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WO2019070021A1 - ｉＰＳ細胞由来の遺伝的多様性を有するＴ細胞集団の製造方法 - Google Patents

ｉＰＳ細胞由来の遺伝的多様性を有するＴ細胞集団の製造方法 Download PDF

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WO2019070021A1
WO2019070021A1 PCT/JP2018/037188 JP2018037188W WO2019070021A1 WO 2019070021 A1 WO2019070021 A1 WO 2019070021A1 JP 2018037188 W JP2018037188 W JP 2018037188W WO 2019070021 A1 WO2019070021 A1 WO 2019070021A1
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WO
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cells
cell population
cell
medium
ips cells
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PCT/JP2018/037188
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English (en)
French (fr)
Inventor
裕 安井
義元 桂
博之 上野
新 金子
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Thyas Co Ltd
Kyoto University NUC
Original Assignee
Thyas Co Ltd
Kyoto University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to JP2019547010A priority patent/JPWO2019070021A1/ja
Priority to US16/652,011 priority patent/US20200345789A1/en
Priority to CN201880064382.0A priority patent/CN111164204A/zh
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    • C12N2510/00—Genetically modified cells

Definitions

  • the present invention relates to methods of producing regenerative T cell populations with genetic diversity and to such regenerative T cell populations.
  • T cells play a central role in the immune system against foreign pathogens such as bacteria or viruses or abnormal cells such as cancer cells, and T cell function is reduced due to various causes, making subjects susceptible to infection And is considered to suffer from cancer and the like. If it is possible to supplement or regenerate immune cells and the like for such diseases, it will be an extremely effective means for improving the condition of the diseases and improving the therapeutic effect.
  • T cells derived from pluripotent stem cells such as iPS cells
  • T cells specific for the target antigen as a source of iPS cells
  • Non-patent Document 1 The content of this document is hereby incorporated by reference in its entirety.
  • established iPS cells are cloned in single cell-derived cell population (colony) units.
  • the cell properties are stable, the differentiation efficiency to the target cell / tissue is good, and it becomes possible to use the iPS cell line confirmed to be free from mutations or abnormalities by gene analysis or the like.
  • cloning is conventionally considered to be an important step because it is necessary to examine clones one by one in order to confirm the quality of clones and their suitability to patients.
  • the method of using a T cell population having genetic diversity allows multiple immune responses to target tissues and antigens.
  • this method is highly susceptible to immune escape (escape) due to decreased expression of an antigen or mutation, so that high therapeutic effects can be obtained.
  • TCR T cell receptor
  • CAR artificial antigen receptor
  • the conventional method using iPS cell lines involves cloning, which is equivalent to excluding the selected clones, so that the genetic diversity existing at the stage of establishment of iPS cells is completely eliminated. It will be lost.
  • an immune reaction directed to a single antigen epitope there is a problem that it is susceptible to immune escape (escape) due to a reduction in expression of an antigen molecule or mutation, and it is difficult to obtain a high therapeutic effect.
  • T cell replacement therapy T cell populations with genetic diversity can be used, but amplification of T cell populations in vitro causes fatigue of T cells and an immune response to an antigen There is a problem of falling. Therefore, development of a new method of producing a regenerative T cell population having genetic diversity for the purpose of application to T cell replacement therapy is desired.
  • an object of the present invention is to provide a method for producing a regenerative T cell population having genetic diversity via iPS cells and such a regenerative T cell population.
  • the task of another aspect of the present invention is to use the regenerated T cell population obtained by the above method for T cell replacement therapy.
  • the task of still another aspect of the present invention is to use tumor infiltrating T cells as the T cell population of the raw material of the method.
  • the inventors examined the problem in the conventional method, and it is said that if a regenerative T cell population having genetic diversity is produced through iPS cells, only an immune response directed to a single antigen epitope can be used. We have found that the problem and the problem of exhaustion of the T cell population are solved.
  • the gist of the present invention is [1] (1) a step of enriching a T cell population having tropism with respect to a target tissue or antigen from the collected T cell population having genetic diversity, (2) the enriched T cell population as iPS Culturing iPS cells while reprogramming into cells and maintaining genetic diversity, and (3) producing a regenerated T cell population having genetic diversity from the cultured iPS cells, A method of producing a regenerative T cell population having genetic diversity via iPS cells, [2] The method according to [1], wherein the T cell population collected in step (1) is derived from a mammal to be treated; [3] The method according to [1] or [2], wherein the T cell population collected in step (1) is a tumor infiltrating T cell, [4] The method according to [1] or [2], wherein the T cell population collected in step (1) is derived from blood, lymph nodes or cavity water.
  • step (1) comprises the steps of activating upon stimulation with an antigenic protein or peptide and separating proliferated T cells.
  • step (2) comprises the steps of collecting and passaging the iPS cells without cloning.
  • the T cell population obtained in step (3) is an ⁇ T cell population, a ⁇ T cell population, a helper T cell population, a regulatory T cell population, a cytotoxic T cell population, an NKT cell population, or a tumor infiltrating T
  • the method according to any one of [1] to [6], which is a cell population, [8] The method according to any one of [1] to [7], wherein the T cell population obtained in step (3) is used for T cell replacement therapy, [9] [1] to [8] Regenerated T cell population obtained by any one of the methods according to any of the above [10], maintaining genetic diversity of T cell population present in vivo, through iPS cells Regenerated T cell population obtained, [11] [9] or a pharmaceutical composition containing the regenerated T cell population according to [10], [12] The pharmaceutical composition according to [11] for treating a cancer treatment target by autologous or allogeneic transplantation. [13] A method of treating cancer using the pharmaceutical composition according to [11] or [12].
  • the present invention makes it possible to produce a regenerative T cell population having genetic diversity via iPS cells. Moreover, in another aspect of the present invention, by enriching and using T cells having tropism with respect to a target tissue or antigen from T cell populations having genetic diversity existing in vivo, It is possible that the regenerative T cell population produced has a high therapeutic effect in T cell replacement therapy.
  • Tumor Infiltrating Lymphocytes TILs
  • TILs Tumor Infiltrating Lymphocytes
  • FIG. 1 is a diagram showing the proportion of T cells having the V ⁇ chain of each TCR among T cell populations isolated from excised tumors of lung cancer patients.
  • V ⁇ 1 to V ⁇ 23 in FIG. 1 indicate that the separated T cell population is a T cell population having TCR genetic diversity.
  • FIG. 2 is a diagram showing the proportion of T cells having the V ⁇ chain of each TCR in the regenerated T cell population produced via iPS cells.
  • V ⁇ 1 to V ⁇ 23 in FIG. 2 indicate that the regenerated T cell population is also a T cell population having genetic diversity.
  • the present invention provides a method for producing a regenerative T cell population having genetic diversity via iPS cells.
  • the method comprises the steps of: (1) enriching a T cell population having tropism for a target tissue or antigen from the collected T cell population having genetic diversity, (2) the enriched T cell population The steps of reprogramming to iPS cells and culturing while maintaining genetic diversity, and (3) producing regenerated T cell populations having genetic diversity from the cultured iPS cells.
  • “to produce a regenerative T cell population having genetic diversity via iPS cells” refers to reprogramming from a T cell population having genetic diversity to iPS cells. , Regenerating T cell populations with genetic diversity.
  • T cells produced through the above process are referred to as "regenerated T cells”.
  • Step (1) of the present invention is a step of enriching a T cell population having tropism for a target tissue or antigen from the collected T cell population having genetic diversity.
  • the "T cell population having genetic diversity” is a lymphocyte that is positive for CD3 and CD45 present in vivo, and an antigen is Gene sequences of T cell receptors (TCRs) that recognize are diverse cell populations as a population.
  • TCRs T cell receptors
  • T cells existing in the living body when T precursor cells develop and differentiate in the thymus, random recombination of TCR genes occurs, so that individual T cells have different TCR gene sequences and can be used against any antigen. It is possible to cause an immune response.
  • TCRs possessed by individual T cells are determined for their respective antigen or peptide sequences that specifically recognize them, by capturing T cells as a group, it is possible that the T cell population is targeted for various antigens. Understandable. Therefore, a T cell population collected from a living being is, in this sense, a T cell population having genetic diversity.
  • T cells are preferably derived from mammals, more preferably from humans, and still more preferably from mammals to be treated (preferably, humans).
  • T cells include, but not limited to, ⁇ T cells, ⁇ T cells, helper T cells, regulatory T cells, cytotoxic T cells, NKT cells and the like.
  • peripheral blood is preferred because it is less invasive, but other preferred sources include cancer or tumor or other organs or tissues, cavity water (such as pleural fluid or ascites fluid), body fluid It includes all sources in the body such as blood (such as blood), lymph nodes or cord blood.
  • preferred T cells are tumor infiltrating T cells.
  • T cell populations with genetic diversity can be used that act against any antigen or tissue.
  • the collected T cell population should have tropism for the cancer, tumor, cancer antigen, tumor specific mutation antigen, virus or the like to be treated preferable.
  • cancer or tumor to be treated preferably, any cancer that may occur in the body such as solid tumor (such as lung cancer or gastric cancer), leukemia (such as acute or chronic myeloid leukemia or lymphoid leukemia) or lymphoma Tumors are included.
  • cancer antigens tumor-specific mutant antigens, or viruses, preferably, WT1, MUC1, EGFRvIII, HER-2 / neu, MAGE A3, p53, which are expressed specifically or nonspecifically in each tumor Cancer antigen such as nonmutant, NY-ESO-1, PSMA, GD2, CEA, MelanA / MART1 or Survivin, p53 with gene mutation, Ras, ERG, bcr-abl, or a novel antigen (Neoantigen) or various virus origin And LMP2, HPV E6 or E7, EB-NA, or HTLV-1 Tax.
  • WT1, MUC1, EGFRvIII, HER-2 / neu, MAGE A3, p53 which are expressed specifically or nonspecifically in each tumor Cancer antigen such as nonmutant, NY-ESO-1, PSMA, GD2, CEA, MelanA / MART1 or Survivin, p53 with gene mutation, Ras, ERG, bcr-abl, or a novel antigen
  • T cell population with tropism for the target tissue or antigen
  • T cells in the living body so that they can respond to any antigen, but most of them are It is T cells unrelated to the target antigen in T cell replacement therapy. Therefore, as a raw material for T cells produced through reprogramming to iPS cells, the T cell population reactive to cancer, tumor or virus targeted for T cell replacement therapy is concentrated in advance, At the same time as the therapeutic effect is dramatically enhanced, it is possible to suppress the immune response to an unexpected antigen to enhance the safety.
