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WO2017110975A1 - キシロオリゴ糖組成物の製造方法 - Google Patents

キシロオリゴ糖組成物の製造方法 Download PDF

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WO2017110975A1
WO2017110975A1 PCT/JP2016/088294 JP2016088294W WO2017110975A1 WO 2017110975 A1 WO2017110975 A1 WO 2017110975A1 JP 2016088294 W JP2016088294 W JP 2016088294W WO 2017110975 A1 WO2017110975 A1 WO 2017110975A1
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WO
WIPO (PCT)
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membrane
separation membrane
molecular weight
xylooligosaccharide
sugar solution
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2016/088294
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English (en)
French (fr)
Inventor
千晶 山田
裕佳 旭
茂行 舩田
栗原 宏征
淳 南野
山田 勝成
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Toray Industries Inc
Original Assignee
Toray Industries Inc
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Publication date
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Publication of WO2017110975A1 publication Critical patent/WO2017110975A1/ja
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Ceased legal-status Critical Current

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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H3/00Compounds containing only hydrogen atoms and saccharide radicals having only carbon, hydrogen, and oxygen atoms
    • C07H3/04Disaccharides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H3/00Compounds containing only hydrogen atoms and saccharide radicals having only carbon, hydrogen, and oxygen atoms
    • C07H3/06Oligosaccharides, i.e. having three to five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/14Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C13SUGAR INDUSTRY
    • C13KSACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K13/00Sugars not otherwise provided for in this class

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a xylooligosaccharide composition by selectively concentrating xylooligosaccharides using a separation membrane.
  • Oligosaccharides are saccharides in which several monosaccharides are linked by glycosidic bonds, and various saccharides such as galactooligosaccharides, fructooligosaccharides, xylooligosaccharides, isomaltoligosaccharides, and dairy oligosaccharides are known. Yes. These oligosaccharides have specific sweetness, low calorie, caries resistance, and other specific health foods that have a selective growth-promoting effect on enterobacteria and keep the stomach in good condition. Many are commercially available.
  • xylo-oligosaccharides are less susceptible to degradation by digestive enzymes such as acid and amylase, and when ingested by humans, they reach the large intestine without being decomposed or absorbed. Compared to other oligosaccharides The effect is demonstrated with a small amount.
  • xylobiose composed of two molecules of xylose is known to have high utilization efficiency of lactic acid bacteria.
  • Xylooligosaccharides are used not only for human food use but also as an additive for livestock feed.
  • Xylo-oligosaccharide is manufactured from xylan, which is one of the main components of plants.
  • a method for producing xylooligosaccharide a method of hydrolyzing and extracting xylan contained in hemicellulose in a raw material by circulating high-temperature and high-pressure water through crushed hardwood (Patent Document 1), corn cob, cottonseed husk, bagasse and Known is a method (Patent Document 2) in which a plant raw material selected from the group consisting of rice straw is subjected to an alkali treatment or a pressure heat treatment, followed by an enzyme treatment.
  • xylo-oligosaccharides obtained by such production methods almost always contain impurities such as monosaccharides that do not have physiological functions and aromatic compounds derived from plant raw materials, so that the functionality of xylo-oligosaccharides is enhanced. Requires a purification process of xylo-oligosaccharides.
  • oligosaccharides methods using ion exchange resins and activated carbon, and methods using separation membranes are known.
  • a hydrolyzate of a xylan-containing plant material is subjected to nanofiltration using a nanofiltration membrane having a cutoff size (synonymous with a fractional molecular weight) of 150 to 500 g / mol.
  • a method for recovering oligosaccharide and hexose such as glucose from the non-permeation side is disclosed.
  • Patent Document 4 an aqueous sugar solution obtained by hydrolyzing cellulose-containing biomass is filtered through a separation membrane having a fractional molecular weight of 600 to 2,000 to remove a fermentation inhibitor from the permeate side, A method of concentrating a sugar solution mainly composed of monosaccharides (glucose and xylose) on the non-permeate side is disclosed.
  • xylooligosaccharides are produced and purified according to the above-described method, if the xylooligosaccharides before purification contain monosaccharides such as glucose and xylose, the xylooligosaccharides and monosaccharides cannot be separated.
  • monosaccharides such as glucose and xylose
  • sugar and glucose are mixed, there is a problem in that the effects of calories and sweetness caused by glucose cannot be excluded, and the usage is limited.
  • an object of the present invention is to provide a method for producing a high-purity xylo-oligosaccharide composition by separating monosaccharides and xylo-oligosaccharides.
  • a sugar solution containing at least xylobiose containing xylobiose and a monosaccharide containing glucose and xylose is filtered through a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off of 300 to 1,000.
  • a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off of 300 to 1,000.
  • the present invention has the following configurations (1) to (6).
  • a sugar solution containing at least a xylobiose containing xylobiose and a monosaccharide containing glucose and xylose is filtered through a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off in the range of 300 to 1,000, and the xylooligosaccharide on the non-permeate side
  • a method for producing a xylooligosaccharide composition comprising a step of selectively concentrating sugars.
  • the step of filtering the sugar solution through a separation membrane having a molecular weight cut off of 2,000 to 100,000 as a pre-step of the filtration step using the polyamide separation membrane includes (1) to (5 ).
  • the manufacturing method of the xylooligosaccharide composition in any one of.
  • a monosaccharide and a xylo-oligosaccharide can be easily separated, and a high-quality xylo-oligosaccharide concentrate having a low monosaccharide content can be obtained.
  • Xylooligosaccharide is a general term for oligosaccharides in which several xyloses are linked. Specific examples include xylobiose, xylotriose, xylotetraose, xylopentaose, xylohexaose, and arabinose and uron in the side chain. The thing which the acid couple
  • a xylo-oligosaccharide containing at least xylobiose and a sugar solution containing glucose and xylose (hereinafter also simply referred to as a sugar solution) used in the present invention can be obtained, for example, by hydrolyzing biomass containing xylan and cellulose.
  • Sugar solutions prepared by mixing commercially available reagents, sugar solutions prepared by adding reagents to sugar solutions obtained by hydrolyzing biomass, and the like can be used.
  • Xylan is a constituent component of hemicellulose present in the cell wall of plant cells, and is a heterosaccharide having various side chains bonded to a ⁇ -1,4-bonded xylose main chain.
  • plant cells contain polysaccharides such as cellulose, which is a ⁇ -1,4-linked glucose polymer, and lignin, which is an aromatic polymer. It is entangled in a complicated way.
