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WO2018101663A2 - 생체 조직 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법 - Google Patents

생체 조직 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법 Download PDF

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WO2018101663A2
WO2018101663A2 PCT/KR2017/013168 KR2017013168W WO2018101663A2 WO 2018101663 A2 WO2018101663 A2 WO 2018101663A2 KR 2017013168 W KR2017013168 W KR 2017013168W WO 2018101663 A2 WO2018101663 A2 WO 2018101663A2
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WO
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tissue
biological tissue
composition
clearing
brain
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박순현
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Individual
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
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    • G01N2001/305—Fixative compositions

Definitions

  • the present invention relates to a composition for clarifying living tissue and a method for clarifying living tissue using the same.
  • Medical diagnostic technology through x-ray has been developed into a technology capable of observing three-dimensionally and accurately diagnosing by two-dimensional scanning and three-dimensional reconstruction, such as CT or MRI.
  • ultrasound is used instead of a light source
  • a technique for implementing 3D images is also actively used for diagnosis.
  • most of the currently developed technologies have relatively macro resolution at the millimeter level, and micro-level three-dimensional measurement technology capable of analyzing at the cellular level is relatively inadequate.
  • Uses traditional two-dimensional techniques In other words, a biopsy or autopsy tissue is fixed with a fixed solution, embedded with paraffin or polymer, and then sliced to a thickness of several micrometers or nanometers to allow light or electromagnetic waves to pass therethrough, and then the transmission image is optical or electronic. Analyze the microstructure using techniques obtained using a microscope.
  • a confocal microscope In order to acquire a third win image using such a fine imaging technique, a confocal microscope should be used, and in this case, thickness information of tens of micrometers can be generally obtained. Roughly this thickness is limited by the depth through which the light source can penetrate. However, since most of the significant structures in biological tissues are hundreds of micrometers or more in size, only some information can be obtained by this method. Therefore, in order to obtain an image in a thicker tissue, a series of processes of fabricating a continuous section of several tens of micro-thick, imaging it through a microscope, and then reconstructing it are required. In particular, in the case of brain tissue, when an entire neuron is imaged, in some cases, one neuron extends its axon up to several meters, and thus, a problem that may occur during a process of cutting and attaching tissue Occurs exponentially.
  • Tissue clearing technology can identify the internal structure and protein distribution of tissues without damaging the tissue, observing the tissue structure deeper than the existing limitations of conventional technology, and accessing integrated structure and molecular information from various organ systems In recent years, technologies have been developed to make the organization transparent in various ways.
  • Non-Patent Document 1 Chung K, et al. (2013) Nature 497 (7449): 332-337.
  • the method infiltrates the hydrogel support into the tissue, and the higher the concentration of the hydrogel, the more the binding with the protein and the tighter the mesh structure, the tighter the tissue.
  • the harder the tissue the longer the time required for clearing because the lipid is difficult to escape by the surfactant.
  • the method has the problem of causing air and black particle deposition on the surface of the tissue, or yellowing the tissue.
  • the method is too complicated and requires a lot of additional equipment. For example, at least 30 million won is needed to make one brain transparent. In addition, since only one brain can be transparent at a time, it causes a lot of economic and time loss. A larger problem is that dyeing with antibodies is difficult to penetrate between polyacrylamides that make up the network structure.
  • the conventional research requires not only the complexity of the process but also the cost and time for tissue transparency. Therefore, there is a need for a technique capable of simplifying the process, reducing costs, as well as optimizing antibody staining to transparentize not only the brain but various tissues.
  • the biological tissue clearing composition and the biological tissue clearing method using the same do not require expensive electrophoretic devices and expensive solutions, and include brain, liver, It can be applied to various tissues such as lungs, kidneys, intestines, heart, muscles, and blood vessels without damage, and also has no bubble formation, discoloration and black sediment, transparency of biological tissues, and antibody staining in transparent tissues.
  • the present invention was completed by finding out that the structural imaging of biological tissues can be usefully used to identify the causes of various diseases and to find a treatment method.
  • An object of the present invention is to provide a composition for clarifying biological tissue.
  • Another object of the present invention is to provide a method for clarifying living tissue.
  • the present invention provides a composition for clarifying biological tissue comprising an amino acid represented by the following formula (1) or a salt thereof.
  • R 1 is hydrogen or C 1 -C 2 alkyl
  • R 2 is hydrogen or straight or branched C 8 -C 20 alkylcarbonyl or C 8 -C 20 alkenylcarbonyl,
  • R 3 stands for side chain of hydrogen or essential amino acid
  • the present invention also provides a method of clarifying biological tissue, comprising contacting the immobilized biological tissue with the composition to make it transparent.
  • composition for clarifying biological tissues and the method for clarifying biological tissues using the same according to the present invention do not require an expensive electrophoretic device and an expensive solution, and include brain, liver, lung, kidney, intestine, heart, muscle, blood vessels, and the like. Not only can be applied to various biological tissues without damage, but also bubble formation, discoloration and black sediment are not shown, and the transparency of biological tissues is improved, and antibody staining in transparent tissues is possible. This can be useful for identifying and finding treatment.
  • FIG. 1 is an image of the entire mouse tissue invisible through the tissue clearing method according to the present invention, compared to the left image of FIG. 1, the right image of FIG. It can be seen that it is relatively markedly transparent.
  • Figure 2 (b) is a mouse brain cleared through Experimental Example 1.
  • Figure 3 (b) is the mouse brain after pretreatment of 40 w / v% N- lauryl sacosin solution in Experimental Example 3.
  • Figure 4 (a) is mouse pancreas (pancreas).
  • Figure 5 (a) Whole brain image in PBS solution before clearing.
  • Figure 5 (b) is a mouse whole brain image in 40 w / v% N- lauryl sacosin solution of Experimental Example 3.
  • Figure 5 (c) is the final clear mouse whole brain in Experiment 3, it can be confirmed that the mouse brain is transparent.
  • Figure 6 (a) is a mouse brain image of Lectin-488, it can be seen that the green staining image is easily confirmed thanks to the progress of the mouse brain transparency.
  • Figure 6 (b) is a mouse pancreatic image of Lectin-488, it can be seen that the green staining image is easily confirmed thanks to the progress of the mouse pancreas transparent.
  • Figure 7 (a) is a cerebral blood vessel image of Lectin-488, it can be seen that the green staining image is easily confirmed thanks to the progress of the brain clearing.
  • Figure 7 (b) is a cerebellar vascular image of Lectin-488, it can be seen that the green staining image is easily confirmed thanks to the progress of cerebellar clarification.
