DE2724089B2 - Organozinnsulfuiate, Verfahren zu deren Herstellung und Verfahren zur Kontrolle von Insekten und Spinnentieren - Google Patents
Organozinnsulfuiate, Verfahren zu deren Herstellung und Verfahren zur Kontrolle von Insekten und SpinnentierenInfo
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- A01N55/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, containing organic compounds containing elements other than carbon, hydrogen, halogen, oxygen, nitrogen and sulfur
- A01N55/02—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, containing organic compounds containing elements other than carbon, hydrogen, halogen, oxygen, nitrogen and sulfur containing metal atoms
- A01N55/04—Tin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07F—ACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
- C07F7/00—Compounds containing elements of Groups 4 or 14 of the Periodic Table
- C07F7/22—Tin compounds
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Description
in der R ein Alkylphenylrest mit 4 bis 10 Kohlenstoffato-
ist 20 men im Alkylrest, ein Cycloalkylphenylrest mit 4 bis 8
2. Verfahren zur Herstellung der Organozinnver- Kohlenstoffatomen im Cycloaikylrest, ein Halogersphebindungen nach Anspruch 1, dadurch gekennzeich- nylrest oder der Rest
net, daß man
a) eineTrimethylzinnarylverbindung der Formel ♦
(CHjhSN-R \°/ ° \°/ S ~°~Sn(CH^
mit Schwefeldioxid oder
b) Trimethylzinnchlorid mit einem Nalriumarylsulfinat der Formel
Na(XS
oder
c) Trimethylzinnhydriil mit einer Arylsulfinsäurc
der Formel
HOS
wobei in den Formeln R die im Anspruch 1 angegebene Bedeutung besitzt, in an sich bekannter
Weise umsetzt.
3. Verfahren zur Kontrolle von Insekten oder Spinnentieren, unter Verwendung einer Organozinnverbindung der Formel:
(CH,),-Sn-O-S —R
(I)
in der R die im Anspruch 1 angegebene Bedeutung hat.
R.
R2-Sn-Q
in der Ri, R2 und R3, die gleich oder verschieden sein
können, Alkylgruppen mit 1 bis 12 Kohlenstoffatomen,
Es wurde durch Vergleichsversuche festgestellt, daß die insektizide Aktivität der crfindungsgcmäßen Organozinnsulfinate im Vergleich mit dem als bekannt gut
wirkenden Malathion (O,O-Dimethyl-S-(I,2-dicarbäthoxyäthyl)-dithiophosphat erheblich verbessert ist.
Die Trimethylzinnsulfinate sind als Insektizide verwandten Sulfinaten überlegen, bei denen andere
organische Substituenten an das Sn gebunden sind, da ihre wirksamen Applikationsraten geringer sind und so
weniger die Gefahr besteht, daß Kulturpflanzen, bei denen sie angewandt werden, geschädigt werden
könnten.
Bevorzugte Organozinnsulfinate gemäß der Erfindung sind Trimethylzinn-p-brom-benzolsulfinat, Trimethylzinn-p-chlorbenzolsulfinat, Trimethylzinn-p-t-butylbenzolsulfinat, Trimcthylzinn-p-t-pentyl-benzolsulfinat,
Trimethylzinn-p-cyclopentyl-benzolsulfinat, Trimethylzinn-p-cyclohexylbenzolsulfinat, Trimethylzinn-p-cyclooctylbenzolsulfinat, Trimethylzinn-p,p'-oxy-bis-[benzolsulfinat] und Trimethylzinn-2^-dichlor-benzolsulfinat.
Die erfindungsgemäßen Organozinnsulfinate können in an sich bekannter Weise hergestellt werden,· indem
man
a) eine Trimethylzinnarylverbindung der Formel
(CHj)3Sn-R
mit Schwefeldioxid
(C. W. F ο η g und W. K i l c h i π g, J. Organometal.
Chem. 22,95 [1970]) oder
b) Trimethylzinnchlorid mit Natriumarylsulfinat der Formel
(G. A. Razuvaev, Y. I. Dergunov und N. S. Vyazankin.Zh. Obshch. Khim., 32, 2515 [1962],
C. A. 58, 9111g sowie P. M. Slagan, Ph. D.
Thesis, University of North Carolina, 1967) oder
c) Trimethylzinnhydrid mit einer Arylsulfinsäure der
Formel „
T R
HOS
(E. !. Becker und M. Pang, J. Org. Chem. 29, 1948 [1964]),
wobei in den Formeln R die vorstehend angegebene Bedeutung besitzt, umsetzt
Nach Gleichung b) können die folgenden Natriumarylsulfinate eingesetzt werden:
Diese Verbindungen können nach dem Verfahren von Kulka, J. Amer. Chem. Soc. 72 (1950) 1215 aus den
entsprechenden Sulfonylchloriden erhalten werden.
