[go: up one dir, main page]

DE69630129T2 - Gebrauch von autologen, dermalen fibroblasten zur reperatur von haut- oder weichgewebeschäden - Google Patents

Gebrauch von autologen, dermalen fibroblasten zur reperatur von haut- oder weichgewebeschäden Download PDF

Info

Publication number
DE69630129T2
DE69630129T2 DE69630129T DE69630129T DE69630129T2 DE 69630129 T2 DE69630129 T2 DE 69630129T2 DE 69630129 T DE69630129 T DE 69630129T DE 69630129 T DE69630129 T DE 69630129T DE 69630129 T2 DE69630129 T2 DE 69630129T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
fibroblasts
serum
dermal
use according
subject
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69630129T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69630129D1 (de
Inventor
K. William BOSS
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Isolagen International SA
Original Assignee
Isolagen International SA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Isolagen International SA filed Critical Isolagen International SA
Application granted granted Critical
Publication of DE69630129D1 publication Critical patent/DE69630129D1/de
Publication of DE69630129T2 publication Critical patent/DE69630129T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3804Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
    • A61L27/3813Epithelial cells, e.g. keratinocytes, urothelial cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0059Cosmetic or alloplastic implants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/02Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by special physical form
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/96Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
    • A61K8/99Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from microorganisms other than algae or fungi, e.g. protozoa or bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3804Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3839Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3839Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
    • A61L27/3869Epithelial tissues other than skin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3895Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells using specific culture conditions, e.g. stimulating differentiation of stem cells, pulsatile flow conditions
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/60Materials for use in artificial skin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00Drugs for dermatological disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • A61Q19/08Anti-ageing preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/80Process related aspects concerning the preparation of the cosmetic composition or the storage or application thereof
    • A61K2800/91Injection
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S623/00Prosthesis, i.e. artificial body members, parts thereof, or aids and accessories therefor
    • Y10S623/901Method of manufacturing prosthetic device
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S623/00Prosthesis, i.e. artificial body members, parts thereof, or aids and accessories therefor
    • Y10S623/902Method of implanting
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S623/00Prosthesis, i.e. artificial body members, parts thereof, or aids and accessories therefor
    • Y10S623/915Method or apparatus for preparing biological material
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S623/00Prosthesis, i.e. artificial body members, parts thereof, or aids and accessories therefor
    • Y10S623/92Method or apparatus for preparing or treating prosthetic
    • Y10S623/923Bone

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Gerontology & Geriatric Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Infusion, Injection, And Reservoir Apparatuses (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Description

