WO2013035767A1

WO2013035767A1 - 酸性環境検出蛍光プローブ

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Publication number: WO2013035767A1
Application number: PCT/JP2012/072688
Authority: WO
Inventors: 泰照浦野; 哲雄長野; 大祐浅沼; 謙造廣瀬; 繁行並木; 洋輔高岡
Original assignee: University of Tokyo NUC
Current assignee: University of Tokyo NUC
Priority date: 2011-09-07
Filing date: 2012-09-06
Publication date: 2013-03-14
Anticipated expiration: 2014-03-07
Also published as: JPWO2013035767A1; JP6090934B2; US9784732B2; US20140248654A1

Abstract

　細胞内酸性環境で初めて強蛍光性となり、かつ、細胞内小胞という微小構造の蛍光イメージングに耐える蛍光プローブとして、下記式（Ｉ）で表される化合物を提供する。式（Ｉ）：（式中、Ｒ_１及びＲ_２は、水素又は置換されていてもよいアルキル基（但し、Ｒ_１、Ｒ_２の少なくとも一つは置換されていてもよいアルキル基である）を表し、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７及びＲ_８は、水素又はハロゲン等を表し、Ｘはラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基等を表し、Ｙはハロゲン又は置換されていてもよいアルキル基等を表し、ｍは０～５の整数を表し、ｎは０～５の整数を表す。）

Description

酸性環境検出蛍光プローブ

　本発明は、細胞内酸性環境において蛍光特性を変化させることができる蛍光プローブに関する。更に、本発明は、当該蛍光プローブにラベル部位または酸性細胞小器官集積部位を導入することにより、観察する細胞現象に合わせた機能性を付加した蛍光プローブにも関わるものである。

　酸性細胞小器官（酸性オルガネラ）が関わる細胞現象として、エンドサイトーシスやエキソサイトーシス、オートファジーなどが知られ、これらの細胞内小胞における酸性ｐＨが小胞の膜輸送や内腔に含まれる加水分解酵素の活性に影響し、ひいては細胞の機能に大きく関わることが知られている。これらの現象を理解する上で、細胞内小胞におけるｐＨを測定する技術の開発が望まれ、酸性環境において蛍光特性を変化させるｐＨプローブが有用なツールとして期待されている。

　本発明者らは、これまでにＢＯＤＩＰＹを蛍光団とした種々のｐＨプローブを開発してきた（Ｕｒａｎｏ，Ｙ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．１５，１０４，２００９；ＷＯ２００８／０５９９１０）。しかしながら、細胞内小胞という微細な構造を高倍率で蛍光観察する際、強い光量の励起光が必要となるため、これらのｐＨプローブは褪色し、ｐＨ測定は困難であった。

　このように、細胞内酸性環境ではじめて強蛍光性となり、なおかつ、細胞内小胞という微小構造の蛍光イメージングに耐える光安定性を有するｐＨプローブは現在まで報告されていない。

ＷＯ２００８／０５９９１６

Ｕｒａｎｏ，Ｙ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．１５，１０４，２００９

　本発明は、従来技術で達成されていない、細胞内酸性環境ではじめて強蛍光性となり、なおかつ、細胞内小胞という微小構造の蛍光イメージングに耐える蛍光プローブを開発することにより、酸性細胞小器官における酸性ｐＨの蛍光イメージングを可能とすることを目的としている。更に、エンドサイトーシスやエキソサイトーシスなど観察する細胞現象に合わせた蛍光イメージングを可能とする技術を開発することをも目的としている。

　本発明者等は、例えば、ローダミンのような光退色耐性に優れる蛍光団を母核としたｐＨプローブを開発することにより、酸性細胞小器官におけるｐＨ測定が可能になるのではないかと考えて種々検討を行った。
　これまでに、ローダミンを母核としたｐＨプローブとして、ｐＨｒｏｄｏ（登録商標）（構造非公開）およびＲｈｏｓａｍｉｎｅ５ｈが報告されている。しかしながら、ｐＨｒｏｄｏ（登録商標）はｐＫａが７．３と蛍光変化を示す領域が中性付近であり、Ｒｈｏｓａｍｉｎｅ５ｈも、ｐＫａの報告はないが、蛍光変化の領域が中性付近を中心としている。いずれも細胞内酸性環境における変化を鋭敏に捉えることはできない。

　本発明者等は、一般的にｐＨが４．５～６．０程度と言われる細胞内酸性環境において蛍光特性を変化させる蛍光プローブの開発を目的として鋭意検討したところ、ローダミンを母核とし、分子内にＮ－アルキルピペラジニル基を導入することにより、細胞内酸性環境においてはじめて強蛍光性となる蛍光プローブを開発することができた。
　更に、本発明の蛍光プローブにおいて、ラベル部位または標的集積部位（酸性細胞小器官集積部位）を導入することにより、観察する細胞現象に合わせた機能性を蛍光プローブに付加できることも見出した。

　即ち、本発明は、
（１）下記の一般式（Ｉ）：

（式中、Ｒ_１、Ｒ_２は、それぞれ独立に、水素又は置換されていてもよいアルキル基を示し（但し、Ｒ_１、Ｒ_２の少なくとも一つは置換されていてもよいアルキル基である。）、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７及びＲ_８は、それぞれ独立に水素、ハロゲン、又は置換されていてもよいアルキル基を示し、Ｘは、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基、又はラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基を示し、Ｙは、ハロゲン、置換されていてもよいアルキル基、置換されていてもよいアルコキシル基、又はシアノ基を示し、ｍは０～５の整数を示し、ｍが２以上である場合は、Ｘは同一であっても異なっていてもよく、ｎは０～５の整数を示し、ｎが２以上である場合は、Ｙは同一であっても異なっていてもよく、ｍとｎの和は５以下の整数である。）
で表される化合物又はその塩、
（２）一般式（Ｉ）におけるＲ_１、及び／又はＲ_２が、それぞれ独立に置換されていてもよい炭素数１～４のアルキル基である（１）に記載の化合物又はその塩、
（３）ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基が、カルボキシル基、カルボキシル基を有するアルキル基、アミノ基、アミド基、マレイミド基、マレイミド基を有するアルキル基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、及びアルキニル基からなる群から選択される少なくとも１つである（１）または（２）に記載の化合物又はその塩、
（４）ラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基が、－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）（Ｘ’はラベル部位又は標的集積部位を導入する基を示し、Ｔは存在する場合は架橋基を示し、Ｓはラベル部位又は標的集積部位を示す。）で表され、ｍが１以上である（１）～（３）のいずれか１に記載の化合物又はその塩、
（５）Ｘ’のラベル部位又は標的集積部位を導入する基が、カルボニル基、アルキルカルボニル基、アミノ基、アルキルアミノ基、アミド基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、又はアルキニル基である（４）に記載の化合物又はその塩、
（６）Ｓが、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、Ｈａｌｏタグリガンド、弱塩基性アミン、片末端又は両末端に修飾基を有してもよいポリエチレングリコール基、マレイミド、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、アルキニル基、ベンジルグアニン誘導体又はベンジルシトシン誘導体である（４）又は（５）に記載の化合物又はその塩、
（７）（１）～（６）のいずれか１に記載の化合物又はその塩を含む蛍光プローブ、
（８）細胞内の酸性領域の測定方法であって、
（ａ）（１）～（６）のいずれか１に記載の化合物又はその塩を細胞内に導入する工程、及び
（ｂ）当該化合物又はその塩が細胞内で発する蛍光を測定する工程
を含む方法、
（９）細胞内酸性小器官の存在する酸性領域を測定する（８）に記載の方法
に関わる。

　本発明の一般式（Ｉ）で表される化合物は、細胞内酸性環境においてはじめて強蛍光性となることから、細胞内酸性環境を蛍光検出できるものである。また、本発明の一般式（Ｉ）で表される化合物は、光安定性に優れ、細胞内小胞という微小構造の蛍光イメージングに耐えることができるものである。従って、本発明の蛍光プローブを用いることにより、細胞内微小構造におけるｐＨ変化をリアルタイムで観察することが可能となる。また、本発明の一般式（Ｉ）で表される化合物においてラベル部位または標的集積部位を導入した化合物により、細胞内酸性小胞が関わる種々の現象をリアルタイムに可視化することが可能となる。

