DE19816894C1 - SREBP-2-defiziente Zellinien - Google Patents
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Abstract
Die Erfindung betrifft SREBP(sterol regulatory element binding protein)-2-negative eukaryotische Zellinien, die Verwendung dieser Zellinien zum Durchmustern und Testen von Substanzen sowie Arzneimittel zur Behandlung oder Vorbeugung von z. B. Hypercholesterinämie, Arteriosklerose oder koronarer Herzerkrankung.
Description
Die Erfindung betrifft SREBP (sterol regulatory element binding protein)-2-negative
eukaryotische Zellinien, die Verwendung dieser Zellinien zum Durchmustern und Testen von
Substanzen sowie Arzneimittel zur Behandlung oder Vorbeugung von z. B.
Hypercholesterinämie, Arteriosklerose oder koronarer Herzerkrankung.
Cholesterin ist ein essentieller Bestandteil der Zellmembran und Ausgangsverbindung für die
Synthese von Steroidhormonen und Gallensäuren. Es ist lebenswichtig, obwohl die
Cholesterinablagerung in Arterien mit ihren Komplikationen (z. B. Herzinfarkt, Schlaganfall),
die häufigste Todesursache beim Menschen ist.
Zahlreiche Studien haben gezeigt, daß Veränderungen des zellulären Cholesterinstoffwechsels
bei der Entstehung der Arteriosklerose bzw. koronaren Herzerkrankung eine bedeutende Rolle
spielen. Erst kürzlich konnten umfangreiche Studien an weit über 20.000 Patienten zeigen,
daß die medikamentöse Senkung des Cholesterins im Blut durch (medikamentös verabreichte)
Cholesterinsynthesehemmer die kardiovaskuläre Letalität sowie Gesamtsterblichkeit signifikant
reduziert.
Die Zellen decken ihren Bedarf an Cholesterin bevorzugt durch die Aufnahme von LDL-
Cholesterin aus dem Blutplasma. Da Cholesterin wasserunlöslich ist, muß es für den Transport
im Blutplasma in eine wasserlösliche Transportform gebracht werden. Zu diesen Zweck stehen
dem Organismus verschiedene Lipidproteinkomplexe (auch Lipoproteine genannt) zur
Verfügung, die als VLDL (Very Low Density Lipoproteins), IDL (Intermediate Density
Lipoproteins), LDL (Low Density Lipoproteins) und HDL (High Density Lipoproteins)
bezeichnet werden.
Das LDL-Cholesterin wird von den Zellen vorwiegend über den LDL-Rezeptor, der auf der
Oberfläche vieler Zellen sitzt, in das Zellinnere mittels Endocytose eingeschleust. Das im LDL
gebundene Cholesterin wird in der Zelle zu freiem Cholesterin abgebaut. Das freie Cholesterin
bewirkt daraufhin die Reduzierung der Cholesterinbiosynthese über die Hemmung der Aktivität
Hydroxymethylglutaryl-CoA-Reduktase (HMG-CoA-Reduktase), dem Schlüsselenzym der
Cholesterinbiosynthese. Gleichzeitig hemmt freies Cholesterin die Expression des HMG-CoA-
Reduktasegens als auch die Expression des LDL-Rezeptorgens. Wird die Zelle mit genügend
LDL versorgt, wird sowohl weniger Cholesterin synthetisiert als auch weniger LDL-Rezeptor
exprimiert. Die Konzentration des LDL und somit des Cholesterins im Blutplasma wird also
vor allem durch die Aktivität des LDL-Rezeptors und der HMG-CoA-Reduktase reguliert.
Im Promotorbereich des LDL-Rezeptorgens gibt es ein Sterol-reguliertes cis-Element (sre-1;
sterol regulatory element-1), welches zu potentiellen Bindungsstellen für den
Transkriptionsfaktor SP1 benachbart ist. Zwei Transkriptionsfaktoren sind isoliert worden
(SREBP-1 und -2), die an sre-1 binden; vgl. X. Wang et al. Cell 77: 53-62 (1994); J. Sakai et
al. Cell 85: 1037-1046 (1996). "Sterol regulatory element binding proteins" (SREBP-1 und
SREBP-2) sind Cholesterin-sensitive Transkriptionsfaktoren, die als Vorläufer-Protein von ca.
