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WO2017222034A1 - 改変フィブロイン - Google Patents

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WO2017222034A1
WO2017222034A1 PCT/JP2017/023116 JP2017023116W WO2017222034A1 WO 2017222034 A1 WO2017222034 A1 WO 2017222034A1 JP 2017023116 W JP2017023116 W JP 2017023116W WO 2017222034 A1 WO2017222034 A1 WO 2017222034A1
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WO
WIPO (PCT)
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amino acid
acid sequence
sequence
genus
seq
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2017/023116
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English (en)
French (fr)
Inventor
森田　啓介
浩一 小鷹
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kojima Industries Corp
Spiber Inc
Original Assignee
Kojima Industries Corp
Spiber Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
Application filed by Kojima Industries Corp, Spiber Inc filed Critical Kojima Industries Corp
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Priority to US16/312,357 priority patent/US20190233481A1/en
Priority to CA3028932A priority patent/CA3028932A1/en
Priority to CN201780038444.6A priority patent/CN109661404A/zh
Priority to AU2017282506A priority patent/AU2017282506A1/en
Priority to JP2018524172A priority patent/JP7133810B2/ja
Priority to BR112018076737-9A priority patent/BR112018076737A2/pt
Priority to RU2019101640A priority patent/RU2019101640A/ru
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
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    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C07K2319/20—Fusion polypeptide containing a tag with affinity for a non-protein ligand
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    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C07K2319/20—Fusion polypeptide containing a tag with affinity for a non-protein ligand
    • C07K2319/21—Fusion polypeptide containing a tag with affinity for a non-protein ligand containing a His-tag

Definitions

  • the present invention relates to a modified fibroin. More specifically, the present invention relates to a modified fibroin having an amino acid sequence having a large hydrophobicity index locally.
  • the invention also relates to a nucleic acid encoding a modified fibroin, an expression vector comprising the nucleic acid sequence, a host transformed with the expression vector, and a product made from the modified fibroin.
  • Fibroin is a kind of fibrous protein and contains up to 90% glycine, alanine and serine residues that lead to the formation of ⁇ -pleated sheets (Non-patent Document 1).
  • proteins salk protein, hornet silk protein, spider silk protein
  • the like that constitute a thread produced by insects and spiders are known.
  • Silk protein is a material that has excellent mechanical characteristics, moisture absorption characteristics and deodorization characteristics and is widely used as a raw material for clothes.
  • Silk thread is an immunologically tolerant natural fiber and has high biocompatibility, so it is also used for surgical sutures and the like.
  • Spider silk protein is a large toughened spider protein (MaSp) having a high toughness, a small toroidal spider protein (minor ampule spider protein, MiSp), and a whip according to the source organ.
  • MoSp large toughened spider protein
  • MiSp small toroidal spider protein
  • Flagellform (Flag) tubular, aggregate, aggregate, aciform and piriform spider silk proteins are named.
  • structural research has been concentrated on large bottle-shaped spider proteins having high toughness by having excellent strength and elongation (Patent Documents 1 and 2).
  • Non-Patent Document 2 As one of the structures specific to fibroin, there is known a structure in which an amino acid motif classified as GPGXX, an extension region rich in alanine residues ((A) n or (GA) n ), GGX, and a spacer is known.
  • the (GA) n motif is replaced with the (A) n motif, the elongation decreases, but the tensile strength increases, the elongation increases by increasing the number of GPGXX motifs, the number of GPGXX motifs It has been reported that the tensile strength is increased by substituting (A) n motif (Patent Document 2).
  • GGX and GPGXX motifs are considered to have a flexible helical structure that gives elasticity to the yarn (Patent Document 3).
  • Recombinant spider silk protein and recombinant silk protein are produced in several heterologous protein production systems.
  • transgenic goats, transgenic silkworms, or recombinant plants or mammalian cells are used (Non-patent Document 3).
  • these production systems are slow in production speed and are not suitable for mass production commensurate with the commercial level (Patent Documents 4 and 5).
  • Many productions of recombinant fibroin by organisms such as yeast, mold, gram-negative bacteria, gram-positive bacteria, etc. have been reported as mass production systems, and certain results have been obtained, but excellent elongation and tensile strength. It has not yet been possible to industrially mass-produce recombinant fibroin (Patent Document 5).
  • Patent Document 6 discloses a film using a spider silk protein.
  • Patent Document 7 discloses polypeptide particles derived from spider silk proteins.
  • Fibroin is attracting attention as a new material in various industrial fields such as medicine, aviation, and clothing due to its excellent characteristics. Fibroin can also be applied to molded articles such as films that have heretofore been mainly formed from petroleum-derived materials, and has attracted attention as an alternative material (bioplastic). However, in order to achieve a production amount commensurate with the commercial level, it is necessary to further improve the fibroin productivity.
  • the present invention aims to provide a modified fibroin with improved bending strength and improved productivity when formed into a molded body.
  • productivity can be improved by locally changing to fibroin having an amino acid sequence having a large hydrophobicity index. It was found that the produced molded body was improved in bending strength.
  • the present invention is based on this novel finding.
  • Formula 1 [(A) n motif-REP] A modified fibroin comprising a domain sequence represented by m , The domain sequence has one or more amino acid residues in REP substituted with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more hydrophobicity in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • [2] The modified fibroin according to [1], wherein the region having a large local hydrophobicity index is composed of continuous 2 to 4 amino acid residues.
  • the amino acid residue having a large hydrophobicity index is selected from isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M) and alanine (A).
  • the modified fibroin according to [1] or [2].
  • the total number of amino acid residues contained in the region having a value of 2.6 or more is x, and the sequence from the (A) n motif located at the most C-terminal side to the C-terminus of the domain sequence is excluded from the domain sequence.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues
  • (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • [5] Compared to naturally occurring fibroin, one or more amino acid residues in REP are replaced with amino acid residues having a large hydrophobicity index, and / or amino acids having one or more hydrophobicity index in REP [1] to [4] having an amino acid sequence corresponding to substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues in addition to corresponding to insertion of residues The modified fibroin according to any one of the above.
  • a modification comprising an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5, or an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5. Fibroin.
  • the tag sequence comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6.
  • Modification comprising an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11, or an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11 Fibroin.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the prokaryote is a microorganism belonging to a genus selected from the group consisting of Escherichia, Brevibacillus, Serratia, Bacillus, Microbacterium, Brevibacterium, Corynebacterium and Pseudomonas, 18].
  • the host according to [17] which is a eukaryote.
  • the host according to [20], wherein the eukaryote is a yeast, a filamentous fungus or an insect cell.
  • the yeast is a yeast belonging to a genus selected from the group consisting of Saccharomyces, Schizosaccharomyces, Kriveromyces, Trichosporon, Sivaniomyces, Pichia, Candida, Yarrowia and Hansenula [21] A host according to 1.
  • the yeast belonging to the genus Saccharomyces is Saccharomyces cerevisiae, the yeast belonging to the genus Schizosaccharomyces is Schizosaccharomyces pombe, and Lactis (Kluyveromyces lactis), the yeast belonging to the genus Trichosporon is Trichosporon pullulans, the yeast belonging to the genus Siwaniomyces is the genus Siwaniomyces albius (Schwaniomyces albus), Pichia Pastoris (Pichi) pastoris), the yeast belonging to the genus Candida is Candida albicans, the yeast belonging to the genus Yarrowia is Yarrowia lipolytica, and the yeast belonging to the genus Hansenula is, [22] The host according to [22], which is Hansenula polymorpha.
  • the filamentous fungus is a filamentous fungus belonging to a genus selected from the group consisting of the genus Aspergillus, Penicillium and Mucor.
  • the filamentous fungus belonging to the genus Aspergillus is Aspergillus oryzae
  • the filamentous fungus belonging to the genus Penicillium is Penicillium chrysogenum
  • the filamentous fungus belonging to the genus Mucoa is Mucor fragilis.
  • the host [26] The host according to [21], wherein the insect cell is a lepidopteran insect cell.
  • the modified fibroin according to the present invention is a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • an amino acid sequence (N-terminal sequence and C-terminal sequence) may be further added to either one or both of the N-terminal side and the C-terminal side of the domain sequence.
  • the N-terminal sequence and the C-terminal sequence are not limited to these, but are typically regions having no amino acid motif repeat characteristic of fibroin and consisting of about 100 amino acids.
  • modified fibroin means a fibroin whose domain sequence is different from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin.
  • Natural fibroin as used herein is also a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the amino acid sequence is relied on natural fibroin (for example, the gene sequence of cloned natural fibroin is modified). Modified by amino acid sequence) or artificially designed and synthesized without relying on natural fibroin (for example, desired by chemically synthesizing a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence). Having the amino acid sequence of
  • domain sequence refers to a fibroin-specific crystal region (typically corresponding to the (A) n motif in the amino acid sequence) and an amorphous region (typically in the REP of the amino acid sequence). Is equivalent to the amino acid sequence represented by the formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the n motif may be 83% or more of the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in (A) n motif, but is preferably 86% or more, and preferably 90% or more. More preferably, it is more preferably 95% or more, and even more preferably 100% (meaning that it is composed only of alanine residues). It is preferable that at least seven of the (A) n motifs present in the domain sequence are composed of only alanine residues.
  • (A) n motif is (A) n (A represents an alanine residue, n represents an integer of 4 to 20, preferably an integer of 4 to 16). It has the amino acid sequence represented by these.
  • the amino acid sequence of REP preferably includes at least one motif selected from GGX and GPGXX (where X represents an amino acid residue other than a glycine residue).
  • the modified fibroin has a domain sequence in which one or more amino acid residues in REP are replaced with amino acid residues having a large hydrophobicity index as compared to naturally occurring fibroin, and / or Alternatively, it may have an amino acid sequence including a region having a large hydrophobicity index, which corresponds to the insertion of one or more amino acid residues having a large hydrophobicity index in REP.
  • a region having a large hydrophobicity index is composed of continuous 2 to 4 amino acid residues.
  • the amino acid residues having a large hydrophobicity index described above are isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M). And an amino acid residue selected from alanine (A).
  • I isoleucine
  • V valine
  • L leucine
  • F phenylalanine
  • C cysteine
  • M methionine
  • A amino acid residue selected from alanine
  • the modified fibroin according to the present embodiment has one or more amino acid residues in REP substituted with amino acid residues having a large hydrophobicity index and / or 1 in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • one or more amino acid residues are substituted, deleted, inserted and / or compared with naturally occurring fibroin.
  • the modified fibroin according to the present embodiment for example, hydrophobicizes one or more hydrophilic amino acid residues (for example, amino acid residues having a negative hydrophobicity index) in REP from the gene sequence of naturally-derived fibroin that has been cloned. It can be obtained by substituting amino acid residues (for example, amino acid residues having a positive hydrophobicity index) and / or inserting one or more hydrophobic amino acid residues in REP.
  • hydrophilic amino acid residues for example, amino acid residues having a negative hydrophobicity index
  • one or more hydrophilic amino acid residues in REP are substituted with hydrophobic amino acid residues from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin, and / or one or more hydrophobic amino acid residues in REP It can also be obtained by designing an amino acid sequence corresponding to insertion of, and chemically synthesizing a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence.
  • one or more hydrophilic amino acid residues in REP have been replaced with hydrophobic amino acid residues from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin and / or one or more hydrophobic amino acids in REP
  • the amino acid sequence corresponding to the substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues may be further modified.
  • Substitution, deletion, insertion and / or addition of amino acid residues can be carried out by methods well known to those skilled in the art such as partial-directed mutagenesis. Specifically, Nucleic Acid Res. 10, 6487 (1982), Methods in Enzymology, 100, 448 (1983), and the like.
  • Naturally-derived fibroin is a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and specific examples include fibroin produced by insects or spiders.
  • fibroin produced by insects include, for example, Bombyx mori, Kwako (Bombyx mandaraina), Tengea (Antheraea yamanai), ⁇ ⁇ (Antereaperanii), ⁇ ⁇ (Eriothyraminey) ), Silkworms (Samia cythia), chestnut worms (Caligula japonica), Chussa moth (Anthereaea mylitta), silkworms produced by silkworms such as Antheraea assamata, vespasam worms Examples include silk proteins.
  • fibroin produced by insects include silkworm fibroin L chain (GenBank accession number M76430 (base sequence), AAA27840.1 (amino acid sequence)).
  • Fibroin produced by spiders includes, for example, spiders belonging to the genus spider (Araneus spp.) Such as the spider spider, the spider spider, the red spider spider, and the bean spider, the genus spiders of the genus Araneus, the spider spider spider, the spider spider genus e Spiders, spiders such as spiders, spiders belonging to the genus Spider, spiders belonging to the genus Pronos, spiders belonging to the genus Trinofunda, such as Torinofundamas (genus Cyrtarachne) Spiders belonging to the genus (Gasteracantha), spiders belonging to the genus Spider (Ordgarius genus), such as the spiders, the spiders, and the spiders belonging to the genus Ordgarius Spiders belonging to the genus Argiope, such as the genus Argiope, spiders belonging to the genus Arachnura, such as the white-tailed spider, spiders belonging to the
  • Spiders belonging to the genus Azumigumi (Menosira), spiders belonging to the genus Dyschiriognatha (genus Dyschiriognatha) such as the common spider spider, the black spider spider, the genus Spider genus belonging to the genus Spider belonging to the genus (L) and the genus Spider belonging to the genus (L) Produced by spiders belonging to the family Tetragnathidae such as spiders belonging to the genus Prostenops
  • Examples include spider silk protein.
  • the spider silk protein include dragline proteins such as MaSp (MaSp1 and MaSp2) and ADF (ADF3 and ADF4), MiSp (MiSp1 and MiSp2), and the like.
  • fibroin produced by spiders include, for example, fibroin-3 (adf-3) [derived from Araneus diadematus] (GenBank accession numbers AAC47010 (amino acid sequence), U47855 (base sequence)), fibroin- 4 (adf-4) [derived from Araneus diadematus] (GenBank accession number AAC47011 (amino acid sequence), U47856 (base sequence)), dragline silk protein spidolin 1 [derived from Nephila clavipes (GenBank accession number AAC4, amino acid sequence A04) U37520 (base sequence)), major angul11ate spidroin 1 [La rodectus hesperus origin] (GenBank accession number ABR68856 (amino acid sequence), EF595246 (base sequence)), dragline silk protein spidroin 2 [Nephila clavata origin] (GenBank accession number AAL32447, amino acid sequence 45, amino acid sequence) major
  • Naturally derived fibroin include fibroin whose sequence information is registered in NCBI GenBank.
  • sequence information is registered in NCBI GenBank.
  • spidin, sample, fibroin, “silk and polypeptide”, or “silk and protein” is described as a keyword in DEFINITION from sequences including INV as DIVISION among the sequence information registered in NCBI GenBank. It can be confirmed by extracting a character string of a specific product from the sequence, CDS, and a sequence in which the specific character string is described from SOURCE to TISSUE TYPE.
  • the modified fibroin according to another embodiment includes a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and is located on the most C-terminal side (A) from the n motif to C of the domain sequence.
  • the total number of amino acid residues contained in the region where the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2.6 or more in all REPs contained in the sequence obtained by removing the sequence up to the terminal from the domain sequence.
  • x where (A) the sequence from the n motif to the C terminus of the domain sequence located on the most C-terminal side is x / It has an amino acid sequence in which y is 6.2% or more.
  • hydrophobicity index of amino acid residues As for the hydrophobicity index of amino acid residues, a known index (Hydropathy index: Kyte J, & Doolittle R (1982) “A simple method for displaying the hydropathic character of bio.p. 7”. 105-132). Specifically, the hydrophobicity index (hydropathic index, hereinafter also referred to as “HI”) of each amino acid is as shown in Table 1 below.
  • sequence A obtained by removing the sequence from the domain sequence to the C-terminal side of the domain sequence (A) n motif to the C-terminus of the domain sequence is used.
  • sequence A obtained by removing the sequence from the domain sequence to the C-terminal side of the domain sequence (A) n motif to the C-terminus of the domain sequence is used.
  • sequence A obtained by removing the sequence from the domain sequence to the C-terminal side of the domain sequence (A) n motif to the C-terminus of the domain sequence is used.
  • sequence A obtained by removing the sequence from the domain sequence to the C-terminal side of the domain sequence (A) n motif to the C-terminus of the domain sequence is used.
  • REPs included in the sequence A the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is calculated.
  • the average value of the hydrophobicity index is obtained by dividing the total HI of each amino acid residue contained in the four consecutive amino acid residues by 4 (number of amino acid residues).
  • the average value of the hydrophobicity index is obtained for all four consecutive amino acid residues (each amino acid residue is used for calculating the average value 1 to 4 times).
  • a region where the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2.6 or more is specified. Even if a certain amino acid residue corresponds to a plurality of “four consecutive amino acid residues whose average value of hydrophobicity index is 2.6 or more”, it should be included as one amino acid residue in the region. become.
  • the total number of amino acid residues contained in the region is x.
  • the total number of amino acid residues contained in sequence A is y.
  • the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2
  • x / y in naturally derived fibroin will be described.
  • 663 types of fibroin (of which 415 types were derived from spiders) were extracted.
  • x / y was calculated by the above-described calculation method for naturally-derived fibroin containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the result is shown in FIG.
  • the horizontal axis of FIG. 2 indicates x / y (%), and the vertical axis indicates frequency.
  • x / y in naturally derived fibroin is less than 6.2% (the highest, 6.12%).