  • 1. GEBIET DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung betrifft die Reparatur von Haut und Weichgewebedefekten, in menschlichen Subjekten einschließlich Falten. Insbesondere betrifft sie ein neues Material zur Verwendung in nicht chirurgischen Techniken, die das Volumen der Dermis oder subkutanen Gewebes vergrößern. Durch Injektion einer Suspension autologer Zellen stellt die Ertindung eine langfristige Verstärkung des angrenzenden unterliegenden Gewebes ohne die Nachteile, die mit der Verwendung derzeitig vertügbarer Materialien einher gehen, zur Verfügung.
  • 2. HINTERGRUND DER ERFINDUNG
  • Die Injektion eines Materials (eines "Injektionsmittels") in den Körper und insbesondere in das Gesicht, um ein ästhetisches Ergebnis zu bewirken, geht bis in das neunzehnte Jahrhundert zurück. Zum Beispiel erfreute sich die Injektion von Paraffin zur Korrektur von Gesichtskonturdefekten für einen kurzen Zeitraum in den Jahren vor dem ersten Weltkrieg einer Akzeptanz. Allerdings bedingten Komplikationen und die nicht zufriedenstellende Natur der langfristigen Ergebnisse, dass diese Praxis aufgegeben wurde. Die Vertügbarkeit injizierbaren Silicons führte zu einem Aufkommen einer tatsächlichen Wiederholung dieser Vorgänge zu Beginn der frühen 1960er. Speziell hergestellte Siliconlösungen "medizinischer Qualität", z. B. Dow Corning MDX 4,4011, wurden auf einer experimentellen Basis in einer Reihe zugelassener Testzentren in den Vereinbigten Staaten verwendet.
  • Komplikationen, wie lokale und systemische Reaktionen auf das Silicon, Migration des Implantats und lokale Gewebezusammenbrüche, schränken die Verwendung von Siliconinjektionen ein. Obwohl die ursprünglichen Befürworter von Siliconinjektionen ihre experimentellen Programme mit einer begrenzten Anzahl von Probanden weitertührten, scheint es sehr unwahrscheinlich, dass diese Technik von einer größeren Gemeinschaft von Chirurgen und Ärzten angenommen wird. Zusammengefasst in Matton, G. et al., 1985, Aesthetic Plastic Surgery 9:133-40; Spira, M. & Rosen, T., 1993, Clin. Plastic Surgery 20 : 181–9.
  • Die durch die Injektion nicht-biologischer Materialien gewonnenen schlechten Ergebnisse führten zu Versuchen Fremdproteine, insbesondere Rinderkollagen, als Implantat zu verwenden. Obwohl nicht verarbeitetes Rinderkollagen zur Injektion in den Menschen zu immunogen ist, führt das Entfernen C- und N-terminaler Peptide von Rinderkollagen durch enzymatischen Abbau zu einem Material ("Atelokollagen"), das in kleineren Mengen verwendet werden kann, wenn Patienten voruntersucht werden, um auszuschließen, dass diese Patienten immunoreaktiv sind. Verfahren zur Herstellung und Verwendung dieser Produkte werden in US-Patent 3,949,073, US-Patent 4,424,208 und US-Patent 4,424,208 und US-Patent 4,488,911 beschrieben. Das Produkt wurde unter dem Warnzeichen ZYDERM® als Atelokollagen in Lösung bei einer Konzentration von 35 mg/ml und 65 ml/ml vertrieben. Obwohl in weit verbreiteter weltweiter Anwendung, es gab seit 1987 mehr als 200000 Probanden in den Vereinigten Staaten, wird die Verwendung von ZYDERM mit der Entwicklung von Anti-Rinderantikörpem in ungefähr 90 % der Probanden und mit offenkundigen immunologischen Komplikationen in ungefähr 1–3% der Probanden assoziiert. DeLustro, F., et al., 1987, Plastic and Reconstructive Surgery 79 : 581.
  • Atelokollagen in Lösung erwies sich als weniger als vollständig befriedigend, da dieses Material innerhalb eines Zeitraums von Wochen bis Monaten durch den Probanden an dem Ort der Injektion ohne Ersatz durch Wirtsgewebe adsorbiert wird. Obwohl Protokolle, die aus wiederholten Injektionen bestehen, angedacht wurden, sind die Programme in der Praxis durch die Entwicklung von Immunreaktionen gegen das Rinder-Atelokollagen, die Kosten und den Widerstand des Patienten eingeschränkt. Um diese Einschränkungen zu überkommen wurde Rinder-Atelokollagen weiter mit Glutaraldehyd-Vernetzung verarbeitet, gefolgt durch Filtration und Scheren mittels Passage durch ein feines Netz. Die Herstellung und Verwendung dieses Materials wird in US-Patent 4,582,640 und US-Patent 4,642,117 beschrieben. Ein entsprechend hergestelltes Produkt wird unter dem Warenzeichen ZYPLAST® als vernetztes Rinder-Atelokollagen vertrieben. Der Vorteil, den die Vernetzung zur Verfügung stellen soll, ein erhöhter Widerstand gegen Wirtsabbau, wird durch die Erhöhung der Viskosität zunichte gemacht. Die erhöhte Viskosität und insbesondere die unregelmäßige Viskosität ("Klumpenbil dung") macht das Material schwer zu verwenden und macht es sogar für bestimmte Zwecke unverwendbar. Siehe z. B. US-Patent 5,366,498.
  • Zudem berichten mehrere Untersuchende, dass es keine oder nur eine geringfügig erhöhte Dauerhaftigkeit von ZYPLAST im Vergleich zu ZYDERM gibt und dass die Dauer der Wirkungen von Injektionen höchstens ungefähr 4 bis 6 Wochen dauert. Matti, B. A. & Nicolle, F. V., 1990, Aesthetic Plastic Surgery 14:227-34; Ozgentas, H. E. et al., 1994, Ann Plastic Surgery 33 : 171. Die Erfahrung der meisten praktischen Ärzte zeigt, dass eine bemerkbare Adsorption nach ungefähr 4 bis 6 Wochen erkennbar ist.
  • Die durch die Immunogenizität von Rinderkollagenprodukten in Menschen vermittelten Einschränkungen haben andere dahingehend bewegt, die Herstellung menschlichen Kollagens aus Plazenta in Erwägung zu ziehen, siehe z. B. US-Patent 5,002,071, und aus chirurgischen Proben, siehe z. B. US-Patent 4,969,912 und US-Patent 5,332,802. Das weitere Verarbeiten menschlichen Kollagens durch Vernetzen und andere chemische Modifikationen ist notwendig, da menschliches Kollagen dem gleichen Abbauverfahren wie Rinderkollagen ausgesetzt ist.
  • Menschliches Kollagen zur Injektion, das vollständig aus einer Probe des eigenen Gewebes des Probanden abgeleitet ist, ist verfügbar und wird unter dem Markennamen AUTOLOGENTM vertrieben. Es gibt keinen Nachweis, dass Injektionen mit menschlichem Kollagen in dauerhafteren Wirkungen als Rinderkollageninjektionen resultieren. Zudem ist die Verwendung von autolog prozessiertem Kollagen auf Probanden eingeschränkt, die ein Gesichtsstraffungsvertahren vorgenommen haben, da das Ausgangsmaterial für deren Herstellung die während dieser Operation entfernte Haut ist. Es ist somit klar, dass, obwohl autolog hergestelltes Kollagen die Immunogenizität von Rinderkollagen vermeidet, dass es wie Rinderkollagen keine langfristigen therapeutischen Vorteile zur Verfügung stellt und auf Patienten eingeschränkt ist, die sich einem chirurgischen Eingriff unterzogen haben.
  • Andere haben eine Mischung von Gelatinepulver, ε-Aminocapronsäure und Plasma des Probanden ("FIBRELRTM") als Alternative zu Atelokollagen für den Zweck der Vergrößerungmehrung der angrenzenden unterliegenden Dermis injiziert. Multicenter trial, 1987, J. Am. Acad. Dermatol. 16 : 1155–62.
  • FIBRELTM's Wirkung scheint teilweise von der Induktion einer sklerogenen entzündlichen Reaktiont abzuhängen, um das weiche Gewebe zu verstärken. Gold, M. H., 1994, J. Dermatologic Surg. Oncol. 20 : 586–90. Obwohl die Berichte von FIBRELTM-Behandlungen aussagen, dass ein Teil der Patienten davon profitiert, siehe z. B. Millikan, L., et al., 1991, J. Dermatologic Surg. Oncol. 17:223-29, leiden die Ergebnisse unter Beulenbildung und mangelnder Dauerhaftigkeit. Die Verwendung von FIBRELTM wird außerdem durch die Unannehmlichkeit, die mit den Injektionen assoziiert ist, eingeschränkt und da die Ärzte dessen Herstellung als aufwendig empfanden.
  • Zusammenfassend ist festzustellen, dass keines der verfügbaren nicht-lebenden injizierbaren Materialien für den Zweck der Verstärkung der angrenzenden unterliegenden Dermis und Weichgewebe vollständig zufriedenstellend ist.
  • Die Unfähigkeit, mit Atelokollagen-Injektionen dauerhafte Resultate zu erzielen und die Probleme der Verwendung von FIBRELTM führten einige dazu, zu versuchen, lebendes lipöses Gewebe zu gewinnen und zu injizieren (Transplantat) zur Verstärkung der angrenzenden unterliegenden Dermis und weichem Gewebe. Es können gute Resultate in der Korrektur großer Defekte erzielt werden, wenn Fettgewebe chirurgisch entfernt und reimplantiert wird. Siehe z. B. McKinney, P. & Pandya, S., 1994, Aesthetic Plastic Surgery 18:383-5; Davies, R. E. et al., 1995, Arch of Otolaryngology – Head & Neck Surgery 121:95-100. Allerdings sind die Ergebnisse für Reparaturen, die das Platzieren des Implantats durch Injektion voraussetzen, deutlich weniger vorteilhaft. Ersek, R. A., 1991, Plastic & Reconstructive Surgery 87 : 219–27. Obwohl einige vorteilhafte Ergebnisse berichtet worden waren, haben sogar die Befürworter des Verfahrens, siehe z. B. Hambley, R. M. & Carruthers, J. A., 1992, J. Derm. Surgery & Oncol. 18 : 963–8, zugegeben, dass die Technik für die meisten Ärzte unbefriedigende Ergebnisse zur Verfügung stellt. Lewis, C. M., 1993, Aesthetic Plastic Surgery 17:109-12. Unter den häufig von Ärzten und Patienten festgestellten Problemen sind es die mangelnde Voraussagbarkeit und Beulenbildung der Resultate, welches das Verfahren für die Behandlung feiner Falten ungeeignet macht und ein Zeitraum von extremer Schwellung nach der Injektion, welcher zwischen 4 bis 6 Wochen dauert.