120 kDa im rauhen endoplasmatischen Retikulum lokalisiert sind und zur Familie der bHLH-
Zip (basic Helix Loop Helix Leucine Zipper)-Proteine gehören. Durch Reduktion der
intrazellulären Konzentration von Sterolen kommt es zur Aktivierung einer spezifischen
Protease, die den ca. 68 kDa aminoterminalen transkriptionsaktiven Proteinteil abspaltet; vgl.
G. P. Gasic Cell 77: 17-19 (1994). Der N-Terminus von SREBP wandert dann auf bisher
unbekannte Weise in den Zellkern. bHLH-Zip-Proteine entfalten ihre
transkriptionsregulierende Wirkung, indem sie als Homo- oder Heterodimere an die DNA
binden. Dimerisierungspartner sind bisher bei den SREBPs nicht identifiziert
worden. Verschiedene Gene sind identifiziert worden, die durch SREBPs reguliert werden.
Unter allen Risikoparametern einer Arteriosklerose bzw. koronaren Herzerkrankung erwies
sich LDL-Cholesterin mit dem höchsten prädiktiven Wert, obgleich sich zeigt, daß bei
gegebenem LDL-Spiegel zwar eine erhebliche Variabilität des Risikos in Abhängigkeit von der
sonstigen Risikofaktorenbelastung besteht. Ist die LDL-Cholesterin-Konzentration im
Blutplasma erhöht, führt dies zu einer erhöhten Aufnahme von LDL-Cholesterin in die Zellen
der Blutgefäße, wodurch sich Gefäßverengungen und instabile Plaques (Ablagerungen) bilden,
die schließlich zu dem erhöhten koronaren Herzerkrankungsrisiko führen.
Neben der durch eine fettreiche Nahrung bedingten erhöhten LDL-Konzentration können
weitere Ursachen für eine krankhaft bedingte erhöhte LDL-Konzentration (Hyperlipidämie,
Hypercholesterinämie) im Blutplasma verantwortlich sein. Man unterscheidet bei der letzteren
zwischen primärer und sekundärer Hyperlipidämie. Die sekundäre Hypercholesterinämie tritt
bei Hypothyreose und Erkrankungen der Niere, Bauchspeicheldrüse oder Leber auf und wird
nur in Ausnahmefällen mit Arzneimitteln behandelt, die den Stoffwechsel beeinflussen, da sie
sich durch Therapie der Grundkrankheit bessern lassen. Den primären Hyperlipidämien liegen
dagegen mono- und polygenetisch vererbte Defekte zugrunde. Die häufigste monogenetisch
vererbte Hyperlipidämie ist die familiäre Hypercholesterinämie (FH), der eine
Funktionsstörung des LDL-Rezeptors zugrunde liegt.
Die Hypercholesterinämien werden derzeit vorwiegend durch die Verabreichung von HMG-
CoA-Reduktasehemmern, Ionenaustauscher oder u. a. auch Nikotinsäurederivaten behandelt.
Die Therapie der ersten Wahl sind derzeit die HMG-CoA-Reduktase- bzw.
Cholesterinsynthesehemmer. Ein Nachteil der Therapie mit HMG-CoA-Reduktasehemmern
sowie auch Ionenaustauschern besteht darin, daß sie von der Expression des LDL-Rezeptors
abhängig ist. Dementsprechend ist der Effekt bei Patienten mit Defekten in der Expression des
LDL-Rezeptors bzw. seiner Strukturveränderung auch nicht vorhanden.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, Zellinien bereitzustellen, die zum Auffinden von
Arzneimitteln zur Vorbeugung oder Behandlung von z. B. Hypercholesterinämie,
Arteriosklerose oder koronarer Herzerkrankung verwendet werden. Der Erfindung liegt feiner
die Aufgabe zugrunde, Arzneimittel zur Vorbeugung oder Behandlung von
- - Arteriosklerose mit ihren Komplikationen, z. B. Schlaganfall, koronare Herzerkrankung, periphere arteriellen Verschlußkrankheit
- - kardiovaskulären Risikofaktoren, z. B. Glukoseintoleranz oder Diabetes mellitus, arterielle Hypertonie, Adipositas, Fettstoffwechselstörungen
- - genetischen Lebererkrankungen, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert werden können, z. B. genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-Mangel
- - Alzheimersche Erkrankung bzw. neurodegenerative Störungen
bereitzustellen.
