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WO2017007031A1 - 子宮体がんのリンパ節転移能の評価方法 - Google Patents

子宮体がんのリンパ節転移能の評価方法 Download PDF

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WO2017007031A1
WO2017007031A1 PCT/JP2016/070334 JP2016070334W WO2017007031A1 WO 2017007031 A1 WO2017007031 A1 WO 2017007031A1 JP 2016070334 W JP2016070334 W JP 2016070334W WO 2017007031 A1 WO2017007031 A1 WO 2017007031A1
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WO
WIPO (PCT)
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lymph node
sema3d
node metastasis
endometrial cancer
expression level
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2016/070334
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English (en)
French (fr)
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泰久 寺尾
惠美子 吉田
省 竹田
林崎　良英
昌可 伊藤
英哉 川路
佑治 田中
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Juntendo Educational Foundation
RIKEN
Original Assignee
Juntendo Educational Foundation
RIKEN
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Publication date
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Priority to JP2017527517A priority Critical patent/JP6820014B2/ja
Priority to EP16821499.7A priority patent/EP3321683A4/en
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Ceased legal-status Critical Current

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
    • G01N33/57407—Specifically defined cancers
    • G01N33/57442—Specifically defined cancers of the uterus and endometrial
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q2600/112—Disease subtyping, staging or classification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/46—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
    • G01N2333/47—Assays involving proteins of known structure or function as defined in the subgroups
    • G01N2333/4701—Details
    • G01N2333/4703—Regulators; Modulating activity
    • G01N2333/4704—Inhibitors; Supressors

Definitions

  • the present invention relates to a technique for discriminating between endometrial cancer and lymph node metastatic and non-metastatic at the molecular level.
  • Endometrial cancer is one of the cancers with a favorable prognosis with a recurrence rate of advanced stage I early stage cancer of about 10%, a 5-year survival rate of over 90%.
  • Gynecological Oncology Group (GOG) study of 1180 cases in advanced stage I and II showed that risk factors such as cervical interstitial infiltration, positive peritoneal cytology, appendix metastasis, lymph node metastasis, etc. Otherwise, postoperative survival has been shown to be good.
  • Surgical therapy is the first choice for standard initial treatment of early endometrial cancer.
  • endometrial cancer it is difficult to examine in advance whether or not there is lymph node metastasis, which is a risk factor and a criterion for determination of advanced stage. Therefore, in addition to simple total hysterectomy and appendectomy, lymph node dissection is performed as a standard technique, and pathological diagnosis of the removed lymph nodes is performed to determine the advanced stage.
  • the 5-year survival rate for such early uterine cancer is about 85% -95%, which is generally good.
  • pathological diagnosis depends on the morphological judgment of each diagnostician, and in principle there is a risk of overlooking micrometastasis. For example, there are potential problems in the judgment materials themselves for definitive diagnosis.
  • lymph node dissection has actually been performed, a few percent of patients have relapsed within 5 years, and the development of new recurrence prevention and treatment methods for these poor prognosis patients is desired. Yes.
  • CA125 is a marker whose detection value and positive rate increase as the stage progresses, and can be used not only for worsening cancer but also for evaluating therapeutic effects.
  • the positive rate is low in early cancer patients with a small tumor mass, it cannot be used as a diagnostic material for initiating recurrence prevention.
  • the risk of lymph node metastasis can be determined by measuring the specimen obtained by curettage of the primary lesion prior to surgery or by immediately measuring the primary tumor removed by surgery, the risk of metastasis is low. Lymph node dissection for the patient can be omitted, and the patient can be freed from fear of intractable complications. And the realization of effective personalized medicine with great merit for patients can be expected.
  • Semaphorin is a group of proteins identified as guidance molecules involved in signal transduction between cells, and is involved in the formation of blood vessels and neural circuits and the regulation of immune cells. Semaphorins are divided into seven classes (subfamilies) based on the difference in the sequence adjacent to the semadomain, and semaphorin class 3 is a cellular process such as survival, proliferation, apoptosis, and migration of vascular endothelial cells and tumor cells. It is recognized as an important regulator of cell and regulates cell morphology and migration. Of these, class 3D semaphorin (SEMA3D) has been reported to inhibit breast cancer development and tumor formation inhibition and angiogenesis resulting therefrom (Non-patent Document 1). However, the relationship between SEMA3D and endometrial cancer and the relationship with lymph node metastasis in endometrial cancer has never been known.
  • SEMA3D semaphorin
  • Kigel B Varshavsky A, Kessler O, Neufeld G. Successful inhibition of tumor development by specific class-3 semaphorins is associated with expression of appropriate semaphorin re- ceptors by tumor cells 3
  • the present invention relates to identification of a marker molecule that is expressed differently in lymph node metastatic endometrial cancer and non-metastatic endometrial cancer, and measurement of the marker results in determination of endometrial cancer and lymph node metastatic endometrium.
  • the present invention relates to providing a method for molecularly distinguishing non-metastatic endometrial cancer.
  • the present inventors measured and analyzed the expression at the nucleic acid level of SEMA3D expressed in cancer tissues of endometrial cancer patients.
  • the expression level of SEMA3D was a negative group compared to the group with positive lymph node metastasis.
  • SEMA3D was found to be useful as a marker for distinguishing lymph node metastatic endometrial cancer from non-metastatic endometrial cancer. It was also found that lymph node metastatic endometrial cancer and non-metastatic endometrial cancer can be more accurately distinguished by using the SEMA3D and TACC2 in combination.
  • the present invention relates to the following 1) to 13).
  • 1) A method for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer comprising the step of measuring the expression level of SEMA3D for a biological sample derived from cancer tissue isolated from a patient with endometrial cancer. .
  • An antibody that specifically binds to SEMA3D protein and an antibody that specifically binds to TACC2 protein, or an oligonucleotide that specifically recognizes nucleic acid derived from SEMA3D gene and an oligonucleotide that specifically recognizes nucleic acid derived from TACC2 gene A test kit for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer, which is used in the method according to 5) to 8) above.
  • An apparatus for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer used in the method according to any one of 1) to 8) above.
  • SEMA3D As a marker for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer.
  • SEMA3D and TACC2 are markers for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer.
  • the present invention it is possible to select a uterine body cancer specimen that has no possibility of lymph node metastasis, and thereby, a policy regarding a surgical method including avoidance of unnecessary lymph node dissection can be obtained. If lymph node dissection can be avoided, it is possible to shorten the operation time, reduce the surgical invasion, and prevent postoperative lymphedema.
  • the lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer can be comparable to or less than the subjectivity of an expert such as a clinical laboratory technician who has been trained. Further determination can be made objectively. Therefore, the present invention can also be suitably used for a test (POCT: Point of Care Testing) performed by a medical worker from the patient sample collection to analysis.
  • POCT Point of Care Testing
  • RNA relative expression level of SEMA3D in the lymph node metastasis positive group and the negative group ROC curve of RNA relative expression level of SEMA3D.
  • RNA relative expression level of TACC2 (TACC2 isoform L or S) in a lymph node metastasis positive group and a negative group RNA relative expression level of SEMA3D with respect to RNA expression level of TACC2 (TACC2 isoform L or S) in the lymph node metastasis positive group and the negative group.
  • Scatter plot of RNA relative expression levels of SEMA3D and TACC2 TACC2 isoform L or S).
  • ROC curve of the RNA relative expression level of the combination of SEMA3D and TACC2 (TACC2 isoform L or S) (SEMA3D-TACC2).
  • Vertical axis: sensitivity, horizontal axis: false positive rate ( 1-specificity).
  • A Hematoxylin and eosin stained image of endometrial cancer cells.
  • B Fluorescence in situ hybridization (FISH) image for SEMA3D mRNA, SEMA3D mRNA in green, and DAPI nuclear staining in blue.
  • C Negative control for B, nuclear staining with DAPI is shown in blue.
  • D Immunostaining image for SEMA3D protein.
  • E Negative control for D.
  • F Immunostaining image for TACC2 protein.
  • G Negative control for F.
  • endometrial cancer refers to cancer that occurs in the uterine body of uterine cancer. Endometrial cancer occurs in the endometrium, an epithelial tissue on the uterine cavity side, and is synonymous with endometrial cancer. Endometrial cancer is classified into stages I to IV according to the clinical stage classification of maternal women (2011) based on the size, spread, invasion and metastasis of cancer. In the present invention, the endometrial cancer to be evaluated is not particularly limited by the advanced stage, but is preferably a well-differentiated adenocarcinoma of endometrioid adenocarcinoma.
  • lymph node metastasis in endometrial cancer means that endometrial cancer grows in lymph nodes such as in the pelvis and around the aorta.
  • the evaluation of lymph node metastasis means evaluating or measuring the presence or absence of metastasis of endometrial cancer to the lymph node, and the evaluation of lymph node metastasis ability (lymph node metastasis) is the uterine body. It means to evaluate or measure whether cancer has the ability to metastasize to lymph nodes and proliferate.
  • prognostic evaluation means predicting the progress and end of endometrial cancer.
  • Prognostic good / bad prognosis in endometrial cancer is closely related to cancer metastasis, and one of the major pathways in cancer cell metastasis is the lymph node. Therefore, the evaluation of lymph node metastasis has a close correlation with the prognosis evaluation of endometrial cancer, and it can be evaluated as poor prognosis when there is lymph node metastasis (ability), and prognosis when there is no lymph node metastasis (ability). It can be evaluated as good.
