DE19857792A1 - Ultraempfindliches Chlorophyllfluorometer - Google Patents
Ultraempfindliches ChlorophyllfluorometerInfo
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Abstract
Gegenstand der Patentschrift sind Meßsysteme zur Bestimmung der relativen Chlorophyllfluoreszenzausbeute und Photosyntheseaktivität einer pflanzlichen Probe unter Verwendung von Meßlichtpulsen zur periodischen Fluoreszenzanregung und einer zweiten Lichtquelle zum Treiben sowie zur Absättigung der Photosynthese. Es werden Maßnahmen beschrieben, die die Verwendung eines Photomultipliers und damit eine extrem hohe Meßempfindlichkeit ermöglichen. Die abgeleiteten Meßsysteme ermöglichen die Erfassung der Photosyntheseaktivität mikroskopisch kleiner pflanzlicher Proben oder sehr verdünnter Suspensionen. Ähnliche Maßnahmen gelten für CCD-Elemente als Photodetektoren. Daraus abgeleitete Meßsysteme erlauben die Registrierung von Bildern der Fluoreszenzausbeute und der photosynthetischen Aktivität.
Description
Die Erfindung betrifft ein Meßsystem nach dem Oberbegriff der nebengeordneten
Ansprüche 1 bzw. 2.
Ein derartiges Meßsystem ist aus der DE-35 18 527 A1 bekannt. Bei diesem, den
derzeitigen Stand der Meßtechnik charakterisierenden System treten bei der
Belichtung mit Starklicht zum Treiben der Photosynthese in pflanzlichen Proben,
sowie bei der Anwendung von sättigenden Lichtpulsen, die im Zusammenhang mit
der sogenannten "Chlorophyllfluoreszenz-Quenchanalyse" zur kurzfristigen
Unterdrückung der Ausbeute der photosynthetischen Energieumwandlung
appliziert werden, sehr unterschiedliche Signalamplituden auf. Diese Eigenschaft
wirkt sich solange nicht nachteilig aus, wie als Photodetektor eine Photodiode
verwendet wird, bei welcher die Signalamplitude über mehrere Zehnerpotenzen
proportional zur Lichtintensität ist, ohne dass die Rauschamplitude bei hohen
Intensitäten wesentlich zunimmt. Weiterhin kann durch Standardtechniken (wie
z. B. AC-Kopplung) das Pulssignal am Ausgang einer einzelnen Photodiode leicht
von einem potentiell um mehrere Zehnerpotenzen höheren nichtmodulierten
Hintergrundsignal getrennt werden. In der Praxis treten jedoch Probleme auf, wenn
statt einer Photodiode ein Photomultiplier oder eine CCD-Kamera als
Photodetektor eingesetzt wird. Die Anwendung eines Photomultipliers ist
erstrebenswert zur Untersuchung von Proben mit sehr geringem Chlorophyllgehalt
(z. B. Wasserproben aus Seen, Flüssen und Meeren) und zur Untersuchung sehr
kleiner Probenflächen (z. B. bei der Fluoreszenzmikroskopie oder bei Mikrofiber-
Untersuchungen).
Mit einer CCD-Kamera oder einer CCD-Zeilenkamera lassen sich über
Fluoreszenzbildanalyse örtliche Heterogenitäten der Photosyntheseleistung (z. B. in
einem Blatt) erfassen, was vor allem in der Phytopathologie von großer praktischer
Bedeutung ist. Bei Verwendung eines Photomultipliers ergeben sich grundsätzliche
Probleme aus der Tatsache, dass, anders als bei einer Photodiode, die
Rauschamplitude mit der Signalamplitude ansteigt. So wird vor allem die
Bestimmung der maximalen Fluoreszenzausbeute mit Hilfe eines sättigenden
Lichtpulses, deren Wert für die Chlorophyllfluoreszenz-Quenchanalyse von
zentraler Bedeutung ist, durch starkes Rauschen erheblich erschwert. Bei
Verwendung eines CCD-Detektors ergibt sich ein Problem bezüglich der digitalen
Auflösung, wenn das Meßsignal um Zehnerpotenzen variiert. Dieses Problem läßt
sich selbst durch sehr kostspielige A/D-Wandler nicht beheben. Es kann somit
festgestellt werden, dass die den derzeitigen Stand der Technik charakterisierenden
Meßeinrichtungen in zwei sehr wichtigen praktischen Anwendungen grundlegend
limitiert sind.