  • x / y is preferably 6.2% or more, more preferably 7% or more, further preferably 10% or more, and 20% or more. Even more preferably, it is still more preferably 30% or more.
  • the upper limit of x / y is not particularly limited, but may be 45% or less, for example.
  • the modified fibroin according to this embodiment includes, for example, one or a plurality of hydrophilic amino acid residues (for example, hydrophobicity) in the REP so that the amino acid sequence of the naturally-derived fibroin that has been cloned satisfies the above x / y conditions.
  • hydrophilic amino acid residues for example, hydrophobicity
  • Substituting a hydrophobic amino acid residue (for example, an amino acid residue having a positive hydrophobicity index) and / or one or more hydrophobic amino acid residues during REP Can be obtained by locally modifying the amino acid sequence to include a region having a large hydrophobicity index.
  • an amino acid sequence satisfying the above x / y conditions can be designed from the amino acid sequence of naturally derived fibroin, and a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence can be obtained by chemical synthesis.
  • one or more amino acid residues in REP were replaced with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more amino acid residues in REP.
  • modifications corresponding to substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues may be performed. .
  • the amino acid residue having a large hydrophobicity index is not particularly limited, but isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M) and alanine (A ) are preferred, and valine (V), leucine (L) and isoleucine (I) are more preferred.
  • modified fibroin examples include (i) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5, or (ii) SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5. Mention may be made of modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown.
  • the modified fibroin (i) will be described.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 is an amino acid sequence in which the alanine residues in the (A) n motif of (A) naturally derived fibroin are deleted so that the number of consecutive alanine residues is five.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 is inserted in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 by inserting two amino acid sequences (VLI) each consisting of 3 amino acid residues every other REP, and shown in SEQ ID NO: 1. A part of the amino acid on the N-terminal side is deleted so that the molecular weight of the amino acid sequence is almost the same.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3 has two alanine residues inserted into the C-terminal side of each (A) n motif with respect to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1, and a part of the glutamine (Q) residue.
  • a group is substituted with a serine (S) residue, and a part of amino acids on the N-terminal side are deleted so that the molecular weight of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is almost the same.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 is obtained by inserting one amino acid sequence (VLI) consisting of 3 amino acid residues every other REP to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 is obtained by inserting two amino acid sequences (VLI) each consisting of 3 amino acid residues into the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 every other REP.
  • the modified fibroin may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5.
  • the modified fibroin (ii) includes an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5.
  • the modified fibroin of (ii) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (ii) has 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5 and is located on the most C-terminal side (A) from the n motif
  • the amino acid residues included in the region where the average value of the hydrophobic index of 4 consecutive amino acid residues is 2.6 or more X, where x is the most C-terminal position (A) where x is the total number of amino acid residues contained in the sequence excluding the sequence from the n motif to the C terminus of the domain sequence from the domain sequence, x / Y is preferably 6.2% or more.
  • modified fibroin may contain a tag sequence at one or both of the N-terminal and C-terminal. This makes it possible to isolate, immobilize, detect and visualize the modified fibroin.
  • tag sequences include affinity tags that use specific affinity (binding property, affinity) with other molecules.
  • affinity tag include a histidine tag (His tag).
  • His tag is a short peptide with about 4 to 10 histidine residues, and has the property of binding specifically to metal ions such as nickel. Therefore, the isolation of modified fibroin by metal chelating chromatography (chelating metal chromatography) Can be used.
  • Specific examples of the tag sequence include the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 (amino acid sequence containing a His tag).
  • GST glutathione-S-transferase
  • MBP maltose-binding protein
  • an “epitope tag” using an antigen-antibody reaction can also be used.
  • a peptide (epitope) exhibiting antigenicity as a tag sequence, an antibody against the epitope can be bound.
  • HA peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • myc tag peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • FLAG tag peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • a tag sequence that can be separated with a specific protease can also be used.
  • the modified fibroin from which the tag sequence has been separated can also be recovered.
  • modified fibroin containing a tag sequence (iii) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11, or (iv) SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11 Mention may be made of modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown.
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 8, 10 and 11 are obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (including His tag) to the N-terminus of the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 2, 4 and 5, respectively. is there.
  • the modified fibroin may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11.
  • the modified fibroin (iv) includes an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11.
  • the modified fibroin of (iv) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (iv) has 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10 or SEQ ID NO: 11, and is located on the most C-terminal side (A) from the n motif
  • the amino acid residues included in the region where the average value of the hydrophobic index of 4 consecutive amino acid residues is 2.6 or more X, where x is the most C-terminal position (A) where x is the total number of amino acid residues contained in the sequence excluding the sequence from the n motif to the C terminus of the domain sequence from the domain sequence, x / Y is preferably 6.2% or more.
  • the aforementioned modified fibroin may contain a secretion signal for releasing the protein produced in the recombinant protein production system to the outside of the host.
  • the sequence of the secretion signal can be appropriately set according to the type of host.
  • nucleic acid encodes the modified fibroin according to the present invention.
  • specific examples of the nucleic acid include a modified fibroin comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5, or the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 at one or both of the N-terminal and C-terminal.
  • a nucleic acid encoding a protein to which an amino acid sequence (tag sequence) is bound is bound.
  • the nucleic acid hybridizes with a complementary strand of a nucleic acid encoding the modified fibroin according to the present invention under stringent conditions, and is represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m (A) Hydrophobic of 4 consecutive amino acid residues in all REPs included in the sequence including the domain sequence and located at the most C-terminal side (A) The sequence from the n motif to the C-terminus of the domain sequence is excluded from the domain sequence The total number of amino acid residues contained in the region where the average value of the index is 2.6 or more is x, and is located on the most C-terminal side. (A) The sequence from the n motif to the C-terminus of the domain sequence is excluded from the domain sequence. A nucleic acid encoding a modified fibroin, wherein x / y is 6.2% or more, where y is the total number of amino acid residues contained in the sequence.
  • “Stringent conditions” refers to conditions under which so-called specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed. “Stringent conditions” may be any of low stringency conditions, moderate stringency conditions, and high stringency conditions. Low stringency conditions mean that hybridization occurs only when at least 85% identity exists between sequences, eg, using 5 ⁇ SSC containing 0.5% SDS at 42 ° C. Hybridization conditions are included. Medium stringent conditions mean that hybridization occurs only when at least 90% identity exists between the sequences, for example, using 5 ⁇ SSC containing 0.5% SDS at 50 ° C. Hybridization conditions are included. High stringency conditions mean that hybridization occurs only when at least 95% identity exists between the sequences, for example, using 5 ⁇ SSC containing 0.5% SDS at 60 ° C. Hybridization conditions are included.
  • the expression vector according to the present invention has the nucleic acid sequence according to the present invention and one or more regulatory sequences operably linked to the nucleic acid sequence.
  • the regulatory sequence is a sequence that controls the expression of the recombinant protein in the host (for example, promoter, enhancer, ribosome binding sequence, transcription termination sequence, etc.), and can be appropriately selected according to the type of the host.
  • the type of expression vector can be appropriately selected according to the type of host, such as a plasmid vector, viral vector, cosmid vector, fosmid vector, artificial chromosome vector, and the like.
  • the host according to the present invention is transformed with the expression vector according to the present invention.
  • any of prokaryotes and eukaryotes such as yeast, filamentous fungi, insect cells, animal cells and plant cells can be preferably used.
  • a vector that can replicate autonomously in a host cell or can be integrated into a host chromosome and contains a promoter at a position where the nucleic acid according to the present invention can be transcribed is preferably used.
  • the expression vector according to the present invention is capable of autonomous replication in a prokaryote, and at the same time includes a promoter, a ribosome binding sequence, a nucleic acid according to the present invention, and a transcription termination sequence.
  • a vector is preferred.
  • a gene that controls the promoter may also be included.
  • prokaryotes examples include microorganisms belonging to the genus Escherichia, Brevibacillus, Serratia, Bacillus, Microbacterium, Brevibacterium, Corynebacterium and Pseudomonas.
  • microorganisms belonging to the genus Escherichia include, for example, Escherichia coli BL21 (Novagen), Escherichia coli BL21 (DE3) (Life Technologies), Escherichia coli BLR (DE3) (Merck Millipore), Escherichia coli DH1, Escherichia ⁇ Coli GI698, Escherichia coli HB101, Escherichia coli JM109, Escherichia coli K5 (ATCC 23506), Escherichia coli KY3276, Escherichia coli MC1000, Escherichia coli MG1655 (ATCC 47076), Escherichia coli 49, Escherichia coli Rosetta (DE3) (Novagen), Escherichia coli TB1, Escherichia coli Tuner (Novagen), Escherichia coli Tuner (DE3) (Novagen), Escherichia coli W1485, Escherichia
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacillus include, for example, Brevibacillus agri, Brevibacillus bolsterensis, Brevibacillus centroporus Brevibacillus formosas, Brevibacillus invocatus, Brevibacillus latirosporus, Brevibacillus limnophilus, Brevibacillus paravis Brevibacillus reuszeli, Brevibacillus thermolver, Brevibacillus brevis 47 (FERM BP-1223), Brevibacillus brevis 47K (FERM BP-2308), Brevibacillus brevis 47-5 (FERM BP-1664), Brevi Bacillus brevis 47-5Q (JCM8975), Brevibacillus choshinensis HPD31 (FERM BP-1087), Brevibacil Choshinensis HPD31-S (FERM BP-6623), Brevibacillus choshinensis HPD31
  • microorganisms belonging to the genus Serratia include, for example, Serratia lifafaciens ATCC 14460, Serratia entomofila, Serratia ficaria, Serratia foanti cola sera (Serratia grimesii), Serratia proteamaculans, Serratia odorifera, Serratia primumica, Serratia rubiae, Sera rubia e It is possible.
  • microorganisms belonging to the genus Bacillus include Bacillus subtilis and Bacillus amyloliquefaciens.
  • microorganisms belonging to the genus Microbacterium include, for example, Microbacterium / Ammonia Filum ATCC 15354.
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacterium include Brevibacterium divaricatam (Corynebacterium glutamicum) ATCC 14020, Brevibacterium flavum (Corynebacterium glutamicum ATCC 14067) ATCC 13826, ATCC 14067, Brevibacterium immariophyllum (Brevibaterium immariophilum) ATCC 14068, Brevibacterium lactofermentum (Corynebacterium glutamicum ATCC 13869) ATCC 13665, ATCC 13869, Brevibacterium roseum ATCC 13825, Brevibacterium saccharolyticum TCC14066, Brevibacterium Chiogenitarisu ATCC19240, Brevibacterium album ATCC15111, mention may be made of Brevibacterium Serinumu ATCC15112 and the like.
  • Examples of microorganisms belonging to the genus Corynebacterium include, for example, Corynebacterium ammoniagenes ATCC6871, ATCC6872, Corynebacterium glutamicum ATCC13032, Corynebacterium glutamicolicoside ATCC14067, Lamb (Corynebacterium acetoacidophilum) ATCC 13870, Corynebacterium acetoglutamicum ATCC 15806, Corynebacterium alkanolyticum ATCC 21511, Corynebacterium carnae ATCC 15991, Corynebacterium glutamicum Arm ATCC13020, ATCC13032, ATCC13060, can be named Corynebacterium Lilium ATCC15990, Corynebacterium Merasekora ATCC 17965, Corynebacterium thermo amino monocytogenes AJ12340 (FERMBP-1539), Corynebacterium Hakyurisu ATCC13868 and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Pseudomonas include, for example, Pseudomonas putida, Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas fluescens, Pseudomonas fluscens, Pseudomonas fluseusas, and (Pseudomonas sp.) D-0110 and the like.
  • Any method can be used for introducing an expression vector into the host cell as long as it is a method for introducing DNA into the host cell.
  • a method using calcium ions [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110 (1972)]
  • the protoplast method Japanese Patent Laid-Open No. 63-248394
  • the methods described in Gene, 17, 107 (1982), Molecular & General Genetics, 168, 111 (1979), etc. Can be mentioned.
  • Transformation of microorganisms belonging to the genus Brevibacillus can be performed, for example, by the method of Takahashi et al. (J. Bacteriol., 1983, 156: 1130-1134) or the method of Takagi et al. (Agric. Biol. Chem., 1989, 53: 3099). -3100), or the method of Okamoto et al. (Biosci. Biotechnol. Biochem., 1997, 61: 202-203).
  • vectors for introducing the nucleic acid according to the present invention include pBTrp2, pBTac1, and pBTac2 (all are commercially available from Boehringer Mannheim), pKK233-2 (manufactured by Pharmacia), pSE280 ( Invitrogen), pGEMEX-1 (Promega), pQE-8 (QIAGEN), pKYP10 (Japanese Patent Laid-Open No. 58-110600), pKYP200 [Agric. Biol. Chem. , 48, 669 (1984)], pLSA1 [Agric. Biol. Chem.
  • pGEL1 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 4306 (1985)], pBluescript II SK (-) (manufactured by Stratagene), pTrs30 (prepared from Escherichia coli JM109 / pTrS30 (FERM BP-5407)), pTrs32 (EscherichiaMJ32M4) ) Prepared], pGHA2 [prepared from Escherichia coli IGHA2 (FERM B-400), JP-A-60-221091], pGKA2 [prepared from Escherichia coli IGKA2 (FERM BP-6798), JP-A-60-221091 Gazette], pTerm2 (US4686191, US4939094, US5160735), pSup x, pUB110, pTP5, pC194, pEG400 [J. Bacteriol. 172, 2392 (1990)], pGEX
  • pUC18 When using Escherichia coli as a host, pUC18, pBluescript II, pSupex, pET22b, pCold, etc. can be mentioned as suitable vectors.
  • vectors suitable for microorganisms belonging to the genus Brevibacillus include pUB110, which is known as a Bacillus subtilis vector, pHY500 (JP-A-2-31682), pNY700 (JP-A-4-278091), pHY4831 (J Bacteriol., 1987, 1239-1245), pNU200 (Shigezo Tsujitaka, Journal of Japanese Society of Agricultural Chemistry 1987, 61: 669-676), pNU100 (Appl. Microbiol. Biotechnol., 1989, 30: 75-80), pNU211 (J.
  • the promoter is not limited as long as it functions in the host cell.
  • promoters derived from Escherichia coli or phages such as trp promoter (Ptrp), lac promoter, PL promoter, PR promoter, T7 promoter and the like can be mentioned.
  • artificially designed and modified promoters such as a promoter in which two Ptrps are connected in series (Ptrp ⁇ 2), a tac promoter, a lacT7 promoter, and a let I promoter can be used.
  • a transcription termination sequence is not necessarily required for the expression of the nucleic acid according to the present invention, but it is preferable to arrange the transcription termination sequence immediately below the structural gene.
  • Examples of eukaryotic hosts include yeast, filamentous fungi (molds, etc.) and insect cells.
  • yeast examples include, for example, the genus Saccharomyces, the genus Schizosaccharomyces, the genus Kluyveromyces, the genus Trichosporon, and the genus Cwaniomyces. And yeast belonging to the genus Yarrowia and Hansenula.
  • Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae
  • Schizosaccharomyces pombe Schizosaccharomyces pombe
  • Kluyveromyces lactis Kluyveromyces lactis
  • Kluyveromyces marxianus Kluyveromyces marxianus
  • Trichosporon pullulans Trichosporon pullulans
  • Shiwaniomaisesu - Albius (Schwaniomyces alluvius)
  • Swaniomyces occidentalis Candida utilis, Pichia pastoris ( Ichia pastoris, Pichia angusta, Pichia methanolica (Pichia polymorpha), Pichia polymorpha, Pichia stipiporihani. And the like.
  • Expression vectors when yeast is used as the host cell are usually an origin of replication (if amplification in the host is required) and a selectable marker for propagation of the vector in E. coli, a promoter for recombinant protein expression in yeast, and It is preferred to include a terminator as well as a selection marker for yeast.
  • the expression vector is a non-integrating vector
  • ARS autonomously replicating sequence
  • vectors in the case of using yeast as a host include YEP13 (ATCC37115), YEp24 (ATCC37051), YCp50 (ATCC37419), YIp, pHS19, pHS15, pA0804, pHIL3O1, pHIL-S1, pPIC9K, pPICZ ⁇ , PGAZZp, ICPZB Etc.
  • the promoter is not limited as long as it can be expressed in yeast.
  • a glycolytic gene promoter such as hexose kinase, PHO5 promoter, PGK promoter, GAP promoter, ADH promoter, gal 1 promoter, gal 10 promoter, heat shock polypeptide promoter, MF ⁇ 1 promoter, CUP 1 promoter, pGAP promoter, Examples thereof include pGCW14 promoter, AOX1 promoter, MOX promoter and the like.
  • any method for introducing an expression vector into yeast any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into yeast.
  • electroporation Methods Enzymol., 194, 182 (1990)
  • spheroplast Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 81, 4889 (1984)
  • lithium acetate method J. Bacteriol., 153, 163 (1983)
  • Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 1929 (1978) and the like electroporation (Methods Enzymol., 194, 182 (1990)
  • spheroplast Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 81, 4889 (1984)
  • lithium acetate method J. Bacteriol., 153, 163 (1983)
  • filamentous fungi examples include, for example, the genus Acremonium, the genus Aspergillus, the genus Ustilago, the genus Trichoderma, the genus Neurospora, the genus Fusarium, and Fusarium, Penicillium genus, Myceliophtora genus, Botrytis genus, Magnaporthe genus, Mucor genus, Metalithium genus, Monascus genus, Monascus genus And bacteria belonging to the genus Rhizomucor.