  • the “target tissue or antigen” is preferably a cancer to be treated, a tumor, a cancer antigen, a tumor specific mutant antigen, or a tissue containing a virus, or an antigen contained therein, as described above. It is.
  • "having tropism” means that individual T cells show immune responses to a target tissue or antigen as a population while specifically recognizing different antigens or peptide sequences. is there.
  • T cell populations activated by stimulation with an antigen protein or peptide, and proliferated T cells can be used.
  • a mononuclear cell fraction containing antigen-presenting cells is cultured, and an antigen protein or peptide is added to a culture solution. Stimulation with repetitive antigenic proteins or peptides causes reactive T cells to proliferate and increase their proportion in the T cell population.
  • T cells which do not respond to the added antigenic protein or peptide are not activated, and the ratio gradually decreases during in vitro culture, and eventually they die.
  • T cell populations having diversity in the antigen or peptide sequences to be recognized while having specific reactivity with the added antigenic protein or peptide can be obtained.
  • the antigenic protein or peptide those described as the target tissue or antigen as described above are preferable, and for example, those obtained by fragmenting the above-mentioned as cancer antigen, tumor-specific mutant antigen or virus into peptides, etc. are used can do.
  • T cells stimulated by antigenic peptides are known to express or release various activation molecules or cytokines.
  • this property is utilized to bind specific antibodies to those molecules, and then magnetic separation using magnetic beads or selective separation using a flow cytometer using a fluorescent label It is also possible to In addition, in one aspect of the present invention, a system that captures cytokine-releasing cells with bipolar antibodies (cell side and cytokine side) can be used.
  • a method of enriching a T cell population directed to a target tissue or antigen for example, a method using an oligomer of an antigen peptide-HLA complex such as tetramer or dextranomer is used. It can be mentioned.
  • a fluorochrome is labeled on an oligomer consisting of a complex of a specific HLA type and a target antigen peptide that can be presented by the HLA, and the cells to which the oligomer is bound are sorted using a flow cytometer. It is possible to obtain T cells having tropism for tissues or antigens of
  • Step (2) of the present invention is a step of reprogramming the above-enriched T cell population to iPS cells and culturing while maintaining genetic diversity.
  • iPS cells are preferably produced by introducing a reprogramming factor into the T cell population enriched in step (1).
  • the reprogramming factor for example, Oct3 / 4, Sox2, Sox1, Sox3, Sox15, Sox17, Sox17, Klf4, Klf2, c-Myc, N-Myc, L-Myc, Nanog, Lin28, Fbx15, ERas, ECAT15 -2, Tcl1, beta-catenin, Lin28b, Sall1, Sall4, Esrrb, Nr5a2, Tbx3 or Glis1 and other genes or gene products may be mentioned, and these reprogramming factors may be used alone or in combination Also good.
  • Step of Cultivating Established iPS Cells While Maintaining Genetic Diversity When culturing iPS cells, preferably, passage is performed. However, in a general passaging method, cells other than those used for passaging are discarded, so the diversity of iPS cell populations established from T cell populations having genetic diversity is gradually lost. It will be described in detail below.
  • the culture vessel is washed to preferably remove cells other than iPS cells and collect iPS cells without cloning. And pass to another incubator and repeat such passaging.
  • the culture solution used in this step is not particularly limited, but a medium used for culturing animal cells is used as a basal medium, and cytokines for maintaining the undifferentiated ability of iPS cells It can be prepared by adding As the basal medium, for example, Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) medium, Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium Neurobasal Medium (Life Technologies), StemFit AK03N (Ajinomoto), and a mixed medium thereof, and the like.
  • the medium may contain serum or may be serum free.
  • the cytokine preferably includes bFGF, and its concentration in the culture solution is, for example, 1 to 100 ⁇ g / mL (preferably 50 ⁇ g / mL).
  • the culture method of iPS cells may be adhesion culture or suspension culture, but adhesion culture is preferable.
  • a method of separating iPS cells for example, a method of mechanically separating, a separation solution having protease activity, a separation solution having collagenase activity, or a separation solution having protease activity and collagenase activity (eg AccutaseTM and Accumax) Separation methods using (trademark) etc.).
  • iPS cells preferably have a cell density of 1 ⁇ 10 3 to 1 ⁇ 10 4 cells / cm 2 , 1 ⁇ 10 4 to 1 ⁇ 10 5 cells / cm 2 , 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 6 cells / cm 2 And be passaged to another incubator.
  • the number of passages may be any number as long as the amount of iPS cells necessary for T cell replacement therapy can be obtained, and is preferably 1 to 5 times or 5 to 10 times.
  • the obtained iPS cells having genetic diversity may be used as they are or may be cryopreserved until required.
  • Step (3) of the present invention is a step of producing a regenerative T cell population having genetic diversity from the cultured iPS cells.
  • a regenerative T cell population having genetic diversity is obtained from iPS cells cultured in step (2) by differentiating into CD4CD8-positive T cells via hematopoietic progenitor cells, Alternatively, they can be obtained from iPS cells cultured in step (2) by differentiating these cells into CD8 positive T cells.
  • Hematopoietic Progenitor Cells for Deriving Hematopoietic Progenitor Cells from iPS Cells are hematocytes such as lymphocytes, eosinophils, neutrophils, basophils, erythrocytes, or megakaryocytes Cells that can differentiate into
  • the hematopoietic progenitor cells and the hematopoietic stem cells are not distinguished and represent identical cells unless otherwise stated.
  • Hematopoietic stem / progenitor cells can be recognized, for example, by being positive for the surface antigens CD34 and / or CD43.
  • hematopoietic progenitor cells are preferably produced by culturing iPS cells in a culture solution to which vitamin Cs have been added.
  • vitamin C means L-ascorbic acid and derivatives thereof
  • L-ascorbic acid derivative means one which becomes vitamin C by an enzyme reaction in vivo.
  • Derivatives of L-ascorbic acid include, for example, vitamin C phosphate, ascorbic acid glucoside, ascorbyl ethyl, vitamin C ester, ascorbyl tetrahexyldecanoate, ascorbyl stearate and ascorbic acid-2-phosphate-6palmitic acid.
  • the derivative of L-ascorbic acid is preferably vitamin C phosphate, and examples thereof include phosphoric acid-L ascorbate such as phosphoric acid-L ascorbic acid Na or phosphoric acid-L-ascorbic acid Mg.
  • Vitamin Cs are contained, for example, in the culture solution at a concentration of 5 ⁇ g / ml to 500 ⁇ g / ml.
  • the culture solution used for producing hematopoietic progenitor cells is not particularly limited, but it is prepared by using a medium used for culturing animal cells as a basal medium and adding vitamin C etc. thereto. it can.
  • a basal medium for example, Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) medium, Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's' A culture medium, Neurobasal Medium (Life Technologies), StemPro 34 (Life Technologies), a mixed medium of these, and the like can be mentioned.
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • EMEM Eagle's Minimum Essential Medium
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's Medium
  • Ham's F12 medium Ham's F12 medium
  • RPMI 1640 medium Fischer'
  • the medium may contain serum or may be serum free.
  • the basal medium is, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acid, trace element, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipid, amino acid, L-glutamine, non-essential amino acid, vitamin, growth factor, low It may also contain one or more substances such as molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts and cytokines.
  • a culture solution used for producing hematopoietic progenitor cells includes BMP4 (Bone morphogenetic protein 4), VEGF (vascular endothelial growth factor), bFGF (basic fibroblast growth factor), SCF (Stem cell factor), TPO
  • BMP4 Bone morphogenetic protein 4
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • SCF Stem cell factor
  • TPO TPO
  • a cytokine selected from the group consisting of (thrombopoietin) and FLT-3L (Flt3 Ligand) may be further added.
  • these concentrations are, for example, 1 ng / ml to 100 ng / ml of BMP4, 1 ng / ml to 100 ng / ml of VEGF, and 1 ng / ml to 100 of bFGF. It is ng / ml, SCF is 10 ng / ml to 100 ng / ml, TPO is 1 ng / ml to 100 ng / ml, FLT-3L is 1 ng / ml to 100 ng / ml.
  • a TGF ⁇ inhibitor may be added to the culture fluid.
  • TGF ⁇ inhibitors are small molecule inhibitors that interfere with TGF ⁇ family signal transduction, for example, SB431542, SB202190 (above, RKLindemann et al., Mol. Cancer 2: 20 (2003)), SB505124 (GlaxoSmithKline) And NPC30345, SD093, SD908, SD208 (Scios), LY2109761, LY364947, and LY580276 (Lilly Research Laboratories), etc., and the concentration in the medium is preferably 0.5 ⁇ M to 100 ⁇ M.
  • iPS cells are C3H10T1 / 2 (Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830, 2010), or heterologous stromal cells (Niwa A et al. J Ce11 Physiol. 2009). Nov. 221 (2): 367-77.) May be co-cultured, but preferably, culture of iPS cells is performed without using feeder cells.
  • the culture method of iPS cells at the production of hematopoietic progenitor cells may be adhesion culture or suspension culture, but suspension culture is preferable.
  • iPS cells can be subjected to suspension culture after separating colonies cultured to 80% confluence with the used dishes, dissociating into single cells.
  • a method of separating iPS cells for example, a method of mechanically separating, a separation solution having protease activity and collagenase activity (for example, AccutaseTM and AccumaxTM, etc.) or a separation solution having collagenase activity is used. Separation methods.
  • Suspension culture is to culture cells in a non-adhesive state with respect to a culture vessel.
  • the suspension culture is not particularly limited, but a culture vessel which has not been artificially treated (for example, coated with an extracellular matrix etc.) for the purpose of improving the adhesion to cells, or artificial It can be carried out using a culture vessel that has been treated to inhibit adhesion (eg, coating with polyhydroxyethyl methacrylate (po1y-HEMA) or nonionic surface-active polyol (Pluronic F-127 etc.)) .
