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WO2006022092A1 - 細胞電位測定プローブ - Google Patents

細胞電位測定プローブ Download PDF

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Publication number
WO2006022092A1
WO2006022092A1 PCT/JP2005/013029 JP2005013029W WO2006022092A1 WO 2006022092 A1 WO2006022092 A1 WO 2006022092A1 JP 2005013029 W JP2005013029 W JP 2005013029W WO 2006022092 A1 WO2006022092 A1 WO 2006022092A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cell potential
plate
cavity
opening
well
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2005/013029
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Masaya Nakatani
Nobuhiko Ozaki
Hiroaki Oka
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Panasonic Holdings Corp
Original Assignee
Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Matsushita Electric Industrial Co Ltd filed Critical Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Priority to JP2006522824A priority Critical patent/JPWO2006022092A1/ja
Priority to US10/595,275 priority patent/US7736477B2/en
Priority to EP05765636.5A priority patent/EP1783202B1/en
Publication of WO2006022092A1 publication Critical patent/WO2006022092A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Priority to US12/359,426 priority patent/US8202439B2/en
Priority to US12/712,370 priority patent/US20100147682A1/en
Ceased legal-status Critical Current

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Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483Physical analysis of biological material
    • G01N33/487Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/48707Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
    • G01N33/48728Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp

Definitions

  • the present invention relates to a cell potential measurement probe for measuring a cell potential such as an intracellular potential or an extracellular potential, which is used to measure a physical change caused by cell activity. . Background art
  • the Notch clamp method is known as a conventional method for screening a drug having pharmacological effects while using cellular electrical activity as an index.
  • the Notch clamp method is a method of directly squeezing a hollow glass tube with a fine tip into cells and measuring the potential difference inside and outside of the cell ⁇ 7 that is, single channel currents recorded from the membrane of impaired frog muscle nbers. Nature 260 : 799-802, Neher E & Sakmann B, 1976), which enables accurate measurement of the activity of ion channels present in cell membranes.
  • WO 02Z055653 discloses an extracellular potential measuring device and a method for measuring an extracellular potential with a substrate having a cell holding means and an electrode provided thereon. In this method, high quality data equivalent to the data obtained by the notch clamp method can be obtained, and a large number of samples can be measured easily and quickly.
  • FIG. 24 is a cross-sectional view of the extracellular potential measuring device described above.
  • the culture solution 51 is placed in the container 50, and the subject cells 52 are captured and held by the holding means provided on the substrate 53.
  • This holding means is constituted by a recess 54 formed in the substrate 53, an opening 55, and a through hole 56 communicating with the recess 54.
  • a reference electrode 58 is disposed in the container 50.
  • a measurement electrode 57 which is sensing means is disposed around the through hole 56, and the measurement electrode 57 is connected to an external signal detection unit through a wire.
  • the subject cells 52 are aspirated from the outside through the through holes 56 by means such as a suction pump and held in close contact with the depressions 54.
  • the electrical signal generated by the activity of the subject cell 52 is not leaked to the side of the culture solution 51 in the container 50 and the measurement electrode 57 provided in the through hole 56 The potential difference with the reference electrode 58 is detected.
  • the above-described conventional device has a substrate 53 provided with a recess 54 and a through hole 56, and a container 50 provided on the upper portion thereof for charging and accumulating a culture solution and a chemical solution. . Therefore, it is not possible to measure suspended cells in a solution that exists in a sufficiently large space in an environment as it is.
  • the cell potential measurement probe includes a plate having a first cavity having a bottom surface formed on the surface, and a sensor element disposed in the first cavity.
  • a second cavity is formed on the bottom of the first cavity.
  • a first flow path is formed in the plate having a first opening opening to a second cavity and a second opening opening to the outside of the plate.
  • the sensor element has a thin plate and a support substrate provided around the thin plate and disposed in the first cavity of the plate.
  • the sheet is formed with a through hole passing through the first opening and the second opening connected to the second cavity of the plate.
  • the first channel can flow fluid and suction means can be connected to the second opening of the channel to suction fluid flowing in the first channel.
  • This cell potential measurement probe can measure the potential of cells suspended in a solution in an environment as it is.
  • FIG. 1 is a perspective view of a cell potential measurement probe according to Embodiment 1 of the present invention.
  • FIG. 2 is an exploded perspective view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 3 is a cross-sectional perspective view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 4 is an enlarged cross-sectional perspective view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 6 is an enlarged cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 7 is a perspective view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 8 is a perspective view for explaining how to use the cell potential measurement probe in the first embodiment.
  • FIG. 9 is a conceptual view of a cell potential measurement probe in Embodiment 1.
  • FIG. 10 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 11 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • Fig. 12 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 13 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 14 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 1.
  • FIG. 15 is a plan view of another cellular potential measurement probe according to Embodiment 1.
  • FIG. 16A is an enlarged cross-sectional view of the cell potential measurement probe shown in FIG.
  • FIG. 16B is an enlarged cross-sectional view of still another cell potential measurement probe according to Embodiment 1.
  • Fig. 17 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe in a second embodiment of the present invention.
  • FIG. 18 is an enlarged cross-sectional view of a cell potential measurement probe in accordance with Embodiment 2.
  • FIG. 19A is a cross sectional view for illustrating a method of using a cell potential measurement probe in a second embodiment.
  • FIG. 19B is an enlarged cross-sectional view of the cell potential measurement probe shown in FIG. 19A.
  • FIG. 20 is an exploded perspective view of a cell potential measurement probe according to a third embodiment of the present invention.
  • FIG. 21 is a cross-sectional perspective view of a cell potential measurement probe according to a third embodiment.
  • FIG. 22 is an enlarged cross-sectional view of a cell potential measurement probe according to a third embodiment.
  • FIG. 23 is a perspective view of a cell potential measurement probe array according to the third embodiment.
  • FIG. 24 is a cross-sectional view of a conventional extracellular potential measurement probe.
  • FIG. 1 is a perspective view of a cell potential measurement probe 1 according to Embodiment 1 of the present invention.
  • FIG. 2 is an exploded perspective view of the cell potential measurement probe 1.
  • FIG. 3 is a cross-sectional perspective view of the cell potential measurement probe 1.
  • FIG. 4 is an enlarged sectional perspective view of the cell potential measuring probe 1.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view of the cell potential measurement probe 1.
  • FIG. 6 is an enlarged sectional view of the main part of the cell potential measuring probe 1.
  • the cell potential measuring probe 1 is made of a resin !, and a plate 2 made of an insulator such as glass and a sensor element 4 are also configured.
  • a cavity 3 is formed on the upper surface 2 C of the plate 2, and a sensor element 4 is inserted into the cavity 3.
  • At the bottom 3A of the cavity 3, a cavity 6 is formed.
  • the cavity 6 is located below the sensor element 4.
  • the plate 2 is easily formed into a complicated shape by the molding plate 2A and the molding plate 2B bonded to the molding plate 2A.
  • Channels 10, 11 are formed in the form of grooves in the molding plate 2B.
  • Openings 12 and 22 are formed in the shape of through holes in the molding plate 2A, and cavities 3 and 6 connected to each other in the shape of through holes are formed.
  • Cavities 6 are in communication with one openings 10A, 11A of the flow paths 10, 11 leading to the outside of the plate 2, respectively.
  • the other openings 12, 22 of each of the flow channels 10, 11 open into the top surface 2C of the plate 2.
  • the cross-sectional area of channels 10 and 11 is 0.1 mm 2 or more, and with this dimension, channels 10 and 11 can be cleaned easily without clogging.
  • the lower surface 6 A of the cavity 6 is provided with a step 17 that protrudes upward toward the sensor element 4, that is, toward the cavity 6, whereby the cross-sectional area of the flow channels 10 and 11 and the opening at the cavity 6
  • the cross-sectional area in the vicinity of the portions 10A and 11A can be adjusted, and the measurement solution can be moved smoothly in the flow path 10, the cavity 6 and the flow path 11.
  • the sensor element 4 is provided with a support substrate 7 which also functions as silicon or a laminated body of silicon and silicon oxide film. Cavity on the top surface 7A of the support substrate 7 in the same direction as the top surface 2C of the plate 2 5 is provided.
  • the bottom 5 A of the cavity 5 is composed of a thin plate 8.
  • the thin plate 8 is formed with a through hole 9 having a minute hole diameter which communicates the upper surface 8A (bottom 5A of the cavity 5) of the thin plate 8 and the lower surface 8B of the thin plate 8 opposite to the upper surface 8A.
  • One opening 9 A of the through hole 9 is open to the cavity 5, and the other opening 9 B is in communication with the cavity 6 in the plate 2.
  • a measurement electrode 19 which is also made of platinum, gold, silver, silver chloride or the like is provided on the lower surface 7 B of the support substrate 7 of the sensor element 4, that is, on the lower surface 8 B of the thin plate 8.
  • the measurement electrode 19 can be connected to a measurement device outside the probe 1 to detect a signal by connecting an extraction electrode such as a wire wiring or a thin film electrode.
  • the sensor element 4 By bonding the sensor element 4 to the cavity 3 with an adhesive, the sensor element 4 can be securely fixed, and the leakage of the measurement solution that satisfies the flow paths 10 and 11 and the cavity 6 can be completely prevented.