  • the biological sample used in the present invention is a pre-operative or intra-uterine endometrial cancer tissue separated from an endometrial cancer patient to be evaluated.
  • the biological sample is appropriately prepared and processed for use in measurement.
  • an RNA extract is prepared, and when the sample is subjected to measurement at the protein level, a protein extract is prepared.
  • Any known method can be used as a method for extracting RNA from a biological sample. Specific examples include Ambion RiboPure kit manufactured by Life Technologies, miRNeasy manufactured by Qiagen, and RNeasy manufactured by Qiagen. Among these, the miRNeasy kit manufactured by Qiagen is preferably used.
  • nucleic acid means DNA or RNA.
  • DNA includes not only double-stranded DNA but also single-stranded DNAs comprising a sense strand and an antisense strand constituting the DNA. Accordingly, the DNA includes double-stranded genomic DNA, single-stranded cDNA, single-stranded DNA having a sequence complementary to the DNA, and the like.
  • RNA includes any of total RNA, mRNA, rRNA, and synthetic RNA.
  • SEMA3D can be a marker for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer.
  • SEMA3D has its genes and proteins registered in NCBI as follows. SEMA3D gene: NM_152754 (SEQ ID NO: 1) SEMA3D protein: NP — 687967 (SEQ ID NO: 2)
  • TACC2 is Transforming acidic coiled-coil-containing protein 2 (UniProtKB / Swiss-Prot: TACC2 # HUMAN (O95359)).
  • a TACC2 isoform existing at the TACC2 locus can also be used.
  • SEQ ID NO: 3 TACC2 isoform L having the transcription start region (TSS) of chromosome number 10 (chr10), start position 123779316, and end position 123779341 of the human reference genome (GRCh37).
  • TACC2 isoform S TACC2 # HUMAN (O95359, SEQ ID NO: 5), E9PBC6 # HUMAN (E9PBC6 , SEQ ID NO: 6), E7EMZ9 # HUMAN (E7EMZ9, SEQ ID NO: 7) or a part thereof.
  • TACC2 isoform can be a marker for evaluating lymph node metastasis of endometrial cancer (PCT / JP2015 / 050551).
  • the gene expression level of TACC2 is significantly higher in the positive group than in the lymph node metastasis negative group (FIG. 3), and the relative expression is a combination of the two genes SEMA3D and TACC2.
  • the amount ⁇ - ⁇ Ct (SEMA3D-TACC2)> is low in the lymph node metastasis positive group and high in the negative group (FIG. 4).
  • - ⁇ Ct (SEMA3D) is low and - ⁇ Ct (TACC2) is high, and the expression level of SEMA3D and TACC2 is negatively correlated with the diagnosis of lymph node metastasis (FIG. 5).
  • SEMA3D and TACC2 are combined, the sensitivity and specificity are even better than when each is used alone (FIG. 6). Therefore, the combination of SEMA3D and TACC2 is extremely useful as a marker for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer.
  • the method for measuring the expression level of SEMA3D or SEMA3D and TACC2 is not particularly limited as long as it is a method capable of confirming a marker in a biological sample. That is, any method can be used as long as it can detect or quantify the expression level of the marker, and preferably, the detection or quantification of the marker at the nucleic acid level, specifically, the detection or quantification of the transcript (mRNA), and the protein level. Detection or quantification, specifically, detection or quantification of a translation product (protein) can be mentioned.
  • Nucleic acid amplification methods such as PCR, RT-PCR, SmartAmp, LAMP, etc., which use DNA hybridizing to nucleic acid derived from a marker gene as primers, and marker genes Hybridization method (DNA chip, DNA microarray, dot blot hybridization, slot blot hybridization, northern blot hybridization, etc.) using nucleic acid that hybridizes to nucleic acid derived from the probe, a method for determining the base sequence, or a combination thereof You can choose from different methods.
  • Hybridization method DNA chip, DNA microarray, dot blot hybridization, slot blot hybridization, northern blot hybridization, etc.
  • a probe or primer used for measurement that is, a primer for specifically recognizing and amplifying a nucleic acid derived from a marker gene, or a probe for specifically detecting a nucleic acid derived from a marker gene falls under this category.
  • these can be designed based on the nucleotide sequences shown in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NOs: 3 to 4.
  • “specifically recognize” means that substantially only a nucleic acid derived from a marker gene can be detected, for example, in a Northern blot method, and that only the nucleic acid is substantially generated, for example, in an RT-PCR method. This means that the detected product or product can be determined to be a nucleic acid derived from the marker gene.
  • an oligonucleotide containing a certain number of nucleotides complementary to DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 to 4 or its complementary strand can be used.
  • the “complementary strand” refers to the other strand with respect to one strand of double-stranded DNA comprising A: T (U in the case of RNA) and G: C base pairs.
  • “complementary” is not limited to the case where the certain number of consecutive nucleotide regions are completely complementary sequences, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, and still more preferably 95% or more. What is necessary is just to have the identity on arrangement
  • oligonucleotide When such an oligonucleotide is used as a primer, it only needs to be capable of specific annealing and chain extension, and is usually 10 bases or more, preferably 15 bases or more, more preferably 20 bases or more, and for example 100 bases or less. Those having a chain length of preferably 50 bases or less, more preferably 35 bases or less are mentioned.
  • specific hybridization when used as a probe, it is sufficient that specific hybridization can be performed, and at least a part or all of the sequence of DNA (or its complementary strand) consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3-4 is used. For example, those having a chain length of 10 bases or more, preferably 15 bases or more, and 100 bases or less, preferably 50 bases or less, more preferably 25 bases or less are used.
  • Specific hybridization means substantially hybridizing only to the target nucleic acid, and examples include hybridization under stringent conditions.
  • stringent conditions usually washing conditions of about “1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 37 ° C.”, and more stringent hybridization conditions are “0.5 ⁇ SSC, 0.1% SDS, Examples of conditions of about “42 ° C.” and more severe hybridization conditions include “0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 65 ° C.”.
  • Hybridization conditions are described in J. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Thrd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) and the like.
  • the “oligonucleotide” may be DNA or RNA, and may be synthesized or natural. Moreover, the probe used for hybridization is usually labeled.
  • the labeling agent include radioisotopes (eg, 32 P, 33 P, 35 S, 125 I, 131 I, 3 H, 14 C, etc.), enzymes (eg, ⁇ -galactosidase, ⁇ -glucosidase, alkaline phosphatase) Peroxidase, malate dehydrogenase, etc.), fluorescent substances (eg, fluorescamine, fluorescein isothiocyanate, etc.), luminescent substances (eg: luminol, luminol derivatives, luciferin, lucigenin, etc.).
  • the probe DNA is first labeled with a radioisotope, a fluorescent substance, etc., and then the obtained labeled DNA is transferred to a nylon membrane or the like according to a conventional method. Hybridize with RNA. Thereafter, a method of detecting and measuring a signal derived from the labeled product of the formed duplex of labeled DNA and RNA can be used.
  • cDNA is prepared from RNA derived from a biological sample according to a conventional method, and using this as a template, the expression product (transcription product) of the target marker can be amplified.
  • a primer (a normal strand that binds to the cDNA ( ⁇ strand) and a reverse strand that binds to the + strand) is hybridized with the primer.
  • PCR is performed according to a conventional method, and the obtained amplified double-stranded DNA is detected.
  • detection of the amplified double-stranded DNA use a method of detecting the labeled double-stranded DNA produced by performing the above PCR using a primer previously labeled with RI, a fluorescent substance, etc. Can do.
  • the mRNA expression level can be measured by binding the activated cDNA or cRNA onto the microarray and detecting the label on the microarray.
  • the nucleic acid immobilized on the array may be any nucleic acid that hybridizes under stringent conditions. For example, it may be a nucleic acid having the entire sequence of a marker gene, or a nucleic acid consisting of a partial sequence. Also good.
  • the “partial sequence” includes a nucleic acid consisting of at least 15 to 25 bases.
  • the measured value such as the expression level can be corrected in advance as a relative value with the gene whose expression level is relatively stable.
  • the correction makes it possible to more accurately compare the variation in the expression of the marker in a plurality of independent biological samples.
  • the measurement value can be corrected by correcting the expression level of the marker gene using, as an internal standard, a gene whose expression level does not vary greatly depending on the presence or absence of lymph node metastasis or lymph node metastasis of endometrial cancer.
  • GAPDH which is a housekeeping gene, is generally used as a gene whose expression level is stable.
  • the SUDS3 gene exhibits a more stable expression level in endometrial cancer cells. This was confirmed and used as an internal standard.
  • the measurement of the expression level of a marker also includes measuring the expression level of a homologue of a marker whose biological activity is equivalent to that of the marker.
  • homologous genes include, for example, nucleotide sequences that hybridize under stringent conditions with complementary sequences of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NOs: 3 to 4, and SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NOs: 5 to 7 And a polynucleotide having biological activity equivalent to that of the protein consisting of the amino acid sequence represented by
  • stringent conditions as described above, “1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 37 ° C.”, more strictly “0.5 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 42 ° C.” More strictly, “0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 65 ° C.” can be mentioned.
  • a polynucleotide specifically, a base sequence having 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more identity with the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NOs: 3 to 4.
  • the following polynucleotide can be exemplified.
  • the identity of the base sequence can be determined by the algorithm such as BLAST.
  • an immunological measurement method using an antibody that specifically binds to the marker protein is convenient and preferable.