  • po1y-HEMA polyhydroxyethyl methacrylate
  • Pluronic F-127 etc. nonionic surface-active polyol
  • hematopoietic progenitor cells can also be prepared from a net-like structure (also referred to as iPS-sac) obtained by culturing iPS cells.
  • the “net-like structure” is a three-dimensional sac-like (with internal space) structure derived from iPS cells, which is formed of an endothelial cell population or the like, and is a structure containing hematopoietic progenitor cells therein. It is.
  • the temperature conditions for culturing the hematopoietic precursor cells are not particularly limited, but for example, about 37 ° C. to about 42 ° C., about 37 ° C. to about 39 ° C. are preferable.
  • the culture period can be appropriately determined by those skilled in the art while monitoring the number and the like of hematopoietic progenitor cells.
  • the number of days is not particularly limited as long as the hematopoietic precursor cells can be obtained, for example, at least 6 days, 7 days, 8 days, 9 days, 10 days, 10 days, 11 days, 12 days, 13 days or more. 14 days or more, preferably 14 days.
  • hypoxic conditions 15%, 10%, 9%, 8%, 7%, 6%, 5% or less, for example Oxygen concentration of
  • CD4CD8 bipositive T cells refers to cells that are positive for surface antigen CD4 and CD8 among T cells (CD8 + CD4 + And T cells can be recognized as positive by the surface antigens CD3 and CD45, so that CD4 CD8-positive T cells can be identified as cells positive for CD4, CD8, CD3 and CD45. it can. CD4 CD8 bi-positive T cells can be differentiated into CD4 positive cells or CD8 positive cells by induction.
  • CD4 CD8-positive T cells can be produced by a method comprising the step of culturing hematopoietic progenitor cells in a culture solution to which a p38 inhibitor and / or SDF-1 has been added.
  • p38 inhibitor is defined as a substance that inhibits the function of p38 protein (p38 MAP kinase).
  • p38 MAP kinase p38 MAP kinase
  • a chemical inhibitor of p38, a dominant negative mutant of p38, a nucleic acid encoding the same, and the like can be mentioned, but it is not limited thereto.
  • p38 chemical inhibitors include SB203580 (4- (4-fluorophenyl) -2- (4-methylsulfonylphenyl) -5- (4-pyridyl) -1H-imidazole) and Its derivative, SB202190 (4- (4-fluorophenyl) -2- (4-hydroxyphenyl) -5- (4-pyridyl) -1H-imidazole) and its derivative, SB239063 (trans-4- [4- (4) -Fluorophenyl) -5- (2-methoxy-4-pyrimidinyl) -1H-imidazol-1-yl] cyclohexanol) and its derivatives, SB220025 and its derivatives, PD169316, RPR200765A, AMG-548, BIRB-796, SCl0 -469, SCIO-3 23, VX-702, as well as FR 167653 but is not limited thereto. These compounds are commercially available,
  • dominant negative mutants of p38 include p38T180A in which threonine at position 180 located in the DNA binding region of p38 is point mutated to alanine, and tyrosine at position 182 of p38 in human and mouse P38Y182F etc. which were point mutated to
  • the p38 inhibitor is contained in the medium, for example, in the range of about 1 ⁇ M to about 50 ⁇ M.
  • SDF-1 (Stromal cell-derived factor 1) is not only SDF-1 ⁇ or its mature form, but also SDF-1 ⁇ , SDF-1 ⁇ , SDF-1 ⁇ , SDF-1 ⁇ or SDF-1 ⁇ . Or the like, or a mature form thereof, or a mixture of any ratio thereof.
  • SDF-1 ⁇ is used.
  • SDF-1 may also be referred to as CXCL-12 or PBSF.
  • SDF-1 may be mammalian, eg, non-human mammalian, such as humans, eg, monkeys, sheep, cattle, horses, pigs, dogs, cats, rabbits, rats, or mice.
  • GenBank Accession No. NP_954637 can be used as human SDF-1 ⁇
  • a protein registered under GenBank Accession No. NP_000600 can be used as SDF-1 ⁇ .
  • SDF-1 may be commercially available one, may be one purified from nature, or may be produced by peptide synthesis or genetic engineering techniques You may use
  • SDF-1 is contained in the medium, for example in the range of about 10 ng / ml to about 100 ng / ml.
  • the culture solution used for producing CD4CD8-positive T cells is not particularly limited, but the medium used for culturing animal cells is used as a basal medium, and p38 inhibitors and / or SDF-1 More preferably, it can be prepared by adding vitamin Cs.
  • the type of vitamin C used in the CD4 / CD8-positive T cell production process is, for example, as described above, but the concentration of vitamin C is, for example, 5 ⁇ g / ml to 200 ⁇ g / ml.
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • EMEM Eagle's Minimum Essential Medium
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's Medium
  • Ham's F12 medium RPMI 1640 medium
  • Fischer's medium OP9 medium
  • Neurobasal Medium Life Technologies
  • the medium may contain serum or may be serum free.
  • the basal medium is, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acid, trace element, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipid, amino acid, L-glutamine, non-essential amino acid, vitamin, growth factor, low It may also contain one or more substances such as molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts and cytokines.
  • the culture solution used for producing CD4CD8-positive T cells further comprises adding to the culture solution a cytokine selected from the group consisting of SCF, TPO (thrombopoietin), FLT-3L and IL-7. It is also good. These concentrations are, for example, SCF from 10 ng / ml to 100 ng / ml, TPO from 10 ng / ml to 200 ng / ml, and FLT-3L from 1 ng / ml to 100 ng / ml, IL-7 is 1 ng / ml to 100 ng / ml.
  • hematopoietic progenitor cells may be cultured using feeder cells, but preferably culture is performed without using feeder cells.
  • hematopoietic progenitor cells may be adherent culture or suspension culture, but this step is preferably adherent culture.
  • the culture vessel may be coated and used, for example, as a coating agent, Matrigel (Niwa A, et al. PLoS One. 6 (7): e22261, 2011), collagen, gelatin, laminin, Heparan sulfate proteoglycan, retronectin, Fc-DLL4 or entactin, and combinations thereof.
  • the embryoid body when the embryoid body is suspended and cultured to obtain hematopoietic progenitor cells, it is preferable to perform the adhesion culture after dissociating the cells into single cells.
  • culture temperature conditions for culturing hematopoietic progenitor cells to produce CD4CD8-positive T cells are not particularly limited, and for example, about 37 ° C. to about 42 ° C., about 37 ° C. About 39 ° C. is preferable.
  • the culture period can be appropriately determined by those skilled in the art while monitoring the number of CD4CD8-positive T cells and the like.
  • the number of days is not particularly limited as long as CD4 CD8 bi-positive T cells are obtained, for example, at least 10 days, 12 days, 14 days, 16 days, 18 days, 18 days, 20 days, 22 days, 23 days It is above, Preferably it is 23 days.
  • the obtained CD4CD8 bipositive T cells may be isolated and used, or may be used as a cell population containing other cell types.
  • it can be isolated using any one index consisting of CD4, CD8, CD3 and CD45, and the method of isolation can use methods well known to those skilled in the art, for example, Examples include a method of labeling with antibodies of CD4, CD8, CD3 and CD45, and isolation using a flow cytometer, or a method of purification using an affinity column or the like on which a desired antigen is immobilized.
  • CD8 positive T cells means cells (CD8 + CD4 ⁇ ) that are positive for surface antigen CD8 among T cells Also called sexual T cells. Since T cells can be recognized as positive by surface antigens CD3 and CD45, CD8 positive T cells can be identified as cells that are positive for CD8, CD3 and CD45 and negative for CD4.
  • CD8 positive T cells can be produced by a method comprising the step of culturing CD4 CD8 bipositive T cells in a culture solution to which an adrenocortical hormone agent has been added.
  • the adrenocortical hormone agent is preferably glucocorticoid or a derivative thereof, and for example, cortisone acetate, hydrocortisone, fludrocortisone acetate, prednisolone, triamcinolone, methylprednisolone, dexamethasone, betamethasone, or propionone.
  • examples include beclomethasone acid.
  • the adrenocortical hormone agent is dexamethasone. Its concentration in the culture solution is, for example, 1 nM to 100 nM.
  • the culture solution used for producing CD8 positive T cells is not particularly limited, but it is prepared by using a medium used for culturing animal cells as a basal medium and adding an adrenocortical hormone agent thereto.
  • a basal medium for example, Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) medium, Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium Neurobasal Medium (Life Technologies), a mixed medium thereof, and the like.
  • the medium may contain serum or may be serum free.
  • the basal medium is, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acid, trace element, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipid, amino acid, L-glutamine, non-essential amino acid, vitamin, growth factor, It may also contain one or more substances such as low molecular weight compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts and cytokines.
  • the culture solution used for producing CD8 positive T cells preferably further contains an anti-CD3 antibody, vitamin C, or a cytokine.
  • the cytokine include IL-2 and IL-7.
  • the anti-CD3 antibody is not particularly limited as long as it specifically recognizes CD3, and examples include an antibody produced from an OKT3 clone.
  • the concentration of the anti-CD3 antibody in the culture solution is, for example, 10 ng / ml to 1000 ng / ml.
  • vitamin C used for producing CD8 positive T cells is, for example, those described above, and can be used under the same conditions as described above.
  • the concentration of the cytokine used for producing CD8 positive T cells in the culture solution is, for example, 10 U / ml to 1000 U / ml for IL-2 and 1 ng / ml for IL-7. It is 100 ng / ml.
  • the temperature conditions for culturing CD4 CD8-positive T cells to produce CD8-positive T cells are not particularly limited, and for example, about 37 ° C. to about 42 ° C., about 37 ° C. About 39 ° C. is preferable.
  • the culture period can be appropriately determined by those skilled in the art while monitoring the number of CD8 positive T cells and the like.
  • the number of days is not particularly limited as long as CD8 positive T cells can be obtained, and for example, it is at least one day or more, 2 days or more, 3 days or more, 4 days or more, 5 days or more, and preferably 3 days.
  • the regenerative T cell population obtained by the production method of the present invention is not particularly limited.
