DE1620597A1 - Decoyinintriester und Verfahren zu ihrer Herstellung - Google Patents
Decoyinintriester und Verfahren zu ihrer HerstellungInfo
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Description
Decoyinintriester und Verfahren zu ihrer Herstellung
Gegenstand der vorliegenden Erfindung sind Decoyinin-triester
der allgemeinen Formel
H-JST-H
CH
CH2OR
OR OR
in der R eine Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit 2 bis einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen, eine Halogen-, Hitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-, Thiocyan- oder niedrig-alkoxysubstituierte Kohlenwasserstoffcarbonsäureaeylgruppe mit 2 bia einsohliesslich 12 Kohlenstoffatomen oder eine niedere Alkoxycarbonylgruppe bedeutet, sowie ein Verfahren zu
in der R eine Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit 2 bis einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen, eine Halogen-, Hitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-, Thiocyan- oder niedrig-alkoxysubstituierte Kohlenwasserstoffcarbonsäureaeylgruppe mit 2 bia einsohliesslich 12 Kohlenstoffatomen oder eine niedere Alkoxycarbonylgruppe bedeutet, sowie ein Verfahren zu
009820/1821 Neu* Unterlagen (Art. /1 τ At», a Nr. ι
SAD OB/G/MAL
deren Herstellung, das dadurch gekennzeichnet ist, dass man
Decoyinin der Formel
OH,
OH
OH ÖH2°H
mit etwa 3 Mol eines Acylierungsmittels, das ein Säureanhydrid- oder Säurehalogenid mit einem Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylrest
von 2 bis einLchliesolich 12 Kohlenstoffatomen, einem Halogen-, Nitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-,
Thiocyan- oder niedrig—Alkoxy-Kohlenwasserstoffearbonsäureacylrest
mit 2 bis einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen oder ein niederes Alkoxycarbonylhalogenid ist, bei etwa 4° C
•während etwa 10 bis 24 Std, umsetzt.
Das Antibiotikum Decoyinin ist ein Aufbauprodukt von Streptomyces hygroscopicus var» decoyicus,
das einen hemmenden Einfluss auf das Wachstum verschiedener Organismen, insbesondere von
Bakterien und Fungi, hat. -^s zeichnet sich vor anderen antibakteriellen
Mitteln und Antibiotika durch seine charakteristischen Infrarot- und Ultraviolettspektren aus, wie sie in
den Figuren 1 bzw. 2 dargestellt werden, ferner durch seinen Elementaraufbau sowie seine chemischen und physikalischen
Eigenschaften. Decoyinin besitzt die vorgenannte Strukturformel,
Eine Kultur des lebenden Organismus, der im nachstehenden als Streptomyces hygroscopicus var, decoyicus bezeichnet wird,
00*820/182-3
wurde "bei der Fermentation Division, Northern Utilization
Research Branch, U0S0-Department of Agriculture, Peoria,
Illinois, deponiert und zu deren ständiger Sammlung unter der Hummer NRPlL-2666 zugefügt,
Streptomyees hygroscopicus var„ decoyicus iet eine neue
Spielart eines bekannten Actinomyzeten, der aus einer
Bodenprobe gewonnen wurde, die in Verdugo City, Kalifornien, entnommen wurde» Seine Kulturen haben ein sich verzweigendes
Luftmycel, erzeugen Pilzsporen in eng gewundenen Mycelfäden,
die aus dem Luftmycel wachsen und entwickeln mit dem Altern ä
der Lultur feuchte schwarze Flecken im Sporenbereich.
Streptomyees hydroscopicus varo desoyicus weist eine starke
Ähnlichkeit mit Streptomyees endus und Streptomyces hydroscopicus
CBS auf, wie in tabelle I und II gezeigt wird. In '-tabelle I werden diese Organismen durch das Dietz-Ektachrom-(durchsichtige
Farbfilmpositive)~Verfahren verglichen, das in den Annals of the New York Academy of Science, Bd0 60,
Art 1, Sei'ten 152 und 154, 29. Okt. 1954, beschrieben wird.
BAD OR16«NA1.
009820/1823
| Ektachrom | honig gelb |
- Vergleich « | tief- honig gelb |
honig gelb |
Streptomyces hygroscopious CBS+ Ober- Rück fläche seite |
tief honig gelb |
|
| Medium | Streptomyces hygroseopicus var, decoyicus NRLL-2666 Ober- Rück fläche seite |
honig gelb m. grau |
Streptomyces endus IERL 2339 Ober- Rück fläche seite |
blass honiggelb m.grauen I1Ie cken |
blass honig gelb |
grau m, weissen Flecken |
blass honig gelb me grauen Flecken |
| Benett's | grau- weiss |
honig gelb m.grau |
grau- weiss |
weiss honig in, grau- gelb en Pl. |
blass honig gelb |
hell grau— weiss |
tief braun |
| Czapek's | grau- weiss |
honig gelb |
hell grau weiss |
weiss | grau— weiss |
honig gelb |
|
| Maltose- trypton |
grau- weiss |
farblos | weiss | weiss | blass- Ii orii g- gelb |
||
| Pepton- eisen |
weiss | blass honig gelb |
weiss | weiss | grau blass m.weissen hoiiig- 1'1Ie cken gelb ία. grauen Γ1 ecken |
||
| Waksman's Tyrosin |
weiss | ||||||
| Kasein stärke |
grau | ||||||
+ CBS ist das CentraäLbureau voor Schimmelculture in Baarn, Holland,
SAD
009820/1823
In iüabelle II werden diese Organismen auf ihre Fähigkeit
hin verglichen, Kohlenstoffverbindungen nach dem Verfahren von Pridham und Gottlieb /""J. Bact,, Bd. 56, S. 107-114
(1948)__7 aufzunehmen und es werden die in der gedruckten
deutschen Patentanmeldung Mr0 1 042 841 beschriebenen Modifikationen
angegebene
| d-Xylose | Tabelle : | S. endus | S, hygroscop | |
| IL-Arabinose | ri | URRL-2339 | icus CBS | |
| Ühamnose | Kohlenstoffassimilation | (-) | <-) | |
| cL-Pructose | Sβ hygroscopicus - | + | + | |
| Kohlenstoff | jl-(H.actose | var0 decoyicus IRRL-2666 |
+ | + |
| verbindungen | d-Maltose | (-) | + | + |
| Kontrollverbdg. | d-Mannose | ( + ) | + | + |
| 1. | (!-Glucose | .( + ) | + | + |
| 2. | Saccharose | (-) | + | + |
| 3. | Lactose | (+) | - + | ,+ |
| 4. | Cellobiose | (+) | + | + |
| 5. | Raffinose | ( + ) | (+) | ( + ) |
| 6. | Dextrin | + | + | + |
| 7. | Inulin | (+) | + | . + |
| 8. | Lösliche Stärke | ( + ) | + | |
| 9. | Glycerin | + | + | + |
| 10. | Dulcit | ( + ) | ( + ) | ( + ) |
| 11. | d.-Mannit | " + | ( + ) | (+) |
| 12. | d-Sorbit | ( + ) | + | + |
| 13. | dl-Inosit | _ + | ( + ) | ( + ) |
| 14. | Sallcin | + | + | |
| 15. | Phenol | (-) | ( + ) | + |
| 16. | ( + ) | ( + ) | ( + ) | |
| 17. | ( + ) | ( + ) * | ( + ) | |
| 18. | ( + ) | |||
| 19. | ( + ) | |||
| 20. | ( + ) | |||
| 21. | ||||
| 22. |
ougeao/1833
BAD ORIGINAL
23o Cresol
24. Natriumformat
25. Natriumoxalat
26. Natriumtartrat Natriumsalicylat Natriumacetat
(+) Natriumeitrat
27 28 29
30 g Natriumsuccinat ( + )■ ( + ) +
+ positive Assimilation;
- negative Assimilation; ■
(-) negative Assimilation, jedoch nur schwaches Wachstum; (+) positive Assimilation, jedoch nur schwaches Wachstum.
Weder S, endus noch S. hygroscopicus CBS erzeugen Decoyinin
unter Bedingungen, die für die Erzeugung von Decoyinin günstig sind.
Weitere Charakteristika für Streptomyces hygroscopicus var,
werden in Tabelle III aufgeführt, die das charakteristische Wachstum des urganismus bei 80 C auf 16 gebräuchlichen Medien
zeigt.