  • the immunological assay include enzyme immunoassay (ELISA), radioimmunoassay, immunohistochemical staining, western blot, immunoprecipitation, immunofluorescence, flow cytometry, and the like.
  • ELISA enzyme immunoassay
  • radioimmunoassay radioimmunoassay
  • immunohistochemical staining western blot
  • immunoprecipitation immunofluorescence
  • flow cytometry and the like.
  • Western blotting after using the above-described antibody as a primary antibody, an antibody that binds to a primary antibody labeled with a radioisotope, a fluorescent substance, an enzyme, or the like as a secondary antibody is used. Labeling is performed, and signals derived from these labeling substances are measured with a radiation measuring instrument, a fluorescence detector or the like.
  • the anti-SEMA3D antibody or anti-TACC2 antibody may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. Moreover, it is also possible to use a part of an antibody (partial fragment) or a peptide containing a part of an antibody, and that retains the binding action of an antibody to an antigen (marker protein). Examples of such antibody fragments include F (ab ′) 2 , Fab ′, Fab, single chain Fv (scFv) and the like.
  • the polyclonal antibody is used to immunize non-human animals such as rabbits by using a protein expressed and purified in E. coli or the like according to a conventional method, or by synthesizing a partial polypeptide of the protein according to a conventional method, It can be obtained from the serum of the immunized animal according to a conventional method.
  • a monoclonal antibody is obtained by immunizing a non-human animal such as a mouse with a protein expressed and purified in Escherichia coli according to a conventional method or a partial polypeptide of the protein, and fusing the obtained spleen cells with myeloma cells. It can be obtained from the prepared hybridoma cells.
  • Monoclonal antibodies may also be prepared using phage display (Griffiths, AD; Duncan, AR, Current Opinion in Biotechnology, Volume 9, Number 1, February 1998, pp. 102-108 (7)).
  • Antibody fragments can be obtained by enzymatic treatment of the obtained antibodies or using sequence information of the obtained antibodies.
  • a biological sample isolated from a patient is fixed in formalin by a conventional method, embedded in paraffin, sliced into tissue pieces, and pasted on a slide glass. It is preferably used as a section sample.
  • an enzyme-labeled antibody such as alkaline phosphatase or peroxidase can be used, but highly sensitive detection is performed using a three-step method such as ABC method or LSAB method, or the DAVision EnVision detection system. Is preferred.
  • the expression level of the marker in the biological sample derived from cancer tissue isolated from the endometrial cancer patient is measured, and based on the expression level, the presence or absence of lymph node metastasis or lymph node metastasis, or prognosis The badness of is evaluated. Specifically, it is evaluated by comparing the expression level of the detected marker with a control level.
  • the “control level” means, for example, the expression level of the marker in endometrial cancer tissue isolated from endometrial cancer patients without lymph node metastasis or normal tissue isolated from endometrial cancer patients, Or the expression level of the marker in the group of healthy people who have not developed endometrial cancer is mentioned.
  • the expression level of SEMA3D in the cancer tissue of the subject patient is close to the expression level in an endometrial cancer tissue, normal tissue or tissue derived from a healthy person isolated from a uterine body cancer patient without lymph node metastasis,
  • the expression level falls within the range of the expression level or significantly higher than the expression level
  • the endometrial cancer of the patient can be evaluated as having no lymph node metastasis, low lymph node metastasis ability, or good prognosis.
  • the relative expression level of SEMA3D with respect to the expression level of TACC2 in the cancer tissue of the target patient is an endometrial cancer tissue, normal tissue, or tissue derived from a healthy person isolated from a patient with endometrial cancer that does not have lymph node metastasis. If the patient's endometrial cancer has no lymph node metastasis, has low lymph node metastasis, or has a prognosis if it is close to, within the range of the expression level, or significantly higher than the expression level Can be evaluated as good.
  • the lymph node metastasis or lymph node metastasis ability of endometrial cancer in the present invention can be evaluated by increasing / decreasing the expression level of the marker.
  • a control level for example, based on the expression level of a marker derived from normal tissue, endometrial cancer tissue isolated from endometrial cancer patients without lymph node metastasis, or healthy tissue, a standard value ( (Threshold level) is set, and the expression level of the marker in the patient-derived biological sample is compared with a standard value (for example, a range of ⁇ 2SD is set as an allowable range).
  • the endometrial cancer of the patient when the expression level of SEMA3D in a patient-derived biological sample is higher than a threshold level, the endometrial cancer of the patient can be evaluated as having no lymph node metastasis, low lymph node metastasis ability, or good prognosis.
  • the relative expression level of SEMA3D with respect to the expression level of TACC2 in the patient-derived biological sample is higher than the threshold level, the patient's endometrial cancer has no lymph node metastasis, low lymph node metastasis ability, or prognosis. It can be evaluated as good.
  • the possibility of lymph node metastasis or the ability of lymph node metastasis or based on the information provided in combination with other methods (CT, MRI, PET-CT, etc.) as necessary Prognosis is determined.
  • the criteria for performing lymph node biopsy and lymph node dissection are left to the judgment of the doctor, but if it is determined that there is a possibility of lymph node metastasis or high lymph node metastasis capacity, for example, lymph node dissection is performed. be able to.
  • lymph node metastasis or lymph node metastasis ability is low, or it is judged that the prognosis is good, it is considered unnecessary to perform lymph node dissection.
  • the test kit for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer includes a test reagent and a measurement device for measuring the expression level of a marker in a biological sample separated from a patient. It contains. Specifically, a reagent for nucleic acid amplification or hybridization containing an oligonucleotide that specifically binds (hybridizes) with a transcription product (mRNA) of the marker, or a translation product (protein) of the marker of the present invention. Examples thereof include a reagent for immunological measurement including an antibody to be recognized and an immunoassay device having the antibody immobilized thereon.
  • the test kit can contain a labeling reagent, a buffer solution, a chromogenic substrate, a secondary antibody, a blocking agent, instruments and controls necessary for the test, and the like.
  • An apparatus for evaluating lymph node metastasis or lymph node metastasis ability or prognosis of endometrial cancer of the present invention means for measuring the expression level of the marker of the present invention, means for evaluating or determining the acquired data, And a means for outputting the result of evaluation or determination, each of which can be arbitrarily configured using known means.
  • Example 1 Discrimination between lymph node metastatic endometrial cancer and non-metastatic endometrial cancer (1) Specimen Inclusive intimal adenocarcinoma G1 and G2 cases confined to the uterine body, comprehensive consent was obtained before surgery In 7 lymph node metastasis positive patients and 53 negative patients, the main lesions were collected at the time of primary excision. The excised tissue pieces were immediately frozen in liquid nitrogen after excision and stored at ⁇ 80 ° C. in 2 mL microtubes.
  • RNA extraction reagent RNeasy (registered trademark) Mini Kit (QIAGEN)
  • TOMY Micro Smash MS-100 RNA was extracted according to the protocol of the RNA extraction reagent.
  • the extracted RNA was measured for ultraviolet absorption (230, 260, 280 nm) using a spectroscopic altimeter (Thermo Nano Drop), and the 260/230 ratio and 260/280 ratio were confirmed to be 1.9-2.2.
  • SUDS3 selected as a control gene was confirmed as a gene with a small difference in expression level between the lymph node metastasis positive group and the negative group. In this quantitative test for both genes, it was confirmed that the PCR amplification efficiency was almost constant. The results are shown in FIGS.
  • - ⁇ Ct SEMA3D-TACC2 isoform L or S
  • the relative expression level was significantly increased in the lymph node metastasis positive group and the negative group It was different (P value 0.0004).
  • the lymph node metastasis positive group had low expression and the negative group had high expression (FIG. 4).
  • - ⁇ Ct SEMA3D
  • TACC2 TACC2
  • the expression level of SEMA3D and TACC2 isoform L or S may have a negative correlation in the diagnosis of lymph node metastasis ( Figure 5).
  • the sensitivity / specificity for SEMA3D and TACC2 isoform L or S was calculated to create a ROC curve.
  • AUC for single genes of - ⁇ Ct (SEMA3D) and - ⁇ Ct (TACC2) was high with 0.87 and 0.78, but AUC of - ⁇ Ct (SEMA3D-TACC2 isoform L or S) was 0. .96 and the sensitivity and specificity were both excellent (FIG.
  • Example 2 Verification of localization of SEMA3D or TACC2 (1) Immunohistochemical staining for SEMA3D protein or TACC2 protein 1) Preparation of section sample A biological sample separated from a patient with endometrial cancer was fixed in formalin by a conventional method, and then paraffin was added. What was embedded, sliced into 3 ⁇ m tissue pieces, and pasted on a slide glass was used as a section sample.
  • SEMA3D antibody SEMA3D antibody
  • rabbit IgG DAKO, # 1 X0936
  • the secondary antibody reaction was performed using a labeled streptavidin biotin method, and the antigen-antibody complex was converted into a 3,3-diaminobenzidine solution (1 mmol / L 3,3-diaminobenzidine, 50 mmol / L PBS buffer (pH 7.4), Visualization with 0.006% H 2 O 2 ).
  • the nuclei were counterstained with hematoxylin and eosin before microscopic observation.
  • FIG. 7A shows the results of hematoxylin and eosin staining
  • FIG. 7D shows the results of immunostaining for SEMA3D protein
  • FIG. 7E shows the negative control for D
  • FIG. 7F shows the results of immunostaining for TACC protein
  • FIG. 7G shows the negative control for F. .
