본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 제공할 수 있다.
[화학식 1]
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 노화 관련 질환 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공할 수 있다.
[화학식 1]
보다 상세하게는 상기 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 (7S)-(+)-8,8-디메틸-7-(3-페닐-알릴옥시)-7,8-디하이드로-6H-피라노[3,2-g]크로멘-2-온 {(7S)-(+)-8,8-Dimethyl-7-(3-phenyl-allyloxy)-7,8-dihydro-6H-pyrano [3,2-g]chromen-2-one (SLC-D011)}일 수 있다.
상기 노화 관련 질환은 조로증일 수 있다.
보다 상세하게는 상기 조로증은 베르너 증후군 및 허친슨 길포드 증후군으로 이루어진 군에서 선택될 수 있다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물 및 이의 약학적으로 허용가능한 염은 프로게린과 라민 A간의 결합을 억제할 수 있다.
본 발명의 한 구체예에서, 상기 약학조성물은 통상적인 방법에 따라 주사제, 과립제, 산제, 정제, 환제, 캡슐제, 좌제, 겔, 현탁제, 유제, 점적제 또는 액제로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 제형을 사용할 수 있다.
본 발명의 다른 구체예에서, 약학조성물은 약학조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제, 붕해제, 감미제, 피복제, 팽창제, 윤활제, 활택제, 향미제, 항산화제, 완충액, 정균제, 희석제, 분산제, 계면활성제, 결합제 및 윤활제로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 첨가제를 추가로 포함할 수 있다.
구체적으로 담체, 부형제 및 희석제는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 사용할 수 있으며, 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 조성물에 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트, 수크로스 또는 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 조제할 수 있다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용할 수 있다. 경구를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 있으며 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제 등이 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기재로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 일실시예에 따르면 상기 약학 조성물은 정맥내, 동맥내, 복강내, 근육내, 동맥내, 복강내, 흉골내, 경피, 비측내, 흡입, 국소, 직장, 경구, 안구내 또는 피내 경로를 통해 통상적인 방식으로 대상체로 투여할 수 있다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 바람직한 투여량은 대상체의 상태 및 체중, 질환의 종류 및 정도, 약물 형태, 투여경로 및 기간에 따라 달라질 수 있으며 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 본 발명의 일실시예에 따르면 이에 제한되는 것은 아니지만 1일 투여량이 0.01 내지 200 mg/kg, 구체적으로는 0.1 내지 200 mg/kg, 보다 구체적으로는 0.1 내지 100 mg/kg 일 수 있다. 투여는 하루에 한 번 투여할 수도 있고 수회로 나누어 투여할 수도 있으며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 있어서, 상기 '대상체'는 인간을 포함하는 포유동물일 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 주름 예방 또는 개선용 화장료조성물을 제공할 수 있다.
[화학식 1]
상기 화학식 1로 표시되는 화합물 및 이의 약학적으로 허용가능한 염은 케라틴세포 및 섬유아세포에서 콜라겐 생성을 향상시킬 수 있다.
상기 화장료조성물은 유효성분인 화학식 1로 표시되는 화합물 외에 안정화제, 용해화제, 비타민, 안료 및 향료와 같은 통상적인 보조제, 그리고 담체를 포함할 수 있다.
상기 화장료 조성물은 당업계에서 통상적으로 제조되는 어떠한 제형으로도 제조될 수 있으며, 예를 들어, 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 파우더, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이 등으로 제형화될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 보다 상세하게는, 썬 크림, 유연 화장수, 수렴 화장수, 영양 화장수, 영양 크림, 마사지 크림, 에센스, 아이 크림, 팩, 스프레이 또는 파우더의 제형으로 제조될 수 있다.
상기 제형이 페이스트, 크림 또는 겔인 경우에는 담체 성분으로서 동물성유, 식물성유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜,실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크 또는 산화아연 등이 이용될 수 있다.
상기 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록시드, 칼슘 실리케이트 또는 폴리아미드 파우더가 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로히드로카본, 프로판/부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진체를 포함할 수 있다.
상기 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는 담체 성분으로서 용매, 용해 화제 또는 유탁화제가 이용되고, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알코올, 벤질 벤조에이트, 프로필렌 글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 글리세롤 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 있다.
상기 제형이 현탁액인 경우에는 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌글리콜과 같은 액상의 희석제, 에톡실화 이소스테아릴 알코올, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 실시예를 들어 상세하게 설명하기로 한다. 다만 하기의 실시예는 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 실시예는 당업계에서 평균적인 지식을 가진 자에게 본 발명을 보다 완전하게 설명하기 위해 제공되는 것이다.
<참고예> 물질 및 장비
1H 및 13C NMR 스펙트럼은 JNM-AL 400 spectrometer (400MHz, JEOL, Japan)를 이용하여 측정되었고, 녹는점 (Melting point)은 Electrotheramal melting point apparatus (Yamaco. MD-S3)에서, 질량분석을 위한 기기로는 API 2000 LC/MS/MS spectrometer(PE Sciex, Canada)를 각각 사용하여 수행하였다.
