DE19504174A1 - Verfahren zur spektroskopischen Untersuchung eines biologischen Gewebes - Google Patents
Verfahren zur spektroskopischen Untersuchung eines biologischen GewebesInfo
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Description
Die Diagnose des Mammakarzinoms stützt sich heute vorwiegend
auf das bildgebende Verfahren der Röntgenmammographie. Teile
der Öffentlichkeit und der Ärzteschaft stehen dieser Untersu
chungsmethode allerdings zunehmend kritisch gegenüber, da man
eine Schädigung des durchstrahlten Gewebes nicht mit Sicher
heit ausschließen kann. Ergänzend eingesetzt werden ferner
die extrem aufwendige Kernspintomographie sowie in geringerem
Maße auch Ultraschall-Meßverfahren und die Infrarot-Thermo
graphie.
In der klinischen Erprobung befinden sich lichttomographische
Verfahren, bei denen man das zu untersuchende Gewebe mit
sichtbarem bzw. IR-Licht beleuchtet und die reflektierte oder
transmittierte Strahlung nachweist (s. beispielsweise /1/ bis
/3/). Da die gemessenen Intensitäten von den optischen Eigen
schaften des jeweils durchstrahlten Bereichs abhängen, hofft
man Gewebearten unterscheiden und physiologische bzw. patho
logische Veränderungen im Gewebe feststellen und lokalisieren
zu können. Mögliche Anwendungen der Lichttomographie reichen
von der Detektion des Mammakarzinoms über die Erkennung der
Alzheimer′schen Krankheit bis hin zur Registrierung der
Oxygenierung des Gehirns und der Extremitäten.
Ziel der Erfindung ist die Schaffung eines optischen Verfah
rens, mit dem sich physiologische und pathologische Verände
rungen in einem biologischen Gewebe, insbesondere im mensch
lichen Körper, in vivo nachweisen lassen. Das Verfahren soll
keine Schädigung des Gewebes hervorrufen und ohne größeren
apparativen Aufwand vergleichsweise einfach durchzuführen
sein. Ein Verfahren mit den in Patentanspruch 1 angegebenen
Merkmalen besitzt diese Eigenschaften. Die abhängigen Ansprü
che betreffen Ausgestaltungen und Weiterbildungen des Verfah
rens.
Das Verfahren kommt vorzugsweise im Bereich der medizinischen
Diagnostik zur Anwendung. Aufgrund seiner gegenüber der
sogenannten Diaphanographie (s. beispielsweise /3/) erhöhten
Sensitivität bzw. Selektivität lassen sich Bereiche mit pa
thologischen Gewebeveränderungen besser vom umgebenden ge
sunden Gewebe unterscheiden und Karzinome in der weiblichen
Brust genauer lokalisieren.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird im folgenden anhand der
Zeichnungen erläutert. Hierbei zeigt:
Fig. 1 und 2 die Absorptionskoeffizienten von Hämoglobin
(Hb), Oxyhämoglobin (HbO), Wasser und Fett
(Pflanzenöl) in Abhängigkeit von der Wellenlänge;
Fig. 3 den reduzierten Streukoeffizienten von Brustgewebe
(in vivo) in Abhängigkeit von der Wellenlänge;
Fig. 4 eine Vorrichtung zur Aufzeichnung eines Transmissi
onspektrums;
Fig. 5 bis 8 gemessene in vivo-Transmissionsspektren der
weiblichen Brust.
Die Erfindung versucht, die in vivo gemessenen Transmissi
onspektren der weiblichen Brust durch eine analytische Funk
tion I(λ) zu beschreiben, wobei von den folgenden stark ver
einfachten Modellannahmen ausgegangen wird:
- 1. Das Brustgewebe besteht aus einer homogenen Mischung der Absorber Wasser, Fett, Hb und HbO;
- 2. die Summe der Volumenanteile von Wasser und Fett beträgt 100%;
- 3. die Volumenanteile von Hb und HbO werden vernachlässigt (2,3 mMol pro Liter Blut).