  • FISH Fluorescence in situ hybridization
  • section sample A biological sample isolated from a patient with endometrial cancer was fixed in formalin by a conventional method, embedded in paraffin, sliced into 4 ⁇ m tissue pieces, and pasted on a slide glass. Used as.
  • FISH Fluorescence in situ hybridization
  • Hybridization was performed by reacting with a hybridization solution containing 125 nM probe at 37 ° C. for 16 hours, and nuclear staining with DAPI was performed in a conventional manner. Fluorescence observation was performed with an AXIOVERT 200M inverted wide-field fluorescence microscope (Zeiss, Oberkochen, Germany). The result of fluorescence in situ hybridization for SEMA3D mRNA is shown in FIG. 7B, and the negative control for B is shown in FIG. 7C. In FIG. 7B, SEMA3D mRNA is shown in green, and in FIGS. 7B and C, nuclear staining with DAPI is shown in blue.
  • the present invention it is possible to objectively determine the presence or absence of lymph node metastasis and predict the occurrence of endometrial cancer by examining the primary endometrial focus collected before or during surgery. Thereby, unnecessary lymph node dissection can be avoided, and complications such as postoperative lymphedema can be reduced. That is, conventional image evaluation and tumor markers used for diagnosis of lymph node metastasis are not suitable for early cancer or micrometastasis, but the marker of the present invention (SEMA3D, or SEMA3D and TACC2) does not cause lymph node metastasis even in early cancer. Diagnosis is possible and micrometastasis may be detected.
  • lymph node metastasis diagnosis is achieved by quantitative analysis of marker gene expression in the primary lesion, it is possible to extract cases that can omit retroperitoneal lymph node dissection in consideration of histological malignancy in the metastasis negative group It is considered possible to avoid complications by lymph node dissection and to reduce the degree of patient invasiveness. Furthermore, there may be cases where lymph node metastasis is negative in the final pathological diagnosis even if the lymph node dissection is performed in addition to the primary endometrial cancer for high risk.

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Abstract

子宮体がんであってリンパ節転移性のものと非転移のものとを、分子レベルで判別する手法の提供。　子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料について、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定する工程を含む、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価する方法。

Description

子宮体がんのリンパ節転移能の評価方法
（関連出願及び参照による援用）
　本出願は、２０１５年７月９日に出願した日本国特願２０１５－１３８１０４の優先権を主張するものであり、その全内容は本明細書において参照として援用される。
　また、本明細書に引用される全ての文献は、あらゆる目的から全体として参照により援用される。いずれの文献の引用も、それが本発明に関する先行技術であることを認めるものと解釈されてはならない。
　本発明は、子宮体がんであってリンパ節転移性のものと非転移性のものとを分子レベルで判別する手法に関する。
　子宮体がんは、進行期Ｉ期の早期癌の再発率は約１０％、５年生存率は９０％を超え、予後は良好とされるがんの一つである。また、進行期Ｉ・ＩＩ期の１１８０症例を対象としたＧｙｎｅｃｏｌｏｇｉｃ　Ｏｎｃｏｌｏｇｙ　Ｇｒｏｕｐ（ＧＯＧ）の多数症例による検討では、頚部間質浸潤、腹腔細胞診陽性、付属器転移、リンパ節転移などのリスク因子がなければ術後の生存率は良好であることが示されている。
　早期子宮体がんの標準初回治療としては手術療法が第一選択となる。しかしながら、子宮体がんにおいて、リスク因子でありかつ進行期の判断基準でもあるリンパ節転移の有無を事前に検査することが難しい。そのため標準術式として単純子宮全摘術及び付属器切除術に加えてリンパ節郭清が実施され、摘出したリンパ節の病理診断を行って進行期を確定している。
　この様な早期子宮体がんの５年生存率は８５％－９５％程度であり概ね良好である。しかしながら難治性のリンパ浮腫等、リンパ節郭清による副作用の問題があるだけでなく、病理診断は個々の診断医の形態学的判断に依存しており、また原理的に微小転移の見落としリスクがあるなど、確定診断の判断材料自体に潜在的な課題がある。実際にリンパ節郭清まで実施しているのにも関わらず、数％の患者は５年以内に再発しており、これらの予後不良患者に対する新たな再発予防や治療方法の開発が望まれている。
　一方で子宮体がんに関しても分子マーカー開発が盛んに行われ、ＣＡ１２５をはじめとする血中のコア蛋白関連分子がバイオマーカーとして診断に活用されている。ＣＡ１２５は病期の進行とともに検出値、陽性率が上昇するマーカーで、がんの悪化だけでなく治療効果の評価にも活用可能である。しかしながら、腫瘍量の少ない早期のがん患者では陽性率が低いため、再発予防を開始する診断材料には活用できない。
　したがって、手術前の原発巣掻爬により得られた検体を測定すること、あるいは手術により摘出されたがん原発巣をすぐさま測定することによりリンパ節転移のリスクを判断することができれば、転移リスクの低い患者に対するリンパ節郭清を省略することができ、患者を難治性の合併症の恐れから解放することができる。そして、患者へのメリットの大きい効果的な個別化医療の実現が期待できる。
　セマフォリン（Semaphorin）は、細胞間のシグナル伝達に関わるガイダンス分子として同定されたタンパク質群であり、血管や神経回路の形成や免疫細胞の調節に関わっている。セマフォリンはセマドメインに隣接する部分の配列の違いから７つのクラス（サブファミリー）に分けられており、セマフォリンクラス３は、血管内皮細胞及び腫瘍細胞の生存、増殖、アポトーシス、移行などの細胞プロセスの重要な調節因子として機能しており、細胞の形態や移動を制御することが認められている。このうちクラス３Ｄセマフォリン（ＳＥＭＡ３Ｄ）は、乳がん発生やこれに起因する腫瘍形成阻害及び血管形成を阻害することが報告されている（非特許文献１）。
　しかしながら、ＳＥＭＡ３Ｄと子宮体がんとの関係や子宮体がんにおけるリンパ節転移との関係についてはこれまでに全く知られていない。
Kigel B, Varshavsky A, Kessler O, Neufeld G. Successful inhibition of tumor development by specific class-3 semaphorins is associated with expression of appropriate semaphorin re- ceptors by tumor cells. PLoS ONE 2008;3: e3287
　本発明は、リンパ節転移性の子宮体がんと非転移性の子宮体がんで発現が異なるマーカー分子の特定と、当該マーカーの測定により子宮体がんであってリンパ節転移性の子宮体がんと非転移性の子宮体がんを分子的に判別する手法を提供することに関する。
　本発明者らは、子宮体がん患者のがん組織に発現するＳＥＭＡ３Ｄについて、核酸レベルでの発現を測定し解析したところ、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが、リンパ節転移陽性群に対して陰性群の方が有意に高値であることを発見し、ＳＥＭＡ３Ｄがリンパ節転移性の子宮体がんと非転移性の子宮体がんを判別するためマーカーとして有用であることを見出した。また、当該ＳＥＭＡ３Ｄと、ＴＡＣＣ２とを組み合わせて用いることにより、更に精度良くリンパ節転移性の子宮体がんと非転移性の子宮体がんを判別できることを見出した。
　すなわち、本発明は、以下の１）～１３）に係るものである。
　１）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料について、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定する工程を含む、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価する方法。
　２）以下のａ及びｂの工程を含む、上記１）に記載の方法。
　　ａ）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定する工程
　　ｂ）ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを、対照レベル又は閾値レベルと比較する工程
　３）ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが対照レベル又は閾値レベルよりも増加している場合に、リンパ節転移なし又はリンパ節転移能が低い又は予後が良好と判定する上記１）又は２）に記載の方法。
　４）生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが、子宮体がん組織におけるＳＥＭＡ３Ｄの転写産物又は翻訳産物の量である、上記１）～３）のいずれかに記載の方法。