또한, 편광도 (Optical rotations)는 JASCO DIP-360 automatic digital polarimeter에서 측정되었으며, 카이랄 물질에 대한 순도측정은 HPLC (Shimadzu LC-6AD, Japan), 컬럼(CHIRACEL OD-H 0.46cmф x 25cm, DAICEL CHEMICAL IND., Co. Osaka, Japan)을 사용하여 측정하였다.
물질 분리를 위한 실리카겔(Silica gel)은 SiliaFlash®P60 (SILICYCLE, 230~400mesh)를 사용하였으며, 박막 TLC 판은 TLC silica gel 60 F254 (MERCK) 제품을 사용하였다.
물질의 합성에 사용된 용매와 시약은 Sigma-Aldrich, Fluka, TCI, Junsei, Duksan pure chemical, SK Chemical 및 SAMCHUN chemical 사에서 Reagent 등급을 구입하여 사용하였다.
<
실시예
1> 에테르 형(Ether-form)의 (+)-
데커신
(
decursin
) 유도체 합성(SLC-D011)
하기 반응식 1 및 2와 같은 과정으로 (7S)-(+)-8,8-디메틸-7-(3-페닐-알릴옥시)-7,8-디하이드로-6H-피라노[3,2-g]크로멘-2-온 {(7S)-(+)-8,8-Dimethyl-7-(3-phenyl-allyloxy)-7,8-dihydro-6H-pyrano[3,2-g]chromen-2-one; SLC-D011}을 합성하였다.
1. 합성과정 Ⅰ
[반응식 1]
단계(Ⅰ) : 100 ml 라운드 플라스크에 트랜스-신남산(trans-cinnamic acid; D011a, 5 g, 33.7 mmol)을 메탄올(50 ml)로 용해시킨 후, 농축된 H2SO4 5방울을 넣고 80℃에서 24시간 동안 가열하여 환류시키고, 반응혼액을 실온으로 냉각시킨 후 감압농축하였다.
그 후 디클로로메탄(300 ml)과 증류수(300 ml)로 분액하여 유기층을 모아 황산나트륨(sodium sulfate)으로 탈수 후 여과하였다.
여과 후 얻은 여액을 감압 농축하여 순수한 생성물인 3-페닐-아크릴산, 메틸 에스테르(3-phenyl-acrylic acid, methyl ester; D011b, 5.39 g, yield= 98.5%)를 얻었으며 이를 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅱ) : N2 가스가 충전된 500 ml 라운드 플라스크에 3-페닐-아크릴 산, 메틸 에스터(3-phenyl-acrylic acid, methyl ester; D011b, 4g, 24.7mmol, 1eq)를 넣고 무수 디클로로메탄(dichloromethane)으로 용해시킨 후, -78℃로 맞춰진 저온반응기에 설치하였다.
반응액에 디이소부틸알루미늄 하이드라이드(Diisobutylalumminium hydride) 1M 용액 (DIBAL-H; 1M solution in hexane, 74 ml, 74.0 mmol, 3 eq)을 30분에 걸쳐 천천히 적가한 후, 반응온도를 0℃로 높여 1시간 동안 교반하면서, 메탄올 (22 ml)을 천천히 적가하였다.
상기 반응액을 실온으로 옮겨 30분간 교반한 후 포화 로셀염 수용액(Rochelle's salt, 88 ml)을 가하였다.
반응혼합액을 실온에서 격렬하게 2시간 동안 교반하고 디클로로메탄 (300 ml)과 증류수 (300ml)로 2회 분액한 후 유기층을 모아 황산 나트륨(sodium sulfate)으로 탈수 후, 여과하여 여액을 감압농축 하였다.
농축액은 실리카겔 컬럼분리(ethyl acetate : n-hexane = 3:1)를 통해 순수한 생성물 3-페닐-프로-2-펜-1-올(3-phenyl-pro-2-pen-1-ol; D011c, 3.1g, yield= 93.9%, Rf = 0.37 (2:1 n-hexane-ethyl acetate))을 얻었으며 이를 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅲ) : 100 ml 라운드 플라스크에 3-페닐-프로-2-펜-1-올(3-phenyl-pro-2-pen-1-ol, D011c, 1 g, 7.45 mmol, 1 eq)을 넣고 무수 디클로로메탄(dichloromethane)으로 용해시킨 후, 수증빙용상에서 PBr3(phosphorous tribromide, 253.6㎕, 2.608 mmol, 0.35 eq)을 넣고 1시간 동안 교반하였다.