  • filamentous fungi include Acremonium alabamense, Acremonium cellulolyticus, Aspergillus algae or aspergillus sp. Aspergillus oryzae, Aspergillus salmon (Aspergillus sake), Aspergillus sojae (Aspergillus sojae), Aspergillus tubigensis (Aspergillus tubigenisgersgers) us niger, Aspergillus nidulans, Aspergillus parasiticus, Aspergillus fisium, Aspergillus fiscus, Aspergillus fiscus Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus (Aspergillus fumigatus), Aspergillus japonicus (Aspergillus japonicus), Trichoderma bi De (Trichoderma viride), Trichoderma Hajianumu (Trichoderma harzianum), Trichoderma reesei (Tricho
  • the promoter may be any gene related to glycolysis, gene related to constitutive expression, enzyme gene related to hydrolysis, etc. Specifically, amyB, glaA, agdA, glaB, TEF1 , XynF1 tannasegene, no. 8AN, gpdA, pgkA, enoA, melO, sodM, catA, catB and the like.
  • the expression vector can be introduced into filamentous fungi using a conventionally known method.
  • a conventionally known method for example, the method of Cohen et al. (Calcium chloride method) [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69: 2110 (1972)], protoplast method [Mol. Gen. Genet. 168: 111 (1979)], competent method [J. Mol. Biol. 56: 209 (1971)], electroporation method and the like.
  • Insect cells include, for example, lepidopteran insect cells. More specifically, insect cells derived from Spodoptera frugiperda such as Sf9 and Sf21, as well as nettle horsetail such as High 5 (Trichoplusia). ) Derived insect cells and the like.
  • vectors when using insect cells as hosts include baculoviruses such as Autographa californica nuclear polyhedrosis virus, which are viruses that infect night stealing insects (Baculovirus virus). , A Laboratory Manual, WH Freeman and Company, New York (1992).
  • baculoviruses such as Autographa californica nuclear polyhedrosis virus, which are viruses that infect night stealing insects (Baculovirus virus). , A Laboratory Manual, WH Freeman and Company, New York (1992).
  • the polypeptide can be expressed by the method described in Freeman and Company, New York (1992), Bio / Technology, 6, 47 (1988), and the like. That is, after a recombinant gene transfer vector and a baculovirus are co-introduced into insect cells to obtain a recombinant virus (expression vector) in the insect cell culture supernatant, the recombinant virus is further infected with insect cells, and the polypeptide Can be expressed.
  • gene transfer vectors used in the method include pVL1392, pVL1393, and pBlueBacIII (both manufactured by Invitrogen).
  • Examples of a method for co-introducing a recombinant gene introduction vector and a baculovirus into insect cells for preparing a recombinant virus include, for example, the calcium phosphate method (Japanese Patent Laid-Open No. 2-27075) and the lipofection method (Proc. Natl. Acad). Sci. USA, 84, 7413 (1987)).
  • the recombinant vector according to the present invention preferably further contains a selection marker gene for selecting a transformant.
  • a selection marker gene for selecting a transformant for example, in E. coli, resistance genes for various drugs such as tetracycline, ampicillin, and kanamycin can be used as selection marker genes. Recessive selectable markers that can complement genetic mutations involved in auxotrophy can also be used.
  • yeast a gene resistant to geneticin can be used as a selectable marker gene, and selectable markers such as LEU2, URA3, TRP1, and HIS3, which are complementary to gene mutations involved in auxotrophy, can also be used.
  • selectable markers such as LEU2, URA3, TRP1, and HIS3, which are complementary to gene mutations involved in auxotrophy, can also be used.
  • filamentous fungi as a selectable marker gene, niaD (Biosci. Biotechnol.
  • aureobasidin resistance gene Mol Gen Genet, 261, 290-296, (1999)
  • Benomyl Marker gene selected from the group consisting of sex genes (Proc Natl Acad Sci USA, 83, 4869-4873, (1986)) and hygromycin resistance genes (Gene, 57, 21-26, (1987)), leucine-requiring complementation Genes and the like.
  • sex genes Proc Natl Acad Sci USA, 83, 4869-4873, (1986)
  • hygromycin resistance genes Gene, 57, 21-26, (1987)
  • leucine-requiring complementation Genes and the like When the host is an auxotrophic mutant, a wild-type gene that complements the auxotrophy can be used as a selectable marker gene.
  • Selection of a host transformed with the expression vector according to the present invention can be performed by plaque hybridization, colony hybridization, or the like using a probe that selectively binds to the nucleic acid according to the present invention.
  • a probe obtained by modifying a partial DNA fragment amplified by the PCR method with a radioisotope or digoxigenin based on the sequence information of the nucleic acid according to the present invention can be used.
  • the modified fibroin according to the present invention can be produced by expressing the nucleic acid according to the present invention in a host transformed with the expression vector according to the present invention.
  • an expression method in addition to direct expression, secretory production, fusion protein expression, and the like can be performed according to the method described in Molecular Cloning 2nd edition.
  • the modified fibroin When expressed in yeast, animal cells, or insect cells, the modified fibroin can be obtained as a polypeptide to which sugars or sugar chains have been added.
  • the modified fibroin according to the present invention is obtained by, for example, culturing a host transformed with the expression vector according to the present invention in a culture medium, producing and accumulating the modified fibroin according to the present invention in the culture medium, and collecting from the culture medium.
  • the method of culturing the host according to the present invention in a culture medium can be performed according to a method usually used for culturing a host.
  • the host culture medium according to the present invention contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the host. Any natural or synthetic medium may be used as long as the medium can efficiently culture the host.
  • Any carbon source may be used as long as it can be assimilated by the host.
  • Examples thereof include glucose, fructose, sucrose, and carbohydrates such as molasses, starch and starch hydrolysate, and organic acids such as acetic acid and propionic acid.
  • alcohols such as ethanol and propanol can be used.
  • nitrogen source examples include ammonium salts of inorganic acids or organic acids such as ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, and ammonium phosphate, other nitrogen-containing compounds, and peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor, Casein hydrolyzate, soybean meal and soybean meal hydrolyzate, various fermented cells and digested products thereof can be used.
  • inorganic acids or organic acids such as ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, and ammonium phosphate, other nitrogen-containing compounds, and peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor, Casein hydrolyzate, soybean meal and soybean meal hydrolyzate, various fermented cells and digested products thereof can be used.
  • inorganic salts examples include monopotassium phosphate, dipotassium phosphate, magnesium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, ferrous sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, and calcium carbonate.
  • Cultivation of prokaryotes such as E. coli or eukaryotes such as yeast can be performed under aerobic conditions such as shaking culture or deep aeration and agitation culture.
  • the culture temperature is, for example, 15 to 40 ° C.
  • the culture time is usually 16 hours to 7 days.
  • the pH of the culture medium during the culture is preferably maintained at 3.0 to 9.0.
  • the pH of the culture medium can be adjusted using an inorganic acid, an organic acid, an alkaline solution, urea, calcium carbonate, ammonia, or the like.
  • antibiotics such as ampicillin and tetracycline may be added to the culture medium as needed during the culture.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside is used when cultivating a microorganism transformed with an expression vector using the lac promoter
  • indole acrylic is used when culturing a microorganism transformed with an expression vector using the trp promoter.
  • An acid or the like may be added to the medium.
  • Insect cell culture media include commonly used TNM-FH medium (Pharmingen), Sf-900 II SFM medium (Life Technologies), ExCell400, ExCell405 (all from JRH Biosciences), Grace ' s Insect Medium (Nature, 195, 788 (1962)) can be used.
  • Insect cell culture can be performed, for example, under a culture medium pH of 6 to 7, a culture temperature of 25 to 30 ° C., and a culture time of 1 to 5 days. Moreover, you may add antibiotics, such as a gentamicin, to a culture medium as needed during culture
  • antibiotics such as a gentamicin
  • the transformed plant cell When the host is a plant cell, the transformed plant cell may be cultured as it is, or it can be differentiated into a plant organ and cultured.
  • a medium for culturing the plant cells a commonly used Murashige and Skoog (MS) medium, White medium, or a medium in which a plant hormone such as auxin or cytokinin is added to these mediums or the like is used. be able to.
  • Animal cell culture can be performed, for example, under conditions such as a culture medium pH of 5-9 and a culture temperature of 20-40 ° C. for a culture time of 3-60 days. Moreover, you may add antibiotics, such as kanamycin and a hygromycin, to a culture medium as needed during culture
  • antibiotics such as kanamycin and a hygromycin
  • Methods for producing modified fibroin using a host transformed with the expression vector according to the present invention include a method for producing the modified fibroin in the host cell, a method for secreting it outside the host cell, and on the host cell outer membrane. There is a way to make it produce. Each of these methods can be selected by changing the host cell used and the structure of the modified fibroin produced.
  • the modified fibroin when the modified fibroin is produced in or on the host cell outer membrane, the method of Paulson et al. (J. Biol. Chem., 264, 17619 (1989)), the method of Rowe et al. (Proc. Natl. Acad Sci. USA, 86, 8227 (1989), Genes Develop., 4, 1288 (1990)), or by applying the method described in JP-A-5-336963, International Publication No. 94/23021, etc.
  • the modified fibroin can be modified so as to be actively secreted out of the host cell. That is, the modified fibroin can be actively secreted out of the host cell by expressing the polypeptide containing the modified fibroin active site by adding a signal peptide using a gene recombination technique.
  • the modified fibroin produced by the host transformed with the expression vector according to the present invention can be isolated and purified by a method usually used for protein isolation and purification.
  • a method usually used for protein isolation and purification For example, when the modified fibroin is expressed in a dissolved state in the cell, the host cell is recovered by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer, and then subjected to an ultrasonic crusher, a French press, a mantongaurine. The host cells are disrupted with a homogenizer, dynomill, or the like to obtain a cell-free extract.
  • a method usually used for protein isolation and purification that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, an organic solvent, etc.
  • Precipitation method anion exchange chromatography method using resin such as diethylaminoethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA-75 (manufactured by Mitsubishi Kasei), positive using resin such as S-Sepharose FF (manufactured by Pharmacia)
  • Electrophoresis methods such as ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration using molecular sieve, affinity chromatography, chromatofocusing, isoelectric focusing Using methods such as these alone or in combination, purification It is possible to obtain the goods.
  • modified fibroin when expressed by forming an insoluble substance in the cell, the host cell is similarly collected, crushed, and centrifuged to collect the modified fibroin insoluble substance as a precipitate fraction.
  • the recovered insoluble form of modified fibroin can be solubilized with a protein denaturant.
  • a purified preparation of modified fibroin can be obtained by the same isolation and purification method as described above.
  • the modified fibroin or a derivative having a sugar chain added to the modified fibroin can be recovered from the culture supernatant. That is, a culture supernatant is obtained by treating the culture with a technique such as centrifugation, and a purified preparation can be obtained from the culture supernatant by using the same isolation and purification method as described above.
  • FIG. 3 is a schematic cross-sectional view showing an embodiment of a pressure molding machine used for manufacturing a molded body.
  • the pressure molding machine 10 shown in FIG. 3 includes a mold 2 in which a through hole is formed and which can be heated, and an upper pin 4 and a lower pin 6 that can move up and down within the through hole of the mold 2.
  • the molding composition containing the modified fibroin is introduced into the gap formed by inserting the upper pin 4 or the lower pin 6 into the mold 2, and the upper pin 4 and the lower pin are heated while the mold 2 is heated.
  • a molded product can be obtained by compressing the composition at 6.
  • FIG. 4 is a process diagram schematically showing an embodiment of a method for producing a molded body.
  • 4A is a schematic cross-sectional view of the pressure molding machine before introducing the composition
  • FIG. 4B is a schematic cross-sectional view of the pressure molding machine immediately after the introduction of the composition
  • FIG. It is the model sectional drawing of the press molding machine after the state which is heating and pressurizing a composition, or heating and pressurizing.
  • the composition is introduced into the through hole with only the lower pin 6 inserted into the through hole of the mold 2, and as shown in FIG.
  • the upper pin 4 is inserted into the through-hole and lowered, the heating of the mold 2 is started, and the composition 8a before being heated and pressurized is heated and pressurized in the through-hole.
  • the upper pin 4 is lowered until reaching a predetermined pressure, and heating and pressurization are continued until the composition reaches a predetermined temperature in the state shown in FIG. 8b is obtained. Thereafter, the temperature of the mold 2 is lowered using a cooler (for example, a spot cooler), and when the composition 8b reaches a predetermined temperature, the upper pin 4 or the lower pin 6 is removed from the mold 2 and the contents Is taken out to obtain a molded body.
  • the pressurization may be performed by lowering the upper pin 4 with the lower pin 6 fixed, but both the lowering of the upper pin 4 and the raising of the lower pin 6 may be performed.
  • the heating is preferably performed at 80 to 300 ° C, more preferably at 100 to 180 ° C, and further preferably at 100 to 130 ° C.
  • the pressurization is preferably performed at 5 kN or more, more preferably at 10 kN or more, and further preferably at 20 kN or more.
  • the time for which the treatment is continued under the condition is preferably 0 to 100 minutes, more preferably 1 to 50 minutes, and further preferably 5 to 30 minutes.
  • the molding composition containing the modified fibroin may contain only the modified fibroin or may further contain an optional additive.
  • an additive By including an additive, a molding composition having various different physical properties can be produced.
  • additives include softeners, crystal nucleating agents, foaming agents, weathering agents, hydrolysis resistance agents, reducing agents, colorants, modifiers, stabilizers, lubricants, fillers, flame retardants, reinforcing agents, release agents.
  • examples include molds, antistatic agents, and antioxidants.
  • softening agent examples include high molecular weight alcohols such as glycerin and polyethylene glycol, sugars such as starch, water, and surfactants.
  • crystal nucleating agent examples include kaolin, talc, montmorilloid, magnesium oxide, aluminum oxide, and other types of polyamides.
  • foaming agent examples include sodium bicarbonate added with acid or alkali, aluminum powder added with acid, isocyanate added with water, and the like.
  • weathering agents examples include benzotriazole, benzophenone, and triazine.
  • hydrolysis-resistant agent examples include epoxy reagents, carbodiimides, isocyanates, oxazolines and the like.
  • the fibroin fiber formed from the modified fibroin according to the present invention can be applied to a woven fabric, a knitted fabric, a braid, a non-woven fabric, etc. as a fiber or a yarn. It can also be applied to high-strength applications such as ropes, surgical sutures, flexible stops for electrical components, and bioactive materials for transplantation (eg, artificial ligaments and aortic bands).
  • the modified fibroin according to the present invention can also be applied to filaments, films, foams, spheres, nanofibrils, hydrogels, resins, and equivalents thereof, which are disclosed in JP2009-505668A and JP2009-505668A. No. 5,678,283, No. 4638735 and the like.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 is a deletion of the amino acid sequence in which the alanine residues in the (A) n motif of the naturally derived fibroin (A) are consecutive so that the number of consecutive alanine residues is five. is there.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 is obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminus of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 (Comparative Example 1).
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 is inserted in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 by inserting two amino acid sequences (VLI) each consisting of 3 amino acid residues every other REP, and shown in SEQ ID NO: 1. A part of the amino acid on the N-terminal side is deleted so that the molecular weight of the amino acid sequence is almost the same.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8 is obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminus of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 (Example 1).
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3 has two alanine residues inserted into the C-terminal side of each (A) n motif with respect to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1, and a part of the glutamine (Q) residue.
  • a group is substituted with a serine (S) residue, and a part of amino acids on the N-terminal side are deleted so that the molecular weight of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is almost the same.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 9 is obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminus of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 (Comparative Example 2).
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 is obtained by inserting one amino acid sequence (VLI) consisting of 3 amino acid residues in every other REP to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 is obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminus of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 (Example 2).
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 is obtained by inserting two amino acid sequences (VLI) each consisting of 3 amino acid residues into the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 every other REP.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11 is obtained by adding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminus of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 (Example 3).
  • E. coli BLR (DE3) was transformed with a pET22b (+) expression vector containing a nucleic acid encoding a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NOs: 7 to 11.
  • the transformed Escherichia coli was cultured in 2 mL of LB medium containing ampicillin for 15 hours.
  • the culture solution was added to 100 mL of a seed culture medium (Table 2) containing ampicillin so that the OD 600 was 0.005.
  • the culture temperature was kept at 30 ° C., and flask culture was performed until the OD 600 reached 5 (about 15 hours) to obtain a seed culture solution.
  • the seed culture was added to a jar fermenter to which 500 ml of production medium (Table 3) was added so that the OD 600 was 0.05, and transformed E. coli was inoculated.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9. Further, the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration.
  • a feed solution (glucose 455 g / 1 L, Yeast Extract 120 g / 1 L) was added at a rate of 1 ml / min.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9.
  • the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration, and cultured for 20 hours.
  • 1M isopropyl- ⁇ -thiogalactopyranoside (IPTG) was added to the culture solution to a final concentration of 1 mM to induce expression of the target protein.
  • the culture solution was centrifuged, and the cells were collected. SDS-PAGE was performed using cells prepared from the culture solution before and after the addition of IPTG, and the expression of the target protein was confirmed by the appearance of a band of the desired protein size depending on the addition of IPTG.