Wachsturnscharakteristika
Medium
1. Bennett's Agar
2. Czapek's Saccharose-Agar
Vegetatives Wachstum
gut
gut
Wachstum an der luft
gut,
weisse bis graue bis schwarze Flecken
gut; zwei Arten von Kolonien;
(a) m. grauem Luftwachstum,
(b) weiss krustig
BAD
Andere
gelbe Rückseite und Pigment
kremfarbene Rückseite,,blaßgelbes Pigment
009820/1821
Tabelle III (Fortsetzung)
1^20597
Medium
3. Maltose-Trypton-Agar
4ο Peptonüisen-Agar
5. 0,1 c/o Tyros in-Äirar
6. Kaseinstärke
7. Stärkenähragar
8β Agar aus
Hagermilch
Hagermilch
Vegetatives Wachstum
gut
ziemlich gut
ziemlich gut
ziemlich gut
ziemlich gut
gut
9. Galciummalat- ziemlich
Agar gut
10. G-lucoseasparagin-Agar
ziemlich gut
11» Flache G-elati- ziemlich
ne-Stichkultur gut
Wachstum an der
Luft
Luft
gut; zwei Arten
von Kolonien;
(a) m.grauem
Luftwachstum,
("b) weiss krustig
von Kolonien;
(a) m.grauem
Luftwachstum,
("b) weiss krustig
keine Farbe
"bis zu Spuren
von weiss
"bis zu Spuren
von weiss
hellftrau-weiss
Spuren von
grau-weiss
grau-weiss
hellweiss
hellweiss
Spuren von
grau-weiss
grau-weiss
keins
keins
Andere
gelte bis
graue Rückseite, gelbes Pigment
graue Rückseite, gelbes Pigment
gelbe Rückseite und Pigment
braune Rückseite und Pigment
farblose Rückseite; gute Stärkehydrolyse
kremfarbene Rückseite; gute Stärkehydrolyse
kremfarbene Rückseite; gute Kaseinhydrolyse
farblose Rückseite
farblose Rückseite
gelbes Pigment; sehr leichte Verflüssigung
| 12. | Gelatine- Hährkultur |
ziemlich gut- |
ke ins | gelbes Pigment sehr leichte ^ erflüssigung |
| 13. | Trypton- brüho |
ziemlich gut; unten flockig |
keins | |
| 14. | Lackrnus- railch |
ziemlich gut |
Spuren von grau-weiss |
keine Peptoni- sj erurie;; keine Veränderung |
| 009820/1823 | BAD ORIGINAL | |||
| - | GOPY |
Medium
Tabelle III (Fortsetzung)
+ Vegetatives Wachstum an der
Wachstum Luft Andere
15. Nitrat- ziemlich gut; keins keine Reduknährbrühe unten flockig tion
16. Synthetische ziemlich gut; sehr geringe keine Reduk-Hitrafbrülie
wenige über- Spuren von tion
flächenkolo- weiss
nien; unten
flockig
Die Medien werden in der gedruckten deutschen Patentanmeldung Nr. 1 042 841 aufgeführt.
Auf Bennett's und Czapek's Saccharose-Agar zeigt S. hygroscopicus
var„ decoyicus ein gutes vegetatives und Luftwacjistum
bei 18°-28 C0 Bei 37 C ist das vegetative Wachstum gut,
jedoch geschrumpft und pastenartig und es sind Spuren von weissem Luftwachstum vorhanden. Die Kultur weist bei 55°C
kein Wachstum auf.
S. hygroscopicus var« decoyicus weist einen deutlichen Unterschied
zu den in der Literatur beschriebenen Varianten von S. hygroscopicus auf und zwar sowohl im Hinblick auf die
Charakteristika des Organismus als auch auf die erzeugten
Antibiotika. Während daher Varianten oder Stämme von S.hygroscopicus,
wie beschrieben wird, andere Antibiotika produzieren, nämlich Hygromycine, Marcomycin, Carbomycin, Hygroscopine
und Angustmyeine, unterscheiden sich diese Antibiotika deutlich
von Decoyinin, wie durch den nachfolgenden Vergleich gezeigt wird:
Hygroscopin A G13H24N203
Hygroscopin B G15H28N2°3
Carbomycin C^oH,-„NO., r
42 67 16 BAD ORIGINAL
flygromycin , Gi9H9QN0iQ
009820/1823 9 12
1820597
Tabelle IV (PortSetzung)
G15H28F2°9"1O
G15H18
Hygromycin B Marcomycin
Angustmycin A Angustmycin C Decoyinin
Die Angustmycine A und C, die von S. hygroscopicus 6A-704-erzeugt
und von H. Yüntsen u.a. in Japan Journal of Antibiotics, Reihe A, Bd0 7, Nr. 4, August 1954, Seiten 113
und 116 und in Japan Journal of Antibiotics, Reihe A, Dezember 1956, S. 195, sowie von Bull in Agr. öhern» Soc. Japan,
Bd. 21, Nr. 4, Seiten 261-262 beschrieben werden, unterscheiden sich auch in anderer bedeutender Hinsicht, wie in der
nachfolgenden Tabelle Y gezeigt wird:
Verbindung Charakteristikum
Empirische Formel
Stickstoff des wasserfreien Kristalls
Schmelzpunkt des wasserK
Decoyinin Angustmycin Angustmycin
α σ
25,03
23,60
23,19
| freien Kristalls | 183-186"C | 169,5-171 C | 202-204 c |
| Optische Eigenschaften | aktiv | aktiv | inaktiv |
| Titrationsäquivalent | 283 | 340 | 307 |
| Molekulargewichts- bestimmung |
215-216 | 350-352 | 297 |
| Wahrscheinlicher Zuckeranteil |
O6H12O5 | C8H19°5 ' | nicht bekannt oder be schrieben |
009820/1&2I
Tabelle V (Fortsetzung)
Verbindung
Charakteristikum
Charakteristikum
Formen nach der
Acetylierung
Acetylierung
Formen nach der
Hydrierung
Hydrierung
| Decoyinin | Angustmycin Angustmvcin A C |
|
| Pentaacetyl S chniel zpunkt |
Triacetyl nicht bekannt Schmelzpunkt " oder beschrie |
|
| 152-153°C; | 188-188,5°C; ben | |
| Tetraacetyl Schmelzpunkt |
Tetraacetyl S chme1zpunkt |
|
| 650C; Triacetyl |
188-189°C | |
| 188-189°0 | ||
| f dihydro, Schmelzpunkt |
nur dihydro, Schmelzpunkt |
|
| b | 205-2080C, | 153-1540C |
| e i i d |
deoxydihy dro, Schmelz- |
|
| e | Dunkt 150-153 | 0C |
Der Organismus S„ hygroscopicus -Hr. 6A-706, der die Angustmycine
erzeugt, unterscheidet sich ebenfalls deutlich von S, hygroscopicus var. decoyicus. Die Unterschiede bei der
Kohlenstoffassimilation werden in Tabelle VI gezeigt.
S. hygroscopicus S, hygroscopicus
var. 6A-704
var. deooyicus
Kontrollverbindung
d-Xylose
1-Arabinose
Rhamnose
d-G-alactose
d_-Grlucose
Suorose
009820/182$
BAD ORIGINAL
Tabelle VI (Fortsetzung)
Se hygro.seopicus Se hygroscopicus
vare 6A—704 vare decoyicus
Lactose + +
Raffinose + (-) +
d-Mannit + (+)
dl-Inosit - (+)
Salicin - (+) λ
Zeichenerklärung :
++ gutes Wachstum und positive Aufnahme;
+ massiges Wachstum und positive Assimilation;
+ schwaches Wachstum, wahrscheinlich mögliche Assimilation;
(-) manchmal kein Wachstum, nicht "bestimmbare Aufnahme;
- kein Wachstum, keine Aufnahme.
L I
Zeichenerklärung :
+ positive Assimilation;
- negative Assimilation, kein Wachstum;
(-) schwaches Wachstum, keine Assimilation; - A
( + ) positive Assimilation, nur schwaches Wachstum,,
Die Unterschiede "bei den Wachstums Charakter ist ika werden in
der tabelle VII gezeigt.
