DE1642653A1 - Fermentationvsverfahren und -vorrichtung - Google Patents
Fermentationvsverfahren und -vorrichtungInfo
- Publication number
- DE1642653A1 DE1642653A1 DE19671642653 DE1642653A DE1642653A1 DE 1642653 A1 DE1642653 A1 DE 1642653A1 DE 19671642653 DE19671642653 DE 19671642653 DE 1642653 A DE1642653 A DE 1642653A DE 1642653 A1 DE1642653 A1 DE 1642653A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- fermentation
- medium
- chambers
- fermenter
- chamber
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims description 102
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims description 101
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 47
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 18
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 16
- 238000005273 aeration Methods 0.000 claims description 13
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 13
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 11
- 238000009826 distribution Methods 0.000 claims description 7
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 claims description 6
- 239000003209 petroleum derivative Substances 0.000 claims description 6
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 4
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 239000012533 medium component Substances 0.000 claims 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims 1
- 238000005476 soldering Methods 0.000 claims 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 74
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 64
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 22
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 18
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 18
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 15
- UFWIBTONFRDIAS-UHFFFAOYSA-N Naphthalene Chemical compound C1=CC=CC2=CC=CC=C21 UFWIBTONFRDIAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 14
- 239000011343 solid material Substances 0.000 description 13
- 210000004215 spore Anatomy 0.000 description 13
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 description 12
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 12
- YGSDEFSMJLZEOE-UHFFFAOYSA-N salicylic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=CC=C1O YGSDEFSMJLZEOE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 10
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 8
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 5
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 5
- FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N papa-hydroxy-benzoic acid Natural products OC(=O)C1=CC=C(O)C=C1 FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 229960004889 salicylic acid Drugs 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 4
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 4
- 238000010923 batch production Methods 0.000 description 4
- 210000005056 cell body Anatomy 0.000 description 4
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 4
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 4
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 4
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 4
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 4
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 4
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 4
- 241000222120 Candida <Saccharomycetales> Species 0.000 description 3
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 3
- 229960003767 alanine Drugs 0.000 description 3
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 3
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 3
- 239000004088 foaming agent Substances 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 3
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 3
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 3
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 3
- 150000003431 steroids Chemical class 0.000 description 3
- 230000001360 synchronised effect Effects 0.000 description 3
- YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N (+)-Biotin Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)O)SC[C@@H]21 YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N 0.000 description 2
- QNAYBMKLOCPYGJ-UHFFFAOYSA-N Alanine Chemical compound CC([NH3+])C([O-])=O QNAYBMKLOCPYGJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonia chloride Chemical compound [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VZCYOOQTPOCHFL-OWOJBTEDSA-N Fumaric acid Chemical compound OC(=O)\C=C\C(O)=O VZCYOOQTPOCHFL-OWOJBTEDSA-N 0.000 description 2
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000007630 basic procedure Methods 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 2
- WJJMNDUMQPNECX-UHFFFAOYSA-N dipicolinic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=CC(C(O)=O)=N1 WJJMNDUMQPNECX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 2
- POULHZVOKOAJMA-UHFFFAOYSA-N dodecanoic acid Chemical compound CCCCCCCCCCCC(O)=O POULHZVOKOAJMA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 2
- 238000005187 foaming Methods 0.000 description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 2
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 2
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 2
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 2
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 2
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 2
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 2
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000000700 radioactive tracer Substances 0.000 description 2
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 2
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 2
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 2
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 2
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K tripotassium phosphate Chemical compound [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M Chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 241000186216 Corynebacterium Species 0.000 description 1
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 1
- 241000193385 Geobacillus stearothermophilus Species 0.000 description 1
- 239000005639 Lauric acid Substances 0.000 description 1
- 241000589517 Pseudomonas aeruginosa Species 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589634 Xanthomonas Species 0.000 description 1
- 240000008042 Zea mays Species 0.000 description 1
- 235000005824 Zea mays ssp. parviglumis Nutrition 0.000 description 1
- 235000002017 Zea mays subsp mays Nutrition 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- DIZPMCHEQGEION-UHFFFAOYSA-H aluminium sulfate (anhydrous) Chemical compound [Al+3].[Al+3].[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O DIZPMCHEQGEION-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 235000019270 ammonium chloride Nutrition 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 description 1
- 230000001174 ascending effect Effects 0.000 description 1
- 230000004323 axial length Effects 0.000 description 1
- 210000004666 bacterial spore Anatomy 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 229960002685 biotin Drugs 0.000 description 1
- 235000020958 biotin Nutrition 0.000 description 1
- 239000011616 biotin Substances 0.000 description 1
- 235000008429 bread Nutrition 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 1
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 238000011437 continuous method Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 235000005822 corn Nutrition 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000006477 desulfuration reaction Methods 0.000 description 1
- 230000023556 desulfurization Effects 0.000 description 1
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000012470 diluted sample Substances 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 229950010030 dl-alanine Drugs 0.000 description 1
- 238000004945 emulsification Methods 0.000 description 1
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 1
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 1
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 1
- -1 fatty acid amines Chemical class 0.000 description 1
- 239000011790 ferrous sulphate Substances 0.000 description 1
- 235000003891 ferrous sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005188 flotation Methods 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000001530 fumaric acid Substances 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 1
- 230000001771 impaired effect Effects 0.000 description 1
- 239000012770 industrial material Substances 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910017053 inorganic salt Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 238000003798 microbiological reaction Methods 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- JCXJVPUVTGWSNB-UHFFFAOYSA-N nitrogen dioxide Inorganic materials O=[N]=O JCXJVPUVTGWSNB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001590 oxidative effect Effects 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 1
- 230000001766 physiological effect Effects 0.000 description 1
- 230000019612 pigmentation Effects 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 229920000136 polysorbate Polymers 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 229910000160 potassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011009 potassium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 239000012254 powdered material Substances 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000010298 pulverizing process Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 238000005057 refrigeration Methods 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 description 1
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 1
- 238000011218 seed culture Methods 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 239000002195 soluble material Substances 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 235000013619 trace mineral Nutrition 0.000 description 1
- 239000011573 trace mineral Substances 0.000 description 1
- VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N trans-butenedioic acid Natural products OC(=O)C=CC(O)=O VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012780 transparent material Substances 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- 210000005253 yeast cell Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M27/00—Means for mixing, agitating or circulating fluids in the vessel
- C12M27/18—Flow directing inserts
- C12M27/22—Perforated plates, discs or walls
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/34—Internal compartments or partitions
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Ferment ation svorfahren und -vorrichtung
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Fermentationsverfahren unter Verwendung einer mehi»3tufigen Forraentetionsvorrichtung,
welches die Stufe der aeroben oder anaeroben Züchtung von Mikroorganismen umfasst« wobei die Vorrichtung einen Satz von
senkrecht Übereinander angeordneten Kammern aufweist, die durch
horizontal angeordnete« mit einen oder mehreren Löchern versehene Platten getrennt sind. Die Erfindung betrifft auch die
Perraentationsvorrichtung.
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Fermentationsverfahreh
unter Verwendung einer mehr3tufigen Fermentationsvorrichtung und insbesondere ein Fermentationsverfahren/ gemäss welchem
Mikroorganismen aerob oder anaerob in einer Perraentationsvorrichtung gezüchtet werden» die mit einer oder mehreren Platten
109882/0298
(Art. 711 Atai 2 Nr. 1
gAD ORIGINAL
ausgestattet ist, die oich horizontal durch dleae hinduroh
erstrecken, wobei jede dieser Platten eine oder mehrere öffnungen aufweist.
Industriell wird die mikrobiologische Fermentation gewöhnlich nach einem diskontinuierlichen Verfahren durchgeführt. Kontinuierliche Verfahrenstechniken wurden angestrebt, wobei entweder ein einziger Fermenter verwendet wurde oder mehrere in
Serie angeordnete solche Fermenter verwendet wurden» doch wurde keine Technik so vollständig entwickele, dass sie für
technische Zwecke geeignet wäre. Allgemein wird ein kontinuierliches Verfahren mit einem einzigen Fermenter im Falle der mit
Wachstum verbundenen Fermentation durchgeführt, in der die Bildung eines gewünschten Produkts zusammen mit dem Wachstum des
Mikroorganismus in dem Kulturmedium stattfindet. Es wird auch mit mehr als zwei Fermentern im Falle nicht mit Wachstum verbundener Fermentation durchgeführt, bei der die Bildung eines
gewünschten Produkts nicht bei dem Wachstum des Mikroorganismus erfolgt,sondern nach Beendigung des mikrobiellen Wachstums
ψ stattfindet. Zn diesem letzteren Falle muss die kontinuierliche
Pigmentation, mit mehr als zwei Fermentern durchgeführt werden,
wobei in jedem von diesen eine besondere Züchtungsphase, die von den anderen verschieden ist, vorgenommen wird« so dass das
mikrobielle Wachstum und die Produktbildung getrennt während
des Verfahrens stattfinden. Dies erfordert jedoch zusätzliche Einrichtungen , wie beispielsweise ein Belüftungssystem, eine
Vorrichtung zum Bewegen, eine Dosierpumpe usw. mit einer Ka pa-
109882/0298
6AD ORiQINAL
zit&t» die der Anzahl der verwendeten Permenter proportional
1st. Bei« Einsatz im technischen Maeestabe let die zur Durchführung des Verfahrens auf der Basis eines stationären Zuetands
erforderliche Anlage sehr kostspielig.