  • the washed precipitate was suspended in 8M guanidine buffer (8M guanidine hydrochloride, 10 mM sodium dihydrogen phosphate, 20 mM NaCl, 1 mM Tris-HCl, pH 7.0) to a concentration of 100 mg / mL, and 60 ° C. And stirred for 30 minutes with a stirrer to dissolve. After dissolution, dialysis was performed with water using a dialysis tube (cellulose tube 36/32 manufactured by Sanko Junyaku Co., Ltd.). The white aggregated protein obtained after dialysis was recovered by centrifugation, the water was removed with a freeze dryer, and the lyophilized powder was recovered.
  • 8M guanidine buffer 8M guanidine hydrochloride, 10 mM sodium dihydrogen phosphate, 20 mM NaCl, 1 mM Tris-HCl, pH 7.0
  • the degree of purification of the target protein in the obtained lyophilized powder was confirmed by image analysis of the result of polyacrylamide gel electrophoresis of the powder using Totallab (nonlinear dynamics ltd.). As a result, the purity of all the proteins was about 85%.
  • the production amount of each target protein calculated from the weight of the lyophilized powder is shown in Tables 4 and 5 as relative values when the value of GEN495 (SEQ ID NO: 7: Comparative Example 1) is 100.
  • samples each of the freeze-dried powders (hereinafter referred to as “samples”) obtained in the above [(3) Protein purification] was weighed, and this sample was molded into the mold 2 (cylinder) of the pressure molding machine 10 shown in FIG. It is a mold having a shape and has a rectangular through hole having a cross section of 35 mm ⁇ 15 mm.). At this time, the sample was added so that the thickness was uniform. After all the samples have been introduced, heating of the mold 2 is started and the upper pin 4 and the lower pin 6 are inserted into the through-hole using a hand press machine (NT-100H-V09, manufactured by NPa System Co., Ltd.). The sample was pressurized by being inserted into.
  • a hand press machine NT-100H-V09, manufactured by NPa System Co., Ltd.
  • the pressure condition of the sample was controlled to be 40 kN.
  • the heating was stopped and the sample was cooled with a spot cooler (TS-25EP-1 manufactured by TRUSCO NAKAYAMA CORPORATION).
  • TS-25EP-1 manufactured by TRUSCO NAKAYAMA CORPORATION
  • the sample was taken out and deburred to obtain a molded body having a rectangular parallelepiped shape of 35 mm ⁇ 15 mm ⁇ 2 mm.
  • the modified fibroin having an amino acid sequence including a region having a large hydrophobicity index locally in REP is remarkably improved in productivity (Examples 1 to 3), and the molded article produced from the modified fibroin has a bending strength. Remarkably improved (Example 1).

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Abstract

本発明は、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、改変フィブロインに関する。式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフ等は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。

Description

改変フィブロイン
　本発明は、改変フィブロインに関する。より具体的には、本発明は、局所的に疎水性指標の大きいアミノ酸配列を有する改変フィブロインに関する。本発明はまた、改変フィブロインをコードする核酸、当該核酸配列を含む発現ベクター、当該発現ベクターで形質転換された宿主、及び改変フィブロインから製造された製品にも関する。
　フィブロインは、繊維状のタンパク質の一種であり、βプリーツシートの形成につながるグリシン残基、アラニン残基及びセリン残基を最大９０％含有する（非特許文献１）。フィブロインとして、昆虫及びクモ類が産生する糸を構成するタンパク質（絹タンパク質、ホーネットシルクタンパク質、スパイダーシルクタンパク質）等が知られている。
　絹タンパク質は、優れた機械的特性、吸湿特性及び消臭特性を有し、衣服原料として広く用いられている素材である。また絹糸は免疫寛容な天然繊維であり、生体親和性が高いため手術用縫合糸等の用途にも用いられている。
　クモには最大７種類の絹糸腺が存在し、それぞれ性質の異なるフィブロイン（スパイダーシルクタンパク質）を産生する。スパイダーシルクタンパク質は、その源泉の器官にしたがって、高い靭性を有する大瓶状スパイダータンパク質（ｍａｊｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｐｉｄｅｒ　ｐｒｏｔｅｉｎ、ＭａＳｐ）、高度な伸長力を有する小瓶状スパイダータンパク質（ｍｉｎｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｐｉｄｅｒ　ｐｒｏｔｅｉｎ、ＭｉＳｐ）、並びに鞭状（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ（Ｆｌａｇ））、管状（ｔｕｂｕｌｉｆｏｒｍ）、集合（ａｇｇｒｅｇａｔｅ）、ブドウ状（ａｃｉｎｉｆｏｒｍ）及びナシ状（ｐｙｒｉｆｏｒｍ）の各スパイダーシルクタンパク質と命名されている。特に、優れた強度と伸度を有することにより高い靭性を有する大瓶状スパイダータンパク質において構造的研究が集中して行われている（特許文献１及び特許文献２）。
　フィブロインに特異的な構造の一つとして、ＧＰＧＸＸ、アラニン残基に富んだ伸長領域（（Ａ）ｎ又は（ＧＡ）ｎ）、ＧＧＸ、及びスペーサーに分類されるアミノ酸モチーフが反復した構造が知られている（非特許文献２）。また、（ＧＡ）ｎモチーフを（Ａ）ｎモチーフで置換することにより伸度は減少するが引張り強度が増すこと、ＧＰＧＸＸモチーフの数を増加させることにより伸度が増加すること、ＧＰＧＸＸモチーフのいくつかを（Ａ）ｎモチーフで置換することにより引張り強度が増加することが報告されている（特許文献２）。また、ＧＧＸ及びＧＰＧＸＸモチーフは、糸に弾性を与える可撓性のらせん構造をとると考えられている（特許文献３）。
　組換えスパイダーシルクタンパク質、及び組換え絹タンパク質は、いくつかの異種タンパク質生産系で産生されている。例えば、トランスジェニック・ヤギ、トランスジェニック・カイコ、又は組換え植物若しくは哺乳類細胞が利用されている（非特許文献３）。しかしながら、これらの生産系では、生産速度が遅く、商業レベルに見合った大量生産には不向きである（特許文献４及び５）。大量生産が可能な生産系として酵母、カビ、グラム陰性細菌、グラム陽性細菌等の生物による組換えフィブロイン生産も多数報告されており一定の成果が得られているが、伸度及び引張り強度に優れた組換えフィブロインを工業的に大量生産できるには至っていない（特許文献５）。
　クモ糸タンパク質を種々の形状に成形した成形体が知られている。例えば、特許文献６には、クモ糸タンパク質を使用したフィルムが開示されている。また、特許文献７には、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドパーティクルが開示されている。
特開２０１２－５５２６９号公報 特表２００５－５０２３４７号公報 特表２００９－５０５６６８号公報 特表２０１４－５０２１４０号公報 国際公開第２０１５／０４２１６４号 特表２００８－５０７２６０号公報 国際公開第２０１４／６１０４３号
Ａｓａｋｕｒａら，Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ：Ｎｅｗ　Ｙｏｒｋ，ＮＹ，１９９４年，Ｖｏｌ．４，ｐｐ．１－１１ Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ　Ｃｅｌｌ　Ｆａｃｔｏｒｉｅｓ，２００４年，３：１４ Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００２年，２９５巻，ｐｐ．４７２－４７６
　フィブロインは、その優れた特性により、医療、航空、衣料等の様々な産業分野における新素材として注目されている。フィブロインはまた、従来は主に石油由来の材料で形成されてきたフィルム等の成形体にも適用可能であり、これらの代替材料（バイオプラスチック）としても注目されている。しかしながら、商業レベルに見合う生産量を達成するためには、フィブロインの生産性をより向上させることが必要である。
　本発明は、モールド成形体にしたときの曲げ強度が向上すると共に、生産性が向上した改変フィブロインの提供を目的とする。
　本発明者らは、工業的に大量生産可能な方法を種々検討した結果、局所的に疎水性指標の大きいアミノ酸配列を有するフィブロインに改変することにより、生産性が向上すること、また当該フィブロインで作製したモールド成形体は曲げ強度が向上することを見い出した。本発明はこの新規な知見に基づく。
　すなわち、本発明は、例えば、以下の各発明に関する。
［１］
　式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
　上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、改変フィブロイン。
［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
［２］
　上記局所的に疎水性指標の大きい領域が、連続する２～４アミノ酸残基で構成されている、［１］に記載の改変フィブロイン。
［３］
　上記疎水性指標の大きいアミノ酸残基が、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）、フェニルアラニン（Ｆ）、システイン（Ｃ）、メチオニン（Ｍ）及びアラニン（Ａ）から選ばれる、［１］又は［２］に記載の改変フィブロイン。
［４］
　式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
　最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから上記ドメイン配列のＣ末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから上記ドメイン配列のＣ末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上である、改変フィブロイン。
［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
［５］
　天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当することに加え、更に１又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び／又は付加したことに相当するアミノ酸配列を有する、［１］～［４］のいずれかに記載の改変フィブロイン。
［６］
　上記天然由来のフィブロインが、昆虫又はクモ類由来のフィブロインである、［５］に記載の改変フィブロイン。
［７］
　上記天然由来のフィブロインが、クモ類の大瓶状スパイダータンパク質（ＭａＳｐ）又は小瓶状スパイダータンパク質（ＭｉＳｐ）である、［５］に記載の改変フィブロイン。
［８］
　配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロイン。
［９］
　更に、Ｎ末端及びＣ末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含む、［１］～［８］のいずれかに記載の改変フィブロイン。
［１０］
　上記タグ配列が、配列番号６で示されるアミノ酸配列を含む、［９］に記載の改変フィブロイン。
［１１］
　配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列、又は配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロイン。
［１２］
　［１］～［１１］のいずれかに記載の改変フィブロインをコードする核酸。
［１３］
　［１２］に記載の核酸の相補鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインをコードする核酸。
［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
［１４］
　［１３］に記載の核酸と９０％以上の配列同一性を有し、かつ式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインをコードする核酸。
［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
［１５］
　［１２］～［１４］のいずれかに記載の核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する発現ベクター。
［１６］
　プラスミドベクター又はウイルスベクターである、［１５］に記載の発現ベクター。
［１７］
　［１５］又は［１６］に記載の発現ベクターで形質転換された宿主。
［１８］
　原核生物である、［１７］に記載の宿主。
［１９］
　上記原核生物が、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属からなる群より選択される属に属する微生物である、［１８］に記載の宿主。
［２０］
　真核生物である、［１７］に記載の宿主。
［２１］
　上記真核生物が、酵母、糸状真菌又は昆虫細胞である、［２０］に記載の宿主。
［２２］
　上記酵母が、サッカロマイセス属、シゾサッカロマイセス属、クリベロマイセス属、トリコスポロン属、シワニオミセス属、ピキア属、キャンディダ属、ヤロウィア属及びハンゼヌラ属からなる群より選択される属に属する酵母である、［２１］に記載の宿主。
［２３］
　上記サッカロマイセス属に属する酵母が、サッカロマイセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）であり、上記シゾサッカロマイセス属に属する酵母が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）であり、上記クリベロマイセス属に属する酵母が、クリベロマイセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｌａｃｔｉｓ）であり、上記トリコスポロン属に属する酵母が、トリコスポロン・プルランス（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ　ｐｕｌｌｕｌａｎｓ）であり、上記シワニオミセス属に属する酵母が、シワニオマイセス・アルビウス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ　ａｌｌｕｖｉｕｓ）であり、上記ピキア属に属する酵母が、ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ　ｐａｓｔｏｒｉｓ）であり、上記キャンディダ属に属する酵母がキャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ　ａｌｂｉｃａｎｓ）であり、上記ヤロウィア属に属する酵母が、ヤロウィア・リポリティカ（Ｙａｒｒｏｗｉａ　ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ）であり、上記ハンゼヌラ属に属する酵母が、ハンゼヌラ・ポリモルファ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）である、［２２］に記載の宿主。
［２４］
　上記糸状真菌が、アスペルギルス属、ペニシリウム属及びムコア属からなる群より選択される属に属する糸状真菌である、［２１］に記載の宿主。
［２５］
　上記アスペルギルス属に属する糸状真菌が、アスペルギルス・オリゼであり、上記ペニシリウム属に属する糸状真菌が、ペニシリウム・クリゾゲナムであり、上記ムコア属に属する糸状真菌が、ムコア・フラギリスである、［２４］に記載の宿主。
［２６］
　上記昆虫細胞が、鱗翅類の昆虫細胞である、［２１］に記載の宿主。
［２７］
　上記昆虫細胞が、スポドプテラ・フルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）由来の昆虫細胞、又はイラクサギンウワバ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ　ｎｉ）由来の昆虫細胞である、［２６］に記載の宿主。
［２８］
　［１］～［１１］のいずれかに記載の改変フィブロインを含み、
　繊維、糸、フィラメント、フィルム、発泡体、球体、ナノフィブリル、ヒドロゲル、樹脂及びその等価物からなる群から選択される、製品。
　本発明によれば、モールド成形体にしたときの曲げ強度が向上すると共に、生産性が向上した改変フィブロインの提供が可能となる。
改変フィブロインのドメイン配列を示す模式図である。 天然由来のフィブロインのｘ／ｙ（％）の値の分布を示す図である。 モールド成形体の製造に用いる加圧成形機の一実施形態を示す模式断面図である。 モールド成形体の製造方法の一実施形態を模式的に示す工程図である。
　以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。ただし、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。
〔改変フィブロイン〕
　本発明に係る改変フィブロインは、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。改変フィブロインは、ドメイン配列のＮ末端側及びＣ末端側のいずれか一方又は両方に更にアミノ酸配列（Ｎ末端配列及びＣ末端配列）が付加されていてもよい。Ｎ末端配列及びＣ末端配列は、これに限定されるものではないが、典型的には、フィブロインに特徴的なアミノ酸モチーフの反復を有さない領域であり、１００残基程度のアミノ酸からなる。
　本明細書において「改変フィブロイン」とは、そのドメイン配列が天然由来のフィブロインのアミノ酸配列とは異なるフィブロインを意味する。本明細書でいう「天然由来のフィブロイン」もまた、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。
　「改変フィブロイン」は、本発明で特定されるアミノ酸配列を有するものであれば、天然由来のフィブロインに依拠してそのアミノ酸配列を改変したもの（例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列を改変することによりアミノ酸配列を改変したもの）であってもよく、また天然由来のフィブロインに依らず人工的に設計及び合成したもの（例えば、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより所望のアミノ酸配列を有するもの）であってもよい。
　本明細書において「ドメイン配列」とは、フィブロイン特有の結晶領域（典型的には、アミノ酸配列の（Ａ）ｎモチーフに相当する。）と非晶領域（典型的には、アミノ酸配列のＲＥＰに相当する。）を生じるアミノ酸配列であり、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるアミノ酸配列を意味する。ここで、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。
　（Ａ）ｎモチーフは、（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上であればよいが、８６％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましく、９５％以上であることが更に好ましく、１００％であること（アラニン残基のみで構成されることを意味する）が更により好ましい。ドメイン配列中に複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、少なくとも７つがアラニン残基のみで構成されることが好ましい。アラニン残基のみで構成されるとは、（Ａ）ｎモチーフが、（Ａ）ｎ（Ａはアラニン残基を示し、ｎは４～２０の整数、好ましくは４～１６の整数を示す。）で表されるアミノ酸配列を有することを意味する。ＲＥＰのアミノ酸配列中には、ＧＧＸ及びＧＰＧＸＸ（但し、Ｘはグリシン残基以外のアミノ酸残基を示す。）から選ばれる少なくとも一つのモチーフが含まれていることが好ましい。ＲＥＰがこれらのモチーフを含むことにより、フィブロインの伸度を向上させることができる。
　一実施形態に係る改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有するものであってよい。
　本実施形態に係る改変フィブロインは、局所的に疎水性指標の大きい領域が、連続する２～４アミノ酸残基で構成されていることが好ましい。これにより、本発明による効果がより一層顕著に奏される。
　本実施形態に係る改変フィブロインは、上述の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）、フェニルアラニン（Ｆ）、システイン（Ｃ）、メチオニン（Ｍ）及びアラニン（Ａ）から選ばれるアミノ酸残基であることがより好ましい。これにより、組換えタンパク質生産系での生産性を向上させることができ、且つ当該フィブロインで作製したモールド成形体において曲げ強度を著しく向上させることができるという本発明による効果をより安定して発揮できる。
