DE19820032A1 - Eiprodukte mit stark reduziertem Cholesteringehalt und Verfahren zu deren Herstellung - Google Patents
Eiprodukte mit stark reduziertem Cholesteringehalt und Verfahren zu deren HerstellungInfo
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Abstract
Beschrieben wird ein Verfahren zur Entfernung von Cholesterin aus flüssigem und getrocknetem Eigelb, welches nach der verfahrenstechnischen Behandlung zu Flüssigeigelb, Flüssigvollei, Trockeneigelb oder Trockenvollei mit stark reduziertem Cholesteringehalt führt. Ausgehend von flüssigem oder trockenem Eigelb werden die Lipidbestandteile und Cholesterin durch ein organisches Lösungsmittel extraktiv von den Feststoffen abgetrennt. Cholesterin wird durch ein selektives Adsorbent auf Basis von Saponinen, gebunden auf einem anorganischen Träger, von der Lipidphase abgetrennt. Die Vereinigung der vom Cholesterin und vom Extraktionsmittel befreiten Lipidfraktion mit den vom Extraktionsmittel befreiten Proteinen und der anschließenden Homogenisierung unter Zusatz von Wasser und/oder Trockeneiweiß und/oder Flüssigeiweiß führt zu flüssigem weitestgehend vom Cholesterin befreiten Flüssigeigelb oder Flüssigvollei, welches sprühgetrocknet werden kann.
Description
Die Erfindung betrifft Eiprodukte, insbesondere Trockeneigelb,
Flüssigeigelb, Trockenvollei und Flüssigvollei mit stark
reduziertem Cholesteringehalt sowie ein Verfahren zu deren
Herstellung.
Durch unausgewogene Ernährung und durch Enzymdefekte, können
im menschlichen Serum pathologisch erhöhte Cholesterinspiegel
auftreten. Diese werden unter anderem für die Entstehung von
Arteriosklerose mitverantwortlich gemacht. Der diätischen
Aufnahme von fett- und cholesterinreduzierter Nahrung kommt
durch das wachsende Durchschnittsalter der Bevölkerung eine
besondere Bedeutung zu. Die Cholesterinaufnahme sollte auf
Dauer unter 250 mg/Tag liegen. Bei dem Verzehr
cholesterinreicher Kost wie z. B. Eiern, Butter, Schmalz, Sahne
sowie Lebensmitteln, wie z. B. Backwaren, in denen
cholesterinhaltige Zutaten wie z. B. Butter, Eier Verwendung
finden, wird dieser Wert leicht überschritten.
Es besteht daher ein Bedarf an Aufbereitungsverfahren, um Eier
und Eiprodukte sowie Trockenvollei und Trockeneigelb von
Cholesterin weitestgehend zu befreien, ohne daß die
Zusammensetzung der übrigen Bestandteile wie Fettsäuren und
ihre Ester, Phospholipide, Aromen, Farbstoffe, Vitamine,
Lecitin u. a. verändert und somit ihre Genuß- und
Verarbeitungseigenschaften wie z. B. das Emulgierverhalten von
Eiern beeinträchtigt werden. Von Cholesterin weitestgehend
befreite Eiprodukte könnten in einem weiten Bereich der
Nahrungsmittelherstellung verwendet werden, so z. B. zur
Zubereitung von Eierlikören, Eiscreme, Nudelwaren, sonstige
Back- und Konditorwaren sowie Mayonnaise u. a. oder sie werden
als diätisches Lebensmittel vermarktet.
Es werden bereits eine Reihe von Verfahren beschrieben, die
den Cholesteringehalt in Lebensmitteln - insbesondere Eiern
und Eiprodukten - verringern. Einen Überblick gibt C.
Haberstroh, C. E. Morris, Ed., Advances in Applied
Biotechnology Series, Vol. 12: Fat and Cholesterol Reduced
Foods. Technologies and Strategies 1991, Gulf Publishing
Company, Housten.
In einer Reihe von Publikationen wird auf Verfahrensschritte
zurückgegriffen, in denen chemische Transformationen der
Einhaltsstoffe, insbesondere Umesterungen der Triglyceride,
vorgenommen werden [z. B. WO 9727274, WO 9727275]. Die
beschriebenen Verfahren bestehen im wesentlichen aus folgenden
Stufen: a) Extraktion der Lipidbestandteile, b) Abtrennung der
Lipidbestandteile von den Feststoffen, c) alkalische Hydrolyse
der Fettester des Extraktes, d) Neutralisation des
Hydrolysates, e) Abtrennung der abgeschiedenen Fettsäuren und
der Steroide, f) Veresterung, g) destillative Abtrennung der
erhaltenen Ester insbesondere des veresterten Cholesterins, h)
Veresterung oder Umesterung der Fettsäuren zu Triglyceriden,
i) Vereinigung mit den Feststoffen aus b). Der
Phospholipidanteil geht allerdings in diesen Produkten
verloren.
Eine weitere Möglichkeit zur Extraktion des Cholesterins sowie
aller Lipidbestandteile kann durch Behandlung mit einem
organischen Lösungsmittel erreicht werden. Nach der Abtrennung
der festen Bestandteile von den in Lösung gegangenen
Triglyceriden, Phospholipiden und des Cholesterins, werden
diese Bestandteile einer alkalischen Hydrolyse unterzogen. Die
freien Fettsäuren werden nach Neutralisation als Feststoff
zusammen mit dem Cholesterin abgetrennt und zumeist mit
Methanol verestert. Die Methylester werden destillativ
getrennt und mit Glycerin umgeestert [WO 9727275]. Die
erhaltenen Triglyceride können mit den Feststoffen aus dem
ersten Schritt vereinigt werden.
Beide Methoden haben die Nachteile, daß sie erstens aus vielen
Prozeßschritten bestehen, zweitens die Inhaltsstoffe chemisch
modifiziert werden, drittens Phospholipide im Produkt verloren
gehen und sich damit die Verarbeitungseigenschaften des so
erhaltenen Produktes sowie sein Geschmack sich von
unbehandeltem Eigelb deutlich unterscheiden.
Weitere Methoden nutzen die Bildung von Cyclodextrin-
Cholesterin-Komplexen aus, die dann vom Nahrungsmittel
abgetrennt werden [z. B. WO 91/16824; Tabata Takeo, Kato
Yasuhiko, Kyushu Kogyo Daigaku Kenkyu Hokoku, Kogaku, 1997,
69, 53-7; WO 9111114].
Desweiteren ist ein Verfahren beschrieben, einen Fettextrakt,
der Cholesterin enthält, an einer immobilisierten
Cyclodextrinphase chromatographisch zu trennen (Yen, Gow-Chin;
Tsai, Li-Ju; Chi, Suey-Ping; Zhongguo Nongye Huaxue Huizhi
1997, 35 (2), 161-172). Diese Variante ist aufgrund der
aufwendigen Chromatographie unter dem Einsatz verschiedener
Lösungsmittel nicht im technischen Maßstab anwendbar. Zudem
haben die Verfahren, die Cyclodextrine verwenden, den
Nachteil, daß eine vollständige Abtrennung der Cyclodextrine
vom Produkt nicht gelingt und Cyclodextrine als
Nahrungsmittelinhaltsstoffe in einigen Ländern nicht
zugelassen sind. Die vollständige Entfernung der Cyclodextrine
gelingt auch nicht bei einem Verfahren, welches von CSIRO als
SIDOAK®-Verfahren bis zur technischen Reife hin entwickelt
wurde und zu Cholesterinreduzierungen von 80 bis 90% führt
[D. Oakenfull, Handbook of lipids in human nutritation, A Note
on Proposed Technologies for Extracting Cholesterol from Food,
CRC-Press 1996, Appendix VI, 221-4].
Es wurden auch Methoden vorgeschlagen, Lebensmittel darunter
auch Eier und Eiprodukte mit Saponinen zu versetzten, die mit
Cholesterin aber auch mit anderen steroiden Inhaltsstoffen
unlösliche Komplexe bilden [z. B. US 5370890; WO 91/05836; WO 9412044
]. Die verwendeten Saponine werden z. B. aus
pflanzlichen Materialien gewonnen und stellen Stoffgemische
verschiedener Saponine dar, von denen nur ein Teil spezifisch
mit Cholesterin einen unlöslichen Komplex bildet. Ein
wesentlicher Nachteil dieser Verfahren besteht darin, daß
große Mengen an Wasser dem Lebensmittel zugesetzt werden
müssen, um eine gute Durchmischung in einer flüssigen Phase zu
gewährleisten. Die Komplexe müssen dann unter der Verwendung
von Filterhilfsstoffen, die den Suspensionen zugesetzt werden,
innig vermischt werden. Anschließend erfolgt die Abtrennung
der Feststoffe durch Zentrifugation oder Filtration. Die Zahl
der notwendigen Aufbereitungsschritte zur Abtrennung der
Komplexe stellt einen weiteren Nachteil dieses Verfahrens dar.
Zudem bleibt das Verfahren auf Rohstoffe wie Butter, Butteröle
und andere beschränkt, da nur solche Rohstoffe verwendet
werden können, die keine Feststoffe enthalten, da diese
ebenfalls im Filterkuchen zurückbleiben würden. Die
wasserlöslichen Komponenten der eingesetzten Lebensmittel
gehen ebenfalls verloren.
In einer Vielzahl von Veröffentlichungen werden weitere
Adsorptionsmittel für eine Festbettadsorption vorgeschlagen,
um Cholesterin aus Wasser, organischen Lösungsmitteln oder
überkritischen Gasen zu adsorbieren [z. B. DE 38 18 591,
EP 0318326, JP 0900174]. Die vorgeschlagenen Adsorbentien können
zumeist nur einmal verwendet werden und haben sich als zu
unspezifisch oder nur bedingt wieder regenerierbar
herausgestellt. Adsorptionsmittel für Cholesterin, die ohne
Lösungsmittel eingesetzt werden, sind ebenfalls beschrieben
[US 5063070]. Formselektive porösere Feststoffe, die aus einem
funktionalisierten organischen Polymer bestehen, sind
ebenfalls beschrieben [M. J. Whitcombe in J. Am. Chem. Soc.
1995, 117, 7105-11]. Die Immobilisierung von Digitonin auf
synthetisch modifizierten Trägern und modifizierten Polymeren
ist beschrieben [T. I. Denisova, N. S. Prilipko, Khim. Zh.
1995, 61, 15-8; I. V. Berezin u. a., Vorpr. Med. Khim. 1980,
26(6), 843-6] und führt zu Adsorbentien für Cholesterin, die
für wäßrige Medien, wie bspw. Blutplasma, geeignet zu sein
scheinen.
Die Verdrängung von Eilipiden durch den Zusatz von
cholesterinfreien Ölen und Fetten von zumeist pflanzlicher
Herkunft, ergibt ebenfalls cholesterinreduzierte Produkte, die
sich aber in ihrer Zusammensetzung, Verarbeitbarkeit,
Geschmack und Farbe von unbehandelten Eiprodukten
unterscheiden und somit als Eiersatzstoffe deklariert werden
müssen [z. B. DE 195 11 944]. Es sind auch Verfahren beschrieben,
in denen Flüssigeigelb und Trockeneigelb mit Ethanol extraktiv
von Cholesterin aber auch von den Triglyceriden und den
Phospholipiden befreit werden [US 3563765; J. S. Sim, Egg Uses
Process. Technol., 1994, 128-38; J. D. David, Dissertation
Univ. Wisconsin Madison USA, 1991; DE 27 51 392]. Die festen
Extraktionsrückstände können erst unter dem Zusatz von
Emulgatoren und Pflanzenölen zu einem Eiersatzstoff
verarbeitet werden, der nur eingeschränkt verzehrbar ist und
sich von unbehandelten Eiprodukten durch Geschmack, Farbe und
Verarbeitungseigenschaften unterscheidet. Eine nahezu
vollständige Entfernung des Cholesterins (z. B. über 90%) aus
den extrahierten festen Eirückständen und den sonstigen
anfallenden Eifraktionen gelingt in diesen Veröffentlichungen
nicht. Daher ist eine Zusammenführung von Eifraktionen nach
ihrer Behandlung zu Eiprodukten mit einer
Cholesterinreduzierung von über 90% in diesen Arbeiten nicht
beschrieben und auch nicht möglich.
