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WO2002002815A1 - Method of detecting nucleotide polymorphism - Google Patents

Method of detecting nucleotide polymorphism Download PDF

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WO2002002815A1
WO2002002815A1 PCT/JP2001/005792 JP0105792W WO0202815A1 WO 2002002815 A1 WO2002002815 A1 WO 2002002815A1 JP 0105792 W JP0105792 W JP 0105792W WO 0202815 A1 WO0202815 A1 WO 0202815A1
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WO
WIPO (PCT)
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oligonucleotide
enzyme
nucleic acid
nucleotide polymorphism
activity
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2001/005792
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Yutaka Takarada
Toshiya Aono
Masaya Segawa
Satoko Yoshiga
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Toyobo Co Ltd
Original Assignee
Toyobo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Toyobo Co Ltd filed Critical Toyobo Co Ltd
Priority to US10/332,211 priority Critical patent/US20040121344A1/en
Priority to EP01947806A priority patent/EP1300473B1/en
Priority to DE60135751T priority patent/DE60135751D1/de
Publication of WO2002002815A1 publication Critical patent/WO2002002815A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6827Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6858Allele-specific amplification

Definitions

  • the present invention relates to a method for analyzing a nucleic acid sequence. More specifically, the present invention relates to a nucleic acid sequence analysis method capable of detecting a nucleotide polymorphism contained in a specific nucleic acid sequence.
  • the nucleic acid sequence analysis method of the present invention is useful in genetic engineering, molecular biology and related industrial fields.
  • the nucleotide polymorphism is a genotype having a sequence different from that of the wild-type, and the polymorphism gene plays an important role as a cause of inter-individual variation in drug metabolism in the occurrence of side effects and treatment failure. It is also known as a cause of individual differences such as basal metabolism known as constitution. In addition, they also serve as a genetic force for many diseases. Therefore, the elucidation of these mutations is clinically important, and routine phenotyping is particularly recommended for psychiatric patients and volunteers in clinical research (Gram and Brsen, European Consensus Conference). on Pharmacogenetics.
  • nucleic acid sequence analysis technique there is, for example, a nucleic acid sequence determination method (sequencing method).
  • Nucleic acid sequencing can detect and identify nucleotide polymorphisms in nucleic acid sequences, but requires a great deal of effort to prepare type III nucleic acids, polymerase reaction, polyacrylamide gel electrophoresis, and nucleic acid sequence analysis. And need time. Labor saving can be achieved by using an automatic sequencer in recent years, but there is a problem that expensive equipment is required.
  • nucleic acid fragments Is electrophoresed on a plate of agarose gel or polyacrylamide gel, separated according to the size (length) of the fragments, denatured to single strands, and a membrane such as nitrocellulose or nylon is attached to the plate, and nucleic acid The fragment is transferred as it is to the electrophoresis pattern, immobilized, and hybridized with a base polymorphism-specific DNA probe labeled with radioisotope (RI) etc. to form a hybrid, on a membrane complementary to the probe. Nucleic acid fragments are detected by autoradiography or the like.
  • the electrophoretic position and molecular weight of the target nucleic acid fragment can be determined, but the operation such as electrophoretic photoradiography requires a long time, and is rapid.
  • the specificity of the probe is not strict, it will be necessary to detect the presence or absence of the nucleotide polymorphism. There were problems such as difficulty in identifying similar sequences.
  • An object of the present invention is to provide a nucleic acid sequence analysis method capable of easily detecting the type of nucleotide polymorphism in a specific nucleic acid sequence containing a nucleotide polymorphism contained in a sample.
  • FIG. 1 shows the positions of the oligonucleotides used in the examples of the present invention.
  • nucleotide polymorphisms can be easily detected by sequentially or simultaneously using ligase activity and nuclease activity.
  • a first wild-type oligonucleotide having a complementary sequence (base) and a first wild-type oligonucleotide that hybridizes adjacent to the first wild-type oligonucleotide and has a base sequence that is not complementary to the wild-type base at the base polymorphism site (1) one or more first polymorphic oligonucleotides having a sequence (base) complementary to the polymorphic base at the (2) base polymorphism site;
  • nucleotide polymorphism By hybridizing with a chromosome or a nucleic acid fragment and using nuclease activity and ligase activity, it was found that nucleotide polymorphism can be detected by detecting nuclease activity and ligase activity.
  • the present invention has been completed. That is, the present invention has the following configuration.
  • Item 1 A method for detecting a nucleotide polymorphism contained in a sample, wherein a nuclease activity and a ligase activity are used sequentially and Z or simultaneously.
  • Item 2 In a method for detecting a nucleotide polymorphism of a specific nucleic acid sequence containing a nucleotide polymorphism contained in a sample, an enzyme having a nuclease activity and an enzyme having a ligase activity are used sequentially and / or simultaneously. Item 1. The method according to item 1.
  • Item 3 The method according to Item 1, wherein the enzyme having nuclease activity and the enzyme having ligase activity are the same.
  • Item 4 The method according to Item 1, wherein the enzyme having nuclease activity is at least one enzyme selected from the group consisting of Mung bean nuclease, S1 nuclease, and exonucleases I to VII.
  • Item 5 The method according to Item 2, wherein the enzyme having ligase activity is at least one enzyme selected from the group consisting of T4 DNA ligase, Ecoli DNA ligase, and RNA ligase.
  • Item 6 The method according to Item 1, wherein the enzyme having nuclease activity and the enzyme having ligase activity are thermostable enzymes.
  • thermostable enzyme is derived from Tth, Taq, KOD or Pfo.
  • thermostable enzyme is derived from Tth, Taq, KOD or Pfo.
  • enzyme having nuclease activity is DNA polymerase.
  • Item 9 The method according to item 8, wherein the DNA polymerase is a thermostable enzyme derived from Tth, Taq, KOD or Pfu.
  • Item 10 A method for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample,
  • Nuclease activity removes the base sequence that does not form a base pair in the second oligonucleotide at the sequence portion of the nucleotide polymorphism when each oligonucleotide hybridizes, and then activates the ligase activity.
  • Item 11 The method according to Item 10, wherein one oligonucleotide obtained by binding each oligonucleotide is detected using a detection probe.
  • Item 12 The method according to Item 10, wherein the nucleotide portion of the nucleotide polymorphism is one nucleotide, and the nucleotide is a nucleotide that is predicted to have a nucleotide polymorphism.
  • Item 13 After removing bases that do not form base pairs in the nucleotide polymorphism sequence generated when each oligonucleotide hybridizes by nuclease activity, each oligonucleotide binds by ligase activity, resulting in one oligonucleotide.
  • Item 10 The method according to Item 10, wherein the oligonucleotide is repeatedly formed.
  • Item 14 The method according to Item 10, wherein at least one of the first oligonucleotide and the second oligonucleotide is labeled in advance.
  • Item 15 The method according to Item 14, wherein the label is any method selected from the group consisting of an enzyme, a biotin, a fluorescent substance, a hapten, an antigen, an antibody, a radioactive substance, a luminophore, and a specific nucleic acid sequence. .
  • Item 16 Each different label is bound to the sequence portion that does not form a base pair in the base polymorphism sequence portion of the second oligonucleotide and the first oligonucleotide that hybridizes to the target sequence, and the base pair is formed by nuclease activity.
  • Item 11 The method according to Item 11, which comprises a second oligonucleotide capable of detecting whether or not the sequence of the portion that does not form the DNA is removed by the two types of labels.
  • Item 17 The method according to Item 1, wherein the nucleotide polymorphism includes one of a single nucleotide polymorphism, an insertion, and a deletion polymorphism.
  • Item 18 A method for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample,
  • the 3 ′ of the first oligonucleotide Preparing a second oligonucleotide that is located adjacent to the side and hybridizes with the chromosome or nucleic acid fragment, and contains a sequence in which one or more 5′-terminal nucleotides do not hybridize to the chromosome or nucleic acid fragment;
  • Item 19 In a method for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample, an enzyme having a nuclease activity and an enzyme having a ligase activity are used sequentially and / or simultaneously. 8. The method according to 8.
  • Item 20 The method according to Item 18, wherein the enzyme having nuclease activity and the enzyme having ligase activity are the same.
  • Item 21 The method according to Item 18, wherein the enzyme having nuclease activity is at least one enzyme selected from the group consisting of Mung bean nuclease, S1 nuclease, and exonuclease 1 to ⁇ 11.