  • ⁇ T cell population, ⁇ T cell population, helper T cell population, regulatory T cell population, cytotoxic T cell population, NKT cells A population and a tumor infiltrating T cell population etc. are mentioned.
  • the degree of genetic diversity maintained is preferably 30% or more, 40% or more, 50% or more of the T cell population having genetic diversity of the raw material.
  • the generated regenerative T cell population is preferably used for T cell replacement therapy.
  • T cell replacement therapy means a treatment method for replacing T cells into a living body, and in one aspect of the present invention, T cell replacement therapy preferably involves transfusion of regenerated T cells, intratumoral Treatment methods by cell transplantation include injection, intraarterial injection, portal injection and the like.
  • One aspect of the present invention is a regenerative T cell population obtained via iPS cells, such as a regenerative T cell population obtained by the above method, which maintains the genetic diversity of T cell populations present in vivo.
  • the pharmaceutical composition comprising the regenerative T cell population of the present invention can be used to treat cancer treatment subjects.
  • One aspect of the present invention includes a method of treating cancer using the pharmaceutical composition of the present invention.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain a pharmaceutically acceptable additive. Examples of the additive include cell culture solution, phosphate buffered saline and the like.
  • One aspect of the present invention includes a method of treating a regenerative T cell population obtained by the production method of the present invention by applying it to T cell replacement therapy.
  • one aspect of the present invention includes the regenerated T cell population obtained by the production method of the present invention for use in treatment by T cell replacement therapy.
  • One aspect of the present invention includes all combinations of all the general and / or specific aspects listed in the above description.
  • step (1) The collected T cell population is stimulated with CD3 and CD28 antibody-labeled magnetic beads, and 200 U / ml IL-2, 10 ng / ml IL-7, 10 ng Culturing was carried out for 2 days in RPMI-1640 medium (containing 10% fetal bovine serum, 1% Penicillin-Streptomycin-Glutamine) supplemented with 1 / ml IL-15.
  • RPMI-1640 medium containing 10% fetal bovine serum, 1% Penicillin-Streptomycin-Glutamine
  • step (2) initialization to iPS cells
  • the beads and the cells were separated by pipetting, and then the tube was allowed to stand on a magnetic stand to recover only T cells suspended in the medium.
  • T cells were seeded on a 6 cm dish coated with iMatrix-511 (Nippi: # 892011) at 0.5 ⁇ g / cm 2 , and in RPMI-1640 medium at 37 ° C., 5% CO 2 , 5% O 2 . Culture was started using an incubator set at 2 .
  • the culture was continued for 20 to 40 days while performing the same half volume medium replacement daily to obtain a large number of iPS cell colonies in a 6 cm dish.
  • the culture medium was switched from the culture medium for establishment to the culture medium for iPS cells (StemFit AK03N only) to proceed with the culture.
  • step (2) culture with maintenance of genetic diversity of established iPS cells
  • colonies of iPS cells became visibly recognizable, iPS cells were passaged to a new iMatrix-511 coated 6 cm dish.
  • iPS cells For passage, after washing iPS cells adhering to the dish with PBS (-), attach iPS cells by adding TrypLeSelect (Life Technologies: A12859-01) and incubating for about 7 minutes. Was released and dispersed into single cells. The cells were washed with a culture medium for iPS cells and the number of cells was counted. Then, the dispersed cells were seeded at 1,500 cells / cm 2 on a new iMatrix-511 coated 6 cm dish. At this time, the recovered iPS cells were all seeded to a new dish without discarding.
  • TrypLeSelect Life Technologies: A12859-01
  • TC protector DS Pharma: # KBTCP001
  • Frozen iPS cells In order to store iPS cells stably and for a long time, it is desirable to further store them in liquid nitrogen (-196 ° C.).
  • the obtained hematopoietic progenitor cells were 50 ng / ml SCF, 50 ng / ml, on a 48-well plate coated with Fc-DLL 4 (5 ⁇ g / ml) (Sino Biological Inc.) and Retronectin (5 ⁇ g / ml) (Takara Bio Inc.) OP9 medium (15% FBS, 2 mM L-glutamine, 100 U / ml penicillin supplemented with ml IL-7, 50 ng / ml Flt3 L, 100 ng / ml TPO, 15 ⁇ M SB203580 (Tocris Bioscience), 30 ng / ml SDF-1 ⁇ (PeproTech) Culture was performed for 21 days in 100 ng / ml streptomycin, 55 ⁇ M 2-mercaptoethanol, 50 ⁇ g / ml ascorbic acid, 10 ⁇ g / ml human insulin, 5.5 ⁇ g / ml
  • CD45, CD3, CD4 and CD8 were isolated using FACS to obtain CD4CD8 double positive cells (referred to as DP cells).
  • CD4 CD8 both-positive cells were added to a 96-well plate, 15% fetal bovine serum, 500 ng / ml anti-CD3 antibody (eBioscience), 200 U / ml IL-2, 10 ng / ml IL-7, and 10 nM
  • the cells were cultured for 2 days in RPMI 1640 medium supplemented with dexamethasone (Day 37). Remove the antibody by washing the cells with RPMI 1640 medium containing 15% fetal bovine serum, and culture the cells in RPMI 1640 medium supplemented with 15% fetal bovine serum and 10 ng / ml IL-7 for further 5 days, CD8 positive T cells were obtained (Day 42).
  • Example 1 Using the method described above, iPS cells were established from T cell populations having genetic diversity isolated from isolated tumors of lung cancer patients, and redifferentiation was induced to T cells having genetic diversity.
  • TCRs T cell receptors
  • TCRV ⁇ analysis kit (BECKMAN COULTER: # IM-3497)
  • the patient samples contained cells expressing the respective V ⁇ chains at a rate of about 1 to 13%, and were confirmed to be a T cell population having genetic diversity.
