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WO2020111249A1 - 末梢血流障害の治療剤 - Google Patents

末梢血流障害の治療剤 Download PDF

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Publication number
WO2020111249A1
WO2020111249A1 PCT/JP2019/046847 JP2019046847W WO2020111249A1 WO 2020111249 A1 WO2020111249 A1 WO 2020111249A1 JP 2019046847 W JP2019046847 W JP 2019046847W WO 2020111249 A1 WO2020111249 A1 WO 2020111249A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
cell preparation
muse
cell
blood flow
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2019/046847
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
聖明 的場
真理 出澤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kyoto Prefectural PUC
Life Science Institute Ltd
Life Science Institute Inc
Original Assignee
Kyoto Prefectural PUC
Life Science Institute Ltd
Life Science Institute Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kyoto Prefectural PUC, Life Science Institute Ltd, Life Science Institute Inc filed Critical Kyoto Prefectural PUC
Priority to SG11202105686UA priority Critical patent/SG11202105686UA/en
Priority to JP2020557865A priority patent/JP7473207B2/ja
Priority to US17/298,367 priority patent/US20220000936A1/en
Priority to AU2019388016A priority patent/AU2019388016B2/en
Priority to EP19891644.7A priority patent/EP3888751B1/en
Priority to CN201980078419.XA priority patent/CN113195054A/zh
Priority to KR1020217018397A priority patent/KR102901451B1/ko
Priority to CA3121444A priority patent/CA3121444A1/en
Publication of WO2020111249A1 publication Critical patent/WO2020111249A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/48—Reproductive organs
    • A61K35/54—Ovaries; Ova; Ovules; Embryos; Foetal cells; Germ cells
    • A61K35/545—Embryonic stem cells; Pluripotent stem cells; Induced pluripotent stem cells; Uncharacterised stem cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/08—Vasodilators for multiple indications
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Definitions

  • the present invention relates to a cell preparation for regenerative medicine. More specifically, it relates to a cell preparation containing pluripotent stem cells effective for revascularization therapy of peripheral blood flow disorders such as peripheral arterial disease.
  • PAD mainly refers to chronic arterial occlusion of the extremities, including arteriosclerosis obliterans (ASO), thromboangiitis obliterans (TAO), and popliteal artery capture syndrome. Etc. are included. PAD appears as a symptom of the foot called ischemic limb. However, it is not just a foot disease, but it appears as an ischemic limb due to obstruction of peripheral blood vessels due to arteriosclerosis against the background of aging and diabetes. Therefore, PAD often accompanies the same arteriosclerotic disease, ischemic heart disease and brain disease. The prognosis is very poor and the mortality rate is said to be higher than that of malignant tumors. It is important to provide appropriate treatment by early detection.
  • the current treatment plan for PAD is to deal with circulatory disorders in the lower limbs, to the major organs of the whole body (brain, heart, kidney), risk factors for arteriosclerosis (smoking, diabetes, hyperlipidemia, hypertension, obesity, Insufficient exercise, stress, etc.), and the treatment methods are broadly classified into medical treatment and surgical treatment.
  • Medical treatment of PAD includes physical therapy such as exercise therapy and hyperthermia, cilostazol, sodium peraprost, sarpogrelate hydrochloride, ticlopidine hydrochloride, ethyl icosapentate, alprostadil, alprostadil alfadex, argatroban, patroxobin, pen.
  • Drug therapy including antiplatelet drugs such as toxifylline, antithrombotic drugs, and vasodilators is performed.
  • antiplatelet drugs such as toxifylline, antithrombotic drugs, and vasodilators
  • vasodilators As surgical treatment for PAD, endovascular treatment such as balloon dilatation, stent placement, and atherectomy, and surgical operations such as thrombectomy, bypass, and sympathectomy are performed.
  • PAD arteriosclerosis obliterans
  • ASO arteriosclerosis obliterans
  • TAO thromboangiitis obliterans
  • Burger disease popliteal artery capture syndrome
  • Non-patent document 1 the treatment by bone marrow mononuclear cell transplantation requires a large amount of bone marrow fluid collection, is highly invasive, and the amount of stem cells and progenitor cells in the bone marrow cells is different due to freshly isolated cells, so there is a large difference in clinical effect. It is clear that it will come out.
  • Non-patent document 2 non-patent document 3
  • the long-term engraftment of transplanted cells in blood vessels and the differentiation into vascular constituent cells are not observed, and the effect of regenerative medicine cannot be said to be sufficient.
  • Patent No. 5185443 International Publication No. WO2011/007900 Pamphlet
  • the present invention aims to provide a cell preparation for the treatment of peripheral blood flow disorders including peripheral arterial disease.
  • the inventors of the present invention administered human Muse cells from a blood vessel or the like or directly administered to a peripheral arterial site of a target and its surroundings to accumulate Muse cells in a damaged peripheral arterial site. It was found that the blood vessels in the peripheral artery site engrafted by engraftment are regenerated, and the improvement or recovery of the vascular disorder in the peripheral arterial site is brought about. They have found that they can be suitably used for treatment, and have completed the present invention.
  • a cell preparation for treating peripheral blood flow disorders comprising SSEA-3-positive pluripotent stem cells derived from living mesenchymal tissues or cultured mesenchymal cells.
  • the cell preparation according to [1], wherein the peripheral blood flow disorder is peripheral arterial disease.
  • the cell preparation according to [2], wherein the peripheral artery disease is chronic arterial occlusion of the extremities.
  • the cell preparation according to [2] or [3], wherein the peripheral arterial disease is arteriosclerosis obliterans.
  • the pluripotent stem cells are pluripotent stem cells having all of the following properties: (I) low or no telomerase activity; (Ii) having the ability to differentiate into cells of any of the three germ layers; (Iii) show no neoplastic growth; and (iv) have self-renewal ability.
  • pluripotent stem cells are pluripotent stem cells having all of the following properties: (I) SSEA-3 positive; (Ii) CD105 positive; (Iii) low or no telomerase activity; (Iv) having the ability to differentiate into any of the three germ layers; (V) show no neoplastic growth; and (vi) have self-renewal ability.
  • SSEA-3-positive pluripotent stem cells derived from living mesenchymal tissue or cultured mesenchymal cells for producing a cell preparation for treating peripheral blood flow disorders.
  • a method for treating peripheral blood flow disorders which comprises the step of administering an effective amount of the cell preparation according to any one of [1] to [7] above to a patient in need of treatment.
  • Muse cells are damaged by administering Muse cells from a blood vessel or the like to a subject suffering from a peripheral blood flow disorder such as peripheral arterial disease or directly administering to the peripheral blood vessel site of the subject or its periphery. It is possible to regenerate a blood vessel in a peripheral blood vessel site that has accumulated and engrafted in the peripheral blood vessel site and has been damaged to improve or recover the blood flow disorder in the peripheral blood vessel site.
  • a peripheral blood flow disorder such as peripheral arterial disease or directly administering to the peripheral blood vessel site of the subject or its periphery.
  • Muse cells can efficiently migrate to and engraft a damaged peripheral blood vessel site, form blood vessels at the engrafted site, and do not require differentiation induction into cells to be treated prior to transplantation. .. It is also non-tumorigenic and has excellent safety. Furthermore, since Muse cells do not undergo immune rejection, they can be treated with allogeneic products manufactured from donors. Therefore, Muse cells having the above-mentioned excellent performance can provide a means that can be easily implemented for the treatment of patients suffering from peripheral blood flow disorders such as peripheral arterial disease. In the case of mesenchymal stem cells and autologous bone marrow cells, it is difficult for cells to reach the lesion site by intravenous administration, or even if they reach the lesion site, their efficiency is very low.
  • Injection has a problem that continuous treatment is difficult.
  • Muse cells and the like can selectively reach and accumulate at the lesion site only by intravenous administration, and can be administered multiple times because of intravenous administration.
  • FIG. 1 is a graph showing the results of blood flow laser Doppler measurement when each cell was administered to a lower limb ischemia model mouse (nude mouse).
  • the vertical axis represents the blood flow ratio of the ischemic limb/non-ischemic limb.
  • Ve Vehicle BM: bone marrow n Muse: non Muse cell Muse: Muse cell are shown.
  • FIG. 2 is a graph showing the results of measuring the expression level of angiogenesis-related genes, which are angiogenic factors, 6 days after the administration of each cell.
  • FIG. 3 is a photograph showing the results of measuring the blood vessel density in ischemic skeletal muscle on day 28 after the administration of each cell. Left shows Muse cell administration and right shows Vehicle.