  • Item 22 The method according to Item 18, wherein the enzyme having ligase activity is at least one enzyme selected from the group consisting of T4 DNA ligase, Ecoli DNA ligase, and RNA ligase.
  • Item 23 The method according to Item 18, wherein the enzyme having nuclease activity and the enzyme having ligase activity are thermostable enzymes.
  • Item 24 The heat-resistant enzyme according to Item 23, wherein the enzyme is derived from Tth, Taq, KOD or Pfu. Method.
  • Item 25 The method according to Item 18, wherein the enzyme having nuclease activity is DNA polymerase.
  • Item 26 The method according to Item 25, wherein the DNA polymerase is a thermostable enzyme derived from Tth, Taq, KOD or Pfu.
  • Item 27 A method for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample,
  • the 5 ′ of the first oligonucleotide Preparing a second oligonucleotide which is located adjacent to the side and which hybridizes with the chromosome or nucleic acid fragment and contains a sequence in which one or more 3′-terminal nucleotides do not hybridize to the chromosome or nucleic acid fragment;
  • each oligonucleotide nucleotide is removed by ligase activity. Combining.
  • Item 28 In a method for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample, an enzyme having a nuclease activity and an enzyme having a ligase activity are used sequentially and Z or simultaneously.
  • Item 27 The method according to Item 27.
  • Item 29 The method according to Item 27, wherein the enzyme having nuclease activity is the same as the enzyme having ligase activity.
  • Item 30 The method according to Item 27, wherein the enzyme having nuclease activity is at least one enzyme selected from the group consisting of Mung bean nuclease, S1 nuclease, and exonucleases I to VII. .
  • Item 31 The method according to Item 27, wherein the enzyme having ligase activity is at least one enzyme selected from the group consisting of T4 DNA ligase, Ecoli DNA ligase, and RNA ligase.
  • Item 32 The method according to Item 27, wherein the enzyme having nuclease activity and the enzyme having ligase activity are thermostable enzymes.
  • thermostable enzyme is derived from Tth, Taq, KOD or Pfu.
  • Item 3 4. The method according to Item 27, wherein the enzyme having nuclease activity is DNA polymerase.
  • Item 35 The method according to Item 34, wherein the DNA polymerase is a thermostable enzyme derived from Tth, Taq, KOD or Pfu.
  • kits for identifying a nucleotide polymorphism in a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample comprising: (i) a wild-type first oligonucleotide and one or two types of polynucleotides; (Ii) at least one first oligonucleotide selected from the group consisting of type first oligonucleotides, (ii) the nucleotide polymorphism complementary to the chromosome or nucleic acid fragment of a strand strand to which the first oligonucleotide hybridizes, and A second oligonucleotide comprising a sequence that does not hybridize in the sequence portion of (i), (iii) at least one enzyme having nuclease activity and ligase activity, and (iv) a detection probe, wherein the detection probe comprises The nucleotide sequence that does not form a
  • nucleotide polymorphism includes any one of a single nucleotide polymorphism, an insertion, and a deletion polymorphism.
  • the chromosome containing a specific nucleotide polymorphism site or a fragment thereof contained in a sample is not particularly limited as long as it is a target nucleic acid containing a nucleotide polymorphism site that carries information on a target gene.
  • the target nucleic acid include an Alu sequence, exons and introns of a gene encoding a protein, and a promoter. More specifically, it includes genes related to various diseases including genetic diseases, drug metabolism, and lifestyle-related diseases (hypertension, diabetes, etc.). For example, hypertension includes the ACE gene.
  • a polymorphic nucleic acid of a chromosome or a nucleic acid fragment At least one nucleotide is point-mutated and replaced with another nucleotide, or a nucleic acid containing an inserted or deleted sequence in a part of a wild-type nucleic acid. It has been elucidated that the constitutions and the like differ depending on such base polymorphisms, and the method of the present invention is a method for examining whether a nucleic acid in a sample has such expected polymorphism. It is.
  • the method for detecting a nucleotide polymorphism according to the present invention is characterized in that a nuclease activity and a ligase activity are used sequentially and / or simultaneously.
  • the activity can be performed by, for example, an enzyme, and an enzyme having both activities can be used.
  • examples of enzymes having nuclease activity include Mung bean nuclease, S1 nuclease, exonucleases I to VII, and the like.
  • Examples of enzymes having ligase activity include T4 DNA ligase, E4 .coH DNA ligase, RNA ligase and the like.
  • thermostable enzymes are preferably thermostable enzymes.
  • the thermostable enzyme is derived from Tth, Taq, KOD, Pfu.
  • the enzyme having nuclease activity is a DNA polymerase, and more specifically, the DNA polymerase is a thermostable enzyme derived from Tth, Taq, KOD, or Pfu.
  • a specific embodiment of the method for detecting a nucleotide polymorphism of the present invention is a method for identifying a nucleotide polymorphism of a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism contained in a sample,
  • nucleotide polymorphisms After removing bases that do not form base pairs in the nucleotide polymorphism sequence generated when each oligonucleotide hybridizes by nuclease activity, and then reacting with ligase activity, specific nucleic acids contained in the sample are removed. Identify nucleotide polymorphisms in sequences It is a method to determine.
  • the first oligonucleotide is an oligonucleotide containing a base complementary to a sequence portion expected to have a base polymorphism.
  • the portion where the nucleotide polymorphism is expected is at the 3 ′ or 5 ′ end of the first nucleotide.
  • the nucleotide polymorphism site is at the 3 ′ end of the first oligonucleotide, and the first oligonucleotide is the second oligonucleotide.
  • the site of the nucleotide polymorphism is at the 5 ′ end of the first nucleotide, and further has a phosphate group at 5 ′.
  • the second oligonucleotide is an oligonucleotide containing a base that is not complementary to the expected sequence portion of the nucleotide polymorphism, and overlaps the first oligonucleotide by at least one base.
  • each oligonucleotide in the present invention is 13 to 35 bases, and preferably 16 to 30 bases.
  • the 3 'terminal base of the first oligonucleotide is designed to be an expected oligonucleotide at the nucleotide polymorphism site
  • the wild-type first oligonucleotide is a base complementary to the base of the wild-type nucleic acid
  • the polymorphic first oligonucleotide arranges a base complementary to the base of the polymorphic nucleic acid.
  • the 5 'end of the second oligonucleotide is designed to overlap with the first oligonucleotide by one base
  • the overlapping base of the second oligonucleotide may be wild-type or polymorphic. Select something other than the complementary base.
  • the first and second oligonucleotides are linked by the nuclease and ligase activities to form one, but the wild-type first In the combination of oligonucleotide / second oligonucleotide / polymorphic nucleic acid and the combination of polymorphic first nucleotide / secondary oligonucleotide / wild-type nucleic acid, the 3 'end of the first oligonucleotide is not complementary, so The nuclease activity does not work, and the overlapping part of the second oligonucleotide is Because it is not removed by, it does not
  • the wild-type first oligonucleotide and the polymorphic first oligonucleotide are allowed to act on a sample separately or simultaneously.
  • the first oligonucleotide and the second oligonucleotide are hybridized to a chromosome or a nucleic acid fragment containing a nucleotide polymorphism.
  • the conditions for hybridization may be those under ordinary conditions. For example, it can be performed according to the method described in Molecular Cloning.
  • the overlapping portion of the second oligonucleotide is cleaved using nuclease activity.
  • the enzyme activities that can be used are as described above. Good More preferably, exonuclease activity is preferred, and exonuclease such as DNA polymerase is preferred.
  • the oligonucleotide on the 5 ′ side and the oligonucleotide on the 3 ′ side are combined using ligase activity to form one oligonucleotide.
  • the site corresponding to the nucleotide polymorphism in the first oligonucleotide is not complementary, the site corresponding to the nucleotide polymorphism is not complementary even if it is cleaved by endonuclease. Cannot bind to any of the oligonucleotides.
  • a nuclease activity and a ligase activity are used for a sample nucleic acid using a wild-type first oligonucleotide
  • the sample nucleic acid is a wild type
  • the sample nucleic acid becomes single-stranded, but a polymorphism does not react.
  • the nuclease activity and the ligase activity are used for the sample nucleic acid using the polymorphic first oligonucleotide
  • the sample nucleic acid becomes single-stranded when the sample nucleic acid is polymorphic, but the reaction occurs when the wild-type is used. Absent.