In einem ausschließlich absorbierenden Medium wird die Schwä
chung eines die Anfangsintensität I₀ aufweisenden Licht
strahls durch das Beer-Lambert′sche-Gesetz
I = I₀ · exp {-µa·d} (1)
beschrieben, wobei d die Dicke der durchstrahlten Schicht und
µa den Absorptionskoeffizienten des Mediums bezeichnen. Be
steht das Medium aus mehreren Absorbern, so berechnet sich
der Absorptionskoeffizient µa aus der Summe der Produkte der
Absorberkonzentrationen ci und der spezifischen Absorptions
koeffizienten αi zu
Im Falle eines aus den oben angegebenen Komponenten bestehen
den Gewebes ist µa somit durch
µa = cWasser·αWasser + cFett·αFett + cHb·αHb + cHbO·αHbO (3)
gegeben. Gleichung (1) gilt allerdings nicht für stark streu
ende Medien, da hier die von den einzelnen Photonen im Medium
zurückgelegten Weglängen nicht bekannt sind. Patterson et al
(siehe /4/) haben allerdings die Diffusionsgleichung für eine
planparallele Geometrie gelöst und die mittlere Weglänge L(λ)
der Photonen in einem streuenden Medium zu
berechnet , wobei µs′ den wellenlängenabhängigen reduzierten
Streukoeffizienten des Mediums bezeichnet. Werden nun die
Dicke d im Beer-Lambert′schen-Gesetz durch die wellenlängen
abhängige mittlere Weglänge L(λ) der Photonen ersetzt und
wellenlängenunabhängige Korrekturfaktoren x₁, x₂ eingeführt,
so läßt sich die transmittierte Intensität I(λ) als
I(λ)=I₀(λ)·x₁·exp{-µa(λ)·L(λ)·x₂} (5)
schreiben. Der Korrekturfaktor x₁ berücksichtigt die Meßgeo
metrie und die vielfachgestreuten, nicht absorbierten und
nicht nachgewiesenen Photonen. Meßfehler der Schichtdicke d
und Ungenauigkeiten des reduzierten Streukoeffizienten µs
soll der Faktor x₂ ausgleichen. Bei Kenntnis der Absorptions
koeffizienten αi kann man nun durch Variation der Konzentra
tion ci der vier Gewebekomponenten und der beiden Korrektur
faktoren x₁, x₂ die analytische Funktion gemäß Gleichung (5)
an gemessene in vivo-Spektren anpassen.
Für die in vivo-Messung des Transmissionsspektrums dicker
biologischer Gewebe (d 3 cm) definieren die Hauptabsorber
Blut, Wasser und Fett das diagnostische Fenster. Es beginnt
im kurzwelligen Bereich bei etwa λ = 600 nm (Blut) und endet
im langwelligen Bereich bei etwa λ = 1,4 mm (Wasser). Auf
grund des verwendeten Detektorsystems (Si-Photodiode) wurden
allerdings nur Messungen im Wellenlängenbereich zwischen
λ 650 nm und λ 1,1 µm durchgeführt.
Fig. 1 zeigt den spezifischen Absorptionskoeffizienten der
Blutpigmente Hämoglobin Hb und Oxyhämoglobin HbO im Wellen
längenbereich zwischen λ = 650 nm und λ = 1000 nm. Deutlich
erkennt man das Absorptionsmaximum von Hb bei λ = 760 nm. Am
isobestischen Punkt (λ = 805 nm) sind die Absorptionskoeffi
zienten von Hb und HbO gleich groß.
Die aus der gemessenen Transmissionscharakteristik von Wasser
und Fett (Pflanzenöl) jeweils berechneten Absorptionskoeffi
zienten sind in Fig. 2 dargestellt. Stark absorbierend wirkt
die O-H-Resonanz des Wassermoleküls bei λ = 975 nm. Schwä
chere Oberschwingungen dieser Resonanz beobachtet man bei
λ = 840 nm und λ = 755 nm. Demgegenüber absorbiert Fett bzw.
das als Ersatz dienende Pflanzenöl im Bereich der C-H-Reso
nanz (λ = 930 nm) besonders stark. Wesentlich schwächer ist
die Absorption im Bereich von λ = 760 und λ ≈ 830 nm, wo
Fig. 2 nur sehr flache Strukturen zeigt.