  • Figure 7 (c) is a pancreatic blood vessel image of Lectin-488, it can be seen that the green staining image is easily confirmed thanks to the progress of pancreas clearing.
  • Figure 8 (c) shows the inhibitory neuron-GFP 20X microscope lens image in the vicinity of the hippocampus (hippocampus).
  • 9 is a partial image of video image data of TH-neuron.
  • 10 is a partial image of the inhibitory neuron-GFP video image data.
  • the present invention provides a composition for clarifying biological tissue comprising an amino acid represented by the following formula (1) or a salt thereof.
  • R 1 is hydrogen or C 1 -C 2 alkyl
  • R 2 is hydrogen or straight or branched C 8 -C 20 alkylcarbonyl or C 8 -C 20 alkenylcarbonyl,
  • R 3 means side branch of essential amino acid.
  • composition for biological tissue clearing according to the present invention will be described in more detail.
  • composition for clarifying biological tissues is an amino acid represented by the formula (1) or a composition thereof that serves to remove lipid components that prevent the transmission of light and other molecules from biological tissues, and does not cause structural denaturation of proteins and to harden tissues. Salts.
  • R 1 is hydrogen or C 1 -C 2 alkyl
  • R 2 is hydrogen or C 8 -C 20 alkylcarbonyl or C 8 -C 20 alkenylcarbonyl of straight or branched chain
  • R 3 represents a side branch of the essential amino acid.
  • linear or branched C 8 -C 20 alkenylcarbonyl means carbonyl having 8 to 20 carbon atoms having at least one double bond
  • the "side chain of essential amino acid” is usually 20 amino acids called essential amino acids, ie valine, leucine, isoleucine, methionine, phenylalanine, asparagine, glutamic acid, aspartic acid, glycine, alanine, serine, threonine, cysteine, proline, glutamine, histidine, lysine, arginine, tyrosine And a substituent in the case of using NH 2 (COOH) CH- as a parent in tryptophan.
  • valine is hydrogen and alanine is methyl.
  • composition for biological tissue clearing according to the present invention in Formula 1, R 1 is methyl, R 2 is a straight or branched C 8 -C 20 alkylcarbonyl, R 3 is hydrogen or an amino acid or salt It may include.
  • the amino acid represented by Formula 1 or a salt thereof may be included at a concentration of 4-55 w / v% (weight / volume%), 10-50 w / v% concentration is preferred, and 35-45 w / v% concentration is more preferred.
  • the solution for indicating the concentration may be a simulated body fluid (simulated body fluid) used in the conventional field, PBS (phosphate buffer saline), TBS (tris buffer solution), distilled water and the like is preferably limited to this It doesn't happen.
  • the clearing rate of the biological tissue may be significantly slowed, and when included in more than 55 w / v% is represented by Formula 1
  • the amino acids or salts may not be completely dissolved.
  • composition for clarifying biological tissue according to the present invention may further include a material that plays a role of quickly promoting the clarification of the biological tissue by adjusting the osmotic pressure.
  • a material that plays a role of quickly promoting the clarification of the biological tissue by adjusting the osmotic pressure Preferably urea, CHAPS (3-[(3-colamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfonate)), CHAPSO (3-[(3-colamidopropyl) dimethylammonio ] -2-hydroxy-1-propanesulfonate)), sucrose, fructose, glycerol, diatrizoic acid, t-octylphenoxypolyethoxyethanol (Triton X- 100), polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (Tween-20), 2-2-thiodieethanol, Iohexol and the like.
  • the material for facilitating the clearing of biological tissues can be included in a concentration of 20-60 w / v%, preferably contained in a concentration of 30-50 w / v%. If the concentration is less than 20 w / v%, the rate of tissue clearing is slow, and if the concentration is greater than 60 w / v%, crystals may be induced or not dissolved in the solution.
  • the concentration of the substance which promotes the clearing of the biological tissue quickly can be appropriately adjusted with the preferred concentration range of the amino acid represented by the formula (1) or a salt thereof.
  • the composition for biological tissue clearing according to the present invention does not need a solution for reducing the refractive index, which is a cost. It shows the effect of savings.
  • the composition for clearing biological tissues according to the present invention does not require an expensive electrophoresis device and an expensive solution, and various living organisms such as brain, liver, lung, kidney, intestine, heart, muscle, and blood vessels. Not only can be applied to tissues without damage, but since bubble formation, discoloration, and black deposits do not appear, transparency of biological tissues is improved, and thus it can be usefully used as a composition for clarifying biological tissues.
  • the present invention also provides a method of clarifying biological tissue, comprising contacting the immobilized biological tissue with the composition to make it transparent.
  • the method for clarifying biological tissue according to the present invention comprises the step of contacting and immobilizing the immobilized biological tissue with the composition.
  • the method for clearing biological tissue by contacting the immobilized biological tissue with a composition comprising an amino acid or a salt thereof as an active ingredient, by modifying the physicochemical properties of the biological tissue to be transparent This allows light to penetrate deeper and make it transparent.
  • the biological tissue is a method of immobilizing biological tissues without causing antigenicity loss before being transparent
  • PFA paraformaldehyde
  • Glycerol polyglycidyl ether, glutaraldehyde, polyacrylamide and the like can be immobilized in a conventional manner.
  • a pretreatment step for dehydrating biological tissues may be further performed, and a pretreatment method for dehydrating biological tissues can be used without particular limitation, but it may be immobilized. It is preferable to support the biological tissue in a solution having a concentration of 20-50 w / v%, and more preferably in an aqueous solution having a concentration of 35-50 w / v%. If the concentration of the pretreatment solution is less than 20 w / v% dehydration is not performed effectively may cause swelling of the tissue appearing in the process of tissue clearing, and if included in more than 50 w / v% formula 1 The amino acid or salt represented by is not completely dissolved and the dehydration effect is no longer enhanced.
  • the solution for indicating the concentration may be a simulated body fluid (simulated body fluid) used in the conventional field, PBS (phosphate buffer saline), TBS (tris buffer solution), distilled water, t-octylphenoxy Polyethoxyethanol (Triton X-100), polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (Tween-20), CHAPS (3-[(3-colamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfo Nate)), CHAPSO (3-[(3-colamidopropyl) dimethylammonio] -2-hydroxy-1-propanesulfonate)) and the like are preferred, but not limited thereto.
  • the supporting temperature is appropriately 40-60 °C, but is not limited thereto.
