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WO2016002757A1 - プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途 - Google Patents

プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途 Download PDF

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WO2016002757A1
WO2016002757A1 PCT/JP2015/068785 JP2015068785W WO2016002757A1 WO 2016002757 A1 WO2016002757 A1 WO 2016002757A1 JP 2015068785 W JP2015068785 W JP 2015068785W WO 2016002757 A1 WO2016002757 A1 WO 2016002757A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
purine
lactic acid
adenine
conversion
food
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2015/068785
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
成臣 山田
幸男 大柴
洋 坪井
宏 狩野
千鶴 岩本
幸夫 浅見
伊藤　裕之
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Meiji Co Ltd
Original Assignee
Meiji Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Meiji Co Ltd filed Critical Meiji Co Ltd
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Priority to SG11201610413RA priority patent/SG11201610413RA/en
Priority to JP2016531383A priority patent/JP6637419B2/ja
Publication of WO2016002757A1 publication Critical patent/WO2016002757A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74—Bacteria
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28—N-glycosides
    • C12P19/30—Nucleotides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor

Definitions

  • the present invention relates to lactic acid bacteria that suppress purine body absorption and uses thereof.
  • hyperuricemia results in decreased uric acid excretion and excessive uric acid production, and increased serum uric acid levels often induce gout that develops acute arthritis with severe pain.
  • hyperuricemia is mainly prevented and treated by controlling serum uric acid levels by a combination of diet, exercise, and medication.
  • diet therapy by restricting the calorie intake, the intake of dietary purines that are eventually decomposed into uric acid is reduced, but it is not always easy to continue restricting severe calorie intake. Therefore, more effective treatment methods are desired for gout and hyperuricemia.
  • Patent Documents 1 to 5 show that microorganisms and fermented products that are effective in reducing serum uric acid levels in hyperuricemia.
  • Patent Document 1 shows that lactic acid bacteria have high resolution from purine nucleosides to purine bases.
  • Patent Documents 4 and 5 indicate that lactic acid bacteria have purine body resolution.
  • Such microorganisms and fermented products that have a serum uric acid level-reducing action promote the conversion of purine nucleosides into purine bases in the intestine, and convert them from purine nucleosides that are easily absorbed from the intestinal tract to purine bases that are difficult to absorb from the intestinal tract By doing so, it has been considered that purine body absorption is suppressed and excretion is promoted.
  • an efficient method for obtaining lactic acid bacteria having an effect of reducing serum uric acid levels is not known.
  • JP 2008-005834 A International publication WO2011 / 102310 International Publication WO2004 / 112809 International Publication WO2008 / 129802 JP 2013-048636
  • An object of the present invention is to provide a lactic acid bacterium that suppresses purine body absorption and its use.
  • the present invention includes the following.
  • Lactic acid bacteria are cultured in a solution containing adenine, 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate, and Mg 2+ , and the conversion activity of adenine obtained thereby into adenylate is used as an index.
  • the method according to [1] further comprising measuring 5′-nucleotidase activity and selecting a lactic acid bacterium having reduced activity compared to Lactobacillus gasseri ATCC 33323 strain.
  • a food or drink or a pharmaceutical comprising the conversion agent according to any one of [5] to [7] above.
  • a purine base can be efficiently converted into a purine nucleotide, thereby reducing the serum uric acid level in the administered subject.
  • This specification includes the contents of Japanese Patent Application Nos. 2014-134973, 2014-234050, and 2015-064201 which form the basis for claiming priority of the present application.
  • FIG. 1 is a graph showing the change over time in the conversion rate from adenine to AMP (AMP / adenine conversion rate) by Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • FIG. 2 is a graph showing the change over time in the conversion rate of guanine to GMP (GMP / guanine conversion rate) by Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • FIG. 3 is a graph showing the purine nucleosidase activity of Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • FIG. 4 is a graph showing the 5′-nucleotidase activity of Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • the left bar shows AMP to adenosine
  • the middle bar shows IMP to inosine
  • the right bar shows the conversion rate from GMP to guanosine.
  • FIG. 5 is a graph showing changes over time in serum uric acid levels in human subjects who continuously ingested Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • FIG. 6 shows the rate of change in serum uric acid level of each subject after intake of the test food (from the pre-intake test to the 8-week test).
  • FIG. 7 is a graph showing the purine uptake ability of Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • FIG. 8 is a graph showing the growth ability of Lactobacillus gasseri OLL2959 strain in the presence of purines.
  • FIG. 9 is a diagram showing the adenine uptake ability of a plurality of lactic acid strains.
  • FIG. 10 is a graph showing the growth ability of a plurality of lactic acid strains in the presence of adenine.
  • FIG. 11 is a graph showing the ability of the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and the purine body to be taken up in the animals to which the purine body was simultaneously administered.
  • FIG. 12 is a graph showing the results of comparison of adenine uptake ability by type of lactic acid strain.
  • FIG. 13 is a graph showing the results of comparing the growth ability of lactic acid strains in the presence of adenine by the type of lactic acid strain.
  • Purine is a general term for substances having a purine skeleton, and is classified into purine bases, purine nucleosides, and purine nucleotides.
  • Purine bodies perform various functions mainly in cells of living organisms, and are responsible for transmission of genetic information as, for example, constituents of nucleic acids.
  • Main purine bases include adenine, guanine, hypoxanthine and xanthine.
  • Purine nucleosides are compounds in which a sugar is bound to a purine base, and examples thereof include adenosine, guanosine, inosine and xanthosine combined with ribose, deoxyadenosine, deoxyguanosine, deoxyinosine and deoxyxanthosine combined with deoxyribose.
  • a purine nucleotide is a compound in which a phosphate is bonded to a purine nucleoside, and examples thereof include adenylic acid (AMP), guanylic acid (GMP), inosinic acid (IMP), and xanthylic acid (XMP).
  • Purine is not only supplied from food to in vivo as a dietary purine via intestinal absorption, but also newly biosynthesized from amino acids and the like through the de novo pathway. Purine bodies are biosynthesized through a salvage pathway that synthesizes purine nucleotides by reusing purine bases generated by degradation of purine nucleotides.
  • purine nucleotides are eventually metabolized to uric acid.
  • adenylate is converted to adenosine by 5′-nucleotidase (5′-NT) activity, and adenosine is metabolized to hypoxanthine via inosine.
  • Hypoxanthine becomes xanthine by xanthine dehydrogenase (XDH) and xanthine oxidase (XO) activities.
  • XDH xanthine dehydrogenase
  • XO xanthine oxidase
  • Guanylic acid becomes guanosine by 5'-nucleotidase activity, and further becomes guanine by purine nucleoside phosphorylase (PNP) activity.
  • PNP purine nucleoside phosphorylase
  • Guanine is converted to xanthine by guanine deaminase (GDA).
  • GDA guanine deaminase
  • Xanthine is metabolized to uric acid by xanthine dehydrogenase (XDH) and xanthine oxidase (XO) activities.
  • XDH xanthine dehydrogenase
  • XO xanthine oxidase
  • each purine nucleoside (adenosine, inosine, xanthosine and guanosine) is converted into a purine base (adenine, hypoxanthine, xanthine and guanine) by purine nucleoside phosphorylase (PNP) activity.
  • PNP purine nucleoside phosphorylase
  • adenine, guanine, hypoxanthine and xanthine are reused for biosynthesis of adenylic acid, guanylic acid, inosinic acid and xanthylic acid, respectively, by salvage enzyme activity (salvage pathway).
  • Lactic acid bacteria also have a purine metabolic pathway similar to that of humans, but there are also differences from human metabolic pathways. For example, most lactic acid bacteria ultimately metabolize purine nucleosides to bases. In the case of Lactobacillus gasseri, purine nucleosides are converted to purine bases by purine nucleosidases.
  • a lactic acid bacterium having a high conversion ability from a purine base to a nucleotide can be obtained by selecting lactic acid bacteria using the conversion activity of adenine into adenylic acid as an index.
  • the present invention has a conversion ability from a purine base to a nucleotide, using as an index the conversion activity of adenine to adenylate in solution obtained by culturing adenine as a substrate in contact with lactic acid bacteria in a solution.
  • the present invention relates to a method for screening enhanced lactic acid bacteria.
  • the lactic acid bacterium to be subjected to the screening method of the present invention is not particularly limited, but is preferably a bacterium belonging to the genus Lactobacillus. Lactobacillus genus Lactobacillus gasseri, Lactobacillus delbruecki subspices bulgaricus (Lactobacillus delbrueckii subsp.
  • Lactobacillus derbrueckii subspices lacdel Lactis Lactobacillus paraphile (Lactobacillus paraspii caseparacasei), Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus ⁇ ⁇ acidophilus, Lactobacillus helveticus Lactobacillus helveticus subsp. Jugurti), Lactobacillusobacrispatus, Lactobacillus ⁇ ⁇ ⁇ amylovorus, Lactobacillus Lactobacillus gallinarum, Lactobacillus oris, Lactobacillus casei subspices rhamnosus, Lactobacillus subsp.
  • Lactic acid bacteria are preferably used for screening after culturing in an appropriate medium (for example, MRS medium) to adjust the concentration.
  • lactic acid bacteria are cultured in a solution containing adenine, 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate, and Mg 2+ .
  • the conversion reaction from adenine to adenylic acid is based on Mg 2 formed by 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate (PRPP; also called phosphoribosyl pyrophosphate) in the presence of Mg 2+ This is because it is catalyzed by adenine phosphoribosyltransferase (APRT) using + PRPP and adenine as substrates.
  • PRPP 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate
  • APRT adenine phosphoribosyltransferase
  • PRPP is added to the solution in the form of any salt of PRPP (eg, any salt such as 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate pentasodium salt, potassium salt, calcium salt, etc.) Depending on the situation, it may be added to the solution. Mg 2+ can also be incorporated into the solution by adding it to the solution in the form of any salt thereof (eg MgCl 2 ).
  • the solution used for screening may be any solution as long as lactic acid bacteria can survive and does not inhibit the enzyme activity, but is preferably a buffer solution. Examples of the buffer include, but are not limited to, phosphate buffer, Tris buffer, Tris-HCl buffer, HEPES buffer, and the like.
  • the pH of the solution is not particularly limited, but is usually preferably 6 to 8 in terms of pH.
  • the concentration of adenine, 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate (PRPP), and Mg 2+ and lactic acid bacteria in the solution (reaction solution) used for screening depends on the conversion reaction of adenine to adenylic acid by lactic acid bacteria. It can be any suitable amount.
  • the solution has a final concentration of 0.1 mM to 1 mM adenine (preferably 0.1 mM to 0.3 mM), 1 to 15 mM PRPP (preferably 1 mM to 5 mM), and 4 mM to 40 mM Mg 2+ ( Preferably, it may contain 4 mM to 15 mM).
  • the reaction solution may also contain, but is not limited to, 5 ⁇ 10 8 cfu / ml to 5 ⁇ 10 10 cfu / ml lactic acid bacteria, for example, 5 ⁇ 10 9 cfu / ml lactic acid bacteria.
  • the solution may further contain any substance that does not substantially affect the conversion reaction of adenine into adenylic acid by lactic acid bacteria.
  • lactic acid bacteria are preferably suspended and cultured in a solution containing adenine, 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate (PRPP), and Mg 2+ .
  • Cultivation of lactic acid bacteria is preferably performed by incubating at a temperature suitable for culturing lactic acid bacteria, usually 20 ° C. to 50 ° C., preferably 30 to 40 ° C., for example, approximately 37 ° C.
  • Culture of lactic acid bacteria can be suitably performed by, for example, incubating in a water bath while shaking. Lactic acid bacteria are cultured for a certain period of time, typically at least 15 minutes or more, preferably 30 minutes or more, more preferably 60 minutes or more.
  • the conversion reaction of adenine to adenylic acid is stopped.
  • This conversion reaction is preferably stopped by adding TFA (trifluoroacetic acid) to the solution.
  • TFA trifluoroacetic acid
  • an equal amount of 5% TFA can be added to the solution.
  • adenine and adenylic acid in the reaction solution after stopping the conversion reaction are quantified.
  • other purines for example, purine nucleosides
  • This quantification may be performed by an arbitrary measurement method, but can be performed by, for example, an HPLC method. It is preferable to collect the supernatant of the reaction solution and subject the filtered filtrate to measurement for quantification.
  • the measurement by the HPLC method can be performed under the following conditions.
  • -Mobile phase A: 20 mM phosphate buffer (pH 7.5)
  • B 40 mM phosphate buffer (pH 7.5) / acetonitrile (1: 1)
  • Flow rate 0.2mL / min ⁇
  • Temperature 40 °C ⁇
  • Injection volume 5 ⁇ l ⁇
  • Detection wavelength 254nm
  • UV UV-Gradient A / B (min): 100/0 (0 min)-100/0 (5 min)-80/20 (20 min) [%]
  • the amounts of adenine and adenylic acid in the reaction solution can be calculated as relative values by measuring the area under the peak of the HPLC chart.
  • Conversion rate (%) (Area value under the peak of AMP in the test area ⁇ Area value under the peak of the AMP in the control area) / (Area area under the peak of adenine at the 0 minute of the test area ⁇ At the 0 minute time point in the control area) Adenine peak area value)
  • control group was measured in the same manner with a solution prepared using an equal amount of buffer instead of adding adenine as a substrate.
  • the conversion rate of adenine to adenylic acid can be used as a value representing the conversion activity of adenine to adenylic acid. That is, in the screening method of the present invention, the conversion rate of adenine to adenylic acid (AMP) is used as an index to determine whether lactic acid bacteria have the activity to convert adenine to adenylic acid (AMP) and the level of the conversion activity. Can do.
  • the conversion rate of adenine to adenylic acid (AMP) reaches a maximum of 30% or more by measurement over time, it can be determined that lactic acid bacteria have the activity of converting adenine to adenylic acid (AMP).
  • the conversion rate of adenine to adenylic acid (AMP) is preferably 40% or more, more preferably 50% or more, more preferably 70% or more, and particularly preferably 90%, as measured by time. It is preferable to select lactic acid bacteria that reach% or more.
  • a conversion rate of adenine to adenylic acid reaches a maximum level (preferably a plateau) as measured over time, for example, a Lactobacillus gasseri reference strain Compared with the ATCC 33323 strain, for example, when increased to 5 times or more, preferably 7 times or more, more preferably 10 times or more, still more preferably 13 times or more, and particularly preferably 20 times or more, from adenine of lactic acid bacteria to adenylic acid It can be determined that “the ability to convert a purine base to a purine nucleotide has been enhanced” as the ability to convert to a remarkably enhanced.
  • the lactic acid bacteria selected in this way have not only high conversion ability of adenine to adenylic acid (AMP salvage activity) but also high conversion ability of other purine bases to purine nucleotides due to salvage activity. possible.
  • the lactic acid bacterium may have an enhanced ability to convert guanine to guanylic acid. Therefore, it is also preferable to examine the conversion activity of other purine bases to purine nucleotides in the same manner for lactic acid bacteria selected as having enhanced ability to convert adenine to adenylate.
  • lactic acid bacteria are cultured in a solution containing guanine, 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate, and Mg 2+ , and the conversion activity of guanine to guanylic acid indicated thereby is indicated as an index.
  • the conversion activity of guanine to guanylic acid is indicated as an index.
  • Measurement of the conversion activity of guanine to guanylic acid and calculation of the conversion rate are the same as the above conversion of adenine to adenylic acid except that guanine is used instead of adenine and guanylic acid is used instead of adenylic acid. It can be carried out.
  • the conversion rate of guanine to guanylic acid reaches a maximum level (preferably a plateau) as measured over time, for example, compared with ATCC 33323 strain which is a reference strain of Lactobacillus gasseri.
  • a maximum level preferably a plateau
  • ATCC 33323 strain which is a reference strain of Lactobacillus gasseri.
  • ATCC 33323 strain which is a reference strain of Lactobacillus gasseri.
  • ATCC 33323 strain which is a reference strain of Lactobacillus gasseri.
  • lactic acid bacteria having an enhanced ability to convert purine bases into purine nucleotides can be screened in this way.
  • the lactic acid bacteria obtained by the screening method of the present invention have a high conversion ability from a purine base to a purine nucleotide, particularly a high conversion ability from adenine to adenylic acid and a high conversion ability from guanine to guanylic acid.
  • the lactic acid bacterium obtained by the screening method of the present invention preferably has a higher conversion activity (salvage activity) from a purine base to a purine nucleotide as compared with a degradation activity from a purine nucleotide to a purine nucleoside. Therefore, the screening method of the present invention may further include a step of measuring degradation activity to purine nucleosides using a purine nucleotide as a substrate and selecting lactic acid bacteria having reduced activity.
  • 5′-nucleotidase which catalyzes the degradation of purine nucleotides into purine nucleosides in lactic acid bacteria
  • a purine nucleotide eg, adenylic acid
  • the activity measurement of 5'-nucleotidase (5'-NT) of lactic acid bacteria can be performed by a conventional method.
  • lactic acid bacteria are cultured in a solution containing purine nucleotides (such as adenylate) and Mg 2+ .
  • Mg 2+ can be incorporated into the solution by adding it to the solution in the form of any salt thereof (eg MgCl 2 ).
  • the solution used for screening may be any solution as long as lactic acid bacteria can survive and does not inhibit the enzyme activity, but is preferably a buffer solution.
  • the buffer include, but are not limited to, phosphate buffer, Tris buffer, Tris-HCl buffer, HEPES buffer, and the like.
  • the pH of the solution is not particularly limited, but is usually preferably 6 to 8 in terms of pH.
  • ATCC 33323 strain which is a Lactobacillus gasseri reference strain.
  • the concentrations of purine nucleotides and Mg 2+ and lactic acid bacteria in the reaction solution may be any amount suitable for the conversion reaction of purine nucleotides into purine nucleosides by the ATCC 33323 strain.
  • the reaction solution may contain 0.1 mM to 1 mM purine nucleotides (preferably 0.1 mM to 0.3 mM) and 4 mM to 40 mM Mg 2+ (preferably 4 mM to 15 mM) at a final concentration at the start of the reaction.
  • the reaction solution is not particularly limited, and may contain 5 ⁇ 10 8 cfu / ml to 5 ⁇ 10 10 cfu / ml lactic acid bacteria, for example, 5 ⁇ 10 9 cfu / ml lactic acid bacteria.
  • the solution may further contain any substance that does not substantially affect the conversion reaction of purine nucleotides into purine nucleosides by lactic acid bacteria.
  • the culture conditions for lactic acid bacteria may be the same conditions as in the conversion test for adenine into adenylic acid.
  • Measurement of the conversion activity of purine nucleotides into purine nucleosides (ie, 5′-nucleotidase activity) and calculation of the conversion rate are carried out using purine nucleotides (eg, adenic acid) instead of adenine, purine nucleosides (eg, Except for using adenosine in the case of using adenic acid as a substrate, it can be carried out by the same method as the above-described test for the conversion rate of adenine to adenylic acid.
  • the reaction time is not particularly limited, but is preferably set longer (for example, 120 minutes) than in the case of conversion of adenine to adenylic acid.
  • the conversion rate of a purine nucleotide into a purine nucleoside in a preferred example, the conversion rate of adenylate into adenosine is, for example, 1/5 or less compared to, for example, ATCC 33323 strain which is a Lactobacillus gasseri reference strain, Preferably, when it is reduced to 1/7 or less, more preferably 1/10 or less, further preferably 1/13 or less, and particularly preferably 1/20 or less, the 5′-nucleotidase activity of lactic acid bacteria is significantly reduced. Can be determined.
  • the conversion of purine nucleotides to purine nucleotides is superior to the conversion of purine nucleotides to purine nucleosides, which are absorbed from the intestinal tract in the mammal and produce uric acid. A further reduction in purine nucleosides can be achieved.
  • the present invention also provides an agent for converting a purine base to a purine nucleotide, which can be obtained by the above screening method and contains a lactic acid bacterium having a high ability to convert a purine base to a purine nucleotide as an active ingredient.