  • the sugar liquid obtained by hydrolyzing biomass containing xylan and cellulose contains glucose produced by hydrolysis of cellulose, xylooligosaccharide and xylose produced by hydrolysis of xylan.
  • an aromatic compound derived from lignin, acetic acid released from the xylan side chain, and the like may be contained in the sugar solution.
  • the biomass containing xylan and cellulose is not particularly limited as long as it is a plant-derived resource containing xylan and cellulose.
  • plants such as seed plants, fern plants, moss plants, algae, aquatic plants, etc., use of waste building materials, etc. Can do.
  • Seed plants are classified into gymnosperms and angiosperms, and both can be preferably used.
  • Angiosperms are further classified into monocotyledonous plants and dicotyledonous plants.
  • Specific examples of monocotyledonous plants include bagasse, switchgrass, napiergrass, eliansus, corn stover, corn cob, rice straw, and straw.
  • dicotyledonous plants beet pulp, eucalyptus, oak, birch and the like are preferably used.
  • Particularly preferred in the present invention is bagasse.
  • the method of hydrolyzing biomass containing xylan and cellulose is not particularly limited, but acid treatment with sulfuric acid, acetic acid, etc., alkali treatment with caustic soda, ammonia, etc., hydrothermal treatment, subcritical water treatment, steaming treatment, enzyme treatment, etc. Can be mentioned. These treatment methods may be carried out singly or a plurality of treatment methods may be combined. However, in order to increase the content of xylo-oligosaccharide in the sugar solution, it is preferable to carry out enzyme treatment, particularly xylanase treatment. More preferably, the biomass is hydrolyzed by one or more other methods before the xylanase treatment.
  • the xylanase is not particularly limited as long as it has an activity to hydrolyze xylan to produce xylo-oligosaccharides.
  • “Sumiteam” (registered trademark) X manufactured by Shin Nippon Chemical Industry Co., Ltd.
  • “Suclase” registered trademark)
  • X manufactured by Mitsubishi Chemical Foods Co., Ltd.
  • "Cellulosin” registered trademark
  • TP25 manufactured by HIBI Co., Ltd.
  • VERON 191 manufactured by AB Enzymes
  • Trichoderma Aspergillus genus (Aspergillus)
  • Thermomyces Aureobasidium, Streptomyces, Clostridium, Bacillus, Motoga genus (Thermotoga), Acremonium (Acremonium), Mucor (Mucor)
  • it can be used xylanase produced
  • filtration is performed using a polyamide separation membrane having a fractional molecular weight in the range of 300 to 1,000, preferably a polyamide separation membrane having a fractional molecular weight in the range of 300 to 500, so that it is contained in the sugar solution. It is characterized in that impurities other than the above xylooligosaccharide, particularly glucose and xylose are removed to the permeate side, and the xylooligosaccharide concentrate is recovered from the non-permeate side.
  • Fractionated molecular weight refers to the Membrane Society of Japan, Membrane Experiment Series, Volume III, Artificial Membrane Editor / ist Kimura, Shinichi Nakao, Haruhiko Ohya, Tsutomu Nakagawa (1993, Kyoritsu Shuppan)
  • a plot of data with the rejection rate on the axis and the data plotted on the axis is called a fractionated molecular weight curve.
  • the molecular weight at which the blocking rate is 90% is called the fractional molecular weight of the membrane. ”Is well known to those skilled in the art as an index representing the membrane performance of the separation membrane.
  • the filtration method using a separation membrane in the present invention is not particularly limited, but cross flow filtration in which a flow in the horizontal direction with respect to the membrane surface is preferable.
  • the separation membrane made of polyamide with a molecular weight cut off in the range of 300 to 1,000 has a very small pore size, so if there is no flow in the horizontal direction with respect to the membrane surface, deposits will adhere to the membrane surface. This is because the film is clogged.
  • the horizontal flow that is, the value of the film surface linear velocity is preferably 5 cm / second or more and 50 cm / second or less, more preferably 10 cm / second or more and 30 cm / second or less.
  • the molecular weights of xylobiose, glucose, and xylose contained in the sugar solution used in the present invention are xylobiose: 282.24, glucose: 180.16, and xylose: 150.13, respectively.
  • xylobiose 282.24, glucose: 180.16, and xylose: 150.13, respectively.
  • the molecular weight of any sugar is less than the molecular weight cut-off of the separation membrane.
  • Xylose and glucose selectively permeate on the permeate side, and xylooligosaccharide is selectively concentrated on the non-permeate side, so that xylooligosaccharide and monosaccharide can be separated.
  • the amount of xylooligosaccharide permeated on the permeate side is larger than the amount permeated on the non-permeate side, whereas the monosaccharide containing xylose and glucose is larger than the amount blocked on the non-permeate side.
  • the amount of light transmitted to the transmission side is also large.
  • Such a difference in the transmittance of the substance by the separation membrane can be evaluated by calculating the value of the blocking rate of the target substance.
  • the blocking rate of each sugar is calculated by the formula (1). If the treatment area of the separation membrane is large and there is a difference in concentration before and after passing through the separation membrane on the non-permeate side in crossflow filtration, the ⁇ concentration of the target sugar on the non-permeate side '' is the separation membrane The average value of the concentration before and after passing through. Moreover, since the rejection is a comparison of the filtration concentration, it is different from the weight-based material balance supplied to the separation membrane.
  • Target sugar rejection (%) concentration of target sugar on membrane permeation side / concentration of target sugar on membrane non-permeation side ⁇ 100 (Equation 1).
  • a sugar solution containing at least a xylobiose containing xylobiose and a monosaccharide containing glucose and xylose is filtered through a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off in the range of 300 to 1,000
  • the blocking rate of xylooligosaccharides such as triose is higher than the blocking rate of monosaccharides such as xylose and glucose.
  • the preferable blocking rate of the xylobiose of the present invention is 40% or more and 100% or less, and more preferably 60% or more and 100% or less. Furthermore, the glucose rejection is preferably 8.5% or more lower than the xylobiose rejection, and more preferably 10% or lower.
  • the polyamide separation membrane used in the present invention comprises a support layer for maintaining the strength of the membrane and a functional layer (also referred to as a skin layer or a dense layer) for removing impurities. Whether it is an asymmetric membrane using the same material for the support layer and the functional layer, or a composite membrane using different membrane materials for the support layer and the functional layer, if the functional layer is made of polyamide, it is made of the polyamide of the present invention. It can be used as a separation membrane.
  • Examples of preferable carboxylic acid components of monomers constituting the polyamide of the polyamide separation membrane used in the present invention include trimesic acid, benzophenone tetracarboxylic acid, trimellitic acid, pyrometic acid, isophthalic acid, terephthalic acid, and naphthalenedicarboxylic acid.