  • This pretreatment process increases the structural binding force between the immobilized material and the protein, does not cause denaturation, strengthens the tissues, prevents swelling of the tissues in the process of tissue clearing, antibody treatment, and washing. This can prevent tissue cracking in the back.
  • the method for clearing biological tissues according to the present invention can be applied to tissues of various vertebrates, and in particular, brain, blood vessels, liver, lungs, kidneys. ), Pancreas, intestine, and the like, and it is possible to make the whole part of the biological tissue transparent at once.
  • the present invention provides a method for detecting important information in the transparent tissue, ie, DNA, RNA, protein, fluorescent signal, and the like.
  • Cleared biological tissues according to the present invention can detect proteins or mRNA through GFP fluorescence, immunostaining. Proteins are very stable because of the covalent bonds between amino groups present in amino acids during fixation, whereas they are relatively unstable in immobilized tissues because of the absence of amino groups in nucleic acids such as RNA or DNA. . In particular, when the electrophoresis process is included, there is a fear that the position in the tissue is changed by the electrical properties of the nucleic acid. On the other hand, the cleared biological tissue according to the present invention is excellent in fluorescence staining for GFP (Green Fluorescent Protein) cells and tyrosine hydroxyase (Tyrosine Hydroxylase), which is a dopamine active neuron marker antibody.
  • GFP Green Fluorescent Protein
  • Tyrosine Hydroxylase tyrosine hydroxyase
  • the biological tissue clearing method according to the present invention can image and observe the three-dimensional distribution of cells and molecules of intact biological tissues, it is possible to have a size of several hundred micrometers or more with one complete structure for various biological tissues having complex structures. Observational studies can be performed so that useful information can be obtained within tissues and used effectively to identify the causes of various diseases such as brain diseases.
  • the sample was transferred to room temperature, further incubated for 2 hours, and washed twice with 50 ml of PBS.
  • the immobilized sample was incubated for 3 days at 220 ° C. at 55 ° C. in a mixed solution of 4 w / v% N-laurylsacocine sodium salt and 60 w / v% urea, and the results are shown in FIG. 2. .
  • Figure 2 (a) is a mouse brain (half brain) before the clearing, (b) is a mouse brain (half brain) cleared in Experiment 1.
  • the mixed solution of the N-lauryl sacosine sodium salt and urea makes the biological tissue transparent.
  • the sample immobilized in Experiment 1 was incubated at 220 rpm at 55 ° C. for 3 days in a mixed solution of 4 w / v% N-laurylsacocine sodium salt and 60 w / v% urea, 15 days The mixture was further incubated for 2 days at 220 rpm at 55 ° C. in a mixed solution of w / v% N-laurylsacocin sodium salt and 50 w / v% urea.
  • Figure 3 (a) is a mouse brain (half brain) before clearing, (b) is a mouse brain after pre-treatment of 40 w / v% N- lauryl sacosin solution in Experimental Example 3, (c) is Experimental Example 3 As a final transparent mouse brain.
  • Figure 4 (a) is the mouse pancreas (pancreas), (b) is the final cleared mouse pancreas in Experimental Example 3.
  • Figure 5 (a) is the whole brain in PBS solution before clearing, (b) is the mouse whole brain in 40 w / v% N- lauryl sacosin solution of Experimental Example 3, (c) is final as Experimental Example 3 Invisible mouse whole brain.
  • 5FP and 20X objectives were immunostained in GFP using 5X and 20X objective lenses in a Selective Plane Illumination Microscopy Lightsheet Z.1. The signal was confirmed.
  • the cleared tissue in Experimental Example 2 was incubated for 12 hours by replacing three times with 50 mL distilled water. The sample was then incubated at 4 ° C. for 3 days with a dopamine active neuron marker antibody Tryrosine Hydroxylase (Cy # ab112) in a mixed solution of 1% Triton X-100 and PBS solution. After 3 days, washed again in distilled water for 12h and then incubated with secondary antibody Donkey Anti-Rabbit IgG Alexa Fluor-594 for 3 days at 4 °C, and washed for 6 hours in 1X PBS.
  • a dopamine active neuron marker antibody Tryrosine Hydroxylase Cy # ab112
  • a mixed solution of 1% Triton X-100 and PBS solution washed again in distilled water for 12h and then incubated with secondary antibody Donkey Anti-Rabbit IgG Alexa Fluor-594 for 3 days at 4 °C, and washed for 6 hours in 1X PBS.
  • Figure 6 (a) is a mouse brain image of Lectin-488, (b) is a mouse pancreas image of Lectin-488.
  • Figure 7 (a) is a cerebral vascular image of Lectin-488, (b) is a cerebellar vascular image of Lectin-488, (c) is a pancreatic vascular image of Lectin-488.
  • Figure 8 (a) is a cleared mouse whole brain image, (b) is a 5X microscope lens image of TH-antibody in the cleared whole brain, (c) is an inhibitory neuron-GFP 20X microscope lens in the periphery of the hippocampus Image.
  • 9 is a partial image of video image data of TH-neuron.
  • 10 is a partial image of the inhibitory neuron-GFP video image data.
  • the tissue clearing method of the present invention can provide a three-dimensional vascular system reconstruction and visual image .
  • the biological tissue clearing method according to the present invention can be observed by imaging the three-dimensional distribution of cells and molecules of the intact biological tissues, perform observation studies in one complete structure for a variety of biological tissues having a complex structure As a result, useful information in the tissue can be obtained and used effectively for the study of pancreatic function and brain disease.
  • composition for clarifying biological tissues and the method for clarifying biological tissues using the same according to the present invention do not require an expensive electrophoretic device and an expensive solution, and include brain, liver, lung, kidney, intestine, heart, muscle, blood vessels, and the like. Not only can be applied to various biological tissues without damage, but also bubble formation, discoloration and black sediment are not shown, and the transparency of biological tissues is improved, and antibody staining in transparent tissues is possible. This is useful for identifying and finding a cure.

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Abstract

본 발명은 생체 조직 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법에 관한 것이다.

