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WO2002033068A1 - Method of analyzing nucleic acid base sequence - Google Patents

Method of analyzing nucleic acid base sequence Download PDF

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WO2002033068A1
WO2002033068A1 PCT/JP2000/007244 JP0007244W WO0233068A1 WO 2002033068 A1 WO2002033068 A1 WO 2002033068A1 JP 0007244 W JP0007244 W JP 0007244W WO 0233068 A1 WO0233068 A1 WO 0233068A1
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WO
WIPO (PCT)
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nucleic acid
probe
stranded nucleic
fluorescence
salt
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PCT/JP2000/007244
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English (en)
French (fr)
Inventor
Nobuko Yamamoto
Tadashi Okamoto
Tomohiro Suzuki
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Canon Inc
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Canon Inc
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Publication date
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Priority to PCT/JP2000/007244 priority patent/WO2002033068A1/ja
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Priority to US10/231,302 priority patent/US20050266403A9/en
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Ceased legal-status Critical Current

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    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C12Q1/6874Methods for sequencing involving nucleic acid arrays, e.g. sequencing by hybridisation
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    • C12Q1/6837Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value

Definitions

  • the present invention relates to a method of identifying a nucleic acid salt sequence using a DNA chip.
  • the Sequencing by Hybridization (SBH) method utilizes such a DNA array: A method for examining the identity of a person, which is described in detail in USP5202231.
  • SBH method the sequence of possible oligonucleotides for a certain length is arranged on the basis of fej, and a completely neutral hybrid formed by hybridization with the sample DNA is detected. if you get a set of complementary hybrid body, the set is should be a set of single nucleotide not a one shift sequence for a sequence, Ru der to perform determination by those loaf ⁇
  • hybrids tt ⁇ between the same sequences they will be less stable and less fluorescent than a perfect match, but will have a higher fluorescence intensity than other fully hybridized hybrids. This is a common phenomenon.
  • a single-base mismatch is present, its stability greatly changes depending on whether or not a mismatch is present at the position of ⁇ 'in the hybrid form. When a mismatch is found at the end, a tt ⁇ -stable hybrid is obtained, but when it meets the middle of the hybrid, it becomes unstable due to cleavage of the complementary strand. .
  • the nucleic acid base at the position to be examined is placed in the middle of the probe, and four nucleotide sets are always prepared at that position, and one base of such a probe set It is necessary to prepare the rooster 'J which is shifted by one. Then, using a 15-mer lignonucleotide such as, tb ⁇ of the other three types of probes with one soot group mismatch in the middle is used to judge a perfect match or not, to determine the stability and theory of each. It can be used to sharpen or to ⁇ ⁇ to get more precision. I also want to check If the length of the base in the region is L, the number of probes will be 4 XL (20 kinds if 5 bases).
  • the method of using the mismatch of one's own is that the determination with a single base mismatch at the same position of the same 3 ⁇ 4 ⁇ is easy to determine, and the number of probes can be small. 0 2 4 types of probes are required) Although this is an excellent method, accurate information cannot be obtained if there are two base mismatches in the same region, or if there are base deletions or insertions. There is a serious drawback.
  • the SBH method solves the above-mentioned problem, and although it is an edible method even though it is different in principle, it is quite difficult to judge it. This is because a single base mismatch in one rooster 'J is stronger than a perfect match in one rooster' J ', or a single base mismatch always has a mismatch.
  • the stability of the hybrid body is large depending on the presence of As a result, ⁇ match, 1-base mismatch, 2-base mismatch (surrounding, unsuccessful) can be determined from fluorescent acid and pure (unpredictable, predictable sequence, accumulation of sequence parameters, etc.) You need some complicated analysis.
  • the present invention provides a method for accurately determining the gene ffi ⁇ 'J without requiring a complicated loaf.
  • the intensity of hybrid washing is governed by various factors.When using a probe with a length of about 15 mer or 20 mer, the fluorescence intensity of a hybrid having a single base mismatch must be completely eliminated. Is virtually difficult. On the other hand, in the case of a sequence having a two-base mismatch, it is easy to obtain conditions for suppressing the formation of a hybrid, regardless of the position of the two-base mismatch, whether or not it is missing.
  • a method for identifying an unknown salt sequence at a predetermined site in a target single-stranded nucleic acid is as follows.
  • the probe array and a second sample containing the target single-stranded nucleic acid are subjected to ⁇ i under the same conditions as those for obtaining the template pattern, and then the presence or absence of fluorescence and the intensity are determined on the probe array.
  • S sequences and obtain a sample pattern indicating the relationship between the position of each single-stranded control probe on the probe and its fluorescence characteristics.
  • a threshold is provided between the fluorescence intensity of a single-base mismatch and the fluorescence intensity of a two-base mismatch hybrid to distinguish between positive and negative. Having.
  • the unknown ⁇ ! At a predetermined site of the target single-stranded nucleic acid. Is a method of identifying
  • the number of mismatch salts 3 ⁇ 4 # ⁇ is less than or equal to i for Hanshi 'J of the second spring probe
  • the position of the single-stranded nucleic acid probe on the substrate is defined as positive, the position of the probe having the mismatched nucleotide sequence on the substrate is defined as negative, and a template pattern II formed by the position of the bodily nucleic acid is obtained.
  • the pattern formed on the substrate by the spots distinguished from the self-positive is obtained as an elephant, and the array is obtained by performing the expected pattern tt ⁇ . it is possible to, the unknown gene Rooster 1 J can easily ⁇ this particular to Furudo.
  • the hybridization method according to the present invention is applied to a method for preparing a target; ⁇ ⁇ , a sample containing nucleic acid and a probe array, and a probe array substrate for preparing a sample.
  • This method is characterized in that heat denaturation is performed, and then the temperature is lowered to a temperature suitable for forming the substrate while the substrate is kept in the sample.
  • the temperature at which the thermal conductivity is performed is preferably 60 °. Further, the temperature for performing the duplex formation reaction is preferably 40 ° C i-. Furthermore, the time required for heat denaturation 1 0 min> ⁇ _ Furudo pre Masui is L 0
  • the extraction method of the present invention is a sample detection method using the above-mentioned hybridization ⁇ method, in which the temperature is increased after the ⁇ is performed by lowering the temperature. It is characterized by cleaning in the state.
  • FIG. 1 shows an example of efficiencies when using 64 types of probes.
  • FIG. 2 is a diagram showing a pattern of a region i or an arrangement where the base is positively cut with respect to the sequence of the target nucleic acid.
  • FIG. 3 is a diagram showing a pattern of a region i or a position determined to be positive based on a base L in a mutant strain for a target nucleic acid.
  • FIG. 4 is a diagram showing the “turn” of the amount of fluorescence obtained in Example 1.
  • FIG. 5 is a diagram showing a pattern expected in Example 2.
  • FIG. 6 is a diagram showing a pattern at a threshold of 10% of the amount of fluorescence obtained in Practical Example 2.
  • FIG. 7 is a diagram showing the amount of fluorescence obtained in Example 3.
  • FIG. 8 is a diagram showing the fruit of the hybridization using genomic DNA.
  • the embodiment of the present invention is particularly effective when nucleobases that may cause a mismatch are present in close proximity.
  • GTTCAT ⁇ which contains 5 'GATGGGNCTC containing the nucleotide sequence' J 'for the amino ifeg sequence of the 23rd spring and 239th foci of the tumor suppressor gene p53, will be described by way of example.
  • the above example is one form of explaining the structure of the present invention, and in any form of array, the present invention presents a similar concept in terms of how to form an image.
  • the form of the probe does not imply the 3 ⁇ 4 ⁇ .
  • the SBH method is also a feature of the present invention.
  • rooster j such as s'GATGGGACTCMGTTCAf is directed to the upper leftmost robot.
  • s'ATGAACCGGAGGCCCATC 3 ' a rooster' J 'corresponding to a normal gene, is expected to form a hybrid with the probe DNA 5 ' GATGGGCCTCCGGTTCAf 'in the third column from the right and the third row from the top. Is done.
  • the expected firefly consisting of such a perfect match and a single base mismatch.
  • the turn image is input to a memory device such as a computer in advance, and the determination is performed based on tt ⁇ with a fluorescent image obtained by a predetermined method. At this time, detailed quantitative data on the fluorescence intensity of each positive spot is not required. Only the positive and negative judgments for the threshold in (4) are required, and simple and automated judgment using a combi- ter or the like is possible.
  • the fluorescence intensity respectively that of Rooster 1 j to set between fluorescence intensity which by fluorescence intensity of etc. 2 base mismatch usually 1 base Misumatsuchi the threshold ⁇ Although it depends on the composition and conditions, the threshold value should be 30% to 20%, more preferably 50% to 25% of the highest fluorescence intensity (usually perfect match). If the probe length is short, the threshold will be lower.