반응혼액은 농축한 후, 실리카겔 컬럼 분리 (ethyl acetate : n-hexane = 1 : 8)를 통해 순수한 생성물 (3-브로모-프로펜일)-벤젠[(3-bromo-propenyl)-benzene, D005d, 1.42 g, yield= 96.2 %, Rf = 0.34 (5:1 n-hexane-ethyl acetate)]을 얻었으며 이를 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅳ) : N2 가스 하에서, 100 ml 라운드 플라스크에 (S)-(+)-데쿠시놀(decursinol) (SLC-B001, 2.33 g, 9.47 mmol, 1 eq)을 무수 N,N-디메틸포름아마이드(N,N-dimethylformamide, DMF; 10 ml)로 용해하였으며, 이를 -20℃로 설정된 저온반응기에 설치하였다.
반응혼합액에 (3-브로모-프로펜일)-벤젠 [(3-bromo-propenyl)-benzene, D005d, 2.8 g, 14.2 mmol, 1.5 eq]와 황산 나트륨 (NaH 60%, 757 mg, 18.9 mmol, 2 eq)을 넣고 4시간 동안 교반한 후 증류수 3ml을 넣고 10분 후에 저온반응기에서 꺼낸 다음 디클로로메탄 200 ml과 증류수 200 ml로 2회 분액하였으며, 유기층을 모아 황산 나트륨으로 탈수하고 여과한 후 여액을 감압 농축하였다.
농축액은 실리카겔 컬럼 분리(ethyl acetate : n-hexane = gradient elution to 1:3 from 1:10)하여 (7S)-(+)-8,8-디메틸-7-(3-페닐-알릴옥시)-7,8-디하이드로-6H-피라노[3,2-g]크로멘-2-온 {(7S)-(+)-8,8-Dimethyl-7-(3-phenyl-allyloxy)-7,8-dihydro-6H-pyrano [3,2-g]chromen-2-one (SLC-D011)} 1.21g, (35.3%)을 얻었다; 수율 35.3%, 흰색 고체, mp: 143℃, Rf = 0.39 (2:1 n-hexane-ethyl acetate); [α]25
D + 117.6 (c=1, CHCl3); 1H NMR(400MHz, CDCl3): δH 7.56(1H, d, J= 9.6Hz, H-4), 7.38-7.23(5H, m, H-5’, H-6’, H-7’, H-8’, H-9’), 7.15(1H, s, H-5), 6.76(1H, s, H-10), 6.59(1H, d, J= 16.0Hz, H-3’), 6.30-6.23(1H, m, H-2’), 6.20(1H, d, J= 9.6Hz, H-3), 4.34(1H, dd, J= 6.0, 12.8Hz, H-1a’), 4.21(1H, dd, J= 6.0, 12.4Hz, H-1b’), 3.59(1H, dd, J= 5.2, 7.6Hz, H-7), 3.07(1H, dd, J= 4.8, 16.0Hz, H-6a), 2.85(1H, dd, J= 7.2, 16.4Hz, H-6b), 1.41(3H, s CH3-8), 1.36(3H, s, CH3-8); 13C NMR (100 MHz, acetone-d6) δC 161.2(C-2), 157.8(C-9a), 155.3(C-10a), 144.5(C-4), 137.9(C-4’), 132.9(C-3'), 130.4(C-5), 129.6(C-6’,C-8'), 128.6(C-7’), 127.5(C-2’), 127.4(C-5',C-9’), 118.3(C-5a), 113.7(C-3), 113.6(C-4a), 104.5(C-10), 78.8(C-7), 76.4(C-8), 70.8(C-1’), 27.8(C-6), 26.1(CH3-8), 22.2(CH3-8); ESI-MS: m/z=363 [M+H]+ . Anal. Calc. for C23H22O4: C, 76.22; H, 6.12; Found: C, 76.20; H, 6.10.
2. 합성과정 Ⅱ
[반응식 2]
단계(Ⅰ) : 100 ml 라운드 플라스크에 트랜스-신남산(trans-cinnamic acid; D011a, 5g, 33.7mmol)을 메탄올 50ml로 용해시킨 후, 농축된 H2SO4 5방울을 넣고 80℃에서 24시간 동안 가열하여 환류시켰다. 반응혼액을 실온으로 냉각시킨 후 감압농축하고 디클로로메탄(dichloromethane; 300 ml)와 증류수 (300 ml)로 분액하여 유기층을 수집하고 황산나트륨으로 탈수한 후 여과하였다.
여과 후 얻은 여액을 감압 농축하여 순수한 생성물인 3-페닐-아크릴산, 메틸 에스테르 (3-phenyl-acrylic acid, methyl ester, D011b, 5.39 g, yield= 98.5%)를 얻었으며 상기 화합물을 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅱ) : N2 가스가 충전된 500ml 라운드 플라스크에 3-페닐-아크릴산, 메틸 에스테르(D011b, 4g, 24.7mmol, 1eq)를 넣고 무수 디클로로메탄(dichloromethane)으로 용해시킨 후, -78℃로 맞춰진 저온반응기에 설치하였다.