Die Berechnung der Abhängigkeit des reduzierten Streukoeffi
zienten von der Wellenlänge ist nur bei Kenntnis der Größe
und Zusammensetzung der Streuzentren möglich. Da entspre
chende Informationen für das Brustgewebe fehlen, wurden eige
ne Messungen bei verschiedenen Wellenlängen durchgeführt. Die
Ergebnisse dieser Messungen zeigt Fig. 3. Dargestellt sind
auch die auf den Daten beruhende Interpolationsgerade und die
in vivo bzw. in vitro Meßwerte anderer Autoren. Der redu
zierte Streukoeffizient ist nur schwach von der Wellenlänge
abhängig und liegt in der Größenordnung von 1 mm-1.
Fig. 4 zeigt den schematischen Aufbau einer Vorrichtung zur
Aufzeichnung eines in vivo-Transmissionsspektrums. Hierbei
handelt es sich im wesentlichen um ein kommerziell erhältli
ches Spektroradiometer (Merlin, ORIEL-Company), dessen Kompo
nenten der neuen Meßtechnik angepaßt wurden. Als Weißlicht
quelle dient eine 100 W-Halogenlampe 1, die im relevanten
Meßbereich (500 nm λ 1100 nm) eine gleichförmige und hohe
spektrale Strahlungsdichte besitzt. Gesteuert durch den
Rechner 2 zerlegt der Gittermonochromator 3 (600 Linien/mm;
lineare reziproke Dispersion 12,8 nm/mm bei λ = 750 nm), das
von der Halogenlampe 1 emittierte Licht in seine spektralen
Komponenten. Die selektierte Komponente durchläuft anschlie
ßend das dem Monochromator 3 nachgeordnete Kantenfilter 4, so
daß die Optik 5 nur die in erster Ordnung gebeugte Strahlung
in das mit dem Fiberkopf 6 (Durchmesser: 5 mm) verbundene
Lichtleiterkabel 7 einkoppelt. Da die Strahlungsintensität am
Fiberkopf 6 etwa 1 mW beträgt (λ = 800 nm, Breite der
Monochromatorschlitze s = 1mm), liegt die Leistungsdichte auf
der Haut mit etwa 5 mW/cm² weit unterhalb des zulässigen
Grenzwertes. Die Strahlung dringt in die auf der transpa
renten Platte 8 aufliegende Brust 9 ein, wird dort entspre
chend den optischen Eigenschaften des durchleuchteten Gewebes
mehr oder weniger stark absorbiert und gestreut und tritt auf
der dem Glasfaserkopf 6 gegenüberliegenden Seite wieder aus.
Ein etwa 2 m langes Lichtleiterkabel 10 erfaßt die transmit
tierte Strahlung und führt sie der Si-Photodiode 11 zu.
Der im Strahlengang zwischen der Halogenlampe 1 und dem Mono
chromator 3 angeordnete Strahlunterbrecher 12 (Flügelrad) hat
die Aufgabe, die Intensität des in den Monochromator 3 ein
tretenden Lichtes und damit auch die Intensität der das
Brustgewebe 9 beleuchtenden Strahlung mit einer durch die An
steuereinheit 13 vorgegebenen Frequenz von beispielsweise
f = 25 bis 30 Hz zu modulieren. Infolgedessen besitzt auch
das Ausgangssignal der Si-Photodiode 11 einen die Modulati
onsfrequenz f aufweisende Komponente, deren Amplitude im
Lock-in-Verstärker 14 bestimmt und in den Rechner 2 eingele
sen wird. Die aus einer Leuchtdiode 15 und einer Photodiode
16 bestehende Gabellichtschranke erzeugt das an einem zweiten
Eingang des Lock-in-Verstärkers 14 anliegende Referenzsignal.
Die im folgenden kurz beschriebenen in vivo-Transmissions
spektren wurden mit der in Fig. 4 dargestellten Vorrichtung
aufgenommen. Für die Aufzeichnung der jeweils 50 Meßwerte pro
Spektrum (Schrittweite Δλ = 10 nm) benötigte man etwa 150 s.
Während der Messung waren die Breiten des Ein- und Ausgangs
spalts des Monochromators 3 auf jeweils 1 mm eingestellt.