  • the two-base mismatch may sometimes exceed the threshold, but even in such a case, It can be easily discriminated from the turn.
  • the method of the present invention in which the expected pattern and the actually obtained fluorescent image are determined based on t can easily determine the presence or absence of a difference in the gene, and further determine which base (a plurality of It has the feature that the contents of mutation can be determined simultaneously.
  • the probe length used in the present invention is from 8 mer to 30 meril, more preferably from 12 mer to 25 mer.
  • the length is 8 mer or less, the stability of the hybrid having one base mismatch is low, and the amount of fluorescence derived from perfect match is a concern.
  • the fluorescence of the two-base mismatch may be 1 ⁇ depending on the case (for example, if there is a mismatch window at the bottom). Stronger than mismatch.
  • the conditions for the above-mentioned good hybridization are as follows: the substrate f is immersed in the test while the substrate is immersed in the test; Then, gradually perform hybridization at a slightly higher temperature. At the time, the ⁇ i class should be less than ⁇ .
  • a temperature for heat denaturation 60 ° CvVLL, preferably 80 ° Oi is suitable.
  • the setting of the temperature for thermal transformation is determined by the stability of the DNA array substrate itself, the length of the sample, the concentration, and the type of the labeled compound.
  • the high temperature may cause the oily layer to be destroyed by stone.
  • a silane coupling agent The substrate used in the preparation process is tt ⁇ -stable to heat and can be heated to a higher temperature.
  • the concentration can be further increased by adding a neutralizing agent such as formamide. It is necessary to perform dissociation, and the time required for the thermal conductivity is 10 minutes y, preferably 3 oi.
  • Hybridization conditions are determined by considering the probe length and the type of sample, and by changing the temperature and changing the temperature in a conventional manner.
  • 3 hours at 45 ° C in a temperature containing 100 ⁇ is preferably used.
  • the time is greatly affected by the inspection and is not limited to the above conditions.
  • the judgment can be made sufficiently within 3 hours, and when the sample is sparse, it takes 10 hours ⁇ ⁇ ⁇ hours. If you can increase the amount of formamide (two need to increase>).
  • the following is an example of a method for preparing a DNA array that can favorably proceed with the present hybridization ⁇ . But book! The intent of the Ming is to show a simple method for determining the salt of the specimen by tiffiing the hybridization pattern of the base material. never ending.
  • a DNA probe is covalently immobilized by JSJS of a functional group on the base surface.
  • a method for bonding the DNA # to the SH group of the DNA such as a maleimide group on the glass surface is described below.
  • the method of introducing the maleimide group is as follows: First, an aminosilane coupler is applied to the glass substrate, and then the amino group and EMC S reagent (-(6-Maleimidocaproyloxy) succinimide: Dojin! To introduce a maleimide group.
  • EMC S reagent -(6-Maleimidocaproyloxy) succinimide: Dojin!
  • the introduction of the SH group into DNA can be performed by using a DNA automatic synthesis J5, -ThioHfodifierC6 (Glen Research company ship).
  • the DNA is spot-formed on the base by an ink jet method, and the probe DNA is immobilized by the maleimide group of the DNA base and the SH group of the DNA.
  • Glycerin, urine, thioglycol or ethylene glycol, acetylenol EH (Kawamura Fine Chemicals, Inc., isopropyl alcohol, etc.) are suitable for ejection to a glass substrate having a maleimide group by the ink jet method.
  • 7.5% of glycerin, 7.5% of urea, 7.5% of thiodiglycol, and 1% of acetylenol EH (the deviation is also mass%) are preferred.
  • the array substrate to which DNA is bound is immersed in 2% bovine ⁇ blue albumin water> for 2 hours and used for blocking moxibustion and hybridization ⁇ .
  • the amino acid rooster of the p53 gene which is a tumor suppressor gene, in spring 248 and 249, is the same as the amino acid rooster in CGGAGG. It is known that C is different from T, the second A is different from G, and the 249th amino acid is G different from T in the third spring. Therefore, focusing on these three places, we designed 64 types of probes.
  • the probe ⁇ is an 18mer, and the 6 groups that have this difference are located in the middle of them, and the structures around them are digged with ⁇ , and are 5'ATGMC bandits GAGNCCCATC 3 '.
  • N is represented by N and the / i portion is A, G, G, and T, which are four kinds of nucleic acid bases.
  • Probe DNA is the sequence to be extracted (top
  • Figure 1 shows the rooster diagram of the 64 DNA probes on the DNA array.
  • Table 1 shows the columns (array numbers: 1-64).
  • Table 1 Table 1 5 'ATGAACCGGAGGCCCATC 3 ', a rooster 1 J corresponding to a normal gene, is located in the third row from the right and in the third row from the top. I will be waiting.
  • Figure 2 shows the 3 ⁇ 4 and ° turns expected to result in a 3 ⁇ 4 ⁇ match and a single mismatch.
  • a 1-inch square glass plate was placed in a rack and washed with an ultrasonic cleaning detergent. After that, ultrasonic cleaning was performed in a detergent for 20 minutes, and then the detergent was removed by 7 points. After that, ultrasonic waves were further applied in the container containing the distilled water for 5 minutes for 20 minutes, and then applied to the 1N-phase sodium solution having been previously ⁇ -forced for 10 minutes. First, ⁇ ⁇ i cleanup was performed.
  • Kamimi For each of the four types of DNA, perform the discharging operation below X. Dissolve each DNA in water, SG Clear (7.5% glycerin, 7.5% urea, 7.5% thiodiglycol, 1% acetylenol EH1% water was used to dilute to a final volume of ⁇ 8 ⁇ .
  • BJ Blinter Head BC62 (Canon Inc.
  • Each probe is adjusted to a spot diameter of 70 / im, pitch or 200 ⁇ , 8x8 matrix; Finally, 64 spots were spotted. Thereafter, the probe was placed in a chamber for 30 minutes to bind the probe DNA to the substrate.
  • the substrate was washed with 1M a C 1Z5 OmM phosphoric acid (H7.0), and DNA on the glass surface was completely washed away. Then, the cells were immersed in a 2% bovine ⁇ blue albumin aqueous solution, left for 2 hours, and then blocked ⁇ .
  • H7.0 1M a C 1Z5 OmM phosphoric acid
  • a labeled DNA No. 1 of the same length in the same region as the probe DNA was prepared.
  • Rooster 'J is as shown below, and 5' has rhodamine binding.
  • the obtained fluorescence amount is shown in FIG.
  • the maximum ⁇ of the amount of fluorescence is a completely spring-free probe. Assuming that the amount of fluorescence is (100%), a threshold is provided in that 20%, and the Xji chicks are blacked out.
  • the spots at NolO, 26, 58 also have fluorescence, and it can be seen that the predicted pattern shown in Fig. 2 is good. By lowering the threshold further, the predicted pattern becomes “ ⁇ .” In other words, in addition to the three spots described above, a single-base mismatch sequence centered on the match is aligned vertically and horizontally.
  • Example 2 The same experiment as in Example 2 was performed using the same model sample DNA as in Example 2. However, the sample DNA used for the hybridization was set to 5 nM, and the mixture was allowed to react at 40 ° C. The obtained results are shown in FIG.
  • the threshold is set to 50%, the fluorescence will appear at the probe position (shaded area) of 34 and 62 of the 1 mismatch, and the threshold will be further reduced to 30%. The result is suitable for.
  • two base mismatches of Nos. 6 and 22 are also detected, but as a deviation from the pattern consisting of the single base mismatch, the base mismatch can be classified according to the column, and the number of spots of a perfect match is 46. # "It can be determined.
  • PCR primers were synthesized as if they were similar to the base flanks of the flanking intron.
  • E5A 5'-TGAGGAATCAGAGGCCTGG-3 '(exon 5, antisense)
  • E6A 5'-nAACCCCTCCTCCCAGAGA-3 '(exon 6, antisense)
  • E7A 5'-TGTGCAGGGTGGCAAGTGGC-3 '(exon 7, antisense)
  • E8A 5'-TCCACCGCTTCTTGTCCTGC-3 '(exon 8, antisense)
  • PCR ⁇ 50 ⁇ L PCR i ⁇ 10 ⁇ 25ng genomic DNA, 0.41 ⁇ each calorie set of exon primers, 94 ° C (30 sec), 60 ° C. 40 cycles of C (45 seconds).
  • the widened animals were exons 5 to 8 and were 269, 181, 171 and 229 salt long, respectively.
  • Tetramethylrhodamine label for four exons To obtain single-stranded DNA, use the " ⁇ " of the broadened exon DNA as the type, and use a 10 / M tetramethylrhodamine-labeled dUTP (0.2 / M sense primer, etc.). Using FIuoro Red, manufactured by Amersham Pharmacia Biotech), a PCR cycle of 96 ° C (30 seconds), 50. C (30 seconds) and 60. C (4 minutes) was performed.