  • the sensor element 4 may be bonded in the cavity 3 by a method such as fusion bonding or ultrasonic bonding.
  • FIG. 7 is a perspective view of the cell potential measurement probe 1.
  • the tube 24 A is connected to the opening 12 of the flow passage 10, and the tube 24 B is connected to the opening 22 of the flow passage 11.
  • the tube 24 B is connected to the suction means 13 and the tube 24 A is connected to the container 15.
  • a valve 23 capable of stopping the flow of a fluid such as a measurement solution is provided as needed.
  • the suction means 13 allows the cavity 6 to have a pressure lower than that of the cavity 5 to provide a reduced pressure atmosphere.
  • the suction means 13 is not particularly limited to a force that can be realized by suction from a person's mouth or the like in addition to a normal pump such as a diaphragm pump or a syringe pump.
  • FIG. 8 is a perspective view for explaining how to use the cell potential measurement probe 1, and the cell potential measurement probe 1 is installed on the measurement rod 25.
  • the cell potential measuring probe 1 is fixed to one end 25 A of the measuring rod 25.
  • the tube 24A connected to the flow path 10 and the tube 24B connected to the flow path 11 and the extraction electrode 19A electrically connected to the measuring electrode 19 are passed, and the measuring rod 25 is passed.
  • the other 25 B force is also drawn out.
  • the extraction electrode 19A is connected to an external measuring device, and the measurement signal is Supply.
  • FIG. 9 is a conceptual diagram of the cell potential measurement probe 1 during use, in which the measuring rod 25 in which the cell potential measurement probe 1 is placed is put in the culture fluid 21 filled in the container 14 and shaken. .
  • the subject cells 20 are suspended in the culture solution 21.
  • the reference electrode 18 is in contact with the culture solution 21, and the potential of the culture solution 21 in the container 14 can be detected.
  • the cell potential measuring probe 1 is placed so that the sensor element 4 is positioned in the culture solution 21 in the container 14.
  • 10 to 14 are cross-sectional views for explaining a method of measuring a cell potential using the cell potential measuring probe 1.
  • the subject cell 20 is suspended above the sensor element 4 in the culture solution 21.
  • the valve 23 is closed, and the flow paths 10, 11 and the cavity 6 are shut off from the container 15. Then, the pressure of the cavity 6 is reduced by suction means 13 so that the pressure is lower than that of the cavity 5. As a result, the culture fluid 21 and the test subject cells 20 filled in the cavity 5 are drawn into the through holes 9, and the culture fluid 21 flows out to the cavity 6. Since the size of the subject cell 20 is larger than the cross-sectional area of the through hole 9, it can not pass through the through hole 9 and is held by the opening 9 A of the through hole 9. The culture fluid 21 contacts the measuring electrode 19 by flowing to the cavity 6, and the potential in the cavity 6 can be detected. In this state, an electrical measurement such as a potential difference between the reference electrode 18 and the measurement electrode 19 and a resistance value can be performed.
  • the culture solution 21 is blocked by the sensor element 4 and is separated into a portion 21A in the cavity 5 and a portion 21B in the cavity 6
  • the resistance between the reference electrode 18 and the measuring electrode 19 increases.
  • the surface of the subject cell 20 is further strongly pressed against the opening 9 A of the through hole 9 as shown in FIG.
  • the resistance between the and the measuring electrode 19 is high.
  • the resistance value at this time is 100 M ⁇ or more, sometimes 1 G Q or more, and it is in a state called Giga Seal.
  • the Gigaseal state when the ion channel activity of the test subject cell 20 exchanges ions between the culture fluid 21 and the test subject cell 20, the internal potential of the test subject cell 20 is Change. The displacement of the internal potential can be detected as the potential difference between the reference electrode 18 and the measurement electrode 19.
  • the ion channel activity of the cell 20 is changed by the drug contained in the culture solution 21, and the drug is detected as the subject cell 20 by detecting this ion channel activity by the potential difference between the reference electrode 18 and the measuring electrode 19. To determine the effect of the drug on the subject cell 20.
  • the potential difference can be measured with high accuracy in the vicinity of the subject cell 20.
  • the cell potential measurement probe 1 can easily capture cells 20 suspended in the culture solution 21 and form a giga-seal state.
  • the upper surface 2 C of the plate 2 and the upper surface 7 A of the support substrate 7 of the sensor element 4 can be supplied directly on the upper surface 7A of the support substrate 7 or in the cavity 5 with a plate pipette or the like.
  • the cells 20 can be easily observed from the top of the upper surface 2C of the plate 2 with a microscope.
  • air bubbles generated around cell 20 can be easily removed, and the drug can be reliably administered to cell 20.
  • the measurement solution 16 in the container 15 is drawn into the flow path 10 and the cavity 6 as shown in FIG. Functions as an injection means for injecting into the flow path 10.
  • the portion 21 B of the culture solution 21 inside the cavity 6 is replaced with the measurement solution 16.
  • the potential change of the subject cell 20 can be detected by forming the reference electrode 18 and the measurement electrode 19 in the vicinity of the openings 9 ⁇ and 9 ⁇ of the through holes 9 respectively by thin film technology or the like.
  • FIG. 15 is a plan view of another cellular potential measurement probe 1A according to the first embodiment. At least a portion of the flow path 1 10, 111 is curved. As a result, the resistance when the fluid flows in the flow channels 110 and 111 is increased, so that the culture fluid 21 and the measurement solution 16 which once entered the cavity 6 may leak out, or air bubbles may be mixed from the outside. Can be prevented.
  • FIG. 16A is an enlarged cross-sectional view of the cell potential measurement probe 1A at line 16-16.
  • the opening 9A opened to the cavity 5 of the through hole 9 is provided with a depression 37A having a diameter larger than the diameter of the through hole 9 so that the subject cell 20 can be captured more reliably.
  • FIG. 16B is an enlarged cross-sectional view of still another cell potential measurement probe 1B according to Embodiment 1.
  • a recess 37B having a diameter larger than the diameter of the through hole 9 is provided in the opening 9B opened to the cavity 6 of the through hole 9. Thereby, the flowability of the culture solution 21 in the cavity 6 and the vicinity of the opening 9 B of the through hole 9 of the measurement solution 16 can be stabilized.
  • the measurement solution 16 can be flowed smoothly by chamfering the steps 117 and the edge portions 117A and 6B of the cavity 6 in a curved shape.
  • the insulating material such as sugar glass, which is the material of the plate 2, may have transparency to transmit visible light.
  • the opening 9 B of the cavity 6 to the through hole 9 can be easily observed with a microscope, and the cell potential can be measured while observing the state of the culture solution 21 or the measurement solution 16 entering the cavity 6 and the presence or absence of air bubbles.
  • the thin plate 8 of the sensor element 4 may also be formed of a transparent material such as a transparent glass that transmits visible light, whereby the lower surface force of the plate 2 also observes the subject cells 20 with a microscope. I can guess.
  • FIG. 17 is a cross-sectional view of a cell potential measurement probe 27 according to Embodiment 2 of the present invention.
  • FIG. 18 is an enlarged sectional view of the sensor element 29 of the cell potential measuring probe 27. As shown in FIG. The same parts as in the embodiment 1 are designated by the same reference numerals and the description thereof is omitted.
  • the cell potential measurement probe 27 is composed of a plate 28 and a sensor element 29.
  • a cavity 83 is formed on the top surface 28C of the plate 28, and a cavity 6 is formed on the bottom surface 83A of the cavity 83.
  • the sensor element 29 is fitted in the cavity 83.
  • the sensor element 29 comprises a support substrate 26.
  • a cavity 32 is formed on the lower surface 26B of the support substrate 26, and a thin plate 30 is formed on the bottom 32A of the cavity 32.
  • the thin plate 30 is formed with a through hole 31 communicating the upper surface 30A and the lower surface 30B of the thin plate 30 (the bottom surface 32A of the cavity 32).
  • the opening 31A of the through hole 31 is the upper surface 30A of the thin plate 30 (the upper surface 26A of the support substrate 26).
  • the opening 31 B of the through hole 31 is opened at the lower surface 30 B of the thin plate 30 and leads to the cavity 32 and the cavity 6.
  • the measuring electrode 19 is formed on the lower surface 30B of the thin plate 30 as required.
  • FIG. 19A is a cross-sectional view for explaining how to use the cell potential measurement probe 27.
  • FIG. 19B is an enlarged sectional view of the cell potential measurement probe 27 shown in FIG. 19A. Similar to the cell potential measurement probe 1 according to the first embodiment shown in FIG. 1, the upper surface 26A of the support substrate 26 of the sensor element 29 is flush with the upper surface 28C of the plate 28, and there is no unevenness. As a result, the subject cells 35 can be observed closer with the microscope 33. The patch probe 34 can be attached to the subject cell 35 while observing with the microscope 33. This makes it possible to measure ion channel activity in a plurality of parts from one subject cell 35.
  • the potential of the patch probe 34 attached to the portion 35A is close to the administration position of the cell 35, and the administration position force is also greater than that of the portion 35A of the cell 35.