Diese Aufgaben werden erfindungsgemäß durch den Gegenstand der Patentansprüche 1 bis 12
gelöst.
Ein erster Aspekt der Erfindung betrifft eine eukaryotische Zellinie, dadurch gekennzeichnet,
daß ein Polypeptid reduziert exprimiert wird, das von der Nucleinsäuresequenz aufgeführt in
SEQ ID NO: 1 (SREBP-2) codiert wird. Ferner ist die eukaryotische Zellinie bevorzugt
dadurch gekennzeichnet, daß eine stabil ins Genom der Zellinie integrierte
Nucleinsäuresequenz, umfassend die Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1
und einen Promotor, an dem die Transkription der
Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 initiiert
wird, so transkribiert wird, daß eine Antisense-RNA zur endogenen Nucleinsäuresequenz
aufgeführt in SEQ ID NO: 1 transkribiert wird und kein von der endogenen
Nucleinsäuresequenz codiertes Polypeptid exprimiert wird. Dem Fachmann ist bewußt, daß zur
Integration einer Nucleinsäure sowohl der Sense- als auch der komplementäre Antisense-
Strang verwendet werden müssen. Daher umfaßt die in SEQ ID NO: 1 aufgeführte
Nucleinsäuresequenz beide Stränge. Besonders bevorzugt ist eine humane Zellinie.
Insbesondere bevorzugt ist eine Leberzellinie.
In einer Ausführungsform wird die eukaryotische Zellinie zur Durchmusterung und zum Testen
von Substanzen bereitgestellt, die zur Behandlung oder Vorbeugung von Arteriosklerose mit
ihren Komplikationen, z. B. Schlaganfall, koronare Herzerkrankung, periphere arteriellen
Verschlußkrankheit, kardiovaskulären Risikofaktoren, z. B. Glukoseintoleranz oder Diabetes
mellitus, arterielle Hypertonie, Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetischen
Lebererkrankungen, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert
werden können, z. B. genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-Mangel, Alzheimersche
Erkrankung oder neurodegenrative Störungen verwendet werden können.
Zum Testen von Substanzen werden grundsätzlich folgende Schritte, die z. B. dazu beitragen
sollen, neue Cholesterin-regulierte Gene oder solche, die via SREBPs wirken bzw. durch
letztere in ihrer Wirkung modifiziert werden, zu identifizieren. Die Zellen werden in An- und
oder Abwesenheit von Cholesterin inkubiert und dann über einen Zeitraum mit einer
Konzentration der vorstellend angeführten Substanzen inkubiert. Danach wird die Expression
verschiedener Gene (z. B. "differential display"/PCR-SelectTM/Substraktions-Banken oder
relative Promotoraktivität definierter Gene mittels Reportergen-Analysen) oder die Wirkung
auf vorher definierte Endpunkte, wie z. B. Expression oder Promotoraktivität des LDL-
Rezeptors, analysiert.
In einer weiteren Ausführungsform wird die Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID
NO: 1 oder eines Fragments davon zur Herstellung einer Zellinie verwendet, die ein Polypeptid
reduziert exprimiert, das von der Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 codiert
wird.
Ein weiterer Aspekt der Erfindung betrifft eine Antisense-Nucleinsäure der
Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 als
Arzneimittel. Bevorzugt ist die Verwendung einer Antisense-Nucleinsäure der
Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 zur
Herstellung eines Arzneimittels zur Vorbeugung oder Behandlung von Arteriosklerose mit
ihren Komplikationen, z. B. Schlaganfall, koronare Herzerkrankung, periphere arteriellen
Verschlußkrankheit, kardiovaskulären Risikofaktoren, z. B. Glukoseintoleranz oder Diabetes
mellitus, arterielle Hypertonie, Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetischen
Lebererkrankungen, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert
werden können, z. B. genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-Mangel, Alzheimersche
Erkrankung oder neurodegenrative Störungen. Besonders bevorzugt ist die Verwendung der
Antisense-Nucleinsäure in Kombination mit Cholesterinsynthese-Hemmern.