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Fermentationsverfahren« bei welche« ein Permenter verwendet wird, der mehrere Kammern
aufweist und neuartige Betriebscharakteristiken hat. Durch diese Charakteristiken können bessere und wirksamere Ergebnisse
erzielt werden. Mit dieser Vorrichtung können nicht nur diskontinuierliche und kontinuierliche Verfahren mit Erfolg durchgeführt werden« sondern es können auch synchrone Züchtung und
Gewinnung der Zellen sehr wirksam vorgenommen werden. Ausserdem können durch diese Vorrichtung die oben genannten Nachteile der
bekannten kontinuierlichen Verfahren sowohl in wirtschaftlicher als auch in funktloneller Hinsicht aufgrund der folgenden vorteilhaften Merkmale vollständig ausgeschaltet werden: (1) Die
Vorrichtung weist eine einfache Konstruktion auf j (2) sie erfordert nicht notwendigerweise eine Vorrichtung zum Bewegen, da
die Flüssigkeit durch Belüftung gut gerührt wirdι (2) sie erfordert keine Pumpe zur Überführung der Brühe von einem Gefäss
in ein anderesι (4) es iet leicht* den stationären Zustand aufrechtzuerhalten; (5) der Betrieb ist einfach und leicht zu automatisieren; (6) das Kühlen und Erhitzen erfolgt mit hohem Wirkungsgrad aufgrund der grossen wärmeübergangs fläche Je EIn-
109882/0298
he it Innenvolumenj (7) wird ein festes Substratmaterial bei der
Fermentation verwendet (im folgenden als "Feststoff-Fermentation"
bezeichnet), bo werden die dispergieren Feststoffteilchen
in der Säule durch den Betrieb der WährStufenvorrichtung gehalten,
wodurch gewöhnlich eine gute Ausbeute im Verhältnis zu den eingesetzten Rohmaterial erzielt wird« da wenig Materialverlust
durch den überlauf der Flüssigkeit auitrittj (8) bei der Feststoff-Fermentation
ist es weder erforderlich, das Material zu pulverisi3ren noch ein Lösungsmittel, das für den Mikroorganismus
schädlich sein kann, zu verwenden. Ein anderes bedeutendes Merkmal bei einem kontinuierlichen Betrieb ist, dass bei
dem erfindungsgemässen Verfahren das Zellenalter in der abgezc nen fermentierten Brühe enger in Beziehung zu der durchschnittlichen
Verweilzeit gehalten wird als bei einem einzigen Rührbehälter, bei welchem das Zellenalter in der fermentierten
Brühe zwischen N.ull und unendlich liegt.
Die für das erfindungsgemässe Verfahren verwendete mehrstufige
Fermentationsvorrichtung be3teht im wesentlichen aus einer das Gehäuse des Fermenters bildenden Säule und einer oder mehreren
Platten, von denen jede mit einem oder mehreren Löchern versehen ist, wobei die Platte oder Platten horizontal quer zu dem
Fermenter angeordnet ist bzw. sind, so dass dieser in Abschnitte unterteilt iefc. Baulich gesehen wex«den die Oehäuseabsohnitte
des Fermenters, von denen jeder an beiden Enden offen und ge-
109882/02^9
6AD ORfG|NAL
flanscht ist« aufeinander gesetzt* wobei eine mit einem Looh
oder Löchern versehene Platte jeweils zwischen zwei Abschnitte eingesetzt wird/ so dass eine Reihe von Kammern gebildet wird»
die durch Abdecken des oben und unteren Endes verschlossen werden. (Wenn im folgenden von der ersten Kammer» zweiten Kammer
usw. die Rede ist« so ist Jede Kammer vom Boden aus nach
aufwärts numeriert.) Die Vorrichtung weist Einlass- und Auslassöffnungen
an beiden Enden für sowohl Luft als auch Medium auf, sowie Heiz- und KUhleinrlchtungen (z.B. einen Mantel), ein
Thermometer* Rohre (oder Hähne) zur Probeentnahme und andere Hilfseinrichtungen, die nützlich sein können.
Der Fermenter wird nun unter Bezugnahme auf die Zeichnung näher beschrieben. Es zeigen:
Flg.1 einen Axiall&ngsschnitt durch den für das erflndungsgemässe
Verfahren verwendeten Fermenter;
Fig.2 eine Draufsicht auf eine mit Löchern versehene Platte;
Fig. 3 einen Axlallängaechnitfc durch eine andere AusfUhrungsfown
des für das erfindungsgeiaäSiae Verfahren verwandeten Fermenters
i
. 4 eine graphiäsoft« Baimt^ltimg dar Hesishung zwischen der
ation ιηχά der äureh^ohtilttilJksii Vsfweil&äifc In
Km-tm? Im Verglaiuh zu einer WaeiHöt'*£äii&vi2»tfe bsi d:la»ko»^
llQhu&s, gmuäss Versuch h-, al® aaigt, uA&n die
BAD
Zellenkonzentration bei einem kontinuierlichen Verfahren unter
Verwendung des Mehretufenferraenters gernäss der vorliegenden
Erfindung einen stationären Zustand erreichtj
Fig. 5 den Betriebszustand innerhalb jeder Kaniner des Permentere«
das Kulturmedium sioh in der Fermentation befindet;
Fig. 6 die Gesamtströmungscharakteristiken des Ferment or s in
Eezug auf verschiedene Kombinationen von Lochdurchraeseer einer
Platte mit dem Verhältnis des öffnungsquersohnltts Jeder Platte
zu dem Oesamtquersohhitt dieser Platte unter Verwendung von
gewöhnlichem Wasser gemäss Versuch tj und
Fig. 7 ebenfalls die Geaaifltströmungacharakteristiken eines Fermenters
in Bezug auf verschiedene Kombinationen des Lochdurchmeesers
einer Platte mit dein Verhältnis des öffnungsquerschnitts
,jeder Platte zu dem Gesamt querschnitt der Platte unter Verwendung
einer tatsächlichen fermentierten Brtlhe gemäss Versuch 2.
Bs sei nun auf Fig. 1 Bezug genommen» die im Vertikaischnitt
einen zylindrischen mehrstufigen Fermenter zeigt s der aus vier
Kammern (1) besteht» die Übereinander mit den Platten (2) als
Trennviandungen angeordnet sind. (Fig. 2 zeigt die Oberfläche
ölner Platte.) Jede Kammer kann mit ainer Temperaturreguliereinrichtung,
wie beispielsweise ©ineia Mantel (5) und einer elektrischen
Heizung, ausgestattet sein und das KopfetUck (5)
sowie der Boden (6) sind mit einem Paar von Rohren (
109882/0203
verbunden, die das Einströmen lind AbfHessen von Luft bzw.
Medium ermöglichen. Diese Rohre können direkt an die Kammern angeschlossen sein* und in diesem Falle sind Abschlussteile (5)
und (6) nicht erforderlich.
Der Fermenter weist gewöhnlich eine Anzahl von Kammern von einheitlicher Form und Grosse auf, die übereinander angeordnet
sind, doch kann er auch Kammern, die in Form und Grosse verschieden sind, aufweisen. Die Hauptsache ist, dass der Fermenter durch eine Platte oder Platten unterteilt ist, von denen
jede zumindest eine Öffnung aufweist. Die Grosse, Höhe und
Breite des Fermenters kennen daher frei gewählt werden, und die Form der Kammer kann teilkugelig, wie in Flg. 3 gezeigt,
oder oval oder kubisch sein. Es ist besser, dass der Gesamtaufbau eines solchen Fennentere, wenn alle Kammern verbunden
sind, ein langgestrecktter ist. Bei einer speziellen AusfUhrungsform des Fermenters, wie er in den in einigen der folgenden Beispiele beschriebenen Versuchen verwendet wurde,
weist Jede Kammer eine Höhe von 12 cm und einen Durchmesser von 7 om aufj jede Platte hat 100 Löcher von 2 mm Durchmesser,
und" die Gesamtquerschnittsflache>
die von den Löchern eingenommen wird, beträgt etwa 8 - 10 # der Gesamtquerschnittsfläche der Platte. Die hier angegebenen Werte sind lediglich ein
Beispiel für die Beziehung des Lochdurchmessers mit dem Öffnungsverhältnis einer Platte zur Gesemtplattenquerschnittsflache. Die Kombination dieser Grossen variiert, wie im folgenden noch erörtert wird, in einem weiten Bereich.
109882/0298
Die Gehäuse teile können aus Metall,Glas oder Kunststoff gefertigt sein. Bin transparentes Material ist jedoch zweckmässig,
da das Innere des Fermenters während des Betriebs dann sichtbar 1st. Das Material, aus dem die Platten gefertigt sind, 1st
ebenfalls frei wählbar, doch sollten die Bestandteile des Mediums und das infolge· der Fermentation erzeugte Produkt, die
auf das Plattenmaterial wirken und dieses korrodieren können» in Betracht gezogen werden. Manchmal werden Drahtgewebeplatten
oder poröse oder perforierte Platten verwendet. Die Gröeae von jedem Loch und die Anzahl der Löcher (Öffnungsquerschnittsfläche)
werden durch solche Faktoren, wie Oröese des Fermenters und Art
der gewünschten mikrobiellen Reaktion, bestimmt. Die Anzahl der
Kammern wird durch die besten Bedingungen vom Standpunkt solcher Faktoren, wie gewünschter Fermentationatyp, Höhe und Volumen des Fermenters, Belüftungssystem, Druckabfall und dgl.,
bestimmt. Jede eingesetzte Platte kann mit den Flanschen der Gehäuseteile mit Dichtungen dazwischen verschraubt sein.
Probeentnahme-, Besohickungs- und/oder Abzugsleitungen (oder Hähne) (7), die an einzelnen Kammern montiert sind, sind ebenfalle
zur Kontrolle und Steuerung der Fermentation nützlich, da sie den Austritt oder Eintritt von flüssigem Inhalt ermöglichen.
Ein Luftfilter ist wie bei den üblichen Fermentern vorgesehen. Schllesslich kann dieser mehrstufige Ferraenter entweder allein
oder in einer Gruppe verwendet werden.
109882/0298
BAD ORIGINAL
Spezielle Merkmale dieser Ferraentationevorrichtung, wie sie oben
beschrieben wurde, sind aus den folgenden Versuchen ersiohtlich:
Versuoh 1
Die wirkung der Plattenbeschaffenheit, d.h. des Durchmessers der
Löcher und des Verhältnisses der perforierten Querschnittsfläche jeder Platte zur Gesatntquerschnittsfla'che dieser Platte* auf die
Strömungscharakteristiken der für das erfindungsgensässe Verfahren
verwendeten Fermentationsvarriehtung viurde untersucht. Die Vorrichtung
war, wie in Fig. 1 gezeigt, mit perforierten Platten in vier Kammern unterteilt» von denen jede einen Dui*©haesser
von 7 cm und eine Höhe von 12 cm aufwies. Wasser wurde mit einer Bate von 6 1 je Stunde in diese Vorrichtung vo» Boden aus eingepumpt
und floss von der obersten Kammer ab. Andererseits wurde luft vom Boden durch die an diese» angebracht® Düse aiit einer
Rate von 10 1 je Minute augeftihrt.
