entsprechenden Fraktionen werden gesammelt, das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer entfernt und der verbleibende Feststoff 1 h am Hochvakuum bei 40°C getrocknet.
Ausbeute:
2.66 g (59% d.Th.) farbloses, feinkristallines Pulver.
DC:
Kieselgel, Essigester; Rf= 0.67
3. 1-[2-Aminoethyl]-7-chlor-5-(2-chlorphenyl)-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on Trifluoracetat (XI)
2.24 g (5 mmol) der Verbindung aus 2. werden in 50 ml Essigester gelöst und auf 0°C gekühlt. Unter Rühren gibt man tropfenweise 10 ml Trifluoressigsäure zu und läßt ca. 30 min nachrühren. Danach werden Säure und Lösungsmittel am Rotationsverdampfer entfernt und das Produkt XI 5 h am Hochvakuum bei 40°C getrocknet.
Ausbeute:
2.32 g (100% d.Th.) leicht gelbliches, feinkristallines Pulver.
DC:
Kieselgel, n-Butanol/Eisessig/Wasser 50/15/25 (v/v/v); Rf= 0.74 .
4. 7-Chlor-5-(2-chlorphenyl)-1-[2-(N-maleinimidoethyl]-1H-1,4-benzodiazepin-2(3H)on (IIIb)
1.16 g (2.5 mmol) des Trifluoracetats XI werden bei 20°C in 15 ml gesättigter Natriumbicarbonat-Lösung suspendiert und unter Rühren mit 425 mg (2.5 mmol) N-Methoxycarbonylmaleinimid in 20 ml Tetrahydrofuran versetzt. Man läßt 1 h bei 20°C rühren. Danach stellt man die Reaktionsmischung mit konz. HCI aufpH 6.0, extrahiert mit 50 ml Essigester und wäscht den Extrakt mit 2 x 50 ml Wasser. Die organische Lösung wird mit ca. 5 g Na2SO4 getrocknet, am Rotationsverdampfer eingedampft und das verbleibende Rohprodukt durch Säulenchromatographie an Kieselgel (Säule: 2.5 x 50 cm, Eluent: Essigester) gereinigt. Die entsprechenden Fraktionen werden gesammelt, das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer entfernt und das verbleibende kristalline Maleinimid IIb 3 h am Hochvakuum bei 40°C getrocknet.
Ausbeute:
330 mg (31% d.Th.) farbloser, feinkristalliner Feststoff.
DC:
Kieselgel, Essigester; Rf= 0.60
1H-NMR(CDCl3): d(ppm) = 3.86/4.10(m,4H;-CH2-CH2-), 3.80/4.86 (AB-Signal,J= 12Hz,2H;-C3H2-), 6.70(s,2H; -CH=CH-), 7.32(m,7H; Aromaten-H).

Claims (10)