반응액에 디이소부틸알루미늄 하이드라이드 1M 용액 (DIBAL-H; 1M solution in hexane, 74 ml, 74.0 mmol, 3 eq)을 30분에 걸쳐 천천히 적가시킨 후, 반응온도를 0℃로 높여 1시간 동안 교반하면서 메탄올 (22 ml)을 천천히 적가하였다.
반응액을 실온으로 옮겨 30분간 교반한 후 포화 로셀염 수용액(Rochelle's salt, 88 ml)을 가하였다. 반응혼액을 실온에서 격렬하게 2시간 동안 교반하고, 디클로로메탄 (300 ml)과 증류수 (300ml)로 2회 분액하였다.
유기층을 모아 황산나트륨으로 탈수하고 여과한 후 여액을 감압농축하였다.
농축액을 실리카겔 컬럼분리(ethyl acetate : n-hexane = 3:1)하여 순수한 생성물 3-페닐-프로-2-펜-1-올(3-phenyl-pro-2-pen-1-ol, D011c, 3.1g, yield= 93.9%, Rf = 0.37 (2:1 n-hexane-ethyl acetate))을 얻었으며 상기 화합물을 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅲ) : N2 가스가 충전된 100ml 라운드 플라스크에 3-페닐-프로-2-펜-1-올(D011c, 1 g, 7.45 mmol, 1 eq)을 넣고 무수 디클로로메탄으로 용해시킨 후, 트리메틸아민 (Et3N, 1.04 ml, 7.45 mmol, 1 eq), 4-디메틸아미노피리딘(4-dimethylaminopyridine, 4-DMAP, 92 mg, 0.75 mmol, 0.1 eq), 디-털트-부틸-디카보네이트(di-tert-butyl-dicarbonate, Boc2O, 2.57 ml, 11.18 mmol, 1.5 eq)를 순차적으로 첨가한 후 반응액을 실온에서 2시간 동안 교반하였다.
반응혼액을 농축한 후, 실리카겔 컬럼 분리(ethyl acetate : n-hexane = 1 : 30)를 수행하여 순수한 생성물 털트-부틸 신나밀 카보네이트(tert-butyl cinnamyl carbonate, D011d, 1.30 g, yield= 74.7%, Rf = 0.32 (20:1 n-hexane-ethyl acetate))을 얻었으며 상기 화합물을 다음 단계에 적용하였다.
단계(Ⅳ) : 100ml 라운드 플라스크에 털트-부틸 신나밀 카보네이트 (D011d, 1.43 g, 6.09 mmol, 1.5 eq), (S)-(+)-데쿠시놀(decursinol) (SLC-B001, 1 g, 4.06 mmol, 1 eq)를 넣고 진공 상태에서 1시간 동안 건조하였다.
건조된 혼합물을 N2 가스 하에서 무수 테트라하이드로퓨란(tetrahydrofuran)으로 용해시키고, N2 가스를 이용하여 용해액을 1시간 동안 버블링(bubbling)한 후, 반응혼액에 테트라키스(트리페닐포스핀)팔라디움 (Pd(PPh3)4, 188 mg, 0.162 mmol, 0.04 eq)을 투입한 후, 하룻밤 동안 환류시켰다. 혼합액을 감압조건하에서 농축시킨 후, 실리카겔 컬럼 분리(ethyl acetate : n-hexane = gradient elution to 1:4 from 1:8)하여 화합물 (7S)-(+)-8,8-디메틸-7-(3-페닐-알릴옥시)-7,8-디하이드로-6H-피라노[3,2-g]크로멘-2-온 {(7S)-(+)-8,8-Dimethyl-7-(3-phenyl-allyloxy)-7,8-dihydro-6H-pyrano [3,2-g]chromen-2-one (SLC-D011)} 1.20g (81.3%)을 얻었다.
수율 81.3%, 흰색 고체, mp: 143℃, Rf = 0.39 (2:1 n-hexane-ethyl acetate); [α]25
D + 117.6 (c=1, CHCl3); 1H NMR(400MHz, CDCl3): δH
7.56(1H, d, J= 9.6Hz, H-4), 7.38-7.23(5H, m, H-5’, H-6’, H-7’, H-8’, H-9’), 7.15(1H, s, H-5), 6.76(1H, s, H-10), 6.59(1H, d, J= 16.0Hz, H-3’), 6.30-6.23(1H, m, H-2’), 6.20(1H, d, J= 9.6Hz, H-3), 4.34(1H, dd, J= 6.0, 12.8Hz, H-1a’), 4.21(1H, dd, J= 6.0, 12.4Hz, H-1b’), 3.59(1H, dd, J= 5.2, 7.6Hz, H-7), 3.07(1H, dd, J= 4.8, 16.0Hz, H-6a), 2.85(1H, dd, J= 7.2, 16.4Hz, H-6b), 1.41(3H, s CH3-8), 1.36(3H, s, CH3-8); 13C NMR (100 MHz, acetone-d6) δC 161.2(C-2), 157.8(C-9a), 155.3(C-10a), 144.5(C-4), 137.9(C-4’), 132.9(C-3'), 130.4(C-5), 129.6(C-6’, C-8'), 128.6(C-7’), 127.5(C-2’), 127.4(C-5',C-9’), 118.3(C-5a), 113.7(C-3), 113.6(C-4a), 104.5(C-10), 78.8(C-7), 76.4(C-8), 70.8(C-1’), 27.8(C-6), 26.1(CH3-8), 22.2(CH3-8); ESI-MS: m/z=363 [M+H]+ . Anal. Calc. for C23H22O4: C, 76.22; H, 6.12; Found: C, 76.20; H, 6.10.