  • FIG. 1 is a graph showing the results of blood flow laser Doppler measurement when each cell was administered to a lower limb ischemia model mouse (nude mouse).
  • the vertical axis represents the blood flow ratio of the ischemic limb/non-ischemic limb
  • FIG. 4 shows the results of laser Doppler analysis of blood flow in the ischemic hindlimb of BALBc mice in which Muse cells, non-Muse cells, BMMNC (bone marrow mononuclear cells) or PBS were injected into muscle or vein.
  • A shows the change in blood flow ratio between ischemic limb/non-ischemic limb over time (**P ⁇ 0.01 PBS vs. Muse iv, ##P ⁇ 0.01 non Muse iv v. Muse iv), and B indicates postoperative 7 Day and C indicate blood flow ratio 14 days after surgery (** significant difference between groups (P0.01)).
  • FIG. 5 is a diagram (micrograph) showing the results of staining tissue sections of ischemic adductor muscle 14 days after administration of PBS or Muse cells with anti-CD31 antibody and DAPI. Scale bar 50 ⁇ m.
  • the present invention relates to a cell preparation containing SSEA-3-positive pluripotent stem cells (Muse cells) for treating peripheral blood flow disorders.
  • SSEA-3-positive pluripotent stem cells Muse cells
  • the present invention is described in detail below.
  • the cell preparation containing SSEA-3-positive pluripotent stem cells (Muse cells) of the present invention is used for the treatment of peripheral arterial disease.
  • peripheral blood flow disorder means a disorder caused by a decrease in peripheral blood flow due to a peripheral blood vessel disorder, sympathetic nerve disorder, or the like.
  • Peripheral blood vessel disorders include peripheral arterial disease (PAD) and peripheral vein disease.
  • Peripheral artery disease includes organic peripheral arterial disease and functional peripheral arterial disease.
  • Organic peripheral arterial disease includes arteriosclerosis obliterans (ASO) and thromboangiitis obliterans (TAO). : thromboangiitis obliterans, so-called Burger's disease), acute arterial occlusion (including acute arterial embolism, acute arterial thrombosis), aortitis syndrome, Behcet's disease, popliteal artery capture syndrome, popliteal artery adventitial cyst, residual ischial bone Examples thereof include arteries, and examples of functional peripheral arterial disease include Raynaud's disease.
  • the “peripheral artery disease” is preferably a disease corresponding to chronic arterial occlusion of limbs, and of the above diseases, arteriosclerosis obliterans, thromboangiitis obliterans and popliteal artery capture syndrome are preferred.
  • Raynaud's disease includes primary Raynaud's syndrome and secondary Raynaud's syndrome, the cause of which is not particularly limited, and is caused by collagen disease, trauma, vibration, chest outlet syndrome, chronic obstructive arterial disease. And the like, due to blood diseases, due to nerve diseases, and the like.
  • Peripheral vein disease includes venous thrombosis (deep vein thrombosis, etc.), chronic venous insufficiency, varicose veins of the lower extremities, varicose eczema, and varicose ulcers.
  • Sympathetic disorders include abnormal sympathetic reflexes, including sympathetic disorders that can cause peripheral blood flow disorders such as reflex sympathetic atrophy, causalgia, phantom limb pain, and central pain.
  • Pluripotent stem cells The pluripotent stem cells used in the cell preparation of the present invention are cells named by "Muse (Multilineage-differentiating Stress Enduring) cells" by Desawa, one of the present inventors, who found their existence in the human body. Is. Muse cells can be obtained from bone marrow fluid, adipose tissue (Ogura, F., et al., Stem Cells Dev., Nov 20, 2013 (Epub) (published on Jan 17, 2014)) or dermal connective tissue of skin. Besides, it is widely known to exist in connective tissues of tissues and organs.
  • this cell is a cell having the properties of both pluripotent stem cells and mesenchymal stem cells, and for example, it is a cell surface marker "SSEA-3 (Stage-specific embryonic antigen-3)" positive cell, preferably Are identified as SSEA-3 positive and CD105 positive double positive cells. Therefore, Muse cells or a cell population containing Muse cells can be separated from living tissues using, for example, SSEA-3 alone or the expression of SSEA-3 and CD105 as an index. Details such as a method for separating Muse cells, an identification method, and characteristics are disclosed in Patent Document 2 (International Publication No. WO2011/007900).
  • Muse cells are highly resistant to various external stresses, and are used for proteolytic enzyme treatment, hypoxic conditions, low phosphate conditions, low serum concentrations, low nutrient conditions, exposure to heat shock, and harmful effects. Muse cells can be selectively concentrated by culturing under various external stress conditions such as the presence of a substance, the presence of active oxygen, mechanical stimulation, and pressure treatment.
  • pluripotent stem cells prepared from living mesenchymal tissues or cultured mesenchymal tissues using SSEA-3 as an index as a cell preparation for treating peripheral arterial disease ( Muse cells) or a cell population containing Muse cells may be simply referred to as “SSEA-3 positive cells”.
  • non-Muse cell may be a cell contained in a living mesenchymal tissue or a cultured mesenchymal cell, and refers to a cell other than the “SSEA-3-positive cell”. is there.
  • Muse cells or a cell population containing Muse cells can be prepared from living tissues (for example, mesenchymal tissues) using SSEA-3 or SSEA-3 and CD105, which are cell surface markers, as an index.
  • the "living body” refers to a living body of a mammal. In the present invention, the living body does not include a fertilized egg or an embryo whose developmental stage is earlier than the blastula stage, but includes embryos in the developmental stage after the blastula stage, including a fetus or a blastula.
  • Mammals include, but are not limited to, humans, primates such as monkeys, mice, rats, rodents such as guinea pigs, rabbits, cats, dogs, sheep, pigs, cows, horses, donkeys, goats, ferrets and the like. Be done. Muse cells used in the cell preparation of the present invention are clearly distinguished from embryonic stem cells (ES cells) and iPS cells in that they are directly separated from tissues of a living body with a marker.
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS cells embryonic stem cells
  • meenchymal tissue refers to tissues such as bone, synovium, fat, blood, bone marrow, skeletal muscle, dermis, ligament, tendon, dental pulp, umbilical cord, cord blood, and amnion, and tissues present in various organs.
  • Muse cells can be obtained from bone marrow, skin, adipose tissue, blood, dental pulp, umbilical cord, cord blood, amniotic membrane and the like. For example, it is preferable to collect mesenchymal tissue from a living body, prepare Muse cells from this tissue, and use it. In addition, Muse cells may be prepared from cultured mesenchymal cells such as fibroblasts and bone marrow mesenchymal stem cells using the above-mentioned preparation means.
  • the cell population containing Muse cells used in the cell preparation of the present invention gives external stress stimulation to living mesenchymal tissues or cultured mesenchymal cells to give cells resistant to the external stress. It can also be prepared by a method that includes collecting cells that have been selectively expanded to increase their abundance.
  • the external stress includes protease treatment, culture under low oxygen concentration, culture under low phosphate conditions, culture under low serum concentration, culture under low nutrient conditions, culture under exposure to heat shock, low temperature. Culture, freeze treatment, culture in the presence of harmful substances, culture in the presence of active oxygen, culture under mechanical stimulation, culture under shaking treatment, culture under pressure treatment or physical shock Any or a combination of a plurality of them may be used.
  • the treatment time with the protease is preferably 0.5 to 36 hours in total in order to apply external stress to the cells.
  • the protease concentration may be a concentration used when peeling cells adhered to the culture vessel, breaking the cell mass into single cells, or collecting single cells from the tissue.
  • the protease is preferably serine protease, aspartic protease, cysteine protease, metalloprotease, glutamate protease or N-terminal threonine protease. Furthermore, it is preferable that the protease is trypsin, collagenase or dispase.
  • the Muse cells used may be autologous or foreign to the recipient of the cell transplant.
  • Muse cells or a cell population containing Muse cells can be prepared from living tissue using, for example, SSEA-3 positivity or double positivity of SSEA-3 and CD105 as an index.
  • stem cells and progenitor cells include skin-derived progenitor cells (SKP), neural crest stem cells (NCSC), melanoblasts (MB), perivascular cells (PC), endothelial progenitor cells (EP), adipose-derived stem cells (ADSC).
  • SSEA-3 positivity or double positivity of SSEA-3 and CD105 are known to contain various types of stem cells and progenitor cells. However, Muse cells are not the same as these cells.