  • This conversion agent is also preferably used, for example, for the conversion of adenine to adenylic acid or the conversion of guanine to guanylic acid. By using this conversion agent, it is possible to efficiently convert a purine base as a substrate into a purine nucleotide in an in vivo or in vitro reaction system.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain is a preferred example of a lactic acid bacterium having a high conversion ability from a purine base to a purine nucleotide as described above and having reduced 5′-nucleotidase activity. Lactobacillus gasseri OLL2959 strain is homolactic fermentable and has no gas production ability.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain dated March 31, 2006 (original deposit date), is the National Institute of Technology and Evaluation of Microorganisms (NPMD) (Kazusa Kamashizu, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) 8 Deposited in room 122 (zip code 292-0818) under the deposit number NITE P-224, it was transferred to a deposit under the Budapest Treaty (international deposit) on November 21, 2007, and the deposit number is NITE BP- It has been changed to 224.
  • NPMD National Institute of Technology and Evaluation of Microorganisms
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain has a high ability to convert purine bases into purine nucleotides (salvage activity) and a low ability to convert purine nucleotides into purine nucleosides. Therefore, when the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain is administered to humans, the reuse of purine bases to purine nucleotides by microorganisms is superior to the absorption and metabolism of purine bases and purine nucleosides by humans. It is thought to contribute to the decrease.
  • the present invention also provides a food or drink or a medicine containing the above-described agent for converting a purine base into a purine nucleotide.
  • the conversion agent of the present invention may be a drug or composition containing lactic acid bacteria having the ability to convert the purine base of the present invention into a purine nucleotide, or a fermented product or culture produced using the lactic acid bacteria. Or a concentrate thereof or a drug or composition containing the same.
  • the lactic acid bacterium according to the present invention contained in the conversion agent of the present invention may be a dead cell or a treated product as long as it shows enzyme activity, but is preferably a living cell.
  • the conversion agent of the present invention can impart a conversion activity of a purine base to a purine nucleotide in a living body (typically in the intestinal tract) to a food or drink or a pharmaceutical product.
  • the food or drink or pharmaceutical comprising the conversion agent of the present invention is a lactic acid bacterium and its enzymatic activity that promotes the conversion of a purine base into a purine nucleotide in the intestinal tract, for example, adenine to adenylate
  • the promotion of the conversion of guanine and the promotion of the conversion of guanine to guanylic acid can effectively reduce the serum uric acid level.
  • the food / beverage products and pharmaceuticals of the present invention may be used for reducing serum uric acid levels accompanied by promotion of conversion of adenine to adenylic acid and promotion of conversion of guanine to guanylic acid.
  • Foods and beverages and pharmaceuticals containing the conversion agent of the present invention can be suitably used for the prevention, treatment, improvement or symptom reduction of gout and hyperuricemia.
  • “food and drink” is not particularly limited, but includes beverages, foods and functional foods.
  • the kind of food / beverage products containing the conversion agent of this invention is not specifically limited.
  • a beverage containing the conversion agent of the present invention fermented milk (drink yogurt etc.), lactic acid bacteria beverage, milk beverage (coffee milk, fruit milk etc.), tea beverage (green tea, black tea, oolong tea etc.), fruit / vegetable Beverages (beverages including fruit juices such as oranges, apples and grapes, tomatoes, carrots and other vegetable juices), alcoholic beverages (beer, sparkling wine, wine, etc.), carbonated beverages, soft drinks, water-based beverages It can be illustrated.
  • Suitable drinks include drink yogurt, lactic acid bacteria drinks, milk drinks, water-based drinks and the like, and particularly preferred drinks include drink yogurt.
  • the existing reference books for example, "Latest soft drinks” (2003) (Kotsu Co., Ltd.) etc. can be referred.
  • the food include fermented milk (set type yogurt, soft yogurt, cheese, etc.), dairy products, confectionery, and instant food.
  • Suitable foods include yogurts such as set type yogurt and soft yogurt, Confectionery, cheese and the like can be mentioned, and particularly suitable foods include yogurt such as set-type yogurt and soft yogurt. You can refer to existing reference books for the production methods of various foods.
  • Fermented milk such as yogurt containing lactic acid bacteria that have the ability to convert purine bases to purine nucleotides may include other microorganisms such as lactic acid bacteria that may or may not have the ability to convert purine bases to purine nucleotides.
  • You may manufacture by adding the lactic acid bacteria which have the conversion ability from the purine base of this invention to a purine nucleotide to the dairy product and fermented milk which were manufactured using the starter which can be included.
  • such a starter and a lactic acid bacterium having high conversion ability from the purine base to the purine nucleotide of the present invention may be mixed and used as a starter to produce a dairy product or fermented milk.
  • Dairy products and fermented milk using a starter can be produced according to a conventional method.
  • plain yogurt can be produced by mixing a starter with milk or a dairy product that has been cooled after heating, mixing, homogenizing, and sterilizing, followed by fermentation and cooling.
  • the present invention relates to the use of the lactic acid bacterium having high conversion ability from the purine base to the purine nucleotide of the present invention in the production of dairy products such as yogurt and cheese, and fermented milk (preferably the lactic acid bacterium is used in dairy products, fermented milk or its raw materials. (Addition (mixing)) is preferable, and the use of the lactic acid bacteria in the production of yogurt is particularly preferable.
  • the present invention uses a lactic acid bacterium having a high ability to convert a purine base to a purine nucleotide of the present invention as an active ingredient, and has the ability to convert a purine base to a purine nucleotide in dairy products such as yogurt and cheese and fermented milk.
  • An improvement method is preferred, and a method for improving the ability to convert purine bases into purine nucleotides in yogurt is particularly preferred.
  • the “functional food” of the present invention means a food having a certain functionality for a living body, and includes, for example, food for specified health use (including conditional tokuho [food for specified health use]) and nutritional function food.
  • the functional food of the present invention also includes health foods to which health claims based on the food standards of Codex (FAO / WHO Joint Food Standards Committee) are applied.
  • Specific examples of foods that are preferable as the functional food of the present invention include special-purpose foods such as sick foods, maternal and lactating milk powders, infant formulas, elderly foods, and nursing foods.
  • the functional food of the present invention is useful for reducing the serum uric acid level.
  • the functional food of the present invention can be suitably used for reducing serum uric acid levels, particularly for reducing serum uric acid levels accompanying promotion of purine base conversion to purine nucleotides.
  • the functional food of the present invention can be suitably used for, for example, reducing serum uric acid level accompanied by promotion of conversion of adenine to adenylic acid and promotion of conversion of guanine to guanylic acid.
  • Foods and drinks such as the functional food of the present invention suppress or alleviate a decrease in serum uric acid level or an increase in serum uric acid level It may be for this purpose, and may be described or displayed to that effect.
  • the present invention includes the use of a lactic acid bacterium having a high ability to convert a purine base to a purine nucleotide of the present invention in the production of a functional food (preferably adding (compounding) the lactic acid bacterium to a functional food or a raw material thereof. ), And the use of the lactic acid bacteria in the production of the food for specified health use is particularly preferable.
  • the present invention is preferably a method for improving the ability to convert a purine base to a purine nucleotide in a functional food, using the lactic acid bacterium having a high ability to convert the purine base to the purine nucleotide of the present invention as an active ingredient.
  • a method for improving the ability to convert a purine base to a purine nucleotide in a food for specified health use is particularly preferred.
  • the functional food of the present invention may be a solid preparation such as a tablet, a granule, a powder, a pill or a capsule, a liquid preparation such as a liquid, a suspension or a syrup, or a gel or a paste.
  • a solid preparation such as a tablet, a granule, a powder, a pill or a capsule
  • a liquid preparation such as a liquid, a suspension or a syrup, or a gel or a paste.
  • a normal food or drink for example, beverage, yogurt, confectionery, etc.
  • the food and drink of the present invention may contain any food component and is not particularly limited.
  • the food and drink of the present invention may contain water, proteins, carbohydrates, lipids, vitamins, minerals, organic acids, organic bases, fruit juices, flavors and the like in addition to the lactic acid bacteria or the conversion agent of the present invention.
  • the protein examples include whole milk powder, skim milk powder, partially skimmed milk powder, casein, whey powder, whey protein, whey protein concentrate, whey protein isolate, ⁇ -casein, ⁇ -casein, ⁇ -casein, ⁇ -lactoglobulin , ⁇ -lactalbumin, lactoferrin, soy protein, chicken egg protein, meat protein and other animal and vegetable proteins, their hydrolysates, butter, whey minerals, cream, whey, non-protein nitrogen, sialic acid, phospholipids, lactose, etc. And various milk-derived components.
  • saccharide examples include general saccharides, processed starch (dextrin, soluble starch, British starch, oxidized starch, starch ester, starch ether, etc.), dietary fiber, and the like.
  • lipid examples include animal oils such as lard, fish oil, etc., fractionated oils, hydrogenated oil, transesterified oil, etc .; palm oil, safflower oil, corn oil, rapeseed oil, coconut oil, fractionated oils thereof, Examples include vegetable oils such as hydrogenated oils and transesterified oils.
  • vitamins include vitamin A, carotene, vitamin B group, vitamin C, vitamin D group, vitamin E, vitamin K group, vitamin P, vitamin Q, niacin, nicotinic acid, pantothenic acid, biotin, inositol, choline.
  • minerals include, for example, calcium, potassium, magnesium, sodium, copper, iron, manganese, zinc, selenium, and whey minerals.
  • organic acid include malic acid, citric acid, lactic acid, and tartaric acid. These components can be used alone or in combination of two or more, and may be added using a synthetic product and / or a food containing a large amount thereof.
  • the pharmaceutical product (pharmaceutical composition) containing the conversion agent of the present invention may contain a pharmaceutically acceptable carrier or additive in addition to the lactic acid bacterium or the conversion agent of the present invention.
  • the carrier include water, pharmaceutically acceptable organic solvents, collagen, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, carboxyvinyl polymer, sodium alginate, water-soluble dextran, water-soluble dextrin, sodium carboxymethyl starch, pectin, xanthan gum, Arabic Rubber, casein, gelatin, agar, glycerin, propylene glycol, polyethylene glycol, petrolatum, paraffin, stearyl alcohol, stearic acid, human serum albumin, mannitol, sorbitol, lactose, pharmaceutically acceptable surfactants, liposomes, etc.
  • Artificial cell structures can be used.
  • the additive include a binder, an excipient, a lubricant, a disintegrant, a wetting agent, a stabilizer, a buffering agent, a corrigent, a preservative, and a coloring agent.
  • the carrier or additive can be selected appropriately or in combination depending on the dosage form of the preparation.
  • the pharmaceutical product of the present invention may further contain other pharmacological components.
  • the pharmaceutical product of the present invention is preferably administered orally.
  • the pharmaceutical product of the present invention may be in any dosage form such as a solid preparation such as a tablet, a granule, a powder, a pill and a capsule, a gel, or a liquid preparation such as a liquid, suspension and syrup.
  • the dose of the food or drink or pharmaceutical product of the present invention is not particularly limited, considering the age and weight of the subject to be administered, the route of administration, the number of administrations, etc., and can be widely changed at the discretion of those skilled in the art.
  • the amount of lactic acid bacteria of the present invention is preferably 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 11 cfu per dose, more preferably 1 ⁇ 10 8 to 1 ⁇ 10 10 cfu, and 1 ⁇ 10 9 to 1 ⁇ 10 10 cfu is more preferable, for example, 4 ⁇ 10 9 to 6 ⁇ 10 10 cfu is preferable.
  • the food / beverage product or pharmaceutical product of the present invention preferably contains the lactic acid bacterium of the present invention in this amount per dose.
  • the food / beverage product or pharmaceutical product of the present invention is preferably administered to a subject once or more times a day, preferably twice or more times, typically twice a day.
  • the food / beverage product or pharmaceutical product of the present invention is preferably administered continuously, for example, more preferably administered daily. It is preferable that the food or drink or pharmaceutical of the present invention is administered for at least 1 week, preferably 2 weeks or more, for example, 4 weeks or more.
  • the food or drink or pharmaceutical product of the present invention is preferably administered orally.
  • “administration” includes both “intake” of food and drink and “administration” of pharmaceuticals.
  • oral administration includes administration by tube feeding via a nasal tube or a gastric fistula tube.
  • the subject to which the food / beverage product or pharmaceutical product of the present invention is administered is a mammal including humans, domestic animals, pets, experimental (test) animals, and the like.
  • human subjects are preferred, human subjects with gout and / or hyperuricemia are more preferred, and are not limited to the following: serum uric acid levels of 6 mg / dL or more, for example, 6-10 mg / dL Even more preferred are human subjects exhibiting In one embodiment, a human subject with mild to borderline hyperuricemia with a serum uric acid level of 6-8 mg / dL is preferred.
  • human subjects exhibiting serum uric acid levels of 7 mg / dL or higher, preferably 7-11 mg / dL (in one example, 7.6 mg / dL to 9.5 mg / dL) are preferred, of which hyperuricemia More preferred are human subjects suffering from symptom and gout.
  • subjects with a correlation between serum uric acid level and purine body intake from food prior to measurement of serum uric acid level are more preferable as administration (intake) subjects. .
  • a subject who administers the food or drink or pharmaceutical of the present invention has a conversion activity from a purine base to a purine nucleotide (salvage activity), for example, a conversion activity from adenine to adenylic acid, particularly adenine phospho responsible for conversion from adenine to adenylic acid.
  • a conversion activity from a purine base to a purine nucleotide for example, a conversion activity from adenine to adenylic acid, particularly adenine phospho responsible for conversion from adenine to adenylic acid.
  • the present invention also provides a purine nucleotide from a purine base by reacting the conversion agent of the present invention with a purine base in the presence of 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate and Mg 2+ .
  • a method is also provided. This method may be performed in vivo or may be performed in vitro. When carried out in vivo, this method using the conversion agent of the present invention may use foods and drinks containing the conversion agent of the present invention and may not include medical practice. When carried out in vitro, this method of the present invention is a method for the synthesis (production) of purine nucleotides using a purine base in solution as a substrate.
  • this method of the present invention is also preferably a method of generating adenylic acid from adenine.
  • This method of the present invention may also be a method of producing guanylic acid from guanine. Conversion of purine bases by lactic acid bacteria in the presence of 5-phospho-D-ribose-1-diphosphate and Mg 2+ can be carried out in the same manner as the above-described test for the conversion of adenine to adenylate. it can.
  • lactic acid bacteria including Lactobacillus gasseri strains such as Lactobacillus gasseri OLL2959 strain have the ability to take up purines and have high growth ability in the presence of purines. That purine body uptake ability and growth ability in the presence of purine body are correlated, and that such lactic acid bacteria administration (intake) suppresses purine body absorption and contributes to the reduction of serum uric acid level I found. Based on this finding, the action of capturing the purine bodies of the lactic acid bacteria can also be used to reduce the serum uric acid level.
  • lactic acid bacteria having a purine body capturing action can be efficiently obtained (selected).
  • a method for screening lactic acid bacteria comprising measuring the amount of purine bodies taken up by a lactic acid bacterium in a medium containing purine bodies, and obtaining (selecting) lactic acid bacteria having a purine body capturing action using the amount as an index.
  • the present invention relates to a method of cultivating lactic acid bacteria in a medium containing purine bodies, measuring the amount of purine bodies taken up in the cells, preferably over time, and using this as an index, the lactic acid bacteria having a purine body capturing action.
  • Lactic acid bacteria can be screened by obtaining (selecting).
  • lactic acid bacteria having a purine-capturing action have a high probability of having a serum uric acid level-reducing action.
  • the amount of purine bodies taken up by lactic acid bacteria is large, that is, that the lactic acid bacteria cells have a purine body-capturing action, the large amount of purine bodies in the living body, particularly in the intestinal tract, is captured by the lactic acid bacteria in the intestinal tract.
  • lactic acid bacteria are cultured in a medium containing purine bodies, the amount of purine bodies taken up is measured, and lactic acid bacteria having a purine body-capturing action are selected as an index.
  • a lactic acid bacterium having a serum uric acid level reducing action By acquiring (selecting) a lactic acid bacterium having a body-capturing action as a lactic acid bacterium having a serum uric acid level reducing action, a lactic acid bacterium having a serum uric acid level reducing action can be screened.
  • a lactic acid bacterium having purine body uptake ability exhibits a high growth ability in the presence of the purine body so as to correlate with the high uptake capacity of the purine body. Therefore, in the present invention, in addition to the selection using the purine body uptake ability as an index, the enhancement of the growth ability in the presence of the purine body of the selected lactic acid bacteria was confirmed, and this was used as an index. It is also possible to acquire (select) lactic acid bacteria having a body-capturing action with higher accuracy.
  • the amount of growth in a medium containing purine bodies of lactic acid bacteria having the ability to take up purine bodies is measured, and this is used as an indicator together with the amount of purine bodies taken up as described above to capture purine bodies.
  • the lactic acid bacteria can be screened by obtaining (selecting) the lactic acid bacteria having.
  • the present invention cultivates lactic acid bacteria in a medium containing purine bodies, measures the growth amount of the bacteria over time, and uses it as an index along with the amount of purine bodies taken up as described above, Lactic acid bacteria having a function of reducing serum uric acid level are obtained by selecting (selecting) lactic acid bacteria having a capturing action of purine bodies obtained as a lactic acid bacterium having a function of reducing serum uric acid level. Can also be screened. However, measurement of the amount of proliferation in the presence of purines and selection using the measurement may be performed, or such selection may not be performed.
  • the lactic acid bacterium to be subjected to the screening method of the present invention is not particularly limited, but is preferably a bacterium belonging to the genus Lactobacillus.
  • the genus Lactobacillus include the same as exemplified above, and Lactobacillus gasseri is particularly preferable.
  • Arbitrary strains of lactic acid bacteria to be subjected to the screening method of the present invention are preferably used for screening after culturing in an appropriate medium (for example, MRS medium) to adjust the concentration.
  • the medium used for the screening may be any medium that can grow Lactobacillus gasseri, but a minimal medium or a medium in which purine is added or a part of the components is replaced with purine is preferable. Examples of particularly preferable minimal media are listed in Table 5.
  • the lactic acid bacterium to be subjected to the screening method of the present invention is not particularly limited, but is preferably a bacterium belonging to the genus Lactobacillus.
  • the genus Lactobacillus include the same as exemplified above, and Lactobacillus gasseri is particularly preferable.
  • Any strain of these lactic acid bacteria is preferably used for screening after culturing in an appropriate medium (for example, MRS medium) to adjust the concentration.
  • the medium used for the screening may be any medium that allows the lactic acid bacteria to be used, for example, Lactobacillus gasseri, to grow, but a minimal medium or a purine body is added or a part of the components is replaced with the purine body.
  • a medium is preferred. Examples of particularly preferable minimal media are listed in Table 5.
  • the purine contained in the medium may be a purine base, a purine nucleoside, and / or a purine nucleotide.
  • purine bases include, but are not limited to, adenine, guanine, hypoxanthine and xanthine, with adenine being particularly preferred.
  • purine nucleosides include, but are not limited to, adenosine, guanosine, inosine and xanthosine, with adenosine being particularly preferred.
  • purine nucleotides include, but are not limited to, adenylic acid (AMP), guanylic acid (GMP), inosinic acid (IMP) and xanthylic acid (XMP), with adenylic acid being particularly preferred.
  • AMP adenylic acid
  • GMP guanylic acid
  • IMP inosinic acid
  • XMP xanthylic acid
  • the purine may be labeled with a radioisotope.
  • purine bodies labeled with a label capable of quantitative detection for example, radioactive isotopes or fluorescent substances
  • a medium using a labeled purine body can be preferably used.
  • the radioisotope for example, 14 C is preferable.
  • the amount of purine bodies taken up by lactic acid bacteria can be determined by, for example, cultivating lactic acid bacteria in a medium containing purine bodies, stopping the reaction by adding TFA (trifluoroacetic acid), etc.
  • the body after culturing for a certain period of time, The body can be quantified based on the detection of the activity of the labeled substance, and can be measured or determined by comparing with the same activity of the bacterial cells at the start of culture.