Die folgenden Beispiele erläutern die Herstellung der erfindungsgemäßen Organozinnsulfinate nach dem
Verfahren gemäß Gleichung b):
Eine Lösung von 8,0 g (40 mMol) Trimcthylzinnchlorid in 50 ml Aceton in einem 250 ml Erlenmeyerkolben
wurde bei Zimmertemperatur tropfenweise mit einer Lösung von 9,75 g (40 mMol) Natrium-p-brom-benzolsulfinat in 100 ml Wasser versetzt Die Reaktionsmischung wurde über Nacht bei Zimmertemperatur
gerührt und danach filtriert Der erhaltene Feststoff (5,0 g) hatte einen Schmelzpunkt von 254—257" C (mit
Zersetzung) und wurde als Mischung von Djmethylzinnbis-fjj-brom-benzolsulfinat] mit dem gewünschten Produkt identifiziert Vom wäßrigen Filtrat wurde Aceton
ι ο abgedampft unter Erzielung von 43 g festem Trimethylzinn-p-brom-benzolsulfinat; Fp: 146°C (mit Zersetzung). Beim NMR-Spektrum zeigte sich folgendes: Die
aromatischen Protonen traten als zwei Multiplem in Erscheinung, jeweils zentriert bei 754 bzw. 734 Hz (je 2
Protonen); die Trimethylzinn-Protonen erschienen als Singulett bei 56 Hz, beidseits flankiert von Begleitbanden (9 Protonen).
Berechnet: C 28,16; H 3,41; S 835; Sn 30,92%;
gefunden: C 28,10; H 3,56; S 8,55; Sn30,19<>/o.
Nach der Verfahrensweise von Beispiel 1 wurden weitere Organozinnverbindungen hergestellt, die zusammen mit dem frodukt von Beispiel 1 in der
nachfolgenden Tabelle I aufgeführt sind. In vielen Fällen brauchten die Verbindungen nicht weiter gereinigt zu
werden; in anderen Fällen wurden sie aus einem geeigneten Lösungsmittel umkristallisiert
Nr. R
O V-Br
-Cl
Cl
|
i-i
fs |
7 -< | U |
| :'; 4 —< | (°) | |
| ■ 5 --< | 8 — < | |
| ■-: 6 -< | (jÖ^-QCHjh | |
| I | CHj | |
| ^ O y CCH2CHj | ||
| I CH, |
||
Rcaklionslüsungsmittcl
Reinigungsmelhodc
FpCQ
| Diäthylüther | Umkristallisieren | 126 | ,3 I; |
| H2O/Accton |
Waschen mit
Aceton & H2 O |
78 | 80 |
| H2O/Accton | keine | 98 | 102 |
| Äthanol/Wasser | keine |
173
mit |
— 175
Zers. |
CH3OH-H2O
HjO/Aceton/EtOH Umkrist. aus
MeOH
169-73
Fortsetzung
Reaktionslösungsmittel
Reinigungsmelhode
Fp(0C)
O
s
s
O
O >-O—( O V-S-O-Sn(CH3)J
O >-O—( O V-S-O-Sn(CH3)J
H2 0/MeOH/
Aceton
Aceton
H2O/Aceton
Dioxan/H,O/
Aceton
Aceton
Umkrist. aus
CH3OH
CH3OH
Umkrist. aus
Äthylacetat
Äthylacetat
Umkrist. aus
DMSO-H2O
DMSO-H2O
270{Zers.)