  • the above tetramethylrhodamine target single-stranded exon DNA 20% formamide meets 6 XSS PE (0.9 M NaCL 60, M NaH 2 PCV 6 M EDT A 3 ⁇ 43 ⁇ 4 ⁇ Put 2mL in the bag for the distillation ⁇ , firstly 80 °C 2 ⁇ 10 ⁇ ⁇ 3 ⁇ 4 ⁇ The temperature of the moxibustion incubator was reduced to 45.
  • the upper iDNA array, soaked in 2 XSSPE (0. 3M NaCL 2 0 NaH 2 P_ ⁇ 4, 2 ⁇ ⁇ EDTA) 3 ⁇ 43 ⁇ 4 was performed operations wash raised temperature 5 5 ° C.
  • the spots of Nos. 10, 26, and 58 also fluoresce, indicating that they match well with the expected pattern (Fig. 8).
  • Example 1 Similarly, a DNA array substrate comprising 64 kinds of probes was obtained.
  • hybridization was performed in the same manner as in Example 2 using HSC4 having a No. 2 rooster as a model specimen instead of the rhodamine-labeled DNA.
  • the conditions were the same as in Example 4. As a result, the fluorescence was observed at the position of No. 14 and the expected pattern was better.
  • the conventional method is simply determined based on the presence or absence of hybrids !; the method of the present invention further considers the amount of fluorescence of single base mismatch (accurate detection by inserting; I got it.
  • any hybrid of DNA probe has different qualities depending on the sequence, there is no requirement that perfect match is overwhelmingly stable and strong fluorescence.
  • the judgment based on the pattern is advantageous in that a more accurate judgment is made as compared with the case where only one spot is judged.
  • the judgment of the pattern in the present invention is such that it is possible to compensate for a slight variation in the amount of fluorescence.

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Description

明 細 書 核酸の塩翻 1 Jの 方法 技 術 分 野
Figure imgf000002_0001
される DN Aチップを用いた核酸塩翻己列を特定す る方法に関する。
背 景 抆 術
核酉 等の物質の酉 1 Jを決定し、 或いはその酉 1 Jをチェックする手法のひヒつに DNAァ レイ 利用する方法 ある。 USP5445934には、 1ィンチ角に 1 0万個 Lのオリゴヌタレ ォチドプローブ き合した DNAアレイの開示がある。 このよ うな DNAアレイは、 少量 の検体で一度に多項目を儉査できるという利点 ある。 このような DNAチップ上に、 蛍 識した檢体を流すヒ、 i N Aチッブ上のプローブど相補的な酉び' Jを有する D N A 断片はブローブど結合し、 その部分おけ h ;¾[:より鄰' Jでき、 D N At¾l 中の D N A断 f の Sび' Jを解明するこど できる。
Sequencing by Hybridization (S B H) 法は、 このような DNAアレイを利用し: ¾I己 列を調べる方法で、 USP5202231にその詳細が ¾ されている。 S B H法では、 ある長さに ついて可能な才リゴヌクレオチドの^己列を基 fej に並べ、 検体 DNAとのハイプリダイ ゼーション によって形成される完全にネ 的なハイプリッ ド体を検出するもので、 完 全に相補的なハイブリッ ド体のセッ トを得れば、 そのセッ トはある配列について 1塩基ず つずれた配列の集合になるはずであり、 それら 斤することにより判定を行うものであ る α
原理的には、 検体 DNA中に、 ある特定の酉 1 jがある どう を調べるためには、 その 配列ど相補的な配列をプローブどしてハイブリタ"ィゼーション^ 行って結合の有無を 調べるこどどなる。 しかし、 実際には、 1種類のプローブでハイプリッドの有無を調べ、 それ 基にひどつの檢直項目どして判定するこどは非常に難しい。 なぜなら、 完全に相補 的なハイプリッ卜"体を比べるヒ、 ハイブリッド体由来の 光はそれぞれの配列によ ')強度 異なる。特に、塩截 e ^中の G C舍量はハイプリッド体の安定性に大きな影響を羊える。 しかも、 完全に相補的ではなく 1塩基のミスマッチを舍む §び1 Jでも、 ハイブリッド体を形 成し、 蛍光を する。 そのハイブリッド体は、 同じ配列間で tt^するど、 完全マッチのも のより安定す生が低く蛍光は弱くなるが、 完全にネ目補的な他のハイプリッド体よりも蛍光強 度が高いというこヒはよく見られる現象である。 また、 1塩基ミスマッチどはいっても、 ハイブリツド体のヒ'の位置にミスマッチを含むかによっズその安定性は大きく変化する。 末端にミスマッチを会む場合には、 tt^的安定なハイブリッド体が得られるが、 ハイプリ ッド体の真ん中に会む場合には相補鎖の逸统部分が分割されるために不安定になる。 この ように、 ハイブリッド体の安定性に関してはいろいろな要因が絡み合い、 完全にネ g#的か 否かを判定する蛍光 ¾t の, 直(¾iW直) どいうのが得られな 、のか えである。 また、 1塩基ミスマッチを ¾ ^に排除し、 完全マッチからのみの蛍光を検出しうる条件というも のも齊られていないといえる。
配列によるハイブリツ ド体の安定す生の遠 、を解消するための工夫どして、 Proc . Natl . Acad. Sci. USA Vol.82, ppl585-1588 (1985)には tetramethylammonium chlorideを用いる 方法が されている。 し し、 上己問題点を完全に解-;肖するには至っていない。
そこで、 完全マッチか否 を判定する方法どして、 Science vol.274 ρβΐθ- 614, 1996に は 15merのオリゴヌクレオチドのプローブ 1己列の真ん中に 1塩基ミスマッチを配した酉己列 を用意し、 完全マッチど 1塩基ミスマッチどのハイブリッ ド由來の蛍光強度を t ^し、 完 全マッチの方が ¾ ^が強いときにポジティブど列定するような方法が されている。 さらに、 USP5733729には上記方法に加えてより正確な判定を行うための方法どして、 コ ンピューターを用いて、 得られたハイプリッド体の蛍光強度の tt|交 ら検体の塩基配列を 知るための方法が開示されている。