Der vorliegenden Erfindung hegt daher die Aufgabe zugrunde, Meßsysteme zu
schaffen, welche eine selektive Erfassung der Chlorophyllfluoreszenz-Ausbeute im
pulsmodulierten Meßlicht sowie eine zuverlässige "Chlorophyllfluoreszenz-
Quenchanalyse" mit Hilfe sättigender Lichtpulse auch dann ermöglichen, wenn zur
Erhöhung der Meßempfindlichkeit ein Photomultiplier oder zur
Fluoreszenzbildanalyse ein CCD-Element eingesetzt wird.
Diese Aufgabe wird bei einem Meßsystem nach den Merkmalen im Oberbegriff der
nebengeordneten Ansprüche 1 bzw. 2 gelöst mit deren Merkmalen im
kennzeichnenden Teil.
Bei Verwendung derselben Lichtquelle zur Erzeugung sowohl der Meßlichtpulse,
als auch des photosynthetisch wirksamen Starklichts und der sättigenden
Lichtpulse, bei ausschließlicher Variation der Frequenz der Meßlichtpulse (d. h.
konstanter Intensität der einzelnen Meßlichtpulse) gemäß Anspruch 1 sind die
potentiellen Änderungen der Fluoreszenzintensität relativ klein und ausschließlich
auf die lichtinduzierten Änderungen der Fluoreszenzausbeute der pflanzlichen
Probe zurückzuführen, deren Messung angestrebt wird. Im Extremfall tritt beim
Übergang vom schwachen Meßlicht (Quasi-Dunkelzustand) zum sättigenden Licht
eine Erhöhung der Fluoreszenzausbeute um einen Faktor 5 auf, wobei das
Signal/Rauschverhältnis des Photomultipliers nur geringfügig erniedrigt wird und
bei Verwendung eines CCD-Detektors eine gute digitale Auflösung gewährleistet
ist. Das Prinzip der Meßanordnung nach Anspruch 1 ist in Abb. 1a dargestellt. Als
lichtemittierendes Mittel (1) fungiert vorzugsweise eine lichtemittierende Diode
(LED), welche auf die pflanzliche Probe (2) gerichtet ist, deren
Fluoreszenzemission mit Hilfe des Photodetektors (3) gemessen wird. Dem Stand
der Technik entsprechend dient eine Steuer- und Auswerteelektronik zur
synchronen Ansteuerung des LED-Treibers und des selektiven Vorverstärkers des
Signals des Photodetektors (3).