　５）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料について、ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを測定する工程を含む、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価する方法。
　６）以下のｃ及びｄの工程を含む、上記５）に記載の方法。
　　ｃ）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを測定する工程
　　ｄ）ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを、対照レベル又は閾値レベルと比較する工程
　７）ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルをＴＡＣＣ２の発現レベルと比較したときの相対的な発現レベルが対照レベル又は閾値レベルよりも増加している場合に、リンパ節転移なし又はリンパ節転移能が低い又は予後が良好と判定する上記５）又は６）に記載の方法。
　８）生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルが、子宮体がん組織におけるＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の転写産物又は翻訳産物の量である、上記５）～７）のいずれかに記載の方法。
　９）ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質と特異的に結合する抗体、又はＳＥＭＡ３Ｄ遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチドを含有する、上記１）～４）のいずれかに記載の方法に用いる子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための検査用キット。
　１０）ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質と特異的に結合する抗体及びＴＡＣＣ２タンパク質と特異的に結合する抗体、又はＳＥＭＡ３Ｄ遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチド及びＴＡＣＣ２遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチドを含有する、上記５）～８）に記載の方法に用いる子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための検査用キット。
　１１）上記１）～８）のいずれかに記載の方法に用いる、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための装置。
　１２）ＳＥＭＡ３Ｄの、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとしての使用。
　１３）ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとしての使用。
　本発明によれば、リンパ節転移の可能性が皆無である子宮体がん検体を選択でき、これによって、不要なリンパ節郭清の回避を含めた手術方式に関する方針の示唆が得られる。リンパ節郭清を回避できれば、手術時間の短縮、手術侵襲の軽減、術後のリンパ浮腫などを防ぐことができる。また、本発明を用いることで、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後について、トレーニングを積んだ臨床検査技師のような専門家の主観によらなくても、それと同程度あるいはそれ以上の判定を客観的に行うことが可能になる。したがって、本発明は、患者検体の採取から解析まで患者の傍らで医療従事者が行う検査（POCT：Point of Care Testing）にも好適に利用できる。
リンパ節転移陽性群及び陰性群におけるＳＥＭＡ３ＤのＲＮＡ相対発現量。 ＳＥＭＡ３ＤのＲＮＡ相対発現量のＲＯＣ曲線。縦軸：感度、横軸：偽陽性率（＝１－特異度）。 リンパ節転移陽性群及び陰性群におけるＴＡＣＣ２（ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）のＲＮＡ相対発現量。 リンパ節転移陽性群及び陰性群におけるＴＡＣＣ２（ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）のＲＮＡ発現量に対するＳＥＭＡ３ＤのＲＮＡ相対発現量。 ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２（ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）のＲＮＡ相対発現量の散布図。 ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２（ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）の組み合わせ（ＳＥＭＡ３Ｄ－ＴＡＣＣ２）のＲＮＡ相対発現量のＲＯＣ曲線。縦軸：感度、横軸：偽陽性率（＝１－特異度）。 （Ａ）子宮体がん細胞のヘマトキシリンエオジン染色画像。（Ｂ）ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡに対する蛍光ｉｎ　ｓｉｔｕ　ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（ＦＩＳＨ）画像、ＳＥＭＡ３ＤのｍＲＮＡを緑色で、ＤＡＰＩによる核染色を青色で示す。（Ｃ）Ｂに対する陰性対照、ＤＡＰＩによる核染色を青色で示す。（Ｄ）ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質に対する免疫染色画像。（Ｅ）Ｄに対する陰性対照。（Ｆ）ＴＡＣＣ２タンパク質に対する免疫染色画像。（Ｇ）Ｆに対する陰性対照。
　本発明において、子宮体がんとは、子宮がんのうち子宮体部に発生する癌を意味する。子宮体がんは子宮腔側の上皮組織である子宮内膜に発生し、子宮内膜がんと同義である。子宮体がんは、がんの大きさ、広がり、浸潤や転移の状況から、日産婦臨床進行期分類（２０１１年）によれば進行期がＩ～ＩＶに分類されている。本発明において、評価の対象となる子宮体がんとしては、進行期によって特に制限されるものではないが、類内膜腺がんの高分化型腺がんであるのが好ましい。
　本発明において、子宮体がんにおけるリンパ節転移とは、子宮体がんが、骨盤内や大動脈周囲等のリンパ節において増殖することを意味する。
　本発明においてリンパ節転移の評価とは、子宮体がんのリンパ節への転移の有無を評価又は測定することを意味し、リンパ節転移能（リンパ節転移性）の評価とは、子宮体がんがリンパ節へ転移して増殖する能力を有するか否かを評価又は測定することを意味する。
　本発明において、予後の評価とは、子宮体がんの経過及び終末を予知することを意味する。子宮体がんにおける予後の良・不良はがんの転移の密接に関係し、がん細胞の転移における主要な経路の一つはリンパ節である。従って、リンパ節転移能の評価は子宮体がんの予後評価と密接な相関があり、リンパ節転移（能）がある場合は予後不良と評価でき、リンパ節転移（能）がない場合は予後良好と評価できる。
　本発明において用いられる生体試料は、評価対象となる子宮体がん患者から分離された術前或いは術中の子宮体がん組織である。当該生体試料は、測定に供するために適宜調製・処理される。例えば試料を核酸レベルでの測定に供する場合はＲＮＡ抽出液が調製され、試料をタンパク質レベルでの測定に供する場合はタンパク質抽出液が調製される。
　生体試料からＲＮＡを抽出する方法は、公知の任意の方法を用いることができる。具体的には、ライフテクノロジーズ社製Ａｍｂｉｏｎ　ＲｉｂｏＰｕｒｅキット、キアゲン社製ｍｉＲＮｅａｓｙ、同社製ＲＮｅａｓｙが例示できるが、これらのうちキアゲン社製ｍｉＲＮｅａｓｙキットが好適に用いられる。
　本明細書において、「核酸」と云う用語は、ＤＮＡ又はＲＮＡを意味する。また、「ＤＮＡ」とは、２本鎖ＤＮＡのみならず、それを構成するセンス鎖及びアンチセンス鎖という各１本鎖ＤＮＡを包含する。従って、ＤＮＡには、２本鎖のゲノムＤＮＡ、１本鎖のｃＤＮＡや該ＤＮＡと相補的な配列を有する１本鎖ＤＮＡ等が包含される。また、「ＲＮＡ」には、ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ及び合成のＲＮＡのいずれもが含まれる。
　後記実施例に示すとおり、子宮体部に限局した内膜腺癌Ｇ１及びＧ２症例（リンパ節転移陽性：７症例、リンパ節転移陰性：５３症例）を対象とし、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定した結果、リンパ節転移陽性群に対して陰性群の方が有意に高値であり（図１）、感度及び特異度が共に高いことが示された（図２）。したがって、ＳＥＭＡ３Ｄは子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとなり得る。
　ＳＥＭＡ３Ｄは、その遺伝子及びタンパク質が、ＮＣＢＩに以下のように登録されている。
　ＳＥＭＡ３Ｄ遺伝子：ＮＭ＿１５２７５４（配列番号１）
　ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質：ＮＰ＿６８９９６７（配列番号２）
　また、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルに加えて、ＴＡＣＣ２の発現レベルを組み合わせて測定することにより、より精度の高い評価を行うことができる。
　ＴＡＣＣ２は、Transforming acidic coiled-coil-containing protein 2（UniProtKB/Swiss-Prot: TACC2#HUMAN (O95359））であるが、本発明においては、ＴＡＣＣ２の遺伝子座に存在するＴＡＣＣ２アイソフォームを用いることもできる。ここで、ＴＡＣＣ２アイソフォームとしては、例えば、ヒトリファレンスゲノム(GRCh３７)の染色体番号１０（chr10）、開始位置123779316、終了位置123779341を転写開始領域（ＴＳＳ）として持つ、配列番号３（ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ）又は４（ＴＡＣＣ２アイソフォームＳ）で示される塩基配列からなる遺伝子と、そこからコードされるタンパク質である、UniProtKB/Swiss-Prot: TACC2#HUMAN (O95359,配列番号５）、E9PBC6#HUMAN (E9PBC6, 配列番号６), E7EMZ9#HUMAN (E7EMZ9, 配列番号７)のいずれか又はその一部が挙げられる。当該ＴＡＣＣ２アイソフォームは子宮体がんのリンパ節転移を評価するためのマーカーとなり得ることを本出願人らは既に見出している（ＰＣＴ／ＪＰ２０１５／０５０５５１）。
　後記実施例に示すように、ＴＡＣＣ２の遺伝子発現量は、リンパ節転移陰性群に対して陽性群の方が有意に高値であり（図３）、ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２の２つの遺伝子を組み合わせた相対発現量＜－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ－ＴＡＣＣ２）＞は、リンパ節転移陽性群において低発現、陰性群においてで高発現となる（図４）。また、リンパ節転移陽性群では－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ）低値、－ΔＣｔ（ＴＡＣＣ２）高値であり、ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２の発現量は、リンパ節転移診断において負の相関が認められる（図５）。さらにＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２を組み合わせた場合には、感度・特異度が、それぞれを単独で用いた場合よりさらに優れている（図６）。