  • one sample is divided into two, and one performs the reaction using the wild-type, and the other performs the reaction using the polymorphism, and determines whether the reaction has occurred.
  • polymorphism can be clearly known.
  • higher organisms, including humans have one father-derived gene and one maternal-derived gene for one type of gene.
  • the nucleic acid fragment containing the polymorphic sequence may be amplified by an amplification reaction described below.
  • the amplification method is not particularly limited, but includes PCR (Polymerase chain reaction; Japanese Patent Publication No. 4-67960, Japanese Patent Publication No. 4-67957), ASBA (Nucleic acid sequence-based amplincation method; N at U re 350, 91 (1991)), LCR (WO89 / 12696, Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-2934, etc.), SDA (Strand Displacment Amplincation;! Siucleic Acids Res. Vol. 0, 1 691 (1992) ), RCR (WO90 / 01069) TMA (Transcription Mediated Amplification Method; J. CUn. Microbiol. Vol. 31, p. 3270 (1993)) and the like, and any of them can be applied.
  • the single-stranded oligonucleotide obtained by the above reaction is detected using a probe as follows.
  • the probe used in the present invention may contain a nucleotide polymorphism and the detection signal may be different depending on the type, but preferably a nucleotide sequence consisting of at least 15 consecutive nucleotides or more, more preferably at least 18 nucleotides or more. is necessary.
  • a part containing a nucleotide polymorphism site of the first oligonucleotide and a part of the second oligonucleotide both contain a complementary sequence.
  • a probe may be DNA, RNA or PNA as long as it forms a complementary strand with a specific nucleic acid sequence, and can be prepared by chemical synthesis or biological methods.
  • DNA Synthesizer-1391 manufactured by Parkin Elma. Purification may be performed on a MONO-Q column or reverse-phase column on a F PLC.
  • Other synthesis methods include the phosphate triester method, the H-phosphonate method, and the thiophosphite method.
  • a modification group may be introduced by adding nucleotides or oligo dGTP, oligo dATP, oligo dTTP, oligo dCTP, etc. having a biotin, a linker arm, a fluorescent substance, etc. to the 5 ′ end or 3 ′ end during synthesis.
  • a nucleotide having a biotin, a linker arm, a fluorescent substance, etc. is substituted for the nucleotide in the oligonucleotide sequence to synthesize and introduce a modifying group. You may.
  • oligonucleotide label such as a radioactive substance such as 32 P or 35 s, an enzyme such as ALP or POD, or a fluorescent substance such as FITC, HEX, 6_FAM, or TET may be introduced into the synthesized nucleotide. good.
  • a specific oligonucleotide is hybridized with a first oligonucleotide and a second oligonucleotide labeled with biotin or the like, and then dissociated, for example, bound to a solid phase such as a microtiter plate.
  • Hybridized with the polymorphism-specific probe washed out the unhybridized nucleic acid, detected whether or not the nucleic acid hybridized with the probe was hybridized by labeling the first oligonucleotide, and determined the detection signal of each probe.
  • the kit includes: (i) at least one kind of first oligonucleotide selected from the group consisting of a wild-type first oligonucleotide and one or two kinds of polymorphic first oligonucleotides; A second oligonucleotide comprising a sequence that is complementary to the chromosome or nucleic acid fragment of the strand strand to which the first-generation lumbleucleotide hybridizes and that does not hybridize with the nucleotide polymorphism sequence portion; (ii) nuclease activity and ligase At least one enzyme having a nuclease activity, and (iv) a detection probe, wherein the detection probe has a nuclease activity at a base sequence that does not form a base pair generated in a nucleotide polymorphism sequence portion when each oligonucleotide hybridizes.
  • the first and second oligonucleotides may be labeled in advance with an enzyme, a biotin, a fluorescent substance, a hapten, an antigen, an antibody, a radioactive substance, a luminophore, or the like as described above.
  • oligonucleotide having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NOS: 1 and 2 having a sequence homologous to the sequence of the human ACE gene was obtained by the phosphoramidite method using a DNA synthesizer type 392 of Perkin Elmer Inc. , 2) and SEQ ID NO:
  • Detector Mouth pieces 3 and 4 have a sequence complementary to the sequence of the human ACE gene, but each have at their 3 'end a base corresponding to a wild-type or polymorphism corresponding to the nucleotide polymorphism site, and 'Piotin is linked to the' side.
  • Detection probe 5 has a sequence complementary to the sequence of the human ACE gene adjacent to the 3 'end of detection probes 3 and 4, but one base at the 5' end corresponds to the nucleotide polymorphism site, and Or having a base that is not complementary to the polymorphism.
  • oligonucleotide purification was performed using a Perkin Elmer Inc. PC column.
  • the oligonucleotide (A probe) having the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 6 and the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 were synthesized by the phosphoramidite method using a DNA synthesizer type 392 of Parkin Elma Co., Ltd. Oligonucleotides (T-ports) were synthesized. Both the A and T probes are complementary to the human ACE gene sequence and specific at the nucleotide polymorphism site
  • the cells were replaced with 0.1 pmol dNTP, 0.5 PVP (polyvinylpyrrolidone), and 5XSSC, and blocking for suppressing nonspecific reaction was performed at room temperature for about 2 hours. Finally, it was washed with 1XSSC and dried.
  • PVP polyvinylpyrrolidone
  • Reagents A 25 l solution containing the following reagents was prepared.
  • a dioxenin compound (Lmniphos480; Lumigen), which is a luminescent substrate for alkaline phosphatase
  • the mixture was kept at 37 ° C for 15 minutes, and the luminescence was measured using a photon counter (Hamamatsu Photonics) in a dark room.
  • Table 1 shows the results of nucleotide polymorphism detection of the human ACE gene, which was reacted in (5) above and detected in (6). The numerical value is displayed as the amount of light emission (cps: count / second). Asignal indicates the detection signal of the amplified nucleic acid fragment reacted with the A probe, and Tsignal indicates the detection signal of the nucleic acid fragment reacted with the T probe.
  • one base polymorphism of the ACE gene can be identified by the signal obtained from each probe.
  • the present invention provides a method for clearly and easily detecting a polymorphism in a sample nucleic acid.
  • false positives did not occur, and it was easy to distinguish between homozygotes and heterozygotes, which was difficult with the conventional method.