148-50
148-50
>335
Die Verbindung Nr. 3 (Tabelle I) wurde nach dem Verfahren gemäß Gleichung c) hergestellt
Beispiel 3
(Verbindung Nr. 3)
(Verbindung Nr. 3)
Ein 100-ml-Dreihalskolben mit aufgesetztem Rückflußkühler
und Tropftrichter wurde gründlich mit Stickstoff durchgespült und mit 4,5 ml (29,4 rnMol) einer
Lösung von Trimethylzinnhydrid in Xylol (78vol.-%ig)
beschickt Diese Lösung wurde bei Zimmertemperatur unter Rühren tropfenweise mit 70 ml einer Lösung von
6,0 g (28,5 mMo!) 2,5-DichIorbenzolsulfinsäure in
Diäthyläther versetzt Die sofort einsetzende Wasserstoffentwicklung hielt während der gesamten Zugabe,
die eine Stunde dauerte, an. Der Kolben wurde in Eiswasser gekühlt und 938 g Feststoff auf einem Filter
gesammelt Der Feststoff wurde aus Cyclohexan/Ligroin umkristallisiert Ausbeute: 9,28 g Trimethylzinn-2,5-dichlor-benzolsuIfinat;
Fp: 1263-128,8°C. Im IR-Spektrum (KBr) wurden starke Absorptionsbanden bei
950 und 980 cm -' beobachtet die für die
C)
S—O-Gruppe
im Organozinnsulfinat charakteristisch sind. Das NMR-Spektmm
zeigte folgende Charakteristik: Die aromatischen Protonen in ortho-Stellung zur Sulfinatogruppe
treten als Multiplen zentriert bei 765 Hz in Erscheinung (1 Proton); die restlichen aromatischen Protonen geben
AnIaB zu einem bn> 727 Hz zentrierten Multiple» (2
Protonen); die Protonen der Trimethylzinngruppe zeigen sich als Singuktt bei 62 Hz, beidseits flankiert
von 2 Begleitbanden (9 Protonen).
Analyse IUrCoHi2Cl2O2SSn:
Berechnet: C 28,91; H 3,23; Sn 31.75%;
gefunden: C 28,49; H 3,04; Sn 32,03%.
gefunden: C 28,49; H 3,04; Sn 32,03%.
Das Trimethylzinnhydrid wurde nach bekannten Verfahren hergestellt, wie sie in folgenden Arbeiten
beschrieben werden:
K. Hayashi, ). lyoda und I. Shiihara, ).
Organometal.Chem., 10,81 (1967).
H. G. K u i ν i I a, Advan. Organometal. Chem., 1.47
(1964).
W. P. Neumann, Angew. Chem., Internat Ausg.,
2.165(1963).
Die Applikation der erfindungsgemäß als Insektizide und Acarizide angewandten Verbindungen kann in
unterschiedlichen Weisen erlösen. Für praktische Anwendungen können die Verbindungen allein oder
gelöst oder suspendiert in geeigneten Trägermedien wie Wasser, Alkoholen, Ketonen, Phenolen, Toluol oder
Xylolen benutzt werden. Wahlweise kann bzw. können ein oder mehrere oberflächenaktive Mittel und/oder
inerte Verdünnungsmittel zu den Zubereitungen zugesetzt werden, um die Handhabung zu erleichtern. Die
Zubereitungen in Form von Pudern, Granulaten,
ίο benetzbaren Pulvern, Pasten, emulgierbaren Konzentraten
oder wasserlöslichen Feststoffen vorliegen.
Erfindungsgemäße Verbindungen sind besonders wertvoü für die Anwendung bei besprühbaren Nutzpflanzen
wie Sojabohnen, Getreide bzw. Mais, Kartof-
j5 fein. Kohl, Tabak, Alfdfa, Erdnüssen und Äpfeln, die
durch die geringen Konzentrationen dieser Verbindungen, die für die Kontrolle von Insektenschädlingen
benötigt werden, nicht nachteilig beeinflußt werden. Sie sind auch für Applikationen nach der Ernte geeignet,
z. B. für Herbstapplikationen bei Baumwolle zur Vernichtung von Baumwollpollen-Rüsselkäfern, bevor
sie in Winterschlaf verfallen und für Applikationen auf Lockpflanzen, die absichtlich gepflanzt werden, unr
Insektenschädlinge anzuziehen, so daß sie in einem konzentrierten Bereich vernichtet und die Pflanzen
dann untergepflügt werden können.
Die Organozinnverbindungen gemäß der Erfindung wurden als Insektizide und Acarizide gemäß der
folgenden Verfahrensweisen geprüft:
A) Moskito-Larventest
Zubereitungen wurden durch Verdünnen von 30 mg Organozinnverbindung gemäß der Erfindung in 10 ml
Aceton hergestellt. Diese Lösung wurc'« dann auf 10 ppm und 1 ppm mit Wasser verdünnt. Zwei aliquote 25
ml Teile wurden in Prüfgläser gebracht, denen 10 bis 25
Gelbfieber-Moskitos, Aedes aegypti (Linnaeus) (4.
lnstar-Larvenj zugesetzt wurden. Die Prüfröhrchen wurden 72 Stunden im Dunklen aufbewahrt. Am Ende
dieser Zeitdauer wurde die prozentuale Kontrolle ermittelt.