  • the potential of the measurement electrode 19 close to the portion 35B of the cell 35 captured at the same time is obtained simultaneously, and the transfer state from the portion 35A to the portion 35B of the ion channel activity in the cell 35 can be detected.
  • plate 28 and thin plate 30 of cell potential measurement probe 27 are made of a transparent material that transmits visible light. Similar effects can be obtained by forming.
  • FIG. 20 is an exploded perspective view of a cell potential measurement probe 501 according to Embodiment 3 of the present invention.
  • FIG. 21 is a cross-sectional perspective view of the cell potential measurement probe 501.
  • FIG. FIG. 22 is an enlarged sectional view of an essential part of the cell potential measuring probe 501.
  • the cell potential measurement probe 501 is composed of a plate 502 made of insulator such as resin or glass, a sensor element 504 and a well array 520.
  • a cavity 503 is formed on the top surface 502C of the plate 502, and a cavity 506 is formed on the bottom surface 503A of the cavity 503.
  • the sensor element 504 is embedded in the cavity 503. Cavity 506 is located below sensor element 504.
  • the cavity 506 is provided with flow channels 509 and 510 leading to the outside.
  • the channel 509 has an opening 511 provided on the top surface 502C of the plate 502, and the channel 510 has an opening 518 provided on the top surface 502C of the plate 502.
  • the channels 509, 510 are connected to the outside of the plate 502.
  • a plate 502 having a complicated shape can be obtained by bonding the preformed molding plate 502B to the preformed molding plate 502A.
  • Channels 509, 510 are formed in the form of grooves in the molding plate 502B.
  • Openings 511 and 518 are formed in the shape of through holes in the molding plate 502A, and caulking 50 3 and 506 forces are formed in the shape of the through holes and connected to each other.
  • the sensor element 504 includes a support substrate 512 and a thin plate 507. As shown in FIG. 22, a cavity 505 is provided below the thin plate 507 (on the lower surface 512B opposite to the upper surface 502C of the plate 502). That is, the bottom surface 505A of the cavity 505 is formed by the thin plate 507.
  • the thin plate 507 is provided with a minute through hole 508 which penetrates the upper surface 507A (the upper surface 512A of the support substrate 512) and the lower surface 507B. The subject cells are held in the opening 508A of the through hole 508 which is open to the top surface 507A of the thin plate 507 (the top surface 512A of the support substrate 512).
  • the pore size of the through hole 508 needs to be smaller than the size of the subject cell. Similar to FIG. 16A, by providing a recess having a diameter larger than the diameter of the through hole 508 at the opening 508A of the through hole 508, the subject cells can be stably and reliably held.
  • the through hole 508 has an opening 508 B that opens to the cavity 505 at the bottom surface 507 B of the thin plate 507 (the bottom surface 505 A of the cavity 505).
  • the opening 508 A of the through hole 508 is in communication with the upper surface 512 A of the support substrate 512 of the sensor element 504, and the opening 508 B is connected with the cavity 506 through the cavity 505. With this structure, liquids such as culture fluid and drug solution can flow through the through holes 508 and the cavities 505 and 506.
  • the thin plate 507 is located at the top, that is, the upper surface 512A of the support substrate 512 is located in the same plane as the upper surface 502C of the plate 502.
  • the cavity 505 may be formed on the upper surface 512 A of the support substrate 5 12 as in the case of the cell potential measurement probe according to the first embodiment shown in FIG.
  • a well array 520 which has a predetermined volume and into which a liquid such as a culture solution or a drug solution can be poured, stored or circulated. Whe Nore array 520 ⁇ Enore 522, 523, 524 force ⁇ formed!
  • a through hole 521A connected to the opening 511 of the flow path 509 is formed.
  • a through hole 521 B connected to a through hole 508 formed in the thin plate 507 of the sensor element 504 is formed on the lower surface 523 A of the well 523.
  • a through hole 521C connected to the opening 518 of the flow passage 510 is formed in the lower surface 524A of the well 524.
  • Openings 522 B, 523 B, and 524 B are provided on the upper surfaces of the wells 522, 523, and 524, respectively, to which a liquid such as a culture solution or a chemical solution is introduced.
  • the reference 514 is provided with a reference electrode 514.
  • a measurement electrode 515 connected to the outside of the plate 502 is provided in the flow path 510.
  • the culture solution containing the subject cells is introduced from the opening 523 B of the well 523, and is aspirated from the opening 524 B of the well 524 by an aspirating means such as a suction pump.
  • an aspirating means such as a suction pump.
  • the culture solution passes through the through holes 508 and is then sucked into the well 524 by passing through the cavities 505, 506, the flow path 510 and the opening 518.
  • aspirating from the well 524 allows sufficient flow of the measurement solution or culture solution in the channels 509, 510 and the cavities 505, 506, and air bubbles contaminate.
  • test solution is injected before the test cells are injected into the well 523, and the test solution is sufficiently spread in the channels 509 and 510, and then the opening 522B of the well 522 is closed. It is desirable to inject the test cells into the well 523 and aspirate the measurement solution from the well 524.
  • the through hole 508 of the sensor element 504 has a pore diameter that does not allow the subject cells to pass, the subject cell is held by the opening 508 A of the through hole 508 and the test object is held by the through hole 508. It can measure the potential of cells.
  • a plurality of through holes 508 are formed in the thin plate 507, whereby the potentials of a plurality of subject cells can be measured collectively at one time.
  • the subject cells block all the through holes 508, the other subject cells remain in the wells 523.
  • the amount of culture fluid flowing into the cavity 505 decreases, and it can be detected that the subject somatic cells are held at the opening 508A of the through hole 508. This can be done by controlling the suction at Well 524 while measuring the flow rate of the culture. This suction operation is the same even if it is performed from the well 522.
  • the chemical solution is supplied from the well 522, and the well 524 force is also sucked by the suction means, whereby the chemical solution passes through the through hole 521 A, and the opening 511 , Flow channel 509, cavity 506, cavity 505, flow channel 510, and opening 518, and then drawn into well 524.
  • the drug solution also contacts the test subject cells trapped at the opening 508A of the through hole 508 with the force of the opening 508B of the through hole 508, and the subject cells react with the drug solution.
  • the potential of the subject's cells can be measured via the reference electrode 514 in contact with the culture solution in the well 523 and the measurement electrode 515 in contact with the drug solution in the flow channel 510.
  • another fluid such as a culture solution or a drug solution can be introduced into the region where the subject cells are present, ie, the region where the well 523 and the measurement electrode 515 are present, ie, the flow channel 510. Also, by aspirating the solution between the wells 522 and 524, it is possible to easily replace the type of solution in the cavities 505, 506.
  • the well 520 consists of three wells 522, 523, and 524 and the method using them has been described, after the subject cells are held in the micro through holes 508, the wells are replaced with a medium instead of the culture fluid. If it is only necessary to measure the cell potential by injecting a drug solution from gel 523, it can be measured with only 2 wells (eg, wells 523 and 524).
  • the plate 502 By bringing the top surface 502 C of the plate 502 into close contact with the bottom surface 520 A of the well array 520, the plate 502 can be reliably sealed by the well array 520, so that liquid leakage and the like can be surely prevented.
  • the way array 520 By forming the way array 520 with the same material as the plate 502, deformation due to the difference in expansion coefficient between the way array 520 and the plate 502 can be prevented, and the plate 502 can be more reliably sealed by the well array 520.
  • thermoplastic resin such as polystyrene, cycloolefin polymer, cycloolefin copolymer, etc.
  • ultrasonic fusion or laser welding can ensure cell sealing with reliable sealing and high productivity.
  • the potential measurement probe 501 can be manufactured.
  • the well array 520 and the plate 502 may be formed of a glass or quartz material. These materials can be directly joined without using adhesive if they are mirror polished surfaces. Alternatively, since these materials have high heat resistance, they can be bonded with an inorganic adhesive material such as a glass adhesive or a ceramic adhesive.
  • the well array 520 and plate 50 2 thus constructed are excellent in heat resistance, and therefore, they can be reused by heating and washing.
  • the tube 501 is obtained.
  • FIG. 21 the lower surfaces 522A, 523A, 524A of the lower surfaces of the hollows 522, 523, 524 [through holes 521A, 521B, 521C formed respectively] are at least through holes 521B.
  • the opening 523 B may have a shape expanding toward the opening 523 B, that is, a shape that narrows toward the through hole 508 of the sensor element 504.
  • the culture solution, the chemical solution and the like to be added to the well 523 can be quickly made to penetrate the through holes 508 of the sensor element 504.
  • the subject cells can be efficiently drawn into the through hole 508.
  • a well 523 for feeding a culture solution containing a test subject cell a well 522 for feeding a drug solution, and a well 524 connected to suction means are formed.
  • the subject cells can be easily held on the upper surface 502C of the plate 502, and it is possible to operate the probe 501 easily at the time of measurement since all the feeding of the drug solution and the like can be performed independently from the top of the well array 520. .
  • the size of the through hole 521A of the well 522 is made larger than the opening 511 of the flow passage 509, and the size of the through hole 521C of the well 524 is made larger than the opening 518 of the flow passage 510.
  • a liquid such as a drug solution can be rapidly introduced into the flow path, and a cell potential measuring probe 501 capable of measuring cell potential with high accuracy and little variation can be obtained.