Wenn die Luft und die Flüssigkeit in stationärem Zustand strömten,
wurde eine Tracer-Lösung von dem Waesereinlass aus durch
£-funktionelles Einspritzen eingeführt. Die Änderung der Tracer-Konzentration
wurde in bestimmten Zeitabständen am Auslass dieser Vorrichtung bestimmt, und es wurde so eine Empfindliohkeltskurve,
d.h. Empfindlichkeit gegen Störung, erhalten. Die Gesamtströmungsaharakteristiken
wurden durch die entsprechenden Zahlen der in.Reihe angeordneten Behälter ausgedrückt, wie es in
Fig. 6 gezeigt 1st. Wenn jede Kammer der Vorrichtung sich unab-
109882/0298
BAD ORIGINAL
hängig von den. anderen In dem stationären Zustand mit Belüftung befindet» so wäre die entsprechende Anzahl von in Reihe
angeordneten Behältern vier. Wenn jedoch irgendein RUckoisehen
unter den Kammern stattfindet, so wäre die Anzahl weniger als
vier. Dies bedeutet, dass sich ein mehrstufiger Fermenter gemäss
der vorliegenden Erfindung in der gleichen Weise verhält wie die entsprechende Anzahl von in Serie angeordneten Behältern
P mit gleichem Volumen.
Unter Verwendung der Platten mit Löchern mit 2 mm Durchmesser
und einem Verhältnis von Gesamtlochquerschnittsflache in jeder
Platte zur Gesaratplattenquerschnittsflache im Bereich von 1 bis
30 % wurde das Verhalten des Fersaenters nicht beeinflusst. Bei
einem Lochdurchmesser von mehr als 3 am sollte Jedoch das Öffnungsverhältnis kleiner sein, um die Heterogenität in den Fermenter aufrechtzuerhalten. Aus diesen Versuch 1st zu schlieseen,
dass sehr komplizierte Beziehungen zwischen dem Lochdurchnesser
und dem Verhältnis der perforierten Querschnittsfläche einer
Platte zu der Oesaratquerschnittsflache dieser Platte existieren«
um einen optimalen Zustand fUr die Kombination von beiden zu erzielen. Der obige Versuch beruhte auf dem reinen Wasser-Luft-System, und die Situation wird daher durch das verwendete System
weitgehend beeinflusst.
Versuch 2
Die Wirkung der Plattenbeschaffenheit, wie sie in Versuch 1 beschrieben ist, auf d.1e Strömungscharakteristiken eines erfin-
109882/0298
dungsgemässen Fermenters wurde untersucht, wobei dieses Mal
eine tatsächliche Fermentationsbrühe verwendet wurde*
Xanthomonas eampestoris E-J24 wurde bei JK)0C zwei Tage lang
in einem Medium gezüchtet, das 3 £» u2.ur.ose>
Ö»2 & Pe pt on, 0,2 %
Fumarsäure* 0,2 % KH2PO2^ 0*2 # Ns3CO3 und 0*05 % MgSO^ . 7HgO
enthielt und mit ITaOH auf pH 6,0 eingestellt war. Die oben erhaltene
viskose Kulturbrühe wurde zur Bestimmung der StrÖmungs-Charakteristiken
dieses Fermentes in der gleichen Weise wie in Versuch 1 beschrieben verwendet. Die Ergebnisse sind in Fig. 7
gezeigt.
Unter Verwendung der Platten mit Löchern mit 5 mm Durchmesser
und einem öffnungsverhältnis in Jeder Platte im Bereich
von 1 bis 40 % wurde die Hete^ogenität in dem Fermenter völlig
aufrechterhalten. Bei einem Lochdurchmesser von mehr als 8 mm
sollte dagegen das Öffnungsverhältnis kleiner sein, um die Heterogen!
tat aufrechtzuerhalten.
Aue den obigen Versuchen 1 und 2 ist ersichtlich» dass eine solche
Beziehung eine komplizierte Funktion der Flüssigkeitseigenschaften» wie Dichte, Viskosität und Oberflächenspannung» der
Belüftungsrate» der Flüssigkeitsströmungsrate* des Abstands von
einer Platte zu einer anderen,deε Durchmessers einer Platte (der Grosse des Fermenters) usw. ist. Die Wahl der Platte bezüglich
der obigen Korabination von Lochdurchmesser und Off-
109882/0298
nungsVerhältnis hängt auch von dem Fermentationsobjekt
ab. Unter Berücksichtigung der oben beschriebenen Faktoren sollte die optimale Beschaffenheit einer Platte
individuell bei jedem Versuch vor dem tatsächlichen Einsatz des Percenters bestimmt werden. Es 1st zwar sehr schwierig solche Plattenbeschaffenheiten zu verallgemeinern, doch
liegt die am häufigsten angewendete Kombination im Bereich zwischen 1 und 20 mm bezüglich des Durchmessers der Löcher und
1 und 40 % bezüglich dee öffnungsVerhältnisses.
Versuch 3
Ein ZUohtungsmedium (pH 7*0), das je 1 1 g Oluooee, 0,5 g Hefeextrakt, 5*0 g m^Cl, 1,0 g NH4NO,, 2,0 g Na3SO4, 0,1 g MgSC4.
7H2O, 3*0 g K3HPO4 und 1,0 g KH2PO4 enthielt» wurde In einen
zylind erf örmigen Fermenter mit einer Höhe von 130 cm und
einem Durchmesser von 7 cm eingebracht, der durch fünf quer angeordnete Platten gleichmäaslg in sechs Kammern unterteilt war.
Die Beimpfung wurde mit 5 VoI-£ einer Impfkultur von E. coil
B-548* die 18 Stunden gezüchtet worden war, vorgenommen. Die
zugefUhrte Luft strömte mit einer linearen Geschwindigkeit von 7 cm/Sekunde durch den Fermenter. Nach dem Beginn des mikrobiellen Wachstums füllte die Luft in jeder Kammer einen leeren Rsum
im oberen Teil dieser Kammer gegen die unmittelbar darüber bs-
109882/0298
findliche Platte aus. Eine bestimmte Menge Flüssigkeit, die in
jeder einzelnen Kairoer gehalten wurde» wurde in Abhängigkeit
von der Menge an zugeführter Luft» dem Durchmesser der Löcher*
dem Öffnungsverhältnis in jeder Platte, den physifalisehen
Eigenschaften der Flüssigkeit und dgl. bestimmt. Ss wurde diese bestimmte Menge Flüssigkeit in jeder Kammer gehalten, wobei
selten Mischen mit der Flüssigkeit in der benachbarten Kammer auftrat. Auf diese Weise arbeitete jede Kammer getrennt und
einzeln als einzelne Fermentationsvorriehtung.
Die Phasen von bakteriellem Wachstum in der Kultur in den jeweiligen
Kammern wurden beobachtet und aufgezeichnet (nachfolgende Tabelle I). Zusammenfassend gesagt unterscheiden sich die
Wachstumsphasen von einer Kammer zu einer anderen, und die Unterschiede
zwischen den erhaltenen Werten liegen »usserhalb des Bereiche statistischer Fehler. Die Werte in Tabelle I geben
die optische Dichteeinheit an (in nachfolgenden bezeichnet als U.O.D.: optische Dichte bei 610 πΐμ χ Anzahl von Verdünnungen)*
Kammer
(vom Boden aus) U.O.P. zu verschiedenen Züchtungastunden
0 1 2 3 4
Nr. 1 0,10 0,220 0,421 0,756 1,02
Nr. 2 0,10 0,210 0,412 0,74} 0,98
Nr. 3· 0,11 0,207 0,410 0,735 0,95
Nr. 4 0,11 0,205 0,405 O:731 0,95
109882/0298
BAD ORIGINAL
Versuch 4
Nach den obigen Arbeitsweisen wurde eine Fermentation in einem anderen ^ermenter durchgeführt, der dieses Mal in 10 Kammern mit in gleiohem Abstand angeordneten Platten unterteilt
war, wobei jade Platte Löcher mit einem Durchmesser von 2 mm und ein Öffnungsverhältnis von 11 % aufwies.
fe Nach 3-stündiger Kulturinitiierung wurde ein Medium mit der
gleichen Zusammensetzung wie in Versuch 3 mit einer konstanten
Rate vom Boden des Permenters aus zugeführt. Die Verdünnungsrate, bezogen auf das Gesamtvolumen des? Mediums» betrug 1/5
je Stunde. Insbesondere wurde die Menge an zugefUhrtem Medium
mo eingestellt, dass die Verdünnungerate in der Bödenkammer
die maximale spezifische Wachstumsrate des Mikroorganismus
nicht überstieg, überschüssige Flüssigkeit, die durch den Fermenter nach oben geführt wurde» floss voa oberen Ende über.
ψ Die Unterschiede in der Zellenkonzentration von einer Kammer
zu der nächsten wurden mit fortschreitender Zeit ersichtlicher,
und nach 17 bis 20 Stunden kam der Gradient in der Zellenkonzentration in einen stationären Zustand. Die Zellenkonzentration (U.Q.D.) bei diesem Zustand und der Nucleinsäuregehalt je
U.O.D. in den einzelnen Kammern sind in Tabelle II angegeben. In Fig. 4 sind ebenfalls die Zellenkonzentrationen in einigen
Kammern in Abhängigkeit von der durchschnittlichen Verweilzeit, zu Yergieichszwecken zusammen mit der Wach3tumskurve bei dis -kontinuierlicher Kultur, gezeigt.
109882/029 8
BAD ORIGINAL
•Tabelle II
Kammer Zellenkonzentraticn Nueieinsäure
(vom Boden aus) (U.0.D.) r-HNS/U.O.D.
Nr. 3 0,310 15*0
Hr. 5 0,492 10,0
Hr. 7 0,698 8*3
Hr. 9 0,792 8,0
Nr. 10 0,810 7*9
Die obigen beiden Versuche J und k zeigen* dass die raehr~
atufige Fermentatio&svorrichtung die folgenden Merkmale aufweist:
Wenn Mikroorganismen in einem solchen Fermenter wie in Versuch >
gezüchtet werden» wirkt jede Kammer als einzelner
Fermenter* in welchem die Luft den oberen Teil des Raums angrenzend
an die darüber befindliche Platte ausfüllt und hier als Kissen wirkt. Mit anderen Vierten« das Medium innerhalb
einer Kammer wird durch Belüftung gründlich gemischt, doch
mischt es sich kaum mit dem Medium in den benachbarten Kammern. Die Gehalte an Seilen variieren daher zwischen den einzelnen
Kammern.