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Description

塩基多型を検出する方法
技術分野
本発明は、 核酸配列の分析法に関する。 さらに詳しくは、 特定の核酸配列中に 含まれる塩基多型を検出することができる核酸配列分析法に関する。 本発明の核 酸配列分析法は、 遺伝子工学や分子生物学及びこれらに関連する産業分野におい て有用である。
背景技術
本発明において、 塩基多型とは野生型とは異なる配列を有する遺伝子型であつ て、 多型遺伝子は薬物代謝において副作用および治療失敗の発生において個体間 変動の原因として重要な役割を果たしている。 また体質として知られる基礎代謝 等の個人差の原因としても知られている。 その上、 これらは多数の疾患の遺伝マ 一力一としての働きもする。 それゆえ、 これら突然変異の解明は臨床的に重要で あり、 ルーチンの表現型分類が臨床研究における精神医学患者および自発志願者 にとつて特に ί¾奨される (Gramおよひ Brsen, European Consensus Conference on Pharmacogenetics . Commission oi the European Communities, Luxembourg, 1990, ρρ87·96; Balantら, Eur. J. Clin. Pharmacol. 36, 551-554、 1989)。 それゆえ、 原因となる多型遺伝子の同定に続くそれぞれの遺伝子型の検 出用の核酸配列分析法が所望される。
従来の核酸配列分析技術としては、 例えば核酸配列^定法 (シークェンシング 法) がある。 核酸配列決定法は核酸配列中に含まれる塩基多型を検出、 同定する ことができるが、 铸型核酸の調製、 ポリメラーゼ反応、 ポリアクリルアミドゲル 電気泳動、 核酸配列の解析等を行うため多大な労力と時間が必要である。 また近 年の自動シークェンサ一を用いることで省力化は行うことができるが、 高価な装 置が必要であるという問題がある。
他の方法として、 サザンハイブリダィゼーシヨン法がある (村松正實編 「ラボ マニュアル遺伝子工学増補版」 丸善株式会社発行、 第 7 0〜7 5頁)。 この方法 によれば、 標識された D N Aプローブと相補的な塩基配列を持つ D NAの領域を 同定することができる。 即ち、 サザンハイブリダィゼ一シヨン法では、 核酸断片 をァガロースゲルやポリアクリルアミドゲルの平板上で電気泳動させ、 断片の大 きさ (長さ) によって分離した後、 変性させて一本鎖とし、 その平板にニトロセ ルロースやナイロン等のメンブランを張り付け、 核酸断片を電気泳動パターンそ のままにトランスファーし、 固定した後、 R I (放射性同位体) 等で標識した塩 基多型特異的 D NAプローブとハイプリッドを形成させ、 プローブに相補的なメ ンブラン上の核酸断片をオートラジオグラフィ一等により検出する。
サザンハイブリダィゼーション法によれば、 目的とする核酸断片の電気泳動位 置や分子量を決めることができるが、 電気泳動ゃォ一トラジオグラフィー等の操 作に長時間を要し、 迅速に分析を行うことができないこと、 塩基多型特異的 D N Aプローブとハイブリダィゼーションしたか否かだけで検出するため、 プローブ の特異性を厳密にしないと、 塩基多型の有無を検出するための類似配列を識別す ることが困難である等の問題があった。
近年、 酵素を用いた核酸配列の識別方法として、 ligaseを用いた方法 (特公平 6 - 4 4 8 8 0号公報、 特許第 2 6 2 2 2 5 5号) や、 ヌクレアーゼを用いた方 法 (特開平 2— 2 0 2 9 8号、 特開平 3— 4 3 0 9 8号) が知られている。 本発明の目的は、 試料中に含まれる塩基多型を含む特定の核酸配列中に塩基多 型の種類を容易に検出できる核酸配列分析法を提供することにある。
図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の実施例で使用したォリゴヌクレオチドの位置を示す。
発明の開示
本発明者らは、 上記事情に鑑み、 鋭意研究の結果、 リガ一ゼ活性と、 ヌクレア一 ゼ活性を逐次及ぴン又は同時に用いることによって、 塩基多型を容易に検出する ことができることを見出した。
具体的には、 特定の塩基多型部位を含む染色体又は核酸断片 (以下、 単に核酸 ということがある。) の 1つのストランドに相補的で、 (1 ) 塩基多型部位で野生 型の塩基と相補的な配列 (塩基) を有する第一野生型オリゴヌクレオチドと、 第 一野生型ォリゴヌクレオチドに隣接してハイプリダイズし、 塩基多型部位で野生 型の塩基と相補的でない塩基配列を有する第二ォリゴヌクレオチドと、 ( 2 )塩基 多型部位で多型の塩基と相補的な配列 (塩基) を有する一種以上の第一多型オリ ゴヌクレオチドと、 第一多型オリゴヌクレオチドに隣接してハイプリダイズし、 塩基多型部位で多型の塩基と相補的でない塩基配列を有する第二オリゴヌクレオ チドとを、 特定の塩基多型を含む染色体又は核酸断片とハイブリダィズさせ、 ヌ クレア一ゼ活性とリガーゼ活性を用い、 ヌクレア一ゼ活性とリガーゼ活性を検出 することによって、 塩基多型を検出することができることを見出した。
より具体的には、 第二オリゴヌクレオチド中の塩基多型部位の相補的でない部 分のみを 5 ' ェキソヌクレアーゼ又は 3 ' ェキソヌクレア一ゼで正確に削除した ときにのみリガーゼで結合できることを見出し、 本発明を完成するに至つた。 すなわち、 本発明は以下のような構成からなる。
項 1 . 試料中に含まれる塩基多型を検出する方法において、 ヌクレア一ゼ活性 と、 リガーゼ活性を逐次及び Z又は同時に用いる方法。
項 2 . 試料中に含まれる塩基多型を含む特定の核酸配列の塩基多型を検出する 方法において、 ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素を逐次 及び/又は同時に用いる項 1に記載の方法。
項 3 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が、 同一であ る項 1記載の方法。
項 4. ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が、 Mung beanヌクレアーゼ、 S1ヌクレ ァーゼ、ェキソヌクレアーゼ I〜VIIからなる群から選択される少なくとも 1種の 酵素である項 1に記載の方法。
項 5 . リガーゼ活性を含む酵素が T4DNA リガーゼ、 Ecoli DNAリガーゼ、 RNA リガーゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である項 2に記 載の方法。
項 6 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が耐熱性酵素 である項 1に記載の方法。
項 7 . 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfoに由来する項 6に記載の方法。 項 8 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラ一ゼである項 1に記載の 方法。
項 9 . D N Aポリメラーゼが、 Tth、 Taq、 KODまたは Pfu由来の耐熱性酵素 である項 8に記載の方法。 項 1 0 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定する方法であって、
(1)該染色体又は核酸断片の野生型及び Z又は塩基多型の配列部分を含む第一ォ リゴヌクレオチドを調製し、 該第一ォリゴヌクレオチドが八ィブリダイズするス トランド鎖の該染色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列部分でハイブ リダイズしない配列を含む第二ォリゴヌクレオチドを調製する工程、
(2)該第一才リゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドを、該染色体又は核酸 断片とハイブリダィズさせる工程、 及び
(3)各々のォリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部分で 第二オリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない塩基配列をヌクレア一ゼ活 性により除去した後、 リガ一ゼ活性を作用させる工程、 を包含する方法。
項 1 1 . 各々のオリゴヌクレオチドが結合することによって得られる 1本のォ リゴヌクレオチドを、 検出用プローブを用いて検出する項 1 0に記載の方法。 項 1 2 . 該塩基多型の配列部分が、 1塩基であつて、 該塩基が塩基多型が予測 されるものである項 1 0に記載の方法。
項 1 3 . 各々のオリゴヌクレオチドがハイブリダィズした時に生じる塩基多型 の配列部分で塩基対を形成しない塩基をヌクレアーゼ活性により除去した後、 リ ガーゼ活性により各々のォリゴヌクレオチドが結合することにより 1本のォリゴ ヌクレオチドとすることを、 繰り返して行う項 1 0に記載の方法。
項 1 4. 第一ォリゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドの少なくとも 1 つが、 予め標識されている項 1 0に記載の方法。
項 1 5 . 標識が酵素、 ピオチン、 蛍光物質、 ハプテン、 抗原、 抗体、 放射線物 質、 発光団および特定の核酸配列からなる群から選ばれたいずれかの方法である 項 1 4に記載の方法。
項 1 6 . 第二オリゴヌクレオチドの塩基多型配列部分で塩基対を形成しない配 列部分と標的配列にハイブリダィズしている第一オリゴヌクレオチドに各異なる 標識が結合してあり、 ヌクレアーゼ活性により塩基対を形成していない部分の配 列が除去されたとき、 該 2種類の標識により除去されたか否かを検出できる第 2 ォリゴヌクレオチドを含む項 1 1に記載の方法。 項 1 7 . 塩基多型が 1塩基多型、 挿入、 欠失多型のいずれかを含む項 1に記載 の方法。