  • the lactic acid bacteria can be determined to have the ability to take up the purine bodies into the cells (purine body uptake ability).
  • lactic acid bacteria determined to have purine body uptake ability as described above can be obtained (selected) as lactic acid bacteria having purine body capturing activity.
  • action can be further acquired (selected) as a lactic acid bacterium which has the effect
  • cultivation time of lactic acid bacteria is the time to the arbitrary time in the induction
  • lactic acid bacteria can be cultured 30 minutes and 60 minutes after the start of culture, and purine uptake ability and the like can be measured. At this time, usually, the radioactivity of the purine labeled with a radioisotope may be measured using a liquid scintillation counter.
  • the amount of growth of lactic acid bacteria in the presence of purine bodies is determined, for example, by culturing lactic acid bacteria in a medium containing purine bodies, and the turbidity (typically absorbance at 650 nm) of the medium after the start of culture and after a certain period of culture. Measurement and determination can be performed by measuring and calculating the difference between the two. When the increase in turbidity when cultured in the presence of purines was significantly increased compared to when cultured in the absence of purines, the lactic acid bacteria were enhanced in the presence of purines. It can be determined that it exhibits proliferative ability.
  • lactic acid bacteria When a lactic acid bacterium has an ability to take up purines and exhibits enhanced proliferation ability in the presence of purines, it means that the lactic acid bacteria can highly assimilate the purines, that is, the lactic acid bacteria The possibility of having a high level of capture and, in turn, the effect of reducing serum uric acid levels is confirmed.
  • cultivation time of lactic acid bacteria is the time to the arbitrary time in the logarithmic growth phase of a growth curve. For example, lactic acid bacteria can be cultured until 4 hours and 6 hours after the start of the culture, and the proliferation ability in the presence of purines can be measured.
  • lactic acid bacteria are preferably inoculated and cultured at 0.8 ⁇ 10 7 to 3 ⁇ 10 7 cfu per 1 mL of the medium.
  • the culture conditions for lactic acid bacteria are not particularly limited, but anaerobic culture is preferably performed at 30 to 39 ° C, preferably 36 to 38 ° C.
  • the lactic acid bacteria selected as described above have an action of reducing serum uric acid level, for example, according to the method described in Examples below.
  • the lactic acid bacteria selected as described above are administered to a subject once or multiple times, the serum uric acid level is measured, and the presence or absence of a change in serum uric acid level (reduction in serum uric acid level) is determined. It can be determined whether or not the lactic acid bacteria selected as described above have a serum uric acid level reducing action.
  • the lactic acid bacteria selected as described above have a purine body uptake ability and preferably a high growth ability in the presence of the purine body, that is, a high purine body capturing action. Such lactic acid bacteria typically have an effect of reducing serum uric acid levels.
  • the lactic acid bacteria selected as described above exhibit the purine body uptake ability and high growth ability (that is, high purine body utilization ability) in the presence of purine bodies in the living body (typically in the intestinal tract).
  • the serum uric acid level can be reduced by capturing and reducing a large amount of purine bodies in the living body (typically in the intestinal tract) and reducing the absorption amount of purine bodies.
  • a purine body scavenger containing as an active ingredient preferably a purine body scavenger for oral administration, using lactic acid bacteria having purine body scavenging action, which can be obtained by the above screening method.
  • This purine capturing agent may contain a carrier or additive that is acceptable for oral administration in addition to lactic acid bacteria having a purine capturing effect, preferably Lactobacillus gasseri.
  • the purine-capturing agent may be a drug or composition containing lactic acid bacteria having purine-capturing activity, or a fermented product, a culture, or a concentrate thereof produced using the fungus. It may be a dried product or a drug or composition containing the same.
  • acquisition agent are living cell bodies.
  • the purine body scavenger has an action of reducing purine bodies in the intestinal tract by taking up the purine bodies of lactic acid bacteria, and is therefore suitable for reducing purine bodies in the intestinal tract, and hence for reducing serum uric acid levels. Can be used.
  • lactic acid bacteria having the purine capturing action as described above include, but are not limited to, Lactobacillus gasseri (Lactobacillus gasseri) OLL2959 strain, Lactobacillus gasseri P14054ME002 strain and the like. It is done. Lactobacillus gasseri OLL2959 strain is homolactic fermentable and has no gas production ability.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain dated March 31, 2006 (original deposit date), is the National Institute of Technology and Evaluation of Microorganisms (NPMD) (Kazusa Kamashizu, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) 8 Deposited in room 122 (zip code 292-0818) under the deposit number NITE P-224, it was transferred to a deposit under the Budapest Treaty (international deposit) on November 21, 2007, and the deposit number is NITE BP- It has been changed to 224.
  • NPMD National Institute of Technology and Evaluation of Microorganisms
  • the purine body scavenger can also be used in combination with food or drink or medicine. Therefore, the purine body capture
  • a food or drink or a medicine containing the purine body scavenger can also be provided.
  • These foods and beverages in the subject who administers (ingested) it, actively incorporates and assimilates purines into the cells, thereby reducing purines in the intestinal tract and effectively increasing serum uric acid levels. A reduction can be brought about. Therefore, these foods and drinks and pharmaceuticals can be used for reducing purines in the intestinal tract.
  • the “purine body in the intestinal tract” here does not include purine bodies retained by bacteria (such as lactic acid bacteria), fungi, viruses, and cells of the subject present in the intestinal tract.
  • These foods and drinks and pharmaceuticals may be used for reducing serum uric acid levels based on the reduction of purines in the intestinal tract.
  • Foods and beverages and pharmaceuticals containing purine-capturing agents can be suitably used, for example, for the prevention, treatment, improvement or reduction of symptoms of gout and hyperuricemia.
  • Food and drink here is not particularly limited, but includes beverages, foods and functional foods.
  • the type of food or drink is not particularly limited.
  • drinks include fermented milk (drink yogurt, etc.), lactic acid bacteria drinks, milk drinks (coffee milk, fruit milk, etc.), tea-based drinks (green tea, tea, oolong tea, etc.) , Fruit / vegetable beverages (beverages containing orange, apple, grape and other fruit juices, tomatoes, carrots and other vegetable juices), alcoholic beverages (beer, sparkling wine, wine, etc.), carbonated beverages, soft drinks, water-based beverages
  • suitable beverages include drink yogurt, lactic acid bacteria beverages, milk beverages, water-based beverages, etc., and particularly preferred beverages include drink yogurt.
  • existing reference books such as “Latest Soft Drinks” (2003) (Kotsu Co., Ltd.) can be referred to.
  • the food include fermented milk (set type yogurt, soft yogurt, cheese, etc.), dairy products, confectionery, and instant food.
  • Suitable foods include yogurts such as set type yogurt and soft yogurt, Confectionery, cheese and the like can be mentioned, and particularly suitable beverages include yogurt such as set-type yogurt and soft yogurt. You can refer to existing reference books for the production methods of various foods.
  • Fermented milk such as yogurt containing a lactic acid bacterium having a purine-capturing action may contain other microorganisms such as lactic acid bacteria that may or may not have a purine-capturing action.
  • You may manufacture by adding the lactic acid bacteria which have the capture
  • the dairy product and fermented milk using a starter can be manufactured in accordance with a conventional method.
  • yogurt can be produced by mixing a starter with milk or a dairy product cooled after heating, mixing, homogenizing, and sterilizing, fermenting and cooling.
  • the use of lactic acid bacteria having a purine-capturing action in the production of dairy products such as yogurt and cheese and fermented milk (preferably adding (compounding) the lactic acid bacteria to dairy products, fermented milk or its raw materials.
  • a particularly preferred embodiment provides the use of the lactic acid bacteria in the production of yogurt.
  • functional foods are preferred as food and drink.
  • the types and preferred examples of functional foods are the same as those described for functional foods related to foods and drinks using the conversion agent.
  • This functional food is particularly useful in reducing serum uric acid levels by reducing purine bodies in the intestinal tract.
  • Functional foods are used to reduce serum uric acid levels, especially serum uric acid with the reduction of purine bodies in the intestinal tract by the uptake of purine bodies by lactic acid bacteria and the promotion of growth of lactic acid bacteria, and the resulting absorption of purine bodies in the intestinal tract It can be suitably used for reducing the value.
  • Foods and drinks such as this functional food may be used for reducing purines in the intestinal tract. It may be for suppressing or alleviating a decrease in serum uric acid level or an increase in serum uric acid level, and may be described or displayed to that effect.
  • Use of a lactic acid bacterium having a purine-capturing action in the production of such a functional food preferably including adding (compounding) the lactic acid bacterium to the functional food or its raw material is also provided.
  • the dosage form or shape of this functional food is the same as that described for the functional food relating to foods and drinks using the above-mentioned conversion agent.
  • the food components other than the lactic acid bacteria contained in the food and drink here are the same as those described for the food and drink using the conversion agent.
  • the functional food containing the lactic acid bacteria or purine body capturing agent having the purine body capturing action may contain an orally acceptable carrier or additive.
  • Carriers include, for example, water, organic solvents acceptable for oral administration, collagen, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, carboxyvinyl polymer, sodium alginate, water-soluble dextran, water-soluble dextrin, sodium carboxymethyl starch, pectin, xanthan gum, Arabic Examples include gum, casein, gelatin, agar, glycerin, propylene glycol, polyethylene glycol, petrolatum, paraffin, stearyl alcohol, stearic acid, human serum albumin, mannitol, sorbitol, lactose, and surfactants that are acceptable for oral administration.
  • the additive examples include a binder, an excipient, a lubricant, a disintegrant, a wetting agent, a stabilizer, a buffering agent, a corrigent, a preservative, and a coloring agent.
  • these carriers or additives can be used singly or in combination of two or more, and can be appropriately used depending on the dosage form of the preparation.
  • the functional food of the present invention may further contain other functional ingredients.
  • the pharmaceutical (pharmaceutical composition) containing a lactic acid bacterium or purine body scavenger having a purine body capturing action is a pharmaceutically acceptable carrier or additive, particularly Orally acceptable carriers or additives may be included.
  • carriers and additives are the same as those described above for pharmaceutical products using the conversion agent. These carriers or additives can be used singly or in combination of two or more, and can be appropriately used depending on the dosage form of the preparation.
  • this pharmaceutical may further contain other pharmacological components.
  • the pharmaceutical may be in any dosage form such as tablets, granules, powders, pills, capsules and other solid preparations, gels, or liquid preparations such as liquids, suspensions and syrups.
  • the dose (intake) takes into account the age and weight of the subject to be administered (intake), the route of administration, the number of administrations, etc.
  • the route of administration takes into account the route of administration, the number of administrations, etc.
  • a wide range of changes can be made at the discretion of those skilled in the art.
  • the dose of lactic acid bacteria is not particularly limited in lactic acid bacteria having purine body capturing action, purine body capturing agents, foods and drinks or pharmaceuticals, but for example, 1 ⁇ 10 per dose
  • An amount of 5 to 1 ⁇ 10 11 cfu is preferable, an amount of 1 ⁇ 10 8 to 1 ⁇ 10 10 cfu is more preferable, an amount of 1 ⁇ 10 9 to 1 ⁇ 10 10 cfu is more preferable, for example, 4
  • An amount of ⁇ 10 9 to 6 ⁇ 10 10 cfu is particularly preferable.
  • the purine-capturing agent, food or drink, or pharmaceutical preferably contains lactic acid bacteria having a purine-capturing action in an amount of 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 11 cfu per dose, and 1 ⁇ 10 8 to 1 More preferably, it is contained in an amount of ⁇ 10 10 cfu, more preferably 1 ⁇ 10 9 to 1 ⁇ 10 10 cfu, for example, 4 ⁇ 10 9 to 6 ⁇ 10 10 cfu. It is particularly preferred to contain it in an amount.
  • a lactic acid bacterium having a purine body-capturing action, a purine body-capturing agent, a food or drink, or a pharmaceutical is once or more a day, preferably twice or more a day, more preferably twice a day. (Or consumed by the consumer).
  • a lactic acid bacterium having a purine body-capturing action, a purine body-capturing agent, a food or drink, or a pharmaceutical product may be continuously administered to a subject, for example, daily.
  • the lactic acid bacterium, purine capture agent, food or drink or pharmaceutical having a purine capture activity is administered to the subject for at least 1 week, preferably 2 weeks or more, more preferably 4 weeks or more.
  • the dose of the lactic acid bacterium of the present invention is preferably an amount of 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 11 cfu per dose.
  • 1 ⁇ 10 8 to 1 ⁇ 10 10 cfu is more preferable, 1 ⁇ 10 9 to 1 ⁇ 10 10 cfu is more preferable, for example, 4 ⁇ 10 9 to 6 ⁇ 10 10 cfu. Is particularly preferred.
  • the lactic acid bacterium having a purine body-capturing action, the purine body-capturing agent, the food or drink, or the pharmaceutical product may be a single dose.
  • the dose of lactic acid bacteria having purine capturing activity is 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 11 cfu per dose.
  • the amount is preferably 1 ⁇ 10 8 to 1 ⁇ 10 10 cfu, more preferably 1 ⁇ 10 9 to 1 ⁇ 10 10 cfu, for example, 4 ⁇ 10 9 to 6 ⁇ 10 10 cfu. Is particularly preferred.
  • the lactic acid bacteria having a purine-capturing action, purine-capturing agent, food and drink, or pharmaceutical are preferably administered orally (orally ingested).
  • administration includes both “ingestion” generally used for food and drink and “administration” used for pharmaceutical products.
  • Oral administration includes administration by tube feeding via a nasal tube or a gastric fistula tube, in addition to oral administration or ingestion. Accordingly, an oral preparation that can be used for such oral administration is also provided. Therefore, in a preferred embodiment, an oral preparation for reducing purine bodies in the intestinal tract and reducing serum uric acid level is also provided, which contains a lactic acid bacterium or purine body capture agent having a purine body capture action.
  • the subjects to be administered are mammals including humans, domestic animals, pets, experimental (test) animals, etc.
  • the body is preferred and human subjects with gout and / or hyperuricemia are more preferred, including, but not limited to, humans exhibiting serum uric acid levels of 6 mg / dL or more, such as 6-10 mg / dL More preferred are subjects.
  • a human subject with mild to borderline hyperuricemia with a serum uric acid level of 6-8 mg / dL is preferred.
  • human subjects exhibiting serum uric acid levels of 7 mg / dL or higher, preferably 7-11 mg / dL (in one example, 7.6 mg / dL to 9.5 mg / dL) are preferred, of which hyperuricemia More preferred are human subjects suffering from symptom and gout.
  • subjects with a correlation between serum uric acid level and purine body intake from food prior to measurement of serum uric acid level are more preferable as administration (intake) subjects. .
  • a screening method for lactic acid bacteria comprising measuring the amount of purine bodies taken up by a lactic acid bacterium in a medium containing purine bodies, and selecting lactic acid bacteria having a purine body capturing action using the amount as an index.
  • the purine is at least one selected from the group consisting of adenine, adenosine, and adenylic acid.
  • the purine is adenine.
  • a purine trapping agent comprising, as an active ingredient, a lactic acid bacterium having a purine trapping action obtained by the method according to any one of [a1] to [a6].
  • the purine body scavenger according to [a8] which is for reducing serum uric acid level.
  • the purine capturing agent according to [a8] or [a9], wherein the lactic acid bacterium is Lactobacillus gasseri OLL2959 strain (Accession No. NITE AP-224).
  • a food or drink or a pharmaceutical comprising the purine-capturing agent according to any one of [a8] to [a10].
  • Example 1 (1) Preparation of lactic acid bacteria Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri ATCC 33323 strain were used as lactic acid bacteria.
  • the ATCC 33323 strain which is a reference strain of Lactobacillus gasseri, is available from ATCC (American Type Culture Collection) as catalog number ATCC 33323.
  • RIKEN BRC Microbial Materials Development Office (Japan) Collection of Microorganisms) (RIKEN BRC-JCM) is also available under catalog number JCM 1131T.
  • Lactic acid bacteria Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri ATCC 33323 strain were each inoculated into MRS medium in two falcon tubes and cultured at 37 ° C. for 16-20 hours. The culture was collected by centrifugation at 6,000 rpm ⁇ 10 minutes at 4 ° C., and the resulting lactic acid bacteria were combined into one. This was suspended by adding 10 mL of buffer solution, and then washed by centrifuging at 4 ° C. and 6,000 rpm ⁇ 10 minutes to collect the cells twice. Then, a buffer solution was added, and a cell suspension (live cells) diluted to approximately 1 ⁇ 10 10 cfu / mL was used below.
  • reaction solutions 100 ⁇ L each were prepared with the following composition. Lactic acid bacteria were suspended after preparing a solution (buffer solution) containing MgCl 2 , PRPP, adenine and Tris-HCl. The concentration of lactic acid bacteria in the reaction solution was approximately 5 ⁇ 10 9 cfu / mL.
  • the lactic acid bacteria were cultured by incubating in a water bath with shaking at 37 ° C. At 0, 15, 30, and 60 minutes, an equal amount of 5% TFA (trifluoro) The conversion reaction was stopped by adding acetic acid).
  • the reaction solution after stopping the reaction was centrifuged at 4 ° C., 15,000 rpm ⁇ 10 minutes.
  • the supernatant was collected, centrifuged again at 4 ° C. and 15,000 rpm ⁇ 10 minutes using a centrifugal filter unit, 0.22 ⁇ m Ultrafree-MC (micon), and microfiltered.
  • the obtained filtrate was subjected to HPLC analysis.
  • the HPLC analysis conditions used are as follows. -Mobile phase: A: 20 mM phosphate buffer (pH 7.5) B: 40 mM phosphate buffer (pH 7.5) / acetonitrile (1: 1) ⁇ Column: SHISEIDO CAPCELL PAK C18 MG2 (2.0mm id ⁇ 150mm) ⁇ Flow rate: 0.2mL / min ⁇ Temperature: 40 °C ⁇ Injection volume: 5 ⁇ l ⁇ Detection wavelength: 254nm (UV) -Gradient A / B (min): 100/0 (0 min)-100/0 (5 min)-80/20 (20 min) [%] Adenine and AMP in the reaction solution were quantified by measuring the area under the peak of the HPLC chart.
  • Conversion rate (%) (Area value under the peak of AMP in the test area ⁇ Area value under the peak of the AMP in the control area) / (Area area under the peak of adenine at the 0 minute of the test area ⁇ At the 0 minute time point in the control area) Adenine peak area value)
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain has a very high ability to convert adenine into AMP. That is, it was considered that Lactobacillus gasseri OLL2959 strain has high adenine phosphoribosyltransferase (APRT) activity that catalyzes the conversion of adenine to AMP (salvage pathway).
  • APRT adenine phosphoribosyltransferase
  • the salvage pathway includes a pathway to convert guanine to guanylate (GMP), hypoxanthine to inosine acid (IMP)
  • GMP guanine to guanylate
  • IMP hypoxanthine to inosine acid
  • XMP xanthine to xanthylic acid
  • hypoxanthine-guanine phosphoribosyltransferase is involved in the conversion of hypoxanthine to IMP and xanthine to XMP in mammals and lactic acid bacteria.
  • xanthine phosphoribosyltransferase is also known to be involved in the conversion of xanthine to XMP and guanine to GMP.
  • the conversion activity of guanine to GMP was also measured.
  • the conversion activity of guanine to GMP was measured in the same manner as in (2) above, except that adenine was changed to guanine and AMP was changed to GMP.
  • the results are shown in Table 3 and FIG.
  • the ATCC 33323 strain showed a very low conversion activity of guanine to GMP, whereas the OLL2959 strain showed a relatively high ability to convert guanine to GMP (Fig. 2).
  • Example 2 (1) Measurement of purine nucleosidase activity As shown in Patent Document 1, the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain has high resolution for purine nucleosides such as inosine and guanosine. Therefore, purine nucleosidase activity was measured as the activity of purine nucleoside to decompose into purine bases.