Wird andererseits das Kulturmedium mit einer bestimmten Rate vom Boden des Percenters aus eingeführt,, d.h. die Fermentation
kontinuierlich durchgeführt* so ist die Verteilung der Zellen etwas anders. Während das Medium in jeder Kammer gut gerührt
und gemischt wird, bewegt sich eine gewisse Menge des Mediums, die der vom Boden aus einströmemnden Menge entspricht, aufwärts
von einer Kammer zu der nächsten durch die Locher in der oberen
PlafcVe. Hiei^ei hindern Foktoranr ι*ίη tfie Eei.tnang an der PlaV.to
:V.£ 109882/0298
BAD
der Flüssigkeitsgehaita die Belüftung und dgl.* das Medium am
Äufströmen und bewirken So5 dass die Luft den oberen Teil einer
Kammer unter der oberen Platte ausfüllt 9 wie wenn alle Kammern
gesondert wie oben beschrieben betrieben werden. Diese Bedingungen sind in Fig. 5 gezeigt. Die AufwSrtsströraung und Zufuhr
des Mediums werden jedoch quantitativ durchgeführt. Wenn das Medium in jeder Kammer gründlich gemischt ists nimmt die
Strömung des Mediums als Ganzes die deutliche Form einer Kolbenströmung
. Das Medium wird so nach oben gedrückt und am oberen
Ende des Fermenters quantitativ abgezogen. Das gleiche Prinzio kann auf den Betrieb mit einer Batterie von Fennentern * die in
Reihe angeordnet sind« angewendet werden.
Der Versuch 4 zeigt, dass* wenn das Wachstum den stationären
Zustand erreicht, jede Kammer Zellen bei der durchschnittlichen Verweilzeit hält. Die Zellenkonaentration variiert daher mit
den Kammern. Spezieller ausgedrückt erfolgt die Züchtung kontinuierlich
unter solchen Bedingungen* dass die gellen sich am Boden stets am Beginn ihrer logarithmischen Wachstumsphase befinden,
diejenigen in der Mitte in der Zwischenphase und diejenigen am oberen Ende in der Endphase» und zwar durch eine
geeignete Korabination der Strömungsrate des Mediums mit der Zellenwachstumsrate. Wird ein gewünschtes Produkt bei dem Zellenwachstum
oder bei einer gewissem Periode der Wachstumsphase gebildet« so tritt die unterschiedliche Verteilung der Produktkonzentration
in der gleichen Weise auf.
109882/0298
ORIGINAL
Die Tatsachea dass der Unterschied in der Zellenkonzentration
in den jeweiligen Kammern nicht nur auf physikalischen Faktoren
beruht, wurde mittels der biologischen Aktivitäten von Zellen
nachgewiesen., die aus den Jeweiligen Kammern entnommen wurden„
beispielsweise durch den Nucleinsäuregehalt der gellen. Es 1st wesentlich* dass beim Betrieb jeder Kammer als einzelne Fermentlervorriehtung
in einem kontinuierlichen Verfahren das Verhältnis des Volumens der Kammer zu der Strömungsrate des Mediums*
d.h. die Verdünnungsrate* die maximale spezifische Wachstumsrate
des Mikroorganismus nicht übersteigt. Die aus dem Oberlauf
erhaltenen Zellen haben daher unter stationären Züchtungsbedingungen
eine gewisse durchschnittliche Verweilzeit oder ein gewisses Zellenalter. Je mehr der Fermenter unterteilt
ist, um so mehr arbeitet das Gesamtverfahren nach einem perfekten
Kolbenströmungsmuster und umso deutlicher wird das Muster des Zellenkonzentrationsgradienten. Dies kann sowohl theoretisch
als auch experimentell nachgewiesen werden.
Es wurde ein kontinuierliches Verfahren beschrieben* bei weichem
das Medium vom Boden des Fermenters aus eingeführt wird/
doch kann das gleiche Grundverfahren stattdessen auch umgekehrt unter Einführung des Mediums vom oberen Ende her ohne
Sinbusse der vorteilhaften Charakteristiken des bereits beschriebenen
Verfahrens durchgeführt werden. In diesem zweiten Falle tritt die Verteilung der Zellen natürlich vom oberen Ende nach
dem Boden zu auf. Bei anaerober Fermentation wird durch Inert-
BAD ORIGINAL· 109882/0298
gass> wie beispielsweise Stickstoff oder Kohlendioxyd und/oder
im Verlaufe der Fermentation entwickelte Gasblasen der gleiche
Effekt wie mit Luft oder Belüftung bei aerofcer Fermentation
erzielt.
Die Schaffung der oben beschriebenen neuen Fermentationsvorrichtung
ermöglicht ein neues Fermentaticnsverfahren unter Anwendung
der oben beschriebenen Charakteristiken auf dein Gebiet der mikrobiologischen Reaktionen, die sich von rein chemisches
Reaktionen unterscheiden. Einige Beispiele filr Fermentationsverfahren
unter Verwendung der erfindungsgemässen Vorichtung
und verschiedener Arten von Materialien werden im folgenden angegeben
ί
(1) Übliche Fermentation
Viele Untersuchungen und Studien der üblichen Fermentation
wurden bereits durchgeführt.» doch wurde bei keiner ein Verfahren*
wie das erfindungsgemSsse, angewendet. Dieses wird in besonders
wirksamer Weise auf ein kontinuierliches Fermentationsverfahren angewendet. Zu Beginn wird das Medium wie bei einem
diskontinuierlichen Verfahren in einen Fermenter eingeführt 3
mit dem gewünschten Stamm von Mikroorganismen geimpft und unter Belüftung bei einer geeigneten Temperatur gezüchtet. Es
ist kein Bewegen erforderlich» da die Platten mit den Löchern
diese Arbeit erledigen. Nach einer gewissen Zeitspanne wird zusätzliches Medium in einer Volumenmenge, die von der Kapazität
des Fermenters und der speziellen Wachstumsrate des Stamms ab»
109882/0298
hängt, eingeführt? um die gewünschte Endbrühe am Auslass des
Fermenters zu erhalten» Wie in Versuch 1I gezeigt.-» variiert das
Sellenalter von Kammer zu Kammer, und die £ellenalterverteilung
im überlauf hat grosse Ähnlichkeit mit einer Kolbengangscharakteristik
. Es ist leicht ersichtlich,, dass ein kontinuierliches
Verfahren sich im Vergleich zu einem diskontinuierlichen Verfahren durch seine hohe Produktivität auszeichnet.
(2) Feststoff-Fermentation
Es existieren einige Berichte über Fermentationen* bei welchen
feste Materialien verwendet werden* doch wurden sie kaum für den industriellen Gebrauch entwickelt mit Ausnahme der Steroidfermentation.
Die Fermentation von aromatischen Substanzen, wie beispielsweise Naphthalin und Anfchracan* die Verwendung von
festem Paraffin bei der Fermentation und die Oxydation von Steroiden sind einige Beispiele für Feststoff-Fermentationen«
die in gewissem Ausmass erfolgreich im Labormassstab durchgeführt wurden. Bei Durchführung in technischem Massstab treten
jedoch verschiedene Probleme auf,und es werden nicht immer adäquate Ausbeuten erzielt. Ein wesentliches Problem bezieht
sich auf die Behandlung von festen Materialien. Die genannten festen Materialien sind solches die in Wasser unlöslich oder
wenig löslich sind. Bin Mikroorganismus würde nur den sehr kleinen Anteil der schlecht löslichen Materialien der sich im
Wasser löst» assimilieren und daraus ein gewünschtes Produkt produzieren. Es ist daher sowohl theoretisch als auch experi-
109882/0298 bao o«G,NAu
raentell nachweisbar* dass die Auflösungsrate des Materials in
Wasser der begrenzende Faktor für die Waehstumsrate der Mikroorganismen und die Produktionsrate eines geviUnschten Produkts
wird und dass die Produktivität je Zeiteinheit im Langzeitbetrieb niedrig ist. Zur Erhöhung der Auflösungsrate des festen
Materials wird das Material verflüssigt* indem es erst pulverisiert
wird, um eine grosse Oberfläche zu sohaffen^ und dann eine grosse Menge in V/asser gegeben wird oder indem es in einem
Lösungsmittel vor dem Einbringen in Wasser gelöst wird und sohliesslich durch kräftiges Bewegen.
Dieses Verfahren erfordert nicht nur einen ausserordentlichen Zeitaufwand und Auftaand an Arbeit und Ausrüstung,, sondern führt
auch zu einem beträchtlichen Materialverlust. Das Lösungsmittel beeinträchtigt häufig das Wachstum der Mikroorganismen s ferner
treten Probleme bei der Wahl der Materialien bezüglich der
Quantität und Qualität auf-, und schliesslich sind die Kosten
sicher nicht zu vernachlässigen. Zusätzlich zu den obigen Problemen
neigen die in Wasser gegebenen pulverisierten Materialien manchmal dazu« in den kolloidalen Zustand überzugehen. Bsi Anwendung
in grosser Menge gehen auch nicht verwertete feste Materialien in der abgezogenen KulturbrUhe verloren. Dieses Problem
tritt sowohl bei diskontinuierlichen als auch bei kontinuierlichen Verfahren auf, doch inabesondere bei letzteren, da eine gewisse
Menge an Medium aus der Fermentationsvorrichtung abfliesst.
Die vorliegende Erfindung ermöglicht die Überwindung aller oben genannten Probleme. Bei dem diskontinuierlichen Verfahren
109882/0298
braucht der Fermenfcer keine spezielle Einrichtung zur Fulverisierung
Gder Emulgierung des festen Materials aufzuweisen,
und es wird eine grössere Menge an festem Material als gewannlieh
verwendet. Dies erhöht im Verhältnis den Oberflächenberelch
des festen Materials je Einheit an Menge Medium und beschränkt
die Wachsturasrate des Mikroorganismus nicht, wodurch
die Beschränkungen überwunden werden* die bei dem gewöhnlichen
Feststoff-Perraentationsverfahren leicht auftreten. Dann wird ein Medium in den Permenter eingeführt 9 das gewisse für das
Wachstum des Mikroorganismus wesentliche Bestandteile enthält, und die Temperatur wird,, wenn die Fermentation erfolgt 3 eingestellt
und Luft eingesprüht. Bei des diskontinuierlichen Verfahren ist es nicht erforderlich, dass jede Kammer als solche
wirkt* und es besteht eine freie Wahl bezüglich der Grosse und
des perforierten Bereichs einer Platte. Die Löcher können gross
sein. Es kann sogar ein grobes Drahtnetzt verwendet werden. Die Wahl erfolgt je nach den Mikroorganismen und dem verwendeten
Material. Die Platten erfüllen hier mehrere Aufgaben, na*m~
lieh, das Material in dem Medium zu halten« die vom Boden her
eingeführte, aufwärts strömende Luft zu zerteilen, so dass sich
die Luft in dem Medium in allen Richtungen ausbreitet * und so das Medium und die Luft in engem Kontakt zu halten, was zu einer
hohen Sauerstoffübeffülirungsrate führt.