  1. Benzodiazepinproteinkonjugate der Formel I
    Figure 00180001
    in der
    R1 Wasserstoff eine Methylgruppe oder R darstellt,
    R2 Wasserstoff, Hydroxy oder eine OR-Gruppe darstellt, wobei entweder R1 oder R2 eine R-Gruppe enthält,
    R3 Halogen, NO2 oder NH2 darstellt,
    X Wasserstoff oder Halogen darstellt,
    wobei R eine Gruppe der Formel II darstellt, in der Z eine makromolekulare immunogen wirksame Trägersubstanz bedeutet, und n 2 oder 3 ist.
  2. Benzodiazepinproteinkonjugate gemäß Anspruch 1 mit der Formel Ia oder Ib
    Figure 00180002
  3. Verfahren zur Erzeugung von Antikörpern gegen Benzodiazepine durch Immunisierung eines Säugetieres und Gewinnung der erzeugten Antikörper nach bekannten Verfahren, dadurch gekennzeichnet, daß ein Konjugat gemäß Anspruch 1 oder 2 verwendet wird.
  4. Antikörper, hergestellt nach einem Verfahren gemäß Anspruch 3.
  5. Verfahren zur immunologischen Bestimmung der Anwesenheit von Benzodiazepinen oder Benzodiazepinmetaboliten in einer Probe durch Kontaktieren einer auf Benzodiazepine zu untersuchenden Probe mit einem Antikörper und Bestimmung des Antikörper-Benzodiazepin-Komplexes in einer geeigneten Weise, dadurch gekennzeichnet, daß als Antikörper ein Antikörper gemäß Anspruch 4 verwendet wird.
  6. Verwendung der Konjugate gemäß Anspruch 1 oder 2 als Immunogene zur Herstellung von Antikörpern gegen Benzodiazepine.
  7. Verwendung der Antikörper gemäß Anspruch 4 in Immunoassays.
  8. Verfahren zur Herstellung der Benzodiazepinproteinkonjugate gemäß Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß Benzodiazepinlinkerverbindungen der Formel III
    Figure 00190001
    mit Polyaminoverbindungen, die mindestens eine Thiolgruppe enthalten, umgesetzt werden, wobei R1', Wasserstoff, Methyl oder R'darstellt, R'2 ist Wasserstoff, OH oder OR' wobei entweder R1' oder R2' eine R' Gruppe enthält, R' eine Gruppe der Formel IV bedeutet, R3 Halogen, NO2 oder NH2 darstellt, X Wasserstoff oder Halogen darstellt.
  9. Benzodiazepin-Linkerverbindungen der Formel III gemäß Anspruch 8.
  10. Verfahren zur Herstellung der Benzodiazepinlinkerverbindungen der Formel III gemäß Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß
    a) wenn R2' eine OR' Gruppe ist
    Verbindungen der Formel V zu Verbindungen der Formel VI oxidiert, diese zu Verbindungen der Formel VII acyliert, mit N-geschütztem Alkylamin und Alkoxycarbonylmaleimid zu Verbindungen der Formel III umgesetzt wird
    Figure 00200001
    Figure 00200002
    oder
    b) wenn R1' eine R' Gruppe ist.
    Benzodiazepine der Formel X werden mit N-geschütztem Halogenalkylamin alkyliert, die Schutzgruppe abgespalten und mit Alkoxycarbonylmaleimid zu Verbindungen der Formel III umgesetzt.
    Figure 00210001
EP96101315A 1995-02-02 1996-01-31 Benzodiazepinproteinkonjugate und ihre Verwendung zur immunologischen Bestimmung von Benzodiazepinen Expired - Lifetime EP0726275B1 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19503320 1995-02-02
DE19503320A DE19503320A1 (de) 1995-02-02 1995-02-02 Neue Benzodiazepinkonjugate

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EP0726275A1 EP0726275A1 (de) 1996-08-14
EP0726275B1 true EP0726275B1 (de) 1999-01-27

Family

ID=7752966

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EP96101315A Expired - Lifetime EP0726275B1 (de) 1995-02-02 1996-01-31 Benzodiazepinproteinkonjugate und ihre Verwendung zur immunologischen Bestimmung von Benzodiazepinen

Country Status (5)

Country Link
US (1) US5662911A (de)
EP (1) EP0726275B1 (de)
JP (1) JP2732825B2 (de)
DE (2) DE19503320A1 (de)
ES (1) ES2130703T3 (de)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19927783A1 (de) * 1999-06-18 2000-12-21 Roche Diagnostics Gmbh Element zur Bestimmung eines Analyts in einer Flüssigkeit, entsprechendes Bestimmungsverfahren unter Verwendung des Elementes sowie Kit zur Bestimmugn eines Analyts
US7238533B1 (en) 2003-07-22 2007-07-03 Ronald Legge Personal illicit drug detection method
GB0401008D0 (en) * 2004-01-17 2004-02-18 Univ Manchester Drug delivery system
US9901567B2 (en) 2007-08-01 2018-02-27 Syntarga B.V. Substituted CC-1065 analogs and their conjugates
WO2011133039A2 (en) 2010-04-21 2011-10-27 Syntarga B.V. Novel conjugates of cc-1065 analogs and bifunctional linkers
CN105899237B (zh) 2014-01-10 2019-09-03 斯索恩生物制药有限公司 用于治疗子宫内膜癌的倍癌霉素adc
SG10201911860VA (en) 2014-01-10 2020-02-27 Synthon Biopharmaceuticals Bv Duocarmycin adcs showing improved in vivo antitumor activity
EP3197919A1 (de) * 2014-09-22 2017-08-02 Synthon Biopharmaceuticals B.V. Pan-reaktive antikörper gegen duocarmycine