これらの方法では、 調べたい位置の核酸堍基部分をブ'ローブの真ん中に ¾ し、 その位 置に必ず 4種類のヌクレオチドセッ トを用意するこど、 及びそのようなプローブのセッ ト 1塩基ずつずれた酉 ' Jについて用意するこどが必要どされる。そして のような 15mer の才リゴヌクレオチドを用い、 真ん中に 1煤基ミスマッチを有する他の 3種類のプローブ ヒの tb^を行って完全マッチ 、否 を判定するという方法で、 それぞれの安定性 、 理論 勺に或いは » ^に ffiし、 より精度を得ること できるどされている。 また、 調べたい 領域の塩基の長さが Lであれば、 プローブ数は 4 X L (5塩基であれば 2 0種) になる。 上己のミスマッチを利用する方法は同じ ¾ ^の同じ位置の 1塩基ミスマッチとの を 行うこどで判定が ty¾的容易である点、 及びブローブ数が少なくて良い (S B Hでは同樣 な 斤に 1 0 2 4種のプローブが必要) 点において優れた方法ではあるが、 同じ領烕に 2 塩基ミスマッチがある場合、 或いは、 塩基の欠損、 挿入がある場合には正確な情報が得ら れないどいう重大な欠点がある。
一方、 S BH法は、 上記問 ¾ ^を解決し、 原理勺にはヒ'のような变異にも对 可食 な方 法ではあるが、 その判定はかなり難しい。 それは、 ある酉 ' Jの完全マッチより も別の酉 ' J の 1塩基ミスマッチの方が強度が強いこヒや、 1 基ミスマッチどはいつズも、 酉 ' j中の どのィ立置にミスマッチがあるかによって、 そのハイプリッド体の安定性が大き〈異なるこ どによる。 その結果、 ^マッチ、 1塩基ミスマッチ、 2塩基ミスマッチ ( 繞、 不速统) は蛍光酸 ら草純 (こ判断することはできず、 理 勺な予測、 配列どの 、 «ΐι勺 なパラメーターの蓄積どいつた複雑な解析を必要ヒする。
さらに、 ひどつひとつのプローブに Μしてそのハイブリッ ド体の強度を 則し、 その値 を 斤して遺伝子 を決定、 判定するためには、 アレイを読みどる検出裝置の他に大が りなコンピューター裝置を必要ビし、 DNAアレイを利用した簡便な遺伝子 «を行う 上で大きな障害どなる。
このような問題点に鑑み、 本 明では、 複雑な 斤を必要とせず、 正確に遺伝子の ffi^'J を決定する方法を提供する。
^ 明 の 開 示
J iiのように ハイプリッ ド沐の強度は種々の要因によって支配されており、 15mer 、ら 20mer程度の長さのプローブを用いた場合に、 1塩基ミスマッチ 有するハイブリツド体の 蛍光強度を完全に除く ことは事実上困難である。 それに対し、 2塩基ミスマッチを有する 配列は、 2¾基ミスマッチの位置、 逸绕、 不逸统に かわらず、 ハイブリッ ド体の形成 抑制する条件を得ることが tbfe勺容易である。
本^明は、 このような 見に基づいてなされたものであって、 完全マ.ソチ S己列のスボッ 卜に力。えて、 所定のミスマツチ数、 例えば 1 ¾ミスマツチの酉 1 Jを有するハイブリヅ ド 体のスポッ トも、 ポジティブど見なす点にひとつの特徴を有する。
つまり、 本 明の一実拖態樣に る標的一本鎖核酸の、 所定の部位の、 未知の塩 己 列を特定する方法は、
( a ) 該未知の塩 ¾3己列の予想される複数の塩 己列の各々に対してネ議的な塩基酉び' j を有する 1春〜 n畚 (n≥2) の複数種の一本鎖核酸プローブの各々が基体上に玄いに隔 離されるように酉 されているプローブアレイを用意する: m ;
( b ) 該一本鎖 «ブローブの内の 1つが有する塩 び' Jに対して ¾^栖捕的な塩 ¾g己 列を有し、 、つ蛍 識 施された標識化一本鎖«を舍む第 1のサンプルど該ブローブ アレイどを亙いにネ 的な一本鎖核酸同士が二本鎖核酸を形成する条件下で^^させ、 未 の標識化一本鎖核酸を除去したのらに、 該アレイ 、ら される蛍光強度 該プロ一 ブアレイ上の各々の一本鎖ネ滅ブローブについて測定し、 該プローブアレイ上の各々の 1 本鎖核酸ブ口一ブの位置どその蛍光特性どの関係を示す第 1のテンプレートパターン 得 る:! ^里;
( c ) 他の全ての一本鎖核酸プローブのそれぞれについて、 該ステップ (b ) ど同一の 橾作を行ない、 該プロープアレイ上の 1 ^核酸ブ口―ブ f各々の塩翻び Jに対して 相補的な一本鎖核酸と二本鎖核酸を形成したときの該プローブアレイ上の各々の 1本鎖核 酸プローブの位置ヒその泶光樹生どの関係 示す第 2〜第 nのテンプレートパターンを得 る: ^呈;
( d) 該プローブアレイど該標的一本鎖核酸を舍む第 2のサンプルどを該テンプレート パターンを得た条件と同じ条件の下で^ iさせ、 次いで蛍光の有無及び強度を該プローブ アレイ上の各々の; ¾S己列の一 ^J核酸プローブについて測定し、 該プロ一ブァレイ上の 各々の 1本鎖御 プローブの位置とその蛍光特性との閣係を示すサンプルパターンを得る 呈:
( e ) 該サンプルパターンを上 ( b ) 及び (c ) で得た n個のテンプレートパタ 一ンど对比し、 該バターンと宾質的に一致するテンプレートパターンがある場合に、 その テンプレートパターンの作成に用いた一本鎖核酸の塩 を該標的一本鎖核酸の、 未知 o^SS^'iどして特定する 呈、
を有するこどを待徵とするものである。 また、 本 明の他の実施態樣は、 例えば 1塩基ミスマッチと 2塩基ミスマッチハイブリ ッド体の蛍光強度との間にしきい悛 (threshold) を設け、 ポジティブどネガティブに区別 する点にひとつの特徵を有する。 係る他の宾 態樣は、 標的一本鎖核酸の所定の部位の、 未知の^! を特定する方法であって、
( a ) 該未知の塩 ¾1己列の予想される複数の塩^!己列の各々に対して栢捕的な塩基 ¾?'J を有する 1畚〜 n春 ( n≥2 ) の複数種の一本鎖核酸プロ一ブの各々が基体上に亙いに隔 離されるように酉^されているプローブアレイを用意する
( b ) 該一本鎖核酸プローブの内の 1泰目の塩 ¾S己列に対して ¾ ^相補的な塩 ¾g己列を 有し、 かつ標識か された一本鎖核酸を舍む第 1のサンプルど該プローブアレイどを亙い にネ S#的な一本鎖ネ¾¾同士 二 ネ を形成する条件下で;^させ、 ! ^される蛍光を 該プロ一ブアレイ上の各々の塩 び' Jの一本鎖核酸プローブについて測定し、 該プローブ アレイ上の各々の 1本鎖 プローブの位置とその蛍光待す生との関係を示すテンプレー卜 ノ、'ターン I 得る 呈;
( c ) 得られた第 1のテンプレートパターンを嫩斤し、 各位置のプローブどミスマッチ 煤 数 (i ) を有する二本鎖核酸の蛍光量の平均値 (Fi) 算出する: ^里;
( d ) ミスマッチのない完全相補的な二本鎖核酸の蛍光量 ) ど、 1塩基ミスマッチ を有する二本鎖 の蛍光量の平均値 (F,) との差 (Fli0) を求め、 さらに、 (i+1) 塩基ミ スマッチ 有する二本鎖ネ¾1 の蛍光量 (Fi+]) ど i塩基ミスマツチの蛍光量 (F;) の差 (Fi+U) を求め、 Fi, i+1 <く F iとなるような iを¾ ^する 呈;
( e ) 第 2春目のプローブの埴絲 ' Jに対して、 ミスマッチ塩 ¾#ォの数が i以下になる
Figure imgf000006_0001
有する一本鎖核酸プローブの基体上の位置をポジティブとし、 ミスマ ツチを有する塩基配列のプローブの基体上の位置をネガティブとし、 ボジティブの位置が 形成するテンブレ一トパターン IIを得る 呈;
( f ) ( e ) と同一の係作を他のすべての一本鎖核酸プロ一ブについて行い、 ミスマツ チ塩^^の数が i以下になる塩基配列を有する一本鎖核酸プローブの基休上の位置が形成 するテンブレー卜パターン Π Ι〜ηを得る ;
( g ) 該プローブァレィと該標的一本鎖核酸を舍むサンプルと 該苐 1のテンブレー卜 パターンを得た条件と同じ条件の下で^^させ、 蛍光の有無及び強度 該ブ σ—プアレィ 上の各々の塩蘇己列の一本鎖核酸プローブについて測定し、 該ブローブアレイ上の各々の
1本鎖核酸プローブの位置どその蛍光待 f生どの関係を示すパターンを得る ;
( h ) 該パターンを上 i ^呈 ( b ) ( e ) 及び (ί ) で得た η個のテンプレートパター ンと对比し、 該パターンと実質的に"^するテンプレートパターンがある場合に、 そのテ ンブレートパターン ίこ対 する一本鎖核酸の塩基酉 1 Jを該檫的一本鎖核酸の、 未知の塩基 配列としズ特定する ^圼、
を有することを特徵どするものである。
そしてこのような態樣を採用するこどで、 上己ポジティブと区別されたスポ 'ソ トが基板 上で形成するパターンを 象として得、 それ 予想パターンど tt^することによりその配 列を 斤することができ、 未知の遺伝子酉 1 Jを容易 ίこ特定するこどができる。