  • aromatic carboxylic acids such as diphenylcarboxylic acid and pyridinecarboxylic acid.
  • Preferred amine components of the monomers constituting the polyamide include m-phenylenediamine, benzidine, methylenebisaniline, 4,4′-diaminobiphenyl ether, dianisidine, 3,3 ′, 4-triaminobiphenyl ether, 3, 3 ′, 4,4′-tetraaminobiphenyl ether, 3,3′-dioxybenzidine, 1,8-naphthalenediamine, m (p) -monomethylphenylenediamine, 3,3′-monomethylamino-4,4 ′ Diaminobiphenyl ether, 4, N, N ′-(4-aminobenzoyl) -p (m) -phenylenediamine-2,2′-bis (4-aminophenylbenzimidazole), 2,2′-bis (4 -Aminophenylbenzoxazole), 2,2'-bis (4-aminophenylbenzothiazole), etc.
  • polyamide separation membrane used in the present invention examples include NF270 manufactured by Filmtech, NFW, NFG manufactured by Synder, and DESAL G series GE (G-5) type manufactured by GE W & PT.
  • the xylooligosaccharide concentrate obtained in the present invention is diluted with water, filtered again through a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off of 300 to 1,000, and recovered from the non-permeating side, thereby including xylobiose.
  • the purity of xylo-oligosaccharide can be further increased.
  • the separation membrane used for the first time and the second time may be the same, or different separation molecular weights may be used.
  • a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off of 300 to 1,000 to a temperature of 50 ° C. or lower.
  • the temperature exceeds 50 ° C., decomposition of xylo-oligosaccharide proceeds by the action of xylanase remaining in the sugar solution, and the concentration of xylose may increase.
  • filtration may be conducted through a separation membrane having a fractional molecular weight of 2,000 to 100,000.
  • the separation membrane with a molecular weight cut off of 2,000 to 100,000 used in the previous step is larger than the molecular weight cut off of the polyamide separation membrane to be used later, and also permeates xylobiose and other xylooligosaccharides to give xylanase and coloring
  • the molecular weight is not particularly limited as long as it does not permeate a polymer component such as a component, but the molecular weight cut off is more preferably in the range of 5,000 to 50,000, and still more preferably in the range of 10,000 to 30,000.
  • Separation membranes with a molecular weight cut off of 2,000 to 100,000 include polyethersulfone (PES), polysulfone (PS), polyacrylonitrile (PAN), polyvinylidene fluoride (PVDF), regenerated cellulose, cellulose, cellulose ester Sulfonated polysulfone, sulfonated polyethersulfone, polyolefin, polyvinyl alcohol, polymethyl methacrylate, polytetrafluoroethylene and the like can be used.
  • the enzyme agent may contain an enzyme group involved in cellulose degradation, and regenerated cellulose, cellulose, and cellulose ester undergo degradation, so PES, PVDF, etc. It is preferable to use a separation membrane made of the above synthetic polymer.
  • the separation membrane having a molecular weight cutoff of 2,000 to 100,000 used in the present invention include GE W & PT's DESAL brand M series, P series, G series GH (G-10) type, GK (G -20) Type, GM (G-50) type, "DURATHERM” (registered trademark) series HWS UF type, STD UF type, Synder VT, MT, ST, SM, MK, MW, LY, BN , BY, “Microza” (registered trademark) UF series manufactured by Asahi Kasei Corporation, NTR-7410, NTR-7450 manufactured by Nitto Denko Corporation, and the like.
  • the sugar solution may be filtered through a microfiltration membrane to remove fine particles.
  • a separation membrane having an average pore size of about 0.01 to 10 ⁇ m is preferably used.
  • the xylo-oligosaccharide concentrate recovered as a non-permeate by filtration through the polyamide separation membrane removes impurities such as coloring components using activated carbon or ion exchange resin as necessary, and further, vacuum concentration or evaporation concentration, Or you may perform processes, such as pulverization.
  • RO water and dilute hydrochloric acid were added to 1 kg of bagasse hydrolyzate per dry weight to adjust the pH to 5.0 to prepare a slurry of 5% by weight of bagasse hydrolyzate (dry weight).
  • 4 g of xylanase powder [“Cellulosin” (registered trademark) TP25, manufactured by HBI Co., Ltd.] was dissolved therein and reacted at 40 ° C. for 12 hours. After completion of the reaction, the xylanase inactivated by heating at 70 ° C. for 1 hour was subjected to solid-liquid separation, and the supernatant was recovered. The supernatant was filtered under the conditions of an operating temperature of 25 ° C.
  • Example 1 Membrane separation of sugar solution using polyamide separation membrane
  • separation membrane A DESAL G series GE (G-5) type "(membrane material: polyamide composite membrane, molecular weight cut off 1,000)
  • the saccharide solution 2L prepared by the method described in Reference Example 2 was filtered using a “SEPA” (registered trademark) CF-II (manufactured by GE W & PT, Effective membrane area 140 cm 2 ), operating temperature 25 ° C., membrane surface linear velocity 20 cm / sec, filtration under non-permeate side liquid volume 0.5 L under conditions of filtration pressure 0.5 MPa
  • Table 2 shows the results of collecting the non-permeate and analyzing various sugar concentrations.
  • Separation membrane B SPE1 (membrane material: polyethersulfone, molecular weight cut off 1,000, manufactured by Synder) as a separation membrane
  • separation membrane C ETNA01PP (membrane material: composite fluororesin, fractional molecular weight 1,000, manufactured by Alfaval) was used for filtration under the same conditions and operations as in Example 1.
  • Table 2 shows various sugar concentrations of the xylooligosaccharide concentrate recovered as a non-permeate.
  • Example 1 When comparing the results of Example 1 and Comparative Example 1, the average molecular weights of the separation membranes A, B, and C are all equal to 1,000, but the separation membrane that is the polyamide separation membrane of Example 1 Only when A was used, the result was that xylooligosaccharides were selectively concentrated on the non-permeation side, and glucose and xylose were selectively permeated to the permeation side. On the other hand, when the separation membranes B and C that are not the polyamide separation membranes of Comparative Example 1 were used, xylose, glucose, and xylobiose all permeated to the permeation side, so that xylooligosaccharides could be selectively concentrated. There wasn't.
  • Example 2 Membrane separation of sugar solution using polyamide separation membranes having various fractional molecular weights
  • Separation membrane D NFG (membrane material: polyamide composite membrane, fractional molecular weight 600-800, manufactured by Synder)
  • Separation membrane E NFW (membrane material: polyamide composite membrane, fractional molecular weight 300 to 500, manufactured by Synder) was used for filtration under the same conditions and operation as in Example 1.