Alternativ kann das gleiche Ziel gemäß Anspruch 2 auch dadurch erreicht werden,
dass das Starklicht oder die sättigenden Lichtpulse durch eine zweite Puls-
Lichtquelle erzeugt werden, die so angesteuert wird, dass eine Überlappung mit
den Meßlichtpulsen vermieden wird. Das zwischen den Meßlichtpulsen
eingestrahlte Licht kann den Zustand der pflanzlichen Probe und damit die
Fluoreszenzausbeute verändern, ohne zum Zeitpunkt der mit den Meßlichtpulsen
synchronisierten, selektiven Signalverstärkung bzw. Signalerfassung wirksam zu
sein. Die Pulsdauer dieses zusätzlich eingestrahlten Lichts muß um einige µsec
kürzer als das Zeitintervall zwischen zwei aufeinander folgenden Meßlichtpulsen
sein, um die Messung eines Referenzsignals im Aus-Zustand der LED-Lichtquelle
vor jedem Meßlichtpuls zu ermöglichen. Bei Verwendung eines CCD-Detektors
müssen die Ladungsintegrations-Perioden mit den Meßlichtpuls-Perioden
synchronisiert sein. Das Prinzip der Meßanordnung nach Anspruch 2 ist in Abb. 1b
dargestellt. Als lichtemittierendes Mittel (1) für Meßlichtpulse fungiert wie beim
Anspruch 1 vorzugsweise eine lichtemittierende Diode (LED), welche auf die
pflanzliche Probe (2) gerichtet ist, deren Fluoreszenzemission mit Hilfe des
Photodetektors (3) gemessen wird. Zusätzlich ist ein zweites lichtemittierendes
Mittel (4) zur Erzeugung von Starklicht und Sättigungspulsen auf die pflanzliche
Probe gerichtet, wozu wiederum vorzugsweise eine LED dient. Dem Stand der
Technik entsprechend dient eine Steuer- und Auswerteelektronik zur Ansteuerung
der beiden LED-Treiber, wobei der selektive Vorverstärkers des vom
Photodetektor (3) gemessenen Fluoreszenzsignals mit dem LED-Treiber der
Meßlichtpulse synchronisiert ist.
Weitere vorteilhafte Ausgestaltungen sind in den Unteransprüchen 3-19 angeführt.
Gemäß den Ansprüchen 3 bis 6 bieten sich LEDs oder Laserdioden als geeignete
Lichtquellen mit schnellen Ein-Ausschaltflanken und einer breiten Auswahl
verfügbarer Meßlichtwellenlängen sowohl für das Meßlicht als auch für das Stark-
und Sättigungspulslicht an. Die LEDs können entweder einzeln oder als Arrays
eingesetzt werden. Einzelne LEDs geben selbst zur Sättigung der Photosynthese
ausreichende Intensitäten, wenn sie über geeignete Linsensysteme auf die zu
untersuchenden pflanzliche Proben fokussiert sind. LED-Arrays sind dann
erforderlich, wenn größere Probenvolumina oder Probenflächen untersucht
werden. Diese Meßanordnung ist z. B. erforderlich zur Chlorophyllfluoreszenz-
Quenchanalyse bei Proben natürlicher Oberflächengewässer, in denen das
mikroskopisch kleine, photosynthetisch aktive Phytoplankton über relativ große
Wasservolumina verteilt ist, so dass durch eine einzelne LED die zur
Lichtsättigung der photosynthetischen Energieumwandlung notwendige Intensität
nicht aufgebracht werden kann. Aus dem gleichen Grunde ist die Verwendung
eines LED-Arrays erforderlich zur Messung von zweidimensionalen Bildern der
Chlorophyllfluoreszenz-Emission von größerflächigen pflanzlichen Objekten, wie
z. B. Blättern, mit Hilfe einer Kamera mit CCD-Detektor.
Die Verwendung eines Photomultipliers als Photodetektor gemäß Anspruch 7
bringt den Vorteil einer sehr effektiven und rauscharmen Fluoreszenzdetektion und
Signalverstärkung.
Die Verwendung eines CCD-Detektors als Photodetektor gemäß den Ansprüchen
8 und 9 ist vor allem dann vorteilhaft, wenn die zweidimensionale Verteilung der
Fluoreszenzausbeute in der pflanzlichen Probe von Interesse ist. So können Video-
Kameras, in denen CCD-Detektoren integriert sind, zur Registrierung von
Fluoreszenzbildern eingesetzt werden, aus denen sich Bilder der
photosynthetischen Aktivität ableiten lassen.