Dies entspricht einer Bandbreite von näherungsweise 13 nm,
was eine ausreichend hohe spektrale Auflösung gewährleistet.
Ausgewertet wurde jeweils die im folgenden als Transmittanz
bezeichnete Größe
log{I(λ)/I₀(λ)} (6)
Sie ist in den Fig. 5 bis 8 zusammen mit den entsprechen
den Simulationskurven in Abhängigkeit von der Wellenlänge
dargestellt. Den einzelnen Spektren ist jeweils eine Tabelle
mit den entsprechenden Fitparametern zugeordnet. Als weitere
Parameter enthalten die Tabellen bzw. Figuren ggf. noch das
Alter der Testperson, Angaben über den Ort der Messung auf
der Brust und die Dicke des durchstrahlten Gewebes.
Trotz der Unterschiede in der Höhe der jeweils gemessenen
Transmittanz stimmen alle in vivo-Spektren in folgenden Merk
malen überein:
- 1) Unterhalb von λ = 600 nm (Blutabsorption) fällt die Trans mittanz um mehrere Größenordnungen ab;
- 2) ein Transmissionsminimum beobachtet man bei etwa λ = 760 nm (Überlappung des Hb-Signals und der schwächeren Fett- und Wassersignale);
- 3) mehr oder weniger ausgeprägte Minima zeigen sich bei λ = 930 nm (Fett) und λ = 975 nm (Wasser);
- 4) die Transmittanz nimmt innerhalb des gesamten Wellenlän genbereichs mit steigendem Blutgehalt des Gewebes ab.
Die Fig. 5 und 6 zeigen repräsentative in vivo-Transmissi
onsspektren der weiblichen Brust, wobei Fig. 5 die an jünge
ren Personen (40 Jahre und jünger) und Fig. 6 die an älteren
Personen (60 Jahre und älter) durchgeführten Messungen be
treffen. Anhand der in Tabelle I angegebenen Fitparameter
kann man unschwer erkennen, daß sich jüngeres und älteres
Brustgewebe hinsichtlich des Fett-Wasser- und Blutgehaltes
deutlich voneinander unterscheiden.
Den Einfluß der Meßposition auf das in vivo-Transmissions
spektrum zeigt Fig. 7. Dargestellt sind nur die an den Posi
tionen "A" und "D" gemessenen Spektren. Mit den in Tabelle II
angegebenen Parametern gelingt es auch hier wieder, die Spek
tren durch die in Gleichung (5) angegebene Funktion I(λ) sehr
gut zu beschreiben.
Wie die Fig. 8 zeigt, unterscheidet sich das an einer er
krankten Brust (invasives duktales Karzinom) gemessene Trans
missionsspektrum (schwarze Quadrate) insbesondere im Wellen
längenbereich zwischen λ = 900 nm und λ = 1000 nm deutlich
von dem an der entsprechenden Stelle der gesunden Brust
(offene Quadrate) aufgezeichneten Referenzspektrum. Dies kann
man im wesentlichen auf den gegenüber der gesunden Brust ver
änderten Wasser- und Fettgehalt im Bereich des Karzinoms zu
rückführen. Außerdem ist die an der erkrankten Brust gemes
sene Transmittanz bei allen Wellenlängen deutlich kleiner als
im Referenzspektrum.
Die Erfindung beschränkt sich selbstverständlich nicht auf
die beschriebenen Ausführungsbeispiele. So ist es ohne weite
res möglich, auch Reflexionsspektren aufzuzeichnen und diese
wieder durch Gleichung (5) zu beschreiben. Die Größe L(λ) ist
dann durch
mit
und
r: Abstand Quelle - Detektor
gegeben( siehe /5/).
gegeben( siehe /5/).
/1/ G. Müller et al. (Eds.), Medical Optical Tomography.
Functional Imaging and Monitoring, The International
Institute for Optical Engineering, Belligham, WA, 1993,
SPIE Vol. IS11.
/2/ B. Chance, R.R. Alfano, A. Katzir (Eds.), Photon Migra
tion and Imaging in Random Media and Tissues, The Inter
national Institute for Optical Engineering, Belligham,
Wa, 1993, SPIE Vol. 1888.