  • the OLL2959 strain was suspended in a final concentration of 0.2 mM adenosine solution prepared using 100 mM phosphate buffer (pH 7.0) to a concentration of approximately 5 ⁇ 10 9 cfu / ml. Liquid.
  • the reaction was performed at 37 ° C. for 120 minutes, and adenosine and adenine were measured as area values by HPLC analysis.
  • ATCC 33323 strain was used and tested in the same manner as described above. The measurement results were expressed as the conversion rate (area comparison) of adenosine (purine nucleoside) to adenine (purine base). This conversion rate was calculated in the same manner as in Example 1 (2).
  • the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain had a markedly higher conversion rate to purine bases, that is, the purine nucleosidase activity was higher than any Lactobacillus gasseri ATCC 33323 strain.
  • 5′-nucleotidase activity Purine nucleotides converted from purine bases by salvage activity are converted to nucleosides by 5′-nucleotidase activity. Therefore, 5′-nucleotidase activity was measured for Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain had a significantly lower conversion rate to purine nucleoside for any purine nucleotide compared to Lactobacillus gasseri ATCCAT33323 strain. That is, the 5′-nucleotidase activity was remarkably low.
  • Example 3 Human subjects suspected of mild to borderline hyperuricemia were continuously ingested with Lactobacillus gasseri OLL2959, and the effect on uric acid levels was examined by a placebo-controlled double-blind comparative study (human study) ).
  • Example 4 In this example, patients undergoing outpatient treatment for hyperuricemia and gout were ingested with Lactobacillus gasseri (Lactobacillus gasseri) OLL2959 strain, and the effect on serum uric acid levels was evaluated. A randomized placebo-controlled double-blind parallel group study was performed.
  • test food (test food or control food) to be ingested by the subject was produced as follows.
  • the test food containing Lactobacillus gasseri OLL2959 is composed of two types of bacteria, Lactobcillus bulgaricus yogurt starter and Streptococcus thermophilus, and Lactobacillus gasseri OLL2959, which is an active ingredient.
  • a yogurt containing (8.5 ⁇ 10 7 cfu / mL) was prepared, and a beverage in a PET bottle filled with 100 g per bottle was produced.
  • the yogurt of each food was prepared by blending the raw materials, Lactobacillus gasseri OLL2959 strain (test food only), the above-mentioned yogurt starter, dairy product, stabilizer (pectin), flavor, and water. .
  • the number of bacteria was measured for any one product. Specifically, the yogurt of the test food was inoculated into the BL medium, and after 3 days of aerobic culture, the number of colonies on the medium was counted to confirm that the number of bacteria satisfied the above level.
  • subjects were subjected to a pre-intake test including serum uric acid level measurement.
  • a dietary survey of the subjects was conducted for 3 days before the pre-intake test.
  • Subjects with serum uric acid levels after withdrawal were more than 7 mg / dL. Based on serum uric acid levels after withdrawal, serum uric acid levels and ages in pre-intake tests were significant in the test food intake group and the control food intake group The subjects were assigned so that there was no difference. There were no significant differences between groups in height, weight, BMI, blood pressure systole, blood pressure diastole, and pulse measurements.
  • test food containing 8.5 x 10 7 cfu / mL of OLL2959 strain or control food not containing OLL2959 strain subjects ingest 2 test foods (test food containing 8.5 x 10 7 cfu / mL of OLL2959 strain or control food not containing OLL2959 strain) at 8 weeks / day.
  • Test food intake period subjects continued to withdraw from the drug.
  • a test including measurement of serum uric acid level was performed 8 weeks after the start of intake (8-week test).
  • a meal survey was also conducted for 3 days before the 8-week test.
  • a meal survey was conducted on all subjects for 3 days prior to each of the pre-intake test (week 0) and the 8-week test. Subjects were asked to report the contents of breakfast, lunch, dinner and snacks for 3 days in a diary and / or photographed and reported. Based on this reported dietary content, a registered dietitian calculated energy, protein, lipid, carbohydrate, and salt intake. Moreover, the purine body amount was computed based on the report of each test subject.
  • Example 5 Evaluation test of purine body uptake ability Using purine bodies labeled with a radioisotope (RI), the purine body uptake capacity of Lactobacillus gasseri (Lactobacillus gasseri) OLL2959 strain was evaluated. .
  • RI radioisotope
  • Lactobacillus gasseri (Lactobacillus gasseri) OLL2959 strain, dated March 31, 2006 (original deposit date), is a patent microbiology deposit center (NPMD) of the National Institute for Product Evaluation and Technology (NPMD) (Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) Kazusa Kamashika 2-5-8 Room 122 Postal Code 292-0818) was deposited under the deposit number NITE P-224, and was transferred to a deposit under the Budapest Treaty (international deposit) on November 21, 2007 The accession number has been changed to NITE BP-224.
  • Lactobacilli gasseri OLL2959 strain was inoculated into MRS medium (Lactobacilli MRS Broth, Difco) and cultured at 37 ° C. for 16-20 hours (4-7 ⁇ 10 8 cfu / ml) was used as follows.
  • DM medium 0.1 mL of adenylate (AMP), adenosine, or adenine ( 14 C-AMP, 14 C-adenosine, 14 C-adenine, respectively) labeled with radioactive isotope 14 C
  • AMP adenylate
  • 14 C-AMP 14 C-adenosine
  • 14 C-adenine 14 C-adenine
  • TFA solution trifluoroacetic acid, 5%
  • AOC liquid scintillation counter
  • dpm disintegrations per minute
  • the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain has the ability to take up adenylic acid (AMP), adenosine, and adenine of purines into the cells (uptake of purines), especially uptake of adenine into the cells. It was shown that the ability (purine body uptake ability) was high (FIG. 7).
  • DM medium (Table 5): 1 mL of adenylate (AMP), adenosine, or adenine was added as a purine to a final concentration of 400 ⁇ M, and then Lactobacillus gaselli OLL2959 strain prepared in Example 5 was inoculated at 4 wt% (0.04 mL: 1.6 to 2.8 ⁇ 10 7 cfu) and anaerobically cultured at 37 ° C. The turbidity (absorbance at 650 nm) of the medium was measured after 0, 4, and 6 hours from the start of the culture. As a comparative control, Lactobacillus gasseri OLL2959 strain was cultured in the same manner except that no purine was added to the minimal medium, and the turbidity of the medium was measured. The results are shown in FIG.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain may be enhanced in the presence of adenylic acid (AMP), adenosine, or adenine, particularly in the presence of adenine. ( Figure 8).
  • AMP adenylic acid
  • adenosine adenosine
  • adenine particularly in the presence of adenine.
  • Example 7 Comparative test of adenine uptake ability and growth ability in the presence of adenine Lactobacillus gasseri OLL2959 and other Lactobacillus gasseri strains were cultured in the presence of adenine, and each adenine uptake ability and adenine The proliferative ability in the presence of
  • Lactobacillus gasseri strains P14054ME001 and P14054ME002 were used as other Lactobacillus gasseri strains.
  • Lactobacillus gasseri P14054ME001 strain and P14054ME002 strain when cultured in MRS medium (Lactobacilli MRS Broth, Difco) without addition of purine bodies for 20 hours, the growth ability of each is Lactobacillus gaselli OLL2959 strain It was equivalent (Table 6).
  • the adenine uptake ability was evaluated in the same manner as in Example 5 except that only adenine ( 14 C-adenine) was used as the purine labeled with the radioactive isotope 14 C. The results are shown in FIG.
  • the Lactobacillus gasseri P14054ME002 strain was not as high in adenine uptake as the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain, but the Lactobacillus gasseri P14054ME002 strain was also confirmed to have high adenine uptake capacity (FIG. 9). .
  • the Lactobacillus gasseri P14054ME001 strain had lower adenine uptake ability (FIG. 9).
  • DM medium (Table 5): 1 mL of adenine was added to a final concentration of 400 ⁇ M, and then culture of Lactobacillus gasseri OLL2959 strain prepared in Example 5 was performed. 4% by weight (0.04 mL: 1.6 to 2.8 ⁇ 10 7 cfu) of either P14054ME001 strain or P14054ME002 strain culture solution prepared in the same manner as described in Example 5 at 37 ° C. And anaerobic culture. Then, the turbidity (absorbance at 650 nm) of the medium was measured after 0, 4, and 6 hours from the start of the culture. The results are shown in FIG.
  • Lactobacillus gasseri P14054ME001 and P14054ME002 showed enhanced proliferation ability in the presence of adenine.
  • the enhancement of the growth ability of the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain was extremely strong.
  • the Lactobacillus gasseri P14054ME001 strain the Lactobacillus gasseri P14054ME002 strain had a stronger enhancement of the proliferation ability.
  • Example 8 Purine body uptake ability of Lactobacillus gasseri (animal test) When the ability of lactic acid bacteria to take up purine bodies is high, administration of lactic acid bacteria and purine bodies to an animal subject at the same time (ingestion) absorbs purine bodies in the subject compared to when the purine bodies are ingested alone. Is considered to be suppressed. Therefore, in order to test the ability of Lactobacillus gasseri to take up purine bodies, an animal experiment was conducted according to the following procedure.
  • test substance was orally administered by gavage.
  • physiological saline in the negative group, physiological saline
  • AMP administration group adenylic acid labeled with the radioisotope 14 C ( 14 C-AMP: 57.6 mCi / mmol, 0.1 mCi / ml)
  • 14 C-AMP and Lactobacillus gasseri OLL2959 strain (1 ⁇ 10 10 cfu / body) were used.
  • those diluted with physiological saline Otsuka Pharmaceutical
  • 14 C-AMP was administered at 10 ⁇ Ci / body. In all cases (all groups), the administration volume was 2 mL / body.
  • Example 9 Comparative test of types of lactic acid strains (1) Comparative test of adenine uptake ability In a medium containing radioisotope (RI) -labeled adenine ( 14 C-adenine), Lactobacillus gaselli OLL2959 strain and Then, Lactobacillus gasseri strain JCM1130 was cultured, and the effect of the type of lactic acid strain on the adenine uptake ability was compared.
  • the Lactobacillus gasseri JCM1130 strain can be obtained as JCM1130 from RIKEN BRC JCM, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture, Japan.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri JCM1130 strain were cultured using MRS medium, respectively, and their proliferation ability was evaluated in advance. That is, Lactobacillus gasseri OLL2959 and Lactobacillus gasseri JCM1130 were each anaerobically cultured at 37 ° C. for 20 hours using MRS medium. At this time, after anaerobic culture for 20 hours, the number of bacteria in the Lactobacillus gasseri JCM1130 strain was 2.5 times or more higher than that in the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain.
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri JCM1130 strain are cultured in the same medium, basically, the Lactobacillus gasseri JCM1130 strain has a high growth ability (Table 1). 7).
  • both Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri JCM1130 strain exhibited the ability to take up adenine.
  • the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain incorporated adenine more and showed a significant difference in the amount of adenine incorporation (p ⁇ 0.05, t-test).
  • Lactobacillus gasseri OLL2959 strain can incorporate significantly more purines than the Lactobacillus gasseri JCM1130 strain, which has a high growth ability in the MRS medium.
  • a medium for this test was prepared by adding adenine to a minimal medium (Table 5) to a final concentration of 400 ⁇ M. Then, using MRS medium, Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and Lactobacillus gasseri JCM1130 strain were cultured, respectively, and these culture solutions were inoculated into the medium of this test at 4% by weight, 37 Anaerobic culture was performed at °C. Turbidity (absorbance at 650 nm) was measured at the start of culture (0 hour) and 4 and 6 hours after the start of culture. The result is shown in FIG.