Bei Verwendung eines Fluoreszenzmikroskops mit Auflicht-Fluoreszenzanregung
gemäß den Ansprüchen 11-15 (Abb. 2a) wird das Licht einer einzelnen LED (1)
durch das Objektiv des Mikroskops mit hoher Effizienz auf das
Untersuchungsobjekt (2) fokussiert, so dass lokal am Objekt eine sehr hohe
Meßlichtintensität vorliegt, was sowohl für die Amplitude des Meßsignals als auch
für die Stärke des Sättigungspulses vorteilhaft ist. Durch die Anordnung des
Photomultipliers (3) am Kamera-Adaptertubus des Fluoreszenzmikroskops gemäß
Anspruch 12 ist eine optimale Erfassung des Fluoreszenzsignals gewährleistet. Bei
Verwendung eines CCD-Detektors am Kamera-Adaptertubus des
Fluoreszenzmikroskops gemäß Anspruch 13 wird das vergrößerte Bild des
fluoreszierenden pflanzlichen Objektes mit zellulärer und subzellulärer räumlicher
Auflösung erfaßt.
Durch die Anordung der zweiten Lichtquelle (4) unterhalb der zu untersuchenden
Probe (2) gemäß Anspruch 14 und Fokussierung des Lichtstrahls mit Hilfe eines
Linsensystems ergibt sich eine hohe lokale Lichtintensität in der Objektebene,
welche bei transparenten Objekten, wie z. B. einzelnen Algenzellen, bei der
Erzeugung von Sättigungspulsen von Vorteil ist. (Abb. 2a)
Dadurch, dass gemäß Anspruch 15 das fokussierte Licht einer zweiten Lichtquelle
(4) über eine Lichtleitfaser auf die Probe gerichtet wird, können im mikroskopisch
kleinen Bildfeld hohe lokale Lichtintensitäten erreicht werden. Dabei kann der
Winkel zwischen dem Ausgangsstrahl der Lichtleitfaser und dem Objektiveingang
so gewählt werden, dass kein direktes Licht durch das Objektiv zum Photodetektor
(3) gelangt. Diese Anordnung ist besonders bei Einstrahlung von fernrotem Licht
vorteilhaft, da dieses ebenso wie die Chlorophyllfluoreszenz ungehindert zum
Photodetektor vordringen kann.
Eine einfache Meßeinrichtung gemäß Anspruch 16 läßt sich dadurch realisieren,
dass das Anregungslicht einer LED in das eine Ende eines Lichtleiters eingekoppelt
wird, an dessen anderem Ende sich die Probe befindet, und dass das
Fluoreszenzlicht am gleichen Ende über ein dichroitisches Filter, welches das
LED-Licht ungehindert passieren läßt, im Winkel von 45° auf den Detektor
umgelenkt wird. (Abb. 2b)
Wird gemäß Anspruch 17 das Licht einer einzelnen LED über ein geeignetes
Linsensystem in den einen Arm einer Y-förmigen, dünnen Lichtleiteranordnung
eingekoppelt und der andere Arm mit einem Photomultiplier verbunden, so lassen
sich die oben beschriebenen Messungen auch an Blättern oder Sedimenten
durchführen (Abb. 3a). Auf diese Weise läßt sich die Verteilung der
Photosyntheseaktivität in Abhängigkeit vom Abstand zur Oberfläche bestimmen,
wenn das freie Ende des Lichtleiters in das Substrat eingeführt wird. Die Fasern
können dazu auf wenige Mikrometer Durchmesser ausgezogen werden.
Zur Untersuchung von Wasserproben können gemäß Anspruch 18 eine oder
mehrere LEDs auch direkt auf eine Küvette ausgerichtet werden (Abb. 3b). Ein
Photomultiplier erlaubt dann die Messung der Fluoreszenzausbeute und der
Photosyntheseaktivität bei extrem niedrigen Chlorophyllgehalten. Nach
Kalibrierung lassen sich so die absoluten Chlorophyllgehalte von Wasserproben
bestimmen. Eine besondere Anwendung sind Toxizitätstest, bei denen die Wirkung
von potentiell toxischen Wasserproben auf Standardsuspensionen mit niedrigem
Chlorophyllgehalt und bekannter Aktivität untersucht wird.
Meßsysteme nach den beschriebenen Ansprüchen können sowohl für den
ortsgebundenen Laborbetrieb, als auch portabel für den Feldeinsatz unter rauhen
Betriebsbedingungen, z. B. unter Wasser, ausgeführt sein. Auch automatisch
arbeitende Meßstationen sind möglich.