<실시예 2> 라민 A(LMN A)-프로게린 결합 억제제로서 SLC-D011의 효과 확인
1. 동물실험
동물실험은 부산국립대학교에서 승인받은 동물 정책에 따라, 인증 평가 협회 및 실험실 동물 관리 인증 기관에서 수행되었다.
Carlos Lopez-Otin (Universidad de Oviedo, Asturias, Oviedo, Spain)에서 제공받은 이형접합 Lmna+/
G609G의 적절한 교배를 통하여 LmnaG609G
/609G 생쥐를 발생시켰다.
DMOS 및 PBS와 혼합한 SLC-D011 20 mg/kg을 5주령 생쥐에 일주일에 두 번 복강내 주사하였다. 또한, 올레인 기반의 용액에 10mg/ml 농도로 용해시킨 SLC-D011를 일주일에 5번 생쥐에 경구투여하였으며, 대조군 생쥐는 상기와 동일한 조건으로 올레인 기반 용액만 투여하였다.
LmnaG609G
/609G 생쥐는 5주령부터 투여를 시작하였으며, 수명 내내 신선한 화합물 용액을 처리하였다. Lmna+/G609G 생쥐는 32주령부터 복강내 처리를 시작하였다.
2. 세포 배양 및 시약
HGPS 환자(AG03198, 10-year-old female; AG03199; 10-year-old female), WS patients (AG06300, 37-year-old male; AG03141, 30-year-old female; AG00780, 60-year-old male) 및 대조군(GM 00038, 9-year-old female)의 사람 섬유아 세포를 Coriell Cell Repositories (Camden, New Jersey, USA)로부터 얻었으며, 15% FBS, 2 mM 글루타민이 포함된 EMEM 배지 또는 항생제 없이 26 mM HEPES가 포함된 HEMEM에서 유지시켰다.
HEK293 세포 주는 ATCC에서 얻었으며, 10% FBS 및 1% 항생제가 포함된 DMEM 액체 배지를 이용하여 37℃에서 유지되었다.
3. 항체 및 시약
GFP (Full name; 1:1000; sc-9996; Santa Cruz Biotechnology); 글루타티온 S-전이효소(Glutathione S-transferase; GST; 1:5000; sc-138; Santa Cruz Biotechnology); 액틴 (Actin; 1:10000; sc-47778; Santa Cruz Biotechnology); 라민 A/C (Lamin A/C; 1:10000; sc-376248; Santa Cruz Biotechnology); 프로게린 (Progerin; 1:300; sc-81611; Santa Cruz Biotechnology); 프로게린 (1:300; ab66587; Abcam); H3K9me3 (1;2000; Ab8898; Abcam)와 같은 항체를 실험에 사용하였다.
4. 재조합 단백질
재조합 단백질을 생산하기 위해, PCR을 통하여 종결 코돈의 업스트림으로부터 100 AA의 클로닝하여 재조합 라민 A C-말단 영역(Lamin A-C) 및 프로게린 C-말단 영역(Progerin C)을 생산하였다.
WRN-R1 영역(hWRN 424-450) 및 WRN-R2 영역(hWRN 424-476)을 유사한 방법으로 생산하였다. 각 단편을 GSH-아가로스에 로딩한 후, 광범위하게 세척하고 20 mM 환원된 글루타티온이 함유된 버퍼를 이용하여 용출시켰다.
용출된 단편을 음이온 교환 크로마토그래피(HitrapQ)를 이용하여 추가 정제하여 하기와 같은 WRN-R1 및 WRN-R2 아미노산 서열을 얻었다.
WRN-R1: HLSPNDNENDTSYVIESDEDELEMEMLK
WRN-R2: HLSPNDNENDTSYVIESDEDELEMEMLK HLSPNDNENDTSYVIESDEDELEMEMLK
5. 웨스턴 블롯 분석
RIPA를 이용하여 전체 세포 용해물을 준비하였다.
15 ㎍ 세포 추출물을 SDS-PAGE에서 분리시키고 PVDF 막 위로 옮겼다.
막을 1차 항체와 함께 1시간 내지 하룻밤 동안 4℃에서 인큐베이션한 후 이차 항체를 이용하여 실온에서 1시간 동안 반응시켰다.
ECL 키트(Intron, Seoul, Korea)를 사용하여 제조사의 설명서에 따라, 화학 발광으로 페록시다아제 활성을 확인하였다.