  • Such stem cells and progenitor cells include skin-derived progenitor cells (SKP), neural crest stem cells (NCSC), melanoblasts (MB), perivascular cells (PC), endothelial progenitor cells (EP), adipose-derived stem cells (ADSC). ) Is mentioned.
  • Muse cells can be prepared
  • Muse cells have CD34 (marker for EP and ADSC), CD117 (c-kit) (marker for MB), CD146 (marker for PC and ADSC), CD271 (NGFR) (marker for NCSC), NG2 (PC marker), vWF factor (von Willebrand factor) (EP marker), Sox10 (NCSC marker), Snai1 (SKP marker), Slug (SKP marker), Tyrp1 (MB marker), and At least one of the 11 markers selected from the group consisting of Dct (MB marker), for example, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 The non-expression of 1 or 11 markers can be separated as an index.
  • it can be prepared by using non-expression of CD117 and CD146 as an index, and can be prepared by using non-expression of CD117, CD146, NG2, CD34, vWF and CD271 as an index. It can be prepared by using non-expression of 11 markers as an index.
  • Muse cells having the above characteristics used in the cell preparation of the present invention are as follows: (I) low or no telomerase activity; (Ii) having the ability to differentiate into cells of any of the three germ layers; It may have at least one property selected from the group consisting of (iii) not showing neoplastic growth; and (iv) having self-renewal ability.
  • the Muse cells used in the cell preparation of the present invention have all of the above properties.
  • the telomerase activity is low or absent means, for example, that the telomerase activity is low or undetectable when the telomerase activity is detected using TRAPEZE XL telomerase detection kit (Millipore).
  • Low telomerase activity means, for example, that the telomerase has the same telomerase activity as human fibroblasts which are somatic cells, or 1/5 or less, preferably 1/10 or less as compared with Hela cells. It has activity.
  • Muse cells have the ability to differentiate into three germ layers (endoderm lineage, mesoderm lineage, and ectoderm lineage) in vitro and in vivo, for example, inducing culture in vitro.
  • it can be differentiated into hepatocytes (including hepatoblasts or cells expressing a hepatocyte marker), nerve cells, skeletal muscle cells, smooth muscle cells, osteocytes, adipocytes and the like.
  • the ability to differentiate into three germ layers may also be exhibited when transplanted into the testis in vivo.
  • it has the ability to migrate and engraft in injured organs (heart, skin, spinal cord, liver, muscle, etc.) when transplanted to a living body by intravenous injection, and differentiate into cells according to the tissue.
  • Muse cells proliferate at a proliferation rate of about 1.3 days, but in suspension culture they proliferate from one cell to form embryoid body-like cell clusters and grow in a certain size for about 14 days.
  • cell proliferation is restarted and the cells grown from the cell clusters spread at a proliferation rate of about 1.3 days. ..
  • transplanted to the testis it has the property of not becoming cancerous for at least half a year.
  • Muse cells have self-renewal (self-renewal) ability.
  • self-renewal means that differentiation of cells contained in an embryoid body-like cell mass obtained by culturing from one Muse cell in suspension culture into cells of three germ layers can be confirmed at the same time, By bringing the cells of the embryoid body-like cell cluster into suspension culture with one cell again, the embryoid body-like cell cluster of the next generation is formed, from which again embryos in three germ layer differentiation and suspension culture It means that a body-like cell mass can be confirmed.
  • the self-renewal may repeat one or more cycles.
  • the cell preparation of the present invention is not limited, but the Muse cells or the cell population containing Muse cells obtained in (1) above may be mixed with physiological saline or an appropriate buffer solution (for example, phosphorus). Acid-buffered saline).
  • physiological saline or an appropriate buffer solution for example, phosphorus. Acid-buffered saline.
  • the cells may be cultured before cell transplantation and grown until a predetermined cell number is obtained.
  • Muse cells do not turn into tumors, and therefore there is a concern that they may become cancerous even if cells recovered from living tissues are contained in an undifferentiated state. Low and safe.
  • culture of the recovered Muse cells is not particularly limited, but can be performed in a normal growth medium (eg, ⁇ -minimum essential medium ( ⁇ -MEM) containing 10% fetal calf serum). More specifically, referring to the pamphlet of International Publication No. WO2011/007900, in culturing and expanding Muse cells, a medium, additives (eg, antibiotics, serum) and the like are appropriately selected, and Muse cells having a predetermined concentration are selected. A solution containing can be prepared.
  • a normal growth medium eg, ⁇ -minimum essential medium ( ⁇ -MEM) containing 10% fetal calf serum.
  • bone marrow fluid is collected from human iliac bone and, for example, bone marrow mesenchymal stem cells are cultured as adherent cells from the bone marrow fluid to produce an effective therapeutic amount of Muse.
  • Muse cells can be separated using the SSEA-3 antigen marker as an index, and autologous or allogenic Muse cells can be prepared as a cell preparation.
  • bone marrow mesenchymal stem cells obtained from bone marrow fluid are cultured under external stress conditions to grow and concentrate Muse cells until an effective therapeutic amount is reached, and then autologous or allogeneic Muse cells are used as cells. It can be prepared as a formulation.
  • Muse cells in a cell preparation, dimethyl sulfoxide (DMSO), serum albumin, etc. are contained in the cell preparation in order to protect the cells, and an antibiotic or the like is contained in the cell preparation in order to prevent bacterial contamination and growth. May be.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • serum albumin etc.
  • an antibiotic or the like is contained in the cell preparation in order to prevent bacterial contamination and growth. May be.
  • other pharmaceutically acceptable ingredients eg, carrier, excipient, disintegrant, buffer, emulsifier, suspension, soothing agent, stabilizer, preservative, preservative, physiological saline, etc.
  • Muse cells can also be used as a pharmaceutical composition containing various additives.
  • the number of Muse cells contained in the above-prepared cell preparation depends on the sex of the subject, age, weight, condition of affected area, condition of cells to be used, etc. so that desired effects can be obtained in the treatment of peripheral blood flow disorder. It can be adjusted as appropriate in consideration of the above.
  • the target individual includes mammals such as humans, but is not limited thereto.
  • the cell preparation of the present invention may be administered a plurality of times (eg, 2 to 10 times) at appropriate intervals (eg, twice a day, once a day, once a week until the desired therapeutic effect is obtained. Twice, once a week, once every two weeks, once a month, once every two months, once every three months, once every six months).
  • a therapeutically effective dose is, for example, preferably 1 ⁇ 10 3 cells to 1 ⁇ 10 10 cells per individual, and a dose of 1 to 10 times.
  • the total dose for one individual is not limited, but is 1 ⁇ 10 3 cells to 1 ⁇ 10 11 cells, preferably 1 ⁇ 10 4 cells to 1 ⁇ 10 10 cells, and more preferably 1 ⁇ 10 5 cells to 1 ⁇ 10. 9 cells and the like.
  • the Muse cells used in the cell preparation of the present invention have the property of migrating to the damaged peripheral blood vessel site and engrafting. Therefore, the administration site and administration form of the cell preparation are not particularly limited, and may be locally administered to the peripheral blood flow disorder site or its vicinity by a method such as injection, or may be administered intravascularly by a method such as injection. Good.
  • the type of blood vessel to be administered (vein and artery) is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the disease, but intravenous injection is preferable, and multiple intravenous injections can maintain the therapeutic effect for a long period of time. Therefore, it is more preferable.
  • the cell preparation of the present invention is capable of regenerating blood vessels in a damaged peripheral blood vessel site of a patient suffering from peripheral blood flow disorder.
  • Example 1 Preparation of lower limb ischemia model mouse
  • the experimental protocol using mice in this example complies with "Rules for Kyoto Prefectural Medical University Animal Experiments", and the experimental animals are under the supervision of Kyoto Prefectural Medical University Animal Experiment Center. In accordance with the above regulations. More specifically, it was manufactured by the following procedure. Female BALB/C nude mice aged 8-10 weeks were anesthetized by inhalation of isoflurane (induction: 4%, maintenance: 2%). The lower limb was incised and the left common femoral artery and vein and the peripheral portion of the left superficial femoral artery and vein were ligated with 5-0 silk under a stereoscopic microscope (KONAN OPERATION MICROSCOPE KOM). The mouse thus produced was used as a lower limb ischemia model mouse in the following experiments.
  • Muse cells were obtained according to the method described in International Publication No. WO2011/007900 regarding separation and identification of human Muse cells.
  • Commercially available mesenchymal stem cells (MSC, Lonza) were used as sources of Muse cells.