　本実施形態に係る改変フィブロインは、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する改変に加え、更に、天然由来のフィブロインと比較して、１又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び／又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変があってもよい。
　本実施形態に係る改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列からＲＥＰ中の１又は複数の親水性アミノ酸残基（例えば、疎水性指標がマイナスであるアミノ酸残基）を疎水性アミノ酸残基（例えば、疎水性指標がプラスであるアミノ酸残基）に置換すること、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入することにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からＲＥＰ中の１又は複数の親水性アミノ酸残基を疎水性アミノ酸残基に置換したこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入したことに相当するアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からＲＥＰ中の１又は複数の親水性アミノ酸残基を疎水性アミノ酸残基に置換したこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入したことに相当する改変に加え、更に１又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び／又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変を行ってもよい。アミノ酸残基の置換、欠失、挿入及び／又は付加は、部分特異的突然変異誘発法等の当業者に周知の方法により行うことができる。具体的には、Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄ　Ｒｅｓ．１０，６４８７（１９８２）、Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１００，４４８（１９８３）等の文献に記載されている方法に準じて行うことができる。
　天然由来のフィブロインは、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質であり、具体的には、例えば、昆虫又はクモ類が産生するフィブロインが挙げられる。
　昆虫が産生するフィブロインとしては、例えば、ボンビックス・モリ（Ｂｏｍｂｙｘ　ｍｏｒｉ）、クワコ（Ｂｏｍｂｙｘ　ｍａｎｄａｒｉｎａ）、天蚕（Ａｎｔｈｅｒａｅａ　ｙａｍａｍａｉ）、柞蚕（Ａｎｔｅｒａｅａ　ｐｅｒｎｙｉ）、楓蚕（Ｅｒｉｏｇｙｎａ　ｐｙｒｅｔｏｒｕｍ）、蓖蚕（Ｐｉｌｏｓａｍｉａ　Ｃｙｎｔｈｉａ　ｒｉｃｉｎｉ）、樗蚕（Ｓａｍｉａ　ｃｙｎｔｈｉａ）、栗虫（Ｃａｌｉｇｕｒａ　ｊａｐｏｎｉｃａ）、チュッサー蚕（Ａｎｔｈｅｒａｅａ　ｍｙｌｉｔｔａ）、ムガ蚕（Ａｎｔｈｅｒａｅａ　ａｓｓａｍａ）等のカイコが産生する絹タンパク質、スズメバチ（Ｖｅｓｐａ　ｓｉｍｉｌｌｉｍａ　ｘａｎｔｈｏｐｔｅｒａ）の幼虫が吐出するホーネットシルクタンパク質が挙げられる。
　昆虫が産生するフィブロインのより具体的な例としては、例えば、カイコ・フィブロインＬ鎖（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｍ７６４３０（塩基配列）、ＡＡＡ２７８４０．１（アミノ酸配列））が挙げられる。
　クモ類が産生するフィブロインとしては、例えば、オニグモ、ニワオニグモ、アカオニグモ、アオオニグモ及びマメオニグモ等のオニグモ属（Ａｒａｎｅｕｓ属）に属するクモ、ヤマシロオニグモ、イエオニグモ、ドヨウオニグモ及びサツマノミダマシ等のヒメオニグモ属（Ｎｅｏｓｃｏｎａ属）に属するクモ、コオニグモモドキ等のコオニグモモドキ属（Ｐｒｏｎｕｓ属）に属するクモ、トリノフンダマシ及びオオトリノフンダマシ等のトリノフンダマシ属（Ｃｙｒｔａｒａｃｈｎｅ属）に属するクモ、トゲグモ及びチブサトゲグモ等のトゲグモ属（Ｇａｓｔｅｒａｃａｎｔｈａ属）に属するクモ、マメイタイセキグモ及びムツトゲイセキグモ等のイセキグモ属（Ｏｒｄｇａｒｉｕｓ属）に属するクモ、コガネグモ、コガタコガネグモ及びナガコガネグモ等のコガネグモ属（Ａｒｇｉｏｐｅ属）に属するクモ、キジロオヒキグモ等のオヒキグモ属（Ａｒａｃｈｎｕｒａ属）に属するクモ、ハツリグモ等のハツリグモ属（Ａｃｕｓｉｌａｓ属）に属するクモ、スズミグモ、キヌアミグモ及びハラビロスズミグモ等のスズミグモ属（Ｃｙｔｏｐｈｏｒａ属）に属するクモ、ゲホウグモ等のゲホウグモ属（Ｐｏｌｔｙｓ属）に属するクモ、ゴミグモ、ヨツデゴミグモ、マルゴミグモ及びカラスゴミグモ等のゴミグモ属（Ｃｙｃｌｏｓａ属）に属するクモ、及びヤマトカナエグモ等のカナエグモ属（Ｃｈｏｒｉｚｏｐｅｓ属）に属するクモが産生するスパイダーシルクタンパク質、並びにアシナガグモ、ヤサガタアシナガグモ、ハラビロアシダカグモ及びウロコアシナガグモ等のアシナガグモ属（Ｔｅｔｒａｇｎａｔｈａ属）に属するクモ、オオシロカネグモ、チュウガタシロカネグモ及びコシロカネグモ等のシロカネグモ属（Ｌｅｕｃａｕｇｅ属）に属するクモ、ジョロウグモ及びオオジョロウグモ等のジョロウグモ属（Ｎｅｐｈｉｌａ属）に属するクモ、キンヨウグモ等のアズミグモ属（Ｍｅｎｏｓｉｒａ属）に属するクモ、ヒメアシナガグモ等のヒメアシナガグモ属（Ｄｙｓｃｈｉｒｉｏｇｎａｔｈａ属）に属するクモ、クロゴケグモ、セアカゴケグモ、ハイイロゴケグモ及びジュウサンボシゴケグモ等のゴケグモ属（Ｌａｔｒｏｄｅｃｔｕｓ属）に属するクモ、及びユープロステノプス属（Ｅｕｐｒｏｓｔｈｅｎｏｐｓ属）に属するクモ等のアシナガグモ科（Ｔｅｔｒａｇｎａｔｈｉｄａｅ科）に属するクモが産生するスパイダーシルクタンパク質が挙げられる。スパイダーシルクタンパク質としては、例えば、ＭａＳｐ（ＭａＳｐ１及びＭａＳｐ２）、ＡＤＦ（ＡＤＦ３及びＡＤＦ４）等の牽引糸タンパク質、ＭｉＳｐ（ＭｉＳｐ１及びＭｉＳｐ２）等が挙げられる。
　クモ類が産生するフィブロインのより具体的な例としては、例えば、ｆｉｂｒｏｉｎ－３（ａｄｆ－３）［Ａｒａｎｅｕｓ　ｄｉａｄｅｍａｔｕｓ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＣ４７０１０（アミノ酸配列）、Ｕ４７８５５（塩基配列））、ｆｉｂｒｏｉｎ－４（ａｄｆ－４）［Ａｒａｎｅｕｓ　ｄｉａｄｅｍａｔｕｓ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＣ４７０１１（アミノ酸配列）、Ｕ４７８５６（塩基配列））、ｄｒａｇｌｉｎｅ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ　１［Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＣ０４５０４（アミノ酸配列）、Ｕ３７５２０（塩基配列））、ｍａｊｏｒ　ａｎｇｕ１１ａｔｅ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ　１［Ｌａｔｒｏｄｅｃｔｕｓ　ｈｅｓｐｅｒｕｓ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢＲ６８８５６（アミノ酸配列）、ＥＦ５９５２４６（塩基配列））、ｄｒａｇｌｉｎｅ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ　２［Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖａｔａ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＬ３２４７２（アミノ酸配列）、ＡＦ４４１２４５（塩基配列））、ｍａｊｏｒ　ａｎｐｕｌｌａｔｅ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ　１［Ｅｕｐｒｏｓｔｈｅｎｏｐｓ　ａｕｓｔｒａｌｉｓ由来］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＣＡＪ００４２８（アミノ酸配列）、ＡＪ９７３１５５（塩基配列））、及びｍａｊｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ　２［Ｅｕｐｒｏｓｔｈｅｎｏｐｓ　ａｕｓｔｒａｌｉｓ］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＣＡＭ３２２４９．１（アミノ酸配列）、ＡＭ４９０１６９（塩基配列））、ｍｉｎｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ　１［Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＣ１４５８９．１（アミノ酸配列））、ｍｉｎｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ　２［Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＡＣ１４５９１．１（アミノ酸配列））、ｍｉｎｏｒ　ａｍｐｕｌｌａｔｅ　ｓｐｉｄｒｏｉｎ－ｌｉｋｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ［Ｎｅｐｈｉｌｅｎｇｙｓ　ｃｒｕｅｎｔａｔａ］（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＡＢＲ３７２７８．１（アミノ酸配列）等が挙げられる。
　天然由来のフィブロインのより具体的な例としては、更に、ＮＣＢＩ　ＧｅｎＢａｎｋに配列情報が登録されているフィブロインを挙げることができる。例えば、ＮＣＢＩ　ＧｅｎＢａｎｋに登録されている配列情報のうちＤＩＶＩＳＩＯＮとしてＩＮＶを含む配列の中から、ＤＥＦＩＮＩＴＩＯＮにｓｐｉｄｒｏｉｎ、ａｍｐｕｌｌａｔｅ、ｆｉｂｒｏｉｎ、「ｓｉｌｋ及びｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ」、又は「ｓｉｌｋ及びｐｒｏｔｅｉｎ」がキーワードとして記載されている配列、ＣＤＳから特定のｐｒｏｄｕｃｔの文字列、ＳＯＵＲＣＥからＴＩＳＳＵＥ　ＴＹＰＥに特定の文字列の記載された配列を抽出することにより確認することができる。
　他の実施形態に係る改変フィブロインは、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含み、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから上記ドメイン配列のＣ末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから上記ドメイン配列のＣ末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上であるアミノ酸配列を有する。
　アミノ酸残基の疎水性指標については、公知の指標（Ｈｙｄｒｏｐａｔｈｙ　ｉｎｄｅｘ：Ｋｙｔｅ　Ｊ，＆Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ　Ｒ（１９８２）“Ａ　ｓｉｍｐｌｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｆｏｒ　ｄｉｓｐｌａｙｉｎｇ　ｔｈｅ　ｈｙｄｒｏｐａｔｈｉｃ　ｃｈａｒａｃｔｅｒ　ｏｆ　ａ　ｐｒｏｔｅｉｎ”，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１５７，ｐｐ．１０５－１３２）を使用する。具体的には、各アミノ酸の疎水性指標（ハイドロパシー・インデックス、以下「ＨＩ」とも記す。）は、下記表１に示すとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　ｘ／ｙの算出方法を更に詳細に説明する。算出には、ドメイン配列から、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列を除いた配列（以下、「配列Ａ」とする）を用いる。まず、配列Ａに含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値を算出する。疎水性指標の平均値は、連続する４アミノ酸残基に含まれる各アミノ酸残基のＨＩの総和を４（アミノ酸残基数）で除して求める。疎水性指標の平均値は、全ての連続する４アミノ酸残基について求める（各アミノ酸残基は、１～４回平均値の算出に用いられる。）。次いで、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域を特定する。あるアミノ酸残基が、複数の「疎水性指標の平均値が２．６以上となる連続する４アミノ酸残基」に該当する場合であっても、領域中には１アミノ酸残基として含まれることになる。そして、当該領域に含まれるアミノ酸残基の総数がｘである。また、配列Ａに含まれるアミノ酸残基の総数がｙである。
　例えば、「疎水性指標の平均値が２．６以上となる連続する４アミノ酸残基」が２０カ所抽出された場合（重複はなし）、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域には、連続する４アミノ酸残基（重複はなし）が２０含まれることになり、ｘは２０×４＝８０である。また、例えば、２つの「疎水性指標の平均値が２．６以上となる連続する４アミノ酸残基」が１アミノ酸残基だけ重複して存在する場合、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域には、７アミノ酸残基含まれることになる（ｘ＝２×４－１＝７。「－１」は重複分の控除である。）。例えば、図１に示したドメイン配列の場合、「疎水性指標の平均値が２．６以上となる連続する４アミノ酸残基」が重複せずに７つ存在するため、ｘは７×４＝２８となる。また、例えば、図１に示したドメイン配列の場合、ｙは４＋５０＋４＋４０＋４＋１０＋４＋２０＋４＋３０＝１７０である（Ｃ末端側の最後に存在する（Ａ）ｎモチーフは含めない）。次に、ｘをｙで除すことによって、ｘ／ｙ（％）を算出することができる。図１の場合２８／１７０＝１６．４７％となる。
　ここで、天然由来のフィブロインにおけるｘ／ｙについて説明する。まず、上述のように、ＮＣＢＩ　ＧｅｎＢａｎｋにアミノ酸配列情報が登録されているフィブロインを例示した方法により確認したところ、６６３種類のフィブロイン（このうち、クモ類由来のフィブロインは４１５種類）が抽出された。抽出された全てのフィブロインのうち、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む天然由来のフィブロインについて、上述の算出方法により、ｘ／ｙを算出した。その結果を図２に示す。図２の横軸はｘ／ｙ（％）を示し、縦軸は頻度を示す。図２から明らかなとおり、天然由来のフィブロインにおけるｘ／ｙは、いずれも６．２％未満である（最も高いもので、６．１２％）。
　本実施形態に係る改変フィブロインにおいて、ｘ／ｙは、６．２％以上であることが好ましく、７％以上であることがより好ましく、１０％以上であることが更に好ましく、２０％以上であることが更により好ましく、３０％以上であることが更によりまた好ましい。ｘ／ｙの上限は、特に制限されないが、例えば、４５％以下であってもよい。
　本実施形態に係る改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインのアミノ酸配列を、上記のｘ／ｙの条件を満たすように、ＲＥＰ中の１又は複数の親水性アミノ酸残基（例えば、疎水性指標がマイナスであるアミノ酸残基）を疎水性アミノ酸残基（例えば、疎水性指標がプラスであるアミノ酸残基）に置換すること、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入することにより、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列に改変することにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から上記のｘ／ｙの条件を満たすアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する改変に加え、更に１又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び／又は付加したことに相当する改変を行ってもよい。
　疎水性指標の大きいアミノ酸残基としては、特に制限はないが、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）、フェニルアラニン（Ｆ）、システイン（Ｃ）、メチオニン（Ｍ）及びアラニン（Ａ）が好ましく、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）及びイソロイシン（Ｉ）がより好ましい。
　本発明に係る改変フィブロインのより具体的な例として、（ｉ）配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列、又は（ｉｉ）配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
　（ｉ）の改変フィブロインについて説明する。配列番号１で示されるアミノ酸配列は、天然由来のフィブロインの（Ａ）ｎモチーフ中のアラニン残基が連続するアミノ酸配列をアラニン残基が連続する数を５つになるよう欠失したものである。配列番号２で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を２カ所挿入し、かつ配列番号１で示されるアミノ酸配列の分子量とほぼ同じとなるようにＮ末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号３で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列に対し、各（Ａ）ｎモチーフのＣ末端側に２つのアラニン残基を挿入し、更に一部のグルタミン（Ｑ）残基をセリン（Ｓ）残基に置換し、かつ配列番号１で示されるアミノ酸配列の分子量とほぼ同じとなるようにＮ末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号４で示されるアミノ酸配列は、配列番号３で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を１カ所挿入したものである。配列番号５で示されるアミノ酸配列は、配列番号３で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を２カ所挿入したものである。
　（ｉ）の改変フィブロインは、配列番号２、配列番号４又は配列番号５で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
　（ｉｉ）の改変フィブロインは、配列番号２、配列番号４又は配列番号５で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。（ｉｉ）の改変フィブロインもまた、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、９５％以上であることが好ましい。
　（ｉｉ）の改変フィブロインは、配列番号２、配列番号４又は配列番号５で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有し、かつ最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上であることが好ましい。
　上述の改変フィブロインは、Ｎ末端及びＣ末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含んでいてもよい。これにより、改変フィブロインの単離、固定化、検出及び可視化等が可能となる。
　タグ配列として、例えば、他の分子との特異的親和性（結合性、アフィニティ）を利用したアフィニティタグを挙げることができる。アフィニティタグの具体例として、ヒスチジンタグ（Ｈｉｓタグ）を挙げることができる。Ｈｉｓタグは、ヒスチジン残基が４から１０個程度並んだ短いペプチドで、ニッケル等の金属イオンと特異的に結合する性質があるため、金属キレートクロマトグラフィー（ｃｈｅｌａｔｉｎｇ　ｍｅｔａｌ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）による改変フィブロインの単離に利用することができる。タグ配列の具体例として、例えば、配列番号５で示されるアミノ酸配列（Ｈｉｓタグを含むアミノ酸配列）が挙げられる。
　また、グルタチオンに特異的に結合するグルタチオン－Ｓ－トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトースに特異的に結合するマルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）等のタグ配列を利用することもできる。
　さらに、抗原抗体反応を利用した「エピトープタグ」を利用することもできる。抗原性を示すペプチド（エピトープ）をタグ配列として付加することにより、当該エピトープに対する抗体を結合させることができる。エピトープタグとして、ＨＡ（インフルエンザウイルスのヘマグルチニンのペプチド配列）タグ、ｍｙｃタグ、ＦＬＡＧタグ等を挙げることができる。エピトープタグを利用することにより、高い特異性で容易に改変フィブロインを精製することができる。
　さらにタグ配列を特定のプロテアーゼで切り離せるようにしたものも使用することができる。当該タグ配列を介して吸着したタンパク質をプロテアーゼ処理することにより、タグ配列を切り離した改変フィブロインを回収することもできる。
　タグ配列を含む改変フィブロインのより具体的な例として、（ｉｉｉ）配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列、又は（ｉｖ）配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
　配列番号８、１０及び１１で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号２、４及び５で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（Ｈｉｓタグを含む）を付加したものである。
　（ｉｉｉ）の改変フィブロインは、配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
　（ｉｖ）の改変フィブロインは、配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。（ｉｖ）の改変フィブロインもまた、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、９５％以上であることが好ましい。
　（ｉｖ）の改変フィブロインは、配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有し、かつ最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上であることが好ましい。
　上述の改変フィブロインは、組換えタンパク質生産系において生産されたタンパク質を宿主の外部に放出するための分泌シグナルを含んでいてもよい。分泌シグナルの配列は、宿主の種類に応じて適宜設定することができる。
［核酸］
　本発明に係る核酸は、本発明に係る改変フィブロインをコードする。核酸の具体例として、配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列を含む改変フィブロイン、又はこれらのアミノ酸配列のＮ末端及びＣ末端のいずれか一方若しくは両方に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列）を結合させたタンパク質等をコードする核酸等が挙げられる。
　一実施形態に係る核酸は、本発明に係る改変フィブロインをコードする核酸の相補鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含み、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフからドメイン配列のＣ末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上である、改変フィブロインをコードする核酸である。
　「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。「ストリンジェントな条件」は、低ストリンジェントな条件、中ストリンジェントな条件及び高ストリンジェントな条件のいずれでもよい。低ストリンジェントな条件とは、少なくとも８５％以上の同一性が配列間に存在する時のみハイブリダイゼーションが起こることを意味し、例えば、０．５％ＳＤＳを含む５×ＳＳＣを用い、４２℃でハイブリダイズする条件が挙げられる。中ストリンジェントな条件とは、少なくとも９０％以上の同一性が配列間に存在する時のみハイブリダイゼーションが起こることを意味し、例えば、０．５％ＳＤＳを含む５×ＳＳＣを用い、５０℃でハイブリダイズする条件が挙げられる。高ストリンジェントな条件とは、少なくとも９５％以上の同一性が配列間に存在する時のみハイブリダイゼーションが起こることを意味し、例えば、０．５％ＳＤＳを含む５×ＳＳＣを用い、６０℃でハイブリダイズする条件が挙げられる。
［宿主及び発現ベクター］
　本発明に係る発現ベクターは、本発明に係る核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する。調節配列は、宿主における組換えタンパク質の発現を制御する配列（例えば、プロモーター、エンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等）であり、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。発現ベクターの種類は、プラスミドベクター、ウイルスベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、人工染色体ベクター等、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。
　本発明に係る宿主は、本発明に係る発現ベクターで形質転換されたものである。宿主として、原核生物、並びに酵母、糸状真菌、昆虫細胞、動物細胞及び植物細胞等の真核生物のいずれも好適に用いることができる。
　発現ベクターとしては、宿主細胞において自立複製が可能、又は宿主の染色体中への組込みが可能で、本発明に係る核酸を転写できる位置にプロモーターを含有しているものが好適に用いられる。
　細菌等の原核生物を宿主として用いる場合は、本発明に係る発現ベクターは、原核生物中で自立複製が可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、本発明に係る核酸及び転写終結配列を含むベクターであることが好ましい。プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。
　原核生物としては、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属等に属する微生物を挙げることができる。
　エシェリヒア属に属する微生物として、例えば、エシェリヒア・コリ　ＢＬ２１（ノバジェン社）、エシェリヒア・コリ　ＢＬ２１（ＤＥ３）（ライフテクノロジーズ社）、エシェリヒア・コリ　ＢＬＲ（ＤＥ３）（メルクミリポア社）、エシェリヒア・コリ　ＤＨ１、エシェリヒア・コリ　ＧＩ６９８、エシェリヒア・コリ　ＨＢ１０１、エシェリヒア・コリ　ＪＭ１０９、エシェリヒア・コリ　Ｋ５（ＡＴＣＣ　２３５０６）、エシェリヒア・コリ　ＫＹ３２７６、エシェリヒア・コリ　ＭＣ１０００、エシェリヒア・コリ　ＭＧ１６５５（ＡＴＣＣ　４７０７６）、エシェリヒア・コリ　Ｎｏ．４９、エシェリヒア・コリ　Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）（ノバジェン社）、エシェリヒア・コリ　ＴＢ１、エシェリヒア・コリ　Ｔｕｎｅｒ（ノバジェン社）、エシェリヒア・コリ　Ｔｕｎｅｒ（ＤＥ３）　（ノバジェン社）、エシェリヒア・コリ　Ｗ１４８５、エシェリヒア・コリ　Ｗ３１１０（ＡＴＣＣ　２７３２５）、エシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）　ＸＬ１－Ｂｌｕｅ、エシェリヒア・コリ　ＸＬ２－Ｂｌｕｅ等を挙げることができる。
　ブレビバチルス属に属する微生物として、例えば、ブレビバチルス・アグリ、ブレビバチルス・ボルステレンシス、ブレビバチルス・セントロポラスブレビバチルス・フォルモサス、ブレビバチルス・インボカツス、ブレビバチルス・ラチロスポラス、ブレビバチルス・リムノフィルス、ブレビバチルス・パラブレビス、ブレビバチルス・レウスゼリ、ブレビバチルス・サーモルバー、ブレビバチルス・ブレビス４７（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１２２３）、ブレビバチルス・ブレビス４７Ｋ（ＦＥＲＭ　ＢＰ－２３０８）、ブレビバチルス・ブレビス４７－５（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１６６４）、ブレビバチルス・ブレビス４７－５Ｑ（ＪＣＭ８９７５）、ブレビバチルス・チョウシネンシスＨＰＤ３１（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１０８７）、ブレビバチルス・チョウシネンシスＨＰＤ３１－Ｓ（ＦＥＲＭ　ＢＰ－６６２３）、ブレビバチルス・チョウシネンシスＨＰＤ３１－ＯＫ（ＦＥＲＭ　ＢＰ－４５７３）、ブレビバチルス・チョウシネンシスＳＰ３株（Ｔａｋａｒａ社製）等を挙げることができる。
　セラチア属に属する微生物として、例えば、セラチア・リクエファシエンス（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｃｅ）ＡＴＣＣ１４４６０、セラチア・エントモフィラ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｅｎｔｏｍｏｐｈｉｌａ）、セラチア・フィカリア（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｆｉｃａｒｉａ）、セラチア・フォンティコーラ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｆｏｎｔｉｃｏｌａ）、セラチア・グリメシ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｇｒｉｍｅｓｉｉ）、セラチア・プロテアマキュランス（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｐｒｏｔｅａｍａｃｕｌａｎｓ）、セラチア・オドリフェラ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｏｄｏｒｉｆｅｒａ）、セラチア・プリムシカ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｐｌｙｍｕｔｈｉｃａ）、セラチア・ルビダエ（Ｓｅｒｒａｔｉａ　ｒｕｂｉｄａｅａ）等を挙げることができる。
　バチルス属に属する微生物として、例えば、バチルス・サチラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、バチルス・アミロリケファシエンス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ）等を挙げることができる。
　ミクロバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム　ＡＴＣＣ１５３５４等を挙げることができる。
　ブレビバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ブレビバクテリウム・ディバリカタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）ＡＴＣＣ１４０２０、ブレビバクテリウム・フラバム（コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１４０６７）ＡＴＣＣ１３８２６、ＡＴＣＣ１４０６７、ブレビバクテリウム・インマリオフィラム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｉｍｍａｒｉｏｐｈｉｌｕｍ）ＡＴＣＣ１４０６８、ブレビバクテリウム・ラクトフェルメンタム（コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９）ＡＴＣＣ１３６６５、ＡＴＣＣ１３８６９、ブレビバクテリウム・ロゼウムＡＴＣＣ１３８２５、ブレビバクテリウム・サッカロリティカム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｓａｃｃｈａｒｏｌｙｔｉｃｕｍ）ＡＴＣＣ１４０６６、ブレビバクテリウム・チオゲニタリスＡＴＣＣ１９２４０、ブレビバクテリウム・アルバムＡＴＣＣ１５１１１、ブレビバクテリウム・セリヌムＡＴＣＣ１５１１２等を挙げることができる。
　コリネバクテリウム属に属する微生物として、例えば、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅｓ）ＡＴＣＣ６８７１、ＡＴＣＣ６８７２、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ＡＴＣＣ１３０３２、コリネバクテリウム・グルタミカム　ＡＴＣＣ１４０６７、コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ａｃｅｔｏａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｍ）ＡＴＣＣ１３８７０、コリネバクテリウム・アセトグルタミカムＡＴＣＣ１５８０６、コリネバクテリウム・アルカノリティカムＡＴＣＣ２１５１１、コリネバクテリウム・カルナエＡＴＣＣ１５９９１、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０２０，ＡＴＣＣ１３０３２，ＡＴＣＣ１３０６０、コリネバクテリウム・リリウムＡＴＣＣ１５９９０、コリネバクテリウム・メラセコーラＡＴＣＣ１７９６５、コリネバクテリウム・サーモアミノゲネスＡＪ１２３４０（ＦＥＲＭＢＰ－１５３９）、コリネバクテリウム・ハーキュリスＡＴＣＣ１３８６８等を挙げることができる。
　シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物として、例えば、シュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｐｕｔｉｄａ）、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、シュードモナス・ブラシカセラム（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｂｒａｓｓｉｃａｃｅａｒｕｍ）、シュードモナス・フルバ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｆｕｌｖａ）、及びシュードモナス・エスピー（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｓｐ．）Ｄ－０１１０等を挙げることができる。
　上記宿主細胞への発現ベクターの導入方法としては、上記宿主細胞へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができる。例えば、カルシウムイオンを用いる方法〔Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，６９，２１１０　（１９７２）〕、プロトプラスト法（特開昭６３－２４８３９４号公報）、又はＧｅｎｅ，１７，１０７（１９８２）やＭｏｌｅｃｕｌａｒ　＆　Ｇｅｎｅｒａｌ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，１６８，１１１（１９７９）に記載の方法等を挙げることができる。
　ブレビバチルス属に属する微生物の形質転換は、例えば、Ｔａｋａｈａｓｈｉらの方法（Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１９８３，１５６：１１３０－１１３４）や、Ｔａｋａｇｉらの方法（Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１９８９，５３：３０９９－３１００）、又はＯｋａｍｏｔｏらの方法（Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１９９７，６１：２０２－２０３）により実施することができる。
　本発明に係る核酸を導入するベクター（以下、単に「ベクター」という。）としては、例えば、ｐＢＴｒｐ２、ｐＢＴａｃ１、ｐＢＴａｃ２（いずれもベーリンガーマンハイム社より市販）、ｐＫＫ２３３－２（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＳＥ２８０（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＧＥＭＥＸ－１（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）、ｐＱＥ－８（ＱＩＡＧＥＮ社製）、ｐＫＹＰ１０（特開昭５８－１１０６００号公報）、ｐＫＹＰ２００〔Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，４８，６６９（１９８４）〕、ｐＬＳＡ１〔Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，５３，２７７（１９８９）〕、ｐＧＥＬ１〔Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８２，４３０６（１９８５）〕、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＩＩ　ＳＫ（－）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）、ｐＴｒｓ３０〔Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ　ＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３０（ＦＥＲＭ　ＢＰ－５４０７）より調製〕、ｐＴｒｓ３２〔Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ　ＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３２（ＦＥＲＭ　ＢＰ－５４０８）より調製〕、ｐＧＨＡ２〔Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ　ＩＧＨＡ２（ＦＥＲＭ　Ｂ－４００）より調製、特開昭６０－２２１０９１号公報〕、ｐＧＫＡ２〔Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ　ＩＧＫＡ２（ＦＥＲＭ　ＢＰ－６７９８）より調製、特開昭６０－２２１０９１号公報〕、ｐＴｅｒｍ２（ＵＳ４６８６１９１、ＵＳ４９３９０９４、ＵＳ５１６０７３５）、ｐＳｕｐｅｘ、ｐＵＢ１１０、ｐＴＰ５、ｐＣ１９４、ｐＥＧ４００〔Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１７２，２３９２（１９９０）〕、ｐＧＥＸ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＥＴシステム（Ｎｏｖａｇｅｎ社製）等を挙げることができる。
　宿主としてＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉを用いる場合は、ｐＵＣ１８、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＳｕｐｅｘ、ｐＥＴ２２ｂ、ｐＣｏｌｄ等を好適なベクターとして挙げることができる。
　ブレビバチルス属に属する微生物に好適なベクターの具体例として、枯草菌ベクターとして公知であるｐＵＢ１１０、又はｐＨＹ５００（特開平２－３１６８２号公報）、ｐＮＹ７００（特開平４－２７８０９１号公報）、ｐＨＹ４８３１（Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１９８７，１２３９－１２４５）、ｐＮＵ２００（鵜高重三、日本農芸化学会誌１９８７，６１：６６９－６７６）、ｐＮＵ１００（Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１９８９，３０：７５－８０）、ｐＮＵ２１１（Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１９９２，１１２：４８８－４９１）、ｐＮＵ２１１Ｒ２Ｌ５（特開平７－１７０９８４号公報）、ｐＮＨ３０１（Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，１９９２，５８：５２５－５３１）、ｐＮＨ３２６、ｐＮＨ４００（Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１９９５，１７７：７４５－７４９）、ｐＨＴ２１０（特開平６－１３３７８２号公報）、ｐＨＴ１１０Ｒ２Ｌ５（Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１９９４，４２：３５８－３６３）、又は大腸菌とブレビバチルス属に属する微生物とのシャトルベクターであるｐＮＣＯ２（特開２００２－２３８５６９号公報）等を挙げることができる。
　プロモーターとしては、宿主細胞中で機能するものであれば制限されない。例えば、ｔｒｐプロモーター（Ｐｔｒｐ）、ｌａｃプロモーター、ＰＬプロモーター、ＰＲプロモーター、Ｔ７プロモーター等の大腸菌又はファージ等に由来するプロモーターを挙げることができる。またＰｔｒｐを２つ直列させたプロモーター（Ｐｔｒｐ×２）、ｔａｃプロモーター、ｌａｃＴ７プロモーター、ｌｅｔ　Ｉプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等も用いることができる。
　リボソーム結合配列であるシャイン－ダルガノ（Ｓｈｉｎｅ－Ｄａｌｇａｒｎｏ）配列と開始コドンとの間を適当な距離（例えば６～１８塩基）に調節したプラスミドを用いることが好ましい。本発明に係る発現ベクターにおいて、本発明に係る核酸の発現には転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。
　真核生物の宿主としては、例えば、酵母、糸状真菌（カビ等）及び昆虫細胞を挙げることができる。
　酵母としては、例えば、サッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、シゾサッカロマイセス（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、クリベロマイセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属、トリコスポロン（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ）属、シワニオミセス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ）属、ピキア（Ｐｉｃｈｉａ）属、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属、ヤロウィア属及びハンゼヌラ属等に属する酵母を挙げることができる。より具体的には、サッカロマイセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）、クリベロマイセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｌａｃｔｉｓ）、クリベロマイセス・マルキシアヌス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｍａｒｘｉａｎｕｓ）、トリコスポロン・プルランス（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ　ｐｕｌｌｕｌａｎｓ）、シワニオマイセス・アルビウス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ　ａｌｌｕｖｉｕｓ）、シワニオマイセス・オシデンタリス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ　ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ）、キャンディダ・ユーティリス（Ｃａｎｄｉｄａ　ｕｔｉｌｉｓ）、ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ　ｐａｓｔｏｒｉｓ）、ピキア・アングスタ（Ｐｉｃｈｉａ　ａｎｇｕｓｔａ）、ピキア・メタノリカ（Ｐｉｃｈｉａ　ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）、ピキア・ポリモルファ（Ｐｉｃｈｉａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）、ピキア・スチピチス（Ｐｉｃｈｉａ　ｓｔｉｐｉｔｉｓ）、ヤロウィア・リポリティカ（Ｙａｒｒｏｗｉａ　ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ）、ハンゼヌラ・ポリモルファ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）等を挙げることができる。
　酵母を宿主細胞として用いる場合の発現ベクターは通常、複製起点（宿主における増幅が必要である場合）及び大腸菌中でのベクターの増殖のための選抜マーカー、酵母における組換えタンパク質発現のためのプロモーター及びターミネーター、並びに酵母のための選抜マーカーを含むことが好ましい。
　発現ベクターが非組込みベクターの場合、さらに自己複製配列（ＡＲＳ）を含むことが好ましい。これにより細胞内における発現ベクターの安定性を向上させることができる（Ｍｙｅｒｓ、Ａ．Ｍ．、ｅｔ　ａｌ．（１９８６）Ｇｅｎｅ　４５：２９９－３１０）。
　酵母を宿主として用いる場合のベクターとしては、例えば、ＹＥＰ１３（ＡＴＣＣ３７１１５）、ＹＥｐ２４（ＡＴＣＣ３７０５１）、ＹＣｐ５０（ＡＴＣＣ３７４１９）、ＹＩｐ、ｐＨＳ１９、ｐＨＳ１５、ｐＡ０８０４、ｐＨＩＬ３Ｏｌ、ｐＨＩＬ－Ｓ１、ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＰＩＣＺα、ｐＧＡＰＺα、ｐＰＩＣＺ　Ｂ等を挙げることができる。
　プロモーターとしては、酵母中で発現できるものであれば制限されない。例えば、ヘキソースキナーゼ等の解糖系の遺伝子のプロモーター、ＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰプロモーター、ＡＤＨプロモーター、ｇａｌ　１プロモーター、ｇａｌ　１０プロモーター、ヒートショックポリペプチドプロモーター、ＭＦα１　プロモーター、ＣＵＰ　１プロモーター、ｐＧＡＰプロモーター、ｐＧＣＷ１４プロモーター、ＡＯＸ１プロモーター、ＭＯＸプロモーター等を挙げることができる。
　酵母への発現ベクターの導入方法としては、酵母にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法（Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１９４，１８２（１９９０））、スフェロプラスト法（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８１，４８８９（１９８４））、酢酸リチウム法（Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１５３，１６３（１９８３））、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，７５，１９２９（１９７８）記載の方法等を挙げることができる。
　糸状真菌としては、例えば、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属、ウスチラーゴ（Ｕｓｔｉｌａｇｏ）属、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）属、ノイロスポラ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）属、フザリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）属、フミコーラ（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）属、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属、マイセリオフトラ（Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｏｒａ）属、ボトリティス（Ｂｏｔｒｙｔｓ）属、マグナポルサ（Ｍａｇｎａｐｏｒｔｈｅ）属、ムコア（Ｍｕｃｏｒ）属、メタリチウム（Ｍｅｔａｒｈｉｚｉｕｍ）属、モナスカス（Ｍｏｎａｓｃｕｓ）属、リゾプス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ）属、及びリゾムコア属に属する菌等を挙げることができる。
　糸状真菌の具体例として、アクレモニウム・アラバメンゼ（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ　ａｌａｂａｍｅｎｓｅ）、アクレモニウム・セルロリティカス（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ　ｃｅｌｌｕｌｏｌｙｔｉｃｕｓ）、アスペルギルス・アクレアツス（アキュレータス）（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ａｃｕｌｅａｔｕｓ）、アスペルギルス・アワモリ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ａｗａｍｏｒｉ）、アスペルギルス・オリゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｏｒｙｚａｅ）、アスペルギルス・サケ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｓａｋｅ）、アスペルギルス・ゾジエ（ソーヤ）（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｓｏｊａｅ）、アスペルギルス・テュビゲンシス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｔｕｂｉｇｅｎｓｉｓ）、アスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｎｉｇｅｒ）、アスペルギルス・ニデュランス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｎｉｄｕｌａｎｓ）、アスペルギルス・パラシチクス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｐａｒａｓｉｔｉｃｕｓ）、アスペルギルス・フィクム（フィキュウム）（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｆｉｃｕｕｍ）、アスペルギルス・フェニクス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｐｈｏｅｉｃｕｓ）、アスペルギルス・フォエチズス（フェチダス）（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｆｏｅｔｉｄｕｓ）、アスペルギルス・フラーブス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｆｌａｖｕｓ）、アスペルギルス・フミガタス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｆｕｍｉｇａｔｕｓ）、アスペルギルス・ヤポニクス（ジャポニカス）（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、トリコデルマ・ビリデ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｖｉｒｉｄｅ）、トリコデルマ・ハージアヌム（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｈａｒｚｉａｎｕｍ）、トリコデルマ・リーゼイ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｓｅｅｉ）、クリソスポリウム・ルクノエンス（Ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ　ｌｕｃｋｎｏｗｅｎｓｅ）、サーモアスクス（Ｔｈｅｒｍｏａｓｃｕｓ）、スポロトリクム（Ｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ）、スポロトリクム・セルロフィルム（Ｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｕｍ　ｃｅｌｌｕｌｏｐｈｉｌｕｍ）、タラロマイセス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）、チエラビア・テレストリス（Ｔｈｉｅｌａｖｉａ　ｔｅｒｒｅｓｔｒｉｓ）、チラビア（Ｔｈｉｅｌａｖｉａ）、ノイロスポラ・クラザ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ　ｃｒａｓｓａ）、フザリウム・オキシスポーラス（Ｆｕｓａｒｉｕｍ　ｏｘｙｓｐｏｒｕｓ）、フザリウム・グラミネルム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ　ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ）、フザリウム・ベネナツム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ　ｖｅｎｅｎａｔｕｍ）、フミコーラ・インソレンス（Ｈｕｍｉｃｏｌａ　ｉｎｓｏｌｅｎｓ）、ペニシリウム・クリゾゲナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｃｈｒｙｓｏｇｅｎｕｍ）、ペニシリウム・カマンベルティ（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｃａｍｅｍｂｅｒｔｉ）、ペニシリウム・カネセンス（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｃａｎｅｓｃｅｎｓ）、ペニシリウム・エメルソニ（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｅｍｅｒｓｏｎｉｉ）、ペニシリウム・フニクロスム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｆｕｎｉｃｕｌｏｓｕｍ）、ペニシリウム・グリゼオロゼウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｇｒｉｓｅｏｒｏｓｅｕｍ）、ペニシリウム・パープロゲナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｐｕｒｐｕｒｏｇｅｎｕｍ）、ペニシリウム・ロケフォルチ（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｒｏｑｕｅｆｏｒｔｉ）、マイセリオフトラ・サーモフィルム（Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔａｏｒａ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｍ）、ムコア・アンビグス（Ｍｕｃｏｒ　ａｍｂｉｇｕｕｓ）、ムコア・シイルシネロイデェス（Ｍｕｃｏｒ　ｃｉｒｃｉｎｅｌｌｏｉｄｅｓ）、ムコア・フラギリス（Ｍｕｃｏｒ　ｆｒａｇｉｌｉｓ）、ムコア・ヘマリス（Ｍｕｃｏｒ　ｈｉｅｍａｌｉｓ）、ムコア・イナエクイスポラス（Ｍｕｃｏｒ　ｉｎａｅｑｕｉｓｐｏｒｕｓ）、ムコア・オブロンジエリプティカス（Ｍｕｃｏｒ　ｏｂｌｏｎｇｉｅｌｌｉｐｔｉｃｕｓ）、ムコア・ラセモサス（Ｍｕｃｏｒ　ｒａｃｅｍｏｓｕｓ）、ムコア・レクルバス（Ｍｕｃｏｒ　ｒｅｃｕｒｖｕｓ）、ムコア・サトゥルニナス（Ｍｏｃｏｒ　ｓａｔｕｒｎｉｎｕｓ）、ムコア・サブティリススミウス（Ｍｏｃｏｒ　ｓｕｂｔｉｌｉｓｓｍｕｓ）、オガタエア・ポリモルファ（Ｏｇａｔａｅａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）、ファネロケーテ・クリソスポリウム（Ｐｈａｎｅｒｏｃｈａｅｔｅ　ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ）、リゾムコア・ミーヘイ（Ｒｈｉｚｏｍｕｃｏｒ　ｍｉｅｈｅｉ）、リゾムコア・プシルス（Ｒｈｉｚｏｍｕｃｏｒ　ｐｕｓｉｌｌｕｓ）、リゾプス・アルヒザス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ　ａｒｒｈｉｚｕｓ）等を挙げることができる。
　宿主が糸状真菌である場合のプロモーターとしては、解糖系に関する遺伝子、構成的発現に関する遺伝子、加水分解に関する酵素遺伝子等いずれであってもよく、具体的にはａｍｙＢ、ｇｌａＡ、ａｇｄＡ、ｇｌａＢ、ＴＥＦ１、ｘｙｎＦ１ｔａｎｎａｓｅｇｅｎｅ、Ｎｏ．８ＡＮ、ｇｐｄＡ、ｐｇｋＡ、ｅｎｏＡ、ｍｅｌＯ、ｓｏｄＭ、ｃａｔＡ、ｃａｔＢ等を挙げることができる。
　糸状真菌への発現ベクターの導入は，従来公知の方法を用いて行うことができる。例えば、Ｃｏｈｅｎらの方法（塩化カルシウム法）［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，６９：２１１０（１９７２）］、プロトプラスト法［Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，１６８：１１１（１９７９）］、コンピテント法［Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，５６：２０９（１９７１）］、エレクトロポレーション法等が挙げられる。
　昆虫細胞として、例えば、鱗翅類の昆虫細胞が挙げられ、より具体的には、Ｓｆ９、及びＳｆ２１等のスポドプテラ・フルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）由来の昆虫細胞、並びに、Ｈｉｇｈ　５等のイラクサギンウワバ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ　ｎｉ）由来の昆虫細胞等が挙げられる。
　昆虫細胞を宿主として用いる場合のベクターとしては、例えば、夜盗蛾科昆虫に感染するウイルスであるアウトグラファ・カリフォルニカ・ヌクレアー・ポリヘドロシス・ウイルス（Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ　ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓ　ｖｉｒｕｓ）等のバキュロウイルス（Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｖｅｃｔｏｒｓ，　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ，Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ　ａｎｄ　Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｎｅｗ　Ｙｏｒｋ（１９９２））を挙げることができる。
　昆虫細胞を宿主として用いる場合には、例えばカレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー、Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｖｅｃｔｏｒｓ，　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ，Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ　ａｎｄ　Ｃｏｍｐａｎｙ，　Ｎｅｗ　Ｙｏｒｋ（１９９２）、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６，４７（１９８８）等に記載された方法によって、ポリペプチドを発現することができる。すなわち、組換え遺伝子導入ベクター及びバキュロウイルスを昆虫細胞に共導入して昆虫細胞培養上清中に組換えウイルス（発現ベクター）を得た後、さらに組換えウイルスを昆虫細胞に感染させ、ポリペプチドを発現させることができる。該方法において用いられる遺伝子導入ベクターとしては、例えば、ｐＶＬ１３９２、ｐＶＬ１３９３、ｐＢｌｕｅＢａｃＩＩＩ（ともにＩｎｖｉｔｏｒｏｇｅｎ社製）等を挙げることができる。
　組換えウイルスを調製するための、昆虫細胞への組換え遺伝子導入ベクターとバキュロウイルスの共導入方法としては、例えば、リン酸カルシウム法（特開平２－２２７０７５号公報）、リポフェクション法（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７））等を挙げることができる。
　本発明に係る組換えベクターは、形質転換体選択のための選択マーカー遺伝子をさらに含有していることが好ましい。例えば、大腸菌においては、選択マーカー遺伝子としては、テトラサイクリン、アンピシリン、カナマイシン等の各種薬剤に対する耐性遺伝子を用いることができる。栄養要求性に関与する遺伝子変異を相補できる劣性の選択マーカーも使用できる。酵母においては、選択マーカー遺伝子として、ジェネティシンに対する耐性遺伝子を用いることができ、栄養要求性に関与する遺伝子変異を相補する遺伝子、ＬＥＵ２、ＵＲＡ３、ＴＲＰ１、ＨＩＳ３等の選択マーカーも使用できる。糸状真菌においては、選択マーカー遺伝子として、ｎｉａＤ（Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，５９，１７９５－１７９７（１９９５））、ａｒｇＢ（Ｅｎｚｙｍｅ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ　Ｔｅｃｈｎｏｌ，６，３８６－３８９，（１９８４）），ｓＣ（Ｇｅｎｅ，８４，３２９－３３４，（１９８９））、ｐｔｒＡ（ＢｉｏｓｃｉＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍ，６４，１４１６－１４２１，（２０００））、ｐｙｒＧ（ＢｉｏｃｈｅｍＢｉｏｐｈｙｓ　Ｒｅｓ　Ｃｏｍｍｕｎ，１１２，２８４－２８９，（１９８３）），ａｍｄＳ（Ｇｅｎｅ，２６，２０５－２２１，（１９８３））、オーレオバシジン耐性遺伝子（Ｍｏｌ　Ｇｅｎ　Ｇｅｎｅｔ，２６１，２９０－２９６，（１９９９））、ベノミル耐性遺伝子（Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ，８３，４８６９－４８７３，（１９８６））及びハイグロマイシン耐性遺伝子（Ｇｅｎｅ，５７，２１－２６，（１９８７））からなる群より選ばれるマーカー遺伝子、ロイシン要求性相補遺伝子等が挙げられる。また、宿主が栄養要求性変異株の場合には、選択マーカー遺伝子として当該栄養要求性を相補する野生型遺伝子を用いることもできる。
　本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主の選択は、本発明に係る核酸に選択的に結合するプローブを用いたプラークハイブリダイゼーション及びコロニーハイブリダイゼーション等で行うことができる。当該プローブとしては、本発明に係る核酸の配列情報に基づき、ＰＣＲ法によって増幅した部分ＤＮＡ断片をラジオアイソトープ又はジゴキシゲニンで修飾したものを用いることができる。
〔改変フィブロインの生産〕
　本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主において、本発明に係る核酸を発現させることにより、本発明に係る改変フィブロインを生産することができる。発現方法としては、直接発現のほか、モレキュラー・クローニング第２版に記載されている方法等に準じて、分泌生産、融合タンパク質発現等を行うことができる。酵母、動物細胞、昆虫細胞により発現させた場合には、糖又は糖鎖が付加されたポリペプチドとして改変フィブロインを得ることができる。
　本発明に係る改変フィブロインは、例えば、本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主を培養培地中で培養し、培養培地中に本発明に係る改変フィブロインを生成蓄積させ、該培養培地から採取することにより製造することができる。本発明に係る宿主を培養培地中で培養する方法は、宿主の培養に通常用いられる方法に従って行うことができる。
　本発明に係る宿主が、大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物である場合、本発明に係る宿主の培養培地として、該宿主が資化し得る炭素源、窒素源及び無機塩類等を含有し、該宿主の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。
　炭素源としては、該宿主が資化し得るものであればよく、例えば、グルコース、フラクトース、スクロース、及びこれらを含有する糖蜜、デンプン及びデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸及びプロピオン酸等の有機酸、並びにエタノール及びプロパノール等のアルコール類を用いることができる。
　窒素源としては、例えば、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム及びリン酸アンモニウム等の無機酸又は有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びにペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕及び大豆粕加水分解物、各種発酵菌体及びその消化物を用いることができる。
　無機塩としては、例えば、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅及び炭酸カルシウムを用いることができる。
　大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物の培養は、例えば、振盪培養又は深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行うことができる。培養温度は、例えば、１５～４０℃である。培養時間は、通常１６時間～７日間である。培養中の培養培地のｐＨは３．０～９．０に保持することが好ましい。培養培地のｐＨの調整は、無機酸、有機酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム及びアンモニア等を用いて行うことができる。
　また、培養中必要に応じて、アンピシリン及びテトラサイクリン等の抗生物質を培養培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトピラノシド等を、ｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。
　昆虫細胞の培養培地としては、一般に使用されているＴＮＭ－ＦＨ培地（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）、Ｓｆ－９００　ＩＩ　ＳＦＭ培地（Ｌｉｆｅ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）、ＥｘＣｅｌｌ４００、ＥｘＣｅｌｌ４０５（いずれもＪＲＨ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）、Ｇｒａｃｅ’ｓ　Ｉｎｓｅｃｔ　Ｍｅｄｉｕｍ（Ｎａｔｕｒｅ，１９５，７８８（１９６２））等を用いることができる。
　昆虫細胞の培養は、例えば、培養培地のｐＨ６～７、培養温度２５～３０℃等の条件下で、培養時間１～５日間とすることができる。また、培養中必要に応じて、ゲンタマイシン等の抗生物質を培養培地に添加してもよい。
　宿主が植物細胞の場合、形質転換された植物細胞をそのまま培養してもよく、また植物の器官に分化させて培養することができる。該植物細胞を培養する培地としては、一般に使用されているムラシゲ・アンド・スクーグ（ＭＳ）培地、ホワイト（Ｗｈｉｔｅ）培地、又はこれらの培地にオーキシン、サイトカイニン等、植物ホルモンを添加した培地等を用いることができる。
　動物細胞の培養は、例えば、培養培地のｐＨ５～９、培養温度２０～４０℃等の条件下で、培養時間３～６０日間とすることができる。また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ハイグロマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主を用いて改変フィブロインを生産する方法としては、該改変フィブロインを宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、及び宿主細胞外膜上に生産させる方法がある。使用する宿主細胞、及び生産させる改変フィブロインの構造を変えることにより、これらの各方法を選択することができる。
　例えば、改変フィブロインが宿主細胞内又は宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６４，１７６１９（１９８９））、ロウらの方法（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６，８２２７（１９８９）、Ｇｅｎｅｓ　Ｄｅｖｅｌｏｐ．，４，１２８８（１９９０））、又は特開平５－３３６９６３号公報、国際公開第９４／２３０２１号等に記載の方法を準用することにより、改変フィブロインを宿主細胞外に積極的に分泌させるように変更させることができる。すなわち、遺伝子組換えの手法を用いて、改変フィブロインの活性部位を含むポリペプチドにシグナルペプチドを付加した形で発現させることにより、改変フィブロインを宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。
　本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主により生産された改変フィブロインは、タンパク質の単離精製に通常用いられている方法で単離及び精製することができる。例えば、改変フィブロインが、細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後、宿主細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液にけん濁した後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー及びダイノミル等により宿主細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、タンパク質の単離精製に通常用いられている方法、すなわち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）－セファロース、ＤＩＡＩＯＮ　ＨＰＡ－７５（三菱化成社製）等のレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、Ｓ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＦＦ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の方法を単独又は組み合わせて使用し、精製標品を得ることができる。
　上記クロマトグラフィーとしては、フェニル－トヨパール（東ソー）、ＤＥＡＥ－トヨパール（東ソー）、セファデックスＧ－１５０（ファルマシアバイオテク）を用いたカラムクロマトグラフィーが好ましく用いられる。
　また、改変フィブロインが細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、同様に宿主細胞を回収後、破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として改変フィブロインの不溶体を回収する。回収した改変フィブロインの不溶体は蛋白質変性剤で可溶化することができる。該操作の後、上記と同様の単離精製法により改変フィブロインの精製標品を得ることができる。
　改変フィブロイン、又は改変フィブロインに糖鎖の付加された誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清から改変フィブロイン又はその誘導体を回収することができる。すなわち、培養物を遠心分離等の手法により処理することにより培養上清を取得し、該培養上清から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。
〔モールド成形体の製造方法〕
　本実施形態に係るモールド成形体は、本実施形態に係る改変フィブロインを含む成形用組成物から加圧成形機を用いて製造することができる。図３は、モールド成形体の製造に用いる加圧成形機の一実施形態を示す模式断面図である。図３に示す加圧成形機１０は、貫通孔が形成され加温可能な金型２と、金型２の貫通孔内で上下動が可能な上側ピン４及び下側ピン６とを備える。金型２に、上側ピン４又は下側ピン６を挿入して生じる空隙に、改変フィブロインを含む成形用組成物を導入して、金型２を加温しつつ、上側ピン４及び下側ピン６で組成物を圧縮することで、モールド成形体を得ることができる。
　図４は、モールド成形体の製造方法の一実施形態を模式的に示す工程図である。図４（ａ）は組成物を導入する前の加圧成形機の模式断面図、図４（ｂ）は組成物の導入直後の加圧成形機の模式断面図、並びに図４（ｃ）は組成物を加熱及び加圧している状態、又は加熱及び加圧後の加圧成形機の模式断面図である。図４（ａ）に示すように、金型２の貫通孔に下側ピン６のみを挿入した状態で貫通孔内に組成物を導入し、図４（ｂ）に示すように、金型２の貫通孔に上側ピン４を挿入して下降させ、金型２の加熱を開始して、加熱加圧前の組成物８ａを貫通孔内で加熱加圧する。あらかじめ定めた加圧力に至るまで上側ピン４を下降させ、図４（ｃ）に示す状態で組成物が所定の温度に達するまで、加熱及び加圧を継続して、加熱加圧後の組成物８ｂを得る。その後、冷却器（例えばスポットクーラー）を用いて金型２の温度を下降させ、組成物８ｂが所定の温度になったところで、上側ピン４又は下側ピン６を金型２から抜き取り、内容物を取り出して、モールド成形体を得る。加圧に関しては、下側ピン６を固定した状態で上側ピン４を下降させて実施してもよいが、上側ピン４の下降と下側ピン６の上昇の両方を実施してもよい。
　加熱は、８０～３００℃で行うことが好ましく、１００～１８０℃で行うことがより好ましく、１００～１３０℃で行うことが更に好ましい。加圧は、５ｋＮ以上で行うことが好ましく、１０ｋＮ以上で行うことがより好ましく、２０ｋＮ以上で行うことが更に好ましい。また、所定の加熱加圧条件に達した後、その条件での処理を続ける時間（保温条件）は、０～１００分が好ましく、１～５０分がより好ましく、５～３０分が更に好ましい。
　改変フィブロインを含む成形用組成物は、改変フィブロインのみを含むものであってもよく、また任意の添加剤を更に含むものであってもよい。添加剤を含ませることにより種々の異なる物性を有する成形用組成物を製造することができる。添加剤としては、例えば、軟化剤、結晶核剤、発泡剤、耐候剤、耐加水分解剤、還元剤、着色剤、改質剤、安定剤、滑剤、充填剤、難燃剤、強化剤、離型剤、帯電防止剤、酸化防止剤等が挙げられる。
　軟化剤としては例えば、グリセリン、ポリエチレングリコール等の高分子量アルコール、デンプン等の糖類、水、界面活性剤等が挙げられる。
　結晶核剤としては例えば、カオリン、タルク、モンモリロイド、酸化マグネシウム、酸化アルミニウム、他種類のポリアミド等が挙げられる。
　発泡剤としては例えば、炭酸水素ナトリウムに酸又はアルカリを加えたもの、アルミ粉末に酸を加えたもの、イソシアネートに水を加えたもの等が挙げられる。
　耐候剤としては例えば、ベンゾトリアゾール、ベンゾフェノン、トリアジン等が挙げられる。
　耐加水分解剤としては例えば、エポキシ試薬、カルボジイミド、イソシアネート、オキサゾリン等が挙げられる。
［製品］
　本発明に係る改変フィブロインから形成されたフィブロイン繊維は、繊維又は糸として、織物、編物、組み物、不織布等に応用できる。また、ロープ、手術用縫合糸、電気部品用の可撓性止め具、さらには移植用生理活性材料（例えば、人工靭帯及び大動脈バンド）等の高強度用途にも応用できる。
　また、本発明に係る改変フィブロインは、フィラメント、フィルム、発泡体、球体、ナノフィブリル、ヒドロゲル、樹脂及びその等価物にも応用でき、これらは、特開２００９－５０５６６８号公報、特開２００９－５０５６６８号公報、特許第５６７８２８３号公報、特許第４６３８７３５号公報等に記載の方法に準じて製造することができる。
　以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
〔（１）改変フィブロインをコードする核酸の合成、及び発現ベクターの構築〕
　天然由来のフィブロインであるＮｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：Ｐ４６８０４．１、ＧＩ：１１７４４１５）の塩基配列及びアミノ酸配列に基づき、配列番号１～５及び７～１１で示されるアミノ酸配列を有するフィブロイン及び改変フィブロインを設計した。
　配列番号１で示されるアミノ酸配列は、上記天然由来のフィブロインの（Ａ）ｎモチーフ中のアラニン残基が連続するアミノ酸配列をアラニン残基が連続する数を５つになるよう欠失したものである。配列番号７で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）を付加したものである（比較例１）。
　配列番号２で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を２カ所挿入し、かつ配列番号１で示されるアミノ酸配列の分子量とほぼ同じとなるようにＮ末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号８で示されるアミノ酸配列は、配列番号２で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）を付加したものである（実施例１）。
　配列番号３で示されるアミノ酸配列は、配列番号１で示されるアミノ酸配列に対し、各（Ａ）ｎモチーフのＣ末端側に２つのアラニン残基を挿入し、更に一部のグルタミン（Ｑ）残基をセリン（Ｓ）残基に置換し、かつ配列番号１で示されるアミノ酸配列の分子量とほぼ同じとなるようにＮ末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号９で示されるアミノ酸配列は、配列番号２で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）を付加したものである（比較例２）。
　配列番号４で示されるアミノ酸配列は、配列番号３で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を１カ所挿入したものである。配列番号１０で示されるアミノ酸配列は、配列番号４で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）を付加したものである（実施例２）。
　配列番号５で示されるアミノ酸配列は、配列番号３で示されるアミノ酸配列に対し、ＲＥＰ一つ置きにそれぞれ３アミノ酸残基からなるアミノ酸配列（ＶＬＩ）を２カ所挿入したものである。配列番号１１で示されるアミノ酸配列は、配列番号５で示されるアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）を付加したものである（実施例３）。
　設計した配列番号１～５で示されるアミノ酸配列それぞれのＮ末端にＨｉｓタグ配列及びヒンジ配列（配列番号６）を付加した配列番号７～１１で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする核酸をそれぞれ合成した。当該核酸には、５’末端にＮｄｅＩサイト、終止コドン下流にＥｃｏＲＩサイトを付加した。これら５種類の核酸をクローニングベクター（ｐＵＣ１１８）にクローニングした。その後、同核酸をＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで制限酵素処理して切り出した後、タンパク質発現ベクターｐＥＴ－２２ｂ（＋）に組換えて発現ベクターを得た。
〔（２）タンパク質の発現〕
　配列番号７～１１で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする核酸を含むｐＥＴ２２ｂ（＋）発現ベクターで、大腸菌ＢＬＲ（ＤＥ３）を形質転換した。当該形質転換大腸菌を、アンピシリンを含む２ｍＬのＬＢ培地で１５時間培養した。当該培養液をアンピシリンを含む１００ｍＬのシード培養用培地（表２）にＯＤ６００が０．００５となるように添加した。培養液温度を３０℃に保ち、ＯＤ６００が５になるまでフラスコ培養を行い（約１５時間）、シード培養液を得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　当該シード培養液を５００ｍｌの生産培地（表３）を添加したジャーファーメンターにＯＤ６００が０．０５となるように添加して形質転換大腸菌を植菌した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　生産培地中のグルコースが完全に消費された直後に、フィード液（グルコース４５５ｇ／１Ｌ、Ｙｅａｓｔ　Ｅｘｔｒａｃｔ　１２０ｇ／１Ｌ）を１ｍｌ／分の速度で添加した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにし、２０時間培養を行った。その後、１Ｍのイソプロピル－β－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を培養液に対して終濃度１ｍＭになるよう添加し、目的のタンパク質を発現誘導させた。ＩＰＴＧ添加後２０時間経過した時点で、培養液を遠心分離し、菌体を回収した。ＩＰＴＧ添加前とＩＰＴＧ添加後の培養液から調製した菌体を用いてＳＤＳ－ＰＡＧＥを行い、ＩＰＴＧ添加に依存した目的とするタンパク質サイズのバンドの出現により、目的とするタンパク質の発現を確認した。
〔（３）タンパク質の精製〕
　ＩＰＴＧを添加してから２時間後に回収した菌体を２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の菌体を約１ｍＭのＰＭＳＦを含む２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）に懸濁させ、高圧ホモジナイザー（ＧＥＡ　Ｎｉｒｏ　Ｓｏａｖｉ社）で細胞を破砕した。破砕した細胞を遠心分離し、沈殿物を得た。得られた沈殿物を、高純度になるまで２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の沈殿物を１００ｍｇ／ｍＬの濃度になるように８Ｍ　グアニジン緩衝液（８Ｍグアニジン塩酸塩、１０ｍＭリン酸二水素ナトリウム、２０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．０）で懸濁し、６０℃で３０分間、スターラーで撹拌し、溶解させた。溶解後、透析チューブ（三光純薬株式会社製のセルロースチューブ３６／３２）を用いて水で透析を行った。透析後に得られた白色の凝集タンパク質を遠心分離により回収し、凍結乾燥機で水分を除き、凍結乾燥粉末を回収した。
　得られた凍結乾燥粉末における目的タンパク質の精製度は、粉末のポリアクリルアミドゲル電気泳動の結果をＴｏｔａｌｌａｂ（ｎｏｎｌｉｎｅａｒ　ｄｙｎａｍｉｃｓ　ｌｔｄ．）を用いて画像解析することにより確認した。その結果、いずれのタンパク質も精製度は約８５％であった。凍結乾燥粉末の重量から計算した各目的タンパク質の生産量を、ＧＥＮ４９５（配列番号７：比較例１）の値を１００としたときの相対値として、表４及び表５に示した。
〔（４）モールド成形体の製造〕
　上記〔（３）タンパク質の精製〕で得られた凍結乾燥粉末（以下「サンプル」という。）をそれぞれ１．３５ｇ量り取り、このサンプルを図３に示す加圧成形機１０の金型２（円柱形状の金型であり、断面が３５ｍｍ×１５ｍｍの長方形状の貫通孔を有している。）の貫通孔内に導入した。この際、厚みが均等になるようにサンプルを加えていった。全てのサンプルを導入した後、金型２の加熱を開始するとともに、ハンドプレス機（ＮＰａシステム株式会社製、ＮＴ－１００Ｈ－Ｖ０９）を用いて、上側ピン４と下側ピン６を貫通孔内に挿入することでサンプルの加圧を行った。この際、サンプルの加圧条件が４０ｋＮとなるように制御した。サンプルの温度が２００℃になったところで加熱を中止し、スポットクーラー（トラスコ中山株式会社製、ＴＳ－２５ＥＰ－１）で冷却した。サンプルの温度が５０℃になったところで取り出し、バリ取りを行い、３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状のモールド成形体を得た。
〔（５）曲げ強度の測定〕
　得られたモールド成形体を、恒温恒湿槽（ｅｓｐｅｃ社製、ＬＨＬ－１１３）内、２０℃、６５％の条件下で１日静置した後、オートグラフ（島津製作所株式会社製、ＡＧ－Ｘｐｌｕｓ）と籠治具を用い、三点曲げ試験を行った。ロードセルとして定格容量５０ｋＮのものを使用した。この際、三点曲げの支点間距離を２７ｍｍに固定し、測定速度を１ｍｍ／分とした。また、モールド成形体のサイズはマイクロノギスで測定した。曲げ強度測定試験の結果を、ＧＥＮ４９５（配列番号７：比較例１）の値を１００としたときの相対値として表４に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　ＲＥＰ中に局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する改変フィブロインは、生産性が著しく向上し（実施例１～３）、当該改変フィブロインから製造したモールド成形体は、曲げ強度が著しく向上した（実施例１）。
　２…金型、４…上側ピン、６…下側ピン、８ａ…加熱加圧前の組成物、８ｂ…加熱加圧後の組成物、１０…加圧成形機。

Claims (28)

  1. 　式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
    　前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、改変フィブロイン。
    ［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
  2. 　前記局所的に疎水性指標の大きい領域が、連続する２～４アミノ酸残基で構成されている、請求項１に記載の改変フィブロイン。
  3. 　前記疎水性指標の大きいアミノ酸残基が、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）、フェニルアラニン（Ｆ）、システイン（Ｃ）、メチオニン（Ｍ）及びアラニン（Ａ）から選ばれる、請求項１又は２に記載の改変フィブロイン。
  4. 　式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
    　最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから前記ドメイン配列のＣ末端までの配列を前記ドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのＲＥＰにおいて、連続する４アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が２．６以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をｘとし、最もＣ末端側に位置する（Ａ）ｎモチーフから前記ドメイン配列のＣ末端までの配列を前記ドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をｙとしたときに、ｘ／ｙが６．２％以上である、改変フィブロイン。
    ［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
  5. 　天然由来のフィブロインと比較して、ＲＥＰ中の１又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び／又はＲＥＰ中に１又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当するのに加え、更に１又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び／又は付加したことに相当するアミノ酸配列を有する、請求項１～４のいずれか一項に記載の改変フィブロイン。
  6. 　前記天然由来のフィブロインが、昆虫又はクモ類由来のフィブロインである、請求項５に記載の改変フィブロイン。
  7. 　前記天然由来のフィブロインが、クモ類の大瓶状スパイダータンパク質（ＭａＳｐ）又は小瓶状スパイダータンパク質（ＭｉＳｐ）である、請求項５に記載の改変フィブロイン。
  8. 　配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号２、配列番号４若しくは配列番号５で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロイン。
  9. 　更に、Ｎ末端及びＣ末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含む、請求項１～８のいずれか一項に記載の改変フィブロイン。
  10. 　前記タグ配列が、配列番号６で示されるアミノ酸配列を含む、請求項９に記載の改変フィブロイン。
  11. 　配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列、又は配列番号８、配列番号１０若しくは配列番号１１で示されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロイン。
  12. 　請求項１～１１のいずれか一項に記載の改変フィブロインをコードする核酸。
  13. 　請求項１２に記載の核酸の相補鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインをコードする核酸。
    ［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
  14. 　請求項１３に記載の核酸と９０％以上の配列同一性を有し、かつ式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ］ｍで表されるドメイン配列を含む改変フィブロインをコードする核酸。
    ［式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８３％以上である。ＲＥＰは１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは１０～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。］
  15. 　請求項１２～１４のいずれか一項に記載の核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する発現ベクター。
  16. 　プラスミドベクター又はウイルスベクターである、請求項１５に記載の発現ベクター。
  17. 　請求項１５又は１６に記載の発現ベクターで形質転換された宿主。
  18. 　原核生物である、請求項１７に記載の宿主。
  19. 　前記原核生物が、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属からなる群より選択される属に属する微生物である、請求項１８に記載の宿主。
  20. 　真核生物である、請求項１７に記載の宿主。
  21. 　前記真核生物が、酵母、糸状真菌又は昆虫細胞である、請求項２０に記載の宿主。
  22. 　前記酵母が、サッカロマイセス属、シゾサッカロマイセス属、クリベロマイセス属、トリコスポロン属、シワニオミセス属、ピキア属、キャンディダ属、ヤロウィア属及びハンゼヌラ属からなる群より選択される属に属する酵母である、請求項２１に記載の宿主。
  23. 　前記サッカロマイセス属に属する酵母が、サッカロマイセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）であり、前記シゾサッカロマイセス属に属する酵母が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）であり、前記クリベロマイセス属に属する酵母が、クリベロマイセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｌａｃｔｉｓ）であり、前記トリコスポロン属に属する酵母が、トリコスポロン・プルランス（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ　ｐｕｌｌｕｌａｎｓ）であり、前記シワニオミセス属に属する酵母が、シワニオマイセス・アルビウス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ　ａｌｌｕｖｉｕｓ）であり、前記ピキア属に属する酵母が、ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ　ｐａｓｔｏｒｉｓ）であり、前記キャンディダ属に属する酵母がキャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ　ａｌｂｉｃａｎｓ）であり、前記ヤロウィア属に属する酵母が、ヤロウィア・リポリティカ（Ｙａｒｒｏｗｉａ　ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ）であり、前記ハンゼヌラ属に属する酵母が、ハンゼヌラ・ポリモルファ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）である、請求項２２に記載の宿主。
  24. 　前記糸状真菌が、アスペルギルス属、ペニシリウム属及びムコア属からなる群より選択される属に属する糸状真菌である、請求項２１に記載の宿主。
  25. 　前記アスペルギルス属に属する糸状真菌が、アスペルギルス・オリゼであり、前記ペニシリウム属に属する糸状真菌が、ペニシリウム・クリゾゲナムであり、前記ムコア属に属する糸状真菌が、ムコア・フラギリスである、請求項２４に記載の宿主。
  26. 　前記昆虫細胞が、鱗翅類の昆虫細胞である、請求項２１に記載の宿主。
  27. 　前記昆虫細胞が、スポドプテラ・フルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）由来の昆虫細胞、又はイラクサギンウワバ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ　ｎｉ）由来の昆虫細胞である、請求項２６に記載の宿主。
  28. 　請求項１～１１のいずれか一項に記載の改変フィブロインを含み、
    　繊維、糸、フィラメント、フィルム、発泡体、球体、ナノフィブリル、ヒドロゲル、樹脂及びその等価物からなる群から選択される、製品。
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