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BR6347108D0 (pt) * 1962-03-02 1973-07-19 Hoffmann La Roche Processo para a preparacao de derivados de benzoiduazepina e seus sais
US4046636A (en) * 1974-06-20 1977-09-06 Syva Company Diazepam enzyme conjugates
ATE132974T1 (de) * 1986-10-24 1996-01-15 Abbott Lab Test, indikatoren, immunogene und antikörper für benzodiazepine
DE3919915A1 (de) * 1989-06-19 1990-12-20 Boehringer Mannheim Gmbh Aminoalkylmaleimide und davon abgeleitete hapten- und antigenderivate sowie konjugate mit peptiden oder proteinen
CA1335707C (en) * 1989-08-15 1995-05-30 Pyare Khanna Drug screening assay
US5302715A (en) * 1992-04-06 1994-04-12 Biosite Diagnostics, Inc. Benzodiazepine derivatives
WO1993023076A1 (en) * 1992-05-20 1993-11-25 The Johns-Hopkins University Alternative receptor therapy

Also Published As

Publication number Publication date
EP0726275A1 (de) 1996-08-14
US5662911A (en) 1997-09-02
DE19503320A1 (de) 1996-08-08
JP2732825B2 (ja) 1998-03-30
DE59601198D1 (de) 1999-03-11
ES2130703T3 (es) 1999-07-01
JPH08245689A (ja) 1996-09-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69332988T2 (de) Reagenzien zum Nachweis und zur Quantifizierung von Thyroxin in flüssigen Proben
EP0820984B1 (de) Neue Aktivierte Amphetamine
DE69435044T2 (de) Rapamycin - Konjugate und Antikörper
DE69407402T2 (de) Repamycinbestimmung
DE3751432T2 (de) Rezeptoren für Immunkomplexe, Verfahren zur ihrer Herstellung und Verfahren zur Prüfung diese benutzend.
DE69121844T2 (de) Immunotest für Cyclosporin
EP0459387B1 (de) Test für Phencyclidin und Phencyclidin-Metaboliten, Tracer, Immunogene, Antikörper und Reagenzsatz dafür
DE69030829T2 (de) Reagenzien zum Nachweis von Drogen
DE60031858T2 (de) Monoklonale antikörper gegen tacrolimus und immunotestverfahren für tacrolimus
DE69610716T2 (de) Topiramate-immunoassay, sowie analoge und antikörper
EP0013910B1 (de) Theophyllin-Antigene und -Antikörper, Verfahren zu deren Herstellung, ihre Verwendung zur Bestimmung von Theophyllin, Reagens-Set und Antiserum für diese Verwendung
DE4314091A1 (de) Immunologisches Nachweisverfahren für Triazine
EP0726275B1 (de) Benzodiazepinproteinkonjugate und ihre Verwendung zur immunologischen Bestimmung von Benzodiazepinen
DE10111224B4 (de) Analoge der Ecstasy-Klasse sowie Verwendung derselben beim Nachweis von Verbindungen der Ecstasy-Klasse
DE69731649T2 (de) Konjugate und spezifische immuntests des methadonmetaboliten 2-ethylidin-1,5-dimethyl-3,3-diphenyl-3,3-diphenylpyrrolidin
DE10081928B4 (de) 6-O-Acetylmorphin (6MAM)-Analoge Verbindungen, welche zur Verwendung in Immuntests geeignet sind, hiergegen gewonnene Antikörper, deren Herstellung sowie Reagentien und Reagenssysteme, die diese umfassen
Wring et al. Shorter development of immunoassay for drugs: application of the novel RIMMS technique enables rapid production of monoclonal antibodies to ranitidine
EP0442372B1 (de) Verbesserte markierte Haptene, Verfahren zu deren Herstellung sowie Verwendung dieser markierten Haptene in Immunoassays
DE69329935T2 (de) Haptene, tracer, immunogene und antikörper für carbazol - und dibenzofuran - derivate
EP0549525B1 (de) Monoklonale Antikörper gegen Sulfonylharnstoffherbiziden und ihre Verwendung zum Nachweis
DE69329557T2 (de) Haptene, tracer, immunogene und antikörper für 3-phenyl-1-adamantanessigsäuren
DE69525038T2 (de) Piperidinanaloge und -konjugate von procainamid und napa
EP0471345B1 (de) Bestimmung von biogenen Aminen
DE69232001T2 (de) Markierte Hapten-Analoge zur Verwendung in Immunoassays
DE4306697A1 (de) Mittel und Verfahren zur immunologischen Bestimmung von Diphenhydramin und dessen Metaboliten