Claims (18)
1. Meßsystem zur Bestimmung der relativen Chlorophyllfluoreszenz-Ausbeute
einer zu untersuchenden pflanzlichen Probe unter Verwendung von
Meßlichtpulsen eines lichtemittierenden Mittels zur periodischen
Fluoreszenzanregung mit
- a) einem Photodetektor zur Erfassung des Fluoreszenzsignals,
- b) einem mit dem Takt der Meßlichtpulse synchronisierten, selektiven Fluoreszenzsignal-Verstärker, und
- c) einer Lichtquelle hoher Strahlungsintensität mit Mitteln zu deren Betrieb und Ein- und Ausschalten, wobei durch Synchronisierungs-Einrichtungen sichergestellt ist, daß beim Einschalten die Frequenz der Meßlichtpulse erhöht und beim Ausschalten wieder erniedrigt wird,
- a) die Lichtquelle hoher Strahlungsintensität mit dem lichtemittierenden Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung (1) identisch ist, und
- b) die im zeitlichen Mittel auf die pflanzliche Probe (2) einwirkende Lichtintensität bei gleichbleibender Intensität der einzelnen Meßlichtpulse durch deren Frequenz variiert wird.
2. Meßsystem zur Bestimmung der relativen Chlorophyllfluoreszenz-Ausbeute
einer zu untersuchenden pflanzlichen Probe unter Verwendung von
Meßlichtpulsen eines lichtemittierenden Mittels zur periodischen
Fluoreszenzanregung mit
- a) einem Photodetektor zur Erfassung des Fluoreszenzsignals,
- b) einem mit dem Takt der Meßlichtpulse synchronisierten, selektiven Fluoreszenzsignal-Verstärker, und
- c) einer Lichtquelle hoher Strahlungsintensität mit Mitteln zu deren Betrieb und
- a) als Lichtquelle hoher Strahlungsintensität ein zweites lichtemittierendes Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung (4) verwendet wird, und
- b) das erste lichtemittierende Mittel (1) immer dann ausgeschaltet ist, wenn das zweite lichtemittierende Mittel (4) eingeschaltet ist, und
- c) die Einschaltzeiten des zweiten lichtemittierenden Mittels (4) kürzer sind als die Ausschaltzeiten des ersten lichtemittierenden Mittels (1).
3. Meßsystem nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß als lichtemittierendes Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung eine LED
oder eine Laserdiode verwendet wird.
4. Meßsystem nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß als lichtemittierendes Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung eine
Gruppe von synchron angesteuerten LEDs (LED-Array) verwendet wird, welche
alle auf die Probe (2) ausgerichtet sind.
5. Meßsystem nach Anspruch 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß für beide lichtemittierende Mittel LEDs oder Laserdioden verwendet werden,
welche asynchron angesteuert werden und auf die Probe (2) ausgerichtet sind.
6. Meßsystem nach Anspruch 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß für beide lichtemittierende Mittel Gruppen von LEDs (LED-Arrays)
verwendet werden, welche asynchron angesteuert werden und beide auf die Probe
(2) ausgerichtet sind.
7. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 6,
dadurch gekennzeichnet,
daß als Photodetektor (3) ein Photomultiplier verwendet wird.
8. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 6,
dadurch gekennzeichnet,
daß als Photodetektor (3) ein lineares CCD-Element verwendet wird.
9. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 6,
dadurch gekennzeichnet,
daß als Photodetektor (3) ein abbildendes CCD-Element verwendet wird.
10. Meßsystem nach Anspruch 9,
dadurch gekennzeichnet,
daß das CCD-Element in Verbindung mit einer Videokamera ein
zweidimensionales Bild der Verteilung der Fluoreszenzausbeute der pflanzlichen
Probe (2) liefert.
11. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet,
daß das lichtemittierende Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung (1) als
Anregungslichtquelle in einem Fluoreszenzmikroskop mit Auflicht-
Fluoreszenzanregung dient (Abb. 2a).