  • a reference electrode 514 is placed at a predetermined position in the well 523 in contact with the culture solution.
  • a measurement electrode 515 is provided in the flow path 510 and contacts a liquid such as a culture solution or a drug solution in the flow path 510. This makes it possible to measure changes in the cell potential of the subject somatic cells in the culture solution and changes in the cell potential of the subject somatic cells after the liquid such as the drug solution has been injected from the wells 522 or 523.
  • the measurement electrode 515 may be provided in the vicinity of the cavity 505 or the cavity 506.
  • the reference electrode 514 and the measurement electrode 515 can be formed by wire wiring or a thin film electrode, and the probe 5
  • It can be connected to an external measuring instrument 01 to detect the signal from the electrode.
  • well 523 is charged with the culture solution containing the subject cells, and then well 522 or The subject cells are held in the through holes 508 of the sensor element 504 by suction from the EL 524 by suction means.
  • the resistance value between the reference electrode 514 provided in the well 523 and in contact with the culture solution and the measurement electrode 515 provided in the flow path 510 is measured.
  • the resistance value between the electrodes 514 and 515 is determined by controlling the suction pressure of the suction means so that the resistance value between the culture fluid stored in the well 523 and the culture fluid stored in the flow channel 510 is 100 M ⁇ or more. Become.
  • the reference electrode 514 and the measurement electrode 515 can be made of a conductive material such as Au, Ag, AgCl, etc., and an electrical connection can be obtained by contacting with a culture solution. Therefore, the positions where the electrodes 514, 515 are disposed are not limited to the above positions.
  • the culture solution in the flow path 509, the cavity 505, the cavity 506, and the flow path 510 is replaced with the measurement solution.
  • different types of culture fluid and measurement solution can be easily introduced into the area of wells 523 in which cells are present and the area of cavities 506 in which measurement electrodes 515 are present, and cell potential can be measured more quickly.
  • the cell potential can be measured similarly by reversing the functions of WELL 522 and WELL 524.
  • valves or lids on the wells 522, 523, 524, the measurement by the probe 501 can be controlled more easily.
  • FIG. 23 is an exploded perspective view of another cell potential measurement probe 519 (cell potential measurement probe array 5 19) according to the third embodiment.
  • Cell potential measurement probes 501 are arranged in a matrix of 4 rows ⁇ 8 rows.
  • a plurality of well arrays 520, in which wells 522, 523 and 524 are respectively formed at positions corresponding to the plurality of plates 520, are collectively fabricated as hole array unit 520A.
  • the cell potential measurement probe array 519 in which a plurality of cell potential measurement probes 501 are arranged in a predetermined format can use a robot or the like for drug solution injection 'cell input' suction etc.
  • the potential of a large number of subject cells can be measured over time, and candidate drugs can be rapidly screened for their pharmacological effects.
  • the cell potential measuring probe according to the present invention can measure the potential of cells suspended in a solution in an environment as it is, and can be used for drug screening by determining the pharmacological effect on cells.

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Abstract

 細胞電位測定プローブは、底面を有する第1のキャビティが表面に形成されたプレートと、第1のキャビティ内に配置されたセンサ素子とを備える。第1のキャビティの底面に第2のキャビティが形成される。第2のキャビティに開口する第1の開口部とプレートの外部に開口する第2の開口部とを有する第1の流路がプレート内に形成される。センサ素子は、薄板と、薄板の周囲に設けられてプレートの第1のキャビティに配置された支持基板とを有する。薄板には第1の開口部と、プレートの第2のキャビティに連結する第2の開口部とを貫通する貫通孔が形成される。第1の流路は流体を流すことができ、吸引手段が流路の第2の開口部に接続されて第1の流路内を流れる流体を吸引できる。この細胞電位測定プローブは、溶液内に浮遊する細胞の電位をそのままの環境で測定できる。

Description

明 細 書
細胞電位測定プローブ
技術分野
[0001] 本発明は、細胞の活動によって発生する物理ィ匕学的変化を測定するために用いら れる、細胞内電位あるいは細胞外電位等の細胞電位を測定するための細胞電位測 定プローブに関する。 背景技術
[0002] 細胞の電気的活動を指標にしながら薬理効果のある薬剤を候補薬剤力 スクリー ニングする従来の方法としてノツチクランプ法が知られて ヽる。ノツチクランプ法は、 微細な先端を持つ中空ガラス管を直接、細胞に搾入して細胞内外の電位差を測定 する方法で <7こと は、 Single channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle nbers. Nature 260 : 799— 802、Neh er E & Sakmann B、 1976)、これによつて、細胞膜に存在するイオンチャネル の活動状態を精度よく測定できる。
[0003] また、国際公開第 02Z055653号公報には、細胞の保持手段を有した基板および これに設けられた電極によって細胞外電位を測定する細胞外電位測定デバイスと方 法が開示されている。この方法では、ノツチクランプ法で得られるデータと同等の高 品質なデータが得られ、簡易に高速で大量の試料を測定できる。