  • Table 3 shows the results of collecting the non-permeate and analyzing various sugar concentrations.
  • Example 2 From the results of Example 1 and Example 2, when a polyamide separation membrane having a molecular weight cut off in the range of 300 to 1,000 is used, the xylooligosaccharide is selectively concentrated on the non-permeating side, and is a xylooligosaccharide and a monosaccharide. It was found that glucose and xylose can be separated.
  • Example 3 Improvement of Xylobiose content rate by hydrofiltration 1.5 L of RO water was added to 0.5 L of xylo-oligosaccharide concentrate 0.5 L obtained by filtration using separation membrane E in Example 2 to make the total amount 2 L, Filtration was performed again using the separation membrane E under the same conditions and operations as in Example 2. This operation was repeated twice, and the results of measuring the various sugar concentrations of the xylooligosaccharide concentrate at each time according to Reference Example 1 are shown in Table 4. By repeating the hydrofiltration, the concentration of xylose and glucose decreased, and the purity of the xylooligosaccharide was further improved.
  • Example 4 Inhibition rate in membrane separation of biomass-derived sugar liquid using polyamide separation membrane
  • the bagasse hydrolyzate prepared by the method of Reference Example 2 was washed with 10 times the amount of RO water. Solid-liquid separation.
  • the bagasse hydrolyzate after washing is reacted with xylanase in the same manner as in Reference Example 2, and solid-liquid separation, microfiltration, and ultrafiltration are performed in the same manner as in Reference Example 2 to obtain a biomass-derived sugar solution. Obtained.
  • the sugar concentration of this sugar solution was measured by the method of Reference Example 1. The results are shown in Table 5.
  • Separation membrane A DESAL G series GE (G-5) type "(membrane material: polyamide composite membrane, molecular weight cut off 1,000, manufactured by GE W & PT), separation membrane D: NFG (membrane material: polyamide composite) Biomass-derived sugar solution was filtered using each of a membrane, a molecular weight cutoff of 600 to 800, manufactured by Synder), and a separation membrane E: NFW (membrane material: polyamide composite membrane, molecular weight cutoff of 300 to 500, manufactured by Synder).
  • the membrane separator uses “SEPA” (registered trademark) CF-II (manufactured by GE W & PT, effective membrane area 140 cm 2 ), operating temperature is 25 ° C., membrane surface linear velocity is 20 cm / sec, and filtrate is used. Total circulation filtration was performed to return to the supply tank, and filtration was performed while adjusting the pressure so that each membrane had the same filtration rate.
  • the filtrate and the feed solution were sampled, and the sugar concentration was measured by the method of Reference Example 1. From the measured sugar concentration, the inhibition rate of each sugar was determined by equation (1).
  • Example 5 Blocking rate in membrane separation of model sugar solution using polyamide membrane Xylose 0.65 g / L, glucose 0.95 g / L, xylobiose 2.1 g / L dissolved in RO water, Example A model sugar solution (see Reference Example 3) containing approximately the same amount of sugar as the sugar solution prepared in 4 was prepared.