12. Meßsystem nach Anspruch 11
dadurch gekennzeichnet,
daß der Photodetektor (3) an dem Kamera-Adaptertubus eines
Fluoreszenzmikroskops mit Auflicht-Fluoreszenzanregung angebracht ist
(Abb. 2a).
13. Meßsystem nach Anspruch 12,
dadurch gekennzeichnet,
daß das CCD-Element in Verbindung mit einer Videokamera an dem Kamera-
Adaptertubus eines Fluoreszenzmikroskops mit Auflicht-Fluoreszenzanregung
angebracht ist und ein zweidimensionales, mikroskopisch vergrößertes Bild der
Verteilung der Fluoreszenzausbeute der pflanzlichen Probe (2) liefert (Abb. 2a).
14. Meßsystem nach einem der Ansprüche 12 oder 13,
dadurch gekennzeichnet,
daß das zweite lichtemittierende Mittel (4) in der verlängerten optischen Achse
des Fluoreszenzmikroskops unterhalb der auf einem Objektträger befindlichen
pflanzlichen Probe (2) angebracht ist und ihr Licht über ein Linsensystem auf die
Probe fokussiert wird (Abb. 2a).
15. Meßsystem nach einem der Ansprüche 12 oder 13
dadurch gekennzeichnet,
daß das Licht des zweiten lichtemittierenden Mittels (4) über ein Linsensystem
auf einen Lichtleiter fokussiert ist, dessen anderes Ende auf die Probe (2) gerichtet
ist.
16. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 9
dadurch gekennzeichnet,
daß das lichtemittierende Mittel (1) und ein Photodetektor (3) über eine
Strahlenteiler-Optik (5) auf dasselbe Ende eines Lichtleiters (6) gerichtet sind,
dessen anderes Ende auf die Probe (2) zeigt (Abb. 2b).
17. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 9
dadurch gekennzeichnet,
daß das lichtemittierende Mittel (1) und ein Photodetektor (3) auf verschiedene
Enden eines mehrarmigen Lichtleitersystems (6) gerichtet sind, dessen freies Ende
auf die Probe (2) zeigt oder in diese eindringt (Abb. 3a).
18. Meßsystem nach einem der Ansprüche 1 bis 9
dadurch gekennzeichnet,
daß das lichtemittierende Mittel zur periodischen Fluoreszenzanregung (1), das
lichtemittierende Mittel (4) und ein Photodetektor (3) direkt auf ein
Probenröhrchen (z. B. Reagenzglas oder Küvette) gerichtet sind, in dem sich die
Probe (2) in Lösung bzw. suspendierter Form befindet (Abb. 3b).
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|---|---|---|---|
| DE1998157792 DE19857792A1 (de) | 1998-12-15 | 1998-12-15 | Ultraempfindliches Chlorophyllfluorometer |
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Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE19857792A1 true DE19857792A1 (de) | 2000-07-20 |
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|---|---|
| DE (1) | DE19857792A1 (de) |
Cited By (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2002066975A3 (en) * | 2001-01-31 | 2003-01-23 | Ut Battelle Llc | Tissue-based water quality biosensors for detecting chemical warfare agents |
| DE10148746A1 (de) * | 2001-09-26 | 2003-04-17 | Norsk Hydro As | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen und Beeinflussen des Pflanzenzustandes |
| DE10148737A1 (de) * | 2001-09-26 | 2003-04-17 | Norsk Hydro As | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen biophysikalischer Parameter von Pflanzenbeständen |
| US6649417B2 (en) | 2000-08-21 | 2003-11-18 | Ut-Battelle, Llc | Tissue-based standoff biosensors for detecting chemical warfare agents |
| DE102005061674A1 (de) * | 2005-12-21 | 2007-07-05 | Hochschule Mannheim | Faseroptisches Fluoreszenzsensorsystem |