化合物Ａの２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを１０．０から２．０に変化させた場合の吸収スペクトルの変化（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）化合物Ａの２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを１０．０から２．０に変化させた場合の蛍光スペクトルの変化（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）化合物Ａの蛍光強度のｐＨプロファイル化合物１の１００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．２４から４．３９に変化させた場合の蛍光スペクトルの変化及びｐＨプロファイル（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが小さくなることに対応する。）化合物Ｄの蛍光強度のｐＨプロファイル色素複合体１（Ｄｅｘ－化合物Ｂ＆Ａ４８８）の２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の吸収スペクトルの変化（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）色素複合体１の２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の蛍光発光スペクトルの変化（励起波長：４８８ｎｍ）（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）色素複合体１の２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の蛍光発光スペクトルの変化（励起波長：５４０ｎｍ）（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）色素複合体１の２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の蛍光励起スペクトルの変化（発光波長：５２０ｎｍ）（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）色素複合体１の２００ｍＭリン酸緩衝溶液においてｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の蛍光励起スペクトルの変化（発光波長：５６５ｎｍ）（グラフ中の矢印の向きは溶液のｐＨが大きくなることに対応する。）色素複合体１の蛍光強度のｐＨプロファイルｐＨのサイクル変化（ｐＨを７．１と３．２で３０秒ごとに交互に変化させる）による蛍光強度比の変化色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞のイメージング（ＤＩＣ像及び蛍光像）色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞のｉｎ　ｓｉｔｕでのｐＨキャリブレーション曲線ＮＨ_４Ｃｌ処理前後での個々のリソソーム（ｎ＝１０）のｐＨ計算値を示すヒストグラムＥｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体のｐＨに対する蛍光強度ＥＧＦＲ過剰発現細胞株であるＡ４３１細胞をＥｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体でイメージングした結果を示した写真ＥＧＦＲ過剰発現細胞株であるＡ４３１細胞をＥｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体とＬｙｓｏＴｒａｃｋｅｒとの共染色でイメージングした結果を示した写真イオノマイシンの添加により惹起されたＲＢＬ－２Ｈ３細胞の脱顆粒の蛍光イメージング（（ａ）：明視野像、（ｂ）：蛍光像）顆粒（各Ｒｏｉの部位）での蛍光強度の変化電気刺激を加える前の化合物３でラベルした海馬細胞の蛍光像電気刺激（２００ＡＰ、１０Ｈｚ）を加えることにより引き起こされるシナプス小胞のエキソサイトーシスと、それに続くエンドサイトーシスを可視化する拡大像シナプス小胞の相対蛍光強度の時間変化化合物３と１７－ＡＡＧまたはＤＭＳＯ添加後の蛍光値（Ｆ_０）と５時間培養後の蛍光値（Ｆ_５）の差（Ｆ_５－Ｆ_０）のグラフ

　本発明においては、一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩が酸性環境においてはじめて強蛍光性となる酸性環境検出蛍光プローブとしての機能を有する。

　式（Ｉ）において、Ｒ_１、Ｒ_２は、それぞれ独立に、水素または置換されていてもよいアルキル基を示すが、Ｒ_１、Ｒ_２の少なくとも一つは置換されていてもよいアルキル基である。アルキル基としては、炭素数１～１２個、好ましくは炭素数１～６個、更に好ましくは炭素数１～４個の直鎖、分岐鎖、環状、またはそれらの組み合わせからなるアルキル基を意味する。好ましいアルキル基の具体例としては、炭素数１～６個の低級アルキル基、例えば、メチル基、エチル基、ｎ－プロピル基、イソプロピル基、シクロプロピル基、ｎ－ブチル基、ｓｅｃ－ブチル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ－ブチル基、シクロプロピルメチル基、ｎ－ペンチル基、ｎ－ヘキシル基などが挙げられる。

　Ｒ_１、Ｒ_２のアルキル基は置換されていてもよく、置換基としては、蛍光特性を示さない置換基であれば特に限定されることはなく、例えば、ハロゲン原子、水酸基、アルコキシル基、アミノ基、カルボキシル基、スルホ基、アルキルスルホネート基などが挙げられる。本発明においては、置換基を有するアルキル基として、３，３，３－トリフルオロプロピル基、３，３－ジフルオロプロピル基、３－フルオロプロピル基が特に好ましい。

　式（Ｉ）において、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７及びＲ_８は、それぞれ独立に水素、ハロゲン、又は置換されていてもよいアルキル基を示す。ここで、アルキル基の種類、その置換基としては、上記Ｒ_１、Ｒ_２について記載したものと同様である。

　式（Ｉ）において、Ｘは、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基、又はラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基を示す。また、式（Ｉ）において、ｍは０～５の整数を示し、ｍが２以上である場合は、Ｘは同一であっても異なっていてもよい。好ましくは、ｍは１～２である。

　式（Ｉ）において、Ｙは、ハロゲン、置換されていてもよいアルキル基、置換されていてもよいアルコキシル基、又はシアノ基を示す。また、ｎは０～５の整数を示し、ｎが２以上である場合は、Ｙは同一であっても異なっていてもよい。ここで、ｍとｎの和は５以下の整数である。

　式（Ｉ）で表される本発明の化合物の態様として、（１）ｍ＝０、ｎ＝０、すなわち、式（Ｉ）のフェニル基が置換基を有さない場合、（２）ｍ＝０、ｎが１以上の場合、即ち、式（Ｉ）のフェニル基がハロゲン、置換されていてもよいアルキル基、置換されていてもよいアルコキシル基、又はシアノ基を有する場合が挙げられる。かかる態様に含まれる化合物は、ローダミンを母核とし、分子内にＮ－アルキルピペラジニル基が導入されたものであり、細胞内酸性環境においてはじめて強蛍光性となることから、蛍光プローブとして好適に使用することができる。

　また、本発明の式（Ｉ）で表される化合物の好ましい態様として、（３）ｍが１以上であり、Ｘがラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基である場合がある。この場合は、ｎは０であっても１以上であってもよく、ｍは１～２がより好ましい。後述するように、式（Ｉ）の化合物において分子内にラベル部位または標的集積部位を導入することにより、酸性細胞小器官内のｐＨダイナミックスの測定などが可能となることから、Ｘとして、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基を少なくとも１つ有すると、観察する細胞現象に合わせた蛍光プローブの設計が可能となる点で好ましい。

　式（Ｉ）のＸとして、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基とは、ラベル部位又は標的集積部位と反応することが可能な官能基を意味し、その例は、カルボキシル基、カルボキシル基を有するアルキル基、エステル基、アルキルエステル基、アミノ基、アミド基、アルキルアミノ基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、アルキニル基などが挙げられ、特にカルボキシル基、カルボキシル基を有するアルキル基が好ましい。

　また、本発明の式（Ｉ）で表される化合物のもう一つの好ましい態様として、（４）ｍが１以上であり、Ｘがラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基である場合が挙げられる。ここで、ラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基とは、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基を介してラベル部位又は標的集積部位が導入された置換基全体を意味する。ラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基は、典型的には、－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）（Ｘ’はラベル部位又は標的集積部位を導入する基を示し、Ｔは存在する場合は架橋基を示し、Ｓはラベル部位又は標的集積部位を示す。）で表すことができる。ここで、好ましくは、ｍは１～２である。この態様に含まれる化合物又はその塩は、酸性環境においてはじめて強蛍光性となるとともに、特定のタンパク質などをラベルすることができ、また、酸性小器官細胞内に局在させることができることから、細胞内酸性小胞が関わる種々の現象をリアルタイムに可視化することを可能とする。なお、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基の一部にラベル部位又は標的集積部位が導入された化合物、即ち、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基と、ラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基の両方を有する化合物も、本発明の上記（４）の態様に含まれる。

　前記－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）の式において、Ｘ’はラベル部位又は標的集積部位を導入する基を示し、その例として、カルボニル基、アルキルカルボニル基、エステル基、アルキルエステル基、アミノ基、アルキルアミノ基、アミド基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、アルキニル基などが挙げられ、特にカルボニル基、アルキルカルボニル基が好ましい。

　また、前記－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）の式において、Ｔは存在する場合は架橋基を示し、Ｘ’とＳを連結させるスペーサーとして働くものであればいずれの架橋基であってもよい。例えば、置換又は無置換の炭化水素基（アルカン、アルケン、アルキン、シクロアルカン、芳香族炭化水素など）、エチレングリコール基、ジエチレングリコール基、トリエチレングリコール基など、及び複素環基（例えば、ピペリジニル基など）などが挙げられるが、これらに限定されない。また、上記架橋基は、その片方または両方の端部に、Ｘ’、Ｓと結合することができる官能基を有してもよく、このような官能基として、例えば、アミノ基、カルボニル基、カルボキシル基、アミド基などが挙げられる。

　また、前記－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）の式において、Ｓはラベル部位又は標的集積部位を示し、その例として、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、Ｈａｌｏタグリガンド（例えば、２－（２－（（６－クロロヘキシル）オキシ）エトキシ）エタンアミノ基）、弱塩基性アミン、マレイミド、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、アルキニル基、ベンジルグアニン誘導体又はベンジルシトシン誘導体などが挙げられる。また、Ｓのラベル部位又は標的集積部位には、片末端又は両末端に修飾基を有してもよいポリエチレングリコール基も含まれ、修飾基としてはアミノ基、カルボニル基、カルボキシル基などが挙げられる。修飾基を有するポリエチレングリコール基の非限定的例として、３－（２－（２－（２－アミノエトキシ）エトキシ）エトキシ）プロパン酸が挙げられる。