また、 本 明においては、 さらにこのような 1塩基ミスマッチと 2塩基ミスマッチを完 全に区別するためのハイプリダイゼーション ¾^条件を提示する。
更に、 本^明にかかるハイブリダィゼーシヨン^方法は、 標的一; Φ^ί核酸を舍むサン プルどプローブアレイどを^ ^させる ίΙにおい 、 プローブアレイ基板をサンプルを舍 む ϋ中で熱変性し、 その後基板をサンプル^ ¾に¾したまま、 二 ¾形成 に適した 温度に降下させて を行なうこどを特徵どするものである。
上記の方法において熱变性を行なう温度は 6 0°ひ が好ましい。 更に、 二本鎖形成反 を行なう温度は 4 0°C i-であるこど 好ましい。 更に、 熱変性に要する時間は 1 0分 >^_Lであるこど 予ましい 0
一方、 本 明の检出方法は、 上記のハイブリダィゼーシヨン^^方法 用いたサンプル の検出方法であつて、 显度を降下させて^^を行なう 呈の後、 温度を上异させた状 態で洗浄 行なうことを特徴どするものである。
また、 上記方法において前記サンブルを含む溶液の二本鎖形成^^における ¾¾i農度を 高く し、 前 先浄における 農度を低くするこどが好ましい。 更に、 ¾ ^本鎖形成反 における^ ¾中にホルムアミ ドを舍有させることか'好ましい。 図面の簡革な説明
図 1は、 6 4種のブ'ローブを用いた場ノ、の ffi^ 例を示す。 図 2は、 標的核酸の配列に対して基ネ のポジティブど剡断される領 i或の配置のパタ一 ン 示す図である。
図 3は、 標的核酸に対する変異酉 】において基ネ^ Lでポジティブど判断される領 i或の配 置のパターンを示す図である。
図 4は、 実 例 1で得られた蛍光量のノ、"ターンを示す図である。
図 5は、 宾 例 2において予想されるパターンを示す図である。
図 6は、 実抱例 2で得られた蛍光量のしきい值 1 0%でのパターンを示す図である。 図 7は、 宾拖例 3で得られた蛍光量のノ、'ターンを示す図である。
図 8は、 ゲノム DNAを用レ、たハイプリダイゼ一ション «の,き果を示す図である。
明を実拖するための最良の形態
以下本 明につ 、て具 勺 [こ説明する。
(蛍光像による判定)
本 明のー实拖態樣では、 ミスマッチを起こす可能性のある核酸塩基が近接して存在す る場合に特に有効である。 ここでは、 癌抑制遺伝子 p 5 3の 2 3 8春目、 2 3 9畚目のァ ミノ ifeg己列に対 する塩基酉び' J 含む5' GATGGGNCTC顧 GTTCAT ^例どして说明する。 上記例 は、^明の を説明するためのひとつの形態であり、いかなる形態のアレイにおいても、 本 明は^象どして^ ¾するどいう点では同樣な概念を提示しており、何らアレイの形態、 プローブの ¾ ^を するものではない。 また、 当然のことながら、 S BH法も本發明の 斤对象である。
上 ' Jにおいて、 Nで記した各 基部分を 4種の塩基 (A、 G、 C、 T) に置き換えた プローブの完^ Ητノ トを用意した場合、 つまり、 3力所 绕している必要はない) の塩 基について調べる場合には、 43= 6 4種の、 5力所の場合には 45= 1 0 2 4種のプロ一 ブ '基ネ に並ぶ。
6 4種のブローブを用いた場合の配置例 図 1に示す。
6 4種プローブアレイを 4分割した左上の領¾には、 最初の Νが Αであるプローブ (プロ —ブ春号 1〜: L 6) ¾己置され、 左下には Gであるようなプローブ (プローブ春号 1 7〜 3 2) ¾己置される。 同樣に、 右上は C (ブローブ舂号 3 3〜4 8) 、 右下は T (プロ一 ブ春号 4 9〜6 4) となる。 各領战の中で、 2春目の Nが Aであるようなプローブは左か ら数えて 1歹1 J目、 Gは 2列目、 Cは 3列目、 そして Tは 4列目に位置する。 また、 3眷目 の Nが Aであるようなプローブは上から数えて 1行目、 Gであるような酉 1 jは 2行目、 同 樣に Cが 3行目、 T 4行目に配置される。 その結果、 例えば、 s'GATGGGACTCMGTTCAfど いった酉 ' jは最も左上のスボッ 卜に対 する。 また、 正常な遺伝子に相当する酉 ' Jである s'ATGAACCGGAGGCCCATC3'は、 右から 3列目、 上から 3行目の位置にあるプローブ DNA 5'GATGGGCCTCCGGTTCAf'とハイブリッ ドを形成することが期待される。
以下、 1塩基ミスマッチをポジティブスポッ トどして极ぅ場合についズ説明する。 この 場合に、 完全マッチ酉 ' Jか' 4 2春のプローブ (正常遺伝子) であるとするど、 ポジティブ ヒ判断される 1塩基ミスマッチ配列は、 塗りつぶされた 9カ所ヒなり、 完全マ'ソチど合わ せて図 2に示されるようなパターンを形成するこど 予想される。
これに対し、 標的御 の特定すべき配列に対する ^では例えば図 3に示すような パターンの变^ 見られる。
本!^明では、 このような完全マッチど 1塩基ミスマッチ らなる予想される蛍^ 、。ター ン像を予めコンピュータ等の 己憶装置に入力しておき、 所定の方法で得られる蛍光像との tt^により判定を行う。 この時、 それぞれのポジティブスポッ 卜の蛍光強度の詳細な定量 データは必要ない。单にあるしきい儘に対するポジティブ、ネガティブの判定のみで良く、 簡便 つコンビユータ等 ィ した自動化された判定 可能どなる。
(しきい値の
18merfl^のプローブを用いる場合 (::は、 そのしきい值を通常 1塩基ミスマツチの蛍光強 度ど 2塩基ミスマッチによる蛍光強度どの間に設定するの 好ましい。 蛍光強度はそれぞ れの酉 1 j組成、 ^条件により異なるが、 最も高い蛍光強度 (通常は完全マッチのもの) の 5 0%から 2 5 %の il より好適には 30%から 20%をしきい値として ¾:定するど良い。 プローブ長が短い場合には、 しきい値はさらに低く なる。
3塩基ミスマッチを舍むものは;^値の 1割以下の蛍光量であり、 完全に区別できる。 しきい値を 蛍光量の 1 /4 (こ¾¾した場合、 完全マッチ酉 ' J及び 1塩基ミスマッチ 配列を 4 , 2塩基ミスマッチ δ 1 Jを 1 、 3塩基ミスマッチ酉び1 Jを 0どして蛍光強度の分布 を予想するど図 4のようになる。 より具 ώ勺な判定方法について上 につい 説明する。
ハイブリダイゼーション が極めズ選 ί尺的に進行した場合には、 強い蛍光は 1点 (完 全マッチ) に集中する。 次に惑度を徐々に上げるど、
Figure imgf000010_0001
3から予想される ように、 1塩基ミスマッチは完全マッチを中心に縦横のライン状に並ぶはずである。 しか し、 宾際の蛍光像は必ずしも強いスポッ 卜 中心に縦横それぞれ 3個ずつライン狀に並ぶ どは限らない。 1度基ミスマッチ間の安定す生の達いにより、 6個がすべて同じ禾!^の を有するどは限らないため、 検出されないスポッ トもあるが、 少なく どもこれらのライン|えにいくつかスポッ トが見えるはずである。 その時、 残る 3個の 1塩基ミスマッチも予想 される位置に強度の濃淡はあるものの検出できる。
また時には、 完全マッチど 1塩基ミスマッチが同程度の蛍光強度を冬え、 最初から^ マッチど 1塩基ミスマッチどの 1 0スボッ 卜からなる予想される像に近い 象が得られる。
2塩基ミスマッチは、 時ヒしズしきい值を越える場合があるが、 そのような場合でも、 予想、。ターンからのずれどして容易に判別できる。
このように予想パターンと実際に得られる蛍光像との t により判定する本発明の方法 は、 檢 伝子中の 異の有無を容易に判定でき、 さらにどの塩基 (複数でも が何に 変異している 、変異の内容を同時に判定 可能であるどいう特徵を持つ。
また、 6 4種のプローブによるハイブリダィゼーシヨン の結果を、 'ターンて するどいう考えは、 1スポ'ソ 卜のみで判断する場合に比べ、 より確実な判断どいう点で有 利である。 6 4種の DNAプローブどのハイブリッドは、 それぞれの酉 2^により 定性 異なるため、 必ずしも完全マッチの場合 圧倒的に安定で強 、蛍光を するヒいう保 はない。 ま^ 基 ¾Jのゴミゃハイブリダィゼーシヨン 時のアーティファクトどいつ たこど 、'原因で、 どれ h:'最強のスポッ トで完全マツチのスボッ トである 、列断できないこ とも多い。その点バターンでの判定は、多少の蛍光量のばらつき あってもそれを補える。