Lösungsmittelgemische, die z. B. aus einem Kohlenwasserstoff,
Alkoholen und Wasser bestehen, wurden ebenfalls vorgeschlagen,
um Cholesterin aus tierischen Fetten [DE 41 39 398],
Trockeneigelb [A. Paraskevopoul, V. Kiosseoglou, S. Pegiadou,
J. Agric. Food Chem. 1997, 45, 3717-22] und Flüssigeigelb
[J.E. Larsen, G. W. Froning, Poultry Science, 1981, 60, 161-7;
B. Tokarska, M. T. Clandinin, Can. Inst. Food Sci. Technol. J.
1985, 18, (3), 256-8] zu beseitigen. Beim Einsatz dieser
Lösungsmittelgemische für Extraktionen zeigte sich, daß weder
die erhaltenen Eifraktionen noch eine ihrer Mischungen
Emulgiereigenschaften besaßen, die mit unbehandelten Eiern
vergleichbar waren.
Eine weitere Methode nutzt die Löslichkeit von Fettstoffen und
Cholesterin in überkritischen Gasen aus, indem
Trockeneiprodukte, wie Trockenvollei und Trockeneigelb, die
z. B. durch Sprühtrocknung erhalten wurden, in einem
Druckbehälter mit einem Gas oder Gasgemisch extrahiert werden,
welches bei der Extraktionstemperatur über seinem kritischen
Punkt liegt. Zu diesem Verfahren sind eine Reihe von Varianten
vorgeschlagen worden, die sich in wesentlichen in der Art des
verwendeten Gases, der Drücke und der Prozeßführung
unterscheiden [z. B. G. W. Froning, Egg Uses Process. Technol.
1994, 106-14]. Die am häufigsten angewendete Methode besteht
in der extraktiven Entfernung der Triglyceride, der
Phospholipide und des Cholesterins sowie seiner Ester mit
überkritischem CO2. Als Produkt werden im wesentlichen
Proteine erhalten, die erst durch die Zuführung von zumeist
pflanzlichen und cholesterinfreien Fettstoffen, sowie
Emulgatoren zu einem Eiersatzstoff führen. In nur wenigen
Beispielen wird nach einer Entfernung der Lipid-Cholesterin-
Bestandteile eine Trennung dieser durch adsorptive Prozesse
vorgenommen und die vom Cholesterin weitestgehend befreiten
Lipide dem extrahierten Teil des eingesetzten Nahrungsmittels
zurückgeführt, wie z. B. bei der Herstellung von Sahne mit
reduziertem Cholesteringehalt [DE 44 04 524].
Da die Löslichkeit der Lipide in überkritischem CO2 besser
ist, als die von Cholesterin, muß der eingesetzte
Trockeneirohstoff vollständig entfettet werden, um eine
ausreichende Entfernung des Cholesterins zu ermöglichen.
Dieses Verfahren bleibt zudem auf den Einsatz von wenig Wasser
enthaltenden Trockeneiprodukten beschränkt.
Um die Löslichkeit des Cholesterins in überkritischem CO2 zu
verbessern, ist vorgeschlagen worden, dem CO2
Lösungsvermittler in Form von organischen Lösungsmitteln
zuzusetzen (z. B. G. Zeidler, G. Pasin, A. King, Egg Uses
Process. Technol. 1994, 115-27].
Auch die Verwendung von überkritischem Propan und Butan ist
vorgeschlagen worden [DE 42 36 474].
Weiterhin wird die Extraktion mit überkritischem CO2 mit
anschließender Adsorption an ein geeignetes Trägermaterial für
analytische Zwecke beschrieben [E. Boselli, M.F. Caboni, G.
Lercker, Z. Lebensm. Unters. Forsch. A 1997, 205, 356-359].
Die Verwendung von CO2 im unterkritischen Zustand als
Extraktionsmittel wird ebenfalls beschrieben [US 5024846].
Bei Verfahren, die überkritisches CO2 zur Extraktion
verwenden, wird aber entweder der Cholesteringehalt in nur
unbefriedigender Weise reduziert, oder es werden
Eiersatzprodukte erhalten, die sich in der Zusammensetzung der
verbleibenden Komponenten von unbehandelten Eiern und
Eiprodukten wesentlich unterscheiden, so daß diese entweder
nicht verzehrfähig und/oder verarbeitungsfähig sind und nicht
als Eiprodukte sondern als Eiersatzstoffe deklariert werden
müssen.
Die direkte destillative Entfernung von Cholesterol aus
tierischen Fetten ist vorgeschlagen worden [EP 442184], führt
aber zur starken thermischen Belastung der eingesetzten
Rohstoffe.
Die beschriebenen Verfahren weisen generell als Nachteil auf,
daß durch unspezifische Trennmethoden und Verfahrensschritte
eine selektive Abtrennung von Cholesterin nicht möglich ist
oder daß die Verfahren aus dem Labormaßstab nicht in einen
technischen Prozeß umgesetzt werden können.
Aufgabe der Erfindung ist es, ein Verfahren zur Entfernung von
Cholesterin aus Eigelb zur Verfügung zu stellen, das die
Nachteile der bekannten Verfahren vermeidet. Eine weitere
Aufgabe der Erfindung ist es, cholesterinreduzierte Eiprodukte
zur Verfügung zu stellen, die die Nachteile der bekannten
cholesterinreduzierten Eiprodukte nicht aufweisen.
Diese Aufgaben werden durch den Gegenstand der Patentansprüche
gelöst.
Erfindungsgemäß wird damit ein Verfahren zur Herstellung von
Eiprodukten mit reduziertem Cholesteringehalt zur Verfügung
gestellt, das dadurch gekennzeichnet ist, daß es folgende
Stufen umfaßt:
- (a) Extraktion von Eirohstoffen, insbesondere Trockeneigelb und Flüssigeigelb mit einem organischen Lösungsmittel, welches bei 20°C und 1013 hPa flüssig und mit Wasser entweder in jedem Verhältnis mischbar ist oder mindestens 30 Gew.-% an Wasser zu lösen vermag,
- (b) Entfernen des Cholesterins aus dem Extrakt durch adsorptive Chromatographie an einem geeigneten Adsorptionsmittel und anschließend Entfernen des Lösungsmittels des Extrakts,
- (c) Vereinigen der in Stufe (a) abgetrennten Bestandteile mit dem in Stufe (b) erhaltenen Produkt sowie Wasser unter Homogenisierung zu einem flüssigen Eiprodukt.
Erfindungsgemäß werden ebenfalls die so erhaltenen
cholesterinreduzierten Eiprodukte zur Verfügung gestellt.
Einzelne Stufen des erfindungsgemäßen Verfahrens mögen bereits
in bekannten Verfahren zur Herstellung von
cholesterinreduzierten Lebensmitteln eingesetzt worden sein,
jedoch nicht in der erfindungsgemäß aufgefundenen Kombination
und Abfolge. Überraschenderweise wurde erfindungsgemäß
gefunden, daß man bei einem Verfahren, bei dem zunächst
Eirohstoffe in einem organischen Lösungsmittel extrahiert
werden, dieses Extrakt dann durch adsorptive Chromatographie
an einem geeigneten Adsorptionsmittel selektiv von Cholesterin
befreit wird und das von Cholesterin befreite Extrakt wieder
mit den im ersten Schritt abgetrennten Produkten vereinigt
wird, ein verfahrenstechnisch ausgesprochen vorteilhaftes
Verfahren zur Verfügung gestellt wird, das die
erfindungsgemäße Aufgabe löst und ein vorteilhaftes
cholesterinreduziertes Eiprodukt zur Verfügung stellt, das die
Nachteile der Eiprodukte, die nach den bekannten Verfahren des
Standes der Technik hergestellt werden, nicht aufweist.
In einer bevorzugten Ausführungsform wird das
Adsorptionsmittel nach der Adsorption des Cholesterins mit
einem Eluenten regeneriert. Dies hat den Vorteil, daß dasselbe
Adsorptionsmittel mehrfach eingesetzt werden kann. Weiterhin
wird bei der Regeneration des Adsorptionsmittels
überraschenderweise Cholesterin in einer Qualität gewonnen,
die es zu einem wertvollen Grundstoff für viele Anwendungen,
beispielsweise in der Kosmetikindustrie, macht.
In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung ist es
möglich, im Schritt (c) flüssiges und/oder trockenes Eiweiß
bei der Homogenisierung zuzusetzen, wodurch ein Flüssigvollei
mit stark reduziertem Cholesteringehalt entsteht.
Ein weiterer Vorteil des erfindungsgemäßen Verfahrens
gegenüber bekannten Verfahren ist es, daß das hergestellte
flüssige Eiprodukt in einer Qualität und Konsistenz vorliegt,
die es erlaubt, dieses Eiprodukt unmittelbar einer
Sprühtrocknung zu den entsprechenden Trockeneiprodukten zu
unterwerfen, und in einer weiteren Ausführungsform betrifft
die Erfindung auch ein Verfahren, bei dem ein solcher
Sprühtrocknungsschritt durchgeführt wird.
Das Verfahren zeichnet sich dadurch aus, daß es die
Verarbeitung verschiedener Rohstoffe in Form von flüssigem
Eigelb sowie von trockenem Eigelb z. B. in Form von
sprühgetrocknetem Eigelb zu naturnahen Eiprodukten mit stark
reduziertem Cholesteringehalt ermöglicht unter Beibehaltung
der Zusammensetzung der übrigen Bestandteile, insbesondere der
Fettsäuren und ihrer Ester, Aromastoffe, Vitaminen, Lecitin
und Phospholipiden.
Überraschenderweise wurde jetzt festgestellt, daß es möglich
ist, mit dem erfindungsgemäßen Verfahren den Cholesteringehalt
dieser Eiprodukte über 90% zu senken, ohne daß deren
Geschmack, Geruch, Farbe und Verarbeitungseigenschaften sich
von den unbehandelten Eiprodukten wesentlich unterscheiden.
Es zeigte sich, daß sich durch die erfindungsgemäße
Verknüpfung der im folgenden beschriebenen Verfahrensschritte
zum einen ein flexibler Einsatz der Rohstoffe in Form von
flüssigem Eigelb und/oder getrocknetem Eigelb, z. B. in Form
von sprühgetrocknetem Eigelb, erfolgen kann und zum anderen,
daß aus dem Verarbeitungsprozeß an verschiedenen Stellen die
Eiprodukte in flüssiger oder getrockneter Form erhalten werden
können. Überraschenderweise erlaubt das erfindungsgemäße
Verfahren unter Zuführung von Flüssig- und/oder Trockeneiweiß
z. B. in Form von sprühgetrocknetem Eiweiß, die Produktion von
flüssigem und/oder sprühgetrocknetem Vollei mit stark
reduziertem Cholesteringehalt. Das für einen kontinuierlichen
Betrieb beschriebene Verfahren erlaubt sowohl die flexible
Herstellung von Trockeneigelb und Trockenvollei als auch
Flüssigeigelb und Flüssigvollei mit stark reduziertem
Cholesteringehalt in einer Produktionsanlage. Das für einen
kontinuierlichen Betrieb beschriebene Verfahren kann nach
Verfahrensabschnitten unterteilt werden. Diese
Verfahrensabschnitte können auch für einen diskontinuierlichen
Betrieb ausgelegt werden. Die Erfindung umfaßt daher das
nachstehend ausführlich beschriebene kontinuierliche
Verfahren, aber auch ein entsprechendes diskontinuierliches
Verfahren.