  • These T cell populations were reformatted into iPS cells by the method described above.
  • IPS cells are pluripotent stem cells and do not express T cell-related genes including TCR genes. In other words, it is difficult to analyze the TCR gene diversity at the undifferentiated iPS cell stage.
  • the established iPS cells were passaged so as not to lose genetic diversity, and then induced to differentiate into T cells via the hematopoietic progenitor cell stage.
  • the repertoire of TCRs expressed by regenerated T cells was analyzed using the same kit as described above (FIG. 2). With establishment of iPS cells and induction of T cell differentiation, the diversity of T cells expressing segments such as 2, 3, 4, 7.1, 7.2, 8, 12, 14, 16, 20 and 21.3 of V ⁇ is lost Although it has been completed, about half of the V ⁇ repertoire is conserved, and it has been confirmed that the regenerated T cells are a T cell population having genetic diversity.

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Abstract

【課題】iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法及びかかる再生T細胞集団を提供すること。 【解決手段】（１）採取した遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮する工程、　（２）前記濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化し、遺伝的多様性を維持したまま培養する工程、及び　（３）前記培養したiPS細胞から遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する工程を含む、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法。

Description

ｉＰＳ細胞由来の遺伝的多様性を有するＴ細胞集団の製造方法
　本発明は、遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法及びかかる再生T細胞集団に関する。
　T細胞は、細菌若しくはウイルス等の外来の病原体又は癌細胞等の異常な細胞に対する免疫システムにおいて中心的な役割を果たしており、様々な原因によりT細胞の機能が低下し、被験体が易感染性となったり癌等に罹患すると考えられている。このような疾患に対して、免疫細胞等の補充や再生をすることができれば、疾患の病態改善や治療効果の向上等に極めて有効な手段となる。
　iPS細胞等の多能性幹細胞から誘導したT細胞を用いた補充療法が提案されている。iPS細胞の原料として、目的の抗原に対して特異的なT細胞を使用することで、元のT細胞と同じ抗原特異性を示す再生T細胞を製造することが可能である（非特許文献１；本文献の内容は、その全体において参照により本明細書に援用される。）。この方法では、樹立されたiPS細胞は、単一細胞由来の細胞集団（コロニー）単位でクローン化されている。これにより、細胞性状が安定しており、目的の細胞・組織への分化効率が良く、遺伝子解析等により変異や異常のないことが確認されたiPS細胞株を利用することが可能になる。ここで、クローンの品質や患者への適合性を確認するために、クローンを１個ずつ検査する必要があるため、従来より、クローン化は重要な工程と考えられている。
　一方、ヒト及びマウスを用いた研究において、感染症や腫瘍に対するT細胞補充療法を行う際、遺伝的多様性を有するT細胞集団を用いる方法により、目的とする組織や抗原に対する多角的な免疫反応を誘導することができると同時に、この方法は、抗原の発現低下や変異による免疫逃避（エスケープ）の影響を受けにくいために、高い治療効果が得られることが知られている。
　また、従来技術には、末梢血T細胞へのT細胞受容体（TCR）や人工抗原受容体（Chimeric Antigen Receptor : CAR)の遺伝子導入法も存在するが、用いられるT細胞の有する抗原受容体の遺伝子配列は単一である。
Cell Stem Cell (2013) 12(1):114-126
　iPS細胞株を利用する従来の方法では、クローン化を行うが、このことは、選択したクローン以外を除くことと等しいため、iPS細胞が樹立された段階で存在する遺伝的多様性は完全に失われてしまうことになる。このことは、単一の抗原エピトープを対象とした免疫反応しか利用できないということになる。しかし、単一の抗原エピトープを対象とした免疫反応では、抗原分子の発現低下や変異による免疫逃避（エスケープ）の影響を受けやすく、高い治療効果が得られにくいのではないかという問題がある。一方、従来から行われているT細胞補充療法では、遺伝的多様性を有するT細胞集団を用いることができるが、体外でのT細胞集団の増幅によりT細胞が疲弊し、抗原に対する免疫反応が低下するという問題がある。そのため、T細胞補充療法への利用を目的として、遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する新たな方法の開発が望まれる。
　従って、本発明の課題は、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法及びかかる再生T細胞集団を提供することである。本発明の別の一態様の課題は、前記方法により得られた再生T細胞集団をT細胞補充療法に使用することである。また、本発明のさらに別の一態様の課題は、前記方法の原材料のT細胞集団として腫瘍浸潤T細胞を使用することである。
　本発明者は、従来の方法における問題を検討したところ、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造すれば、単一の抗原エピトープを対象とした免疫反応しか利用できないという問題及びT細胞集団の疲弊の問題が解決されることを見出した。即ち、本発明の要旨は、
〔１〕（１）採取した遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮する工程、（２）前記濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化し、遺伝的多様性を維持したままで、iPS細胞を培養する工程、及び（３）前記培養したiPS細胞から遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する工程を含む、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法、
〔２〕工程（１）の採取したT細胞集団が、治療対象の哺乳動物由来である、〔１〕に記載の方法、
〔３〕工程（１）の採取したT細胞集団が、腫瘍浸潤T細胞である、〔１〕又は〔２〕に記載の方法、
〔４〕工程（１）の採取したT細胞集団が、血液、リンパ節又は腔水由来である、〔１〕又は〔２〕に記載の方法、
〔５〕工程（１）が、抗原タンパク質又はペプチドでの刺激により活性化し、増殖したT細胞を分離するステップを含む、〔１〕～〔４〕いずれか1項に記載の方法、
〔６〕工程（２）が、iPS細胞をクローン化せずに回収し、継代するステップを含む、〔１〕～〔５〕いずれか1項に記載の方法、
〔７〕工程（３）で得られたT細胞集団が、αβT細胞集団、γδT細胞集団、ヘルパーT細胞集団、レギュラトリーT細胞集団、細胞傷害性T細胞集団、NKT細胞集団、又は腫瘍浸潤T細胞集団である、〔１〕～〔６〕いずれか１項に記載の方法、
〔８〕工程（３）で得られたT細胞集団が、T細胞補充療法に使用するものである、〔１〕～〔７〕いずれか１項に記載の方法、
〔９〕〔１〕～〔８〕いずれか記載の方法により得られる再生T細胞集団、〔１０〕生体内に存在するT細胞集団の遺伝的多様性を維持している、iPS細胞を介して得られる再生T細胞集団、
〔１１〕〔９〕または〔１０〕に記載の再生T細胞集団を含有する医薬組成物、
〔１２〕自家的または同種的な移植によりがん治療対象を処置するための〔１１〕に記載の医薬組成物、
〔１３〕〔１１〕または〔１２〕に記載の医薬組成物を用いる、がん治療方法に関する。
　本発明により、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造することが可能となる。また、本発明の別の一態様では、生体内に存在する遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞を濃縮して利用することにより、製造された再生T細胞集団がT細胞補充療法において高い治療効果を示すことが可能である。特に、腫瘍浸潤T細胞（Tumor Infiltrating Lymphocyte : TIL）は、腫瘍に対して特異的でありかつ多様な抗原を認識することが知られており、TILからiPS細胞への初期化を介して再生TILを製造することにより、遺伝的多様性を有する若返ったT細胞による腫瘍特異的かつ効果的なT細胞補充療法が可能となる。
図１は、肺癌患者の摘出腫瘍から分離されたT細胞集団のうち、それぞれのTCRのVβ鎖を有するT細胞の割合を示した図である。図１中のVβ1～Vβ23は、分離されたT細胞集団がTCRの遺伝的多様性を有するT細胞集団であることを示す。 図２は、iPS細胞を介して製造された再生T細胞集団のうち、それぞれのTCRのVβ鎖を有するT細胞の割合を示した図である。図２中のVβ1～Vβ23は、再生されたT細胞集団も遺伝的多様性を有するT細胞集団であることを示す。
　本発明は、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法を提供する。前記方法は、（１）採取した遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮する工程、（２）前記濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化し、遺伝的多様性を維持したまま培養する工程、及び（３）前記培養したiPS細胞から遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する工程を含む。
　本発明の一態様において、「iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する」とは、遺伝的多様性を有するT細胞集団から、iPS細胞への初期化を介して、遺伝的多様性を有するT細胞集団を再生することである。本発明において、上記過程を経て製造されたT細胞を、「再生T細胞」と称す。
工程（１）
　本発明の工程（１）は、採取した遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮する工程である。
・遺伝的多様性を有するT細胞集団
　本発明の一態様において、「遺伝的多様性を有するT細胞集団」とは、生体内に存在するCD3及びCD45が陽性であるリンパ球であり、抗原を認識するT細胞受容体（TCR）の遺伝子配列が集団として多様な細胞集団である。生体内に存在するT細胞は、T前駆細胞が胸腺内で発生分化する際に、TCR遺伝子のランダムな組み換えが起こることで、個々のT細胞が異なるTCR遺伝子配列を有し、あらゆる抗原に対して免疫反応を引き起こすことが可能となっている。個々のT細胞が有するTCRはそれぞれ特異的に認識する抗原又はペプチド配列が決定しているものの、T細胞を集団として捉えることにより、そのT細胞集団が、多様な抗原を免疫対象としていることが理解できる。従って、生体から採取されたT細胞集団は、この意味で、遺伝的多様性を有するT細胞集団である。
　本発明の一態様において、T細胞は哺乳動物由来であることが好ましく、ヒト由来であることがより好ましく、治療対象の哺乳動物（好ましくは、ヒト）由来であることがさらに好ましい。T細胞としては、特に限定されないが、例えば、αβT細胞、γδT細胞、ヘルパーT細胞、レギュラトリーT細胞、細胞傷害性T細胞、及びNKT細胞等が挙げられる。また、T細胞の供給源としては、侵襲性が低いことから、末梢血が好ましいが、その他の好ましい供給源として、癌若しくは腫瘍又はその他の臓器若しくは組織、腔水（胸水又は腹水等）、体液（血液等）、リンパ節或いは臍帯血等の体内のあらゆる供給源が挙げられる。本発明の別の態様において、好ましいT細胞は、腫瘍浸潤T細胞である。