  • the Muse cells used for transplantation express green fluorescent protein (GFP) in order to confirm that they have engrafted in the damaged peripheral arterial site, and the lentivirus is previously labeled so that the cells are labeled with the green fluorescent protein (GFP).
  • GFP green fluorescent protein
  • the GFP gene was introduced into Muse cells. Muse cells labeled with GFP were separated by FACS as double positive cells of GFP and SSEA-3. The remaining cells obtained by separating Muse cells from MSCs were used as non-Muse cells.
  • GFP-positive MSCs were also isolated by FACS and used as MSCs.
  • Example 3 Administration of each cell to lower extremity ischemia model mouse
  • the lower extremity ischemia model mouse prepared in Example 1 was divided into 4 groups, and on the first day after the model preparation, Muse cells (3 x 10 4 cells, 100 ⁇ L) (Muse), non-Muse cells (3 ⁇ 10 4 cells, 100 ⁇ L) (nMuse), MSC (2 ⁇ 10 5 cells, 100 ⁇ L) (BM) or Vehicle (phosphate buffer) (Ve) was separately administered to two places on the left thigh. The number of animals in one group was 5.
  • Example 4 Continuous lower limb blood flow evaluation by laser Doppler Two-dimensional laser blood flow imager [laser doppler perfusion image (LDPI) analyzer] on days 0, 3, 7, 10 and 14 after the production of lower limb ischemia model mice. Blood flow was measured using (OMEGAZONE OZ-1, OMEGAWAVE, Inc. Tokyo, Japan). The blood flow of the lower limbs of each individual was measured, and the ratio of left side (affected side)/right side (healthy side) was calculated, and this was used as the LDPI index. As shown in FIG. 1, in the Muse cell group, the blood flow continued to be improved after 14 days, and the blood flow in the left ischemic lower leg was improved to the same extent as in the healthy right leg. On the other hand, the non-Muse cell group (nMuse), the MSC group (BM) and the Vehicle group (Ve) showed a certain improvement in blood flow up to 10 days, but no improvement was observed after 14 days.
  • nMuse non-Muse cell group
  • BM M
  • Example 5 Measurement of expression level of angiogenesis-related gene, which is an angiogenesis factor, mRNA of lower limb skeletal muscle on the left side (affected side) on day 6 after cell administration was extracted, and VEGF and a typical angiogenesis-related gene were extracted.
  • the expression level of bFGF (particularly FGF-2) was measured by an absolute quantitative method of real-time RT-PCR. The measurement method was performed based on Non-Patent Document 8. The result is shown in FIG. In the Muse cell group, the expression levels of angiogenesis-related genes (mRNA), which are these angiogenic factors, were significantly higher than in the Vehicle group.
  • Example 6 Measurement of blood vessel density in ischemic skeletal muscle 28 days after cell administration, the tissue of the lower limb skeletal muscle of the left side (affected side) was fixed with 4% paraformaldehyde (Paraformaldehude: PFA), and paraffin sections were prepared.
  • Anti-Isolectin GS-IB4 antibody, Alexa Fluor 568 Conjugate (Thermo Fisher Scientific Co., Ltd., used at 300-fold dilution) was used to perform immunohistochemical staining of vascular endothelial cells in skeletal muscle of ischemic lower limbs, and blood vessels per skeletal muscle fiber The percentage of endothelial cells was measured as the blood vessel density. The result is shown in FIG. It can be seen that in the Muse cell group (FIG. 3 left), the blood vessel density in these ischemic skeletal muscles is higher than in the Vehicle group (FIG. 3 right).
  • Example 7 Evaluation in lower limb ischemia model using wild type mouse
  • a lower limb ischemia model mouse was prepared using a wild type BALBc mouse (male 12 weeks old).
  • the prepared lower limb ischemia model mice were divided into groups, and on the first day after the model preparation, the mice in each group had Muse cells (3 ⁇ 10 4 cells, 200 ⁇ L) (Muse) and non-Muse cells (3 ⁇ 10 4 cells).
  • Muse cells 3 ⁇ 10 4 cells, 200 ⁇ L) (Muse) and non-Muse cells (3 ⁇ 10 4 cells).
  • 200 ⁇ L) (non Muse) or bone marrow mononuclear cells (2 ⁇ 10 5 cells, 200 ⁇ L) (BMMNC) were injected into the tail vein (iv) or intramuscularly (im).
  • PBS was injected into the tail vein.
  • the number of animals in one group was 5.
  • Blood flow in each group was evaluated by a laser Doppler blood flow analyzer in the same manner as in Example 4 before, immediately after, and on the 1st, 3rd, 7th, and 14th days after the surgery. Blood flow was measured in the blood hindlimb and the non-ischemic hindlimb, and the ratio was calculated. The results are shown in A of FIG. The results on the 7th and 14th days are shown in B and C of FIG.