  • the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain and the Lactobacillus gasseri JCM1130 strain all had enhanced growth ability in the presence of adenine, but Lactobacillus gasseri OLL2959 strain had high growth ability in MRS medium.
  • the Lactobacillus gasseri OLL2959 strain was found to have a significantly higher degree of enhancement of proliferation ability (p ⁇ 0.05, t-test). Therefore, Lactobacillus gasseri OLL2959 strain was shown to be particularly strongly enhanced in the growth ability in the presence of purines.
  • the lactic acid bacterium of the present invention can efficiently convert a purine base into a purine nucleotide as a substrate in vivo or in vitro.
  • Use of the conversion agent for purine nucleotides containing purine bases containing lactic acid bacteria of the present invention promotes the conversion of purine bases to purine nucleotides in the intestinal tract even in subjects with high serum uric acid levels or subjects with reduced salvage activity The serum uric acid level can be reduced. Therefore, the purine base-converting agent containing lactic acid bacteria of the present invention into a purine nucleotide, and foods and drinks and pharmaceuticals containing the same are effective for the prevention and / or treatment of gout and hyperuricemia.

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Abstract

　プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途が提供される。本発明は、アデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸、及びMg2+を含む溶液中で、乳酸菌を培養し、それにより得られるアデニンのアデニル酸への変換活性を指標として、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能が増強された乳酸菌をスクリーニングする方法、並びにそれによって得られる乳酸菌を有効成分として含む、プリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤及びその用途に関する。

Description

プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途
　本発明は、プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途に関する。
　日本国内では近年、食生活の変化に伴い、痛風患者や高尿酸血症者が年々増加している。高尿酸血症では、尿酸排泄低下や尿酸産生過剰が起こり、血清尿酸量の増加により、激痛を伴う急性関節炎を発症する痛風がしばしば誘発される。日本国内では現在、痛風患者は推定で100万人であり、高尿酸血症者は推定で1000万人である。現状では、高尿酸血症は主に、食事療法、運動療法、及び投薬を組合せて、血清尿酸値をコントロールすることによって予防・治療されている。食事療法では、摂取カロリーを制限することにより、最終的に尿酸に分解される食餌性プリン体の摂取を低減するが、厳しい摂取カロリーの制限を継続することは必ずしも容易ではない。そのため、痛風や高尿酸血症について、より効果的な治療法が望まれている。さらに、痛風や高尿酸血症について、その予防や症状軽減に効果的な食品の開発も求められている。
　ところで、高尿酸血症における血清尿酸値の低減に効果を示す微生物や発酵物が報告されている（特許文献１～５）。例えば特許文献１では、乳酸菌がプリンヌクレオシドからプリン塩基への高い分解能を有していることを示している。例えば、特許文献４及び５では、乳酸菌がプリン体の分解能を有していることを示している。このような従来の血清尿酸値低減作用を有する微生物や発酵物は、腸管内におけるプリンヌクレオシドのプリン塩基への変換を促進し、腸管から吸収されやすいプリンヌクレオシドから腸管から吸収されにくいプリン塩基に変換することにより、プリン体の吸収抑制や排泄促進をもたらすと考えられてきた。しかし、ヒト試験の結果の報告は少なく、また、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌の効率的な取得方法も知られていない。
特開2008-005834号公報 国際公開WO2011/102310号 国際公開WO2004/112809号 国際公開WO2008/129802号 特開2013-048636号公報
　本発明は、プリン体吸収を抑制する乳酸菌及びその用途を提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するため、鋭意検討を重ねた結果、ある種のラクトバチルス属菌が、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有することを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下を包含する。
[1]　アデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸、及びMg2+を含む溶液中で、乳酸菌を培養し、それにより得られるアデニンのアデニル酸への変換活性を指標として、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能が増強された乳酸菌をスクリーニングする方法。
[2]　5'-ヌクレオチダーゼ活性を測定し、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して該活性が低下した乳酸菌を選抜することをさらに含む、上記[1]に記載の方法。
[3]　乳酸菌がラクトバチルス属菌である、上記[1]又は[2]に記載の方法。
[4]　溶液が緩衝液である、上記[1]～[3]のいずれかに記載の方法。
[5]　上記[1]～[4]のいずれかに記載の方法によって得られる乳酸菌を有効成分として含む、プリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤。
[6]　アデニンのアデニル酸への変換用又はグアニンのグアニル酸への変換用の、上記[5]に記載の変換剤。
[7]　乳酸菌が、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株（受託番号NITE BP-224）である、上記[5]又は[6]に記載の変換剤。
[8]　上記[5]～[7]のいずれかに記載の変換剤を含む、飲食品又は医薬品。
[9]　血清尿酸値低減用の、上記[8]に記載の飲食品又は医薬品。
[10]　血清尿酸値低減が、腸管でのアデニンのアデニル酸への変換促進及びグアニンのグアニル酸への変換促進を伴う、上記[9]に記載の飲食品又は医薬品。
[11]　6～8mg/dLの血清尿酸値を示すヒト被験体を投与対象とする、上記[9]又は[10]に記載の飲食品又は医薬品。
[12]　前記の乳酸菌を1用量当たり1×108～1010 cfu含む、上記[8]～[11]のいずれかに記載の飲食品又は医薬品。
[13]　上記[5]～[7]のいずれかに記載の変換剤を、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸及びMg2+の存在下でプリン塩基と反応させることにより、プリン塩基からプリンヌクレオチドを生成させる方法。
[14]　アデニンからアデニル酸を生成させるか、又はグアニンからグアニル酸を生成させるための、上記[13]に記載の方法。
　本発明に係る乳酸菌又は変換剤を用いれば、プリン塩基をプリンヌクレオチドに効率良く変換することができ、それにより投与した被験体において血清尿酸値を低減することができる。
　本明細書は本願の優先権主張の基礎となる日本国特許出願 特願2014-134973号、特願2014-234050号及び特願2015-064201号の内容を包含する。
図１は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株によるアデニンからAMPへの変換率（AMP／アデニン変換率）の経時的変化を示すグラフである。 図２は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株によるグアニンのGMPへの変換率（GMP／グアニン変換率）の経時的変化を示すグラフである。 図３は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株のプリンヌクレオシダーゼ活性を示すグラフである。左のバーがアデノシンからアデニン、中央のバーがイノシンからヒポキサンチン、右のバーがグアノシンからグアニンへの変換率を示す。 図４は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株の5'-ヌクレオチダーゼ活性を示すグラフである。左のバーがAMPからアデノシン、中央のバーがIMPからイノシン、右のバーがGMPからグアノシンへの変換率を示す。 図５は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を継続的に摂取したヒト被験体における血清尿酸値の経時的変化を示すグラフである。 図６は、試験食品摂取後の各被験者の血清尿酸値変化率（摂取前検査時～8週検査時まで）を示す。 図７は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株のプリン体の取り込み能を示すグラフである。 図８は、プリン体の存在下におけるラクトバチルス・ガセリOLL2959株の増殖能を示すグラフである。 図９は、複数の乳酸菌株のアデニンの取り込み能を示す図である。 図１０は、アデニンの存在下における複数の乳酸菌株の増殖能を示すグラフである。 図１１は、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株とプリン体を同時に投与した動物におけるラクトバチルス・ガセリOLL2959株のプリン体の取り込み能を示すグラフである。 図１２は、アデニンの取り込み能を乳酸菌株の種類で比較した結果を示すグラフである。 図１３は、アデニンの存在下における乳酸菌株の増殖能を乳酸菌株の種類で比較した結果を示すグラフである。
　以下、本発明を詳細に説明する。
　プリン体は、プリン骨格を有する物質の総称であり、プリン塩基、プリンヌクレオシド、及びプリンヌクレオチドに分類される。プリン体は、生体の主に細胞内で様々な機能を果たしており、例えば、核酸の構成成分として遺伝情報の伝達を担っている。主なプリン塩基としては、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン及びキサンチンがある。プリンヌクレオシドはプリン塩基に糖が結合した化合物であり、リボースが結合したアデノシン、グアノシン、イノシン及びキサントシン、デオキシリボースが結合したデオキシアデノシン、デオキシグアノシン、デオキシイノシン及びデオキシキサントシンが挙げられる。プリンヌクレオチドはプリンヌクレオシドにリン酸が結合した化合物であり、アデニル酸（AMP）、グアニル酸（GMP）、イノシン酸（IMP）及びキサンチル酸（XMP）が挙げられる。
　プリン体は、腸管吸収を介して食物から食餌性プリン体として生体内に供給される他、de novo経路でアミノ酸等から新規に生合成される。また、プリン体は、プリンヌクレオチドの分解によって生成されたプリン塩基を再利用してプリンヌクレオチドを合成するサルベージ経路を介して、生合成される。
　ヒトの場合、プリンヌクレオチドは最終的に尿酸に代謝される。例えば、アデニル酸は5'-ヌクレオチダーゼ（5'-NT）活性によって、アデノシンとなり、アデノシンはイノシンを経て、ヒポキサンチンに代謝される。ヒポキサンチンはキサンチンデヒドロゲナーゼ（XDH）及びキサンチンオキシダーゼ（XO）活性によって、キサンチンとなる。グアニル酸は5'-ヌクレオチダーゼ活性によって、グアノシンとなり、さらにプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（PNP）活性によって、グアニンとなる。グアニンはグアニンデアミナーゼ（GDA）によって、キサンチンとなる。キサンチンはキサンチンデヒドロゲナーゼ（XDH）及びキサンチンオキシダーゼ（XO）活性によって、尿酸に代謝される。一方で、それぞれのプリンヌクレオシド（アデノシン、イノシン、キサントシン及びグアノシン）はプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（PNP）活性によって、プリン塩基（アデニン、ヒポキサンチン、キサンチン及びグアニン）に変換される。アデニン、グアニン、ヒポキサンチン及びキサンチンの多くは、サルベージ酵素活性によって、それぞれアデニル酸、グアニル酸、イノシン酸及びキサンチル酸の生合成に再利用される（サルベージ経路）。
　乳酸菌の場合も、ヒトと類似のプリン体の代謝経路を有するが、ヒトの代謝経路とは異なる点もある。例えば、ほとんどの乳酸菌はプリンヌクレオシドを最終的に塩基まで代謝する。またラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）菌の場合、プリンヌクレオシドはプリンヌクレオシダーゼによって、プリン塩基に変換される。
　本発明では、アデニンのアデニル酸への変換活性を指標として、乳酸菌を選抜することにより、プリン塩基からヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌を取得することができる。本発明は、基質としてのアデニンを溶液中で、乳酸菌と接触させて、その培養により得られる、溶液中でのアデニンのアデニル酸への変換活性を指標として、プリン塩基からヌクレオチドへの変換能が増強された乳酸菌をスクリーニングする方法に関する。
　本発明のスクリーニング方法に供する乳酸菌は、特に限定されるものではないが、好ましくは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属菌である。ラクトバチルス属菌としては、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）、ラクトバチルス・デルブルッキー・サブスピーシーズ・ブルガリクス（Lactobacillus delbrueckii subsp. burgalicus）、ラクトバチルス・デルブリュッキー・サブスピーシーズ・ラクティス（Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis）、ラクトバチルス・パラカゼイ・サブスピーシーズ・パラカゼイ（Lactobacillus paracasei subsp. paracasei）、ラクトバチルス・アシドフィルス（Lactobacillus acidophilus）、ラクトバチルス・ヘルベティカス（Lactobacillus helveticus）、ラクトバチルス・ヘルベチカス・サブスピーシーズ・ユーグルティ（Lactobacillus helveticus subsp. jugurti）、ラクトバチルス・クリスパタス（Lactobacillus crispatus）、ラクトバチルス・アミロボラス（Lactobacillus amylovorus）、ラクトバチルス・ガリナラム（Lactobacillus gallinarum）、ラクトバチルス・オリス（Lactobacillus oris）、ラクトバチルス・カゼイ・サブスピーシーズ・ラムノーサス（Lactobacillus casei subsp. rhamnosus）、ラクトバチルス・ジョンソニイ（Lactobacillus johnsonii）、ラクトバチルス・ファーメンタム（Lactobacillus fermentum）、ラクトバチルス・ブレビス（Lactobacillus brevis）、ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）、ラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）等が挙げられるが、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）が特に好ましい。乳酸菌は、適当な培地（例えばMRS培地）で培養して濃度を調整した後、スクリーニングに用いることが好ましい。
　本発明のスクリーニング方法では、アデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸、及びMg2+を含む溶液中で乳酸菌を培養する。アデニンからアデニル酸への変換反応（AMP系サルベージ活性）は、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸（PRPP；ホスホリボシルピロリン酸とも呼ばれる）がMg2+存在下で形成したMg2+-PRPPとアデニンを基質として、アデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（APRT）により触媒されるためである。PRPPは、PRPPの任意の塩（例えば、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸五ナトリウム塩などのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩等の任意の塩）の形態で溶液に添加することにより、溶液に配合してもよい。Mg2+もその任意の塩（例えばMgCl2）の形態で溶液に添加することにより、溶液に配合することができる。スクリーニングに用いる溶液は、乳酸菌が生存でき、その酵素活性を阻害しない限り、任意の溶液であってよいが、好ましくは緩衝液である。緩衝液の例としては、リン酸緩衝液、Tris緩衝液、Tris-HCl緩衝液、HEPES緩衝液等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。溶液のpHは、特に限定されるものではないが、通常ではpHで6～8が好ましい。
　スクリーニングに用いる溶液（反応液）中のアデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸（PRPP）、及びMg2+並びに乳酸菌の濃度は、乳酸菌によるアデニンのアデニル酸への変換反応に適した任意の量であってよい。例えば、当該溶液は、反応開始時の最終濃度で0.1mM～1mM アデニン（好ましくは、0.1mM～0.3mM）、1～15mM PRPP（好ましくは、1mM～5mM）、及び4mM～40mM Mg2+（好ましくは、4mM～15mM）を含んでもよい。反応液はまた、限定するものではないが、5×108 cfu/ml～5×1010cfu/mlの乳酸菌、例えば、5×109 cfu/mlの乳酸菌を含んでもよい。上記の溶液は、乳酸菌によるアデニンのアデニル酸への変換反応に実質的に影響しない任意の物質をさらに含んでもよい。
　スクリーニングにおいては、アデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸（PRPP）、及びMg2+を含む溶液に乳酸菌を懸濁し、培養することが好ましい。乳酸菌の培養は、乳酸菌の培養に適した温度、通常は20℃～50℃、好ましくは30～40℃、例えばおよそ37℃でインキュベートすることにより行うことが好ましい。乳酸菌の培養は、例えば、振とうしながら、水浴中でインキュベートすることによって好適に行うことができる。乳酸菌の培養は、一定時間、典型的には少なくとも15分以上、好ましくは30分以上、より好ましくは60分以上で行う。
　上記の溶液中において、乳酸菌を一定時間で培養した後、アデニンのアデニル酸への変換反応を停止させる。この変換反応は、溶液にTFA（トリフルオロ酢酸）を添加することによって停止させることが好ましい。例えば、等量の5％TFAを溶液に添加することができる。変換反応の推移を調べるため、乳酸菌の培養時間の長さを少しずつ変えながら、反応を停止させることが好ましい。
　続いて、変換反応を停止させた反応液中のアデニン及びアデニル酸を定量する。また、反応液中の他のプリン体（例えば、プリンヌクレオシド）も併せて定量してもよい。この定量は、任意の測定法によって行えばよいが、例えば、HPLC法によって行うことができる。反応液の上清を回収し、ろ過したろ液を定量のための測定に供することが好ましい。
　HPLC法による測定は、一例では、以下の条件で行うことができる。
　・移動相：A：20mM リン酸緩衝液（pH7.5）
　　　　　　B：40mM リン酸緩衝液（pH7.5）／アセトニトリル（1：1）
　・カラム：SHISEIDO CAPCELL PAK C18 MG2（2.0mm id×150mm）
　・流速：　0.2mL/分
　・温度：　40℃
　・注入量：5μl
　・検出波長：　254nm（UV）
　・グラジエントA/B（分）：100／0（0分）－100／0（5分）－80／20（20分）［％］
　HPLC法による定量の場合、反応液中のアデニン及びアデニル酸の量は、HPLCチャートのピーク下面積値を測定することにより相対値として算出することができる。各反応停止時点のアデニンのアデニル酸（AMP）への変換率を以下の式で算出することができる。
　変換率（％）＝（試験区のAMPのピーク下面積値－対照区のAMPのピーク下面積値）／（試験区の0分時点のアデニンのピーク下面積値－対照区の0分時点のアデニンのピーク下面積値）
　ここで対照区は、基質となるアデニンを加えずに代わりに等量の緩衝液を用いて調製した溶液で同様に測定したものである。
　本発明のスクリーニング方法では、アデニンのアデニル酸への変換活性を表す値として、アデニンのアデニル酸（AMP）への変換率を用いることができる。すなわち本発明のスクリーニング方法では、アデニンのアデニル酸（AMP）への変換率を指標として、乳酸菌がアデニンのアデニル酸（AMP）への変換活性を有するかどうか、及びその変換活性レベルを判定することができる。例えば、本発明では、アデニンのアデニル酸（AMP）への変換率が、経時的測定により最大で30％以上に達すれば、乳酸菌がアデニンのアデニル酸（AMP）への変換活性を有すると判定できる。本発明のスクリーニング方法では、アデニンのアデニル酸（AMP）への変換率が、経時的測定により最大で好ましくは40％以上、より好ましくは50％以上、さらに好ましくは70％以上、特に好ましくは90％以上に達する乳酸菌が選抜されることが好ましい。本発明のスクリーニング方法の好ましい実施形態では、アデニンのアデニル酸（AMP）への変換率が、経時的測定で最大レベル（好ましくはプラトー）に達する時点までに、例えばラクトバチルス・ガセリ基準株であるATCC 33323株と比較して、例えば5倍以上、好ましくは7倍以上、より好ましくは10倍以上、さらに好ましくは13倍以上、特に好ましくは20倍以上に増加した場合、乳酸菌のアデニンからアデニル酸への変換能が顕著に増強されたものとして、「プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能が増強された」と判定することができる。
　このようにして選抜された乳酸菌は、アデニンのアデニル酸への高い変換能（AMP系サルベージ活性）を有するだけでなく、サルベージ活性による他のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能も有するものであり得る。具体的には、当該乳酸菌は、グアニンのグアニル酸への変換能が増強されたものであり得る。したがって、アデニンのアデニル酸への変換能が増強されたものとして選抜された乳酸菌について、他のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換活性を同様に調べることも好ましい。具体的には、グアニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸、及びMg2+を含む溶液中で乳酸菌を培養し、それによって示される、グアニンのグアニル酸への変換活性を指標として、グアニンのグアニル酸への変換能が増強されたかどうかを調べればよい。グアニンのグアニル酸への変換活性の測定及び変換率の算出は、アデニンの代わりにグアニン、アデニル酸の代わりにグアニル酸を用いる点以外は、上記のアデニンのアデニル酸への変換と同様の方法で行うことができる。本発明では、グアニンのグアニル酸（GMP）への変換率が、経時的測定で最大レベル（好ましくはプラトー）に達する時点までに、例えばラクトバチルス・ガセリ基準株であるATCC 33323株と比較して、例えば5倍以上、好ましくは7倍以上、より好ましくは10倍以上、さらに好ましくは13倍以上、特に好ましくは20倍以上増加した場合、乳酸菌のグアニンからグアニル酸への変換能も顕著に増強されていると判定することができる。
　本発明では、このようにしてプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能が増強された乳酸菌をスクリーニングすることができる。本発明のスクリーニング方法で得られる乳酸菌は、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能、特に、アデニンからアデニル酸への高い変換能及びグアニンからグアニル酸への高い変換能を有する。
　本発明のスクリーニング方法で得られる乳酸菌は、プリンヌクレオチドからプリンヌクレオシドへの分解活性と比較して、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換活性（サルベージ活性）がより高いことが好ましい。そのため、本発明のスクリーニング方法では、プリンヌクレオチドを基質としてプリンヌクレオシドへの分解活性を測定し、その活性が低下している乳酸菌を選抜するステップをさらに含んでもよい。具体的には、プリンヌクレオチド（例えば、アデニル酸）を基質として、乳酸菌におけるプリンヌクレオチドからプリンヌクレオシドへの分解を触媒する5'-ヌクレオチダーゼ（5'-NT）の活性を測定すればよい。