B) Blattlaus-Kontakttest
Testzubereitungen tür Sprühbehandlungen mit 100 ppm Konzentration wurden durch Auflösung in einer
geringen Acetonmenge und Zugabe eines geeigneten
Netzmittel hergestellt. 0,6 g Organozinnverbindung
wurden in 10 ml Aceton gelöst oder suspendiert, wozu 2 Tropfen »Triton-XlOO« Netzmittel (Octy !phenoxy-polyäthoxyäthanol
mit 9-10 Mol% Polyäthylenoxid) hinzugegeben wurden; das Gemisch wurde in 300 ml
Wasser zur Erzielung einer 6000 ppm Suspension suspendiert Ein aliquoter Teil wurde dann mit
destilliertem Wasser weiter auf eine Konzentration von 100 ppm Organozinnverbindung verdünnt.
Acht bis zehn Tage alte Gerstenkeimlinge (je 10 Pflanzen in 340 g Topfen) wurden zwei Tage vor der
Behandlung mit Getreideblattläusen Rhopalosiphum maidis ( F i t c h) infiziert. Je zwei Töpfe wurden mit den
einzelnen Zubereitungen mittels eines Sprühzerstäubers besprüht, wobei die Pflanzen auf einem Drehtisch
gedreht wurden. Anschließend an die Behandlung wurden die Pflanzen 5 Tage lang ins Gewächshaus
gestellt. Am Ende dieser Periode wurde die prozentuale Volumen von 100 ml für eine Konzentration von IOC
ppm hergestellt.
Für die Tests wurden aus Samen unter Treibhausbe dingungen bei 23,9" C gezüchtete, vier Wochen alte
) Baumwollpflanzen und 3 Wochen alte Sojabohnenpflanzen verwendet. Bei der Baumwolle wurden zwei
Parallelpflanzen bzw. -proben und bei den Sojabohnen sechs Parallelproben mit der wäßrigen Suspension
behandelt, die mit einem Sprühzerstäuber gleichmäßig
in auf das Blattwerk aufgebracht wurde. Am folgenden
Tage wurden 3. Insiar-Tabakknospenwurmlarven auf
die Parallelproben gebracht und durch Umgeben mit einem Käsetuch eingesperrt. Zehn unbehandelte Sojabohnenpflanzen
und zehn unbehandelte Baumwollpflanzen wurden für Kontrollzwecke verwendet.
Eine Woche nach der Sprühbehandlung wurde die Anzahl der überlebenden Larven ermittelt, der Freßschaden
mit dem bei unbehandelten Kontrollproben
aui ULI
Basis der Verminderung der Populationsdichte im Vergleich zu als Kontrolle dienenden unbehandelten
Topfen ermittelt.
C) Tabakknospenwurm-Nahrungstest
Testzubereitungen wurden mit 1000 ppm und 100 ppm wie beim obigen Blattlaus-Kontakttest (B)
hergestellt. 0,2 ml der verdünnten Zubereitungen wurden auf die Oberfläche von 5 g einer synthetischen
Nahrungsmischung pipettiert, die in partiell gefüllten Zellen eines Kunststoffgallertetrogs enthalten war. Je 5
Zellen vurden mit den einzelnen Substanzverdünnungen
behandelt. Als Nahrungsmischung diente eine modifizierte Vanderzant-Nahrung aus Weizenkeimen,
Sojamehl, Agar-agar, Zucker, Salzen, Vitaminen, Konservierungsmitteln und Wasser. Die Gallerte-Tröge
hatten 50 Aushöhlungen (pro Lage) von je 2,5 χ 4,0 χ 1,5 cm Größe.
Anschließend an die Behandlung wurden 3. oder zeitige 4. Instar-Larven des Tabakknospenwurms
Heliothis virescens (Fabricius) in jede Zelle gebracht. Die Tröge wurden dann mit einer Kunststoffolie
sowie einer steifen Kunststoffplatte bedeckt und in einem Inkubator bei 26,7°C gehalten.
Nach einer Woche wurden die Tröge untersucht und die prozentuale Kontrolle unter Berücksichtigung
irgendeiner natürlichen Mortalität nach der Abbott's Formel ermittelt. Die Tröge wurden eine weitere
Woche aufbewahrt und Anormalitäten in der Entwicklung der überlebenden Schädlinge notiert.