  • mice in the control group or intravenous injection of Muse cells were collected 14 days after the operation, and histological analysis was performed.
  • the harvested ischemic adductor muscles were fixed in 4% PFA for 1 hour and incubated in 30% sucrose solution overnight.
  • Tissues were then embedded in optimal cutting temperature (OCT) compound (Sakura Finetek), snap frozen in liquid nitrogen and cut on a cryostat.
  • OCT optimal cutting temperature
  • Tissue sections were incubated overnight with rabbit anti-CD31 (ab182981; Abcam) at a 1:5,000 dilution.
  • Goat anti-rabbit Alexa 594 (Abcam) was used as the secondary antibody.
  • the cell preparation of the present invention when administered to a patient suffering from a peripheral blood flow disorder such as peripheral arterial disease, accumulates/engrafts on the damaged peripheral blood vessel site, and the blood vessel of the peripheral blood vessel site having the disorder occurs. Can be regenerated to improve or recover the blood flow disorder in the peripheral blood vessel site.
  • a peripheral blood flow disorder such as peripheral arterial disease

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Abstract

生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）を含む、末梢血流障害を治療するための細胞製剤。末梢血流障害は好ましくは末梢動脈疾患であり、より好ましくは四肢の慢性動脈閉塞症である。

Description

末梢血流障害の治療剤
  本発明は、再生医療における細胞製剤に関する。より具体的には、末梢動脈疾患などの末梢血流障害の血管再生療法に有効な多能性幹細胞を含有する細胞製剤に関する。
　65歳以上の高齢者人口の割合は、予測を大きく上回るスピードで増加している。
　その一方で、食生活の欧米化や車社会を中心とした生活様式の変化により、メタボリックシンドロームなどの新しい生活習慣病の概念が生まれ、社会の疾病構造が大きく変化している。特に動脈硬化性疾患が増え、虚血性心疾患の増加とともに末梢動脈疾患（PAD:peripheral arterial disease）が増加している。
　PADは、主に四肢の慢性動脈閉塞症のことを意味し、閉塞性動脈硬化症（ASO:arteriosclerosis obliterans）、閉塞性血栓血管炎（TAO:thromboangiitis obliterans、いわゆるバージャー病）、膝窩動脈捕捉症候群などが含まれる。
　PADは虚血肢という足の症状として現れる。しかし単なる足の病気ではなく、加齢や糖尿病を背景とした動脈硬化により末梢の血管の閉塞が起こり、虚血肢として現れたものである。このためPADは同じ動脈硬化性疾患である虚血性心疾患や脳疾患を伴うことが多い。予後は非常に悪く、死亡率は悪性腫瘍よりも高いといわれている。早期発見により適切な治療を行うことが重要である。
　現在のPADの治療方針は、下肢の循環障害への対応、全身の主要臓器（脳、心臓、腎臓）への対応、動脈硬化のリスクファクター（喫煙、糖尿病、高脂血症、高血圧、肥満、運動不足、ストレスなど）への対応などであり、治療方法としては、大きく内科的治療と外科的治療に分類される。
　PADの内科的治療としては、運動療法、温熱療法などの理学療法や、シロスタゾール、ペラプロストナトリウム、塩酸サルポグレラート、塩酸チクロピジン、イコサペント酸エチル、アルプロスタジル、アルプロスタジルアルファデクス、アルガトロバン、パトロキソビン、ペントキシフィリンなどの抗血小板薬、抗血栓薬および血管拡張薬などをはじめとする薬物療法が行なわれている。
　また、PADの外科的治療としては、バルーン拡張術、ステント留置術、アテレクトミーなどの血管内治療や、血栓内膜摘除術、バイパス術、交感神経切除術などの外科的手術が行われている。
　しかし、下肢の壊死が重症な場合には、上記内科的治療や外科的治療を行っても効果が得られないことも多く、このような場合には救命を目的として肢趾切断となる患者が後を絶たない。
　したがって、閉塞性動脈硬化症（ASO:arteriosclerosis obliterans）、閉塞性血栓血管炎（TAO:thromboangiitis obliterans、いわゆるバージャー病）、膝窩動脈捕捉症候群などを含むPADにおいて、血管の再生、それに基づく下肢虚血改善効果等を可能とする新たな治療方法が望まれている。
　近年、当該PADの治療においても、再生医療による研究がなされている。
　その一つとして、成人の骨髄及び末梢血単核球中に血管内皮細胞に分化しうる血管内皮前駆細胞が存在することが報告され、骨髄由来単核細胞移植は下肢虚血動物モデルにおいて、血管新生や側副血行路の発達により下肢血流量増加作用を発揮することが確認された。（非特許文献１）
　しかしながら、骨髄単核球移植による治療は多量の骨髄液採取を必要とし、侵襲が大きく、また、新鮮分離細胞のため骨髄細胞中の幹細胞及び前駆細胞量に個人差があり臨床効果に大きな差が出ることが明らかとなっている。
　また、間葉系幹細胞を用いた当該再生医療研究として、ラット下肢虚血モデル、マウス下肢虚血モデル、ウサギ下肢虚血モデルを用い、間葉系細胞を移植することにより血管再生促進効果、下肢虚血の改善効果が報告されている。（非特許文献２、非特許文献３、非特許文献４）
　しかしながら、移植細胞の血管への長期生着や血管構成細胞への分化が見られないなど、再生医療の効果として十分なものとは言えない。
  一方、本発明者らの一人である出澤の研究により、間葉系細胞画分に存在し、遺伝子導入やサイトカイン等による誘導操作なしに得られる、ＳＳＥＡ－３（Ｓｔａｇｅ－Ｓｐｅｃｉｆｉｃ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ａｎｔｉｇｅｎ－３）を表面抗原として発現している多能性幹細胞（Ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ－ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｎｇ  Ｓｔｒｅｓｓ  Ｅｎｄｕｒｉｎｇ  ｃｅｌｌｓ；Ｍｕｓｅ細胞）が間葉系細胞画分の有する多能性を担っており、組織再生を目指した疾患治療に応用できる可能性があることが分かってきた（例えば、特許文献１；非特許文献５～７）。しかしながら、末梢動脈疾患の治療にＭｕｓｅ細胞を使用し、期待される治療効果が得られることを明らかにした例はない。
特許第5185443号明細書 国際公開第WO2011/007900号パンフレット
Hou X et al.  Mol Biol Rep 37:1467-1475 (2010) Liu J., Hao H., Xia L., et al. Hypoxia pretreatment of bone marrow mesenchymal stem cells facilitates angiogenesis by improving the function of endothelial cells in diabetic rats with lower ischemia. PLoS ONE. 2015;10(5) Xie N., Li Z., Adesanya T. M., et al. Transplantation of placenta-derived mesenchymal stem cells enhances angiogenesis after ischemic limb injury in mice. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 2016;20(1):29-37 Cunping Yin, Yuan Liang, Jian Zhang, Guangping Ruan, Zian Li, Rongqing Pang, and Xinghua Pan, Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stem Cells Relieve Hindlimb Ischemia through Enhancing Angiogenesis in Tree Shrews. Stem Cells International, Volume 2016 (2016), Article ID 9742034, 9 pages Kuroda Y et al. Proc Natl Acad Sci USA，2010: 107: 8639-8643. Wakao S et al. Proc Natl Acad Sci USA，2011: 108: 9875-9880. Kuroda Y et al. Nat Protc, 2013: 8: 1391-1415. Kondo K et al. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2009; 29: 61-66.
　本発明は、末梢動脈疾患を含む末梢血流障害の治療のための細胞製剤を提供することを目的とする。
  本発明者らは、マウス下肢虚血モデルにおいて、ヒトＭｕｓｅ細胞を血管等から投与、あるいは対象の末梢動脈部位及びその周辺に直接投与することにより、Ｍｕｓｅ細胞が傷害された末梢動脈部位に集積・生着して障害を生じている末梢動脈部位の血管を再生し、末梢動脈部位の血管障害の改善又は回復をもたらすことを見出し、それにより、Ｍｕｓｅ細胞が末梢動脈疾患を含む末梢血流障害の治療に好適に使用できることを見出し、本発明を完成するに至った。