　乳酸菌の5'-ヌクレオチダーゼ（5'-NT）の活性測定は、常法により行うことができる。例えば、プリンヌクレオチド（アデニル酸など）及びMg2+を含む溶液中で乳酸菌を培養する。Mg2+はその任意の塩（例えばMgCl2）の形態で溶液に添加することにより、溶液に配合することができる。スクリーニングに用いる溶液は、乳酸菌が生存でき、その酵素活性を阻害しない限り、任意の溶液であってよいが、好ましくは緩衝液である。緩衝液の例としては、リン酸緩衝液、Tris緩衝液、Tris-HCl緩衝液、HEPES緩衝液等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。溶液のpHは、特に限定されるものではないが、通常ではpHで6～8が好ましい。対照としては、ラクトバチルス・ガセリ基準株であるATCC 33323株を用いることが好ましい。
　反応液中のプリンヌクレオチド及びMg2+並びに乳酸菌の濃度は、ATCC 33323株菌によるプリンヌクレオチドのプリンヌクレオシドへの変換反応に適した任意の量であってよい。例えば、反応液は、反応開始時の最終濃度で0.1mM～1mM プリンヌクレオチド（好ましくは、0.1mM～0.3mM）、及び4mM～40mM Mg2+（好ましくは、4mM～15mM）を含んでもよい。反応液はまた、特に限定されるものではないが、5×108cfu/ml～5×1010 cfu/mlの乳酸菌、例えば、5×109 cfu/mlの乳酸菌を含んでもよい。上記の溶液は、乳酸菌によるプリンヌクレオチドのプリンヌクレオシドへの変換反応に実質的に影響しない任意の物質をさらに含んでもよい。乳酸菌の培養条件は、上記のアデニンのアデニル酸への変換試験と同様の条件であってよい。
　プリンヌクレオチドのプリンヌクレオシドへの変換活性（すなわち5'-ヌクレオチダーゼ活性）の測定及び変換率の算出は、アデニンの代わりにプリンヌクレオチド（例えば、アデニン酸）、アデニル酸の代わりにプリンヌクレオシド（例えば、アデニン酸を基質とする場合はアデノシン）を用いる点以外は、上記のアデニンのアデニル酸への変換率の試験と同様の方法で行うことができる。但し、反応時間は、特に限定されるものではないが、アデニンのアデニル酸への変換の場合と比べて、より長く（例えば120分）に設定されることが好ましい。本発明では、プリンヌクレオチドのプリンヌクレオシドへの変換率、好ましい例ではアデニル酸のアデノシンへの変換率が、例えばラクトバチルス・ガセリ基準株であるATCC 33323株と比較して、例えば1/5以下、好ましくは1/7以下、より好ましくは1/10以下、さらに好ましくは1/13以下、特に好ましくは1/20以下に低下した場合、乳酸菌の5'-ヌクレオチダーゼ活性が顕著に低下していると判定することができる。5'-ヌクレオチダーゼ活性が顕著に低下した乳酸菌では、プリンヌクレオチドのプリンヌクレオシドへの変換よりも、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換が優位になり、哺乳動物体内で腸管から吸収されて尿酸生成を促進するプリンヌクレオシドの減少をさらにもたらすことができる。
　本発明はまた、上記のスクリーニング方法で得ることができ、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌を有効成分として含む、プリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤も提供する。この変換剤は、例えば、アデニンのアデニル酸への変換用又はグアニンのグアニル酸への変換用に用いることも好ましい。この変換剤を用いれば、in vivo又はin vitroの反応系で、基質としてのプリン塩基をプリンヌクレオチドに効率よく変換することができる。
　上記のようなプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有し、かつ5'-ヌクレオチダーゼ活性が低下した乳酸菌の好適例としては、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）OLL2959株が挙げられる。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株はホモ乳酸発酵性であり、ガス産生能を有しない。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、2006年3月31日付（原寄託日）で、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（NPMD）（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8　122号室　郵便番号292-0818）に受託番号NITE P-224で寄託された後、2007年11月21日付でブダペスト条約に基づく寄託（国際寄託）に移管されており、受託番号がNITE BP-224に変更されている。
　ラクトバチルス・ガセリOLL2959株はプリン塩基をプリンヌクレオチドに変換する能力（サルベージ活性）が高く、プリンヌクレオチドをプリンヌクレオシドに変換する能力が低い。そのため、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株をヒトに投与すると、ヒトによるプリン塩基やプリンヌクレオシドの吸収・代謝よりも微生物によるプリン塩基のプリンヌクレオチドへの再利用の方が優位となり、それが尿酸生成量の減少に寄与すると考えられる。
　本発明は、上記のプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤を含む、飲食品又は医薬品も提供する。本発明の変換剤は、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能を有する乳酸菌の菌体を含む薬剤又は組成物であってもよいし、当該乳酸菌を用いて製造された発酵物、培養物、若しくはそれらの濃縮物若しくはそれを含む薬剤又は組成物であってもよい。本発明の変換剤に含まれる本発明に係る乳酸菌は、酵素活性を示す限り、死菌体又は処理物であってもよいが、生菌体であることが好ましい。本発明の変換剤は、生体内（典型的には腸管内）でのプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換活性を飲食品や医薬品に付与することができる。本発明の変換剤を含む飲食品や医薬品は、それを投与した被験体において、乳酸菌及びその酵素活性により、腸管内でのプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換の促進、例えば、アデニンのアデニル酸への変換促進及びグアニンのグアニル酸への変換促進により、血清尿酸値の効果的な低減をもたらすことができる。すなわち、本発明の飲食品や医薬品は、アデニンのアデニル酸への変換促進及びグアニンのグアニル酸への変換促進を伴う血清尿酸値低減用であってもよい。本発明の変換剤を含む飲食品や医薬品は、痛風や高尿酸血症の予防、治療、改善又は症状軽減等のために好適に用いることができる。
　本明細書において「飲食品」とは、特に限定されるものではないが、飲料、食品及び機能性食品を包含する。本発明の変換剤を含む飲食品の種類は、特に限定されない。例えば、本発明の変換剤を含む飲料として、発酵乳（ドリンクヨーグルト等）、乳酸菌飲料、乳飲料（コーヒー牛乳、フルーツ牛乳等）、茶系飲料（緑茶、紅茶及び烏龍茶等）、果物・野菜系飲料（オレンジ、りんご、ぶどう等の果汁、トマト、ニンジン等の野菜汁を含む飲料）、アルコール性飲料（ビール、発泡酒、ワイン等）、炭酸飲料、清涼飲料、水ベースの飲料等の飲料を例示することができる。好適な飲料としては、ドリンクヨーグルト、乳酸菌飲料、乳飲料、水ベースの飲料等が挙げられ、特に好適な飲料としては、ドリンクヨーグルトが挙げられる。各種飲料の製造法等については、既存の参考書、例えば「最新・ソフトドリンクス」(2003)（株式会社光琳）等を参考にすることができる。また、例えば、食品としては、発酵乳（セットタイプヨーグルト、ソフトヨーグルト、チーズ等）、乳製品、菓子、インスタント食品等が挙げられ、好適な食品としては、セットタイプヨーグルトやソフトヨーグルト等のヨーグルト、菓子、チーズ等が挙げられ、特に好適な食品としては、ヨーグルト、例えばセットタイプヨーグルトやソフトヨーグルト等が挙げられる。各種の食品の製造法等については、既存の参考書を参考にすることができる。
　プリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換能を有する乳酸菌を含むヨーグルトなどの発酵乳は、例えば、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能を有しても有しなくてもよい乳酸菌などの他の微生物を含み得るスターターを用いて製造した乳製品や発酵乳に、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能を有する乳酸菌を添加することにより製造してもよい。あるいは、そのようなスターターと、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌とを混合してスターターとして用いて、乳製品や発酵乳を製造してもよい。スターターを用いた乳製品や発酵乳は、常法に従って製造することができる。例えば、加温・混合・均質化・殺菌処理後に冷却した乳又は乳製品に、スターターを混合し、発酵・冷却することにより、プレーンヨーグルトを製造することができる。本発明は、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌の、ヨーグルトやチーズ等の乳製品や発酵乳の製造における使用（好ましくは当該乳酸菌を乳製品や発酵乳又はその原料に添加（配合）することを含む）であることが好ましく、ヨーグルトの製造における当該乳酸菌の使用であることが特に好ましい。さらに、本発明は、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌を有効成分として使用する、ヨーグルトやチーズ等の乳製品や発酵乳におけるプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能の向上方法であることが好ましく、ヨーグルトにおけるプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能の向上方法であることが特に好ましい。
　本発明の変換剤を含有する飲食品として、とりわけ、機能性食品が好ましい。本発明の「機能性食品」は、生体に対して一定の機能性を有する食品を意味し、例えば、特定保健用食品（条件付きトクホ[特定保健用食品]を含む）及び栄養機能食品を含む保健機能食品、機能性表示食品、特別用途食品、栄養補助食品、健康補助食品、サプリメント（例えば、錠剤、被覆錠、糖衣錠、カプセル及び液剤などの各種剤形のもの）及び美容食品（例えばダイエット食品）などのいわゆる健康食品全般を包含する。本発明の機能性食品はまた、コーデックス（FAO/WHO合同食品規格委員会）の食品規格に基づく健康強調表示（Health claim）が適用される健康食品を包含する。
　本発明の機能性食品として好ましい、より具体的な例には、病者用食品、妊産婦・授乳婦用粉乳、乳児用調製粉乳、高齢者用食品、介護用食品等の特別用途食品がある。
　本発明の機能性食品は、血清尿酸値を低減する上で有用である。本発明の機能性食品は、血清尿酸値低減用、特にプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換促進を伴う血清尿酸値低減用に好適に用いることができる。本発明の機能性食品は、例えば、アデニンのアデニル酸への変換促進及びグアニンのグアニル酸への変換促進を伴う血清尿酸値低減のために好適に用いることができる。
　本発明の機能性食品（日本の場合、好ましくは、特定保健用食品又は条件付きトクホ[特定保健用食品]）などの飲食品は、血清尿酸値の低減又は血清尿酸値上昇を抑制若しくは緩和するためのものであってよく、その旨について記載又は表示したものであってもよい。本発明は、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌の、機能性食品の製造における使用（好ましくは当該乳酸菌を機能性食品又はその原料に添加（配合）することを含む）であることが好ましく、特定保健用食品の製造における当該乳酸菌の使用であることが特に好ましい。さらに、本発明は、本発明のプリン塩基からプリンヌクレオチドへの高い変換能を有する乳酸菌を有効成分として使用する、機能性食品におけるプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能の向上方法であることが好ましく、特定保健用食品におけるプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能の向上方法であることが特に好ましい。
　本発明の機能性食品は、錠剤、顆粒剤、散剤、丸剤、カプセル剤などの固形製剤、液剤、懸濁剤、シロップ剤などの液体製剤、又はジェル剤やペースト剤などであってもよいし、通常の飲食品の形状（例えば、飲料、ヨーグルト、菓子など）であってもよい。
　本発明の飲食品は、任意の食品成分を含んでもよく、特に限定されない。本発明の飲食品は、本発明の乳酸菌又は変換剤に加えて、水、タンパク質、糖質、脂質、ビタミン類、ミネラル類、有機酸、有機塩基、果汁、フレーバー類等を含んでもよい。タンパク質としては、例えば全脂粉乳、脱脂粉乳、部分脱脂粉乳、カゼイン、ホエイ粉、ホエイタンパク質、ホエイタンパク質濃縮物、ホエイタンパク質分離物、α－カゼイン、β－カゼイン、κ－カゼイン、β－ラクトグロブリン、α－ラクトアルブミン、ラクトフェリン、大豆タンパク質、鶏卵タンパク質、肉タンパク質等の動植物性タンパク質、これら加水分解物、バター、乳清ミネラル、クリーム、ホエイ、非タンパク態窒素、シアル酸、リン脂質、乳糖等の各種乳由来成分などが挙げられる。糖質としては一般の糖類、加工澱粉（デキストリン、可溶性澱粉、ブリティッシュスターチ、酸化澱粉、澱粉エステル、澱粉エーテル等）、食物繊維などが挙げられる。脂質としては、例えば、ラード、魚油等、これらの分別油、水素添加油、エステル交換油等の動物性油脂；パーム油、サフラワー油、コーン油、ナタネ油、ヤシ油、これらの分別油、水素添加油、エステル交換油等の植物性油脂などが挙げられる。ビタミン類としては、例えば、ビタミンＡ、カロチン類、ビタミンＢ群、ビタミンＣ、ビタミンＤ群、ビタミンＥ、ビタミンＫ群、ビタミンＰ、ビタミンＱ、ナイアシン、ニコチン酸、パントテン酸、ビオチン、イノシトール、コリン、葉酸などが挙げられ、ミネラル類としては、例えば、カルシウム、カリウム、マグネシウム、ナトリウム、銅、鉄、マンガン、亜鉛、セレン、乳清ミネラルなどが挙げられる。有機酸としては、例えば、リンゴ酸、クエン酸、乳酸、酒石酸などが挙げられる。これらの成分は、単独でも２種以上を組み合わせても使用することができ、合成品及び／又はこれらを多く含む食品を用いて添加してもよい。
　また、本発明の変換剤を含む医薬品（医薬組成物）は、本発明の乳酸菌又は変換剤に加えて、製薬上許容される担体又は添加剤を含んでもよい。担体としては、例えば、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、水溶性デキストリン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、製薬上許容される界面活性剤などの他、リポゾームなどの人工細胞構造物などを用いることができる。添加剤としては、例えば結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤、安定剤、緩衝剤、矯味剤、保存剤、着色剤などが挙げられる。担体又は添加剤は、製剤の剤形に応じて適宜又は組み合わせて選択することができる。本発明の医薬品は、さらに他の薬理成分を含有してもよい。
　本発明の医薬品は、経口投与することが好ましい。本発明の医薬品は、錠剤、顆粒剤、散剤、丸剤、カプセル剤などの固形製剤、ジェル剤、又は液剤、懸濁剤、シロップ剤などの液体製剤等の任意の剤形であってよい。
　本発明の飲食品又は医薬品の投与量は、投与対象の被験体の年齢及び体重、投与経路、投与回数等を考慮し、当業者の裁量によって広範囲に変更することができ、特に限定されないが、例えば、本発明の乳酸菌の量で、１用量当たり1×105～1×1011cfuとなる量が好ましく、1×108～1×1010cfuがより好ましく、1×109～1×1010cfuがさらに好ましく、例えば4×109～6×1010cfuが好ましい。本発明の飲食品又は医薬品は、1用量当たり本発明の乳酸菌をこの量で含有することが好ましい。本発明の飲食品又は医薬品は、1日1回以上、好ましくは2回以上、典型的には1日2回、被験体に投与されることが好ましい。本発明の飲食品又は医薬品は、継続的に投与されることが好ましく、例えば毎日投与されることがより好ましい。本発明の飲食品又は医薬品は、少なくとも1週間、好ましくは2週間以上、例えば4週間以上投与されることが好ましい。本発明の飲食品又は医薬品は、好ましくは経口投与される。本発明において「投与」とは、飲食品の「摂取」と医薬品の「投与」の両方を包含する。本発明において「経口投与」は、鼻チューブや胃ろうチューブなどを介した経管栄養法による投与も含むものとする。
　本発明の飲食品又は医薬品を投与する被験体は、ヒト、家畜、愛玩動物、実験（試験）動物等を含む哺乳動物である。特に、ヒト被験体が好ましく、痛風及び／又は高尿酸血症であるヒトの被験体がより好ましく、以下に限定するものではないが、6mg/dL以上、例えば6～10mg/dLの血清尿酸値を示すヒトの被験体がさらに好ましい。一実施形態では、6～8mg/dLの血清尿酸値を示す軽度～境界域の高尿酸血症であるヒトの被験体が好ましい。別の実施形態では、7mg/dL以上、好ましくは7～11mg/dL（一例では、7.6mg/dL～9.5mg/dL）の血清尿酸値を示すヒトの被験体が好ましく、そのうちで高尿酸血症及び痛風に罹患したヒトの被験体がより好ましい。また、血清尿酸値と、血清尿酸値の測定に先立つ食品からのプリン体摂取量（例えば、3日間の合計プリン体摂取量）に相関がみられる被験体が、投与（摂取）対象としてより好ましい。本発明の飲食品又は医薬品を投与する被験体は、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換活性（サルベージ活性）、例えばアデニンからアデニル酸への変換活性、特にアデニンからアデニル酸への変換を担うアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ活性が低下している被験体への投与に適している。
　また、本発明は、本発明の変換剤を、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸及びMg2+の存在下でプリン塩基と反応させることにより、プリン塩基からプリンヌクレオチドを生成させる方法も提供する。本方法は、in vivoで実施するものであってもよいし、in vitroで実施するものであってもよい。in vivoで実施する場合、本発明の変換剤を用いるこの方法は、本発明の変換剤を含む飲食品を用い、医療行為を含まないものであってもよい。in vitroで実施する場合、本発明のこの方法は、溶液中のプリン塩基を基質として用いたプリンヌクレオチドの合成（製造）方法である。具体的には、本発明のこの方法は、アデニンからアデニル酸を生成させる方法であることも好ましい。本発明のこの方法はまた、グアニンからグアニル酸を生成させる方法であってもよい。5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸及びMg2+の存在下での乳酸菌によるプリン塩基の変換は、上記のアデニンのアデニル酸への変換率の試験と同様の方法で行うことができる。
　さらに、本発明者らは、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株等のラクトバチルス・ガセリ菌をはじめとする一部の乳酸菌が、プリン体の取り込み能とプリン体の存在下における高い増殖能とを有し、プリン体の取り込み能とプリン体の存在下における増殖能が相関すること、また、そのような乳酸菌の投与（摂取）が、プリン体の吸収を抑制し、血清尿酸値の低減に寄与することを見出した。この知見に基づけば、当該乳酸菌のプリン体の捕捉作用も、血清尿酸値の低減に利用することができる。
　したがって、本発明では、菌体内へのプリン体の取り込み能を指標として、乳酸菌を選抜（スクリーニング）することにより、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を効率的に取得（選抜）することができる。プリン体を含む培地における乳酸菌のプリン体の取り込み量を測定し、それを指標としてプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を取得（選抜）することを含む、乳酸菌のスクリーニング方法が提供される。より具体的には、本発明は、プリン体を含む培地で乳酸菌を培養し、菌体内のプリン体の取り込み量を好ましくは経時的に測定し、それを指標としてプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を取得（選抜）することにより、乳酸菌をスクリーニングすることができる。このようにして得られるプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌は、血清尿酸値の低減作用を有する蓋然性が高い。ここで、乳酸菌によるプリン体の取り込み量が多いこと、すなわち、乳酸菌の菌体がプリン体捕捉作用を有することは、生体内、特に腸管内のプリン体が大量に当該乳酸菌に捕捉されて腸管内の環境から除去されることにより、腸管からのプリン体の吸収が抑制されることを意味する。なお、乳酸菌は消化管から吸収されることなく排泄されることが知られているため、乳酸菌に捕捉されたプリン体は腸管からの吸収を逃れて、乳酸菌と共に体外に排出されることになる。そこで、本発明では、プリン体を含む培地で乳酸菌を培養し、菌体内のプリン体の取り込み量を測定し、それを指標としてプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を選抜し、この得られたプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌として取得（選抜）することにより、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌をスクリーニングすることもできる。
　本発明において、プリン体の取り込み能を有する乳酸菌は、そのプリン体の取り込み能の高さと相関するように、プリン体の存在下における高い増殖能を示す。そこで、本発明では、上記のプリン体の取り込み能を指標とした選抜に加えて、この選抜した乳酸菌のプリン体の存在下における増殖能の増強を確認し、それを指標として用いることにより、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌をより高精度に取得（選抜）することもできる。すなわち、本発明では、プリン体の取り込み能を有する乳酸菌のプリン体を含む培地における増殖量を測定し、それを、上記のように測定したプリン体の取り込み量と共に指標として、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を取得（選抜）することにより、乳酸菌をスクリーニングすることができる。さらに、本発明は、プリン体を含む培地で乳酸菌を培養し、該菌の増殖量を経時的に測定し、それを、上記のように測定したプリン体の取り込み量と共に指標として、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を選抜し、この得られたプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌として取得（選抜）することにより、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌をスクリーニングすることもできる。ただし、プリン体の存在下における増殖量の測定及びそれを指標とした選抜を行ってもよいし、そのような選抜を行わなくてもよい。
　本発明のスクリーニング方法に供する乳酸菌は、特に限定されるものではないが、好ましくは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属菌である。ラクトバチルス属菌の例としては、上記で例示したのと同じものが挙げられ、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）菌が特に好ましい。本発明のスクリーニング方法に供する乳酸菌の任意の菌株は、適当な培地（例えばMRS培地）で培養して濃度を調整した後、スクリーニングに用いることが好ましい。スクリーニングに用いる培地は、ラクトバチルス・ガセリ菌が増殖できる任意の培地であればよいが、最少培地又はそれをベースとしてプリン体を加えたか又は一部の成分をプリン体に置換した培地が好ましい。なお、特に好ましい最少培地の例を表５に挙げる。
　本発明のスクリーニング方法に供する乳酸菌は、特に限定されるものではないが、好ましくは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属菌である。ラクトバチルス属菌の例としては、上記で例示したのと同じものが挙げられ、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）菌が特に好ましい。これらの乳酸菌の任意の菌株は、適当な培地（例えばMRS培地）で培養して濃度を調整した後、スクリーニングに用いることが好ましい。スクリーニングに用いる培地は、用いる乳酸菌、例えばラクトバチルス・ガセリ菌が増殖できる任意の培地であればよいが、最少培地又はそれをベースとしてプリン体を加えたか又は一部の成分をプリン体に置換した培地が好ましい。なお、特に好ましい最少培地の例を表５に挙げる。
　培地に含めるプリン体は、プリン塩基、プリンヌクレオシド、及び／又はプリンヌクレオチドであればよい。プリン塩基の例としては、以下に限定されないが、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン及びキサンチンが挙げられ、アデニンが特に好ましい。プリンヌクレオシドの例としては、以下に限定されないが、アデノシン、グアノシン、イノシン及びキサントシンが挙げられ、アデノシンが特に好ましい。プリンヌクレオチドの例としては、以下に限定されないが、アデニル酸（AMP）、グアニル酸（GMP）、イノシン酸（IMP）及びキサンチル酸（XMP）が挙げられ、アデニル酸が特に好ましい。プリン体は放射性同位体で標識されていてもよい。
　乳酸菌のプリン体の取り込み量の測定には、培地に含まれるプリン体の一部又は全部として、定量的な検出が可能な標識物で標識されたプリン体、例えば、放射性同位体や蛍光物質で標識されたプリン体を用いた培地を好適に用いることができる。放射性同位体としては、例えば、14Cが好ましい。乳酸菌のプリン体の取り込み量は、例えば、プリン体を含む培地で乳酸菌を培養し、一定時間培養後にTFA（トリフルオロ酢酸）等を添加して反応を停止させ、培養後の菌体の標識プリン体を標識物の活性の検出に基づいて定量し、培養開始時の菌体の同活性と比較することで測定や判定することができる。乳酸菌のプリン体の取り込み量が、培養開始時と比較して有意に増加した場合、その乳酸菌は、そのプリン体を菌体内に取り込む能力（プリン体の取り込み能）を有すると判定することができる。本発明では、このようにしてプリン体の取り込み能を有すると判定された乳酸菌を、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌として取得（選抜）することができる。そして、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌として選抜された乳酸菌を、さらに、血清尿酸値の低減作用を有する乳酸菌又はその候補として取得（選抜）することができる。なお、乳酸菌の培養時間は、増殖曲線の誘導期又は対数増殖期にある任意の時点までの時間であることが好ましい。例えば、乳酸菌を培養開始の30分後及び60分後まで培養し、プリン体の取り込み能等を測定することができる。このとき、通常では、液体シンチレーションカウンターを用いて、放射性同位体で標識したプリン体の放射活性を測定すればよい。