  • 3. ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung stellt die Verwendung dermaler Fibroblasten in der Herstellung eines Mittels zur Verwendung in der kosmetischen Verstärkung von kosmetischen oder ästhetischen Defekten in der Haut eines Subjekts, zur Verfügung, wobei das Mittel expandierte autologe dermale Fibroblasten umfasst, die im Wesentlichen frei von Kulturmedium-Serum-abgeleiteten Proteinen sind. Das Mittel kann in der Form einer Suspension in die Dermis und subkutanes Gewebe injiziert werden, das unterliegend an den Defekt angrenzt. Typische Defekte, die korrigiert werden können, umfassen Falten, langgezogene Kerben, abgesenkte Narben, kutane Vertiefungen nicht-traumatischen Ursprungs, Narbenbildung durch Acne vulgaris und Hypoplasie der Lippe. Die Zellen, die injiziert werden, sind Zellen, die mit dem Subjekt histokompatibel sind und die durch Passage in einem Zellkultursystem expandiert wurden. Die eingepflanzten Zellen sind vorzugsweise dermale Fibroblasten, die aus einer Biopsie-Probe abgeleitet sind, die dem Subjekt entnommen wurde.
  • Die passagierten dermalen Fibroblasten sind im Wesentlichen frei von Serumproteinen, die aus dem Kulturmedium abgeleitet sind, das verwendet wurde, um die Zellen zu expandieren, so dass sie verwendet werden können, um Defekte in der Haut zu korrigieren. Dieses kann durch Inkubieren der expandierten Fibroblasten in proteinfreiem Medium für einen Zeitraum bewirkt werden.
  • 4. DETAILLIERTE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung basiert teilweise auf der Erkenntnis, dass das ideale Material, welches zur Verstärkung der Dermis und subkutanen Gewebes, das unterliegend an einen Defekt angrenzt, lebende Zellen des Gewebetyps sein würden, der normalerweise in der Dermis vorhanden ist. Diese Erfindung basiert auch auf der Erkenntnis, dass ein großzügiger Vorrat autologer Zellen des gewünschten Typs durch Kultivieren einer Biopsieprobe hergestellt werden kann, die vorher dem Subjekt mehrere Wochen vor der Injektion entnommen wurden. Die Erfindung basiert des Weiteren auf der Erkenntnis, dass nach der Gewebekulturexpansion die autologen Zellen eine wesentliche Menge antigener Proteine enthalten werden, aber dass die antigenen Proteine vor der Injektion in das Subjekt entfernt werden können.
  • 4.1 Verfahren zur Gewinnung einer injizierbaren Zellsuspension
  • Die Erfindung kann durch Injizieren jeglicher nicht differenzierter mesenchymaler Zelle durchgeführt werden, die in Kultur expandiert werden kann. In einer bevorzugten Ausführungsform werden dermale Fibroblasten injiziert, da sie leicht zu gewinnen und zu expandieren sind und da sie einer der Zelltypen sind, die normalerweise in der Dermis und in angrenzendem unterliegendem Geweben vorhanden ist.
  • Eine dermale Fibroblastenkultur wird aus einer 2 × 5 mm Biopsieprobe der Haut in voller Dicke injiziert. Bedingt durch das Phänomen der Implantatabstoßung, welches den Chirurgen und Immunologen in der Transplantation wohl bekannt ist, ist es wesentlich, dass die kultivierten Fibroblasten histokompatibel mit dem Wirt sind. Histokompatibilität kann durch das Gewinnen einer Biopsie des Subjekts, dessen dermaler Defekt korrigiert werden soll und das Kultivieren der Fibroblasten dieser Person sichergestellt werden.
  • Bevor die Kultur initiiert wird, wird die Biopsie wiederholt mit antibiotischen und antifungiziden Mitteln gewaschen. Danach wird die Epidermis und das subkutane Adipocytenenthaltende Gewebe entfernt, so, dass die resultierende Kultur im Wesentlichen frei von Nicht-Fibroblastenzellen ist und die Probe der Dermis wird mit einem Skalpell oder einer Schere fein aufgeteilt. Die Teile der Probe werden einzeln mit einer Pinzette auf die trockene Oberfläche eines Gewebekulturgefäßes plaziert und für zwischen 5 und 10 Minuten anheften gelassen, bevor eine kleine Menge Medium langsam hinzugefügt wird, wobei darauf geachtet wird, dass die angehefteten Gewebefragmente nicht abgelöst werden. Nach 24 Stunden Inkubation wird das Gefäß mit zusätzlichem Medium versorgt. Wenn ein T-25 Gefäß zum Starten der Kultur verwendet wird, beträgt die ursprüngliche Menge an Medium 1,5 bis 2,0 ml. Das Etablieren einer Zelllinie aus einer Biopsieprobe nimmt normalerweise zwischen 2 und 3 Wochen in Anspruch, zu welchem Zeitpunkt die Zellen aus dem ursprünglich verwendeten Kulturgefäß zur Expansion entnommen werden können.
  • Während der frühen Stadien der Kultur ist es wünschenswert, dass die Gewebefragmente an dem Boden des Kulturgefäßes haften bleiben; Fragmente, die freigesetzt werden, sollten in neue Gefäße reimplantiert werden. Die Fibroblasten können durch ein kurzes Aussetzen der Gewebekultur zu EDTA-Trypsin dahingehend stimuliert werden, zu wachsen, gemäß Techniken, die denen den Fachleuten auf dem Gebiet wohl bekannt sind. Das Aussetzen zu Trypsin ist zu kurz, um die Fibroblasten von ihrer Anheftung an die Wand des Kulturgefäßes freizusetzen. Direkt nachdem die Kulturen etabliert wurden und Konfluenz anstreben, können Proben der Fibroblasten zur Gefrieraufbewahrung entfernt werden. Die Gefrieraufbewahrung von Fibroblasten früher anstatt später Passagen ist bevorzugt, da die Anzahl der Passagen in Zellkultur von normalen menschlichen Fibroblasten eingeschränkt ist.
  • Die Fibroblasten können in jeglichem Gefriermedium eingefroren werden, das geeignet ist, die Fibroblasten zu konservieren. Es kann ein Medium, bestehend aus 70% Wachstumsmedium, 20% (v/v) fetales Rinderserum und 10% (v/v) Dimethylsulfoxid (DMSO) mit guter Wirkung verwendet werden. Aufgetaute Zellen können verwendet werden, um sekundäre Kulturen zu initiieren, um Suspensionen zur Verwendung in dem gleichen Subjekt zu erhalten, ohne den Nachteil, dass eine weitere Probe genommen werden muss.
  • Jegliche Gewebekulturtechnik, die geeignet ist für die Vermehrung dermaler Fibroblasten aus Biopsieproben, kann verwendet werden, um die Zellen zu expandieren, um die Erfindung zu praktizieren. Den Fachleuten auf dem Gebiet wohlbekannte Techniken sind in R. I. Freshney, Ed., ANIMAL CELL CULTURE: A PRACTICAL APPROACH (IRL Press, Oxford England, 1986) und R. I. Freshney, Ed., CULTURE OF ANIMAL CELLS: A MANUAL OF BASIC TECHNIQUES, Alan R. Liss & Co., New York, 1987), zu finden, welche hierbei durch Referenzieren aufgenommen werden.
  • Das Medium kann jegliches Medium sein, das für das Wachstum primärer Fibroblastenkulturen geeignet ist. In den meisten Fällen ist das Medium mit Serum in einer Menge von 0,5% und 20% (v/v) supplementiert, um das Wachstum der Fibroblasten zu unterstützen. Höhere Konzentrationen von Serum fördern schnelleres Wachstum der Fibroblasten. In einer bevorzugten Ausführungsform ist das Serum fetales Rinderserum, welches zu einer Endkonzentration von 10% des Mediums hinzugefügt wird. Das Medium kann z. B. mit 2 mM Glutamin, 110 mg/l Natriumpyruvat, 10% (v/v) fetales Rinderserum und Antibiotika supplementiertes hochglucosehaltiges DMEM ("vollständiges Medium") sein.
  • Die Zellen können durch Trypsinierung in neue Gefäße passagiert werden. Zur Expansion werden die Einzelgefäße 1 : 3 aufgeteilt. Dreifachboden T-150 Gefäße mit einer Gesamtkulturfläche von 450 cm2 sind zur Durchführung der Erfindung geeignet. Ein Dreifachboden T-150 kann mit ungefähr 6 × 106 Zellen ausgesäht werden und hat eine Kapazität zur Herstellung von ungefähr 1,8 × 107 Zellen. Wenn die Kapazität des Gefäßes erreicht ist, was typischerweise 5 bis 7 Kulturtage benötigt, wird das Wachstumsmedium durch serumfreies vollständiges Medium ersetzt; danach werden die Zellen inkubiert, d. h., bei ungefähr 30°C und ungefähr 40°C für mindestens 6 Stunden gehalten, vorzugsweise für mehr als 12 Stunden und am meisten bevorzugt von 16 bis 18 Stunden bei 37°C in dem Protein-freien Medium. Die Inkubation der Zellen in serumfreiem Medium entfernt im Wesentlichen die Proteine von den Zellen, die aus fetalem Rinderserum abgeleitet sind, welches, wenn vorhanden, immunogen in dem Subjekt sein würde und eine allergische Reaktion bewirken würde.
  • Am Ende der Inkubation in serumfreiem Medium werden die Zellen aus dem Gewebekulturgefäß durch Trypsin/EDTA entfernt; intensiv durch Zentrifugation und Resuspendierung gewaschen; und zur Injektion in einem gleichen Volumen injizierbarer isotonischer Salzlösung suspendiert. Sechs Dreifachboden T-150 Gefäße, die bis zur Kapazitätsgrenze ausgewachsen waren ergaben 108 Zellen, welche ausreichen, um ungefähr 1,0 ml Suspension zu machen.