Description

생체 조직 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법
본 발명은 생체 조직 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법에 관한 것이다.
x-ray를 통한 의료 진단 기술은 CT나 MRI와 같은 2차원 스캐닝 후 3차원으로 재구성하는 기술에 의하여 입체적으로 관찰, 정교하게 진단할 수 있는 기술로 발전하여 왔다. 광원이 아니라 초음파 등을 활용하는 경우 역시 3차원적 영상을 구현하는 기술이 진단에 활발하게 이용되고 있다. 그러나 현재 개발된 기술 대부분은 밀리미터 수준의 상대적으로 마크로 해상력을 가진 기술들로, 세포 수준에서의 분석이 가능한 마이크로 수준의 3차원 측정하는 기술은 상대적으로 그 발전이 미흡하여, 현재 대부분의 세포 수준 분석은 전통적인 2차원 기술을 이용하고 있다. 즉, 생검 또는 부검 조직 등 생체조직을 고정액으로 고정한 후, 파라핀 또는 폴리머로 포매한 후 수 마이크로미터 또는 나노미터 두께로 절편을 만들어 빛이나 전자파가 투과할 수 있도록 한 후, 투과 이미지를 광학 또는 전자현미경을 이용하여 취득하는 기술을 사용하여 미세구조를 분석한다.
이러한 미세 이미징 기술을 이용하여 3차윈 이미지를 획득하기 위해서는 콘포칼 현미경 등을 이용해야 하며, 이 경우 일반적으로 수십 마이크로미터 수준의 두께 정보를 획득할 수 있다. 대략적으로 이 두께는 광원이 침투할 수 있는 깊이에 의하여 그 한계가 그어진다. 그러나 대부분의 생체 조직 내 유의미한 구조물들이 수백 마이크로미터 이상의 크기를 가지고 있으므로, 이와 같은 방법으로는 일부의 정보만을 취득할 수 있다. 따라서, 보다 두꺼운 조직 내 이미지를 획득하기 위해서는 수십 마이크로 두께의 연속적인 절편을 제작하고, 이를 일일이 현미경으로 통하여 이미징 한 후, 다시 재구성하는 일련의 과정을 필요로 한다. 특히 뇌조직의 경우 하나의 뉴런 전체를 이미징한다고 할 때, 경우에 따라서는 하나의 뉴런이 수 ｍ까지도 그 액손(Axon)을 뻗기 때문에, 조직을 자르고 붙이는 일련의 과정을 진행하면서 일어날 수 있는 문제점이 기하급수적으로 발생한다.
조직 투명화 기술은 조직의 손상없이 조직 내부 구조 및 단백질 분포를 확인할 수 있어 기존의 기술의 관찰 한계를 뛰어넘어 더 깊은 곳까지 조직 구조를 관찰하고 다양한 기관계(system)로부터 통합적인 구조와 분자 정보의 접근을 가능하게 하므로 최근 다양한 방법으로 조직을 투명화하는 기술이 개발되었다.
종래 조직 투명화 기술로는 유기용매를 이용한 조직투명화 과정인 Spatleholz, BABB, Scale S, iDISCO법과, 폴리머 주입법인 ACT(active CLARITY technology)법에 의해 처리된 조직의 항원 보존성이 보고된 바 있다. ACT를 제외한 다른 방법의 경우 형광과 항원의 보존성이 감소하는 문제를 가지고 있다. ACT경의 경우 90% 이상의 항원 보존성이 있으며, 이는 CLARITY와 같이 고정된 단백질에 추가로 하이드로젤 폴리머와의 결합을 필요로 하는 방법에 비하면 보다 높은 보존성을 보인다. 그러나 강한 조직 고정 과정은 항원성의 손실을 유발하므로, 사용할 수 있는 항체가 감소하는 등의 문제점을 고려해야 하므로, 여러 가지 기술의 개선이 필요하다.
또한, 최근에 개발된 조직 투명화 방법인 'CLARITY' 기반 기술은 조직 내 Hydrogel을 추가하여 DNA나 단백질 등 진단에 중요한 중요 물질들을 붙잡아주는 일종의 조직 내 그물망 지지체를 만든 뒤 지질만을 선택적으로 제거하는 방법을 이용한다(비특허문헌 1, Chung K, et al. (2013) Nature 497(7449):332-337 참조).
그러나, 상기 방법은 하이드로젤 지지체를 조직에 침투시키게 되는데, 하이드로젤의 농도가 높아지면 단백질과의 결합도가 많아지며 보다 촘촘한 그물형 구조가 만들어지기 때문에 조직이 더 단단해진다. 반면 조직이 단단해지면 계면활성제에 의해서 지질이 빠져나가기 어려워지기 때문에 투명화에 걸리는 시간이 길어진다. 또한, 상기 방법은 조직 표면에 공기 및 검은 입자 침착을 야기하거나, 조직을 노랗게 변색시키는 문제점이 있다.
또한, 상기 방법은 과정이 너무나 복잡하고 부가적인 장비가 많이 필요하다. 예를 들면 뇌 하나를 투명화하기 위해서는 적어도 30,000,000만원 이상이 필요하다. 뿐만 아니라 한번에 하나의 뇌만 투명화하는 것이 가능하므로 경제적, 시간적으로 많은 손실이 유발된다. 보다 큰 문제는 항체을 이용한 염색이 그물망 구조를 이루는 폴리아크릴아마이드(polyacrylamide)의 사이를 투과하기에 어려움이 있다.
따라서, 조직 내 단백질의 분포정보를 얻기 위해서는 조직 투명화 이후 항원성의 보존 정도와 항체의 조직 내 침투력을 고려하여 항체의 물리적인 확산 능력을 향상시켜야하나, 결합조직이 많은 단단한 조직들의 경우 항체의 확산 속도는 현저히 떨어지므로, 이들을 보완하기 위한 새로운 기법이 요구 된다.
상술한 바와 같이, 종래 연구에서는 조직 투명화를 위해 그 과정의 복잡할 뿐만 아니라 많은 비용과 시간이 필요하다. 따라서, 과정의 단순화, 비용절감은 물론 항체 염색까지 최적화하여 뇌 뿐만 아니라 다양한 조직의 투명화할 수 있는 기술이 필요하다.
이에, 본 발명자는 생체 조직의 투명화 기술을 연구하던 중, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법은 고가의 전기 영동 장치와 고가의 용액을 필요로 하지 않고, 뇌, 간, 폐, 신장, 장, 심장, 근육, 혈관 등의 다양한 생체 조직에 손상 없이 적용 가능할 뿐만 아니라, 버블 형성, 변색 및 검은 퇴적물이 나타나지 않고 생체 조직의 투명성이 향상되고, 투명화된 조직 내 항체 염색이 가능한 바, 생체 조직의 구조적 이미지화를 통하여 다양한 질환의 원인을 규명하고 치료법을 찾아내는 데 유용하게 사용될 수 있음을 알아내어 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 생체 조직 투명화용 조성물을 제공하는데 있다.