D) Tabakknospenwurm-Test auf
Baumwolle und Sojabohnen
Baumwolle und Sojabohnen
Organozinnsulfinate gemäß der Erfindung wurden zur Kontrolle von Tabakknospen wurm-Larven, eines
Schmetterlings-Schädlings, der sich von einer Anzahl von Gastpflanzen wie Tabakpflanzen, Baumwolle,
Sojabohnen und auch eine Anzahl von Nachtschattengewächsen ernährt, wo er das Blattwerk angreift und
gewöhnlich die frischen Knospen zerstört, auf Pflanzen aufgesprüht
Sprühsuspensionen dieser Sulfinate wurden durch Auflösen von 10 mg Substanz in i nil Aceton, Zugabe
eines Tropfens von einem oberflächenaktiven Mittel »Emulfor EL 719« und Verdünnen mit Wasser auf ein
E) Baumwollpollen-Käfertest
Zubereitungen mit 100 ppm wurden wie oben beim Blattlaus-Kontakttest B hergestellt. Für die Untersuchungen
wurden 12 bis 14 Tage lang in 340 g Topfen gezüchtete Baumwollkeimlinge verwendet. Mit jeder
Zubereitung wurden zwei Töpfe durch Besprühen mit einem Spri'r'-zerstäuber behandelt, wobei die Töpfe auf
einem Drehtisch gedreht wurden. Fünf erwachsene Baumwollpollen-Käfer Anthonomous grandis ( B ο h e man)
wurden nach der Behandlung auf jeden Topf gegeben und durch Abdecken der Töpfe mit einer
umgekehrten 470 g Styropor-Schale mit kleinen in den Boden gestanzten Perforationen »eingesperrt«. Die
überlebenden Rüsselkäfer wurden zur Bestimmung der prozentualen Schädlingskontrolle nach 5 Tagen Aufenthalt
im Gewächshaus gezählt und das Ergebnis im Hinblick auf irgendeine natürliche Mortalität bei den
Kontrollpflanzen nach der Abbott's Formel korrigiert. Die prozentuale Verminderung der Freßschäden wurde
durch visuellen Vergleich zwischen den behandelten Pflanzen mit unbehandelten Kontrollpflanzen ermittelt.
4-, F) Prüfung bei Larven des mexikanischen
Bohnenkäfers auf Pintc-Bohnen
Zwei Wochen alte Pinto-Bohnen wurden mit einer Sprühsuspension in gleicher Weise wie beim obigen
,ο Tabakknospenwurm-Test D behandelt. Zwei Parallelproben
wurden mit 100 ppm Sprühflüssigkeitc . behandelt und jeweils mit 5 Larven belegt, wenn die
abgeschiedene Sprühflüssigkeit getrocknet war. Die Beobachtungen der Larven, Freßschäden und Phytotoxizitäten
erfolgten nach 5 Tagen.
G) Milben-Eintagsrestprüfung
bo Die Testverbindungen wurden wie beim obigen
Blattlaus-Kontakttest B präpariert, jedoch weiter mit Wasser auf 100 ppm verdünnt.
Für den Test wurden Baumwollpflanzen im zweiten Primärblattstadium verwendet, die in 340 g Topfen
b5 unter Treibhausbedingungen bei 21,1 bis 23,9°C
gezüchtet worden waren.
Eine Pflanze (2 Primärblätter) in einem Topf wurde für jede Paralielprobe herangezogen; zwei Parallelpro-
ben wurden für jede Konzentration an zu prüfender Organozinnverbindung verwendet.
Die Pflanzen wurden zur gründlichen Durchnässung des Blattwerks mit den Dispersionen unter Verwendung
kleiner Sprühzerstäuber besprüht.
Einen Tag nach der Behandlung wurde auf die Oberseite der behandelten Blätter eine kreisförmige
Eferre (tree tanglefoot) aufgebracht, und in die
10
Begrenzung wurden erwachsene Milben Tetranychus urticae (Koch) überführt.
Sechs Tage nach der Infizierung mit Milben wurden die Pflanzen bezüglich der auf den Blättern verbliebenen
lebenden erwachsenen Milben untersucht. Unter Zugrundelegung eines Vergleichs mit der Anzahl
lebender Milben auf den Kontrollpflanzen wurde die prozentuale Schädlingskontrolle bestimmt.
II) Abbotts Formel
Hcriehliute prozentuale Kontrolle
"n it in Leben bei der Kontrollprobe
" π am Leben in den behandelten Proben
"o am Leben in der Kontrollprobe
" π am Leben in den behandelten Proben
"o am Leben in der Kontrollprobe
(x KK)).