009820/182S bad original
Organismus Medium
Tabelle VII WachstumsCharakteristika
S_e hygroscopicus
var, decoyicus
MRRI-2666
var, decoyicus
MRRI-2666
Glucose-Asparagin-Agar
Tyrosin-Agar G-elatine-Stichkultur
Bennett's Agar kein Luftwachstum
Pigment
gelbes Pigment
gelbe Rückseite
und Pigment
und Pigment
S-. hygroscopicus var. 6A-704
weisses Luftwachstum, pulverförmig
kein lösliches Pigment
es bildete sich kein lösliches Pigment
Wachstum braun, kein lösliches Pigment
Decoyinin hat ein antibakterielles Spektrum in vivo, wie in Tabelle YIII gezeigt wird:
Tabelle VIII
Therapeutische Wirkung von Decoyinin bei Mäusen, die im
Versuch infiziert wurden
rganismus
S.
S0 aureus
p_. pneumoniae 1 D, pneumoniae
| Verabre ichungswe ise | GD50 | in mg/kg | (14,8-30,2) (39,0-61,0) |
| Decoyinin | 200 (57-109) |
||
| subkutan oral |
22,5 50,0 |
400 800 |
|
| subkutan oral |
83 | 400 800 |
|
| subkutan oral |
|||
| subkeutan oral |
09 820/1823
Tabelle VIII (Fortsetzung)
| Organismus | pneumoniae | Verabreichungsweise | CJD50 in mg/kg Decoyinin |
| K. | multocida | subkutan oral |
400 800 |
| P. | subkutan | 305 (225-385) | |
| vulgaris | oral | 238 {163-313) | |
| I» | aeruginosa | subkutan oral |
400- 800 |
| P. | paratyphi B | subkutan oral |
355 (287-423) • 161 (96-226) |
| S. | typhi | subkutan oral |
482 404 |
| S0 | coli | subkutan oral |
400 800 |
| S- | subkutan oral |
119 86 |
Decoyinin wies eine ausgeprägte Wirksamkeit gegen nachfolgende
Mikroorganismen auf:
Bakterien!
Mycobacterium ranae ; Mycobacterium phlei ;
Diplococous pneumoniae ; Streptococcus hemolyticus ;
Staphylococcua aureus ; Pseudomonas aeruginosa ,
Aktinomyzeten:
Nocardia asteroides.
Pungi ί
'•Prichophyton rubrum }
Hiatoplasma capsulatum j Blastomyces dermatitidie
009320/1821
Decoyinin kann durch, eine Kultur von Se hygroscopicüs
var. decoyicus oder einer Decoyinin erzeugenden Varianten derselben produziert werden und zwar in einem wässrigen
Nährmedium unter -submergen aeroben Bedingungen, vorzugsweise in einem Nährmedium, das ein agg-jj^üerbares Kohleethydrat
sowie eine Stickstoffverbindung oder proteinhaltigen Stoff enthält. Obgleich eine Anzahl geeigneter Medien vorhanden
ist (bestimmte Kulturmedien werden bevorzugt), sind aus Gründen der wirtschaftlichen Herstellung, der maximalen Ausbeute
sowie leichten Abtrennung die zur Zeit bevorzugten Kohlehydratquellen Glucose, Dextrin, Molassen, Maismehl (raffiniert
und nicht raffiniert) und Stärke (gesiebt und löslich) einschliesslich Kombinationen derselben,, Andere geeignete
Kohlenstoffquellen sind Maltose, Galactose, Mannit, Sojabohnenöl,
tierische und pflanzliche Öle und dergleichen. Die bevorzugten Stickstoffquellen sind Proteinquellen, wie
beispielsweise Baumwollsamenmehl, Sojabohnenmehl, Fißchnehl,
entfettetes Sojabohnenmehl, Pepton und dergleichen. Andere
geeignete Quellen sind Brdnussmehl, Br-auereihefe (getrocknete Hefe, die aus einer Biergärung erhalten wird) oder Hefeextrakt,
Maisglutenmehl, Maisquellmasse, Fischgrätenmark,
Tierknochenmark, lösliche Destillationsprodukte, Tryptixase,
Trypton, Rind er extrakt, N— Z-Aniin^A, N— Z-Amin B, proteolysierte
Milch- und Eierprodukte und dergleichen. Kombinationen von zwei oder mehreren dieser Stickstoffquellen können vorteilhafterweise
verwendet werden.
Anorganische Nährsalze, beispielsweise Salze, die Ionen erzeugen können, wie beispielsweise Kalium, Natrium, Calcium,
Phosphat, Sulfat und dergleichen, können vorteilhafterweise dem Medium beigegeben werden. Wichtige Spurenelemente, wie
z.B« Zink, Magnesium, Mangan, Kobalt, Eisen und dergleichen
können ebenfalls im Kulturmedium enthalten sein, um ein Wachstum von Streptomyces hygroscopicüs var. decoyicus zu
bewirken. Derartige Spurenelemente werden im allgemeinen als zufällige Verunreinigungen mit der Zugabe von Bestandteilen
zum Medium zugesetzt.
009820/1821 ßAD original
Bei einem "bevorzugten Fermentationsverfahren des Mikroorganismus
So hygroscopicus var« decoyicus wird das Kulturmedium
bei einer Temperatur zwischen etwa 24 und etwa 37 C gehalten.
Vorzugsweise wird der Impfstoff bei etwa 280C bebrütet und
der eingeimpfte Vergärer wird bei etwa 28° bis 320O während
etwa zwei bis sieben Tagen bebrütet, ä±e bis sich eine zur
Gewinnung ausreichende Menge Decoyinin in der Gärbrühe befindete ' .
Zur Erzielung eines maximalen Wachstums und zur Entwicklung von S. hygroscopicus var. decoyicus sollte das Kulturmedium
vor der Impfung mit dem I'likr ο Organismus auf einen pH-./ert ™
zwischen etwa 6^5 und etwa 7,6 eingestellt werden. Vorteilhafterweise
wird der pH_W'ert während der Ferment ie rung nahe der .Neutralität gehalten.
Submerge, aerobe Kulturbedingungen sind für die Produktion,
grosser Mengen Decoyinin erwünscht. Zur Herstellung begrenzter
Mengen können Kolben in Schüttelvorrichtungen sowie Kulturen in i'lascheh verwendet werden. Wird das Wachstum in
^rossen Gefässen und Tanks vorgenommen, so wird vorzugsweise die vegetative Form des Mikroorganismus zur Impfung verwendet,
um eine starke Verzögerung bei der Herstellung von Decoyinin und die damit verbundene Nichtausnutzung der Anlage zu.ver- *
meiden. Aus diesem ^runde ist es erwünscht, zuerst einen vegetativen
Impfstoff des Mikroorganismus dadurch herzustellen, dass man eine verhältnismässig geringe Menge des Kulturmediums
mit Stoff, den man von einem Agarschrägnährboden des
Mikroorganismus abschabt, oder mit einem entsprechenden Stoff einer Bodenkultur impft und wenn ein junger aktiver, vegetativer
Impfstoff entstanden war, diesen vegetativen Impfstoff unter aseptischen bedingungen in grosse Gefässe oder
Tanks überführt. Daa Medium, in dem der vegetative Impfstoff erzeugt wiru, kann das gleiche sein wie das zur Herstellung
von Decoyinin verwendete iiedium, oder es kann verschieden von demselben sein.
009820/1823
Die Geschwindigkeit der Erzeugung von Decoyinin sowie die Konzentration von Decoyinin in dem Kulturmedium können leicht
während der Wachstumsperiode des Mikroorganismus dadurch verfolgt werden, dass man xroben des Kulturmediums auf ihre
antibakterielle Wirksamkeit gegen einen ürganismus, der bekannterweise
gegen Decoyinin empfindlich ist, z.B. Mycobacter^ium
phlei, durch übliche Agar-Diffusion, durch i'rübungsmessung
oder durch Papierchromatographie und anschiiessender
Ultraviolett-Probe testet, Ira allgemeinen erhält man eine
maximale Erzeugung von Decoyinin nach der Impfung des Kulturmediums nach etwa zwei bis 10 Tagen, wenn unter submergen,
aeroben Bedingungen gezüchtet wird.
S, hygroscopicus var. decoyinus erzeugt bei der Gärung Decoyinin, Psicofuranin und Adenin, Adenin ist eine altbekannte
Verbindung, die keine antibiotische Wirkung besitzt,. Psicofuranin ist ein neuer antibiotischer Stoff, der eine.