본 발명의 다른 목적은 생체 조직의 투명화 방법을 제공하는데 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여,
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염을 포함하는 생체 조직 투명화용 조성물을 제공한다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2017013168-appb-I000001
(상기 화학식 1에서,
R1은 수소 또는 C1-C2알킬이고,
R2는 수소 또는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐 또는 C8-C20알케닐카보닐이고,
R3는 수소 또는 필수아미노산의 곁가지를 의미한다).
또한, 본 발명은 고정화된 생체 조직을 상기 조성물과 접촉시켜 투명화시키는 단계를 포함하는 생체 조직의 투명화 방법을 제공한다.
본 발명에 따른 생체 조직의 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법은 고가의 전기 영동 장치와 고가의 용액을 필요로 하지 않고, 뇌, 간, 폐, 신장, 장, 심장, 근육, 혈관 등의 다양한 생체 조직에 손상 없이 적용 가능할 뿐만 아니라, 버블 형성, 변색 및 검은 퇴적물이 나타나지 않고 생체 조직의 투명성이 향상되고, 투명화된 조직 내 항체 염색이 가능한 바, 생체 조직의 구조적 이미지화를 통하여 다양한 질환의 원인을 규명하고 치료법을 찾아내는 데 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명에 따른 조직 투명화 방법을 통하여 투명화된 마우스 전체 조직에 대한 이미지이며, 도 1의 좌측 이미지에 비해, 본 발명에 따른 조직 투명화 방법을 수행한 도 1의 우측 이미지가 마우스 전체 조직이 상대적으로 현저히 투명화된 것을 알 수 있다.
도 2(a)는 투명화 전 마우스 뇌(half brain)이다.
도 2(b)는 실험예 1을 통해 투명화된 마우스 뇌이다.
도 3(a)는 투명화 전 마우스 뇌(half brain)이다.
도 3(b)는 실험예 3에서 40 w/v% N-라우릴사코신 용액의 전처리 후 마우스 뇌이다.
도 3(c)는 실험예 3을 통해 투명화된 마우스 뇌이며, 마우스 뇌가 투명화됨에 따라, 마우스 뇌의 뒤편에 있는 글자가 육안으로 식별이 가능함을 알 수 있다.
도 4(a)는 마우스 췌장(pancreas)이다.
도 4(b)는 실험예 3으로 최종 투명화된 마우스 췌장이며, 마우스 췌장이 투명화된 것을 알 수 있다.
도 5(a) 투명화 전의 PBS 용액에서 전체 뇌 이미지이다.
도 5(b)는 실험예 3의 40 w/v% N-라우릴사코신 용액에서의 마우스 전체 뇌 이미지이다.
도 5(c)는 실험예 3으로 최종 투명화된 마우스 전체 뇌이며, 마우스 뇌가 투명화된 것을 확인할 수 있다.
도 6(a)는 Lectin-488의 마우스 뇌 이미지이며, 마우스 뇌 투명화가 진행된 덕분에 초록색의 염색 이미지가 용이하게 확인됨을 알 수 있다.
도 6(b)는 Lectin-488의 마우스 췌장 이미지이며, 마우스 췌장 투명화가 진행된 덕분에 초록색의 염색 이미지가 용이하게 확인됨을 알 수 있다.
도 7(a)는 Lectin-488의 뇌 혈관 이미지이며, 뇌 투명화가 진행된 덕분에 초록색의 염색 이미지가 용이하게 확인됨을 알 수 있다.
도 7(b)는 Lectin-488의 소뇌 혈관 이미지이며, 소뇌 투명화가 진행된 덕분에 초록색의 염색 이미지가 용이하게 확인됨을 알 수 있다.
도 7(c)는 Lectin-488의 췌장 혈관 이미지이며, 췌장 투명화가 진행된 덕분에 초록색의 염색 이미지가 용이하게 확인됨을 알 수 있다.
도 8(a)는 투명화된 마우스 전체 뇌 이미지이다.
도 8(b)는 투명화된 전체 뇌의, TH-항체에 대한 5X 현미경 렌즈 이미지를 나타낸다.
도 8(c)는 해마체(hippocampus)의 주변에 있는 inhibitory neuron-GFP 20X 현미경 렌즈 이미지를 나타낸다.
도 9는 TH-neuron의 비디오 영상 자료의 일부 이미지이다.
도 10은 inhibitory neuron-GFP 비디오 영상 자료의 일부 이미지이다.
이하, 본 발명에 대하여 구체적으로 설명한다.
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염을 포함하는 생체 조직 투명화용 조성물을 제공한다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2017013168-appb-I000002
상기 화학식 1에서,
R1은 수소 또는 C1-C2알킬이고,
R2는 수소 또는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐 또는 C8-C20알케닐카보닐이고,
R3는 필수아미노산의 곁가지를 의미한다.
이하, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물에 대하여, 더욱 구체적으로 설명한다.
본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물은 빛과 다른 분자의 투과를 막는 지질 성분을 생체 조직으로부터 제거하고 단백질의 구조적 변성을 일으키지 않으며 조직을 단단하게 하는 역할을 하는 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염을 포함한다.
이때, 상기 화학식 1에서, R1은 수소 또는 C1-C2알킬이고, R2는 수소 또는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐 또는 C8-C20알케닐카보닐이고, R3는 필수아미노산의 곁가지를 나타낸다.
여기서, 상기 "직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알케닐카보닐"은 적어도 하나의 이중결합을 가지는 탄소수 8 내지 20의 알킬사슬의 카보닐을 의미하고, 상기 "필수아미노산의 곁가지"는 통상적으로 필수아미노산이라고 불리는 20개의 아미노산, 즉, 발린, 류신, 이소류신, 메티오닌, 페닐알라닌, 아스파리긴, 글루탐산, 아스파르트산, 글리신, 알라닌, 세린, 트레오닌, 시스테인, 프롤린, 글루타민, 히스티딘, 리신, 아르기닌, 티로신, 트립토판에서 NH2(COOH)CH-를 모체로 하는 경우의 치환기를 의미한다. 예를 들면, 발린의 곁가지는 수소이고, 알라닌의 곁가지는 메틸이다.
보다 바람직하게 본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물은 상기 화학식 1에 있어서, R1은 메틸이고, R2는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐이고, R3는 수소인 아미노산 또는 염을 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물에 있어서, 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염이 4 - 55 w/v%(중량/부피%)의 농도로 포함될 수 있으며, 10 - 50 w/v% 농도가 바람직하고, 35 - 45 w/v% 농도가 보다 바람직하다.