  • Alternativ können die Zellen bei 4°C transportiert werden, solange sie innerhalb von 18 Stunden ab dem Zeitraum, an dem die Suspension hergestellt wurde, injiziert werden. Die Zellen können in einem gleichen Volumen vollständigem Medium suspendiert werden, außer der Abwesenheit von Phenol Rot pH-Indikator und den Ersatz von fetalem Rinderserum durch Serum des Subjekts für einen solchen Transport (Transportmedium). Die Zellen können abgesaugt und in das Transportmedium injiziert werden.
  • Das Volumen des Salz- oder Transportmediums, in welchem die Zellen suspendiert sind, ist nicht kritisch. Abhängig von solchen Faktoren, wie die Zahl der Fibroblasten, die der Arzt injizieren möchte, der Größe und Anzahl der Defekte, die zu behandeln sind, und der Eilbedürftigkeit des Wunsches des Subjekts, die Behandlungsergebnisse zu erzielen, kann der Arzt die Zellen in einem größeren Volumen an Medium suspendieren und entsprechend weniger Zellen an jeder Injektionsstelle injizieren.
  • 4.2 Alternatives Verfahren zur Gewinnung einer injizierbaren Zellpopulation in einer viskosen Suspension
  • Wenn die Reparatur eines dermalen Defekts ein großes Volumen an Material notwendig macht, stellt die vorliegende Erfindung ein alternatives Vertahren zur Herstellung einer injizierbaren Zellsuspension zur Verfügung. Beispiele solcher Defekte umfassen solche, in denen das Subjekt eine Vergrößerung der Labia oralis, die Behandlung nasolabialer Falten und die Behandlung subkutaner Defekte benötigt.
  • Das alternative Vertahren ist mit dem oben beschriebenen Vertahren identisch, bis eine Population von ungefähr 1 × 106 Zellen erhalten wird. Ein Plasma-Gerinnsel wird auf dem Boden einer 100 mm Petri-Schale ausgebildet, die durch das Hinzufügen von 2 ml des Plasmas des Subjekts und 50 bis 100 Einheiten autologen Thrombins (typischerweise in 50 μl) behandelt wird, um eine Gewebekulturoberfläche aufzuweisen, so dass ein Gerinnsel ausgebildet wird. Kultivierte dermale Fibroblasten, 1 × 106 Zellen in 3 bis 5 ml, werden auf der Oberfläche des Gerinnsels ausgesät und für weitere 7 Tage in vollständigem Medium kultiviert. Am Ende von 7 Tagen wird das vollständige Medium gegen Serum-freies Medium ausgetauscht. Ein Protokoll, bei dem das Medium zweimal entfernt und mit Serum-freiem Medium in stündlichen Intervallen ersetzt wird und bei dem anschließend die Zellen weitere 14 bis 18 Stunden in einem Serum-freien Medium inkubiert werden, führt zu befriedigenden Ergebnissen. Nachdem die Inkubation in Serum-freiem Medium vollständig ist, kann das Gerinnsel in eine Spritze aufgesaugt werden und wie benötigt injiziert werden.
  • In einer alternativen Ausführungsform der Ertindung werden die Fibroblasten nicht in eine Suspension übertührt. Stattdessen wird das Gerinnsel intakt verwendet oder mit einem Skalpell in eine gewünschte Form geschnitten und die Fibroblasten-besetzte Oberfläche des Gerinnsels wird als Verband auf die Dermis des Subjekts nach dermalem Abtrag aufgetragen.
  • 4.3 Die Verabreichung der Zellen an Probanden
  • Die Zellsuspensionen der Erfindung können verwendet werden, um dermale Defekte durch Verwendung der gleichen Techniken zu behandeln, die Fachleute auf dem Gebiet derzeit einsetzen, um ZYDERM® und ZYPLAST® einzusetzen. Die Zellsuspension kann anstatt Atelokollagen-Lösungen mit den oben genannten Vorteilen verwendet werden. Repräsentative Lehren bezüglich der Verwendung injizierbaren Materials zur Verstärkung der unterliegenden angrenzenden Dermis und subkutanen Gewebes sind in der chirurgischen Literatur zu finden. Gonzales, U. M., 1992, Aesthetic Plastic Surgery 16 : 231–4; Nicolle, F. V., 1985, Aesthetic Plastic Surgery 9 : 159–62; Pieyre, J. M., 1985, Aesthetic Plastic Surgery 9 : 153–54; welche hiermit in ihrer Gesamtheit durch Referenzieren eingefügt werden.
  • Die Behandlung feiner oberflächlicher Gesichtslinien, einer Ausführungsform der Erfindung, kann wie folgt erzielt werden. Die zu behandelnde Fläche wird mit Alkohol vorbereitet und gestrafft, um eine straffe Oberfläche zu erzielen. Eine Spritze wird mit einer Suspension gefüllt und mit einer Nadel mit 30 Einheiten zur Injektion versehen. Die Nadel wird in die Hautstelle so oberflächlich wie möglich eingeführt; die Orientierung des Winkels ist nicht kritisch. Eine intradermale Injektion wird durch leichten Druck, bis ein leichtes Bleichen zu sehen ist, durchgeführt. Es werden multiple serielle Injektionen durchgeführt.
  • Das Implantat kann in die obikulare Muskulatur plaziert werden, um Hypoplasie der Lippe zu behandeln oder in das subkutane Gewebe, um tiefe subkutane Defekte zu behandeln.
  • Große Flächen von Aknenarben können durch dermales Abtragen bis zu einer Ebene der mittleren oder tiefen Dermis behandelt werden. Ein Fibroblasten-enthaltendes Gerinnsel wird dann so aufgetragen, um die abgetragene Oberfläche zu bedecken und so appliziert, dass die mit Fibroblasten versehene Seite des Gerinnsels benachbart zu der abgetragenen dermalen Oberfläche ist. Das applizierte Gerinnsel wird dann mit einem Verband, wie Xeroform®, Adaptic® oder jeglichem nicht-verschließenden Verband bedeckt.
  • 5. ZUSAMMENFASSUNG DER KLINISCHEN ERFAHRUNG
  • Sechs Patienten wurden auf verschiedene dermale Defekte gemäß dem oben beschriebenen Verfahren behandelt. Die Diagnosen waren wie folgt: Lachfalten (nasolabiale Falten), 2 Patienten; periorale Falten, 2 Patienten; glabellare Furchen; abgesenkte Narbe; Lippen-Hypoplasie; und aktinische Wangenfalten.
  • Jeder Patient erhielt eine Unterarm-Versuchsdosis von 0,1 ml der Zellsuspension. Zwei Patienten entwickelten eine leichte Rötung; aber es gab keine anderen Anzeichen einer Reaktion auf die Injektionen. Drei Wochen später wurden therapeutische Injektionen mit einem Gesamtvolumen von 1,0 ml an der Stelle der dermalen Defekte durchgeführt. Vier Wochen später wurde an einigen Patienten eine zweite therapeutische Injektion von 1,0 ml durchgeführt. Nur an dem Patienten mit der Lippenverstärkung wurde eine zweite Injektion durchgeführt, um den gleichen Defekt zu reparieren; alle anderen Patienten hatten nur eine Injektion in jedem Behandlungsbereich.
  • Die Patienten wiesen eine minimale oder keine Rötung auf und es gab keine Zeichen unmittelbarer systemischer oder lokaler unerewünschter Reaktionen. Jeder Patient war direkt nach den Injektionen in der Lage zu arbeiten und bei jedem Patienten war die Besserung sofort erkennbar.
  • Es gab nur eine minimale Unannehmlichkeit, die mit den Injektionen assoziiert war. Die Unannehmlichkeit wurde als geringer als mit bovinen AteloKollagen-Injektionen berichtet. Die Patienten brachten ihre Zufriedenheit mit der Behandlung zum Ausdruck und ihren Wunsch, weitere Behandlungen von anderen Defekten zu unternehmen. Die Korrektur dermaler Defekte wurde von Freunden und Bekannten der Patienten wahrgenommen, die nicht von den Behandlungen wussten. Es gab keine sichtbaren Folgen der Behandlung der Haut, obwohl es einige Anzeichen der Behandlung gab, die durch Abtasten nachweisbar waren.
  • Es gab keine verzögerten lokalen oder systemischen Nebenwirkungen während der sechsmonatigen Studienzeit nach der Injektion. Keiner der Patienten entwickelte Beulen, Unregelmäßigkeiten oder Unebenheiten. Am Wichtigsten, die therapeutischen Wirkungen der Injektionen zeigten keinerlei Verringerung während des beobachteten Zeitraums, welcher auf mehr als sechs Monate vom Zeitpunkt der Injektion an erweitert wurde, während welcher Zeit die Absorbtion einer Rinder-Atelokollagen-Injektion erwar tet worden wäre. Statt dessen zeigten die therapeutischen Wirkungen in einigen Patienten, die für langfristige Nachuntersuchungen zur Verfügung standen, die Vorteile, dass diese sich mit der Zeit vergrößerten. Das späte Einsetzen langfristiger Verbesserungen zeigt, dass die injizierten Fibroblasten metabolisch aktiv sind und eine zusätzliche extrazelluläre Matrix an der Stelle der Injektion aufbauen.
  • Die vorliegende Erfindung ist nicht auf den Umfang der spezifischen einzelnen Ausführungsformen eingeschränkt, die als Einzelillustrationen individueller Aspekte der Erfindung vorgesehen sind und funktionell äquivalente Verfahren und Komponenten liegen innerhalb des Umfangs der Erfindung. Tatsächlich werden verschiedene Modifikationen der Erfindung zusätzlich zu den gezeigten und hierin beschriebenen dem Fachmann auf dem Gebiet aus der vorgenannten Beschreibung zu erkennen sein. Solche Modifikationen sollen in den Umfang der nachstehenden Ansprüche fallen.