　本発明の一態様において、遺伝的多様性を有するT細胞集団は、どのような抗原又は組織に対して作用するものでも用いることが可能である。特に、製造した再生T細胞をT細胞補充療法に用いる場合は、採取したT細胞集団が、治療対象の癌、腫瘍、癌抗原、腫瘍特異的変異抗原、又はウイルス等に対する指向性を有することが好ましい。このような治療対象の癌又は腫瘍としては、好ましくは、固形腫瘍（肺癌又は胃癌等）、白血病（急性又は慢性の骨髄性白血病又はリンパ性白血病）又はリンパ腫等の体内に発生しうるあらゆる癌又は腫瘍が挙げられる。また、このような癌抗原、腫瘍特異的変異抗原、又はウイルスとしては、好ましくは、各腫瘍に特異的又は非特異的に発現するWT1、MUC1、EGFRvIII、HER-2/neu、MAGE A3、p53 nonmutant、NY-ESO-1、PSMA、GD2、CEA、MelanA/MART1又はSurvivin等の癌抗原、遺伝子変異を伴ったp53、Ras、ERG、bcr-abl、又は新規抗原（Neoantigen）、或いは各種ウイルス由来のタンパクであるLMP2、HPV E6若しくはE7、EB-NA、又はHTLV-1 Tax等が挙げられる。
・目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮するステップ
　生体内には、あらゆる抗原に対して反応できるように、非常に多様なT細胞が存在しているが、大半がT細胞補充療法で目的とする抗原とは無関係なT細胞である。そのため、iPS細胞への初期化を介して製造するT細胞の原料として、T細胞補充療法の対象となる癌、腫瘍又はウイルスに反応性のあるT細胞集団を、あらかじめ濃縮しておくことで、治療効果が飛躍的に高まると同時に、想定外の抗原に対する免疫反応を抑制し安全性を高めることが可能となる。
　本発明の一態様において、「目的の組織又は抗原」とは、好ましくは、上記した治療対象の癌、腫瘍、癌抗原、腫瘍特異的変異抗原、若しくはウイルスを含む組織、又はそれらに含まれる抗原である。
　本発明の一態様において、「指向性を有する」とは、個々のT細胞がそれぞれ別の抗原又はペプチド配列を特異的に認識しつつ、集団として目的の組織又は抗原に対する免疫反応を示すことである。
　本発明の一態様において、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団の濃縮方法としては、例えば、抗原タンパク質又はペプチドでの刺激によりT細胞集団を活性化し、増殖したT細胞を分離する方法が挙げられる。この方法では、抗原提示細胞を含む単核球分画を培養し、抗原タンパク質又はペプチドを培養液中に添加する。繰り返しの抗原タンパク質又はペプチドでの刺激により、反応性のT細胞は増殖し、T細胞集団中に占める割合が上昇する。一方、添加した抗原タンパク質又はペプチドに反応しないT細胞は活性化されることがなく、in vitroでの培養中に徐々に割合が低下し、最終的には死んでしまう。そのため、一定の培養期間後には、添加した抗原タンパク質又はペプチドに特異的な反応性を有しつつ、認識する抗原又はペプチド配列において多様性を有するT細胞集団が得られる。ここで、「抗原タンパク質又はペプチド」としては、上記目的の組織又は抗原として記載したものが好ましく、例えば、癌抗原、腫瘍特異的変異抗原又はウイルスとして上記したものをペプチド断片化したもの等を使用することができる。また、抗原ペプチドにより刺激されたT細胞は各種の活性化分子又はサイトカインを発現又は放出することが知られている。本発明の一態様において、この性質を利用し、それらの分子に特異的な抗体を結合させた上で、磁気ビーズを用いた磁気的分離又は蛍光標識を用いたフローサイトメーターによる選択的な分離に供することも可能である。また、本発明の一態様において、サイトカイン放出細胞を2極性の抗体（細胞側及びサイトカイン側）で捕捉するシステムを使用することができる。
　本発明の別の一態様において、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団の濃縮方法としては、例えば、テトラマー又はデキストラマー等の抗原ペプチド-HLA複合体のオリゴマーを用いる方法が挙げられる。この方法では、特定のHLA型及びそのHLAが提示可能な目的の抗原ペプチドの複合体から成るオリゴマーに蛍光色素を標識し、オリゴマーが結合した細胞をフローサイトメーターを用いてソーティングすることにより、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞を得ることができる。
工程（２）
　本発明の工程（２）は、前記濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化し、遺伝的多様性を維持したまま培養する工程である。
・濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化するステップ
　iPS細胞の製造方法は当該分野で公知である。本発明の一態様において、iPS細胞は、好ましくは、工程（１）で濃縮したT細胞集団へ初期化因子を導入することによって製造される。ここで、初期化因子としては、例えば、Oct3/4、Sox2、Sox1、Sox3、Sox15、Sox17、Klf4、Klf2、c-Myc、N-Myc、L-Myc、Nanog、Lin28、Fbx15、ERas、ECAT15-2、Tcl1、beta-catenin、Lin28b、Sall1、Sall4、Esrrb、Nr5a2、Tbx3又はGlis1等の遺伝子又は遺伝子産物が挙げられ、これらの初期化因子は、単独で用いても良く、組み合わせて用いても良い。
・樹立されたiPS細胞を遺伝的多様性を維持したまま培養するステップ
　iPS細胞を培養する場合、好ましくは、継代が行われる。しかし、一般的な継代方法では、継代に用いる細胞以外の細胞は破棄されてしまうので、遺伝的多様性を有するT細胞集団から樹立されたiPS細胞集団の多様性が次第に失われていってしまう。
　これに対して、本発明の一態様においては、好ましくは、iPS細胞を樹立した後、培養器を洗浄して、好ましくはiPS細胞以外の細胞を除去し、iPS細胞をクローン化せずに回収し、別の培養器に継代し、このような継代を繰り返す。
　本発明の一態様において、本ステップで用いられる培養液としては、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地とし、これにiPS細胞の未分化能を維持するためのサイトカイン類を添加して調製することができる。基礎培地としては、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium(ライフテクノロジーズ)、StemFit AK03N（味の素）及びこれらの混合培地等が挙げられる。培地には、血清が含有されていてもよいし、又は無血清であってもよい。サイトカイン類としては、好ましくは、bFGFが挙げられ、培養液中におけるその濃度は、例えば、1～100μg/mL（好ましくは50μg/mL）である。
　本発明の一態様において、iPS細胞の培養方法は、接着培養又は浮遊培養であってもよいが、接着培養が好ましい。iPS細胞の分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性を有する分離溶液、コラゲナーゼ活性を有する分離溶液、又はプロテアーゼ活性及びコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(例えば、Accutase(商標)及びAccumax(商標)等)を用いた分離方法が挙げられる。
　本発明の一態様において、iPS細胞は、好ましくは、1x103～1x104cells/cm2、1x104～1x105cells/cm2、1x105～1x106cells/cm2の細胞密度になった場合に、別の培養器に継代される。継代の回数は、T細胞補充療法に必要な量のiPS細胞が得られれば何回でもよく、好ましくは、1～5回、5～10回である。
　本発明の一態様において、得られた遺伝的多様性を有するiPS細胞は、そのまま使用してもよいし、又は必要な時まで凍結保存してもよい。
工程（３）
　本発明の工程（３）は、前記培養したiPS細胞から遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する工程である。
　本発明の一態様において、好ましくは、遺伝的多様性を有する再生T細胞集団は、工程（２）で培養したiPS細胞から造血前駆細胞を経てCD4CD8両陽性T細胞に分化することによって得られ、又は工程（２）で培養したiPS細胞からこれらの細胞を経てCD8陽性T細胞に分化することによって得られる。
・iPS細胞から造血前駆細胞を誘導するステップ
　造血前駆細胞(Hematopoietic Progenitor Cells (HPC) )とは、リンパ球、好酸球、好中球、好塩基球、赤血球、又は巨核球等の血球系細胞に分化可能な細胞である。本発明の一態様において、造血前駆細胞と造血幹細胞は、区別されるものではなく、特に断りがなければ同一の細胞を示す。造血幹細胞／前駆細胞は、例えば、表面抗原であるCD34及び／又はCD43が陽性であることによって認識できる。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞は、好ましくは、ビタミンC類を添加した培養液中でiPS細胞を培養することによって製造される。ここで、「ビタミンC類」とは、L-アスコルビン酸及びその誘導体を意味し、「L-アスコルビン酸誘導体」とは、生体内で酵素反応によりビタミンCとなるものを意味する。L-アスコルビン酸の誘導体としては、例えば、リン酸ビタミンC、アスコルビン酸グルコシド、アスコルビルエチル、ビタミンCエステル、テトラヘキシルデカン酸アスコルビル、ステアリン酸アスコルビル及びアスコルビン酸-2リン酸-6パルミチン酸が挙げられる。L-アスコルビン酸の誘導体は、好ましくは、リン酸ビタミンCであり、例えば、リン酸-Lアスコルビン酸Na又はリン酸-L-アスコルビン酸Mg等のリン酸-Lアスコルビン酸塩が挙げられる。ビタミンC類は、例えば、培養液において、5μg/mlから500μg/mlの濃度で含有される。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞の製造に用いる培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地とし、これにビタミンC類等を添加して調製することができる。基礎培地としては、例えば、Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium (ライフテクノロジーズ)、StemPro34(ライフテクノロジーズ)及びこれらの混合培地等が挙げられる。培地には、血清が含有されていてもよいし、又は無血清であってもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、及びサイトカイン等の1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞の製造に用いる培養液は、BMP4 (Bone morphogenetic protein 4)、VEGF (vascular endothelial growth factor)、bFGF (basic fibroblast growth factor)、SCF (Stem cell factor)、TPO (トロンボポエチン)、及びFLT-3L (Flt3 Ligand)から成る群より選択されるサイトカインがさらに添加されていてもよい。
　本発明の一態様において、これらの濃度は、例えば、BMP4は1 ng/mlから100 ng/mlであり、VEGFは1 ng/mlから100 ng/mlであり、bFGFは1 ng/mlから100 ng/mlであり、SCFは10 ng/mlから100 ng/mlであり、TPOは1ng/mlから100 ng/mlであり、FLT-3Lは1 ng/mlから100 ng/mlである。
　本発明の一態様において、TGFβ阻害剤が培養液に添加されてもよい。「TGFβ阻害剤」とは、TGFβファミリーのシグナル伝達に干渉する低分子阻害剤であり、例えばSB431542、SB202190(以上、R.K.Lindemann et al., Mol. Cancer 2: 20 (2003))、SB505124 (GlaxoSmithKline)、NPC30345、SD093、SD908、SD208 (Scios)、LY2109761、LY364947、及びLY580276 (Lilly Research Laboratories)等が挙げられ、培地中の濃度は、好ましくはO.5μM～100μMである。