__2 R ο
optische Drehung von 1^7-q in Dimethylformamid von -68 und
die folgende Strukturformel hat:
EH0 ι ^- JJE
HOGH2 C^ry ,τ ™ CH20H
OH OH
Wegen seiner biologischen Wirkung sowohl in vitro als auch in vivo ist Decoyinin als Antibiotikum bei vielen nichtmenschlichen Infektionen geeignet.
Decoyinin kann zur Verhinderung des Wachstums von Mikroorganismen,
die in verschiedenartigen Umgebungen anwesend sind, oder zur Verringerung deren Anzahl verwendet werden,
009820/182$
1820597
Beispielsweise sind Waschlösungen, die Decoyinin enthalten, geeignet für sanitäre Zwecke, wie z.B. zum Händewaschen und
Reinigen von Geräten, Böden oder Einrichtungsgegenständen von verunreinigten Räumen oder Laboratorien» Sie können auch
ais industrielles Schutzmittel Verwendung finden, beispielsweise
als bakteriostatisches Spülmittel für gewaschene Bekleidung sowie zum Imprägnieren von Papieren und Stoffene
Decoyinin kann ferner als Futtermittelzusatz zur Forderungdes Wachstums von Zuchtvieh und Geflügel, entweder für sich
allein oder in Kombination mit anderen Antibiotika, verwendet werden« Ausserdem Wird auf seine Verwendung als Zusatz für
Kontrastmittel bei Uierenbeckenaufnahnien und zur Sterilisation
von 'Räumen und Instrumenten bei Tuberkulose hingewiesen
sowie auf die Verwendung in biologischen" Mitteln. Decoyinin kann auch im Unterrieht, bei Forschung und Analyse verwendet
werden.
Die IJDr-r. bei Mäusen ist bei oraler sowie subkutaner Verabreichung
höher als 2.500 mg/kg. Die maximale verträgliche orale Dosis liegt über 800 mg/kg pro Tag und die subkutane
Dosis über 320 mg/kg pro Tag bei einem VersuchsZeitraum von
mindestens 4 Tagen.
Die erfindungsgemässen Verbindungen sind wie Decoyinin zur Bekämpfung von Krankheiten geeignet, die durch bakterielle
und fungale Infektionen bei Tieren verursacht werden· Zu diesem Zweck werden die Produkte mit einem pharmazeutischen
Träger vereinigt, der entweder ein fester Stoff, ein Pulver oder eine Flüssigkeit sein kann. Die Präparate können in
Form von Tabletten, Brausetabletten, Pulvern, Granulaten, Kapseln (sowohl mit harter als auch mit weicher Umhüllung),
Suspensionen in Speiseölen, wässrigen Suspensionen oder anderen Dosxerungsforraen hergestellt werden, die besonders für die
orale Verabreichung geeignet sind. Flüssige Verdünnungsmittel
werden in sterilem Zustand zur parenteralen Verabreichung
verwendet. Ein derartiges Medium kann ein sterine Lösunge-
009820/182».
mittel oder ein steriler Träger sein, wie z.B. ein injizierbares Öl oder Wasser mit oder ohne hydrophile Kolloide, beispielsweise
Natriumcarboxymethylzellulose, Polyvinylpyrrolidon,
Gelatine, Alginate, Tragacanthgummi und ähnliche suspensierende
und/oder dispergierende iiittel. Verschiedene feste pharmazeutische Präparate können durch Vermischen
der Produkte mit festen Verdünnungsmitteln und/oder l'ablettierungshilfsstoffe,
-wie beispielsweise Maisstärke, Lactose, Talkum, SterarLnsäure, Dicalciumphosphat, Magnesiumstearat,
Kautschuke und dergleichen hergestellt werden. Alle Ein— kapselungs- oder Tablettierungsstoffe, die in der pharmazeutischen
Praxis üblich sind, können verwendet werden, wenn keine Unverträglichkeit mit den Stoffen besteht. Die Stoffe
können in Tabletten verarbeitet oder in die übliche Kapsel von absorbierebarem Material, wie z.B. die üblichen &elatinekapseln,
eingearbeitet und in dieser Form verabreicht werden« Die neuen Verbindungen können in Form einer Suse^/pnsion in
einem geeigneten festen öl, das etwa 2 $ Aluminiummonostearat
als Suspendierungsmittel enthält, hergestellt werden. Eine derartige Suspension kann oral so·, wie sie ist, oder aber in
einer Kapsel verarbeitet, verabreicht werden. Die Stoffe sind in Form von Salben, die auf einer Fettbasis vom -t'etrolattyp,
wasserlöslicher Polyäthylenglycol-Wasser-Basis, Kreme und
Wasser-Öl-Emulsionen und -lotionen aufgebaut sind, für die lokale Anwendung geeignet. In der Veterinärmedizin können
sie in Form von Zäpfchen, Mastitissalben, Ölsuspensionen,
wässrigen Lösungen und- Suspensionen und dergleichen verabreicht werden.
Der Prozentsatz des aktiven Bestandteils kann je nach dem
Präparat und der beabsichtigten Verwendung variiert werden. Ein geringerer Prozentsatz kann dann verwendet werden, wenn
mehBBre Einheitsdosierungsformen zur gleichen ^eit verabreicht
werden sollen. Obgleich, insbesondere bei einer intravenösen Injektion, ein Prozentsatz von weniger als etwa
0,10 $ des Antibiotikums verwendet werden kann, ist es vorzu-
009820/1821
BAD ORlGiNAL
ziehen, nicht -weniger als etwa 0,10 fo desselben zu verwenden,
da die Wirksamkeit des Antibiotikums mit der Menge des verabreichten
Antibiotikums zunimmt« Tabletten oder Kapseln, die etwa 50 bsji etwa 500 mg Decoyinin oder dessen Derivate enthalten, sind geeignet. Es können eine oder mehrere Tabletten
oder Kapseln auf einmal genommen werdene
Wegen ihrer ausgeprägten bakteriziden Wirkung und sehr niedrigen Toxizität sind die erfindungsgemässen Decoyinintriester
als Mittel für die Behandlung verschiedener Krankheiten geeignet. So zeigte es sich beispielsweise, dass Mäuse, ^
die subkuten mit einer CDj-Q-Dosis von 77 mg/kg behandelt wurden,
gegen eine Streptococcus hämolytiens-Infektion geschützt
waren.
Man kann die neuen Verbindungen entweder allein oder in Kombination
mit SuIfonamidverbindungen wie z.B, Sulfadiazin,
Sulfamerazin, Sulfanilamid, Sulfamethazin, Sulfacetamid,
Sulfamethylthiadiazol (in einem "Verhältnis von etwa 1 Teil
der erf indungsgemässen Verbindung pro 2 Teile der G-esamtmenge an Sulfonamid) und dergleichen oder mit anderen Antibiotika,
Wie Z8B, Tetracyclin, Oxytetracyclin, Chlortetracyclin,
Penicillinen, Novobiocin, Neomycin, Erythromyzin, Streptomycin, Bacitracin, Polymyxin, Chloramphenicol, Psicofuramin, ä
Kanamycin, Nystatin, Streptozotocin oder dergleichen bei der .behandlung von vielen Infektionen, insbesondere von durch
Streptococcus und Staphylococcus-Organismen erzeugten Infektionen,
verabreichen· Sie sind ferner in Kombination mit. verschiedenen Vitaminen, wie z.Be Thiamin, Riboflavin, Ascorbinsäure,
Niacinamid, Pyridoxin, Pantothensäure oder Pantothenatsalzen,
Vitamin B^ρ» Folsäure und dergleichen von Wert. Andere
therapeutisch wertvolle Stoffe können gleichfalls mit den vorliegenden Stoffen kombiniert werden. Sie sind ebenfalls
in Kombination mit Corticoiden, wie z.B. Cortison, Hydrocortison, Prednison und Prednisolon einschiiessiich deren
Ester z.B. dem Acetat, Cyclopentylpropionat, Succinat und aern
iJatriumsalz und der Fluor-, Methyl- und Hydroxyanalogen der-
009820/1823
seifen, wie z.B. 6a«-3?luorhydrocortison, 16-Hydroxy-9oc-fluorhydrocortison
und 16-Methyl-9a-fluor~prednisolon und dex^en
Ester wertvoll«
Decoyinin kann aus dem Kulturmedium durch Extraktions- und
Adsorptionsverfahren, wie z.B° Adsorption auf Kohle oder
einem ähnlichen kapillaren Adsorptionsmittel und Auswaschen aus demselben mit einem geeigneten Waschmittel gewonnen
werden. Für die industrielle Produktion werden Extraktionsverfahren bevorzugt, da sie weniger zeitraubend und kost-P
spielig sind und zu höheren Ausbeuten führen.