Die obige Formel wurde zur Korrektur bezüglich der natürlichen Mortalität bei der Berechnung der prozentualen
Kontrolle benutzt. Die natürliche Mortalität war nachweisbar und Korrekturen bei der Berechnung der
prozentualen Kontrolle von Tabakknospenwürmern (bei Prüfungen sowohl am Futter als auch an Pflanzen),
Baumwollpollen-Rüsselkäfern und mexikanischen Bohnenkäferlarven, bei denen die Anzahl der zu Beginn
VermiiHleruni! des !Teilschadens =
anwesenden Insekten und am Ende der Testperiode bekannt waren, wurden entsprechend vorgenommen.
Die Abbott's Formel wurde auch der Berechnung der prozentualen Verminderung von Freßschäden durch
Tabakknospen würmer, Baumwollpollen-Rüsselkäfer und mexikanische Bohnenkäferlarven wie folgt angepaßt:
"ο F'rcüschadcn an Kontrollpflanzen
- % Frel.ischaden an behandelten Pflanzen! χ KH))
% Frcl.fschaden an Kontrollpflanzen
Die Ergebnisse der vorstehend beschriebenen Prüfungen sind in der nachfolgenden Tabelle Il zusammengefaßt,
in der die Nummern der Verbindungen denen von Tabelle I entsprechen.
Tabelle Il - Organozinnsulfinate als Insektizide und Acarizide
| Verb. | % Kontrolle | I ppm | % Konirolle | % Kontrolle | *) Tabakknospenwurm- | 20 ppm | Tabakknospenwurm | % Fraßver |
| Nr. | Moskito-Larven | üiattiaus | Diät Tesi | Tesi auf Pflanzen | minderung*) | |||
| 100 | _ | Baumwolle 100 ppm | 82 | |||||
| 10 ppm | 92 | 100 ppm | 1000 ppm | 100 ppm | % Kontrolle | |||
| 8 | 80 | 91 | ||||||
| I | 100 | 0 | 90 | 100 | 100 | 80 | 0 | 41 |
| - | 0 | 42 | 95 | |||||
| 2 | 100 | 90 | 100 | 100 | 6 | 100 | ||
| 3 | 100 | 0 | 90 | 100 | 100 | 53 | 100 | 91 |
| 4 | 82 | 21 | - | 100 | 100 | 50 | ||
| 0 | - | 100 | 60 | 90 | ||||
| 5 | 100 | 0 | - | 100 | 100 | 20 | 100 | 90 |
| 100 | 0 | - | 93 | |||||
| 6 | 100 | 100 | 90 | 100 | 100 | - | 100 | 82 |
| 7 | 100 | 85 | 20 | 100 | 80 | - | 100 | 72 |
| 8 | 100 | 0 | 60 | 80 | - | 80 | 100 | 97 |
| 9 | 100 | 40 | 100 | ion | 100 | |||
| 10 | 100 | 0 | 100 | 20 | 0 | |||
| 11 | 100 | 90 | 100 | 100 | 100 | |||
| ■ί | 11 | Tabelle II (Fortsetzung) | Tabakknospenwurm | 1 | 27 24 | 089 | 12 | Bohnenkäfer | Milben |
| i | Verb. | Test auf Pflanze! | ppm | Id Rest | |||||
| si | Nr. | Sojabohnen 100 | % Fraßver | Mexikanischer | % Fraßver | 100 ppm | |||
| 1 | % Kontrolle *) | minderung' | % Kontrolle | ►) Pollenkäfer | Larven | minderung*) | 100 | ||
| 100 | Baumwoll- | % Fraßvermin | % Kontrolle*) | 100 ppm | 64 | ||||
| j | 60 | pollenkäfer | derung bei Ro 11 winifsHfl |
50 | 80 | ||||
| I | 98 | DdUIIlWUI(C | 100 ppm | 75 | |||||
| ί | 100 | 98 | ) 100 ppm | 100 ppm | 47 | 66 | - | ||
| 2 | 100 | 95 | 60 | 40 | 50 | - | |||
| 3 | 100 | 91 | 79 | 66 | |||||
| 4 | 100 | 87 | 90 | 58 | 66 |
25
o |
|||
| 5 | 9i | Il | 70 | 95 | 25 | ||||
| 84 | 98 | - | - | 95 | 50 | ||||
| 6 | 84 | 63 | 70 | 66 | 96 | ||||
| 7 | 100 | 44 | 80 | 58 | 25 | ||||
| 66 | 91 | 44 | 80 | 79 | 66 | 25 | |||
| 8 | 50 | 98 | 40 | 66 | 50 | ||||
| 9 | 84 | 70 | 58 | 50 | 90 | ||||
| 10 | 89 | 53 | 0 | 79 | |||||
| 100 | 90 | 80 | 47 | 66 | |||||
| 11 | Bemerkungen zu Tab. Il | besagt, daß | 33 | 10 | |||||
| Die Anwesenheit von Hyphen | 60 | 80 | 58 | ||||||
| 44 | 66 | ||||||||
| der Test nicht »geglückt« ist. | |||||||||
*) Korrigiert nach der Abbott's Formel.