Bei ausreichender Dimensionierung der Anlagenteile erlaubt das
vorgeschlagene Verfahren die Herstellung einer variablen
Produktionsmenge bei gleichbleibender Produktqualität. Das
Verfahren zeichnet sich dadurch aus, daß die eingesetzten
Lösungsmittel im Kreis geführt werden können, ohne daß es zu
einer Akkumulation von inerten Bestandteilen, wie z. B. Wasser,
im Kreisprozeß kommt. Überraschenderweise zeigte sich, daß bei
diesem Verfahren auch Cholesterin in einer Menge und Reinheit
gewonnen werden kann, die als Ausgangsprodukt für die Synthese
von Steroidhormonen, Vitaminen und Flüssigkristallen von
wirtschaftlichem Interesse ist.
Fig. 1 stellt schematisch die einzelnen Verfahrensschritte des
erfindungsgemäßen Verfahrens dar.
Fig. 2 gibt ein qualitatives Phasendiagramm wieder, für den
Fall, daß sich bei der Extraktion in der ersten
Extraktionsstufe ein dreiphasiges System (fest, flüssig,
flüssig) ergibt. In dem Phasendiagramm der Fig. 2 haben die
einzelnen Bezeichnungen folgende Bedeutung:
1 = 100% Eilipidbestandteile
2 = 100% organisches Lösungsmittel
3 = 100% Wasser
A = Bereich außerhalb der Mischungslücke
B = Bereich innerhalb der Mischungslücke
Mischungsverhältnisse längs der Konode (→) führen zu einer Extraktionsmittelphase (⚫), die leichter als die Lipidphase (*) ist.
C = Bereich innerhalb der Mischungslücke,
Mischungsverhältnisse längs der Konode (→) führen zu einer Extraktionsmittelphase (⚫), die schwerer als die Lipidphase (*) ist.
⚫-* = Konode.
1 = 100% Eilipidbestandteile
2 = 100% organisches Lösungsmittel
3 = 100% Wasser
A = Bereich außerhalb der Mischungslücke
B = Bereich innerhalb der Mischungslücke
Mischungsverhältnisse längs der Konode (→) führen zu einer Extraktionsmittelphase (⚫), die leichter als die Lipidphase (*) ist.
C = Bereich innerhalb der Mischungslücke,
Mischungsverhältnisse längs der Konode (→) führen zu einer Extraktionsmittelphase (⚫), die schwerer als die Lipidphase (*) ist.
⚫-* = Konode.
Fig. 3 stellt schematisch eine großtechnische Anlage zur
Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens dar.
Im folgenden werden die in Fig. 1 aufgeführten
Verfahrensabschnitte näher erläutert.
Die eingesetzten Rohstoffe werden in einer mehrstufigen,
mehrphasigen Fest/Flüssig-Extraktionskaskade durch ein
Lösungsmittel, das nachstehend näher beschrieben wird, von
Wasser, Lipiden und Cholesterin befreit. Dieser Schritt
schließt eine gleichzeitig ablaufende Proteinfällung ein. Die
festen Bestandteile, die überwiegend aus Proteinen bestehen,
werden nach der letzten Extraktionsstufe durch Zentrifugation
vom Extraktionsmittel abgetrennt.
Das Extraktionsmittel, welches die Lipid/Cholesterin-Fraktion
enthält, wird durch adsorptive Chromatographie an einem
geeigneten Trägermaterial vom Cholesterin befreit. Die dafür
notwendige chromatographische Säule wird vorteilhafterweise
nach Kapazitätserschöpfung regeneriert. Durch die Regeneration
mit einem Eluenten kann das Cholesterin aus der
Chromatographiesäule freigesetzt werden. Anschließend wird das
Cholesterin aufkonzentriert und in einem separaten Anlagenteil
abgeschieden. Die Elutionsmittel werden durch Rektifikation
aufbereitet und dem Prozeß wieder zugeführt.
Die Eindampfung der vom Cholesterin befreiten
Lipidbestandteile und ihre Vereinigung mit der im ersten
Schritt abgetrennten und ebenfalls vom Cholesterin befreiten
Proteinfraktion führt unter Zuführung von Wasser und der
anschließenden Homogenisierung zu einem flüssigen Eigelb mit
stark reduziertem Cholesteringehalt. Durch die zusätzliche
Zuführung von flüssigem und/oder trockenem Eiweiß kann nach
anschließender Homogenisierung ebenfalls Flüssigvollei mit
stark reduziertem Cholesteringehalt erhalten werden.
Die homogenisierten Flüssigprodukte können durch eine sich
anschließende Sprühtrocknung und Agglomerierung in
Trockeneigelb bzw. Trockenvollei übergeführt werden. Der
Restfeuchtegehalt des in dem Verfahren hergestellten
Trockeneigelbs bzw. Trockenvolleis liegt zwischen 2 und 6%.
Das im ersten Verfahrensabschnitt eingesetzte
Extraktionsmittel besteht aus einem organischen Lösungsmittel,
welches bei 20°C und 1013 hPa flüssig und mit Wasser entweder
in jedem Verhältnis mischbar ist oder mindestens 30 Gew.-% an
Wasser zu lösen vermag. Es besitzt die Eigenschaft,
Cholesterin in einem Temperaturbereich von 5°C bis zum
Siedepunkt des Lösungsmittels unter Normaldruck bedingt zu
lösen. Das Lösungsmittel ist bevorzugt physiologisch
unbedenklich. Geeignete Lösungsmittel sind ein- und
zweiwertige Alkohole mit einer Kohlenstoffzahl von 1 bis 8,
insbesondere von 2 bis 4, sowie ihre Mischungen. Besonders
geeignete Alkohole sind Ethanol, 1-Propanol, 2-Propanol, 1,3-
Propandiol und 1,2-Propandiol als Stereoisomerengemisch sowie
alle Regio- und Stereoisomeren des Butandiols (Butylenglycole)
und deren Mischungen. Besonders bevorzugt ist Ethanol, das ein
besonders günstiges Lösungsverhalten für das vorgeschlagene
erfindungsgemäße Verfahren aufweist. Überraschenderweise
zeichnet sich dieses Lösungsverhalten dadurch aus, daß es auf
der einen Seite bei geringer Fettlöslichkeit eine gute
Löslichkeit für Cholesterin besitzt, und auf der anderen Seite
bei der Aufnahme von Wasser aus dem Eigelb zu einer
Entwässerung von Proteinen und deren Fällung führt, die die
Eigenschaften der Proteine nicht beeinträchtigt. Hervorzuheben
ist hierbei erstens, daß sich das gefällte Protein unter dem
Zusatz von Wasser wieder verflüssigen läßt, zweitens daß es
seine Emulgatoreigenschaften nicht verliert und drittens daß
es seine organoleptischen Eigenschaften behält. Die nahezu
reversible Dehydratisierung und anschließende Rehydratisierung
der Proteinbestandteile ist durch die oben spezifizierten
Lösungsmittel - insbesondere Ethanol - möglich und ermöglicht
daher vor allem auch die Verarbeitung von Flüssigeiprodukten,
ohne daß deren Zusammensetzung an Inhaltsstoffen, Farbe und
Verarbeitungseigenschaften sowie organoleptischen
Eigenschaften sich von den unbehandelten Flüssigeiprodukten
wesentlich unterscheiden. Bilden die Lösungsmittel Azeotrope
mit Wasser, so kann der Wassergehalt des eingesetzten
Lösungsmittels auch durch seinen azeotropen Punkt
gekennzeichnet sein, wobei dieser durch den Druck bestimmt
wird, bei dem das Lösungsmittel destilliert wurde. Im
folgenden werden diese Lösungsmittel vereinfacht als
Extraktionsmittel bezeichnet. Bevorzugt liegt der Wassergehalt
des eingesetzten Extraktionsmittels zwischen 0 und 30 Gew.-%,
insbesondere zwischen 1 und 5 Gew.-%.
Trockeneigelb wird im ersten Verfahrensschritt in einer
mehrstufigen Fest/Flüssig-Extraktionsstufe behandelt. Das
erfindungsgemäße Verfahren wird vorzugsweise in
kontinuierlicher Form, insbesondere durch eine Gegenstrom-
und/oder Querstromextraktion durchgeführt. Die
Gegenstromextraktion führt bei höheren Investitionskosten
durch zusätzliche Extraktionsstufen zu geringeren
Betriebskosten, während die Querstromextraktion bei geringeren
Investitionskosten durch weniger benötigte Extraktionsstufen
zu höheren Betriebskosten durch erhöhten
Extraktionsmitteleinsatz führt. Die Zahl der realen
Extraktionsstufen ergibt sich erstens aus der Zahl der
benötigten theoretischen Böden und der Bodensteinzahl der
realen Extraktionsstufe, zweitens dem Verhältnis von Gewicht
des eingesetzten Trockeneigelbs oder Flüssigeigelb zum Volumen
des eingesetzten Lösungsmittels, drittens dem Volumen des
Mischers und der Größe des Feedstromes, deren Verhältnis die
mittlere Verweilzeit im Mischer mitbestimmt. Wird z. B.
Trockeneigelb in einer Querstromextraktion mit einem
Verhältnis von Gewicht des eingesetzten Trockeneigelbs zum
Volumen des Extraktionsmittels in Form von Ethanol von 1 : 4 bei
45°C eingesetzt und beträgt die mittlere Verweilzeit im
Mischer 30 min. so sind im allgemeinen 7 theoretische
Trennstufen ausreichend, um eine nahezu vollständige
Extraktion des Cholesterins aus den Feststoffen zu erreichen.
Das Verhältnis von Volumen des eingesetzten Extraktionsmittels
zum Gewicht des eingesetzten Trockeneigelbs beträgt 0,5/1 bis
20/1, insbesondere 0,8/1 bis 8/1. Beim Einsatz von flüssigem
Eigelb beträgt das Verhältnis von Volumen des eingesetzten
Extraktionsmittels zum Gewicht des eingesetzten Flüssigeigelbs
0,5/1 bis 20/1, insbesondere 1,0/1 bis 10/1.
Überraschenderweise zeigte sich eine besonders effektive
Extraktion, wenn bei dem Einsatz von Flüssigeigelb ein
Verhältnis von Volumen des Extraktionsmittels zum Gewicht des
Flüssigeigelbs von 1/1 nicht unterschritten wird.
Bei dem Einsatz insbesondere von Flüssigeigelb oder der
Verwendung eines Extraktionsmittels mit erhöhtem Wassergehalt,
kann sich bei der Extraktion in der ersten Extraktionsstufe
ein dreiphasiges System (fest, flüssig, flüssig) ergeben,
dessen qualitatives Phasendiagramm für die flüssigen
Komponenten (Dreikomponenten-Zweiphasendiagramm) in Fig. 2
dargestellt ist. Es besteht aus einer Lipidphase, welche
organisches Lösungsmittel und wenig Wasser enthält, einer
Extraktionsmittelphase, die überwiegend aus Wasser und
organischem Lösungsmittel besteht und wenig Lipide enthält.