[0004] 図 24は上記の細胞外電位測定デバイスの断面図である。容器 50内に培養液 51 が入れられ、被験体細胞 52は基板 53に設けられた保持手段によって捕捉されて保 持されている。この保持手段は基板 53に形成された窪み 54、開口部 55、および窪 み 54に連絡する貫通孔 56により構成されて 、る。容器 50の中には参照電極 58が配 置されている。貫通孔 56の周辺にはセンシング手段である測定電極 57が配置され ており、測定電極 57は配線を経て外部の信号検出部に連結されている。
[0005] 被験体細胞 52は貫通孔 56を通して外部から吸引ポンプなどの手段により吸引され て窪み 54に密着して保持される。被験体細胞 52の活動により発生する電気信号は 容器 50中の培養液 51側に漏れることなぐ貫通孔 56に設けられた測定電極 57と参 照電極 58との電位差として検出される。
[0006] 上述の従来のデバイスは、窪み 54および貫通孔 56が形成された基板 53と、この上 部に設けられた、培養液および薬液を投入'蓄積するための容器 50を有している。よ つて、十分容量の大きい空間内に存在する溶液内の浮遊細胞をそのままの環境で 測定することはできない。
[0007] また、従来のデバイスでは、基板 53によって隔てられた 2つの領域、つまり被験体 細胞 52側の領域と、測定電極 57側の領域とに互いに異なる種類の培養液や薬液を それぞれ導入できない。
発明の開示
[0008] 細胞電位測定プローブは、底面を有する第 1のキヤビティが表面に形成されたプレ ートと、第 1のキヤビティ内に配置されたセンサ素子とを備える。第 1のキヤビティの底 面に第 2のキヤビティが形成される。第 2のキヤビティに開口する第 1の開口部とプレ ートの外部に開口する第 2の開口部とを有する第 1の流路がプレート内に形成される 。センサ素子は、薄板と、薄板の周囲に設けられてプレートの第 1のキヤビティに配置 された支持基板とを有する。薄板には第 1の開口部と、プレートの第 2のキヤビティに 連結する第 2の開口部とを貫通する貫通孔が形成される。第 1の流路は流体を流す ことができ、吸引手段が流路の第 2の開口部に接続されて第 1の流路内を流れる流 体を吸引できる。
[0009] この細胞電位測定プローブは、溶液内に浮遊する細胞の電位をそのままの環境で 測定できる。
図面の簡単な説明
[0010] [図 1]図 1は本発明の実施の形態 1における細胞電位測定プローブの斜視図である。
[図 2]図 2は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの分解斜視図である。
[図 3]図 3は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面斜視図である。
[図 4]図 4は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの拡大断面斜視図である。
[図 5]図 5は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 6]図 6は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの拡大断面図である。
[図 7]図 7は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの斜視図である。 [図 8]図 8は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの使用方法を説明するた めの斜視図である。
[図 9]図 9は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの概念図である。
[図 10]図 10は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 11]図 11は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 12]図 12は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 13]図 13は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 14]図 14は実施の形態 1における細胞電位測定プローブの断面図である。
[図 15]図 15は実施の形態 1における他の細胞電位測定プローブの平面図である。
[図 16A]図 16Aは図 15に示す細胞電位測定プローブの拡大断面図である。
[図 16B]図 16Bは実施の形態 1によるさらに他の細胞電位測定プローブの拡大断面 図である。
[図 17]図 17は本発明の実施の形態 2における細胞電位測定プローブの断面図であ る。
[図 18]図 18は実施の形態 2における細胞電位測定プローブの拡大断面図である。
[図 19A]図 19Aは実施の形態 2における細胞電位測定プローブの使用方法を説明 するための断面図である。
[図 19B]図 19Bは図 19Aに示す細胞電位測定プローブの拡大断面図である。
[図 20]図 20は本発明の実施の形態 3による細胞電位測定プローブの分解斜視図で ある。
[図 21]図 21は実施の形態 3による細胞電位測定プローブの断面斜視図である。
[図 22]図 22は実施の形態 3による細胞電位測定プローブの拡大断面図である。
[図 23]図 23は実施の形態 3による細胞電位測定プローブアレイの斜視図である。
[図 24]図 24は従来の細胞外電位測定プローブの断面図である。
符号の説明
1 細胞電位測定プローブ
2 プレート
2A 成型プレート 成型プレート
キヤビティ(第 1のキヤビティ) センサ素子
キヤビティ(第 3のキヤビティ) キヤビティ(第 2のキヤビティ) 支持基板
薄板
貫通孔
流路 (第 2の流路)A 開口部(第 1の開口部) 流路 (第 1の流路)A 開口部(第 1の開口部) 開口部 (第 2の開口部) 吸引手段
容器 (注入手段) 測定溶液
段差
参照電極 (第 1の電極) 測定電極 (第 2の電極) 被験体細胞
培養液
開口部 (第 2の開口部) 弁
支持基板
細胞電位測定プローブ プレート
センサ素子
薄板 貫通孔
キヤビティ
顕微鏡
パッチプローブ
被験体細胞
培養液
, 37B 窪み
段差
細胞電位測定プローブ プレート
キヤビティ(第 1のキヤビティ) センサ素子
キヤビティ(第 3のキヤビティ) キヤビティ(第 2のキヤビティ) 薄板
貫通孔
流路 (第 2の流路) 流路 (第 1の流路) 開口部 (第 2の開口部) 支持基板
参照電極 (第 1の電極) 測定電極 (第 2の電極) 開口部 (第 2の開口部) 細胞電位測定プローブアレイ ゥエルアレイ
A 貫通孔
B 貫通孔
C 貫通孔 522 ウエノレ
523 ウエノレ
524 ウエノレ
発明を実施するための最良の形態
[0012] (実施の形態 1)
図 1は本発明の実施の形態 1における細胞電位測定プローブ 1の斜視図である。図 2は細胞電位測定プローブ 1の分解斜視図である。図 3は細胞電位測定プローブ 1の 断面斜視図である。図 4は細胞電位測定プローブ 1の拡大断面斜視図である。図 5 は細胞電位測定プローブ 1の断面図である。図 6は細胞電位測定プローブ 1の要部 拡大断面図である。細胞電位測定プローブ 1は榭脂ある!、はガラスなどの絶縁体より なるプレート 2とセンサ素子 4力も構成されている。プレート 2の上面 2Cにはキヤビティ 3が形成されており、キヤビティ 3の内部にはセンサ素子 4がはめ込まれている。キヤ ビティ 3の底面 3Aにはキヤビティ 6が形成されている。センサ素子 4の下部にはキヤビ ティ 6が位置する。
[0013] プレート 2は成型プレート 2Aと成型プレート 2Aに貼り合わされた成型プレート 2Bよ りなり、容易に複雑な形状に形成できる。成型プレート 2Bには溝の形状で流路 10、 1 1が形成される。成型プレート 2Aには貫通孔の形状で開口部 12、 22が形成され、貫 通孔の形状で互いに連結したキヤビティ 3、 6が形成されて 、る。
[0014] キヤビティ 6にはプレート 2の外部に通じる流路 10、 11のそれぞれの一方の開口部 10A、 11Aが連通している。流路 10、 11のそれぞれの他方の開口部 12、 22はプレ ート 2の上面 2Cに開口する。流路 10、 11の断面積は 0. 01mm2以上であり、この寸 法により流路 10、 11は詰まりにくぐ容易に清掃できる。
[0015] キヤビティ 6の下面 6Aには、センサ素子 4に向かってすなわちキヤビティ 6に向かつ て上方に突出する段差 17が設けられ、これにより流路 10、 11の断面積とキヤビティ 6 での開口部 10A、 11A近傍の断面積を調整することができ、測定溶液を流路 10、キ ャビティ 6、流路 11でスムースに移動させることができる。
[0016] センサ素子 4はシリコンあるいはシリコンとシリコン酸ィ匕膜との積層体力もなる支持基 板 7を備える。プレート 2の上面 2Cと同じ向きの支持基板 7の上面 7Aにはキヤビティ 5が設けられている。キヤビティ 5の底面 5Aは薄板 8で構成されている。薄板 8には薄 板 8の上面 8A (キヤビティ 5の底面 5A)と上面 8Aの反対側の薄板 8の下面 8Bとを連 通する微小な孔径を有する貫通孔 9が形成されている。貫通孔 9の一方の開口部 9A はキヤビティ 5に開口し、他方の開口部 9Bはプレート 2内のキヤビティ 6に連通してい る。
[0017] センサ素子 4の支持基板 7の下面 7B、すなわち薄板 8の下面 8B上には白金、金、 銀、塩ィ匕銀など力もなる測定電極 19が設けられている。測定電極 19はワイヤ配線、 薄膜電極などの引き出し電極を接続することにより、プローブ 1の外部の測定器へ接 続されて信号を検出することができる。
[0018] キヤビティ 3にセンサ素子 4を接着剤による接合することにより確実に固定でき、流 路 10、 11、キヤビティ 6を満たす測定溶液の漏れを完全に防止できる。なお、センサ 素子 4は融着、超音波接合などの方法によってキヤビティ 3内に接合しても良い。
[0019] 図 7は細胞電位測定プローブ 1の斜視図である。流路 10の開口部 12にはチューブ 24Aが接続され、流路 11の開口部 22にはチューブ 24Bが接続されている。チュー ブ 24Bは吸引手段 13に接続され、チューブ 24Aは容器 15に接続されている。容器 15と開口部 12の間には必要に応じて測定溶液等の流体の流動を止めることができ る弁 23が設けられている。吸引手段 13によってキヤビティ 6はキヤビティ 5より圧力を 低く減圧雰囲気にできる。吸引手段 13はダイヤフラムポンプ、シリンジポンプなど通 常のポンプの他に人の口による吸引などにより実現できる力 特にこれらに限定され ない。