Legal Events

Date Code Title Description
PUAI Public reference made under article 153(3) epc to a published international application that has entered the european phase

Free format text: ORIGINAL CODE: 0009012

AK Designated contracting states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): DE ES FR GB IT

17P Request for examination filed

Effective date: 19970214

17Q First examination report despatched

Effective date: 19970828

GRAG Despatch of communication of intention to grant

Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS AGRA

GRAG Despatch of communication of intention to grant

Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS AGRA

GRAH Despatch of communication of intention to grant a patent

Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS IGRA

GRAH Despatch of communication of intention to grant a patent

Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS IGRA

GRAA (expected) grant

Free format text: ORIGINAL CODE: 0009210

AK Designated contracting states

Kind code of ref document: B1

Designated state(s): DE ES FR GB IT

PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: FR

Free format text: LAPSE BECAUSE OF FAILURE TO SUBMIT A TRANSLATION OF THE DESCRIPTION OR TO PAY THE FEE WITHIN THE PRESCRIBED TIME-LIMIT

Effective date: 19990127

REF Corresponds to:

Ref document number: 59601198

Country of ref document: DE

Date of ref document: 19990311

RAP4 Party data changed (patent owner data changed or rights of a patent transferred)

Owner name: ROCHE DIAGNOSTICS GMBH

ITF It: translation for a ep patent filed
GBT Gb: translation of ep patent filed (gb section 77(6)(a)/1977)

Effective date: 19990329

EN Fr: translation not filed
REG Reference to a national code

Ref country code: ES

Ref legal event code: FG2A

Ref document number: 2130703

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: T3

PLBE No opposition filed within time limit

Free format text: ORIGINAL CODE: 0009261

STAA Information on the status of an ep patent application or granted ep patent

Free format text: STATUS: NO OPPOSITION FILED WITHIN TIME LIMIT

26N No opposition filed
REG Reference to a national code

Ref country code: GB

Ref legal event code: IF02

PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: GB

Payment date: 20030129

Year of fee payment: 8

PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: ES

Payment date: 20030130

Year of fee payment: 8

PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: DE

Payment date: 20030213

Year of fee payment: 8

PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: GB

Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

Effective date: 20040131

PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: ES

Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

Effective date: 20040202

REG Reference to a national code

Ref country code: GB

Ref legal event code: 732E

PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: DE

Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

Effective date: 20040803

GBPC Gb: european patent ceased through non-payment of renewal fee

Effective date: 20040131

PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

Ref country code: IT

Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

Effective date: 20050131

REG Reference to a national code

Ref country code: ES

Ref legal event code: FD2A

Effective date: 20040202