Eine weitere Ausführungsform betrifft die Verwendung der Nucleinsäuresequenz wie
aufgeführt in SEQ ID NO: 1 als Arbeitsmittel zur somatischen
Gentherapie. Bevorzugt ist die Verwendung der Nucleinsäuresequenz bei der somatischen
Gentherapie zur Behandlung von Arteriosklerose mit ihren Komplikationen, z. B. Schlaganfall,
koronare Herzerkrankung, periphere arteriellen Verschlußkrankheit, kardiovaskulären
Risikofaktoren, z. B. Glukoseintoleranz oder Diabetes mellitus, arterielle Hypertonie,
Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetischen Lebererkrankungen, die durch die
Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert werden können, z. B. genetische
Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-Mangel, Alzheimersche Erkrankung oder neurodegenrative
Störungen.
Die Erfindung wird weiter durch die folgenden Zeichnungen erläutert.
In Fig. 1 sind schematisch Promotor-Reportergen-Konstrukte des LDLR und ihre relative
Promotoraktivität dargestellt. HepG2-Zellen wurden mittels Lipofektion mit verschiedenen 5'
deletierten bzw. mutierten Konstrukten transient transfiziert. Vor der Ernte wurden die Zellen
für 16 h in Serum mit 0,5% LPDS kultiviert und anschließend entweder uninduziert (SF) oder
4 h mit 10-7 M Insulin bzw. 3,3 × 10-10 M PDGF stimmuliert. Die Promotoraktivität wird durch
die Luziferaseaktivität, die im Zellextrakt gemessen wurde, repräsentiert. Die
Luziferaseaktivität wurde mittels Cotransfektion auf die Transfektioneffizienz hin korrigiert.
Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD, n = 4) vier verschiedener Bestimmungen, die jeweils in
Dreifachbestimmungen durchgeführt wurden. Die cis-Elemente für die Transcriptionfaktoren
SP1 (sp1), SREBP-1 bzw. -2 (sre-1) sowie für die RNA-Polymerase (tata) wie auch der
Transcriptionsstartpunkt (TS) sind eingezeichnet.
In Fig. 2 ist schematisch die LDL-Rezeptor-Promotoraktivität (phLDL4) in SREBP1 (-)
sowie SREBP2 (-)- Zellen dargestellt. HepG2 und SREBP1 (-) sowie SREBP2 (-)- Zellen
wurden mit dem Promotor-Konstrukt phLDL4 transient transfiziert. Vor der Ernte wurden die
Zellen für 16 h in Serum mit 0,5% LPDS kultiviert und anschließend entweder uninduziert
(SF) oder 4 h mit 10-7 M Insulin, 10-8 M IGF-1, 1,5 × 10-15 M EGF oder 3,3 × 10-10 M PDGF
stimmuliert. Die Promotoraktivität wird durch die Luziferaseaktivität, die im Zellextrakt
gemessen wurde, repräsentiert. Die Luziferaseaktivität wurde mittels Cotransfektion auf die
Transfektioneffizienz hin korrigiert. Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD, n = 4) vier
verschiedener Bestimmungen, die jeweils in Dreifachbestimmungen durchgeführt wurden.
In Fig. 3 ist schematisch der Einfluß spezifischer Inhibitoren auf die Wirkung von Insulin
bzw. PDGF auf den LDLR dargestellt. HepG2 Zellen wurden mit dem Promotor-Konstrukt
phLDL4 transient transfiziert. Vor der Ernte wurden die Zellen für 16 h in Serum mit 0,5%
LPDS kultiviert und anschließend entweder uninduziert (SF) oder 4 h mit 10-7 M Insulin oder
3,3 × 10-10 M PDGF mit und ohne Inhibitoren (75 µM PD98056 bzw. 50 nM Wortmaimin)
stimmuliert. Die Promotoraktivität wird durch die Luziferaseaktivität, die im Zellextrakt
gemessen wurde, repräsentiert. Die Luziferaseaktivität wurde mittels Cotransfektion auf die
Transfektioneffizienz hin korrigiert. Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD, n = 4) vier
verschiedener Bestimmungen, die jeweils in Dreifachbestimmungen durchgeführt wurden.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung. Die Beispiele sind nicht einschränkend
aufzufassen.
Bei Methoden ohne Referenzangaben handelt es sich um Standardmethoden, die nach
Sambrook (Sambrook et al., 1987) durchgeführt wurden.