項 1 8 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定する方法であって、
(1)染色体又は核酸断片の塩基多型の配列部分を 3 '末端に有する第一オリゴヌク レオチドと該第一オリゴヌクレオチドが該染色体又は核酸断片とハイプリダイズ した時に、 該第一オリゴヌクレオチドの 3 ' 側に隣接して位置して該染色体又は 核酸断片とハイブリダィズし、 5 '末端の 1塩基以上が該染色体又は核酸断片に ハイプリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチドを調製する工程、
(2)該第一ォリゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドを、特定核酸とハイブ リダィズさせる工程、 及び
(3)各々のォリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部分で 第二ォリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない配列部分をヌクレアーゼ活 性により除去した後、 リガーゼ活性により各々のオリゴヌクレオチド皇結合する 工程、 を包含する方法。
項 1 9 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定する方法において、 ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガーゼ活性を含む酵素 を逐次及び Ζ又は同時に用いる項 1 8に記載の方法。
項 2 0 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が、 同一で ある項 1 8記載の方法。
項 2 1 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が、 Mung beanヌクレアーゼ、 S1 ヌク レアーゼ、ェキソヌクレア一ゼ1〜\ 11からなる群から選択される少なくとも 1種 の酵素である項 1 8に記載の方法。
項 2 2 . リガーゼ活性を含む酵素が T4DNAリガーゼ、 Ecoli DNAリガーゼ、 RNA リガーゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である項 1 8に 記載の方法。
項 2 3 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が耐熱性酵 素である項 1 8に記載の方法。
項 2 4. 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfuに由来する項 2 3に記載の 方法。
項 2 5 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラ一ゼである項 1 8に記 載の方法。
項 2 6 . D NAポリメラ一ゼが、 Tth、 Taq、 KODまたは Pfu由来の耐熱性酵 素である項 2 5に記載の方法。
項 2 7 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定する方法であって、
(1)染色体又は核酸断片の塩基多型の配列部分を 5 '末端に有する第一オリゴヌク レオチドと該第一オリゴヌクレオチドが該染色体又は核酸断片とハイプリダイズ した時に、 該第一オリゴヌクレオチドの 5 ' 側に隣接して位置して、 該染色体又 は核酸断片とハイブリダィズし、 3 '末端の 1塩基以上が該染色体又は核酸断片 にハイプリダイズしない配列を含む第二ォリゴヌクレオチドを調製する工程、
(2)該第一ォリゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドを、特定核酸とハイブ リダィズさせる工程、 及び
(3)各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部分で 第二オリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない配列部分をヌクレアーゼ活 性により除去した後、 リガーゼ活性により各々のォリゴヌクレオチド ¾結合する 工程、 を包含する方法。
項 2 8 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定する方法において、 ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素 を逐次及び Z又は同時に用いる項 2 7に記載の方法。
項 2 9 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が、 同一で ある項 2 7記載の方法。
項 3 0 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が、 Mung beanヌクレアーゼ、 S1ヌク レア一ゼ、ェキソヌクレアーゼ I〜 VIIからなる群から選択される少なくとも 1種 の酵素である項 2 7に記載の方法。
項 3 1 . リガーゼ活性を含む酵素が T4DNAリガーゼ、 Ecoli DNAリガーゼ、 RNA リガーゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である項 2 7に 記載の方法。 項 3 2 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が耐熱性酵 素である項 2 7に記載の方法。
項 3 3 . 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfuに由来する項 3 2に記載の 方法。
項 3 4. ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラーゼである項 2 7に記 載の方法。
項 3 5 . D N Aポリメラーゼが、 Tth、 Taq, KODまたは Pfu由来の耐熱性酵 素である項 3 4に記載の方法。
項 3 6 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同 定するためのキットであって、 (i)野生型第一オリゴヌクレオチド及び 1種又は 2 種の多型第一ォリゴヌクレオチドからなる群から選ばれる少なくとも一種の第一 オリゴヌクレオチド、(ii)該第一オリゴヌクレオチドがハイプリダイズするストラ ンド鎖の該染色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列部分でハイプリダ ィズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチド、 (iii)ヌクレアーゼ活性及びリガ —ゼ活性を含む少なくとも一種の酵素及び (iv)検出プローブを含み、 該検出プロ ーブは各々のオリゴヌクレオチドが八ィプリダイズした時に塩基多型の配列部分 で生じる塩基対を形成しない塩基配列をヌクレアーゼ活性により除去した後、 リ ガーゼ活性を作用させることにより結合される第一ォリゴヌクレオチド及び第二 オリゴヌクレオチドの結合物を検出し得るものであるキット。
項 3 7 . 塩基多型が 1塩基多型、 挿入、 欠失多型のいずれかを含む項 1 8に記 載の方法。
以下、 本発明を詳細に説明する。 試料中に含まれる特定の塩基多型部位を含む 染色体又はその断片は、 目的の遺伝子の情報を担う塩基多型部位を含む標的核酸 であれば、 特に制限されない。 該標的核酸の例としては、 Alu配列、 蛋白質をコ ードする遺伝子のェキソンやイントロン、 プロモーターなどが例示できる。 より 具体的には、 遺伝病を含む各種疾患、 薬物代謝、 生活習慣病(高血圧、糖尿病等) に関連する遺伝子が挙げられる。 例えば、 高血圧として A C E遺伝子が挙げられ る。
本発明において、 染色体又は核酸断片の多型核酸とは、 野生型核酸のうち少な くとも 1つのヌクレオチドが点突然変異して他のヌクレオチドに置換されている ものや、 野生型核酸の一部に挿入、 欠失配列等を含む核酸のことである。 このよ うな塩基多型により体質等が異なっていることが解明されてきており、 本発明の 方法は試料中の核酸がこのような予想される多型を有しているか否かを検査する 方法である。
本発明における塩基多型を検出する方法においては、 ヌクレア一ゼ活性とリガ ーゼ活性を逐次及び/又は同時に用いることを特徴とする。 該活性は、 例えば、 酵素によって行うことができ、両活性を備えた酵素を使用することも可能である。 具体的には、 ヌクレア一ゼ活性を有する酵素としては、 Mung beanヌクレアー ゼ、 S1ヌクレアーゼ、 ェキソヌクレアーゼ I〜VII等を例示することができ、 リ ガーゼ活性を含む酵素としては、 T4DNA リガーゼ、 E.coH DNA リガ一ゼ、 RNA リガーゼ等を例示することができる。
上記ヌクレア一ゼ活性を含む酵素とリガーゼ活性を含む酵素は、 耐熱性酵素で あることが好ましい。 好ましくは、 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KOD、 Pfuに由来 するのがよい。
また、 ヌクレアーゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラ一ゼ、 より具体的には、 D N Aポリメラーゼが、 Tth、 Taq、 KOD、 Pfu 由来の耐熱性酵素であるのが好 ましい。
本発明の塩基多型の検出方法の具体的態様としては、 試料中に含まれる塩基多 型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定する方法であって、