/3/ G.A. Navarro, A.E. Profio; Med. Phys. Vol. 15(1988);
S. 181-187.
/4/ M.S. Patterson, B. Chance, B.C. Wilson; Appl. Optics,
Vol. 28 (1988), S. 2331-2336.
/5/ T.J. Farell, M.S. Patterson, B. Wilson; Med. Phys. 19(4)
(1992), S. 879-889.
Claims (6)
1. Verfahren zur spektroskopischen Untersuchung eines biolo
gischen Gewebes durch Anwendung der folgenden Schritt:
- a) Bestrahlung des Gewebes mit Licht der Intensität I₀(λ), dessen Wellenlänge λ kontinuierlich oder in diskreten Schritten geändert wird;
- b) Aufzeichnung eines Transmissions- oder Reflexionsspektrums durch Messung der Intensität der transmittierten bzw. re flektierten Lichtes in Abhängigkeit von der Wellenlänge λ;
- c) Beschreibung der Zusammensetzung des Gewebes durch ein Mo dell, wobei die Konzentrationen und das Absorptionsvermö gen der einzelnen Gewebekomponenten als Modellparameter dienen;
- d) theoretische Beschreibung der transmittierten oder reflek tierten Intensität auf der Grundlage des Modells unter Be rücksichtigung der wellenlängenabhängigen mittleren Weg länge L(λ) der Photonen im Gewebe und
- e) Bestimmung der Modellparameter durch Anpassung der Größen I(λ), I(λ)/I₀(λ) oder log {(λ)/I₀(λ)} an das gemessene Transmissions- bzw. Reflexionsspektrum.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß das Gewebe als homo
gene Mischung mehrerer als Absorber wirkender Gewebekomponent
angesehen wird, wobei der totale Absorptionskoeffizient µa(λ)
des Gewebes gemäß der Beziehung
von den Konzentrationen ci der Gewebekomponenten und deren
spezifischen Absorptionskoeffizienten αi (λ) abhängt.
3. Verfahren nach Anspruch 2,
dadurch gekennzeichnet, daß die transmittierte
Intensität I(λ) durch die Gleichung
beschrieben wird und x₁, x₂ wellenlängenunabhängige Faktoren
bezeichnen.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3,
dadurch gekennzeichnet, daß die mittlere Weglän
ge L(λ) der Photonen im Gewebe gemäß der Beziehung
von der Dicke d des durchstrahlten Gewebes, dem reduzierten
Streukoeffizienten µs′ (λ) und dem Absorptionskoeffizienten µa
des Gewebes abhängt.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4,
dadurch gekennzeichnet, daß das Gewebe als ho
mogene Mischung der Absorber Wasser, Fett, Hämoglobin und
Oxyhämoglobin angesehen wird, wobei die Volumenanteile von
Wasser und Fett sich zu 100% ergänzen.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß die Intensität
I₀(λ) des einfallenden Lichtes moduliert, die Amplitude eines
die Modulationsfrequenz aufweisenden Ausgangssignals eines
Detektorsystems bestimmt und in Abhängigkeit von der Wellen
länge aufgezeichnet wird.
Priority Applications (5)
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|---|---|---|---|
| DE19504174A DE19504174A1 (de) | 1995-02-07 | 1995-02-07 | Verfahren zur spektroskopischen Untersuchung eines biologischen Gewebes |
| US08/875,842 US5840035A (en) | 1995-02-07 | 1996-02-01 | Method for the spectroscopic examination of a biological tissue |
| PCT/DE1996/000151 WO1996024836A1 (de) | 1995-02-07 | 1996-02-01 | Verfahren zur spektroskopischen untersuchung eines biologischen gewebes |
| EP96901224A EP0808453A1 (de) | 1995-02-07 | 1996-02-01 | Verfahren zur spektroskopischen untersuchung eines biologischen gewebes |
| JP8523889A JPH10513088A (ja) | 1995-02-07 | 1996-02-01 | 生体組織の分光検査方法 |
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|---|---|---|---|
| DE19504174A DE19504174A1 (de) | 1995-02-07 | 1995-02-07 | Verfahren zur spektroskopischen Untersuchung eines biologischen Gewebes |
Publications (1)
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|---|---|
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