이때, 상기 농도를 나타내기 위한 용액으로는 통상의 분야에 사용하는 유사 생체 용액(simulated body fluid)일 수 있으나, PBS(phosphate buffer saline), TBS(tris buffer solution), 증류수 등이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염이 4 w/v% 미만으로 포함되는 경우에는 생체 조직의 투명화 속도가 현저히 느려질 수 있고, 55 w/v% 초과로 포함되는 경우에는 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 염이 완전히 용해되지 않을 수 있다.
나아가, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물은 삼투압을 조절하여 생체 조직의 투명화를 빠르게 촉진시키는 역할을 하는 물질을 더 포함할 수 있다. 바람직하게는 우레아(urea), CHAPS(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-1-프로판설포네이트)), CHAPSO(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-2-하이드록시-1-프로판설포네이트)), 수크로오스(sucrose), 프룩토오스(fructose), 글리세롤, 다이아트라이조산(Diatrizoic acid), t-옥틸페녹시폴리에톡시에탄올(Triton X-100), 폴리옥시에틸렌(20)소르비탄 모노라우레이트(Tween-20), 2-2-싸이오디에탄올, 이오헥솔(Iohexol) 등을 들 수 있다.
이때, 상기 생체 조직의 투명화를 빠르게 촉진시키는 물질은 20 - 60 w/v%의 농도로 포함될 수 있으며, 30 - 50 w/v% 농도로 포함되는 것이 바람직하다. 상기 농도가 20 w/v% 미만인 경우 조직의 투명화 속도가 느려지며 60 w/v% 초과인 경우 결정이 유발되거나 용액에 녹지 않을 수 있다.
또한, 상기 생체 조직의 투명화를 빠르게 촉진시키는 물질의 농도는 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염의 바람직한 농도 범위와 적절하게 조절할 수 있다.
종래의 투명화 방법을 사용하기 위해서는 조직과 용액의 굴절률을 맞추기 위해 mounting 용액을 따로 추가로 구입 및 제작이 필요하였으나, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화용 조성물은 굴절률을 맟추는 용액이 필요없으며, 이는 비용절감의 효과를 나타낸다.
상술한 바와 같이, 본 발명에 따른 생체 조직의 투명화용 조성물은 고가의 전기 영동 장치와 고가의 용액을 필요로 하지 않고, 뇌, 간, 폐, 신장, 장, 심장, 근육, 혈관 등의 다양한 생체 조직에 손상 없이 적용 가능할 뿐만 아니라, 버블 형성, 변색 및 검은 퇴적물이 나타나지 않고 생체 조직의 투명성이 향상되므로 생체 조직의 투명화용 조성물로 유용하게 사용할 수 있다.
또한, 본 발명은 고정화된 생체 조직을 상기 조성물과 접촉시켜 투명화시키는 단계를 포함하는 생체 조직의 투명화 방법을 제공한다.
이하, 본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법을 구체적으로 설명한다.
본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법은 고정화된 생체 조직을 상기 조성물과 접촉시켜 투명화시키는 단계를 포함한다.
구체적으로, 본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법은 고정화된 생체 조직을 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염을 유효성분으로 포함하는 조성물과 접촉시킴으로써, 생체 조직의 물리화학적 특성을 변형하여 투명하게 함으로써 보다 깊이 빛이 침투할 수 있도록 만들어 투명하게 하는 것이다.
본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법은 버블 형성, 변색 및 검은 퇴적물이 나타나지 않고 생체 조직의 투명성을 향상시키며 단백질 변성 등에 의하여 원하는 조직 내 정보가 손실 또는 왜곡되지 않아, 특히 GFP단백질 등 다양한 형광원(Fluorophore)을 조직 내 정보 검출 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법에 있어서, 생체 조직은 투명화 하기 전에 통상적으로 항원성의 손실을 유발하지 않으면서 생체 조직을 고정화하는 방법이라면 특별한 제한없이 적용하여 고정화할 수 있나, PFA(paraformaldehyde), 에텔렌글리콜 디글리시딜에테르(ethylene glycol diglycidyl ether), 디프로필렌 글리콜 디글리시딜에테르(dipropylene glycol diglycidyl ether), 1,4-부탄디올 디글리시딜에테르(1,4-butanediol diglycidyl ether), 글리세롤 폴리글리시딜 에테르(glycerol polyglycidyl ether), 글루타르알데하이드(glutaraldehyde), 폴리아크릴아마이드 등을 사용하여 통상적인 방법으로 고정화될 수 있다.
나아가, 본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법에 있어서, 생체 조직을 탈수분시키기 위한 전처리 단계를 더 수행할 수 있으며, 통상적으로 생체 조직을 탈수분시키는 전처리 방법이라면 특별한 제한없이 사용할 수 있으나, 고정화된 생체 조직을 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산을 20 - 50 w/v% 농도의 용액에 담지하는 것이 바람직하고, 35 - 45 w/v% 농도의 용액에 담지하는 것이 보다 바람직하다. 전처리 용액의 농도가 20 w/v% 미만으로 포함되는 경우에는 탈수분이 효과적으로 수행되지 않아 조직 투명화 과정에서 나타나는 조직의 부풀어 오름 현상이 생길 수 있고 50 w/v% 초과로 포함되는 경우에는 상기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 염이 완전히 용해되지 않고 더 이상 탈수 효과가 증대되지 않는다.
이때, 상기 농도를 나타내기 위한 용액으로는 통상의 분야에 사용하는 유사 생체 용액(simulated body fluid)일 수 있으나, PBS(phosphate buffer saline), TBS(tris buffer solution), 증류수, t-옥틸페녹시폴리에톡시에탄올(Triton X-100), 폴리옥시에틸렌(20)소르비탄 모노라우레이트(Tween-20), CHAPS(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-1-프로판설포네이트)), CHAPSO(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-2-하이드록시-1-프로판설포네이트)) 등이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니다. 또한, 담지의 온도는 40 - 60 ℃인 것이 적절하나, 이에 한정되는 것은 아니다.
이러한 전처리 과정을 통하여 고정화 물질과 단백질의 구조적 결합력을 증가시키고 변성을 일으키지 않으며, 조직을 더 단단하게 할 뿐만 아니라, 조직 투명화 과정에서 나타나는 조직의 부풀어 오름을 방지하고 항체 처리과정, 세척(washing) 과정 등에서 일어나는 조직의 갈라짐을 방지할 수 있다.
본 발명에 따른 생체 조직의 투명화 방법은 다양한 척추 동물의 조직(tissue)에 적용할 수 있으며, 특히, 뇌(brain), 혈관(blood vessel), 간(liver), 폐(lung), 신장(kidney), 췌장(pancreas), 장(intestine) 등에 적용하는 것이 바람직하고, 상기 생체 조직의 전체 부분을 한번에 투명화할 수 있다.