  すなわち、本発明は、以下の通りである。
  ［１］生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞を含む、末梢血流障害を治療するための細胞製剤。
　［２］末梢血流障害が末梢動脈疾患である、［１］に記載の細胞製剤。
　［３］末梢動脈疾患が、四肢の慢性動脈閉塞症である、［２］に記載の細胞製剤。
　［４］末梢動脈疾患が、閉塞性動脈硬化症である、［２］または［３］に記載の細胞製剤。
　［５］末梢動脈疾患が、閉塞性血栓血管炎（バージャー病）である、［２］または［３］に記載の細胞製剤。
　［６］末梢動脈疾患が、膝窩動脈捕捉症候群である、［２］または［３］に記載の細胞製剤。
  ［７］前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記［１］～［６］のいずれかに記載の細胞製剤：
　（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
　（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
　（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
　（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ。
  ［８］前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記［１］～［６］のいずれかに記載の細胞製剤：
  （ｉ）ＳＳＥＡ－３陽性；
　（ｉｉ）ＣＤ１０５陽性；
　（ｉｉｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
　（ｉｖ）三胚葉のいずれかの胚葉に分化する能力を持つ；
　（ｖ）腫瘍性増殖を示さない；及び
　（ｖｉ）セルフリニューアル能を持つ。
  ［８］生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞の、末梢血流障害を治療するための細胞製剤の製造のための使用。

　［９］前記［１］～［７］のいずれかに記載の細胞製剤の有効量を、治療を必要とする患者に投与する工程を含む、末梢血流障害の治療方法。
　［１０］前記細胞製剤は静脈内に投与される、［９］の末梢血流障害の治療方法。
　［１１］前記細胞製剤は複数回投与される、［９］または［１０］の末梢血流障害の治療方法。
  本発明では、末梢動脈疾患などの末梢血流障害を患っている対象に対し、Ｍｕｓｅ細胞を血管等から投与あるいは対象の末梢血管部位及びその周辺に直接投与することにより、Ｍｕｓｅ細胞が障害を受けた末梢血管部位に集積・生着して障害を生じている末梢血管部位の血管を再生し、末梢血管部位の血流障害の改善又は回復させることができる。
　Ｍｕｓｅ細胞は、障害を受けた末梢血管部位へ効率的に遊走して生着することができ、生着した部位で血管を構成し、移植に先立って治療対象細胞への分化誘導が不要である。また、非腫瘍形成性であり安全性にも優れる。さらに、Ｍｕｓｅ細胞は免疫拒絶を受けないことから、ドナーから製造された他家製剤による治療も可能である。従って、上記に示す優れた性能を有するＭｕｓｅ細胞によって、末梢動脈疾患などの末梢血流障害を患う患者の治療に容易に実行可能な手段を提供することができる。
　間葉系幹細胞や自家骨髄細胞では静脈投与で細胞が障害部位に到達することが難しい、あるいは到達するとしてもその効率が非常に低いため筋肉注射で投与されることが一般的であるが、筋肉注射は連続治療が困難であるという問題がある。これに対し、Ｍｕｓｅ細胞等は静脈投与だけで障害部位に選択的に到達・集積することが可能であり、また静脈投与であるために複数回投与も可能である。これらのことから複数回の治療を行うことで、間葉系幹細胞や自家骨髄細胞よりも優れた治療効果が得られる可能性が示唆される。
図１は下肢虚血モデルマウス（ヌードマウス）に各細胞を投与した場合の血流レーザードップラー測定による結果を示すグラフである。縦軸は虚血肢/非虚血肢の血流比を示す。図中、Ve: Vehicle　BM: bone marrow　nMuse: non Muse細胞  Muse: Muse細胞、を示す。 図２は各細胞を投与後、６日目の血管新生因子である血管新生関連遺伝子の発現量を測定した結果を示すグラフである。 図３は各細胞を投与後、２８日目の虚血骨格筋内血管密度を測定した結果を示す写真である。左がMuse細胞投与、右がVehicleを示す。 図４はMuse細胞、非Muse細胞、BMMNC(骨髄単核細胞)またはPBSを筋肉または静脈に注射したBALBcマウス虚血後肢における血流のレーザードップラー分析の結果を示す図である。Aは虚血肢/非虚血肢の血流比の経時変化を示し（**P<0.01 PBS vs. Muse i.v., ##P<0.01 non Muse i.v. vs. Muse i.v.）、Bは術後7日、Cは術後14日の血流比を示す（**群間の有意差(P  0.01)）。なお、結果は平均±SEM(n = 5)で表し、B、Cにおけるドットは各マウスに対応する。 図５はPBSまたはMuse細胞投与14日後の虚血性内転筋の組織切片を抗CD31抗体およびDAPIで染色した結果を示す図（顕微鏡写真）である。スケールバー50μm。
  本発明は、ＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）を含む、末梢血流障害を治療するための細胞製剤に関する。本発明を以下に詳細に説明する。
１．適用疾患
  本発明のＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）を含む細胞製剤は、末梢動脈疾患の治療に使用される。
  本発明において、「末梢血流障害」とは、末梢血管の障害や交感神経の障害などにより末梢の血流が低下することによって起こる障害を意味する。
　末梢血管の障害としては、末梢動脈疾患（PAD:peripheral arterial disease）および末梢静脈疾患が挙げられる。
　「末梢動脈疾患」には、器質的末梢動脈疾患および機能的末梢動脈疾患が含まれ、器質的末梢動脈疾患としては、閉塞性動脈硬化症（ASO:arteriosclerosis obliterans）、閉塞性血栓血管炎（TAO:thromboangiitis obliterans、いわゆるバージャー病）、急性動脈閉塞症（急性動脈塞栓症、急性動脈血栓症を含む）、大動脈炎症候群、ベーチェット病、膝窩動脈捕捉症候群、膝窩動脈外膜嚢腫、遺残坐骨動脈などが挙げられ、機能的末梢動脈疾患としてはレイノー病などが挙げられる。
　「末梢動脈疾患」としては、四肢の慢性動脈閉塞症に該当する疾患が好ましく、上記の疾患のうち、閉塞性動脈硬化症、閉塞性血栓血管炎および膝窩動脈捕捉症候群が好ましい。
　レイノー病としては、一次性レイノー症候群および二次性レイノー症候群を含み、その原因は特に限定されず、膠原病によるもの、外傷によるもの、振動によるもの、胸郭出口症候群によるもの、慢性閉塞性動脈疾患によるもの、血液疾患によるもの、神経疾患によるもの、などが例示される。
　「末梢静脈疾患」としては、静脈血栓症（深部静脈血栓症等）、慢性静脈不全、下肢静脈瘤、静脈瘤性湿疹、静脈瘤性潰瘍などが挙げられる。
　交感神経の障害としては、交感神経の反射異常が挙げられ、反射性交感神経性委縮症、カウザルギー、幻肢痛、中枢性疼痛などの末梢血流障害を引き起こしうる交感神経の障害が含まれる。
２．細胞製剤
（１）多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）
  本発明の細胞製剤に使用される多能性幹細胞は、本発明者らの一人である出澤が、ヒト生体内にその存在を見出し、「Ｍｕｓｅ（Ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ－ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｎｇ  Ｓｔｒｅｓｓ  Ｅｎｄｕｒｉｎｇ）細胞」と命名した細胞である。Ｍｕｓｅ細胞は、骨髄液、脂肪組織（Ｏｇｕｒａ，Ｆ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  Ｄｅｖ．，Ｎｏｖ  ２０，２０１３（Ｅｐｕｂ）（ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ  ｏｎ  Ｊａｎ  １７，２０１４））や皮膚の真皮結合組織等から得ることができるほか、広く組織や臓器の結合組織に存在することが知られている。また、この細胞は、多能性幹細胞と間葉系幹細胞の両方の性質を有する細胞であり、例えば、細胞表面マーカーである「ＳＳＥＡ－３（Ｓｔａｇｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ－３）」陽性細胞、好ましくはＳＳＥＡ－３陽性かつＣＤ１０５陽性の二重陽性細胞として同定される。したがって、Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、例えば、ＳＳＥＡ－３単独又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ１０５の発現を指標として生体組織から分離することができる。Ｍｕｓｅ細胞の分離法、同定法、及び特徴などの詳細は、特許文献２（国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号）に開示されている。また、Ｍｕｓｅ細胞が様々な外的ストレスに対する耐性が高いことを利用して、蛋白質分解酵素処理や、低酸素条件、低リン酸条件、低血清濃度、低栄養条件、熱ショックへの暴露、有害物質存在下、活性酸素存在下、機械的刺激下、圧力処理下など各種外的ストレス条件下での培養によりＭｕｓｅ細胞を選択的に濃縮することができる。なお、本明細書においては、末梢動脈疾患を治療するための細胞製剤として、ＳＳＥＡ－３を指標として用いて、生体の間葉系組織又は培養間葉系組織から調製された多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団を単に「ＳＳＥＡ－３陽性細胞」と記載することがある。また、本明細書においては、「非Ｍｕｓｅ細胞」とは、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に含まれる細胞であって、「ＳＳＥＡ－３陽性細胞」以外の細胞を指すことがある。
  Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、細胞表面マーカーであるＳＳＥＡ－３又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ１０５を指標として生体組織（例えば、間葉系組織）から調製することができる。ここで、「生体」とは、哺乳動物の生体をいう。本発明において、生体には、受精卵や胞胚期より発生段階が前の胚は含まれないが、胎児や胞胚を含む胞胚期以降の発生段階の胚は含まれる。哺乳動物には、限定されないが、ヒト、サル等の霊長類、マウス、ラット、モルモット等のげっ歯類、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ウマ、ロバ、ヤギ、フェレット等が挙げられる。本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、生体の組織から直接マーカーを持って分離される点で、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）やｉＰＳ細胞と明確に区別される。また、「間葉系組織」とは、骨、滑膜、脂肪、血液、骨髄、骨格筋、真皮、靭帯、腱、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などの組織及び各種臓器に存在する組織をいう。例えば、Ｍｕｓｅ細胞は、骨髄や皮膚、脂肪組織、血液、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などから得ることができる。例えば、生体の間葉系組織を採取し、この組織からＭｕｓｅ細胞を調製し、利用することが好ましい。また、上記調製手段を用いて、線維芽細胞や骨髄間葉系幹細胞などの培養間葉系細胞からＭｕｓｅ細胞を調製してもよい。
　また、本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に外的ストレス刺激を与えることにより、該外的ストレスに耐性の細胞を選択的に増殖させてその存在比率を高めた細胞を回収することを含む方法によっても調製することができる。
　前記外的ストレスは、プロテアーゼ処理、低酸素濃度での培養、低リン酸条件下での培養、低血清濃度での培養、低栄養条件での培養、熱ショックへの暴露下での培養、低温での培養、凍結処理、有害物質存在下での培養、活性酸素存在下での培養、機械的刺激下での培養、振とう処理下での培養、圧力処理下での培養又は物理的衝撃のいずれか又は複数の組み合わせであってもよい。
　前記プロテアーゼによる処理時間は、細胞に外的ストレスを与えるために合計０．５～３６時間行うことが好ましい。また、プロテアーゼ濃度は、培養容器に接着した細胞を剥がすとき、細胞塊を単一細胞にばらばらにするとき、又は組織から単一細胞を回収するときに用いられる濃度であればよい。
　前記プロテアーゼは、セリンプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、システインプロテアーゼ、金属プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ又はＮ末端スレオニンプロテアーゼであることが好ましい。更に、前記プロテアーゼがトリプシン、コラゲナーゼ又はジスパーゼであることが好ましい。
  なお、本発明の細胞製剤においては、使用されるＭｕｓｅ細胞は、細胞移植を受けるレシピエントに対して自家であってもよく、又は他家であってもよい。
  上記のように、Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、例えば、ＳＳＥＡ－３陽性又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ１０５の二重陽性を指標にして生体組織から調製することができるが、ヒト成人皮膚には、種々のタイプの幹細胞及び前駆細胞を含むことが知られている。しかしながら、Ｍｕｓｅ細胞は、これらの細胞と同じではない。このような幹細胞及び前駆細胞には、皮膚由来前駆細胞（ＳＫＰ）、神経堤幹細胞（ＮＣＳＣ）、メラノブラスト（ＭＢ）、血管周囲細胞（ＰＣ）、内皮前駆細胞（ＥＰ）、脂肪由来幹細胞（ＡＤＳＣ）が挙げられる。これらの細胞に固有のマーカーの「非発現」を指標として、Ｍｕｓｅ細胞を調製することができる。より具体的には、Ｍｕｓｅ細胞は、ＣＤ３４（ＥＰ及びＡＤＳＣのマーカー）、ＣＤ１１７（ｃ－ｋｉｔ）（ＭＢのマーカー）、ＣＤ１４６（ＰＣ及びＡＤＳＣのマーカー）、ＣＤ２７１（ＮＧＦＲ）（ＮＣＳＣのマーカー）、ＮＧ２（ＰＣのマーカー）、ｖＷＦ因子（フォンビルブランド因子）（ＥＰのマーカー）、Ｓｏｘ１０（ＮＣＳＣのマーカー）、Ｓｎａｉ１（ＳＫＰのマーカー）、Ｓｌｕｇ（ＳＫＰのマーカー）、Ｔｙｒｐ１（ＭＢのマーカー）、及びＤｃｔ（ＭＢのマーカー）からなる群から選択される１１個のマーカーのうち少なくとも１個、例えば、２個、３個、４個、５個、６個、７個、８個、９個、１０個又は１１個のマーカーの非発現を指標に分離することができる。例えば、限定されないが、ＣＤ１１７及びＣＤ１４６の非発現を指標に調製することができ、さらに、ＣＤ１１７、ＣＤ１４６、ＮＧ２、ＣＤ３４、ｖＷＦ及びＣＤ２７１の非発現を指標に調製することができ、さらに、上記の１１個のマーカーの非発現を指標に調製することができる。
  また、本発明の細胞製剤に使用される上記特徴を有するＭｕｓｅ細胞は、以下： 
（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ
からなる群から選択される少なくとも１つの性質を有してもよい。好ましくは、本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、上記性質を全て有する。
　ここで、上記（ｉ）について、「テロメラーゼ活性が低いか又は無い」とは、例えば、ＴＲＡＰＥＺＥ  ＸＬ  ｔｅｌｏｍｅｒａｓｅ  ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社）を用いてテロメラーゼ活性を検出した場合に、低いか又は検出できないことをいう。テロメラーゼ活性が「低い」とは、例えば、体細胞であるヒト線維芽細胞と同程度のテロメラーゼ活性を有しているか、又はＨｅｌａ細胞に比べて１／５以下、好ましくは１／１０以下のテロメラーゼ活性を有していることをいう。
　上記（ｉｉ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏにおいて、三胚葉（内胚葉系、中胚葉系、及び外胚葉系）に分化する能力を有し、例えば、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで誘導培養することにより、肝細胞（肝芽細胞又は肝細胞マーカーを発現する細胞を含む）、神経細胞、骨格筋細胞、平滑筋細胞、骨細胞、脂肪細胞等に分化し得る。また、ｉｎ  ｖｉｖｏで精巣に移植した場合にも三胚葉に分化する能力を示す場合がある。さらに、静注により生体に移植することで傷害を受けた臓器（心臓、皮膚、脊髄、肝、筋肉等）に遊走及び生着し、組織に応じた細胞に分化する能力を有する。
　上記（ｉｉｉ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、増殖速度約１．３日で増殖するが、浮遊培養では１細胞から増殖し、胚様体様細胞塊を作り一定の大きさになると１４日間程度で増殖が止まる、という性質を有するが、これらの胚様体様細胞塊を接着培養に移行すると、再び細胞増殖が開始され、細胞塊から増殖した細胞が約１．３日の増殖速度で広がっていく。さらに精巣に移植した場合、少なくとも半年間は癌化しないという性質を有する。
　また、上記（ｉｖ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、セルフリニューアル（自己複製）能を有する。ここで、「セルフリニューアル」とは、１個のＭｕｓｅ細胞から浮遊培養で培養することにより得られる胚様体様細胞塊に含まれる細胞から３胚葉性の細胞への分化が確認できると同時に、胚様体様細胞塊の細胞を再び１細胞で浮遊培養に持っていくことにより、次の世代の胚様体様細胞塊を形成させ、そこから再び３胚葉性の分化と浮遊培養での胚様体様細胞塊が確認できることをいう。セルフリニューアルは１回又は複数回のサイクルを繰り返せばよい。
（２）細胞製剤の調製及び使用
  本発明の細胞製剤は、限定されないが、上記（１）で得られたＭｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団を生理食塩水や適切な緩衝液（例えば、リン酸緩衝生理食塩水）に懸濁させることによって得られる。この場合、自家又は他家の組織から分離したＭｕｓｅ細胞数が少ない場合には、細胞移植前に細胞を培養して、所定の細胞数が得られるまで増殖させてもよい。なお、すでに報告されているように（国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号パンフレット）、Ｍｕｓｅ細胞は、腫瘍化しないため、生体組織から回収した細胞が未分化のまま含まれていても癌化の懸念が低く安全である。また、回収したＭｕｓｅ細胞の培養は、特に限定されないが、通常の増殖培地（例えば、１０％仔牛血清を含むα－最少必須培地（α－ＭＥＭ）など）において行うことができる。より詳しくは、上記国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号パンフレットを参照して、Ｍｕｓｅ細胞の培養及び増殖において、適宜、培地、添加物（例えば、抗生物質、血清）等を選択し、所定濃度のＭｕｓｅ細胞を含む溶液を調製することができる。ヒト対象に本発明の細胞製剤を投与する場合には、ヒトの腸骨から骨髄液を採取し、例えば、骨髄液からの接着細胞として骨髄間葉系幹細胞を培養して有効な治療量のＭｕｓｅ細胞が得られる細胞量に達するまで増やした後、Ｍｕｓｅ細胞をＳＳＥＡ－３の抗原マーカーを指標として分離し、自家又は他家のＭｕｓｅ細胞を細胞製剤として調製することができる。あるいは、例えば、骨髄液から得られた骨髄間葉系幹細胞を外的ストレス条件下で培養して有効な治療量に達するまでＭｕｓｅ細胞を増殖、濃縮した後、自家又は他家のＭｕｓｅ細胞を細胞製剤として調製することができる。
  また、Ｍｕｓｅ細胞の細胞製剤への使用においては、該細胞を保護するためにジメチルスルフォキシド（ＤＭＳＯ）や血清アルブミン等を、細菌の混入及び増殖を防ぐために抗生物質等を細胞製剤に含有させてもよい。さらに、製剤上許容される他の成分（例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水など）を細胞製剤に含有させてもよい。当業者は、これら因子及び薬剤を適切な濃度で細胞製剤に添加することができる。このように、Ｍｕｓｅ細胞は、各種添加物を含む医薬組成物として使用することも可能である。