　本発明の一態様において、iPS細胞は、C3H10T1/2 (Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830, 2010)、又は異種由来のストローマ細胞 (Niwa A et al. J Ce11 Physiol. 2009 Nov; 221 (2) :367-77.)等のフィーダー細胞と共培養されてもよいが、好ましくは、フィーダー細胞を使用せずにiPS細胞の培養が行われる。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞の製造時のiPS細胞の培養方法は、接着培養又は浮遊培養であってもよいが、浮遊培養が好ましい。例えば、iPS細胞は、使用したディッシュに対して80％コンフルエントになるまで培養されたコロニーを分離し、単細胞に解離させたのちに、浮遊培養に供することができる。iPS細胞の分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性及びコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(例えば、Accutase(商標)及びAccumax(商標)等)、又はコラゲナーゼ活性を有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられる。
　浮遊培養とは、細胞を培養容器に対して非接着の状態で培養することである。本発明の一態様において、浮遊培養は、特に限定はされないが、細胞との接着性を向上させる目的で人工的に処理（例えば、細胞外マトリックス等によるコーティング処理)されていない培養容器、又は人工的に接着を抑制する処理(例えば、ポリヒドロキシエチルメタクリル酸(po1y-HEMA)若しくは非イオン性の界面活性ポリオール(Pluronic F-127等)によるコーティング処理)した培養容器を使用して行うことができる。浮遊培養の際には、胚様体(EB)を形成させて培養することが好ましい。
　本発明の別の一態様では、造血前駆細胞は、iPS細胞を培養することで得られるネット様構造物(iPS-sacとも称する)から調製することもできる。ここで、「ネット様構造物」とは、iPS細胞由来の立体的な嚢状(内部に空間を伴うもの)構造体で、内皮細胞集団等で形成され、内部に造血前駆細胞を含む構造体である。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞を製造するために培養する際の温度条件は、特に限定されないが、例えば、約37℃～約42℃程度、約37℃～約39℃程度が好ましい。また、培養期間については、当業者であれば造血前駆細胞の数等をモニターしながら、適宜決定することが可能である。造血前駆細胞が得られる限り、日数は特に限定されないが、例えば、少なくとも6日以上、7日以上、8日以上、9日以上、10日以上、11日以上、12日以上、13日以上、14日以上であり、好ましくは14日である。培養期間が長いことについては、造血前駆細胞の製造においては問題とされない。また、低酸素条件で培養してもよく、本発明の一態様において、低酸素条件としては、例えば、15％、10％、9％、8％、7％、6％、5％又はそれら以下の酸素濃度が挙げられる。
・造血前駆細胞からCD4CD8両陽性T細胞を誘導するステップ
　本発明において、「CD4CD8両陽性T細胞」とは、T細胞のうち、表面抗原のCD4及びCD8が共に陽性である細胞(CD8+CD4+)を意味し、T細胞は、表面抗原であるCD3及びCD45が陽性であることによって認識できることから、CD4CD8両陽性T細胞は、CD4、CD8、CD3及びCD45が陽性である細胞として同定することができる。CD4CD8両陽性T細胞は、誘導によってCD4陽性細胞又はCD8陽性細胞へと分化させることができる。
　本発明の一態様において、CD4CD8両陽性T細胞は、p38阻害剤及び／又はSDF-1を添加した培養液中で造血前駆細胞を培養する工程を含む方法によって製造することができる。
＜p38阻害剤＞
　本発明において、「p38阻害剤」とは、p38タンパク質(p38MAPキナーゼ)の機能を阻害する物質として定義される。本発明の一態様において、例えば、p38の化学的阻害剤、p38のドミナントネガティブ変異体、又はそれをコードする核酸等が挙げられるが、これらに限定されない。
　本発明の一態様において、p38の化学的阻害剤としては、SB203580(4-(4-フルオロフェニル)-2-(4-メチルスルホニルフェニル)-5-(4-ピリジル)-1H-イミダゾール)及びその誘導体、SB202190 (4-(4-フルオロフェニル)-2-(4-ヒドロキシフェニル)-5-(4-ピリジル)-1H-イミダゾール)及びその誘導体、SB239063 (trans-4-[4-(4-フルオロフェニル)-5-(2-メトキシ-4-ピリミジニル)-1H-イミダゾール-1-イル]シクロヘキサノール)及びその誘導体、SB220025及びその誘導体、PD169316、RPR200765A、AMG-548、BIRB-796、SCl0-469、SCIO-3
23、VX-702、並びにFR167653が挙げられるが、これらに限定されない。これらの化合物は市販されており、例えばSB203580、SB202190、SC239063、SB220025及びPD169316についてはCalbiochem社、SCl0-469及びSCIO-323についてはScios社等から入手可能である。
　本発明の一態様において、p38のドミナントネガティブ変異体としては、p38のDNA結合領域に位置する180位のスレオニンをアラニンに点変異させたp38T180A、並びにヒト及びマウスにおけるp38の182位のチロシンをフェニルアラニンに点変異させたp38Y182F等が挙げられる。
　p38阻害剤は、例えば、約1μM～約50μMの範囲で培地に含有される。
＜SDF-1＞
　本発明の一態様において、SDF-1 (Stromal cell-derived factor 1)は、SDF-1α又はその成熟型だけでなく、SDF-1β、SDF-1γ、SDF-1δ、SDF-1ε若しくはSDF-1φ等のアイソフォーム、又はそれらの成熟型であってもよく、或いはこれらの任意の割合の混合物等であってもよい。好ましくは、SDF-1αが使用される。尚、SDF-1は、CXCL-12又はPBSFと称される場合もある。
　本発明の一態様において、SDF-1は、そのケモカインとしての活性を有する限り、そのアミノ酸配列中の1又は数個のアミノ酸が置換、欠失及び／又は付加されていてもよく、また同様に糖鎖が置換、欠失及び／又は付加されていてもよい。SDF-1において少なくとも4つのシステイン残基(ヒトSDF-1αの場合、Cys30、Cys32、Cys55及びCys71)が保持されており、かつ天然体のアミノ酸配列に対して90％以上の同一性を有する範囲であれば、アミノ酸変異が許容される。SDF-1は、哺乳動物、例えば、ヒト、例えば、サル、ヒツジ、ウシ、ウマ、ブタ、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、又はマウス等の非ヒト哺乳動物のものであってもよい。例えば、ヒトのSDF-1αとして、GenBank登録番号:NP_954637で登録されているタンパク質が使用でき、SDF-1βとして、GenBank登録番号:NP_000600で登録されているタンパク質が使用できる。
　本発明の一態様において、SDF-1は、市販のものを使用してもよいし、天然から精製されたものを使用してもよいし、又はペプチド合成や遺伝子工学的手法によって製造されたものを使用してもよい。
　本発明の一態様において、SDF-1は、例えば、約10 ng/mlから約100 ng/mlの範囲で培地に含有される。
　本発明の一態様において、CD4CD8両陽性T細胞の製造に用いる培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地とし、これにp38阻害剤及び／又はSDF-1、さらに好ましくはビタミンC類を添加して調製することができる。なお、CD4CD8両陽性T細胞製造工程で使用されるビタミンC類の種類は、例えば上述のとおりであるが、ビタミンC類の濃度は、例えば、5μg/mlから200μg/mlである。基礎培地としては、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) 培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、OP9培地、Neurobasal Medium (ライフテクノロジーズ)、及びこれらの混合培地等が挙げられる。培地には、血清が含有されていてもよいし、又は無血清であってもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、及びサイトカイン等の1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明の一態様において、CD4CD8両陽性T細胞の製造に用いる培養液は、SCF、TPO (トロンボポエチン)、FLT-3L及びIL-7から成る群より選択されるサイトカインをさらに培養液に添加してもよい。これらの濃度は、例えば、SCFは10 ng/mlから100 ng/mlであり、TPOは1O ng/mlから200ng/mlであり、FLT-3Lは1 ng/mlから100 ng/mlであり、IL-7は1 ng/mlから100 ng/mlである。
　本発明の一態様において、CD4CD8両陽性T細胞の製造時に、造血前駆細胞はフィーダー細胞を用いて培養してもよいが、好ましくはフィーダー細胞を用いずに培養を行う。
　本発明の一態様において、造血前駆細胞は接着培養又は浮遊培養してもよいが、本ステップは接着培養が好ましい。接着培養の場合、培養容器をコーティングして用いてもよく、例えば、コーティング剤としては、マトリゲル(Niwa A, et al. PLoS One. 6(7):e22261, 2011) 、コラーゲン、ゼラチン、ラミニン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、レトロネクチン、Fc-DLL4又はエンタクチン、及びこれらの組み合わせが挙げられる。
　本発明の別の一態様において、胚様体を浮遊培養して造血前駆細胞を得た場合は、これを単細胞に解離させたのちに、接着培養を行うことが好ましい。
　本発明の一態様において、CD4CD8両陽性T細胞を製造するために造血前駆細胞を培養する際の培養温度条件は、特に限定されないが、例えば、約37℃～約42℃程度、約37℃～約39℃程度が好ましい。また、培養期間については、当業者であればCD4CD8両陽性T細胞の数等をモニターしながら、適宜決定することが可能である。CD4CD8両陽性T細胞が得られる限り、日数は特に限定されないが、例えば、少なくとも10日以上、12日以上、14日以上、16日以上、18日以上、20日以上、22日以上、23日以上であり、好ましくは23日である。
　本発明の一態様において、得られたCD4CD8両陽性T細胞は、単離して用いても良く、他の細胞種が含有される細胞集団として用いても良い。単離する場合、CD4、CD8、CD3及びCD45から成るいずれか一つの指標を用いて単離することができ、当該単離の方法は、当業者に周知の方法を用いることができ、例えば、CD4、CD8、CD3及びCD45の抗体により標識し、フローサイトメーターを用いて単離する方法、又は所望の抗原を固定化したアフィニティカラム等を用いて精製する方法が挙げられる。
・CD4CD8両陽性T細胞からCD8陽性T細胞を誘導するステップ
　「CD8陽性T細胞」とは、T細胞のうち、表面抗原のCD8が陽性である細胞(CD8+CD4-)を意味し、細胞傷害性T細胞とも呼ばれる。T細胞は、表面抗原であるCD3及びCD45が陽性であることによって認識できることから、CD8陽性T細胞は、CD8、CD3及びCD45が陽性であり、CD4が陰性である細胞として同定することができる。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞は、副腎皮質ホルモン剤を添加した培養液中でCD4CD8両陽性T細胞を培養する工程を含む方法によって製造することができる。
　本発明の一態様において、副腎皮質ホルモン剤は、好ましくは、糖質コルチコイド又はその誘導体であり、例えば、酢酸コルチゾン、ヒドロコルチゾン、酢酸フルドロコルチゾン、プレドニゾロン、トリアムシノロン、メチルプレドニゾロン、デキサメタゾン、ベタメタゾン、又はプロピオン酸ベクロメタゾンが挙げられる。好ましくは、副腎皮質ホルモン剤は、デキサメタゾンである。培養液中におけるその濃度は、例えば、1nMから100nMである。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞の製造に用いる培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地とし、これに副腎皮質ホルモン剤を添加して調製することができる。基礎培地としては、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) 培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium(ライフテクノロジーズ)、及びこれらの混合培地等が挙げられる。培地には、血清が含有されていてもよいし、又は無血清であってもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ殿、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、及びサイトカイン等の1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞の製造に用いる培養液は、抗CD3抗体、ビタミンC類、又はサイトカインをさらに含有することが好ましい。当該サイトカインとしては、例えば、IL-2及びIL-7等が挙げられる。