Der Feststoff besteht überwiegend aus Proteinen mit hohem
Wassergehalt. In diesem Fall werden dem Scheider drei
getrennte Phasen entnommen. Es hat sich als besonders
vorteilhaft herausgestellt, wenn die eingesetzten
Mengenverhältnisse von Eigelb zu Extraktionsmittel so gewählt
werden, daß die sich abscheidende Lipidphase die spezifisch
leichtere und die Extraktionsmittelphase die spezifisch
schwerere Phase ist (Fig. 2, Teil C der Konode). Somit kann
die Lipidphase leicht durch Zentrifugation von der
Extraktionsmittelphase und dem Feststoff abgetrennt werden.
Dies ist z. B. bei einem Verhältnis von Gewicht des
eingesetzten Flüssigeigelbs zum Volumen des eingesetzten
Extraktionsmittels in Form von 90%igem Ethanol bei 30°C von
1 : 1 der Fall, während bei einem Verhältnis von 1 : 3,5 die
Lipidphase spezifisch schwerer ist als die
Extraktionsmittelphase und somit nur schlecht durch
Zentrifugation vom Feststoff abgetrennt werden kann.
Die wäßrige Extraktionsmittelphase wird eingedampft und der
Rückstand der Feststoffphase zugeschlagen. Damit gelangt der
Rückstand in die sich anschließende Extraktionsstufe. Die
Lipidphase wird entnommen mit weiteren Extraktfraktionen
vereinigt und dem nächsten Verfahrensschritt zugeführt.
Eine Extraktionsstufe kann aus einer Mischer/Scheider-Einheit
bestehen, die entweder im Fest/Flüssig-Gegenstrom oder im
Fest/Flüssig-Querstrom angeordnet ist. Zur vollständigen
Abtrennung des Feststoffes nach der letzten Extraktionsstufe
wird eine geeignete Trennmethode angewandt, die aus einer
Filtration, Zentrifugation, Cross-Flow-Filtration oder
Sedimentation bestehen kann. Alternativ können die einzelnen
Extraktionsstufen z. B. in Form eines Hildebrandextraktors oder
eines Bonottoextraktors oder eines Kennedyextraktors
zusammengefaßt werden, denen sich eine weitere geeignete
Trennmethode anschließt, um den Feststoff vom
Extraktionsmittel abzutrennen, wie z. B. einer Filtration,
Zentrifugation oder Cross-Flow-Filtration oder Sedimentation.
Die bei allen obig beschriebenen Extraktionsverfahren
einzuhaltende Temperatur liegt zwischen 5°C und dem Siedepunkt
des eingesetzten Lösungsmittels bei Normaldruck, insbesondere
im Temperaturbereich von 30°C bis 60°C. Die Kontaktzeit
zwischen Feststoff und Solvent in einer Trennstufe einer
Mischer/Scheider-Gegen- oder Gleichstromkaskade beträgt
zwischen einer und 60 Minuten, wobei Kontaktzeiten von 5
Minuten bis 20 Minuten zu vorteilhaften Raumzeitausbeuten
führen. Bei der Verwendung eines Hildebrandextraktors oder
eines Bonottoextraktors oder eines Kennedyextraktors bezieht
sich diese Kontaktzeit auf die Länge eines theoretischen
Bodens (HETP).
Das Extraktionsmittel wird durch eine adsorptive
Chromatographie vom Cholesterin befreit. Das dafür notwendige
Adsorbent kann aus einem porösen anorganischen Trägermaterial
bestehen, welches seinerseits durch die Adsorption von
geeigneten Molekülen funktionalisiert wird. Als vorteilhaft
hat sich besonders die Verwendung eines anorganischen Trägers
auf der Basis von SiO2 gezeigt, insbesondere bei der
Verwendung von natürlich vorkommenden Sedimenten mit der
allgemeinen Formel SiO2.nH2O wobei 0,1<n<0,45 beträgt und das
Sediment einen amorphen Opalanteil von 70-90% enthält.
Alternativ kann auch ein durch Calcination modifiziertes
Sediment mit einem erhöhten Cristobalitanteil verwendet
werden, besonders geeignet sind Trägermaterialien mit
Partikelgrößen zwischen 9 und 50 µm. Zur Funktionalisierung des
anorganischen Trägers eignen sich Saponine, die mit
Steroidalkoholen, mit einer Hydroxygruppe in 3β-Position, in
den oben näher spezifizierten Lösungsmitteln schlecht lösliche
Komplexe bilden. Insbesondere die Verwendung von Digitonin mit
der Summenformel C56H92029 hat sich als vorteilhaft erwiesen.
Im Gegensatz zu bestehenden Verfahren [z. B. WO 91 05836] wird
durch die vorangeschaltete Funktionalisierung eines
anorganischen Trägermaterials mit speziellen Saponinen ein in
organischen Lösungsmittel unlösliches Adsorptionsmaterial
gewonnen, welches für eine mehrfache selektive
Adsorption/Desorption im technischen Maßstab unter den obig
angegebenen Lösungsmitteln und Lösungsmittelverhältnissen
geeignet ist und eine exzellente Selektivität aufweist. Auch
die Verwendung anderer Adsorptionsmittel [z. B. I.V. Berezin,
M. Yu, I. Andrianova u. a. Vorpr. Med. Khim. 1980, 26 (6), 843-6;
M.J. Whitecombe, u. a., J. Am. Chem. Soc. 1995, 117 (27),
7105-11] ist erfindungsgemäß möglich, wenn auch nicht
bevorzugt. Bei der Verwendung anderer Adsorptionsmittel kann
allerdings die Verwendung anderer Elutionsmittel als die
nachstehend beschriebenen zur Regenerierung der
Adsorptionssäule erforderlich sein.
Die chromatographische Säule kann nach Kapazitätserschöpfung
regeneriert werden. Dies geschieht durch die Verwendung eines
organischen Lösungsmittels, bevorzugt eines geradkettigen oder
verzweigten Kohlenwasserstoffes oder eines geradkettigen
und/oder verzweigten Kohlenwasserstoffgemisches mit der
allgemeinen Formel CnH2n+2, wobei 4<n<12 ist. Besonders
bevorzugt liegt ein Lösungsmittelgemisch aus dem vorstehenden
Alkan und einem aromatischen Lösungsmittel, insbesondere
Toluol, vor. Durch das Lösungsmittel, im folgenden
Elutionsmittel genannt, wird Cholesterin aus der
Chromatographiesäule freigesetzt. Bei der Verwendung von
Propan und Butan als Elutionsmittel wird die Elution unter
solchem- Druck durchgeführt, daß diese in kondensierter Form
vorliegen. Anschließend wird das Cholesterin aufkonzentriert
und in einem separaten Anlagenteil durch Kristallisation
abgeschieden. Das Elutionsmittel wird durch Rektifikation
aufbereitet und dem Prozeß wieder zugeführt. Das so erhaltene
Cholesterin weist überraschenderweise einen derartigen
Reinheitsgrad auf, daß es ohne größere weitere
Reinigungsschritte für verschiedene Anwendungen, z. B. im
Kosmetikbereich, eingesetzt werden kann.
Die vom Cholesterin befreite Extraktionslösung wird durch
Rektifikation vom Extraktionsmittel befreit. Dabei wird der
Extrakt einer kontinuierlich betriebenen Rektifizierkolonne
zugeführt und das Lösungsmittel bis auf einen Restgehalt von
vorzugsweise 0.1 bis 10% entfernt. Um zu einer thermisch
schonenden Behandlung zu gelangen, sollte die Rektifikation
unter vermindertem Druck oder/und durch strippen mit einem
Inertgas, insbesondere von Sauerstoff befreitem Stickstoff,
erfolgen. Besonders vorteilhaft sind verminderte Drücke, die
zu einem Siedepunkt am Kopf der Kolonne zwischen 20° und 70°C
führen. Im allgemeinen wird daher solchen Lösungsmitteln der
Vorzug gegeben, die einen niedrigen Siedepunkt besitzen wie
insbesondere Ethanol.
Die Auslegung der Rektifikation kann auf zwei Arten erfolgen:
- 1. Das im Extrakt enthaltene Wasser, welches insbesondere beim
Einsatz von Flüssigeigelb, aus den eingesetzten Rohstoffen
stammt, gelangt mit dem Extraktionsmittel über den
Kolonnenkopf. In diesem Fall trennt eine zweite
Rektifikationskolonne, gespeist durch das Destillat der ersten
Rektifikation, das Extraktionsmittel und Wasser.
Liegt der Siedepunkt des Extraktionsmittels unter dem von Wasser, so wird dem Auftriebsteil der Kolonne und/oder dem Kolonnenkopf das Destillat, welches auch aus einem Azeotrop bestehen kann, entnommen und als Extraktionsmittel der letzten Extraktionsstufe der Gegenstromextraktion zugeführt. Dem Abtriebsteil und/oder dem Sumpf wird ein überwiegend aus Wasser bestehender Strom entnommen, der einem Homogenisierer zugeführt werden kann. Liegt der Siedepunkt des Extraktionsmittels über dem von Wasser, so wird dem Abtriebsteil der zweiten Rektifikationskolonne und/oder dem Sumpf ein Strom entnommen, welcher als Extraktionsmittel der letzten Stufe der Gegenstromextraktion zugeführt wird. In diesem Fall kann das Destillat der zweiten Rektifikation, dem Auftriebsteil der Kolonne und/oder dem Kolonnenkopf entnommen werden, und der Homogenisierung die unten beschrieben wird zugeführt werden. - 2. Für den Fall, daß der Siedepunkt des Extraktionsmittels niedriger liegt als der von Wasser, kann alternativ auch eine Trennung in einer einzigen Kolonne erfolgen, wenn dem Auftriebsteil und/oder dem Kolonnenkopf das Extraktionsmittel mit geringem Wassergehalt entnommen wird und der Abtriebsteil oder Sumpf eine Möglichkeit zur Entnahme eines zweiphasigen Gemisches, bestehend aus Wasser und den lipiden Bestandteilen, ermöglicht. Diese Prozeßführung bietet bei dem Einsatz von Rohstoffen mit geringem Wassergehalt, wie es zum Beispiel bei Trockeneigelb der Fall ist, Vorteile durch eine einfachere Prozeßführung und geringere Investitionen.
Der nunmehr vom Extraktionsmittel befreite Extrakt wird mit
den festen Bestandteilen, die nach der Extraktionskaskade
erhalten wurden, vereinigt. Diese Mischung wird unter
Zuführung von Frischwasser oder/und unter Zuführung von
Wasser, welches aus der Rektifikation wie oben beschrieben
gewonnen wird, in einem Homogenisator zu flüssigem vom
Cholesterin befreiten Flüssigeigelb vereinigt. Die
erforderliche Wassermenge liegt zwischen 20 und 80 Gew.-% der
eingesetzten Trockenmasse des eingesetzten Eirohstoffes,
insbesondere zwischen 40 und 65 Gew.-%. Optional kann dem
Homogenisator Flüssigeiweiß zugesetzt werden, um Flüssigvollei
nach der Homogenisierung zu erhalten. Alternativ kann die
Zuführung von Trockeneiweiß und Wasser erfolgen, wobei der
zusätzlich erforderliche Wasseranteil zwischen 70 und 98 Gew.-%
der eingesetzten Gesamtmenge entspricht, insbesondere
zwischen 85 und 95 Gew.-%. Die Homogenisierung erfolgt in
einem Temperaturbereich von 5°C bis 50°C, insbesondere jedoch
in einem Temperaturbereich von 10°C bis 40°C. Eine
Verarbeitungstemperatur, die unterhalb der
Verflüssigungstemperatur der eingesetzten Lipidbestandteile
liegt, sollte vermieden werden.
Die so erhaltenen und vom Cholesterin weitestgehend befreiten
Produkte in Form von Flüssigeigelb und Flüssigvollei können zu
Fertigprodukten wie z. B. Nudeln, Mayonnaise, Backwaren
Stangenei u. a. weiterverarbeitet werden oder in einer
Sprühtrocknungsanlage zu Trockeneigelb und Trockenvollei
verarbeitet werden. Der Restfeuchtegehalt des in dem Verfahren
hergestellten Trockeneigelbes liegt zwischen 2% und 6%.