  上記で調製される細胞製剤中に含有するＭｕｓｅ細胞数は、末梢血流障害の治療において所望の効果が得られるように、対象の性別、年齢、体重、患部の状態、使用する細胞の状態等を考慮して、適宜、調整することができる。なお、対象とする個体はヒトなどの哺乳動物を含むがこれに限定されない。また、本発明の細胞製剤は、所望の治療効果が得られるまで、複数回（例えば、２～１０回）、適宜、間隔（例えば、１日に２回、１日に１回、１週間に２回、１週間に１回、２週間に１回、１カ月に１回、２カ月に１回、３カ月に１回、６カ月に１回）をおいて投与されてもよい。したがって、対象の状態にもよるが、治療上有効量としては、例えば、一個体あたり一回につき１×１０３細胞～１×１０１０細胞で１～１０回の投与量が好ましい。一個体における投与総量としては、限定されないが、１×１０３細胞～１×１０１１細胞、好ましくは１×１０４細胞～１×１０１０細胞、さらに好ましくは１×１０５細胞～１×１０９細胞などが挙げられる。
本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、傷害を受けた末梢血管部位へと遊走し、生着する性質を有する。したがって、細胞製剤の投与部位や投与形態は特に限定されず、末梢血流障害部位またはその近傍に注射などの方法により局所投与されてもよいし、血管内に注射などの方法によって投与してもよい。投与される血管の種類（静脈及び動脈）は特に限定されず、疾患に応じて適宜選択されるが、静脈内注射が好ましく、静脈内注射を複数回行うことにより、治療効果を長期間持続可能であるためより好ましい。
  本発明の細胞製剤は、末梢血流障害を患う患者の障害が生じた末梢血管部位の血管を再生することができる。
  以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。
実施例１：下肢虚血モデルマウスの作製
　本実施例におけるマウスを用いた実験プロトコールは、「京都府立医大動物実験等に関する規定」を遵守し、実験動物は、京都府立医大動物実験センターの監督下において該規定に沿って作製された。より具体的には、以下の手順により作製した。
　８－１０週齢の雌性ＢＡＬＢ／Ｃヌードマウスをイソフルランの吸入により麻酔（誘導時：4%、維持時： 2%）した。下肢を切開し、実体顕微鏡（KONAN OPERATION MICROSCOPE KOM）下で、左総大腿動静脈、および左浅大腿動静脈末梢を5-0絹糸で結紮した。このようにして作製されたマウスを下肢虚血モデルマウスとして以下の実験に使用した。
実施例２：ヒトＭｕｓｅ細胞の調製
　ヒトＭｕｓｅ細胞の分離及び同定に関する国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号に記載された方法に準じて、Ｍｕｓｅ細胞を得た。Ｍｕｓｅ細胞のソースとしては市販の間葉系幹細胞（ＭＳＣ、Lonza社）を用いた。移植に使用されるＭｕｓｅ細胞は、障害を受けた末梢動脈部位に生着したことを確認するために、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現し、細胞がこれにより標識されるように、予めレンチウイルス－ＧＦＰ遺伝子をＭｕｓｅ細胞に導入した。ＧＦＰで標識されたＭｕｓｅ細胞をＧＦＰとＳＳＥＡ－３の二重の陽性細胞としてＦＡＣＳにて分離した。またＭＳＣからＭｕｓｅ細胞を分離した残りの細胞を非Ｍｕｓｅ細胞として使用した。また、ＧＦＰ陽性ＭＳＣもＦＡＣＳにて単離し、ＭＳＣ群として使用した。
実施例３：下肢虚血モデルマウスに対する各細胞の投与
　実施例１で作製した下肢虚血モデルマウスを４群に分け、モデル作製後、１日目に、各群のマウスにＭｕｓｅ細胞（３×１０４個、１００μＬ）（Muse）、非Ｍｕｓｅ細胞（３×１０４個、１００μＬ）（nMuse）、ＭＳＣ（２×１０５個、１００μＬ）（BM）あるいはＶｅｈｉｃｌｅ（リン酸緩衝液）（Ve）を左大腿部２箇所に分けて投与した。一群の動物数は ５匹とした。
実施例４：レーザードップラーによる継時的下肢血流評価
　下肢虚血モデルマウス作製後、０、３、７、１０及び１４日に、二次元レーザー血流画像装置［laser doppler perfusion image (LDPI) analyzer (OMEGAZONE OZ-1, OMEGAWAVE, Inc. Tokyo, Japan)を用いて血流を測定した。各個体の左右両方の下肢血流を測定し、左側（患側）／右側（健側）の比を算出し、これをLDPIインデックスとした。
図１に示す通り、Ｍｕｓｅ細胞群では１４日以降も血流改善が継続し、虚血した左下肢は健康な右下肢と同程度まで血流が改善した。一方、非Ｍｕｓｅ細胞群（nMuse）、ＭＳＣ群（BM）及びＶｅｈｉｃｌｅ群（Ve）では１０日までは一定の血流改善を示すが１４日以降は改善が見られなかった。
実施例５：血管新生因子である血管新生関連遺伝子の発現量の測定
　細胞投与後６日目の左側（患側）の下肢骨格筋のｍＲＮＡを抽出して、血管新生関連遺伝子として代表的なＶＥＧＦ及びｂＦＧＦ（特に、FGF-2）の発現量をreal-time RT-PCRの絶対定量法で測定した。測定方法は非特許文献８に基づいて行った。その結果を図２に示す。Ｍｕｓｅ細胞群は、Ｖｅｈｉｃｌｅ群と比較してこれら血管新生因子である血管新生関連遺伝子（ｍＲＮＡ）発現量が有意に高かった。
実施例６：虚血骨格筋内血管密度の測定
　細胞投与後２８日の左側（患側）の下肢骨格筋の組織を４％パラホルムアルデヒド（Paraformaldehude:ＰＦＡ）によって固定し、パラフィン切片を作成した後、抗Isolectin GS-IB4抗体, Alexa Fluor 568 Conjugate（Thermo Fisher Scientific社整、３００倍希釈で使用）を用いて虚血下肢骨格筋における血管内皮細胞の免疫組織化学染色を行い、骨格筋線維あたりの血管内皮細胞の割合を血管密度として測定した。その結果を図３に示す。Ｍｕｓｅ細胞群（図３左）では、Ｖｅｈｉｃｌｅ群（図３右）と比較してこれら虚血骨格筋内の血管密度が高いことがわかる。
実施例７：野生型マウスを用いた下肢虚血モデルにおける評価
　野生型BALBcマウス（オス１２週齢）を用いて、実施例１と同様にして、下肢虚血モデルマウスを作製した。作製した下肢虚血モデルマウスを群に分け、モデル作製後１日目に、各群のマウスに、Ｍｕｓｅ細胞（３×１０４個、２００μＬ）（Muse）、非Ｍｕｓｅ細胞（３×１０４個、２００μＬ）（non Muse）、あるいは骨髄単核細胞（２×１０５個、２００μＬ）（BMMNC）を尾静脈内(i.v.)または筋肉内(i.m.)に注射した。対照として、ＰＢＳを尾静脈に注射した。一群の動物数は５匹とした。
　術前、術直後、術後1日目、3日目、7日目、14日目に、それぞれの群において、血流を実施例４と同様にレーザードップラー血流分析器によって評価し、虚血後肢と非虚血後肢とで血流量を測定し、その比を算出した。結果を図４のＡに示す。また、７日目および１４日目の結果を図４のＢおよびＣに示す。
　その結果、野生型マウスにおいても、ヒトMuse細胞は筋注、静注のいずれにおいても下肢の虚血を改善させることが分かった。ヒトMuse細胞静注は、Muse細胞筋注、およびマウス自家骨髄単核球筋注とほぼ同等の効果があるということは、Muse細胞は静脈から患部に到達して生着し、虚血改善効果を発揮するということを示している。
　次に、対照群またはMuse細胞静注群のマウスの虚血性内転筋を術後14日目に採取し、組織解析を行った。採取された虚血性内転筋を4%PFA中で1時間固定し、30%ショ糖溶液中で一晩インキュベートした。次いで、組織を最適切断温度(OCT)化合物(Sakura Finetek)に包埋し、液体窒素中で急速凍結し、クリオスタット上で切断した。組織切片を1:5,000の希釈でウサギ抗CD31(ab182981;Abcam)と一晩インキュベートした。ヤギ抗ウサギAlexa594(Abcam)を二次抗体として用いた。DAPI(サーモフィッシャー・サイエンティフィック)を有するProlong GOLD Antifadeでマウントした後、BZ X800光学顕微鏡(Keyence)を用いて画像化を行った。結果を図５に示す。Muse投与群では内皮細胞マーカーであるCD31の発現が有意に亢進しており、Muse細胞は虚血後肢の血管新生を促進して虚血状態を改善することが示唆された。
  本発明の細胞製剤は、末梢動脈疾患などの末梢血流障害を患う患者に投与することにより、障害を受けた末梢血管部位に集積・生着して、障害を生じている末梢血管部位の血管を再生し、末梢血管部位の血流障害の改善又は回復させることができる。

Claims (8)

  1. 生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞を含む、末梢血流障害を治療するための細胞製剤。
  2. 末梢血流障害が、末梢動脈疾患である、請求項１に記載の細胞製剤。
  3. 末梢動脈疾患が、四肢の慢性動脈閉塞症である、請求項２に記載の細胞製剤。
  4. 末梢動脈疾患が、閉塞性動脈硬化症である、請求項２または３に記載の細胞製剤。
  5. 末梢動脈疾患が、閉塞性血栓血管炎（バージャー病）である、請求項２または３に記載の細胞製剤。
  6. 末梢動脈疾患が、膝窩動脈捕捉症候群である、請求項２または３に記載の細胞製剤。
  7. 前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記請求項１～６のいずれかに記載の細胞製剤：
    　（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
    　（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
    　（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
    　（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ。
  8. 前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記請求項１～６のいずれかに記載の細胞製剤：
      （ｉ）ＳＳＥＡ－３陽性；
    　（ｉｉ）ＣＤ１０５陽性；
    　（ｉｉｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
    　（ｉｖ）三胚葉のいずれかの胚葉に分化する能力を持つ；
    　（ｖ）腫瘍性増殖を示さない；及び
    　（ｖｉ）セルフリニューアル能を持つ。
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