　本発明の一態様において、抗CD3抗体としては、CD3を特異的に認識する抗体であれば特に限定されないが、例えば、OKT3クローンから産生される抗体が挙げられる。抗CD3抗体の培養液中における濃度は、例えば、10ng/mlから1000ng/mlである。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞の製造に用いるビタミンC類は、例えば上述したものであり、上述と同じ条件で用いることができる。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞の製造に用いるサイトカインの培養液中における濃度は、例えば、IL-2は10 U/mlから1000 U/mlであり、IL-7は1ng/mlから100ng/mlである。
　本発明の一態様において、CD8陽性T細胞を製造するためにCD4CD8両陽性T細胞を培養する際の温度条件は、特に限定されないが、例えば、約37℃～約42℃程度、約37℃～約39℃程度が好ましい。また、培養期間については、当業者であればCD8陽性T細胞の数等をモニターしながら、適宜決定することが可能である。CD8陽性T細胞が得られる限り、日数は特に限定されないが、例えば、少なくとも1日以上、2日以上、3日以上、4日以上、5日以上であり、好ましくは3日である。
　本発明の製造方法により得られる再生T細胞集団としては、特に限定されないが、例えば、αβT細胞集団、γδT細胞集団、ヘルパーT細胞集団、レギュラトリーT細胞集団、細胞傷害性T細胞集団、NKT細胞集団及び腫瘍浸潤T細胞集団等が挙げられる。
　本発明の一態様において、維持される遺伝的多様性の程度は、好ましくは、原料の遺伝的多様性を有するT細胞集団の30％以上、40％以上、50％以上である。
　本発明の一態様において、製造された再生T細胞集団は、好ましくは、T細胞補充療法に使用される。本発明において、T細胞補充療法とは、T細胞を生体に補充する治療法を意味し、本発明の一態様において、T細胞補充療法としては、好ましくは、再生したT細胞の輸注、腫瘍内注入、動注、門脈注等を含む細胞移植による治療法が挙げられる。
　本発明の一態様は、生体内に存在するT細胞集団の遺伝的多様性を維持している、iPS細胞を介して得られる再生T細胞集団、例えば、上記方法により得られる再生T細胞集団を含む。本発明の再生T細胞集団を含む医薬組成物は、がん治療対象を処置するために使用することができる。本発明の一態様には、本発明の医薬組成物を用いるがん治療方法が含まれる。本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される添加剤を含んでいてもよい。該添加剤としては、例えば、細胞培養液、リン酸緩衝食塩水等が挙げられる。
　本発明の一態様には、本発明の製造方法により得られる再生T細胞集団をT細胞補充療法に適用して治療する方法が含まれる。また、本発明の一態様には、T細胞補充療法による治療における使用のための本発明の製造方法により得られる再生T細胞集団が含まれる。　
　本発明の一態様は、上記説明に列挙された全ての一般的態様及び／又は具体的態様の全ての組み合わせを含む。
　本発明を以下の実施例でさらに具体的に説明するが、本発明の範囲はそれら実施例に限定されない。
工程（１）の具体的手順
　採取したT細胞集団に対し、CD3及びCD28抗体で標識された磁気ビーズを用いて活性化刺激を与え、200U/ml IL-2、10ng/ml IL-7、10ng/ml IL-15を添加したRPMI-1640培地（10％ウシ胎児血清、1%Penicillin-Streptomycin-Glutamineを含む）中で2日間培養を行った。
工程（２）の具体的手順（iPS細胞への初期化）
　続いて、T細胞を15mlチューブへ回収し、約250μlのRPMI-1640培地に浮遊させた後、CytoTune-iPS 2.0キット（株式会社IDファーマ社：#DV-0304）を用いて、MOI=5となる力価で初期化に必要な4因子（Oct3/4、Sox2、Klf4及びc-Myc）を含むセンダイウイルスを培地に添加し、37℃で2時間インキュベートを行った。インキュベート後には、RPMI-1640培地を用いてT細胞を洗浄し、培地中からウイルスを除去した。
　続いて磁気ビーズを除くために、ピペッティングによりビーズと細胞とを分離させた後、磁石付きのスタンドにチューブを静置することにより、培地中に浮遊したT細胞のみを回収した。
　得られたT細胞はiMatrix-511（nippi社：#892011）を0.5μg/cm2でコーティングした6cmディッシュ上に播種し、RPMI-1640培地中で、37℃、5％CO2、5％O2に設定したインキュベーターを用いて培養を開始した。
　6cmディッシュ上で培養を開始した翌日から、細胞が含まれていない培養上清を半量除去し、StemFit AK03N（味の素社）に1mMバルプロ酸を添加した樹立用培地を、除去した培地と同量加えた。
　以降、同様の半量培地交換を毎日行いながら、20～40日間培養を続けることで、6cmディッシュ中に多数のiPS細胞コロニーを得た。一定量のコロニーが得られた段階で、樹立用培地からiPS細胞用培地（StemFit AK03Nのみ）に切り替えて培養を進めた。
工程（２）の具体的手順（樹立したiPS細胞の遺伝的多様性を維持したままの培養）
　iPS細胞のコロニーが肉眼で確認できるほど大きくなった段階で、iPS細胞を、新しくiMatrix-511をコーティングした6cmディッシュへと継代した。
　継代では、PBS(-)を用いてディッシュに接着しているiPS細胞を洗浄した後、TrypLeSelect（ライフテクノロジーズ社：A12859-01）を添加して約7分インキュベートすることにより、iPS細胞の接着を解除し、単一の細胞へと分散させた。細胞をiPS細胞用培地で洗浄し、細胞数を計測した。そして、分散させた細胞を、新しくiMatrix-511コートした6cmディッシュに1,500 cells/cm2になるように播種した。この際、回収されたiPS細胞を、破棄することなく、全て新しいディッシュへと播種した。
　回収した細胞を全て植え継ぐことにより、次第に培養スケールが増大していく。そこで、樹立後から3～5継代を行い、iPS細胞を用いたT細胞補充療法に必要な量のiPS細胞が得られた段階で、以下の手順で細胞を凍結保存した。
　継代と同じ手順でiPS細胞を回収したのち、TCプロテクター（DSファーマ社：#KBTCP001）等の細胞凍結液に細胞を浮遊させ、-1℃/分の速さで-80℃まで温度を低下させることにより、iPS細胞を凍結した。iPS細胞を安定的かつ長期間保存するためには、さらに液体窒素（-196℃）中で保存することが望ましい。
工程（３）の具体的手順
　超低接着処理された6well plate(CORNING社: #3471)に、工程（２）で得られたiPS細胞を3x105～6x105個／ウェルで播種し(DayO)、EB培地(StemPro34に10μg/mlヒトインスリン、5.5μg/ml ヒトトランスフェリン、5ng/ml 亜セレン酸ナトリウム、2mM L-グルタミン、45mM α-モノチオグリセロール、及び50μg/ml アスコルビン酸を添加)に10 ng/ml BMP4、5ng/ml bFGF、15ng/ml VEGF、2μM SB431542を加えて、低酸素条件下(5％O2)にて5日間培養を行った(Day5)。
　続いて、50ng/ml SCF、30ng/ml TPO、10ng/ml Flt3Lを添加し、さらに5～9日間培養を行った(～Day14)。
　得られた造血前駆細胞は、Fc-DLL4(5μg/ml)(Sino Biological Inc.)及びRetronectin(5μg/ml)(タカラバイオ株式会社)でコーティングした48well plate上で、50ng/ml SCF、50ng/ml IL-7、50ng/ml Flt3L、100ng/ml TPO、15μM SB203580 (Tocris Bioscience)、30ng/ml SDF-1α(PeproTech)を添加したOP9培地(15％ FBS、2mM L-グルタミン、100U/mlペニシリン、100ng/ml ストレプトマイシン、55μM 2-メルカプトエタノール、50μg/ml アスコルビン酸、10μg/ml ヒトインスリン、5.5μg/ml ヒトトランスフェリン、5ng/ml 亜セレン酸ナトリウムを添加した)中で21日間培養を行った(Day35)。
　Day35にて、CD45、CD3、CD4及びCD8の全てが陽性の画分をFACSを用いて単離し、CD4CD8両陽性(Double positive)細胞(DP細胞という)を得た。
　得られたCD4CD8両陽性細胞を、96well plate上で、15 % ウシ胎児血清、500 ng/ml 抗CD3抗体（eBioscience）、200 U/ml IL-2、10 ng/ml IL-7、及び10 nM デキサメタゾンを添加したRPMI 1640培地中で2日間培養した(Day37)。細胞を15% ウシ胎児血清入りのRPMI 1640培地で洗浄することにより抗体を除去し、15 % ウシ胎児血清及び10 ng/ml IL-7を添加したRPMI 1640培地でさらに5日間培養することで、CD8陽性T細胞を得た(Day42)。
実施例１
　前記の方法を用いて、肺癌患者の摘出腫瘍から分離された遺伝的多様性を有するT細胞集団からiPS細胞を樹立し、遺伝的多様性を有するT細胞へと再分化誘導を行った。
　T細胞が発現するT細胞受容体（TCR）の遺伝的多様性は、一般的に、DNAやRNAのシークエンス解析により決定されるが、TCRのVβ鎖の各セグメントに特異的に結合する抗体パネルを用いて簡易に検出することも可能である。
　TCRVβ解析キット（BECKMAN COULTER社：#IM-3497）を用いて、肺癌患者の摘出腫瘍から分離されたT細胞集団のTCRレパトアを解析した（図１）。患者検体中には、約1～13%の割合でそれぞれのVβ鎖を発現する細胞が含まれており、遺伝的多様性を有するT細胞集団であることが確認された。これらのT細胞集団を上記の方法によりiPS細胞へと初期化した。
　iPS細胞は多能性を有する幹細胞であり、TCR遺伝子を含むT細胞関連の遺伝子は発現していない。つまり、TCR遺伝子の多様性を未分化なiPS細胞段階で解析することは困難である。樹立されたiPS細胞は、遺伝的多様性を失わないように継代したのち、造血前駆細胞段階を経てT細胞へと分化誘導を行った。
　再生されたT細胞が発現するTCRのレパトアを、上記と同じキットを用いて解析した（図２）。iPS細胞の樹立及びT細胞の分化誘導に伴って、Vβの2、3、4、7.1、7.2、8、12、14、16、20及び21.3といったセグメントを発現するT細胞の多様性が失われてしまったものの、約半数のVβレパトアが保存されており、再生されたT細胞が遺伝的多様性を有するT細胞集団であることが確認された。 

Claims (13)

  1. 　（１）採取した遺伝的多様性を有するT細胞集団から、目的の組織又は抗原に対して指向性を有するT細胞集団を濃縮する工程、
    　（２）前記濃縮したT細胞集団をiPS細胞へと初期化し、遺伝的多様性を維持したままで、iPS細胞を培養する工程、及び
    　（３）前記培養したiPS細胞から遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する工程を含む、iPS細胞を介して遺伝的多様性を有する再生T細胞集団を製造する方法。
  2. 　工程（１）の採取したT細胞集団が、治療対象の哺乳動物由来である、請求項１に記載の方法。
  3. 　工程（１）の採取したT細胞集団が、腫瘍浸潤T細胞である、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　工程（１）の採取したT細胞集団が、血液、リンパ節又は腔水由来である、請求項１又は２に記載の方法。
  5. 　工程（１）が、抗原タンパク質又はペプチドでの刺激により活性化し、増殖したT細胞を分離するステップを含む、請求項１～４いずれか１項に記載の方法。
  6. 　工程（２）が、iPS細胞をクローン化せずに回収し、継代するステップを含む、請求項１～５いずれか１項に記載の方法。
  7. 　工程（３）で得られたT細胞集団が、αβT細胞集団、γδT細胞集団、ヘルパーT細胞集団、レギュラトリーT細胞集団、細胞傷害性T細胞集団、NKT細胞集団、又は腫瘍浸潤T細胞集団である、請求項１～６いずれか１項に記載の方法。
  8. 　工程（３）で得られたT細胞集団が、T細胞補充療法に使用するものである、請求項１～７いずれか１項に記載の方法。
  9. 　請求項１～８いずれか１項に記載の方法により得られる再生T細胞集団。
  10. 　生体内に存在するT細胞集団の遺伝的多様性を維持している、iPS細胞を介して得られる再生T細胞集団。
  11. 請求項９または請求項１０に記載の再生T細胞集団を含有する医薬組成物。
  12. 自家的または同種的な移植によりがん治療対象を処置するための請求項１１に記載の医薬組成物。
  13. 請求項１１または請求項１２に記載の医薬組成物を用いる、がん治療方法。
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