In entsprechend ausgelegten Sprühtrocknungsanlagen können die
von Cholesterin befreiten Flüssigprodukte gleichzeitig
agglomeriert und/oder aromatisiert werden.
Das gesamte beschriebene erfindungsgemäße Verfahren führt zu
einem Produkt, bei dem der Gehalt des freien Cholesterins
gegenüber dem der eingesetzten Rohstoffe erheblich reduziert
ist, bevorzugt um 90% oder mehr, besonders bevorzugt um 94%
oder mehr reduziert ist.
Zur großtechnischen Durchführung des Verfahrens kann eine
Vorrichtung aus im wesentlichen handelsüblichen Bestandteilen
verwendet werden. Eine solche Vorrichtung ist in Fig. 3
schematisch dargestellt. Anhand der Fig. 3 werden im folgenden
mehrere Verfahrensweisen zur großtechnischen Durchführung des
erfindungsgemäßen Verfahrens näher erläutert.
In einer ersten Ausführungsform soll flüssiges Eigelb I von
Cholesterin befreit werden. Als Produkt soll
cholesterinreduziertes Trockeneigelb XVI erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 4 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 13, 14 und 15 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Flüssigeigelb I wird in einem temperierbaren Mischer 1 auf
eine Temperatur erwärmt, die wenig oberhalb der
Schmelztemperatur der Eifettbestandteile liegt, z. B. auf etwa
30°C. Das vorgewärmte Eigelb II wird in den ersten Mischer in
Form eines Rührkessels 2-a der Mischer-Scheider-
Gegenstromkaskade 2a-f, 3a-e gefördert. In diesem Mischer 2-a
wird desweiteren die Extraktionsmittelphase III-a des zweiten
Scheiders 3-b über das offene Ventil 12 zugeführt. Dem Mischer
2-a wird ein kontinuierlicher Strom VI-a entnommen und dem
ersten Scheider in Form einer Zentrifuge 3-a zugeführt. Dem
ersten Scheider 3-a der Mischer-Scheider-Gegenstromkaskade
werden zwei Phasen entnommen: Erstens die
Extraktionsmittelphase V-a, zweitens die Feststoffe IV-a. Die
Feststoffphase IV-a wird dem zweiten Mischer 2-b der Mischer-
Scheider-Gegenstromkaskade zugeführt. Desweiteren wird dem
Mischer 2-b die Extraktionsmittelphase III-b des dritten
Scheiders 3-c zugeführt. Die Rückführungen innerhalb der
nachfolgenden Mischer-Scheider-Kaskade erfolgt sinngemäß nach
dem Gegenstromprinzip. Die Extraktionsmittelphase V-a wird in
dem Verdampfer 23a aufkonzentriert und über das Dreiwegeventil
18 der Adsorptionssäule 4 zugeführt, welche mit einem
entsprechenden Adsorptionsmittel für Cholesterin gefüllt ist.
Der verdampfte Lösungsmittelanteil V-d gelangt zur
Rektifikationskolonne 6. Die Adsorptionssäule 4 wird mit einer
weiteren Adsorptionssäule 5 als Wechselvorlage betrieben. Der
durch Adsorption vom Cholesterin befreite Extrakt VII wird der
Rektifikationskolonne 6 zugeführt. Dem Sumpf der Kolonne
werden die Lipidbestandteile VIII entnommen. Dem Kopf der
Kolonne wird ein Wasser-Extraktionsmittelgemisch IX entnommen
und über das Dreiwegeventil 21 der zweiten
Rektifikationskolonne 7 zugeführt. Dem Kopf der zweiten
Kolonne 7 wird Extraktionsmittel mit geringem Wassergehalt X
entnommen und dem letzten Mischer 2-f der Mischer-Scheider-
Gegenstromkaskade zugeführt. Extraktionsmittelverluste werden
durch Zuspeisung von Extraktionsmittel XI aus dem
Extraktionsmittelvorratsbehälter 8 in den letzten Mischer 2-f
kompensiert. Dem Sumpf der zweiten Rektifikationskolonne 7
wird Wasser XIII entnommen.
Nach dem letzten Mischer 2-f trennt eine kontinuierlich
betriebene Zentrifuge 9 die proteinhaltigen und vom
Cholesterin befreiten Feststoffe XII von der
Extraktionsmittelphase III-e. Die Extraktionsmittelphase III-e
wird dem vorletzten Mischer 2-e zugeführt. Die Rückführungen
innerhalb der Mischer-Scheider-Kaskade erfolgt sinngemäß nach
dem Gegenstromprinzip.
Die vom Cholesterin befreiten Lipide VIII, die Proteine XII,
Wasser XIII und ein über das Dosierventil 22 einstellbarer
Frischwasseranteil XIV werden in dem Homogenisator 10
vereinigt. Das erhaltene Flüssigeigelb XV gelangt über das
variabel einstellbare Dreiwegeventil 20 in die
Sprühtrocknungsanlage 11 zur Herstellung von Trockeneigelb
XVI.
Parallel zu diesen eben ausgeführten Prozeßschritten wird die
zweite Adsorptionssäule 5 regeneriert. Dazu wird aus dem
Vorratsbehälter 14 das Elutionsmittel XVII durch das
Dreiwegeventil 19 über die Adsorptionssäule 5 geführt. Das mit
Cholesterin beladene Elutionsmittel XVIII gelangt zu der
Rektifikationskolonne 12. Dem Kopf der Kolonne wird ein
heterogenes Azeotrop IXX, welches Wasser enthält, entnommen
und mit dem Scheider 13 getrennt. Das abgetrennte
Elutionsmittel IX wird in den Vorratsbehälter 14
zurückgeführt. Das Wasser wird aus dem Prozeß ausgeschleust.
Dem Sumpf der Rektifikationskolonne 12 wird der
cholesterinangereicherte Strom XXI entnommen und dem
Kristallisator 15 zugeführt. Dies geschieht solange, bis die
Regenerierung der Adsorptionssäule 5 abgeschlossen ist.
Anschließend wird die cholesterinreiche Phase mit dem
Lösungsmittel XX versetzt und das Cholesterin durch
kontinuierliche Umlaufkühlung 17 zur Kristallisation gebracht.
Durch Filtration wird kristallines Cholesterin XXIII erhalten.
Die Mutterlauge XXII wird der Rektifikationskolonne 12
zugeführt. Dem Kopf der Kolonne wird das regenerierte
Lösungsmittel XX entnommen und dem Vorratsbehälter 16
zurückgeführt. Der Destillationsrückstand XXI kann erneut dem
Kristallisator 15 zugeführt werden, um weitere
Kristallfraktionen zu erhalten. Nach beendeter Kristallisation
kann mit der Regeneration der Säule 4 sinngemäß begonnen
werden.
In einer zweiten Ausführungsform soll flüssiges Eigelb I von
Cholesterin befreit werden. Als Produkt soll cholesterinfreies
Trockeneigelb XVI erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 1 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 12 und 15 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Flüssigeigelb I wird in den temperierbaren Mischer 1 auf eine
Temperatur erwärmt, die wenig oberhalb der Schmelztemperatur
der Eifettbestandteile liegt. Das vorgewärmte Eigelb II wird
in dem ersten Mischer 2-a in Form eines Rührkessels der
Mischer-Scheider-Quer- und Gegenstromkaskade 2a-f, 3a-e
gepumpt. In diesem Mischer 2-a wird desweiteren ein Teil des
aus dem Kopf der Rektifikationskolonne 7 über das
Einstellventil 14 entnommene Extraktionsmittel mit geringem
Wassergehalt III-f zugeführt. Das Verhältnis von Gewicht des
kontinuierlich zugeführten Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des
zugeführten Extraktionsmittels III-f beträgt 1 : 1. Dem Mischer
2-a wird der kontinuierliche Strom VI-a entnommen und dem
ersten Scheider in Form einer Zentrifuge 3-a zugeführt. Dem
ersten Scheider 3-a der Mischer-Scheider-Quer-
Gegenstromkaskade werden drei Phasen entnommen: erstens die
obere Lipidphase V-a, zweitens die Extraktionsmittelphase (V-b),
drittens die Feststoffphase IV-a. Die Feststoffphase IV-a
wird dem zweiten Mischer 2-b der verbleibenden Mischer-
Scheider-Gegenstromkaskade zugeführt. Dem Mischer 2-b wird
desweiteren die Extraktionsmittelphase III-b aus dem dritten
Scheider 3-c zugeführt. Die Rückführungen innerhalb der
nachfolgenden Mischer-Scheider-Kaskade erfolgt sinngemäß nach
dem Gegenstromprinzip. Die obere Lipidphase V-a und III-a
werden vereinigt und im Verdampfer 23a aufkonzentriert. Der
verdampfte Lösungsmittelanteil V-d gelangt zur
Rektifikationskolonne 6. Die wäßrig alkoholische
Extraktionsmittelphase V-b wird in dem Verdampfer 23
eingedampft. Der Rückstand V-c wird dem zweiten Mischer 2-b
zugeführt. Das Destillat V-e gelangt entsprechend seinem hohen
Wassergehalt als Seitenstrom in die erste
Rektifikationskolonne (6). Die vereinigten Phasen V-a und III-a
werden über das Dreiwegeventil 18 der Adsorptionssäule 4
zugeführt, welche mit einem entsprechenden Adsorptionsmittel
für Cholesterin gefüllt ist. Die Adsorptionssäule 4 wird mit
einer weiteren Adsorptionssäule (5) als Wechselvorlage
betrieben. Der durch Adsorption vom Cholesterin befreite
Extrakt VII wird der Rektifikationskolonne 6 zugeführt. Dem
Sumpf der Kolonne werden die Lipidbestandteile VIII entnommen.
Dem Kopf der Kolonne wird ein Wasser-Extraktionsmittelgemisch
IX entnommen und der zweiten Rektifikationskolonne 7
zugeführt. Dem Kopf der zweiten Kolonne 7 wird
Extraktionsmittel mit geringem Wassergehalt X entnommen. Ein
Teil dieser Phase, vermindert um den Volumenstrom III-f, wird
dem letzten Mischer 2f der Mischer-Scheider-Quer-
Gegenstromkaskade zugeführt. Extraktionsmittelverluste werden
durch Zuspeisung von Extraktionsmittel XI aus dem
Extraktionsmittelvorratsbehälter 8 in den letzten Mischer 2f
kompensiert, damit sich obig spezifiziertes Verhältnis von
[I] : [III-e] = 1 : 1 ergibt. Dem Sumpf der zweiten
Rektifikationskolonne 7 wird Wasser XIII entnommen.
Nach dem letzten Mischer 2f trennt die kontinuierlich
betriebene Zentrifuge 9 die proteinhaltigen und vom
Cholesterin befreiten Feststoffe XII von der
Extraktionsmittelphase III-e. Die Extraktionsmittelphase III-e
wird dem vorletzten Mischer 2e zugeführt. Die Rückführungen
innerhalb der Mischer-Scheider-Kaskade erfolgen bis
einschließlich zum Mischer 2b sinngemäß nach dem
Gegenstromprinzip.
Die vom Cholesterin befreiten Lipide VIII, die Proteine XII,
Wasser XIII und ein über das Dosierventil 22 einstellbarer
Frischwasseranteil XIV werden in dem Homogenisator 10
vereinigt. Das erhaltene Flüssigeigelb XV gelangt über das
variabel einstellbare Dreiwegeventil 20 in die
Sprühtrocknungsanlage 11 zur Herstellung von Trockeneigelb
XVI.