6. 단백질-단백질 상호작용 분석
단백질-단백질 상호작용을 분석하기 위해, 글루타티온 S-전이효소(Glutathione S-transferase; GST) 면역 침강(pull-down) 분석을 수행하였다.
상호작용을 검출하기 위해, GST-기반 융합 라민 A-C-말단 영역, 프로게린-C-말단 영역, WRN-R1 영역 또는 WRN-R2 영역을 GFP 태그된 프로게린(GFP-Progerin) 및 라민 A(GFP-Lamin A)가 형질주입된 HEK293 세포 용해물과 실온에서 30분간 인큐베이션하였다.
그 후, PBS로 1회 세척하고, 침전된 물질을 수집하여 SDS-PAGE에서 분리시킨 후 항-GFP 및 GST로 웨스턴 블롯을 수행하였다.
프로게린과 라민 A 결합에 대한 WRN-R1 및 R2의 경쟁반응을 확인하기 위해, WRN-R1 또는 R2 재조합 단백질이 존재하거나 존재하지 않는 조건에서 GST-프로게린이 결합된 비드를 GFP-라민 A가 과발현된 293 용해물과 인큐베이션하였다.
7. 면역형광 염색 및 노화 특이적 산성의 β-갈락토시다아제 활성 염색
세포를 커버 글라스 위에 접종하고 적절한 벡터를 형질주입하였다.
100% 메탄올 또는 1% 파라포름알데하이드(PFA)를 이용하여 4℃에서 1시간 동안 고정시킨 후 세포를 블로킹 버퍼(PBS+anti-human-Ab; 1:400)로 인큐베이트하였다.
PBS로 두 번 세척한 후, 항-라민 A/C, 프로게린 또는 H3K9Me3를 블로킹 버퍼에 1:200으로 희석하여 세포와 하룻밤 동안 인큐베이트하고 연속하여 항-고트 Ab-FITC 또는 항-래빗 Ab-로다민(rhodamin)이 포함된 블로킹 버퍼(1:500)를 7시간 동안 인큐베이션하였으며, 핵은 DAPI로 염색하였다. 그 후 fluorescence microscopy (Zeiss and Logos)를 이용하여 면역 형광 신호를 검출하였다.
노화 특이적 산성-β-갈락토시다아제 활성 염색을 위해, 세포를 PBS (pH 7.2)로 한 번 세척하고 0.5% 글루타르알데하이드가 포함된 PBS로 고정하였다.
그 후 PBS로 세척하고 37℃에서 세포를 X-gal 용액으로 하룻밤 동안 염색하였다.
8. 플라즈마 형질주입 및 단백질 운반
GFP-프로게린 및 GFP-융합 라민 A 발현 벡터를 T. Misteli (National Cancer Institute [NCI], Bethesda, Maryland, USA)에게서 제공받았으며, Myc-사람 WRN 벡터 및 Myc-마우스 WRN 벡터는 Addgene에서 구입하였다.
jetPEI (Polyplus Transfection) 및 PULSin (Polyplus Transfection, New York, USA)를 이용하여 제조사의 설명서에 따라, 형질주입을 수행하였다.
WRN-R1 및 R2 단백질을 HGPS 세포 내로 전달하기 위해, 제조사의 설명서에 따라 PULSin (Polyplus Transfection, New York, USA)를 사용하였다.
20 mM Hepes 200 ㎕으로 재조합 단백질(2 ㎍)를 희석한 후 PULSin 시약(8 ㎕)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 15분간 인큐베이트한 후 세포를 첨가하였다. 3시간 후 무혈청 배지를 10% FBS가 포함된 배지로 교체하고 4시간 인큐베이션하였다. 그 후 배지가 포함된 혼합물을 웰에서 제거하고 혈청이 포함된 신선한 배지를 채웠다.
9. 세포 계수
기형의 핵을 가진 세포를 계수하기 위해, 획득된 면역 형광 이미지를 사용하였다. 라민 A 염색 의존적으로 기형으로 보이는 핵막을 무작위로 선택된 구역에서 계수하고 계수된 세포를 백분율로 나타내었다.
세포 증식을 측정하기 위해, DAPI 염색된 세포를 면역 형광 이미지에서 계수하였다.
10. 화합물 약동학(pharmacokinetic; PK) 분석 및 in vitro ADME 확인
약동학(PK) 분석을 위해 JH4 5mg/kg을 용해시킨 10% DMSO, 5% Tween 90 및 95% 생리식염수 용액을 복강내 주사하였으며, JH4 10mg/kg을 용해시킨 10% NMP 및 90% PEG400 용액을 경구 투여하였다. 정해진 시간마다 JH4의 혈액 농도를 LC-MS/MS로 분석하였으며, 다른 화합물들 역시 동일한 과정으로 PK 분석하였다.