Bei einem Ext rvlit ions verfahr en zur G-ewinnung von Decoyinin aus
dem vsrgorenen Nährmedium wird die gesamte Brühe bei einem
sauren pH-Wert vorzugsweise bei etwa einem pH-Wert von 2 filtriert. Das klare Piltrat wird alkalisch gemacht, vorzugsweise
auf einen pH-Wert von 10 un/:. auf einem Adsorptionsmittel,
vorzugsiveise Kohle mit bis zu etwa 1 c/o Aktivkohle
adsorbiert, Der Kuchen wird in einem organischen Lösungsmittel,
wie z.B. Aceton aufgeschlämmt, das Lösungsmittel von dem
Kuchen getrennt und dann das Lösungsmittel zu einem wässrigen Konzentrat destilliert, das filtriert, neutralisiert und gefriergetrocknet
wird. Der gefriergetrocknete Stoff wird bei ™ etwa 50 wieder m Wasser gelöst, auf Raumtemperatur abgekühlt,
worauf Kristallisation einsetzt.
Decoyinin kann weiterhin durch G-egenstromverteilung, tiegenstrom-Flüssigkeits-Flüssigkeitsextraktion
oder durch andere Verfahren gereinigt und aus einem geeigneten Lösungsmittel umkristallisiert werden.
Decoyinin zeigt in einem bio auto graphisch em J-apierchromatogramm
mit 6 Lösungsmittelsystemen das nachfolgende typische Bild. Die Zonenvez'teilung wird durch Bioautographie mit
Mycobacterium phlei oder M, ranae erzielt.
BAD ORIGINAL
0 0 9 8 2 0/1823
Nachfolgend werden die sechs LÖsungsmittelsysteme und
Rf-Werte angegeben (der Rest ist Wasser):
1. 81 °ß> n-Butanol, Rf= 0,30;
2. 81 °/o n-Butanol, 0,25 f" p-Toluolsulfonsäure,
3. n-Butanol-Essigsäure-Wasser (2; 1 :1), R~= 0,55;
4. 81 °/o n-Butanol, 2 $>
Piperidin,' Rf= 0,37;
5. 96 "/o Wasser, 4 fo n-Butanol] Rf= 0,63;
6. 96 Jo Wasser, 4 $ n-Butanol, 0,25 /^ p-Toluolsulfonsäure,
R^ = 0,64.
Der R^-Wert von 6-Amino-9-D-psicofuranosylpurin oder Psicofuranin,
das gleichfalls durch S hygrosQOpicus,HRRL 2666
erzeugt wird, beträgt im Lösungsmittelsystem Nr0 4 0,13«
Der R -Wert "von Decoyinin ist 2,85 (p ist die BezugSYerbindung
Psicofuranin)·
Decoyinin sowie Psicofuranin werden durch fermentation von
S. hygroscopicus var. decoyicus erzeugt, Decoyinin kann von ■^sicofuranin durch ^©genstromverteilung nach Craig unter Verwendung
eines Losungsmittelsystems von gleichen Teilen n-Butanol
und Wasser abgetrennt werden,, Durch die Verteilung erhält
man eine Fraktion bei K= 0,3» die Psicofuranin ist, und eine Fraktion bei K = 0,7» die Decoyinin iste Sowohl
Decoyinin als auch Psicofuranin ergeben Adenin bei Säurehydrolyse,
decoyinin ist im Bereich von 1 bis 10 mg/ccm in Wasser,
niederen Alkanolen, wie z.B. Äthanol, Methanol und Butanol, niederen Alkanonen, wie z.B. Aceton und Estern, wie beispielsweise
Äthylacetat löslich und noch besser löslich in organischen Lösunegsmitteln, wie z.B, Dimethylformamid, Diefhthylsulfoxyd
und Diinethylacetamid.
Durch Acylierung von Decoyinin erhält man bekanntlich, je nach
der gewählten Methode, die tri- oder tetra- und penta-Acylderivate.
Beispielsweise ergibt die Aoetylieming von Decoyinin nach dem Verfahren von Yuntsen zwei Produkte, nämlich Decoyinin
009820/1Ö23
tetraacetat (C
und Decoyininpentaacetat
Demgegenüber erhält man durch selektive Acetylierung von
Decoyinin gemäss vorliegendem "Verfahren "bei einer niedrigen
Temperatur mit einer Minimalmenge Essigsäureanhydrid "bei einer minimalen Reaktionszeit Decoyinintriacetat.
Die neuen Triacylderivate können durch die folgende allgemeine
Formel dargestellt werden:
OR ÖH20R
in der R eine Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit 2 Ms
einschliesalich 12 Kohlenstoffatomen, eine halogen-, Nitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-, Thiocyan- oder niedrig-alkoxysubstituierte
Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit 2 Ms
einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen oder eine niedere AIkoxycarbonylgruppe
i st.
Demgegenüber weisen die tetra- und penta-Acylderivate folgende
allgemeine Formel auf:
BAD ORIGfNAL
0 0 9 8 2 0/1823
R-IT-R
OR
GH2OR
in der R die vorgenannte Bedeutung besitzt, und R' ein ^asserstoffatom
.oder R gleich ist«,
Decoyinintriacylat" kann gegebenenfalls mit Ammoniak zur Erzeugung
von gereinigtem Decoyinin deacyliert werden. Beispielsweise kann es von Decoyinin durch G-egenstromverteilung
auf G-rund der Verschiedenheit der "K"-Werte abgetrennt werden,.
Nach der Abtrennung kann es in seine Mutterverbindung, wie
vorstehend beschrieben, zurück verwandelt werden, was deren -Reinigung zur Folge hat.
Der Ausdruck "Kohlenwasserstoffcarbonsäureacyl mit 2 bis 12
Kohlenstoffatomen" soll in der vorliegenden Anmeldung oder
in den Ansprüchen eine Aeylgruppe bezeichnen, die einer Kohlenwasserstoffcarbonsäure mit 2 bis einschliesslich 12
Kohlenstoffatomen entspricht. Geeignete Säuren dieser Art sind z.B. (a) gesättigte oder ungesättigte, gerad- oder verzweigtkettige
aliphatisch^ Carbonsäuren, wie z.B. Essig-, Propion-, Butter-, Isobutter-, tert.-Butylessig-, Valerian-,
Isovalerian-, Caoron-, Capryl-, Decan-, Dodecan-, Acryl-,
Croton-, Hexin-, Heptin-, Octinsäure etc., (b) gesättigte oder ungesättigte cycloaliphatische Carbonsäuren, beispielsweise
Cyclobutancarbonsäure, Cyclopentancarbonsäure, Methy1-cyclopentencarbonnäure,
Cyclohexancarbonsäure, Dimethyl-
und ei G pp*_Lg i. oh en
cyclohexencarbonsäure, Dipropylcyclohexancarbonsäuref (c) ge-
009820/182 J BAD of*eWW"
sättigte oder ungesättigte cycloaliphatische-substituierte
aliphatisch^ Carbonsäuren, wie z.B. Cyclopentanessigsäure,
Cyclopentanpropionsäure, Cyclopentenessigsäure, Cyclohexanbuttersäure,
Methylcyclphexanessigsäure und dergleichen;
(d) eine aromatische Carbonsäure, wie beispielsweise Benzoesäure,
Toluylsäure, Naphthoesäure, Ä'thy !benzoesäure, Isobutylbenzoesäure,
I>lethylbutylbenzoesäure oder dergleichen;
(e) eine aromatisch-aliphatische Carbonsäure, beispielsweise
Phenylessigsäure, Hieny!propionsäure, Phenylvaleriansäure,
Zimtsäure, Phenylpropiolsäure, Maphthylessigsäure oder dergleichen.