Die Aminosäuren bzw. Nukleotidsequenz der SREBPs ist bekannt; vgl. X. Wang et al. Cell 77:
53-62 (1994); J. Sakai et al. Cell 85: 1037-1046 (1996). Zur Klonierung der SREBPs in
unserem Labor wurde RNA aus HeLa-Zellen isoliert. Die Nukleotidsequenz, die für den N-
Terminus (Aminosäure 1 bis 460) von SREBP-1a kodiert, wurde nach reverser Transkription
von 1 µg RNA mit den Primern SREBP-1a(NT1) sowie SREBP-1a(NT2) mittels PCR
amplifiziert und dann in die BamHI/EcoRI-Schnittstelle des Klonierungsvektors pUC19
kloniert. Entsprechend wurde der N-Terminus (Aminosäure 1 bis 468) von SREBP-2 nach
Amplifikation mit den Primern SREBP-2(NT1) sowie SREBP-2(NT2) kloniert. Das N-
terminale Ende von SREBP-1c wurde durch Modifikation des SREBP-1a Klons erreicht. Der
Vektor, der SREBP-1a enthält, wurde mit BamHI und HgaI (Nukleotid 230) geschnitten.
Dann wurde hierauf mit den Primern SREBP-1c(NT1) sowie SREBP-1a(NT2) eine PCR
durchgeführt, um SREBP-1c zu erhalten. Die Nukleotidsequenzen wurden mittels DNA-
Sequenzierung verifiziert.
Oligonukleotide wurden nach der Festphasen-Phosphoamidit-Methode mit dem Pharmacia
Gene Assembler und Chemikalien der gleichen Firma erstellt. Die Oligonukleotide wurden über
Nacht mit NH4OHkonz. vom Säulenmaterial entkoppelt, das Säulenmaterial durch Zentrifugation
(15000 xg; 2 min; Raumtemperatur (RT)) entfernt und der Überstand im Vakuum (1 h)
konzentriert. Die Oligonukleotide wurden mit 1/10 Vol. NaAc pH 4,0 und 3 Vol. EtOHabs. 30
min bei -20°C gefällt, zentrifugiert (15000 xg; 15 min; 4°C;) und m 100 µl H2Obidest.
resuspendiert. Die Konzentration wurde photometrisch bestimmt (OD260 × Verdünnung × 50 ×
Bp-1 × MG-1 = µmol/ml). Für die Erstellung der spezifischen cDNA-Fragmente wurden
folgende Oligonukleotide konstruiert.
1 µg Hela Gesamt-RNA wurde mit H2Obidest. 5 min bei 70°C hitzedenaturiert. Anschließend
wurde dNTP-Mix (0,5 mM), pd(N)6-Primer (0,2 µg), Mu-MLVRT (200 U) und 1x reverse
Transkriptasepuffer (50 mM Tris/HCl; 40 mM KCl; 1 mM DTT; 6 mM MgCl2; 0,1 mg/ml
BSA; pH 8,3) zugegeben und die Synthese für 1 h bei 37°C durchgeführt.
Zu 10 µl des Erst-Strang-Synthese Ansatzes wurde 1 × PCR-Puffer (10 mM Tris/HCl; 50 mM
KCl; 0,1 mg/ml BSA pH 8,3), MgCl2 (1,5 mM), dNTP-Mix (0,2 mM), 3' Primer (0,1 µM), 5'
Primer (0,1 µM) und 1,25 U Taq-Polymerase addiert. Die PCR wurde in einem
Probenvolumen von 100 µl durchgeführt; als Verdunstungsschutz wurde Mineralöl eingesetzt.
Zur Herstellung der SREBP-cDNA wurde in 32 Zyklen (94°C 1 min; 60°C 2 min; 72°C 3 min)
amplifiziert und ein Elongationsschritt (72°C, 7 min) angeschlossen.
Die Herstellung von SREBP-1-defizienten Zellen ist beschrieben; vgl. Streicher et al, 1996, J.
Biol. Chem. 271, 7128-7133. Entsprechend wurden HepG2-Zellen hergestellt, die defizient für
SREBP-2 sind. Für die Herstellung von SREBP-2-defizienten Zellen wurde mit den Primren
SREBP-2(anti1) sowie SREBP-2(anti2) mittels PCR ein cDNA-Fragment von einer Länge von
421 bp generiert; als Matrize diente die cDNA der N-Terminalen Domäne von SREBP-2
(s. o.). Dieses Fragment wurde so in einen Expressionsvektor (pcDNA3) kloniert, daß SREBP-
2-Antisense RNA exprimiert wird (beschrieben für SREBP-1). Dieses Antisense-Konstrukt ist
komplementär der SREBP-2-spezifischen Nukleotidsequenz 257 bis 678.