　乳酸菌のプリン体の存在下における増殖量は、例えば、プリン体を含む培地において乳酸菌を培養し、培養開始時と一定時間の培養後の培地の濁度（典型的には、650nmにおける吸光度）を測定し、その両者の差を算出することで測定や判定をすることができる。プリン体の存在下で培養した場合の濁度の増加量が、プリン体の不在下で培養した場合と比較して有意に増加した場合、その乳酸菌は、そのプリン体の存在下で増強された増殖能を示すものと判定することができる。乳酸菌がプリン体の取り込み能を有し、かつプリン体の存在下で増強された増殖能を示す場合、その乳酸菌がプリン体を高度に資化できることを意味し、すなわち、当該乳酸菌がプリン体を高度に捕捉できること、ひいては、血清尿酸値の低減作用を有する可能性が裏付けられる。なお、乳酸菌の培養時間は、増殖曲線の対数増殖期にある任意の時点までの時間であることが好ましい。例えば、乳酸菌を培養開始の4時間後及び6時間後まで培養し、プリン体の存在下における増殖能等を測定することができる。
　上記の測定では、乳酸菌は、培地の1mLに対して、0.8×107～ 3×107 cfuで植菌して培養することが好ましい。乳酸菌の培養条件は、特に限定されないが、30～39℃、好ましくは36～38℃で、嫌気培養することが好ましい。
　本発明では、以上のようにして選抜された乳酸菌について、例えば、後述の実施例に記載の方法に従って、血清尿酸値の低減作用を有することをさらに試験することも好ましい。例えば、以上のようにして選抜された乳酸菌を被験体に単回又は複数回で投与し、血清尿酸値を測定し、血清尿酸値の変化（血清尿酸値の低減）の有無を調べることにより、以上のようにして選抜された乳酸菌が血清尿酸値の低減作用を有するか否かを判定することができる。
　以上のようにして選抜された乳酸菌は、プリン体の取り込み能、及び好ましくはプリン体の存在下における高い増殖能を有し、すなわち、高いプリン体の捕捉作用を有する。そのような乳酸菌は、典型的には、血清尿酸値の低減作用を有する。以上のようにして選抜された乳酸菌は、生体内（典型的には腸管内）のプリン体の存在下におけるプリン体の取り込み能及び高い増殖能（すなわち、高いプリン体の資化能）を発揮する結果として、生体内（典型的には腸管内）のプリン体を大量に捕捉して低減し、プリン体の吸収量を低減させることによって、血清尿酸値を低減することができる。
　また、上記のスクリーニング方法で得ることができる、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を用いて、それを有効成分として含むプリン体捕捉剤、好ましくは経口投与用のプリン体捕捉剤を提供することができる。このプリン体捕捉剤は、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、好ましくはラクトバチルス・ガセリ菌に加えて、経口投与用に許容される担体又は添加剤を含んでもよい。プリン体捕捉剤は、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌の菌体を含む薬剤又は組成物であってもよいし、当該菌を用いて製造された発酵物、培養物、若しくはそれらの濃縮物・乾燥物若しくはそれを含む薬剤又は組成物であってもよい。なお、このプリン体捕捉剤に含まれるプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌は、生菌体であることが好ましい。プリン体捕捉剤は、上記のとおり、乳酸菌のプリン体の取り込みによる腸管内のプリン体の低減作用を有し、したがって、腸管内のプリン体の低減用、ひいては、血清尿酸値の低減用に好適に用いることができる。
　上記のようなプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌の好適例としては、以下に限定されないが、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）OLL2959株やラクトバチルス・ガセリP14054ME002株等のラクトバチルス・ガセリ菌が挙げられる。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株はホモ乳酸発酵性であり、ガス産生能を有しない。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、2006年3月31日付（原寄託日）で、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（NPMD）（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8　122号室　郵便番号292-0818）に受託番号NITE P-224で寄託された後、2007年11月21日付でブダペスト条約に基づく寄託（国際寄託）に移管されており、受託番号がNITE BP-224に変更されている。
　プリン体捕捉剤は、飲食品又は医薬品と組み合わせて使用することもできる。したがって、飲食品又は医薬品と組み合わせて使用するためのプリン体捕捉剤も提供される。
　上記のプリン体捕捉剤を用いて、上記のプリン体捕捉剤を含む、飲食品又は医薬品も提供することができる。この飲食品や医薬品は、それを投与（摂取）した被験体において、菌体内にプリン体を積極的に取り込んで資化し、それにより腸管内のプリン体を低減し、血清尿酸値の効果的な低減をもたらすことができる。したがってこれらの飲食品及び医薬品は、腸管内のプリン体の低減用に用いることができる。なお、ここでいう「腸管内のプリン体」には、腸管内に存在する細菌（乳酸菌等）、真菌、ウイルス、被験体の細胞等が保持するプリン体は含まないものとする。これらの飲食品及び医薬品は、腸管内のプリン体の低減に基づく血清尿酸値の低減用であってもよい。プリン体捕捉剤を含む飲食品や医薬品は、例えば、痛風や高尿酸血症の予防、治療、改善又は症状の軽減等のために好適に用いることができる。
　ここでいう「飲食品」は、特に限定されないが、飲料、食品及び機能性食品を包含する。飲食品の種類は、特に限定されず、例えば、飲料としては、発酵乳（ドリンクヨーグルト等）、乳酸菌飲料、乳飲料（コーヒー牛乳、フルーツ牛乳等）、茶系飲料（緑茶、紅茶、烏龍茶等）、果物・野菜系飲料（オレンジ、りんご、ぶどう等の果汁、トマト、ニンジン等の野菜汁を含む飲料）、アルコール性飲料（ビール、発泡酒、ワイン等）、炭酸飲料、清涼飲料、水ベースの飲料等が挙げられ、好適な飲料としては、ドリンクヨーグルト、乳酸菌飲料、乳飲料、水ベースの飲料等が挙げられ、特に好適な飲料としては、ドリンクヨーグルトが挙げられる。各種の飲料の製造法等については、既存の参考書、例えば「最新・ソフトドリンクス」(2003)（株式会社光琳）等を参考にすることができる。また、例えば、食品としては、発酵乳（セットタイプヨーグルト、ソフトヨーグルト、チーズ等）、乳製品、菓子、インスタント食品等が挙げられ、好適な食品としては、セットタイプヨーグルトやソフトヨーグルト等のヨーグルト、菓子、チーズ等が挙げられ、特に好適な飲料としては、ヨーグルト、例えばセットタイプヨーグルト、ソフトヨーグルト等が挙げられる。各種の食品の製造法等については、既存の参考書を参考にすることができる。
　プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を含むヨーグルト等の発酵乳は、例えば、プリン体の捕捉作用を有していても、それを有していなくてもよい、乳酸菌等の他の微生物を含み得るスターターを用いて製造した乳製品や発酵乳に、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を添加することによって製造してもよい。なお、スターターを用いた乳製品や発酵乳は、常法に従って製造することができる。例えば、加温・混合・均質化・殺菌処理後に冷却した乳又は乳製品に、スターターを混合し、発酵・冷却することにより、ヨーグルトを製造することができる。好ましい態様として、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌の、ヨーグルトやチーズ等の乳製品や発酵乳の製造における使用（好ましくは当該乳酸菌を乳製品や発酵乳又はその原料に添加（配合）することを含む）が提供され、特に好ましい態様として、ヨーグルトの製造における当該乳酸菌の使用が提供される。さらに、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を有効成分として使用する、ヨーグルトやチーズ等の発酵乳や乳製品における、乳酸菌のプリン体の捕捉作用に基づくプリン体の低減方法も提供される。
　飲食品として、とりわけ、機能性食品が好ましい。機能性食品の種類、好ましい例等は、上記の変換剤を用いた飲食品に関する機能性食品についての記載と同じである。
　この機能性食品は、腸管内のプリン体の低減により血清尿酸値を低減する上で特に有用である。機能性食品は、血清尿酸値の低減用、特に乳酸菌によるプリン体の取り込み及び乳酸菌の増殖促進による腸管内のプリン体の低減及び、その結果としての腸管におけるプリン体の吸収の低減を伴う血清尿酸値の低減用に好適に用いることができる。
　この機能性食品（日本の場合、好ましくは、特定保健用食品、条件付きトクホ[特定保健用食品]又は機能性表示食品）等の飲食品は、腸管内のプリン体の低減用であってもよいし、血清尿酸値の低減又は血清尿酸値の上昇を抑制若しくは緩和するためのものであってもよく、その旨について記載又は表示したものであってもよい。プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌の、そのような機能性食品の製造における使用（好ましくは当該乳酸菌を機能性食品又はその原料に添加（配合）することを含む）も提供される。
　この機能性食品の剤形又は形状は、上記の変換剤を用いた飲食品に関する機能性食品についての記載と同じである。
　ここでの飲食品に含まれる上記の乳酸菌以外の食品成分についても、上記の変換剤を用いた飲食品に関する記載と同じである。
　また、上記のプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌又はプリン体捕捉剤を含む機能性食品は、その乳酸菌又はプリン体捕捉剤に加えて、経口用に許容される担体又は添加剤を含んでもよい。担体としては、例えば、水、経口投与において許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、水溶性デキストリン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、経口投与において許容される界面活性剤等が挙げられる。添加剤としては、例えば、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤、安定剤、緩衝剤、矯味剤、保存剤、着色剤等が挙げられる。これらの担体又は添加剤は、単独でも２種以上を組み合わせても用いることができ、製剤の剤形に応じて適宜用いることができる。なお、本発明の機能性食品は、さらに他の機能性成分を含有してもよい。
　また、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌又はプリン体捕捉剤を含む医薬品（医薬組成物）は、本発明の乳酸菌又はプリン体捕捉剤に加えて、製薬上で許容される担体又は添加剤、特に、経口用に許容される担体又は添加剤を含んでもよい。担体及び添加剤の例は上記の変換剤を用いた医薬品に関する記載と同じである。これらの担体又は添加剤は、単独でも２種以上を組み合わせても用いることができ、製剤の剤形に応じて適宜用いることができる。なお、この医薬品は、さらに他の薬理成分を含有してもよい。
　上記の医薬品は、経口投与することが好ましい。医薬品は、錠剤、顆粒剤、散剤、丸剤、カプセル剤等の固形製剤、ジェル剤、又は液剤、懸濁剤、シロップ剤等の液体製剤等の任意の剤形であってもよい。
　プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品では、その投与量（摂取量）は、投与（摂取）対象の被験体の年齢及び体重、投与経路、投与回数等を考慮しながら、当業者の裁量によって広範囲に変更することができる。そのため、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品では、乳酸菌（ラクトバチルス・ガセリ菌等）の投与量としては、特に限定されないが、例えば、1用量当たり1×105～1×1011 cfu となる量が好ましく、1×108～1×1010 cfu となる量がより好ましく、1×109～1×1010 cfu となる量がさらに好ましく、例えば、4×109～6×1010 cfu となる量が特に好ましい。プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を、1用量当たり1×105～1×1011 cfu となる量で含有することが好ましく、1×108～1×1010 cfu となる量で含有することがより好ましく、1×109～1×1010 cfu となる量で含有することがさらに好ましく、例えば、4×109～6×1010 cfu となる量で含有することが特に好ましい。
　一実施形態において、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、1日1回以上、好ましくは1日2回以上、より好ましくは1日2回で、被験体に投与される（又は消費者が摂取する）。プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、被験体に継続的に投与されてもよく、例えば、毎日で投与されてもよい。この場合、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、少なくとも1週間、好ましくは2週間以上、より好ましくは4週間以上にわたって、被験体に投与される。このプリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品では、被験体に継続的に投与する場合、本発明の乳酸菌の投与量としては、1用量当たり1×105～1×1011 cfu となる量が好ましく、1×108～1×1010 cfu となる量がより好ましく、1×109～1×1010 cfu となる量がさらに好ましく、例えば、4×109～6×1010 cfu となる量が特に好ましい。
　別の一実施形態において、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、単回投与であってもよい。このプリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品では、被験体に単回投与する場合、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌の投与量としては、1用量当たり1×105～1×1011 cfu となる量が好ましく、1×108～1×1010 cfu となる量がより好ましく、1×109～1×1010 cfu となる量がさらに好ましく、例えば、4×109～6×1010 cfu となる量が特に好ましい。プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品は、好ましくは、経口投与（経口摂取）される。
　ここで「投与」とは、一般的に飲食品に対して用いられる「摂取」と医薬品に対して用いられる「投与」の両方を包含する。「経口投与」は、口からの投与又は摂取の他、鼻チューブや胃ろうチューブ等を介した経管栄養法による投与も含むものとする。したがって、そのような経口投与に用いることができる経口剤も提供される。そこで、好ましい実施形態では、プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌又はプリン体捕捉剤を含む、腸管内のプリン体を低減し、血清尿酸値を低減するための経口剤も提供される。
　プリン体の捕捉作用を有する乳酸菌、プリン体捕捉剤、飲食品又は医薬品では、その投与する被験体は、ヒト、家畜、愛玩動物、実験（試験）動物等を含む哺乳動物であり、ヒトの被験体が好ましく、痛風及び／又は高尿酸血症であるヒトの被験体がより好ましく、以下に限定するものではないが、6mg/dL以上、例えば6～10mg/dLの血清尿酸値を示すヒトの被験体がさらに好ましい。一実施形態では、6～8mg/dLの血清尿酸値を示す軽度～境界域の高尿酸血症であるヒトの被験体が好ましい。別の実施形態では、7mg/dL以上、好ましくは7～11mg/dL（一例では、7.6mg/dL～9.5mg/dL）の血清尿酸値を示すヒトの被験体が好ましく、そのうちで高尿酸血症及び痛風に罹患したヒトの被験体がより好ましい。また、血清尿酸値と、血清尿酸値の測定に先立つ食品からのプリン体摂取量（例えば、3日間の合計プリン体摂取量）に相関がみられる被験体が、投与（摂取）対象としてより好ましい。
　すなわち、以下の態様も提供される。
[a1]　プリン体を含む培地における乳酸菌のプリン体の取り込み量を測定し、それを指標としてプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を選抜することを含む、乳酸菌のスクリーニング方法。
[a2]　プリン体がアデニン、アデノシン、及びアデニル酸からなる群より選択される少なくとも１つである、[a1]に記載の方法。
[a3]　プリン体がアデニンである、[a1]又は[a2]に記載の方法。
[a4]　プリン体が放射性同位体で標識されている、[a1]～[a3]のいずれかに記載の方法。
[a5]　プリン体を含む培地における前記の乳酸菌の増殖量を測定し、それを前記のプリン体の取り込み量と共に指標としてプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を選抜することを含む、[a1]～[a4]のいずれかに記載の方法。
[a6]　乳酸菌がラクトバチルス・ガセリ菌である、[a1]～[a5]のいずれかに記載の方法。
[a7]　[a1]～[a6]のいずれかに記載の方法によって得られるプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌。
[a8]　[a1]～[a6]のいずれかに記載の方法によって得られるプリン体の捕捉作用を有する乳酸菌を有効成分として含む、プリン体捕捉剤。
[a9]　血清尿酸値の低減用である、[a8]に記載のプリン体捕捉剤。
[a10]　乳酸菌が、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株（受託番号NITE AP-224）である、[a8]又は[a9]に記載のプリン体捕捉剤。
[a11]　[a8]～[a10]のいずれかに記載のプリン体捕捉剤を含む、飲食品又は医薬品。
[a12]　腸管内のプリン体の低減用である、[a11]に記載の飲食品又は医薬品。
[a13]　6～8mg/dLの血清尿酸値を示すヒトの被験体を投与対象とする、[a11]又は[a12]に記載の飲食品又は医薬品。
[a14]　前記の乳酸菌を1用量当たり1×108～1×1010 cfuで含む、[a11]～[a13]のいずれかに記載の飲食品又は医薬品。
　以下、実施例を用いて、本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明の技術的範囲は、これら実施例に限定されるものではない。
［実施例１］
（１）乳酸菌の調製
　乳酸菌として、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）OLL2959株菌、及びラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri）ATCC 33323株菌を使用した。ラクトバチルス・ガセリ基準株であるATCC 33323株菌は、ATCC（American Type Culture Collection）からカタログ番号ATCC 33323で入手でき、また、独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンター（RIKEN BRC）微生物材料開発室（Japan Collection of Microorganisms）（RIKEN BRC-JCM）からカタログ番号JCM 1131Tで入手することもできる。
　乳酸菌ラクトバチルス・ガセリOLL2959株菌、及びラクトバチルス・ガセリATCC 33323株菌を、各々2本のファルコンチューブ中のMRS培地に接種し、37℃、16～20時間で培養した。この培養物を4℃、6,000rpm×10分間で遠心分離して集菌した後、この得られた乳酸菌を1つにまとめた。これに緩衝液10mLを加えて懸濁した後、4℃、6,000rpm×10分間で遠心分離して集菌することによる洗浄を2回行った。次いで緩衝液を加えて、およそ1×1010 cfu/mLに希釈した菌体懸濁液（生菌）を以下で使用した。
（２）アデニンをアデニル酸（AMP）に変換するサルベージ活性の測定
　（１）で調製した乳酸菌について、アデニンを基質として用いて、アデニンをアデニル酸（AMP）に変換する活性を測定した。
　ラクトバチルス・ガセリOLL2959株菌及びATCC 33323株菌のそれぞれについて、以下の組成で反応液（100μLずつ）を調製した。乳酸菌は、MgCl2、PRPP、アデニン及びTris-HClを含む溶液（緩衝液）を調製した後で懸濁した。反応液中の乳酸菌濃度は、およそ5×109 cfu/mLであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　反応液の調製後、37℃で振とうしながら水浴中でインキュベートすることにより、乳酸菌を培養し、0分、15分、30分及び60分の時点で、等量の5％ TFA（トリフルオロ酢酸）を添加することにより変換反応を停止させた。
　反応停止後の反応液を4℃、15,000rpm×10分間で遠心分離した。上清を回収し、遠心式フィルターユニット、0.22μmのUltrafree-MC（micon）を用いて、4℃、15,000rpm×10分間で再度、遠心分離して、精密ろ過した。
　この得られた、ろ液についてHPLC分析を行った。この用いたHPLC分析条件は、以下のとおりである。
　・移動相：A：20mM リン酸緩衝液（pH7.5）
　　　　　　B：40mM リン酸緩衝液（pH7.5）／アセトニトリル（1：1）
　・カラム：SHISEIDO CAPCELL PAK C18 MG2（2.0mm id×150mm）
　・流速：　0.2mL/分
　・温度：　40℃
　・注入量：5μl
　・検出波長：　254nm（UV）
　・グラジエントA/B（分）：100／0（0分）－100／0（5分）－80／20（20分）［％］
　反応液中のアデニン及びAMPの定量は、HPLCチャートのピーク下面積値を測定することにより行った。各反応停止時点におけるアデニンのAMPへの変換率を以下の式で算出した。
　変換率（％）＝（試験区のAMPのピーク下面積値－対照区のAMPのピーク下面積値）／（試験区の0分時点のアデニンのピーク下面積値－対照区の0分時点のアデニンのピーク下面積値）
　この得られた変換率の経時的変化を表２及び図１に示す。ATCC 33323株を反応に用いた場合、アデニンからAMPへの変換活性は、ほとんど示されなかった。一方、OLL2959株を用いた場合には、AMP量の急激な増加と共にアデニン量が減少し、60分後には、大部分のアデニンがAMPに変換された。表２及び図１に示すように、OLL2959株では、ATCC 33323株と比較して、アデニンからAMPへの変換活性は圧倒的に高かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　以上の結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株菌はアデニンをAMPへと変換する能力が非常に高いことが示された。すなわち、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株菌において、アデニンをAMPへの変換（サルベージ経路）を触媒するアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（APRT）活性が高いと考えられた。
（３）グアニンをグアノシン（GMP）に変換する活性の測定
　サルベージ経路には、アデニンをAMPに変換する経路の他、グアニンをグアニル酸（GMP）に変換する経路、ヒポキサンチンをイノシン酸（IMP）に変換する経路、及びキサンチンをキサンチル酸（XMP）に変換する経路も存在する。ヒトなどの哺乳動物及び乳酸菌では、アデニンのAMPへの変換を触媒する酵素APRTは、グアニンのGMPへの変換にも関与すると考えられている。一方、哺乳動物及び乳酸菌において、ヒポキサンチンのIMPへの変換、及びキサンチンのXMPへの変換には、ヒポキサンチン－グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼが関与している。なお乳酸菌では、キサンチンのXMPへの変換及びグアニンのGMPへの変換には、キサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼも関与することが知られている。
　そこで、グアニンのGMPへの変換活性も測定した。このとき、アデニンをグアニンに、AMPをGMPに変更したこと以外は、上記の（２）と同様にして、グアニンのGMPへの変換活性を測定した。この結果を表３及び図２に示す。ATCC 33323株では、グアニンのGMPへの変換活性が非常に低かったが、OLL2959株では、グアニンをGMPへと変換する能力も比較的に高いことが示された（図２）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
［実施例２］
（１）プリンヌクレオシダーゼ活性の測定
　特許文献１に示すように、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、イノシンやグアノシンなどのプリンヌクレオシドに対する高い分解能を有する。そこで、プリンヌクレオシドのプリン塩基への分解活性として、プリンヌクレオシダーゼ活性を測定した。
　具体的には、100mM リン酸緩衝液（pH7.0）を用いて調製した終濃度0.2mM アデノシン溶液に、およそ5×109 cfu/mlになるようにOLL2959株菌体を懸濁させ、反応液とした。ここで、37℃、120分間で反応させ、HPLC分析により、アデノシン及びアデニンを面積値として測定した。また、比較対照として、ATCC 33323株を用いて、上記と同様に試験した。この測定結果を、アデノシン（プリンヌクレオシド）のアデニン（プリン塩基）への変換率（面積比較）で表現した。実施例１（２）と同様にして、この変換率を算出した。
　さらに、アデノシンの代わりに、イノシン及びグアノシンをそれぞれ用いて同様に試験した。この結果を図３に示す。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して、いずれのプリンヌクレオシドに対しても顕著にプリン塩基への変換率が高く、すなわち、プリンヌクレオシダーゼ活性が高かった。
（２）5'-ヌクレオチダーゼ（5'-NT）活性の測定
　プリン塩基からサルベージ活性により変換されたプリンヌクレオチドは、5'-ヌクレオチダーゼ活性によりヌクレオシドに変換される。そこでラクトバチルス・ガセリOLL2959株について5'-ヌクレオチダーゼ活性を測定した。
　25mM Tris-HCl緩衝液（pH7.5）を用いて調製した終濃度5mM MgCl2、0.2mM AMPの溶液に、およそ5×109 cfu/mlになるようにOLL2959株菌体を懸濁させ、反応液とした（試験区）。対照区では0.2mM AMPの代わりに、上記の緩衝液を用いて反応液を調製した。ここで、37℃、120分間で反応させ、HPLC分析により、AMP及びアデノシンを面積値として測定した。また、比較対照として、ATCC 33323株を用いて、上記と同様に試験した。この測定結果を、AMP（プリンヌクレオチド）のアデノシン（ヌクレオシド）への変換率（面積比較）で表現した。実施例１（２）と同様にして、この変換率を算出した。
　さらに、AMPの代わりにIMP及びGMPをそれぞれ用いて同様の試験を行った。この結果を表４及び図４に示す。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して、いずれのプリンヌクレオチドに対してもプリンヌクレオシドへの変換率が顕著に低かった。すなわち、5'-ヌクレオチダーゼ活性が顕著に低かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　上記の5'-ヌクレオチダーゼ活性の測定結果、並びに実施例１のサルベージ活性の測定結果、及び実施例２の（１）プリンヌクレオシダーゼ活性の測定結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、全般的にプリン体代謝活性が高く、その代謝活性は特にエネルギーとして利用可能なヌクレオチドを積極的に生成及び蓄積する方向に偏向していることが示された。
［実施例３］
　軽度～境界域の高尿酸血症が疑われるヒト被験者に、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を継続的に摂取させ、プラセボ対照二重盲検比較試験により、尿酸値への影響について検討した（ヒト試験）。
　試験開始前の検査で尿酸値が6～8 mg/dLであった35歳以上の成人男性：14名（平均年齢：44.3歳）を、尿酸値と年齢に有意差がないように、プラセボ群とアクティブ群の2群に割付した。プラセボ群には、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を含まないヨーグルトを2個（85g／個）／日、4週間で摂取させた。アクティブ群には、プラセボ群に与えたヨーグルトに、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を1×108 cfu／gで含有させたものを2個（85g／個）／日、4週間で摂取させた。なお、ヨーグルトの2個／日は、朝食、昼食、夕食のうち、いずれかの食後の2回で摂取させた。
　各被験者について、試験開始時（試験食摂取前）、2週後及び4週後（試験食摂取期間）に血液検査を行い、血清尿酸値を測定した。試験開始時の血清尿酸値と比較した各時点の血清尿酸値の変化量を算出し、試験期間中の血清尿酸値の変化量の推移について、反復測定2元配置分散分析法により統計解析を行った。この結果を図５に示した。
　図５に示されるとおり、アクティブ群では、プラセボ群と比較して、血清尿酸値が有意に低かった（p = 0.042）。すなわち、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、血清尿酸値を低減させる効果を有することが示された。
［実施例４］
　本実施例では高尿酸血症と痛風の通院治療中の患者を被験者として、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri；ガセリ菌）OLL2959株を摂取させ、血清尿酸値に対する効果を評価した。無作為化プラセボ対照二重盲検並行群間試験を実施した。
（１）試験食品の製造
　被験者が摂取する試験食品（被験食品又は対照食品）は、以下のようにして製造した。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を含む被験食品は、ヨーグルトスターターであるラクトバチルス・ブルガリクス（Lactobcillus bulgaricus）とストレプトコッカス・サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）の2種類の菌と、有効成分であるラクトバチルス・ガセリOLL2959株（8.5×107cfu/mL）とを含むヨーグルトを調製し、それを1本当たり100g充填したペットボトル入り飲料を製造した。
　ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を含まない対照食品は、ヨーグルトスターターであるラクトバチルス・ブルガリクス（Lactobcillus bulgaricus）とストレプトコッカス・サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）の2種類の菌を含むラクトバチルス・ガセリOLL2959株を含まないヨーグルトを同様の方法で調製し、それを1本当たり100g充填したペットボトル入り飲料を製造した。各食品のヨーグルトは、原材料である、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株菌（被験食品のみ）、上記のヨーグルトスターター、乳製品、安定化剤（ペクチン）、香料、及び水などを配合することにより調製した。
　試験食品の製造後、任意の1個の製品について菌数を測定した。具体的には、試験食品のヨーグルトをBL培地に接種し、3日間の好気培養後、培地上のコロニー数をカウントすることにより、菌数が上記のレベルを満たしていることを確認した。
（２）摂取試験
　試験参加の同意を得た、高尿酸血症と痛風を発症しており尿酸降下薬を服用中の20歳以上の患者（被験者）について、血清尿酸値測定を含む事前検査を行い、尿酸降下薬について4週間の休薬を実施させた。
　4週間の休薬後、被験者に対し血清尿酸値測定を含む摂取前検査を実施した。また摂取前検査の前3日間の被験者の食事調査を行った。
　休薬後の血清尿酸値が7mg/dLを超える被験者を選抜し、休薬後の血清尿酸値に基づき、摂取前検査の血清尿酸値と年齢で被験食品摂取群と対照食品摂取群において、有意差が無いように、被験者の割付を実施した。なお、身長、体重、BMI、血圧収縮期、血圧拡張期、及び脈拍の測定値でも群間において、有意差は認められなかった。
　この割付に従って、摂取前検査後に、被験者は、試験食品（8.5 x 107cfu/mLのOLL2959株を含有する被験食品、又はOLL2959株を含有しない対照食品）を2本／日、8週間で摂取した（試験食品摂取期間）。試験食品の摂取期間中にも、被験者は、引き続き休薬した。摂取開始から8週間後に血清尿酸値の測定を含む検査を行った（8週検査）。また、8週検査の前3日間の食事調査も行った。
　摂取前検査（0週）及び8週検査のそれぞれの検査前3日間について、全部の被験者で、食事調査を行った。被験者に3日間の朝食、昼食、夕食及び間食の内容を日誌に記載するか、及び／又は写真に撮影して報告させた。この報告された食事内容に基づき、管理栄養士がエネルギー、タンパク質、脂質、炭水化物、及び塩分の摂取量を算出した。また、各被験者の報告に基づき、プリン体量を算出した。
　摂取期間中の脱落及び試験食品の摂取率の90%以下、血清尿酸値及びプリン体の摂取量の相関から外れた被験者を除いた母集団（17名；　被験食品摂取群：9名、対照食品摂取群：8名（休薬後血清尿酸値：7.6mg/dL～9.5mg/dL））で層別解析を実施した。この8週検査時までの結果によると、被験食品の摂取群で、休薬中にも血清尿酸値の大幅な上昇が生じない傾向が示され（図６）、被験食品の摂取群では、対照食品の摂取群と比較して、p<0.05で有意に、血清尿酸値が低下したことが示された（p=0.0342、Mann-Whitney U test）。
　以上の結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株の摂取により、高尿酸血症及び痛風を発症した患者においても、食品由来のプリン体に起因する血清尿酸値の上昇が抑制されることが示された。
［実施例５］プリン体の取り込み能の評価試験
　放射性同位体（RI）で標識したプリン体を用いて、ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri；ガセリ菌）OLL2959株のプリン体の取り込み能について評価した。
　ラクトバチルス・ガセリ（Lactobacillus gasseri；ガセリ菌）OLL2959株は、2006年3月31日付（原寄託日）で、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（NPMD）（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8　122号室　郵便番号292-0818）に受託番号NITE P-224で寄託された後、2007年11月21日付でブダペスト条約に基づく寄託（国際寄託）に移管されており、受託番号がNITE BP-224に変更されている。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株をMRS培地（Lactobacilli MRS Broth 、Difco社）に接種し、37℃、16～20時間で培養した培養物（4～7×108cfu/ml）を以下で使用した。
　最少培地（DM培地；表５）： 0.1mLに、放射性同位体14Cで標識したアデニル酸（AMP）、アデノシン、又はアデニン（それぞれ14C-AMP、14C-アデノシン、14C-アデニン）を終濃度： 20μMとなるように添加し、次いで、上記で調製したラクトバチルス・ガセリOLL2959株の培養液を2重量%（0.002mL： 0.8～1.4×106cfu）で植菌して、37℃、30分間で嫌気培養した。
　その後、これらの培地に、TFA溶液（トリフルオロ酢酸、5%）を添加し、次いで、生理食塩水にて菌体を洗浄してから、液体シンチレーションカウンター（アロカ製、LSC-6100）にて放射活性を測定した。コントロール（0分）として、サンプルの調製の直後にTFA溶液（5%）を添加し、次いで、生理食塩水にて菌体を洗浄してから、前記と同様に、放射活性を測定した。この結果を図７に示した。図７において、菌体中の14C標識プリン体の量を示す放射活性（縦軸）の単位は、放射性物質が1分間あたりに壊変する数である disintegrations per minute（dpm）である。なお、DM培地を用いて60分間で培養した場合に、試験開始時と試験終了時における生菌数が有意に変化しないことを確認した。
　以上の結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、プリン体のアデニル酸（AMP）、アデノシン、及びアデニンを菌体内に取り込む能力（プリン体の取り込み能）が有ること、特にアデニンを菌体内に取り込む能力（プリン体の取り込み能）が高いことが示された（図７）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
［実施例６］プリン体の存在下における増殖能の評価試験
　プリン体の存在下においてラクトバチルス・ガセリOLL2959株を培養し、プリン体の存在下における増殖能について評価した。
　DM培地（表５）： 1mLに、プリン体として、アデニル酸（AMP）、アデノシン、又はアデニンを終濃度が400μMとなるように添加し、次いで、実施例５で調製したラクトバチルス・ガセリOLL2959株の培養液を4重量%（0.04mL： 1.6～2.8×107 cfu）で植菌して、37℃で嫌気培養した。そして、この培養開始から0時間、4時間及び6時間後に、培地の濁度（650nmにおける吸光度）を測定した。比較対照として、最少培地にプリン体を添加しないこと以外は同様の方法により、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を培養して、培地の濁度を測定した。この結果を図８に示した。
　以上の結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株は、アデニル酸（AMP）、アデノシン、又はアデニンの存在下において増殖能が増強されること、特に、アデニン存在下において増殖能がより増強されることが示された（図８）。
［実施例７］アデニンの取り込み能及びアデニンの存在下における増殖能の比較試験
　アデニン存在下においてラクトバチルス・ガセリOLL2959株及び他のラクトバチルス・ガセリ菌株を培養し、それぞれのアデニンの取り込み能とアデニンの存在下における増殖能について比較した。
　他のラクトバチルス・ガセリ菌株として、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株及びP14054ME002株を用いた。なお、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株及びP14054ME002株では、プリン体を添加しないMRS培地（Lactobacilli MRS Broth 、Difco社）にて、20時間で培養した場合、それぞれの増殖能がラクトバチルス・ガセリOLL2959株と同等であった（表６）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　放射性同位体14Cで標識したプリン体として、アデニン（14C-アデニン）のみを使用した点以外は、実施例５と同様にして、アデニンの取り込み能を評価した。この結果を図９に示した。ラクトバチルス・ガセリP14054ME002株では、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株ほどには、アデニンの取り込み能が高くないものの、ラクトバチルス・ガセリP14054ME002株でも、アデニンの取り込み能が高いことを確認できた（図９）。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株及びP14054ME002株と比較して、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株では、アデニンの取り込み能が低いことを確認できた（図９）。
　アデニンの存在下における増殖能の評価では、DM培地（表５）：1mLに、アデニンを終濃度が400μMとなるように添加し、次いで、実施例５で調製したラクトバチルス・ガセリOLL2959株の培養液、実施例５に記載の方法と同様にして調製したP14054ME001株及びP14054ME002株の培養液のいずれかを4重量%（0.04mL： 1.6～2.8×107 cfu）で植菌して、37℃で嫌気培養した。そして、この培養開始から、0時間、4時間及び6時間後に、培地の濁度（650nmにおける吸光度）を測定した。この結果を図１０に示した。ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と同様に、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株及びP14054ME002株でも、アデニンの存在下において増殖能の増強を示した。また、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株及びP14054ME002株と比較して、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、その増殖能の増強程度が極めて強かった。なお、ラクトバチルス・ガセリP14054ME001株と比較して、ラクトバチルス・ガセリP14054ME002株では、その増殖能の増強程度が強かった。
　以上の結果から、ラクトバチルス・ガセリ菌において、アデニンの存在下における増殖能の増強は、アデニンの取り込み能の高さと相関することが示された。そして、一部の乳酸菌が高いアデニンの資化能を有することが示された。
［実施例８］ラクトバチルス・ガセリ菌のプリン体の取り込み能（動物試験）
　乳酸菌によるプリン体の取り込み能が高い場合、動物の被験体に乳酸菌とプリン体を同時に投与する（摂取させる）と、プリン体単独を摂取させたときと比較して、被験体におけるプリン体の吸収が抑えられると考えられる。そこで、ラクトバチルス・ガセリ菌のプリン体の取り込み能を試験するため、以下の手順で、動物実験を行った。
　まず、8週齢のWistarラット（雄、190～210g）の14匹を購入してから一週間に亘って馴化した。これらのラットでは、試験の前日から約16時間で絶食させ、この絶食後の体重を測定した。この絶食後の体重に基づき、群分けプログラムを用いて、無作為抽出法により、ラットを陰性群（生理食塩水投与群）、AMP（放射性同位体14C-AMP）投与群、AMP+OLL2959株（放射性同位体14C-AMP 及びOLL2959株）投与群の合計で3群に振り分けた。このとき、陰性群のみを4匹、他群を各5匹とした。これらの全部のラットを無麻酔下にて、ホルダーに入れ、メスを用いて、尾静脈を傷つけ、ヘマトクリット管を用いて、これら湧出してきた血液を60μLで採血した。これを被験物質の投与前の0分時点の採血とした。これらの採血した血液には、等量の2mg/mL EDTA-2Na溶液（EDTA-2Naを生理食塩水に溶解した）を加えた。
　次いで、被験物質を強制経口投与した。ここで、これらの被験物質には、陰性群では、生理食塩水、AMP投与群では、放射性同位体14Cで標識したアデニル酸（14C-AMP：57.6mCi/mmol、0.1mCi/ml）、AMP+OLL2959株投与群では、14C-AMP 及びラクトバチルス・ガセリOLL2959株（1×1010cfu/body）を用いた。また、14C-AMP及びOLL2959株には、生理食塩水（大塚製薬）で希釈したものを用いた。AMP群及びAMP+OLL2959群では、14C-AMPを10μCi/bodyで投与した。なお、全例（全群）において、投与容量を2mL/bodyとした。
　被験物質の投与から15、30、45、60、90、120及び180分後に、これらの全部のラットを無麻酔下にて、ホルダーに入れ、メスを用いて、尾静脈を傷つけ、ヘマトクリット管を用いて、これら湧出してきた血液を60μLで採血した。これらの採血した血液には、等量の2mg/mL EDTA-2Na溶液（EDTA-2Naを、生理食塩水に溶解した）を加えた。これらの試験の終了の直後に、二酸化炭素の吸入により、ラットを殺処分した。
　液体シンチレーションカウンター（アロカ製、LSC-6100）を用いて、これらの採血した血液の放射活性を測定した。この結果を図１１に示す。図１１に示されるとおり、血中濃度がピークを迎えている投与から30、45及び60分後に、プリン体の吸収量に有意差が見られた（* p<0.05、** p<0.01、t-test）。この結果から、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株を摂取することで、腸管からのプリン体の吸収量を抑制できることが示された。
［実施例９］乳酸菌株の種類の比較試験
（１）アデニンの取り込み能の比較試験
　放射性同位体（RI）で標識したアデニン（14C-アデニン）を含む培地で、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を培養し、アデニンの取り込み能について、乳酸菌株の種類の影響を比較した。なお、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株は、理化学研究所バイオリソースセンター 微生物材料開発室（RIKEN BRC JCM；茨城県つくば市、日本）から、JCM1130として入手することができる。
　ここで、MRS培地を用いて、それぞれラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を培養し、これらの増殖能を予め評価した。すなわち、MRS培地を用いて、それぞれラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を、37℃、20時間で嫌気培養した。このとき、この20時間に亘って嫌気培養した後に、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と比較して、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株では、菌数が2.5倍以上で高かった。このことから、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を同じ培地で培養した場合に、基本的には、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株の増殖能が高いことが示された（表７）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　アデニンの取り込み能の比較試験では、まず、最少培地（表５）に、14C-アデニンを終濃度が20μMとなるように添加して、本試験の培地を調製した。次いで、MRS培地を用いて、それぞれラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を培養してから、これらの培養液を2重量％で、本試験の培地に植菌し、37℃で嫌気培養した。これらの培養液では、MRS培地を用いて、それぞれ同等の菌数になるように調整した。
　これらの培養開始時（0分）と、培養開始から30又は60分後に、5%濃度のTFA溶液を添加して、培養を停止させ、次いで、生理食塩水にて菌体を洗浄した後に、液体シンチレーションカウンター（アロカ製、LSC-6100）を用いて、これらの放射活性を測定した。この結果を図１２に示す。ここで、図１２の放射活性（縦軸）は、放射性物質が1分間あたりに壊変する数（disintegrations per minute；dpm）で表している。
　図１２に示されるように、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株では、いずれもアデニンの取り込み能が発揮されていたが、これらの培養開始から30及び60分後ともに、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株に比較して、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、アデニンを多く取り込んでおり、アデニンの取り込み量に有意差が見られた（p<0.05、t-test）。
　以上の結果から、MRS培地における増殖能が高いラクトバチルス・ガセリJCM1130株と比較して、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、プリン体を有意に多く取り込めることが明らかになった。
（２）アデニンの存在下における増殖能の比較試験
　アデニンの存在下において、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を培養し、菌体の増殖能について、乳酸菌株の種類の影響を比較した。
　最少培地（表５）に、アデニンを終濃度が400μMとなるように添加して、本試験の培地を調製した。次いで、MRS培地を用いて、それぞれラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株を培養してから、これらの培養液を4重量％で、本試験の培地に植菌して、37℃で嫌気培養した。これらの培養開始（0時間）と、培養開始から4及び6時間後に、濁度（650nmにおける吸光度）を測定した。この結果を図１３に示す。
　図１３に示されるように、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株と、ラクトバチルス・ガセリJCM1130株では、いずれもアデニンの存在下における増殖能が増強されていたが、MRS培地における増殖能が高いラクトバチルス・ガセリJCM1130株と比較して、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、増殖能の増強の程度が有意に高いことが明らかになった（p<0.05、t-test）。したがって、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株では、プリン体存在下における増殖能が特に強く増強されることが示された。
　本明細書で引用した全部の刊行物、特許及び特許出願は、その全体が参照により、本明細書に組み入れられるものとする。
　本発明の乳酸菌は、in vivo又はin vitroで基質として、プリン塩基をプリンヌクレオチドに効率良く変換することができる。本発明の乳酸菌を含むプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤を用いれば、血清尿酸値が高い被験体やサルベージ活性が低下した被験体においても、腸管内でプリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換を促進でき、血清尿酸値を低減させることができる。したがって、本発明の乳酸菌を含むプリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤並びにそれを含む飲食品及び医薬品は、痛風や高尿酸血症の予防及び／又は治療等のために有効である。

Claims (14)

  1. 　アデニン、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸、及びMg2+を含む溶液中で、乳酸菌を培養し、それにより得られるアデニンのアデニル酸への変換活性を指標として、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して、プリン塩基からプリンヌクレオチドへの変換能が増強された乳酸菌をスクリーニングする方法。
  2. 　5'-ヌクレオチダーゼ活性を測定し、ラクトバチルス・ガセリATCC 33323株と比較して該活性が低下した乳酸菌を選抜することをさらに含む、請求項１に記載の方法。
  3. 　乳酸菌がラクトバチルス属菌である、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　溶液が緩衝液である、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　請求項１～４のいずれか１項に記載の方法によって得られる乳酸菌を有効成分として含む、プリン塩基のプリンヌクレオチドへの変換剤。
  6. 　アデニンのアデニル酸への変換用又はグアニンのグアニル酸への変換用の、請求項５に記載の変換剤。
  7. 　乳酸菌が、ラクトバチルス・ガセリOLL2959株（受託番号NITE BP-224）である、請求項５又は６に記載の変換剤。
  8. 　請求項５～７のいずれか１項に記載の変換剤を含む、飲食品又は医薬品。
  9. 　血清尿酸値低減用の、請求項８に記載の飲食品又は医薬品。
  10. 　血清尿酸値低減が、腸管でのアデニンのアデニル酸への変換促進及びグアニンのグアニル酸への変換促進を伴う、請求項９に記載の飲食品又は医薬品。
  11. 　6～8mg/dLの血清尿酸値を示すヒト被験体を投与対象とする、請求項９又は１０に記載の飲食品又は医薬品。
  12. 　前記の乳酸菌を1用量当たり1×108～1010 cfu含む、請求項８～１１のいずれか１項に記載の飲食品又は医薬品。
  13. 　請求項５～７のいずれか１項に記載の変換剤を、5-ホスホ-D-リボース-1-二リン酸及びMg2+の存在下でプリン塩基と反応させることにより、プリン塩基からプリンヌクレオチドを生成させる方法。
  14. 　アデニンからアデニル酸を生成させるか、又はグアニンからグアニル酸を生成させるための、請求項１３に記載の方法。
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