　本発明の一つの好適な実施態様として、以下の式（ＩＩ）で表される化合物又はその塩がある。

（Ｒ_１～Ｒ_８は、式（Ｉ）における意味と同じであり、Ｘ’はラベル部位又は標的集積部位を導入する基を示し、Ｔは存在する場合は架橋基を示し、Ｓはラベル部位又は標的集積部位を示し、Ｙは、式（Ｉ）における意味と同じであり、ｍは１～５の整数を示し、ｍが２以上である場合は、－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）は同一であっても異なっていてもよく、ｎは０～５の整数を示し、ｎが２以上である場合は、Ｙは同一であっても異なっていてもよく、ｍとｎの和は５以下の整数である。）
　式（ＩＩ）において、好ましくは、ｍは１～２である。

　式（Ｉ）で表される化合物の（４）の態様、あるいは式（ＩＩ）で表される化合物は、特定のタンパク質などをラベルすることができ、また、酸性小器官細胞内に局在させることができることから、細胞内酸性小胞が関わる種々の現象をリアルタイムに可視化することを可能となる。その非限定的例としては、ラベル部位としてＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステルを分子内に導入した場合には、これを糖ポリマーであるデキストランにラベルすることにより、本発明の蛍光プローブを細胞内酸性小胞に局在させることが可能になる。また、標的集積部位として弱塩基性アミンを分子内に導入した場合は、本発明の蛍光プローブを酸性小胞に集積させることが可能になる。また、ラベル部位としてＨａｌｏタグリガンドを導入すると、Ｈａｌｏタグへの特異的なラベルが可能となる。具体的には、シナプス小胞マーカーであるＶＡＭＰ２にＨａｌｏタグを融合させたタンパク質（ＶＡＭＰ２－Ｈａｌｏタグ）を神経細胞に発現させ、そこへＨａｌｏタグリガンドを導入した本発明の蛍光プローブを添加することにより、蛍光プローブのシナプス小胞への特異的なラベリングが可能となる。

　式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物は、酸付加塩又は塩基付加塩として存在することができる。酸付加塩としては、例えば、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩などの鉱酸塩、又はメタンスルホン酸塩、ｐ－トルエンスルホン酸塩、シュウ酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩などの有機酸塩などを挙げることができ、塩基付加塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩などの金属塩、アンモニウム塩、又はトリエチルアミン塩などの有機アミン塩などを挙げることができる。これらのほか、グリシンなどのアミノ酸との塩を形成する場合もある。本発明の化合物又はその塩は、水和物又は溶媒和物として存在する場合もあるが、これらの物質も本発明の範囲内である。

　本発明の一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される化合物は、置換基の種類により、１個又は２個以上の不斉炭素を有する場合があるが、１個又は２個以上の不斉炭素に基づく光学活性体や２個以上の不斉炭素に基づくジアステレオ異性体などの立体異性体のほか、立体異性体の任意の混合物、ラセミ体などは、いずれも本発明の範囲に包含される。

　本発明の化合物の代表的化合物の製造方法を本明細書の実施例に具体的に示した。従って、当業者は、これらの説明をもとにして、反応原料、反応条件、及び反応試薬などを適宜選択して、必要に応じてこれらの方法に修飾や改変を加えることにより、一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物を製造することができる。

　本発明の一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物は、酸性環境を検出する蛍光プローブとして有用である。一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物又はその塩は、中性ないし塩基性領域において実質的に無蛍光であるか、弱い蛍光のみを有するが、酸性領域において強い蛍光を発する特徴を有する。従って、一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物又はその塩は、生細胞や生組織中の酸性領域を生理条件下で測定するための酸性環境検出蛍光プローブとして極めて有用である。また、一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される本発明の化合物又はその塩は、がん治療抗体のがん細胞内への取り込みの可視化や、がん関連受容体のダウンレギュレーションを簡便に評価することが可能となり極めて有用である。

　本発明の蛍光プローブの使用方法は特に限定されず、従来公知の蛍光プローブと同様に用いることが可能である。通常は、生理食塩水や緩衝液などの水性媒体、又はエタノール、アセトン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシド、ジメチルホルムアミドなどの水混合性の有機溶媒と水性媒体との混合物などに上記一般式（Ｉ）及び（ＩＩ）で表される化合物又はそれらの塩を溶解し、細胞や組織を含む適切な緩衝液中にこの溶液を添加して、蛍光スペクトルを測定すればよい。本発明の蛍光プローブを適切な添加物と組み合わせて組成物の形態で用いてもよい。例えば、緩衝剤、溶解補助剤、ｐＨ調節剤などの添加物と組み合わせることができる。

　以下、本発明を実施例により説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。

［原料及び測定方法］
（１）原料
　一般的化学品は、アルドリッチ・ケミカル社、東京化学産業、または国産化学株式会社から入手又は購入可能な最上級グレードのもの、及び入手可能な最高級グレードのものを、精製せずに使用した。
（２）測定機器
　ＮＭＲスペクトルは、日本電子株式会社のＪＮＭ－ＬＡ３００を用いて、^１ＨＮＭＲについては３００ＭＨｚで、^１３ＣＮＭＲについては７５ＭＨｚで測定した。マススペクトルは、日本電子株式会社のＪＭＳ－Ｔ１００ＬＣ　ＡｃｃｕＴｏＦを用いて測定した。紫外可視スペクトルはＪＡＳＣＯのＶ－５５０を用いて測定した。蛍光スペクトルはＪＡＳＣＯのＦＰ－６５００を用いて測定した。
（３）ＨＰＬＣ
　Ｉｎｅｒｔｓｉｌ　ＯＤＳ－３（１０．０ｍｍ×２５０ｍｍ）カラム（ＧＬサイエンス社）を備えた、ポンプ（ＰＵ－２０８０、ＪＡＳＣＯ）及び検出器（ＭＤ－２０１５、ＪＡＳＣＯ）からなるＨＰＬＣシステムを用いてＨＰＬＣの測定を行った。
（４）光学特性及び蛍光の量子収率
　吸収または蛍光スペクトル測定のため、色素化合物をジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ、蛍光分析グレード、同仁化学研究所）に溶解して１ｍＭの標準溶液を得た。ＵＶ－１６５０ＰＣ　ＵＶ／Ｖ分光計（島津製作所）及びＦＰ－６６００蛍光分光計（ＪＡＳＣＯ）を用いて、共溶媒として０．０３％（ｖ／ｖ）のＤＭＳＯを含む２００ｍＭのリン酸ナトリウム緩衝液中において色素化合物の光学特性を測定した。蛍光量子収率（Φ_ｆｌ）を決定するため、エタノール中でのローダミンＢの値（Φ_ｆｌ＝０．６５）を標準として用いた。以下の式により値を計算した。
Φ_ｘ／Φ_ｓｔ　＝　［Ａ_ｓｔ／Ａ_ｘ］［ｎ_ｘ ^２／ｎ_ｓｔ ^２］［Ｄ_ｘ／Ｄ_ｓｔ］
ｓｔ：標準、ｘ：試料
Ａ：励起波長での吸収
ｎ：屈折率
Ｄ：エネルギースケールでの蛍光スペクトル下の面積

１．一般式（Ｉ）で表される蛍光プローブの合成及び光学特性の評価
　以下の実施例中の化合物番号は、下記のスキーム中の化合物番号に対応している。

［実施例１］
１－（９－（２－カルボキシフェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム　クロライド（化合物Ａ）の合成
　以下のスキーム１の手順に従って、式（Ｉ）で表される化合物の一つであるラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基を有する化合物Ａを合成した。

スキーム１

３’，６’－ジクロロフルオラン（２２８ｍｇ，０．５７５ｍｍｏｌ)と塩化亜鉛（７８４ｍｇ，５．７５ｍｍｏｌ）をフラスコに加え、アルゴン置換を行った。そこに、ｏ－ジクロロベンゼン（１ｍＬ）およびＮ－メチルピペラジン（１．２８ｍＬ，１１．５ｍｍｏｌ）を加え、アルゴン雰囲気下１８０℃で１時間撹拌した。その後、室温まで冷却し、ＤＣＭ（３０ｍＬ）を加えた後、２Ｍ　ＫＯＨ水溶液（３０ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ_２ＳＯ_４で乾燥し、溶媒を蒸発させた。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ_２－ＮＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２：ＭｅＯＨ＝９９：１）で粗精製し、その後、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝８０：２０から６０：４０、３０分間）で精製し、紫色の固体を４３．６ｍｇ（１４％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３）d　２．３５（ｓ，６Ｈ），２．５４－２．５６（ｍ，８Ｈ），３．２５－３．２７（ｍ，８Ｈ），６．５８（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２，８．８Ｈｚ），６．６３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．８Ｈｚ），６．６９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２Ｈｚ），７．１４－７．１７（ｍ，１Ｈ），７．５９－７．６４（ｍ，２Ｈ），７．９９－８．０１（ｍ，１Ｈ）
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ－Ｃｌ］^＋に対する計算値４９７．２５５２６；測定値４９７．２５５２６（D－０．０１ｍｍｕ）

［実施例２］
１－（９－（４－カルボキシフェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム（化合物１）の合成
　以下のスキーム２の手順に従って、式（Ｉ）で表される化合物の一つである化合物１を合成した。