Für die Erstellung des spezifischen cDNA-Fragment wurden folgende Oligonukleotide
konstruiert.
Die HepG2-Zellen (Knowles et al., 1980, Science 209, 497-499) wurden entweder wie mit der
bereits beschriebenen Methode oder durch Elektroporation transfiziert. Bei der
Elektroporation wurden die Zellen als Monolayer in RPMI-1640 (Sigma, Deutschland)
komplementiert mit 10% (v/v) FCS (Gibco, Deutschland) und Antibiotika (Sigma,
Deutschland, A9909, 1%-Lösung) kultiviert. Vor Elektroporation wurden die Zellen
trypsiniert und gewaschen und in Opti-MEM (Gibco, Deutschland) suspendiert. Die
Zellsuspensionen (2 × 105-Zellen pro well) wurden mit den entsprechenden nachstellenden
Vektoren vermischt. Diese Proben wurden dann in einer Elektroporationscuvette
(Interelektrode Distanz 0,4 cm) transferiert und für 18 msek. gepulst. Bevor diese gepulsten
Zellsuspensionen auf Sechslochplatten ausgesät worden waren, wurden sie im o. a.
Zellkulturmedium verdünnt. Für die Experimente mit den exogenen Stimuli, wie z. B. Hormone
oder Wachstumsfaktoren, wurden die Zellen vor der Ernte zunächst für 16 Stunden auf
serumfrei gezüchtet und dann für weitere 4 Std. inkubiert. Die Luziferaseaktivität wurde
entsprechend des Herstellers (Promega, Deutschland) bestimmt. Die Transfektionseffizienz
wurde durch gleichzeitige Kotransfektion mit dem β-Galaktosidase-Expressionsvektor
pSVβGal kontrolliert. Die β-Galaktosidase-Aktivität wurde durch den Galaktolight-assay
(Tropix) nach den Angaben des Herstellers bestimmt. Die Daten zeigen die relative
Luziferaseaktivität als x-fache Induktion, bedingt durch entweder endogene oder exogene
Stimulation im Vergleich zu unstimulierten Zellen.
Die Expressionsvektoren (Stratagene), die regulative Domänen von Transkriptionsfaktoren,
fusioniert zu heterologen DNA-Bindungsdomäne von Gal-4 (Aminosäure 1-147) unter
Kontrolle eines MLV-Promotor enthalten, wurden zur Herstellung von Konstrukten mit den
entsprechenden N-terminalen Domänen (s. o.) der SREBPs im offenen Leseraster (hierzu
wurden die Vektoren mit BamHI/EcoRI subklonierten Fragmenten mit BamHI aufgeschnitten,
aufgefüllt und "blunt-end in-frame" religiert) erstellt. Zur Bestimmung der Transaktivierung
des Reporterplasmids wurde das Luziferasegen genommen, welches unter der Kontrolle von 5
Gal-4-bindenden Elementen steht (Stratagene, Deutschland).
Neuere Ergebnisse zeigen, daß Insulin die Aktivität des LDL-Rezeptors (LDLR) selbst unter
substratreprimierten Konditionen induziert (5). Durch transiente Transfektionsexperimente mit
5'-deletierten und mutierten Promotorkonstrukten des LDLR konnte das cis-Element sre-1 als
das Insulin-sensitive Element im LDLR-Promotor identifiziert werden (Fig. 1).
HepG2-Zellen wurden mittels Lipofektion mit verschiedenen 5' deletierten bzw. mutierten
Konstrukten transient transfiziert. Vor der Ernte wurden die Zellen für 16 h in Serum mit 0,5
% LPDS kultiviert und anschließend entweder uninduziert (SF) oder 4 h mit 10-7 M Insulin
bzw. 3,3 × 10-10 M PDGF stimmuliert. Die Promotoraktivität wird durch die Luziferaseaktivität,
die im Zellextrakt gemessen wurde, repräsentiert. Die Luziferaseaktivität wurde mittels
Cotransfektion auf die Transfektioneffizienz hin korrigiert. Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD,
n = 4) vier verschiedener Bestimmungen, die jeweils in Dreifachbestimmungen durchgeführt
wurden. Die cis-Elemente für die Transcriptionfaktoren SP1 (sp1), SREBP-1 bzw. -2 (sre-1)
sowie für die RNA-Polymerase (tata) wie auch der Transcriptionsstartpunkt (TS) sind
eingezeichnet.