Claims (11)

  1. Verwendung von dermalen Fibroblasten in der Herstellung eines Mittels zur Verwendung in der kosmetischen Verstärkung von kosmetischen oder ästhetischen Defekten in der Haut eines Subjekts, wobei das Mittel expandierte autologe dermale Fibroblasten umfasst, die im Wesentlichen frei von Kulturmedium-Serum-abgeleiteten Proteinen sind.
  2. Verwendung gemäß Anspruch 1, wobei das Mittel im Wesentlichen frei von Nicht-Fibroblastenzellen ist.
  3. Verwendung gemäß Anspruch 1 oder Anspruch 2, bei der der kosmetische oder ästhetische Defekt eine Falte, langgezogene Kerbe, eine abgesenkte Narbe, eine kutane Vertiefung nicht-traumatischen Ursprungs oder eine Unterentwicklung der Lippe ist.
  4. Verwendung gemäß einem vorangegangenen Anspruch, bei der das Mittel eine Suspension zur Injektion in angrenzendes unterliegendes Gewebe des kosmetischen oder ästhetischen Defekts in einem Subjekt umfasst.
  5. Verwendung gemäß Anspruch 4, bei der die Suspension zusätzlich menschliches Fibrin in einer Menge umfasst, die wirksam ist, ein injizierbares Gel auszubilden.
  6. Verwendung gemäß Anspruch 5, bei der das injizierbare Gel Thrombin-aktiviertes homologes Plasma umfasst.
  7. Verwendung gemäß einem vorangegangenen Anspruch, bei der Kulturmedium-Serum-abgeleitete Proteine aus den Fibroblasten durch Inkubation in Serumfreiem Medium entfernt werden.
  8. Verwendung gemäß Anspruch 7, bei der die Fibroblasten für mindestens 6 Stunden in Serum-freiem Medium inkubiert werden.
  9. Verwendung gemäß einem vorangegangenen Anspruch, bei der die Fibroblasten durch die Schritte des (a) Passagierens dermaler Fibroblasten, die vormals durch eine dermale Biopsie aus dem Subjekt erhalten wurden, in einem Kulturmedium, das zwischen 0,5 % und 20% nicht-menschliches Serum umfasst, um dermale Fibroblasten zur Verfügung zu stellen, die im Wesentlichen frei von Adipocyten, Keratinocyten und extrazellulärer Matrix sind; (b) Inkubierens der passagierten dermalen Fibroblasten in einem Serum-freien Medium für mindestens 6 Stunden bei zwischen ungefähr 30°C und ungefähr 40°C; und (c) Aussetzens der inkubierten Fibroblasten zu einem proteolytischen Enzym, um die Fibroblasten zu suspendieren. erhalten werden
  10. Verwendung von dermalen Fibroblasten in der Herstellung eines Mittels zur Verwendung in einem chirurgischen Verfahren für die langfristige kosmetische Verstärkung von subkutanem oder dermalem Gewebe in einem menschlichen Subjekt, bei der das Verfahren: (a) das Zurverfügungstellen eines Mittels, das eine Suspension von autologen, passagierten, dermalen Fibroblasten umfasst, die im Wesentlichen frei von Kulturmedium-Serum-abgeleiteten Proteinen sind; (b) das Identifizieren eines kosmetischen Defekts, der anfällig für die Verbesserung durch Verstärkung des angrenzenden unterliegenden subkutanen oder dermalen Gewebes ist; und (c) das Injizieren eines wirksamen Volumens des Mittels in das angrenzende unterliegende Gewebe, wodurch das Gewebe verstärkt wird; umfasst
  11. Verwendung gemäß Anspruch 1, in welcher das Mittel ein Fibroblasten-gekeimtes Gerinnsel umfasst, das aus dem Subjekt abgeleitete dermale Fibroblasten aufweist, und das Gerinnsel ist für die Anwendung auf eine Stelle der Folge von Akne Vulgaris des Subjekts, die bis zu einer Ebene der mittleren oder tiefen Dermis abgetragen wurde, so dass die eingesetzten Fibroblasten zur Dermis benachbart sind.
DE69630129T 1995-07-28 1996-07-03 Gebrauch von autologen, dermalen fibroblasten zur reperatur von haut- oder weichgewebeschäden Expired - Lifetime DE69630129T2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US508773 1983-06-29
US08/508,773 US5591444A (en) 1995-07-28 1995-07-28 Use of autologous dermal fibroblasts for the repair of skin and soft tissue defects
PCT/US1996/011272 WO1997004720A1 (en) 1995-07-28 1996-07-03 The use of autologous dermal fibroblasts for the repair of skin and soft tissue defects