　したがって、ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２の組み合わせは、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとして極めて有用である。
　本発明において、ＳＥＭＡ３Ｄ、又はＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２（以下、これらを「マーカー」と称する）の発現レベルを測定する方法は、生体試料中のマーカーを確認可能な方法であれば良く、特に限定されない。すなわち、マーカーの発現レベルを検出又は定量できる方法であればよく、好適には、マーカーの核酸レベルでの検出又は定量、具体的には転写産物（ｍＲＮＡ）の検出又は定量、及びタンパク質レベルでの検出又は定量、具体的には翻訳産物（タンパク質）の検出又は定量が挙げられる。
　核酸レベルでの検出又は定量法としては、マーカー遺伝子由来の核酸にハイブリダイズするＤＮＡをプライマーとしたＰＣＲ法、ＲＴ－ＰＣＲ法、ＳｍａｒｔＡｍｐ法、ＬＡＭＰ法等に代表される核酸増幅法や、マーカー遺伝子由来の核酸にハイブリダイズする核酸をプローブとしたハイブリダイゼーション法（ＤＮＡチップ、ＤＮＡマイクロアレイ、ドットブロットハイブリダイゼーション、スロットブロットハイブリダイゼーション、ノーザンブロットハイブリダイゼーション等）、塩基配列を決定する方法、又はこれらを組み合わせた方法から選ぶことができる。
　ここで、測定に用いられるプローブ又はプライマー、すなわち、マーカー遺伝子由来の核酸を特異的に認識し増幅するためのプライマー、又はマーカー遺伝子由来の核酸を特異的に検出するためのプローブがこれに該当するが、これらは、前記配列番号１や配列番号３～４で示される塩基配列に基づいて設計することができる。ここで「特異的に認識する」とは、例えばノーザンブロット法において、実質的にマーカー遺伝子由来の核酸のみを検出できること、また例えばＲＴ－ＰＣＲ法において、実質的に当該核酸のみが生成される如く、当該検出物又は生成物が当該マーカー遺伝子由来の核酸であると判断できることを意味する。
　具体的には、配列番号１や配列番号３～４で示される塩基配列からなるＤＮＡ又はその相補鎖に相補的な一定数のヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドを利用することができる。ここで「相補鎖」とは、Ａ：Ｔ（ＲＮＡの場合はＵ）、Ｇ：Ｃの塩基対からなる２本鎖ＤＮＡの一方の鎖に対する他方の鎖を指す。また、「相補的」とは、当該一定数の連続したヌクレオチド領域で完全に相補配列である場合に限られず、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の塩基配列上の同一性を有すればよい。塩基配列の同一性は、例えば、相同性計算アルゴリズムＮＣＢＩ　ＢＬＡＳＴを用い、期待値＝１０；ギャップを許す；フィルタリング＝ＯＮ；マッチスコア＝１；ミスマッチスコア＝－３の条件にて決定することができる。
　斯かるオリゴヌクレオチドは、プライマーとして用いる場合には、特異的なアニーリング及び鎖伸長ができればよく、通常、例えば１０塩基以上、好ましくは１５塩基以上、より好ましくは２０塩基以上、かつ例えば１００塩基以下、好ましくは５０塩基以下、より好ましくは３５塩基以下の鎖長を有するものが挙げられる。
　また、プローブとして用いる場合には、特異的なハイブリダイゼーションができればよく、配列番号１や配列番号３～４で示される塩基配列からなるＤＮＡ（又はその相補鎖）の少なくとも一部若しくは全部の配列を有し、例えば１０塩基以上、好ましくは１５塩基以上、かつ例えば１００塩基以下、好ましくは５０塩基以下、より好ましくは２５塩基以下の鎖長のものが用いられる。
　特異的なハイブリダイゼーションとは、実質的に目的の核酸のみにハイブリダイズすることを意味し、例えばストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることが挙げられる。ここで、ストリンジェントな条件としては、通常「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」程度の洗浄条件、より厳しいハイブリダイズ条件としては「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」程度、さらに厳しいハイブリダイズ条件としては「０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」程度の条件を挙げることができる。ハイブリダイズ条件は、J. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Thrd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001)等に記載されている。
　尚、「オリゴヌクレオチド」は、ＤＮＡあるいはＲＮＡであることができ、合成されたものでも天然のものでもよい。また、ハイブリダイゼーションに用いるプローブは、通常標識したものが用いられる。標識剤としては、例えば、放射性同位元素（例：32Ｐ、33Ｐ、35Ｓ、125Ｉ、131Ｉ、3Ｈ、14Ｃ等）、酵素（例：β－ガラクトシダーゼ、β－グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素等）、蛍光物質（例：フルオレスカミン、フルオレッセンイソチオシアネート等）、発光物質（例：ルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニン等）等が挙げられる。
　例えば、ノーザンブロットハイブリダイゼーション法を利用する場合は、まずプローブＤＮＡを放射性同位元素、蛍光物質等で標識し、次いで、得られた標識ＤＮＡを、常法に従ってナイロンメンブレン等にトランスファーした生体試料由来のＲＮＡとハイブリダイズさせる。その後、形成された標識ＤＮＡとＲＮＡとの二重鎖を、標識物に由来するシグナルを検出、測定する方法を用いることができる。
　また、ＲＴ－ＰＣＲ法を利用する場合は、まず生体試料由来のＲＮＡから常法に従ってｃＤＮＡを調製し、これを鋳型として標的のマーカーの発現産物（転写産物）が増幅できるように調製した一対のプライマー（上記ｃＤＮＡ（－鎖）に結合する正鎖、＋鎖に結合する逆鎖）をこれとハイブリダイズさせる。その後、常法に従ってＰＣＲ法を行い、得られた増幅二本鎖ＤＮＡを検出する。増幅された二本鎖ＤＮＡの検出には、予めＲＩ、蛍光物質等で標識しておいたプライマーを用いて上記ＰＣＲを行うことによって産生される標識二本鎖ＤＮＡを検出する方法等を用いることができる。
　また、ＤＮＡマイクロアレイを用いて検体中のｍＲＮＡの発現量を測定する場合は、支持体にマーカー遺伝子由来の核酸（ｃＤＮＡ又はＤＮＡ）の少なくとも１種を固定化したアレイを用い、ｍＲＮＡから調製した標識化ｃＤＮＡ又はｃＲＮＡをマイクロアレイ上に結合させ、マイクロアレイ上の標識を検出することによって、ｍＲＮＡ発現量を測定することができる。
　前記アレイに固定化される核酸としては、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸であればよく、例えば、マーカー遺伝子の全配列を有する核酸であってもよく、部分配列からなる核酸であってもよい。ここで、「部分配列」とは、少なくとも１５～２５塩基からなる核酸が挙げられる。
　尚、上記の測定において、マーカーの発現変動を比較する場合、予め発現量などの測定値を発現量が比較的安定している遺伝子との相対値として補正することができる。補正により、独立した複数の生体試料におけるマーカーの発現変動をより正確に比較することが可能となる。測定値の補正は、子宮体がんのリンパ節転移又はリンパ節転移能の有無において発現量が大きく変動しない遺伝子を内部標準として、マーカー遺伝子の発現量を補正することにより行うことができる。ここで、発現量が安定している遺伝子としては、一般的にハウスキーピング遺伝子であるＧＡＰＤＨが用いられるが、本発明ではＳＵＤＳ３遺伝子（ＮＭ＿０２２４９１）が子宮体がん細胞でより安定した発現量を呈することを確認し、内部標準として用いた。
　また、本発明において、マーカーの発現レベルの測定には、マーカーと生物学的活性が等価であるマーカーのホモログの発現レベルを測定することも包含される。
　斯かるホモログ遺伝子としては、例えば配列番号１や配列番号３～４で示される塩基配列の相補配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列からなり、且つ配列番号２や配列番号５～７で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質と生物学的活性が等価である、ポリヌクレオチドが挙げられる。
　ここで、ストリンジェントな条件としては、前記と同様に、「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」、より厳しくは「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」、さらに厳しくは「０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」を挙げることができる。このようなポリヌクレオチドとして、具体的には配列番号１や配列番号３～４で示される塩基配列と８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の同一性を有する塩基配列からなるポリヌクレオチドを例示することができる。塩基配列の同一性は、前記ＢＬＡＳＴ等のアルゴリズムにより決定することができる。
　マーカーのタンパク質レベルでの検出又は定量は、マーカータンパク質に特異的に結合する抗体（抗ＳＥＭＡ３Ｄ抗体、抗ＴＡＣＣ２抗体）を用いて、免疫学的に測定する方法が簡便であり好適である。免疫学的測定法としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、ラジオイムノアッセイ、免疫組織化学染色、ウェスタンブロット、免疫沈降、免疫蛍光、フローサイトメトリー等が挙げられる。
　例えば、ウェスタンブロット法によれば、一次抗体として上記の抗体を用いた後、二次抗体として放射性同位元素、蛍光物質又は酵素等で標識した一次抗体に結合する抗体を用いて、その一次抗体を標識し、これら標識物質由来のシグナルを放射線測定器、蛍光検出器等で測定することが行われる。
　尚、上記抗ＳＥＭＡ３Ｄ抗体や抗ＴＡＣＣ２抗体は、ポリクローナル抗体であっても、モノクローナル抗体であってもよい。また、抗体の一部分（部分断片）又は抗体の一部分を含むペプチドであって、抗体の抗原（マーカータンパク質）への結合作用を保持する抗体の断片を用いることもできる。斯かる抗体断片としては、例えば、Ｆ（ａｂ'）2、Ｆａｂ'、Ｆａｂ、一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）等が挙げられる。
　これらの抗体は、公知の方法に従って製造することができる。具体的には、ポリクローナル抗体は、常法に従って大腸菌等で発現し精製したタンパク質を用いて、あるいは常法に従って当該タンパク質の部分ポリペプチドを合成して、家兎等の非ヒト動物に免疫し、該免疫動物の血清から常法に従って得ることが可能である。