Um die Notwendigkeit von SREBP-1 in der Hormoninduzierten Transkriptionsaktivierung
des LDLR weiter zu charakterisieren, wurden mittels stabiler Transfektion von pcSREBP-1(-)
HepG2-Zellen generiert, deren Gehalt an SREBP-1 deutlich vermindert ist (SREBP-1(-)-
Zellen). Eine transiente Transfektion dieser Zellen mit dem Promotorkonstrukt phLDL4 zeigte,
daß der Transkriptions-aktivierende Effekt von Insulin respektive IGF-1 im Vergleich zu
mock-transfizierten HepG2-Zellen aufgehoben war. Interessanterweise ist in SREBP-1(-)-
Zellen auch die stimmulierende Wirkung von PDGF sowie EGF deutlich reduziert (Fig. 2). Die
Regulation der sre-1 vermittelten Transkriptionsaktivierung scheint spezifisch von SREBP-1
mediiert zu werden. Ob dieser Effekt durch eine Homo- oder Heterodimerisierung von
SREBP-1, eventuell mit SREBP-2, hervorgerufen wird, und welchen Einfluß Hormone in
verschiedenen Geweben auf diese Protein-Protein Interaktion hat, wurde weiter untersucht. In
Erweiterung zu den Experimenten mit SREBP-1 wurden durch stabile Transfektion mit
pcSREBP-2(-) SREBP-2 defiziente HepG2-Zellen etabliert. Die transiente Transfektion dieser
Zellen mit dem Promotorkonstrukt phLDL4 zeigte, daß die Transkriptionsaktivierung durch
Insulin, IGF-1, PDGF sowie EGF im Vergleich zu mock-transfizierten HepG2-Zellen ebenfalls
deutlich reduziert ist (Fig. 2).
HepG2 und SREBP1 (-) sowie SREBP2 (-)- Zellen wurden mit dem Promotor-Konstrukt
phLDL4 transient transfiziert. Vor der Ernte wurden die Zellen für 16 h in Serum mit 0,5%
LPDS kultiviert und anschließend entweder uninduziert (SF) oder 4 h mit 10-7 M Insulin, 10-8
M IGF-1, 1,5 × 10-15 M EGF oder 3,3 × 10-10 M PDGF stimmuliert. Die Promotoraktivität wird
durch die Luziferaseaktivität, die im Zellextrakt gemessen wurde, repräsentiert. Die
Luziferaseaktivität wurde mittels Cotransfektion auf die Transfektioneffizienz hin korrigiert.
Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD, n = 4) vier verschiedener Bestimmungen, die jeweils in
Dreifachbestimmungen durchgeführt wurden.
Durch transiente Expression von SREBP-1a wie auch von SREBP1c in SREBP-1(-)-Zellen
bzw. von SREBP-2 in SREBP-2(-) konnte die hormonelle Wirkung auf den LDLR-Promotor
wiederhergestellt werden.
Der Einsatz von spezifischen Inhibitoren zeigte, daß die Wirkung von Insulin wie auch PDGF
auf den LDLR-Promotor mit dem MAP-Kinasen-Kaskaden Weg gekoppelt ist (Fig. 3).
HepG2 Zellen wurden mit dem Promotor-Konstrukt phLDL4 transient transfiziert. Vor der
Ernte wurden die Zellen für 16 h in Serum mit 0,5% LPDS kultiviert und anschließend
entweder uninduziert (SF) oder 4 h mit 10-7 M Insulin oder 3,3 × 10-10 M PDGF mit und ohne
Inhibitoren (75 µM PD98056 bzw. 50 nM Wortmannin) stimmuliert. Die Promotoraktivität wird
durch die Luziferaseaktivität, die im Zellextrakt gemessen wurde, repräsentiert. Die
Luziferaseaktivität wurde mittels Cotransfektion auf die Transfektioneffizienz hin korrigiert.
Gezeigt sind die Mittelwerte (±SD, n = 4) vier verschiedener Bestimmungen, die jeweils in
Dreifachbestimmungen durchgeführt wurden.