Wie aus den in Tabelle H angeführten Ergebnissen hervorgeht, zeigen die erfindungsgemäß angewandten
Trimcthylzinnsulfinate eine gute bis hervorragende insektizide und acarizide Wirksamkeit bei einer Vielfalt
von Insekten und Spinnentieren.
Die Phytotoxizität der erfindungsgemäßen Organozinnsulfinate wurde bei einigen der Tests untersucht; die
Ergebnisse sind in Tabelle III wiedergegeben. Die Phytotoxizität bezieht sich auf die Verursachung von
Schaden oder von Wachr<'imsverzögeningen bei den
Gastpflanzen. Eine Phytotoxizitätsrate von 20% oder mehr wird als gewerblich unabnehmbar angesehen.
Organozinnsulfinate - Phylotoxizitätsbestimmungen
| Verb. | % Phytotoxizität | Sojabohne | % Phytotoxizität | 100 ppm |
| Nr. | (nach 1 Woche) | 100 ppm | (nach 5 Tagen) | 50 |
| Baumwolle | 0,5*) | Pinto-Bohne Gerste | 13*) | |
| 100 ppm | 3,5*) | 100 ppm | 40 | |
| I | 13*) | 1,5*) | 20 | 40 |
| 2 | 6*) | 2,5*) | 23 | 40 |
| 3 | 13*) | 4,5*) | 40 | 30 |
| 4 | 20 | 1,0*) | 40 | 30 |
| 5 | 20 | 1,0*) | 60 | 13*) |
| 6 | 4,5*) | 0,5*) | 11*) | 6*) |
| 7 | 20 | 0*) | 1,5*) | 13*) |
| 8 | 1,5*) | 0*) | 20 | 40 |
| 9 | 6*) | 2,5*) | 0*) | |
| 10 | 13*) | 1,5*) | ||
| II | 20 | 13*) |
*) Phytoxische Unbedenklichkeit bei 100 ppm.
Aus den Daten der Tabellen Il und III können
folgende Schlußfolgerungen gezogen werden:
1. Alle elf Verbindungsbeispiele zeigen eine zufriedenstellende Moskito-Larvenkontrolle bzw. -Eindämmung.
Wirksame Anwendungsraten liegen bei 1 ppm für die Verbindungen Nr. 1 und Nr. 9. während wirksame Anwendungsraten für die
anderen neun Verbindungen bei 10 ppm liegen.
2. Tabakknospenwürmer wurden sowohl a.i Baumwolle
als auch an Sojabohnen bei Applikationsraten von 100 ppm kontrolliert bzw. eingedämmt.
Diese Applikationsrate wird von Sojabohnen bei allen elf Verbindungen toleriert Die Verträglichkeit
bei Baumwolle bei 100 ppm bezieht sich auf die Verbindungen N r. 1,2,3,6,8,9 und 10.
3. Eine Baumwollpollen-Rüsselkäferkontrolle wurde bei 100 ppm mit den Verbindungen 2 und 9
nachgewiesen; diese Verbindungen wurden von Baumwolle vertragen. Die Anwendung der anderen
neun Verbindungen zur Kontrolle des Baumwollpollen-Rüsselkäfers wären wegen der Phytotoxizität
auf Sprühbehandlungen nach der Ernte oder Sprühbehandlungen von Fang- oder Lockpflanzen
zu beschränken, wo auf die Pflanzen verzichtet werden kann und höhere Anwendungsraten möglich
sind.
4. Mit der Verbindung Nr. 2 konnte bei 100 ppm eine wirksame Blattlaus-Kontrolle bei annehmbarem
Phytotoxizitätspegel bei Gerste erreicht werden.
5. Die Verbindungen Nr. 1 und Nr. 8 führen bei 100 ppm zu einer wirksamen Milbenkontrolle bei
annehmbarem Phytotoxizitätspegel bei Baumwolle.
Alle erfindungsgemäßen Verbindungen können vorteilhaft in wirksamen Konzentrationen gegen Insekten
und Spinnentiere auf Äpfeln, Getreide bzw. Msis,
Kartoffeln, Tabak, Kohl, Sojabohnen. Alfalfa, Erdnüssen und anderen widerstandsfähigen Kulturpflanzen benutzt
werden.