| US7258836B2 (en) | 2003-10-20 | 2007-08-21 | Ut-Battelle, Llc | Freeze resistant buoy system |
| US7591979B2 (en) | 2003-10-20 | 2009-09-22 | Ut-Battelle, Llc | Enhanced monitor system for water protection |
| DE102008018475A1 (de) * | 2008-04-11 | 2009-10-15 | Carl Zeiss Ag | Vorrichtung und Verfahren zur Lumineszenzmessung |
| DE102013108189A1 (de) * | 2013-07-31 | 2015-02-05 | Endress + Hauser Conducta Gesellschaft für Mess- und Regeltechnik mbH + Co. KG | Anordnung zur optischen Messung einer Prozessgröße und Messgerät umfassend eine solche |
| US9448170B2 (en) | 2003-12-19 | 2016-09-20 | Hamamatsu Photonics K.K. | Harmful substance evaluating method and harmful substance evaluation kit |
-
1998
- 1998-12-15 DE DE1998157792 patent/DE19857792A1/de not_active Withdrawn
Cited By (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6569384B2 (en) | 2000-08-21 | 2003-05-27 | Ut-Battelle, Llc | Tissue-based water quality biosensors for detecting chemical warfare agents |
| US6649417B2 (en) | 2000-08-21 | 2003-11-18 | Ut-Battelle, Llc | Tissue-based standoff biosensors for detecting chemical warfare agents |
| US6964857B2 (en) | 2000-08-21 | 2005-11-15 | Ut-Battelle, Llc | Measuring indigenous photosynthetic organisms to detect chemical warefare agents in water |
| WO2002066975A3 (en) * | 2001-01-31 | 2003-01-23 | Ut Battelle Llc | Tissue-based water quality biosensors for detecting chemical warfare agents |
| DE10148746A1 (de) * | 2001-09-26 | 2003-04-17 | Norsk Hydro As | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen und Beeinflussen des Pflanzenzustandes |
| DE10148737A1 (de) * | 2001-09-26 | 2003-04-17 | Norsk Hydro As | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen biophysikalischer Parameter von Pflanzenbeständen |
| DE10148746C2 (de) * | 2001-09-26 | 2003-12-24 | Norsk Hydro As | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen und Beeinflussen des Pflanzenzustandes |
| DE10148737B4 (de) * | 2001-09-26 | 2004-03-18 | Norsk Hydro Asa | Verfahren und Vorrichtung zum berührungslosen Bestimmen biophysikalischer Parameter von Pflanzenbeständen |
| US7591979B2 (en) | 2003-10-20 | 2009-09-22 | Ut-Battelle, Llc | Enhanced monitor system for water protection |
| US7258836B2 (en) | 2003-10-20 | 2007-08-21 | Ut-Battelle, Llc | Freeze resistant buoy system |
| US9448170B2 (en) | 2003-12-19 | 2016-09-20 | Hamamatsu Photonics K.K. | Harmful substance evaluating method and harmful substance evaluation kit |
| DE102005061674A1 (de) * | 2005-12-21 | 2007-07-05 | Hochschule Mannheim | Faseroptisches Fluoreszenzsensorsystem |
| DE102005061674B4 (de) * | 2005-12-21 | 2008-01-10 | Hochschule Mannheim | Faseroptisches Fluoreszenzsensorsystem |
| DE102008018475A1 (de) * | 2008-04-11 | 2009-10-15 | Carl Zeiss Ag | Vorrichtung und Verfahren zur Lumineszenzmessung |
| US9007579B2 (en) | 2008-04-11 | 2015-04-14 | Carl Zeiss Microscopy Gmbh | Device and method for measuring luminescence |
| DE102013108189A1 (de) * | 2013-07-31 | 2015-02-05 | Endress + Hauser Conducta Gesellschaft für Mess- und Regeltechnik mbH + Co. KG | Anordnung zur optischen Messung einer Prozessgröße und Messgerät umfassend eine solche |
| US9488581B2 (en) | 2013-07-31 | 2016-11-08 | Endress+Hauser Conducta Gmbh+Co. Kg | Arrangement for optical measurement of a process variable and measuring device comprising such an arrangement |
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