　一方、モノクローナル抗体は、常法に従って大腸菌等で発現し精製したタンパク質又は該タンパク質の部分ポリペプチドをマウス等の非ヒト動物に免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞から得ることができる。また、モノクローナル抗体は、ファージディスプレイを用いて作製してもよい（Griffiths, A.D.; Duncan, A.R., Current Opinion in Biotechnology, Volume 9, Number 1, February 1998 , pp. 102-108(7)）。
　得られた抗体を酵素処理又は得られた抗体の配列情報を利用することにより、抗体の断片を得ることができる。
　また、免疫組織化学分析法を行う場合には、患者から分離した生体試料を常法によりホルマリン固定をした後、パラフィンに包埋して組織片に薄切し、スライドガラスに貼り付けたものを切片試料として使用するのが好ましい。二次抗体としては、アルカリホスファターゼやペルオキシダーゼ等の酵素標識抗体を用いることができるが、ＡＢＣ法やＬＳＡＢ法等の三段階法、またＤＡＫＯ社のＥｎＶｉｓｉｏｎ検出システム等を用いて高感度な検出を行うのが好ましい。
　斯くして、子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料中のマーカーの発現レベルが測定され、当該発現レベルに基づいて、リンパ節転移又はリンパ節転移能の有無、又は予後の悪さが評価される。具体的には、検出されたマーカーの発現レベルを対照レベルと比較することによって評価される。
　ここで、「対照レベル」とは、例えば、リンパ節転移がない子宮体がん患者から分離された子宮内膜がん組織若しくは子宮体がん患者から分離された正常組織におけるマーカーの発現レベル、又は子宮体がんを発症していない健常人群におけるマーカーの発現レベルが挙げられる。
　例えば、対象患者のがん組織のＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが、リンパ節転移がない子宮体がん患者から分離された子宮内膜がん組織、正常組織或いは健常人由来の組織における発現レベルに近い、当該発現レベルの範囲内に属する、或いは当該発現レベルより有意に高い場合には、当該患者の子宮体がんはリンパ節転移がない又はリンパ節転移能が低い、又は予後が良好と評価できる。
　また、対象患者のがん組織におけるＴＡＣＣ２の発現量に対するＳＥＭＡ３Ｄの相対発現量が、リンパ節転移がない子宮体がん患者から分離された子宮内膜がん組織、正常組織或いは健常人由来の組織における発現レベルに近い、当該発現レベルの範囲内に属する、或いは当該発現レベルより有意に高い場合には、当該患者の子宮体がんはリンパ節転移がない又はリンパ節転移能が低い、又は予後が良好と評価できる。
　また、本発明における子宮体がんのリンパ節転移又はリンパ節転移能の評価は、マーカーの発現レベルの上昇／減少により行うこともできる。この場合は、対照レベルとして、例えば正常組織、リンパ節転移がない子宮体がん患者から分離された子宮内膜がん組織或いは健常人の組織由来のマーカーの発現レベルに基いて、標準値（閾値レベル）を設定し、患者由来の生体試料におけるマーカーの発現レベルを標準値と比較する（例えば±２Ｓ．Ｄ．の範囲を許容範囲とする）ことにより行うことができる。例えば、患者由来の生体試料におけるＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが閾値レベルより高い場合に、当該患者の子宮体がんはリンパ節転移がない又はリンパ節転移能が低い、又は予後が良好と評価できる。また、患者由来の生体試料におけるＴＡＣＣ２の発現量に対するＳＥＭＡ３Ｄの相対発現量が閾値レベルより高い場合に、当該患者の子宮体がんはリンパ節転移がない又はリンパ節転移能が低い、又は予後が良好と評価できる。
　以上より、本発明の方法に従い、必要に応じて他の方法（ＣＴ，ＭＲＩやＰＥＴ－ＣＴなど）との組み合わせで提供された情報に基づいて、リンパ節転移の可能性若しくはリンパ節転移能又は予後が判断される。リンパ節生検やリンパ節郭清を行う基準は医師の判断に委ねられるが、リンパ節転移の可能性がある又はリンパ節転移能が高いと判断された場合には、例えばリンパ節郭清を行うことができる。一方、リンパ節転移の可能性がない又はリンパ節転移能が低い、又は予後が良好と判断された場合には、リンパ節郭清を行う必要はないと考えられる。
　本発明の子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための検査用キットは、患者から分離した生体試料におけるマーカーの発現レベルを測定するための検査試薬や測定デバイスを含有するものである。具体的には、マーカーの転写産物（ｍＲＮＡ）と特異的に結合（ハイブリダイズ）するオリゴヌクレオチドを含む、核酸増幅、ハイブリダイゼーションのための試薬、或いは、本発明のマーカーの翻訳産物（タンパク質）を認識する抗体を含む免疫学的測定のための試薬や同抗体を固定した免疫測定デバイス等が挙げられる。当該キットに包含されるオリゴヌクレオチド、抗体等は、上述したとおり公知の方法により得ることができる。
　また、当該検査用キットには、上記抗体や核酸の他、標識試薬、緩衝液、発色基質、二次抗体、ブロッキング剤や、試験に必要な器具やコントロール等を含むことができる。
　本発明の子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための装置は、本発明のマーカーの発現レベルを測定する手段と、取得したデータを評価又は判定する手段と、評価又は判定した結果を出力する手段とを備えたものであり、それぞれ公知の手段を用いて任意に構成することができる。
実施例１　リンパ節転移性の子宮体がんと非転移の子宮体がんの判別
（１）検体
　子宮体部に限局した内膜腺癌Ｇ１及びＧ２症例で、術前に包括同意を得たリンパ節転移陽性患者７例と陰性患者５３例を対象とし、原発巣摘出時に主要病変部を採取した。
　摘出組織片は、摘出後速やかに液体窒素中で凍結し、２ｍＬマイクロチューブに入れ－８０℃で保存した。
（２）ＲＴ－ｑＰＣＲ法を用いたＳＥＭＡ３Ｄ又はＴＡＣＣ２発現量の測定
　１）ＲＮＡの抽出及び精製
　保存組織片を２ｍＬサンプルチューブに５０ｍｇ以下に分割して入れ、ジルコニアビーズφ２．０とＲＮＡ抽出試薬（RNeasy（登録商標）Mini Kit (QIAGEN)）を加えビーズ式細胞破砕装置（TOMY Micro Smash MS-100）を用いて１３５００ｒｐｍ、３分間ホモジネートした。次に、ＲＮＡ抽出試薬のプロトコールに従ってＲＮＡの抽出を行った。抽出ＲＮＡは、分光高度計（Thermo Nano Drop）による紫外線吸収（２３０、２６０、２８０ｎｍ）を測定し、２６０／２３０比及び２６０／２８０比が１．９－２．２であることを確認した。
　２）ｃＤＮＡの精製
　１）で抽出した手術摘出検体由来の抽出ＲＮＡ２０００ｎｇ分から、PrimeScriptTM 1st strand cDNA Synthesis Kit（TAKARA）のプロトコールに従って、１ｓｔ　ｓｔｒａｎｄ　ｃＤＮＡを合成した。
　３）ＲＴ－ｑＰＣＲによるＳＥＭＡ３Ｄ発現量又はＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ（それぞれ配列番号３又は４）発現量の測定
　Fast SYBR（登録商標） Green Master Mix(Applied Biosystems)のプロトコールに従って反応液を調製し、以下に示すプライマーを用いて、Life technologies  7500 Fast Real-Time PCR Systemを用いてＲＴ-ｑＰＣＲを行った。
　ａ）SEMA3D primer(TAKARA Primer Set ID：HA239516)
　ｂ）SUDS3 primer(TAKARA Primer Set ID：HA237699)
　ｃ) TACC2アイソフォームＬ又はＳ primer：
　　　Primer F: CCAgTTgCTgAAgggCAgAA（配列番号８）
　　　Primer R: gCggACCTTggAgTCTgAg（配列番号９）
　遺伝子発現量は、ＳＥＭＡ３Ｄ又はＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳのＣｔ値から対照遺伝子として定量したＳＵＤＳ３のＣｔ値を差し引き-１を掛けた－ΔＣｔ値を算出し、ｕｎｐａｉｒｅｄ　ｓｔｕｄｅｎｔ　ｔ－ｔｅｓｔでリンパ節転移陽性群と陰性群の統計学的有意差を評価した。対照遺伝子（ハウスキーピング遺伝子）として選択したＳＵＤＳ３は、リンパ節転移陽性群と陰性群の間での発現量の差が小さい遺伝子として確認されたものである。両遺伝子に対するこの定量試験においてＰＣＲ増幅効率がほぼ一定であることを確認した。
　結果を図１及び図２に示す。
（３）結果
　１）ＳＥＭＡ３Ｄ発現量は、リンパ節転移陽性群に対して陰性群の方が有意に高値であった（図１、Ｐ＝０．００６５）。さらにＳＥＭＡ３Ｄの感度・特異度を算出してＲＯＣ曲線を作成したところ、ＡＵＣは０．８７であり、感度、特異度ともに高いバイオマーカーとなり得ることが示された（図２）。
　以上より、ＳＥＭＡ３Ｄをマーカーとして、早期癌と進行癌及び組織悪性度に制限されることなく、リンパ節転移の有無を判定できると考えられる。
　２）ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳの発現量は、リンパ節転移陰性群に対して陽性群の方が有意に高値であった（図３、Ｐ＝０．０１２６）。
　３）ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳの２つの遺伝子を組み合わせた－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ－ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）を検討した結果、リンパ節転移陽性群と陰性群において、相対発現量が有意に異なっていた（Ｐ値　０．０００４）。リンパ節転移陽性群は低発現、陰性群で高発現であった（図４）。また、リンパ節転移陽性群では－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ）低値、－ΔＣｔ（ＴＡＣＣ２）高値であり、ＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳの発現量は、リンパ節転移診断において負の相関を認めることが示された（図５）。
　さらにＳＥＭＡ３ＤとＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳに関しての感度・特異度を算出しＲＯＣ曲線を作成した。－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ）、－ΔＣｔ（ＴＡＣＣ２）の単遺伝子でのＡＵＣは、０．８７、０．７８と共に高いものであったが、－ΔＣｔ（ＳＥＭＡ３Ｄ－ＴＡＣＣ２アイソフォームＬ又はＳ）のＡＵＣは０．９６とさらに感度・特異ともに優れていた（図６）。
　以上より、ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２を組み合わせたバイオマーカーは、早期癌と進行癌及び組織悪性度に制限されることなく、より精度よくリンパ節転移の有無の評価できることが示された。そこで、偽陰性率が０％となる極限（図６においてsensitivityが１.0、1-specificityが０．１以下になるポイント）にカットオフ値を設定した場合、子宮体がん群において癌組織を体内に残すリスクを回避しつつ、不要なリンパ節郭清の大半（９２％）が省略可能になることが期待される。
実施例２　ＳＥＭＡ３Ｄ又はＴＡＣＣ２の局在の検証
（１）ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質又はＴＡＣＣ２タンパク質に対する免疫組織染色
　１）切片試料の調製
　子宮体がん患者から分離した生体試料を常法によりホルマリン固定した後、パラフィンに包埋して３μｍの組織片に薄切し、スライドガラスに貼り付けたものを切片試料として使用した。
　２）免疫組織染色