Parallel zu diesen eben ausgeführten Prozeßschritten wird die
zweite Adsorptionssäule 5 regeneriert. Dazu wird aus dem
Vorratsbehälter 14 das Elutionsmittel XVII durch das
Dreiwegeventil 19 über die Adsorptionssäule 5 geführt. Das mit
Cholesterin beladene Elutionsmittel XVIII gelangt zu der
Rektifikationskolonne 12. Dem Kopf der Kolonne wird ein
heterogenes Azeotrop IXX welches Wasser enthält entnommen und
mit dem Scheider 13 getrennt. Das abgetrennte Elutionsmittel
IX wird in den Vorratsbehälter 14 zurückgeführt. Das Wasser
wird aus dem Prozeß ausgeschleust. Dem Sumpf der
Rektifikationskolonne 12 wird der cholesterinangereicherte
Strom XXI entnommen und dem Kristallisator 15 zugeführt. Dies
geschieht solange, bis die Regenerierung der Adsorptionssäule
5 abgeschlossen ist. Anschließend wird die cholesterinreiche
Phase mit dem Lösungsmittel XX versetzt und das Cholesterin
durch kontinuierliche Umlaufkühlung 17 zur Kristallisation
gebracht. Durch Filtration wird kristallines Cholesterin XXIII
erhalten. Die Mutterlauge XXII wird der Rektifikationskolonne
12 zugeführt. Dem Kopf der Kolonne wird das regenerierte
Lösungsmittel XX entnommen und dem Vorratsbehälter 16
zurückgeführt. Der Destillationsrückstand XXI kann erneut dem
Kristallisator 15 zugeführt werden, um weitere
Kristallfraktionen zu erhalten. Nach beendeter Kristallisation
kann mit der Regeneration der Säule 4 sinngemäß begonnen
werden.
In einer dritten Ausführungsform soll Trockeneigelb I von
Cholesterin befreit werden. Als Produkt soll cholesterinfreies
Trockeneigelb XVI erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Trockeneigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 3 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 13, 14 und 15 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Förderfähiges Trockeneigelb II wird aus dem Vorratsbehälter 1
kontinuierlich in den ersten Mischer 2-a in Form eines
Rührkessels der Mischer-Scheider-Gegenstromkaskade 2a-f, 3a-e
gefördert. In diesem Mischer 2-a wird desweiteren die
Extraktionsmittelphase III-a des zweiten Scheiders 3-b
zugeführt. Dem Mischer 2-a wird der kontinuierliche Strom VI-a
entnommen und dem ersten Scheider in Form einer Zentrifuge 3-a
zugeführt. Dem ersten Scheider 3-a der Mischer-Scheider-
Gegenstromkaskade werden zwei Phasen entnommen: erstens die
Extraktionsmittelphase V-a, zweitens die Feststoffe IV-a. Die
Feststoffphase IV-a wird dem zweiten Mischer 2-b der Mischer-
Scheider-Gegenstromkaskade zugeführt. Desweiteren wird dem
Mischer 2-b die Extraktionsmittelphase III-b des dritten
Scheiders 3c zugeführt. Die Rückführungen innerhalb der
nachfolgenden Mischer-Scheider-Kaskade erfolgt sinngemäß nach
dem Gegenstromprinzip. Die Extraktionsmittelphase V-a wird in
dem Verdampfer 23a aufkonzentriert und über das Dreiwegeventil
18 der Adsorptionssäule 4 zugeführt, welche mit einem
entsprechenden Adsorptionsmittel für Cholesterin gefüllt ist.
Der verdampfte Lösungsmittelanteil V-d gelangt zur
Rektifikationskolonne 6. Die Adsorptionssäule 4 wird mit einer
weiteren Adsorptionssäule 5 als Wechselvorlage betrieben. Der
durch Adsorption vom Cholesterin befreite Extrakt VII wird der
Rektifikationskolonne 6 zugeführt. Dem Sumpf der Kolonne
werden die Lipidbestandteile VIII entnommen. Dem Kopf der
Kolonne 6 wird Extraktionsmittel mit geringem Wassergehalt IX
entnommen und unter Umgehung der Rektifikationskolonne 7 über
das Dreiwegeventil 21 dem letzten Mischer 2f der Mischer-
Scheider-Gegenstromkaskade zugeführt. Extraktionsmittel
verluste werden durch Zuspeisung von Extraktionsmittel XI aus
dem Extraktionsmittelvorratsbehälter 8 in den letzten Mischer
2f kompensiert.
Nach dem letzten Mischer 2f trennt die kontinuierlich
betriebene Zentrifuge 9 die proteinhaltigen und vom
Cholesterin befreiten Feststoffe XII von der
Extraktionsmittelphase III-e. Die Extraktionsmittelphase III-e
wird dem vorletzten Mischer 2e zugeführt. Die Rückführungen
innerhalb der Mischer-Scheider-Kaskade erfolgt sinngemäß nach
dem Gegenstromprinzip.
Die vom Cholesterin befreiten Lipide VIII, die Proteine XII,
und ein über das Dosierventil 22 einstellbarer
Frischwasseranteil XIV werden in dem Homogenisator 10
vereinigt. Das erhaltene Flüssigeigelb XV gelangt über das
variabel einstellbare Dreiwegeventil 20 in die
Sprühtrocknungsanlage 11 zur Herstellung von Trockeneigelb
XVI.
Parallel zu diesen eben ausgeführten Prozeßschritten wird die
zweite Adsorptionssäule 5 regeneriert. Dazu wird aus dem
Vorratsbehälter 14 das Elutionsmittel XVII durch das
Dreiwegeventil 19 über die Adsorptionssäule 5 geführt. Das mit
Cholesterin beladene Elutionsmittel XVIII gelangt zu der
Rektifikationskolonne 12. Dem Kopf der Kolonne wird das
Elutionsmittel IX entnommen und in den Vorratsbehälter 14
zurückgeführt. Dem Sumpf der Rektifikationskolonne 12 wird der
cholesterinangereicherte Strom XXI entnommen und dem
Kristallisator 15 zugeführt. Dies geschieht solange, bis die
Regenerierung der Adsorptionssäule 5 abgeschlossen ist.
Anschließend wird die cholesterinreiche Phase mit dem
Lösungsmittel XX versetzt und das Cholesterin durch
kontinuierliche Umlaufkühlung 17 zur Kristallisation gebracht.
Durch Filtration wird kristallines Cholesterin XXIII erhalten.
Die Mutterlauge XXII wird der Rektifikationskolonne 12
zugeführt. Dem Kopf der Kolonne wird das regenerierte
Lösungsmittel XX entnommen und dem Vorratsbehälter 16
zurückgeführt. Der Destillationsrückstand XXI kann erneut dem
Kristallisator 15 zugeführt werden, um weitere
Kristallfraktionen zu erhalten. Nach beendeter Kristallisation
kann mit der Regeneration der Säule 4 sinngemäß begonnen
werden.
In einer vierten Ausführungsform soll flüssiges Eigelb I von
Cholesterin befreit werden. Als Produkt soll cholesterinfreies
Flüssigeigelb XV erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 4 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 13 und 14 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Der Verfahrensablauf entspricht dem der ersten
Ausführungsform, jedoch wird das flüssige Produkt XV über das
Ventil 20 entnommen.
In einer fünften Ausführungsform soll flüssiges Eigelb I von
Cholesterin befreit und als Produkt cholesterinfreies
Flüssigvollei XV erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 4 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 13 und 14 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Der Verfahrensablauf entspricht dem der ersten
Ausführungsform, jedoch wird dem Homogenisator über das
regelbare Ventil 15 Flüssigeiweiß zugeführt. Das flüssige
Produkt XV wird über das Ventil 20 entnommen.
In einer sechsten Ausführungsform soll flüssiges Eigelb I von
Cholesterin befreit und als Produkt cholesterinfreies
Trockenvollei XV erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Flüssigeigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 4 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Die
Ventile 13 und 14 in Fig. 3 sind als geschlossen zu
betrachten.
Der Verfahrensablauf entspricht dem der ersten
Ausführungsform, jedoch wird dem Homogenisator 10 über das
regelbare Ventil 15 Flüssigeiweiß zugeführt. Das flüssige
Produkt XV wird zur der Sprühtrocknungsanlage 11 geführt. Das
Trockenprodukt XVI wird der Sprühtrocknungsanlage entnommen.
In einer siebten Ausführungsform soll Trockeneigelb I von
Cholesterin befreit und als Produkt cholesterinfreies
Trockenvollei XVI erhalten werden.
Das Verhältnis von Gewicht des kontinuierlich zugeführten
Trockeneigelbs I zu dem Volumen des kontinuierlich geförderten
Extraktionsmittels III-e soll 1 : 3 betragen. Der Siedepunkt des
Extraktionsmittels liegt unterhalb von dem von Wasser. Der
Verfahrensablauf entspricht dem der dritten Ausführungsform,
jedoch wird dem Homogenisator 10 über das regelbare Ventil 15
Flüssigeiweiß zugeführt. Das flüssige Produkt XV wird zur
Sprühtrocknungsanlage 11 geführt. Das Trockenprodukt XVI wird
der Sprühtrocknungsanlage entnommen.
Die folgenden Beispiele sollen die vorliegende Erfindung
weiter erläutern, ohne sie jedoch zu beschränken.
In einem temperierten Dreihalsplanflanschreaktionsgefäß,
ausgestattet mit KPG-Rührer, Thermometer, Bodenventil und
Tropftrichter, folgend als Mischer bezeichnet, wurde bei 40°C
100 g Trockeneigelb mit 150 ml 90%igem Ethanol versetzt und
bei 500 U/min gerührt.
Anschließend wurde der Ansatz bei 12000 U/min 5 min
zentrifugiert und in feste und flüssige Bestandteile
(zweiphasig) getrennt. Es wurden drei Phasen in folgender
Reihenfolge erhalten:
Die unterste Feststoffphase bestand aus Proteinen I-a. Die zweite Phase bestand aus einer wäßrig-alkoholischen Phase II-a, die wenig Fett enthielt. Die oberste Phase III-a bestand aus Eilipiden, welche wenig Ethanol enthielten. Die flüssigen Phasen II + III-a wurden in einem Scheidetrichter bei Raumtemperatur getrennt. Die obere überwiegend die Lipidbestandteile enthaltende Phase III-a (17,3 g) wurde abgetrennt. Die untere Phase II-a wurde am Rotationsverdampfer bei vermindertem Druck von 90 mbar und 50°C Badtemperatur eingedampft, und es wurde ein Rückstand IV (22,1 g) und ein Destillat V gewonnen. Der Rückstand wurde mit den Feststoffen I-a (210 g Feuchtgewicht), die aus der Zentrifugation erhalten wurden, im Mischer vereinigt.
Die unterste Feststoffphase bestand aus Proteinen I-a. Die zweite Phase bestand aus einer wäßrig-alkoholischen Phase II-a, die wenig Fett enthielt. Die oberste Phase III-a bestand aus Eilipiden, welche wenig Ethanol enthielten. Die flüssigen Phasen II + III-a wurden in einem Scheidetrichter bei Raumtemperatur getrennt. Die obere überwiegend die Lipidbestandteile enthaltende Phase III-a (17,3 g) wurde abgetrennt. Die untere Phase II-a wurde am Rotationsverdampfer bei vermindertem Druck von 90 mbar und 50°C Badtemperatur eingedampft, und es wurde ein Rückstand IV (22,1 g) und ein Destillat V gewonnen. Der Rückstand wurde mit den Feststoffen I-a (210 g Feuchtgewicht), die aus der Zentrifugation erhalten wurden, im Mischer vereinigt.