(1)該染色体又は核酸断片の塩基多型の配列部分を含む第一オリゴヌクレオチド を調製し、 該第一ォリゴヌクレオチドが八ィプリダイズするストランド鎖の該染 色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列部分が重なる配列を含む第二ォ リゴヌクレオチドを調製し、
(2)該第一才リゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドを、該染色体又は核酸 断片とハイブリダィズさせ、
(3)各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に生じる塩基多型の配列 部分で塩基対を形成しない塩基をヌクレアーゼ活性により除去した後、 リガーゼ 活性を作用させることにより、 試料中に含まれる特定の核酸配列の塩基多型を同 定する方法である。
具体的には、 第一オリゴヌクレオチドは、 塩基多型の予想される配列部分と相 補的な塩基を含むオリゴヌクレオチドである。 好ましくは、 該塩基多型が予想さ れる部分は、 第一ヌクレオチドの 3 ' 又は 5 ' 末端がよい。
第一オリゴヌクレオチドが第二オリゴヌクレオチドよりも 5 '側にある場合に は、 該塩基多型の部位は、 第一オリゴヌクレオチドの 3 ' 末端にあり、 第一オリ ゴヌクレオチドが、第二オリゴヌクレオチドよりも 3 ' にある場合には、 該塩基 多型の部位は、 第一ヌクレオチドの 5 ' 末端にあり、 更に、 5 ' にリン酸基を有 する。
第二オリゴヌクレオチドは、 塩基多型の予想される配列部分と相補的でない塩 基を含むオリゴヌクレオチドであって、 少なくとも 1塩基で第一オリゴヌクレオ チドとオーバ一ラップする。
本発明における各オリゴヌクレオチドの長さとしては、 1 3〜3 5塩基、 好ま しくは、 1 6〜3 0塩基である。
例えば、 第一オリゴヌクレオチドの 3 ' 末端塩基が塩基多型部位の予想される ォリゴヌクレオチドになるように設計し、 野生型第一ォリゴヌクレオチドは野生 型核酸の該塩基と相補的な塩基、 及び多型第一オリゴヌクレオチドは多型核酸の 該塩基と相補的な塩基を配置させる。 さらに、 第二オリゴヌクレオチドの 5 ' 末 端が第一ォリゴヌクレオチドと 1塩基オーバーラップするよう設計する場合は、 該第二オリゴヌクレオチドのォ一バ一ラップする塩基は、 野生型、 多型とも、 相 補的な塩基以外のもの 選択する。 野生型、 多型共に相補的でない塩基を選択す ることによって、 第二オリゴヌクレオチドは 1種類調製するのみでよい。 その組 み合わせの例は以下の通りである。 表 1
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この原理によって、 このように設計した場合野生型第一ォリゴヌクレオチド Z 第二ォリゴヌクレオチド Z野生型核酸の組み合わせ及び多型第一ヌクレオチド / 第二オリゴヌクレオチド z多型核酸の組合せにおいてのみ、 第二オリゴヌクレオ チドのオーバ一ラップする部分を除いて、 完全に一致する為ヌクレアーゼ活性及 びリガーゼ活性によって、 第一オリゴヌクレオチドと第二オリゴヌクレオチドは 連結して 1本になるが、 野生型第一オリゴヌクレオチド /第二オリゴヌクレオチ ド /多型核酸の組み合わせ及び多型第一ヌクレオチドノ第二ォリゴヌクレオチド ノ野生型核酸の組合せにおいては、 第一オリゴヌクレオチドの 3 '末端が相補的 にならないので、 ヌクレアーゼ活性が働かず、 第二ォリゴヌクレオチドのオーバ ーラップ部分が除去されないので、 リガーゼ活性による連結が起こらない。
ヌクレアーゼ活性及びリガーゼ活性
本発明においては、 上記野生型第一オリゴヌクレオチドと多型第一オリゴヌク レオチドを、 試料に別々、 又は同時に作用させる。
i)上記第一オリゴヌクレオチドと第二オリゴヌクレオチドを塩基多型を含む染 色体又は核酸断片にハイブリダィズさせる。 ハイブリダィズさせる条件は、 通常 行われる条件でよい。例えば、モレキュラークローニングに記載の方法に従って、 行うことができる。
ii)次に第二ォリゴヌクレオチドのオーバーラップした部分を、 ヌクレア一ゼ活 性を用いて切断する。 使用できる酵素活性としては、 上述したとおりである。 好 ましくは、 ェキソヌクレア一ゼ活性が好ましく、 DNAポリメラーゼ等のェキソ ヌクレアーゼが好ましい。
第二ォリゴヌクレオチドの 5 '末端が第一ォリゴヌクレオチドとオーバーラッ プしている場合には、 5 ' ェキソヌクレアーゼを用いて、 第二オリゴヌクレオチ ドのォ一バーラップしている部分を切断し、 リン酸基が突出する。
.一方、 第二オリゴヌクレオチドの 3 ' 末端が第一オリゴヌクレオチドとオーバ —ラップしている場合には、 3, ェキソヌクレアーゼを用いて、 第二オリゴヌク レオチドのォ一パーラップしている部分を切断する。
iii)同時に、 5 '側にあるオリゴヌクレオチドと 3 ' 側にあるオリゴヌクレオチ ドをリガーゼ活性を用いて結合させ、 1本のォリゴヌクレオチドにする。
本発明において、 第一オリゴヌクレオチド中の塩基多型に対応する部位が相補 的でないと、 エンドヌクレアーゼで切断されても、 塩基多型に対応する部位が相 補的でないため、 リガーゼ活性によって 1本のオリゴヌクレオチドに結合するこ とができない。
野生型第一オリゴヌクレオチドを用いて試料核酸にヌクレアーゼ活性及びリガ —ゼ活性を用いた場合、 試料核酸が野生型であれば 1本鎖となるが、 多型では反 応が起きない。 逆に、 多型第一オリゴヌクレオチドを用いて試料核酸にヌクレア ーゼ活性及びリガーゼ活性を用いた場合、 試料核酸が多型であれば 1本鎖となる が、 野生型であれば反応は起こらない。 従って、 一つの試料を二つに分け、 一方 は野生型を用いて反応を行い、 他方は多型を用いて反応を行い、 反応が起ったか 否かを調べることにより、 試料核酸が野生型であるか多型であるかを明確に知る ことができる。 特に、 ヒトを始め、 高等生物は、 1種類の遺伝子について、 父親 由来の遺伝子と母親由来の遺伝子をそれぞれ 1つずつ有しているが、 この方法に よれば、 試料遺伝子が野生型のホモか、 多型のホモか、 ヘテロかを区別すること もできる。 すなわち、 ヘテロの場合には、 野生型遺伝子と多型遺伝子が共に存在 するから野生型を用いた場合も多型を用いた場合も反応が起きる。
野生型と多型第一オリゴヌクレオチドに別々に異なる標識を付加しておくこと で、 試料を二つに分ける必要はない。
標的核酸が検出するのに十分な量が含まれていない場合、 上記ハイプリダイゼ ーションをする前に、 前記多型配列を含む核酸断片を以下に示す増幅反応によつ て、 増幅しておくことも可能である。
上記増幅法としては特に限定されるものではないが、 P C R (Polymerase chain reaction;特公平 4 -67960号公報、 特公平 4一 67957号公報)、 A S B A (Nucleic acid sequence-based amplincation method; N a t U r e 第 350巻、 第 91頁 (1991))、 LCR (WO89/12696, 特開平 2-2934号など) 、 S D A (Strand Displacment Amplincation; !Siucleic Acids Res. 第二 0巻、 一 691頁 (1992))、 RCR (WO90/01069 ) TMA (Transcription Mediated amplification Method; J.CUn.Microbiol.第 31巻、 第 3270頁 (1993)) など が挙げられ、 いずれにおいても適用することが可能である。
検出
上記反応によって得られる 1本鎖のオリゴヌクレオチドを、 プローブを用いて 以下の様にして検出する。
本発明で使用されるプロ一ブは、 塩基多型を含みその種類により検出シグナル が異なれば良いが、 好ましくは連続した少なくとも 15塩基以上、 より好ましく は連続した少なくとも 18塩基以上からなる塩基配列が必要である。好ましくは、 第一オリゴヌクレオチドの塩基多型部位と含む一部と第二オリゴヌクレオチドの 一部共に相補的な配列を含むものがよい。 プローブは特定核酸配列と相補鎖を形 成すれば DNAでも RNAでも PNAでもよく、 化学合成または生物学的な方法 により調製することができる。 例えば、 パ一キンエルマ一社の DN Aシンセサイ ザ一 391型を用いてホスホアミダイト法により合成できる。 精製は F PLCで MONO— Qカラムや逆相カラムにて実施しても良い。 他の合成方法としてリン 酸トリエステル法、 H—ホスホネート法、 チォホスファイト法等がある。
また、 第一オリゴヌクレオチド又は第二オリゴヌクレオチドに予め標識を賦す ることが好ましい。 その場合は、 合成時にピオチン、 リンカ一アーム、 蛍光物質 等を有するヌクレオチドまたはオリゴ dGTP、 オリゴ dATP、 オリゴ dTT P、 オリゴ dCTP等を 5' 末端または 3' 末端に付加し修飾基を導入しても良 い。 あるいはピオチン、 リンカ一アーム、 蛍光物質等を有するヌクレオチドをォ リゴヌクレオチド配列中のヌクレオチドの替わりに置換して合成し修飾基を導入 しても良い。 あるいは合成したヌクレオチドに後から32 P、 35sなどの放射性物質、 ALP、 PODなどの酵素、 FITC、 HEX、 6_FAM、 TETなどの蛍光物質など、 公 知のオリゴヌクレオチドの標識物を導入しても良い。
具体的には、 例えば、 ピオチン等で標識した第一オリゴヌクレオチドと第二ォ リゴヌクレオチドを用いて特定核酸とハイブリダィズさせた後、 解離させ、 例え ば、 マイクロタイタープレートのような固相に結合させた多型特異的プローブと ハイブリダィズさせ、 ハイブリダィズしなかった核酸を洗いだし、 プローブとハ ィプリダイズした核酸の第一ォリゴヌクレオチドの標識によりハイプリダイズし たか否かを検出し、 各プローブの検出シグナルの比により塩基多型が野生型か変 異型もしくは混合型であるのかを同定する方法が挙げられる。