Versuchsbericht
Die nachstehenden Vergleichsversuche wurden in gleicher Weise wie der Baumwollpollen-Käfertest
durchgeführt Beiden Untersuchungen wurden Zubereitungen
mit 100 ppm verwendet. Als Wirkstoff kamen zahlreiche erfindungsgemäBe Organozinnverbindungen
sowie (O,O-Dimethyl-S-(1,2-dicarbäthoxy-äthyl)-dithiophosphat,
in der nachstehenden Tabelle kurz mit »M« bezeichnet, als Vergleichssubstanz) zur Anwendung. Die
hierbei erzielten Ergebnisse sind in nachfo'gender
Tabelle zusammengestellt.
Baumwollpollcn-Käl'ertest bei 100 ppm Wirkstoff
Test Nr.
| Vcrh.-Nr. | % Kontrolle |
| 5 | 63 |
| M | 0 |
| Il | 44 |
| M | 0 |
| 2 | 87 |
| 3 | Il |
| 6 | 44 |
| M | 11 |
| 1 | 60 |
| M | 0 |
| 7 | 40 |
| 10 | 60 |
| M | 20 |
| 8 | 53 |
| M | 33 |
| 9 | 90 |
| M | 10 |
Aus den Untersuchungsergebnissen ergibt sich, daß die erfindungsgemäßen Organozinnverbindungen
verbesserte insektizide Aktivität im Vergleich mit der als bekannt gut wirkenden Verbindung besitzen.
Claims (1)
- Patentansprüche: 1. Organozinnsulfinate der FormelICHj)3- Sn- Ο—S—Rin der R ein Alkylphenylrest mit 4 bis 10 Kohlenstoffatomen im Alkylrest, ein Cycloalkylphenylrest mit 4 bis 8 Kohlenstoffatomen im Cycloalkylrest, ein Halogenphenylrest oder der RestS-O-Sn(CH,);,Phenylgruppen oder mit einem Chlor- oder Bromatom substituierte Phenylgruppen bedeuten und Q -SO3C6H4 ■ CH3(P) sein kann, ist bekannt, daß sie biozid und insbesondere fungizid und bakterizid wirken. Diese Verbindungen weisen jedoch keine vollständig befriedigende Wirksamkeit bei der Kontrolle von Insekten-, Spinnentier· und Milbenschädlingen auf.Die Aufgabe der Erfindung besteht daher in der Bereitstellung von Organozinnverbindungen mit verbesserter insektizider und acarizider Wirksamkeit, wobei eine Schädigung (Phytotoxizität) der Kulturpflanzen möglichst gering gehalten wird.Gegenstand der Erfindung sind Organozinnsulfinate der FormelO f (CH,).,-Sn-O—S —R
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US05/691,186 US4089972A (en) | 1976-05-28 | 1976-05-28 | Organotin sulfinates as insecticides and acaricides |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2724089A1 DE2724089A1 (de) | 1977-12-08 |
| DE2724089B2 true DE2724089B2 (de) | 1979-05-23 |
| DE2724089C3 DE2724089C3 (de) | 1980-01-10 |
Family
ID=24775495
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE2724089A Expired DE2724089C3 (de) | 1976-05-28 | 1977-05-27 | Organozinnsulfinate, Verfahren zu deren Herstellung und Verfahren zur Kontrolle von Insekten und Spinnentieren |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
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| JP (1) | JPS52148052A (de) |
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| DE (1) | DE2724089C3 (de) |
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| IL (1) | IL52185A0 (de) |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| US3031483A (en) * | 1957-11-18 | 1962-04-24 | Philips Corp | Method of producing organic tin compounds and preparations containing such compoundsfor combating noxious micro-organisms |
| US3976672A (en) * | 1974-12-26 | 1976-08-24 | Uniroyal Inc. | (Hydrocarbylphenylsulfonyl)alkyltrimethylstannanes |
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-
1977
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- 1977-05-27 IL IL52185A patent/IL52185A0/xx unknown
- 1977-05-27 DE DE2724089A patent/DE2724089C3/de not_active Expired
- 1977-05-28 JP JP6269777A patent/JPS52148052A/ja active Pending
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- 1977-05-30 GB GB22747/77A patent/GB1548853A/en not_active Expired
Also Published As
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|---|---|
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| CA1064513A (en) | 1979-10-16 |
| DE2724089C3 (de) | 1980-01-10 |
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