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69630129D1 DE69630129D1 (de) 2003-10-30
DE69630129T2 true DE69630129T2 (de) 2004-04-08

Family

ID=24024016

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69630129T Expired - Lifetime DE69630129T2 (de) 1995-07-28 1996-07-03 Gebrauch von autologen, dermalen fibroblasten zur reperatur von haut- oder weichgewebeschäden

Country Status (18)

Country Link
US (4) US5591444A (de)
EP (2) EP0845963B1 (de)
JP (2) JP3559566B2 (de)
KR (1) KR100417896B1 (de)
CN (1) CN100349556C (de)
AT (1) ATE250399T1 (de)
AU (1) AU698440B2 (de)
BR (1) BR9610028A (de)
CA (1) CA2228138C (de)
DE (1) DE69630129T2 (de)
DK (1) DK0845963T3 (de)
ES (1) ES2207679T3 (de)
IL (1) IL123077A (de)
MX (1) MX9800788A (de)
NO (1) NO317738B1 (de)
NZ (1) NZ312548A (de)
PT (1) PT845963E (de)
WO (1) WO1997004720A1 (de)

Families Citing this family (115)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU740113B2 (en) * 1997-02-20 2001-11-01 Gerigene Medical Corporation Augmentation and repair of dermal, subcutaneous, and vocal cord tissue defects
AU6662698A (en) 1997-02-20 1998-09-09 Gregory S. Keller Augmentation and repair of dermal, subcutaneous, and vocal cord tissue defects
US7767452B2 (en) * 1997-02-20 2010-08-03 Kleinsek Don A Tissue treatments with adipocyte cells
US6398753B2 (en) 1998-04-03 2002-06-04 Mcdaniel David H. Ultrasound enhancement of percutaneous drug absorption
US6030374A (en) * 1998-05-29 2000-02-29 Mcdaniel; David H. Ultrasound enhancement of percutaneous drug absorption
US6866842B1 (en) * 1998-05-01 2005-03-15 University Of Pittsburgh Muscle-derived cells (MDCs) for treating muscle-or bone-related injury or dysfunction
US7115417B1 (en) 1998-05-01 2006-10-03 Chancellor Michael B Soft tissue and bone augmentation and bulking utilizing muscle-derived progenito compositions, and treatments thereof
AU4093399A (en) * 1998-05-22 1999-12-13 Isolagen Technologies, Inc. Compositions for regenerating tissue that has degenerated, and methods for using such compositions
US6432710B1 (en) * 1998-05-22 2002-08-13 Isolagen Technologies, Inc. Compositions for regenerating tissue that has deteriorated, and methods for using such compositions
US7004933B2 (en) 1998-05-29 2006-02-28 Light Bioscience L.L.C. Ultrasound enhancement of percutaneous drug absorption
US6274090B1 (en) * 1998-08-05 2001-08-14 Thermogenesis Corp. Apparatus and method of preparation of stable, long term thrombin from plasma and thrombin formed thereby
US6663659B2 (en) 2000-01-13 2003-12-16 Mcdaniel David H. Method and apparatus for the photomodulation of living cells
US6676655B2 (en) 1998-11-30 2004-01-13 Light Bioscience L.L.C. Low intensity light therapy for the manipulation of fibroblast, and fibroblast-derived mammalian cells and collagen
US6887260B1 (en) * 1998-11-30 2005-05-03 Light Bioscience, Llc Method and apparatus for acne treatment
US6936044B2 (en) * 1998-11-30 2005-08-30 Light Bioscience, Llc Method and apparatus for the stimulation of hair growth
US9192780B2 (en) * 1998-11-30 2015-11-24 L'oreal Low intensity light therapy for treatment of retinal, macular, and visual pathway disorders
US20060212025A1 (en) * 1998-11-30 2006-09-21 Light Bioscience, Llc Method and apparatus for acne treatment
US6283956B1 (en) 1998-11-30 2001-09-04 David H. McDaniels Reduction, elimination, or stimulation of hair growth
US7799325B2 (en) * 1999-11-05 2010-09-21 Kleinsek Donald A Removal of hypertrophic scars
US20090074729A2 (en) * 1999-11-05 2009-03-19 Donald Kleinsek Augmentation and repair of spincter defects with cells including fibroblasts
US20080286242A2 (en) * 1999-11-05 2008-11-20 Donald Kleinsek Augmentation and repair of spincter defects with cells including mesenchymal cells
US20080267923A2 (en) * 1999-11-05 2008-10-30 Donald Kleinsek Hair undifferentiated cells
AU1472501A (en) * 1999-11-05 2001-05-14 Gerigene Medical Corporation Augmentation and repair of age-related soft tissue defects
ES2288946T3 (es) 2000-04-14 2008-02-01 University Of Pittsburgh Aumento y abultamiento de tejido blando y hueso utilizando celulas progenitoras derivadas de musculo, sus composiciones y tratamientos.
JP4017977B2 (ja) 2000-08-08 2007-12-05 アデランス リサーチ インスティテュート インコーポレイテッド 組織工学で処置した毛髪用の台
US20090130066A1 (en) * 2000-11-06 2009-05-21 Gerigene Medical Corporation Augmentation and repair of sphincter defects with cells including muscle cells
JP4680483B2 (ja) * 2001-02-23 2011-05-11 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 組織および臓器の治療および修復に用いるための幹細胞マトリックスの迅速な調製方法
GB0105899D0 (en) * 2001-03-09 2001-04-25 Intercytex Ltd Fibrosis reduction treatment
US7468242B2 (en) 2001-11-05 2008-12-23 Medgenics, Inc. Dermal micro organs, methods and apparatuses for producing and using the same
US8501396B2 (en) 2001-11-05 2013-08-06 Medgenics Medical Israel Ltd. Dermal micro-organs, methods and apparatuses for producing and using the same
US8088568B2 (en) 2001-11-05 2012-01-03 Medgentics, Inc. Dermal micro-organs, methods and apparatuses for producing and using the same
WO2003094937A1 (en) * 2002-05-09 2003-11-20 Medigenes A pharmaceutical composition for treatment of wounds containing blood plasma or serum
US20040101959A1 (en) * 2002-11-21 2004-05-27 Olga Marko Treatment of tissue with undifferentiated mesenchymal cells
CN1784184A (zh) * 2003-04-10 2006-06-07 光生物科学有限责任公司 调节细胞增殖以及基因表达的光调节方法以及装置
WO2004096245A2 (en) * 2003-04-25 2004-11-11 The University Of Pittsburgh Muscle derived cells (mdcs) for promoting and enhancing nerve repair and regeneration
JP5128813B2 (ja) 2003-05-01 2013-01-23 メドジニックス・インコーポレイテッド 真皮小器官及びそれを作成及び使用するための方法及び器具
US7186557B2 (en) * 2003-06-13 2007-03-06 Isolagen Technologies, Inc. Methods of producing neurons
CN1297324C (zh) * 2003-07-25 2007-01-31 吕伟光 组织工程自体复合皮肤及其制备方法
ES2572976T3 (es) * 2003-07-31 2016-06-03 Gentlewaves Llc Sistema y método para el tratamiento fotodinámico de la piel
KR20060036933A (ko) * 2003-10-07 2006-05-02 바이오마스터 인코포레이티드 지방-유래 전구세포의 세포 분화
US20070219487A1 (en) * 2003-11-10 2007-09-20 The Cleveland Clinic Foundation Method to Control Ventricular Rate in Atrial Fibrillation Patients
WO2005065419A2 (en) * 2003-12-29 2005-07-21 Am Biosolutions Method of culturing cells
US7914523B2 (en) * 2004-02-06 2011-03-29 Clinique Dr Daniel Barolet Inc. Method for the treatment of mammalian tissues
US9526746B2 (en) * 2004-02-13 2016-12-27 Smith & Nephew, Inc. Wound healing composition
US7597885B2 (en) 2004-03-26 2009-10-06 Aderans Research Institute, Inc. Tissue engineered biomimetic hair follicle graft
KR100680134B1 (ko) * 2004-06-10 2007-02-08 박우삼 무세포 진피를 주사가능하도록 입자 형태로 가공한 필러
KR100614903B1 (ko) * 2004-08-06 2006-08-25 테고사이언스 (주) 케라티노사이트 및/또는 섬유아세포를 함유하는 화장용조성물
BRPI0514387B8 (pt) * 2004-08-16 2021-05-25 Cellresearch Corp Pte Ltd método para isolar células-tronco epiteliais ou mesenquimais/progenitoras da membrana amniótica do cordão umbilical, método in vitro para cultivar células-tronco mesenquimais/progenitoras, composição farmacêutica e uso de uma célula-tronco epitelial ou mesenquimal/progenitora
FR2874503B1 (fr) * 2004-09-01 2006-11-24 Soc Ind Limousine Dapplication Biologique Silab Procede d'obtention d'un principe actif raffermissant et a visee anti-vergetures, actif obtenu et les fonctionnalites
GB0505202D0 (en) * 2005-03-14 2005-04-20 Intercytex Ltd Skin equivalent culture
RU2277423C1 (ru) * 2005-04-07 2006-06-10 Андрей Валентинович Васильев Способ коррекции структурно-функциональных изменений соединительной ткани
WO2006125991A1 (en) * 2005-05-26 2006-11-30 Intercytex Limited Tissue repair using allogenic dermal fibroblasts
WO2006130433A2 (en) 2005-05-27 2006-12-07 Viacell, Inc. Treatment of ischemia using stem cells
JP4982865B2 (ja) * 2005-06-29 2012-07-25 国立大学法人名古屋大学 皮膚組織改善材及びその利用
US20070065415A1 (en) * 2005-09-16 2007-03-22 Kleinsek Donald A Compositions and methods for the augmentation and repair of defects in tissue
WO2007062386A2 (en) 2005-11-22 2007-05-31 Aderans Research Institute, Inc. Hair follicle graft from tissue engineered skin
CN100421731C (zh) * 2006-01-11 2008-10-01 黄靖西 人自体胶原蛋白活细胞注射剂及其制备方法
JP4910002B2 (ja) 2006-02-09 2012-04-04 アデランス リサーチ インスティテュート インコーポレイテッド 被験体へと流体および材料を送達するための装置および方法
RU2308957C1 (ru) * 2006-03-24 2007-10-27 Общество с ограниченной ответственностью "Медицинские технологии" Способ получения препарата для мезотерапии и препарат, полученный этим способом (варианты)
GB2440908A (en) * 2006-05-25 2008-02-20 Intercytex Ltd Tissue Repair and Augmentation
CN100415307C (zh) * 2006-05-30 2008-09-03 中国人民解放军第二军医大学 人成纤维细胞修饰的异体或异种脱细胞真皮替代物
TR200602727A2 (tr) * 2006-05-31 2007-12-24 Tun� T�Ryak� Kemal Cilt defektleri ve yaşlanması tedavisinde kullanılacak bir yöntem ve bir doku maddesi
KR20070122316A (ko) * 2006-06-26 2007-12-31 (주) 에스바이오메딕스 주사용 인체 연조직 충전제 및 이의 제조 방법
KR20070122315A (ko) * 2006-06-26 2007-12-31 (주) 에스바이오메딕스 자가 진피 세포 및 히알루론산을 함유하는 주사용 인체연조직 충전제 조성물
WO2008027984A1 (en) 2006-08-29 2008-03-06 Isolagen Technologies, Inc. Methods for culturing minimally-passaged fibroblasts and uses thereof
US9155749B2 (en) 2006-09-14 2015-10-13 Medgenics Medical Israel Ltd. Long lasting drug formulations
US8454948B2 (en) 2006-09-14 2013-06-04 Medgenics Medical Israel Ltd. Long lasting drug formulations
AU2007325698B2 (en) * 2006-11-28 2014-03-20 University Of Pittsburgh Muscle derived cells for the treatment of cardiac pathologies and methods of making and using the same
WO2008069376A1 (en) * 2006-12-07 2008-06-12 Jun-Ho Shin Culture method of fibroblast using autologous serum mixed with placenta extract and composition for skin regeneration using the same
AU2007334331B2 (en) * 2006-12-18 2014-05-29 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Muscle derived cells for the treatment of gastro-esophageal pathologies and methods of making and using the same
US20100158875A1 (en) 2006-12-18 2010-06-24 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Muscle derived cells for the treatment of gastro-esophageal pathologies and methods of making and using the same
KR20090093792A (ko) * 2006-12-28 2009-09-02 고쿠리츠 다이가쿠 호우징 나고야 다이가쿠 피부 조직 개선재 및 그 제조 방법
US8105834B2 (en) * 2007-01-11 2012-01-31 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Muscle derived cells for the treatment of urinary tract pathologies and methods of making and using same
RU2345781C2 (ru) * 2007-01-22 2009-02-10 Олег Германович Макеев Способ получения культуры клеток кожи
JP4347408B2 (ja) * 2007-04-28 2009-10-21 株式会社エーシーバイオテクノロジーズ 皮膚または歯肉の軟組織の欠損を補修するための組成物,及び自己線維芽細胞の培養方法
US7985537B2 (en) 2007-06-12 2011-07-26 Aderans Research Institute, Inc. Methods for determining the hair follicle inductive properties of a composition
EP3020410A1 (de) 2008-04-18 2016-05-18 Collplant Ltd. Verfahren zur regeneration und verwendung von prokollagen
US9199003B2 (en) * 2008-08-18 2015-12-01 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Bone augmentation utilizing muscle-derived progenitor compositions in biocompatible matrix, and treatments thereof
EP2182055A1 (de) 2008-10-14 2010-05-05 Heinrich-Heine-Universität Düsseldorf Aus der menschlichen Nabelschnur gewonnene unrestringierte somatische Stammzellen (USSC)
US20100233138A1 (en) * 2008-11-07 2010-09-16 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Vocal Cord Augmentation Utilizing Muscle-Derived Progenitor Compositions, and Treatments Thereof
RU2380106C1 (ru) * 2009-01-20 2010-01-27 Владимир Валентинович Давыденко Способ коррекции возрастных изменений кожи
FR2948286B1 (fr) * 2009-07-27 2011-08-26 Jean-Noel Thorel Composition injectable associant un agent de comblement et un milieu de croissance des fibroblastes
WO2011075676A2 (en) 2009-12-18 2011-06-23 Knowlton Edward W A skin treatment and drug delivery device
US8529883B2 (en) 2010-05-07 2013-09-10 Fibrocell Technologies, Inc. Dosage unit formulations of autologous dermal fibroblasts
WO2011159758A2 (en) 2010-06-15 2011-12-22 Medgenics Medical Israel Ltd. Long lasting drug formulations
JP6023049B2 (ja) * 2010-06-30 2016-11-09 チェン,ジンシー 皮膚組織細胞の集合体の製造方法及びその用途
US11000310B2 (en) 2010-12-17 2021-05-11 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US11278309B2 (en) 2010-12-17 2022-03-22 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US11103275B2 (en) 2010-12-17 2021-08-31 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US10736653B2 (en) 2013-12-06 2020-08-11 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US10695546B2 (en) 2010-12-17 2020-06-30 Srgi Holdings, Llc Systems, devices and methods for fractional resection, fractional skin grafting, fractional scar reduction and fractional tattoo removal
US10856900B2 (en) 2010-12-17 2020-12-08 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US11109887B2 (en) 2013-12-06 2021-09-07 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US10905865B2 (en) 2010-12-17 2021-02-02 Srgi Holdings, Llc Systems, devices and methods for fractional resection, fractional skin grafting, fractional scar reduction and fractional tattoo removal
US10702684B2 (en) 2010-12-17 2020-07-07 Srgi Holdings, Llc Systems, devices and methods for fractional resection, fractional skin grafting, fractional scar reduction and fractional tattoo removal
CN103083727A (zh) * 2011-11-07 2013-05-08 北京清美联创干细胞科技有限公司 一种利用自身真皮成纤维细胞和脐带间充质干细胞修补皮肤和软组织缺损的方法
CN102488930A (zh) * 2011-12-15 2012-06-13 无锡市第三人民医院 一种自异体表皮细胞混合悬液的制备方法
EP2836591B1 (de) 2012-04-09 2018-06-06 The United States of America, as represented by The Secretary, Department of Health and Human Services Verfahren zur erzeugung pluripotenter und multipotenter zellen
ES2827049T3 (es) 2013-10-02 2021-05-19 Srgi Holdings Llc Dispositivos médicos de conjunto de píxeles
BR112016007476A2 (pt) 2013-10-02 2017-09-12 Srgi Holdings Llc métodos e dispositivos médicos de conjunto de pixel
US11229452B2 (en) 2013-12-06 2022-01-25 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US11937846B2 (en) 2013-12-06 2024-03-26 Srgi Holdings Llc Pixel array medical systems, devices and methods
CA2946514C (en) 2014-04-22 2023-08-29 Q-State Biosciences, Inc. Optogenetic analysis of compounds
WO2016127091A1 (en) 2015-02-05 2016-08-11 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US10048275B2 (en) 2015-03-13 2018-08-14 Q-State Biosciences, Inc. Cardiotoxicity screening methods
RU2578804C1 (ru) * 2015-04-27 2016-03-27 Екатерина Евгеньевна Фаустова Способ омоложения организма пациента
EP3298448B1 (de) 2015-05-21 2024-09-04 President and Fellows of Harvard College Optogenetisches mikroskop
US11751903B2 (en) 2015-08-31 2023-09-12 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
US11980389B2 (en) 2015-08-31 2024-05-14 Srgi Holdings Llc Handed spiral slotted scalpet array
US11490952B2 (en) 2015-08-31 2022-11-08 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical devices and methods
US11564706B2 (en) 2019-10-28 2023-01-31 Srgi Holdings, Llc Pixel array medical systems, devices and methods
AU2019263122B2 (en) 2018-05-03 2022-09-29 Collplant Ltd. Dermal fillers and applications thereof
GB202104130D0 (en) * 2021-03-24 2021-05-05 King S College London Method
EP4395796A4 (de) 2021-09-01 2024-12-25 Shanghai Qisheng Biological Preparation Co., Ltd. Knorpelregeneration mit injizierbaren, in situ polymerisierbaren collagenzusammensetzungen mit chondrozyten oder stammzellen
EP4457266A4 (de) 2021-12-28 2025-10-22 Shanghai Qisheng Biological Preparation Co Ltd Hyaluronsäure-kollagen-copolymer-zusammensetzungen und medizinische anwendungen davon