Nach der Fermentation wird die fermentierte Brühe abgezogen und dem Isolierungsverfahren des Produkts unterworfen. Nach Abziehen
der flüssigen Phase bleibt festes Material in dem Fer-
8AD ORIGINAL
109882/0298
menter, das nicht mit dem Mikroorganismus reagiert hat, und
eine weitere Fermentation kann durch einfache Zufuhr des Mediums durchgeführt werden. Dies kann viele Male wiederholt
werden, bis das verbleibende feste Material vollständig verbraucht ist. So wird das Verfahren in diesem Fermenter frei
von den Nachteilen durchgeführt,, die stets gewöhnliche Fermentationsverfahren
unter Verwendung fester Materialien beeinträchtigt haben.
Das kontinuierliche Verfahren wird in der gleichen Weise wie
das diskontinuierliche Verfahren begonnen. Hier ist es jedoch wesentlich s dass jede Kammer gesondert und einzeln arbeitete
und es kann erforderlich sein/. Platten mit kleineren Löchern
zu verwenden, jedoch ohne sie so klein zu machen? dass ein Verlust
an Luftdruck bewirkt wird oder Fremdelemente die Löcher verstopfen und eine glatte Strömung der Flüssigkeit verhindern
können und dgl.. Die Grosse der Löcher und des perforierten
Bereichs einer Platte sollten durch solche Faktoren bestimmt werden» wie die Höhe der verwendeten Säule, ihren Querschnitt,
das Verhältnis von Säulenhöhe zu Querschnitt„ den Abstand von
einer Platte zu einer anderen (Höhe einer Kammer)/ die physikalischen Eigenschaften des zu verwendenden Mediums, die zugeführte
Luftmenge» die Art der Fermentation und dgl.. Diese werden vor Beginn des Verfahrens bestimmt.
Eine gewisse Zeit nach Inoculation des Mikroorganismus und nach Beginn der Fermentation wird zusätzliches Medium vom Boden
aus quantitativ unter Belüftung bei einer gesteuerten Temperatur
109882/0298
AB ORIGINAL
zugeführt* und die Fermentation wird so kontinuierlich so lange
als gewünscht durchgeführt. Die Belüftung bewirkt ein gründliches Bewegen des Mediums in jeder Kammer, überschüssiges, durch
die Zufuhr vom Boden her nach oben gepresstes Medium fliesst
am oberen Ende über3 wobei dessen Menge der zugeftihrten Menge
entspricht. Sehlieslsieh wird ein Zellenkonzentrationsgradient
von der Bodenkammer zu der Kammer am oberen Ende in Richtung der Mediumströmung erzeugt.
Wird ein festes Material als einzige Kohlenstoffquelle für den zu züchtenden Mikroorganismus verwendet, so sollte dieses in
die einzelnen Kammern vor Beginn des Verfahrens eingebracht werden. In diesem Falle wird die Menge, die in jede Kammer
einzubringen ist;, durch die Beziehung von Zellenalter zu dem
zu verbrauchenden festen Material bestimmt. Wenn das Material keine direkte Fermentationsquelle sondern Substrat ist, auf
welches ein durch den Mikroorganismus während der Fermentation
erzeugtes Enayni wirkt {bei der Steroidoxydation), und die Produktion
von Enzym eine gewisse Beziehung zu dem Zellenalter hat, verläuft die kontinuierliche Fermentation mit einem mehrstufigen
Fermenter noch vollständiger. Mit anderen Worten, die Wirkung eines durch einen Mikroorganismus erzeugten Enzyms
kann in wirksamer Weise dadurch Induziert werden, dass das Material nur in die Kammern eingebracht wird, die Zellen eines
gewissen Alters, die dieses Enzym erzeugen» enthalten, da das Zellenalter in den jeweiligen Kammern variiert. Da3 kontinuierliche
Verfahren kann fortgeführt werden, bis das Material vollständig verbreuoht ist.
109882/0298
p) Fermentation bei Erdölpz'odukten
Aufgrund der UnlSslichkeit von einigen Materialien treten bei
der Verwendung von Erdölprodukten zur Fermentation in technischem Massstab Probleme auf. Mikroorganismen werden zur Entschwefelung
oder Entparaffinierung von öl vsrwenclet sowie in
Erdölprodukten gezüchtet s und der erfiridungsgemMsse irehrstufige
Fermenter kaiin mit Vorteil bei solchen ^erfahren verwendet
werden,
Bei dei· kontinuierlichen Fermentation in Üblichen Fermentern erfolgt
keine vollständige Assimiiiorung von Erdölprodukten2 und
es ist schwierig* ölrÜGkstMnde von den Bekterienzellen in der
tiberfliessenden KulturbrUhe abautrennen, Ein Verfahren unter
Verwendung eines Fermenters gemäss der vorliegenden Erfindung
ermöglichte dass der obere Teil des Fermenters als vollständiger Assimilator fUr ölrückstände «irkti so dass die Seilen darin
vollständig ausgewachsen sind \xnä die abgezogene Kulturbrühe
hauptsächlich aus Wasser besteht.
Zur Entschwefelung oder Entparaffinierung, int ein kontinuierliches
Verfahren unter Verwendung sines mehrstufigen Fermenters
vorteilhafte um eine Endbrühe mit dem erwarteten Ausmass an Reaktion
zu erhalten. Mit zumindest einem Erdölprodukt, das in dem Medium leicht emulgiert und kontinuierlich vom Boden des
Fermenters aus eingebracht wurde,- kann die Fermentation unter Belüftung und Einstellung der Menge an zugeführtera Medium so
durchgeführt warden, dans ein« Bi'tthe erhalten wird« die ein
109882/0298
ORIGINAL
einheitliches Reaktionsausraass aufweist. In diesem Fall wird
ebenfalls die Verteilung des Alters der fellen festgestellt,
und die erhaltenen Zellen habsn eine gewisse ermittelte Qualität
. "
synchrone Fermentation
Wie bereits wiederholt erwähnt wurde,* weist bei Durchführung
eines kontinuierlichen Verfahrens in einer mehrstufigen Fermentationsvorrichtung
geraäse der Erfindung das Medium in jeder Kammex* eine Kulturphase, die von denjenigen in anderen Kammern
verschieden ists auf. In manchen Fällen erfordert die Fermentation
die Anwendung einer synchronen Methode s um die optimale
gellenvertellung zu erzielen. Es wurde beispielsvieise festgestellte
dass eine Extraktion von Ribonukleinsäure aus Hefesellen wirksamer am Ende der logarithmischen Wachstumsphase
des Stamirs durchgeführt werden kann, lfm dies zu erreichen* wurden
einige Vorrichtungen und Verfahren ausgestaltet g um Zellen
des optimalen Alters bei kontinuierlicher Fermentation zu erhalten» Die erfindungsgemässe Methode und Vorrichtung sind jedoch
neu. Die Arbeitsweise ist die gleiche wie bei der sonstigen Fermentation, und die Zufuhrmenge und -rate* die Kapazität
der jeweiligen Kammern und Anzahl der Platten werden demzufolge
so bemessen und bestimmt!? dass die fermentierte Endbrühe
auf den Endzustand der logarithmischen Wachstumsphase gebracht wird.
1098827 02 9 8 BAD ORIGINAL
-'26 -
Vile bereits dargelegt wurde s kann die erfindungsgeniSssa Fermentationsvorrichtimg
aufgrund iiirsr besonderen Qualität sehr wirksam bei verschiedenen kontinuierlichen Fermentationsverfahren
angewendet werden. Neben der hohen Wirksamkeit sind die Kosten de.r erforderlichen Anlage gering* und es wird ©ine hohe
Ausbeute je Einheit in allen Fällen erzielt.
Es ist ferner ein wesentliches Merkmal des in der Fermentationsfe
teehnlk verwendeten Grund ve rf ahrens,, dass die rnikrobiellen Zellen
in einem Medium oder einer Suspension nach Beendigung der Fermentation von dem Medium oder der Suspension abgetrennt werden
müssen. Dies erfolgt gewöhnlich durch Zentrifugieren und Filtrieren. Weder das Zentrifugieren noch das S'iltrieren kann
jedoch zur Isolierung von reinen Bakterienssellen führen·, da
auch andere feste Substanzen als die Zellen in dem Medium gesammelt
werden^ und es ist schwierig solche Substanzen von den Zellen durch Waschen abzutrennen. Wenn eine spezielle Form von
Zellen gewünscht wird oder beispielsweise für einen technischen Zweck nur eine Sporensuspfnsion vervjendet werden soll, ermöglicht
es weder das Zentrifugieren noch das Filtrieren, Sporen von vegetativen Zellen abzutrennen. Wenn die Zellen als industrielle
Materialien für die Produktion von Enzymen verwendet werden sollen* ist es erforderlich, nur die gezüchteten Zellen, die
eine spezielle Eigenschaft haben, zu sammeln, beispielsweise
diejenigen mit einem hohen Nucleinsäuregehalt oder nach Entfernung von autolysierten Zellmaterialien hochgradig aktivierte
10988 2/02 9 8 bad
l'ic-j · le«. übliche l5o3ie:inmjjsra©thodQn können diese Erfordernisse
nicht öi'i'iiilen. Aussserdem ist es vom fachlichen Staiidkpunkt aus,
■beispielsweise vom physiologischen* immunologischen? cytolo-Cisohen
und mikrobiologischen Standpunkt aus, häufig erforderlich,
i'Girie Bakterienseilen an gewinnen. Eisher wurde keine
perfekte Methode sur Abtrennung solcher Zellen bekannt.