野生型と多型のオリゴヌクレオチドに異なる標識、 例えば色の異なる蛍光標識 を付与することで、 野生型及び多型の検出を 1つのプレートのゥエルで行うこと ができる。
干ッ卜
本発明において、 キットとしては、 (i)野生型第一オリゴヌクレオチド及び 1種 又は 2種の多型第一ォリゴヌクレオチドからなる群から選ばれる少なくとも一種 の第一ォリゴヌクレオチド、(ii)該第一才リゴヌクレオチドがハイブリダイズする ストランド鎖の該染色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列部分でハイ プリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチド、 (ϋί)ヌクレアーゼ活性及 びリガ一ゼ活性を含む少なくとも一種の酵素及び (iv)検出プローブを含み、 該検 出プローブは各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配 列部分で生じる塩基対を形成しない塩基配列をヌクレアーゼ活性により除去した 後、 リガーゼ活性を作用させることにより結合される第一オリゴヌクレオチド及 び第二ォリゴヌクレオチドの結合物を検出し得るものであるという特徵を有する。 該第一及び第二オリゴヌクレオチドは、 予め上述したような酵素、 ピオチン、 蛍光物質、 ハプテン、 抗原、 抗体、 放射線物質および発光団などによって標識さ れていてもよい。
発明を実施するための最良の形態
以下、 実施例により本発明をより具体的に説明する。 なお、 本発明は実施例に より特に限定されるものではない。
実施例 1 ACE遺伝子の塩基多型検出
( D ACE遺伝子断片増幅用プライマ一及び多型検出用オリゴヌクレオチドの 合成
パーキンエルマ一社 D N Aシンセサイザー 3 9 2型を用いて、 ホスホアミダイ ト法にて、 ヒト A C E遺伝子の配列と相同な配列を有する配列番号 1及び 2に示 される塩基配列を有するオリゴヌクレオチド(プライマ一 1、 2 )および配列番号
3、 4及び 5に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチド(検出用フ°ロ -フ' 3、
4、 5 ) を合成した。 検出用フ。口-フ' 3及び 4は、 ヒト A C E遺伝子の配列と相補 的な配列を有するが、 各々 3 ' 末端に塩基多型部位に対応する野生型又は多型に 対応する塩基を有し、各々 5 '側にピオチンを連結している。検出プローブ 5は、 検出用プローブ 3及び 4の 3 ' 末端に隣接するヒト A C E遺伝子の配列と相補的 な配列を有するが、 その 5 ' 末端の 1塩基が塩基多型部位に対応し、 野生型又は 多型とも相補的でない塩基を有する。 合成はマニュアルに従い、 各種オリゴヌク レオチドの脱保護はアンモニア水で 5 5 °C、 一夜実施した。 オリゴヌクレオチド の精製はパーキンエルマ一社〇 P Cカラムにて実施した。
( 2 ) リンカ一アームを有するオリゴヌクレオチドの合成
パ一キンエルマ一社 D N Aシンセサイザ一 3 9 2型を用いて、 ホスホアミダイ ト法にて、 配列番号 6に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチド (Aプロ ーブ) および配列番号 7に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチド (Tプ 口一ブ) を合成した。 Aプローブ及び Tプローブとも、 ヒト A C E遺伝子の配列 と相補的であり、 塩基多型部位で特異的である
この際、 特表昭 6 0 - 5 0 0 7 1 7号公報に開示された合成法により、 デォキ シゥリジンから化学合成により調製した、 5位にリンカ一アームを有するゥリジ ンを上記オリゴヌクレオチドに導入した。 合成されたリンカーオリゴヌクレオチ ドはアンモニア水で 5 0 ° (、 一夜脱保護処理を施した後、 パーキンエルマ一社 O P Cカラムにて実施した。
( 3 ) プローブオリゴヌクレオチドのマイクロタイ夕一プレ一トへの結合 上記 (2 ) で合成したプローブオリゴヌクレオチドについて、 そのリンカ一ァ ームを介して、 マイクロタイ夕一プレート内面へ結合した。 オリゴヌクレオチド を 5 OmM硼酸緩衝液(pHl 0)、 10 OmM MgC l2の溶液に 0. 05 p mo 1Z 1になるように希釈し、 マイクロタイタープレート (MicroFLUORB、 ダイナテック社) に各 1 0 O 1ずつ分注し、 1 5時間程度室温に放置すること で、リンカーォリゴヌクレオチドをマイクロタイ夕一プレート内面に結合させた。 その後、 0. l pmo l dNTP、 0. 5 PVP (ポリビニルピロリドン)、 5XS S Cに置換して、 非特異反応を抑えるためのブロッキングを室温で 2時間 程度行った。 最後に 1XSSCで洗浄して乾燥させた。
(4) PCR法によるヒト ACE遺伝子断片の増幅
ヒト白血球より抽出した DN A溶液をサンプルとして使用して、 下記試薬を添 加して、 下記条件によりヒト ALDH 2遺伝子断片を増幅した。
試薬:以下の試薬を含む 25 l溶液を調製した。
プライマー 1 10 pmo 1
プライマ一 2 10 pmo 1
X 10緩衝液 2. 5 l
2mM dNTP 2. 5 l
Tth DNAポリメラーゼ 1U
抽出 DNA溶液 10 Ong
増幅条件
94 · 2分
94。C ' l分、 57°C ' 2分、 75Τλ 1. 5分 (35サイクル)。
(5) 検出用オリゴヌクレオチドによる検出反応
(4) の増幅反応液を 5 lにェビ由来アルカリフォスファタ—ゼ U添加し 37°Cで 15分、 8 で 15分保温した後、 以下の試薬を含む 20 l溶液を 調製した。
検出用オリゴ 3または 4 10 pmo 1
検出用オリゴ 5 10 pmo 1
X 10緩衝液 2 m
Tth DNAポリメラーゼ 1 U Tth DNAリガ一ゼ 1U
増幅反応溶液 5 l
検出条件
94。C · 2分
94 l分、 65°C · 2分 (5サイクル)。
(6) マイクロ夕イタ一プレート中でのハイブリダィゼ一ション
(5) の検出反応液 10 1に、 0. 6N Na〇Hを 10 U添加して DN Aを変性させ、 20 OmMクェン酸一リン酸緩衝液(pH6. 0)、 2%SDS (ド デシル硫酸ナトリウム)、 75 OmM NaC l、 0. l%NaN3の溶液 80 1に加えて、 上記 (3) の捕捉プローブが結合したマイクロタイ夕一プレートに 投入した。 蒸発を防ぐため流動パラフィンを重層し、 50°Cで 30分間振盪させ た。 これによつて、 検出反応で核オリゴヌクレオチドがハイブリダィズし、 一部 ヌクレア一ゼで除去されたのち、 リガ一ゼにより結合された核酸断片が、 固定化 されたプローブによって特異的にマイクロタイ夕一プレートに捕捉される。
次に、 2XSSC (pH7. 0)、 1 %SDSに置換し同様に蒸発を防ぐため、 流動パラフィンを重層し、 55 °Cで 20分間振盪させた。 その後、 アルカリフォ スファタ一ゼを標識したストレプトアビジン(DAKO製: D0396) を 5 OmMト リス—塩酸緩衝液 (pH7. 5)、 1 BS Aの溶液で 2000倍に希釈した溶液 100^ 1と置換し、 37 で 15分間振盪させた。 これによつて、 捕捉された D N Aのピオチンにアル力リ性ホスファターゼ標識したストレブトァビジンが特 異的に結合した。 250 1の 5 OmMトリス—塩酸緩衝液(PH7. 5)、 0. 025% Tween20溶液で 3回洗浄後、アル力リ性ホスファターゼの発光基質で あるジォキセ夕ン化合物 (商品名: Lmniphos480; Lumigen社) 50 1を注 入し、 37°Cで 15分間保温後に暗室中でホトンカウンタ一(浜松ホトニクス社) で発光量を測定した。
これらの工程はすべて、 DNAプローブ自動測定システム (日本臨床検査自動 化学会会誌 第 20巻、 第 728頁(1995年) を参照) により自動で行われ、 所要時間は約 2.5時間であつた。
(7) ヒト A C E遺伝子塩基多型測定検討結果 上記 (5 ) にて反応し、 (6 ) にて検出されたヒト ACE遺伝子の塩基多型検出 結果を表 1に示す。 数値は発光量 (cps: count/second) で表示される。 Asignal は Aプローブと反応した増幅核酸断片の検出シグナルを、 Tsignalは Tプローブ と反応した核酸断片の検出シグナルを示す。
表 2
Figure imgf000019_0001
表 1から判るように各プローブで得られたシグナルにより A C E遺伝子の 1塩 基多型が同定できる。
本発明により、 試料核酸中の多型を明確にまた簡便に検出できる方法が提供さ れる。 本発明の方法では、 偽陽性が生じず、 従来法では困難であったホモ接合と ヘテロ接合の識別も容易になった。

Claims

請求の範囲
1 . 試料中に含まれる塩基多型を検出する方法において、ヌクレア一ゼ活性と、 リガーゼ活性を逐次及び z又は同時に用いる方法。
2 . 試料中に含まれる塩基多型を含む特定の核酸配列の塩基多型を検出する方 法において、 ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素を 逐次及び/又は同時に用いる請求項 1に記載の方法。
3 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が、 同一である 請求項 1記載の方法。
4. ヌクレアーゼ活性を含む酵素が、 Mung beanヌクレア一ゼ、 S1 ヌクレア —ゼ、ェキソヌクレア一ゼ I〜VIIからなる群から選択される少なくとも 1 種の酵素である請求項 1に記載の方法。
5 . リガーゼ活性を含む酵素が T4DNAリガーゼ、 Ecoli DNAリガーゼ、 RNA リガーゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である請求項 2 に記載の方法。