(プローブ
本^明に用いられるプローブ長は 8merから 30meril度、 より好ましくは、 12merから 25mer である。 8mer以下では 1塩基ミスマッチ 有するハイプリッド体の安定性は低く、 完全マ ツチ由来の蛍光量の方 憂位である。 また、 30merより長いプローブでは 2塩基ミスマッチ 体の蛍光が、 場合によっては (例えば、 丙 にミスマッチ窗所 存在する場合) 1 ¾ ミスマッチよりも強く なる。
(ハイブリダィゼーシヨン 条件)
上記良好なしきい值 孚えるハイブリダィゼーシヨン の条件としては、 基板^ f本 を検 ¾¾中に浸したままカ^ ¾し、 基 feJの DNAプローブど検体 DNAの双方を同時に 熱変す生し、 その後徐々 してやや高めの温度でハイブリダィゼーシヨン^^を行う。 ^時の ¾i級は ΙΟΟπιΜ以下が望ましい。
熱変性を亍ぅための温度ヒしては、 6 0°CvVLL、好ましくは 8 0°O iが適当である。 熱変す生のための温度の設定は、 DN Aアレイ基板自体の安定性、 検体の長さ、 濃度、 標識 化合物の種類 ί: して決められる。 例えば、 樹脂 塗布しその樹脂ど DNAど ^^さ せて結合したような基板では、 高温にすることにより、 ¾ "脂層が石皮壞されるこどがある。 それに対し、 シランカツプリング剤を作製過程で用いた基板は、 熱に対し tt^的安定であ り、 さらに高温にするこどができる。 検体 DNAがー本鎖の場合には、 7 0°C _Lで分子 内二^ ^構造はほぼ解消されるど考えられるが、 二本鎖の場合或いは検体 DNA 長い一 本鎖 DNAの場合には、 さらに溫度を上げたり、 ホルムアミ ド等の变性剤を加えて一 ^i i への解離を ¾ する必要 ある。 熱变性に要する時間は 1 0分 y 、 好ましくは 3 o i 度が良い。
ハイブリダィゼーシヨン^^の条件は、 プローブ長、 m 検体の種類を考慮し、 常法 に い温度や 変えるこどによって行われる。 本 明のような、 極めて類似した配 列を区別して認識する めの条件どして好適に用いられるのは、 100π を含む^ ¾中、 4 5°Cで 3時間 である。 しかし、 時間は検 ί により大きな影響を受け、 上記 条件に限らな 、。 高 の検体ならば 3時間以内で充分判定 能であり、 また、 検 体 が希薄であれば、 1 0時間ン ±·の^^時間 必要である。 ホルムアミ ドをカロえる場 合 (二は を高める必要 >'ある。
(DN Αアレイ基板の製法)
本ハイブリダィゼーション^^を良好に進めうる DN Aアレイの作製方法として、 以下 にその例 示す。 しかし、 本!^明の趣旨は、 基ネ^のハイブリダィゼーシヨンパターンを t iffiし、 検体の塩 '〗を決めるための簡便な^法を示すことであり、 勺に、 基板の 作製方法にはこおわらない。 DNAアレイでは、 DNAプローブを基ネ^:面にある官能基ヒの JSJSにより共有結合に より固定する。 該官 基と DNAとの、結合 # ^どして、 例えば、 ガラス表面のマレイミ ド 基ど DNA«の S H基との結合 を行わせる方法について示す。
マレイミ ド基の導入方法どしては、 まず、 ガラス基板にアミノシランカップリンダ剂を させ、 次にそのアミノ基と EMC S試藥 ( -(6-Maleimidocaproyloxy) succinimide: D o j i n社!) との^によりマレイミ ド基 導入する。 DNAへの S H基の導入は、 DNA自動合 «J 5,- ThioHfodifierC6 (Glen Research社船 を用いる事により行うこ とができる。
該 DNA¾¾をィンクジエツ ト法により基ネ^ にスポット 形成させ、 該 DNA基ネ^ L のマレイミ ド基と DNA^¾の S H基どの により、 プローブ DN Aを固定化する。 ィンクジエツ卜法によるマレイミ ド基を有するガラス基板への吐出に適した どしては、 グリセリン、 尿亲、 チォジグリコール又はエチレングリコール、 ァセチレノー ル EH (川村ファイ ンケミカル社 、 イソプロピルアルコールを舍む^ ¾が好ましい。 特にグリセリン 7 . 5 %、 尿素 7 . 5 %、 チォジグリコール 7 . 5 %、 ァセチレノール E H 1 % ( 、ずれも質量%) を会む 、'好ましい。
DN Aが結合したアレイ基板は、 2%ウシ^青アルブミン水〉 中に 2時間浸し、 プロ ッキング を行った灸、 ハイブリダィゼーシヨン ^に用いられる。
【実囊
以下 ίこ実施例により、 より詳細に説明する。
1 :パターン M I )
1 . プローブの 計
癌抑制遣伝子である p 5 3遺伝子の 248春目、 249泰目のアミノ酉 fe§己列に对 する塩 己 列 CGGAGGの中での 異の中で頻度 高いのは、 1春目の Cが Tに、 2眷目の Aが Gに、 そし て 249泰目のアミノ酸 3春目の Gが Tに 異している場合であること 知られている。そこ で、 この 3力所の塩 己列に着目して 6 4種のプローブを設計し卢:。
つまり、 プローブ^:を 18merどし、 その真ん中にこの变異を舍む 6 基を位置させ、 そ の前後を^ で抉んお構造で、 5'ATGMC匪 GAGNCCCATC3'である。 ここで、 Nと表し/ i部分 が 4種の核酸塩基である A、 G、 G、 Tに対 する。 プローブ DN Aは、 份出したい配列 (上
L 1 i ) と 的な酉び1 Κ· 'あるので、 実際には、 5'GATGGGNCTCNNGTTCAfどなる。
図 1には 64種 DNAプローブの DNAアレイ上での酉^図を示した。 己列 (配列畚 号: 1-64) を 勺に表 1に示す。
【表 1】 表 1
Figure imgf000014_0001
正常な遺伝子に相当する酉 1 Jである5' ATGAACCGGAGGCCCATC3'は、 右から 3列目、 上から 3 行目の位置にある 4 2春のプローブ DNA^GATGGGCCTCCGGT CA どハイプリッドを形成す るこどか^待される。
6 4種の実驗でも、 完全マッチ以外に 1塩基ミスマッチのハイブリッド体 らの蛍光が 予想される。 ¾ ^マッチと 1 基ミスマッチと らなる予想される ¾ 、°ターンを図 2に 示す。
2 . マレイミ ド基導入基板の作製
(基《淨)
1インチ角のガラス板をラックに入れ、 超音波洗浄用洗剤に"^ ¾した。 その後、 洗剤 中で 20分間超音波洗洚を行い、 その後、 7 先により洗剤を除去した。蒸留水ですすいだ後、 留水のはいった容器中でさらに超音波^ 5里 20分間行った。 次に、 あら じめ力 π¾して あった 1 N相化ナトリウム溶液に 10分間 ¾した。 引き统きァ 先、 留, i先浄を行った。
(表面 里)
1 %シランカップリング剤水溶液 (信 学工業社製、 商品名 KBM6 0 3 ) に室温で 20分浸し、 その後、 窒素ガスを丙 Sに吹き付けて、 水分を飛ばし、 $ させた。 1 2 0°C にカ^したオーブンで 1時間べークしシランカツプリンク ¾y里を完結させた。统いて、 EM C S (N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimide D o j i n社 を 2.7in g秤量し、 DMSO Zエタノールの 1 : 1溶液に溶解した (最終 ^/炙 0.3mg/ml) 。 シランカップリング剂処 理を行ったガラス基板 この EMC S¾¾に 2時間浸し、 シラン力ップリング剤のアミノ基 と EMC S のカルボキシル基を させた。 この狀態でガラス表面には EMC S由来 のマレイミ ド基が表面に存在することになる。 EMC S¾i¾ど^!させたガラス板は蒸留 水で洗浄後、 玄素ガスで ¾ ^させ、 D N Aどの結合;^に用いられる。
3 . DNAの基板への 合反
( 6 4種 D Ν Αブローブの合^)
5'末端に S H基 (チオール基) を有する上己 6 4種のプローブ DNAは、 (ネぉ べッ クス(こ ί¾¾し合成した。
(DN Αプローブの吐出)
上己 6 4種の D N Aそれぞれ用 、 X以下の吐出操作を行なっ 。各 D N Aを水に溶解し、 SGクリア (グリセリン 7. 5% 尿素 7. 5%、 チォジグリコール 7. 5%、 ァセチレ ノール EH1%を舍む水 を用いて最終^^ 8 μΜになるよう希尺した。 少量のサン プルが吐出できるように改造した B Jブリンター用ヘッド BC62 (キャノン社 |ϋ のノ ズルにこの DNAの^ ¾を 100 μ 1充填した。 各へッドあたり 6種の DNAか'吐出でき るようにしズ 2つへッドを用い、一度に 12種の DNA 吐出し、へッドを 65;交換しズ、 64種の DNAのそれぞれのスポッ トか 3虫立して形成されるように吐出させた。