Die Bezeichnung "Halogen-, Eitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-, Thiocyan- und niedrig-alkoxysubstituierte Kohlenwasserstoffcar
bonsäure acyl gruppe mit 2 bis einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen"
soll eine Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe bedeuten, wie sie vorstehend definiert wird, die durch ein
oder mehrere Halogenatome, iiitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-,
Thiocyan- oder niedere Alkoxygruppen substituiert ist. Eine "nieder Alkoxygruppe" bedeutet eine Alkoxygruppe mit 1 bis
einschliesslich 6 Kohlenstoffatomen, wie beispielsweise eine
Hethoxy-, Äthoxy-, iropoxy-, Butoxy-, -tentyloxy-, Hexyloxygruppe
und deren isomere formen, Beispiele für substituierte Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppen, die durch die vorstehende
Definition erfasst werden, sind die Acylgruppen, die der Chloressigsäure, Chlorpropionsäure, Brombuttersäure,
Jodvaleriansäure, Chlorcyclohexancarbonsäure, o-, m- und p-Chlorbenzoesäure,
Anissäure, Salicylsäure, p-Hydroxybenzoesäure, o-, m- und p-Nitrobenzoesäure, Cyanessigsäure, Thiocyanessigsäure,
Cyanpropionsäure, Milchsäure, Glycin oder Äthoxyameisensäure (Äthylhemicarbonat) entsprechen.
Bei der Hydrolyse von Decoyinin spaltet sich der Zuckeranteil
des Moleküls ab. Der aus dem Decoyinin abgespaltene Suckeranteil hat drei acylierbare Hydroxyle; Diese neuen Sucker können
nach der vorstehend für -^ecoyinin beschriebenen Weise acyliert
werden, um ^ster zu ergeben, die aur Verbesserung des "uckera
009820/1823 BADORK31NAL
oder zum Schutz der Hydroxyle geeignet sind, -wenn der Zucker
als ^wischenprodukt, beispielsweise zur Herstellung anderer
if-Glycoside, verwendet wird.
Heue Polyöle werden erhalten, wenn der Zuckeranteil von
Decoyinin unter Verwendung von Raney-Nickel als Katalysator
hydriert wird. Diese neuen Polyole können anstelle von Substanzen, wie z.B. Sorbit, Mannit und Pentaerythrit als
pulverisierende Mittel in pharmazeutischen Zusammensetzungen, als Lösungsmittel und Weichmacher für Tabek, Leim, Lotionen
und Krems und dergleichen sowie als plastizierende Mittel verwendet werden. Wie die bisher bekannten Arten von Polyolen ™
können auch diese neuen. Polyole zu oberflächenaktiven Mitteln, die als Detergentien und Netzmittel geeignet sind, durch Monoacylierung
mit langkettigen lettsäureestern, beispielsweise Laurinsäure, Plamitinsäure, Stearinsäure un-d Ölsäure umgewandelt
werden. Wie die Polyacylate können beispielsweise die Distearate als Grundlage für die Salbenherstellung verwendet
werden. Die Gaprinsäuremonoester ist, wenn er nach dem.
U.S.-Patenten Nr0 2 357 077 und 2 357 078 hergestellt- und
formuliert wird, als Schädlingsbekämpfungsmittel geeignet. Die Ester mit trocknenden ülsäuren, wie z.B. Leinsamenölsäure,
sind, wenn sie nach dem in "Industrial and Engineering Chemistry, Bd. 37, S. 809-12 (1945) beschriebenen Verfahren hergestellt |
werden,als trocknende Öle in Lacken und dergleichen wertvoll.
Durch Methylieren wird Adenin von Decoyinin abgespalten. Die
vorliegenden Daten zeigen, dass der Zuckeranteil von.Decoyinin (J6^12^5 ist, während man bei Angustmyoin A CqH10Oj- erhält.
Durch Itfatriumborhydrid wird Decoyinin nicht reduziert und dadurch
wird die Abwesenheit eines Aldo-Ketose-Zuckers angezeigt,
wie er in Hygromycin gefunden wurde,.
Decoyinin erscheint als kristallines Hydrat, Präparat 20, mit einem Schmelzpunkt von 124°-126°C und als.wasserfreies
Kristall, Präparat 2f mit einem Schmelzpunkt von 183°-186°0f
Decoyinin wird ferner durch ein Ultraviolettmaximum bei 258
009820/1823
Millimikron, a=56, des wasserfreien kristallinen S-toffes in
alkoholischer 0,01 η Schwefelsäure charakterisiert, wie in
Fig. 2 gezeigt wird; Z^Tn = + 18,6° in Dimethylformamid
und + 37° in Dimethylsulfoxyd«
Das Infrarotspektrum zeigt vielfache OH/KK—Banden sowie eine
Reihe von Banden, die eine Purinringstruktur anzeigen, wie an
dem wasserfreien kristallinen -^ecoyinin in Pig. 1 gezeigt
wird« Das Infrarotabsorptionsspektrum von Deco^^inin in einer
Mineralölsuspension weiste charakteristische Absorptionsbande
auf, die in reziproken cm bei den nachfolgenden Frequenzen ausgedrückt werden: 3420, 3390, 3300, 3170, 3070, 2710,
2640, 1690, 1672, 1655, 1645, 1605, 1573, 1565, 1515, 1420, 1335, 1310, 1300, 1280, 1238, 1218, 1181, 1143, 1102, 1094,
1085, 1073, 1060, 1047, 1013, 985, 965, 915, 883, 838, 815, 790, 772, 746 und 725.
Die nachfolgenden Beispiele erläutern die Produkte der vorliegenden
Erfindung und das Verfahren zu deren-Herstellung» Alle Prozentsätze sind auf das Gewicht bezogen, und alle Lösungsmittelgemisch-Mengenanteile
sind, wenn nicht anderweitig angegeben, auf das Volumen bezogen.
Fermentation in Laboratoriumsmengen.
hygroscopicus var» decoyicus, MRRL 2i auf einem sterilen Schrägnährboden des nachstehenden Mediums:
S« hygroscopicus var» decoyicus, MRRL 2666, wurde bei 280C
| Maltose | 10 g | BAD ORJG«NAL |
| Trypton | 5 g | |
| Sek» Kaliumphosphat | 0,5 g | |
| Natriumchlorid | 0,5 g | |
| Hydriertes Eisensulfat | Spuren | |
| Agar | 15 g | |
| destilliertes Wasser, | ||
| bis zu einer Menge von | 1 Liter | |
| 009820/1823 |
sieben Tage lang gezüchtet, "bis die Sporenbildung abgeschlossen
war. Die Sporen eines derartigen Agar-Schrägnährbodens wurden zum Impfen von 100 ecm des nachfolgenden
Impfmedrums in einem 500 ecm fassenden Kolben verwendet:
Glucose 25 g
Sojapepton 10 g
Maisquellmasse 3g
Hefeextrakt 3g
H-Z-Amin A+ 2g
Ammoniumsulfat 3- g
I-iagne s iumsulf at 0,2 g
Natriumchlorid 0,1 g
hydriertes Eisensulfat 0,02 g
" Mangansulfat 0,003 g
" Zinksulfat 0,004 g
Prim« Kaliumphosphat 1,9 g
see. Kaliumphosphat 1,1 g
Einstellung auf einen
pH—Viert von 7,2 vor der
Sterilisation 1 Liter
pH—Viert von 7,2 vor der
Sterilisation 1 Liter
enzymatisches Digest von Kaseine
Dieses Impfmedium wurde 72 Stunden bei 28°G auf einer Rotations
schüttelmaschine bei 250 U/Min, bebrütet.
Die auf diese V*eise erhaltene Kultur -wurde zum Impfen des nach
folgenden stei'ilen Gärmediums verwendet:
Kay-Sojabohnenmehl'+ 30 g
Amnioniumsulfat 5 g
Amnioniumsulfat 5 g
Glycerin 40 g
Gerelose 20 g
Calciumcarbonat 4 g
Calciumcarbonat 4 g
Wasser 1 Liter
(Der pH-Wert wurde vor dor Sterilisation auf 7,2 eingestellt)
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Fettextrahiertes Sojabohnenmehl, das fein gemahlen
und dann in 100 ecm Mengen in 500 ecm fassenden Erlenmeyer-Kolben 5 Tage (bei 30 C)
auf einer Ro tat ions schüttelrnas chine bei 250 XJ/i'iin«
bebrütet worden waren.
Eine aus der gesamten Brühe entnommene Probe wurde durch
Papierchromatographie fraktioniert. Die Decoyinin-Zone ■ wurde durch Bioautographie mit Mycobacterium phlei festgelegt.