Dem Mischer wurden 400 ml Ethanol (90%) zugesetzt und 15 min
bei 40°C und 500 U/min gerührt. Danach wurde die Mischung bei
40°C und 12000 U/min 5 min zentrifugiert. Es wurden zwei
Phasen erhalten. Erstens die untere proteinhaltige
Feststoffphase I-b, zweitens die Fett enthaltende ethanolische
Phase III-b. Die Phasen wurden getrennt. Der Feststoff I-b
wurde in den Mischer zurückgeführt und erneut mit 400 ml
Ethanol (90%) versetzt und 15 min bei 40°C gerührt. Von den
Extrakten wurden Proben genommen und der Lipidgehalt bestimmt
(Tabelle 1). Von den Feststoffphasen wurden Proben entnommen und
der Cholesteringehalt bestimmt. Das Eigelbprotein war nach
sechs Extraktionen zu über 96% entfettet. Die Extrakte aus
insgesamt 6 Extraktionen III-a bis III-f, die wie oben
beschrieben erhalten wurden, wurden vereinigt. Der
verbleibende feuchte Feststoff I-f wurde bei 80 mbar und 40°C
von Lösungsmittelresten befreit. Es wurden 54,5 g eines weißen
Feststoffes erhalten. Von einer analytische Probe wurde der
Restwassergehalt zu 35% entsprechend 19,1 g Wasser in I-f
bestimmt.
Die vereinigten Extrakte wurden über eine temperierbare
druckbeständige Chromatographiesäule gegeben. Die Länge der
Säule betrug 1 m. Die Säule war mit 500 g Kieselgur gefüllt,
welches zuvor mit 35 g Digitonin belegt worden war. Dazu wurde
Digitonin in einer entsprechenden Menge Ethanol (99%) bei 50°C
gelöst, mit der entsprechenden Menge an aktiviertem Kieselgur
versetzt und am Rotationsverdampfer bis zur Trockene
eingeengt. Das so erhaltene Adsorptionsmaterial wurde in die
temperierte Chromatographiesäule gefüllt und konditioniert,
bis am Säulenausgang kein Digitonin mehr nachgewiesen werden
konnte.
Die vereinigten Extrakte III-a bis III-f wurden am
Rotationsverdampfer bei 50°C eingeengt. Es stellte sich eine
Trübung ein. Durch die Zugabe von wenig Ethanol wurde die
Mischungslücke wieder aufgehoben. Die erhaltene Lösung wurde
mit einer Dosierpumpe über die temperierte Adsorptionssäule
geleitet und mit Ethanol nachgespült bis keine Lipide mehr
eluiert wurden. Das Eluat wurde am Rotationsverdampfer vom
Lösungsmittel befreit. Es wurden 56,2 g Lipidfraktion
erhalten.
Der Cholesteringehalt der Proteine und der Lipidfraktion aller
Proben wurde gaschromatographisch bestimmt [E. Schulte,
Lebensmittelchem. Gerichtl. Chem. 1988, 42, 1-3].
Der Cholesteringehalt des gewonnenen Proteins betrug 1,1 mg/g
Protein (feucht). Für 54,5 g isoliertes Protein (feucht)
ergab sich demnach insgesamt 59,95 mg an Cholesterin.
Der Cholesteringehalt der Lipidfraktion betrug nach der
Chromatographie 1,49 mg/g. Für 56,2 g isolierte Lipide ergab
sich ein verbleibender Gehalt von 83,7 mg an Cholesterin.
Der Cholesteringehalt des eingesetzten Trockeneigelb betrug
27,2 mg/g Trockeneigelb. Für die eingesetzten 100 g also
insgesamt 2,72 g an Cholesterin.
Die gesamte entfernte Cholesterinmenge entspricht einer
Reduzierung von 94,7%.
In einem temperierten Dreihalsplanflanschreaktionsgefäß,
ausgestattet mit KPG-Rührer, Thermometer, Bodenventil und
Tropftrichter, folgend als Mischer bezeichnet, wurden bei 40°C
fünf Eidotter von frisch aufgeschlagenen Eiern von insgesamt
160 g mit 160 ml 90%igem Ethanol versetzt und bei 500 U/min
gerührt. Nach 5, 10, 20, und 40 Minuten wurden der Mischung
Proben von 9 g entnommen und in einer temperierbaren
Zentrifuge bei 40°C und 12 000 U/min 5 min aufgetrennt. Bei
allen Proben wurden drei Phasen in folgender Reihenfolge
erhalten:
Die unterste Feststoffphase bestand aus Proteinen I-a. Die zweite Phase bestand aus einer wäßrig alkoholischen Phase II-a, die wenig Fett enthielt. Die oberste Phase III-a bestand aus Eilipiden, welche wenig Ethanol enthielten. Die Flüssigphasen wurden entnommen und in einer Trübungsbestimmungsapparatur unter Rühren langsam auf geheizt. Bis zu einer Temperatur von 60°C blieb bei allen Proben die Mischungslücke bestehen. Alle Proben wurden dem Mischer zurückgeführt.
Die unterste Feststoffphase bestand aus Proteinen I-a. Die zweite Phase bestand aus einer wäßrig alkoholischen Phase II-a, die wenig Fett enthielt. Die oberste Phase III-a bestand aus Eilipiden, welche wenig Ethanol enthielten. Die Flüssigphasen wurden entnommen und in einer Trübungsbestimmungsapparatur unter Rühren langsam auf geheizt. Bis zu einer Temperatur von 60°C blieb bei allen Proben die Mischungslücke bestehen. Alle Proben wurden dem Mischer zurückgeführt.
Der komplette Ansatz wurde nach 60 min Rührzeit ebenfalls bei
12000 U/min 5 min zentrifugiert und in feste und flüssige
Bestandteile (zweiphasig) getrennt. Die flüssigen Phasen II-a + III-a
wurden in einem Scheidetrichter bei Raumtemperatur
getrennt. Die obere überwiegend die Lipidbestandteile
enthaltende Phase (20,9 g) wurde abgetrennt III-a. Die untere
Phase II-a (112,3 g) wurde am Rotationsverdampfer bei
vermindertem Druck von 90 mbar und 50°C Badtemperatur
eingedampft. Es wurde ein Rückstand IV und ein Destillat V
gewonnen. Der Rückstand wurde mit den Feststoffen (107,6 g
Feuchtgewicht), die aus der Zentrifugation erhalten wurden, im
Mischer vereinigt.
Dem Mischer wurden 200 ml Ethanol (90%) zugesetzt und es wurde
15 min bei 40°C und 500 U/min gerührt. Danach wurde die
Mischung bei 40°C und 12 000 U/min 5 min zentrifugiert. Es
wurden zwei Phasen erhalten. Erstens die untere proteinhaltige
Feststoffphase I-b, zweitens die Fett enthaltende ethanolische
Phase III-b. Die Phasen wurden getrennt. Der Feststoff I-b
wurde in den Mischer zurückgeführt und erneut mit 200 ml
Ethanol (90%) versetzt und 15 min bei 40°C gerührt. Von den
Extrakten wurden Proben genommen und der Lipidgehalt bestimmt
(Tabelle 3). Das Eigelb war nach sieben Extraktionen zu über 97%
entfettet. Die Extrakte aus insgesamt 7 Extraktionen III-a bis
III-g, die wie oben beschrieben erhalten wurden, wurden
vereinigt. Der verbleibende feuchte Feststoff I-g (71,7 g)
wurde bei 80 mbar und 40°C von Lösungsmittelresten befreit. Es
wurden 42,6 g eines weißen Feststoffes erhalten. Von einer
analytische Probe wurde der Restwassergehalt zu 38%
entsprechend 18,4 g Wasser in I-g bestimmt. Die vereinigten
Extrakte wurden am Rotationsverdampfer eingeengt und mit so
viel Ethanol versetzt, bis die Trübung verschwand. Der
aufkonzentrierte Extrakt wurde über eine temperierbare
druckbeständige Chromatographiesäule, die bereits in Beispiel 1
benutzt und danach mit Heptan/Toluol regeneriert worden war,
gegeben.
Die vereinigten Extrakte III-a bis III-g wurden am
Rotationsverdampfer bei 50°C soweit eingeengt, bis sich eine
leichte Trübung einstellte. Durch die Zugabe von wenig Ethanol
wurde die Mischungslücke wieder aufgehoben. Die erhaltene
Lösung wurde mit einer Dosierpumpe über die temperierte
Adsorptionssäule geleitet und mit Ethanol nachgespült bis
keine Lipide mehr eluiert wurden. Das Eluat wurde am
Rotationsverdampfer vom Lösungsmittel befreit. Es wurden 47,9 g
Lipidfraktion erhalten.
Der Cholesteringehalt der Proteine und der Lipidfraktion wurde
gaschromatographisch bestimmt.
Der Cholesteringehalt des gewonnenen Proteins betrug 0,98 mg/g
Protein. Für 42,6 g isoliertes Protein ergaben sich
insgesamt 41,75 mg an Cholesterin.
Der Cholesteringehalt der Lipidfraktion betrug 1,92 mg/g.
Für 47,9 g isolierte Lipidfraktion ergaben sich insgesamt
91,97 mg an Cholesterin.
Der Cholesteringehalt des eingesetzten Eigelb betrug 14,93
mg/g. Für die eingesetzten 160 g also insgesamt 2,39 g an
Cholesterin.
Die entfernte Cholesterinmenge entspricht einer Reduzierung
von 94,4%.
Die aus Beispiel 1 durch Regeneration der Adsorptionssäule
erhaltene Lösung von Cholesterin in Heptan/Toluol wurde am
Rotationsverdampfer eingeengt, mit wäßrigem Ethanol versetzt
und durch Abkühlen zur Kristallisation gebracht. In der ersten
Kristallfraktion wurden 1,42 g Cholesterin (Smp. 146-147°C)
erhalten. Die Mutterlauge wurde nochmals eingeengt und es
wurde eine zweite Kristallfraktion von 0,32 g (Smp. 144-145)
erhalten. Durch Umkristallisation der ersten Fraktion wurden
1,01 g Cholesterin (Smp. 148°C) erhalten.
- a) Herstellung von Flüssigeigelb aus den Fraktionen, die in
Beispiel 1 gewonnen wurden (Equivalentmenge zu zwei frischen
Eigelb):
10,1 g Protein mit 35% Wassergehalt sowie 12,5 g Lipide wurden mit 14,5 ml Wasser versetzt und dispergiert. - b) Herstellung von Flüssigvollei aus den Fraktionen, die in
Beispiel 2 gewonnen wurden (Equivalentmenge zu zwei frischen
Volleiern):
10,6 g Protein mit 38% Wassergehalt sowie 12,5 g Lipide wurden mit 14,0 ml Wasser und 59,2 Eiklar versetzt und dispergiert. - c) Herstellung von Schokoladenplätzchen:
Zutaten: 150 g Butter, 37,1 g Flüssigeigelb cholesterinfrei wie unter a) beschrieben, 96,3 g Flüssigvollei cholesterinfrei wie unter b) beschrieben, 2 TL Süßstofflösung, 50 g Kakaopulver, 0,2 g Salz, 140 g geriebene Mandeln, 1/2 TL Zitronenschale gerieben, 200 g Mehl.
Die Butter wurde schaumig gerührt. Flüssigeigelb cholesterinfrei sowie Flüssigvollei cholesterinfrei wurde mit dem Süßstoff verschlagen bis eine cremige Konsistenz erhalten wurde. Kakaopulver, Salz und Mandeln wurden untergerührt. In kleinen Portionen wurde das Mehl unter Rühren dazugegeben. Nach der Zugabe der Zitronenschalen wurde zu einem glatten Teig verknetet, ausgerollt und ausgestochen. Im vorgeheizten Ofen wurde bei 180°C 15 Minuten gebacken. In der Verarbeitung zeigten die cholesterinreduzierten Eiprodukte keinen Unterschied zu Frischeiprodukten. - d) Zu Testzwecken wurden die Plätzchen mit zwei frischen Eiern und zwei frischen Eigelb, aber ansonsten gleicher Rezeptur hergestellt.