In vitro ADME 연구(플라즈마 단백질 결합, CYP 억제, 마이크로솜(microsomal) 안정성, 플라즈마 안정성 및 hERG 억제)는 표준 방법으로 신규 약물 개발 센터에서 수행되었다.
11. 프로게린-라민 A 결합 억제제로서의 SLC-D011 효과 확인
허친슨 길포드 증후군은 잘 알려진 프로게린 증후군으로 매우 드문 유전질환이다. 유전적 원인으로는 라민 A 내 한점 돌연변이가 발생하여 비정상적인 공여부 접합이 나타나고 이에 따라, C-말단 50 아미노산이 내부에서 삭제된 프로게린을 생성하게 된다.
이전 보고에서 본 발명의 발명자들은 HGPS 세포의 핵 기형은 라민 A와 프로게린 사이의 매우 강력한 결합에 의한 것임을 확인하였으며, 라민 A 결합으로부터 프로게린 억제제(JH4)는 HGPS 세포의 핵 변형을 개선시켰으며, p16/INK4A, DNA-PK, 및 H3K9me3 발현과 같은 노화 관련 마커를 회복시켰다. 또한, 복강내주사(i.p)를 통한 JH4 처리는 프로게린 모델 마우스의 수명을 약 4주간 연장시켰다.
그러나 환자의 조건을 고려할 때 HGPS 환자는 매우 얇은 혈관벽을 가져 정맥 내 주사는 적절한 전달방법이 아니므로 JH4의 경구 투여 가능성을 확인하였다.
그 결과, 도 1A, 표 1 및 표 2와 같이 정맥 내 주사 및 경구투여된 JH4는 생체 내에서 매우 짧은 반감기를 나타내었으며, 이에 따라 생체 내 이용가능성(B.A)을 확인할 수 없었다.
이에 따라, 생체 내에서 안정적인 화합물을 얻기 위해 JH4로부터 다양하게 화합물을 변형시키고, GST-면역 침강 분석(pull down assay) 및 프로게린 발현 분석을 수행하여 다른 41가지 종류의 JH4 유도체를 확인한 결과, 도 1C와 같이 JH010 및 SLC-D011 화합물이 JH4와 유사한 활성을 나타내었으며, 도 1D와 같이 프로게린 발현을 억제시키는 효과를 나타내는 것으로 확인되었다.
또한, 도 1E 및 1F를 참고하면, JH010 및 SLC-D011 화합물이 H3K9me3 발현을 유도하였으며, HGPS 세포의 핵 기형을 개선시켰다.
PK 분석 결과에서도 도 2A와 같이 JH010 및 SLC-D011(progerinin)은 생체 내 이용가능성(B.A)을 각각 70% 및 66% 개선시켰다.
그러나 in vitro ADME 분석 결과에서 JH010 화합물에서 hERG 이온 채널 억제가 확인됨에 따라, SLC-D011가 hERG 이온 채널에 미치는 영향을 확인한 결과, 도 2b와 같이 JH010와 비교하여 SLC-D011에서는 심각한 hERG 억제가 나타나지 않았으며, 표 3 내지 표 6과 같이 SLC-D011 화합물은 양호한 플라즈마 안정성과 CYP 억제의 적당한 범위를 나타내는 것이 확인되었다.
상기 결과와 같이 안정성이 확인된 SLC-D011의 생체 내 효과를 확인하기 위해, i.p 주사한 결과, 도 2C와 같이 LamnG609G
/
G609G 마우스의 수명이 20주까지 연장되었으며, 도 2D와 같이 SLC-D011 처리에 의해 몸 크기 증가 및 전체 형태(Gross morphology) 역시 개선되었다.
특히 흥미로운 것은 Lamnwt
/
G609G 모델에서 SLC-D011 처리에 의해 45에서 64주까지 마우스의 수명이 연장된 것으로, 도 2E를 참고하면 약 10주 수명을 연장시켰던 JH4와 비교하여 매우 향상된 결과이다. 또한, 도 2F와 같이 SLC-D011가 처리된 마우스의 털 상태 및 몸 사이즈와 같은 형태가 매우 개선된 것을 확인할 수 있었다.
상기 결과로부터 SLC-D011는 HGPS에 대한 매우 우수한 후보로 제안될 수 있다.
12. SLC-D011 경구투여 효과 확인
JH4뿐만 아니라 SLC-D011은 매우 낮은 수용성이 나타났으며, 이러한 낮은 수용성은 경구 투여를 통한 화합물 전달에 문제가 되기 때문에 SLC-D011 용해율을 높일 수 있는 적합한 용액을 스크리닝하였다.
그 결과, 도 3A와 같이 올레인(monoolein) 기반의 용액이 SLC-D011을 용해시키는 데 유용한 것을 확인할 수 있었으며, 용액 내 SLC-D011은 도 3B와 같이 가열 및 초음파 처리에도 분해되지 않고 안정한 것을 확인할 수 있었다.