나아가, 본 발명은 상기 투명화된 생체 조직 내 중요 정보, 즉, DNA, RNA, 단백질, 형광신호 등의 검출 방법을 제공한다.
본 발명에 따른 투명화된 생체 조직은 GFP 형광, 면역 염색을 통하여 단백질 또는 mRNA를 검출할 수 있다. 단백질의 경우 고정 과정동안 아미노산에 존재하는 아미노기 끼리의 공유결합을 이루면서 서로 네트워크를 이루기 때문에, 매우 안정적인 반면, RNA나 DNA와 같은 핵산의 경우 아미노기가 존재하지 않기 때문에, 고정된 조직에서도 상대적으로 불안정하다. 특히, 전기영동 과정이 포함되는 경우, 핵산이 가진 전기적 성질에 의해 조직 내 위치가 바뀔 우려가 있다. 반면, 본 발명에 따른 투명화된 생체 조직은 GFP(Green Fluorescent Protein) 세포 및 도파민 활성 뉴런 마커 항체인 티로신하이드록시아제(Tyrosine Hydroxylase) 등에 대한 형광 염색이 우수하게 수행된다.
본 발명에 따른 생체 조직 투명화 방법은 손상되지 않은 생체 조직의 세포와 분자의 3차원 분포를 이미지화하여 관찰할 수 있으므로, 복잡한 구조를 가지는 다양한 생체 조직에 대하여 하나의 완전한 구조로 수백 마이크로미터 이상의 크기로 관찰 연구를 수행할 수 있으므로 조직 내의 유용한 정보를 취득하여 뇌질환 등의 다양한 질환의 원인을 규명하는데 효과적으로 사용할 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예 및 실험예에 의해 상세히 설명한다.
단, 하기의 실시예 및 실험예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예 및 실험예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<실험예 1> 생체 조직의 투명화 1
본 발명에 따른 조성물로 생체 조직을 투명화하기 위하여 다음과 같이 수행하였다.
모든 동물 실험 과정은 계명대학교 동물 자원 대학위원회의 지침서(Approval No. KM-2014-20R1)에 따라 수행하였다.
먼저, 틸레타민(Tiletamine)-졸라제팜(zolazepam)-자이라신(xylazine) 혼합물을 이용하여 성인 생쥐 (8주령)를 마취시키고, 쥐의 혈관을 염색하기 위해 tail vein으로 Lectin-488 (Cat# DL1174)을 주입하였다. Lectin 주입 후 5분 동안 기다린 후 경심 관류로 얼음처럼 차가운 1X 인산완충용액 (phosphate-buffered saline) 50 mL을 관류시킨 후, 얼음처럼 차가운 4% PFA가 포함된 PBS를 관류시켰다. 그 다음 기관을 적출하고 4%의 PFA용액에 담근 후 4℃에서 12 h 동안 인큐베이션 하였다.
다음으로, 상기 샘플을 실온으로 옮겨 2시간 동안 더 인큐베이션을 하였고, 50ml의 PBS로 2번 Washing을 하였다. 상기 고정화된 샘플을 4 w/v% N-라우릴사코신 소둠염과 60 w/v% 우레아의 혼합용액에서 55℃ 온도에서 220 rpm으로 3일 동안 인큐베이션하여, 그 결과를 도 2에 나타내었다.
도 2(a)는 투명화 전 마우스 뇌(half brain)이고, (b)는 실험예 1로 투명화된 마우스 뇌(half brain)이다.
따라서, 본 발명에 따른 N-라우릴사코신 소듐염과 우레아의 혼합용액은 생체 조직을 투명하게 함을 알 수 있다.
<실험예 2> 생체 조직의 투명화 2
본 발명에 따른 조성물로 생체 조직을 투명화하기 위하여 다음과 같이 수행하였다.
구체적으로, 상기 실험예 1에서 고정화된 샘플을 4 w/v% N-라우릴사코신 소둠염과 60 w/v% 우레아의 혼합용액에서 55℃ 온도에서 220 rpm으로 3일 동안 인큐베이션하고, 15 w/v% N-라우릴사코신 소듐염와 50 w/v% 우레아의 혼합용액에서 55℃ 온도에서 220 rpm으로 2일 동안 더 인큐베이션하였다.
상기 실험예1의 투명화된 조직보다 더욱 단단하고 투명하게 됨을 알 수 있었다.
<실험예 3> 생체 조직의 투명화 3
본 발명에 따른 조성물로 생체 조직을 투명화하기 위하여 다음과 같이 수행하였다.
구체적으로, 상기 실험예 1에서 고정화된 샘플을 미리 준비된 40 w/v% N-라우로릴사코신 소듐염으로 12시간 처리하는 전처리 과정을 더 수행하는 것을 제외하고는 실험예 1과 동일하게 수행하여 그 결과를 도 1, 도 3- 5에 나타내었다.
도 1은 투명화된 마우스 전체 조직에 대한 이미지이다.
도 3(a)는 투명화 전 마우스 뇌(half brain)이고, (b)는 실험예 3에서 40 w/v% N-라우릴사코신 용액의 전처리 후 마우스 뇌이고, (c)는 실험예 3으로 최종 투명화된 마우스 뇌이다.
도 4(a)는 마우스 췌장(pancreas)이고, (b)는 실험예 3으로 최종 투명화된 마우스 췌장이다.
도 5(a) 투명화 전의 PBS 용액에서 전체 뇌이고, (b)는 실험예 3의 40 w/v% N-라우릴사코신 용액에서의 마우스 전체 뇌이고, (c)는 실험예 3으로 최종 투명화된 마우스 전체 뇌이다.
도 1, 도 3-5에 나타난 바와 같이, 마우스의 투명화된 전체 조직 및 투명화된 뇌, 췌장을 확인할 수 있다. 따라서, 본 발명에 따른 투명화 방법은 생체 조직을 완벽히 투명하게 하는데 최적임을 알 수 있다.
<실험예 4> 투명화된 성인 마우스 뇌 및 췌장 이미지 확인
본 발명에 따른 투명화 방법으로 투명화된 뇌 및 췌장의 혈관을 확인하기 위해 가변평면레이저현미경(Selective Plane Illumination MicroscopyLightsheet Z.1)에서 5X 및 20X 대물렌즈를 이용하여 마우스 뇌와 췌장을 면역 염색 이미지화하여 GFP 신호를 확인하였다.