各プローブを、 スポッ ト径が 70/im、 ピッチか 200μΐΏどなるようにま ¾ し、 8X8の マトリクス;!えに 64種を並べてスポッティ ングした。 その後、 30 显チャンバ一中に «し、 プローブ DN Aを基板に結合させる を行つた。
-ハイブリダイゼーシヨン^
(ブロッキング^)
終了後、 lM a C 1Z5 OmMリン酸緩敲 ( H7.0) にて基板を洗い、 ガラス表面の DNA; を完全に洗い流した。 その後、 2%ウシ^青アルブミン水溶液中 に漫し、 2時間 »し、 ブロッキング^を行った。
(モデル检体 DN Aの合^)
p 53遺伝子の正常な酉 ' 持ら、 プローブ DNAど同じ領域で同じ長さの標識 DNA No.lを作製した。 酉 ' Jは下に示す通りで、 5' にはローダミン 結合してある。
No.l: ^B o-ATGAACCGGAGGCCCATC3'
(ハイブリタ'ィゼーシヨン 条件)
DN Aアレイ基板の入ったハイブリダイゼーション J^用の袋に lOOnM NaClを舍む 10 nMモデル検体 D Ν Α>¾¾を Eml入れ、 最初に 80 °Cで 10 ^ ¾ 、 インキュベーターの溫 度を 45°Cに下げ、 そのまま 15時間^ させた。
5. 検出
は法)
検出は、 蛍: (ニコン社 に画 ί^|斤^ y里 置 ARGUS (浜おホ卜ニタス社 1) を 接統して行っ^。
(結果)
モデル系である 18merの標識 DNA No.lとのハイブリダイゼーション の結果得ら れた蛍光量 、 図 4に示す。 蛍光量の最大值は完全にネ affi的である 4 2春のプローブであ る。 その蛍光量を ( 1 0 0%) として、 その 2 0%にしきい值を設け、 それ Xjiの ヒころを黒く塗りつぶしてある。
N o l O , 2 6 , 5 8の部分のスポッ トも蛍光をもら、 予想パターン図 2ど良〈一致し ズいること わかる。 更にしきい値 下げるこどにより、 予想パターンと"^する。 つま り、 上記 3スポッ トに加え、 マツチを中心に 1塩基ミスマッチ配列の部分が縱横のラ ィ ンに並ぶ。
2 :パターン
実糊ど同樣 ί: 6 4種のプローブ らなる DN Αアレイ基板を作製し、 モデル検体どし ズ No. 2の配列を持つローダミン標識 DNAどのハイプリダイゼーシヨン ¾ ^を行った。 No. 2の酉 ' Jは図 1の No.46プローブど相補的である。
No. 2 : o - ATGAACCAGAGGCCCAT
ハイプリダイゼ一シヨン ^条件も実施例 1ど同樣である。
宾 ' J 1と同樣、 予想されるパターンを求めたのか'、 図 5である。 それに対し、 得ら れた結果を図 6に示す。 しきい值を最大値の 1 0 %に¾¾してハイブリダィゼ一シヨン反 応の結果を黒ぬりで示す。 予想どの对 がよ 、。
(宾施例 3 :パターン で III)
宾旄例 2と同じモデル検体 DNAを用いて宾施例 2ど同樣な宾驗を行った。 但し、 ハイ ブリタ"ィゼーシヨン^!に用いる検体 DNA を 5nMとし、 4 0°Cで ^ ^させた。得 られた結果を図 7に示す。 .
しきい值を 5 0 %にすると、 1 ¾基ミスマッチの 3 4及び 6 2畚のブローブの位置 (斜 線部) に蛍光 现れ、 さらに 3 0%にまでしきい值を下げるど、 予想パターンに合う結果 となる。 この場合、 NO. 6と 2 2の 2塩基ミスマッチも檢出されるが、 1塩基ミスマッチが 構成するパターン らのずれとして、 基ミスマッチであるこど 列別でき、 完全マッチ のスポ 'ゾ 卜が 46 # "であること J定可能である。
実施例 (ゲノ厶検体 D NA H S C 5の調
実 ' 1 Ί におけるプローブの設計 、らプロッキング^^までの橾作を同樣に行な I、、 測 定用の D N Aアレイ基板を得た。 この D N Aアレイ基板を用いて以下の橾作を行なつた。 1) HSC5の p53遺伝子のェキソンの增中 ¾
フランキングイ ントロンの塩基酉 をもどに PCRプライマーを下 己のように合成した。
E5S: 5'-TGTTCAC1TGTGCCCTGACT-3'( exon 5, sense)
E5A: 5'-TGAGGAATCAGAGGCCTGG-3'(exon 5, antisense)
E6S: 5'-GCCTCTGAnCCTCACTGAT-3' ( exon 6, sense)
E6A: 5'-nAACCCCTCCTCCCAGAGA-3'( exon 6, antisense)
E7S: 5'-ACTGGCCTGACTrTGGGCGT-3' ( exon 7, sense)
E7A: 5'-TGTGCAGGGTGGCAAGTGGC-3'( exon 7, antisense)
E8S:5'-TAAATGGGACAGGTAGGACC-3'(exon 8, sense)
E8A: 5'-TCCACCGCTTCTTGTCCTGC-3'(exon 8, antisense)
PCR^は、 50〃Lの: PCR i^ ^に 10〜25ngのゲノム DNA、 0.4 1^の それぞれのェキソンプライマーのセッ トをカロえ、 94°C(30秒)、 60。C(45秒)を 40 サイクル #桑り返し^^を行なった。
增幅された產物はェキソン 5〜8に对し、 それぞれ 269、 181、 171、 229塩 ^"長であった。
2)ェキソンの標識化
4つのェキソンに対 するテトラメチルローダミン標 一本鎖 DN Aを得るために上記 增幅されたェキソン DNAの"^を铸型として、 0.2/ Mのセンスプライマーど、 10M Mのテトラメチルローダミン標識 dUTP(FIuoro Red, Amersham Pharmacia B iotech社製)を用い、 96°C(30秒)、 50。C(30秒)及び 60。C(4分)のサイクルの PC R^^25サイクル なった。
得られた一^^ D Ν Αはゲル濾過 (こより精製した。
3)標 ¾Lェキソン 用いズのハイブリダイゼーシヨン ^
上記テトラメチルローダミン標 一本鎖ェキソン DNA 20%ホルムアミ ドを会む 6 X S S PE(0.9M NaCL 60 ,リ M NaH2PCV 6 M EDT A ¾¾に ¾ ^年し、 D NAアレイ基板の入ったハイブリダィゼーション^^用の袋に 2mL入れ、 最初に 80°C 2〜10 ^Η¾ί灸ィンキュベータ一の温度を 45。Cに下げそのまま 1 5時間^^させた„ その 上 iDNAアレイを、 2 X S S P E( 0. 3M NaCL 2 0 NaH2 P〇4、 2 ί Μ EDTA)¾¾に浸し、 5 5°Cに温度 上げて洗いの操作を行なった。
検出
実 例 1ど同樣(こしズ檢出操作を行なつた。
結果
No. 1 0 , 2 6、 5 8の部分のスポッ トも蛍光をもら、 予想パターン (図 8) ど良く一 致しているこどがわかる (図 8 ¾)
実拖例 5 (HS C 4の p 5 3遺伝子の検出)
実 例 1ど同樣に 6 4種のプローブからなる DNAアレイ基板を得た。 以下、 ローダミ ン標識 DNAの代わりにモデル検体として N o . 2の酉 ' 有する H S C 4を用い実 例 2ど同樣にハイブリダイゼ一ション^^を行なった。 なお、 条件は実抱例 4と同樣と した。 その結果、 N o . 1 4の位置に蛍光 見られ予想パターンどの対応が良い結果が得 られた。
產業上の利用可能性
このように、 単にハイブリッドの有無のみで剡定する從來の方法に!;匕べ、 本 明の方法 はさらに 1塩基ミスマッチの蛍光量を考慮 (こ入れることにより精度の良い檢出 ;可能ヒな つた。
DNAプローブどのハイブリヅ ドは、 それぞれの配列によ ') 定性が異なるため、 必 ずしも完全マッチの場合が圧倒的に安定で強い蛍光を するという係 ί£はない。 パターン での判定は、 1スポッ 卜のみで判断する場合に比べ、 より確宾な判断どいう点で有利であ る。
基ネ のゴミ.やハイブリダイゼーション^^時のァ一ティファク トといったこどが原因 で、 どれが最強のスポッ 卜で完全マッチのスポヅ 卜であるか剡断できないこども多い。 そ の点、 本發明におけるパターンでの判定は、 多少の蛍光量のばらつき あってもそれを補 えるこどか^! どなる。