Die Psicofuranin- und Adeninzonen, die gleichfalls in der gesamten ^rühe vorhanden waren, wurden mittels eines
Cary-Spektrophotometers durch ihre Absorption bei 262 mu festgelegt. Die relativen Wanderungsgeschwindigkeiten (Rf)
der Fraktionen in einem Lösungsmittelsystem aus 81 cß>
n-Butanol, 2 i<> Piperidin und 17 i° Wasser betragen für Decoyinin
Rf. = 0,37 9 Psicof uranin R. = 0,13 und Adenin R- = 0,25.
A. Industrielle Fermentation:
Das in Beispiel 1 beschriebene in einem 500 ecm fassenden
Impfkolben befindliche geimpfte Medium wurde 48 Std0 bei
30 C bebrütet. Dann wurden 75 ecm davon zur Impfung von
12 Litern des gleichen Mediums in einer ImpffI
P Die Impfflasche wurde mit einem Rührer bei 280 U/Min, gerührt,
mit 6 Liter Luft pro Minute belüftet und bei 300O zwei Tage
fermentiert, wonach es als Impfstoff für 250 Liter eines endgültigen sterilen Gärmediums der gleichen Zusammensetzung
wie in Beispiel 1 in einem 378 Liter fassenden Tank verwendet wurde. Das Medium wurde mit UaOH auf einem pH-Wert von
7,2 eingestellt und dann sterilisiert. Wach der Sterilisieruiif;
war der pH-Wert 7,8. Der Vergärer wurde mit einem offenen Rührwerk bei 280 U/Min, gerührt, mit 100 Liter Luft/Minute belüftet
und bei 3O0O vier Tage vergoren, während welcher Zeit
Decoyinin erhalten wurde.
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B. Extraktion von rohem kristallinen Decoyinin.
Jjie gesamte Brühe, 250 Liter, wurde mit Schwefelsäure auf
einen pH-Wert von 2,0 eingestellt, 9»98 kg Diatomeenerde wurden zugegeben und der Stoff wurde filtriert. Das Filtrat
wurde mit 5 kg Aktivkohle und 7»7 kg Diatomeenerde gemischt
und das Gemisch wurde filtriert. Das klare liltrat wurde ausgeschieden, während Decoyinin in dem Kohlekuchen enthalten
war. Der Kohlekuchen wurde dreimal mit je 18,9 Liter Aceton ausgewaschen, um das "-Decoyinin zu entfernen« Die Acetonlösung
wurde bei 38° bis 480C auf eine wässrige Lösung von
4 Liter eingeengt. Die wässrige Lösung wurde mit1 1j ecm fj
konzentrierter Schefelsäure auf einen pH-Wert von 7>0 eingestellt
und dann gefriergetr-aknet wobei man 414 g festes rohes Decoyinin erhielt. Der gefriergetrocknete Stoff wurde
in 2 Liter Wasser gelöst bei 50 C und auf Raumtemperatur gekühlt, um die kristallisation des rohen kristallinen
Decoyinin zu bewirken, und zwar das Präparat 2a, dessen Schmelzpunkt bei 198° bis 2000C lag.
C. Fraktionierung von rohem kristallinem Decoyinin.
1 g des -Präparates 2a wurde durch ^"egenstromver teilung nach
Craig in 150 Durchgängen unter Verwendung eines Lösungsmittelsystems
fraktioniert, das aus gleichen Teilen n-Butanol und Wasser bestand. Drei Fraktionen wurden erhalten, die bei
Verdampfen des Lösungsmittels die in Tabelle X gezeigten kristallinen -Produkte ergaben.
009820/1823 BAD
| Tabelle X | Mono hy drat d.es Decoyinins Präparat 2c |
Adenin Präparat 2d |
|
| Ps icofuranin, Präparat 2b |
• zweite |
dritte | |
| "Fraktion | erste | K = 0,705 | K = 1,5 |
| K = 0,282 | 260 mg | 110 mg | |
| erhaltenes Gewicht | 388 mg | 34 °ß> | 22 # |
| berechne$-Satz des t'räp. 2a |
44 $ | 124-125 | 292-295 |
| Schmelzpunkt, 0C | 209-210 | a = 57 | a = 105 |
| UV-Maxima bei 262 mu in Wasser |
a = S) | -41° | - |
| /α/-ρ in Wasser | -46 | ||
| Elementaranaly s e | 44,32 | ||
| σ | 45,82 | 4,94 | |
| H | 5,18 | 26,67 | |
| 0 | 28,63 | 23,55 | 49,5 |
| 23,04 | |||
D, Andere Fraktionen des rohen kristallinen Decoyinins,
Eine 1 g schwere x robe des nach dem Verfahren des Teil B
gewonnenen rohen kristallinen Decoyinins wurde in einer Gegenstromverteilungsmaschine nach Craig mit 200 Rohren
bei 200 Durchgängen in dem gleichen Lösungsmittelsystem wie in Teil C fraktioniert. Die Fest st off toes timmung zeigte
drei Fraktionsmaxima: K = 0,29, Psicofuranin, K = 0,73,
Decoyinin und K = 1,69, Adenin. Jede der Fraktionen wurde zur Trockne eingedampft. Das Decoyinin wurde aus wasser umkristallisiert,
um 210 mg wasserhaltiges kristallines Decoyinin zu ergeben, und zwar das -Präparat 2e, dessen Schmelzpunkt
bei 124° bis 1260O lag. Die Elementaranalyse für Präparat 2e
ergab noch dem trocknen bei 600O folgende Werte!
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BAD ORIGiNAL
Berechnet für CL^IL,,N1-O,:
C 46,97; H 5,38; If 22,75; O 24,92; gefunden: C 46,02; H 5,16; Ii 23,29; O 24,90
(direkt)«
Das UT-Sρektrum des Präparates 2e zeigte I-Iaxima "bei 261 rau ,
a= 53,2 in 0,01 η Kaliumhydroxyd und bei 259 ψ&, a= 50,8
in 0,01 η Schwefelsäure.
Bei einer anderen Fraktionierung erhielt man aus 40 g rohem
Decoyinin, die nach dem Verfahren des Teil B gewonnenen worden
waren, 7,3 g wasserhaltiges kristallines Decoyitin entsprechend
Präparat 2e. 1 g desselben wurde aus 40 ecm absolutem
Äthanol uinkristallisiert, um wasserfreies kristallines
Decoyinin, Präparat 2f, zu ergeben, dessen Schmelzpunkt
bei 183° bis 186°C lag. Mach dem xrocknen bei 600C ergab das
Präparat 2f die folgende Elementaranalyse:
0= 47,11; H= 5,03; K= 25,03; 0= 23,01 (direkt).
Das Inirarotabsorptionsspektrum und das UV-Spektrum des
Präparats 2f werden in den zeichnungen in Pig. 1 bzw. I1Ig0 2
gezeigt.
E. Fraktionierung durch Flüssigkeits-JTüssigkeits-Extraktion.
Bach dem Verfallbi des ^eils B erhaltenes rohes kristallines
Decoyinin wurde durch i'lüssigkeits-Flüssigkeits-Gegenstrom-Extraktion
fraktioniert. Das Lösungsmittelsystem bestand aus gleichen teilen n-Butanol und Wasser. 100 g rohes kristallines
Decoyinin wurde in 1 Liter des aus der heissen oberen und der unteren Phase bestehenden Lösungsmittelsystems gelöst.