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3949073A (en) * 1974-11-18 1976-04-06 The Board Of Trustees Of Leland Stanford Junior University Process for augmenting connective mammalian tissue with in situ polymerizable native collagen solution
US4488911A (en) * 1975-10-22 1984-12-18 Luck Edward E Non-antigenic collagen and articles of manufacture
US4424208A (en) * 1982-01-11 1984-01-03 Collagen Corporation Collagen implant material and method for augmenting soft tissue
US4582640A (en) * 1982-03-08 1986-04-15 Collagen Corporation Injectable cross-linked collagen implant material
US4609551A (en) * 1984-03-20 1986-09-02 Arnold Caplan Process of and material for stimulating growth of cartilage and bony tissue at anatomical sites
US4642117A (en) * 1985-03-22 1987-02-10 Collagen Corporation Mechanically sheared collagen implant material and method
GB8708009D0 (en) * 1987-04-03 1987-05-07 Clayton Found Res Injectable soft tissue augmentation materials
US4969912A (en) * 1988-02-18 1990-11-13 Kelman Charles D Human collagen processing and autoimplant use
GB2220593B (en) * 1988-06-09 1992-04-22 Cyclofil Hydro-cyclone
DE3829183A1 (de) * 1988-08-29 1990-03-08 Wella Ag Feeder-layer aus menschlichen bindegewebszellen, verfahren zu seiner herstellung sowie verfahren zur vermehrung menschlicher epithelzellen und deren verwendung zur restitution der haut
DE3837669C2 (de) * 1988-11-05 2001-12-13 Nikolaus W Klehr Verfahren zur Herstellung von Material für die Zelltherapie
EP0498992A3 (en) * 1991-02-15 1992-09-09 Nippon Oil Co., Ltd. Serum-free culture medium containing lysozyme
JP2774695B2 (ja) * 1991-03-29 1998-07-09 コラーゲン コーポレイション 顔のしわを処置する装置および方法
JPH06169761A (ja) * 1992-12-04 1994-06-21 Noevir Co Ltd 動物由来線維芽細胞の無血清培養用培地及び培養方法
AU740113B2 (en) * 1997-02-20 2001-11-01 Gerigene Medical Corporation Augmentation and repair of dermal, subcutaneous, and vocal cord tissue defects