従って、 本 明によって、 遺伝子の变異を、 簡便 つ ί力率的にスクリ一ニングできる検 直方法をォ是供するこど できる。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 標的一本鎖核酸の所定の部位の、 未知の塩蘇 1 Jを特定する方法であって、
( a ) 該未知の塩 己列の予想される複数の塩 列の各々に対して相捕的な塩基 ¾^ を有する 1春〜 n春 (n≥2) の複数種の一本鎖ネ ¾S プローブの各々が基ネ に いに隔 離されるように酉^されているプローブアレイを用意する
(b ) 該ー本鎖核酸プローブの内の 1つが有する塩 ^1 Jに対して ¾^ネ0¾的な塩 ¾@己 列を有し、 かつ蛍 «識 抱された標識化一本鎖核酸を舍む第 1のサンプルヒ該プローブ アレイとを亙いに ¾M的な一本鎖核酸同士が二本鎖核跛を形成する条件下で させ、 未 ^^の標識化一 ^Ji核酸を除去したのらに、 該アレイから! される蛍光強度を該ブロー ブァレィ上の各々の一本鎖¾S ^プロ一ブについて測定し、 該プローブァレィ上の各々の 1 本鎖核酸プ口一ブの位置どその蛍光; m生との関係を示す第 1のテンプレートパターンを得 る ®;
( c ) 他の全ての一本鎖核酸プローブのそれぞれについて、 該ステップ (b ) と同一の 操作を行ない、 該プローブアレイ上の 1本鎖核酸ブローブ f各々の塩 び' Jに対して完全 相補的な一本鎖核酸ど二本鎖核酸 形成したどきの該プロ一プアレィ上の各々の 1本鎖核 酸プローブの位置どその蛍光特性どの関係 示す第 2〜第 nのテンプレートパターンを得 る II;
( d ) 該プローブアレイど該標的一本鎖 ¾Ι を舍む第 2のサンブルとを該テンプレート パターンを得た条件ど同じ条件の下で^させ、 次いで蛍光の有無及び強度を該プローブ アレイ上の各々の;^!己列の一本鎖核酸プローブについて測定し、 該プローブァレイ上の 各々の 1本鎖 プローブの位置どその蛍光特性どの間係を示すサンプルパターンを得る
( e ) 該サンプルパターンを上 ^ ^里 ( b ) 及び (c ) で得た n個のテンプレ一卜パタ 一ンど对比し、 玆パターンと宾質的に一致するテンプレ一卜パターンがある場合に、 その テンプレー卜パターンの作成に用いた一本鎖核酸の塩蘇 ' 該標的一本鎖核酸の、 未知 の塩 ' Jどして特定する 呈、
を有するこど 特揿どする標的一本鎖核豉の、 所定の部位の、 未知の塩^^列を特 する 方法。
2. 標的一本鎖核酸の所定の部位の、 未知の塩 び を特定する方法であって、
( a ) 該未知の塩 己列の予想される複数の塩 己列の各々に対してネ S#的な塩基酉 ' J を有する 1春〜 n畚 (n≥2) の複数種の一本鎖核酸プローブの各々 基体上に亙いに隔 離されるように酉2 ^されているプローブアレイを用意する ;
( b ) 該一本鎖ネ劾 プローブの内の 1畚目の塩 ¾S己列に対して完全ネ Sffi的な塩 ¾g己列 有し、 かつ標識が施された一本鎖核酸を舍む第 1のサンプルど該プローブアレイとを亙い にネ a«的な一本鎖ネ劾 同士が二本鎖核酸を形成する条件下で させ、 觀察される蛍光 該ブローブアレイ上の各々の塩基酉び1 Jの一本鎖核酸ブローブについて測定し、 該プローブ アレイ上の各々の 1本鎖核酸プローブの位置どその蛍光待 (·生との関係を示すテンプレー卜 ハ 'ターン Iを得る ;
( c ) 得られた第 1のテンプレートパターンを嫩斤し、 各位置のブローブとミスマッチ 塩 数 (0 を有する二本鎖核酸の蛍光量の平均値 (F;) を算出する: ^呈;
( d ) ミスマッチのない完全相補的な二 ^i iネ滅の蛍光量 と、 1塩基ミスマッチ を有する二;^核酸の蛍光量の平均値 (F;) どの差 (Flit)) を求め、 さらに、 (i+1) 基ミ スマッチ 有する二本鎖 «の蛍光量 (Fi+1) ど i塩基ミスマッチの蛍光量 (Fi) の差 (Fi+U) を求め、 Fi, i+1 くく FH, iどなるような する:! ^呈;
( e ) 第 2眷目のプローブの塩叙 2 ^に対して、 ミスマッチ塩^の数が i以下になる 塩 ¾S己列を有する一本鎖核酸プローブの基体上の位置をボジティブとし、 i + l v'X_Lのミ スマッチを有する塩 己列のプローブの基体上の位置をネガティブどし、 ポジティブの位 置が形成するテンプレー卜パターン IIを得る: ι ίΕ;
( f ) ( e ) ど同一の橾作を他のすべての一 ^J i核酸プローブについて行い、 ミスマツ チ塩
Figure imgf000021_0001
するテンブレートパターン ΠΙ〜ηを得る 里;
( g) 該ブローブアレイと該標的一本鎖ネ劾 を舍むサンブルどを該第 1のテンプレート バターンを得た条件と同じ条件の下で^^させ、 蛍光の有無及び強度を該プローブアレイ 上の各々の塩翻己列の一本鎖核酸プローブについて測定し、 該ブローブァレィ上の各々の
1本鎖 ¾a¾プ口一ブの位置どその蛍光特性どの関係を示すノぐターンを る #: (h) 該パターンを上 ( b) ( e ) 及び (ί ) で得た η個のテンプレートパター ンと对 t匕し、 該パターンヒ宾質的に一致するテンプレートパターンがある場合に、 そのテ ンブレートパターン ίこ対 する一本鎖核酸の塩基酉び1 Jを該標的一本鎖核酸の、 未知の塩基 酉^ して特定する J¾、
を有するこどを待徵とする標的一本鎖核酸の、 所定の部位の、 未知の塩 ¾| ' Jを特定する 方法。
3 . 該プローブアレイヒ該標的一本鎖ネ¾¾を含むサンプルとを該第 1のテンブレートパ ターンを得た条件ど同じ条件の下で させた結果得られる該アレイの各々のサイ 卜 ら 得られる蛍光の強度を Fiをしきい値ヒして二 ί直ィ し、 該プローブアレイ上の各々の 1本鎖 核酸ブ口一ブの位置とその蛍光特性どの関係を示すパターンを得る 呈を更にを備えてい る請求項 2に の方法。
4.該プローブァレィ上のプローブの長さが ¾nerから 30merの長さである請求項 2 & ^の 方法。
5 . 該プローブアレイ上のプローブの長さが; L2mer ら 25merの長さである請求項 4¾¾ の方法。
6 . 前記ミスマヅチの数 ( i ) が 1である請求項 2に の方法。
7 . 第 1のテンプレー卜パターン 得るために 1春目の塩基酉び]に対して完全ネ 的な 塩 ¾S ' Jを有し、 つ蛍 ¾ 、識を された一本鎖核酸を含む第 1のサンブル及び標的一本 鎖核酸を合むサンブルとプローブアレイヒを^させる I里において、 プローブアレイ基 扳をサンブルを合む^^中で熱变性し、 その後基板をサンブル^ :浸したまま、 ニ^ ί 形成^!に適した温度に降下させてハイブリダィゼーシヨンを行う工程を更に有する請求 項:!〜 6の 、ずれ に の 。
8 . ブロープアレイ上のプローブの長さが I8merであり、熱変性を行う温度が 7 0。ひ XJ であ ')、 二本鎖形成 を行う温度が 4 0。O^J であ ')、 その時のサンブル溶液に 1 0 0 mMの が舍まれて 、る請求項 7に の方法。
9 . 標的一本鎖核酸を舍むサンブルどプローブァレイどを ½させる こおいて、 ブ ローブァレィ基板をサンブルを舍む 中で熱変性し、 その後基板をサンブル溶液に浸し たまま、 二本鎖形成^^に適した温度に降下させて ^を行なうこと 特徵どするハイブ リダイゼーション 方法。
1 0 . 前ま己熱変性 ¾·行なう温度が 6 0。ひ である請求項 9 I i のハイブリダィゼー ション SJ 法。
1 1 . 前 本鎖形成^^ 行なう温度が 4 0。ひ である請求項 9 (こ のハイプリ ダイゼーション 方法。
1 2 . 己熱変性に要する時間は 1 0分-Aiである請求項 9に のハイプリダイゼー ショ、ノ 1 ]^Τ: 。
1 3 . 請求項 9〜1 3に のハイブリダィゼーシヨン 方法を用いたサンプルの検 出方法であって、 前 显度 降下させて ^を行なう:1 ^里の後、 温度を上弄させた状態で 洗淨 行なうこどを特徵とする檢出方法。
1 4 . 前記サンプルを舍む)'^ ¾の二本鎖形成^!における溶¾¾を高く し、 先淨 における^ を低くする請求項 1 3に の検出方法。
1 5 . ifrte^^ i形成^^における溶液中がホルムアミ ドを舍有する請求項 9〜ι 4の いずれかに の検出方法。
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