6 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が耐熱性酵素で ある請求項 1に記載の方法。
7 . 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfuに由来する請求項 6に記載の方 法。
8 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラーゼである請求項 1に記載 の方法。
9 . D N Aポリメラ一ゼが、 Tth、 Taq、 KODまたは Pfu由来の耐熱性酵素で ある請求項 8に記載の方法。
0 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 する方法であって、
(1)該染色体又は核酸断片の野生型及び/又は塩基多型の配列部分を含む第 一才リゴヌクレオチドを調製し、 該第一ォリゴヌクレオチドがハイプリダイ ズするストランド鎖の該染色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列 部分でハイプリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチドを調製する 工程、 (2)該第一ォリゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドを、 該染色体又は 核酸断片と Λイブリダィズさせる工程、 及び
(3)各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部 分で第二オリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない塩基配列をヌクレ ァーゼ活性により除去した後、 リガーゼ活性を作用させる工程、
を包含する、 方法。
1 . 各々のオリゴヌクレオチドが結合することによって得られる 1本のオリ ゴヌクレオチドを、 検出用プローブを用いて検出する請求項 1 0に記載の方 法。
2 . 該塩基多型の配列部分が、 1塩基であって、 該塩基が塩基多型が予測され るものである請求項 1 0に記載の方法。
3 . 各々のオリゴヌクレオチドがハイブリダィズした時に生じる塩基多型の 配列部分で塩基対を形成しない塩基をヌクレア一ゼ活性により除去した後、 リガーゼ活性により各々のオリゴヌクレオチドが結合することにより 1本の ォリゴヌクレオチドとすることを、繰り返して行う請求項 1 0に記載の方法。 4. 第一ォリゴヌクレオチド及び第二ォリゴヌクレオチドの少なくとも 1つ が、 予め標識されている請求項 1 0に記載の方法。
5 . 標識が酵素、 ピオチン、 蛍光物質、 ハプテン、 抗原、 抗体、 放射線物質、 発光団および特定の核酸配列からなる群から選ばれたいずれかの方法である 請求項 1 4に記載の方法。
6 . 第二オリゴヌクレオチドの塩基多型配列部分で塩基対を形成しない配列 部分と標的配列にハイプリダイズしている第一オリゴヌクレオチドに各異な る標識が結合してあり、 ヌクレアーゼ活性により塩基対を形成していない部 分の配列が除去されたとき、 該 2種類の標識により除去されたか否かを検出 できる第 2オリゴヌクレオチドを含む請求項 1 1に記載の方法。
7 . 塩基多型が 1塩基多型、 挿入、 欠失多型のいずれかを含む請求項 1に記載 の方法。
8 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 する方法であって、 (1)染色体又は核酸断片の塩基多型の配列部分を 3 '末端に有する第一オリゴ ヌクレオチドと該第一オリゴヌクレオチドが該染色体又は核酸断片とハイブ リダィズした時に、 該第一オリゴヌクレオチドの 3 ' 側に隣接して位置して 該染色体又は核酸断片とハイブリダィズし、 5 '末端の 1塩基以上が該染色 体又は核酸断片にハイプリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチド を調製する工程、
(2)該第一オリゴヌクレオチド及び第二オリゴヌクレオチドを、 特定核酸とハ イブリダィズさせる工程、 及び
(3)各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部 分で第二オリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない配列部分をヌクレ ァーゼ活性により除去した後、 リガーゼ活性により各々のォリゴヌクレオチ ドが結合する工程、 を包含する方法。
9 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 する方法において、 ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵 素を逐次及び/又は同時に用いる請求項 1 8に記載の方法。
0 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガーゼ活性を含む酵素が、 同一である 請求項 1 8記載の方法。
1 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が、 Mung beanヌクレアーゼ、 S1 ヌクレア ーゼ、ェキソヌクレア一ゼ I〜VIIからなる群から選択される少なくとも 1種 の酵素である請求項 1 8に記載の方法。
2 . リガーゼ活性を含む酵素が T4DNA リガーゼ、 Ecoli DNAリガーゼ、 RNA リガ一ゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である請求項 1 8 に記載の方法。
3 . ヌクレア一ゼ活性を含む酵素と、 リガ一ゼ活性を含む酵素が耐熱性酵素で ある請求項 1 8に記載の方法。
4. 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfuに由来する請求項 2 3に記載の 方法。
5 . ヌクレアーゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラーゼである請求項 1 8に 記載の方法。 D N Aポリメラーゼが、 T h、 Taq、 KODまたは Pfu由来の耐熱性酵素で ある請求項 2 5に記載の方法。
試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 する方法であって、
(1)染色体又は核酸断片の塩基多型の配列部分を 5 '末端に有する第一ォリゴ ヌクレオチドと該第一オリゴヌクレオチドが該染色体又は核酸断片とハイブ リダィズした時に、該第一オリゴヌクレオチドの 5 '側に隣接して位置して、 該染色体又は核酸断片と八イブリダィズし、 3 '末端の 1塩基以上が該染色 体又は核酸断片にハイプリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチド を調製する工程、
(2)該第一オリゴヌクレオチド及び第二オリゴヌクレオチドを、 特定核酸とハ イブリダィズさせる工程、 及び
(3)各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズした時に塩基多型の配列部 分で第二オリゴヌクレオチドに生じる塩基対を形成しない配列部分をヌクレ ァーゼ活性により除去した後、 リガーゼ活性により各々のォリゴヌクレオチ ド 結合する工程、 を包含する方法。
試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 する方法において、 ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガーゼ活性を含む酵 素を逐次及び Z又は同時に用いる請求項 2 7に記載の方法。
ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガーゼ活性を含む酵素が、 同一である 請求項 2 7記載の方法。
ヌクレアーゼ活性を含む酵素が、 Mungbeanヌクレア一ゼ、 S1 ヌクレア ーゼ、ェキソヌクレア一ゼ I〜VIIからなる群から選択される少なくとも 1種 の酵素である請求項 2 7に記載の方法。
リガーゼ活性を含む酵素が T4DNAリガ一ゼ、 EcoU DNAリガーゼ、 RNA リガ一ゼからなる群から選択される少なくとも 1種の酵素である請求項 2 7 に記載の方法。 '
ヌクレアーゼ活性を含む酵素と、 リガーゼ活性を含む酵素が耐熱性酵素で ある請求項 2 7に記載の方法。
3 . 耐熱性酵素が Tth、 Taq、 KODまたは Pfuに由来する請求項 3 2に記載の 方法。
4. ヌクレア一ゼ活性を含む酵素が D N Aポリメラーゼである請求項 2 7に 記載の方法。
5 . D N Aポリメラーゼが、 Tth、 Taq、 KODまたは Pfu由来の耐熱性酵素で ある請求項 3 4に記載の方法。
6 . 試料中に含まれる塩基多型を含む染色体又は核酸断片の塩基多型を同定 するためのキットであって、 (0野生型第一オリゴヌクレオチド及び 1種又は
2種の多型第一ォリゴヌクレオチドからなる群から選ばれる少なくとも一種 の第一ォリゴヌクレオチド、 (ii)該第一ォリゴヌクレオチドがハイブリダイズ するストランド鎖の該染色体又は核酸断片と相補的で、 該塩基多型の配列部 分でハイプリダイズしない配列を含む第二オリゴヌクレオチド、(iii)ヌクレア —ゼ活性及びリガーゼ活性を含む少なくとも一種の酵素及び (iv)検出プロ一 ブを含み、 該検出プローブは各々のオリゴヌクレオチドがハイプリダイズし た時に塩基多型の配列部分で生じる塩基対を形成しない塩基配列をヌクレア ーゼ活性により除去した後、 リガーゼ活性を作用させることにより結合され る第一オリゴヌクレオチド及び第二オリゴヌクレオチドの結合物を検出し得 るものであるキット。
7 . 塩基多型が 1塩基多型、 挿入、 欠失多型のいずれかを含む請求項 1 8に記 載の方法。
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