Claims (11)
1. Eukaryotische Zellinie, dadurch gekennzeichnet, daß ein Polypeptid reduziert exprimiert
wird, das von der Nucleinsäuresequenz aufgeführt in SEQ ID NO: 1 (SREBP-2) codiert
wird, wobei mittels homologer Rekombination die endogene Nucleinsäuresequenz
aufgeführt in SEQ ID NO: 1 modifiziert oder deletiert ist und kein von der endogenen Nukleinsäuresequenz codiertes Polypeptid
exprimiert wird, wobei SEQ ID NO: 1 Bestandteil
dieses Anspruchs ist.
2. Eukaryotische Zellinie, dadurch gekennzeichnet, daß ein Polypeptid reduziert exprimiert
wird, das von der Nucleinsäuresequenz aufgeführt in SEQ ID NO: 1 (SREBP-2) codiert
wird, wobei eine stabil ins Genom der Zellinie integrierte Nucleinsäuresequenz, umfassend
die Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 und einen Promotor, an dem die
Transkription der Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 initiiert wird,
transkribiert wird und eine Antisense-RNA zur endogenen Nucleinsäuresequenz
aufgeführt in SEQ ID NO: 1 transkribiert wird und kein von der endogenen Nukleinsäuresequenz codiertes Polypeptid
exprimiert wird, wobei SEQ ID NO: 1 Bestandteil dieses
Anspruchs ist.
3. Zellinie nach einem der Ansprüche 1 bis 2, die eine humane Zellinie ist.
4. Zellinie nach einem der Ansprüche 1 bis 3, die eine Leberzellinie ist.
5. Verwendung der Zellinie nach einem der Ansprüche 1 bis 4 zur Durchmusterung und zum
Testen von Substanzen, die verwendet werden können zur Behandlung oder Vorbeugung
von Arteriosklerose, Schlaganfall, koronarer Herzerkrankung, peripherer arterieller
Verschlußkrankheit, Glukoseintoleranz, Diabetes mellitus, arterielle Hypertonie,
Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-
Mangel, Alzheimersche Erkrankung, neurodegenerative Störungen oder genetischer
Lebererkrankung, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert
werden kann.
6. Verwendung der Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 zur Herstellung
von Zellen, die reduziert Polypeptid exprimieren, das von der Nucleinsäuresequenz wie
aufgeführt in SEQ ID NO: 1 codiert wird, wobei SEQ ID NO: 1 Bestandteil dieses
Anspruchs ist.
7. Arzneimittel enthaltend eine Antisense-Nucleinsäure der Nucleinsäuresequenz wie
aufgeführt in SEQ ID NO: 1, wobei SEQ ID NO: 1 Bestandteil dieses Anspruchs ist.
8. Verwendung einer Antisense-Nucleinsäure der Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in
SEQ ID NO: 1 zur Vorbeugung oder Behandlung von
Arteriosklerose, Schlaganfall, koronarer Herzerkrankung, peripherer arterieller
Verschlußkrankheit, Glukoseintoleranz, Diabetes mellitus, arterielle Hypertonie,
Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-
Mangel, Alzheimersche Erkrankung, neurodegenerative Störungen oder genetischer
Lebererkrankung, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert
werden kann.
9. Verwendung der Antisense-Nucleinsäure nach Anspruch 8 in Kombination mit
Cholesterinsynthese-Hemmern.
10. Verwendung der Nucleinsäuresequenz wie aufgeführt in SEQ ID NO: 1 oder eines
Fragments davon zur somatischen Gentherapie, wobei SEQ ID NO: 1 Bestandteil dieses
Anspruchs ist.
11. Verwendung der Nucleinsäuresequenz nach Anspruch 10 zur Behandlung von
Arteriosklerose, Schlaganfall, koronarer Herzerkrankung, peripherer arterieller
Verschlußkrankheit, Glukoseintoleranz, Diabetes mellitus, arterielle Hypertonie,
Adipositas, Fettstoffwechselstörungen, genetische Hypertriglyzeridämie mit ApoC2-
Mangel, Alzheimersche Erkrankung, neurodegenerative Störungen oder genetischer
Lebererkrankung, die durch die Aktivierung von SREBP-empfindlichen Genen moduliert
werden kann.
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| DE19816894A DE19816894C1 (de) | 1998-04-16 | 1998-04-16 | SREBP-2-defiziente Zellinien |
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|---|---|---|---|
| DE19816894A DE19816894C1 (de) | 1998-04-16 | 1998-04-16 | SREBP-2-defiziente Zellinien |
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