Diese Lösung wurde als Einsatzmaterial für die Kolonne verwendet*
Dem Abfluss aus der HTüssigkeits-Flüssigkeits-Gegenstrom-Extraktionskolonne
folgte UV-Analyse, Bestimmung des Feststoffgehaltes und seiner biologischen Aktivität. Aus
der biologisch aktiven Fraktion des Abflusses wurden 2^,5
Decoyinin, Präparat 2e, erhalten, dessen Schmelzpunkt bei
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125 "bis 130° lag und das eine optische Drehung von f&Jjy =
+ 35,6 (1 °/o in Wasser) hatte,
Beispiel 3
Zu einer lösung von 2 g des Präparates 2f in 50 ecm
Pyridin wurden 25 ecm Essigsäureanhydrid zugegeben. Das Gemisch wurde 7 Tage bei 25 C stehengelassen. 18 g zer—
stossenes Bis wurden zu dem Gemisch, das 1 1/2 Std. gerührt
wurde, zugegeben; dann wurde es zu einem dicken Syrup unter hohem Vakuum eingedampft. Der Syrup wurde in Chloroform gelöst,
mit Wasser und 0,03 η Schwefelsäure gewaschen, über Natriumsulfat getrocknet und zur Trockne eingedampft. Der
getrocknete Syrup wurde in Äther gelöst und aus demselben durch Zugabe von Hexan ausgefällt, wobei man 1,7 g eines
weissen feststoffs, präparat 3a erhielt. Das j-'räparat 3a
wurde weiter durch Gegenstromverteilung nach Craig gereinigt, wobei das Lösungsmittelsystem aus Wasser : Äthanol : Acetat :
Cyclohexan in einem Volumenverhältnis von 30 : 20 : 25 : 25
verwendet wurde« !lach 1000 Durchgängen wurden awei Fraktionen
erhalten. Die erste bei K = 1,86 erhaltene Fraktion wurde aus Wasser auskristallisiert, wobei man 4-20 mg eines Stoffes,
Präparat 3b erhielt, dessen ochraelsxDunkt bei 152° bis 153°'J
lag und dessen ülementaranalyse dem des Decoyininpentaacetats
ent sprach:
Berechnet für Cp-]EU^eOq:
C = 51,32; H = 5,13; N = 14,25; 0 = 29,32; gefunden: G = 51,80; H = 4,71; N = 13,84} 0 = 30,50;
-(direkt).
Die sweite bei K = 0,5 erhaltene rraktion wurde aus Äthylacetathexan
auskristallisiert, wobei man 600 mg eines Stoffes, Präparat 3c, erhielt, dessen Schmelzpunkt bei etwa 650C Ia^
und des.en ülementaranalyse dem Decoyinintetraacetat entsprach.
009820/1823 BAD ORIG<NAL
Berechnet für C1 gH„.jIJj-Og:
C = 50,76; H = 5,16; N = 15,58; 0 = 28,48;
gefunden: C = 50,95; H = 4,59; N = 15,24; 0 = 28,81;
(direkt).
Auf ähnliche Weise können andere Acylierungen des Decoyinins
vorgenommen v/erden, insbesondere mit den acylierenden
niederen Kohlenwasserstoffcarbonsäuren durch Umsetzung des entsprechenden Säureanhydrids oder Säurehalogenids, wie
ζ„ 16. l'ropionsäureanhydrid, Acrylsä,ureanhydrid, Buttersäure—
anhj/dx'id, Benzoesäureanhydrid, iienzoylchlorid, Acetylchlorid, ™
Gap^oylbromid mit Decoyinin in PyridinlÖGung. Die niederen
Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylate können anstelle des
Decoyinins verwendet werden.
Die Acylierung kann bei rohen Decoyinin-Präparaten vorteilhaft erweise als Verbesserungsmittel des Decoyinins angewandt
werden. Das acylierte Decoyinin kann aus dem Reaktionsgemir.ch
abgetrennt, gereinigt und dann mit einem verdünnten wässrigen Alkali hydrolysiert werden, wobei man gereinigtes
Decoyinin erhält. Auf diese Weise wird DecoyMn leicht von nicht acylierbaren Verunreinigungen getrennt, unter Ausnutzung
der veränderten physikalischen Eigenschaften infolge der M
Acylierungο
■Beispiel 4
10.000 orale Tabletten mit einem Gehalt von jeweils"500 mg
Decoyinin wurden aus den folgenden Stoffarten und· -anteilen
hergestellt:
1. DecoyMn, kristallin 5.000 g
2. Lactose 1.500 g 3« Maisstärke 250 g
4. Talkum 100 g
5. Magneslumstearat 50 g
009820/1823
Die fein pulverisierten Stoffe 1, 2 und 3 wurden gründlich
gemischt, zer^tossen und dann granuliert. Die Granulate wurden mit den Stoffen 4- und 5 gemischt und tablettiert,, Bei
der Verabreichung, waren die Tabletten "beständig und zeigten
eine ausgesprochene antibiotische Aktivität.
Ähnliche Ergebnisse wurden bei Tabletten erhalten, die unter Verwendung von 2500 g Decoyinin und 2500 g Psicofuranin anstelle
von 5000 g Decoyinin hergestellt worden waren»
Ähnliche Ergebnisse wurden ferner bei Tabletten erhalten, die unter Verwendung von 2500 g Decoyinin und 2500 g Erythromycin
anstelle von 5000 g Decoyinin hergestellt worden waren.
Ähnliche Ergebnisse wurden auch bei T-abletten erzielt, die
unter Verwendung von 2500 g Decoyinin und 2500 g Nystatin anstelle
von 5000 g Decoyinin hergestellt worden waren.
Beispiel 5
Decoyinintriacetat«
Decoyinintriacetat«
Zu einer Lösung von 2,5 g Decoyinin (Präparat 2f, beschrieben in Beispiel 2, Teil D) in 20 ecm Pyridin wurden bei 4°C
8 ecm Essigsäureanhydrid zugegeben. Das G-emiuch wurde über
Nacht bei Haumtemperatur stehengelassen. Bei Zugabe von 3 Volumen
Eiswasser (1° bis 30C) zu dem Gemisch fand eine Kristallisation
statt, wobei man 1,65 g Decoyinintriacetat-Kristalle erhielt, deren Schmelzpunkt bei 171° bis 1850C lag. Die Umkristallisation
aus 25 ecm Äthanol führte zu 1,05 g Decoyinintriacetatkristallen,
deren Schmelzpunkt zwischen 188° und 1900C
lag. Ein UV-Maximum a= 56,7 in alkoholischer 0,01 n-Schwefelsäure
lag bei 258 Millimikron. Die folgende Elementaranalyse wurde erhalten:
Berechnet für C17H19N5O7:
C = 50,37} H = 4,72; N = 17,28; 0 = 27,63;
gefunden: 0 = 50,47; H = 4,62; N - 17,59; 0 = 27,50.
0 0 98 2 0/1823 bad
Claims (5)
1. Oecoyinin-triester der allgemeinen Pormel
H-U-H
GH,
OH2OR
in der E eine Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit
2 "bis einBchliesslich 12 Kohlenstoffatomen, eine Halogen-,
JTitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-, Thiocyan- oder niedrigalkoxysubstituierte
Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylgruppe mit 2 bis einachlieeslieh 12 Kohlenstoffatomen oder eine
niedere Alicoxycarbonylgruppe "bedeutet«
2. Decoyinin—triester niederer Carbonsäuren,
3 ο Decoyinintriacetat«
4. Verfahren zur Herstellung von Decoyinin-triestern gemäss
Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man Decoyinin der
I'ormel
.K^. VaQGVi (Art. / i, 1 .,.,■;. 2 Nr. 1 Satz 3 d«e Änderune««&V. A.A.ISfiZI
0 0 9 8 2 0/1823
OH 0H20H
mit etwa 3 I-iol eines Acylierungsmittels, das ein Säureanhydrid-
oder Säurehalogenid mit einem Kohlenwasserstoffearbonsäureacylrest
von 2 bis einr.chliesslich 12 Kohlenstoffatomen,
einem Halogen-, Hitro-, Hydroxy-, Amino-, Cyan-,
Ihiocyan- oder niedrig-Alkoxy__Kohlenwasserstoffcarbonsäureacylrest
mit 2 bis einschliesslich 12 Kohlenstoffatomen ocier
ein niederes Alkoxycarbonylhalogenid ist, bei etwa 4 C v.'shrend
etwa 10 bis 24 Std. umsetzt.
5. Verfahren nach Anspruch 4f dadurch gekennzeichnet, dass
man zur Herstellung eines Decoyinintriacetats mit einem
Schmelzpunkt von 188
bis 1900C
scoyinin mit etwa 3
Essigsäureanhydrid bei etwa 4 C während etwa 1ü bis 24 Std.
umsetzt.
Für
The Upjohn Company Kalamazoo (Michigan, TStA)
Rechtsanwalt
009820/1823
BAD ORIGINAL
39-Leerseite
Applications Claiming Priority (1)
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|---|---|---|---|
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|---|---|
| DE1620597A1 true DE1620597A1 (de) | 1970-05-14 |
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ID=23465833
Family Applications (1)
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|---|---|---|---|
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| DE (1) | DE1620597A1 (de) |
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| CN119776382B (zh) * | 2025-01-21 | 2025-07-15 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 一种谷维菌素正调控基因scn1155及其过表达基因工程菌、制备方法和应用 |
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-
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- 1965-05-28 NL NL6506772A patent/NL6506772A/xx unknown
Also Published As
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