Die so hergestellten Schokoladenplätzchen wurden von 10
Testpersonen verzehrt. Dazu bekamen die Personen in drei
Durchgängen, aber beliebiger Reihenfolge jeweils ein Plätzchen
nach c) und d) hergestellt, zwei nur nach c) und zwei nur nach
d) hergestellte Plätzchen. Die Testpersonen hatten die
Aufgabe, die Probe zu benennen, bei der sie einen
geschmacklichen Unterschied zu erkennen glauben. Das Ergebnis
zeigte keine Signifikanz. Vier Personen erkannten in keinem
der drei Vergleiche einen Unterschied, jeweils zwei in den
Paarungen c,c und d,d und c,d.
Claims (30)
1. Verfahren zur Herstellung von Eiprodukten mit reduziertem
Cholesteringehalt, dadurch gekennzeichnet, daß es folgende
Stufen umfaßt:
- (a) Extraktion von Eirohstoffen insbesondere von Trockeneigelb und Flüssigeigelb mit einem organischen Lösungsmittel, welches bei 20°C und 1013 hPa flüssig und mit Wasser entweder in jedem Verhältnis mischbar ist oder mindestens 30 Gew.-% an Wasser zu lösen vermag,
- (b) Entfernen des Cholesterins aus dem Extrakt durch adsorptive Chromatographie an einem geeigneten Adsorptionsmittel und anschließend Entfernen des Lösungsmittels des Extrakts,
- (c) Vereinigen der in Stufe (a) abgetrennten Bestandteile mit dem in Stufe (b) erhaltenen Produkt sowie Wasser unter Homogenisierung zu einem flüssigen Eiprodukt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei es sich bei den
Eiprodukten um Flüssigeigelb, Trockeneigelb, Flüssigvollei und
Trockenvollei handelt.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, bei dem das
Adsorptionsmittel nach der Adsorption des Cholesterins in
Stufe (b) mit einem Eluenten unter Freisetzung von Cholesterin
regeneriert wird.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, bei dem in
Schritt (c) weiterhin flüssiges und/oder trockenes Eiweiß
unter Homogenisierung zu einem flüssigen Eiprodukt zugesetzt
wird.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, bei dem das
in Stufe (c) erhaltene flüssige Eiprodukt weiter zu einem
Trockeneiprodukt sprühgetrocknet wird.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch
gekennzeichnet, daß als geeignete Lösungsmittel zur Extraktion
mindestens ein ein- oder zweiwertiger Alkohol mit einer
Kohlenstoffzahl von 1 bis 8, insbesondere von 2 bis 4,
eingesetzt wird.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß es
sich bei dem Extraktionsmittel um Ethanol handelt.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch
gekennzeichnet, daß Trockeneigelb eingesetzt wird und daß das
Verhältnis des Volumens des eingesetzten Extraktionsmittels
zum Gewicht des eingesetzten Trockeneigelbs 0,5/1 bis 20/1
insbesondere 0,8/1 bis 8/1 beträgt.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch
gekennzeichnet, daß Flüssigeigelb eingesetzt wird und daß das
Verhältnis von Volumen des eingesetzten Extraktionsmittels zum
Gewicht- des eingesetzten Flüssigeigelbs 0,5/1 bis 20/1
insbesondere 1,0/1 bis 10/1 beträgt.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9, dadurch
gekennzeichnet, daß der Wassergehalt des eingesetzten
Extraktionsmittels zwischen 0 und 30 Gew.-% liegt,
insbesondere zwischen 1 und 5 Gew.-%.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch
gekennzeichnet, daß das Extraktionsmittel durch Rektifikation
unter einem solchen Druck zurückgewonnen wird, der zu einem
Siedepunkt am Kopf der Kolonne zwischen 20° und 80°C führt.
12. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 11, dadurch
gekennzeichnet, daß die Extraktion mehrstufig in einer
Querstromextraktion und/oder Gegenstromextraktion durchgeführt
wird.
13. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, daß
die Extraktion mehrstufig durch Verkettung einer
Querstromextraktion und einer Gegenstromextraktion so
durchgeführt wird, daß eine oder mehrere
Querstromextraktionsstufen einer oder mehreren
Gegenstromextraktionsstufen vorgeschaltet werden.
14. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 13, dadurch
gekennzeichnet, daß die Extraktion durch einzelne Mischer-
Scheider-Extraktionsstufen und/oder in Form eines
Hildebrandextraktors, eines Bonottoextraktors oder eines
Kennedyextraktors aufgebaut ist.
15. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, daß bei vorgegebener Arbeitstemperatur
innerhalb einer Gegenstromextraktion ein Verhältnis des
Gewichts des eingesetzten Eirohstoffes zum Gewicht des
eingesetzten Extraktionsmittels so gewählt wird, daß man im
Dreikomponenten-Zweiphasendiagramm von Eilipiden, Wasser und
organischem Lösungsmittel, außerhalb der Mischungslücke also
oberhalb der kritischen Phasentemperatur liegt.
16. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 15, dadurch
gekennzeichnet, daß bei vorgegebener Arbeitstemperatur
innerhalb einer Querstromextraktion ein Verhältnis des
Gewichts des eingesetzten Eirohstoffes zum Gewicht des
eingesetzten Extraktionsmittels so gewählt wird, daß man im
Dreikomponenten-Zweiphasendiagramm von Eilipiden, Wasser und
organischem Lösungsmittel innerhalb der Mischungslücke also
unterhalb der kritischen Phasentemperatur liegt und die sich
abscheidende Lipidphase die spezifisch leichteste darstellt.
17. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 16, dadurch
gekennzeichnet, daß das Extraktionsmittel, welches die
Lipid/Cholesterin-Fraktion enthält, durch adsorptive
Chromatographie an einem festen Adsorptionsmittel von
Cholesterin befreit wird.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 17, dadurch
gekennzeichnet, daß das Adsorptionsmittel aus einem
anorganischen Trägermaterial auf der Basis von SiO2 besteht.
19. Verfahren nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß
das anorganische Trägermaterial auf der Basis von SiO2 ein
natürlich vorkommendes Sediment der allgemeinen Formel
SiO2.nH2O mit 0,1<n<0,45 ist und das Sediment einen amorphen
Opalanteil von 70 bis 90% und einen durch Calcination
entstandenen Cristobalitanteil enthalten kann und durch
Belegung mit Saponinen funktionalisiert ist.
20. Verfahren nach Anspruch 19, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei den Saponinen um solche handelt, die mit
Steroidalkoholen, die eine Hydroxygruppe in 3β-Position
besitzen, in dem Extraktionsmittel Komplexverbindungen bilden.
21. Verfahren nach Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Saponin um Digitonin mit der Summenformel
C56H92O29 handelt.
22. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 21, dadurch
gekennzeichnet, daß das Elutionsmittel für das
Adsorptionsmittel einen geradkettigen und/oder verzweigten
Kohlenwasserstoff der allgemeinen Formel CnH2n+2, wobei 4<n<12
ist, enthält.
23. Verfahren nach Anspruch 22, dadurch gekennzeichnet, daß
das Elutionsmittel zusätzlich mindestens eine aromatische
Komponente enthält.
24. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 23, dadurch
gekennzeichnet, daß das Extraktionsmittel und das
Elutionsmittel durch Rektifikation aufbereitet und dem Prozeß
wieder zugeführt werden.
25. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 24, dadurch
gekennzeichnet, daß die vom Cholesterin und vom organischen
Lösungsmittel befreiten festen Bestandteile der Extraktion
unter Zuführung von Wasser und den vom Cholesterin und
Lösungsmittel befreiten Extrakt sowie eventuell weiterer
Eiprodukte, insbesondere Flüssigeiweiß und/oder Trockeneiweiß,
vereinigt und in einem Temperaturbereich zwischen 5°C und
50°C, insbesondere zwischen 10°C und 40°C, homogenisiert
werden.
26. Cholesterinreduziertes Eiprodukt erhältlich nach einem
Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 25.
27. Eiprodukt nach Anspruch 26, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich um Trockeneigelb, Trockenvollei, Flüssigeigelb oder
Flüssigvollei mit einem um über 90% reduzierten
Cholesteringehalt handelt.
28. Eiprodukt nach Anspruch 27, dadurch gekennzeichnet, daß
der Cholesteringehalt um über 94% reduziert ist.
29. Verwendung eines Eiprodukts nach einem der Ansprüche 26
bis 28 zur Verarbeitung in lebensmitteltechnischen Anlagen.
30. Vorrichtung zur Herstellung von cholesterinreduzierten
Eiprodukten mit einer Mischer-Scheider-Gegenstromkaskade (2a-2f,
3a-3e), zumindest zwei Adsorptionssäulen (4) und (5) und
einem Homogenisator (10).
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| DE19820032A DE19820032A1 (de) | 1998-05-05 | 1998-05-05 | Eiprodukte mit stark reduziertem Cholesteringehalt und Verfahren zu deren Herstellung |
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| DE19820032A DE19820032A1 (de) | 1998-05-05 | 1998-05-05 | Eiprodukte mit stark reduziertem Cholesteringehalt und Verfahren zu deren Herstellung |
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|---|---|
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| WO (1) | WO1999056565A1 (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2003009693A3 (en) * | 2001-07-23 | 2003-04-10 | Canadian Inovatech Inc | Egg concentrate product and methods for making and utilizing the same |
| CN103766837A (zh) * | 2014-01-02 | 2014-05-07 | 马帅 | 一种烤肉用配料 |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6630181B1 (en) | 2000-09-20 | 2003-10-07 | Dupont Specialty Grains | Method of reducing cholesterol and altering fatty acid content of eggs |
| DE10322564A1 (de) * | 2003-05-20 | 2004-12-09 | Degussa Ag | Verfahren zur selektiven Abtrennung von Wertstoffen |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3563765A (en) * | 1967-08-31 | 1971-02-16 | Cpc International Inc | Low cholesterol dried egg yolk and process |
| CA1064907A (en) * | 1976-11-19 | 1979-10-23 | Alexander G. Fallis | Cholesterol separation process |
| DE3928258A1 (de) * | 1989-08-26 | 1991-02-28 | Sueddeutsche Kalkstickstoff | Verfahren zur entfernung von cholesterin bzw. cholesterinestern aus eigelb |
| DE4139398C1 (de) * | 1991-11-29 | 1993-01-14 | Siegfried Prof. Dr. 8525 Uttenreuth De Peter |
-
1998
- 1998-05-05 DE DE19820032A patent/DE19820032A1/de not_active Withdrawn
-
1999
- 1999-05-04 EP EP99922166A patent/EP1077617A1/de not_active Withdrawn
- 1999-05-04 WO PCT/EP1999/003027 patent/WO1999056565A1/de not_active Ceased
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| JP 05168434 A, ref. in Derw. Abstr. 93-247535/31 * |
| JP 05171177 A, ref. in Derw. Abstr. 93-253051/32 * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2003009693A3 (en) * | 2001-07-23 | 2003-04-10 | Canadian Inovatech Inc | Egg concentrate product and methods for making and utilizing the same |
| CN103766837A (zh) * | 2014-01-02 | 2014-05-07 | 马帅 | 一种烤肉用配料 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP1077617A1 (de) | 2001-02-28 |
| WO1999056565A1 (de) | 1999-11-11 |
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