　切片について脱パラフィンを行った後、ＴＡＣＣ２タンパク抗体反応用切片は、０．０１Ｍ（ｐＨ６．０）クエン酸緩衝液中で１２０℃１０分間オートクレーブし、抗原を賦活化した。ＳＥＭＡ３Ｄタンパク抗体反応用切片は、０．０１Ｍ（ｐＨ６．０）クエン酸緩衝液中でＭｉｃｒｏ　Ｗａｖｅ　７００Ｗで６分間加熱を２回行い、抗原を賦活化した。
　それぞれの切片を３％過酸化水素溶液で１０分間反応させペルオキシダーゼをブロックし、１次抗体反応は、１０％ヤギ血清／ＰＢＳで２０００倍に希釈したポリクローナルＴＡＣＣ２抗体（MERCK MILLIPORE, #2397077）もしくはポリクローナルＳＥＭＡ３Ｄ抗体（SIGMA-ALDRICH, #HPA037522-100UL）と４℃で一晩インキュベートした。陰性対照実験では、ウサギＩｇＧ（DAKO, #1 X0936）を１次抗体として使用した。２次抗体反応は標識ストレプトアビジンビオチン法を用いて行い、抗原抗体複合体を３，３－ジアミノベンジジン溶液（１ｍｍｏｌ／Ｌ　３，３－ジアミノベンジジン、５０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＰＢＳ緩衝液（ｐＨ７．４）、０．００６％　Ｈ2Ｏ2）を用いて可視化した。核はヘマトキシリンエオジンで対比染色したのち検鏡観察を行った。ヘマトキシリンエオジン染色の結果を図７Ａに、ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質に対する免疫染色結果を図７Ｄに、Ｄに対する陰性対照を図７Ｅに、ＴＡＣＣタンパク質に対する免疫染色結果を図７Ｆに、Ｆに対する陰性対照を図７Ｇに示す。
（２）ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡに対する蛍光ｉｎ　ｓｉｔｕ　ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（ＦＩＳＨ）
　１）ＦＩＳＨプローブ
　ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡ（ＮＭ＿１５２７５４）に対するＦＩＳＨプローブは、Stellaris（登録商標）RNA FISHプローブデザイナー（Biosearch Technologies Inc., Petaluma, CA)（https://www.biosearchtech.com/support/tools/design-software/stellaris-probe-designer）を用いて設計し、カルボキシフルオレセインで標識した。ＦＩＳＨプローブは、ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡの全塩基配列に対して設計した２５個のプローブを混合して使用した。使用したプローブを表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　２）切片試料の調製
　子宮体がん患者から分離した生体試料を常法によりホルマリン固定した後、パラフィンに包埋して４μｍの組織片に薄切し、スライドガラスに貼り付けたものを切片試料として使用した。
　３）蛍光ｉｎ　ｓｉｔｕ　ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（ＦＩＳＨ）
　プロトコール（www.biosearchtech.com/stellarisprotocols, Protocol for Formalin-Fixed, Paraffin-Embedded (FFPE) Tissue）に従って脱パラフィンを行った切片を、３７℃２０分間１０μｇ／ｍｌのプロテイナーゼＫ（和光純薬, #169-22761）を含有する１×ＰＢＳ中でインキュベートした。
　陰性対照として使用したスライドに取り付けられた組織切片は、ハイブリダイゼーション工程前に３７℃３０分間５０μｇ／ｍｌのリボヌクレアーゼＡ（ナカライテスク, #30100-31）で前処理し、切片中のｍＲＮＡを除去した。ハイブリダイゼーションは１２５ｎＭのプローブを含むハイブリダイゼーション溶液と３７℃で１６時間反応させ、常法でＤＡＰＩによる核染色を行った。AXIOVERT 200M倒立広視野蛍光顕微鏡 (Zeiss, Oberkochen, Germany) により蛍光観察を行った。ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡに対する蛍光ｉｎ　ｓｉｔｕ　ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎの結果を図７Ｂに、Ｂに対する陰性対照を図７Ｃに示す。図７Ｂ中、ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡを緑色で、図７Ｂ及びＣ中、ＤＡＰＩによる核染色を青色で示す。
（３）結果
　１）ＴＡＣＣ２タンパク質に対する免疫染色は子宮体がん細胞に一致して陽性を示し、具体的には子宮体がん細胞の細胞核に一致して陽性を呈した（図７Ｆ、Ｇ）。
　２）ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質に対する免疫染色も子宮体がん細胞質に一致して陽性を示したが、同タンパク質はＩｇドメインを有し細胞外分泌されるため検体誤差が大きかった（図７Ｄ、Ｅ）。
　３）ＳＥＭＡ３Ｄ局在をさらに同定するために、ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡに対するプローブを作成し、ｉｎ　ｓｉｔｕ　ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（ＦＩＳＨ）を行ったところ、ＳＥＭＡ３Ｄ　ｍＲＮＡの緑色蛍光は主に子宮体がん細胞の細胞質に一致して陽性を呈した（図７Ｂ、Ｃ）。
　これらの結果により、同定されたマーカーは、検体に混在する間質細胞ではなく子宮体がん細胞のみで発現されることを実証した。
　本発明によれば、術前又は術中に採取した子宮内膜の原発巣を調べることで、子宮体がんのリンパ節転移有無の判断や発生の予測を、客観的に行うことができる。これにより、不要なリンパ節郭清を回避でき、術後リンパ浮腫などの合併症を減らすことが可能となる。
　すなわち、従来のリンパ節転移診断に用いられている画像評価や腫瘍マーカーでは早期癌や微小転移には適さないが、本発明のマーカー（ＳＥＭＡ３Ｄ、又はＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２）は早期癌でもリンパ節転移を診断可能であり、微小転移も検出できる可能性がある。原発巣のマーカー遺伝子発現定量解析によるリンパ節転移診断が実現すれば、転移陰性群では、組織学的悪性度を考慮した上で後腹膜リンパ節郭清を省略できる症例を抽出することが可能となり、リンパ節郭清手術による合併症の回避や患者侵襲度の軽減が可能になると考えられる。
　さらに、高リスクなどの理由により子宮体がん原発巣に加えリンパ節郭清も実施した結果であっても最終病理診断でリンパ節転移陰性の場合がある。この場合、リンパ節転移巣の摘出精度及び病理診断精度による偽陰性の可能性を否定できないが、ＳＥＭＡ３Ｄ低発現或いは（ＳＥＭＡ３Ｄ－ＴＡＣＣ２）の低発現を認める場合はリンパ節転移のリスクが高いと判断し、根治療法及び再発予防としての術後治療の追加や経過観察間隔の設定などリスクに準じた個別医療を設定することが可能となるといえる。

Claims (13)

  1. 　子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料について、ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定する工程を含む、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価する方法。
  2. 　以下のａ及びｂの工程を含む、請求項１に記載の方法。
    　　ａ）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを測定する工程
    　　ｂ）ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルを、対照レベル又は閾値レベルと比較する工程
  3. 　ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが対照レベル又は閾値レベルよりも増加している場合に、リンパ節転移なし又はリンパ節転移能が低い又は予後が良好と判定する請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルが、子宮体がん組織におけるＳＥＭＡ３Ｄの転写産物又は翻訳産物の量である、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料について、ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを測定する工程を含む、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価する方法。
  6. 　以下のｃ及びｄの工程を含む、請求項５に記載の方法。
    　　ｃ）子宮体がん患者から分離されたがん組織由来の生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを測定する工程
    　　ｄ）ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルを、対照レベル又は閾値レベルと比較する工程
  7. 　ＳＥＭＡ３Ｄの発現レベルをＴＡＣＣ２の発現レベルと比較したときの相対的な発現レベルが対照レベル又は閾値レベルよりも増加している場合に、リンパ節転移なし又はリンパ節転移能が低い又は予後が良好と判定する請求項５又は６に記載の方法。
  8. 　生体試料中のＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の発現レベルが、子宮体がん組織におけるＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の転写産物又は翻訳産物の量である、請求項５～７のいずれか１項に記載の方法。
  9. 　ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質と特異的に結合する抗体、又はＳＥＭＡ３Ｄ遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチドを含有する、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法に用いる子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための検査用キット。
  10. 　ＳＥＭＡ３Ｄタンパク質と特異的に結合する抗体及びＴＡＣＣ２タンパク質と特異的に結合する抗体、又はＳＥＭＡ３Ｄ遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチド及びＴＡＣＣ２遺伝子由来の核酸を特異的に認識するオリゴヌクレオチドを含有する、請求項５～８のいずれか１項に記載の方法に用いる子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための検査用キット。
  11. 　請求項１～８のいずれか１項に記載の方法に用いる、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するための装置。
  12. 　ＳＥＭＡ３Ｄの、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとしての使用。
  13. 　ＳＥＭＡ３Ｄ及びＴＡＣＣ２の、子宮体がんのリンパ節転移若しくはリンパ節転移能又は予後を評価するためのマーカーとしての使用。
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