'&qX imUörsuohungen= die auf die Konzentrierung, ilev/innung und/
oder Isolierung von Bakterienseiliin mit spezifischen JBigensohaf-
i;oj». gerichtet waren? wurde gefunden» dass diese Zwecke und Erfordernisse
durch Verwendung eines mehrstufigen Fermenters erroiohv
werden können: in welchen eine Eakteriensellensuispension
uder eine Suspension von Sellfraktionen eingeführt wird. Diese
Rüspenqion wird vom Boden her belüftet, um einen Schaum zu
bilden. Zellen oder Proteinteilchen werden an der Oberfläche des Schauras geraäss ihrer Ladung adsorbiert. Diese Bakterienzellen
werden in dem Fermenter aufwärts fraktioniert, konzentiert und/oder verteilt.
Ira einzelneren wird die Eaktex-ienaellen suspension oder die
Suspension von Zellfraktionen in einen mehrstufigen Fermenfcer
eingeführt, in den erforderlichenfalls ein Schäumungsraittel
eingeführt wird und der vom Boden her belüftet wird. Diese BaIcteriensiellen
oder Zellen Traktionen werden* wenn die Suspension schäumt, an der Oberfläche des Schaums in einer gewissen Rate Je
109882/0298 s - «ad original
nach der Zusammensetzung der Suspension, der Anordnung des
Schaums, der Art des Sehäumungsmittels und dergl. verteilt,
wobei die Konzentrationsrate von der jenigen in einem flüssigen Medium verschieden ißt* und der Schaum geht durch die Löcher
in joder Trennplatte nach oben in die unmittelbar darüber
befindliche Kammer t in der er in Kontakt mit dem Medium kommt*
und weiter nach oben durch das Medium in dieser und durch eine weitere Platte und so weiter, bis er das obere Ende des Fermenfe
ters erreicht.
Im stationären Zustand findet keine Änderung in der in jeder Kammer enthaltenen PlUssigkeitsmenge statt, und das Kedium aus
der oberen Kammer strömt* wenn der Schaum sich von einer Kammer in die nächste nach oben bewegt, in einer Menge herab, die
derjenigen des FlUssigkeitsgehalts des Schaums entspricht. D.h., der Schaum steigt auf, während das Medium sich abwärts
bewegt, und es findet an jeder Teilerplatte zwischen den beteiligten Kammern eine Wechselwirkung der Mediumlö'sung statt.
ψ An dieser Verbindungsstelle werden die Bellen, wenn die Zellenkonzentration
an dem Schaum höher als diejenige in dem Me-■ dium ist, nach oben gedrückt. Wenn die Zellenkonzentration in
dem Medium höher als diejenige an dem Schaum ist, tritt ein entgegengesetzter Effekt auf. Die Konzentration von Zellen an
dem Schaum differiert im Grad nach solchen Faktoren, wie Typ des Mediums, verwendeten Bakterienzellen oder Zellfraktionen
und Art des Sehäumungsmittels und pH-Wert. Diese Bedingungen
109882/0298
ßAD
sollten durch Vorversuch© vorher eingestellt werden. Es können so Zellen mit einer spezifischen Eigenschaft konzentriert und/
oder fraktioniert «erden. Dieses Verfahren kann noch wirksamer
durch wiederholte Zyklen des oben beschriebenen Verfahrens durchgeführt «erden. Wenn dagegen das Medium oder die flüssige Phase
gebraucht vjlrd3 kann sie aus den Kammern, in denen der Zellengehalt
gering 1st, entnommen werden.
Die erfindungsgemässe Fermentationsvorrichtung kann so zum Sammeln
und Abtrennen gewünschter Zellkörper verwendet werden« wobei im allgemeinen ' mehr als 90 # der uesamtzellen abgetrennt
und/oder fraktioniert werden* ohne dass eine nachteilige physikalische
und chemische Beeinflussung durch Erhitzen, durch grössere
Änderungen des pH-Werts und dgl. auftritt. Ausserdem können die Zellen erforderlichenfalls anschliessend mit höherem Wirkungsgrad
als bei den Üblichen Methoden filtriert oder zentrifugiert werden. Einfache Betriebsweisen bei der Durchführung
eines kontinuierlichen Verfahrens sind ein weiterer /orteil der vorliegenden Erfindung. Im Gegensatz zu dem erfindungsgemässen
Verfahren werden die Zellen in einem üblichen Fermenter
gleichförmig verteilt und können daher nicht konzentriert und/ oder abgetrennt werden.
Die Art und Konsistenz der Versohäumungsmittel« die in dem Verfahren
verwendet werden können, hängt von dem Zustand und der Art der zu verwendenden Zollen ab. Verschiedene Arten von oberflächenaktiven Substanzen, Fettsäureaminen >
anorganischen SaI-
10988270298
zen und dgl., können einzeln oder in Korabination verwendet
werden. Die Konsistenz kann durch einfache Prüfungen bestimmt werden.
Durch das obige Verfahren können Sporen.» Froteingranulae, ZeIlfragmente
und dgl., sowie vegetative Zellen und Mikroorganismen getrennt, konzentriert und/oder fraktioniert werden. Andererseits
wird ein Medium oder eine Kulturbrühe erhalten, die frei von Bakterienzellen oder anderen Fremdelementen ist.
Durch das erfindungsgemässe Verfahren, bei welchem die speziellen
Charakteristiken der mehrstufigen Fermentationsvorriehtung
angewendet werden« können Bakterienzellen aus einem Kulturmedium abgetrennt, konzentriert und/oder fraktioniert werden.
Eine solche Methode ist bisher nicht bekannt geworden, und sie ist für industrielle Anwendungen ausserordentlich wertvoll.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung« ohne sie zu
beschränken.
Ein zylindrischer Fermenter mit einem Innendurchmesser von 6 cm und einer Höhe von 120 cm war durch vier quer angeordnete Platten
in gleiche Tolle unterteilt* wobei Jede Platte mehrere Löoher
mit einem Durchmesser von 2 mm aufwies und das Offungsverhältnis
20 % ausmachte (vgl. Fig. *;)·
109882/0298
8^ ORIGINAL
Rohes technisches Naphthalin wurde in einer Menge von 10 Gew.-^
der GesamtfltissigVeit in die zweite Kammer von unten einge
führt, und ein von Bakterien freies Züchtungsmediurrip das 0*25
Ammoniumchlorid* 2 % Hanganchlorid« 0,005 % Ferrosulfat und
Of05 % Calciumchlorid enthielt., wurde eingegossen» wonach die
Kammer mit Pseudomonas aeruginosa Mr. B-3^ beimpft wurde.
Bei der Durchführung der Fermentation bei 50°C unter Belüftung
mit einer lineraren Geschwindigkeit von 3 cm/Sekunde gelangte eine gewisse Menge des in dieser Kammer vorhandenen festen Naphthalins
durch die Löcher in den Platten in die benachbarten Kammern. Nach 36-stUndiger Fermentation waren 10,6 g Salicylsäure
«Je 1 erzeugt. Diese Salicylsäure wird durch weitere Fermentation nicht vermindert oder zersetzt.
Nach beendeter Fermentation wurde die fermentierte Brühe vom Boden des Fermenters abgezogen» und 85 $ des anfänglichen festen
Naphthalins wurde in dem Fermenter gesammelt. Unter Verwendung dieses wiedergewonnenen Naphthalins und der Zellen*
die in dem Fermenter geblieben waren» wurde ein weiterer Fermentationszyklus durch einfaches Einbringen der oben beschriebenen
Minerallösung durchgeführt. Dieser Arbeitsgang wurde sechsmal
wiederholt.
Ein ZUchtungsmedlura mit einem Gehalt von 10 56 Glucose« 1 %
Harnstoff, 0,1 $ KH2PO1^ OpO^ % MgSO4 . 7HgO, 0,6 # Maisquell-
trakt* 2 Teile j
109882/0298
wasser, 0,1 % Kefeextrakt* 2 Teile je Million. Fe*"8", 2 1EeIIe je
Million Mn+* und 2 ing/i Biotin wurde in den gleichen Fermenter
wie in Beispiel 1 in der gleichen Weise eingebracht. Mach der Sterilisation wurde das Medium auf 300C abgekühlt «ad mit der
Impfkultur in einer Menge, die 2 \rol.-# des Mediums entsprach
beimpft f wobei die Impfkultur durch Züchtung von Corynebacterium
gelatinosum Nr. 718jJ in einem Medium erhalten war, das die gleiche
Zusammensetzung wie oben beschrieben mit der einzigen Ausnahme hattej, dass der Gluoosogehalt" 8 % betrug. Εε wurde dann bei
30eC unter einer Belüftung von 200 - 400 ecm je Minute gezüchtet.
Nach 58 Stunden erreichte dor DL-Alanin-Gehalt in dem Medium
40 g/l. Die Anzahl der verwendeten Platten kann frei gewählt werden und beeinflusst selbst das Ergebnis des Arbeitsgangs im
Falle dieses diskontinuierlichen Verfahrens nicht.
Ein kontinuierliches Verfahren unter Verwendung der gleichen
Bestandteile und von fünf in gleichem Abstand quer in dem Fermenter
angeordneten Platten wurde dann durchgeführt. 1/12 des Gesamtvolumens des Mediums wurde je Stunde vom Boden des
Fermenters aus einegebracht. In etwa 24 Stunden war der stationäre
Zustand erreicht. Der Gehalt an Zellen und Alanin in dem Medium war in den jeweiligen Kanunern verschieden. Beide Gehalte
waren* wie festgestellt wurde, in der obersten Kammer am höchsten, nämlich 34 g/l Alanin und 9,2 U.O.D. Bakterienzellen.
So betrug beispielsweise der Alaningehalt in den jeweiligen
Kammern von unten nach oben* (1) 0,5 g/lf (2) 5 g/l, (3)
17 g/l, (4) 29 g/l, (5) 34 g/l.
109882/0298
Nach den in Beispiel 1 beschriebenen Arbeltsweisen wurde das
Medium hergestellt und mit dem gleichen Bakterieninooulum
beimpft. Naphthalin wurde wie in Beispiel 1 verwendet.