スキーム２

反応条件：（ａ）乾燥ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）中Ｎ－メチルピペリジン、（ｂ）乾燥テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）中ｔｅｒｔ－ブチル－４－ブロモベンゾエート、ｓｅｃ－ブチルリチウム、（ｃ）ジクロロメタン（ＤＣＭ）中トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）

（１）３，６－ビス（４－メチルピペラジン－１－イル）－９Ｈ－キサンテン－９－オン（化合物５）の合成
　化合物４（９－オキソ－９Ｈ－キサンテン－３，６－ジイル　ビス（トリフルオロメタンスホネート））（４９０ｍｇ、０．１０ｍｍｏｌ）の乾燥ＤＭＳＯ（５ｍＬ）の溶液を攪拌しながら、それに、Ｎ－メチルピペラジン（１．０ｇ、１０ｍｍｏｌ）を室温で加えた。反応混合物を９０℃で１５時間攪拌して、脱イオン水（１０ｍＬ）で沈殿させた。沈殿物を採取し、飽和ＮａＨＣＯ_３水溶液、水で洗浄して、真空で乾燥した。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ_２－ＮＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２：ＭｅＯＨ＝１０：１）で精製し、黄色固体を３０６ｍｇ（収率：７８％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３，ＴＭＳ）：δ／ｐｐｍ，８．１４（ｄ，Ｊ_Ｈ＝９．６Ｈｚ，２Ｈ），６．８９（ｄ－ｄ，Ｊ_Ｈ＝２．１Ｈｚ，Ｊ_Ｈ＝９．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．６９（ｄ，Ｊ_Ｈ＝２．１Ｈｚ，２Ｈ），３．４２（ｍ，８Ｈ），２．５８（ｍ，８Ｈ），２．３７（ｓ，６Ｈ）

（２）化合物１の合成
　アルゴンで洗浄したフレームドライしたフラスコに、ｔｅｒｔ－ブチル－４－ブロモベンゾエート（１０８ｍｇ、０．３９ｍｍｏｌ）と乾燥ＴＨＦ（５ｍＬ）を加えた。その溶液を－７８℃にまで冷却し、１Ｍのｓｅｃ－ブチルリチウム（０．５ｍｍｏｌ）を加え、混合物を５分間攪拌した。同じ温度で、乾燥ＴＨＦ（５ｍＬ）に溶かした化合物５（５０ｍｇ、０．１３ｍｍｏｌ）をゆっくり（約２０秒）添加し、それからこの混合物を室温まで加温し、１時間攪拌した。２ＮのＨＣｌ水溶液（３ｍＬ）を添加して反応をクエンチし、室温で攪拌を５分間続けた。飽和ＮａＨＣＯ_３水溶液（３０ｍＬ）を加えて、全体をＤＣＭ（５０ｍＬ、３回）により抽出した。有機溶媒をブライン（５０ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ_２ＳＯ_４で乾燥し、溶媒を蒸発させて、化合物６（１－（９－（４－ｔｅｒｔ－ブトキシカルボニル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム）の粗生成物（１５０ｍｇ）を紫色固体で得た。
　化合物６の上記粗生成物のＤＣＭ（３ｍＬ）の溶液を攪拌しながら、それに、ＴＦＡ（３ｍＬ）を室温で加えた。この反応混合物を室温で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去して、残渣を水及びアセトニトリル中に溶解し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（８０％ＣＨ_３ＣＮと１００ｍＭのトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ７．４））：Ｂ（１００ｍＭトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ７．４））＝２０：８０から４０：６０、３０分間）で精製して、黒紫色の固体を４０ｍｇ（６２％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，８．２０（ｍ，２Ｈ），７．４８（ｍ，４Ｈ），７．２８（ｍ，２Ｈ），７．２０（ｍ，２Ｈ），３．８０（ｍ，８Ｈ），２．６２（ｍ，８Ｈ），２．３７（ｓ，６Ｈ）
^１３ＣＮＭＲ（１００ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，１７３．７，１６０．０，１５８．６，１５４，１，１５３．０，１３３．３，１３０．７，１３０．４，１２７．４，１１６．３，１１５．５，９８．７，５５．５，４７．９，４５．８
ＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ：Ｃ_３０Ｈ_３３Ｎ_４Ｏ_３に対する計算値［Ｍ］^＋＝４９７．２５５３；測定値４９７．２５２５

［実施例３］
　前記した測定方法に従って、実施例１で得られた化合物Ａについて、溶液のｐＨを２．０から１０．０に変化させた場合における吸収スペクトルと蛍光発光スペクトルを得た。吸収スペクトルを図１－１に、蛍光発光スペクトルを図１－２に、また、ｐＨによる蛍光強度の変化を示すｐＨプロファイルを図１－３に示す。また、ｐＨが１０．０と４．０の場合における極大吸収波長、極大発光波長、蛍光量子収率、ｐＫａを表１にまとめた。

　このように、化合物Ａは脱プロトン型（ｐＨ１０．０）からプロトン付加型（ｐＨ４．０）へ変化することで、極大吸収波長が２０ｎｍ短波長へシフトし、プロトン付加型（ｐＨ４．０）において０．９を超える蛍光量子収率を有していた。そして、図１－３に示されているように、化合物Ａは、ｐＨが４．５から６．０にかけて蛍光変化を示していることから、細胞内酸性環境を検出する蛍光プローブとして有用であることが分かる。

　また、実施例２で得られた化合物１（５００ｎＭ）の１００ｍＭリン酸緩衝溶液を用いて、ｐＨを４．３９から９．２４に変化させて蛍光スペクトルの測定を行った。得られた蛍光発光スペクトルとそのｐＨプロファイルを図２に示す。同図から、化合物１も、塩基性・中性環境から酸性環境へと変化させることにより、蛍光増大特性を示している。従って、化合物１も、細胞内酸性環境を検出する蛍光プローブとして有用であることが分かる。

２．タンパク質などの高分子や標的集積部位を標識した本発明の蛍光プローブ
［実施例４］
１－（９－（２－（４－（（（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）オキシ）カルボニル）ピペリジン－１－カルボニル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム　クロライド（化合物Ｂ）の合成
　タンパク質などへのラベル化機能を付するため、化合物Ａにラベル部位としてＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステルを導入した化合物Ｂを、以下のスキーム３の手順に従って合成した。

スキーム３

化合物Ａ（２３．１ｍｇ、０．０４３ｍｍｏｌ）とエチル　イソニペコテート（２６．９ｍｇ、０．１７ｍｍｏｌ）をＤＭＦ（５ｍＬ）に溶解させた。そこに１ＭのＯ－（ベンゾトリアゾル－１－イル）－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルウロニウムヘキサフルオロリン酸塩（ＨＡＴＵ）のＤＭＦ溶液を１７１μＬ加え、アルゴン雰囲気下で８０℃に加熱し、オーバーナイトで撹拌した。溶媒を留去した後、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝８０：２０から６０：４０、３０分間）で精製し、紫色の固体１８．８ｍｇを得た。
このようにして得た１８．８ｍｇの紫色の固体をメタノール（１０ｍＬ）に溶解させ、室温で撹拌した。そこに、２４０μＬの１Ｍ　ＮａＯＨ水溶液を加え、３０分室温で撹拌した後、１２０μＬの１Ｍ　ＨＣｌ水溶液を加えた。溶媒を留去し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝８０：２０から６０：４０、３０分間）で精製し、紫色の固体５．６ｍｇ（２ステップ：２０％）を得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３）δ１．６１－１．６４（ｍ，４Ｈ），２．３４（ｓ，６Ｈ），２．４１（ｍ，１Ｈ），２．５４－２．５６（ｍ，８Ｈ），３．２５－３．３５（ｍ，１２Ｈ），６．５８（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２，８．８Ｈｚ），６．６３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．８Ｈｚ），６．６９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２Ｈｚ），７．１２－７．１５（ｍ，１Ｈ），７．５６－７．６１（ｍ，２Ｈ），７．８９－７．９１（ｍ，１Ｈ）
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ－Ｃｌ］^＋に対する計算値６０８．３２３６８；測定値６０８．３２３３４（D－０．３４ｍｍｕ）
さらに、このようにして得た５．６ｍｇの紫色の固体をＤＭＦ（３ｍＬ）に溶解させ、１Ｍ　ＮＨＳ　ＤＭＦ溶液と１Ｍ　ＷＳＣＤ　ＤＭＦ溶液をそれぞれ２６μＬ加え、オーバーナイトで室温にて撹拌した。溶媒を留去した後、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝８０：２０から６０：４０、３０分間）で精製し、紫色の固体４．４ｍｇ（６８％）を得た。
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ－Ｃｌ］^＋に対する計算値７０５．３４００６；実測値７０４．３４３９１（D３．８５ｍｍｕ）

［実施例５］
１－（９－（４－（（２－（ジメチルアミノ）エチル）カルバモイル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム（化合物２）の合成
　酸性小胞への集積化を目的として、化合物１に標的集積部位として弱塩基性アミンを導入した化合物２を、以下のスキーム４の手順に従って合成した。
スキーム４

反応条件：（ｄ）乾燥Ｎ，Ｎ’－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）中（ベンゾトリアゾール－１－イルオキシ）－トリス（ジメチルアミノ）ホスホニウムヘキサフルオロホスフェート（ＢＯＰ）、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）、Ｎ，Ｎ’－ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）、（ｅ）乾燥ＤＭＦ中Ｎ，Ｎ’－ジメチルエチレンジアミン、ＤＩＰＥＡ

化合物２の合成
　化合物１（１．５ｍｇ，３μｍｏｌ）の乾燥ＤＭＦ（１ｍＬ）中の溶液を攪拌しながら、それに、ＢＯＰ（４ｍｇ，９μｍｏｌ）、ＮＨＳ（３ｍｇ，１８μｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（３μＬ，１８μｍｏｌ）を室温で加えた。反応混合物をアルゴン雰囲気下４０℃で４時間攪拌し、反応をＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８，Ａ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）、Ｂ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）＝５：９５から６５：３５、３０分間）及びＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ（化合物７について：Ｃ_３４Ｈ_３６Ｎ_５Ｏ_５に対する計算値［Ｍ］^＋＝５９４．２７１６；測定値５９４．２６８１）により確認した。
　溶媒を蒸発させ、残渣を乾燥ＤＭＦ（１ｍＬ）に再溶解した。化合物７を含むこの残渣の溶液を攪拌しながら、それに、ＤＩＰＥＡ（３μＬ，１８μｍｏｌ）及びＮ，Ｎ’－ジメチルエチレンジアミン（３．０ｍｇ，３０μｍｏｌ）を室温で加えた。この反応混合物をアルゴン雰囲気下４５℃で１時間攪拌した。溶媒を真空下で除去して、残渣を脱イオン水とアセトニトリルに溶解し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（脱イオン水と０．１％ＴＦＡ）＝５：９５から６５：３５、３０分間）で精製し、黒紫色の固体を１．５ｍｇ（８８％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，８．１９（ｍ，２Ｈ），７．６５（ｄ，Ｊ_Ｈ＝８．１Ｈｚ，２Ｈ），７．５２（ｍ，２Ｈ），７．４０（ｍ，４Ｈ），４．１１（ｍ，８Ｈ），３．８４（ｍ，２Ｈ），３．３４（ｍ，１０Ｈ），３．０２（ｓ，６Ｈ），２．９６（ｓ，６Ｈ）
^１３ＣＮＭＲ（１００ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，１６９．８，１６３．２，１６０．３，１５８．６，１５４．１，１３６．４，１３３．４，１３１．１，１２９．２，１１７．０，１１６．３，９９．７，５８．６，５４．５，５３．９，４５．６，４３．７，３６．５
ＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ：Ｃ_３４Ｈ_４３Ｎ_６Ｏ_２に対する計算値［Ｍ］^＋＝５６７．３４４２；測定値５６７．３４４３

［実施例６］
２－メチル－１－（２－（３－（４－メチルピペラジン－１－イウム－１－イリデン）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－９－イル）フェニル）－１，４－ジオキソ－８，１１，１４－トリオキサ－２，５－ジアザヘプタデカン－１７－オエート（化合物Ｄ）の合成
　化合物Ａにラベル部位としてＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステルを導入した化合物Ｂを、以下のスキーム５の手順に従って合成した。
スキーム５

　化合物Ａ（３５．７ｍｇ、７１．７μｍｏｌ）とサルコシンｔｅｒｔ－ブチルエステル塩酸塩（２６．１ｍｇ、１４３μｍｏｌ）を乾燥ＤＭＦ（５ｍＬ）に溶解した。得られた溶液にＨＡＴＵ（５４．６ｍｇ、５４．７μｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（１２５μＬ、７１７μｍｏｌ）を加えた。得られた混合物をアルゴン雰囲気下において室温で１日攪拌した。真空下で溶媒を除去し、溶離液として１０％ＭｅＯＨ／ＤＣＭを用いて分取ＨＰＬＣで残渣を粗精製して化合物Ｃのｔｅｒｔ－ブチルエステルを得た（７８．７ｍｇ）。このようにして得た粗化合物のＤＣＭ溶液を攪拌しながらＴＦＡ（１ｍＬ）を加えて、反応混合物をオーバーナイトで室温にて攪拌した。重炭酸ナトリウムと水を添加し、得られた溶液を数分間攪拌した。水層をＤＣＭで二回洗浄し、濃縮した。残渣をＭｅＯＨに再溶解させ、濾過により脱塩し、濃縮した。粗生成物をＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝９９：１から１：９９、２０分間）で精製し、紫色の固体として化合物Ｃ１１．５ｍｇ（１４％）得た。（ＬＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ＋Ｈ］^＋に対する計算値５６８、実測値５６８）

　化合物Ｃ（１１．５ｍｇ、２０．２μｍｏｌ）及びＨＡＴＵ（１５．４ｍｇ、５４．７μｍｏｌ）を乾燥ＤＭＦ（２ｍＬ）に溶解した。得られた溶液にＤＩＰＥＡ（３５．２μＬ、２０２μｍｏｌ）及びｔｅｒｔ－ブチル１２アミノ－４，７，１０－トリオキサドデカノエート（理論値≧８０％）（１４．０ｍｇ、≧４０．３μｍｏｌ）を加え、得られた混合物をアルゴン雰囲気下においてオーバーナイトで室温にて攪拌した。真空下で溶媒を除去し、残渣をＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝９９：１から１：９９、２０分間）で精製し、赤色無定形固体として化合物Ｄのｔｅｒｔ－ブチルエステルを得た。（ＬＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ＋Ｈ］^＋に対する計算値８２７、実測値８２７）このようにして得た粗生成物のＤＣＭ溶液を攪拌しながらＴＦＡ（１ｍＬ）を添加し、反応混合物を室温で３時間攪拌した。真空下で溶媒を除去し、残渣をＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（水と０．１％ＴＦＡ）：Ｂ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％ＴＦＡ）＝９９：１から１：９９、２０分間）で精製し、赤色無定形固体物として化合物Ｄを得た（５．２ｍｇ、４工程で９．４％）。
^１ＨＮＭＲ（４００　ＭＨｚ，Ｄ_２Ｏ）δ７．６４－７．６９（ｍ，２Ｈ），７．５５－７．６０（ｍ，１Ｈ），７．４４－７．５０（ｍ，１Ｈ），７．１９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．６Ｈｚ），７．００（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝１．６，９．６Ｈｚ），６．８９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝１．６Ｈｚ），３．３５－３．６３（ｍ，２１Ｈ），３．２６（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．２Ｈｚ），３．００（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．２Ｈｚ），２．７０（ｓ，２Ｈ），２．４９（ｍ，８Ｈ），２．２５－２．２９（ｍ，２Ｈ），２．１６（ｓ，６Ｈ）．（ＬＲＭＳ（ＥＳＩ^＋）：［Ｍ＋Ｈ］^＋に対する計算値７７１、実測値７７１）

化合物Ｄの光学特性の評価
　化合物Ｄの蛍光強度のｐＨプロファイルを図３に示す。化合物Ｄは化合物Ａと同様にｐＨ感受性を示すことが確認され、ｐＫａは５．３及び６．６であった。

標識した蛍光プローブの光学特性の評価
［実施例７］
（１）化合物Ｂによるデキストランのラベリング
　化合物Ａにラベル部位としてＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステルを導入した実施例４で得た化合物Ｂを用いて、以下の方法により、デキストランのラベリングを行った。
　化合物Ｂ及びＡｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８のＮＨＳエステル（モレキュラー・プローブ社）の各々をＤＭＳＯに溶解し、１０ｍＭの標準溶液を得た。アミノデキストラン（分子量１００００、モレキュラー・プローブ社）を２００ｍＭのリン酸ナトリウム緩衝溶液（ｐＨ８．５）に溶解し、３．０ｍｇ／ｍＬ（３００ｎｍｏｌ／ｍＬ）の標準溶液を得た。５００μＬのデキストラン標準溶液に、化合物Ｂ及びＡｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８のＮＨＳエステルのそれぞれのＤＭＳＯ溶液を４当量ずつ加えた。得られた反応溶液をゆっくり混合し、暗所にて周囲温度で６０分間インキュベートした。その後、ＰＤ－１０カラム（ＧＥヘルスケア）と溶離液としてＰＢＳ（ｐＨ７．４、ＧＩＢＣＯ）を用いることにより、色素複合体１（以下、「Ｄｅｘ－化合物Ｂ＆Ａ４８８」ともいう。）を非ラベル色素から分離した。

（２）色素複合体１（Ｄｅｘ－化合物Ｂ＆Ａ４８８）の光学特性の評価
　上記で得た色素複合体１についてｐＨの変化に伴う蛍光色を観察したところ、ｐＨ変化により蛍光色が変化することが認められた（図示せず）。また、試料溶液のｐＨを９．０から２．０に変化させた場合の吸収スペクトル及び蛍光発光スペクトルと蛍光励起スペクトルの測定結果を図４－１～４－５に示す。また、蛍光強度（ＦＩ）のｐＨプロファイルを図５に示す。ｐＨプロファイルにおけるフィットした曲線は以下に示す式より得た。

図５から、色素複合体１は化合物Ａと同様にｐＨ感受性を示すことが確認された。また、ｐＫａは５．３及び６．５であった。本発明の化合物はそのｐＨ感受性を損なうことなく、デキストランなどの高分子に標識することが出来ると考えられる。
　また、色素複合体１に含まれる化合物Ａによる蛍光強度はｐＨ依存性であるのに対して、Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８の蛍光強度はｐＨに依存しないことから、両者の蛍光強度の比（具体的には、５４０ｎｍ励起での蛍光強度／４８８ｎｍ励起での蛍光強度）を取ることにより、色素複合体１が含まれる環境におけるｐＨの算出が可能となる。
　次に、色素複合体１のｐＨ変化に対する可逆性を調べるため、ｐＨを７．１と３．２で３０秒ごとにサイクル的に変化させた場合について、蛍光強度比（５４０ｎｍ励起での蛍光強度／４８８ｎｍ励起での蛍光強度）を算出した。その結果を図６に示す。同図から、色素複合体１は、ｐＨ変化に対して可逆的に素早い応答性を示し、蛍光強度比としてｐＨ変化を素早く捉えることが可能であることが分かる。

標識した蛍光プローブを用いた細胞内酸性小胞の現象の可視化
［実施例８］
（Ａ）酸性細胞小器官内のｐＨダイナミックスの測定
　本発明の蛍光プローブをデキストランにラベルした色素複合体１は、細胞内酸性小胞に局在させることが可能となる。そこで、色素複合体１を用いて、以下の手順に従って、ＨｅＬａ細胞における酸性細胞小器官のイメージングを行った。

（１）細胞培養
　１０％のウシ胎仔血清、１００Ｕ／ｍＬのペニシリン及び１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ中でＨｅＬａ細胞を培養した。全ての細胞培養試薬はＧＩＢＣＯから購入した。ＣＯ_２を５％含有する空気の雰囲気中で細胞株を３７℃に維持した。

（２）ＨｅＬａ細胞に取り込まれた色素複合体１の共焦点像の観察
　ＨｅＬａ細胞（４×１０^４）を８室プレート（ＮＵＮＣ）上に置いて、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭを用いて、ＣＯ_２を５％含有する空気の雰囲気下において３７℃で一晩培養した。この媒体を、色素複合体１を０．４ｍｇ／ｍＬ含有する媒体で置き換えた。細胞を４時間培養した後、色素複合体１を含有する媒体を除去し、ＦＢＳを１０％含有するＤＭＥＭを添加した。１６時間の培養に続いて、細胞をＰＢＳ（ｐＨ７．４）で２回洗浄して、色素複合体１でラベルしたＨｅＬａ細胞（以下「色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞」ともいう。）を得て、当該細胞を共焦点顕微鏡で観察した。ＴＣＳ　ＳＰ５及び６０倍の対物レンズを有するＬｅｉｃａ　Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　Ｓｕｉｔｅ　Ａｄｖａｎｃｅｄ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｅ（ＬＡＳ－ＡＦ）を用いて、細胞のイメージングを行い、ＤＩＣ（微分干渉顕微鏡）像と蛍光像を得た。光源は白色レーザーを用いた。励起波長と発光波長は図中に記載した。得られた結果を図７に示す。
　図７の上段は、上記で得られた色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞についての観察結果であり、下段は、当該細胞に細胞内酸性環境を中和することができるＮＨ_４Ｃｌを１０ｍＭ添加した後での観察結果である。左列（「ＤＩＣ」と標記）の像は色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞の共焦点像、左から２番目の列（「ＣＨ１」と標記）の像は蛍光波長が５００～５３０ｎｍの蛍光像であり、Ａｌｅｘａ４８８に由来する蛍光像が示されており、右から２番目の列（「ＣＨ２」と標記）の像は励起波長が５５０～６００ｎｍの蛍光像であり、化合物Ｂに由来する蛍光像が示されており、右列（「Ｍｅｒｇｅ」と標記）の像はＣＨ１とＣＨ２を合わせた蛍光像を示す。図７から、ＮＨ_４Ｃｌの添加により化合物Ｂに由来する蛍光像が著しく減少したことが認められる。
　次に、Ｈ^＋、Ｋ^＋イオノフォアとして働くことが知られる抗生物質ナイジェリシン（Ｎｉｇｅｒｉｃｉｎ）と高濃度Ｋ^＋バッファーを用いて、蛍光強度比とｐＨのｉｎ　ｓｉｔｕキャリブレーションを以下の手順で行った。

（３）ｉｎ　ｓｉｔｕでのｐＨキャリブレーション及び細胞小胞内ｐＨの計算
　１０μＭのナイジェリシンの存在下で、高Ｋ^＋ｐＨ緩衝液（１３０ｍＭのＫＣｌ，２００ｍＭのリン酸ナトリウム含有）により培養した色素複合体１ラベルＨｅＬａ細胞のレシオメトリック・イメージングにより、ｉｎ　ｓｉｔｕでのｐＨキャリブレーション曲線を作成した（図８）。曲線上の各ｐＨ点について、少なくとも３つの細胞から１０個のラベルした小胞の像を定量的レシオメトリック分析のために得た。得られたキャリブレーション曲線に基づいて、１０ｍＭＮＨ_４Ｃｌ処理前後での細胞のレシオメトリック像により細胞小胞（リソソーム）内のｐＨを計算した。その結果を図９に示す。図９は、ＮＨ_４Ｃｌ処理前後での個々のリソソーム（ｎ＝１０）のｐＨ計算値を示すヒストグラムであり、同図から、ＮＨ_４Ｃｌ処理前後でリソソームのｐＨの分布が大きく変わっていることが分かる。
　また、色素複合体１を用いたリソソームのリアルタイムイメージングにおいて、長時間観察を行っても目立った光退色は見られず、色素複合体１は高い光褪色耐性を有していた。
　このように、本発明の蛍光プローブを用いることで、酸性細胞小器官内でのｐＨを測定することが可能であることが示された。

［実施例９］
（Ｂ）がん治療抗体のがん細胞内への取り込みの可視化
　がんで過剰発現が知られる受容体ＥＧＦＲに対する抗体Ｅｒｂｉｔｕｘ（セツキシマブ）は、ＥＧＦＲに特異的に結合した後、ＥＧＦＲと共に細胞内酸性小胞に輸送され、ＥＧＦＲのダウンレギュレーションを惹起し治療効果を示す。Ｅｒｂｉｔｕｘに化合物７を標識することで、ＥｒｂｉｔｕｘがＥＧＦＲに結合して細胞内酸性小胞へと輸送されると、化合物７の蛍光が増大すると考えられる。このような蛍光強度変化を捉えることで、薬効に関わるがん治療抗体のがん細胞内への取り込みが時空間的にどのように起こっているのかイメージングが可能になると考え、以下の実験を行った。

（１）化合物７によるＥｒｂｉｔｕｘのラベリング
　５．０ｍｇ／ｍＬのＥｒｂｉｔｕｘ注射液（メルクセローノ株式会社）を、ＰＢＳ（－）ｐＨ７．４（ＧＩＢＣＯ）を溶出液としてＰＤ－１０カラム（ＧＥヘルスケア）を用いて精製し、含まれているグリシン等の添加物を除去した。２００ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ１０）（ＮａＰｉ緩衝液）を用いて、抽出液をｐＨ８．５の２．５ｍｇ／ｍＬＥｒｂｉｔｕｘ／ＰＢＳ（－）／ＮａＰｉ溶液に調製した。２．５ｍｇ／ｍＬＥｒｂｉｔｕｘ／ＰＢＳ（－）／ＮａＰｉ溶液に４ｍＭの化合物７を最終濃度が６２μＭになるように加えた。室温で１時間静置し、ＰＤ－１０カラムを用いて溶出溶液をＰＢＳ（－）ｐＨ７．４とし、Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体（１０μＭ、Ｅｒｂｉｔｕｘ１分子に対して化合物７が平均３．８３個標識されている）を単離した。Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体は酸性になるにつれて蛍光が増大した（図１０）。また、ｐＫａは５．３及び６．５であった。本発明の化合物はそのｐＨ感受性を損なうことなく、抗体などの高分子に標識することが出来ると考えられる。

（２）Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体を用いた共焦点蛍光イメージング
　細胞内に取り込まれた後、エンドサイトーシスに伴うｐＨの酸性変化に対して蛍光強度上昇が望まれるＥｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体を用い、ＥＧＦＲ過剰発現細胞株であるＡ４３１に以下の条件で取り込み実験を行った。
　Ａ４３１をＣｈａｍｂｅｒ　Ｓｌｉｄｅ８ｗｅｌｌ（ｉｂｉｄｉ）で１０％ＦＢＳ（ＧＩＢＣＯ）と１％ペニシリン－ストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ）を培地として３７℃、５％ＣＯ_２条件下で培養した。Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体を最終濃度が５０ｎＭとなるように培地に加え、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で培養を続けた。Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体を加えて４時間培養したとき、細胞内に取り込まれたＥｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体が観察された（図１１）。また、酸性細胞小器官マーカーであるＬｙｓｏＴｒａｃｋｅｒ　Ｇｒｅｅｎ－ＤＮＤ２６（モレキュラープローブズ社）との共染色を行ったところ、Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体の蛍光はＬｙｓｏＴｒａｃｋｅｒ　Ｇｒｅｅｎ－ＤＮＤ２６の蛍光と共局在していることを確かめた（図１２）。これらのことから、Ｅｒｂｉｔｕｘ－化合物７複合体はＡ４３１における酸性細胞小器官内の低ｐＨ環境により発光し、がん治療抗体Ｅｒｂｉｔｕｘのがん細胞内への取り込みを可視化することができた。

［実施例１０］
（Ｃ）脱顆粒アレルギー応答の可視化
　化合物２はその構造に弱塩基性アミンを含むため酸性小胞へと集積し、小胞内の酸性環境により蛍光性となる。エキソサイトーシスされた小胞は、生理的ｐＨ７．４の細胞外環境とつながることで小胞内環境の中和および化合物２の細胞外への放出が起こるため、化合物２の蛍光が減弱すると考えられる。このような蛍光強度変化を捉えることで、エキソサイトーシスが時空間的にどのように起こっているのかイメージングが可能となると考え、以下の実験を行った。

　化合物２を用いて、マスト細胞のモデルとしたＲＢＬ－２Ｈ３細胞において脱顆粒のイメージングを行った。ＲＢＬ－２Ｈ３細胞を５００ｎＭの化合物２を含む培地で２時間インキュベーション（３７^ｏＣ）し、その後、培地で１回、ＨＢＳバッファーで２回洗浄を行った。そこに１μＭのイオノマイシンを添加することにより、脱顆粒を惹起し、蛍光イメージングを行った（図１３－１）。ここで、図１３－１の（ａ）は明視野像を、（ｂ）は蛍光像を示す。（ｂ）の（ｉｉ）では（ｉ）で視認できるＲｏｉ１、２の部位での小胞が消失し、同様に、（ｉｉｉ）では（ｉ）及び（ｉｉ）で視認できるＲｏｉ３部位での小胞が消失し、（ｉｖ）においては（ｉ）～（ｉｉｉ）で視認できるＲｏｉ４の部位での小胞が消失したことが示されている。この現象を蛍光強度の変化として捉えた結果を図１３－２に示す。図１３－２は各Ｒｏｉの部位での蛍光強度の変化を示しており、同図から、イオノマイシン添加後、酸性小胞で観察される蛍光がそれぞれあるタイミングで劇的に減少していることが分かる。このように、化合物２を用いて脱顆粒を蛍光強度変化として検出できたと考えられる。

３．特異的タンパク質ラベル部位を導入した本発明の蛍光プローブ
［実施例１１］
１－（９－（４－（（２５－クロロ－１２－オキソ－３，６，９，１６，１９－ペンタオキサ－１３－アザペンタコシル）カルバモイル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム（化合物３）の合成
　Ｈａｌｏタグ技術を利用したシナプス小胞に局在するＶＡＭＰ２（小胞結合膜タンパク質２）へのラベル化を目的として、化合物１にＨａｌｏタグリガンドを導入した化合物３を、以下のスキーム６の手順に従って合成した。

スキーム６

反応条件：（ａ）乾燥ＤＭＦ中ＢＯＰ、ＮＨＳ、ＤＩＰＥＡ；（ｂ）化合物８、乾燥ＤＭＦ中ＤＩＰＥＡ；（ｃ）ＤＣＭ中ＴＦＡ；（ｄ）乾燥ＤＭＦ中１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＷＳＣ）、ＮＨＳ；（ｅ）化合物１１、乾燥ＤＭＦ中ＤＩＰＥＡ

（１）１－（９－（４－（（１４，１４－ジメチル－１２－オキソ－３，６，９，１３－テトラオキサペンタデシル）カルバモイル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム（化合物９）の合成
　化合物１（３５ｍｇ、７０μｍｏｌ）の乾燥ＤＭＦ（５ｍＬ）溶液を攪拌しながら、それにＢＯＰ（１６０ｍｇ、０．３５ｍｍｏｌ）、ＮＨＳ（３５ｍｇ、０．３５ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（２４０μＬ、０．７０ｍｍｏｌ）を室温で加えた。アルゴン雰囲気下で反応混合物を４０℃で２時間攪拌し、化合物２の場合に示したように反応をＨＰＬＣとＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳで確認した。
　溶媒を蒸発させて、残渣を乾燥ＤＭＦ（２ｍＬ）中に再溶解した。化合物７を含有するこの残渣の溶液を攪拌し、これにＤＩＰＥＡ（２４０μＬ，０．７０ｍｍｏｌ）と化合物８（ｔｅｒｔ－ブチル１２－アミノ－４，７，１０－トリオキサドデカノエート、アルドリッチ社、１１０ｍｇ，０．３５ｍｍｏｌ）を室温で添加した。反応混合物を、アルゴン雰囲気下、４０℃で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残渣を脱イオン水とアセトニトリル中に再溶解し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（８０％のＣＨ_３ＣＮと１００ｍＭのトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ７．４））：Ｂ（１００ｍＭのトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ　７．４））＝３０：７０～７０：３０で３０分間）で精製し、黒紫色の固体を３７ｍｇ（７０％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，８．１５（ｍ，２Ｈ），７．７０（ｍ，２Ｈ），７．４３（ｍ，２Ｈ），６．９３（ｍ，２Ｈ），６．６９（ｍ，２Ｈ），３．８１（ｍ，２Ｈ），３．６９－３．５０（ｍ，２０Ｈ），２．６２（ｍ，８Ｈ），２．４４（ｍ，２Ｈ），２．３５（ｍ，６Ｈ），１．４５（ｓ，９Ｈ）
ＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ（ＮＢＡ）：Ｃ_４３Ｈ_５８Ｎ_５Ｏ_７についての計算値［Ｍ］^＋＝７５６．４３３６；測定値７５６．４３１１

（２）１－（９－（４－（（２－（２－（２－（３－（（２，５－ジオキソピロリジン－１－イル）オキシ）－３－オキソプロポキシ）エトキシ）エトキシ）エチル）カルバモイル）フェニル）－６－（４－メチルピペラジン－１－イル）－３Ｈ－キサンテン－３－イリデン）－４－メチルピペラジン－１－イウム（化合物１０）の合成
　化合物９（３７ｍｇ、４９μｍｏｌ）のＤＣＭ（３ｍＬ）中の溶液を攪拌し、それに、ＴＦＡ（３ｍＬ）を室温で添加した。反応混合物を室温で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残渣をトルエン（３ｍＬ）で懸濁し、溶媒を蒸発させて真空下で乾燥し、脱保護した化合物９（４０ｍｇ）を更に精製せずに暗紫色のオイルとして得た。
　脱保護した化合物９（４０ｍｇ）の乾燥ＤＭＦ（５ｍＬ）中の溶液を攪拌し、それに、ＷＳＣ（９４ｍｇ、０．４９ｍｍｏｌ）、ＮＨＳ（４９ｍｇ、０．４９ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（３４０μＬ、０．９８ｍｍｏｌ）を室温で添加した。反応混合物を、アルゴン雰囲気下、室温で５時間攪拌した。溶媒を真空下で除去して、残渣を脱イオン水とアセトニトリルに再溶解し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８，Ａ（ＣＨ_３ＣＮと０．１％のＴＦＡ）：Ｂ（脱イオン水と０．１％のＴＦＡ）＝１５：８５～３０：７０で３０分間）で精製して、暗紫色の固体を２５ｍｇ（６４％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，アセトン－ｄ_６）：δ／ｐｐｍ，８．２３（ｍ，２Ｈ），７．６５（ｍ，２Ｈ），７．５７－７．４４（ｍ，４Ｈ），７．２７（ｍ，２Ｈ），３．８１（ｍ，２Ｈ），３．６９－３．５６（ｍ，２０Ｈ），３．３４（ｍ，８Ｈ），２．９７（ｍ，２Ｈ），２．５９（ｓ，６Ｈ），２．０７（ｓ，４Ｈ）
ＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ：Ｃ_４３Ｈ_５３Ｎ_６Ｏ_９について計算値［Ｍ］^＋＝７９７．３８７４；測定値７９７．３８６５

（３）化合物３の合成
　化合物１０（２５ｍｇ、３１μｍｏｌ）の乾燥ＤＭＦ（２ｍＬ）中の溶液を攪拌し、それに、ＤＩＰＥＡ（５４μＬ、０．３１ｍｍｏｌ）及び化合物１１（２－（２－（（６－クロロヘキシル）オキシ）エトキシ）エタンアミン　２，２，２－トリフルオロアセテート）（１０５ｍｇ、０．３１ｍｍｏｌ）を室温で添加した。反応混合物を、アルゴン雰囲気下、室温で１０時間攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残渣を脱イオン水とアセトニトリル中に再溶解し、ＨＰＬＣ（ＯＤＳ－Ｃ_１８、Ａ（８０％のＣＨ_３ＣＮと１００ｍＭのトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ７．４））：Ｂ（１００ｍＭのトリエチルアミンアセテート緩衝液（ｐＨ７．４））＝２０：８０～８０：２０で３０分間）で精製して黒紫色の固体を１５ｍｇ（５４％）得た。
^１ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，８．１５（ｍ，２Ｈ），７．６４（ｍ，２Ｈ），７．５５（ｍ，２Ｈ），７．４１（ｍ，４Ｈ），３．７２－３．４４（ｍ，３４Ｈ），３．３４（ｍ，８Ｈ），２．９９（ｓ，６Ｈ），２．４１（ｔ，Ｊ_Ｈ＝６．６Ｈｚ，２Ｈ），１．５７（ｍ，２Ｈ），１．３８（ｍ，４Ｈ），１．２３（ｍ，４Ｈ）
^１３ＣＮＭＲ（７５ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）：δ／ｐｐｍ，１７４．０，１５４．４，１５４．１，１５３．３，１３５．５，１３３．０，１３１．０，１２７．９，１２７．８，１１４．８，１１３．３，１０２．７，７２．２，７１．６，７１．５，７１．４，７１．３，７１．２，７１．１，７０．５，６８．３，６８．２，５５．９，５２．３，４６．２，４６．１，４５．７，４０．９，４０．４，３７．６，３３．８，３０．８，２７．７，２６．５
ＨＲ－ＥＳＩ－ＭＳ：Ｃ_４９Ｈ_７０Ｎ_６Ｏ_８Ｃｌ_１について計算値［Ｍ］^＋＝９０５．４９４４；測定値９０５．４９６２

［実施例１２］
シナプス小胞の膜輸送の可視化
　化合物３はその構造にＨａｌｏタグリガンドを含むことから、Ｈａｌｏタグへの特異的なラベルが可能である。シナプス小胞マーカーであるＶＡＭＰ２にＨａｌｏタグを融合させたタンパク質ＶＡＭＰ２－Ｈａｌｏタグを神経細胞に発現させ、そこに化合物３を添加することで、蛍光プローブである化合物３のシナプス小胞への特異的なラベリングが可能となる。シナプス小胞は通常酸性であることから、蛍光強度変化を捉えることにより、エキソサイトーシスが時空間的にどのように起こっているのかイメージングが可能になると考え、以下の実験を行った。

　海馬培養神経細胞にＶＡＭＰ２－Ｈａｌｏタグを発現させ、３μＭの化合物３を含むＫ－ＨＢＳバッファーを用いて３７℃で１分間インキュベーションした。そして、Ｋ－ＨＢＳバッファーを培地に変え、３７℃で１５分間インキュベーションを行った後、培地で１回、ＨＢＳバッファーで３回洗浄を行った。電気刺激を加えることにより、培養神経細胞に神経伝達を惹起し、蛍光イメージングを行った（図１４－１～３）。
　図１４－１は、電気刺激を加える前の化合物３でラベルした海馬細胞の蛍光像であり、図１４－２は、電気刺激（２００ＡＰ、１０Ｈｚ）を加えることにより引き起こされるシナプス小胞のエキソサイトーシスと、それに続くエンドサイトーシスを可視化するため、図１４－１中の四角で囲まれた部分を拡大した像である。図１４－２の上段左の像に示されているＲｏｉ１とＲｏｉ２の部位の蛍光は、電気刺激を加えてから２０秒後に一旦減少しているが（下段左の像）、その後、これら部位において回復が見られた（下段右の像）。電気刺激を加える前後での蛍光強度の変化を示す図１４－３からもこの現象が明瞭に示されている。（実線がＲｏｉ１を、破線がＲｏｉ２を示し、矢印の時点で電気刺激を加えた。）ここで観察された蛍光変化から、シナプス小胞はエキソサイトーシスの後、再びエンドサイトーシスにより細胞内に取り込まれたと考えられる。

［実施例１３］
薬剤によるがん関連受容体ＨＥＲ２のダウンレギュレーションの評価
　がんで過剰発現が知られる受容体ＨＥＲ２のダウンレギュレーションは、がんに対する治療効果を示す。薬剤によるＨＥＲ２のダウンレギュレーションを簡便に蛍光評価するため、ＨＥＲ２にＨａｌｏタグを融合させたタンパク質ＨＥＲ２－Ｈａｌｏタグを発現させた細胞に、ＨａｌｏＴａｇリガンドを有する化合物３を加え、標的受容体ＨＥＲ２特異的に蛍光プローブを標識する。ＨＥＲ２に標識した化合物３は、ＨＥＲ２のダウンレギュレーションの際に細胞内酸性小胞へと輸送されてはじめて明るく光ると考えられる。この蛍光強度変化を捉えることで、ＨＥＲ２のダウンレギュレーションを簡便に評価できると考え、以下の実験を行った。

（１）試薬と細胞の準備
　ｐＨ感受性蛍光プローブである化合物３と１７－ＡＡＧ（和光純薬）をそれぞれ水に希釈した。１７－ＡＡＧの対照として同容量のＤＭＳＯ（Ｓｉｇｍａ　ａｌｄｒｉｃｈ）を用いた。ＨＥＲ２－Ｈａｌｏタグ発現ＳＫＯＶ３細胞を２％ＦＢＳ（ＣＣＢ）を含むＲＰＭＩ（ナカライテスク）に懸濁し、３８４ウェルイメージングプレート（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）に播き一晩３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で培養した。

（２）ＨＥＲ２のダウンレギュレーションに関するハイスループット評価
　ＨＥＲ２－Ｈａｌｏタグ発現ＳＫＯＶ３細胞を播いた３８４ウェルイメージングプレートに化合物３と１７－ＡＡＧをそれぞれ最終濃度が３０ｎＭと１０μＭになるように３５４ウェルに加えた。また、コントロールとして１７－ＡＡＧの代わりにＤＭＳＯのみを３２ウェルに加えた。プレートリーダーにて５３５ｎｍ励起による５８０ｎｍの蛍光値を測定し、その後３７℃、５％ＣＯ_２の条件下５時間培養を行い、再びプレートリーダーにて蛍光値を測定した。培養前後の蛍光値の差を計算すると１７－ＡＡＧで処理したウェルで蛍光値が大きく上昇した（図１５）。このように、蛍光値からがん関連受容体ＨＥＲ２のダウンレギュレーションを簡便に評価することが可能である。

Claims

　下記の一般式（Ｉ）：

（式中、Ｒ_１、Ｒ_２は、それぞれ独立に、水素又は置換されていてもよいアルキル基を示し（但し、Ｒ_１、Ｒ_２の少なくとも一つは置換されていてもよいアルキル基である。）、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７及びＲ_８は、それぞれ独立に水素、ハロゲン、又は置換されていてもよいアルキル基を示し、Ｘは、ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基、又はラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基を示し、Ｙは、ハロゲン、置換されていてもよいアルキル基、置換されていてもよいアルコキシル基、又はシアノ基を示し、ｍは０～５の整数を示し、ｍが２以上である場合は、Ｘは同一であっても異なっていてもよく、ｎは０～５の整数を示し、ｎが２以上である場合は、Ｙは同一であっても異なっていてもよく、ｍとｎの和は５以下の整数である。）
で表される化合物又はその塩。
　一般式（Ｉ）におけるＲ_１、及び／又はＲ_２が、それぞれ独立に置換されていてもよい炭素数１～４のアルキル基である請求項１に記載の化合物又はその塩。
　ラベル部位又は標的集積部位を導入することが可能な官能基がカルボキシル基、カルボキシル基を有するアルキル基、アミノ基、アミド基、マレイミド基、マレイミド基を有するアルキル基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、及びアルキニル基からなる群から選択される少なくとも１つである請求項１または２に記載の化合物又はその塩。
　ラベル部位又は標的集積部位を導入した置換基が、－（Ｘ’－Ｔ－Ｓ）（Ｘ’はラベル部位又は標的集積部位を導入する基を示し、Ｔは存在する場合は架橋基を示し、Ｓはラベル部位又は標的集積部位を示す。）で表され、ｍが１以上である請求項１～３のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
　Ｘ’のラベル部位又は標的集積部位を導入する基が、カルボニル基、アルキルカルボニル基、アミノ基、アルキルアミノ基、アミド基、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、又はアルキニル基である請求項４に記載の化合物又はその塩。
　Ｓが、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、Ｈａｌｏタグリガンド、弱塩基性アミン、片末端又は両末端に修飾基を有してもよいポリエチレングリコール基、マレイミド、イソチオシアネート基、塩化スルホニル基、ハロアルキル基、ハロアセトアミド基、アジド基、アルキニル基、ベンジルグアニン誘導体又はベンジルシトシン誘導体である請求項４又は５に記載の化合物又はその塩。
　請求項１～６のいずれか１項に記載の化合物又はその塩を含む蛍光プローブ。
　細胞内の酸性領域の測定方法であって、
（ａ）請求項１～６のいずれか１項に記載の化合物又はその塩を細胞内に導入する工程、及び
（ｂ）当該化合物又はその塩が細胞内で発する蛍光を測定する工程
を含む方法。
　細胞内酸性小器官の存在する酸性領域を測定する請求項８に記載の方法。