구체적으로, 상기 실험예 2에서 투명화된 조직을 50 mL 증류수에 3번 교체해줌으로써 12시간 인큐베이션하였다. 그 후 샘플을 도파민 활성 뉴런 마커 항체인 트립신 하이드록시아제(Tyrosine Hydroxylase (Cat# ab112))를 1% Triton X-100과 PBS용액의 혼합 용액에 넣고 4℃에서 3일 동안 인큐베이션 하였다. 3일 후 다시 증류수에 12h 동안 세척 후 2차 항체 Donkey Anti-Rabbit IgG Alexa Fluor-594에 3일 동안 4℃에서 인큐베이션하고, 1X PBS에서 6시간 세척하였다. Washing을 마치 샘플은 다시 N-라우릴사코신과 우레아의 혼합용액에 담고 12시간 인큐베이션 후 가변평면레이저 현미경으로 측정하고, 3차원 이미지는 Zeiss software에서 재건하여 면역 염색이미지와 GFP신호를 확인하였으며 그 결과는 도 6 내지 도 10에 나타내었다. 이미지화(Z-stack volume)는 0.6 mm-3 mm 까지 관찰이 가능하였다.
도 6(a)는 Lectin-488의 마우스 뇌 이미지이고, (b)는 Lectin-488의 마우스 췌장 이미지이다.
도 7(a)는 Lectin-488의 뇌 혈관 이미지이고, (b)는 Lectin-488의 소뇌 혈관 이미지이고, (c)는 Lectin-488의 췌장 혈관 이미지이다.
도 8(a)는 투명화된 마우스 전체 뇌 이미지이고, (b)는 투명화된 전체 뇌에 TH-항체에 대한 5X 현미경 렌즈 이미지이고, (c)는 hippocampus의 주변에 있는 inhibitory neuron-GFP 20X 현미경 렌즈 이미지이다.
도 9는 TH-neuron의 비디오 영상 자료의 일부 이미지이다.
도 10은 inhibitory neuron-GFP 비디오 영상 자료의 일부 이미지이다.
도 6 내지 10에서 알 수 있는 바와 같이, 조직의 활성화된 구조를 투명화 한 후 단일 광자 현미경을 사용하여 시각적으로 확인이 가능하였으며, 3 차원적으로 혈관 패턴을 재건할 수 있었다. 특히, 이미지화된 췌장의 혈관 패턴의 경우, 일반적인 이미지화 및 3차원 재건으로 전체적인 패턴을 추적하는 것에 매우 어려움이 따르나, 본 발명의 조직 투명화 방법은 3 차원적 혈관계 재건과 시각적인 이미지를 제공할 수 있다.
따라서, 본 발명에 따른 생체 조직 투명화 방법은 손상되지 않은 생체 조직의 세포와 분자의 3차원 분포를 이미지화하여 관찰할 수 있으므로, 복잡한 구조를 가지는 다양한 생체 조직에 대하여 하나의 완전한 구조로 관찰 연구를 수행할 수 있으므로 조직 내의 유용한 정보를 취득하여 췌장 기능 및 뇌질환 연구에 효과적으로 사용될 수 있다.
본 발명에 따른 생체 조직의 투명화용 조성물 및 이를 이용한 생체 조직 투명화 방법은 고가의 전기 영동 장치와 고가의 용액을 필요로 하지 않고, 뇌, 간, 폐, 신장, 장, 심장, 근육, 혈관 등의 다양한 생체 조직에 손상 없이 적용 가능할 뿐만 아니라, 버블 형성, 변색 및 검은 퇴적물이 나타나지 않고 생체 조직의 투명성이 향상되고, 투명화된 조직 내 항체 염색이 가능한 바, 생체 조직의 구조적 이미지화를 통하여 다양한 질환의 원인을 규명하고 치료법을 찾아내는 데 유용하다.

Claims (7)

  1. 하기 화학식 1로 표시되는 아미노산 또는 이의 염을 포함하는 생체 조직 투명화용 조성물.
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2017013168-appb-I000003
    (상기 화학식 1에서,
    R1은 수소 또는 C1-C2알킬이고,
    R2는 수소 또는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐 또는 C8-C20알케닐카보닐이고,
    R3는 필수아미노산의 곁가지를 의미한다).
  2. 제1항에 있어서,
    상기 R1은 메틸이고,
    R2는 직쇄 또는 측쇄의 C8-C20알킬카보닐이고,
    R3는 수소인 것을 특징으로 하는 생체 조직 투명화용 조성물.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 조성물은 우레아(urea), CHAPS(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-1-프로판설포네이트)), CHAPSO(3-[(3-콜아미도프로필)디메틸암모니오]-2-하이드록시-1-프로판설포네이트)), 수크로오스(sucrose), 프룩토오스(fructose), 글리세롤, 다이아트라이조산(Diatrizoic acid), t-옥틸페녹시폴리에톡시에탄올, 폴리옥시에틸렌(20)소르비탄 모노라우레이트, 2-2-싸이오디에탄올 및 이오헥솔(Iohexol) 이루어지는 군으로부터 선택되는 1종 이상을 더 포함하는 것을 특징으로 하는 생체 조직 투명화용 조성물.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 생체 조직은 뇌(brain), 혈관(blood vessel), 간(liver), 폐(lung), 신장(kidney), 췌장(pancreas) 또는 장(intestine)인 것을 특징으로 하는 생체 조직 투명화용 조성물.
  5. 고정화된 생체 조직을 제1항의 조성물과 접촉시켜 투명화시키는 단계를 포함하는 생체 조직의 투명화 방법.
  6. 제5항에 있어서,
    상기 고정화된 생체 조직은 파라포름알데하이드(paraformaldehyde), 에텔렌글리콜 디글리시딜에테르(ethylene glycol diglycidyl ether), 디프로필렌 글리콜 디글리시딜에테르(dipropylene glycol diglycidyl ether), 1,4-부탄디올 디글리시딜에테르(1,4-butanediol diglycidyl ether), 글리세롤 폴리글리시딜 에테르(glycerol polyglycidyl ether), 글루타르알데하이드(glutaraldehyde) 및 폴리아크릴아마이드로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로부터 고정화된 생체 조직인 것을 특징으로 하는 생체 조직의 투명화 방법.
  7. 제5항에 있어서,
    상기 방법은 고정화된 생체 조직을 제1항의 화학식 1로 표시되는 아미노산으로 전처리하는 단계를 더 수행할 수 있는 것을 특징으로 하는 생체 조직의 투명화 방법.
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