Nach 24-stündiger Fermentation erreichte der Salicylsäuregehalt
in dem Medium 6,2 g/l· Von diesem Zeitpunkt ab wurde eine sterilisierte anorganische Salzlösung vom Boden aus mittels einer
Dosierpumpe eingeführt. Der Mengenanteil dieser Lösung zu der Gesamtflüssigkeit in dem Fermenter oder die VferdUnnungsrate betrug 1/15 je Stunde · Wach 40 Stunden vom Beginn
ties Verfahrens ab enthielt jede Kammer Bakterienzellen und Salicylsäure« und der stationäre Zustand war erreicht. Die Menge
an gebildeter Salicylsäure betrug von der Bodenkammer aus nach oben: (1) 0,8 g/l, (2) 0,8 g/l, O) 6,} g/l und (4) 7,5 g/L
Der Gehalt in der vierten Kammer war mit dem Gehalt in der abgezogenen fermentierten Brühe identisch. Die Fermentation wurde
kontinuierlich etwa 10 Tage durchgeführt, bis das feste Naphthalin in dem Fermenter vollständig verbraucht war.
Ein säulenförmiger 5 1-Fermenter war in 6 Kammern unterteilt,
wobei bei jeder Platte die Löcher 20 & ihrer Gesamtfläche ausmachten und die Löcher jeweils einen Durchmesser von 2 mm aufwiesen. Die Einteilung war so, dass die erste Kammer (Bodenkammer) ein Volumen von 1,5 1 aufwies und die restlichen Kammern jeweils ein Volumen von 0*7 1 hatten. Unter Verwendung von
109882/0298
ßAD ORIGINAL
Leichtöl wurde die Fermentation von Hefe (Candida 1-ypolitica) und die Entparaffinierung druohgeführt.
100 Teile Medium (pH 4,5),daö 3,0 g Ammoniumsulfate 1,0 g Kalium
phosphat« 0,5 g Magnesiumsulfat, 0,1 g Hefeextrakt und eine
kleine Menge an Spurenelementen je 1 enthielt, wurden mit 13
Teilen Leichtöl und 0,02 Teilen eines oberflächenaktiven Mittels
(Tween 40) so gemischt, dass eine stabile Emulsion gebildet wurde.
Vor dieser Stufe wurde Candida lypolitica 35 Stunden in einem
Medium der gleichen Zusammensetzung wie oben gezüchtet. 5 Vol.-#
dieser Vorkultur von Candida lypolitica wurde zu dem obigen emulgierten Medium zugegeben, und die Züchtung bei 28*C unter
Belüftung mit einer Rate von 15 1/ Minute durchgeführt.
Nach 24-atttndiger Fermentation wurde ein enulgiertes Medium,
das mit 15 Teilen Leichtöl je 100 Teile Wasser gemischt war,
vom Boden her mit einer Rate von 200 ml/Stunde eingeführt und
so eine kontinuierliche Fermentation vorgenommen. Die fermentierte
Brühe, die aus Hefezellen, nichtverwertetem Leichtöl und
Wasser bestand und eine gewisse Verweilzeit hatte« wurde fortschreitend
am oberen Ende des Fermenters abgezogen.
Nach Erreichen des stationären Zustande wurde aus jeder Kammer eine Probe der Brühe entnommen . Der Gehalt an Kefezelien und
Leichtöl-war der folgendes 1,6 g/l (Trockengewicht) Zellmasse
und 14,0 Teile (Volumenteile) ölschicht (Je 100 Teile anfänglichem
Wasser) in der ersten Kammer, 2,5 g/l und 12,8 Teile in
109882/0298
der dritten und 2?1 g/l und 11,5 Teile in der fünften. Die
überflieasende Brühe wurde nach bekannten Methoden in Zellkörper,
entparaffiniertes Leichtöl und Wasser getrennt.
In einem Fermenter mit einem Innendurchmesser von 6B5 cm, der
in 10 Kammern unterteilt war, wobei jede der Platten 100 Löcher mit 2 mm Durchmesser aufwies, wurde die Produktion von Bakteriensporen
in einem kontinuierlichen Verfahren durchgeführt. (
Als Xmpfkultur wurde auf einem Bouillonschrägagar gelagerter
Bazillus stearothermophilus ATCC 8005 in das Glucose-Bouillionmedium
eingeimpft und unter aeroben Bedingungen bei 559C gezüchtet.
Die Hauptεporenproduktlon wurde mit 5 Vol.-# dieser
Kultur initiiert. Das Gesamtvolumen betrug 4,0 1.
Das Medium enthielt 6 g Glucose* 12 g Hefeextrakt, 1 g KHgPO^,
0,1 g MnSO1^.H2Q* 0,01 g PeSO^.7H2O, 0,1 g CaCl2 und 1 1 destilliertes
Wasser. Nach 4 bis 5 Stunden wurde zusätzliches Medium
kontinuierlich am Boden des Fermenters in einer Menge von j$60
ml/Stunde zugeführt. Die fermentierte Brühe, die Sporen enthielt, floss am oberen Ende Über. Der Dlpioollnsäuregehalt und die U.O.D.
der Zellen in den jetteiligen Kammern erreichten den stationären Zustand. Die Zellkonzentration erhöht sich gegen die oberen
KaoMem zu. In den unteren Kammern wurde keine Dipicolinsäure
festgestellt, sondern nur in den Kammern oberhalb der sechsten.
109882/0298
Der* Diplcolinsäuregehalt wurde bei 60 γ/ml gehalten. Dies ermöglichte,
dass mehr als 80 % der Gesamtzellen unter den 2üchtungsbedingungen
Sporen bilden. Die Sporen enthaltende Brühe wurde zentrifugiert oder es wurden die Sporen aus der Sporensuspension
durch die Schaurflotationsmethode geeainmelt.
Unter Verwendung einer Kulturlösung von Escherichia colii XAM-1253i
die in einem 2 # GIu- öse und 1 % Hefeextrakt enthaltenden
Medium 24 Stunden bei 30aC gezüchtet worden waren» wurden BaIcterienzellen
konzentriert und/oder fraktioniert. Zu der obigen
Kulturlösung wurden 0,2 g/l an Aluminiumsulfat und 40 mg/1 an
Laurinsäure (Äthanollösung) zugegeben. Das Gemisch wurde auf pH 7?2 eingestellt und in einen zylindrischen mehrstufigen Fermenter
mit einer Höhe von 120 cm und einem Durchmesser von 6 cn»
gegossen* der durch 10 Platten in 11 Kammern unterteilt war. wobei
in jeder Paltte die Löcher von 5 mm Durchmesser 11 % de?-
gesamten Plafctenflache ausmachten. luft wurde in den obigen
ψ Permenter nach dessen Füllen mit dem Gemisch mit einer Ge~
schwindigkeit von efcwa 7 cm/Sekunde eingeführt. Nach 25-minütiger
Belüftung wurde eine Probe der Lösung aus jeder Kammer entnommen, und die Anzahl der Zellen wurde darin bestimmt. Die Ex*-
gebnisse zeigten» dass die Anzahl der Zellen in der obersten Kammer diejenige in der Bodenkammer um etwa das 10-fache überstieg.
Die Anzahl der Zellen in den dazwischen liegenden Kammern differierte stufenweise von einer Kammer zur nächsten vom Boden
109882/0298
- yj -
aus nach oben ansteigend. Obgleich die Zellkörper in den verschiedenen Kammern durch ein Mikroskop nicht sichtbar waren,
waren nichtbakterielle Festsubstanzen in den unteren Kammern sichtbar» deren Anzahl gegen den Boden zunahm. Die physiologischen
Aktivitäten der aus den jeweiligen Kammern entnommenen Zellkörper wurden in Termen des Oxydationavermögens einer Zellerreinheit
mit Glucose als Substrat bestimmt. Die nachfolgende Tabelle zeigt die erhaltenen Werte.Die Gesamt-U.0.D./ml wurde durch
Multiplizieren der optischen Dichte bei 610 mu der verdünnten
Probe mit der Anzahl der Verdünnungen erhalten.' Sie betrug in allen Kammern vor der Belüftung 5,0. Nach Belüftung variierte
sie jedoch von 1*0 am Boden bis 10,4 in der neunten Kammer.
Die nachfolgende Tabelle zeigt auch die Anzahl der Zellen in jeder Kammer gegenüber der Gesamtanzahl an Zellen: 73 % der
Gesamtanzahl der Zellen fanden sich in den Kammern 7 bis 10 und die restlichen 27 % in der ersten bis sechsten Kammer.
Q-;2 in der Tabelle, diet Rate der Sauerstoff absorption je Zelleneinheit,
ist im Vergleich zu dem Wert in der ersten Kammer mit 1,00 als Basiswert angegeben. Es ist ersichtlich, dass
die Aktivität in der ersten Kammer am niedrigsten ist und nach den oberen Kammern hin zunimmt.
BADORIGINAl
10 9 8 8 2/0298
Tabelle IXI
Kammer U.0.D.(6tQ ναμ) Verteilung der
(vqra Boden aus) Seilen, $
Nr. 1
Nr. 3
Nr» 5
Nr. 7
9
Nr. 3
Nr» 5
Nr. 7
9
| 1 | 1,97 | 1,00 |
| 2,1 | 4,13 | 1910 |
| 3,8 | 7,48 | n3o |
| 8,1 | 15,95 | 1,38 |
| 10,4 | 20,47 | 1,50 |
Ein Züchtungsmadium (pH 7,0), das 0,5 # Glucose, 133 % Hefeextrakt,
0,1 # KH2IPO4, 0,01 % MnSO4-HgO, 0,001 % FeSO4^H3O
und O,OO5S6 MgSO4.7H2O enthielt, wurde mifc Bacillus subtilis
IAM/1214 beimpft und unter Belüftungsbewegung 24 Stunden bei
30eC geattchteto Nach dieser Zeitspanne waren 1,9 x lOVoom Sporen
aus insgesamt 2,1 χ 10Vcera Zellen gebildet. 2 1 der obigen
Lösung, in der die Sporen und vegetativen Zellen des obigen Stammes gemischt waren, wurden in einen mehrstufigen Fermenter
mit einem Volumen von 3,2 1 eingebracht, der durch 8 Platten (bei denen die Löcher von jeweils 4 mm Durchmesser 16 % ihrer
Gesamtfläche ausmachten) in 9 Kammern unterteilt war. Die Luft wurde durch eine Belüftungsdüse am Böden mit einer Rate von 4 1/
Minute eingeführt. Bei einem pH-Wert von 7,3 und einer Temperatur
von 28 ®C begann das Schäumen in den Kammern, und es wurde
unmittelbar unterhalb von jeder Platte ein fortgeschrittenes Schäumen beobachtet. Die Luftmenge wurde alle 5 Minuten um 0,5
l/Minute erhöht, bis schliesslich I9 l/Minute erreicht waren.