  • the model sugar solution was filtered using the same membrane and filtration conditions as in Example 4. Filtration was performed by adjusting the pressure so that the filtration rate was the same as in Example 4. The filtrate and the feed solution were sampled in the same manner as in the examples, and the inhibition rate of each sugar was determined.
  • the xylooligosaccharide composition obtained in the present invention can be added to processed foods, beverages, health foods, supplements, foods for specified health use, cosmetics, pet foods, livestock feeds, and the like.

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Abstract

少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含有する糖液を分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜に通じて濾過し、非透過側にキシロオリゴ糖を選択的に濃縮する、キシロオリゴ糖組成物の製造方法。

Description

キシロオリゴ糖組成物の製造方法
 本発明は、分離膜によってキシロオリゴ糖を選択的に濃縮することによるキシロオリゴ糖組成物の製造方法に関する。
 オリゴ糖は、数個の単糖がグリコシド結合によって数個結合した糖類で、その構成単糖によってガラクトオリゴ糖、フラクトオリゴ糖、キシロオリゴ糖、イソマルトオリゴ糖、乳果オリゴ糖など様々なものが知られている。これらのオリゴ糖は低甘味、低カロリー、難う蝕性などの特性に加え、腸内細菌の選択的な増殖促進効果を有し、おなかの調子を良好に保つ機能を有する特定保健用食品などが数多く市販されている。
 これらのオリゴ糖の中でもキシロオリゴ糖は、酸やアミラーゼなどの消化酵素による分解を受けにくく、ヒトが摂取した場合、大腸まで分解・吸収されることなく到達するため、他のオリゴ糖と比較して少ない量でその効果を発揮する。中でもキシロース2分子からなるキシロビオースは乳酸菌の利用効率が高いことが知られている。キシロオリゴ糖は、ヒトの食品用途だけではなく家畜の飼料の添加剤としても利用されている。
 キシロオリゴ糖は、植物の主要構成成分のひとつであるキシランから製造されている。キシロオリゴ糖の製造方法としては、粉砕された広葉樹に高温高圧水を循環させることにより、原料中のヘミセルロースに含まれるキシランを加水分解抽出する方法(特許文献1)、コーンコブ、綿実殻、バガスおよび稲わらからなる群から選択される植物体原料を、アルカリ処理もしくは加圧加熱処理し、さらに酵素処理する方法(特許文献2)などが知られている。しかしながら、このような製造方法によって得られたキシロオリゴ糖はほとんどの場合、生理機能を持たない単糖類や植物原料由来の芳香族化合物などの不純物を含んでいるため、キシロオリゴ糖の機能性を高めるためにはキシロオリゴ糖の精製工程が必要となる。
 オリゴ糖の精製方法としては、イオン交換樹脂や活性炭を用いた処理、分離膜を用いた方法が知られている。分離膜を用いた方法としては、例えば特許文献3に、キシラン含有植物材料の水解物を150ないし500g/molの遮断サイズ(分画分子量と同義)を有するナノ濾過膜を用いてナノ濾過を受けさせることにより、オリゴ糖とグルコースなどのヘキソースを非透過側から回収する方法が開示されている。
 また、特許文献4では、セルロース含有バイオマスを加水分解して得られた糖水溶液を分画分子量600~2,000の分離膜に通じて濾過して、発酵阻害物質を透過側から除去して、単糖(グルコースおよびキシロース)を主成分とする糖液を非透過側で濃縮する方法が開示されている。
特開2006-075067号公報 特開2006-296224号公報 特表2004-517118号公報 国際公開第2013/018694号
 前述の方法に従ってキシロオリゴ糖を製造・精製した場合では、精製前のキシロオリゴ糖にグルコースやキシロースなどの単糖が含まれていると、キシロオリゴ糖と単糖を分離することができず、例えば、キシロオリゴ糖とグルコースが混在すると、グルコースに起因するカロリーおよび甘味の影響を排除することができず、利用用途が限られてしまうといった課題があった。
 そこで本発明は、単糖とキシロオリゴ糖とを分離し、高純度なキシロオリゴ糖組成物の製造方法を提供することを目的とする。
 本発明者らが鋭意検討した結果、少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含む単糖を含有する糖液を分画分子量300~1,000のポリアミド製分離膜に通じて濾過することにより、グルコースおよびキシロースを透過させ、非透過側にキシロオリゴ糖を選択的に濃縮できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
 すなわち、本発明は以下の(1)~(6)の構成を有する。
(1)少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含む単糖を含有する糖液を分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜に通じて濾過し、非透過側にキシロオリゴ糖を選択的に濃縮する工程を含む、キシロオリゴ糖組成物の製造方法。
(2)前記ポリアミド製分離膜の分画分子量が300~500の範囲である、(1)に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
(3)前記糖液がキシランおよびセルロースを含有するバイオマスを加水分解処理して得られる、(1)または(2)に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
(4)前記キシランおよびセルロースを含有するバイオマスがバガスである、(3)に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
(5)前記ポリアミド製分離膜による濾過が、前記糖液の温度を50℃以下に調整して行われる、(1)から(4)のいずれかに記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
(6)前記ポリアミド製分離膜による濾過工程の前工程として、前記糖液を分画分子量2,000~100,000の範囲の分離膜に通じて濾過する工程を含む、(1)から(5)のいずれかに記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
 本発明によれば、単糖とキシロオリゴ糖を簡便に分離することができ、単糖の含有率が低い、高品質なキシロオリゴ糖濃縮液を得ることができる。
 以下、本発明を実施するための形態について説明する。
 キシロオリゴ糖は、キシロースが数個連なったオリゴ糖の総称であり、具体的にはキシロビオース、キシロトリオース、キシロテトラオース、キシロペンタオース、キシロヘキサオースなどが挙げられ、その側鎖にアラビノースやウロン酸が結合したものも含まれる。キシロオリゴ糖として最も分子量の小さいものはキシロビオースであるが、本発明ではキシロビオースおよびそれよりも分子量の大きいキシロオリゴ糖を選択的に濃縮することを特徴とする。
 本発明で用いる、少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含有する糖液(以下、単に糖液ともいう。)は、例えば、キシランおよびセルロースを含有するバイオマスを加水分解処理して得られた糖液や、販売されている試薬を混合して調製された糖液、さらには、バイオマスを加水分解して得られた糖液に試薬を添加して調製された糖液などが利用できる。
 キシランは、植物細胞の細胞壁に存在するヘミセルロースの構成成分であり、β-1,4-結合したキシロース主鎖に対し、様々な側鎖が結合したヘテロ糖である。植物細胞には、キシランの他に、β-1,4-結合したグルコースの重合体であるセルロースをはじめとする多糖や、芳香族ポリマーであるリグニンを含んでおり、それらが水素結合や化学結合を介して複雑に絡まっている。キシランおよびセルロースを含有するバイオマスを加水分解して得られた糖液には、セルロースの加水分解によって生じたグルコース、キシランの加水分解によって生じたキシロオリゴ糖とキシロースが含まれる。また、上記以外にも、リグニンに由来する芳香族化合物、キシラン側鎖から遊離した酢酸などが糖液に含まれていてもよい。
 キシランおよびセルロースを含有するバイオマスはキシランおよびセルロースを含有する植物由来の資源であれば特に限定されず、種子植物、シダ植物、コケ植物、藻類、水草などの植物の他、廃建材なども用いることができる。種子植物は、裸子植物と被子植物に分類されるが、どちらも好ましく用いることができる。被子植物はさらに単子葉植物と双子葉植物に分類されるが、単子葉植物の具体例としては、バガス、スイッチグラス、ネピアグラス、エリアンサス、コーンストーバー、コーンコブ、稲わら、麦わらなどが挙げられ、双子葉植物の具体例としては、ビートパルプ、ユーカリ、ナラ、シラカバなどが好ましく用いられる。本発明において特に好ましいのはバガスである。
 キシランおよびセルロースを含有するバイオマスを加水分解処理する方法は特に限定されないが、硫酸、酢酸などによる酸処理、苛性ソーダ、アンモニアなどによるアルカリ処理、水熱処理、亜臨界水処理、蒸煮処理、酵素処理などが挙げられる。これらの処理方法を単独で実施してもよいし、複数の処理方法を組み合わせてもよいが、糖液中のキシロオリゴ糖の含有量を増やすためには、酵素処理、とりわけキシラナーゼ処理することが好ましく、キシラナーゼ処理の前にその他の1以上の方法でバイオマスの加水分解処理を施すことがさらに好ましい。
 キシラナーゼはキシランを加水分解してキシロオリゴ糖を生成する活性を有するものであれば特に限定されないが、例えば“スミチーム”(登録商標)X(新日本化学工業株式会社製)、“スクラーゼ”(登録商標)X(三菱化学フーズ株式会社製)、“セルロシン”(登録商標)TP25(エイチビィアイ株式会社製)、VERON 191(AB Enzymes社製)などの市販酵素や、トリコデルマ属(Trichoderma)、アスペルギルス属(Aspergillus)、サーモマイセス属(Thermomyces)、オーレオバシジウム属(Aureobasidium)、ストレプトマイセス属(Streptomyces)、クロストリジウム属(Clostridium)、バチルス属(Bacillus)、サーモトガ属(Thermotoga)、アクレモニウム属(Acremonium)、ムコール属(Mucor)、タラロマイセス属(Talaromyces)、などの微生物により生産されるキシラナーゼを使用することができる。
 本発明では、分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜、好ましくは分画分子量300~500の範囲のポリアミド製分離膜を用いて濾過を行うことにより、糖液中に含まれる上記のキシロオリゴ糖以外の不純物、とりわけグルコースおよびキシロースを透過側へ除去し、非透過側からキシロオリゴ糖濃縮液を回収することを特徴としている。分画分子量とは、日本膜学会編 膜学実験シリーズ 第III巻 人工膜編 編集委員/木村尚史・中尾真一・大矢晴彦・仲川勤(1993年、共立出版) P92に、『溶質の分子量を横軸に、阻止率を縦軸にとってデータをプロットしたものを分画分子量曲線とよんでいる。そして阻止率が90%となる分子量を膜の分画分子量とよんでいる。』とあるように、分離膜の膜性能を表す指標として当業者には周知のものである。
 本発明における分離膜での濾過方法は特に限定されないが、膜面に対して水平方向の流れが起こるクロスフロー濾過が好ましい。これは分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜は膜の孔径が極めて小さいため、膜面に対して水平方向の流れがないと膜面に堆積物が付着するなどしてすぐに膜が詰まってしまうためである。水平方向の流れ、すなわち膜面線速度の値としては、好ましくは5cm/秒以上50cm/秒以下、より好ましくは10cm/秒以上30cm/秒以下である。
 本発明で用いられる糖液に含まれるキシロビオース、グルコース、キシロースの分子量はそれぞれ、キシロビオース:282.24、グルコース:180.16、キシロース:150.13である。本発明では、これらが含まれる糖液を分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜で濾過すると、いずれの糖の分子量も分離膜の分画分子量未満であるにもかかわらず、透過側にキシロースおよびグルコースが選択的に透過し、非透過側にキシロオリゴ糖が選択的に濃縮され、キシロオリゴ糖と単糖を分離することができる。これはすなわち、本発明ではキシロオリゴ糖が透過側に透過する量に比べ、非透過側に阻止される量が多く、一方で、キシロースおよびグルコースを含む単糖は非透過側に阻止される量よりも透過側に透過する量が多いことである。
 このような分離膜による物質の透過率の違いは、対象物質の阻止率の値を算出して評価することができる。本発明で各糖の阻止率は式(1)で算出される。分離膜の処理面積が大きく、クロスフロー濾過での非透過側で分離膜を通過する前と後で濃度の差が有る場合、「膜非透過側の対象となる糖の濃度」とは分離膜を通過する前と後の濃度の平均値をいう。また、阻止率は、濾過濃度の比較であるため、分離膜に供給する重量ベースのマテリアルバランスとは異なる値である。
 対象となる糖の阻止率(%)=膜透過側の対象となる糖の濃度/膜非透過側の対象となる糖の濃度×100 ・・・(式1)。
 本発明では、少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含む単糖を含有する糖液を分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜に通じて濾過した場合、キシロビオースやキシロトリオースなどのキシロオリゴ糖の阻止率が、キシロースやグルコースなどの単糖の阻止率と比べて高い値を示す。つまり、濾過の前後で各糖の、膜の非透過側の濃度を比較すると、高い阻止率を示すキシロオリゴ糖の濃度は、濾過前の濃度と比べて向上し、低い阻止率を示すグルコールやキシロースの濃度は濾過前の濃度と比べて低下する。その結果、濾過が進むに従って、単糖の含有率が低い、高品質なキシロオリゴ糖濃縮液を得ることができる。
 本発明のキシロビオースの好ましい阻止率は、40%以上100%以下であり、より好ましくは、60%以上100%以下である。さらに、グルコースの阻止率はキシロビオースの阻止率に比して8.5%以上低い値であることが好ましく、10%以上低い値であることがより好ましい。
 本発明で用いるポリアミド製分離膜は、膜の強度を保つための支持層と、不純物を取り除くための機能層(スキン層、緻密層とも呼ばれる)からなっている。支持層と機能層に同じ素材が用いられた非対称膜、支持層と機能層にそれぞれ異なる膜素材を用いた複合膜のどちらであっても、機能層がポリアミド製であれば本発明のポリアミド製分離膜として使用できる。
 本発明で用いるポリアミド製分離膜のポリアミドを構成する単量体の好ましいカルボン酸成分としては、例えば、トリメシン酸、ベンゾフェノンテトラカルボン酸、トリメリット酸、ピロメット酸、イソフタル酸、テレフタル酸、ナフタレンジカルボン酸、ジフェニルカルボン酸、ピリジンカルボン酸などの芳香族カルボン酸が挙げられる。ポリアミドを構成する単量体の好ましいアミン成分としては、m-フェニレンジアミン、ベンジジン、メチレンビスアニリン、4,4’-ジアミノビフェニルエーテル、ジアニシジン、3,3’,4-トリアミノビフェニルエーテル、3,3’,4,4’-テトラアミノビフェニルエーテル、3,3‘-ジオキシベンジジン、1,8-ナフタレンジアミン、m(p)-モノメチルフェニレンジアミン、3,3’-モノメチルアミノ-4,4’-ジアミノビフェニルエーテル、4,N,N’-(4-アミノベンゾイル)-p(m)-フェニレンジアミン-2,2’-ビス(4-アミノフェニルベンゾイミダゾール)、2,2’-ビス(4-アミノフェニルベンゾオキサゾール)、2,2’-ビス(4-アミノフェニルベンゾチアゾール)などの芳香環を有する一級ジアミン、ピペラジン、ピペリジンまたはこれらの誘導体などの二級ジアミンが挙げられる。これらのカルボン酸成分およびアミン成分の重縮合により架橋ポリアミドの機能層が得られる。
 本発明で用いるポリアミド製分離膜の具体例としては、フィルムテック社製のNF270、Synder社製のNFW、NFG、GE W&PT社製のDESAL GシリーズGE(G-5)タイプなどがある。
 本発明で得られたキシロオリゴ糖濃縮液を水で希釈して再度分画分子量300~1,000のポリアミド製分離膜に通じて濾過し、非透過側から回収することにより、キシロビオースをはじめとするキシロオリゴ糖の純度をさらに高めることができる。この場合、一度目と二度目に用いる分離膜は同じものであってもよいし、分画分子量が異なるものを用いてもよい。
 分画分子量300~1,000のポリアミド製分離膜による濾過を行う際の前記糖液の温度は、50℃以下の温度に調整することが好ましい。特にキシラナーゼ処理によって前記糖液を調製する場合、温度が50℃を上回ると前記糖液に残存するキシラナーゼの作用でキシロオリゴ糖の分解が進み、キシロースの濃度が高まってしまうことがある。
 前記糖液を分画分子量300~1,000のポリアミド製分離膜に通じて濾過する前工程として、分画分子量2,000~100,000の分離膜に通じて濾過を行ってもよい。前工程で用いる分画分子量2,000~100,000の分離膜は、その後使用するポリアミド製分離膜の分画分子量よりも大きく、また、キシロビオースをはじめとするキシロオリゴ糖を透過し、キシラナーゼや着色成分などの高分子成分を透過しないものであれば特に制限はないが、分画分子量5,000~50,000の範囲がより好ましく、さらに好ましくは分画分子量10,000~30,000の範囲である。分画分子量2,000~100,000の分離膜に通じて得られる透過液からは、前記糖液の調製に使用したキシラナーゼや高分子の着色成分などを除くことができ、キシロオリゴ糖濃縮液中の不純物を減少させるとともに、後工程で使用するポリアミド製分離膜への負荷を低減することができる。
 分画分子量2,000~100,000の分離膜の素材としては、ポリエーテルスルホン(PES)、ポリスルホン(PS)、ポリアクリロニトリル(PAN)、ポリフッ化ビニルデン(PVDF)、再生セルロース、セルロース、セルロースエステル、スルホン化ポリスルホン、スルホン化ポリエーテルスルホン、ポリオレフィン、ポリビニルアルコール、ポリメチルメタクリレート、ポリ4フッ化エチレンなどを使用することができる。ただし、前記糖液をバイオマスの酵素処理により調製する場合、酵素剤にセルロース分解に関わる酵素群が含まれていることがあり、再生セルロース、セルロース、セルロースエステルが分解を受けるため、PES、PVDFなどの合成高分子を素材とした分離膜を使用することが好ましい。
 本発明で用いる分画分子量2,000~100,000の分離膜の具体例としては、GE W&PT社製DESALブランドのMシリーズ、Pシリーズ、GシリーズのGH(G-10)タイプ、GK(G-20)タイプ、GM(G-50)タイプ、“DURATHERM”(登録商標)シリーズのHWS UFタイプ、STD UFタイプや、Synder社製のVT、MT、ST、SM、MK、MW、LY、BN、BY、旭化成株式会社製の“マイクローザ”(登録商標)UFシリーズ、日東電工株式会社製のNTR-7410、NTR-7450などがある。
 また、分画分子量2,000~100,000の分離膜による濾過の前に糖液を精密濾過膜に通じて濾過して微粒子を取り除いてもよい。精密濾過膜は、平均細孔径が0.01~10μm程度の分離膜が好ましく用いられる。
 前記ポリアミド製分離膜による濾過で非透過液として回収したキシロオリゴ糖の濃縮液は、必要に応じて活性炭やイオン交換樹脂を用いて着色成分などの不純物を除去したり、さらに減圧濃縮や蒸発濃縮、あるいは粉末化などの処理を行ったりしてもよい。
 以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。
 (参考例1)糖濃度の測定
 糖類の濃度は、下記のHPLC条件で、標品との比較により定量した。
カラム:KS-802およびKS-803(昭和電工株式会社製Shodexブランド)
移動相:水
流速:0.5mL/min
温度:75℃
検出方法:RI(示差屈折)。
 (参考例2)糖液の調製
 バガス(含水率13%)3.45kgに対し5M 水酸化ナトリウム水溶液を6.6L加えて混合し、約25℃の室温で静置してバガスを加水分解処理した。1時間後、10LのRO水を加えて固液分離し、固形物としてバガスの加水分解物(含水率84%)を得た。なお、含水率は赤外線水分計(株式会社ケツト科学研究所製 FD-720)を用い、サンプルを105℃で乾燥させることにより測定した。
 乾燥重量あたり1kgのバガスの加水分解物にRO水と希塩酸を添加してpH5.0に調整し、バガスの加水分解物(乾燥重量)が5重量%のスラリーを調製した。ここにキシラナーゼ粉末[“セルロシン”(登録商標)TP25、エイチビィアイ株式会社製]を4g溶解し、40℃で12時間反応を行った。反応終了後、70℃で1時間加温することによりキシラナーゼを失活させたものを固液分離し、上清を回収した。上清は、平均細孔径0.04μmの精密濾過膜(GE W&PT社製 DESAL Eシリーズ、材質:ポリサルホン)を用い、操作温度25℃、膜面線速度20cm/secの条件下にて濾過した。次に、分画分子量10,000の耐熱性限外濾過膜(GE W&PT社製 “DURATHERM”(登録商標)HWS UFタイプ、材質:ポリエーテルスルホン)を用い、操作温度25℃、膜面線速度20cm/secの条件下でフラックスが0.1m/Dで一定となるように操作圧力を制御しながら濾過を行った。濾液として回収した糖液の糖濃度を参考例1に記載の方法で測定した結果を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 (参考例3)モデル糖液の調製
 キシロース0.65g/L、グルコース0.95g/L、キシロビオース2.1g/LになるようにRO水に溶かし、参考例2の方法で調製した糖液とほぼ同じ量の糖を含むモデル糖液を調製した。
 (実施例1)ポリアミド製分離膜を用いた糖液の膜分離
 分離膜として、分離膜A:DESAL GシリーズGE(G-5)タイプ”(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量1,000、GE W&PT社製)、を使用し、参考例2に記載の方法で調製した糖液2Lの濾過を行った。膜分離装置は“SEPA”(登録商標) CF-II(GE W&PT社製、有効膜面積140cm)を使用し、操作温度は25℃、膜面線速度は20cm/secとし、濾過圧0.5MPaの条件下で非透過側の液量が0.5Lになるまで濾過処理を行った。非透過液を回収し、各種糖濃度を分析した結果を表2に示す。
 (比較例1)ポリアミドを含まない分離膜を用いた糖液の膜分離
 分離膜として分離膜B:SPE1(膜材質:ポリエーテルスルホン、分画分子量1,000、Synder社製)、分離膜C:ETNA01PP(膜材質:複合フッ素樹脂、分画分子量1,000、Alfalaval社製)を用いた以外は、実施例1と同様の条件、操作で濾過処理を行った。非透過液として回収したキシロオリゴ糖濃縮液の各種糖濃度を表2に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 実施例1と比較例1の結果を比較すると、分離膜A、B、およびCの平均分画分子量は、全て1,000と同じであるが、実施例1のポリアミド製分離膜である分離膜Aを用いた場合のみ、非透過側にキシロオリゴ糖が選択的に濃縮され、グルコースとキシロースは透過側へ選択的に透過される結果が得られた。一方で、比較例1のポリアミド製分離膜ではない分離膜B、Cを用いた場合では、キシロース、グルコース、およびキシロビオースはいずれも透過側へ透過したため、キシロオリゴ糖を選択的に濃縮することができなかった。
 これらの結果から、同じ分画分子量の分離膜を用いて濾過を行っても、膜の材質によって、透過する化合物の選択性が異なり、ポリアミド製分離膜を用いた場合のみ、キシロオリゴ糖と単糖であるグルコースおよびキシロースを分離できることがわかった。
 (実施例2)種々の分画分子量を有するポリアミド製分離膜を用いた糖液の膜分離
 分離膜として分離膜D:NFG(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量600~800、Synder社製)、分離膜E:NFW(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量300~500、Synder社製)を用いた以外は、実施例1と同様の条件、操作で濾過処理を行った。非透過液を回収し各種糖濃度を分析した結果を表3に示す。実施例1と実施例2の結果から分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜を用いた場合、キシロオリゴ糖が非透過側に選択的に濃縮され、キシロオリゴ糖と単糖であるグルコースおよびキシロースを分離できることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 (実施例3)加水濾過によるキシロビオース含有率の向上
 実施例2で分離膜Eを用いた濾過で得られたキシロオリゴ糖濃縮液0.5LにRO水を1.5L添加して総量を2Lとし、実施例2と同様の条件、操作で再度分離膜Eを用いて濾過を行った。この操作を2回繰り返し、各回におけるキシロオリゴ糖濃縮液の各種糖濃度を参考例1に従って測定した結果を表4に示す。加水濾過を繰り返すことによりキシロースとグルコースの濃度が低下し、キシロオリゴ糖の純度がさらに向上した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 (実施例4)ポリアミド製分離膜を用いたバイオマス由来糖液の膜分離における阻止率
 参考例2の方法で調製したバガスの加水分解物を、加水分解物の10倍量のRO水で洗浄し、固液分離した。この洗浄後のバガスの加水分解物を参考例2と同様の方法でキシラナーゼと反応させ、参考例2と同様の方法で、固液分離、精密濾過、限外濾過を行い、バイオマス由来糖液を得た。この糖液の糖濃度を参考例1の方法で測定した。結果を表5に示した。
 分離膜として分離膜A:DESAL GシリーズGE(G-5)タイプ”(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量1,000、GE W&PT社製)、分離膜D:NFG(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量600~800、Synder社製)、分離膜E:NFW(膜材質:ポリアミド複合膜、分画分子量300~500、Synder社製)のそれぞれを用いてバイオマス由来糖液を濾過した。膜分離装置は“SEPA”(登録商標) CF-II(GE W&PT社製、有効膜面積140cm)を使用し、操作温度は25℃、膜面線速度は20cm/secとし、ろ液を供給槽に戻す全循環濾過を行った。それぞれの膜が同じ濾過速度になるように圧力を調整して濾過を行った。
 ろ液と供給液をそれぞれサンプリングし、参考例1の方法で糖濃度を測定した。測定した糖濃度から、式(1)で各糖の阻止率を求めた。
 結果を表6に示した。分離膜A、D、Eのいずれにおいても、キシロオリゴ糖の阻止率は40%以上となり高い阻止率を示した。さらに、キシロオリゴト糖の阻止率は、単糖であるグルコースまたはキシロースの阻止率と比べて8.5%以上高い値となった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
 (実施例5)ポリアミド膜を用いたモデル糖液の膜分離における阻止率
 キシロース0.65g/L、グルコース0.95g/L、キシロビオース2.1g/LになるようにRO水に溶かし、実施例4で調製した糖液とほぼ同じ量の糖を含むモデル糖液(参考例3参照)を調製した。
 実施例4と同様の膜と濾過条件でモデル糖液の濾過を行った。実施例4と同じ濾過速度になるように圧力を調整して濾過を行った。実施例と同様にろ液と供給液をそれぞれサンプリングし、各糖の阻止率を求めた。
 結果を表6に示した。分離膜A,D,Eのいずれにおいても、キシロオリゴ糖の阻止率は40%以上となり高い阻止率を示した。さらに、キシロオリゴト糖の阻止率は、単糖であるグルコースまたはキシロースの阻止率と比べて8.5%以上高い値となった。
 (比較例2)ポリアミドを含まない分離膜を用いたバイオマス由来糖液の膜分離における阻止率
 分離膜として分離膜B:SPE1(膜材質:ポリエーテルスルホン、分画分子量1,000、Synder社製)を使用して、実施例4と同様の条件で調製したバイオマス由来糖液の濾過を行った。実施例4と同様の濾過速度になるように圧力を調製して濾過を行った。実施例4と同様にろ液と供給液をそれぞれサンプリングし、阻止率を求めた。結果を表6に示した。
 ポリアミド膜である分離膜A、D、Eに比較してキシロース、グルコースとキシロビオースの阻止率の差が小さく、グルコースとキシロビオースの差はほとんどなかった。
 (比較例3)ポリアミドを含まない分離膜を用いたモデル糖液の膜分離における阻止率
 分離膜として分離膜B:SPE1(膜材質:ポリエーテルスルホン、分画分子量1,000、Synder社製)を使用して、実施例4と同様の条件で実施例5と同じ方法で調製したモデル糖液(参考例3参照)の濾過を行った。実施例4と同様の濾過速度になるように圧力を調製して濾過を行った。実施例4と同様にろ液と供給液をそれぞれサンプリングし、阻止率を求めた。結果を表6に示した。
 ポリアミド膜である分離膜A、D、Eに比較してキシロース、グルコースとキシロビオースの阻止率の差が小さかったが、比較例2のバイオマス由来糖液の阻止率よりも差が大きかった。
 本発明で得られるキシロオリゴ糖組成物は、加工食品、飲料、健康食品、サプリメント、特定保健用食品、化粧品、ペットフード、家畜飼料などに添加することができる。
 

Claims (6)

  1.  少なくともキシロビオースを含むキシロオリゴ糖、ならびにグルコースおよびキシロースを含む単糖を含有する糖液を分画分子量300~1,000の範囲のポリアミド製分離膜に通じて濾過し、非透過側にキシロオリゴ糖を選択的に濃縮する工程を含む、キシロオリゴ糖組成物の製造方法。
  2.  前記ポリアミド製分離膜の分画分子量が300~500の範囲である、請求項1に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
  3.  前記糖液がキシランおよびセルロースを含有するバイオマスを加水分解処理して得られる、請求項1または2に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
  4.  前記キシランおよびセルロースを含有するバイオマスがバガスである、請求項3に記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
  5.  前記ポリアミド製分離膜による濾過が、前記糖液の温度を50℃以下に調整して行われる、請求項1から4のいずれかに記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
  6.  前記ポリアミド製分離膜による濾過工程の前工程として、前記糖液を分画分子量2,000~100,000の範囲の分離膜に通じて濾過する工程を含む、請求項1から5のいずれかに記載のキシロオリゴ糖組成物の製造方法。
     
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