[0020] 次に、細胞電位測定プローブ 1を用いて細胞電位を測定する方法にっ 、て説明す る。
[0021] 図 8は細胞電位測定プローブ 1の使用方法を説明するための斜視図であり、細胞 電位測定プローブ 1が測定棒 25に設置されている。測定棒 25の一端 25Aには細胞 電位測定プローブ 1が固定されている。測定棒 25の内部には、流路 10に接続された チューブ 24Aと流路 11に接続されたチューブ 24Bと、測定電極 19と電気的に接続さ れている引き出し電極 19Aが通り、測定棒 25の他端 25B力も外部に引き出されてい る。引き出し電極 19Aは外部に設けられた測定器に接続され、測定信号を測定器に 供給する。
[0022] 図 9は細胞電位測定プローブ 1の使用中の概念図であり、容器 14に充填されてい る培養液 21中に細胞電位測定プローブ 1を設置された測定棒 25が入れられて ヽる 。培養液 21中には被験体細胞 20が浮遊している。容器 14内では参照電極 18が培 養液 21に接しており、容器 14内の培養液 21の電位を検出できる。細胞電位測定プ ローブ 1は容器 14内の培養液 21内にセンサ素子 4が位置するように設置されて 、る
[0023] 図 10〜図 14は細胞電位測定プローブ 1を用いて細胞電位を測定する方法を説明 するための断面図である。
[0024] 図 10では、培養液 21内のセンサ素子 4の上部で被験体細胞 20が浮遊している。
[0025] 次に、図 11に示すように、弁 23が閉じられて流路 10、 11およびキヤビティ 6は容器 15と遮断されている。そして吸引手段 13によってキヤビティ 6を減圧して、キヤビティ 5 より圧力を低くする。これにより、キヤビティ 5に充填されている培養液 21および被験 体細胞 20が貫通孔 9へ引き込まれ、培養液 21はキヤビティ 6へ流れ出す。被験体細 胞 20はその大きさが貫通孔 9の断面積より大きいので貫通孔 9を通り抜けることがで きず、貫通孔 9の開口部 9Aで保持される。培養液 21はキヤビティ 6へ流れることによ り測定電極 19と接触し、キヤビティ 6内の電位を検出できる。この状態で、参照電極 1 8と測定電極 19との電位差および抵抗値'容量値などの電気的な測定を行うことがで きる。
[0026] 被験体細胞 20が貫通孔 9の開口部 9Aに保持されると、培養液 21はセンサ素子 4 により遮断されてキヤビティ 5内の部分 21Aとキヤビティ 6内の部分 21Bに分離し、参 照電極 18と測定電極 19との間の抵抗値は上昇する。
[0027] その後、さらに吸引手段 13によりキヤビティ 6を減圧すると図 12に示すように被験体 細胞 20の表面は貫通孔 9の開口部 9Aにさらに強く押しつけられ、単に保持されるよ り参照電極 18と測定電極 19との間の抵抗値は高くなる。このときの抵抗値は 100M Ω以上、時には 1G Q以上となり、ギガシール (Giga— Seal)と呼ばれる状態となる。 ギガシール状態にぉ 、て、被験体細胞 20のイオンチャネル活動によって培養液 21 と被験体細胞 20内との間でイオンの交換が行われると被験体細胞 20の内部電位が 変化する。内部電位の変位は参照電極 18と測定電極 19との電位差として検出でき る。
[0028] 細胞 20のイオンチャネル活動は培養液 21に含まれる薬剤によって変化し、このィ オンチャネル活動を参照電極 18と測定電極 19との電位差によって検出することによ つて薬剤が被験体細胞 20に与える影響を知る、つまり、被験体細胞 20に対する薬 剤の薬理効果を判定できる。
[0029] なお、参照電極 18、測定電極 19をそれぞれ貫通孔 9の開口部 9A、 9B付近に設け ることにより被験体細胞 20の近傍で電位差を高精度に測定できる。
[0030] 細胞電位測定プローブ 1は、培養液 21に浮遊して ヽる細胞 20を容易に捕捉しギガ シール状態を形成できる。
[0031] プレート 2の上面 2Cとセンサ素子 4の支持基板 7の上面 7Aとを同一面とすることに より、図 13に示すように、被験体細胞 20を含む培養液 21をセンサ素子 4の支持基板 7の上面 7A上やキヤビティ 5内にプレートピペット等で直接供給できる。これにより、 プレート 2の上面 2Cの上部より顕微鏡により細胞 20を容易に観測できる。さらに、細 胞 20の周辺で発生する気泡を容易に除去でき、薬剤を確実に細胞 20に投与できる
[0032] 図 12に示したギガシール状態で弁 23を開くと、図 14に示すように、容器 15内にあ る測定溶液 16が流路 10およびキヤビティ 6へ引き込まれ、容器 15は測定溶液 16を 流路 10に注入する注入手段として機能する。流路 11を吸引手段 13により減圧する ことでキヤビティ 6の内部の培養液 21の部分 21Bは測定溶液 16に置換えられる。測 定溶液 16として高 、K+濃度の溶液を用いることで、被験体細胞 20の電位変化をよ り正確に検出できる。
[0033] 貫通孔 9の開口部 9Α、 9Βの近傍に参照電極 18および測定電極 19を薄膜技術な どによってそれぞれ形成することにより、被験体細胞 20の電位変化を検出できる。
[0034] 図 15は実施の形態 1による他の細胞電位測定プローブ 1Aの平面図である。流路 1 10、 111の少なくとも一部が曲がっている。これにより、流路 110、 111を流体が流れ る際の抵抗が大きくなるので、一度キヤビティ 6内に進入した培養液 21や測定溶液 1 6が外部に漏れ出したり、外部より気泡が混入したりすることを防止できる。 [0035] 図 16Aは細胞電位測定プローブ 1Aの線 16— 16における拡大断面図である。貫 通孔 9のキヤビティ 5に開口する開口部 9Aには貫通孔 9の孔径より大きい径の窪み 3 7Aが設けられており、被験体細胞 20をより確実に捕捉できる。
[0036] 図 16Bは実施の形態 1によるさらに他の細胞電位測定プローブ 1Bの拡大断面図 である。細胞電位測定プローブ 1Bでは、貫通孔 9のキヤビティ 6に開口する開口部 9 Bに貫通孔 9の孔径より大きな径の窪み 37Bが設けられている。これにより、キヤビテ ィ 6内の培養液 21や測定溶液 16の貫通孔 9の開口部 9B付近での流動性を安定さ せることができる。
[0037] 図 16A、図 16Bに示すように、段差 117およびキヤビティ 6のエッジ部 117A、 6Bを 曲面状に面取りすることにより測定溶液 16をスムースに流すことができる。
[0038] プレート 2の材料である榭脂ゃガラスなどの絶縁性材料は可視光を透過させる透明 性を有してもよい。これによりキヤビティ 6から貫通孔 9の開口部 9Bを顕微鏡で容易に 観測でき、培養液 21や測定溶液 16のキヤビティ 6への進入状態や気泡の有無など を観察しながら細胞電位を測定できる。
[0039] さらに、センサ素子 4の薄板 8も榭脂ゃガラスなどの可視光を透過させる透明な材 料で形成してもよい、これにより、プレート 2の下面力も顕微鏡で被験体細胞 20を観 察できる。
[0040] (実施の形態 2)
図 17は本発明の実施の形態 2における細胞電位測定プローブ 27の断面図である 。図 18は細胞電位測定プローブ 27のセンサ素子 29の拡大断面図である。実施の形 態 1と同じ部分は同じ参照符号を付して説明を省略する。
[0041] 細胞電位測定プローブ 27はプレート 28とセンサ素子 29により構成されている。プ レート 28の上面 28Cにはキヤビティ 83が形成され、キヤビティ 83の底面 83Aにはキ ャビティ 6が形成されている。キヤビティ 83にはセンサ素子 29がはめ込まれている。 センサ素子 29は支持基板 26を備える。支持基板 26の下面 26Bにキヤビティ 32が形 成され、キヤビティ 32の底面 32Aには薄板 30が形成されている。薄板 30には薄板 3 0の上面 30Aと下面 30B (キヤビティ 32の底面 32A)とを連通する貫通孔 31が形成さ れている。貫通孔 31の開口部 31Aは薄板 30の上面 30A (支持基板 26の上面 26A )で開口して外方に通じている。貫通孔 31の開口部 31Bは薄板 30の下面 30Bで開 口してキヤビティ 32およびキヤビティ 6に通じている。これにより貫通孔 31はプレート 2 8内に設けられたキヤビティ 6を介して流路 10、 11に通じている。必要に応じて薄板 3 0の下面 30B上に測定電極 19が形成される。
[0042] 図 19Aは細胞電位測定プローブ 27の使用方法を説明するための断面図である。
図 19Bは図 19Aに示す細胞電位測定プローブ 27の拡大断面図である。図 1に示す 実施の形態 1による細胞電位測定プローブ 1と同様に、センサ素子 29の支持基板 26 の上面 26Aはプレート 28の上面 28Cと同一平面であり、凸凹がない。これにより、顕 微鏡 33で被験体細胞 35をより接近して観察できる。顕微鏡 33により観測しながらパ ツチプローブ 34を被験体細胞 35にアタッチさせることができる。これにより、一つの被 験体細胞 35から複数の部分におけるイオンチャネル活動を測定できる。例えば、薬 剤を培養液 36の中に投与したとき、細胞 35の投与位置に近 、部分 35Aにアタッチ させたパッチプローブ 34の電位と、細胞 35の部分 35Aより投与位置力も遠 、貫通孔 31に捕捉された細胞 35の部分 35Bに近い測定電極 19の電位が同時に得られ、細 胞 35でのイオンチャネル活動の部分 35Aから部分 35Bへの伝達状態を検出できる
[0043] なお、実施の形態 1による細胞電位測定プローブ 1のプレート 2や支持基板 7と同様 に、細胞電位測定プローブ 27のプレート 28や薄板 30を、可視光を透過させる透明 性を有する材料で形成することで同様の効果が得られる。
[0044] (実施の形態 3)
図 20は本発明の実施の形態 3における細胞電位測定プローブ 501の分解斜視図 である。図 21は細胞電位測定プローブ 501の断面斜視図である。図 22は細胞電位 測定プローブ 501の要部拡大断面図である。細胞電位測定プローブ 501は榭脂ある いはガラスなどの絶縁体よりなるプレート 502とセンサ素子 504とゥエルアレイ 520か ら構成している。プレート 502の上面 502Cにはキヤビティ 503が形成され、キヤビテ ィ 503の底面 503Aにはキヤビティ 506が形成されている。キヤビティ 503にはセンサ 素子 504がはめ込まれている。キヤビティ 506はセンサ素子 504の下部に位置してい る。 [0045] キヤビティ 506には外方へ通じる流路 509、 510が設けられている。流路 509はプ レート 502の上面 502Cに設けた開口部 511を有し、流路 510はプレート 502の上面 502Cに設けた開口部 518を有する。流路 509、 510はプレート 502の外部と接続さ れている。予め成形された成型プレート 502Aに、予め成型された成型プレート 502 Bを貼り合わせることで複雑な形状を有するプレート 502が得られる。成型プレート 50 2Bには溝の形状で流路 509、 510が形成される。成型プレート 502Aには貫通孔の 形状で開口部 511、 518が形成され、貫通孔の形状で互いに連結したキヤビティ 50 3、 506力形成されて!/、る。
[0046] センサ素子 504は支持基板 512と薄板 507よりなり、図 22に示すように、薄板 507 の下方(プレート 502の上面 502Cと反対側の下面 512B側)にキヤビティ 505が設け られている。つまり、キヤビティ 505の底面 505Aは薄板 507で形成される。薄板 507 には上面 507A (支持基板 512の上面 512A)と下面 507Bを貫通する微小貫通孔 5 08が設けられている。貫通孔 508の、薄板 507の上面 507A (支持基板 512の上面 512A)に開口する開口部 508Aに被験体細胞が保持される。貫通孔 508の孔径は 被験体細胞の大きさよりも小さいことが必要である。図 16Aと同様に、貫通孔 508の 開口部 508Aに貫通孔 508の孔径より大きな径の窪みを設けることにより被験体細胞 を安定して確実に保持できる。貫通孔 508は薄板 507の下面 507B (キヤビティ 505 の底面 505A)でキヤビティ 505に開口する開口部 508Bを有する。貫通孔 508の開 口部 508Aはセンサ素子 504の支持基板 512の上面 512Aに通じ、開口部 508Bは キヤビティ 505を介してキヤビティ 506と連結している。この構造により、貫通孔 508、 キヤビティ 505、 506を通って培養液、薬液などの液体が流動できる。
[0047] センサ素子 504では、薄板 507が上部に位置する、すなわち支持基板 512の上面 512Aがプレート 502の上面 502Cと同一平面内に位置する。これに対し、図 6に示 す実施の形態 1による細胞電位測定プローブと同様に、キヤビティ 505が支持基板 5 12の上面 512Aに形成されてもよ!、。
[0048] プレート 502の上面 502A上には所定の容量を有し、培養液、薬液などの液体を投 入したり、蓄えたり、循環させることができるゥエルアレイ 520が配置されている。ゥェ ノレアレイ 520ίまウエノレ 522、 523、 524力 ^形成されて!ヽる。ウエノレ 522の下面 522Αに は流路 509の開口部 511に連結した貫通孔 521Aが形成されている。ゥエル 523の 下面 523Aには、センサ素子 504の薄板 507に形成された貫通孔 508に連結した貫 通孔 521Bが形成されている。ゥエル 524の下面 524Aには、流路 510の開口部 51 8に連結した貫通孔 521Cが形成されている。ゥエル 522、 523、 524の上面には培 養液、薬液などの液体を投入する開口部 522B、 523B、 524Bが設けられている。ゥ エル 523には参照電極 514が設けられている。流路 510内にはプレート 502の外部 に繋がる測定電極 515が設けられて 、る。
[0049] 被験体細胞を含有した培養液をゥエル 523の開口部 523Bから投入し、ゥエル 524 の開口部 524Bから吸引ポンプなどの吸引手段によって吸引する。これによつて培養 液は貫通孔 508を通過し、その後キヤビティ 505、 506、流路 510および開口部 518 を通過することによりゥエル 524へ吸引される。または、ゥエル 522へ測定液または培 養液を投入後、ゥエル 524から吸引することによって、流路 509、 510およびキヤビテ ィ 505、 506には十分な測定液または培養液が行き渡り、気泡が混入することが少な くなるため、測定をより正確に行いやすい。なお、この場合は、ゥエル 523に被験体 細胞を投入する前に測定液を投入し、流路 509, 510内に測定液を十分行き渡らせ たのちにゥエル 522の開口部 522Bを閉じ、この後、被検体細胞をゥエル 523に投入 してゥエル 524から測定液の吸引を行うことが望ましい。
[0050] センサ素子 504の貫通孔 508が被験体細胞を通過させな 、孔径を有することで、 被験体細胞は貫通孔 508の開口部 508Aで保持され、貫通孔 508で保持された被 験体細胞の電位を測定できる。実施の形態 3では、薄板 507には複数の貫通孔 508 が形成されており、これにより一度に複数の被験体細胞の電位を一括して測定できる 。被験体細胞が全ての貫通孔 508を塞ぐと、それ以外の被験体細胞はゥエル 523中 にとどまる。これにより、培養液がキヤビティ 505に流入する量が少なくなり、貫通孔 5 08の開口部 508Aに被験体細胞が保持されたことを検知できる。この作業は培養液 の流量を測定しながらゥエル 524での吸引力を制御することによって行うことができる 。なお、この吸引動作はゥエル 522から行っても同じである。
[0051] ゥエル 523の開口部 523Bを閉じた後、ゥエル 522から薬液を投入してゥエル 524 力も吸引手段により吸引することによって薬液が貫通孔 521Aを通過し、開口部 511 、流路 509、キヤビティ 506、キヤビティ 505、流路 510および開口部 518を通過して 、ゥエル 524へ吸引される。このとき、貫通孔 508の開口部 508Aでトラップされてい る被験体細胞に貫通孔 508の開口部 508B力も薬液が接触して、被験体細胞が薬 液に反応する。反応したとき被験体細胞の電位を、ゥエル 523内の培養液に接触し ている参照電極 514と、流路 510内の薬液に接触している測定電極 515とを介して 測定できる。
[0052] 細胞電位測定プローブ 501では、被験体細胞が存在する領域すなわちゥエル 523 と測定電極 515が存在する領域すなわち流路 510にそれぞれ、培養液や薬液など の別の液体を導入できる。また、ゥエル 522とゥエル 524間で溶液を吸引させれば、 キヤビティ 505, 506内の溶液の種類を置換することが容易にできる。
[0053] なお、ゥエル 520は三個のゥエル 522、 523、 524よりなり、これらを用いる方法を説 明してきたが、被験体細胞を微小貫通孔 508に保持した後、培養液の代わりにゥェ ル 523より薬液を投入して、細胞電位の測定を行うだけでよい場合は、 2個のゥエル( 例えばゥエル 523とゥエル 524)だけで測定することができる。
[0054] プレート 502の上面 502Cとゥエルアレイ 520の底面 520Aに密着させることでプレ ート 502をゥエルアレイ 520で確実に封止できるので、液漏れなどを確実に防止でき る。
[0055] ウェイアレイ 520をプレート 502と同じ材質で形成することでウェイアレイ 520とプレ ート 502の膨張係数の違いによる変形を防止でき、プレート 502をゥエルアレイ 520 でより確実に封止できる。
[0056] ゥエルアレイ 520とプレート 502をポリスチレン、シクロォレフインポリマー、シクロォ レフィンコポリマーなどの熱可塑性榭脂で形成することにより、超音波融着ゃレーザ 溶着によって確実な封止と高い生産性で細胞電位測定プローブ 501を製造できる。
[0057] ゥエルアレイ 520とプレート 502をガラス、石英の材料で形成してもよい。これらの材 料は鏡面研磨した表面同士であれば、接着剤を使わずに直接接合できる。あるいは 、これら材料は耐熱性が高いため、ガラス接着剤やセラミック接着剤などの無機系接 着材料で接合することができる。このように構成されたゥエルアレイ 520とプレート 50 2は耐熱性に優れて 、るため加熱洗浄による再利用が可能な細胞電位測定プロ一 ブ 501が得られる。
[0058] 図 21【こ示すよう【こ、ウエノレ 522、 523、 524の下面 522A、 523A, 524A【こそれぞ れ形成された貫通孔 521A、 521B、 521Cのうちの少なくとも貫通孔 521Bを、ゥエル 523の開口部 523Bに向かって広がる形状、すなわちセンサ素子 504の貫通孔 508 に向カゝつて狭まる形状に形成しても良い。これにより、ゥエル 523に投入する培養液 や薬液などを速やかにセンサ素子 504の貫通孔 508へ浸透させることができる。
[0059] 図 21に示すように、貫通孔 521Bの大きさを、貫通孔 508を形成した薄板 507よりも 大きくすることにより、貫通孔 508へ被験体細胞を効率よく引き込むことができる。
[0060] また、ゥエルアレイ 520には、被験体細胞を含む培養液を投入するゥエル 523と、 薬液を投入するゥエル 522と、吸引手段に接続されたゥエル 524とが形成されている 。これにより、プレート 502の上面 502Cに被験体細胞を容易に保持でき、薬液など を投入することが全てゥエルアレイ 520の上部より独立して行うことができるので測定 の際に容易にプローブ 501を操作できる。
[0061] ゥエル 522の貫通孔 521Aの大きさを流路 509の開口部 511より大きくし、ゥエル 5 24の貫通孔 521Cの大きさを流路 510の開口部 518よりも大きくする。これにより、薬 液などの液体を速やかに流路に導入することができ、高精度でばらつきの少な 、細 胞電位を測定できる細胞電位測定プローブ 501が得られる。
[0062] 参照電極 514がゥエル 523内の培養液に接する所定の位置に配置される。測定電 極 515が流路 510内に設けられて流路 510内の培養液あるいは薬液などの液体に 接触する。これにより、培養液中における被験体細胞の細胞電位と薬液などの液体 をゥエル 522またはゥエル 523より投入した後の被験体細胞の細胞電位の変化を測 定できる。測定電極 515はキヤビティ 505またはキヤビティ 506の近傍に設けても良 い。
[0063] 参照電極 514と測定電極 515はワイヤ配線や薄膜電極などで形成でき、プローブ 5
01の外部の測定器に接続されて電極からの信号を検出できる。
[0064] 次に、細胞電位測定プローブ 501を用いて、細胞電位を測定する方法を説明する