Hierdurch wurde das Volumen der Schaumschichten<fcn den fortge-
109882/0298
ORIGINAL
schrittenen Stellen erhöht, so dass eine gewisse Menge der
Kulturlösung in jeder Kammer gehalten wurde. Naoh 120-minütiger
Belüftung unter den obigen Bedingungen wurden die Anzahl
der Sporen für die oberen beiden und unteren beiden Kanunern bestimmt: 1,1 χ 10 /ecm und 1,0 χ 10 /ecm für die beiden
7 7
oberen Kammern und 2 χ 10' /com und 1,2 χ 10 /ecm für die beiden
unteren Kammern. Mit anderen Worten zeigen die obigen Ergebnisse, dass ei;wa 90 % oder mehr der Qesaratsporen in den oberen beiden
Kammern gesammelt waren. Sie zeigen auch, dass, da die Anzahl
der Zellen in den Jeweiligen Kammern sich nicht stark unterschied,
die Anzahl der Sporen je Anzahl der Zollen in diesen oberen Kammern betrUchtlich erhöht war . Die Flüssigkeit in
diesen Kammern wurde abgezogen und als Sporensuspension verwendet .
109882/0208
BAD
Claims (8)
1. Verfahren zur diskontinuierlichen Fermentation* dadurch
gekennzeichnet, dass eine oiehrstufige Fermentationsvor-ri ohtung
verwendet wird und Luft in die mehrstufige Fermentationsvorrichtung
vom Boden aus eingeführt und so durch die Fermentationsvorrichtung geleitet wird.» dass sie in dem oberen Teil
jedes unterteilten Abschnitts in dieser Fermentationsvorrich-tung einen freien Raum bildet, wobei die mehrstufige Fermentetionsvorrichtung
einen Satz von senkrecht übereinander angeordneten Kaminern aufweist, die durch eine oder mehrere sich horizontal
erstreckende Platten getrennt sind, und wobei jede der Platten mit einer oder mehreren Öffnungen ver3ehen ist.
2. Verfahren zur kontinuierlichen Fermentation, dadurch gekennzeichnet,
dass eine mehrstufige Fermentationsvorrichtung verwendet wird und ein Medium unter Belüftung mit Luft vom
Boden der Ferraentationsvorrichtung zugeführt und aufwärts durch die Fermentationsvorrichtung geführt wird ν.Ά am oberen
Ende der Fermentationsvorrichtung überfliesstP während die
Luft im oberen Teil von jedem unterteilten Abschnitt in der Fermentat lötvorrichtung einen Raum einnimmt und so einen freien
Raum bildet» wobei die mehrstufige Fermentationsvorrichtung einen Satz von senkrecht übereinander angeordneten Kammern
aufweist, die durch eine oder mehrere sich horizontal erstrekkende
Platten getrennt sind,und wobei jede dieser Platten eine
oder mehrere öffnungen aufweist.
109882/02S8
Untei lagen <<vt 7 § ι At* ζ ν*» ? Sat* s d·· %r*im»mmm *
BAD ORIGINAL
3· Verfahren zur kontinuierlichen Fermentation, dadurch gekennzeichnet,
dass eine mehrstufige Fermentationsvorrichtung verwendet wird und ein Medium vom oberen Ende dieser Fennentationsvorriohtung
und Luft ira Gegenstrom vom unteren Ende aus
zugeführt werden, wobei die mehrstufige Fermentation«Vorrichtung
einen Satz von senkrecht übereinander angeordneten Kammern aufweist,
die durch eine oder mehrere sich horizontal erstreckende Platten getrennt sind.und wobei jede dieser Platten eine oder
mehrere Öffnungen aufweist.
4. Mehrstufige Fermentationsvorrichtung, gekennzeichnet durch einen Satz von senkrecht übereinander angeordneten Kammern, die
durch eine oder mehrere sich horizontal erstreckende Platten getrennt sind, wobei jede dieser Platten eine oder mehrere Öffnungen
aufweist.
5. Verfahren zur Fermentation naoh einem der Ansprüche 1 - 3#
dadurch gekennzeichnet, dass ein festes Substratmaterial in den jeweiligen Kammern der mehrstufigen Fermentationsvorrichtung
suspendiert und gehalten wird.
6. Verfahren zur Fermentation nach einem der Ansprüche 1-3*
dadurch gekennzeichnet, dass zumindest ein Erdölprodukt als Mediumkomponente eingeführt wird.
7· Verfahren zur kontinuierlichen Fermentation nach einem der
Ansprüche 2, 2, 5 und 6, dadurch gekennzeichnet, dass ein Mikro-
109882/0298 οιΛ|ΜΑΪ
ORIGINAL
- 48 -
Organismus so gezüchtet wird* dass eine untersohiedliche Verteilung
der Zellenkonzentration, des Zellenalters oder der Konzentration an Produkt in den jeweiligen Kammern in der mehrstufigen
Fermentetionsvorrichtung unter stationärem Zustand erzielt
wird.
8. Verfahren zur Fermentation nach einem der Ansprüche 1 - 3t.
dadurch gekennzeichnet., dass das Produkt, das aus zumindest
einer Art von mikrobiellen Zellen* einer Suspension von Zellfraktionen
und Sporen besteht? aus den geeigneten Kammern entnommen
und am Ende der Fermentation getrennt wird.
109882/0298
BAD ORIGINAL
Leerseite
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6541266 | 1966-10-06 | ||
| JP2890967 | 1967-05-09 | ||
| JP6037369A JPS5245781B1 (de) | 1969-08-01 | 1969-08-01 |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE1642653A1 true DE1642653A1 (de) | 1972-01-05 |
| DE1642653B2 DE1642653B2 (de) | 1974-07-25 |
| DE1642653C3 DE1642653C3 (de) | 1975-04-10 |
Family
ID=33424579
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE1642653A Expired DE1642653C3 (de) | 1966-10-06 | 1967-10-06 | Mehrstufiges Gärverfahren |
| DE2037903A Expired DE2037903C3 (de) | 1966-10-06 | 1970-07-30 | Mehrstufiges Gärverfahren in einem durch perforierte Platten in Kammern geteilten Gärturm |
Family Applications After (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE2037903A Expired DE2037903C3 (de) | 1966-10-06 | 1970-07-30 | Mehrstufiges Gärverfahren in einem durch perforierte Platten in Kammern geteilten Gärturm |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (2) | DE1642653C3 (de) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SG11201403280PA (en) * | 2011-12-19 | 2014-07-30 | Univ Nanyang Tech | Bioreactor |
| US10072240B2 (en) | 2013-01-29 | 2018-09-11 | Singapore Technologies Dynamics Pte Ltd | Method for modular design, fabrication and assembly of integrated biocolumn systems with multiple downstream outputs |
-
1967
- 1967-10-06 DE DE1642653A patent/DE1642653C3/de not_active Expired
-
1970
- 1970-07-30 DE DE2037903A patent/DE2037903C3/de not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE2037903A1 (en) | 1971-02-18 |
| DE2037903B2 (de) | 1978-04-13 |
| DE1642653C3 (de) | 1975-04-10 |
| DE1642653B2 (de) | 1974-07-25 |
| DE2037903C3 (de) | 1979-04-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE69321625T2 (de) | Verfahren zur selektiven Herstellung von Poly-ungesättigte-Lipiden aus einer Porphyridium Cruentum Mikroalgen Fermentationsbrühe | |
| DE69506110T2 (de) | Verfahren zur steuerung mikrobenwachstumsprozesses | |
| DE2757826C2 (de) | Verfahren zur Durchführung von biochemischen Reaktionen mit Hilfe von Mikroorganismen | |
| DE3601705A1 (de) | Gasblasenerzeuger und vorrichtung und verfahren zum zuechten von zellen | |
| DE2155631B2 (de) | Fermentationsbehälter zur Durchführung aerober Fermentationsverfahren für die Züchtung von Einzelzellmikroorganismen | |
| EP0874043A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von Biomasse mittels Photosynthese | |
| DE2216887B2 (de) | Verfahren zum einblasen von gas in eine suspension von mikroorganismen | |
| DE2423766C2 (de) | Verfahren zum aeroben Fermentieren und Fermentierungsvorrichtung | |
| DE607712C (de) | Verfahren zur Herstellung von Hefe | |
| DE2820086A1 (de) | Verfahren zur biologischen reinigung von fluessigen abfaellen | |
| DE2550818A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur biologischen abwasserreinigung nach dem schlammbelebungsverfahren | |
| EP0086863A1 (de) | Verfahren und Anlage zur biologischen Denitrifikation von Grundwasser | |
| DE68908936T2 (de) | Pilzdüngemittel und Verfahren zu dessen Herstellung. | |
| DE2903548A1 (de) | Verfahren zur zweitbehandlung von abwasser | |
| DE102010033442A1 (de) | Verfahren zur Aufkonzentration von Mikroorganismen in wässrigen Substraten | |
| DE1642653A1 (de) | Fermentationvsverfahren und -vorrichtung | |
| DE2921918A1 (de) | Verfahren zur optimierung der stoffwechselaktivitaet von mikro-organismen im substrat eines biologichen reaktions-systems | |
| DE2827474C2 (de) | Biomasse mit hohem Stickstoff- und Phosphorgehalt | |
| EP0077002A1 (de) | Verfahren und Anlage für eine anaerobe Behandlung von Abwässern und für die Produktion von methanhaltigem Biogas | |
| DE3316720A1 (de) | Fermenter und verfahren zum kontinuierlichen, anaeroben, biologischen abbau von abwaessern | |
| DE3851789T2 (de) | Rohrförmiger Bioreaktor. | |
| DE3542246C1 (en) | Process for the production of ethanol and/or baker's yeast | |
| DE2649547A1 (de) | Verfahren zur kontinuierlichen herstellung mikrobieller biomasse und vorrichtung zur durchfuehrung dieses verfahrens | |
| DE3345691A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zum kontinuierlichen anaeroben abbau organischer verbindungen | |
| AT120548B (de) | Verfahren zur biologischen Reinigung von Abwässern. |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
| E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 | ||
| 8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |