WO2010074136A1 - 多孔質中空糸膜およびタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜 - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a porous hollow fiber membrane suitable for separating fine particles such as viruses contained in an aqueous fluid such as a protein solution.
- a porous hollow fiber membrane suitable for separating fine particles such as viruses contained in an aqueous fluid such as a protein solution.
- it is composed of a hydrophobic polymer and a hydrophilic polymer
- the downstream surface of the filtration has a dot-like or slit-like opening
- the upstream surface of the filtration has a network structure or a fine particle aggregate structure.
- the central region of the thick part has a substantially homogeneous structure
- the film thickness part has a structure having substantially no macrovoids.
- the permeation rate of pure water is 10 to 300 L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar) It is characterized in that the permeation rate of 0.1% by weight bovine ⁇ -globulin solution is 30-100% of the permeation rate of pure water, and it separates fine particles such as viruses from an aqueous fluid containing components such as proteins. It is related with the porous hollow fiber membrane suitable for. Preferably, it is composed of a hydrophobic polymer and a hydrophilic polymer, the downstream surface of the filtration has a dot-like or slit-like opening, and the upstream surface of the filtration has a network structure or a fine particle aggregate structure.
- the central region of the part has a substantially homogeneous structure, and the film thickness part has a structure having substantially no macrovoids.
- the permeation rate of pure water is 10 to 300L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar) Yes, the permeation rate of 0.1 wt% -20 mmol / L phosphate buffer solution of bovine ⁇ -globulin is 30-100% of the permeation rate of 0.1 wt% bovine ⁇ -globulin-phosphate buffered saline solution.
- the present invention relates to a porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid processing.
- Hollow fiber membranes for the treatment of aqueous fluids are widely used in industrial applications such as microfiltration and ultrafiltration, and medical applications such as hemodialysis, hemofiltration and hemodiafiltration.
- industrial applications such as microfiltration and ultrafiltration
- medical applications such as hemodialysis, hemofiltration and hemodiafiltration.
- pathogenic substances such as viruses from protein solutions, which are useful components, and improving safety.
- Non-Patent Document 1 regarding the virus removal / inactivation process of the plasma fraction preparation, it is desirable to work on two or more different virus inactivation and removal processes.
- the LRV to be achieved as the target value is about 4.
- Non-Patent Document 3 “Especially regarding the virus removal / inactivation process, in Japan,“ Guidelines on Ensuring the Safety of Plasma Fractionated Drugs against Viruses ”, Medicament No. 1047 (March 30, 1999)
- Virus clearance index R log ((V1 ⁇ T1) / (V2 ⁇ T2)) V1 Capacity before process treatment T1 Virus titer before process treatment V2 Capacity after process treatment T2 Virus titer after process treatment
- Virus removal and inactivation methods include heat treatment, optical treatment such as gamma rays and ultraviolet irradiation, chemical treatment such as low pH treatment, precipitation fractionation such as ethanol fractionation and ammonium sulfate fractionation, and removal by membrane filtration.
- optical treatment such as gamma rays and ultraviolet irradiation
- chemical treatment such as low pH treatment
- precipitation fractionation such as ethanol fractionation and ammonium sulfate fractionation
- removal by membrane filtration membrane removal methods that do not lead to protein denaturation have attracted attention in removing viruses from protein solutions.
- proteins that are useful components must be efficiently permeated and recovered.
- the target of separation and removal is a small-sized virus such as parvovirus, it has been difficult to satisfy the virus removal characteristics and the permeation characteristics of useful proteins at the same time.
- Patent Document 1 an average permeation rate for 5 minutes from the start of filtration when 3 wt% bovine immunoglobulin having a specific maximum pore size and the proportion of monomer is 80 wt% or more is filtered at a low pressure of 0.3 MPa.
- a hydrophilic microporous membrane in which the relationship between (globulin permeation rate A), average permeation rate for 5 minutes (globulin permeation rate B) after 55 minutes from the start of filtration, and maximum pore size is parameterized.
- the constituent requirements of this film are as follows. (1) Maximum pore size 10-100nm (2) Globulin permeation rate A> 0.0015 ⁇ maximum pore size (nm) 2.75 (3) Globulin permeation rate B / globulin permeation rate A> 0.2
- the requirement (1) merely describes the pore size required for removal of infectious virus, as described in the specification, page 3, lines 21 to 27.
- the requirement of (2) requires that the globulin permeation rate A is larger than a certain value calculated from the maximum pore size of the micropores.
- the permeation of the protein solution Since it is obvious that a higher speed is preferable, only the target characteristics are described.
- the requirement of (3) requires that the permeation rate of the protein solution does not decrease with time, and this is also merely a description of the target characteristics required for a membrane intended to remove viruses from the protein solution.
- hydrophilic microporous membrane with a logarithmic removal rate of 3 or higher for porcine parvovirus, 3 wt% bovine immunoglobulin with a monomer content of 80 wt% or higher at low pressure filtration at 0.3 MPa, at the start of filtration
- hydrophilic microporous membranes with a cumulative permeation rate of 50 liters / m 2 or more after 3 hours are described in the subclaims. It only describes the target characteristics of membranes that are intended to remove viruses from protein solutions, and provides useful and specific information for the problem of obtaining membranes with high protein permeability and high virus removal. Do not mean.
- a microporous membrane having a coarse structure layer with a high porosity and a dense layer with a low porosity is disclosed, in the first place, it is essentially a polyfluoride that easily forms a homogeneous structure by thermally induced phase separation.
- Hollow fiber membranes made of vinylidene chloride (hereinafter abbreviated as PVDF) are being discussed.
- PVDF vinylidene chloride
- this technology can be applied to materials such as polysulfone resins that are widely used as hemodialysis membrane materials due to their high water permeability. Is difficult to apply as is.
- Patent Document 2 discloses a microporous film having a coarse structure layer having a large open area ratio and a dense layer having a low open area ratio.
- PVDF is substantially assumed as a material.
- PVDF is excellent in physical strength, but because it is a hydrophobic material, protein adsorption, membrane contamination and clogging are likely to occur, and the filtration rate drops rapidly. In order to improve this undesirable characteristic, it is necessary to impart hydrophilicity to the membrane.
- PVDF material membranes must be modified to hydrophilicity by post-treatment after film formation.
- forming a film in a blended state with a conductive polymer has a disadvantage in that it is a complicated manufacturing process.
- Patent Document 3 discloses a virus-retaining ultrafiltration membrane having an initial LRV of at least 4.0 relative to PhiX174 and having a surface hydrophilized with hydroxyalkylcellulose.
- the hydrophilicity is made by a special hydrophilic polymer, and lacks versatility.
- a blend of polysulfone or the like and a hydrophilic polymer such as polyvinyl pyrrolidone is also exemplified, but hydrophilic treatment with hydroxyalkyl cellulose is essential.
- a hollow fiber type is allowed as the membrane, a substantially flat membrane type is assumed, and a sufficient explanation for obtaining the hollow fiber membrane type is not made.
- Patent Document 4 and Patent Document 5 a polymer porous material in which the ratio (Jp / Jw) of the permeation rate (Jp) of 5 wt% human serum albumin aqueous solution to the permeation rate (Jw) of pure water is 1/50 or more.
- the virus removal method used is disclosed.
- Patent Document 4 describes that the blocking coefficient of E. coli phage ⁇ X174 is 2 or more
- Patent Document 5 describes that the blocking coefficient of a gold colloid with a particle diameter of 30 nm is 1 or more.
- the membrane characteristics here are only the minimum target characteristics as a membrane for the purpose of removing viruses from protein solutions. For the problem of obtaining a membrane with high protein permeability and high virus removal, It does not give useful and specific information.
- the main membrane disclosed is made of cellulose and has a low strength when wet with water, so that it is difficult to set the filtration pressure high and a high permeation rate cannot be obtained.
- the in-plane porosity initially decreases as it goes from the inner wall surface to the inside of the wall, and after passing through at least one minimum portion, the polymer porous hollow fiber having a pore structure that increases again at the outer wall portion
- a membrane and a virus removal method using this membrane to filter an aqueous protein solution are disclosed. If the membrane structure disclosed here is simply expressed, it can be said that the pore diameter of the membrane wall is a hollow fiber membrane having sparse-dense-sparse in the film thickness direction. Having such a tilted structure and having a specific average pore size is said to be suitable for removing proteins with high efficiency and for recovering proteins with high permeability without denaturing the proteins.
- various polymer materials are exemplified as the material, it is substantially a technology using regenerated cellulose, and it is difficult to widely apply the technology disclosed here to many materials. Further, the disadvantages of the cellulose material are as already described.
- Non-Patent Document 4 and Non-Patent Document 5 it is reported that the protein permeability and the protein solution permeation rate are improved by eliminating the aggregation of the protein by addition of salt or DNase treatment.
- the salt concentration affects the presence of protein, and it is considered that the permeation efficiency is improved in this way.
- the salt concentration affects the interaction between the membrane surface and protein, and increases or decreases the permeation efficiency. That is not noticed.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention 1 is (1)
- the downstream surface of the filtration has dots or slits
- the upstream surface of the filtration has a network structure or a fine particle aggregate structure
- the central region of the film thickness portion has a substantially homogeneous structure.
- the film thickness part is substantially free of macrovoids
- the permeation rate of pure water is 10-300L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar)
- the permeation of 0.1% by weight bovine ⁇ -globulin solution The speed is 30 to 100% of the permeation speed of pure water.
- the inside diameter is 200 to 400 ⁇ m and the film thickness is 50 to 200 ⁇ m.
- the hydrophobic polymer is a polysulfone polymer.
- the hydrophilic polymer is polyvinylpyrrolidone.
- the porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid treatment of the present invention 2 (7)
- the downstream surface of the filtration has dot-shaped or slit-shaped openings, the upstream surface of the filtration has a network structure or fine particle aggregate structure, and the central region of the film thickness portion has a substantially homogeneous structure.
- the film thickness part has a structure substantially free of macrovoids
- the permeation rate of pure water is 10 to 300L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar), 0.1% by weight of bovine ⁇ -globulin -20mmol /
- the permeation rate of the L phosphate buffer solution is 30 to 100% of the permeation rate of 0.1 wt% bovine ⁇ -globulin-phosphate buffered saline solution.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention can be used for virus separation from a protein solution.
- the porous hollow fiber membrane can efficiently remove viruses, and at the same time, proteins can permeate efficiently, and the permeation characteristics of the porous fibers over time. Therefore, it can be preferably used as a membrane for removing pathogenic substances such as viruses from protein solutions that are useful components in the manufacturing process of biopharmaceuticals and blood products.
- a mesh structure It is an example of a fine particle aggregate structure. It is an example of a dot-shaped aperture structure. It is an example of a dot-shaped aperture structure. It is an example of a dot-shaped aperture structure. It is an example of a slit-shaped opening structure.
- a range indicated by a double-pointed arrow at the center of the image is “a central region of the film thickness portion”, and a range indicated by double-sided arrows on both sides is an inner surface side region and an outer surface side region of the film thickness portion. This is an example of a structure in which the central region is substantially homogeneous.
- a range indicated by a double-pointed arrow at the center of the image is “a central region of the film thickness portion”, and a range indicated by double-sided arrows on both sides is an inner surface side region and an outer surface side region of the film thickness portion. It is an example of a structure where the central region is inhomogeneous.
- a range indicated by a double-pointed arrow at the center of the image is “a central region of the film thickness portion”, and a range indicated by double-sided arrows on both sides is an inner surface side region and an outer surface side region of the film thickness portion. It is an example of a structure where the central region is inhomogeneous.
- a range indicated by a double-pointed arrow at the center of the image is “a central region of the film thickness portion”, and a range indicated by double-sided arrows on both sides is an inner surface side region and an outer surface side region of the film thickness portion. It is an example of a structure where the central region is inhomogeneous.
- a range indicated by a double-pointed arrow at the center of the image is “a central region of the film thickness portion”, and a range indicated by double-sided arrows on both sides is an inner surface side region and an outer surface side region of the film thickness portion.
- the downstream surface of the filtration has a dot-like or slit-like opening
- the upstream surface of the filtration has a network structure or a fine particle aggregate structure.
- ⁇ Having a dot-like or slit-like opening '' means that the area (real part) where the structural component exists is the background when a 10,000 times image taken with a scanning electron microscope (SEM) is visually observed. In other words, it means that the region (hole portion, imaginary portion) where the structural component does not exist exists in a circular shape, an elliptical shape, or a slit shape.
- the “network structure” is a structure in which the real part is three-dimensionally spread
- the “fine particle aggregate structure” is a structure in which a large number of granular real parts are directly or streak-like real parts. It means the structure which is connected through.
- Specific examples of the surface structure are shown in FIGS.
- the filtration downstream surface has a structure as shown in FIGS. 3, 4, 5, and 6, and the filtration upstream surface has a structure as shown in FIGS. preferable.
- the liquid to be filtered is introduced from the upstream membrane surface into the film thickness portion.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention is characterized in that the upstream membrane surface has a three-dimensional structure consisting of a network structure or a fine particle aggregate structure.
- Such a structure is contaminated by the liquid to be filtered. It exhibits the effect of efficiently removing relatively large substances to be removed such as substances, suspensions, and aggregates. Since these substances to be removed are removed by the three-dimensional structure, it is difficult to form a deposition layer on the film surface, and it is possible to alleviate the decrease in the filtration rate.
- the liquid to be filtered passes through the central region of the film thickness portion and is finally recovered as a filtrate from the downstream surface of the filtration.
- the membrane structure of the present invention is suitable for efficient virus removal and efficient protein permeation / recovery.
- the filtration upstream side may be the hollow fiber membrane lumen side or the hollow fiber membrane outer wall side, but the viewpoint of durability against the pressure applied when the filtration is performed Therefore, it is preferable to filter from the inner side to the outer side of the hollow fiber membrane with the hollow fiber membrane lumen side as the upstream side of filtration.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention preferably has a structure in which the central region of the film thickness portion has a substantially homogeneous structure and has substantially no macrovoids.
- the ⁇ central area of the film thickness part '' is a position on the outer surface side by a distance corresponding to 20% of the film thickness from the inner surface and a position on the inner surface side by a distance corresponding to 20% of the film thickness from the outer surface.
- substantially homogeneous structure means that the structure non-uniformity cannot be confirmed when a 1000 times SEM image is visually observed.
- the structure as shown in FIGS. 7 and 8 is “a structure in which the central region of the film thickness portion is substantially homogeneous”. In FIG.
- the central region is sparse-dense from the inner surface toward the outer surface
- the central region is dense-sparse-dense from the inner surface toward the outer surface
- the sparse and dense structure has changed in a complex manner. All of these are unfavorable structures in the present invention. 7 to 11, the range indicated by the double-pointed arrow at the center of the image is the “center region of the film thickness portion”, and the range indicated by the double-sided arrows on both sides is the inner surface side region and the outer surface side region of the film thickness portion. It is.
- substantially free of macrovoids means a film that is homogeneous in any field of view when an SEM image (1000 ⁇ ) obtained by photographing five different areas of the film thickness portion is visually observed. It means that a void region where a real part of the film is missing in a circular shape, an elliptical shape or a saddle shape as compared with the structure of the thick portion, that is, a macro void is not observed.
- a homogeneous membrane is preferably used to separate viruses from coexisting solutions that are not extremely different in size, such as separation and removal of small-diameter viruses from immunoglobulin solutions. This is because, by taking a homogeneous structure in the thickness direction, a pseudo multi-stage effect in which separation is repeated many times in many layers can be expected. In addition, with such a structure, even if there is a defect in a part of the film thickness part and the substance to be removed is not trapped there, there is a high possibility that it will be stopped somewhere in the film thickness part. In addition, the risk of leakage of a substance to be removed can be reduced as a whole film. Such a merit can be obtained because the central region has a homogeneous structure, which is suitable for removing substances such as viruses from protein solutions. The presence of macro voids is not preferable because it narrows the region where such an effect can be expected.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention has a pure water permeation rate (hereinafter abbreviated as pure water Flux) of 10 to 300 L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar), and is a 0.1% by weight bovine ⁇ -globulin solution.
- the transmission rate (hereinafter abbreviated as ⁇ G Flux) is 30 to 100% of the transmission rate of pure water.
- ⁇ G Flux is 30 to 100% of pure water Flux” means that the ratio of ⁇ G Flux to pure water Flux is “Flux ratio” and “Flux ratio is 30 to 100%.” Is the same meaning as the above, and may be expressed as follows. Pure water Flux is a measure of the pore size of the porous membrane.
- the pure water flux is more preferably 40 to 200 L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar), and further preferably 70 to 130 L / (h ⁇ m 2 ⁇ bar). Further, the Flux ratio is more preferably 60% or more, and further preferably 85% or more.
- the protein that is the component to be recovered in the filtrate preferably exhibits high permeability throughout the filtration process. It is difficult to determine how much transmittance is required depending on the use, type, concentration, etc. of the protein, but it is generally preferably 95% or more. Below 95%, protein loss due to filtration increases and productivity decreases. In the membrane filtration, as the filtration time becomes longer, there is a possibility that the transmittance decreases due to clogging. Therefore, the transmittance (permeability retention rate) at the time of performing filtration for a sufficiently long time with respect to the transmittance at the initial stage of the filtration process is an index indicating the stability of protein permeation over time.
- the transmittance retention is preferably at least 95%.
- the process of, multiplied so to set the maximum filtration load applied to the film in about 50 ⁇ 200L / m 2 is generally half of at least 50L / m 2, i.e., the filtered load of about 25L / m 2 It can be said that it is reasonable to think that this is the point in time.
- the concentration of the protein solution to be treated has been increasing in recent years. Therefore, when considering protein permeability, it is appropriate to judge at a concentration of about 1%. It is. That is, the protein permeability in a 1% protein solution is 95% or more, and the permeability retention is 95% or more at the time of filtration load of about 25 L / m 2 is used for filtration of the protein solution. This is a preferable property as a film.
- the Flux ratio is an index indicating the stability of protein permeation over time. That is, when ⁇ G Flux is less than 30% of pure water Flux, even if the initial protein permeability is high, the drop over time is large, and the protein permeability retention is reduced. In a bovine ⁇ -globulin solution, the permeation rate is usually decreased by the presence of bovine ⁇ -globulin as a solute. The fact that ⁇ G Flux exceeds 100% of pure water Flux is thought to be due to a defect in the membrane structure or an extreme change in structure due to contact with proteins, and none of them is practical. Although details are unknown, the following mechanism can be considered.
- the ⁇ G flux in the present invention was determined under the following measurement conditions.
- the liquid temperature was adjusted to 25 ° C.
- a solution in which bovine ⁇ -globulin was dissolved in phosphate buffered saline (hereinafter abbreviated as PBS) to a concentration of 0.1% by weight was prepared.
- PBS phosphate buffered saline
- This solution was introduced into a dry hollow fiber membrane and conditioned through a 1 L filtrate per 1 m 2 membrane area at a filtration pressure of 1.0 bar. The filtrate during the acclimation treatment was discarded.
- the time required to obtain 2.5 L of filtrate per 1 m 2 of membrane area was measured at a filtration pressure of 1.0 bar.
- ⁇ G Flux was calculated from the filtration pressure, membrane area, filtrate amount, and required filtration time.
- the above-mentioned “smooth protein interaction” membrane surface is specifically a surface having characteristics that hardly change the protein conformation by contact with the protein and hardly adsorb the protein. I can say that. It is difficult to determine in general what kind of state the film surface is and how it can be obtained, but one is that it has sufficient hydrophilicity. Is considered to be an important factor. Such a preferable film surface can be obtained by a technique for optimizing the amount and state of the hydrophilic polymer described later.
- the porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid treatment of the present invention has a permeation rate of bovine ⁇ -globulin 0.1 wt% -20 mmol / L phosphate buffer solution (hereinafter abbreviated as ⁇ G / 20 mM-PB Flux). -30% to 100% of the permeation rate of a 0.1 wt% globulin-phosphate buffered saline solution (hereinafter abbreviated as ⁇ G / PBS Flux). “Gamma / 20mM-PB Flux is 30-100% of ⁇ G / PBS Flux” means that the ratio of ⁇ G / 20mM-PB Flux to ⁇ G / PBS Flux is “Flux ratio”.
- the ratio is 30 to 100%
- the Flux ratio is an index indicating the stability of protein permeation over time. That is, ⁇ G / 20mM-PB When Flux is less than 30% of ⁇ G / PBS Flux, even if the initial protein permeability is high, the drop over time is large, and the protein permeability retention is lowered. Generally, proteins such as globulins tend to aggregate when the ionic strength of the solution is low, and the membrane permeation rate of the low ionic strength solution is usually lower than the membrane permeation rate of the high ionic strength solution. ⁇ G / 20mM-PB The reason why Flux exceeds 100% of ⁇ G / PBS Flux is considered to be that the membrane structure is defective or that the structure is extremely changed by contact with a low ionic strength protein solution.
- a membrane having a high ratio of ⁇ G / 20 mM-PB Flux measured under low ionic strength conditions to ⁇ G / PBS Flux measured under high ionic strength conditions has a slight interaction with proteins, Since the resistance when the protein passes through the membrane is sufficiently low, it is considered that the protein permeates efficiently and stably.
- the 20 mmol / L phosphate buffer (hereinafter referred to as 20 mM-PB) referred to in the present invention means a phosphate (PO 4 3 ⁇ ) salt and / or a hydrogen phosphate (HPO 4 2 ⁇ ) salt and / or a phosphate diphosphate. It means a buffer having a total concentration of hydrogen (H 2 PO 4 ⁇ ) salt and / or free phosphoric acid (H 3 PO 4 ) of 20 mmol / L, and the pH is preferably 6.0 to 8.0.
- the phosphate buffered saline (hereinafter abbreviated as PBS) referred to in the present invention means an isotonic saline solution to which a buffering action is imparted by phosphate, and the pH is preferably 6.5 to 7.5. .
- PBS phosphate buffered saline
- ⁇ G / PBS Flux and ⁇ G / 20 mM-PB Flux were determined under the following measurement conditions. The liquid temperature was adjusted to 25 ° C. (1) A solution in which bovine ⁇ -globulin was dissolved in a predetermined buffer solution to a concentration of 0.1% by weight was prepared.
- the inner diameter of the porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid treatment of the present invention is preferably 100 to 1000 ⁇ m, more preferably 150 to 800 ⁇ m, even more preferably 200 to 400 ⁇ m, and even more preferably 250 to 300 ⁇ m.
- the film thickness is preferably 10 to 500 ⁇ m, more preferably 20 to 400 ⁇ m, further preferably 50 to 200 ⁇ m, and still more preferably 80 to 100 ⁇ m. If the inner diameter is smaller than this, when filtration is performed from the inside toward the outside, the pressure loss due to the liquid passage becomes large, and the filtration pressure may become non-uniform in the length direction of the hollow fiber membrane.
- a lumen in the liquid may be blocked due to components in the liquid to be processed. If the inner diameter is larger than this, the hollow fiber membrane is liable to be crushed or distorted. When the film thickness is smaller than this, the hollow fiber membrane tends to be crushed or distorted. When the film thickness is larger than this, the resistance when the liquid to be treated passes through the film wall increases, and the permeability may decrease.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention preferably comprises a hydrophobic polymer and a hydrophilic polymer.
- the hydrophobic polymer include polyester, polycarbonate, polyurethane, polyamide, polysulfone (hereinafter abbreviated as PSf). ), Polyethersulfone (hereinafter abbreviated as PES), polymethyl methacrylate, polypropylene, polyethylene, PVDF, and the like.
- PSf polysulfone-based polymers
- PES Polyethersulfone
- polymethyl methacrylate polypropylene
- polyethylene polyethylene
- PVDF polyethylene
- polysulfone-based polymers such as PSf and PES having repeating units represented by the following chemical formulas 1 and 2 are advantageous and preferable for obtaining a highly water-permeable membrane.
- the polysulfone polymer referred to here may contain a substituent such as a functional group or an alkyl group, and the hydrogen atom of the hydrocarbon skeleton may be substituted with another atom such as halogen or a substituent. These may be used alone or in combination of two or more.
- hydrophilic polymer in the present invention examples include polymer carbohydrates such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone (hereinafter abbreviated as PVP), carboxymethyl cellulose, and starch.
- PVP polyvinyl pyrrolidone
- carboxymethyl cellulose examples include starch.
- PVP polyvinyl pyrrolidone
- carboxymethyl cellulose examples include starch.
- PVP polymer carbohydrates such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone (hereinafter abbreviated as PVP), carboxymethyl cellulose, and starch.
- PVP polyvinyl pyrrolidone
- the method for producing the polymer porous hollow fiber membrane of the present invention is not limited in any way, but a membrane-forming solution is prepared by mixing and dissolving a hydrophobic polymer, a hydrophilic polymer, a solvent, and a non-solvent and degassing the solution.
- a membrane-forming solution is prepared by mixing and dissolving a hydrophobic polymer, a hydrophilic polymer, a solvent, and a non-solvent and degassing the solution.
- Solvents used in the film-forming solution were N-methyl-2-pyrrolidone (hereinafter abbreviated as NMP), N, N-dimethylformamide (hereinafter abbreviated as DMF), N, N-dimethylacetamide (hereinafter abbreviated as DMAc). ), Dimethyl sulfoxide (hereinafter abbreviated as DMSO), ⁇ -caprolactam, etc., can be widely used as long as it is a good solvent for hydrophobic polymers and hydrophilic polymers.
- NMP N-methyl-2-pyrrolidone
- DMF N-dimethylformamide
- DMAc N-dimethylacetamide
- DMSO Dimethyl sulfoxide
- ⁇ -caprolactam etc.
- the aprotic solvent means a hydrogen bonded directly to a hetero atom other than a carbon atom in the structure. It means a solvent containing no atoms.
- a polymer non-solvent to the film forming solution.
- the non-solvent used include ethylene glycol (hereinafter abbreviated as EG), propylene glycol (hereinafter abbreviated as PG), diethylene glycol (hereinafter abbreviated as DEG), triethylene glycol (hereinafter abbreviated as TEG), Polyethylene glycol (hereinafter abbreviated as PEG), glycerin, water, etc.
- the ether polyol means a substance having at least one ether bond and two or more hydroxyl groups in the structure.
- phase separation (coagulation) in the spinning process is controlled by using a membrane-forming solution prepared using these solvents and non-solvents, and the preferred membrane structure of the present invention is formed. It is thought that it becomes advantageous to do.
- the composition of the core liquid described later and the composition of the liquid in the coagulation bath (external coagulation liquid) are also important.
- the solvent / non-solvent ratio in the film forming solution is an important factor for controlling phase separation (coagulation) in the spinning process. It is preferable that the non-solvent is the same amount or slightly excess with respect to the solvent. Specifically, the solvent / non-solvent is preferably 25/75 to 50/50 by weight, and preferably 30/70 to 50/50. / 50 is more preferable, and 35/65 to 50/50 is even more preferable. If the content of the solvent is less than this, solidification tends to proceed, the membrane structure becomes too dense, and the permeability is lowered.
- the concentration of the hydrophobic polymer in the film-forming solution is not particularly limited as long as film formation from the solution is possible, but is preferably 10 to 40% by weight, more preferably 10 to 30% by weight, and 15 to 25% by weight. Is more preferable.
- the concentration of the hydrophobic polymer is preferably low, but if it is too low, the strength may be reduced and the separation characteristics may be deteriorated, so 15 to 25% by weight is preferable.
- the amount of hydrophilic polymer added is sufficient to impart hydrophilicity to the hollow fiber membrane and prevent non-specific adsorption during filtration of the liquid to be processed, without affecting the membrane formation from the membrane-forming solution.
- the concentration of the hydrophilic polymer in the film forming solution is preferably 2 to 15% by weight, more preferably 2 to 10% by weight, and further preferably 3 to 8% by weight. If the amount of the hydrophilic polymer added is less than this, the imparting of hydrophilicity to the film will be insufficient, and the retention of film characteristics may be reduced. In addition, if it is more than this, the hydrophilicity imparting effect is saturated and the efficiency is not good, and the phase separation (coagulation) of the film forming solution is likely to proceed excessively, and the operability deteriorates, This is disadvantageous in forming the preferred membrane structure of the present invention.
- a film-forming solution can be obtained by mixing a hydrophobic polymer, a hydrophilic polymer, a solvent, and a non-solvent and dissolving them by stirring. At this time, the solution can be efficiently dissolved by appropriately applying a temperature. However, excessive heating may cause decomposition of the polymer, so that the temperature is preferably 30 to 100 ° C., more preferably 40 to 80 ° C. is there.
- PVP polymer
- the PVP tends to undergo oxidative decomposition due to the influence of oxygen in the air
- a film-forming solution from which foreign matters are excluded in order to avoid generation of defects in the membrane structure due to foreign matters mixed into the hollow fiber membrane.
- a method of using a raw material with less foreign matter, filtering the film forming solution, and reducing foreign matter is effective.
- the uniformly-dissolved membrane-forming solution is discharged from the dissolution tank.
- a sintered filter having a pore diameter of 10 to 50 ⁇ m provided while being led to the nozzle is passed through. The filtration process may be performed at least once.
- the pore size of the filter is more preferably 10 to 45 ⁇ m, further preferably 10 to 40 ⁇ m. If the filter pore size is too small, the back pressure may increase and productivity may decrease.
- Eliminating bubbles from the membrane forming solution is effective for obtaining a hollow fiber membrane having no defects.
- As a method for suppressing the mixing of bubbles it is effective to defoam the film forming solution.
- static defoaming or vacuum defoaming can be used.
- the tank is sealed and allowed to stand for 30 minutes to 180 minutes. This operation is repeated several times to perform defoaming treatment. If the degree of vacuum is too low, the treatment may take a long time because it is necessary to increase the number of defoaming times.
- the total treatment time is preferably 5 minutes to 5 hours. If the treatment time is too long, the components of the film-forming solution may be decomposed and deteriorated due to the effect of reduced pressure. If the treatment time is too short, the defoaming effect may be insufficient.
- the composition of the core liquid used when forming the hollow fiber membrane is preferably a liquid mainly composed of a solvent and / or a non-solvent contained in the membrane forming solution.
- a preferable surface structure cannot be obtained with only the solvent contained in the film-forming solution because coagulation on the lumen wall surface is excessively suppressed. Therefore, it is preferable to use any of a mixed solution of a solvent and a non-solvent, a non-solvent alone, a mixed solution of a solvent and water, a mixed solution of a non-solvent and water, or a mixed solution of a solvent, a non-solvent, and water.
- the amount of the organic component contained in the core liquid is preferably 50 to 100% by weight, and more preferably 60 to 100% by weight. More specifically, when the core liquid is a mixture of a solvent and water, the amount of the organic component is 50 to 65% by weight. When the core liquid is a mixture of the non-solvent and water, the amount of the organic component is When the core solution is a mixed solution of solvent, non-solvent and water, the same solvent / non-solvent ratio as the film-forming solution is used, and this is diluted with water. It is preferable that the content be ⁇ 95% by weight. If the content of the organic component is less than this, solidification tends to proceed, the membrane structure becomes too dense, and the permeability decreases. On the other hand, if the content of the organic component is larger than this, the progress of phase separation is excessively suppressed, and pores having a large pore diameter are likely to be generated, which increases the possibility of degrading separation characteristics and strength.
- the composition of the external coagulation liquid is preferably a mixed liquid of a solvent and a non-solvent contained in the film forming solution and water.
- the ratio of the solvent and the non-solvent contained in the core liquid is preferably the same as the solvent / non-solvent ratio of the film forming solution.
- the same solvent and non-solvent that are used for the film-forming solution are mixed in the same ratio as in the film-forming solution, and diluted by adding water to this is preferably used.
- the content of water in the external coagulation liquid is 20 to 70% by weight, preferably 30 to 60% by weight. If the water content is higher than this, solidification tends to proceed, the membrane structure becomes too dense, and the permeability decreases.
- one of the factors controlling the film structure is the temperature of the nozzle. If the temperature of the nozzle is low, solidification tends to proceed, the membrane structure becomes too dense, and the permeability decreases. On the other hand, if it is high, the progress of the phase separation is excessively suppressed, and pores having a large pore diameter are likely to be formed, and the possibility of causing a reduction in separation characteristics and strength is increased. Therefore, 30 to 85 ° C., preferably 40 to 75 ° C.
- the membrane-forming solution discharged from the double tube nozzle together with the core solution is introduced into a coagulation bath filled with an external coagulation solution through an air gap portion.
- the dry-wet spinning method for forming the hollow fiber membrane is exemplified, but the residence time of the membrane-forming solution discharged from the nozzle in the air gap portion can be one of the factors that control the membrane structure. If the residence time is short, the outer coagulating liquid quenches the growth of aggregated particles due to phase separation in the air gap portion, so that the outer surface becomes dense and the permeability is lowered. In addition, the densification of the outer surface is not preferable because the obtained hollow fiber membrane tends to stick. If the residence time is long, pores having a large pore diameter are likely to be generated, and the possibility of deteriorating separation characteristics and strength is increased.
- the preferred range of residence time in the air gap is 0.01 to 2 seconds, more preferably 0.05 to 1 second.
- the hollow fiber membrane guided to the coagulation bath through the air gap portion having a relatively short residence time is in a state in which coagulation from the core liquid proceeds while coagulation from the outside is suppressed to some extent. Contact.
- the residence time in the coagulation bath is important for the control of the film structure, specifically 1 to 20 seconds is preferable, and 4 to 15 seconds is more preferable. If the residence time in the coagulation bath is shorter than this, coagulation is insufficient, and if it is longer than this, it is not preferable because it is necessary to decrease the film forming speed or enlarge the coagulation bath.
- the ratio between the first coagulation bath residence time and the second coagulation bath residence time is preferably set to 2: 8 to 5: 5, and the second coagulation bath residence time is set slightly longer.
- the residence time of the hollow fiber membrane between the first coagulation bath and the second coagulation bath is preferably 1 to 15 seconds, and more preferably 4 to 10 seconds.
- the traveling direction of the hollow fiber membrane is changed by two or more rollers rotating at a constant speed and then guided to the second coagulation bath.
- the film-forming solution is usually discharged from the nozzles arranged downward in the direction of gravity, guided to the coagulation bath through the air gap portion, the direction of travel is changed upward in the coagulation bath, and pulled up from the coagulation bath. It is common to wind up after washing in a water bath.
- the polymer porous hollow fiber membrane of the present invention is in a state where the structure is not completely determined immediately after entering the coagulation bath, if the direction is suddenly changed in the coagulation bath, defects or destruction of the membrane structure will occur. May be invited. Specifically, a method of using a multipoint guide and gradually changing the direction at a plurality of points is preferable.
- the film forming speed is not particularly limited as long as a hollow fiber membrane having no defect can be obtained and productivity can be secured, but is preferably 5 to 40 m / min, more preferably 10 to 30 m / min. If the spinning speed is lower than this, productivity may be lowered. If the spinning speed is higher than this, it becomes difficult to ensure the above spinning conditions, particularly the residence time in the air gap portion and the residence time in the coagulation bath.
- the downstream surface of the filtration has a dot-like or slit-like opening
- the upstream surface of the filtration has a network structure or a fine particle aggregate structure
- the central region of the film thickness portion is substantially
- the structure is such that the structure is homogeneous and the film thickness portion is substantially free of macrovoids.
- the preferred film forming solution composition, core liquid composition, external coagulating liquid composition, various temperature controls, residence time, etc. as described above are combined to optimize the film forming conditions. It is essential.
- the hollow fiber membrane is obtained through a washing process after film formation.
- the method for cleaning the hollow fiber membrane is not particularly limited, but from the viewpoint of cleaning effect, safety, and simplicity, the hollow fiber membrane formed in the cleaning bath filled with warm water can be run online as it is, and then wound up. preferable.
- the temperature of the hot water used at this time is preferably from room temperature to 100 ° C., more preferably from 30 ° C. to 90 ° C. There is a high possibility that the cleaning effect will be insufficient at a temperature lower than this, and water may not be used as the cleaning liquid at a temperature higher than this.
- the hollow fiber membranes obtained after film formation and washing are heated for the purpose of suppressing changes in membrane properties during use and washing operations, and ensuring retention and stability of membrane properties and recoverability of membrane properties. It is preferable to apply the treatment. By making this heat treatment an immersion treatment in hot water, the effect of washing and removing the solvent, non-solvent, etc. remaining in the hollow fiber membrane can be expected at the same time.
- the concentration of the core liquid in this step is preferably 10 to 60% by weight as the organic component concentration
- the temperature is 15 to 30 ° C.
- the time is preferably 10 to 180 minutes. If the organic component concentration is lower than this, if the temperature is low, or if the time is short, excess hydrophilic polymer tends to remain, and the liquid to be treated due to changes in membrane characteristics over time and elution during actual use The possibility of incurring problems such as contamination is increased. If the organic component concentration is higher than this, if the temperature is high, or if the time is long, the separation characteristics and strength may be reduced due to destruction of the lumen surface structure, excessive extraction of hydrophilic polymer, etc. Will become bigger.
- the hollow fiber membrane from which the organic components have been completely removed may be immersed again in a solvent / non-solvent aqueous solution. It is simple to adjust the washing conditions so that the concentration of the organic component in the core liquid is within the above-mentioned preferred range, and the aging is carried out at the preferred temperature and time as it is.
- the preferable composition of the core liquid is as described above, but it is preferable to consider the composition also from the viewpoint that the concentration of the organic component contained in the core liquid after spinning is within the range of 10 to 60% by weight. .
- the on-line water washing conditions are particularly preferably 30 to 90 ° C.
- the residence time of the hollow fiber membrane in the water washing bath is preferably 5 to 100 seconds.
- the core liquid is a mixture of NMP, TEG, and water (composition weight ratio 38.25 / 46.75 / 15)
- the temperature of online water washing is 55 ° C.
- the residence time is 11 seconds, it is obtained.
- the concentration of organic components in the core liquid in the lumen of the hollow fiber membrane was 35% by weight.
- the temperature of the hot water used for the heat treatment of the hollow fiber membrane subjected to the aging is 40 to 100 ° C., more preferably 60 to 95 ° C., the treatment time is 30 to 90 minutes, more preferably 40 to 80 minutes, Preferably it is 50 to 70 minutes. If the temperature is lower than this and the processing time is shorter than this, the heat history applied to the hollow fiber membrane may be insufficient, and the retention and stability of the membrane characteristics may be lowered, and the cleaning effect is insufficient. Therefore, there is a high possibility that the amount of eluate increases. If the temperature is higher than this and the treatment time is longer than this, the water may boil or the treatment may take a long time, resulting in a decrease in productivity.
- the bath ratio of the hollow fiber membrane to hot water is not particularly limited as long as the hollow fiber membrane is sufficiently immersed in the hot water, but using too much hot water may reduce productivity. There is. Also, during this heat treatment, if the hollow fiber membrane is bundled in an appropriate length and immersed in hot water in an upright state, the hot water can easily reach the lumen part, and the viewpoint of the heat treatment / cleaning effect To preferred.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention is preferably treated with high-pressure hot water immediately after the heat treatment. Specifically, it is preferably set in a high-pressure steam sterilizer in a submerged state and processed at a processing temperature of 120 to 134 ° C. and a processing time of 20 to 120 minutes, which are normal high pressure steam sterilization conditions. At this time, it is preferable that the hollow fiber membrane which has been subjected to the heat treatment is immediately started to be subjected to the high-pressure hot water treatment in a wet state and in a high temperature state.
- the porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid treatment of the present invention may be irradiated with radiation in a wet or immersed state with water in addition to the above heat treatment and high-pressure hot water treatment.
- a part of the hydrophilic polymer is crosslinked, and at the same time, its existence state is optimized, and it is considered that pure water Flux, ⁇ G / 20 mM-PB ⁇ Flux, and ⁇ G / PBS Flux are optimized.
- the radiation for example, ⁇ rays, ⁇ rays, ⁇ rays, X rays, ultraviolet rays, electron rays, and the like can be used. However, ⁇ rays are preferable because of achievement as sterilization treatment and ease of dose control.
- the radiation dose is preferably 5 to 100 kGy, more preferably 10 to 50 kGy. If the dose is smaller than this, the effect of radiation irradiation becomes insufficient, and if the dose is larger than this, there is a possibility of causing excessive crosslinking of the hydrophilic polymer or deterioration of the material.
- Additives may be added to the water that wets or immerses the membrane during irradiation.
- the additive is preferably a substance having an antioxidant effect and a radical trap effect, such as sulfite and polyhydric alcohol.
- the amount added varies depending on the type of additive, but in the case of sulfite, it is 0.01 to 1%, preferably 0.01 to 0.1%, and in the case of polyhydric alcohol, it is 0.1 to 40%, preferably 1 to 20%. If the amount is less than this, excessive crosslinking of the hydrophilic polymer or deterioration of the material may be caused, and if the amount is more than this, the radiation irradiation effect may be excessively inhibited.
- the hollow fiber membrane that has been subjected to film formation, heat treatment, high-pressure hydrothermal treatment, and radiation irradiation is finally completed by drying.
- a drying method commonly used drying methods such as air drying, reduced pressure drying, and hot air drying can be widely used. Recently, microwave drying, which has been used for drying blood treatment membranes, can be used.
- microwave drying which has been used for drying blood treatment membranes, can be used.
- hot air drying can be preferably used in that a large amount of hollow fiber membranes can be efficiently dried with a simple apparatus. By performing the above heat treatment prior to drying, changes in film properties due to hot air drying can also be suppressed.
- the hot air temperature during hot air drying is not particularly limited, but is preferably 40 to 100 ° C., more preferably 50 to 80 ° C.
- the temperature of the hot air is preferably lower than the temperature of the hot water heat treatment.
- Mini Module A hollow fiber membrane bundle was produced by cutting a hollow fiber membrane into a length of about 30 cm and bundling both ends with a paraffin film. Both ends of this hollow fiber membrane bundle were inserted into a pipe (sleeve) and hardened with a urethane potting agent. The ends were cut to obtain a double-end open mini-module with both ends fixed by sleeves. The number of hollow fiber membranes was appropriately set so that the surface area of the inner surface was 30 to 50 cm 2 .
- mini-module with outer cylinder A cylindrical tip with a side tube was attached to one end of a polyvinyl chloride tube (about 15 cm long) and the other end. Insert one to five hollow fiber membranes cut to a length of approximately 15 cm into this polyvinyl chloride tube with tips at both ends, and insert the tip parts at both ends so as not to block the hollow fiber membrane lumen. was hardened with a silicone adhesive.
- This mini-module with an outer cylinder allows filtration from the lumen of the hollow fiber membrane toward the outer wall (internal to outer filtration) by introducing a liquid from the tip portion of the hollow tube into the lumen of the hollow fiber membrane. It is also possible to perform filtration from the outer wall toward the lumen (outside ⁇ inside filtration) by introducing the liquid from the outside.
- the membrane area of the module was determined based on the inner diameter of the hollow fiber membrane.
- the membrane area A [m 2 ] of the module can be calculated by the following equation [1].
- A n ⁇ ⁇ ⁇ d ⁇ L [1]
- n is the number of hollow fiber membranes
- ⁇ is the circumference
- d is the inner diameter [m] of the hollow fiber membrane
- L is the effective length [m] of the hollow fiber membrane in the module.
- the circuit is connected to two end sleeves of the mini module (referred to as the lumen inlet and the lumen outlet, respectively), and the inflow pressure of the liquid to the mini module and the liquid from the mini module are measured.
- the outflow pressure can be measured.
- the circuit (downstream from the pressure measurement point) connected to the inner surface outlet was sealed with forceps to stop the flow, and the pure water entered from the lumen inlet of the module was totally filtered.
- IVIG immunoglobulin preparation solution
- 0.5% IVIG was placed in a pressurized tank and kept at 25 ° C., and the pressure was controlled with a regulator so that the filtration pressure was 1.0 bar, and then introduced into the lumen of the mini module with an outer cylinder.
- the filtrate obtained from the outer surface of the hollow fiber membrane was collected from the side tube of the chip. The filtrate was received by changing the container every time 2 L of filtrate was obtained per 1 m 2 of the hollow fiber membrane area (for every 2 L / m 2 of filtration load).
- the immunoglobulin permeability was calculated by 100 [%] ⁇ (protein concentration in the filtrate) / (protein concentration in the filtrate).
- the protein concentration in the filtrate to be filtrated and the filtrate was determined by measuring the absorbance at 280 nm and calculating the concentration from a calibration curve prepared with an immunoglobulin solution having a known concentration.
- ⁇ G / 20 mM-PB bovine ⁇ -globulin ⁇ 20 mmol / L phosphate buffer solution
- ⁇ G / 20 mM-PB was placed in a pressurized tank and kept at 25 ° C., and the pressure was controlled with a regulator so that the filtration pressure would be 1.0 bar, and introduced into the lumen of the mini module with an outer cylinder.
- the filtrate obtained from the outer surface of the hollow fiber membrane was collected from the side tube of the chip.
- the membrane was conditioned by supplying ⁇ G / 20 mM-PB until 20 L of filtrate per 1 m 2 of hollow fiber membrane was obtained. The filtrate obtained during this time was discarded.
- ⁇ G / 20 mM-PB was continuously supplied at a filtration pressure of 1.0 bar, and the time required to obtain 2.0 L of filtrate per 1 m 2 of membrane area was measured. From the filtration pressure, membrane area, filtrate amount, and time required for filtration, ⁇ G / 20 mM-PB flux was calculated by the above formula [3].
- ⁇ G / PBS Flux 9.6 g of Dulbecco's PBS (-) powder “Nissui” commercially available from Nissui Pharmaceutical Co., Ltd. was dissolved in distilled water to make a total volume of 1000 mL to obtain PBS. With this buffer, ⁇ -Globulin commercially available from Sigma-Aldrich Japan Co., Ltd. From bovine blood (Product No. G5009) was dissolved to 0.1% by weight to obtain a 0.1% by weight bovine ⁇ -globulin / PBS solution (hereinafter abbreviated as ⁇ G / PBS). Using this ⁇ G / PBS, ⁇ G / PBS Flux was measured in the same manner as the above ⁇ G / 20 mM-PB flux measurement.
- IVIG immunoglobulin preparation solution
- 1.0% IVIG was placed in a pressurized tank and kept at 25 ° C., and the pressure was controlled with a regulator so that the filtration pressure was 1.0 bar, and then introduced into the lumen of the mini module with an outer cylinder.
- the filtrate obtained from the outer surface of the hollow fiber membrane was collected from the side tube of the chip.
- the filtrate was received by changing the container every time 2 L of filtrate per 1 m 2 of hollow fiber membrane area was obtained (for every 2 L / m 2 of filtration load).
- the immunoglobulin permeability was calculated by 100 [%] ⁇ (protein concentration in the filtrate) / (protein concentration in the filtrate).
- the protein concentration in the filtrate to be filtrated and the filtrate was determined by measuring the absorbance at 280 nm and calculating the concentration from a calibration curve prepared with an immunoglobulin solution having a known concentration.
- the permeation rate of IVIG (hereinafter abbreviated as IVIG Flux) was calculated from the filtration pressure, the membrane area, the filtrate amount, and the time required for filtration of each fraction by the above formula [3].
- E. coli solution Phage titration measurement of test phage solution and filtrate E. coli was suspended in 10 mM MgSO 4 aqueous solution so that the absorbance at 660 nm was 4.0 (hereinafter referred to as E. coli solution) .
- E. coli solution 10 mM MgSO 4 aqueous solution so that the absorbance at 660 nm was 4.0
- an agar medium and top agar were prepared and warmed to 50 ° C. in advance. Especially the top agar was careful to keep the fluidity. 10 ⁇ L of a solution obtained by appropriately diluting the test phage solution with a BSA solution and 50 ⁇ L of E. coli solution were mixed, and incubated at 37 ° C. for 20 minutes to infect phages in E. coli.
- the total amount of this mixed solution was mixed with 3 mL of top agar, and the entire amount was rapidly spread on an agar medium. After the top agar was completely solidified on the agar medium, it was incubated at 37 ° C. for 2 to 4 hours. After completion of the incubation, the number of plaques on the agar medium was counted, and the titer of the test phage solution (hereinafter abbreviated as Tpre) [pfu / mL] was calculated in consideration of the dilution rate.
- Tpre titer of the test phage solution
- Phage Clearance Index Calculation of Hollow Fiber Membrane The phage clearance index of the hollow fiber membrane was calculated by the following formula [4].
- Tpre [pfu / mL] is the titer of the test phage solution introduced into the evaluation hollow fiber membrane
- Tpost [pfu / mL] is the test phage solution filtered through the evaluation hollow fiber membrane. It is a phage titer of the obtained filtrate.
- Phage Clearance Index [LRV] log 10 (Tpre / Tpost) [4]
- Example 1 20.0 parts by weight of PES (Sumika Excel (registered trademark) 4800P manufactured by Sumitomo Chemtech Co., Ltd.), 5.5 parts by weight of PVP (Koridon (registered trademark) K90) manufactured by BASF, 33.53 parts by weight of NMP manufactured by Mitsubishi Chemical, and TEG40 manufactured by Mitsui Chemicals. 97 parts by weight were mixed and dissolved at 60 ° C. for 3 hours to obtain a uniform solution. Furthermore, after reducing the pressure to normal pressure -700 mmHg at 60 ° C., the system is immediately sealed so that the solvent composition does not volatilize and the solution composition does not change, and left to degas for 4 hours. did.
- the film-forming solution is discharged from the annular part of the double-tube nozzle, and TEG is discharged from the center as a core liquid, and through a 20 mm air gap, it consists of a mixed liquid of 27 parts by weight of NMP, 33 parts by weight of TEG, and 40 parts by weight of RO water.
- the nozzle temperature was set to 66 ° C.
- the external coagulation liquid temperature was set to 46 ° C.
- the first coagulation bath three rod guides having a diameter of 12 mm were used, and the progress direction of the hollow fiber membrane was gradually changed and pulled out. Then, after running through 2000 mm while changing the running direction with three rollers, a hollow fiber membrane was introduced into the second coagulation bath. Further, the hollow fiber membrane was run in the second coagulation bath, pulled out from the second coagulation bath, run in the washing tank, performed on-line washing, and then wound up by a winder.
- the spinning speed is 18 m / min
- the immersion depth of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 200 mm at the deepest part from the liquid surface
- the travel distance of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 800 mm
- the second coagulation bath The travel distance of the hollow fiber membrane was 1200 mm.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so that the hollow fiber membrane had an inner diameter of about 280 ⁇ m and a film thickness of about 80 ⁇ m.
- the air gap retention time of the hollow fiber membrane calculated from the above conditions is 0.067 seconds
- the coagulation bath residence time is 2.67 seconds for the first coagulation bath, 4 seconds for the second coagulation bath, and 6.67 seconds for the first coagulation bath.
- the residence time of the free running part between the second coagulation bath and the second coagulation bath was 6.67 seconds.
- the washing tank was filled with hot water at 55 ° C., and the running length was set so that the residence time of the hollow fiber membrane in the washing tank was 11 seconds.
- the wound hollow fiber membranes were bundled with 800 pieces and a length of 35 cm, and were immersed in 90 ° C. RO water for 60 minutes in an upright state and subjected to heat treatment. It should be noted that the time from the start of winding to bundling to the heat treatment was set to 10 to 90 minutes.
- the winder was installed in an environment set at 20 ° C so that the processing temperature from winding to bundling was 20 ° C.
- the organic component concentration in the core liquid contained in the lumen of the wound hollow fiber membrane was 26% by weight. That is, the hollow fiber membrane was aged for 10 to 90 minutes at 20 ° C. in a state where it was in contact with the core liquid having an organic component concentration of 26% by weight.
- the hollow fiber membrane that had been subjected to the heat treatment was immediately immersed in a high-pressure steam sterilizer containing hot water at 40 ° C. in a wet state, and was subjected to high-pressure hot water treatment under conditions of 132 ° C. ⁇ 20 min. Thereafter, hot air drying was performed at 50 ° C. for 10 hours to obtain a hollow fiber membrane (A) having an inner diameter of 287 ⁇ m and a film thickness of 75 ⁇ m.
- the hollow fiber membrane (A) had a dot-like aperture on the outer wall surface (the surface on the downstream side when filtration was performed from the inside to the outside), and the lumen surface (from the inside to the outside).
- the surface on the upstream side when filtration is performed has a fine particle aggregate structure, a central region of the film thickness portion is substantially homogeneous, and a film thickness portion has substantially no macrovoids.
- the pure water Flux and ⁇ G Flux of the hollow fiber membrane (A) were measured by the method described above, and the Flux ratio was calculated from the values. The characteristics and properties of these hollow fiber membranes (A) are summarized in Table 1.
- the clearance index of bacteriophage ⁇ X174 (hereinafter abbreviated as ⁇ X174 clearance) of the hollow fiber membrane (A) was measured by the method described above.
- IVIG permeability, IVIG permeability retention, and ⁇ X174 clearance are summarized in Table 2 as protein permeation and bacteriophage removal performance of the hollow fiber membrane.
- Example 2 The composition of the film forming solution was 20.0 parts by weight of PES (4800P), 6.0 parts by weight of PVP (K90), 33.3 parts by weight of NMP, 40.7 parts by weight of TEG, 38.25 parts by weight of NMP, 46.75 parts by weight of TEG, A mixed liquid of 15 parts by weight of RO water was used, as in Example 1 except that the nozzle temperature was changed to 56 ° C and the external coagulation liquid temperature was changed to 55 ° C, so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 80 ⁇ m.
- the hollow fiber membrane (B) having an inner diameter of 274 ⁇ m and a film thickness of 86 ⁇ m was obtained by controlling the discharge amount of the membrane forming solution and the core liquid.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (B) at the time of winding in the membrane formation process was 35% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed in the same manner as in Example 1, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Example 3 The composition of the film-forming solution is 20.0 parts by weight of PES (4800P), 6.0 parts by weight of PVP (K30), 33.3 parts by weight of NMP, 40.7 parts by weight of TEG, the nozzle temperature is 66 ° C, and the external coagulation liquid temperature is 40 ° C. Except for the change, in the same manner as in Example 1, the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 120 ⁇ m, and the hollow fiber membrane having an inner diameter of 271 ⁇ m and a film thickness of 119 ⁇ m ( C) was obtained.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (C) at the time of winding in the membrane formation process was 19% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Example 4 The composition of the film-forming solution is PSf (Amoco P-3500) 20.0 parts by weight, PVP (K90) 6.0 parts by weight, NMP 33.3 parts by weight, TEG 40.7 parts by weight, the core solution is NMP 38.25 parts by weight, TEG 46
- the inner diameter is about 280 ⁇ m and the film thickness is the same as in Example 1 except that the liquid mixture is .75 parts by weight and 15 parts by weight of RO water, the nozzle temperature is changed to 55 ° C, and the external coagulation liquid temperature is changed to 54 ° C.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so as to be about 80 ⁇ m, and a hollow fiber membrane (D) having an inner diameter of 282 ⁇ m and a film thickness of 84 ⁇ m was obtained.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (D) at the time of winding in the membrane formation process was 33% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed in the same manner as in Example 1, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Example 1 20.0 parts by weight of PES (4800P), 1.0 part by weight of PVP (K90), 35.55 parts by weight of NMP and 43.45 parts by weight of TEG were dissolved in the same manner as in Example 1 to obtain a film forming solution. From the annular part of the double pipe nozzle, the mixed solution of NMP 36 parts by weight, TEG 44 parts by weight and RO water 20 parts by weight is discharged as the core liquid from the center part, and after passing through a 20 mm air gap, NMP 27 parts by weight Then, it was led to a coagulation bath filled with an external coagulation liquid composed of a mixed liquid of 33 parts by weight of TEG and 40 parts by weight of RO water.
- the nozzle temperature was set to 65 ° C.
- the external coagulating liquid temperature was set to 55 ° C.
- Two coagulation baths a first coagulation bath and a second coagulation bath, were prepared.
- the first coagulation bath one rod-shaped guide having a diameter of 12 mm was pulled out while changing the traveling direction of the hollow fiber membrane.
- a hollow fiber membrane was introduced into the second coagulation bath. Further, the hollow fiber membrane was run in the second coagulation bath, pulled out from the second coagulation bath, run in the washing tank, performed on-line washing, and then wound up by a winder.
- the spinning speed is 18 m / min
- the immersion depth of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 250 mm at the deepest part from the liquid surface
- the travel distance of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 800 mm
- the second coagulation bath The travel distance of the hollow fiber membrane was 1200 mm.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so that the hollow fiber membrane had an inner diameter of about 280 ⁇ m and a film thickness of about 120 ⁇ m.
- the air gap retention time of the hollow fiber membrane calculated from the above conditions is 0.067 seconds
- the coagulation bath residence time is 2.67 seconds for the first coagulation bath, 4 seconds for the second coagulation bath, and 6.67 seconds for the first coagulation bath.
- the residence time of the free running part between the second coagulation bath and the second coagulation bath was 6.67 seconds.
- the washing tank was filled with hot water at 55 ° C., and the running length was set so that the residence time of the hollow fiber membrane in the washing tank was 75 seconds.
- the wound hollow fiber membranes were bundled with 800 pieces and a length of 35 cm, and were immersed in 90 ° C. RO water for 60 minutes in an upright state and subjected to heat treatment. It should be noted that the time from the start of winding to bundling to the heat treatment was set to 10 to 90 minutes.
- the winder was installed in an environment set at 20 ° C so that the processing temperature from winding to bundling was 20 ° C.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the wound hollow fiber membrane was 1.2% by weight. That is, the hollow fiber membrane was aged for 10 to 90 minutes at 20 ° C. while in contact with the core liquid having an organic component concentration of 1.2% by weight.
- the hollow fiber membrane after the heat treatment was dried with hot air at 50 ° C. for 10 hours to obtain a hollow fiber membrane (E) having an inner diameter of 284 ⁇ m and a film thickness of 116 ⁇ m.
- E hollow fiber membrane
- SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated.
- the results are shown in Table 1.
- IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Comparative Example 2 The composition of the film forming solution was changed to 19.0 parts by weight of PES (4800P), 2.0 parts by weight of PVP (K90), 35.55 parts by weight of NMP, and 43.45 parts by weight of TEG so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 140 ⁇ m.
- a hollow fiber membrane (C) having an inner diameter of 280 ⁇ m and a film thickness of 144 ⁇ m was obtained in the same manner as in Comparative Example 1 except that the amount of the membrane-forming solution and core liquid discharged was controlled.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (F) at the time of winding in the membrane formation process was 1.8% by weight.
- Example 2 As in Example 1, SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Comparative Example 3 The composition of the film forming solution was changed to 20.0 parts by weight of PES (4800P), 3.0 parts by weight of PVP (K30), 34.65 parts by weight of NMP, 42.35 parts by weight of TEG, and the core liquid was a mixed liquid of 20 parts by weight of NMP and 80 parts by weight of TEG.
- the film-forming solution and the core solution were adjusted so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 120 ⁇ m.
- the discharge amount was controlled to obtain a hollow fiber membrane (G) having an inner diameter of 279 ⁇ m and a film thickness of 125 ⁇ m.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (G) at the time of winding in the membrane formation process was 2.6% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, and ⁇ G flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Example 4 By using the hollow fiber membrane (B) obtained in Example 2 and filtering from the outside to the inside (from the outer wall surface toward the lumen surface), the IVIG permeability, IVIG permeability retention, and ⁇ X174 clearance are measured. Calculated. The results are shown in Table 2.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention efficiently penetrates the protein, and there is little drop in the permeability over time, Furthermore, sufficient bacteriophage removal performance is exhibited at the same time. It is considered that the specific membrane structure, pure water flux value, and flux ratio, which are the characteristics of the present invention, contribute to exhibiting these excellent characteristics. On the other hand, as is clear from the results of the comparative example, protein permeability and bacteriophage removal performance can be achieved if any specific membrane structure, pure water flux value, or flux ratio is not satisfied. Either of these has become insufficient.
- Example 5 20.0 parts by weight of PES (Sumitomo Chemtech (registered trademark) 4800P), 6 parts by weight of BASF PVP (Collidon (registered trademark) K90), NMP 33.3 parts by Mitsubishi Chemical, TEG40 by Mitsui Chemicals. 7 parts by weight were mixed and dissolved at 50 ° C. for 3 hours to obtain a uniform solution. Further, after reducing the pressure at 50 ° C. to normal pressure of ⁇ 700 mmHg, the system is immediately sealed so that the solvent composition does not volatilize and the solution composition does not change, and left to degas for 4 hours. did.
- the film-forming solution is discharged from the annular part of the double-tube nozzle, and a mixed liquid of NMP 38.25 parts by weight, TEG 46.75 parts by weight, and RO water 15 parts by weight is discharged from the center part as a core liquid, through a 20 mm air gap.
- NMP 26.1 parts by weight, TEG 31.9 parts by weight, RO water 42 parts by weight led to a coagulation bath filled with an external coagulation liquid.
- the nozzle temperature was set to 55 ° C.
- the external coagulating liquid temperature was set to 55 ° C.
- the first coagulation bath three rod guides having a diameter of 12 mm were used, and the progress direction of the hollow fiber membrane was gradually changed and pulled out. Then, after running through 2000 mm while changing the running direction with three rollers, a hollow fiber membrane was introduced into the second coagulation bath. Further, the hollow fiber membrane was run in the second coagulation bath, pulled out from the second coagulation bath, run in the washing tank, performed on-line washing, and then wound up by a winder.
- the spinning speed is 18 m / min
- the immersion depth of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 200 mm at the deepest part from the liquid surface
- the travel distance of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 800 mm
- the second coagulation bath The travel distance of the hollow fiber membrane was 1200 mm.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so that the hollow fiber membrane had an inner diameter of about 280 ⁇ m and a film thickness of about 80 ⁇ m.
- the air gap retention time of the hollow fiber membrane calculated from the above conditions is 0.067 seconds
- the coagulation bath residence time is 2.67 seconds for the first coagulation bath, 4 seconds for the second coagulation bath, and 6.67 seconds for the first coagulation bath.
- the residence time of the free running part between the second coagulation bath and the second coagulation bath was 6.67 seconds.
- the washing tank was filled with hot water at 55 ° C., and the running length was set so that the residence time of the hollow fiber membrane in the washing tank was 11 seconds.
- the wound hollow fiber membranes were bundled with a number of 800 and a length of 35 cm, and were immersed in RO water at 85 ° C. in an upright state for 60 minutes and heat-treated. It should be noted that the time from the start of winding to bundling to the heat treatment was set to 10 to 90 minutes.
- the winder was installed in an environment set at 20 ° C so that the processing temperature from winding to bundling was 20 ° C.
- the concentration of the organic component in the core liquid contained in the lumen of the wound hollow fiber membrane was 37% by weight. That is, the hollow fiber membrane was subjected to aging at 20 ° C. for 10 to 90 minutes in contact with the core liquid having an organic component concentration of 37% by weight.
- the hollow fiber membrane that had been subjected to the heat treatment was immediately immersed in a high-pressure steam sterilizer containing hot water at 40 ° C. in a wet state, and was subjected to high-pressure hot water treatment under conditions of 132 ° C. ⁇ 20 min. Thereafter, hot air drying was performed at 50 ° C. for 10 hours.
- a 1% by weight glucose aqueous solution was prepared in an aluminum laminate bag, sealed with the hollow fiber membrane bundle immersed in this solution, and irradiated with 20 kGy of ⁇ rays.
- the hollow fiber membrane that had been irradiated with ⁇ -rays was washed with water and dried with hot air at 50 ° C.
- the hollow fiber membrane (H) having an inner diameter of 275 ⁇ m and a film thickness of 85 ⁇ m.
- the hollow fiber membrane (H) had a dot-like opening on the outer wall surface (the downstream surface when filtration was performed from the inside to the outside).
- the pores, the surface of the lumen (the upstream surface of the filtration when filtration is performed from the inside to the outside) is a network structure, the central region of the film thickness portion is substantially homogeneous, and the film thickness portion is substantially macrovoid It was a structure without.
- the immunoglobulin permeability (IVIG permeability) of the hollow fiber membrane (H) was measured by the method described above.
- the IVIG transmission rate at the time of filtration load 2 L / m 2 , 20 L / m 2 , 24 L / m 2 , 28 L / m 2 , 30 L / m 2 was calculated.
- Rate retention ratio "was calculated and used as an index of stability of IVIG transmittance over time.
- IVIG transmittance retention [%] 100 ⁇ (IVIG permeability at the time of filtration load 30 L / m 2 ) ⁇ (IVIG permeability at the time of filtration load 2 L / m 2 )
- the clearance index of the bacteriophage ⁇ X174 of the hollow fiber membrane (H) (hereinafter abbreviated as ⁇ X174 clearance) was measured by the method described above.
- IVIG permeability, IVIG permeability retention, IVIG Flux, IVIG Flux retention, and ⁇ X174 clearance are summarized in Table 2 as protein permeation / bacteriophage removal performance of the hollow fiber membrane.
- Example 6 In the same manner as in Example 1, except that the nozzle temperature was changed to 57 ° C, the air gap length was changed to 10mm, and the external coagulation liquid temperature was changed to 63 ° C, the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 80 ⁇ m.
- the discharge amount of the solution and core liquid was controlled to obtain a hollow fiber membrane (I) having an inner diameter of 276 ⁇ m and a film thickness of 88 ⁇ m.
- the air gap retention time of the hollow fiber membrane was 0.033 seconds.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (I) at the time of winding in the membrane formation process was 33% by weight.
- Example 2 SEM observation, water flux measurement, ⁇ G / 20 mM-PB flux measurement, ⁇ G / PBS as in Example 1. Flux measurement was performed and the Flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention ratio, IVIG Flux, IVIG Flux retention ratio, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Example 7 The composition of the film-forming solution is PSf (Amoco P-3500) 20.0 parts by weight, PVP (K90) 6.0 parts by weight, NMP 33.3 parts by weight, TEG 40.7 parts by weight, the core solution is NMP 38.25 parts by weight, TEG 46
- the inner diameter is about 280 ⁇ m and the film thickness is the same as in Example 1 except that the liquid mixture is .75 parts by weight and 15 parts by weight of RO water, the nozzle temperature is changed to 56 ° C, and the external coagulation liquid temperature is changed to 55 ° C.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so as to be about 80 ⁇ m, and a hollow fiber membrane (J) having an inner diameter of 280 ⁇ m and a film thickness of 83 ⁇ m was obtained.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (J) at the time of winding in the membrane formation process was 32% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, ⁇ G / 20 mM-PB flux measurement, and ⁇ G / PBS flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention ratio, IVIG Flux, IVIG Flux retention ratio, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- the nozzle temperature was set to 65 ° C.
- the external coagulating liquid temperature was set to 55 ° C.
- Two coagulation baths a first coagulation bath and a second coagulation bath, were prepared.
- the first coagulation bath one rod-shaped guide having a diameter of 12 mm was pulled out while changing the traveling direction of the hollow fiber membrane.
- a hollow fiber membrane was introduced into the second coagulation bath. Further, the hollow fiber membrane was run in the second coagulation bath, pulled out from the second coagulation bath, run in the washing tank, performed on-line washing, and then wound up by a winder.
- the spinning speed is 18 m / min
- the immersion depth of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 250 mm at the deepest part from the liquid surface
- the travel distance of the hollow fiber membrane in the first coagulation bath is 800 mm
- the second coagulation bath The travel distance of the hollow fiber membrane was 1200 mm.
- the discharge amount of the membrane forming solution and the core solution was controlled so that the hollow fiber membrane had an inner diameter of about 280 ⁇ m and a film thickness of about 120 ⁇ m.
- the air gap retention time of the hollow fiber membrane calculated from the above conditions is 0.067 seconds
- the coagulation bath residence time is 2.67 seconds for the first coagulation bath, 4 seconds for the second coagulation bath, and 6.67 seconds for the first coagulation bath.
- the residence time of the free running part between the second coagulation bath and the second coagulation bath is 6.67 seconds.
- the washing tank was filled with hot water at 55 ° C., and the running length was set so that the residence time of the hollow fiber membrane in the washing tank was 75 seconds.
- the wound hollow fiber membranes were bundled with a number of 800 and a length of 35 cm, and were immersed in RO water at 85 ° C. in an upright state for 60 minutes and heat-treated. It should be noted that the time from the start of winding to bundling to the heat treatment was set to 10 to 90 minutes.
- the winder was installed in an environment set at 20 ° C so that the processing temperature from winding to bundling was 20 ° C.
- the concentration of the organic component in the core liquid contained in the lumen of the wound hollow fiber membrane was 1.3% by weight. That is, the hollow fiber membrane was aged for 10 to 90 minutes at 20 ° C. while in contact with the core liquid having an organic component concentration of 1.3% by weight.
- the hollow fiber membrane that had been subjected to the heat treatment was immediately immersed in a high-pressure steam sterilizer containing hot water at 40 ° C. in a wet state, and was subjected to high-pressure hot water treatment under conditions of 132 ° C. ⁇ 20 min. Thereafter, hot air drying was performed at 50 ° C. for 10 hours to obtain a hollow fiber membrane (K) having an inner diameter of 282 ⁇ m and a film thickness of 115 ⁇ m.
- SEM observation, water flux measurement, ⁇ G / 20 mM-PB Flux measurement, and ⁇ G / PBS flux measurement were carried out in the same manner as in Example 1 to calculate the flux ratio. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention rate, IVIGIVFlux, IVIG Flux retention rate, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- the composition of the film forming solution was changed to 19.0 parts by weight of PES (4800P), 2.0 parts by weight of PVP (K90), 35.55 parts by weight of NMP, and 43.45 parts by weight of TEG so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 140 ⁇ m.
- a hollow fiber membrane (L) having an inner diameter of 278 ⁇ m and a film thickness of 140 ⁇ m was obtained in the same manner as in Comparative Example 1 except that the amount of the membrane-forming solution and core solution discharged was controlled.
- the organic component concentration in the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (L) at the time of winding in the membrane formation process was 1.6% by weight.
- Example 2 In the same manner as in Example 1, SEM observation, water flux measurement, ⁇ G / 20 mM-PB flux measurement, and ⁇ G / PBS flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention ratio, IVIG Flux, IVIG Flux retention ratio, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- Comparative Example 7 The composition of the film forming solution was changed to 20.0 parts by weight of PES (4800P), 3.0 parts by weight of PVP (K30), 34.65 parts by weight of NMP, 42.35 parts by weight of TEG, and the core liquid was a mixed liquid of 20 parts by weight of NMP and 80 parts by weight of TEG.
- the film-forming solution and the core solution were adjusted so that the inner diameter was about 280 ⁇ m and the film thickness was about 120 ⁇ m.
- the discharge amount was controlled to obtain a hollow fiber membrane (M) having an inner diameter of 278 ⁇ m and a film thickness of 123 ⁇ m.
- the organic component concentration of the core liquid contained in the lumen of the hollow fiber membrane (M) at the time of winding in the membrane formation process was 2.5% by weight.
- SEM observation, water flux measurement, ⁇ G / 20 mM-PB flux measurement, and ⁇ G / PBS flux measurement were performed, and the flux ratio was calculated. The results are shown in Table 1. Further, in the same manner as in Example 1, IVIG transmittance, IVIG transmittance retention ratio, IVIG Flux, IVIG Flux retention ratio, and ⁇ X174 clearance were measured and calculated. The results are shown in Table 2.
- the porous hollow fiber membrane for protein-containing liquid treatment of the present invention efficiently penetrates the protein, and the permeability, Flux over time. Less sagging and more effective bacteriophage removal performance. It is considered that the specific membrane structure, pure water flux value, and flux ratio, which are the characteristics of the present invention, contribute to exhibiting these excellent characteristics. On the other hand, as is clear from the results of the comparative example, protein permeability and bacteriophage removal performance can be achieved if any specific membrane structure, pure water flux value, or flux ratio is not satisfied. Either of these has become insufficient.
- the porous hollow fiber membrane of the present invention is capable of efficiently separating and removing removal substances such as small-diameter viruses contained in a solution, and at the same time, useful recovery substances such as proteins are efficiently permeated and the permeability, It has the advantage that the permeation rate does not drop over time, and is particularly useful for removing viruses from protein solutions, and greatly contributes to the industry.
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Abstract
【課題】 溶液に含まれる小径ウィルスなどの除去物質を効率よく分離除去することができ、同時に、タンパク質などの有用回収物質が効率よく透過し、その透過率の経時的な落ち込みが少ない多孔質中空糸膜を提供することにある。 【解決手段】 本発明の多孔質中空糸膜は、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とする。また、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とする。
Description
本発明は、タンパク質溶液などの水性流体に含まれるウィルス等の微粒子を分離するのに適した多孔質中空糸膜に関する。詳しくは、好ましくは疎水性高分子と親水性高分子からなり、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とし、タンパクなどの成分を含む水性流体からウィルス等の微粒子を分離するのに好適な多孔質中空糸膜に関するものである。
また、好ましくは疎水性高分子と親水性高分子からなり、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とするタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜に関するものである。
また、好ましくは疎水性高分子と親水性高分子からなり、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とするタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜に関するものである。
水性流体の処理を目的とした中空糸膜は、精密濾過、限外濾過などの工業用途や、血液透析、血液濾過、血液透析濾過などの医療用途に広く利用されている。特に近年、バイオ医薬品や血液製剤の製造工程において、有用成分であるタンパク質の溶液からウィルスなどの病原性物質を除去し、安全性を高める技術が求められている。
非特許文献1によると、血漿分画製剤のウィルス除去・不活化工程に関しては、二つ以上の異なるウィルス不活化および除去工程に取り組むことが望ましいとされている。非特許文献2の記載によれば目標値としての達成すべきLRVを4程度とする、とある。さらに、非特許文献3では『特にウィルス除去・不活化工程に関して、本邦では、「血漿分画製剤のウイルスに対する安全性確保に関するガイドラインについて」医薬発第1047号(平成11年8月30日)のなかで、「二つ以上の異なるウイルス不活化及び除去工程について検討することが望ましい」と明記されており、また特定のウイルスに対しては製造工程が持つウイルスクリアランス指数の合計(総ウイルスクリアランス指数)9以上が要求される。』との記載がある。なお、上記LRVとは非特許文献1で次のように示されているウィルスクリアランス指数Rとほぼ同義である。
ウィルスクリアランス指数R = log ((V1×T1)/(V2×T2))
V1 工程処理前の容量 T1 工程処理前のウィルス力価
V2 工程処理後の容量 T2 工程処理後のウィルス力価
ウィルスクリアランス指数R = log ((V1×T1)/(V2×T2))
V1 工程処理前の容量 T1 工程処理前のウィルス力価
V2 工程処理後の容量 T2 工程処理後のウィルス力価
ウィルス除去・不活化法は、加熱処理、ガンマ線や紫外線照射などの光学的処理、低pH処理などの化学処理、エタノール分画法や硫酸アンモニウム分画法などの沈殿分画、膜濾過による除去などがあるが、タンパク質溶液からのウィルス除去では、タンパク質の変性を招くことのない膜濾過法が注目されている。
一方、バイオ医薬品や血液製剤の製造工程においては、生産性の観点から、有用成分であるタンパク質が効率よく透過して回収されなければならない。ところが、分離除去の対象がパルボウィルスなど小径のウィルスである場合には特に、ウィルスの除去特性と有用タンパク質の透過特性を同時に満足するのは困難であった。
特許文献1では、特定の最大孔径を有し、単量体の占める割合が80wt%以上である3wt%ウシ免疫グロブリンを0.3MPaで低圧濾過した時の、濾過開始時から5分間の平均透過速度(グロブリン透過速度A)と、濾過開始後55分経過時から5分間の平均透過速度(グロブリン透過速度B)、最大孔径の関係をパラメータ化した親水性微多孔質膜が開示されている。この膜の構成要件は、次のとおりである。
(1)最大孔径10~100nm
(2)グロブリン透過速度A>0.0015×最大孔径(nm)2.75
(3)グロブリン透過速度B/グロブリン透過速度A>0.2
(1)最大孔径10~100nm
(2)グロブリン透過速度A>0.0015×最大孔径(nm)2.75
(3)グロブリン透過速度B/グロブリン透過速度A>0.2
ここで、(1)の要件は、明細書第3ページ第21行~第27行に記載されているように、感染性ウィルス除去に必要とされる孔径を記載したにすぎない。(2)の要件は、微細孔の最大孔径から計算されるある値よりもグロブリン透過速度Aが大きいことを求めており、タンパク溶液からのウィルス除去を目的とする膜においては、タンパク溶液の透過速度は大きいほうが好ましいのは、自明であるから、目標特性を記載したに過ぎない。(3)の要件は、タンパク溶液の透過速度が経時的に低下しないことを求めており、これもまた、タンパク溶液からのウィルス除去を目的とする膜において求められる目標特性の記載に過ぎない。その他、ブタパルボウィルスに対する対数除去率が3以上である親水性微多孔膜、単量体の占める割合が80wt%以上である3wt%ウシ免疫グロブリンを0.3MPaで低圧濾過した時の、濾過開始時から3時間の積算透過量が50リットル/m2以上である親水性微多孔膜などが下位請求項に記載されているが、これらはウィルスが効率的に除去され、タンパク溶液の透過量が高いという、タンパク溶液からのウィルス除去を目的とする膜の目標特性を記載したのみであり、高タンパク透過かつ高ウィルス除去の膜を得るという課題に対して、有用かつ具体的な情報を与えているわけではない。
さらに、開孔率の大きい粗大構造層と、開孔率の小さい緻密層を有する微多孔膜についても開示されているが、そもそもここでは実質的に、熱誘起相分離によって均質構造を作りやすいポリフッ化ビニリデン(以下PVDFと略記する)製の中空糸膜について議論されており、例えば、透水性能が高いことなどから血液透析膜の素材として広く使用されているポリスルホン系樹脂などの素材に、この技術をそのまま適用するのは困難である。
特許文献2では開孔率の大きい粗大構造層と、開孔率の小さい緻密層を有する微多孔膜について開示されているが、ここでも素材として想定されているのは実質的にPVDFである。PVDFは物理的強度に優れている反面、疎水性の素材であるためタンパク質等の吸着、膜の汚染や目詰まりが生じやすく、濾過速度が急激に低下してしまう。この好ましくない特性を改善するため、膜への親水性付与が必要となるが、一般的にPVDF素材の膜は製膜後の後処理によって親水性への改質を行わなければならず、親水性高分子とのブレンド状態で製膜することが一般的なポリスルホン系樹脂と比べて、煩雑な製造工程となってしまう短所がある。
特許文献3では、PhiX174に対する少なくとも4.0の初期LRVを有し、表面がヒドロキシアルキルセルロースで親水化されたウィルス保持限外ろ過膜が開示されている。ここで開示された技術では、親水化が特殊な親水性ポリマーによってなされており、汎用性に欠ける。ポリスルホンなどと、ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマーとのブレンドも例示されているが、ヒドロキシアルキルセルロースでの親水化処理は必須である。また、膜は中空糸型も許容されてはいるが、実質的に平膜型が想定されており、中空糸膜型を得るための十分な説明はなされていない。
特許文献4、特許文献5では5重量 %のヒト血清アルブミン水溶液の透過速度(Jp)と純水の透過速度(Jw)の比(Jp/Jw)が1/50以上である高分子多孔質を用いたウィルス除去方法が開示されている。特許文献4では大腸菌ファージφX174の阻止係数が2以上であることが、特許文献5では粒子径30nmの金コロイドの阻止係数が1以上であることが構成要件として記載されているが、いずれにしてもここにある膜特性は、タンパク溶液からのウィルス除去を目的とする膜として、最低限の目標特性を規定したのみであり、高タンパク透過かつ高ウィルス除去の膜を得るという課題に対して、有用かつ具体的な情報を与えているわけではない。また、開示されている主たる膜はセルロースを素材としており、水にぬれた状態での強度が低いため、濾加圧を高く設定することが困難であり、高い透過速度を得ることができない。
特許文献6では、内壁面より壁内部に進むに従って面内空孔率が当初減少し、少なくとも1個の極小部を経過した後、外壁部で再び増大する孔構造を有する高分子多孔質中空糸膜、およびこの膜を用いてタンパク質水溶液を濾過するウィルス除去方法が開示されている。ここで開示された膜構造を端的に表現すれば、膜壁の孔径が、膜厚方向で疎-密-疎となる中空糸膜と言える。このような傾斜構造を持ち、特定の平均孔径を有するのが、高効率でウィルスを除去し、タンパク質を変性させることなく、高透過効率でタンパク質を回収するのに好適であるとされている。素材として種々の高分子物質が例示されてはいるが、実質的には再生セルロースを用いた技術であり、ここで開示された技術を多くの素材に汎用的に展開することは困難である。また、セルロース素材の欠点は既に述べたとおりである。
非特許文献4や非特許文献5では、塩の添加やDNase処理よってタンパクの凝集が解消されることにより、タンパクの透過率やタンパク溶液の透過速度が向上することが報告されている。確かに、塩濃度がタンパク質の存在状態に影響を与え、このように透過効率が向上することは充分に考えられるが、塩濃度が膜表面とタンパクの相互作用に影響し、透過効率を増減させることは注目されていない。
医薬発第1047号(平成11年8月30日)((社)日本血液製剤協会理事長あて厚生省医薬安全局長通知)
PDA Journal of GMP and Validation in Japan, Vol.7,No.1,p.44 (2005)
PDA Journal of GMP and Validation in Japan, Vol.9, No.1,p.6 (2007)
Journal of Membrane Science, 210 (2002), 369-378
Journal of Membrane Science, 236 (2004), 137-144
本発明の課題は、溶液に含まれるウィルスなどの除去物質を効率よく分離除去することができ、同時に、タンパク質などの有用回収物質が効率よく透過し、その透過特性の経時的な落ち込みが少ない多孔質中空糸膜を提供することにある。
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意検討した結果、特定の構成により上記課題を解決することができ、本発明に至った。
すなわち、本発明1の多孔質中空糸膜は、
(1) 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とする。
(2) 内径が200~400μm、膜厚が50~200μmであることを特徴とする。
(3) 疎水性高分子と親水性高分子を含んでなることを特徴とする。
(4) 疎水性高分子がポリスルホン系高分子であることを特徴とする。
(5) 親水性高分子がポリビニルピロリドンであることを特徴とする。
(6) タンパク質溶液からウィルスを分離するために使用される膜であることを特徴とする。
また、本発明2のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、
(7) 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とする。
(1) 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とする。
(2) 内径が200~400μm、膜厚が50~200μmであることを特徴とする。
(3) 疎水性高分子と親水性高分子を含んでなることを特徴とする。
(4) 疎水性高分子がポリスルホン系高分子であることを特徴とする。
(5) 親水性高分子がポリビニルピロリドンであることを特徴とする。
(6) タンパク質溶液からウィルスを分離するために使用される膜であることを特徴とする。
また、本発明2のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、
(7) 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とする。
本発明の多孔質中空糸膜は、タンパク質溶液からのウィルス分離に利用が可能であり、特にウィルスを効率よく除去することができるのと同時に、タンパク質が効率よく透過し、その透過特性の経時的な落ち込みが少ないことから、バイオ医薬品や血液製剤の製造工程において、有用成分であるタンパク質の溶液からウィルスなどの病原性物質を除去するための膜として好ましく利用され得る。
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の多孔質中空糸膜は、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなることが好ましい。「ドット状またはスリット状の開孔を有する」とは、走査型電子顕微鏡(SEM)により撮影した10000倍の像を目視で観察したとき、構造構成部分の存在する領域(実部)を背景とし、構造構成部分の存在しない領域(空孔部分、虚部)が円状、楕円状、スリット状に存在することを意味する。また、「網目構造」とは、実部が三次元的に網目状に広がっている構造のことを、「微粒子集合体構造」とは、多数の粒状実部が直接または筋状の実部を介して連結している構造を意味する。表面構造の具体例を図1~図6に示す。本発明においては、濾過下流側表面が図3、図4、図5、図6に示されるような構造であり、濾過上流側表面が図1、図2に示されるような構造であることが好ましい。
本発明の多孔質中空糸膜は、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなることが好ましい。「ドット状またはスリット状の開孔を有する」とは、走査型電子顕微鏡(SEM)により撮影した10000倍の像を目視で観察したとき、構造構成部分の存在する領域(実部)を背景とし、構造構成部分の存在しない領域(空孔部分、虚部)が円状、楕円状、スリット状に存在することを意味する。また、「網目構造」とは、実部が三次元的に網目状に広がっている構造のことを、「微粒子集合体構造」とは、多数の粒状実部が直接または筋状の実部を介して連結している構造を意味する。表面構造の具体例を図1~図6に示す。本発明においては、濾過下流側表面が図3、図4、図5、図6に示されるような構造であり、濾過上流側表面が図1、図2に示されるような構造であることが好ましい。
被濾過液は上流側膜表面から膜厚部分内部へと導入される。本発明の多孔質中空糸膜は上流側膜表面が、網目構造または微粒子集合体構造からなる三次元構造となっているのが特徴であるが、このような構造は被濾過液に含まれる夾雑物、懸濁物、凝集物など比較的大きな被除去物質を効率的に除去する効果を発揮する。これらの被除去物質は三次元構造によって除去されるので、膜表面に堆積層を形成しにくく、濾過速度の低下を緩和することが可能となる。被濾過液は膜厚部分中心領域を通過して、最終的に濾過下流側表面から濾液として回収される。濾過下流側表面がドット状開孔またはスリット状開孔構造となることで、濾過の最終段階でのスクリーン除去効果が発揮され、ウィルスなどの微小被除去物質が効率的に除去される。このような機構から、本発明の膜構造がウィルスの効率的除去と、タンパク質の効率的透過・回収に好適であると考えられる。
本発明の多孔質中空糸膜は、濾過上流側が中空糸膜内腔側であっても、中空糸膜外壁側であってもよいが、濾過を実施する際に付与する圧力に対する耐久性という視点から、中空糸膜内腔側を濾過上流側とし、中空糸膜の内側から外側に向けて濾過するのが好ましい。
本発明の多孔質中空糸膜は、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ実質的にマクロボイドを持たない構造からなることが好ましい。「膜厚部分の中心領域」とは、内表面から膜厚の20%に相当する距離だけ外表面側の位置と、外表面から膜厚の20%に相当する距離だけ内表面側の位置に挟まれた領域を意味し、「実質的に均質な構造」とは、1000倍のSEM像を目視で観察したとき、構造の不均一性が確認できないことを意味する。具体的には、図7、図8にあるような構造が「膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造」である。図9では中心領域が内面から外面方向に向かって疎-密となっており、図10では中心領域が内面から外面方向に向かって密-疎-密となっており、図11では中心領域にマクロボイドが包含されている上に、疎密構造が複雑に変遷している。これらはいずれも本発明においては好ましくない構造である。なお、図7~図11において、像の中央にある両矢印の示す範囲が「膜厚部分の中心領域」であり、両側の両矢印の示す範囲が膜厚部分の内面側領域と外面側領域である。
本発明において「実質的にマクロボイドを持たない」とは、膜厚部分の、異なる領域を5視野撮影したSEM像(1000倍)を目視で観察したとき、いずれの視野においても、均質な膜厚部分の構造と比較して明らかに円状または楕円状または雫型状に膜の実部分が欠落した空孔領域、すなわちマクロボイドが観察されないことを意味する。
免疫グロブリン溶液中からの小径ウィルスの分離除去など、サイズが極端に違っていないものの共存する溶液からウィルスを分離するには、均質膜を利用するのが好ましい。なぜなら、均質な構造を厚み方向にとることで、多くの層で分離を何度も繰り返すような擬似的多段階の効果が期待できるからである。また、このような構造とすることで、万一膜厚部分の一部に欠陥があってそこでの被除去物質トラップがなされなかったとしても、膜厚部分のどこかでとめられる可能性が高く、膜全体として被除去物質リークのリスクを低減することができる。中心領域が均質構造となっていることにより、このようなメリットを得ることができタンパク質の溶液からウィルスなどの物質を除去するのに好適である。マクロボイドの存在は、このような効果を期待できる領域を狭めてしまうことになるので好ましくない。
本発明の多孔質中空糸膜は、純水の透過速度(以下純水Fluxと略記する)が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度(以下γG Fluxと略記する)が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とする。なお、「γG Fluxが純水Fluxの30~100%であること」とは、純水Fluxに対するγG Fluxの比を「Flux比」としたとき、「Flux比が30~100%であること」と同じ意味であるので、以下、このように表現することがある。純水Fluxは、多孔質膜の孔径を示す目安となる。純水Fluxが上記の数値よりも小さいと、孔径が過度に小さくなってしまい、効率よくタンパク質を透過させるのが困難になってしまう。また、透水量が小さいので濾液回収の効率が低下してしまう。純水Fluxが上記の数値よりも大きいと、孔径が過度に大きくなってしまい、ウィルスなどの除去物質を効率よく分離除去するのが困難になってしまう。純水Fluxは、40~200 L/(h・m2・bar)がより好ましく、70~130 L/(h・m2・bar)がさらに好ましい。また、Flux比は60%以上がより好ましく、85%以上がさらに好ましい。
濾液に回収されるべき成分であるタンパク質は、濾過プロセスを通じて高い透過率を示すことが好ましい。どの程度の透過率が必要であるかは、タンパク質の用途、種類、濃度などにより一概に決定することは困難であるが、一般的には95%以上であることが好ましい。95%を下回ると、濾過によるタンパク質ロスが大きくなり、生産性が低下することとなる。膜濾過では濾過時間が長くなるに従い、詰まりによって透過率が低下してくる可能性がある。そこで、濾過プロセス初期の透過率に対する、充分長時間濾過を行った時点での透過率(透過率保持率)が、タンパク質透過の経時的安定性を示す指標となる。透過率は時間とともに低下する可能性があること、透過率は濾過プロセス全体を通じて常に95%以上であることが好ましいことを考慮し、透過率保持率は95%以上であることが好ましい。ここで、「充分長時間濾過を行った時点」がどの程度であるかは、タンパク質の用途、種類、濃度などにより一概に決定することは困難であるが、タンパク溶液中から小径ウィルスを分離除去するプロセスでは、膜にかかる最大濾過負荷量を50~200L/m2程度に設定するのが一般的なので、少なくとも50L/m2の1/2、すなわち、25L/m2程度の濾過負荷をかけられた時点と考えるのが妥当であると言える。また、生産効率を向上させる目的で、被処理タンパク溶液の濃度は高くなりつつあるのが近年の傾向であるので、タンパク質の透過性を考える場合には1%程度の濃度で判断するのが妥当である。すなわち、1%タンパク質溶液での、タンパク質透過率が95%以上であり、かつ透過率保持率が約25L/m2の濾過負荷時点で95%以上であることがタンパク質溶液の濾過に使用される膜として好ましい特性である。
本発明者らの検討によると、Flux比が、タンパク質透過の経時的な安定性を示す指標となることがわかった。すなわち、γG Fluxが純水Fluxの30%を下回ると、初期のタンパク透過率が高値であったとしても、経時的な落ち込みが大きく、タンパク質透過率保持率が低下してしまう。ウシγ-グロブリン溶液では、溶質であるウシγ-グロブリンが存在することによって透過速度は低下するのが普通である。γG Fluxが純水Fluxの100%を超えるのは、膜構造に欠陥があるか、タンパク質との接触によって極端に構造が変化してしまうと考えられ、いずれも実用的でない。詳細は不明であるが、次のような機構を考えることができる。膜表面においては、膜素材とタンパク質が微妙な相互作用を及ぼしあっていると考えられる。膜素材とタンパク質の相互作用が穏やかな場合、膜表面へのタンパク質の吸脱着が可逆的であるため、膜表面へのタンパク質の吸着は実質的に無視できるか、あるいは非常に軽微であると考えられる。このような膜表面環境で測定されるγG Fluxは、タンパク質非存在下で測定した純水Fluxと比較して大幅には低下しない。このような状態では、タンパクが膜を通過する際の抵抗は充分に低く抑えられるので、タンパク質が効率よく安定して透過すると考えられる。膜素材とタンパク質が強く相互作用する場合、コート層は非可逆的に積層していくことが考えられるので、タンパク質透過の抵抗が大きくなり、タンパク質透過は落ち込んでいくと考えられる。なお、本発明でのγG Fluxは次の測定条件により求めた。液温は25℃に調整した。
(1)ウシγ-グロブリンをリン酸緩衝生理食塩水(以下PBSと略記する)に0.1重量%となるよう溶解した溶液を調製した。
(2)乾燥状態の中空糸膜にこの溶液を導入し、1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり1Lの濾液を通じて馴化した。馴化処理中の濾液は廃棄した。
(3)馴化処理後、引き続き1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり2.5Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。
(4)濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間からγG Fluxを算出した。
(1)ウシγ-グロブリンをリン酸緩衝生理食塩水(以下PBSと略記する)に0.1重量%となるよう溶解した溶液を調製した。
(2)乾燥状態の中空糸膜にこの溶液を導入し、1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり1Lの濾液を通じて馴化した。馴化処理中の濾液は廃棄した。
(3)馴化処理後、引き続き1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり2.5Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。
(4)濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間からγG Fluxを算出した。
なお、上記「タンパク質の相互作用が穏やかな」膜表面とは、具体的には、タンパク質との接触によってタンパク質のコンフォメーションに変化を与えにくく、タンパク質を吸着しにくい特性を持った表面であると言える。このような膜表面がどのような状態にあるのか、どのような手段で得ることができるかは一概に決定することは困難であるが、ひとつには、充分な親水性が付与されていることが重要な要因であると考えられる。後述する親水性高分子の存在量、存在状態を最適化する手法により、このような好ましい膜表面を得ることが可能となる。
本発明のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度(以下γG/20mM-PB Fluxと略記する)がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度(以下γG/PBS Fluxと略記する)の30~100%であることを特徴とする。なお、「γG/20mM-PB FluxがγG/PBS Fluxの30~100%であること」とは、γG/PBS Fluxに対するγG/20mM-PB Fluxの比を「Flux比」としたとき、「Flux比が30~100%であること」と同じ意味であるので、以下、このように表現することがある。本発明者らの検討によると、Flux比が、タンパク質透過の経時的な安定性を示す指標となることがわかった。すなわち、γG/20mM-PB
FluxがγG/PBS Fluxの30%を下回ると、初期のタンパク質透過率が高値であったとしても、経時的な落ち込みが大きく、タンパク質透過率保持率が低下してしまう。一般的に、グロブリンなどのタンパク質は溶液のイオン強度が低いと凝集しやすい傾向にあり、低イオン強度溶液の膜透過速度は高イオン強度溶液の膜透過速度よりも低くなるのが普通である。γG/20mM-PB
FluxがγG/PBS Fluxの100%を超えるのは、膜構造に欠陥があるか、低イオン強度タンパク質溶液との接触によって極端に構造が変化してしまうと考えられ、いずれも実用的でない。
FluxがγG/PBS Fluxの30%を下回ると、初期のタンパク質透過率が高値であったとしても、経時的な落ち込みが大きく、タンパク質透過率保持率が低下してしまう。一般的に、グロブリンなどのタンパク質は溶液のイオン強度が低いと凝集しやすい傾向にあり、低イオン強度溶液の膜透過速度は高イオン強度溶液の膜透過速度よりも低くなるのが普通である。γG/20mM-PB
FluxがγG/PBS Fluxの100%を超えるのは、膜構造に欠陥があるか、低イオン強度タンパク質溶液との接触によって極端に構造が変化してしまうと考えられ、いずれも実用的でない。
前記Flux比が高い場合に、経時的に安定したタンパク質透過が実現される機構の詳細は不明であるが、次のような機構を考えることができる。膜表面においては、膜素材とタンパク質が微妙な相互作用(ある種の可逆的な吸脱着)を及ぼしあっていると考えられる。この際、タンパク質溶液に含まれるイオンは、膜表面からタンパク質を引き剥がす作用(吸脱着のバランスを脱着側に傾ける効果)を持つ。従って、タンパク質溶液のイオン強度が強いほうが、膜素材とタンパク質の相互作用は抑制される傾向となる。逆に言えば、イオン強度の低いタンパク質溶液と接触してもなお相互作用が低く抑えられている膜素材・膜表面は、タンパク質に対する相互作用が軽微であり、適合性が高いと考えることができる。すなわち、高イオン強度条件下で測定されるγG/PBS Fluxに対する、低イオン強度条件下で測定されるγG/20mM-PB Fluxの比が高値である膜は、タンパク質に対する相互作用が軽微であり、タンパク質が膜を通過する際の抵抗は充分に低く抑えられるので、タンパク質が効率よく安定して透過すると考えられる。
なお、本発明で言う20mmol/Lリン酸緩衝液(以下20mM-PB)とは、リン酸(PO4
3-)塩および/またはリン酸水素(HPO4
2-)塩および/またはリン酸二水素(H2PO4-)塩および/または遊離リン酸(H3PO4)の合計濃度が20mmol/Lである緩衝液を意味し、pHは6.0~8.0であることが好ましい。また、本発明で言うリン酸緩衝生理食塩水(以下PBSと略記する)とは、リン酸塩によって緩衝作用を付与された等張食塩水溶液を意味し、pHは6.5~7.5であることが好ましい。本発明でのγG/PBS Flux、γG/20mM-PB Fluxは次の測定条件により求めた。液温は25℃に調整した。
(1)ウシγ-グロブリンを所定の緩衝液に0.1重量%となるよう溶解した溶液を調製した。
(2)乾燥状態の中空糸膜にこの溶液を導入し、1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり20Lの濾液を通じて馴化した。馴化処理中の濾液は廃棄した。
(3)馴化処理後、引き続き1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり2.0Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。
(4)濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から透過速度を算出した。
(1)ウシγ-グロブリンを所定の緩衝液に0.1重量%となるよう溶解した溶液を調製した。
(2)乾燥状態の中空糸膜にこの溶液を導入し、1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり20Lの濾液を通じて馴化した。馴化処理中の濾液は廃棄した。
(3)馴化処理後、引き続き1.0barの濾過圧で、膜面積1m2あたり2.0Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。
(4)濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から透過速度を算出した。
本発明のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜の内径は100~1000μmが好ましく、より好ましくは150~800μmであり、200~400μmがさらに好ましく、250~300μmがさらにより好ましい。また、膜厚は10~500μmが好ましく、より好ましくは20~400μmであり、50~200μmがさらに好ましく、80~100μmがさらにより好ましい。これよりも内径が小さいと、内側から外側に向けて濾過した場合、通液による圧力損失が大きくなり、中空糸膜の長さ方向で濾過圧が不均一になることがある。また、不純物や凝集成分が多く含まれる被処理液を導入した場合、被処理液中の成分により内腔の閉塞などが生じる可能性がある。これよりも内径が大きいと、中空糸膜のつぶれ、ゆがみなどを生じやすくなる。膜厚がこれよりも小さいと、中空糸膜のつぶれ、ゆがみなどを生じやすくなる。これよりも膜厚が大きいと、被処理液が膜壁を通過する際の抵抗が大きくなり、透過性が低下することがある。
本発明の多孔質中空糸膜は、疎水性高分子と親水性高分子を含んでなることが好ましく、疎水性高分子としては、例えば、ポリエステル、ポリカーボネート、ポリウレタン、ポリアミド、ポリスルホン(以下PSfと略記する)、ポリエーテルスルホン(以下PESと略記する)、ポリメチルメタクリレート、ポリプロピレン、ポリエチレン、PVDFなどが例示される。中でも、下記の化1、化2で示される繰返し単位を有するPSf、PESなどのポリスルホン系高分子は高い透水性の膜を得るのに有利であり、好ましい。ここで言うポリスルホン系高分子は、官能基やアルキル基などの置換基を含んでいてもよく、炭化水素骨格の水素原子はハロゲンなど他の原子や置換基で置換されていてもよい。また、これらは単独で使用しても、2種以上を混合して使用してもよい。
本発明における親水性高分子としては、例えば、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン(以下PVPと略記する)、カルボキシメチルセルロース、デンプンなどの高分子炭水化物などが例示される。中でも、ポリスルホン系高分子との相溶性、水性流体処理膜としての使用実績から、PVPが好ましい。これらは単独で使用しても、2種以上を混合して使用してもよい。PVPの分子量としては重量平均分子量10,000~1,500,000のものが好ましく用いられ得る。具体的には、BASF社より市販されている分子量9,000のもの(K17)、以下同様に45,000(K30)、450,000(K60)、900,000(K80)、1,200,000(K90)を用いるのが好ましい。
本発明の高分子多孔質中空糸膜の製造方法はなんら限定されるものではないが、疎水性高分子、親水性高分子、溶媒、非溶媒を混合溶解し、脱泡したものを製膜溶液として芯液とともに二重管ノズルの環状部、中心部から同時に吐出し、空走部(エアギャップ部)を経て凝固浴中に導いて中空糸膜を形成し(乾湿式紡糸法)、水洗後巻き取り、乾燥する方法が例示される。
製膜溶液に使用される溶媒は、N-メチル-2-ピロリドン(以下NMPと略記する)、N,N-ジメチルホルムアミド(以下DMFと略記する)、N,N-ジメチルアセトアミド(以下DMAcと略記する)、ジメチルスルホキシド(以下DMSOと略記する)、ε-カプロラクタムなど、使用される疎水性高分子、親水性高分子の良溶媒であれば広く使用することが可能であるが、疎水性高分子としてPSf、PESなどのポリスルホン系高分子を使用する場合には、NMP、DMF、DMAcなどのアミド系アプロティック溶媒が好ましく、NMPが特に好ましい。なお、本発明においてアミド系溶媒とは、構造中にN-C(=O)のアミド結合を含有する溶媒を意味し、アプロティック溶媒とは、構造中において炭素原子以外のヘテロ原子に直接結合した水素原子を含有していない溶媒を意味する。
また、製膜溶液には高分子の非溶媒を添加するのが好ましい。使用される非溶媒としては、例えば、エチレングリコール(以下EGと略記する)、プロピレングリコール(以下PGと略記する)、ジエチレングリコール(以下DEGと略記する)、トリエチレングリコール(以下TEGと略記する)、ポリエチレングリコール(以下PEGと略記する)、グリセリン、水などが例示されるが、疎水性高分子としてPSf、PESなどのポリスルホン系高分子、親水性高分子としてPVPを使用する場合には、DEG、TEG、PEGなどのエーテルポリオールが好ましく、TEGが特に好ましい。なお、本発明においてエーテルポリオールとは、構造中に少なくともひとつのエーテル結合と、ふたつ以上の水酸基を有する物質を意味する。
詳細な機構は不明であるが、これらの溶媒、非溶媒を使用して調製した製膜溶液を使用することで、紡糸工程における相分離(凝固)が制御され、本発明の好ましい膜構造を形成するのに有利になると考えられる。なお、相分離の制御には、後述の芯液組成や凝固浴中の液(外部凝固液)の組成も重要になる。
製膜溶液中における溶媒/非溶媒の比は、紡糸工程における相分離(凝固)の制御に重要な要因となる。溶媒に対して非溶媒が同量かやや過剰気味であることが好ましく、具体的には、溶媒/非溶媒が重量比で25/75~50/50であることが好ましく、30/70~50/50であることがより好ましく、35/65~50/50であることがさらに好ましい。溶媒の含有量がこれよりも少ないと凝固が進行しやすくなり、膜構造が緻密化しすぎて透過性が低下してしまう。また、溶媒含有量がこれよりも多いと相分離の進行が過度に抑制され、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなり好ましくない。
製膜溶液における疎水性高分子の濃度は、該溶液からの製膜が可能であれば特に制限されないが、10~40重量%が好ましく、10~30重量%がより好ましく、15~25重量%がさらに好ましい。高い透過性を得るには疎水性高分子の濃度は低いほうが好ましいが、過度に低いと強度の低下や、分離特性の悪化を招く可能性があるので、15~25重量%が好ましい。親水性高分子の添加量は、製膜溶液からの製膜に支障をきたすことなく、中空糸膜に親水性を付与し、被処理液濾過時の非特異吸着を抑制するのに十分な量であれば特に制限されないが、製膜溶液における親水性高分子の濃度として2~15重量%が好ましく、2~10重量%がより好ましく、3~8重量%がさらに好ましい。親水性高分子の添加量がこれよりも少ないと、膜への親水性付与が不十分となり、膜特性の保持性が低下する可能性がある。また、これよりも多いと、親水性付与効果が飽和してしまい効率がよくなく、また、製膜溶液の相分離(凝固)が過度に進行しやすくなり、操業性が悪化するのに加え、本発明の好ましい膜構造を形成するのに不利となる。
製膜溶液は、疎水性高分子、親水性高分子、溶媒、非溶媒を混合、攪拌して溶解することで得られる。この際、適宜温度をかけることで効率的に溶解を行うことができるが、過度の加熱は高分子の分解を招く危険があるので、好ましくは30~100℃、より好ましくは40~80℃である。また、親水性高分子としてPVPを使用する場合、PVPは空気中の酸素の影響により酸化分解を起こす傾向にあることから、製膜溶液の調製は不活性気体封入下で行うのが好ましい。不活性気体としては、窒素、アルゴンなどが上げられるが、窒素を用いるのが好ましい。このとき、溶解タンク内の残存酸素濃度は3%以下であることが好ましい。
製膜を行うに際しては、中空糸膜への異物混入による膜構造の欠陥の生成を回避するために、異物を排除した製膜溶液を使用することが好ましい。具体的には、異物の少ない原料を用いる、製膜溶液を濾過し異物を低減する方法等が有効である。本発明では、中空糸膜束の膜厚よりも小さな孔径のフィルターを用いて製膜溶液を濾過してからノズルより吐出するのが好ましく、具体的には均一溶解した製膜溶液を溶解タンクからノズルまで導く間に設けられた孔径10~50μmの焼結フィルターを通過させる。濾過処理は少なくとも1回行えば良いが、濾過処理を何段階かにわけて行う場合は後段になるに従いフィルターの孔径を小さくしていくのが濾過効率およびフィルター寿命を延ばす意味で好ましい。フィルターの孔径は10~45μmがより好ましく、10~40μmがさらに好ましい。フィルター孔径が小さすぎると背圧が上昇し、生産性が落ちることがある。
製膜溶液からは気泡を排除するのが欠陥のない中空糸膜を得るのに有効である。気泡混入を抑える方法としては、製膜溶液の脱泡を行うのが有効である。製膜溶液の粘度にもよるが、静置脱泡や減圧脱泡を用いることができる。この場合、溶解タンク内を常圧-100~常圧-750mmHgに減圧した後、タンク内を密閉し30分~180分間静置する。この操作を数回繰り返し脱泡処理を行う。減圧度が低すぎる場合には、脱泡の回数を増やす必要があるため処理に長時間を要することがある。また減圧度が高すぎると、系の密閉度を上げるためのコストが高くなることがある。トータルの処理時間は5分~5時間とするのが好ましい。処理時間が長すぎると、減圧の影響により製膜溶液の構成成分が分解、劣化することがある。処理時間が短すぎると脱泡の効果が不十分になることがある。
中空糸膜の製膜時に使用される芯液の組成は、製膜溶液に含まれる溶媒および/または非溶媒を主成分とした液体を使用するのが好ましい。ただし、製膜溶液に含まれる溶媒のみでは、内腔壁面での凝固が過度に抑制されるため好ましい表面構造を得ることができない。従って、溶媒と非溶媒の混合液、非溶媒のみ、溶媒と水の混合液、非溶媒と水の混合液、溶媒と非溶媒と水の混合液のいずれかを使用するのが好ましい。芯液に含まれる有機成分の量は、50~100重量%が好ましく、60~100重量%がより好ましい。より詳細には、芯液を溶媒と水の混合液とする場合は、有機成分の量が50~65重量%、芯液を非溶媒と水の混合液とする場合は、有機成分の量が60~100重量%、芯液を溶媒と非溶媒と水の混合液とする場合は、製膜溶液の溶媒/非溶媒比率と同一とした上でこれを水で希釈し、有機成分濃度を60~95重量%とするのが好ましい。有機成分の含有量がこれよりも少ないと凝固が進行しやすくなり、膜構造が緻密化しすぎて透過性が低下してしまう。また、有機成分含有量がこれよりも多いと相分離の進行が過度に抑制され、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなる。
外部凝固液の組成は、製膜溶液に含まれる溶媒および非溶媒と、水との混合液を使用することが好ましい。この際、芯液中に含まれる該溶媒と該非溶媒の比率は、製膜溶液の溶媒/非溶媒比率と同一であることが好ましい。製膜溶液に使用されるのと同一の溶媒および非溶媒を、製膜溶液中の比率と同一にして混合し、これに水を添加して希釈したものが好ましく用いられる。外部凝固液中の水の含量は、20~70重量%、好ましくは30~60重量%である。水の含有量がこれよりも多いと凝固が進行しやすくなり、膜構造が緻密化しすぎて透過性が低下してしまう。また、水含有量がこれよりも少ないと相分離の進行が過度に抑制され、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなる。また、外部凝固液の温度は、低いと凝固が進行しやすくなり、膜構造が緻密化しすぎて透過性が低下することがある。また、高いと相分離の進行が過度に抑制され、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまうので、40~70℃、好ましくは45~65℃である。
本発明において、膜構造を制御する因子のひとつには、ノズルの温度が挙げられる。ノズルの温度は、低いと凝固が進行しやすくなり、膜構造が緻密化しすぎて透過性が低下してしまう。また、高いと相分離の進行が過度に抑制され、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまうので、30~85℃、好ましくは40~75℃である。
本発明の高分子多孔質中空糸膜を得る好ましい製造方法としては、芯液とともに二重管ノズルから吐出した製膜溶液を、エアギャップ部分を経て外部凝固液を満たした凝固浴中に導いて中空糸膜を形成する乾湿式紡糸法が例示されるが、ノズルから吐出された製膜溶液の、エアギャップ部分での滞留時間が膜構造を制御する因子のひとつとなり得る。滞留時間が短いと、エアギャップ部分での相分離による凝集粒子の成長が抑制された状態で外部凝固液によりクエンチされるので、外表面が緻密化して透過性が低下してしまう。また、外表面の緻密化により、得られた中空糸膜が固着しやすい傾向となって好ましくない。滞留時間が長いと、大孔径の空孔が生じやすくなり、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまう。エアギャップにおける滞留時間の好ましい範囲は0.01~2秒であり、0.05~1秒がより好ましい。
上記、比較的滞留時間の短いエアギャップ部分を経て、凝固浴に導かれた中空糸膜は、芯液からの凝固が進行しながら、外部からの凝固はある程度抑制された状態で外部凝固液と接触する。外部凝固液通過中に中空糸膜は完全に凝固を完了し、構造が決定されて引き上げられる。凝固浴内での滞留時間が膜構造の制御には重要であり、具体的には1~20秒が好ましく、4~15秒がより好ましい。凝固浴内での滞留時間がこれよりも短いと凝固が不十分となり、これよりも長いと製膜速度の低下や凝固浴の大型化が必要となりいずれも好ましくない。また、同一組成、同一温度の外部凝固液を満たした凝固浴を2個準備し、第1の凝固浴に導いた中空糸膜を1度引上げ、第2の凝固浴に外部凝固液に浸漬させることで、好ましい分離特性、膜構造を持った中空糸膜を得ることができる。この際、第1の凝固浴滞留時間と第2の凝固浴滞留時間の比は、2:8~5:5と第2の凝固浴滞留時間をやや長めに設定するのが好ましい。詳細な機構は不明であるが、外部凝固液通過途中での中空糸膜引上げ・再浸漬の際の微妙な張力変化、外部凝固液通過途中で空気の層に接することによる微妙な凝固環境変化が好ましい影響を与えている可能性が考えられる。この微妙な凝固環境変化履歴を与えるために、第1凝固浴と第2凝固浴の間における中空糸膜の滞留時間は、1~15秒が好ましく、4~10秒がより好ましい。また、第1凝固浴と第2凝固浴の間では、等速で回転する2個以上のローラーで中空糸膜の走行方向を変えた後、第2凝固浴に導くのが好ましい。このようにすることで、空気走行で微妙に乾燥しながら中空糸膜はやや収縮し、これが等速のローラーで速度を制御されているため、微妙な張力変化が与えられることになる。
本発明の多孔質中空糸膜を得るには、内外両表面からの凝固進行を微妙に制御する必要があるが、その際に注意しなければならない点として、中空糸膜の凝固浴中における屈曲がある。乾湿式紡糸においては、通常、下向きに配列したノズルから製膜溶液を重力方向に吐出、エアギャップ部分を経て凝固浴に導き、凝固浴内で進行方向を上向きに変更して凝固浴から引き上げ、水洗浴での洗浄を経て巻き取るのが一般的である。本発明の高分子多孔質中空糸膜は、凝固浴内突入直後には完全に構造が決定しない状態にあるので、凝固浴内での方向転換が急激に行われると、膜構造の欠陥や破壊を招くことがある。具体的には、多点ガイドを使用し、複数のポイントで徐々に方向を転換する方法が好ましい。
製膜速度(紡速)については、欠陥のない中空糸膜が得られ、生産性が確保できれば特に制限されないが、好ましくは、5~40m/分、より好ましくは10~30m/分である。これよりも紡速が低いと、生産性が低下することがある。これよりも紡速が高いと、上記の紡糸条件、特にエアギャップ部分での滞留時間や、凝固浴内での滞留時間を確保するのが困難となる。
本発明の多孔質中空糸膜は、濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなるという構成になっている。このように特徴的な構造を得るには、これまで述べたような好ましい製膜溶液組成、芯液組成、外部凝固液組成、各種温度制御、滞留時間などを組み合わせ、製膜条件を最適化するのが肝要である。
中空糸膜は製膜後、洗浄工程を経て得られる。中空糸膜の洗浄方法は特に制限されないが、洗浄効果、安全性、簡便性から、温水を満たした洗浄浴内に製膜された中空糸膜をそのままオンラインで走行させ、しかる後に巻き取るのが好ましい。この際使用される温水の温度は、常温~100℃が好ましく、30℃~90℃がさらに好ましい。これよりも低温では洗浄効果が不十分になってしまう可能性が高く、これよりも高温では洗浄液として水が使用できないことがある。
製膜後、洗浄を経て得られた中空糸膜は、使用中や洗浄操作による膜特性の変化を抑制し、膜特性の保持性・安定性、膜特性の回復性を確保する目的で、加熱処理を施すのが好ましい。この加熱処理を熱水への浸漬処理とすることで、同時に、中空糸膜に残存する溶媒や非溶媒などを洗浄・除去する効果も期待できる。本発明の多孔質中空糸膜を得るには、この熱水中への浸漬処理に先立ち、芯液を中空糸内腔に接触させた状態で、しばらくエージングするのが好ましい手法である。このエージングを施すことによって、膜中の親水性高分子の含量、存在状態が最適化されることにより、純水Flux、γG Flux、γG/20mM-PB Flux、γG/PBS Fluxが最適化されると考えられる。この工程における芯液の濃度は有機成分濃度として10~60重量%、温度は15~30℃、時間は10~180分が好ましい。これよりも有機成分濃度が低い場合、温度が低い場合、時間が短い場合には、過剰な親水性高分子が残存しやすくなり、膜特性の経時的変化、実使用時の溶出による被処理液の汚染などの不具合を招く可能性が大きくなってしまう。これよりも有機成分濃度が高い場合、温度が高い場合、時間が長い場合には、内腔表面構造の破壊、親水性高分子の過度の抽出などにより、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまう。
上記エージングを実施するには、完全に有機成分を除去した中空糸膜を再度溶媒/非溶媒の水溶液に浸漬してもよいが、製膜時の芯液組成を微調整したり、オンラインでの洗浄条件を調整したりすることで芯液中の有機成分濃度を上記の好ましい範囲とし、そのまま上記好ましい温度、時間でエージングするのが簡便である。芯液の好ましい組成は既に述べたとおりであるが、紡糸後の芯液に含まれる有機成分濃度が上記10~60重量%の範囲に収まるように、という観点からも組成を考慮するのが好ましい。オンライン水洗の条件は、温度としては既に述べたとおり30℃~90℃が特に好ましいが、水洗浴での中空糸膜の滞留時間は5~100秒であることが好ましい。具体的には、例えば、芯液をNMP、TEG、水の混合液(組成重量比38.25/46.75/15)とし、オンライン水洗の温度を55℃、滞留時間を11秒としたときには、得られた中空糸膜の内腔の芯液における有機成分濃度は35重量%であった。
上記エージングを経た中空糸膜の加熱処理に使用される熱水の温度は、40~100℃、より好ましくは60~95℃、処理時間は30~90分、より好ましくは40~80分、さらに好ましくは50~70分である。温度がこれよりも低く、処理時間がこれよりも短いと中空糸膜にかかる熱履歴が不十分となり、膜特性の保持性・安定性が低下する可能性があり、また、洗浄効果が不十分となり溶出物が増加する可能性が高くなる。温度がこれよりも高く、処理時間がこれよりも長いと、水が沸騰してしまったり、処理に長時間を要したりするため生産性が低下することがある。熱水に対する中空糸膜の浴比は、中空糸膜が十分に浸る量の熱水を使用すれば、特に制限されないが、あまり多量の熱水を使用するのは、生産性が低下する可能性がある。またこの加熱処理の際、中空糸膜を適当な長さのバンドル状にして直立させた状態で熱水に浸漬すると、内腔部分にまで熱水が到達しやすく、加熱処理・洗浄効果の観点から好ましい。
本発明の多孔質中空糸膜は、上記加熱処理の後、ただちに高圧熱水で処理するのが好ましい。具体的には、水没状態で高圧蒸気滅菌機にセットし、通常の高圧蒸気滅菌条件である処理温度120~134℃、処理時間20~120分で処理するのが好ましい。この際、上記加熱処理の完了した中空糸膜は、濡れた状態のまま、高温の状態のまま速やかに高圧熱水処理を開始するのが好ましい。詳細な機構は不明だが、加熱処理で膜の温度が上昇し「緩んだ」状態でさらに高圧熱水処理することで、過剰な親水性高分子が除去されるのと同時に存在状態が最適化される、純水Flux、γG Flux、γG/20mM-PB Flux、γG/PBS
Fluxが最適化されると考えられる。上記の範囲よりも処理温度が低い場合、処理時間が短い場合、処理条件がマイルドすぎるために過剰親水性高分子の除去、存在状態の最適化が不十分となり、膜特性の経時的変化、実使用時の溶出による被処理液の汚染などの不具合を招く可能性が大きくなってしまう。上記の範囲よりも処理温度が高い場合、処理時間が長い場合、処理条件が過酷であるために、膜構造の破壊、親水性高分子の過度の抽出などにより、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまう。
Fluxが最適化されると考えられる。上記の範囲よりも処理温度が低い場合、処理時間が短い場合、処理条件がマイルドすぎるために過剰親水性高分子の除去、存在状態の最適化が不十分となり、膜特性の経時的変化、実使用時の溶出による被処理液の汚染などの不具合を招く可能性が大きくなってしまう。上記の範囲よりも処理温度が高い場合、処理時間が長い場合、処理条件が過酷であるために、膜構造の破壊、親水性高分子の過度の抽出などにより、分離特性や強度の低下を招く可能性が大きくなってしまう。
本発明のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、上記加熱処理、高圧熱水処理に加え、さらに水による湿潤状態または浸漬状態で放射線照射してもよい。この処理によって親水性高分子の一部が架橋すると同時に、その存在状態が最適化され、純水Flux、γG/20mM-PB Flux、γG/PBS Fluxが最適化されると考えられる。放射線としては例えば、α線、β線、γ線、X線、紫外線、電子線などが利用できるが、滅菌処理としての実績や線量制御の容易性などから、γ線が好ましい。放射線線量は5~100kGyが好ましく、10~50kGyがより好ましい。これよりも線量が小さいと放射線照射の効果が不十分となり、これよりも線量が多いと親水性高分子の過度の架橋や素材の劣化などを招く可能性がある。放射線照射の際に膜を湿潤化または浸漬する水には、添加剤を加えてもよい。添加剤は、亜硫酸塩や多価アルコールなど酸化防止効果、ラジカルトラップ効果のある物質が好ましい。また、湿潤化または浸漬する水を脱気して溶存酸素を除去したり、放射線照射する膜を封入した容器・包装体の内部に不活性ガスを封入したりすることも好ましい。これらの処理により、放射線照射に由来する過剰な活性種が生成予防・除去され、親水性高分子の架橋度合いと存在状態が最適化される効果や、素材の劣化などを回避する効果が期待できる。添加量は添加剤の種類によっても異なるが、亜硫酸塩の場合0.01~1%、好ましくは0.01~0.1%、多価アルコールの場合、0.1~40%、好ましくは1~20%である。これよりも少ないと親水性高分子の過度の架橋や素材の劣化を、これよりも多いと放射線照射効果の過度の阻害を招く可能性がある。
製膜、加熱処理、高圧熱水処理、放射線照射を完了した中空糸膜は、乾燥することによって、最終的に完成する。乾燥方法は、風乾、減圧乾燥、熱風乾燥など通常利用される乾燥方法が広く利用できる。最近、血液処理膜の乾燥などで利用されているマイクロ波乾燥なども利用可能であるが、簡便な装置で効率的に大量の中空糸膜を乾燥できる点で、熱風乾燥が好ましく利用され得る。乾燥に先立って、上記の加熱処理を施しておくことで、熱風乾燥による膜特性の変化も抑制することができる。熱風乾燥時の熱風温度は特に制限されないが、好ましくは40~100℃、より好ましくは50~80℃である。これよりも温度が低いと乾燥までに長時間を要し、これよりも温度が高いと熱風生成のためのエネルギーコストが高くなり、いずれも好ましくない。熱風の温度は、上記の熱水加熱処理の温度よりも低いことが好ましい。
以下、本発明の有効性を実施例を挙げて説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、以下の実施例における評価方法は以下の通りである。
1.ミニモジュールの作製
中空糸膜を約30cmの長さに切断し、両末端をパラフィンフィルムで束ねて中空糸膜束を作製した。この中空糸膜束の両端をパイプ(スリーブ)に挿入し、ウレタンポッティング剤で固めた。端部を切断して、両末端がスリーブで固定された両端開口ミニモジュールを得た。中空糸膜の本数は、内面の表面積が30~50cm2になるよう適宜設定した。
中空糸膜を約30cmの長さに切断し、両末端をパラフィンフィルムで束ねて中空糸膜束を作製した。この中空糸膜束の両端をパイプ(スリーブ)に挿入し、ウレタンポッティング剤で固めた。端部を切断して、両末端がスリーブで固定された両端開口ミニモジュールを得た。中空糸膜の本数は、内面の表面積が30~50cm2になるよう適宜設定した。
2.外筒つきミニモジュールの作製
ポリ塩化ビニル製チューブ(約15cm長)の一方の端部に円筒状チップを、他方の端部に側管つき円筒状チップを装着した。この、両端にチップのついたポリ塩化ビニル製チューブに、約15cmの長さに切断した中空糸膜1本から5本を挿入し、中空糸膜内腔を塞がないように両端のチップ部分をシリコーン接着剤で固めた。この外筒つきミニモジュールは、端部のチップ部分から中空糸膜内腔へ液を導入することで中空糸膜の内腔から外壁方向への濾過(内→外濾過)ができる上、側管から液を導入することで外壁から内腔方向への濾過(外→内濾過)を行うこともできる。
ポリ塩化ビニル製チューブ(約15cm長)の一方の端部に円筒状チップを、他方の端部に側管つき円筒状チップを装着した。この、両端にチップのついたポリ塩化ビニル製チューブに、約15cmの長さに切断した中空糸膜1本から5本を挿入し、中空糸膜内腔を塞がないように両端のチップ部分をシリコーン接着剤で固めた。この外筒つきミニモジュールは、端部のチップ部分から中空糸膜内腔へ液を導入することで中空糸膜の内腔から外壁方向への濾過(内→外濾過)ができる上、側管から液を導入することで外壁から内腔方向への濾過(外→内濾過)を行うこともできる。
3.膜面積の計算
モジュールの膜面積は中空糸膜の内面側の径を基準として求めた。次式[1]によってモジュールの膜面積A[m2]が計算できる。
A = n×π×d×L [1]
ここで、nは中空糸膜の本数、πは円周率、dは中空糸膜の内径[m]、Lはモジュールにおける中空糸膜の有効長[m]である。
モジュールの膜面積は中空糸膜の内面側の径を基準として求めた。次式[1]によってモジュールの膜面積A[m2]が計算できる。
A = n×π×d×L [1]
ここで、nは中空糸膜の本数、πは円周率、dは中空糸膜の内径[m]、Lはモジュールにおける中空糸膜の有効長[m]である。
4.純水Fluxの測定
ミニモジュールの末端スリーブ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、ミニモジュールへの液体の流入圧とミニモジュールからの液体の流出圧を測定できるようにした。純水を加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0bar程度になるようレギュレーターで圧力を制御しながら、ミニモジュールの内腔流入口に純水を導入して中空糸膜の内腔に純水を満たした。内面流出口に接続した回路(圧力測定点よりも下流)を鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った純水を全濾過するようにした。引き続きミニモジュールへ純水を送り、30秒にわたって濾過を行い、膜の馴化を行った。馴化処理中の濾液は廃棄した。その後、中空糸膜外面から得られる濾液量を2分間にわたって回収し、その量を測定した。また、濾過実施時の内腔流入口側圧力Pi、内腔流出口側圧力Poを測定し、次式[2]で膜間圧力差(TMP)△Pを得た。
△P = (Pi +
Po) / 2 [2]
濾過時間:t[h] 、TMP:△P[bar]、ミニモジュールの膜面積:A[m2]、濾液量:V[L]から次式[3]により純水Flux[L/(h・m2・bar)]を得た。
純水Flux = V ÷ t ÷ A ÷ △P [3]
ミニモジュールの末端スリーブ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、ミニモジュールへの液体の流入圧とミニモジュールからの液体の流出圧を測定できるようにした。純水を加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0bar程度になるようレギュレーターで圧力を制御しながら、ミニモジュールの内腔流入口に純水を導入して中空糸膜の内腔に純水を満たした。内面流出口に接続した回路(圧力測定点よりも下流)を鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った純水を全濾過するようにした。引き続きミニモジュールへ純水を送り、30秒にわたって濾過を行い、膜の馴化を行った。馴化処理中の濾液は廃棄した。その後、中空糸膜外面から得られる濾液量を2分間にわたって回収し、その量を測定した。また、濾過実施時の内腔流入口側圧力Pi、内腔流出口側圧力Poを測定し、次式[2]で膜間圧力差(TMP)△Pを得た。
△P = (Pi +
Po) / 2 [2]
濾過時間:t[h] 、TMP:△P[bar]、ミニモジュールの膜面積:A[m2]、濾液量:V[L]から次式[3]により純水Flux[L/(h・m2・bar)]を得た。
純水Flux = V ÷ t ÷ A ÷ △P [3]
5.γG Fluxの測定
日水製薬(株)社から市販されているダルベッコPBS(-)粉末「ニッスイ」9.6gを蒸留水に溶解して全量を1000mLとし、PBSを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量 % となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン溶液を得た。この0.1重量%ウシγ-グロブリン溶液を使用し、上記純水Fluxの測定と同様の方法で、γG Fluxを測定した。
日水製薬(株)社から市販されているダルベッコPBS(-)粉末「ニッスイ」9.6gを蒸留水に溶解して全量を1000mLとし、PBSを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量 % となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン溶液を得た。この0.1重量%ウシγ-グロブリン溶液を使用し、上記純水Fluxの測定と同様の方法で、γG Fluxを測定した。
6.免疫グロブリン透過率の測定
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。武田薬品工業(株)社から市販されている献血グロベニン-I-ニチヤクを、添付された溶解液で溶解して5%濃度とし、さらにこれを PBSで10倍希釈して0.5%静脈注射用ヒト免疫グロブリン製剤溶液(以下IVIGと略記する)を得た。0.5%IVIGを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾液は、中空糸膜面積1m2あたり2Lの濾液が得られるごとに(濾過負荷量2 L/m2ごとに)容器を換えて受けた。免疫グロブリン透過率は、100[%]×(濾液中のタンパク濃度)/(被濾過液のタンパク濃度)で算出した。ここで、被濾過液および濾液中のタンパク濃度は280nmの吸光度を測定し、既知濃度の免疫グロブリン溶液で作成した検量線から濃度を算出した。
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。武田薬品工業(株)社から市販されている献血グロベニン-I-ニチヤクを、添付された溶解液で溶解して5%濃度とし、さらにこれを PBSで10倍希釈して0.5%静脈注射用ヒト免疫グロブリン製剤溶液(以下IVIGと略記する)を得た。0.5%IVIGを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾液は、中空糸膜面積1m2あたり2Lの濾液が得られるごとに(濾過負荷量2 L/m2ごとに)容器を換えて受けた。免疫グロブリン透過率は、100[%]×(濾液中のタンパク濃度)/(被濾過液のタンパク濃度)で算出した。ここで、被濾過液および濾液中のタンパク濃度は280nmの吸光度を測定し、既知濃度の免疫グロブリン溶液で作成した検量線から濃度を算出した。
7.γG/20mM-PB Fluxの測定
和光純薬工業(株)社から市販されているリン酸二水素カリウムを蒸留水に溶解して、20mmol/Lの溶液を調製した。和光純薬工業(株)社から市販されているリン酸水素二カリウムを蒸留水に溶解して、20mmol/Lの溶液を調製した。リン酸二水素カリウム水溶液28容量部とリン酸水素二カリウム72容量部を混合し、20mM-PBを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン・20mmol/Lリン酸緩衝液溶液(以下γG/20mM-PBと略記する)を得た。外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。γG/20mM-PBを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液は、チップの側管から回収した。中空糸膜1m2あたり20Lの濾液が得られるまでγG/20mM-PBを供給して膜を馴化した。この間得られた濾液は廃棄した。馴化終了後、引き続き1.0barの濾過圧でγG/20mM-PBを供給し、膜面積1m2あたり2.0Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から上記式[3]により、γG/20mM-PB Fluxを算出した。
和光純薬工業(株)社から市販されているリン酸二水素カリウムを蒸留水に溶解して、20mmol/Lの溶液を調製した。和光純薬工業(株)社から市販されているリン酸水素二カリウムを蒸留水に溶解して、20mmol/Lの溶液を調製した。リン酸二水素カリウム水溶液28容量部とリン酸水素二カリウム72容量部を混合し、20mM-PBを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン・20mmol/Lリン酸緩衝液溶液(以下γG/20mM-PBと略記する)を得た。外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。γG/20mM-PBを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液は、チップの側管から回収した。中空糸膜1m2あたり20Lの濾液が得られるまでγG/20mM-PBを供給して膜を馴化した。この間得られた濾液は廃棄した。馴化終了後、引き続き1.0barの濾過圧でγG/20mM-PBを供給し、膜面積1m2あたり2.0Lの濾液を得るまでの所要時間を測定した。濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から上記式[3]により、γG/20mM-PB Fluxを算出した。
8.γG/PBS Flux
日水製薬(株)社から市販されているダルベッコPBS(-)粉末「ニッスイ」9.6gを蒸留水に溶解して全量を1000mLとし、PBSを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン・PBS溶液(以下γG/PBSと略記する)を得た。このγG/PBSを使用し、上記γG/20mM-PB Fluxの測定と同様の方法で、γG/PBS Fluxを測定した。
日水製薬(株)社から市販されているダルベッコPBS(-)粉末「ニッスイ」9.6gを蒸留水に溶解して全量を1000mLとし、PBSを得た。この緩衝液で、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているγ-Globulin
from bovine blood(製品番号G5009)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%ウシγ-グロブリン・PBS溶液(以下γG/PBSと略記する)を得た。このγG/PBSを使用し、上記γG/20mM-PB Fluxの測定と同様の方法で、γG/PBS Fluxを測定した。
9.静脈注射用免疫グロブリン透過率および透過速度の測定
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。武田薬品工業(株)社から市販されている献血グロベニン-I-ニチヤクを、添付された溶解液で溶解して5%濃度とし、さらにこれをPBSで5倍希釈して1.0%静脈注射用ヒト免疫グロブリン製剤溶液(以下IVIGと略記する)を得た。1.0%IVIGを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾液は、中空糸膜面積1m2あたり2Lの濾液が得られるごとに(濾過負荷量2 L/m2ごとに)容器を換えて受けた。免疫グロブリン透過率は、100[%]×(濾液中のタンパク濃度)/(被濾過液のタンパク濃度)で算出した。ここで、被濾過液および濾液中のタンパク濃度は280nmの吸光度を測定し、既知濃度の免疫グロブリン溶液で作成した検量線から濃度を算出した。また、各画分分取時の濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から上記式[3]により、IVIGの透過速度(以下IVIG Fluxと略記する)を算出した。
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。武田薬品工業(株)社から市販されている献血グロベニン-I-ニチヤクを、添付された溶解液で溶解して5%濃度とし、さらにこれをPBSで5倍希釈して1.0%静脈注射用ヒト免疫グロブリン製剤溶液(以下IVIGと略記する)を得た。1.0%IVIGを加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾液は、中空糸膜面積1m2あたり2Lの濾液が得られるごとに(濾過負荷量2 L/m2ごとに)容器を換えて受けた。免疫グロブリン透過率は、100[%]×(濾液中のタンパク濃度)/(被濾過液のタンパク濃度)で算出した。ここで、被濾過液および濾液中のタンパク濃度は280nmの吸光度を測定し、既知濃度の免疫グロブリン溶液で作成した検量線から濃度を算出した。また、各画分分取時の濾過圧、膜面積、濾液量、濾過所要時間から上記式[3]により、IVIGの透過速度(以下IVIG Fluxと略記する)を算出した。
10.バクテリオファージφX174のクリアランス指数測定
(1)試験用ファージ液の調製
既述の手法で調製したPBSで、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているAlbumin from bovine serum(製品番号A2153)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%BSA溶液(以下単にBSA溶液と呼称する)を得た。凍結保存した濃厚なφX174含有液(力価1~10×109pfu/mL)を解凍し、このBSA溶液で100倍に希釈した。さらに、0.1μm孔径のメンブレンフィルターで濾過、凝集成分などを除去して試験用ファージ液とした。
(1)試験用ファージ液の調製
既述の手法で調製したPBSで、シグマアルドリッチジャパン(株)社から市販されているAlbumin from bovine serum(製品番号A2153)を、0.1重量%となるよう溶解して0.1重量%BSA溶液(以下単にBSA溶液と呼称する)を得た。凍結保存した濃厚なφX174含有液(力価1~10×109pfu/mL)を解凍し、このBSA溶液で100倍に希釈した。さらに、0.1μm孔径のメンブレンフィルターで濾過、凝集成分などを除去して試験用ファージ液とした。
(2)試験用ファージ液を使用した濾過試験
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。試験用ファージ液を加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾過は、中空糸膜面積1m2あたり50Lの濾液が得られるまで実施した。
外筒つきミニモジュールの末端チップ2箇所(それぞれ内腔流入口、内腔流出口と呼称する)に回路を接続し、中空糸膜内腔への液導入出を可能にした。液導入側には液の流入圧を測定できるようにした。液導出側は鉗子で封じて流れを止め、モジュールの内腔流入口から入った液が全量濾過されるようにした。試験用ファージ液を加圧タンクに入れて25℃に保温し、濾過圧が1.0barになるようレギュレーターで圧力を制御しながら、外筒つきミニモジュールの内腔に導入した。中空糸膜外面から得られる濾過液を、チップの側管から回収した。濾過は、中空糸膜面積1m2あたり50Lの濾液が得られるまで実施した。
(3)試験用ファージ液と濾液のファージ力価測定
10mM濃度のMgSO4水溶液に、660nmでの吸光度が4.0となるように大腸菌を懸濁させておいた(以下E.Coli液と呼称する)。また、寒天培地、トップアガーを準備し、あらかじめ50℃に暖めておいた。特にトップアガーは、流動性を保っておくよう注意した。試験用ファージ液をBSA溶液で適当に希釈した液10μLと、E.Coli液50μLを混和し、37℃で20分インキュベートして大腸菌にファージを感染させた。インキュベート完了後、この混合液全量を、トップアガー3mLと混和し、速やかに全量を寒天培地上に展開した。寒天培地上でトップアガーが完全に固化した後、37℃で2~4時間インキュベートした。インキュベート完了後、寒天培地上のプラーク数をカウントし、希釈倍率を考慮して試験用ファージ液の力価(以下Tpreと略記する)[pfu/mL]を算出した。同様の手法で濾液のファージ力価(以下Tpostと略記する)を得た。
10mM濃度のMgSO4水溶液に、660nmでの吸光度が4.0となるように大腸菌を懸濁させておいた(以下E.Coli液と呼称する)。また、寒天培地、トップアガーを準備し、あらかじめ50℃に暖めておいた。特にトップアガーは、流動性を保っておくよう注意した。試験用ファージ液をBSA溶液で適当に希釈した液10μLと、E.Coli液50μLを混和し、37℃で20分インキュベートして大腸菌にファージを感染させた。インキュベート完了後、この混合液全量を、トップアガー3mLと混和し、速やかに全量を寒天培地上に展開した。寒天培地上でトップアガーが完全に固化した後、37℃で2~4時間インキュベートした。インキュベート完了後、寒天培地上のプラーク数をカウントし、希釈倍率を考慮して試験用ファージ液の力価(以下Tpreと略記する)[pfu/mL]を算出した。同様の手法で濾液のファージ力価(以下Tpostと略記する)を得た。
(4)中空糸膜のファージクリアランス指数算出
次式[4]により中空糸膜のファージクリアランス指数を算出した。ここで、Tpre[pfu/mL]とは評価用中空糸膜に導入した試験用ファージ液の力価を、Tpost[pfu/mL]とは試験用ファージ液を評価用中空糸膜で濾過して得られた濾液のファージ力価である。
ファージクリアランス指数 [LRV] =
log10(Tpre / Tpost) [4]
次式[4]により中空糸膜のファージクリアランス指数を算出した。ここで、Tpre[pfu/mL]とは評価用中空糸膜に導入した試験用ファージ液の力価を、Tpost[pfu/mL]とは試験用ファージ液を評価用中空糸膜で濾過して得られた濾液のファージ力価である。
ファージクリアランス指数 [LRV] =
log10(Tpre / Tpost) [4]
本発明1について具体例を挙げて、以下に説明する。
(実施例1)
PES(住友ケムテック社製スミカエクセル(登録商標)4800P)20.0重量部、BASF社製PVP(コリドン(登録商標)K90)5.5重量部、三菱化学社製NMP33.53重量部、三井化学社製TEG40.97重量部を60℃で3時間にわたって混合、溶解し均一な溶液を得た。さらに、60℃で常圧-700mmHgまで減圧した後、溶媒等が揮発して溶液組成が変化しないようにすぐに系内を密封して4時間放置脱泡を行い、この溶液を製膜溶液とした。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液としてTEGを吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP27重量部、TEG33重量部、RO水40重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は66℃、外部凝固液温度は46℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを3個使用して中空糸膜の進行方向を徐々に変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
PES(住友ケムテック社製スミカエクセル(登録商標)4800P)20.0重量部、BASF社製PVP(コリドン(登録商標)K90)5.5重量部、三菱化学社製NMP33.53重量部、三井化学社製TEG40.97重量部を60℃で3時間にわたって混合、溶解し均一な溶液を得た。さらに、60℃で常圧-700mmHgまで減圧した後、溶媒等が揮発して溶液組成が変化しないようにすぐに系内を密封して4時間放置脱泡を行い、この溶液を製膜溶液とした。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液としてTEGを吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP27重量部、TEG33重量部、RO水40重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は66℃、外部凝固液温度は46℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを3個使用して中空糸膜の進行方向を徐々に変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
紡糸速度は18m/分、第1凝固浴での中空糸膜の浸漬深さは液面からの最深部で200mm、第1凝固浴内での中空糸膜の走行距離は800mm、第2凝固浴内での中空糸膜の走行距離は1200mmであった。中空糸膜は、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した。上記の条件から算出される中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.067秒、凝固浴滞留時間は第1凝固浴で2.67秒、第2凝固浴で4秒、あわせて6.67秒、第1凝固浴と第2凝固浴の間の空走部分の滞留時間は6.67秒であった。洗浄槽には55℃の温水を満たし、洗浄槽における中空糸膜の滞留時間が11秒になるよう走行長を設定した。
巻き取った中空糸膜は、本数800本、長さ35cmのバンドルとし、90℃のRO水に60分、直立状態で浸漬して加熱処理を行った。なお、巻取り開始からバンドル化を経て、加熱処理に供されるまでの時間は、10~90分になるようにした。巻取り機は20℃に設定された環境に設置し、巻取りからバンドル化までの処理温度が20℃になるようにした。巻き取った中空糸膜の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は26重量%であった。すなわち、中空糸膜は有機成分濃度26重量%の芯液と接触した状態で、20℃において10~90分のエージングを施したこととなる。
加熱処理が完了した中空糸膜は、濡れた状態のまま、速やかに40℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、132℃×20minの条件で高圧熱水処理を行った。その後、50℃で10時間にわたり熱風乾燥を実施し、内径287μm、膜厚75μmの中空糸膜(A)を得た。SEM観察を行ったところ、中空糸膜(A)は、外壁表面(内側から外側へ向けて濾過を実施する場合の濾過下流側表面)がドット状開孔、内腔表面(内側から外側へ向けて濾過を実施する場合の濾過上流側表面)が微粒子集合体構造、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造、膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造であった。既述の方法によって中空糸膜(A)の純水Flux、γG Fluxを測定し、その値からFlux比を算出した。これら中空糸膜(A)の特徴・特性は表1にまとめて示した。
記述の方法によって、中空糸膜(A)の免疫グロブリン透過率(IVIG透過率)を測定した。濾過負荷量2 L/m2、6 L/m2、16 L/m2、24 L/m2時点でのIVIG透過率を求め、次式[5]により「IVIG透過率保持率」を算出して経時的なIVIG透過率の安定性の指標とした。
IVIG透過率保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量24L/m2時点のIVIG透過率)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG透過率)
IVIG透過率保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量24L/m2時点のIVIG透過率)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG透過率)
既述の方法によって、中空糸膜(A)のバクテリオファージφX174のクリアランス指数(以下φX174クリアランスと略記する)を測定した。IVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスは中空糸膜のタンパク透過・バクテリオファージ除去性能として、表2にまとめて示した。
(実施例2)
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を56℃に、外部凝固液温度を55℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径274μm、膜厚86μmの中空糸膜(B)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(B)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は35重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を56℃に、外部凝固液温度を55℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径274μm、膜厚86μmの中空糸膜(B)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(B)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は35重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(実施例3)
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、ノズル温度を66℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径271μm、膜厚119μmの中空糸膜(C)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(C)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は19重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、ノズル温度を66℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径271μm、膜厚119μmの中空糸膜(C)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(C)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は19重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(実施例4)
製膜溶液の構成をPSf(アモコ社製P-3500)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を55℃に、外部凝固液温度を54℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径282μm、膜厚84μmの中空糸膜(D)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(D)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は33重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPSf(アモコ社製P-3500)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を55℃に、外部凝固液温度を54℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径282μm、膜厚84μmの中空糸膜(D)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(D)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は33重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例1)
PES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)1.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部を実施例1と同様の方法で溶解し、製膜溶液を得た。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液として NMP36重量部、TEG44重量部、RO水20重量部の混合液体を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP27重量部、TEG33重量部、RO水40重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は65℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを1個で中空糸膜の進行方向を変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
PES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)1.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部を実施例1と同様の方法で溶解し、製膜溶液を得た。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液として NMP36重量部、TEG44重量部、RO水20重量部の混合液体を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP27重量部、TEG33重量部、RO水40重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は65℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを1個で中空糸膜の進行方向を変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
紡糸速度は18m/分、第1凝固浴での中空糸膜の浸漬深さは液面からの最深部で250mm、第1凝固浴内での中空糸膜の走行距離は800mm、第2凝固浴内での中空糸膜の走行距離は1200mmであった。中空糸膜は、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した。上記の条件から算出される中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.067秒、凝固浴滞留時間は第1凝固浴で2.67秒、第2凝固浴で4秒、あわせて6.67秒、第1凝固浴と第2凝固浴の間の空走部分の滞留時間は6.67秒であった。洗浄槽には55℃の温水を満たし、洗浄槽における中空糸膜の滞留時間が75秒になるよう走行長を設定した。
巻き取った中空糸膜は、本数800本、長さ35cmのバンドルとし、90℃のRO水に60分、直立状態で浸漬して加熱処理を行った。なお、巻取り開始からバンドル化を経て、加熱処理に供されるまでの時間は、10~90分になるようにした。巻取り機は20℃に設定された環境に設置し、巻取りからバンドル化までの処理温度が20℃になるようにした。巻き取った中空糸膜の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.2重量%であった。すなわち、中空糸膜は有機成分濃度1.2重量%の芯液と接触した状態で、20℃において10~90分のエージングを施したこととなる。
加熱処理が完了した中空糸膜は50℃で10時間にわたり熱風乾燥を実施し、内径284μm、膜厚116μmの中空糸膜(E)を得た。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例2)
製膜溶液の構成をPES(4800P)19.0重量部、PVP(K90)2.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部に変更し、内径が約280μm、膜厚が約140μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した以外は比較例1と同様にして、内径280μm、膜厚144μmの中空糸膜(C)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(F)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.8重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)19.0重量部、PVP(K90)2.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部に変更し、内径が約280μm、膜厚が約140μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した以外は比較例1と同様にして、内径280μm、膜厚144μmの中空糸膜(C)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(F)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.8重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例3)
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)3.0重量部、NMP34.65重量部、TEG42.35重量部に変更し、芯液をNMP20重量部、TEG80重量部の混合液体とし、ノズル温度を68℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は比較例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径279μm、膜厚125μmの中空糸膜(G)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(G)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は2.6重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)3.0重量部、NMP34.65重量部、TEG42.35重量部に変更し、芯液をNMP20重量部、TEG80重量部の混合液体とし、ノズル温度を68℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は比較例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径279μm、膜厚125μmの中空糸膜(G)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(G)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は2.6重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例4)
実施例2で得た中空糸膜(B)を使用し、外側から内側へ(外壁表面から内腔表面に向けて)濾過することによって、IVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
実施例2で得た中空糸膜(B)を使用し、外側から内側へ(外壁表面から内腔表面に向けて)濾過することによって、IVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
IVIG透過率、IVIG透過率保持率、φX174クリアランスの結果から明らかになったように、本発明の多孔質中空糸膜は、タンパク質が効率よく透過し、その透過率の経時的な落ち込みが少なく、さらに充分なバクテリオファージ除去性能が同時に発揮されている。本発明の特徴である特定の膜構造、純水Flux値、Flux比がこれらの優れた特性の発揮に寄与していると考えられる。また、一方で、比較例の結果から明らかになったように、特定の膜構造、純水Flux値、Flux比いずれかの構成要件が満たされていない場合には、タンパク質透過、バクテリオファージ除去性能のいずれかが不十分となってしまっている。
本発明2について具体例を挙げて、以下に説明する。
(実施例5)
PES(住友ケムテック社製スミカエクセル(登録商標)4800P)20.0重量部、BASF社製PVP(コリドン(登録商標)K90)6重量部、三菱化学社製NMP33.3重量部、三井化学社製TEG40.7重量部を50℃で3時間にわたって混合、溶解し均一な溶液を得た。さらに、50℃で常圧-700mmHgまで減圧した後、溶媒等が揮発して溶液組成が変化しないようにすぐに系内を密封して4時間放置脱泡を行い、この溶液を製膜溶液とした。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液としてNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP26.1重量部、TEG31.9重量部、RO水42重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は55℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを3個使用して中空糸膜の進行方向を徐々に変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
PES(住友ケムテック社製スミカエクセル(登録商標)4800P)20.0重量部、BASF社製PVP(コリドン(登録商標)K90)6重量部、三菱化学社製NMP33.3重量部、三井化学社製TEG40.7重量部を50℃で3時間にわたって混合、溶解し均一な溶液を得た。さらに、50℃で常圧-700mmHgまで減圧した後、溶媒等が揮発して溶液組成が変化しないようにすぐに系内を密封して4時間放置脱泡を行い、この溶液を製膜溶液とした。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液としてNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP26.1重量部、TEG31.9重量部、RO水42重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は55℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを3個使用して中空糸膜の進行方向を徐々に変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
紡糸速度は18m/分、第1凝固浴での中空糸膜の浸漬深さは液面からの最深部で200mm、第1凝固浴内での中空糸膜の走行距離は800mm、第2凝固浴内での中空糸膜の走行距離は1200mmであった。中空糸膜は、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した。上記の条件から算出される中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.067秒、凝固浴滞留時間は第1凝固浴で2.67秒、第2凝固浴で4秒、あわせて6.67秒、第1凝固浴と第2凝固浴の間の空走部分の滞留時間は6.67秒であった。洗浄槽には55℃の温水を満たし、洗浄槽における中空糸膜の滞留時間が11秒になるよう走行長を設定した。
巻き取った中空糸膜は、本数800本、長さ35cmのバンドルとし、85℃のRO水に60分、直立状態で浸漬して加熱処理を行った。なお、巻取り開始からバンドル化を経て、加熱処理に供されるまでの時間は、10~90分になるようにした。巻取り機は20℃に設定された環境に設置し、巻取りからバンドル化までの処理温度が20℃になるようにした。巻き取った中空糸膜の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は37重量%であった。すなわち、中空糸膜は有機成分濃度37重量%の芯液と接触した状態で、20℃において10~90分のエージングを施したこととなる。
加熱処理が完了した中空糸膜は、濡れた状態のまま、速やかに40℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、132℃×20minの条件で高圧熱水処理を行った。その後、50℃で10時間にわたり熱風乾燥を実施した。1重量%のグルコース水溶液をアルミラミネート袋に準備し、この溶液に中空糸膜バンドルを浸漬した状態で封じて20kGyのγ線を照射した。γ線照射の完了した中空糸膜は水洗後、50℃で10時間にわたり熱風乾燥を実施し、内径275μm、膜厚85μmの中空糸膜(H)を得た。SEM観察(段落[0021]、[0024]参照)を行ったところ、中空糸膜(H)は、外壁表面(内側から外側へ向けて濾過を実施する場合の濾過下流側表面)がドット状開孔、内腔表面(内側から外側へ向けて濾過を実施する場合の濾過上流側表面)が網目構造、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造、膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造であった。既述の方法によって中空糸膜(H)の純水Flux、γG/20mM-PB Flux、γG/PBS Fluxを測定し、Flux比を算出した。これら中空糸膜(H)の特徴・特性は表1にまとめて示した。
既述の方法によって、中空糸膜(H)の免疫グロブリン透過率(IVIG透過率)を測定した。濾過負荷量2 L/m2、20 L/m2、24 L/m2、28 L/m2、30 L/m2時点でのIVIG透過率を求め、次式[5]により「IVIG透過率保持率」を算出して経時的なIVIG透過率の安定性の指標とした。
IVIG透過率保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量30L/m2時点のIVIG透過率)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG透過率)
IVIG透過率保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量30L/m2時点のIVIG透過率)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG透過率)
既述の方法によって、中空糸膜(H)の免疫グロブリン透過速度(IVIG Flux)を測定した。濾過負荷量2 L/m2、20 L/m2、24 L/m2、28 L/m2、30 L/m2時点でのIVIG Fluxを求め、次式[5]により「IVIG Flux保持率」を算出して経時的なIVIG Fluxの安定性の指標とした。
IVIG Flux保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量30L/m2時点のIVIG Flux)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG Flux)
IVIG Flux保持率 [%]
= 100×(濾過負荷量30L/m2時点のIVIG Flux)÷(濾過負荷量2L/m2時点のIVIG Flux)
既述の方法によって、中空糸膜(H)のバクテリオファージφX174のクリアランス指数(以下φX174クリアランスと略記する)を測定した。IVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスは中空糸膜のタンパク透過・バクテリオファージ除去性能として、表2にまとめて示した。
(実施例6)
ノズル温度を57℃に、エアギャップ長を10mmに、外部凝固液温度を63℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径276μm、膜厚88μmの中空糸膜(I)を得た。エアギャップ長が短縮されてことにより、中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.033秒となった。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(I)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は33重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS
Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
ノズル温度を57℃に、エアギャップ長を10mmに、外部凝固液温度を63℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径276μm、膜厚88μmの中空糸膜(I)を得た。エアギャップ長が短縮されてことにより、中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.033秒となった。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(I)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は33重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS
Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(実施例7)
製膜溶液の構成をPSf(アモコ社製P-3500)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を56℃に、外部凝固液温度を55℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径280μm、膜厚83μmの中空糸膜(J)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(J)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は32重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPSf(アモコ社製P-3500)20.0重量部、PVP(K90)6.0重量部、NMP33.3重量部、TEG40.7重量部とし、芯液をNMP38.25重量部、TEG46.75重量部、RO水15重量部の混合液体とし、ノズル温度を56℃に、外部凝固液温度を55℃に変更した以外は実施例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約80μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径280μm、膜厚83μmの中空糸膜(J)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(J)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は32重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例5)
PES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)1.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部を実施例1と同様の方法で溶解し、製膜溶液を得た。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液として NMP36重量部、TEG44重量部、RO水20重量部の混合液体を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP26.1重量部、TEG31.9重量部、RO水42重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は65℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを1個で中空糸膜の進行方向を変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
PES(4800P)20.0重量部、PVP(K90)1.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部を実施例1と同様の方法で溶解し、製膜溶液を得た。二重管ノズルの環状部から上記製膜溶液を、中心部から芯液として NMP36重量部、TEG44重量部、RO水20重量部の混合液体を吐出し、20mmのエアギャップを経て、NMP26.1重量部、TEG31.9重量部、RO水42重量部の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は65℃、外部凝固液温度は55℃に設定した。凝固浴は第1凝固浴、第2凝固浴のふたつを準備し、第1凝固浴内では直径12mmの棒状ガイドを1個で中空糸膜の進行方向を変えて引き出した。その後、ローラー3個で走行方向を変更しながら2000mmの空走を経た後第2凝固浴に中空糸膜を導入した。さらに中空糸膜は、第2凝固浴内を走行させ、第2凝固浴から引き出した後に洗浄槽を走行させてオンラインでの洗浄を実施後、巻取り機で巻き取った。
紡糸速度は18m/分、第1凝固浴での中空糸膜の浸漬深さは液面からの最深部で250mm、第1凝固浴内での中空糸膜の走行距離は800mm、第2凝固浴内での中空糸膜の走行距離は1200mmであった。中空糸膜は、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した。上記の条件から算出される中空糸膜のエアギャップ部滞留時間は0.067秒、凝固浴滞留時間は第1凝固浴で2.67秒、第2凝固浴で4秒、あわせて6.67秒、第1凝固浴と第2凝固浴の間の空走部分の滞留時間は6.67秒である。洗浄槽には55℃の温水を満たし、洗浄槽における中空糸膜の滞留時間が75秒になるよう走行長を設定した。
巻き取った中空糸膜は、本数800本、長さ35cmのバンドルとし、85℃のRO水に60分、直立状態で浸漬して加熱処理を行った。なお、巻取り開始からバンドル化を経て、加熱処理に供されるまでの時間は、10~90分になるようにした。巻取り機は20℃に設定された環境に設置し、巻取りからバンドル化までの処理温度が20℃になるようにした。巻き取った中空糸膜の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.3重量%であった。すなわち、中空糸膜は有機成分濃度1.3重量%の芯液と接触した状態で、20℃において10~90分のエージングを施したこととなる。
加熱処理が完了した中空糸膜は、濡れた状態のまま、速やかに40℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、132℃×20minの条件で高圧熱水処理を行った。その後、50℃で10時間にわたり熱風乾燥を実施し、内径282μm、膜厚115μmの中空糸膜(K)を得た。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例6)
製膜溶液の構成をPES(4800P)19.0重量部、PVP(K90)2.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部に変更し、内径が約280μm、膜厚が約140μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した以外は比較例1と同様にして、内径278μm、膜厚140μmの中空糸膜(L)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(L)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.6重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)19.0重量部、PVP(K90)2.0重量部、NMP35.55重量部、TEG43.45重量部に変更し、内径が約280μm、膜厚が約140μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御した以外は比較例1と同様にして、内径278μm、膜厚140μmの中空糸膜(L)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(L)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は1.6重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例7)
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)3.0重量部、NMP34.65重量部、TEG42.35重量部に変更し、芯液をNMP20重量部、TEG80重量部の混合液体とし、ノズル温度を68℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は比較例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径278μm、膜厚123μmの中空糸膜(M)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(M)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は2.5重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
製膜溶液の構成をPES(4800P)20.0重量部、PVP(K30)3.0重量部、NMP34.65重量部、TEG42.35重量部に変更し、芯液をNMP20重量部、TEG80重量部の混合液体とし、ノズル温度を68℃に、外部凝固液温度を40℃に変更した以外は比較例1と同様にして、内径が約280μm、膜厚が約120μmになるよう、製膜溶液、芯液の吐出量を制御し、内径278μm、膜厚123μmの中空糸膜(M)を得た。なお、製膜のプロセスにおける巻取り時点での中空糸膜(M)の内腔に含まれる芯液の有機成分濃度は2.5重量%であった。実施例1と同様にSEM観察、水Flux測定、γG/20mM-PB Flux測定、γG/PBS Flux測定を実施し、Flux比を算出した。結果は表1に示した。また、実施例1と同様にIVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
(比較例8)
実施例1で得た中空糸膜(H)を使用し、外側から内側へ(外壁表面から内腔表面に向けて)濾過することによって、IVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
実施例1で得た中空糸膜(H)を使用し、外側から内側へ(外壁表面から内腔表面に向けて)濾過することによって、IVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスを測定、算出した。結果は表2に示した。
IVIG透過率、IVIG透過率保持率、IVIG
Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスの結果から明らかになったように、本発明のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、タンパク質が効率よく透過し、その透過率、Fluxの経時的な落ち込みが少なく、さらに充分なバクテリオファージ除去性能が同時に発揮されている。本発明の特徴である特定の膜構造、純水Flux値、Flux比がこれらの優れた特性の発揮に寄与していると考えられる。また、一方で、比較例の結果から明らかになったように、特定の膜構造、純水Flux値、Flux比いずれかの構成要件が満たされていない場合には、タンパク質透過、バクテリオファージ除去性能のいずれかが不十分となってしまっている。
Flux、IVIG Flux保持率、φX174クリアランスの結果から明らかになったように、本発明のタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜は、タンパク質が効率よく透過し、その透過率、Fluxの経時的な落ち込みが少なく、さらに充分なバクテリオファージ除去性能が同時に発揮されている。本発明の特徴である特定の膜構造、純水Flux値、Flux比がこれらの優れた特性の発揮に寄与していると考えられる。また、一方で、比較例の結果から明らかになったように、特定の膜構造、純水Flux値、Flux比いずれかの構成要件が満たされていない場合には、タンパク質透過、バクテリオファージ除去性能のいずれかが不十分となってしまっている。
本発明の多孔質中空糸膜は、溶液に含まれる小径ウィルスなどの除去物質を効率よく分離除去することができ、同時に、タンパク質などの有用回収物質が効率よく透過し、その透過率、溶液の透過速度の経時的な落ち込みが少ないという利点を有し、特に、タンパク質溶液からのウィルス除去に有用であり、産業界に大きく寄与する。
Claims (7)
- 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、0.1重量%のウシγ-グロブリン溶液の透過速度が純水の透過速度の30~100%であることを特徴とする多孔質中空糸膜。
- 内径が200~400μm、膜厚が50~200μmである請求項1記載の多孔質中空糸膜。
- 疎水性高分子と親水性高分子を含んでなる請求項1または2記載の多孔質中空糸膜。
- 疎水性高分子がポリスルホン系高分子であることを特徴とする請求項1~3いずれかに記載の多孔質中空糸膜。
- 親水性高分子がポリビニルピロリドンであることを特徴とする請求項1~4いずれかに記載の多孔質中空糸膜。
- タンパク質溶液からウィルスを分離するために使用される膜であることを特徴とする請求項1~5いずれかに記載の多孔質中空糸膜。
- 濾過下流側表面がドット状またはスリット状の開孔を有し、濾過上流側表面が網目構造または微粒子集合体構造からなり、膜厚部分の中心領域が実質的に均質な構造からなり、かつ膜厚部分が実質的にマクロボイドを持たない構造からなり、純水の透過速度が10~300L/(h・m2・bar)であり、ウシγ-グロブリンの0.1重量%-20mmol/Lリン酸緩衝液溶液の透過速度がウシγ-グロブリンの0.1重量%-リン酸緩衝生理食塩水溶液の透過速度の30~100%であることを特徴とするタンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜。
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Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2013012024A1 (ja) * | 2011-07-21 | 2013-01-24 | 東洋紡株式会社 | 多孔質中空糸膜 |
| JP2013071100A (ja) * | 2011-09-29 | 2013-04-22 | Toyobo Co Ltd | タンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜 |
| JP2014073487A (ja) * | 2012-09-11 | 2014-04-24 | Toray Ind Inc | 多孔質膜、多孔質膜を内蔵する浄水器および多孔質膜の製造方法 |
| JP2017014441A (ja) * | 2015-07-04 | 2017-01-19 | 永嶋 良一 | 成形体の製造方法 |
| WO2020203716A1 (ja) * | 2019-03-29 | 2020-10-08 | 旭化成メディカル株式会社 | 多孔質膜 |
Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP5609116B2 (ja) * | 2008-02-21 | 2014-10-22 | 東洋紡株式会社 | 耐ファウリング性に優れる中空糸型限外ろ過膜 |
| KR101597829B1 (ko) * | 2008-08-20 | 2016-02-26 | 코오롱인더스트리 주식회사 | 다공성 막 및 그 제조방법 |
| US9003228B2 (en) | 2012-12-07 | 2015-04-07 | International Business Machines Corporation | Consistency of data in persistent memory |
| EP2769761A1 (en) * | 2013-02-25 | 2014-08-27 | Gambro Lundia AB | Virus filter |
| US20170361285A1 (en) * | 2015-01-16 | 2017-12-21 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Porous hollow fiber membrane |
| KR101902631B1 (ko) * | 2016-09-27 | 2018-09-28 | 롯데케미칼 주식회사 | 중공사막 및 이의 제조방법 |
| US11975292B2 (en) * | 2019-09-18 | 2024-05-07 | Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. | Ion permeable membrane |
| CN110627864A (zh) * | 2019-11-07 | 2019-12-31 | 重庆大学 | 一种细胞组分自动提取方法 |
| CN111518161A (zh) * | 2020-06-02 | 2020-08-11 | 英文特生物技术(北京)有限公司 | 一种柱式法从细胞中分离蛋白质的方法 |
| US12318528B2 (en) | 2020-10-30 | 2025-06-03 | Mozarc Medical Us Llc | Variable orifice fistula graft |
| ES3007240T3 (en) | 2020-10-30 | 2025-03-19 | Bellco Srl | Dialysis cassette with pump features |
| EP4008376A1 (en) | 2020-12-03 | 2022-06-08 | Medtronic, Inc. | Flexible tube routing accessory for peritoneal dialysis system |
| CN114452844B (zh) * | 2022-01-29 | 2023-12-29 | 杭州科百特过滤器材有限公司 | 一种用于生物大分子纯化的pes中空纤维膜及其制备方法与应用 |
Citations (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6190672A (ja) * | 1984-10-11 | 1986-05-08 | 株式会社クラレ | 生理活性物質を固定した多孔性中空繊維を使用した液の処理方法 |
| JPS62117812A (ja) * | 1985-11-15 | 1987-05-29 | Nikkiso Co Ltd | 中空繊維およびその製造方法 |
| JPH01254204A (ja) | 1988-04-01 | 1989-10-11 | Asahi Chem Ind Co Ltd | ウイルス除去方法 |
| JPH03146067A (ja) | 1989-11-02 | 1991-06-21 | Asahi Chem Ind Co Ltd | 血漿濾過方法 |
| JPH0450054B2 (ja) | 1986-04-28 | 1992-08-13 | Asahi Chemical Ind | |
| WO2003026779A1 (en) | 2001-08-01 | 2003-04-03 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Multilayer microporous film |
| WO2004035180A1 (ja) | 2002-10-18 | 2004-04-29 | Asahi Kasei Pharma Corporation | 親水性微多孔膜 |
| JP2005065725A (ja) * | 2003-08-22 | 2005-03-17 | Toyobo Co Ltd | 中空糸型血液浄化膜 |
| JP2006187768A (ja) * | 2004-12-09 | 2006-07-20 | Toray Ind Inc | ポリスルホン系中空糸膜の製造方法およびそれを用いた医療用途モジュールの製造方法。 |
| JP2006340977A (ja) * | 2005-06-10 | 2006-12-21 | Toyobo Co Ltd | 中空糸膜および血液浄化器 |
| JP2007136449A (ja) | 2005-10-14 | 2007-06-07 | Millipore Corp | 限外ろ過膜、ならびに限外ろ過膜の製造および使用の方法 |
| JP2007215569A (ja) * | 2006-02-14 | 2007-08-30 | Asahi Kasei Medical Co Ltd | 血漿成分分離器及び二重濾過血液浄化装置 |
| JP2008082728A (ja) * | 2006-09-26 | 2008-04-10 | Toray Ind Inc | 生体成分分画方法および分画装置 |
| JP2008237893A (ja) * | 2007-02-22 | 2008-10-09 | Toray Ind Inc | 血液処理カラム |
Family Cites Families (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5340480A (en) * | 1992-04-29 | 1994-08-23 | Kuraray Co., Ltd. | Polysulfone-based hollow fiber membrane and process for manufacturing the same |
| JPH10243999A (ja) * | 1997-03-07 | 1998-09-14 | Asahi Medical Co Ltd | ポリスルホン系血液透析膜 |
| JP3474205B2 (ja) * | 1997-05-19 | 2003-12-08 | 旭メディカル株式会社 | ポリスルホン系中空糸型血液浄化膜とその製造方法 |
| EP1206961B1 (en) | 1999-08-20 | 2007-02-21 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Filter membranes for physiologically active substances |
| DE102004008220B4 (de) * | 2004-02-19 | 2006-01-12 | Membrana Gmbh | High-Flux Dialysemembran mit verbessertem Trennverhalten |
| JP3642065B1 (ja) | 2004-03-22 | 2005-04-27 | 東洋紡績株式会社 | 選択透過性分離膜および選択透過性分離膜の製造方法 |
| WO2007102528A1 (ja) * | 2006-03-09 | 2007-09-13 | Toyo Boseki Kabushiki Kaisha | 性能安定性に優れた中空糸膜および血液浄化器および中空糸膜の製造方法 |
| WO2007125943A1 (ja) * | 2006-04-26 | 2007-11-08 | Toyo Boseki Kabushiki Kaisha | 高分子多孔質中空糸膜 |
| AU2007312413B2 (en) * | 2006-10-18 | 2011-09-29 | Gambro Lundia Ab | Hollow fiber membrane and method for manufacturing thereof |
| US8741600B2 (en) * | 2007-06-19 | 2014-06-03 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Method for separation of immunoglobulin monomers |
| JP5099930B2 (ja) | 2007-06-19 | 2012-12-19 | 旭化成株式会社 | 免疫グロブリン1量体の分離方法 |
-
2009
- 2009-12-24 PT PT98349343T patent/PT2377599T/pt unknown
- 2009-12-24 EP EP09834934.3A patent/EP2377599B1/en active Active
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- 2009-12-24 JP JP2010544118A patent/JP5207150B2/ja active Active
- 2009-12-24 US US13/142,125 patent/US9795932B2/en active Active
- 2009-12-24 DK DK09834934.3T patent/DK2377599T3/da active
- 2009-12-24 ES ES09834934T patent/ES2828098T3/es active Active
Patent Citations (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6190672A (ja) * | 1984-10-11 | 1986-05-08 | 株式会社クラレ | 生理活性物質を固定した多孔性中空繊維を使用した液の処理方法 |
| JPS62117812A (ja) * | 1985-11-15 | 1987-05-29 | Nikkiso Co Ltd | 中空繊維およびその製造方法 |
| JPH0450054B2 (ja) | 1986-04-28 | 1992-08-13 | Asahi Chemical Ind | |
| JPH01254204A (ja) | 1988-04-01 | 1989-10-11 | Asahi Chem Ind Co Ltd | ウイルス除去方法 |
| JPH03146067A (ja) | 1989-11-02 | 1991-06-21 | Asahi Chem Ind Co Ltd | 血漿濾過方法 |
| WO2003026779A1 (en) | 2001-08-01 | 2003-04-03 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Multilayer microporous film |
| WO2004035180A1 (ja) | 2002-10-18 | 2004-04-29 | Asahi Kasei Pharma Corporation | 親水性微多孔膜 |
| JP2005065725A (ja) * | 2003-08-22 | 2005-03-17 | Toyobo Co Ltd | 中空糸型血液浄化膜 |
| JP2006187768A (ja) * | 2004-12-09 | 2006-07-20 | Toray Ind Inc | ポリスルホン系中空糸膜の製造方法およびそれを用いた医療用途モジュールの製造方法。 |
| JP2006340977A (ja) * | 2005-06-10 | 2006-12-21 | Toyobo Co Ltd | 中空糸膜および血液浄化器 |
| JP2007136449A (ja) | 2005-10-14 | 2007-06-07 | Millipore Corp | 限外ろ過膜、ならびに限外ろ過膜の製造および使用の方法 |
| JP2007215569A (ja) * | 2006-02-14 | 2007-08-30 | Asahi Kasei Medical Co Ltd | 血漿成分分離器及び二重濾過血液浄化装置 |
| JP2008082728A (ja) * | 2006-09-26 | 2008-04-10 | Toray Ind Inc | 生体成分分画方法および分画装置 |
| JP2008237893A (ja) * | 2007-02-22 | 2008-10-09 | Toray Ind Inc | 血液処理カラム |
Non-Patent Citations (5)
| Title |
|---|
| JOURNAL OF MEMBRANE SCIENCE, vol. 210, 2002, pages 369 - 378 |
| JOURNAL OF MEMBRANE SCIENCE, vol. 236, 2004, pages 137 - 144 |
| PDA JOURNAL OF GMP AND VALIDATION IN JAPAN, vol. 7, no. L, 2005, pages 44 |
| PDA JOURNAL OF GMP AND VALIDATION IN JAPAN, vol. 9, no. L, 2007, pages 6 |
| See also references of EP2377599A4 |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2013012024A1 (ja) * | 2011-07-21 | 2013-01-24 | 東洋紡株式会社 | 多孔質中空糸膜 |
| JPWO2013012024A1 (ja) * | 2011-07-21 | 2015-02-23 | 東洋紡株式会社 | 多孔質中空糸膜 |
| JP2013071100A (ja) * | 2011-09-29 | 2013-04-22 | Toyobo Co Ltd | タンパク質含有液処理用多孔質中空糸膜 |
| JP2014073487A (ja) * | 2012-09-11 | 2014-04-24 | Toray Ind Inc | 多孔質膜、多孔質膜を内蔵する浄水器および多孔質膜の製造方法 |
| JP2017014441A (ja) * | 2015-07-04 | 2017-01-19 | 永嶋 良一 | 成形体の製造方法 |
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