[0065] まず、ゥエル 523には被験体細胞を含む培養液を投入し、次にゥエル 522またはゥ エル 524から吸引手段により吸引することで被験体細胞はセンサ素子 504の貫通孔 508に保持される。ゥエル 523内に設けられて培養液に接触する参照電極 514と、 流路 510内に設けられた測定電極 515との間の抵抗値を測定する。電極 514、 515 間の抵抗値は、吸引手段の吸引圧力を制御することにより、ゥエル 523に貯留された 培養液と流路 510内に貯留された培養液の間の抵抗値が 100M Ω以上となる。参照 電極 514および測定電極 515は Au、 Ag、 AgClなどの導電材料で構成することがで き、培養液に接触させることで電気的接続が得られる。したがって、電極 514、 515が 配置される位置は上記の位置に限定されな 、。
[0066] 次に、ゥエル 522内に薬液等の測定溶液を貯留してゥエル 524から吸引すると、流 路 509、キヤビティ 505、キヤビティ 506、流路 510内の培養液を測定溶液で置換さ せることができる。これにより、細胞が存在するゥエル 523の領域と測定電極 515が存 在するキヤビティ 506の領域に、それぞれ別種類の培養液や測定溶液を容易に導入 でき、より速く細胞電位を測定できる。
[0067] ゥエル 522とゥエル 524の機能を逆にしても同様に細胞の電位が測定できる。
[0068] ゥエル 522、 523、 524にバルブあるいは蓋を設けることにより、プローブ 501での 測定をより容易に制御できる。
[0069] 実施の形態 3による他の細胞電位測定プローブ 519である、複数の細胞電位測定 プローブ 501を用いた細胞電位測定プローブアレイ 519について説明する。図 23は 実施の形態 3による他の細胞電位測定プローブ 519 (細胞電位測定プローブアレイ 5 19)の分解斜視図である。細胞電位測定プローブ 501が 4列 X 8列のマトリックス状 に配置されている。ゥエル 522、 523、 524が複数のプレート 520に対応する位置で それぞれ形成された複数のゥエルアレイ 520は一括してゥヱルアレイユニット 520Aと して作製でさる。
[0070] このように複数の細胞電位測定プローブ 501が所定のフォーマットで並べられた細 胞電位測定プローブアレイ 519は、薬液注入'細胞投入'吸引などにロボットなどを 利用することができるので、短時間で多数の被験体細胞の電位を測定でき、薬理効 果を判断して候補薬剤を迅速にスクリーニングできる。
産業上の利用可能性 本発明による細胞電位測定プローブは、溶液内に浮遊する細胞の電位をそのまま の環境で測定でき、細胞への薬理効果を判定して薬剤のスクリーニングに用いること ができる。

Claims

請求の範囲
[1] 吸引手段と共に用いられる細胞電位測定プローブであって、
表面を有するプレートであり、底面を有する第 1のキヤビティが前記表面に形成され、 前記第 1のキヤビティの前記底面に第 2のキヤビティが形成され、前記第 2のキヤビテ ィに開口する第 1の開口部と前記プレートの外部に開口する第 2の開口部とを有する 第 1の流路が内部に形成された前記プレートと、
前記第 1のキヤビティ内に配置されたセンサ素子と、
を備え、
前記センサ素子は
第 1面と前記第 1面の反対側の第 2面とを有し、前記第 1面に開口する第 1の開口部 と、前記第 2面に開口して前記プレートの前記第 2のキヤビティに連結する第 2の開口 部とを有する貫通孔が形成された薄板と、
前記薄板の周囲に設けられて前記プレートの前記第 1のキヤビティに配置された支 持基板と、
を有し、
前記第 1の流路は流体を流すことができ、前記吸引手段は前記第 1の流路の前記第 2の開口部に接続されて前記第 1の流路内を流れる流体を吸弓 Iできる細胞電位測定 プローブ。
[2] 前記第 1のキヤビティの前記底面と前記センサ素子の前記薄板の前記第 2面は同一 面内にある、請求項 1に記載の細胞電位測定プローブ。
[3] 前記センサ素子の前記支持基板は前記プレートの前記表面と同じ向きの第 1面と前 記プレートの前記第 1のキヤビティの前記底面上に配置された第 2面とを有し、前記 薄板の前記第 1面上に第 3のキヤビティが形成される、請求項 2に記載の細胞電位測 定プローブ。
[4] 前記センサ素子の前記支持基板と前記プレートとは接合されて!ヽる、請求項 1に記 載の細胞電位測定プローブ。
[5] 前記プレート内に、前記第 2のキヤビティに開口する第 1の開口部と前記プレートの 外部に開口する第 2の開口部とを有する第 2の流路がさらに形成された、請求項 1に 記載の細胞電位測定プローブ。
[6] 前記プレートの前記第 2の流路の前記第 2の開口部には前記第 2の流路の前記第 2 の開口部力 流体を注入する注入手段が接続される、請求項 5に記載の細胞電位 測定プローブ。
[7] 前記注入手段と前記第 2の流路との間に弁が設けられる、請求項 6に記載の細胞電 位測定プローブ。
[8] 前記第 2の流路の断面積は 0. 01mm2以上である、請求項 5に記載の細胞電位測定 プローブ。
[9] 前記第 2の流路の、少なくとも一部が曲がっている、請求項 5に記載の細胞電位測定 プローブ。
[10] 前記プレートは、前記第 1の流路と前記第 2の流路との間に設けられて前記第 2のキ ャビティに向かって突出する段差を有する、請求項 5に記載の細胞電位測定プロ一 ブ。
[11] 前記第 1の流路の断面積は 0. 01mm2以上である、請求項 1に記載の細胞電位測定 プローブ。
[12] 前記第 1の流路の少なくとも一部が曲がっている、請求項 1に記載の細胞電位測定 プローブ。
[13] 前記センサ素子の前記貫通孔の前記第 1の開口部と前記第 2の開口部の両側の領 域にそれぞれ電極を設けた請求項 1に記載の細胞電位測定プローブ。
[14] 前記センサ素子の前記薄板には、前記薄板の前記貫通孔の前記第 1の開口部と前 記第 2の開口部のうちの少なくとも 1つに前記薄板の前記貫通孔の径より大きな径を 有する窪みが形成された、請求項 1に記載の細胞電位測定プローブ。
[15] 前記プレートは可視光を透過する材料で形成された、請求項 1に記載の細胞電位測 定プローブ。
[16] 前記センサ素子の前記薄板は可視光を透過する材料で形成された、請求項 1に記 載の細胞電位測定プローブ。
[17] 前記プレートは前記第 2のキヤビティに向力つて突出する段差を有する、請求項 1に 記載の細胞電位測定プローブ。
[18] 前記プレートの前記表面と前記センサ素子の前記薄板の前記第 1面は同一面内に ある、請求項 1に記載の細胞電位測定プローブ。
[19] 前記センサ素子の前記支持基板は前記プレートの前記表面と同じ向きの第 1面と前 記プレートの前記第 1のキヤビティの前記底面上に配置された第 2面とを有し、前記 薄板の前記第 2面上に第 3のキヤビティが形成される、請求項 18に記載の細胞電位 測定プローブ。
[20] 開口部と底面とをそれぞれ有する第 1のゥエルと第 2のゥエルと第 3のゥエルが形成さ れたゥエルアレイをさらに備え、
前記第 1のゥエルの前記底面には前記第 1の流路の前記第 2の開口部に連結した貫 通孔が形成され、
前記第 2のゥエルの前記底面には前記センサ素子の前記薄板の前記貫通孔に連結 した貫通孔が形成され、
前記第 3のゥエルの前記底面には前記第 2の流路の前記第 2の開口部に連結した貫 通孔が形成された、請求項 1に記載の細胞電位測定プローブ。
[21] 前記第 2のゥエルの前記貫通孔は前記センサ素子の前記薄板の前記貫通孔に向か つて狭まる形状を有する、請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[22] 前記第 2のゥエル内に配置された第 1の電極と、
前記第 3のゥエル内と前記第 1の流路内のうちの一方に配置された第 2の電極と、 をさらに備えた、請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[23] 前記第 2のゥエルに被験体細胞を含む流体が投入され、
前記第 3のゥエルには前記被験体細胞との反応を検査する流体が投入され、 前記第 1のゥエルには前記吸引手段が接続される、請求項 20に記載の細胞電位測 定プローブ。
[24] 前記第 2のゥエルは前記センサ素子の前記薄板の前記第 1面上に配置された、請求 項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[25] 前記第 2のゥエルの前記貫通孔は前記薄板の外形より大きい、請求項 24に記載の 細胞電位測定プローブ。
[26] 前記第 1のゥエルの前記貫通孔は前記第 1の流路の前記第 2の開口部より大きい、 請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[27] 前記第 3のゥエルの前記貫通孔は前記第 2の流路の前記第 2の開口部より大きい、 請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[28] 前記ゥエルアレイは、前記第 1のゥエルの前記貫通孔と前記第 2のゥエルの前記貫通 孔と前記第 3のゥエルの前記貫通孔とが開口し、前記プレートの前記表面と同一面内 にある底面を有する、請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[29] 前記ゥエルアレイは前記プレートと同じ材質で形成された、請求項 20に記載の細胞 電位測定プローブ。
[30] 前記プレートと前記ゥエルアレイはガラスまたは石英で形成された、請求項 20に記載 の細胞電位測定プローブ。
[31] 前記プレートと前記ゥエルアレイはポリスチレン、シクロォレフインポリマー、またはシ クロォレフィンコポリマーで形成された、請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ。
[32] 前記プレートと前記ゥエルアレイは熱可塑性榭脂で形成された、請求項 20に記載の 細胞電位測定プローブ。
[33] 複数の開口部が形成された別のプレートと、
前記別のプレートの前記複数の開口部と同じ方向に開口する貫通孔が形成された 別の薄板を有する別のセンサ素子と、
をさらに備え、
前記ゥエルアレイには、前記別のプレートの前記複数の開口部と前記センサ素子の 前記貫通孔とにそれぞれ連結する貫通孔が形成された底面をそれぞれ有する複数 の別のゥエルアレイがさらに形成された、請求項 20に記載の細胞電位測定プローブ
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