또한, 올레인 기반의 용액은 독성 없이 장내 흡수를 증가시킬 수 있으므로 SLC-D011 운반체로 매우 적합하다.
올레인 기반의 용액에 용해시켜 경구투여용 제형으로 제조된 SLC-D011를 LamnG609G/G609G 마우스에 경구투여하여 생체 내 효과를 확인한 결과, 도 3C 및 도 3D와 같이 LamnG609G
/
G609G 마우스의 수명이 4.5 주까지 연장되었으며, 몸무게 증가가 확인되었다.
상기 결과로부터 올레인 기반의 SLC-D011 용액이 HGPS 치료에 매우 유용한 것으로 확인되었다.
<실시예 3> 베르너 증후군 치료제로서의 SLC-D011 효과 확인
노화에 의해 프로게린 발현이 증가하기 때문에 다른 조로증 질환인 베르너 증후군(WS)과 정상 노화 모델에서도 SLC-D011의 효과를 확인하였다.
먼저, 베르너 유전자(WRN)의 부족과 프로게리아 사이의 관련성을 확인하였다. 이전 보고에 따르면, WRN 발현이 억제된 생쥐의 몸무게 및 수명은 야생형 생쥐와 분명한 차이가 확인되지 않았으며, 본 발명에서도 역시 mWRN-/- 생쥐의 수명 및 몸 무게가 Lamnwt/G609G 생쥐와 차이를 나타내지 않는 것을 확인할 수 있었다.
또한, 마우스와 사람 WRN의 아미노산 서열을 비교한 결과, 사람 WRN에서 특이적으로 반복되는 서열(WRN-R2)을 확인되었으며, 실제로 hWRN의 중복은 반복된 cDNA로 인해 발생하였다.
hWRN와 프로게린의 관련성을 조사하기 위해, HGPS 세포 내로 사람 및 마우스 WRN를 형질주입하고 핵 형태 및 H3K9me3 발현을 확인하였다.
그 결과, 흥미롭게도 도 4A와 같이 오직 hWRN에서 핵 변형이 개선되었으며, H3K9me3 발현이 유도되었다. 또한, 단일 및 이중 반복된 아미노산으로 재조합 펩타이드를 만들고 프로게린과의 상호작용을 확인하였다.
WRN-R1과 비교한 결과, 도 4B와 같이 이중 펩타이드는 프로게린과 강하게 결합하는 것을 확인할 수 있었으며, 도 4C와 같이 WRN-R2은 프로게린과 라민 A의 상호작용을 차단하는 것이 확인되었다.
상기 결과로부터 WRN-R2가 천연 프로게린 억제제인 것이 확인됨에 따라, 재조합 WRN-R2를 HGPS 세포와 WS 세포에 처리한 결과, 도 4D와 같이 HGPS 세포 내로 재조합 WRN-R2가 운반된 세포에서는 핵 형태가 정상화되었으며, H3K9me3 발현이 향상된 것을 확인할 수 있었다.
그러나 프로게린이 제거된 WS 세포에서도 상기와 같은 효과가 나타나는 것이 확인됨에 따라, SLC-D011이 WS 세포 치료에 적합한 치료제로 사용될 수 있는지를 확인하기 위해, WS 세포에 SLC-D011을 처리한 후 핵 형태 및 세포 증식을 확인하였다.
그 결과, 도 4F와 같이 SLC-D011은 WS 환자의 세포에서 HGPS와 유사하게 핵 형태 및 세포 증식을 개선시켰으며, 4G와 같이 H3K9me3의 발현을 유도하였다.
상기 결과로부터 SLC-D011은 성인조로증인 베르너 증후군 치료에도 사용될 수 있음이 확인되었다.
<실시예 4> SLC-D011 화합물의 피부노화 개선 효과 확인
앞선 실험에서 SLC-D011 화합물이 노화관련 질환에 치료효과를 나타내는 것으로 확인됨에 따라, 사람 피부 케라틴세포인 HaCaT 세포 및 섬유아세포에서 화합물의 영향을 확인하였다.
사람 피부 케라틴세포인 HaCaT 세포와 정상 섬유아세포 9N (GM 00038, 9-year-old female) 및 N46 (AG13299, 46-year-old male)에 2 또는 5 μM SLC-D011를 처리하여 24시간 인큐베이션한 후 HaCaT 세포 및 섬유아세포에서 콜라겐 1A 발현량을 확인하였다.
그 결과, 도 5A 및 도 5B와 같이 SLC-D011은 사람 섬유아세포 및 케라틴 세포에서 콜라겐 발현을 증가시키는 효과를 나타내는 것을 확인할 수 있었다.
상기 결과들로부터 SLC-D011 화합물은 프로게린-라민 A 결합 억제제로 적합한 것으로 확인되었으며, 상기 SLC-D011 화합물은 경구 투여용으로 제공될 수 있어 효과적인 조로증 치료제 또는 주름 개선용 조성물로 사용될 수 있다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.