Also Published As

Publication number Publication date
JP3559566B2 (ja) 2004-09-02
US5858390A (en) 1999-01-12
US5591444A (en) 1997-01-07
KR100417896B1 (ko) 2005-04-20
NZ312548A (en) 1999-11-29
MX9800788A (es) 1998-11-30
US5660850A (en) 1997-08-26
NO317738B1 (no) 2004-12-13
ATE250399T1 (de) 2003-10-15
BR9610028A (pt) 1999-12-21
CA2228138A1 (en) 1997-02-13
IL123077A0 (en) 1998-09-24
EP0845963B1 (de) 2003-09-24
EP0845963A1 (de) 1998-06-10
NO980356L (no) 1998-03-19
AU698440B2 (en) 1998-10-29
US5665372A (en) 1997-09-09
EP0845963A4 (de) 2000-11-02
CA2228138C (en) 2007-09-11
JP2004105742A (ja) 2004-04-08
WO1997004720A1 (en) 1997-02-13
EP1358857A1 (de) 2003-11-05
ES2207679T3 (es) 2004-06-01
AU6451696A (en) 1997-02-26
PT845963E (pt) 2004-02-27
IL123077A (en) 2003-07-06
CN100349556C (zh) 2007-11-21
KR19990035989A (ko) 1999-05-25
DK0845963T3 (da) 2004-01-26
JPH11510069A (ja) 1999-09-07
NO980356D0 (no) 1998-01-27
CN1198090A (zh) 1998-11-04
JP3962715B2 (ja) 2007-08-22
DE69630129D1 (de) 2003-10-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69630129T2 (de) Gebrauch von autologen, dermalen fibroblasten zur reperatur von haut- oder weichgewebeschäden
DE60031461T2 (de) Zusammensetzung zur Geweberegeneration
DE69724275T2 (de) Biopolymerschäume zur gewebeerneurung und -rekonstruktion
EP1290145B1 (de) Dreidimensionales hautmodell
DE69634454T2 (de) Zusammensetzungen und Verfahren mit Bezug auf eine auf natürliche Weise sekretierte Matrix
DE2631909C2 (de) Synthetische Haut
DE69734218T2 (de) Gewebetransplantat aus der Magensubmukosa
DE69534083T2 (de) Brustgewebetechnologie
DE69927600T2 (de) Biotechnisch konstruiertes gewebe und verfahren zu dessen produktion und benutzung
DE69626560T2 (de) Laminare Knochengrundlage für das Knorpelwachstum
DE69432865T2 (de) Implantierbare prothese, kit und vorrichtung zu deren herstellung
DE69803065T2 (de) Zellkulturmatrix und biologisch abbaubare dreidimensionale matrix auf hyaluronsäurederivatbasis
DE68918922T2 (de) Biologische Unterlage für Zellkulturen, bestehend aus durch Thrombin koagulierte Plasmaproteine, ihre Verwendung für die Keratinozytenkultur, deren Rückgewinnung und Transport für therapeutische Verwendungszwecke.
EP0012959A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Knochenersatzmaterial mit verbesserter biologischer Stabilität auf der Basis von Kollagen und das erhaltene Knochenersatzmaterial
Kemp et al. Regeneration of lepidotrichia and actinotrichia in the tailfin of the teleostTilapia mossambica
BR112020015616A2 (pt) Composição de biotinta para folha de regeneração de derme, método para fabricar folha de regeneração de derme customizada usando a mesma e folha de regeneração de derme customizada fabricada usando o método de fabricação
DE69820254T2 (de) Dermales hüllgewebe in der wundheilung
CN118436851A (zh) 一种活性医美注射填充材料及其制备方法
EP1053757B1 (de) Gewebekonstrukt für die Transplantationschirurgie
DE10056465A1 (de) Zellkonstrukte erhältlich aus mesenchymalen Stammzellen und davon ableitbaren Zellen und ihre Verwendung
DE10062623B4 (de) Dreidimensionales Hautmodell
DE102006026591A1 (de) Isoliertes naturidentisches Kollagen
DE19917532A1 (de) Trägergebundene kultivierte Stamm-bzw. Vorläuferzellen von Keratinozyten
DE19732194C1 (de) Verfahren zur Gewinnung eines epithelialen Zellverbandes
HK1061347A (en) The use of autologous dermal fibroblasts for the repair of skin and soft tissue defects

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition