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WO2009130349A1 - Obtención de una nueva cepa de bifidobacterium bifidum con actividad frente a la infección por helicobacter pylori - Google Patents

Obtención de una nueva cepa de bifidobacterium bifidum con actividad frente a la infección por helicobacter pylori Download PDF

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WO2009130349A1
WO2009130349A1 PCT/ES2009/000219 ES2009000219W WO2009130349A1 WO 2009130349 A1 WO2009130349 A1 WO 2009130349A1 ES 2009000219 W ES2009000219 W ES 2009000219W WO 2009130349 A1 WO2009130349 A1 WO 2009130349A1
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WO
WIPO (PCT)
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strain
pylori
peptides
seq
cect
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/ES2009/000219
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Francisco Javier Echevarria
José Ramón IGLESIAS BARCIA
Philippe Balbarie
Beatriz Casinos Ramo
Empar Chenoll Cuadros
María ENRIQUE LÓPEZ
Esther Bataller Leiva
Salvador GENOVÉS MARTÍNEZ
Daniel RAMÓN VIDAL
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Corporacion Alimentaria Penasanta SA CAPSA
Original Assignee
Corporacion Alimentaria Penasanta SA CAPSA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to EP09735168.8A priority patent/EP2270133B1/en
Priority to DK09735168.8T priority patent/DK2270133T3/en
Publication of WO2009130349A1 publication Critical patent/WO2009130349A1/es
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    • A23C9/12—Fermented milk preparations; Treatment using microorganisms or enzymes
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    • A23C9/1234—Fermented milk preparations; Treatment using microorganisms or enzymes using only microorganisms of the genus lactobacteriaceae; Yoghurt characterised by using a Lactobacillus sp. other than Lactobacillus Bulgaricus, including Bificlobacterium sp.
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A23V2400/00—Lactic or propionic acid bacteria
    • A23V2400/51—Bifidobacterium
    • A23V2400/517—Bifidum
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Definitions

  • the present invention relates to a method of obtaining a new strain of the species Bifidobacterium bifldum that is capable of inhibiting the growth of Helicobacter pylori
  • H. pylori has become one of the microorganisms whose name is recognized by a large part of the population. The reason for this fame is due to the high prevalence of infection by said pathogen. 50% of the world's population is considered to be carriers of H. pylori. In developed countries this figure is between 15 and 40% of the population but in developing countries it increases up to 80%, reaching 80% of children under ten years of age (Taylor and Blazer, 1991) 6 .
  • H. pylori is important for three reasons (Gisbert et al, 2004) 5 . Its infection is the most frequent cause of peptic ulcer, so it is estimated that 20% of individuals infected with this pathogen develop an ulcer at some time in their life (Peterson, 1991 7 ; Solnick and Tompkins, 1992 8 ). In addition, in 1994, the Organization World Health and the International Agency for Research on Cancer established that there was sufficient epidemiological and histological evidence to conclude that H, pylori is the main risk factor for the onset of gastric cancer (Eurogast Study Group, 1993 9 ;
  • H. pylori is considered to be responsible for a rare type of lymphoma, the so-called gastric MALT lymphoma, by causing chronic inflammation of the lymphoid tissue that leads to the development of the disease (Vilella et al, 2003) 11 .
  • gastric MALT lymphoma by causing chronic inflammation of the lymphoid tissue that leads to the development of the disease.
  • Bacillus subtilis cell-free supernatants Pierillus subtilis cell-free supernatants (Pinchuk et al, 2001) 26 and We ⁇ ssella confusa (Nam et al, 2002) 27 , and with several bacteria of the cavity itself oral as Fuseobacterium nucleatwn, Porphyromonas ginginivalis, Prevotella intermedia, Prevotella nigrescens, Prevotella oris, Streptococcus mitis, Sfreptococcus mutans,
  • Streptococcus oralis Streptococcus salivarus and Streptococcus sobrinus (Ishihara et al, 1997).
  • EP 1092040 Al refers to a method for selecting molecules capable of inhibiting in vivo the survival of Helicobacter, in particular of H. pylori, by specific inhibition of urease activity encoded in the Urel gene and the use of these molecules for treat or prevent H. pylori infection.
  • JP 2002322086 refers to an active agent, specifically lactoferrin, which is used as a prophylactic or therapeutic against H. pylori infection. To do this, it is incorporated into drinks or meals to treat H. pylori infection.
  • said prophylactic or therapeutic agent against H. pylori infection comprises at least one microorganism belonging to the genus Bifidobacterium.
  • US 6329002 Bl refers to a food for inhibiting infection and treating gastritis and gastric and duodenal ulcers, which is effective against H. pylori not only in vitro but also in vivo and that comprises an effective amount of a microorganism selected from the group consisting of live strains of Lactococcus sp. 49Y49, Lactobacillus casei HY 2782 and Bifidobacterium longum BY 8001. The properties of these bacteria are increased by the addition of egg yolk containing specific antibodies against H. pylori. Similarly, in JP 2001258549 the probiotics L. acidophilus HY2177 and L. casei 274 have been selected that have activity against H.
  • H. pylori K551 obtained from a patient's stomach ulcer, to make preparations against H. pylori KR 20020061040 describes lactic products for the inhibition of growth of H. pylori containing L. gasseri, L. acidophüus M and Bifidobacterium lactis Bb-12, or its culture products. These products are used to prevent and treat gastritis and duodenal ulcers, among others, minimizing the side effects of antibiotics used in the treatment against H. pylori.
  • the invention relates to a method for preparing fermented foods that eliminate H. pylori and / or the bacilli that poison food.
  • Said method comprises the steps of: a) inoculating lactic ferments in foods, selected from the group consisting of the genus Lactobacillus, the genus Bifidobacterium, preferably the species B.infantis, the genus Streptococcus and mixtures thereof, said foods being selected from the group consisting of grains, fruit, vegetables, and mixtures thereof; b) incubating said inoculated at 15-35 0 C for 12-48 hours mixtures.
  • WO 00/74712 A2 refers to a dietary, nutritional or pharmaceutical composition comprising alkaline sphingomyelinase in an amount sufficient to exert a dietary, nutritional or therapeutic effect on an individual in need, such as to prevent or treat different conditions. pathological conditions that include carcinogenic processes, inflammation of the intestine, hypercholesterolemia and H. pylori infections.
  • Sphingomyelinase can be of bacterial origin, and the bacteria that contain it are chosen from Gram-positive, Gram-negative and lactic acid bacteria, or mixtures thereof.
  • lactic acid bacteria 16 strains of the genus Lactobacillus, 12 of the genus Bifidobacterium are mentioned as the species B. bifidum, and 3 of the genus Streptococcus.
  • WO 2007/01097 Al describes a strain of the species Bifidobacterium bifidum that has the following characteristics: (1) produces the effect of killing Helicobacter pylori, and (2) shows a survival of 10% or more in the case if stored in a fermented milk beverage or food in aerobic conditions at 1 ° C or 0 ° C for 14 days.
  • the present invention describes a process for obtaining agents with anti-H activity. pylori, and therefore effective in the treatment of ulcer.
  • the inventors have investigated the inhibitory effect of H. pylori by different bacteria isolated from feces. This invention is based on the use of the strain of
  • the inhibitory effect has been observed with the culture supernatant of strain CP5 grown in the presence of cysteine.
  • the strain of the invention is active against H. pylori infection as' demonstrated in tests in vitro adhesion. The inventors have found that the supernatant of this strain has proven anti-H pylori activity.
  • the CP5 strain maintains a viability of 88% for at least a period of 15 days when added to a dairy derivative maintained at 5 0 C. Furthermore, it is an object of the present invention to provide dietary, nutritional and / or pharmaceutical compositions that are effective in the prophylaxis of an H. pylori infection.
  • Pharmaceutical compositions are those that are useful only for their therapeutic or prophylactic effects, and that are generally composed only of the active (in this case a lyophilisate of the strain CP5 of B. bifidum) with one or more appropriate vehicles that depend on the galenic form of the medication Dietary compositions are those that comprise in addition to the active agent nutritional materials and other nutritional supplements.
  • the present invention describes a method for obtaining agents with anti-H. pylori activity, and therefore effective in the treatment of ulcer.
  • the inhibitory effect of H. pylori by different bacteria isolated from feces has been investigated.
  • One of them is the strain of B. bifidum, called CP5, deposited in the Spanish Type Culture Collection (CECT) with the accession number CECT 7366.
  • CECT Spanish Type Culture Collection
  • the inhibitory effect has been observed with the culture supernatant of strain CP5 grown in presence of cysteine, which has proven anti-H activity.
  • pylori as well as with the reverse phase fraction containing the SED.ID.NO: 1-6 peptides, obtained from said bacterial strain.
  • the present invention describes the detailed characterization of strain CP5, object of the present invention, as well as obtaining the active peptides of the strain supernatant after fermentation, and its anti-H pylori activity.
  • the present application describes the obtaining of a strain of the species B. bifidum, isolated from feces of a healthy child under one year old, fed with breast milk. Said strain is able to inhibit the growth of different clinical isolates of H. pylori and several reference strains. Without ruling out that such inhibition is due in part to a natural competition phenomenon, the results presented in this invention conclusively demonstrate that various metabolites of a peptide nature present in the culture medium of strain B. bifidum under study are those responsible for such inhibition. Other strains of different species of the genus Bifidobacterium, and even other strains of the species B. bifidum, do not have this phenotype of production of said peptide complex.
  • peptides have been identified as products of the enzymatic degradation of casein.
  • Figure 1 Comparison of the electrophoretic profiles obtained from the amplification of strain CP5 with primers BIF (A) and RFL-2 (B) compared to other strains of Bifidobacteriwn spp. and lactic bacteria.
  • Figure 2 Test of resistance to bile salts of the selected strains. Growth at 37 0 C for 24 hours under anaerobiosis.
  • Figure 3 Effect of the different concentrations of NaCl on the growth of the selected strains. Growth at 37 0 C for 24 hours under anaerobic conditions.
  • the strain of the invention is active against H. pylori infection as demonstrated by the supernatant resulting from the fermentation of the strain in in vitro adhesion tests.
  • a fraction of said supernatant has been isolated which has an inhibition value of H. pylori of 94.77%, probably due to the presence of all the specific peptides that have been identified as SEQ. ID. NO: 1 to 6.
  • strain CP5 is carried out in the form of viable and non-viable cells.
  • Viable cells are used by introducing live bacteria in an unfermented composition. In this way the administration of such compositions allows the anti-Helicobacter pylori activity to take place in the gastrointestinal tract.
  • Viable and non-viable cells are those that result from exposure of strain CP5 to fermentation in a suitable medium, such as a dairy medium, so that polypeptides called SEQ.ID.NO: 1 to 6 are produced.
  • Also part of the invention are bacterial cultures obtained from strain CP5 comprising viable cells and / or non-viable cells containing at least one of the peptides SEQ.ID.NO: 1 to 6.
  • the CP5 strain can be used in the form of viable cells and acts as a probiotic.
  • probiotics are "living organisms that when administered in adequate amounts provide a benefit to the health of the host" and are generally used as such some yeasts and bacteria, the most commonly used bacteria of the genus Lactobacillns
  • Dietary compositions are those that comprise in addition to the active agent other nutritional materials and supplements.
  • the supernatant of strain CP5 has a viability of 88% for at least a period of 15 days when added to a dairy derivative maintained at 5 ° C. In these compositions it can be mixed with other probiotics, for example in yogurts.
  • Pharmaceutical compositions are those that are useful only for their therapeutic and / or prophylactic effects, and that are generally composed only of the active (in this case a culture or lyophilisate of the strain CP5 of B. bifldum or peptides obtained from the fermentation supernatant of said strain with one or more adjuvants and / or appropriate vehicles that depend on the dosage form of the medicine.
  • strain CP5 is present in an amount of approximately 10 5 to 10 11 cfu / g, "colus” forming unit (in English “efu”) being defined as "the number of bacterial cells to be detected by microbiological counting on agar plates per gram of composition ".
  • strain CP5 The characterization of strain CP5 is described below, as well as the peptides isolated from the supernatant after fermentation of said strain and its anti-H activity.
  • the peptides of the invention can be used in the mentioned compositions both in conjunction with bacteria of the invention and in their absence.
  • BSM Bi ⁇ dobacterium
  • BFM Bifidobacterium agar medium
  • the morphology of colony and the type of cell wall of the strains obtained was determined by Gram staining. It was observed that 70% of the total strains analyzed belonged to the genus Bifidobacterium.
  • the activity of the culture supernatants of six bifidobacteria was analyzed against two reference strains of H. pylori (NCTC 11637 and NCTC 11638) and six isolates of H. pylori from clinical origin (Al, A2, A3, A4, A5 and A6).
  • the antibacterial activity was evaluated by agar diffusion techniques of the culture supernatants of the selected bifidobacteria against the reference strains H. pylori NCTC 11637 and NCTC 11638.
  • lactic bacteria Two subcultures of the lactic bacteria were made with a 1% (w / v) inoculum in 3 ml of MRS medium (Pronadisa) supplemented with 0.05% (w / v) of L-cysteine (Scharlau) and incubating under anaerobic conditions during 24 hours at 37 0 C.
  • MRS medium Pronadisa
  • L-cysteine Scharlau
  • the lactic bacteria thus grown were again inoculated under the same conditions in 50 mL of MRS-C and MRS-C supplemented with 1% (v N) Tween 80 respectively and incubated for 17 hours after which obtained the culture supernatants by centrifugation.
  • Tests were carried out in liquid medium of the antibacterial capacity of the supernatants of the 6 strains of bifidobacteria mentioned above against H. pylori strain NCTC 11637.
  • the Brain ⁇ eart Infusion medium supplemented with 5% (v / v) bovine serum Fetal (Invitrogen) was performed in 96-well polystyrene plates, an inoculum of 1% (w / v) of the indicator strain from a bacterial density suspension optical at 600 nm equal to 2.5 + 0.05 in order to standardize the number of microorganisms at 10 4 cfu / mL.
  • Zones of inhibition were observed after 2-3 days incubation at 37 0 C under microaerophilic conditions (CampyGen; Oxoid). Under these conditions no inhibition effect was observed on H. pylori isolates.
  • the conditions of the growth culture medium of the bifidobacteria were modified in order to improve the production of the inhibitors.
  • bifidobacteria were grown under the same conditions as in the previous case but using the MRS-C (Oxoid) medium which is supplemented with 1% (w / v) Tween 80.
  • the supernatants were treated the same as in the case. above and its activity was analyzed by the agar diffusion method against the strains of H.
  • Table 2 Plate antimicrobial activity of culture supernatants of Bifldobacterium strains grown for 17 h in MRS-C medium versus control strains of H. pylori NCTC 11637 and NCTC 11638 supplemented with 1% (w / v) Tween 80 versus H. pylori isolates.
  • Table 3 Plate antimicrobial activity of culture supernatants of Bifidobacterium strains grown in MRS-C medium supplemented with 1% (w / v) Tween 80 against H. pylori isolates.
  • Swine mucin type III (Sigma) was used at a protein concentration of 0.5 mg / mL.
  • the total protein concentration was determined according to the Bradford (Biorad) method using bovine serum albumin (BSA) as standard.
  • H. pylori cells grown in microaerophilic for 36 hours at 37 0 C were washed twice with HEPES (N-2-hidroxietilpiperazine-N-2-ethanesulfonic acid) buffer -
  • cells were fluorescently labeled by adding 10 ul buffer / mL of 100 mM carboxyfluorescein diacetate (CFDA; Calbiochem) and incubated at 37 0 C for
  • the assay consisted of the addition of 100 ⁇ L of unlabeled probiotic cells to wells of polystyrene multiwell plates (Maxisorp, Nunc) where the mucus had previously been fixed and incubated for 1 h at 37 0 C. For its fixation, the mucus It was previously dissolved in HEPES-Hanks buffer (HH) at the desired concentration and immobilized on the Maxisorp-Nunc plates by adding 100 ⁇ l of this solution to each well. Following incubation at 4 0 C overnight, the remains of non - immobilized mucus were removed by two successive washes of 200 ul HH buffer. After the last wash, 100 ⁇ l of HH buffer was added to each well.
  • HEPES-Hanks buffer HH
  • the results were expressed in percentage of fluorescence recovered after adhesion, in relation to the fluorescence of the bacterial suspension added to the wells.
  • the percentage of inhibition of adhesion was calculated as the difference between the adhesion of the pathogen in the absence and presence of bifidobacteri 'as.
  • the tests were carried out in three independent experiments and each one was carried out in quadruplicate. The average of the results is shown in Table 4.
  • Table 4 Percentage of inhibition of adhesion of three strains of H. pylori to mucus by joint culture with the selected bifidobacteria.
  • genomic DNA was performed bacterial from a cell culture broth CP5 MRS-C for 17 hours at 37 0 C under anaerobic conditions. These cells were collected, washed with TE buffer (Tris- ⁇ Cl 10 raM and EDTA ImM) and resuspended in 500 ⁇ l of TE buffer to which 20 ⁇ l of a solution of lysozyme (50 mg / mL). This mixture was incubated at 37 0 C for one hour and a half. After this incubation, 30 ⁇ l of 10% SDS (w / v) and 3 ⁇ l of a proteinase K solution (10 mg / mL) were added and incubated 1 hour at 37 0 C.
  • TE buffer Tris- ⁇ Cl 10 raM and EDTA ImM
  • the DNA suspension was cleaned by adding to the sample 100 ⁇ l of a 5 M NaCl solution and 80 ⁇ l of a solution of cetyl trimethyl ammonium bromide (CTAB) and NaCl (10% CTAB (w / v) and 0.7 M NaCl). This mixture, either dissolved, was incubated at 65 0 C for 10 minutes.
  • CTAB cetyl trimethyl ammonium bromide
  • DNA purification was performed by extraction technique with a volume of phenol-chloroform-isoamyl alcohol (25: 24: 1).
  • the nucleic acids were precipitated by the addition of 500 ⁇ l of isopropanol, stirring and leaving at room temperature for 10 minutes, after which it was centrifuged at 12,000 rpm 15 minutes.
  • the precipitated DNA was washed with 70% (v / v) cold ethanol.
  • the precipitated and clean DNA was dried under vacuum and resuspended in 50 ⁇ l of TE buffer. To each sample they were added 3 ul of RNase solution (10 mg / mL) incubating the mixture at 37 0 C 30 minutes.
  • the DNA concentration was determined in 0.7% agarose gel (w / v) in TAE buffer (242 g Tris base, 57.1 mL glacial acetic acid, 100 mL of 0.5 M EDTA pH 8.0).
  • strain CP5 was performed at the genus and species level by specific PCR techniques and sequencing of an approximately 600 bp segment of the 16S ribosomal DNA (DNAr) and at the strain level by PCR-RAPD techniques using the primers described in Table 5
  • primers Lm3 SEQ.ID.NO:9 and Lm26 (SEQ.ID.NO:8) were used.
  • the specific primers detailed in Table 5 were used.
  • the BIF primers SEQ.ID.NO:16
  • RFL-2 SEQ.ID: NO: 17
  • primers 616V SEQ.ID.NO:18
  • 699R SEQ.ID.NO:19
  • the PCR reaction mixture varied depending on the type of analysis performed. The different concentrations that were established for a reaction volume of 50 ⁇ l are shown in Table 6.
  • the CP5 strain was identified by specific PCR as belonging to the species
  • Bacterial strains were grown at 37 0 C and 24 h in anaerobiosis, washed twice in 0.5% saline and brought to an inoculum of 10 -10 cfu / mL.
  • the test emulated the conditions and exposure time to which the bacteria are subjected during their passage through the gastric and intestinal tract in two stages.
  • the first simulated the gastric tract, for which an inoculum of 1% (v / v) of the bacteria was made in 10 mL of saline adjusted to pH 3.0 with pepsin HCl and incubation at 37 0 C in anaerobiosis for 120 minutes.
  • the second one mimicked the passage through the intestinal tract, for which the cells were neutralized by washing with phosphate buffer (PBS) at pH 7.0 and resuspended in saline with pancreatin adjusted to ' pH 8.0 with NaOH, incubating in anaerobiosis for 240 minutes . Samples were taken at 0, 90 and 120 minutes in the first stage and at
  • strain CP5 and the Lactobacillus GG control were recovered in MRS-C medium plates, viable counts were performed after 48 hours of incubation. Both strains showed a similar loss of viability after exposure to the juices, due both to their direct action and to the extreme pH values (Table 8). The percentage of viability was calculated as the ratio between the number of viable cells obtained in each of the stages of the test against the number of viable in zero time that was the inoculum (10 7 -10 8 cfu / mL).
  • antibiotics were tested to see the resistance or sensitivity of the different bacterial strains.
  • the antibiotics used were nalidixic acid (30 ⁇ g), amoxicillin (25 ⁇ g), carbencillin (100 ⁇ g), clarithromycin (15 ⁇ g), chloramphenicol (30 ⁇ g), erythomycin (15 ⁇ g), gentamicin (10 ⁇ g), kanamycin (30 ⁇ g), metronidazole (5 ⁇ g), oxacillin (1 ⁇ g), penicillin (6 ⁇ g), polymyxin B (300 IU), rifampin (5 ⁇ g), sulfonamide (200 ⁇ g), tetracycline (30 ⁇ g), trimethoprim (5 ⁇ g) and vancomycin (30 ⁇ g).
  • Table 10 This is one of the criteria for selecting new strains of probiotics, since knowing their resistance profile, safety data are known for their use, which allows establishing the basis for a possible application as a complement in the antibiotic treatment of infections such as peptic ulcer caused by H. pylori.
  • the two strains showed resistance to eight of the seventeen antibiotics tested, including nalidixic acid, gentamicin, kanamycin, metronidazole, oxacillin, polymyxin, sulfamide and vancomycin.
  • This antibiotic sensitivity profile is that described for other probiotic strains of the genus Bifidobacterium (B. adolescentis, B. breve, B. infantis and B. longum).
  • Resistance data of bifidobacteria against antibiotics such as gentamicin or metronidazole, commonly used in treatments of infections caused by H. pylori, indicate the possibility of using the selected lactic bacteria in combination therapies that would include probiotic treatment with the administration of these antibiotics
  • the test was conducted using the methodology used in 3. Briefly, CP5 and Lactobacillus GG strains grown anaerobically for 24 hours at 37 0 C were washed twice with HEPES buffer - Hanks and the concentration of microorganisms was adjusted to OD 600 nm of 0.25 + 0.05. Cells were then fluorescently labeled with CFDA and incubated at 37 0 C for 45 minutes, maintaining the mixture from light. On the mucus immobilized in multi-well polystyrene plates (Maxisorp, Nunc), 100 ⁇ l of labeled cells were added to each of the wells and Ih was incubated at 37 0 C.
  • the removal of the '' • 25 ' • non-adherent bacteria was performed using two 200 ⁇ l washes of HH buffer.
  • the bacteria that adhered were released by scraping the immobilized mucus in each well and were subsequently lysed with 1% (w / v) SDS in 0.1 M NaOH (200 ⁇ l per well) by incubating the plates at é> O ° C during Ih.
  • Adhesion was expressed as the percentage of fluorescence recovered after adhesion in relation to the fluorescence of the bacterial suspension added to the immobilized mucus. Bacterial adhesion was determined in three independent experiments and each trial was performed - in quadruplicate.
  • the two strains were subjected to an adhesion test to samples of swine mucus type III.
  • the CP5 strain showed 12% adhesion against 10% of the Lactobacilhis GG strain.
  • a 10-liter fermentation was carried out with strain CP-5 in MRS medium supplemented with cysteine (0.05% w / v) in order to obtain a supernatant rich in the metabolite responsible for the inhibition of H. pylori.
  • Incubation was carried out at 37 0 C for 17 hours without agitation and anaerobiosis generator to give a cell density culture 1.25-10 8 cfu / ml.
  • the amount of inoculum was 1% of the total fermentation volume.
  • the supernatant was obtained by centrifugation at 10,000 ipm for 15 min and frozen at -8O 0 C until the purification process.
  • the cation exchange fraction 4 which had the highest inhibition value, was subjected to an ultrafiltration process with 5000 Da filters (Extreme Amicon, Millipore).
  • the filtered volume of this stage contained the proteins inferior to this molecular weight.
  • This filtered volume was subjected to a reverse phase chromatography step to purify and subsequently identify by MALDI-TOF mass spectrometry the metabolite responsible for H.pylori inhibition.
  • the RESOURCE RPC 3ml column GE Healthcare
  • a gradient was used with the eluents A) MiIiQ water + 0.1% trifiuoroacetic acid (TFA) and B) acetonitrile + 0.1% trifluoroacetic acid (TFA).
  • BSH activity was determined in culture supernatants of strain CP-5 grown under conditions of microaerobiosis and anaerobiosis. Prior to the determination of BSH activity, the standard curves of glycine and taurine were performed. Table 11 shows the BSH activity values of strain CP-5.
  • CP5 bifidobacteria cell supernatant is obtained in approximately 5 days.
  • Day 3 Pass 2 of the crop (inoculum). Sowing 200 mL of MRS-C 2 mL of the pass culture 1. Bottle growth for 17 hours in a laboratory oven at 37 0 C. Preparation of a 20 L bottle in non-commercial MRS-C medium and autoclave sterilization. Day 4: Sampling of the inoculum. MRS-C plate counts from seeding at least three serial dilutions (-6, -7 and -8) in 0.09% NaCl saline solution pH 7.0. Growth for 30 h in a laboratory oven at 37 0 C with anaerobiosis generator. OD measurement and dry weight (Annex 1). Garrafon inoculation. 200 mL of inoculum (1%) is inoculated under the highest sterility conditions (in flame). Growth for 17 h in a controlled temperature chamber at 37 0 C.
  • the washed cells are resuspended in a volume of 1500 ml of cryoprotective solution.
  • the cysteine is prepared separately in 10Ox solution and added to the already sterilized medium.
  • the agar is only added in the case of solid medium.
  • the objective is to obtain a lyophilized bifidobacteria product with a concentration equal to or greater than 10 10 cfu / g.
  • Jomada 6 It starts from the washed cells obtained from production (see point 10), which are resuspended in the cryoprotectant solution, composed of 1500 ml UHT liquid skim milk and 5% food sucrose. The product is distributed in freeze-drying trays and frozen at - 8O 0 C.
  • Day 8 Collection of the freeze-drying product. Heavy and measure Aw and moisture. Product counts on MRS-C plates after seeding at least three serial dilutions (-6, -7 and -8) in 0.09% NaCl saline solution pH 7.0. Growth for 30 h in a 37 0 C laboratory oven with anaerobiosis generator. Vacuum packaging of the product in the shortest possible time. Conservation at 4 0 C until shipment. 10.3 Use of CP5 as a probiotic.
  • Probiotic food is considered to be one that contains live microorganisms present in a food that remain active in the intestine and exert important physiological effects. Ingested in sufficient quantities they have a very beneficial effect, such as contributing to the balance of the intestinal bacterial flora of the host and boosting its immune system. They are not pathogens. They contain this class of microorganisms and, therefore, are probiotic foods, fresh yogurts, other fermented milks, etc.
  • probiotic foods are simple or mixed cultures of probiotic bacteria, which when consumed by both humans and animals, survive the passage through the gastrointestinal tract and are implanted (not necessarily) in the colon or small intestine, being able to adhere to the intestinal mucosa favorably affecting the host in terms of improved health.
  • probiotic yogurt in relatively abundant amounts has a therapeutic effect against H. pylori (Guilliland,
  • probiotics are used in both milk and cheeses, pasteurized juices, ice cream, yogurts, cereals and nutrition bars. Because probiotics are living organisms, their viability is a key point for their success.
  • strain CP5 maintain a viability of 88% for at least a period of 15 days at 5 0 C when added to a dairy derivative.
  • the CP5 strain can be used as a probiotic by adding it to foods in general and particularly to dairy products and yogurts, both directly and fermented and in this case also directly and lyophilized.
  • CP5 in the form of lyophilisate obtained in item 11 would be in obtaining a dietary composition, for example from pasteurized milk to which the lyophilisate is added containing preferably 10 5 -10 n cfu / g of CP5 cells ,. which are mixed with the pasteurized milk, the mixture is homogenized at approximately 5 0 C and the Milk thus homogenized is bottled and packaged in the usual way for consumption.
  • the duration in this case is at least 15 days at 5 0 C.
  • the lyophilisate of CP5 obtained in point 11 is used which is ground to a maximum particle size of 1 mm in diameter and mixed in a physiologically effective amount that will generally contain 10 9 -10 ⁇ cfu / g of CP5 cells , with the necessary substances to form pills, capsules, etc.
  • a physiologically effective amount is the necessary amount of an active agent to achieve the desired effect, either to prevent or to cure, this is the case of H. pylori infection.
  • compositions of the invention may include one or more pharmaceutically acceptable excipients, adjuvants, diluents or carriers that are generally known to those skilled in the art.
  • compositions of the invention can be prepared in solid form, such as tablets, pills, tablets, powders, etc .; liquid, such as mixing the asset with water, oils or mixtures of both, in suspensions or dispersions mixed with dispersing and / or suspending agents, such as gums, etc.
  • the lyophilisate of CP5 can also be administered in pharmaceutical compositions together with antibiotics to treat gastric ulcer and prevent stomach cancer.
  • compositions will be to prevent or combat infections caused by H. pylori in gastrointestinal diseases, among others, stomach ulcers and stomach cancer.

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Abstract

La presente invención se refiere a un procedimiento de obtención de una nueva cepa de la especie Bifidobacterium bifidum que es capaz de inhibir el crecimiento de Helicobacter pylori (H. pylori) por un mecanismo molecular presente en esta cepa y ausente en otras cepas del mismo género. La utilización de este microorganismo puede aplicarse en los sectores agroalimentario y farmacéutico.

Description

Obtención de una nueva cepa de Bifidobacterium bifldum con actividad frente a Ia infección por Helicobacter pylori
SECTOR DE LA TÉCNICA
La presente invención se refiere a un procedimiento de obtención de una nueva cepa de la especie Bifidobacterium bifldum que es capaz de inhibir el crecimiento de Helicobacter pylori
(H. pylori) por un mecanismo molecular presente en esta cepa y ausente en otras cepas del mismo género. La utilización de este microorganismo puede aplicarse en los sectores agroalimentario y farmacéutico.
ESTADO DE LA TECNICA
La primera descripción de la bacteria patógena Helicobacter pylori la dio Giulio Bizzozero1 en 1892 al detectar la presencia de lo que llamaron gérmenes espirales en la mucosa gástrica de perros. Hubo que esperar casi noventa afios para que Robin Warren y Barry Marshall2'3 lograran en 1983 cultivar por primera vez esta bacteria patógena y relacionaran su presencia con la gastritis y la úlcera péptica, aunque no se ha detectado su presencia en los jugos pancreáticos de pacientes afectados por pancreatitis crónica (Gasbarrini et al., 2000)4. Dicho descubrimiento fue recibido con escepticismo por la clase médica, pero dos décadas después, Warren y Marshall demostraron de forma concluyente esta relación obteniendo el premio Nobel de medicina en 2005 por sus trabajos (Gisbert et al, 2004)5. Desde entonces H. pylori se ha convertido en uno de los microorganismos cuyo nombre es reconocido por gran parte de la población. La razón para esta fama se debe a la gran prevalencia de la infección por dicho patógeno. Se considera que el 50% de la población mundial es portadora de H. pylori. En países desarrollados esta cifra se sitúa entre el 15 y el 40% de la población pero en países en desarrollo aumenta hasta el 80%, al llegar a implicar al 80% de los niños menores de diez afios (Taylor y Blazer, 1991)6.
Desde el punto de vista clínico, H. pylori es importante por tres motivos (Gisbert et al, 2004)5. Su infección es la causa más frecuente de úlcera péptica, de forma que se estima que el 20% de los individuos infectados con este patógeno desarrollan una úlcera en algún momento de su vida (Peterson, 19917; Solnick y Tompkins, 19928). Además, en 1994, la Organización Mundial de la Salud y la Agencia Internacional de Investigación en Cáncer establecieron que existía una evidencia epidemiológica e histológica suficiente para concluir que H, pylori es el principal factor de riesgo para la aparición de cáncer gástrico (Eurogast Study Group, 19939;
Chong et al, 199410). Estudios posteriores han reafirmado esta aseveración hasta el extremo que se sugiere que el incremento de riesgo de cáncer gástrico que implica la infección por H. pylori es equiparable al que conlleva el consumo de tabaco en la neoplasia de pulmón. Finalmente, se considera que H. pylori es responsable de un tipo poco frecuente de linfoma, el denominado linfoma tipo MALT gástrico, al provocar la inflamación crónica del tejido linfoide que da lugar al desarrollo de la enfermedad (Vilella et al, 2003)11. Por todo ello son muchos los autores que recomiendan eliminar la infección por H. pylori siempre que se detecte (Fox y Wang, 2001)12.
En la actualidad no existe tratamiento frente a la infección por H. pylori que asegure una tasa de curación completa (Gasbarrini et al, 2000)4. Por ello se habla de "estrategia terapéutica" para combatir el patógeno. La más usada es la llamada triple terapia que consiste en dar un tratamiento entre 7 y 10 días con amoxicilina, claritromicina e inhibidores de la bomba de protones que tiene una eficacia en el entorno del 70-80% (Lind et al, 199613; The Helicobacter pylori Study Group, 199714). Las causas principales de fracaso en el tratamiento son la falta de interés del paciente (hay que tomar muchas pastillas por día y hay efectos secundarios desagradables), la prescripción inapropiada y la presencia de cepas de H. pylori resistentes a los antibióticos utilizados (Deltenre et al, 1998)15. Cuando fracasa se hace preciso acudir a un tratamiento denominado "pauta cuádruple" que combina un inhibidor de la bomba de protones, metronidazol, subcitrato de bismuto y tetraciclina durante 7 a 14 días (Graham et al, 1991)16. Aún así continua habiendo fracasos, por lo que sería deseable la existencia de nuevas terapias o, sobre todo, de mecanismos preventivos de la infección por H. pylori.
En 1989, Bhatia y colaboradores demostraron en experimentos con cocultivos que un aislado comercial de Lactobacillus acidophilus era capaz de competir e inhibir el crecimiento in vitro de H. pylori (Bhatia et al, 1989)17. Posteriormente se han podido comprobar inhibiciones similares, si bien utilizando sobrenadantes de cultivo libres de células de una cepa concreta que se añadían a un cultivo de H. pylori. Esta aproximación ha sido exitosa con Lactobacillus acidophilus (Mrda et al 199818, Gasbarrini et al 200419), en concreto con las cepas denominadas CRL639 (Lorca et al, 2001)20, LB (Coconnier et al, 1998)21, LaI (Michetti et al,
1999) y Shirota (Sgouras et al, 2004) , y también con Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus (Mrda et al. 1998)18 y con mezclas de las cepas L. acidophüus R.0052 y Lactobacillus rhamnosus ROOIl (Johnson-Henry et al, 2004)24. En todos los casos existe una especificidad de cepa muy considerable (Hamilton-Miller, 2003)25. También se ha detectado actividad inhibitoria del crecimiento de H. pylori con sobrenadantes libres de células de Bacillus subtilis (Pinchuk et al, 2001)26 y Weϊssella confusa (Nam et al, 2002)27, y con el de varias bacterias propias de la cavidad oral como Fuseobacterium nucleatwn, Porphyromonas ginginivalis, Prevotella intermedia, Prevotella nigrescens, Prevotella oris, Streptococcus mitis, Sfreptococcus mutans,
Streptococcus oralis, Streptococcus salivarus y Streptococcus sobrinus (Ishihara et al, 1997) .
Este último resultado podría explicar la falta de eficacia de H. pylori en la colonización de la cavidad oral.
Parecen existir varios motivos por los que bien estas bacterias, bien algún metabolito secretado por las mismas al medio de cultivo, inhiben el crecimiento de H. pylori. Dado que muchas de las cepas seleccionadas son bacterias ácido lácticas se ha sugerido el posible efecto bactericida del ácido láctico o de algún otro ácido orgánico sobre H. pylori (Bathia et al, 1989 ; Aiba et al, 199829; Hamilton-Miller, 200325). Sin embargo, en la mayoría de los casos se ha delimitado que el efecto lítico se debe a algún metabolito secretado al medio de cultivo distinto del ácido láctico, sugiriéndose en ocasiones la existencia de antibióticos (Pinchuk et al, 2001)2 , autolisinas (Lorca et al, 2001)20 o bacteriocinas (Nam et al, 2002)27.
En experimentación con cultivos celulares in vitro se ha podido comprobar la competencia por la unión a células de epitelio gástrico murino o células de carcinoma gástrico humano entre H. pylori y L. acidophilus, L. brevis o L. salivarus cepa WB 1004 (Kabir et al,
1997)30. Como consecuencia, mediante el empleo de estas cepas de bacterias ácido lácticas se reduce la secreción de interleuquina-8 (Kabir et al, 1997)30. Se ha demostrado un efecto similar de reducción en la producción de interleuquina-8 usando la cepa.Lactobacillus gasseri OLL2716 (Ushiyama et al, 2003)31. Incluso se ha sugerido que la competencia por receptores glicolipídicos entre H. pylori y Lactobacillus reuteri podría ser una estrategia a partir de la cual usar esta última bacteria como probiótico eficaz contra H. pylori (Mukai et al, 2002)32.
Todos estos resultados in vitro han sido refrendados con experimentación preclínica in vivo con modelos animales, sobre todo usando ratones libres de. gérmenes (GF por las siglas en inglés de "germ-free") o ratones libres de patógeno específico (SPF por las siglas en inglés de
"specific pathogen free"). Kabir y colaboradores demostraron en 1997 que al alimentar ratones GM con la cepa L. salivarus WB 1004 estos quedaban protegidos frente a una infección posterior por H. pylori (Kabir et al, 1997)30. Al hacer el experimento contrario, es decir, producir primero la infección por H. pylori y posteriormente alimentar los ratones con la cepa L. salivarus WB 1004, los conteos del patógeno bajaban hasta el l% en comparación con los animales no alimentados con la bacteria ácido láctica (Kabir et al., 1997)30. Estos experimentos han sido repetidos en otros laboratorios (Aiba et al, 1998)29. También se dispone de resultados similares usando frente a H. pylori la cepa L. gasseri OLL2716 (Ushiyama et al, 2003)31 y utilizando una mezcla de las cepas prebióticas L. acidophilus R0052 y Lactobacillus rhamnosus R0011 (Johnson-Ηenry et al, 2004) . Recientemente, Sgouras y colaboradores han demostrado la inhibición de H. pylori por L. casei cepa Shirota en experimentos similares pero utilizando ratones SPF (Sgouras et al, 2004)23. Hasta la fecha sólo existe un estudio de protección usando ratones convencionales que fue llevado a cabo con éxito utilizando la cepa L. acidophilus LB, si bien los animales de experimentación fueron infectados con Helicobacter felis en lugar de con H. pylori (Coconnier et al, 1998)21.
En cuanto a la investigación clínica con voluntarios humanos, conviene diferenciar los dos modelos experimentales utilizados hasta la fecha. El primero de ellos consiste en combinar el tratamiento probiótico con la administración de antibióticos eficaces contra H. pylori (para una revisión consultar Hamilton-Miller, 2003)25. En el segundo la bacteria con el posible efecto probiótico se ingiere de forma aislada, ya sea como liofilizado o en el seno de un derivado lácteo. Con respecto al tratamiento combinado, hasta la fecha se han llevado a cabo siete ensayos, cuatro de ellos con sujetos asintomáticos utilizando Lactobacillus GG o L. johnsonii cepa LaI (Armuzzi et al, 2001a33 y b34; Felley et al, 200135; Cremonini et al, 200136) y el resto con pacientes dispépticos usando L. acidophilus (Canducci et al, 200037; De Francesco et al, 200038; Sheu et al, 200239). La dificultad de estos ensayos es determinar hasta que grado el efecto detectado se debe al probiótico o al tratamiento farmacológico. Aun así, en seis de los siete ensayos se concluye un efecto positivo de la adición del probiótico (Canducci et al, 200037; Armuzzi et al, 2001a33 y b34; Felley et al, 200135; Cremonini et al, 200236; Sheu et al, 200239). En el caso de usar sólo el probiótico se ha llevado a cabo ocho ensayos clínicos. En un ensayo se ingirieron sobrenadantes de cultivo de L. johnsomϊ (Michetti et al, 199922). En el resto se formularon distintos derivados lácteos que contenían la cepa objeto de estudio (Mrda et al, 199340; Scholz- Ahrens & Schrezenmeir, 200041; Nakaji et al, 200142; Wendakoon et al, 200243). Sólo tres de estos ensayos fueron aleatorios y con un control con placebo lo que dificulta el análisis de los resultados. Tan sólo en uno de los ocho ensayos clínicos no se detectó efecto positivo
(Wendakoon et al., 200243). En el resto, en mayor o menor medida, se obtuvieron mejoras significativas en el estado general de los individuos.
En el campo de las invenciones existen diversos documentos que utilizan antibióticos para erradicar H. pylori en el caso de trastornos intestinales como por ejemplo la patente EP 0787494 Al en el que se describe el uso de derivados de rifamicina para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de enfermedades causadas por infecciones de H. pylori. Igualmente, en el documento EP 0866793 Al se describen compuestos antibacterianos de nitroimidazol y su uso contra H. pylori y Mycobacterium tuberculosis.
El documento EP 1092040 Al se refiere a un procedimiento para seleccionar moléculas capaces de inhibir in vivo la supervivencia de Helicobacter, en particular de H. pylori, mediante la inhibición específica de la actividad ureasa codificada en el gen Urel y al uso de estas moléculas para tratar o prevenir la infección por H. pylori.
Algunos documentos utilizan probióticos para erradicar el H. pylori en caso de trastornos gastrointestinales. El documento JP 2002322086 se refiere a un agente activo, concretamente la lactoferrina, que se utiliza como profiláctico o terapéutico contra la infección de H. pylori. Para ello, se incorpora a bebidas o comidas para tratar la infección de H. pylori. Además de la lactoferrina, dicho agente profiláctico o terapéutico contra la infección de H. pylori comprende al menos un microorganismo perteneciente al género Bifidobacterium.
El documento US 6329002 Bl se refiere a un alimento para inhibir la infección y tratar la gastritis y las úlceras gástricas y de duodeno, que sea efectivo contra H. pylori no solo in vitro sino también in vivo y que comprenda una cantidad efectiva de un microorganismo seleccionado del grupo que consiste en cepas vivas de Lactococcus sp. ΗY49, Lactobacillus casei HY 2782 y Bifidobacterium longum BY 8001. Las propiedades de dichas bacterias se incrementan por la adición de yema de huevo que contiene anticuerpos específicos contre H. pylori. Igualmente, en el documento JP 2001258549 se han seleccionado los probióticos L. acidophilus HY2177 y L. casei 274 que tienen actividad contra H. pylori K551, obtenido de la úlcera del estómago de un paciente, para hacer preparaciones contraH. pylori. En el documento KR 20020061040 se describen prodμctos lácticos para la inhibición del crecimiento de H. pylori que contienen L. gasseri, L. acidophüus M y Bifidobacterium lactis Bb- 12, o sus productos de cultivo. Dichos productos se utilizan para prevenir y tratar la gastritis y las úlceras duodenales, entre otras, minimizando los efectos secundarios de los antibióticos que se utilizan en el tratamiento contra H. pylori.
En el documento WO 03/051132 Al la invención se refiere a un método para preparar alimentos fermentados que eliminan H. pylori y/o los bacilos que envenenan los alimentos. Dicho método comprende los pasos de: a) inocular fermentos lácticos en los alimentos, seleccionados del grupo que consiste en el género Lactobacillus, el género Bifidobacterium, preferiblemente la especie B.infantis, el género Streptococcus y sus mezclas, siendo seleccionados dichos alimentos del grupo que consiste en granos, fruta, vegetales, y sus mezclas; y b) incubando dichas mezclas inoculadas a 15-350C durante 12-48 horas.
El documento WO 00/74712 A2 se refiere a una composición dietética, nutritiva o farmacéutica qué comprende esfingomielinasa alcalina en una cantidad suficiente para ejercer un efecto dietético, nutricional o terapéutico en un individuo que lo necesite, como por ejemplo para prevenir o tratar distintas condiciones patológicas que incluyen procesos cancerígenos, inflamación del intestino, hipercolesterolemia e infecciones por H. pylori. La esfingomielinasa puede ser de origen bacteriano, y las bacterias que la contienen se eligen entre Gram-positivas, Gram-negativas y bacterias del ácido láctico, o de mezclas de las mismas. Entre las bacterias del ácido láctico se mencionan 16 cepas del género Lactobacillus, 12 del género Bifidobacterium como la especie B. bifidum, y 3 del género Streptococcus.
En el documento WO 2007/01097 Al se describe una cepa de la especie Bifidobacterium bifidum que posee las características siguientes: (1) produce el efecto de matar Helicobacter pylori, y (2) muestra una supervivencia de un 10% o más en el caso de estar almacenado en una bebida de leche fermentada o alimentos en condiciones aeróbicas a 1O0C durante 14 días.
Sin embargo, todavía existe una necesidad urgente, tanto en los países desarrollados como ¿n los que están en vías de desarrollo, de productos y métodos efectivos tanto en la prevención como en el tratamiento contra las infecciones causadas por H. pylori, de forma aislada o bien asociada con la terapia de antibióticos u otros agentes activos. Buena parte de los trabajos mencionados en los párrafos anteriores describen la inhibición in vitro del crecimiento de H. pylori, pero no progresan en el estudio de los mecanismos moleculares subyacentes a dicho fenómeno y al uso industrial de esta propiedad. En este documento se describe la obtención de una cepa de la especie Bifidobacterium bifidum, aislada de heces de un niño sano menor de un año, alimentado con leche materna. Dicha cepa es capaz de inhibir el crecimiento de distintos aislados clínicos de H. pylori. Sin descartar que dicha inhibición sea debida en parte a un fenómeno de competencia natural, los resultados que se presentan en esta invención demuestran de forma concluyente que diversos metabolitos de naturaleza peptídica presentes en el medio de cultivo de la cepa B. bifidum objeto de estudio son los responsables de dicha inhibición. Otras cepas de diferentes especies del género Bifidobacterium, e incluso otras cepas de la especie B, bifidum, no presentan este fenotipo de producción de dicho complejo peptídico. Dichos péptidos han sido identificados como productos de la degradación enzimática de la caseína. Como consecuencia, resulta posible formular diversos alimentos y bebidas que contengan dicho microorganismo y caseína, de forma que el microorganismo al crecer y secretar una proteasa libere el complejo peptídico inhibidor de H. pylori, o bien añadir directamente al alimento o bebida el complejo peptídico obtenido por otos medios industriales.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención describe un procedimiento para la obtención de agentes con actividad anti-H. pylori, y por tanto efectivos en el tratamiento de la úlcera. Durante la- presente invención, los inventores han investigado el efecto inhibidor de H. pylori por parte de diferentes bacterias aisladas de heces. Esta invención se basa en la utilización de la cepa de
Bifidobacterium bifidum depositada en la Colección Española de Cultivos Tipo como CECT
7366 el 28 de enero de 2008. El efecto inhibitorio se ha observado con el sobrenadante de cultivo de la cepa CP5 crecida en presencia de cisteína. La cepa de la invención es activa frente a la infección por H. pylori tal y como se' demuestra en las pruebas de adhesión in vitro. Los inventores han encontrado que el sobrenadante de esta cepa, posee probada actividad anti-H pylori.
La cepa CP5 mantiene una viabilidad del 88% al menos durante un periodo de 15 días cuando se añade a un derivado lácteo mantenido a 50C. Además, es un objeto de la presente invención proporcionar composiciones dietéticas, nutricionales y/o farmacéuticas que sean efectivas en la profilaxis de una infección por H. pylori. Composiciones farmacéuticas son aquellas que son útiles únicamente por sus efectos terapéuticos o profilácticos, y que generalmente se componen solo del activo (en este caso un liofilizado de la cepa CP5 de B. bifidum) con uno o más vehículos apropiados que dependen de la forma galénica del medicamento. Composiciones dietéticas son aquellas que comprenden además del agente activo materias nutritivas y otros suplementos nutricionales.
OBJETO DE LA INVENCIÓN
La presente invención describe un procedimiento para la obtención de agentes con actividad anti- H. pylori, y por tanto efectivos en el tratamiento de la úlcera. Durante la presente invención, se ha investigado el efecto inhibidor de H. pylori por parte de diferentes bacterias aisladas de heces. Una de ellas es la cepa de B. bifidum, denominada CP5, depositada en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT) con el número de acceso CECT 7366. El efecto inhibitorio se ha observado con el sobrenadante de cultivo de la cepa CP5 crecida en presencia de cisteíná, el cual posee probada actividad anti-H. pylori, así como con la fracción de fase inversa que contiene los péptidos SED.ID.NO : 1-6, obtenida a partir de dicha cepa bacteriana.
La presente invención describe la caracterización detallada de la cepa CP5, objeto de la presente invención, así como la obtención de los péptidos activos del sobrenadante de la cepa después de su fermentación, y su actividad anti-H pylori.
En la presente solicitud se describe la obtención de una cepa de la especie B. bifidum, aislada de heces de un niño sano menor de un año, alimentado con leche materna. Dicha cepa es capaz de inhibir el crecimiento de distintos aislados clínicos de H. pylori y de varias cepas de referencia. Sin descartar que dicha inhibición sea debida en parte a un fenómeno de competencia natural, los resultados que se presentan en esta invención demuestran de forma concluyente que diversos metabolitos de naturaleza peptídica presentes en el medio de cultivo de la cepa B. bifidum objeto de estudio son los responsables de dicha inhibición. Otras cepas de diferentes especies del género Bifidobacterium, e incluso otras cepas de la especie B. bifidum, no presentan este fenotipo de producción de dicho complejo peptídico. Dichos péptidos han sido identificados como productos de la degradación enzimática de la caseína. Como consecuencia, resulta posible formular diversos alimentos y bebidas que contengan dicho microorganismo y caseína, de forma que el microorganismo al crecer y secretar una proteasa libere el complejo peptídico inhibidor de H. pylori, o bien añadir directamente al alimento o bebida el complejo peptídico obtenido por otos medios industriales, es decir, su utilización como agente probiótico en alimentos.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1. Comparación de los perfiles electroforéticos obtenidos de la amplificación de la cepa CP5 con los cebadores BIF (A) y RFL-2 (B) en comparación con otras cepas de Bifidobacteriwn spp. y bacterias lácticas.
En la figura IA, las distintas calles corresponden a:
1. B. longum CECT 7210; 2. B. gallicum CECT 5778; 3. B. angulatwn CECT 5775; 4. B. dentiwn CECT 687; 5. Lactobacillus rhamnosus BP2; 6. Marcador Peso Molecular 100 pb; 7. Enterococcus faecalis BPl; 8. B. longum CECT 4503; 9. B. adolescentis 5781; 10. E.faecalis BP17; 11. B. infantis CECT 4552; 12. B. cuniculi DSM 20435; 13. Marcador Peso Molecular 100 pb; 14. B. breve CECT
4839; 15. B. bifldum CECT 7366.
En la figura IB, las distintas calles corresponden a:
1. B. longum CECT 7210; 2. B. gallicum CECT 5778; 3. B. angulatwn CECT 5775; 4. B. dentiwn CECT 687; 5. L. rhamnosus BP2; 6. E. faecalis BPl; 7. Marcador Peso Molecular 100 pb; 8. B. longum CECT 4503; 9. B. adolescentis 5781; 10. E. faecalis BP17; 11. B. breve CECT 4839; 12. B. bifldum CECT 7366; 13. Marcador Peso Molecular 100 pb
Figura 2. Ensayo de la resistencia a sales biliares de las cepas seleccionadas. Crecimiento a 370C durante 24 horas en anaerobiosis.
Figura 3. Efecto de las distintas concentraciones de NaCl sobre el crecimiento de las cepas seleccionadas. Crecimiento a 370C durante 24 horas en condiciones de anaerobiosis.
Figura 4. Producción en sobrenadante de cultivo de ácido láctico (OlL) por la cepa CP-5. DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN
La cepa de la invención es activa frente a la infección por H. pylori tal y como se demuestra con el sobrenadante resultante de la fermentación de la cepa en las pruebas de adhesión in vitro. Se han aislado distintas fracciones conteniendo al menos uno de los péptidos SEQ.ID.NO: 1 a 6 que inhiben el crecimiento de H. pylori en al menos un 70%, preferiblemente un 80% y más preferiblemente un 90%. Concretamente se ha aislado una fracción de dicho sobrenadante que posee un valor de inhibición de H. pylori del 94.77% probablemente debido a la presencia de todos los péptidos específicos que se han identificado como SEQ. ID. NO: 1 a 6.
La utilización de la cepa CP5 se lleva a cabo en forma de células viables y no-viables. Las células viables se utilizan introduciendo las bacterias vivas en una composición sin fermentar. De esta forma la administración de tales composiciones permite que la actividad anti- Helicobacter pylori tenga lugar en el tracto gastrointestinal.
Las células viables y no-viables son las que resultan de la exposición de la cepa CP5 a fermentación en un medio adecuado, como por ejemplo un medio lácteo, para que se produzcan los polipéptidos denominados SEQ.ID.NO: 1 a 6.
Igualmente forman parte de la invención cultivos bacterianos obtenidos a partir de la cepa CP5 que comprenden células viables y/o células no-viables conteniendo al menos uno de los péptidos SEQ.ID.NO: 1 a 6.
También es un objeto de la presente invención proporcionar composiciones dietéticas o nutricionales y/o farmacéuticas que sean efectivas en la profilaxis de una infección por H. pylori.
La cepa CP5 se puede utilizar en forma de células viables y actúa como probiótico. De acuerdo con la definición adoptada por la FAO, probióticos son "Organismos vivos que cuando se administran en cantidades adecuadas proporcionan un beneficio a la salud del huésped" y generalmente se utilizan como tal algunas levaduras y bacterias, siendo las más utilizadas las bacterias del genero Lactobacillns.
Composiciones dietéticas son aquellas que comprenden además del agente activo otras materias y suplementos nutricionales. El sobrenadante de la cepa CP5 tiene una viabilidad del 88% al menos durante un periodo de 15 días cuando se añade a un derivado lácteo mantenido a 50C. En dichas composiciones se puede mezclar con otros probióticos, por ejemplo en yogures. Composiciones farmacéuticas son aquellas que son útiles únicamente por sus efectos terapéuticos y/o profilácticos, y que generalmente se componen solo del activo (en este caso un cultivo o un liofilizado de la cepa CP5 de B. bifldum o péptidos obtenidos del sobrenadante de la fermentación de dicha cepa con uno o más adyuvantes y/o vehículos apropiados que dependen de la forma galénica del medicamento.
Dependiendo del tipo de composición, nutritiva o farmacéutica, y de la forma física o galénica de la misma, el experto en la materia sabe elegir los excipientes y vehículos apropiados.
En dichas composiciones, la cepa CP5 está presente en una cantidad de aproximadamente 105 a 1011 ufc/g , siendo "ufe" unidad formadora de colonias (en inglés "efu") que se define como "el número de células bacteriales que se detectan por contaje microbiológico en placas de agar por gramo de composición".
A continuación se describe la caracterización de la cepa CP5, así como los péptidos aislados del sobrenadante después de la fermentación de dicha cepa y su actividad anti-H. pylori.
Los péptidos de la invención se pueden utilizar en las composiciones mencionadas tanto conjuntamente con bacterias de la invención como en su ausencia.
A continuación se describe la caracterización detallada de la cepa de la presente invención, así como la obtención del sobrenadante de la cepa después de su fermentación y su .. actividad anti-H, pylori.
EJEMPLOS
1. Aislamiento de microorganismos.
Para el aislamiento de las cepas de Bifidobacterium, se disolvió 1 g de heces en tampón
PBS (tampón fosfato pΗ 7.0) homogeneizando la muestra mediante maceración durante 3 minutos en un Stomacher (Bagmixer 400P, Interscience Worlwide, France). Se inoculó una alícuota de 1 mL del homogeneizado en caldo Man Rogosa Sharpe (MRS) ajustado a pΗ 3.0 con
HCl suplementado con 0.05 % (p/v) de cisteína (MRS-C; Sigma, St. Louis, Mo.). Se incubó
• durante 17 horas a 370C en condiciones de anaerobiosis y diferentes diluciones de este medio de preincubación fueron sembradas en placas de medio MRS-C y . medio selectivo de
Biβdobacterium (BSM, Fluka, Buchs, Switzerland) y Bifidobacterium médium agar (BFM; Nebra, 19991) y se incubaron durante 36 a 72 horas a 370C en condiciones de anaerobiosis. La morfología de colonia y el tipo de pared celular de las cepas obtenidas se determinó por tinción de Gram. Se observó que un 70% del total de cepas analizadas pertenecían al género Bifidobacterium .
2. Ensayos Ui vitro de actividad frente a H. pylori de las distintas bifidobacterias y sus sobrenadantes de cultivo.
Se analizó la actividad de los sobrenadantes de cultivo de seis bifidobacterias (CPl, CP2, CP3, CP4, CP5 y CP6) frente a dos cepas de referencia de H. pylori (NCTC 11637 y NCTC 11638) y seis aislados de H. pylori de origen clínico (Al, A2, A3, A4, A5 y A6). En un primer ensayo se evaluó la actividad antibacteriana por técnicas de difusión en agar de los sobrenadantes de cultivo de las bifidobacterias seleccionadas frente a las cepas de referencia H. pylori NCTC 11637 y NCTC 11638.
Se realizaron dos subcultivos de las bacterias lácticas con un inoculo al 1 % (p/v) en 3 mi de medio MRS (Pronadisa) suplementado con 0.05 % (p/v) de L-cisteína (Scharlau) e incubando en condiciones anaeróbicas durante 24 horas a 370C. Las bacterias lácticas así crecidas fueron nuevamente inoculadas en las mismas condiciones en 50 mL de MRS-C y MRS-C suplementado con 1% (v N) Tween 80 respectivamente e incubadas durante 17 horas tras las cuales se obtuvieron por centrifugación los sobrenadantes de cultivo. Estos sobrenadantes fueron neutralizados con IN NaOH a pΗ 6.5 y esterilizados por filtración a través de filtros de tamaño de poro 0.22 μm (Sartorius). Posteriormente se concentraron diez veces por liofilización y se resuspendieron en tampón fosfato sódico 50 mM a pΗ 6.5. Las muestras se almacenaron a -800C hasta su utilización.
Se realizaron ensayos en medio líquido de la capacidad antibacteriana de los sobrenadantes de las 6 cepas de bifidobacterias anteriormente mencionadas frente a la cepa H. pylori NCTC 11637. Utilizando como base el medio Brain Ηeart Infusión suplementado con 5 % (v/v) suero bovino fetal (Invitrogen), se realizó en placas de poliestireno de 96 pocilios, un inoculo del 1 % (p/v) de la cepa indicadora a partir de una suspensión bacteriana de densidad óptica a 600 nm igual a 2.5 + 0.05 con el fin de estandarizar el número de microorganismos a 104 ufc/mL. A dicho medio se le adicionaron 25 μL de los sobrenadantes (SBN) para un volumen final de ensayo de 200 μL por pocilio. La mezcla fue incubada a 370C en condiciones de microaerofilia durante 3-4 días tras los cuales se realizó la medición de su densidad óptica a- 600 nm. El ensayo incluyó controles de medio de cultivo inoculado sin sobrenadante y de medio de
• cultivo con sobrenadante sin inocular. Los resultados obtenidos se muestran en la Tabla 1.
Utilizando esta metodología se observó un efecto inhibidor de la proliferación por la adición al medio de todos los sobrenadantes ensayados.
Tabla 1. Inhibición de la proliferación de H. pylori NCTC 11637 por parte de los sobrenadantes de las bifidobacterias CPl, CP2, CP3, CP4, CP5 y CP6.
Sobrenadante CP1 CP2 CP3 CP4 CP5 CP6
% Inhibición 73,46 70,25 67,69 77,14 81,94 72,57
Al mismo tiempo se realizaron ensayos de inhibición mediante difusión en agar. Los sobrenadantes neutralizados (SBN) se emplearon en la determinación de la actividad antimicrobiana frente a las cepas H. pylori NCTC 11637 y NCTC 11638. Para ello se inocularon 1.8 x 108 ufc/mL (McFarland = 6) de la cepa indicadora de H. pylori en 1 mL de suero fisiológico y se extendió en la superficie de medio Trypticase Soy Agar suplementado con 5 % (v /v) sangre de caballo (Oxoid). Las muestras de sobrenadante neutralizado (50 μL) fueron depositadas en las distintas celdas (5 mm de diámetro) que se practicaron en el agar. Las zonas de inhibición se observaron tras 2-3 días de incubación a 370C en condiciones de microaerofilia (Campygen; Oxoid). En estas condiciones no se observó efecto de inhibición sobre los aislados de H. pylori. Para incrementar la inhibición se modificaron las condiciones del medio de cultivo de crecimiento de las bifidobacterias con- el fin de mejorar la producción de los inhibidores. Así, las bifidobacterias se crecieron en las mismas condiciones que en el caso anterior pero utilizando el medio MRS-C (Oxoid) al que se suplemento con 1 % (p/v) de Tween 80. Los sobrenadantes fueron tratados igual que en el caso anterior y su actividad fue analizada por el método de difusión en agar frente a las cepas de H. pylori NCTC 11637 y NCTC 11638 (Tabla 2) y los seis aislados clínicos de H .pylori A1-A6 (Tabla 3). Como resultado del estudio se confirmó la presencia de mayores halos de inhibición frente a las cepas de H. pylori en todos' los sobrenadantes de cultivo ensayados, aunque las cepas CP3, CP4 y CP5 mostraron la mayor actividad.
Tabla 2. Actividad antimicrobiana en placa de los sobrenadantes de cultivo de cepas de Bifldobacterium crecidas durante 17 h en medio MRS-C frente a las cepas control de H. pylori NCTC 11637 y NCTC 11638 suplementado con 1 % (p/v) de Tween 80 frente a aislados de H. pylori.
Diámetro de la zona de inhibición de crecimiento bacteriano (mm)
Cepas H.pylori H.pylori Bifidobacterium NCTC 11637 NCTC 11638
CPl 1 55
CP2 7.25 5
CP3 7.25 6
CP4 6.25 7.5
CP5 7.25 7
CP6 6 5.25
Tabla 3. Actividad antimicrobiana en placa de los sobrenadantes de cultivo de cepas de Bifidobacterium crecidas en medio MRS-C suplementado con 1 % (p/v) de Tween 80 frente a aislados de H. pylori.
Diámetro de la zona de inhibición c le crecimiento de los aislados de H. ' pylori (mm)
Cepas
Bifidobacterium Al A2 A3 A4 A5 A6
CPl 5.2 6.7 2.5 5.7 2.7 4.5
CP2 . 6 6.5 4.5 5 . 6.2 5.5
CP3 6.6 6.3 5 5 5 4.5 .
CP4 6 6 4.7 6 6 6
CP5 6.1 7.8 5 5.8 6.7 6.5
CP6 5 7.2 2.5 5 6 4 3. Ensayos de inhibición de la adhesión del patógeno a mucus por competitividad con las bacterias lácticas.
A la vista de los resultados obtenidos se llevó a cabo un estudio de inhibición de la adhesión de tres cepas de H. pylori (los aislados clínicos Al y A2 y la cepa control NCTC 11637) por parte de las cepas en estudio.
Se utilizó mucina porcina tipo III (Sigma) a una concentración proteica de 0.5 mg/mL. Para ello se determinó la concentración de proteína total según el método Bradford (Biorad) empleando albúmina de suero bovino (BSA) como estándar.
Las células de H. pylori crecidas en microaerofilia durante 36 horas a 370C fueron lavadas dos veces con tampón HEPES (N-2-hidroxietilpiperazine-N-2-ácido etanosulfónico) -
Hanks (10 mM HEPES en Hanks'balanced salts, pH 7.4; Sigma) tras lo cual se determinó la concentración de microorganismos mediante la medición de la absorbancia a 600 nm ajustándose a una DO de 0.25 + 0.05 con el fin de estandarizar el número de microorganismos.
Posteriormente las células fueron marcadas fluorescentemente añadiendo al tampón 10 μl/mL de diacetato de carboxifluoresceina 100 mM (CFDA; Calbiochem) y se incubaron a 370C durante
45 minutos, preservando la mezcla de la luz.
El ensayo consistió en la adición de 100 μL de las células probióticas sin marcar a pocilios de placas multipocillo de poliestireno (Maxisorp, Nunc) donde previamente se había fijado el mucus y se incubaron durante 1 h a 370C. Para su fijación, el mucus se disolvió previamente en tampón HEPES- Hanks (HH) a la concentración deseada y fue inmovilizado en las placas Maxisorp-Nunc mediante la adición de 100 μl de esta solución a cada uno de los pocilios. Tras una incubación a 40C durante toda la noche, los restos de mucus no inmovilizados fueron retirados mediante dos lavados sucesivos de 200 μl tampón HH. Tras el último de los lavados se adicionaron 100 μl de tampón HH a cada pocilio. Las bacterias lácticas no adheridas al mucus fueron eliminadas mediante dos lavados de 200 μL de tampón HH y 100 μL de células marcadas con CFDA del patógeno H. pylori se añadieron a los pocilios, incubándose a 370C durante 1 h. Los patógenos no adheridos a mucus fueron eliminados mediante dos lavados con tampón HH. Las células adheridas a mucus se liberaron mediante raspado y se lisaron con 1% (p/v) SDS en 0.1 N de NaOH a 6O0C durante Ih. La fluorescencia liberada se midió a λex=485 nm ; λem=518 nm en el analizador Fluoreskan Ascent FL. Los resultados se expresaron en porcentaje.de fluorescencia recuperado tras la adhesión, en relación con la fluorescencia de la suspensión bacteriana añadida a los pocilios. El porcentaje de inhibición de la adhesión se calculó como la diferencia entre la adhesión del patógeno en ausencia y en presencia de las bifidobacteri'as. Los ensayos se realizaron en tres experimentos independientes y cada uno de ellos se realizó por cuadruplicado. La media de los resultados se muestra en la Tabla 4.
Tabla 4. Porcentaje de inhibición de la adhesión de tres cepas de H. pylori a mucus por cultivo conjunto con las bifidobacterias seleccionadas.
% Inhibición de la adhesión a mucus Cepas Bifldobacterium Al A2 NCTC 11637
CPl 4.00±0.38 2.11±0.99 -0.52±1.65
CP2 -3.66±0.47 6.72±0.23 4.71±1.85
CP3 -4.00±5.61 3.80±1.15 4.84±0.54
CP4 -6.83±1.62 1.74±1.87 4.97±0.76
CP5 5.42±5.48 3.59±0.75 8.17±2.60
CP6 3.89±4.82 1.27±6.07 -7.46±0.08
Los valores negativos implican aumento de la adhesión
Para dos de las tres cepas de H. pylori analizadas, los resultados indicaron una destacable inhibición de la adhesión por parte de la cepa CP5.
Estos resultados, junto con los obtenidos en los estudios in vitro de inhibición de la proliferación de H. pylori, declinaron la elección de la cepa CP5 para estudios posteriores junto con un control del probiótico comercial Lactobadllus rhamnosus GG.
4. Identificación y tipificación de la cepa CP5.
4.1 Extracción y purificación de DNA genómico.
El aislamiento del DNA genómico (gDNA) bacteriano se realizó a partir de un cultivo de células de CP5 en caldo MRS-C durante 17 horas a 370C en condiciones de anaerobiosis. Estas células fueron recogidas, lavadas con tampón TE (Tris-ΗCl 10 raM y EDTA ImM) y resuspendidas en 500 μl de tampón TE a los que se les adicionaron 20 μl de una solución de lisozima (50 mg/mL). Esta mezcla fue incubada a 370C durante una hora y media. Tras esta incubación se adicionaron 30 μl de SDS al 10 % (p/v) y 3 μl de una solución de proteinasa K (10 mg/mL) y se incubó 1 hora a 370C. La suspensión de DNA se limpió añadiendo a la muestra 100 μl de una solución 5 M NaCl y 80 μl de una solución de bromuro de cetil trimetil amonio (CTAB) y NaCl (10 % CTAB (p/v) y 0.7 M NaCl). Esta mezcla, bien disuelta, fue incubada a 650C durante 10 minutos.
La purificación del DNA se realizó mediante la técnica de extracción con un volumen de fenol-cloroformo-alcohol isoamílico (25:24:1). Los ácidos nucleicos fueron precipitados mediante la adición de 500 μl de isopropanol, agitando y dejando a temperatura ambiente durante 10 minutos, tras lo que se centrifugó a 12000 rpm 15 minutos. El DNA precipitado se lavó con 70 % (v/v) etanol frío. El DNA precipitado y limpio fue secado a vacío y se resuspendió en 50 μl de tampón TE. A cada muestra se le añadieron 3 μl de solución de RNAsa (10 mg/mL) incubando la mezcla a 370C 30 minutos. La concentración de DNA fue determinada en gel de agarosa del 0.7 % (p/v) en tampón TAE (242 g Tris base, 57.1 mL ácido acético glacial, 100 mL de 0.5 M EDTA pH 8.0).
4.2 Tipificación taxonómica de las cepas bacterianas.
La identificación de la cepa CP5 se realizó a nivel de género y especie por técnicas de PCR específicas y secuenciación de un segmento de aproximadamente 600 pb del DNA ribósómico (DNAr) 16S y a nivel de cepa por técnicas de PCR-RAPD utilizando los cebadores descritos en la Tabla 5.
En la PCR específica de género Bifldobacterium se utilizaron los cebadores Lm3 (SEQ.ID.NO:9) y Lm26 (SEQ.ID.NO:8). Para la PCR de especie se utilizaron los cebadores específicos detallados en la Tabla 5. Para la tipificación a nivel de cepa mediante PCR-RAPD se utilizaron los cebadores BIF (SEQ.ID.NO:16) y RFL-2 (SEQ.ID:NO:17). Para la amplificación y posterior secuenciación del DNAr 16S se utilizaron los cebadores 616V (SEQ.ID.NO:18) y 699R (SEQ.ID.NO:19).
Tabla 5. Secuencias de los distintos cebadores utilizados en las reacciones de PCR y RAPD. Seq ID No Cebador Secuencia Diana Tamaño Amplificado
8 Lm26 5 'GATTCTGGCTCAGGATGAACG'3 Bifidobacterium 1350 pb
9 Lm3' 5 'CGGGTGCGTGCCCACTTTCATG '3
10 BiBif-1 5 'CCACATGATCGCATGTGATTG '3 B. bifidum 278 pb
11 BiBif-2 5 'CCGAAGGCTTGCTCCCAAA '3
12 BiLON-I 5 'TTCCAGTTGATCGCATGGTC3 B. infantis 831 pb
13 BiLON-2 5 'GGGAAGCCGTATCTCTACGA '3
14 BiCAT-I 5 'CGGATGCTCCGACTCCT'3 B. catemilatum 285 pb
15 BiCAT-2 5 'CGAAGGCTTGCTCCCGAT'3
16 BIF 5ΑGTCAGCCAC3 Universal Varios
17 KFL-2 5' CGGCCCCTGT'3 Universal Varios
18 616V 5' AGA GTT TGA TYM TGG CTC AG 3' Bacterias 1500 pb
19 699R 5' RGG GTT GCG CTC GTT 3'
La mezcla de reacción de PCR varió en función del tipo de análisis realizado. Las distintas concentraciones que se establecieron para un volumen de reacción de 50 μl se muestran en la Tabla 6.
Tabla 6. Distintas concentraciones de la mezcla de reacción para las reacciones de PCR y RAPD.
PCR género PCR especie RAPD PCR 16S gDNA 200 ng 200 ng 200 ng 200 ng
Tampón lO X 5 μl 5 μl 5 μl 5 μl
Mg Cl2 1.5 raM 1.5 mM 4 mM 1.5 mM
Polimerasa 2 U 1.8 U 2.5 U I U dNTPs 300 μM 200 μM 200 μM 200 μM
Cebadores l μM 0.5 μM 1.5 μM 1 μM
Las condiciones en las que se realizó la polimerización también variaron en función del tipo de análisis y se muestran en la Tabla 7. Tabla 7. Condiciones de reacción para las reacciones de PCR y RAPD.
PCR género PCR especie RAPD PCR 16S Etapas , Ciclos
Inicio 1 94 °C-5 min 94 °C-5 min 94 °C-5 min
94 0C-I nUn 94 °C-20 s 94 0C-I rain 94 °C-20 s
Polimerización 35 58 °C-3 min 58 °C-20 s 32 °C-2 min 56 °C-30 s
72 °C-Í min 72 °C-30 s 72 °C-2 min 72 0C-I min •
Elongación 1 72 °C-4 min 72 °C-5 min 72 °C-2 min 72 0C-IO min
La cepa CP5 se identificó mediante PCR específica como perteneciente a la especie
Bifidobacterium bifidum (Figura 1). Esta identificación se confirmó mediante la comparación de la secuencia del DNAr 16S de la cepa CP5 (SEQ.ID.NO: 7) con el total de secuencias del gen recogidas en las bases de datos públicas, obteniéndose una. homología de 98 % con las secuencias depositadas en bases públicas pertenecientes a la especie B. bifidum.
5. Ensayos de resistencia al tránsito digestivo con sistemas simulados de fluidos gástricos e intestinales.
5.1. Resistencia a jugos gastrointestinales.
Los jugos gástricos y pancreáticos se prepararon en el mismo momento de su utilización resuspendiendo pepsina (Sigma) de mucosa estomacal porcina (3 g/L) y pancreatina (Sigma) de páncreas porcino (1 g/L) en solución salina estéril al 0.5 % (p/v).
Las cepas bacterianas se crecieron a 370C y 24 h en anaerobiosis, se lavaron dos veces en solución salina al 0.5 % y se llevaron a un inoculo de 10 -10 ufc/mL.
El ensayo emuló las condiciones y el tiempo de exposición al que están sometidas las bacterias durante su paso por el tracto gástrico e intestinal en dos etapas. La primera simuló el tracto gástrico, para lo que se realizó un inoculo del 1 % (v/v) de las bacterias en 10 mL de solución salina con pepsina ajustada a pH 3.0 con HCl e incubación a 370C en anaerobiosis durante 120 minutos. La segunda mimetizó el paso por el tracto intestinal, para lo cual se neutralizaron las células lavando con tampón fosfato (PBS) a pH 7.0 y se resuspendieron en la solución salina con pancreatina ajustada a'pH 8.0 con NaOH, incubándose en anaerobiosis durante 240 minutos. Se tomaron muestras a los 0, 90 y 120 minutos en la primera etapa y a los
0, 60 y 240 minutos en la segunda, realizando en cada caso diluciones seriadas y sembrando 100 μL de cada dilución por placa de medio sólido MRS-C e incubando dos días a 370C en anaerobiosis. Como control de viabilidad a lo largo del proceso se inocularon las mismas cepas en solución salina y se incubaron en las mismas condiciones tomando alícuotas al principio, a los 120 minutos y al final del ensayo.
Tras la incubación en presencia de jugos gástricos e intestinales, la cepa CP5 y el control Lactobacillus GG se recuperaron en placas de medio MRS-C realizándose los recuentos de viables tras 48 horas de incubación. Ambas cepas mostraron una pérdida de viabilidad similar después de su exposición a los jugos, debida tanto a la acción directa de estos como a los valores extremos de pH (Tabla 8). El porcentaje de viabilidad se calculó como la relación entre el número de células viables obtenidas en cada una de las etapas del ensayo frente al número de viables a tiempo cero que fue el inoculo (107-108 ufc/mL).
Tabla 8. Efecto in vitro de los jugos gastrointestinales en la viabilidad de las cepas seleccionadas.
Pepsina pH 3, 120 min Pancreatina pH 1 S5 240 min
Cepas Inoculo inicial ufc/mL Recuento % viables Recuento % viables
CP5 2.7 x lO8 2.5 x lO7 9.2 % 1.9 x lO7 7.0 % LGG 3.4 x lO8 3.O x IO7 8.8 % 1.0 x lO7 2.9 % •
5.2. Resistencia a sales biliares y NaCl.
Se analizó la resistencia de las dos cepas bacterianas a distintas concentraciones de sales biliares Ox-gall y NaCl. El ensayo se basó en la monitorización del crecimiento de las bacterias en placas multipocillo para 96 muestras (Biorad). A cada pocilio se le añadieron 100 μL de un inoculo a una D06o0nm de 0.1 unidad y 175 μL de medio MRS-C suplementado con 0, 0.5, 1, 2 y 3 % de Oxgall (p/v) o medio MRS-C suplementado con 0, 2, 3, 6, 8 y 10 % NaCL (p/v). La densidad óptica de cultivos de 24 horas se analizó a una longitud de onda de 655 nm en un lector de microplacas (Microplate reader, Roche).
Se analizó la tolerancia de ambas cepas a concentraciones de 0.5, 1, 2 y 3% (p/v) de sales biliares, monitorizando en placas de multipocillos el crecimiento en estas condiciones por la variación de la densidad óptica a 655 nm. Los resultados muestran que las dos cepas fueron capaces de crecer en presencia de las distintas concentraciones de sales biliares, aunque CP5 mostró una ligera mayor resistencia (Figura 2).
Se realizó un estudio para determinar si estas cepas eran resistentes a elevadas concentraciones de NaCl en el medio. Para ello se analizaron concentraciones de 2, 3, 6, 8 y 10% (p/v). Los resultados indicaron que ambas cepas toleraban concentraciones de NaCl de hasta un 6%, observándose una disminución del crecimiento a partir de un 8% de NaCl con una inhibición del crecimiento al valor del 10%. En este caso la cepa Lactobacillus GG fue ligeramente más resistente (Figura 3).
Se realizaron estudios de crecimiento bacteriano a valores de pH ácidos. Los pHs ensayados fueron 1.5, 2.0 y 3.0 durante una incubación de 24 horas a 370C en condiciones de anaerobiosis. Los resultados indicaron que a estos pHs se produjo una inhibición del crecimiento en las dos cepas ensayadas. Estos datos nos sirven como indicadores de la sensibilidad de las cepas a pHs ácidos en ensayos in vitro durante largos períodos de tiempo (24 h). Sin embargo hay que considerar que las condiciones in vivo son otras. Por un lado, el tiempo de permanencia del probiótico en zonas del estómago donde se alcanzan estos pHs no supera habitualmente las dos horas y rápidamente pasan al intestino delgado donde el pH se neutraliza permitiendo el crecimiento bacteriano. Además, junto al probiótico se ingieren otros compuestos provenientes de la matriz del alimento que pueden actuar amortiguando el efecto inhibidor del pH estomacal. Por todo ello, realizamos un estudio con un rango de pH mayor y a un tiempo de incubación de 2 horas, más próximo al tiempo teórico de permanencia del probiótico en el sistema gástrico. A partir de cultivos obtenidos en caldo a 17 h de crecimiento, se tomaron 3 mi de la suspensión y se centrifugaron a 4000 rpm durante 5 minutos. Se eliminó el medio de cultivo y se añadieron 10 mi de tampón fosfato salino (PBS) ajustado a cada uno de los pH ensayados. Tras homogeneización, se incubaron durante 2 horas en estufa a 370C. Para cada cultivo se realizaron recuentos en medio MRS-C: i) del cultivo inicial; ii) de la mezcla una vez pasadas 2 horas a 370C y 'iii) de un control realizado de la misma forma que el resto de situaciones pero en condiciones fisiológicas para asegurarnos que no se producían pérdidas significativas de células tras la centrifugación y decantación del medio de cultivo. No se observaron diferencias en recuento entre el cultivo inicial y el control tras 2 horas de incubación. Los resultados obtenidos (Tabla 9) indican una supervivencia de CP-5 muy próxima al 100 % a pH 4-7.
Tabla 9. Recuentos obtenidos de la cepa CP-5 tras 2 horas de incubación en tampón a distintos pH.
Recuento (ufc/ml) pH2 1,00 xlO2 ± 0.00 pH3 6,95 xlO4 ± 4,17 xlO4 pH4 2,67 xlO7± 9,40 xlO6 pH5 2,25 xlO7 ± 7,07 xlO5 pH6 2,08 xl07 ± 9,48 xlO6 pH7 3,15 xlO7 ± 2,83 xlO6
Inicial 3,87 xlO7 ± 1,4I xIO6
6. Sensibilidad a antibióticos.
La sensibilidad de las cepas a los antibióticos se determinó mediante técnicas de difusión en agar utilizando discos impregnados con diversas concentraciones de antibióticos. Las bacterias crecidas en medio MRS-C líquido a 370C durante 24 horas fueron recogidas lavándolas varías veces con solución salina y ajustando el inoculo a 109 ufc/mL (DOgoonm = 5). En estas condiciones se tomaron 100 μL de la suspensión celular y se sembraron en 10 mL de agar MRS- C semisólido al 0.7 % (p/v) atemperado a 5O0C. Este agar se vertió sobre una placa de medio MRS-C y se dejó solidificar a temperatura ambiente. Una vez seco se colocaron los discos de antibiótico sobre la superficie. A las 24 horas de incubación en anaerobiosis se observó la presencia o ausencia de halos de inhibición. Se probaron un total de 17 antibióticos para ver la resistencia o sensibilidad de las distintas cepas bacterianas. Los antibióticos empleados fueron ácido nalidíxico (30 μg), amoxicilina (25 μg), carbencilina (100 μg), claritromicina (15 μg), cloranfenicol (30 μg), eritomicina (15 μg), gentamicina (10 μg), kanamicina (30 μg), metronidazol (5 μg), oxacilina (1 μg), penicilina (6 μg), polimixina B (300IU), rifampicina (5 μg), sulfamida (200 μg), tetraciclina (30 μg), trimetoprima (5 μg) y vancomicina (30 μg).
La sensibilidad de las dos cepas frente a distintos tipos de antibióticos se muestra en la
Tabla 10. Este es uno de los criterios de selección de nuevas cepas de probióticos, ya que conociendo su perfil de resistencia se conocen datos de seguridad para su uso, lo que permite establecer las bases para una posible aplicación como complemento en el tratamiento antibiótico de infecciones como la úlcera péptica causada por H. pylori.
Las dos cepas mostraron resistencia a ocho de los diecisiete antibióticos ensayados entre los que se incluían el ácido nalidíxico, gentamicina, kanamicina, metronidazol, oxacilina, polimixina, sulfamida y vancomicina. Este perfil de sensibilidad a antibióticos es el descrito para otras cepas probióticas del género Bifidobacterium (B. adolescentis, B. breve, B. infantis y B. longum).
Los datos de resistencias de las bifidobacterias frente a antibióticos como la gentamicina o el metronidazol, utilizados habitualmente en tratamientos de infecciones causadas por H. pylori, señalan la posibilidad de utilizar las bacterias lácticas seleccionadas en terapias combinadas que incluirían el tratamiento probiótico con la administración de estos antibióticos.
Tabla 10. Resistencia a distintos antibióticos de las cepas seleccionadas.
Diámetro de la inhibición de crecimiento bacteriano (mm)
Antibiótico μg CP5 LGG
Amoxicilina 25 28 30
Carbencilina 100 36 32
Oxacilina 1 0 0
Penicilina 6 34 32
Vancomicina 30 0 0
Cloranfenicol 30 20 27
Eritromicina 15 27 29
Gentamicina 10 0 0
Kanamicina 30 0 0
Tetraciclina 30 30 31
Metronidazol 5 0 0
Ácido nalidíxico 30 0 0
Rifampicina 5 34 32
.Trimetoprim 5 0 0
Polimixina B 300a 0 0
Sulfamida 200 0 0
Claritromicina 15 0 0 a' valor expresado en IU
7. Ensayos de adhesión a mucus intestinal.
El ensayo se realizó utilizando la metodología empleada en el punto 3. Brevemente, las cepas CP5 y Lactobacillus GG crecidas en anaerobiosis durante 24 horas a 370C fueron lavadas dos veces con tampón HEPES - Hanks y se ajustó la concentración de microorganismos a DO600 nm de 0.25 + 0.05. Posteriormente las células fueron marcadas fluorescentemente con CFDA e incubadas a 370C durante 45 minutos, preservando la mezcla de la luz. Sobre el mucus inmovilizado en placas multipocillo de poliestireno (Maxisorp, Nunc), se añadieron 100 μl de células marcadas a cada uno de los pocilios y se incubaron Ih a 370C. La eliminación de las ' ' • 25 ' • bacterias no adheridas se realizó mediante dos lavados de 200 μl de tampón HH. Las bacterias que si se adhirieron fueron liberadas mediante un raspado del mucus inmovilizado en cada pocilio y fueron posteriormente lisadas con 1 % (p/v) de SDS en 0.1 M NaOH (200 μl por pocilio) incubando las placas a é>O°C durante Ih. Los contenidos de las celdas fueron transferidos a una nueva placa multipocillo de poliestireno (Nunc) y la fluorescencia liberada se midió a λex=485 nm ; λem=518 nm en un aparato Fluoreskan Ascent FL (Thermo). La adhesión fue expresada como el porcentaje de fluorescencia recuperado después de la adhesión en relación a la fluorescencia de la suspensión bacteriana añadida al mucus inmovilizado. La adhesión bacteriana fue determinada en tres experimentos independientes y cada ensayo se realizó- por cuadruplicado.
Las dos cepas se sometieron a un ensayo de adhesión a muestras de mucus porcino tipo III. La cepa CP5 mostró un 12% de adhesión frente a un 10% de la cepa Lactobacilhis GG.
8. Producción y purificación del metabolíto de interés.
Se llevó a cabo una fermentación de 10 litros con la cepa CP-5 en medio MRS suplementado con cisteína (0.05% p/v) con la finalidad de obtener un sobrenadante rico en el metabolito responsable de la inhibición de H. pylori. La incubación se llevó a cabo a 370C durante 17 horas sin agitación y con generador de anaerobiosis, obteniéndose una densidad celular del cultivo de 1.25-108 ufc/ml. La cantidad de inoculo fue del 1% del volumen total de fermentación. Finalmente, el sobrenadante se obtuvo por centrifugación a 10000 ipm durante 15 min y se congeló a -8O0C hasta el proceso de purificación.
8.1. Purificación del metabolito de interés por cromatografía de intercambio catiónico seguido de otra etapa de cromatografía en fase inversa.
200 mi de sobrenadante se sometieron a una etapa de cromatografía de intercambio catiónico con la columna HiPrep 16/10 SP FF (GE Healthcare). En esta etapa, todas las proteínas y péptidos con naturaleza catiónica quedaron adsorbidos a la resina y finalmente se eluyeron con un tampón con IM NaCl sin gradiente. Todas las proteínas de naturaleza catiónica se eluyeron- simultáneamente en estas condiciones y se recogieron en pocas fracciones (fracciones 3, 4 y 5) y en un volumen mínimo para concentrar el metabolito de interés. El volumen de cada fracción fue de 10 mi. El porcentaje de inhibición de H. pylori estas fracciones fue de 50.32%, 81.29% y 1.9%, respectivamente. La fracción 4 de intercambio catiónico, que presentaba el valor de inhibición más elevado, fue sometida a un proceso de ultrafiltración con filtros de 5000 Da (Extreme Amicon, Millipore). El volumen filtrado de esta etapa contenía las proteínas inferiores a este pesó molecular. Este volumen filtrado fue sometido' a una etapa de cromatografía en fase inversa para purificar y posteriormente identificar por espectrometría de masas MALDI-TOF el metabolito responsable de la inhibición de H.pylori. Para esta etapa se utilizó la columna RESOURCE RPC 3ml (GE Healthcare) y se trabajó en gradiente con los eluyentes A) agua MiIiQ + ácido trifiuoroacético (TFA) 0.1% y B) acetonitrilo + ácido trifluoroacético (TFA) 0.1%. En esta etapa cromatográfica se obtuvo fracciones de 2 mi. Una alícuota de estas fracciones se llevó a sequedad para eliminar el disolvente y finalmente se resuspendió. en agua destilada justo antes de testar la inhibición de H. pylori por estas fracciones. La fracción 11 obtenida por cromatografía de fase inversa presentó un valor, de inhibición de H. pylori de 94.77%, identificándose en esta fracción los siguientes péptidos procedentes todos ellos de la β- caseína bovina:
SEQ. ID. NO: 1. VYPFPGPIHN 1139.57 Da
SEQ. ID. NO: 2 PPFLQPEVMGVSKVKE 1783.95 Da
SEQ. ID. NO: 3 DKIHPFAQTQSLVYPF 1889.97 Da
SEQ. ID. NO: 4 PYPQRDMPIQAFLLYQ 1978.99 Da
SEQ. ID. NO: 5 RDMPIQAFLLYQEPVLG 1978.99 Da SEQ. ID. NO: 6 PQNEPPLTQTPWVPPFLQPE 2310.26 Da
9. Pruebas metabólicas.
9.1 Determinación de ácido láctico (D/L).
Para la cuantificación de ácido láctico (D/L) en el sobrenadante de cultivo de la cepa CP- 5 se utilizó el Kit comercial D-Lactic acid/L-Lactic acid (Roche, Cat. No. 11 112 821 035). Esta determinación consiste en el análisis espectrofotométrico del producto generado por la acción específica de dos enzimas (D-Lactato deshidrogenasa y L-Lactato deshidrogenasa) sobre ambos isómeros del ácido láctico. La cuantificación de ácido láctico (D/L) se llevó a cabo en sobrenadantes de cultivo de la cepa CP-5 crecida a 370C en condiciones de microaerobiosis y de anaerobiosis. Los resultados del análisis se muestran en la Figura 4. 9.2 Desconjugación de sales biliares. - .
La hidrólisis de las sales biliares liberando aminoácidos libres y colesterol se llevó a cabo por la acción de la enzima hidrolasa de sales biliares (BSH, EC 3.5.1.24). El ensayo de actividad de la enzima BSH se llevó a cabo según se describe en el artículo de Kumar et al. (2006)44. Este artículo propone la determinación de la actividad de la enzima BSH sobre dos sustratos diferentes, dos sales biliares cuyos aminoácidos que las forman son glicina y taurina. La reacción de estos aminoácidos con una solución de ninhidrina da un compuesto coloreado que se determina espectrofotométricamente a 570 nm. Previamente se lleva a cabo una curva patrón tanto para el aminoácido glicina como para la taurina.
La actividad BSH se determinó en sobrenadantes de cultivo de la cepa CP-5 crecida en condiciones de microaerobiosis y anaerobiosis. Previamente a la determinación de la actividad BSH se realizaron las curvas patrón de glicina y taurina. En la Tabla 11 se muestra los valores de actividad BSH de la cepa CP-5.
Tabla 11. Actividad BSH de la cepa CP-5 frente a diferentes sustratos.
BSH-Taurina BSH-Glicina
(mU.L/ml) (mU.L/ml)
Microaerobiosis 5.25 ± 0.12 4.45 ± 0.40
Anaerobiosis N.D. N.D. N.D.: No se detectó actividad BSH en las condiciones del ensayo.
9.3 Determinación de aminas biógenas.
Para la cuantificación de aminas biógenas en el sobrenadante de cultivo de la cepa CP-5 se utilizó un método cromato gráfico (HPLC) descrito por Eerola et al. (1993)45 en el que previamente se derivatizan las aminas biógenas presentes en el sobrenadante con una solución de cloruro de dansilo. Las aminas biógenas determinadas fueron tiramina, histamina, cadaverina y putrescina. Previamente se lleva a cabo una curva patrón con las cuatro aminas biógenas analizadas.
Para la cuantificación de aminas biógenas en el sobrenadante de cultivo de la cepa CP-5 se realizaron curvas patrón de las aminas tiramina, histamina, cadaverina y putrescina. En la Tabla 12 se muestra la cantidad de aminas biógenas producidas en los sobrenadantes de cultivo de la cepa CP-5 cultivada en condiciones de microaerobiosis y anaerobiosis.
Tabla 12. Aminas biógenas producidas por la cepa CP-5.
Putrescina Cadaverina Histamina Tiramina
(μM) (μM) (μM) (μM)
Microaerobiosis ÑJλ 0.0656±0.0000 Ñlλ 0.7815±0.0816
Anaerobiosis N.D. 0.0851±0.0382 N.D. 0.8179±0.0904
N.D.: No se detectó en el sobrenadante ensayado.
Los resultados indican que estos parámetros se encuentran en los niveles normales y admitidos para el resto de bacterias probióticas.
10. Usos de la nueva cepa de CP5 de Bifldohacíerium bifldum
10.1 Obtención de sobrenadante de cultivo de la bifídobacteria CP5.
Partiendo de glicerinado de bifídobacteria CP5 se obtiene un producto denominado sobrenadante de células de bifídobacteria CP5 en un tiempo de realización aproximada de 5 jornadas.
Jornada 1: Siembra de glicerinado con asa (10 μl) de bifídobacteria en 10 mL de caldo MRS-C (Anexo 1) y placa MRS-C. Crecimiento durante 17 h (caldo) y 30 h (placa) en estufa de laboratorio 37 0G con generador de anaerobiosis.
Jornada 2: Comprobación de la pureza y estado del cultivo a partir de visualización macroscópica de colonias y microscópica de las células. Pase 1 del cultivo (pre-inóculo). Siembra en 10 mL de caldo MRS-C 100 μl del cultivo (1% v/v). Crecimiento durante 17 h en estufa de laboratorio a 37 0C.
Jornada 3: Pase 2 del cultivo (inoculo). Siembra en botella de 200 mL de MRS-C 2 mL del cultivo de pase 1. Crecimiento durante 17 h en estufa de laboratorio a 37 0C. Preparación de garrafón de 20 L en medio MRS-C no comercial y esterilización en autoclave. Jornada 4: Toma de muestra del inoculo. Recuentos en placas MRS-C a partir de siembra de al menos tres diluciones decimales seriadas (-6, -7 y -8) en solución salina NaCl 0.09% pH 7.0. Crecimiento durante 30 h en estufa de laboratorio a 37 0C con generador de anaerobiosis. Medida de DO y peso seco (Anexo 1) .Inoculación de garrafón. Se inocula en las máximas condiciones de esterilidad (en llama) 200 mL de inoculo (1%). Crecimiento durante 17 h en cámara de temperatura controlada a 37 0C.
Jornada 5: Toma de muestra de la producción en esterilidad. Comprobación de la pureza y estado del cultivo a partir de visualización microscópica de las células. Medida de DO y peso seco (Anexo 1). Recuentos del producto en placas MRS-C a partir de siembra de al menos tres diluciones decimales seriadas (-6, -7 y -8) en solución salina NaCl 0.09% pH 7.0. Crecimiento durante 30 h en estufa de laboratorio a 37 0C con generador de anaerobiosis. Recuperación de las células mediante centrifugación en centrífuga Westfalia (Caudal de entrada de 48 litros/hora). Las células recogidas se resuspenden en 400 mL de solución salina NaCl 0.09% pH 7.0. El producto se centrifuga a 4000 rpm durante 30 min. aprox. (dependiendo del estado de la sedimentación se aumentará 15 min. más la centrifugación). Se decanta la solución salina. Este paso se realiza por duplicado.
Las células lavadas se resuspenden en un volumen de 1500 mi de solución crioprotectora.
Anexo 1:
A. Composición del medio MRS-C (pH = 6.5). • Peptona de caseína 10.00 g/L (Fluka)
• Extracto de carne 10.00 g/L (Pronadisa)
• Extracto de levadura 5.00 g/L (Pronadisa) Glucosa 20.00 g/L (Merck)
Tween 80 1.00 g/L (Fluka) • K2HPO42.00 g/L (Panreac)
Acetato sódico 5.00 g/L (Scharlau)
(NHU)2 citrato 2.00 g/L (Fluka) . •
MgSO4 x 7 H2O 0.20 g/L (Panreac)
MnSO4 x H2O 0.05 g/L (Merck) • Cisterna 0.05 g/L* (Panreac) Agar industrial 15 g/L (Pronadisa)
Autoclave: a 121 0C durante 20 min en autoclave producción.
La cisteína se prepara por separado en solución 10Ox y se añade al medio ya esterilizado.
El agar tan sólo se añade en el caso de medio sólido.
10.2. Obtención de liofilizado de la nueva cepa CP5 de Bifidobacterium bifldum
El objetivo es la obtención de un producto liofilizado de bifidobacteria con una concentración igual o superior a 1010 ufc/g.
Jomada 6: Se parte de las células lavadas obtenidas de la producción (ver en el punto 10), que se resuspenden en la solución crioprotectora, compuesta de 1500 mi leche desnatada líquida UHT y de 5% sacarosa alimentaria. El producto se reparte en bandejas de liofilización y se congelan a - 8O 0C.
Jornada 7: Liofilización. La deshidratación por sublimación se realiza en un liofilizador Christ, modelo Beta 2-16, en dos fases:
A) Secado principal: Temperatura del condensador: - 80 0C. Temperatura de la bandeja: 0 0C. Presión en lá cámara de secado: 0.250 mbar. Presión de seguridad:: 0.420 mbar. Tiempo de secado: 66 horas.
B) Secado final: Temperatura del condensador: - 80 0C. Temperatura de la bandeja: igual a la ambiental, entre 20 0C y 25 0C. Presión en la cámara de secado: 0.050 mbar. Tiempo de secado: 2 horas.
Jornada 8: Recogida del producto de liofilización. Pesado y medida de Aw y humedad. Recuentos del producto en placas MRS-C a partir de siembra de al menos tres diluciones decimales seriadas (-6, -7 y -8) en solución salina NaCl 0.09% pH 7.0. Crecimiento durante 30 h en estufa de laboratorio 37 0C con generador de anaerobiosis. Envasado al vacío del producto en el menor tiempo posible. Conservación a 4 0C hasta el envío. 10.3. Utilización de CP5 como probiótico.
. -Utilización de CP5 en alimentos.
Se considera ' como alimento probiótico aquel que contiene microorganismos vivos presentes en un alimento que permanecen activos en el intestino y ejercen importantes efectos fisiológicos. Ingeridos en cantidades suficientes tienen efecto muy beneficioso, como contribuir al equilibrio de la flora bacteriana intestinal del huésped y potenciar el sistema inmunológico del mismo. No son patógenos. Contienen esta clase de microorganismos y, por tanto son alimentos probióticos, los yogures frescos, otras leches fermentadas, etc.
Uno de los beneficios de los alimentos probióticos es la mejora del balance de la flora intestinal. Los alimentos denominados probióticos son cultivos simples o mezclados de las bacterias probióticas, las cuales al ser consumidas tanto por humanos como por animales, sobreviven al paso por el tracto gastrointestinal y se implantan (no necesariamente) en el colon o intestino delgado, siendo capaces de adherirse a la mucosa intestinal afectando favorablemente al huésped en términos de mejora de salud. El consumo reiterado de yogurt probiótico en cantidades relativamente abundantes, tiene un efecto terapéutico contra H. pylori (Guilliland,
1998)46.
. En la actualidad los probióticos se utilizan tanto en leche como en quesos, zumos pasteurizados, helados, yogures, cereales y barritas de nutrición. Debido a que los probióticos son organismos vivos, su viabilidad es un punto clave para su éxito.
Las células de la cepa CP5 mantienen una viabilidad del 88% al menos durante un periodo de 15 días a 50C cuando se añade a un derivado lácteo.
La cepa CP5 se puede utilizar como probiótico añadiéndola a alimentos en general y particularmente a productos lácteos y yogures, tanto directamente como fermentados y en este caso igualmente de forma directa como liofilizada.
Un ejemplo de la utilización de CP5 en la forma de liofílizado obtenido en el punto 11 sería en la obtención de una composición dietética, por ejemplo a partir de leche pasteurizada a la que se añade el liofílizado conteniendo preferiblemente 105-10n ufc/g de células de CP5,. que se mezclan con la leche pasteurizada, se homogeneiza la mezcla a aproximadamente 50C y la leche así homogeneizada se embotella y empaqueta de la forma habitual para su consumo. La duración es este caso es de como mínimo 15 días a 50C.
-Utilización de CP5 en composiciones farmacéuticas
Se utiliza el liofilizado de CP5 obtenido en el punto 11 el cual se muele a un tamaño máximo de partícula de 1 mm de diámetro y se mezcla en una cantidad fisiológicamente efectiva que en general contendrá 109-10π ufc/g de células de CP5, con las sustancias necesarias para formar pastillas, cápsulas, etc. Una cantidad fisiológicamente efectiva es la cantidad necesaria de un agente activo para conseguir el efecto deseado, bien sea para prevenir o para curar, es este caso de la infección por H. pylori.
Las composiciones farmacéuticas de la invención pueden incluir uno o más excipientes farmacéuticamente aceptables, adyuvantes, diluyentes o vehículos que son generalmente conocidos por el experto en la materia.
Las composiciones farmacéuticas de la invención pueden ser preparadas en forma sólida, como por ejemplo, pastillas, pildoras, tabletas, polvos, etc; líquida, como por ejemplo mezclando el activo con agua, aceites o mezclas de ambos, en suspensiones o dispersiones mezclada con agentes dispersantes y/o de suspensión, como por ejemplo gomas, etc.
El liofilizado de CP5 también puede administrarse en composiciones farmacéuticas conjuntamente con antibióticos para tratar la úlcera gástrica y prevenir el cáncer de estómago.
En ambos casos, tanto en composiciones farmacéuticas como dietéticas o nutricionales, la utilización de dichas composiciones será para prevenir o combatir las infecciones causadas por H. pylori en enfermedades gastrointestinales, entre otros, úlceras estomacales y cáncer estomacal.
BIBLIOGRAFÍA
I. Bizzozero, G. (1892). "Ueber die schlauchfórmigen Drüsen des Magendarmkanals und die . beziehungen ihres Epitheles zu dem Oberflachenepithel der Schleimhaut". Archiv für mikroskopishe Anatomie. 42: 82-152.
2. Marshall BJ (1983). "Unidentifíed curved bacillus on gastric epithelium in active chronic gastritis". Lancet 1 (8336): 1273-75.
3. Marshall BJ & Warren JR (1984). "Unidentifíed curved bacilli in the stomach patients with gastritis and peptic ulceration". Lancet 1 (8390): 1311-1315
4. Gasbarrini, G. et al. (2000) "No evidence of Helicobacter pylori sequences in pancreatic juices of patients affected by chronic pancreatitis" Int J Pancreatol. 28 (3): 181-5.
5. Gisbert, S. et al. (2004) "Meta-analysis: Helicobacter pylori eradication therapy vs. antisecretory non-aradication therapy for the prevention of recurrent bleeding from peptic ulcer" Aliment Pharmacol Ther. 19: 617-29.
6. Taylor DN & Blazer MJ (1991) "The epidemiology of Helicobacter pylori infection" Epidemiol Rev. 13: 42-59.
7. Peterson WL (1991) "Pathogenesis and therapy of peptic ulcer disease" J Clin Gastroenterol. 12 suppl 2: Sl-6.
8. Solnick JV, Tompkins LS (1992) "Helicobacter pylori and gastroduodenal disease: pathogenesis and host-parasite interaction" Infecí Agents Dis. 1(6): 294-309.
9. The EUROGAST Study Group "An international association between Helicobacter pylori and gastric cáncer". (1993) Lancet 341: 1359-62.
10. Chong J et al. (1994) "Occupational exposure to Helicobacter pylori for the endoscopy professional: a sera epidemiological study" Am J Gasti-oenterol. 89 (11): 1987-92.
I 1. Vilella, A. et al. (2003) "Linfoma gástrico tipo MALT" Med Clin (Barc) 120 (9): 349-52. 12. Fox, J.G. & Wang, T.C. (2001) "Helicobacter pylori-not a good bug after all!" New Engl. J.
Med. 345:829-832.
13. Lind T., et al. (1996) "Eradication of Helicobacter pylori using one-week triple therapies combining omeprazole with two antimicrobials: the MACH I Study" Helicobacter. 1 (3): 138-44.
14. The European Helicobacter pylori Study Group (1997) "The year in Helicobacter pylori 1997: Current Opinión in Gastroenterology" (Book) vol. 13, supplement 1.
15. Deltenre M. et al. (1998) "Eradication of Helicobacter pylori: why does it fail?" Ital J Gastroenterol Hepatol. 30 Supplement 3: 326-8.
16..Graham DY, Lew GM, Evans DG, Evans DJ, Klein PD (1991). "Effect of triple therapy (antibiotics plus bismuth) on duodenal ulcer healing. A randomized controlled trial". Ann. Intern. Med. 115 (4): 266-9.
17. Bhatia SJ et al. (1989) "Lactobacillus acidophilus Inhibits Grrowth of Campylobacter pylori In Vitro" Journal ofClinical Microbiology p.2328-2330.
18. Mrda, Z et al. (1998) "Therapy of Helicobacter pylori infection using Lactobacillus acidophilus" MedPregl. 51 (7-8): 343-5.
19. Gasbarrini et al (2004) "A lyophilized and inactivated cultura of Lactobaccllus acidophilus increases Helicobacter pylori eradication rates"
20. Lorca, GL et al (2001) "Lactobacillus acidophilus Autolysins Inhibit Helicobacter pylori In Vitro" Current microbiology vol.42, 39-44.
21. Coconnier M-H et al. (1998) "Antagonistic Activity against Helicobacter infection In Vitro and In Vivo by the Human Lactobacillus acidophilus Strain LB" Applied and Environmental Microbiology, p. 4573-80.
22. Michetti P. et al. (1999) "Effect of whey-based culture supernatant of Lactobacillus acidophilus (johnsonii) LaI on Helicobacter pylori infection in humans" Digestión 60 (3):
203-9. 23. Sgόuras D. et al. (2004) "In vitro and in vivo inhibition of Helicobacter pylori by
Lactobacillus casei strain Shirota" Appl Environ Microbiol. 70 (1): 518-26.
24. Johnson-Henry KC et al. (2004) "Probiotics reduce bacterial colonization and gastric inflammation in H. pylori-infected mice" DigDis Sci. 49 (7-8): 1095-102.
25. Hamilton-Miller JM (2003) "The role of probiotics in the pretreatment and prevention of Helicobacter pylori infection" Int J Ántimicrob Agents 22 (4): 360-6.
26. Pinchuk IV. et al, (2001) "In vitro anti-Helicobactyer pylori activity of the probiotic strain Bacillus subtilis is due to secretion of antibiotics" Ántimicrob Agents Chemother. 45 (11): 3156-61.
27. Nam et al. (2002) "Effect of Weissella confusa strain PL9001 on the adherence and growth of Helicobacter pylori" Appl. Environ.M;icrobiol. 68:4642-4645.
28. Ishihara K et al. (1997) "Oral bacteria inhibit Helicobacter pylori growth" FEMS Microbiol Lett. 15:152(2):355-61.
29. Aiba Y. et al. (1998) "Lactic acid-mediated suppression of Helicobacter pylori by the oral administration of Lactobacillus salivarius as a probiotic in a gnotobiotic murine model" Am J
Gasti-oenterol. 93 (11): 2097-101.
30. Kabir AM et al. (1997) "Prevention of Helicobacter pylori infection by lactobacilli in a gnotobiotic murine model" Gut. JuI. 41(l):49-55.
31. Ushiyama A. et al. (2003) "Lactobacillus gasseri OLL2716 as a probiotic in clarithromycin- resistant Helicobacter pylori infection" J Gastroenterol Hepatol. 18 (8): 986-91.
32. Mukai M. et al. (2002) "Helicobacter pylori associated witli idiopathic thrombocytopenic purpura" Am JMed 113(2): 169-71.
33. Armuzzi A. et al. (2001) "Effect of Lactobacillus GG supplementation on antibiotic- associated gastrointestinal side effects during Helicobacter pylori eradication therapy: a pilot study" Digestión 63 (1): 1-7. 34. Armuzzi A. et al. (2001) "The effect of oral administration of Lactobacillus GG on antibiotic-associated gastrointestinal side-effects during Helicobacter pylori eradication therapy" Aliment Pharmacol Ther. 15 (2): 163-9.
35. Felley CP. et al. (2001) "Favourable effect of an acidified milk (LC-I) on Helicobacter pylori gastritis in man" Eur J Gastroenterol Hepatol. 13 (1): 25-9.
36. Cremonini F. et al. (2001) "Effect of different probiotic preparations on anti- Helicobacter pylori therapy-related side effects: a parallel group, triple bind, placebo-controlled study" Am J Gastroenerol. 97 (11): 2744-9.
37. Canducci F. et al. (2000) "A lyophilized and inactivated cultura of Lactobacillus acidophilus increases Helicobacter pylori eradication rates" Aliment Pharmacol Ther. 14 (12): 1625-9.
38. De Francesco V. et al. (2000) "Lactobacillus acidophilus administration added to omeprazole/amoxycillin-based double therapy in Helicobacter pylori eradication". Dig Liver Dis. 32(8): 746-7.
39. Sheu BS. et al. (2002) "Impact of supplement with Lactobacillus-and Bifϊdobacterium- containing yogurt on triple therapy for Helicobacter pylori eradication" Aliment Pharmaco
77zer. 16 (9): 1669-75.
40. Mrda Z et al. (1993) "Helicobacter pylori in patients with diseases of the upper part of the gastrointestinal tract" Med. Pregl. 46(3-4):l 17-9.
41. Scholz-Ahrens, KE & Schrezenmeir J. et al. (2000) "Effects of bioactive substances in milk on mineral and trace element metabolism with special reference to casein phosphopeptides"
Br JNutr. 84 Suppl 1: 147-53.
42. Nakaji S et al. (2001) "Relationship between mineral and trace element concentrations in drinking water and gastric cáncer mortality in Japan.". Nutr Cancer.40(2):99-102.
43. Wendakoon CN. et al. (2002) "Lacle of therapeutic effect of a specially designed yogurt for the eradication of Helicobacter pylori infection" Digestión. 65 (1): 16-20. 44. Kumar R.S. et al. (2006) "Structural and functional analysis of a conjugated bile salt hydrolase from Bifidohacterium longmn reveáis an evolutionary relationship with penicillin V acylase." J. Biol. Chem. 281: 32516-32525.
45. Eerola, S. et al. (1993) "Liquid chromatographic determination of biogenic amines in dry sausages". Int. J. AOAC 76: 575-577.
46. Guilliland SE. (1998) Fermented railks and probiotics. En: Applied Dairy Microbiology (Marth EH y Steele JL, eds.) Maarcel Dekker, Inc., New York, pp. 195-212.

Claims

REINVINDICACIONES
1. Cepa dé Bifldobacterium bifidúm depositada en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT) con el número de acceso CECT 7366, o un muíante o un derivado de la misma, con actividad para inhibir a Helicobacter pylori, y que tenga la capacidad de producir seis péptidos caracterizados porque su secuencia de aminoácidos sea SED.ID.NO: 1 a 6, o un derivado de dichos péptidos.
2. Cepa de Bifidobacterium bifldum de acuerdo con la reivindicación 1, caracterizada porque es un muíante genéticamente modificado de la CECT 7366.
3. Cepa de Bifldobacterium bifldum de acuerdo con las reivindicación 1, caracterizada porque del sobrenadante obtenido de su fermentación se obíienen uno o más de los péptidos caracterizados porque su secuencia de aminoácidos es SEQ.ID.NO: 1 a 6.
4. Cepa de Bifldobacterium bifldum de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 3, caracterizada porque la fracción obíenida a partir del sobrenadante de su fermentación, conteniendo iodos los pépíidos definidos como SEQ.ID.NO: 1 a 6, inhibe el crecimiento de H. pylori en al menos un 70%.
5. Cepa de Bifldobacterium bifidum de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 3-4, caracterizada porque la fracción obtenida a partir del sobrenadante de su fermentación, coníeniendo todos los pépíidos definidos como SEQ.ID.NO: 1 a 6, inhibe el crecimiento de H. pylori en al menos un 80%.
6. Cepa de Bifldobacterium bifidum de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 3-5, caracterizada porque la fracción obíenida a partir del sobrenadante de su fermeníación, coníeniendo iodos los péptidos definidos como SEQ.ID.NO: 1 a 6, inhibe el crecimiento de H. pylori en al menos un 90%.
7. Cepa bacteriana de Bifidobacterium bifidum de acuerdo con las reivindicación 1, caracíerizada porque las bacterias esíán presentes como células viables.
8. Cepa bacteriana de Bifidobacterium bifldum de acuerdo con las reivindicación 1, caracterizada porque las bacterias están presentes como células no-viables.
9. Cultivo bacteriano caracterizado porque se ha obtenido a partir de la cepa bacteriana CECT 7366 de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-8.
10. Cultivo bacteriano de acuerdo con las reivindicaciones 1, 7 y 9, caracterizado porque comprende células viables de la cepa bacteriana CECT 7366.
11. Cultivo bacteriano de acuerdo con las reivindicaciones 1, 3-6 y 9, caracterizado porque comprende células no viables de la cepa bacteriana CECT 7366.
• 12. Sobrenadante de cultivo bacteriano de acuerdo con las reivindicaciones 1, 3-6 y 9, obtenido tras fermentación y separación de las células.
13. Utilización de la cepa de Bifidobacterium bifidum de acuerdo con la reivindicación 1, para la obtención de los péptidos SEQ.ID.NO: 1 a 6. . •
14. Utilización de la cepa de Bifidobacterium bifidum de acuerdo con las reivindicaciones 1-13, para la preparación de una composición nutritiva y/o farmacéutica, caracterizada porque dicha bacteria y/o los péptidos SEQ.ID.NO: 1-6 están presentes en una cantidad que sea suficiente para ejercer un efecto probiótico en dicha composición nutritiva y/o farmacéutica que un individuo necesite, preferiblemente contra Helicobacter pylori.
15. Composición nutritiva de acuerdo con la reivindicación 14, que comprende una cantidad efectiva de la cepa Bifidobacterium bifidum y/o los péptido SEQ.ID.NO: 1 a 6, junto con cantidades apropiadas de otros alimentos.
16. Composición nutritiva de acuerdo con la reivindicación 15, en la que los otros alimentos se seleccionan del grupo que comprende helados, cereales, zumos, barritas de nutrición, productos lácteos como leche entera, leche desnatada, leche fermentada leche en polvo, queso, yogures u otros derivados lácteos
17. Composición nutritiva de acuerdo con las reivindicaciones 14-16, caracterizada porque es un yogur.
18. Composición de yogur de acuerdo con la reivindicación 14-17, caracterizada porque las células de la cepa tienen una viabilidad de al menos un 80% durante un periodo de 15 días mantenido a 50C.
19. Composición nutritiva de acuerdo con las reivindicaciones 14-18, caracterizada porque la cepa está presente en una cantidad entre 105- 10π ufc/g de la composición.
20. Composición nutritiva de acuerdo con las reivindicaciones 14-19, caracterizada porque la cepa está presente en una cantidad entre 107- 108 ufc/g de la composición.
21. Utilización de la cepa de Bifidobacterium bifldum de acuerdo con las reivindicaciones 1-12, para la preparación de un medicamento para prevenir o curar la úlcera gástrica o el cáncer estomacal producido por infección de Helicobacter pylori.
22. Composición farmacéutica de acuerdo con las reivindicaciones 14 y 21, caracterizada porque la bacteria Bifidobacterium bifidum CECT 7366 y/o los péptidos SEQ.ID.NO: 1-6 están presentes en una cantidad fisiológicamente efectiva para conseguir el efecto deseado, junto con los vehículos y/o adyuvantes farmacéuticamente aceptables necesarios.
23. Composición farmacéutica de acuerdo con la reivindicaciones 21-22, caracterizada porque dicha composición está en forma sólida, como por ejemplo, pastillas, pildoras, tabletas, etc; líquida, en suspensión o dispersión.
24. Composición farmacéutica de acuerdo con la reivindicaciones 21-23, caracterizada porque además de la bacteria Bifidobacterium bifidum CECT 7366 y/o los péptidos SEQ.ID.NO: 1- 6, la composición comprende antibióticos para tratar la úlcera gástrica.
25. Composición farmacéutica de acuerdo con las reivindicaciones 14 y 21-24, caracterizada porque la cepa está presente en una cantidad entre 107- 10u ufc/g.
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4824841B2 (ja) * 2009-12-28 2011-11-30 カルピス株式会社 脳機能改善用組成物および脳機能を改善する方法
EP2449891A1 (en) * 2010-11-05 2012-05-09 Nestec S.A. Drinking yoghurt preparations containing non-replicating probiotic micro-organisms
WO2012062868A1 (en) * 2010-11-11 2012-05-18 Nestec S.A. Spoonable yogurt preparations containing non-replicating probiotic micro-organisms
CN111100802A (zh) * 2018-10-26 2020-05-05 中国石油化工股份有限公司 一株粪肠球菌及其应用
CN112334145A (zh) * 2018-04-18 2021-02-05 丹斯塔发酵股份公司 减轻烟草或尼古丁戒断症状的方法

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PT2481299T (pt) * 2011-01-31 2017-03-08 Synformulas Gmbh Estirpes de bifidobacterium bifidum para aplicação em doenças gastrointestinais
US9523109B2 (en) 2011-06-24 2016-12-20 Calpis Co., Ltd. Method for enzymatically preparing peptides for use in improvement of brain function
JP5686680B2 (ja) * 2011-06-24 2015-03-18 カルピス株式会社 乳酸菌発酵によるカゼイン由来ペプチドの製造方法
JP5718741B2 (ja) * 2011-06-24 2015-05-13 カルピス株式会社 脳機能改善用ペプチドの酵素的製造方法
CN103266076B (zh) * 2013-06-04 2014-10-29 神舟太空产品高科技成果推广中心集团有限公司 太空诱变高效两歧双歧杆菌、其应用及其胶囊制剂的制备方法
IT201800009755A1 (it) 2018-10-24 2020-04-24 Berardino Vaira Nuovi probiotici utili per eradicare l'infezione da helicobacter pylori
CN114652753B (zh) * 2022-04-29 2022-09-30 河北一然生物科技股份有限公司 两歧双歧杆菌b11在制备抑制幽门螺旋杆菌及修复胃黏膜屏障产品中的应用

Citations (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06128287A (ja) * 1991-11-07 1994-05-10 Nisshin Flour Milling Co Ltd ペプチドおよびその製造方法
EP0787494A1 (en) 1995-09-01 1997-08-06 Kaneka Corporation Remedy for diseases caused by infection with helicobacter
EP0866793A1 (en) 1995-06-26 1998-09-30 Pathogenesis Corporation Nitroimidazole antibacterial compounds and methods of use thereof
WO2000074712A2 (en) 1999-06-09 2000-12-14 Vsl Pharma Limited Composition comprising alkaline sphingomyelinase for use as a dietetic preparation, food supplement or pharmaceutical product
EP1092040A2 (en) 1998-06-30 2001-04-18 Institut Pasteur METHODS OF INHIBITING $i(HELICOBACTER PYLORI)
JP2001258549A (ja) 2000-02-19 2001-09-25 Korea Yakult Co Ltd ヘリコバクターピロリに対して抗菌活性を有するラクトバシルスアシドフィルスｈｙ２１７７、ラクトバシルスカセイｈｙ２７４３及びそれらを用いた乳酸菌製剤と発酵乳
KR20020061040A (ko) 2001-01-12 2002-07-22 매일유업주식회사 헬리코박터 필로리의 생육을 특이적으로 억제하는 유산균,그 이용방법 및 그를 함유한 제품
JP2002322086A (ja) 2001-04-27 2002-11-08 Morinaga Milk Ind Co Ltd ヘリコバクター・ピロリ感染予防治療剤並びに感染予防治療用飲食品
WO2003051132A1 (en) 2001-12-19 2003-06-26 Cj Corp. Method for making fermented food and fermented food made thereby having suppressive effect against helicobactor-pylori and food-poisoning bacillus
WO2007001097A1 (en) 2005-06-29 2007-01-04 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing l-threonine
CA2616054A1 (en) * 2005-07-21 2007-01-25 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Novel bacterium belonging to the genus bifidobacterium and utilization of the same
WO2007096855A2 (en) * 2006-02-24 2007-08-30 Teagasc, The Agriculture And Food Development Authority Angiotensin-i-converting enzyme inhibitory

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1277964B1 (it) * 1995-12-27 1997-11-12 Biosistema Di Pier Luigi Spara Prodotto derivato da latte, sostanzialmente esente da betacaseina di mammifero non umano e relativo uso
EP1911457A1 (en) * 2006-10-12 2008-04-16 N.V. Nutricia Composition to treat or prevent gastrointestinal infection

Patent Citations (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06128287A (ja) * 1991-11-07 1994-05-10 Nisshin Flour Milling Co Ltd ペプチドおよびその製造方法
EP0866793A1 (en) 1995-06-26 1998-09-30 Pathogenesis Corporation Nitroimidazole antibacterial compounds and methods of use thereof
EP0787494A1 (en) 1995-09-01 1997-08-06 Kaneka Corporation Remedy for diseases caused by infection with helicobacter
EP1092040A2 (en) 1998-06-30 2001-04-18 Institut Pasteur METHODS OF INHIBITING $i(HELICOBACTER PYLORI)
WO2000074712A2 (en) 1999-06-09 2000-12-14 Vsl Pharma Limited Composition comprising alkaline sphingomyelinase for use as a dietetic preparation, food supplement or pharmaceutical product
JP2001258549A (ja) 2000-02-19 2001-09-25 Korea Yakult Co Ltd ヘリコバクターピロリに対して抗菌活性を有するラクトバシルスアシドフィルスｈｙ２１７７、ラクトバシルスカセイｈｙ２７４３及びそれらを用いた乳酸菌製剤と発酵乳
KR20020061040A (ko) 2001-01-12 2002-07-22 매일유업주식회사 헬리코박터 필로리의 생육을 특이적으로 억제하는 유산균,그 이용방법 및 그를 함유한 제품
JP2002322086A (ja) 2001-04-27 2002-11-08 Morinaga Milk Ind Co Ltd ヘリコバクター・ピロリ感染予防治療剤並びに感染予防治療用飲食品
WO2003051132A1 (en) 2001-12-19 2003-06-26 Cj Corp. Method for making fermented food and fermented food made thereby having suppressive effect against helicobactor-pylori and food-poisoning bacillus
WO2007001097A1 (en) 2005-06-29 2007-01-04 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing l-threonine
CA2616054A1 (en) * 2005-07-21 2007-01-25 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Novel bacterium belonging to the genus bifidobacterium and utilization of the same
WO2007096855A2 (en) * 2006-02-24 2007-08-30 Teagasc, The Agriculture And Food Development Authority Angiotensin-i-converting enzyme inhibitory

Non-Patent Citations (50)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"An international association between Holicobacterpylorl and gastric cancer", LANCET, vol. 341, 1993, pages 1359 - 62
"Current Opinion in Gastroenterology", vol. 13, 1997, article "The year in Helicobacter pylori", pages: 1
AIBA Y. ET AL.: "Lactic acid-mediated suppression of Helicobacter pylori by the oral administration of Lactobacillus salivarius as a probiotic in a gnotobiotic murine model", AM J GASTROENTEROL, vol. 93, no. 11, 1998, pages 2097 - 101
ARMUZZI A. ET AL.: "Effect of Lactobacillus GG supplementation on antibiotic-associated gastrointestinal side effects during Helicobacter pylori eradication therapy: a pilot study", DIGESTION, vol. 63, no. 1, 2001, pages 1 - 7
ARMUZZI A. ET AL.: "The effect of oral administration of Lactobacilius GG on antibiotic-associated gastrointestinaf side-effects during Helicobacter pylori eradication therapy", ALIMENT PHARMACOL THER., vol. 15, no. 2, 2001, pages 163 - 9
BHATIA SJ ET AL.: "Lactobacillus acidophilus Inhibits Growth of Campylobacter pylori In Vitro", JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, 1989, pages 2328 - 2330
BIZZOZERO, G.: "Ueber die schlauchförmigen Drüsen des Magendarmkanals und die beziehungen ihres Epitheles zu dem Oberflachenepithel der Schleimhaut", ARCHIV FÜR MIKROSKOPISHE ANATOMIE, vol. 42, 1892, pages 82 - 162
CANDUCCL F. ET AL.: "A lyophilized and inactivated culture of Lactobacillus acidophilus increases He/icobacter pylori eradication rates", ALIMENT PHARMACOL THER., vol. 14, no. 12, 2000, pages 1625 - 9
CHONG J ET AL.: "Occupational exposure to Helicobacter pylori for the endoscopy professional: a sera epidemiological study", AM J GASTROENTEROL., vol. 89, no. 11, 1994, pages 1987 - 92
COCONNIER M-H ET AL.: "Antagonistic Activity against Helicobacter infection In Vitro and In Vivo by the Human Lactobacillus acidophilus Strain LB", APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 1998, pages 4573 - 80
COLLADO M.C ET AL.: "Antimicrobial peptides are among the antagonistic metabolites produced by Bifidobacterium against Helicobacter pylori.", INTERNATIONAL JOURNAL OF ANTIMICROBIAL AGENTS., vol. 25, no. 5, January 2005 (2005-01-01), pages 385 - 391, XP008133521 *
CREMONINI F. ET AL.: "Effect of dlfferent probiotic preparations on anti- Helicobacter pylori therapy-related side effects: a parallel group, triple bind, placebo-controlled study", AM J GASTROENEROL., vol. 97, no. 11, 2001, pages 2744 - 9
DATABASE JPOP [online] 1 July 1997 (1997-07-01), Database accession no. E56660 *
DELTENRE M. ET AL.: "Eradication of Helicobacter pylori; why does it fail?", ITAL J GASTROENTEROL HEPATOL., vol. 30, no. 3, 1998, pages 326 - 8
EEROLA, S. ET AL.: "Liquid chromatographic determination of blogenic amines in dry sausages", INT. J. AOAC, vol. 76, 1993, pages 575 - 577
FELLEY CP. ET AL.: "Favourable effect of an acidified milk (LC-1) on Helicobacter pylori gastritis in mann", EUR J GASTROENTEROL HEPATOL., vol. 13, no. 1, 2001, pages 25 - 9
FOX, J.G.; WANG, T.C.: "Helicobacter pylori-not a good bug after all!", NEW ENGL. J. MED., vol. 345, 2001, pages 829 - 832
GASBARRINI, A LYOPHILIZED AND INACTIVATED CULTURE OF LACTOBACILLUS ACIDOPHILUS INCREASES HELICOBACTER PYLORI ERADICATION RATES, 2004
GASBARRINI, G. ET AL.: "No evidence of Helicobacter pylori sequences in pancreatic juices of patients affected by chronic pancreatitis", INT J PANCREATOL., vol. 28, no. 3, 2000, pages 181 - 5
GISBERT, S. ET AL.: "Meta-analysis: Helicobacter pylori eradication therapy vs. antisecretory non-eradication therapy for the prevention of recurrent bleeding from peptic ulcer", ALIMENT PHARMACOL THER., vol. 19, 2004, pages 617 - 29
GRAHAM DY; LEW GM; EVANS DG; EVANS DJ; KLEIN PD: "Effect of triple therapy (antibiotics plus bismuth) on duodenal ulcer healing. A randomized controlled trial", ANN. INTERN. MED., vol. 115, no. 4, 1991, pages 266 - 9
GUILLILAND SE: "Applied Dairy Microbiology", 1998, MAARCEL DEKKER, INC., article "Fermented milks and probiotics", pages: 195 - 212
HAMILTON-MILLER JM: "The role of probiotics in the pretreatment and prevention of Heliicobacter pylori infection", INT J ANTIMICROB AGENTS, vol. 22, no. 4, 2003, pages 360 - 6
ISHIHARA K ET AL.: "Oral bacterium inhibit Helicobacter pylori growth", FEMS MICROBIOL LEFT., vol. 152, no. 2, 15 December 1996 (1996-12-15), pages 355 - 61
JOHNSON-HENRY KC ET AL.: "Probiotics reduce bacterial colonization and gastric inflammation in H. pylori-infected mice", DIG DIS SCI., vol. 49, no. 7-8, 2004, pages 1095 - 102
KABIR AM ET AL.: "Prevention of Helicobacter pylori infection by lactobacilli in a gnotobiotic murine model", GUT, vol. 41, no. 1, July 1997 (1997-07-01), pages 49 - 55
KUMAR R.S.: "Structural and functional analysis of a conjugated bile salt hydrolase from Bifidobacterium longum reveals an evolutionary relationship with penicillin V acylase.", J. BIOL. CHEM., vol. 281, 2006, pages 32516 - 32525
LIND T. ET AL.: "Eradication of Helicobacter pylori using one-week triple therapies combining omeprazole with two antimicrobials: the MACH I Study", HELICOBACTER, vol. 1, no. 3, 1996, pages 138 - 44
LORCA, GL ET AL.: "Lactobacillus acidophilus Autolysins Inhibit Helicobacter pylori In Vitro", CURRENT MICROBIOLOGY, vol. 42, 2001, pages 39 - 44
MARSHALL BJ: "Unidentified curved bacillus on gastric epithelium in active chronic gastritis", LANCET, vol. 1, no. 8336, 1983, pages 1273 - 75
MARSHALL BJ; WARREN JR: "Unidentified curved bacilli in the stomach patients with gastritis and peptic ulceration", LANCET, vol. 1, no. 8390, 1984, pages 1311 - 1315
MICHETTI P.: "Effect of whey-based culture supernatant of Lactobacillus acidophilus (johnsonii) La1 on Helicobacter pylori infection in humans", DIGESTION, vol. 60, no. 3, 1999, pages 203 - 9
MIKI,K. ET AL.: "Effect of Bifidobacterium bifidum Fermented Milk on Helicobacter pylori and Serum Pepsinogen Levels in Humans.", JOURNAL OF DAIRY SCIENCE., vol. 90, no. 6, pages 2630 - 2640, XP026955932 *
MRDA Z ET AL.: "Helicobacter pylori in patients With diseases of the upper part of the gastrointestinal tract", MED. PREGL., vol. 46, no. 3-4, 1993, pages 117 - 9
MRDA, Z ET AL.: "Therapy of Helicobacter pylori infection using Lactobacillus acidophilus", MAD PREGL, vol. 51, no. 7-8, 1998, pages 343 - 5
MUKAI M.: "Helicobacter pylon associated with idiopathic thrombocytopenic purpura", AM J MED, vol. 113, no. 2, 2002, pages 169 - 71
NAKAJI S ET AL.: "Relationship between mineral and trace element concentrations in drinking water and gastric cancer mortality in Japan", NUTR CANCER, vol. 40, no. 2, 2001, pages 99 - 102
NAM: "Effect of Weissella confuse strain PL9001 on the adherence and growth of Helicobacter pylorl", APPL. ENVIRON. MICROBIOL, vol. 68, 2002, pages 4642 - 4645
OF FRANCESCO V. ET AL.: "Lactobacillus acidophilus administration added to omeprazole/amoxicillin-baxed double therapy in Helicobacter pylori eradication", DIG LIVER DIS., vol. 32, no. 8, 2000, pages 746 - 7
PETERSON WL: "Pathogenesis and therapy of peptic ulcer disease", J CLIN GASTROENTEROL., vol. 12, no. 2, 1991, pages 1 - 6
PINCHUK IV. ET AL.: "In vitro anti-Helicobactyer pylori activity of the probiotic strain Bacillus subtilis is due to secretion of antibiotics", ANTIMICROB AGENTS CHEMOTHER., vol. 45, no. 11, 2001, pages 3156 - 61
SCHOLZ-AHRENS, KE; SCHREZENMEIR J. ET AL.: "Effects of bioactive substances in milk on mineral and trace element metabolism with special reference to casein phosphopeptides", BR J NUTR., vol. 84, no. 1, 2000, pages 147 - 53
See also references of EP2270133A4
SGOURAS D. ET AL.: "In vitro and in vivo inhibition of Hellcobacterpylori by Lactobacillus casei strain Shirota", APPL ENVIRON MICROBIOL., vol. 70, no. 1, 2004, pages 518 - 26
SHEU BS.: "Impact of supplement with Lactobacillus-and Bifidobacterium-containing yogurt on triple therapy for Helicobacter pylori eradication", ALIMENT PHARMACO THER., vol. 16, no. 9, 2002, pages 1669 - 75
SOLNICK JV; TOMPKINS LS: "Helicobacter pylori and gastroduodenal disease: pathogenesis and host-parasite interaction", INFECT AGENTS DIS., vol. 1, no. 6, 1992, pages 294 - 309
TAYLOR DN; BLAZER MJ: "The epidemiology of Helicobacter pylori infection", EPIDEMIOL REV., vol. 13, 1991, pages 42 - 59
USHIYAMA A. ET AL.: "Lactobacillus gasseri OLL2716 as a probiotic in clarithromycin-resistant Helicobacter pylori infection", J GASTROENTEROL HEPATOL., vol. 18, no. 8, 2003, pages 986 - 91
VILELLA, A ET AL.: "Linfoma gástrico tipo MALT", MED CLIN (BARC, vol. 120, no. 9, 2003, pages 349 - 52
WENDAKOON CN ET AL.: "Lack of therapeutic effect of a specially designed yogurt for the eradication of Helicobacter pylori infection", DIGESTION, vol. 65, no. 1, 2002, pages 16,20

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4824841B2 (ja) * 2009-12-28 2011-11-30 カルピス株式会社 脳機能改善用組成物および脳機能を改善する方法
US8569241B2 (en) 2009-12-28 2013-10-29 Calpis Co., Ltd. Composition for improving brain function and method for improving brain function
EP2449891A1 (en) * 2010-11-05 2012-05-09 Nestec S.A. Drinking yoghurt preparations containing non-replicating probiotic micro-organisms
WO2012059501A1 (en) * 2010-11-05 2012-05-10 Nestec S.A. Drinking yoghurt preparations containing non-replicating probiotic micro-organisms
WO2012062868A1 (en) * 2010-11-11 2012-05-18 Nestec S.A. Spoonable yogurt preparations containing non-replicating probiotic micro-organisms
CN103582423A (zh) * 2010-11-11 2014-02-12 雀巢产品技术援助有限公司 含非复制性益生菌微生物的可勺性酸奶制备物
CN112334145A (zh) * 2018-04-18 2021-02-05 丹斯塔发酵股份公司 减轻烟草或尼古丁戒断症状的方法
CN111100802A (zh) * 2018-10-26 2020-05-05 中国石油化工股份有限公司 一株粪肠球菌及其应用
CN111100802B (zh) * 2018-10-26 2021-10-08 中国石油化工股份有限公司 一株粪肠球菌及其应用

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